HU212716B - Method for the preparation of vaccine against lyme disease - Google Patents

Method for the preparation of vaccine against lyme disease Download PDF

Info

Publication number
HU212716B
HU212716B HU905816A HU581690A HU212716B HU 212716 B HU212716 B HU 212716B HU 905816 A HU905816 A HU 905816A HU 581690 A HU581690 A HU 581690A HU 212716 B HU212716 B HU 212716B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
priority
burgdorferi
cells
producing
september
Prior art date
Application number
HU905816A
Other languages
English (en)
Other versions
HU905816D0 (en
HUT59613A (en
Inventor
Klaus Eichmann
Michael Kramer
Wallich Reinhard
Ulrich E Schaible
Markus M Simon
Original Assignee
Deutsches Krebsforsch
Max Planck Gesellschaft
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=25885304&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=HU212716(B) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Deutsches Krebsforsch, Max Planck Gesellschaft filed Critical Deutsches Krebsforsch
Publication of HU905816D0 publication Critical patent/HU905816D0/hu
Publication of HUT59613A publication Critical patent/HUT59613A/hu
Publication of HU212716B publication Critical patent/HU212716B/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/20Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Spirochaetales (O), e.g. Treponema, Leptospira
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/12Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria
    • C07K16/1203Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria
    • C07K16/1207Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from bacteria from Gram-negative bacteria from Spirochaetales (O), e.g. Treponema, Leptospira
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

A találmány szerint Lyme-kór elleni aktív és passzív oltóanyagot állítanak elő oly módon, hogy a B. burgdorferi OspA és/vagy OspB antigénjére specifikus monoklonális antitestet termelő hibridóma sejtvonalat állítanak elő, ezzel antitestet termelnek és ezt vakciná(73) Szabadalmasok:
Deutsches Krebsforschungszentrum Stiftung des Öffentlichen Rechts, Heidelberg (DE) Max-Planck Gesellschaft zűr Förderung dér Wissenschaften e.V., Göttingen (DE) (74) Képviselő:
Gödölle, Kékes, Mészáros & Szabó Szabadalmi és Védjegy Iroda, Budapest oltóanyag előállítására vá alakítják. A találmány tárgyát képezi a monoklonális sejtvonal és rekombináns antigén előállítására, valamint a patogén B. burgdorferi ZS7 mikroorganizmus törzs izolálására szolgáló eljárás is.
A leírás terjedelme: 12 oldal (ezen belül 2 lap ábra)
HU 212 716 B
HU 212 716 Β
A Lyme-borreliózis a leggyakoribb, kullancsok által terjesztett mérsékelt égövi fertőzőbetegség, amelyet a spirochaeták családjához tartozó Borrelia burgdorferi okoz és ezt főleg az Ixodes törzshöz tartozó kullancs viszi át az emberre. A betegség egy krónikus, progresszív fertőző megbetegedés, amely több szervet támad meg, így a bőrt, a központi és perifériás idegrendszert, a szívet, a májat, a vesét és az izom-csont rendszert. Mivel a betegség megbízható kezelése antibiotikum terápiával nehézkes, jelenleg nagy erőfeszítéssel kutatják magát a kórokozót és az immunválaszt, amelyet a gazdaszervezet ad a B. burgdorferi fertőzésre. Megállapították, hogy bár a Lyme-kórban szenvedő egyénekben a B. burgdorferi elleni antitestek titere magas, ez azonban semmilyen védelmet nem nyújt a fertőzéssel szemben. Feltehető, hogy a kórokozó a vérpályából igen gyorsan átlép a szövetekbe, ahol az immunrendszer számára már többé közvetlenül nem érhető el. Ez azt jelenti, hogy az antitestek nyújtotta védelem csak közvetlenül a fertőzés kezdete után hatásos, azaz addig, amíg a kórokozó az érpályában tartózkodik.
Az a tény, hogy a B. burgdorferi-vei való természetes fertőzöttség különböző állatfajtákban megtalálható, olyan próbálkozáshoz vezetett, amely szerint laboratóriumi modelleket dolgoztak ki a Lyme-kór részére. Ezek azonban csak korlátozott eredménnyel jártak. Olyan kísérletekben, amelyeknek az volt a céljuk, hogy egérben a B. burgdorferi-re specifikus immunválaszt váltsanak ki, azt találták, hogy beltenyésztett egér törzsekben egy már hosszú ideje tenyésztett izolált B. burgdorferi-vel való fertőzés enyhe, de szignifikáns olyan patomorfológiai elváltozásokhoz vezet a különböző szervekben, így az agyban, szívben, tüdőben és a vesékben, amelyekhez hasonlókat a Lyme-kóros betegekben lehetett megfigyelni [Schaible és munkatársai, Infect. Immun., 1., 41. (1988)].
A komolyabb kórkép kialakulását az állatoknál valószínűleg vagy a gazdaszervezet védekező immunrendszere akadályozta meg, vagy az, hogy a hosszabb ideig in vitro tenyésztett spirochaeták virulenciája lecsökkent [Johnson és munkatársai, J. Clin. Mierobiol., 20., 747. (1984) ; Schwan és munkatársai, Infect. Immun., 56., 1837.(1988)].
A találmány alapfeladata egy Lyme-kór elleni hatékony oltóanyag előállítása. Ehhez mindenekelőtt alkalmas laboratóriumi állat-modellre van szükség. Ezért javasoljuk egy funkcióképes T és B sejt hiányos egér törzs, az úgynevezett Scid-egér [Bosma és munkatársai, Natúré, 10., 52. (1983)] kísérleti állatként való alkalmazását, ugyanis izolált patogén B. burgdorferi törzzsel fertőzött Scid-egereknél sokszisztémás betegség alakul ki, mégpedig főként polyarthritis és carditis. Ezzel az állatmodellel vált először lehetővé a Lymekór elleni oltóanyagok hatásának a kipróbálása.
A találmány tárgyát egy olyan Lyme-kór elleni passzív oltóanyag képezi, amely egy vagy több, a B. burgdorferi 31 kD antigénjére (OspA) vagy/és 34 kD antigénjére (OspB), főként pedig a B. burgdorferi B31 (ATCC 35 210) vagy/és ZS7 (DSM 5527) törzsének
OspA vagy/és OspB antigénjére specifikus monoklonális antitestet tartalmaz.
Az OspA és OspB felületi antigéneket, ezek klónozását pBR322 plazmidba és az ezek elleni monoklonális antitesteket a Microbiology, 1986., 35-38. irodalmi helyen ismertetik. Ugyanitt leírják az OspA és OspB antigének aminosavszekvenciáját is. A Mól. Microbíol., 3(4)., 479-486. (1989) az OspA és OspB gén klónozását és szekvenálását ismerteti. Az EP 252 641 számú közrebocsátási iratban a 31 kD-os és 34 kD-os antigénre specifikus hibridóma módszerrel termelt monoklonális antitestet ismertetnek, amely antigén-antitest komplex képzésére képes. A J. Clin, Invest., 84., (1), 322-330. (1989) irodalmi helyen az endoflagellin antigént, a Nucleic Acids Rés., 17., (9), 3590. (1989) helyen pedig a B31 törzs flagellint írják le.
Az irodalomból azonban nem ismert, hogy a B. burgdorferi OspA és OspB antigénjére specifikus monoklonális antitestek Lyme-kór elleni passzív oltóanyag készítésre alkalmasak.
A találmány tehát eljárást nyújt Lyme-kór elleni passzív oltóanyag előállítására a B. burgdorferi OspA és/vagy OspB antigénjére specifikus monoklonális antitest felhasználásával. Az olyan oltóanyag az előnyös, amely egy IgG osztályba tartozó, találmány szerinti antitestet tartalmaz. Különösen előnyösek az IgG2b vagy IgGl alosztálybeli antitestek. Elő patogén B. burgdorferi sejtekkel, előnyösen B. burgdorferi ZS7 sejtekkel megfertőzött kísérleti állatoknál, előnyösen Scid-egereknél a találmány szerinti antitest adása ellentétben egy más antitest adásával, például a B. burgdorferi 41 kD antigénjére (flagellin) elleni antitest adásával - az arthritis, carditis és hepatitis kifejlődését meglepő módon teljesen vagy legalábbis nagymértékben gátolja.
A találmány szerinti oltóanyag adott esetben a hatóanyag antitest mellett még a szokásos vivő-, töltő- és segédanyagokat is tartalmazhatja.
A találmány tárgyát képezi továbbá egy eljárás Lyme-kór elleni passzív oltóanyag előállítására B. burgdorferi sejtekkel vagy részeivel, előnyösen teljes B. burgdorferi B31 és/vagy ZS7 sejtekkel immunizált kísérleti állat, előnyösen egér limfociták vagy lépsejtek felhasználása révén, amikoris az immunizált állat limfocitáiból vagy lépsejteiből sejtfúzióval olyan hibridomát állítunk elő, amely egy találmány szerinti monoklonális antitestet termel.
A találmány további tárgyát képezi egy olyan hibridoma sejtvonal (ECACC 89 091 302) is, amely a találmány szerinti AspA elleni LA-2 antitestet (IgG2b) termeli. Vonatkozik a találmány az OspA elleni LA26.1 antitest (IgGl) termelő hidridóma sejtvonalra (ECACC 90 050 406) is, valamint az OspB elleni LA25.1, illetve LA-27.1 antitest (IgG2b, illetve IgGl) termelő ECACC 90 050 405, illetve ECACC 90 050 407 hibridóma sejtvonalakra.
A találmány tárgyát képezi a patogén B. burgdorferi ZS7 törzs is (DSM 5527).
- (ECACC = European Collection of Animál Cell Cultures;
HU 212 716 B
DSM = Deutsche Sammlung von Mikroorganismen) Vonatkozik továbbá a találmány egy olyan antigénre, amely egy találmány szerinti monoklonális antitesttel immunológiai reakcióba lép. Ezalatt egy olyan antigén értendő, amely az OspA, illetve az OspB teljes aminosav szekvenciáját vagy az OspA-ból, illetve az OspB-ből csak egy immunogénként ható rész-szekvenciát (immunogén epitóp) tartalmaz. Egy szakember nehézség nélkül meg tudja határozni ezen proteinek immunogén epitópjait az OspA-protein szerkezetének analízise (ilyen például a Chou-Fassmann analízis) révén, majd kísérletileg meghatározhatja a hatásosságukat.
A találmány egy lényeges tárgyát egy olyan rekombináns antigén képezi, amely a találmány szerinti antitesttel immunológiailag reagál, és az antigént kódoló DNS szekvenciát egy rekombináns vektor, előnyösen egy olyan prokarióta vektor tartalmazza, amely alkalmas proteinek expressziójára.
Atalálmány különösen a B. burgdorferi ZS7-ből származó antigénre vonatkozik, amely a találmány szerinti antitesttel immunológiai reakcióba lép és amely az 1. ábrán bemutatott aminosav szekvenciát vagy ebből a szekvenciából egy immunogén epitópot tartalmaz. Eszerint a találmány egy olyan rekombináns DNS-re is vonatkozik, amely (1) az 1. ábrán bemutatott szekvenciát tartalmazza, (2) a genetikai kód degenerációja keretén belül egy ennek megfelelő nukleinsav szekvenciát vagy (3) és (l)-ből és/vagy (2)-ből származó egy szekvenciával szigorúan meghatározott feltételek között hibridizáló szekvenciát tartalmaz, amely a B. burgdorferi ZS7 31 kD antigénjét vagy ennek egy immunogén epitópját kódolja. A „szigorúan meghatározott feltételek” fogalmának meghatározását lásd Maniatis és munkatársai,Molecular Cloning” c. munkájában [A Laboratory Manual; Cold Spring Harbor Laboratory, New York (1982)].
Különösen előnyös találmány szerinti antigén a rekombináns nem fúziós protein vagy a β-galaktozidázfúziós protein.
Foglalkozik továbbá a találmány olyan rekombináns vektorral is, amely a találmány szerinti DNS egy vagy több másolatát tartalmazza. A találmány szerinti vektor, előnyösen prokarióta vektor. A rekombináns vektor a gazdasejtben extrakromoszómálisan helyezkedik el (például egy plazmid) vagy a gazdasejt genomjába integrálódhat (például a lambda bakteriofág). A találmány szerinti vektor előnyösen egy plazmid. Különösen előnybe helyezzük a pZS-7/31-2 vektort (DSM 5528).
A találmány tárgya eljárás találmány szerinti antigének előállítására olyan módon, hogy egy B. burgdorferi génbankot egy vagy több találmány szerinti antitesttel átvizsgálunk és ezután azokat a kiónokat izoláljuk, amelyek az alkalmazott antitestekkel pozitív immunreakciót adnak.
Minthogy egy találmány szerinti antigén maga is felhasználható aktív immunizálásra, azaz antitest képzés redukálására a szervezetben, így a találmány magában foglal egy olyan Lyme-kór elleni aktív oltóanyagot, amely hatóanyagként egy találmány szerinti antigént tartalmaz, adott esetben a szokásos vivő-, töltő- és segédanyagokkal. Az előnyös kivitelezési eljárás szerint a találmány szerinti antigént géntechnológiai úton állítjuk elő.
Valóban igazoltuk, hogy a normál egerekben adott natív, illetve rekombináns OspA olyan proteku'v (védő) antitestek képződését indukálja, amelyek Scid-egerekbe való passzív átvitel után a Lyme-borreliózis ellen védnek. Megállapítottuk mindenekelőtt, hogy a rekombináns OspA a natív OspA-hoz hasonlóan protektív immunválaszt indukál, s így az emberek Lyme-borreliózisa elleni vakcinához sokat ígérő jelöltként jön számításba.
A találmány további tárgyát képezi egy Lyme-kór elleni passzív oltóanyag előállítására szolgáló eljárás, amikoris kísérleti állatokat, előnyösen egereket immunizálunk egy találmány szerinti antigénnel és az immunizált kísérleti állatból, a szokásos módon, protektív poliklonális vagy monoklonális antitesteket izolálunk.
Végül a találmány tárgyal még egy eljárást patogén B. burgdorferi mikroorganizmusok izolálására és kitenyésztésére. Erre az eljárásra jellemző, hogy a kórokozóval előzőleg megfertőzött immunhiányos kísérleti állatokból, előnyösen egerekből, a kórokozót izoláljuk és a kórokozó patogenitása megmarad. Különösen előnyös egy olyan eljárás, amikor a fertőzött Scid-egerek véréből és/vagy ízületeiből tenyésztjük ki a patogén B. burgdorferi ZS7 (DSM 5527) mikroorganizmust.
A találmányt a következő példákon keresztül és az
1. és 2. ábra segítségével ismertetjük, ugyanakkor ezekkel nem korlátozzuk a találmány oltalmi körét.
Az alábbiakban az ábrák leírása következik. Az
1. ábra a B. burgdorferi ZS7 31 kD antigénjének (OspA) DNS és aminosav szekvenciáját mutatja be. A
2. ábrán az rZS7/31-2 rekombináns protein immunológiai jellemzése látható.
1. példa
Arthritis, carditis és hepatitis előidézése Scid-egerekben B. burgdorferi ZS7 törzzsel való fertőzéssel Az egerek kezelése B. burgdorferi-vel
C.B-17 Scid törzsből (Scid-mutáció szempontjából homozigóta) és C.B-17 törzsből származó kifejlett egereket lxl05, 5x105, lxlO6 vagy lxlO8 élő vagy elölt (UV-besugárzás) B. burgdorferi sejttel oltunk be szubkután a farok tövénél.
B. burgdorferi izolálása kullancsból és egerekből
A kísérleteket a már hosszú ideje tenyésztett B. burgdorferi B31 törzzsel (ATCC 35 210) és a frissen izolált - nőstény Ixodes ricinus kullancsból izolált B. burgdorferi ZS7 (DSM 5527) törzzsel végeztük. Mindegyik B. burgdorferi törzset módosított Kelly táptalajban tenyésztettük [Barbour és munkatársai, Curr. Microbiol., 8., 123. (1983) Svájc], Az etanollal sterilizált kullancs vékonybeléből vagy a befertőzött egerek véréből izolált B. burgdorferi sejteket kezdetben 8 gg/ml kanamicinnel és 230 μg/ml fluor-uracillal kiegészített Kelly táptalajban tenyésztettük [Johnson és munkatársai, J. Clin. Microbiol., 1., 81. (1984)].
HU 212716 Β
Szerológiai vizsgálatok
A B. burgdorferi specifikus antitestek kimutatását hagyományos ELISA eljárással végezzük [Justus és munkatársai, Wehrmed. Mschr., 32., 263. (1988)]. Az immunoglobulin (lg) tartalom standard görbéjét úgy kapjuk meg. hogy a csészét anti-egér Ig-vel [Paesel féle szérum (Frankfurt, NSZK) 1:500 hígításban] töltünk meg és titráljuk a teljes egér IgG vagy IgM tartalmat (Calbiochem, La Jolla, USA). Az ossz szérum IgM és IgG mérése hasonlóan történik. A B. burgdorferi specifikus IgM vagy IgG antitest koncentrációt lg pg/szérum ml-ben adjuk meg.
Immunfluoreszcencia és Giemsa festés μΐ vért pipettázunk egy hematokrit csövecskébe (Becton és Dickinson, Heidelberg, NSZK) és 5000 g mellett hematokrit centrifugában (ECCO, NSZK) lecentrifugáljuk. A csövecskéket a szérum és vörösvérsejt határrétegénél átvágjuk és a szérumból 5 pl-t tárgylemezre visszük (Superior, Bad Mergentheim, NSZK). A szérum mintákat tartalmazó tárgylemezeket levegőn megszárítjuk és 100%-os etanolban 1 percig -20 ”C-on fixáljuk. A tárgylemezeket ezután 1 órán át nyúl anti-B. burgdorferi hiperimmun szérummal (1:100 hígítás) inkubáljuk szobahőmérsékleten, majd ötször mossuk PBS-ben és ezután FITC-el konjugált kecske anti-nyúl antiszérummal (1:20 hígítás: Jackson Láb., West Grove, USA) festjük 1 órán át. A tárgylemezeket mossuk, Kaiser-féle glicerinzselatin-ba (Merck, Darmstadt, NSZK) beágyazzuk, majd rögtön fluoreszcens mikroszkóp alatt vizsgáljuk. A kezeletlen vércseppeket levegőn megszárítjuk, metanolban fixáljuk, Giemsa oldattal (0,1%; Merck. Darmstadt, NSZK) megfestjük, PBS-sel kimossuk és entellanba (Merck, Darmstadt, NSZK) beágyazzuk.
Szövettani preparátumok készítése és festési eljárások
Előzőleg B. burgdorferi-vel fertőzött egerekből a fertőzés után különböző időpontokban különböző szerveket (agy, szív, tüdő, máj, vese, lép és ízületek) távolítunk el és/vagy folyékony nitrogénben - fagyasztott metszetek készítéséhez - vagy 5%-os formaldehidben (PBS-ben) paraffinba vagy metakrilátba való beágyazáshoz - tároljuk. Az immun-hisztológiai vizsgálatokat sztreptavidinbiotin-peroxidáz rendszerben végezzük [Kramerés munkatársai, Eur. J. Immunoi., 19., 151. (1989)].
Az 1. táblázat mutatja, hogy az izolált ZS7 és B31 B. burgdorferi mikroorganizmusokat a kísérlet egész időtartama alatt ki lehetett mutatni azoknak a Scid-egereknek a vérében, amelyeket előzőleg élő mikroorganizmusokkal oltottuk. Azonban csak a ZS7 spirochaeta törzset lehetett in vitro újból kitenyészteni, a B31 törzset nem. Az újból tenyésztésbe vont mikroorganizmusoknak a primer izolált B. burgdorferi ZS7 sejtekkel való összehasonlításakor nem lehetett megállapítani semmilyen változást a protein tartalomban vagy a plazmid-profilban. A B. burgdorferivel fertőzött Scid-egerekben a megfigyelés egész időtartama alatt vagy semmilyen vagy csak rendkívül alacsony irreleváns antitest titer volt kimutatható. Ezekben az állatokban B. burgdorferi specifikus IgM vagy IgG antitesteket nem találtunk (1. táblázat). Ezzel szemben mindegyik B. burgdorferi-vel fertőzött C.B-17 kontroll egér nagymennyiségű össz-Ig-t és magas titerű B. burgdorferi specifikus IgM és IgG antitestet termelt. AB. burgdorferi ZS7el való fertőzés után a 7. és a 20. nap között mutatták a Scid-egerek az arthritis első klinikai tüneteit (mindkét tibiotarzális ízület piros és duzzadt lett), amik idővel erősödtek. Ezzel szemben azokban a Scid-egerekben, amelyeket UV-besugárzott B. burgdorferi B31 sejtekkel fertőztünk meg és a C.B-17 kontroll egerekben, amelyeket élő B. burgdorferi ZS7 sejtekkel fertőztük meg, nem találtunk arthritis-es tüneteket. Az élő B. burgdorferi ZS7-tel megfertőzött Scid-egerekben kórszövettanilag is ki lehetett mutatni az arthritises ízületi elváltozásokat (1. táblázat). Súlyos ízületi károsodásokat állapítottunk meg, amelyeket a hiperpláziával járó gyulladásos szinoviális béléssejtek jelenléte jelzett, és ezeket a jegyeket erózió (hámhiány) és a porc-szövetek és/vagy csontok roncsolódása kísérte. Ezenkívül pancarditist állapítottunk meg, mononukleáris sejtek infiltrációjával az endocardiumban (szívbelhártyában), myocardiumban (szívizomban) és pericardiumban (szívburokban). A máj progresszív gyulladását is észleltük, amelynél a mononukleáris sejtek infiltrációja a kapuér (véna portáé) területére és a központi gyűjtőérre korlátozódott, továbbá granuloma képződéssel járó reakciókat és végül máj fibrózist észleltünk. Ezenkívül a vesékben, tüdőben, agyban és a harántcsíkolt izomzatban kisebb károsodásokat észleltünk.
1. táblázat
C.B-17 Scid-egerek és C.B-17 kontroll egerek fertőzése B. burgdorferi-vel: Spirochaeták kitenyésztése szövetekből: Antitest titer és arthritis kialakulása
Egér törzs Törzs B. burgdorferi B. burgdorferi
fertőzés- hez használt sejtszám fertőzés után eltelt napok észlelése vérben* izolálá- sa*
C.B-17 Scid (n= 1) ZS7 5xlO5 7 36 49 59 + + + + +B +B +B
ZS7 IxlO8 7 23 + + +B
ZS7 lxlO8 22 29 87 + + + +G +B/G
ZS7 lxlO5 lxlO6 IxlO8 16 n. b. n. b. + n. b. n. b. +
ZS7uv IxlO8 16 - -
B31 lxlO8 22 29 + + -
- 22 - -
- 29 - -
HU 212716 Β
Egér Törzs B. burgdorferi B. burgdorferi
törzs C.B-17 (n = 7) ZS7 lxlO8 16 24
- - - - -
- - - - -
* giemsa festéssel vagy immunfluoreszcenciával ·* izolálás vérből (B = Blut), ízületekből (G = Gelenken) + tibiotarzális ízületek pirossága és duzzanata <7,5 pg/ml szérum n. b. meghatározás nem történt
1. táblázat (folytatás)
C.B-17 Scid-egerek és C.B-17 kontroll egerek fertőzése B. burgdorferi-vel; Spirochaeták kitenyésztése szövetekből; Antitest titer és arthritis kialakulása
Egér törzs Törzs Arthritis Antitest (pg/ml)”
klini- kai' kór- SZÖ- vetta- ni Ősz - szes μ lg 7 speci- fikus μ ig μ
20
ZS7 + + - 21 26 - -
396
108
ZS7 + - 108 - -
+ + - 54 - -
CB- 41
+ +
17 ZS7 + +
Scid ++
(n = 1)
+ n. b. n. b. n. b. n. b. n. b.
ZS7 + n. b. n. b. n. b. n, b. n. b.
+ + - - - -
ZS7
UV
- - 26 37 - -
B31 - - - - - -
- - - 47 - -
- - 54 364 - -
CB- - - 2515 5963 438 56
17 ZS7 - - 2145 6374 506 94
(n= 7) - - 304 216 3804 1952 - -
* giemsa festéssel vagy immunfluoreszcenciával izolálás vérből (B = Blut), ízületekből (G = Gelenken) tibiotarzális ízületek pirossága és duzzanata <7,5 pg/ml szérum
n. b. meghatározás nem történt
2. példa
A B. burgdorferi 3IkD antigénre specifikus monoklonális antitest hatása Lyme-borreliózisra Scidegerekben
A monoklonális antitest előállítása
Ha intakt immunrendszerrel rendelkező egeret B.
burgdorferi mikroorganizmusokkal immunizálunk, a B.
burgdorferi-re specifikus poliklonális antitesteket fog termelni (lásd az 1. táblázatot).
Tíz hetes beltenyésztett BALB/c nőstény egereket ultrahanggal homogenizált Bomelia mikroorganizmussal (B. burgdorferi B351 törzs; ATCC 35 210) immunizálunk.
Immunizálási séma:
0. nap: 200 pg Boréiba antigén komplett Freund adjuvánsban, szubkután,
21., 35., 49., 63. nap: ráoltás 100 pg Borrelia antigénnel foszfáttal pufferolt konyhasó oldatban (PBS), intraperitoneálisan,
66. nap: lép kivétel és egysejt szuszpenzió előállítása. Az immun lépsejteket az Ag8-PAI myeloma sejtvonallal fuzionáljuk standard módszerek szerint, polietilén-glikol alkalmazásával (J. H. Peters, H. Baumgarten, M. Schulze, „Monoklonale Antikörper” SpringerVerlag, Heidelberg, Német Szövetségi Köztársaság).
A fúziós terméket 96 tartályos szövettenyésztő lemezekre oltjuk. Nyolc nap múlva a sejt tenyészetek felülúszóit B. burgdorferi-re specifikus monoklonális antitestek jelenlétére vizsgáljuk, szilárdfázisú ELISA segítségével (J. H. Peters és munkatársai, lásd fentebb).
Az antitest termelő tenyészetek hibridóma sejtjeit határhígításos módszerrel klónozzuk. Az egyedi kiónok tenyészetének felülúszóját ezután újból szilárdfázisú ELISA-val, valamint Western-Blot analízissel és immunfluoreszcens vizsgálatokkal jellemezzük. Az IgG2b alosztályba tartozó LA-2 monoklonális antitestet egy monoklonális hibridóma vonal termeli és választ ki, a Western-Blot vizsgálatban minden vizsgált B. burgdorferi törzs (ilyen a ZS7 izolált törzs és a B31 törzs) 31 kD struktúrájával (OspA) reagál, amikor SDS-gélben eleklroforézissel elválasztott és WesternBlot segítségével membránra átvitt B. burgdorferi proteinekkel érintkezik. A LA-26.10 (anti-OspA IgG 1), a LA-25.1 (anti-OspB, 34 kD antigén; IgG2b) és a LA27.1 (anti-OspB, 34 kD antigén; IgGl) monoklonális antitesteket azonos módon állítottunk elő és vizsgáltunk.
Egerek fertőzése B. burgdorferi ZS7-tel
C.B-17 Scid-egereket lxlO8 élő B. burgdorferi ZS7 mikroorganizmussal fertőzünk meg a farok-tőbe való szubkután oltással.
Az egerek kezelése antiszérumokkal
A megfertőzött Scid-egereket hetenként kétszer különböző antiszérumokkal kezeltük. Az egyik csoportot normál egér szérummal (NMS = normál Mausserum), a második csoportot egér immunszérummal (IMS-immunes Mausserum) és egy harmadik csoportot a LA-2 monoklonális antitesttel (a B. burgdorferi 31 kD antigénje elleni antitest) kezeltük. Az adagolt antiszérumok mennyisége az első héten 100 pl, illetve LA-2 esetén 100 pg volt, a második héten 200 p, illetve LA-2 esetén 200 pg és a harmadik héten 300 pl, illetve LA-2 300 pg volt.
A 2. táblázatban bemutatjuk, hogy a kezeletlen vagy az NMS-sel kezelt Scid-egereknél 12 nap múlva
HU 212 716 Β az arthritis, carditis és hepatitis klinikai és kórszövettani jelei mutatkoztak. Ezzel szemben a LA-2 monoklonális antitest adása Scid-egereknél a kórtünetek jelentős csökkenését idézte elő. Klinikailag csak az ízületek enyhe pirossága mutatkozott és kórszövettanilag csak csekély elváltozások voltak megállapíthatók. Az IMSsel kezelt egereknél klinikai arthritis-re utaló leletet nem találtunk.
A B. burgdorferi kórokozó kimutatása in vitro kitenyésztéssel csak azoknál az egereknél járt sikerrel, amelyek vagy kezeletlen voltak, vagy NMS-sel voltak kezelve. A LA-2-vel vagy IMS-sel kezelt egereknél B. burgdorferi-t nem lehetett kimutatni (2. táblázat).
2. táblázat
C.B-17 Scid-egerek kezelése B. burgdorferi-vel és antiszérumokkal
C.B-17 Scid- egér- törzs Kezelés antiszé- rummal Arthritis (12 nap után) Carditis/hepatitis kórszövettani B. burgdorferi kimutatása (tenyésztéssel)
klinikai kórszö- vettani
n = 3 - + + + +
n - 3 NMS + + + +
n = 2 IMS - - - -
n = 3 LA-2 _0 _oo - -
Az ízületek enyhe pirossága Csak csekély elváltozások
3. példa
A B. burgdorferi ZS7 31 kD antigénjének (OspA) expressziós klónozása DNS izolálás
A B. burgdorferi ZS7 törzsből módosított Kelly-féle táptalajon való tenyésztés után nagymolekulájú DNS-t tisztítunk. A spirochaetákat 10.000 g mellett centrifugálva ülepítjük és háromszor mossuk PBS-pufferben. A száraz üledéket 100 ml TE-pufferben (10 mmol/1 törzs, 1 mmol/1 EDTA, pH = 7,4) reszuszpendáljuk, lizozimmel (5 mg/ml) kezeljük 15 percig 30 °C-on és a DNS-t 1 ml 20%-os SDS hozzáadásával felszabadítjuk. Ezután hozzáadunk 1,5 ml NaCl oldatot (5 mol/1), ezt az oldatot azonos térfogatú fenollal extraháljuk, majd kloroformos extahálás következik. A DNS-t kétszeres térfogat abszolút etanol hozzáadásával és egy éjszakán át -20 ”C-on való inkubálással csapjuk ki. Centrifugálás után az üledéket 0,5 ml TE-pufferben oldjuk fel, majd DNáz mentes RNáz A-val (20 pg/ml) inkubáljuk 45 percig 55 “C-on és ezután egy órán át proteináz K-val (0,1 pg/ml) kezeljük 37 °C-on. Az oldathoz nátrium-acetátot adunk 0,3 mol/1ig és fenol-kloroformmal extraháljuk a fent leírtak szerint. Etanollal való kicsapás után a DNS-t újból TE-pufferben vesszük fel.
Génbank előállítása
A nagymolekulájú DNS-t három másodpercig tartó ultrahang kezeléssel statisztikusan feldaraboljuk. A kapott DNS fragmentumok végeit T4-DNS polimeráz (37 °C, 30 perc) és Klenow enzim (20 °C, 5 perc) segítségével kiegyenlítjük. A tompa végű DNS-t a pUEXL expressziós vektor BamHI helyére ligáljuk egy adapterklónozó stratégia alkalmazásával [Bresan és Stanley, Nucl. Acid. Rex., 1056. (1987)]. Egy nagyság szerinti szelekciós lépés után, amelyet molekulaszűrő kromatografálással végzünk Sepharyl S-1000 alkalmazásával, E. coli (MC 1061) gazdasejteket transzformálunk, s a rekombináns, plakk képző egységet (pfu = plaques farming unit) mutató sejteket a következőképpen mutatjuk ki: a véletlenszerűen kiválasztott telepeket kiszűrjük és 2 ml szelektív táptalajban (LB táptalaj 25 pg/ml ampicillinnel kiegészítve) tenyésztjük telítésig. A plazmid-DNS-t a szokásos alkalikus lizáló módszenei izoláljuk, s ezután BamHI-gyel hasítjuk. Az analizált plazmidok több mint 50%-a átlag >1,5 kb hosszú DNS inszertumot tartalmazott.
A B. burgdorferi ZS7 génbank lemezre vitele és szűrése
A sejteket 24x24 cm-es lemezekre öntjük lemezenként 7.000 pfu sűrűségben és egy éjszakán át 30 °C-on inkubáljuk. A telepeket ezután nitrocellulóz (NC) szűrőkre visszük át, majd a β-galaktozidáz-fúziós proteinek expresszióját 42 °C-on való két órás inkubálással indukáljuk. A szűrőket előzőleg 5%-os SDS-sel kezelt Whatman 3MM papírra visszük át és körülbelül 25 percig 95 °C-on inkubáljuk. Ezután a proteineket elektroblot révén - megfelelő készülék alkalmazásával Westem-Blot eljárással (félszáraz) analizáljuk. Az NCszűrőket DNáz-zal kezeljük, majd az immunreaktív kiónokat expresszióra való szűréssel - monoklonális antitestek használatával - azonosítjuk. Az NC szűrőn az aspecifikus kötőhelyeket 0,2% (tömeg/térf) zselatin és 3 mmol/1 NaN3 tartalmú PBS-ben 4 órás inkubálással - szobahőmérsékleten - telítjük. Ezután a szűrőket a LA-2 anti-31 kD monoklonális antitest klón tenyészetének felülúszójával inkubáljuk 18 órán át folyamatos rázás mellett. Alapos mosás [PBS+1% (térf/térf) triton X-100; PBS+0,5 mol/1 NaCl, PBS+1 mol/1 NaCl; mindegyik lépés 10 percig tart] után a szűrőket 1:10.000 hígítású peroxidázzal jelzett nyúl anti-egér IgG F(ab)2 készítménnyel inkubáljuk 1,5 órán át szobahőmérsékleten folyamatos rázás közben. A szűrőket újból mossuk, mint fent leírtuk, majd ezután diaminobenzidinnel (a peroxidáz szubsztrátuma) inkubáljuk. 104 rekombináns pfu-ből 20 klón reagált a LA-2 monoklonális antitesttel.
A 31 kD antigén (OspA) szekvencia analízise
Egy rekombináns E. coli klónból - amely pozitív reakciót adott LA-2 antitesttel - a DNS inszertumot a szokásos módon izoláljuk. Ennek a kiónnak a DNS inszertuma a B. burgdorferi 31 kD antigénjét kódoló teljes hosszúságú OspA-gént tartalmazza. Az inszertumot tartalmazó plazmid pZS-7/31-2 elnevezést kapott és a budapesti egyezmény alapján letétbe helyeztük a DSM intézménynél DSM 5528 letéti szám alatt.
HU 212 716 Β
Ezen immunpozitív klón által termelt rekombináns proteint rZS7/31-2-vel jelöltük. Az OspA gént kódoló DNS szekvenciát meghatároztuk, s ezt az OspA protein innen levezetett aminosav szekvenciájával együtt az 1. ábrán mutatjuk be.
Az 1. ábrából kitűnik, hogy a B. burgdorferi 31 kD antigénje egy 273 aminosavból álló proteinnek felel meg.
A nem-fúziós proteinek előállítása (a) A kiónt, amely az rZS7/31-2 immunreaktív proteint fejezi ki, egy éjszakán át 30 °C-on ampicillinnel kiegészített 10 ml LB táptalajban tenyésztjük. A tenyészetből 1 ml-t 100 ml szelekciós táptalajba mérünk és 30 °C-on jó levegőztetéssel 8xl07 sejt/ml sűrűségig (A600 = 0,2) tenyésztjük. A rekombináns protein expresszióját a gazdasejtek 42 °C-ra való melegítéssel érjük el. Lehűtés és centrifugálás után a sejteket STE-pufferben (10 mmol/1 trisz, 100 mmol/1 NaCl, 1 mmol/1 EDTA; pH = 8,0) mossuk és az üledéket 0,6 ml lizáló pufferben (25% szacharóz, 50 mmol/1 trisz; pH = 8,0) reszuszpendáljuk. 150 μΐ lizozim (10 mg/ml) hozzáadása után az elegyet 15 percig jégen inkubáljuk, majd tovább inkubáljuk (15 percig jégen) 18 μΐ DNáz 1-gyel (10 mg/ml) 5 μΐ 1 mólos MgCl2 jelenlétében. A reakcióelegyhez végül 250 μΐ 4x detergens-mix-et (1% triton X-100, 0,5% dezoxikolát, 0,1 mol/1 NaCl, 10 mmol/1 trisz; pH = 7,5) adunk és 5 percig jégen inkubáljuk. Centrifugálás után az üledéket kétszer mossuk puffer A-val (50 mmol/1 trisz. 50 mmol/1 NaCl, 1 mmol/1 EDTA pH = 8,0); majd 9 térfogatnyi 8 mól karbamid tartalmú puffer A-ban reszuszpendáljuk és 1 órán át szobahőmérsékleten inkubáljuk. A mintát 9 rész puffer Bvel (50 mmol/1 KH2PO4/K2HPO4, 50 mmol/1 NaCl, 1 mmol/1 EDTA; pH = 10,7) hígítjuk és 30 percig szobahőmérsékleten keverjük, miközben a pH-t KOH adagolással 107,-en tartjuk. Az oldat pH-ját ezután HCI hozzáadásával 7,0-re állítjuk be, majd egy éjszakán át puffer A-val szemben dializáljuk (4 °C-on) és 10 percig 4 °C-on 10.000 ford/perc mellett SS34-rotorban centrifugáljuk. A felülúszót, amely a rekombináns proteint tartalmazza, -20 °C-on tároljuk.
(b) Minthogy a klón az rZS7/31-2 immunreaktív proteint a tápoldatban is kiválasztja, a tisztítást (affinitás-kromatográfiával) a tenyészet felülúszójából is el lehet végezni.
Rekombináns OspA protein (nem-infúziós) előállítása és tisztítása affinitás-kromatográfiával A rekombináns proteineket végezetül affinitás-kromatográfiával tisztítjuk.
Erre a célra a tisztított LA-2 monoklonális antitestet aktivált Sepharose CL 4B-hez kötjük, kovalens kötéssel. A rekombináns proteint tartalmazó dialkilázt karbamid-extraktumot egér IgG-Sepharose CL 4B-re adszorbeáljuk és ezután egér a LA-2-Sepharose CL 4B oszlopra visszük. Intenzív mosás után a megkötött rekombináns proteint 0,1 mol/I glicin/HCl—0,1 mol/1 NaCl oldattal (pH = 2,5) eluáljuk. A leszedett frakciók pH-ját semlegesre állítjuk be 1/10 térfogat 0,5 mol/1 K2HPO4 azonnali hozzáadásával. A proteint tartalmazó frakciókat koncentráljuk és dializáljuk. SDS-poliakrilamid gél elektroforézis segítségével határozzuk meg a tisztítás fokát.
Az rZS7/31-2 rekombináns protein immunológiai jellemzése
Elvégeztük az rZS7/31-2 rekombináns protein immunológiai vizsgálatát. Összehasonlításul az rB31/41— 9 rekombináns proteint (B. burgdorferi 41 kD felületi antigén) használtuk fel.
Laposfenekű mikrotitráló lemezeket az rZS/31-2 és rB31/41—9 rekombináns proteinek karbamid-extraktumával, illetve génexpresszióhoz használt E. coli MC 1061 törzs karbamidos kivonatával fedünk. Az aspecifikus kötőhelyeket 0,2% zselatint tartalmazó foszfáttal pufferolt konyhasó oldattal (PBS) blokkoljuk. Az így előkészített mikrotitráló lemezek tartályaiba bemérjük a LA-2 (anti-31 kD, OspA), LA-1 (anti-41 kD, flagellin = csillófehérje), illetve ACHT-2 (anti-a,-antikimotripszin) adott monoklonális antitesteket. A megkötött monoklonális antitesteket peroxidázzal jelzett fajspecifikus anti-egér immunglobulinnal reagáltatjuk. A megkötött, peroxidázzal jelzett antitestek mennyiségét orto-fenilén-diamin (a peroxidáz szubsztrátuma) segítségével határozzuk meg. Az abszorpciókat 492 nm-en (A492) közvetlenül a mikrotitráló lemezen - automata lemez-fotométer segítségével - határozzuk meg. Az abszorpció erőssége a megkötött monoklonális antitest mennyiségére jellemző mérték.
A LA-2 monoklonális antitest specifikusan reagál az rZS7/31-2-vel, de nem reagál az MC 1061-el, illetve rB31 /41 -9-el. A LA-1 monoklonális antitest kontroli-reakció az rB31/41-9-re specifikus. Az ACHT-2 kontroli-reakció az rB31/41-9-re specifikus. Az ACHT-2 kontroll antitest (negatív kontroll) egyik proteinnel sem ad szignifikáns reakciót.
A 2. ábrán bemutatjuk, hogy a LA-2 monoklonális antitest által specifikusan felismert antigén-epitópot, amely az rZS7/31-2 rekombináns proteinen fejeződik ki, a B. burgdorferi ZS7 genomjából klónoztuk.
4. példa
A 31 kD (OspA) antigénre, illetve a 34 kD (OspB) antigénre specifikus antitestek összehasonlítása azokkal az antitestekkel, amelyek a 41 kD antigénre (flagellin) specifikusak
A LA-2 és LA-26.1 monoklonális antitestek felismerik a 31 kD OspA antigént és az IgG2b, illetve IgG 1 izotípushoz tartoznak. ALA-25.1 ésaLA-27.1 monoklonális antitestek a 34 kD OspB antigént ismerik fel és az IgG2b, illetve IgG 1 izotípushoz tartoznak. A LA-10 és LA-21 monoklonális antitestek a B. burgdorferi csillófehérjével kapcsolatos 41 kD periplazmatikus proteinre specifikusak és IgG2a, illetve IgGl izotípusúak. Mindegyik fent említett antitestet a 2. példában leírt eljárással állítottuk elő. Ebben a kísérletben azt kell megállapítanunk, hogy vajon más B. burgdorferi antigénnel szembeni monoklonális antitestek védőhatást gyakorolnak-e
HU 212 716 Β
Scid-egerekben a Lyme-borreliózis klinikai tüneteivel szemben.
A poliklonális anti-B31 immunszérumot (IMS) C57NL/6 egerekből vettük le. Az egereket lxlO8 B. burgdorferi B31 sejttel oltottuk szubkután és a szérum levétele az oltás után 91 nappal történt. A poliklonális antiZS7 IMS-t az lxlO8 B. burgdorferi ZS7-tel szubkután oldott C57BL/6 egerekből oltás után 68 nappal vettük le. Mindkét szérum 60 pg/ml specifikus antitestet tartalmazott ELISA rendszerben való meghatározás szerint [Schaible és munkatársai, J.Exp. Med., 170., 1427-1432. (1989)]. Normál egér szérumot (NMS) nem oltott C57BL/6 egerekből vettünk.
Az oltás időpontjában és ezután 4 napos időközönként az adott antitesteket, az IMS-t, az NMS-t vagy a PBS-t passzív intraperitoneális oltással Scid-egereknek adtuk be a következő séma szerint:
0. nap és 3. nap: 100 μΐ
7. nap és 10. nap: 200 μΐ
13. nap és 17. nap: 300 μΐ.
Azokon a Scid-egereken, amelyeket akár az antiZS7 IMS-sel, az antiB31-IMS-sel vagy a LA-2 monoklonális antitesttel kezeltünk, a 21 napos megfigyelési idő alatt nem mutatkoztak az arthritis klinikai tünetei, azaz a tibiotarzális ízületeknél nem lépett fel pirosság és duzzanat. Nem lehetett megállapítani carditisre és hepatitisre utaló tüneteket sem. Kórszövettani vizsgálatok nem mutattak ki elváltozásokat azoknak a Scid-egereknek az ízületeiben, szívében és májában, amelyeket akár anti-ZS7 IMS-sel, anti-B31 IMS-sel vagy akár a LA-2 monoklonális antitesttel kezeltünk.
A többi OspA specifikus monoklonális antitest, így az IgGl izotípusú LA-26.1, valamint az OspB specifikus LA-25.1 és LA-27.1 szintén képesek voltak az arthritis, carditis és hepatitis klinikai tüneteit enyhíteni. Itt enyhe kóros elváltozások mutatkoztak a vizsgált szervekben.
Ezzel szemben azok a Scid-egerek, amelyek vagy PBS puffért vagy NMS-t vagy flagellin ellenes monoklonális antitestet (LA-10 vagy LA-21) kaptak, arthritises klinikai tüneteket mutattak, hasonlókat a kezeletlen Scid-egereknél tipikus kóros elváltozásokhoz (3. táblázat). A tünetek súlyossága ez utóbbi állatoknál az oltás után eltelt idővel növekedett és nem gyengült a megfigyelés egész időtartama alatt. Az előzőleg antiZS7 IMS-sel vagy a LA-2 antitesttel kezelt Scid-egerekből nem lehetett spirochaetákat izolálni. Ezzel szemben a PBS pufferrel, NMS-sel vagy a LA-25.1, LA-26.1, LA-27.1, LA-10 és LA-21 monoklonális antitestekkel kezelt Scid-egerekből ki lehetett mutatni a spirochaetákat immunfluoreszcenciával és vérből való kitenyésztéssel.
3. táblázat
C.B-17 Scidegér törzs (az egerek száma) Mivel történt a kezelés IgG szubtípus Klinikai arthritis Kórszövettani B. burgdorferi kimutatása (tenyésztéssel és immunfluoreszcenciával)
periarthritis/arth- ritis carditis
n = 8 PBS (negatív kontrollok) + + + +
n = 3 NMS (negatív kontrollok) + + + +
n = 3 anti-B31 IMS - - _*
n = 2 anti-ZS7 IMS - - _* -
n = 6 LA-2 (OspA) 2b - _* _* -
n = 3 LA-10 (flagellin) 2a + + + +’
n = 3 LA-21 (flagellin) 1 + + +/- +
n = 3 LA-26.1 (OspA) 1 + ± ±
n = 3 LA-25.1 (OspB) 2b + + ± +
n = 3 LA-27.1 (OspB) 1 + ± +
A kórszövettani elváltozások fokának jele: - nincs; -* szubklinikai; +/- enyhe; + súlyos; ’ A. B burgdorferi-I nem leheteti kimutatni immunofluoreszcentával minden vizsgált egyedben.
5. példa
OspA-val immunizált egerekből nyert antiszérum hatása a Lyme-borreliózis lefolyására Scid-egerekben
Ebben a kísérletben ki tudtuk mutatni, hogy a natív OspA (B. burgdorferi ZS7-ből izolálva) vagy a rekom55 bináns OspA [rekombináns pZS7/31-2 plazmiddal (DSM 5528) transzformált E. coli baktériumokból izolálva adása normál egerekben (C57BL/6 egér törzs) protektív poliklonális antitestek képződését indukálja. Ha ezeket az antitesteket Scid-egereknek adjuk be, védő hatást gyakorolnak a Lyme-borreliózissal szem8
HU 212716 Β ben. Emellett megállapítható, hogy a rekombináns OspA a natív OspA-hoz hasonlóan protektív immunválasz indukál. E kísérlet eredményét és a kísérlet végrehajtásának részleteit a 4. táblázat tartalmazza.
A rekombináns OspA előállítását a 3. példa tartalmazza.
A natis OspA előállítása és az egerek immunizálása OspA-val a következőképpen történik.
A natív 31 kD OspA feldúsítása
3,2x1010 spirochaetát 2 órán át 4 °C-on 5 ml
PBS/7,5 ml n-butanol oldatban proteináz inhibitorok (5 mmol/1 EDTA, 5 mmol/1 benzamidin, 5 mmol/1 PMSF) jelenlétében mágneses keverővei kevertetünk. Ezután a keveréket 90 percig 10.000 ford/perc mellett 4 °C-on Sorval centrifugában (fix-szögű rotorban) centrifugáljuk. A vizes fázist, ami a felületi proteineket tartalmazza, levesszük és háromszor mossuk kloroformmal. A protein tartalmat 280 nm-en mért extinkció révén, illetve a BCA-teszt segítségével határozzuk meg.
Az ezüstgélben, illetve az anti-B. burgdorferi nyúlszérummal végzett Western-Blot vizsgálatban a ZS7 törzsnél egy fő sáv jelenik meg a 31 kD molekulatömeget jelentő területen és gyenge sávok láthatók a 20, 34 és 65-68 kD területén. A B. burgdorferi B31 törzsből előállított butanol/víz készítmény egy fő sávot ad 31 kD-nál és gyenge sávokat ad 20 és 34 kDnál.
Egerek immunizálása natív és rekombináns OspAval
C57BL/6, illetve C.B-17 egereket háromszor 710 napos időközönként 5 pg (natív OspA a B31 törzsből). illetve 10 pg (natív OspA a ZS7 törzsből, rekombináns OspA ZS7-ből) OspA-t adunk be 100 pl adjuvánsban (ANM3; Sebak cég, Aidenbach, NSZK) szubkután a farok-tőbe. Az utolsó immunizáló oltás után legkorábban 3 hét múlva lehet szérumot levenni 3-4 hónapig. A specifikus antitest tartalmat ELISA rendszerben határozzuk meg.
4. táblázat
A B. burgdorferi specifikus monoklonális és poliklonális antitestek hatása a spirochaetózisra és az arthritis kialakulására B. burgdorferi-vel megfertőzött
Scid-egereken
C. B-17 Scidegér törzs (az egerek száma) Mivel történt a kezelés Arthritis kialakulása B. burgdorferi kimutatása
1 2 3
hét múlva
n = 6 PBS (negatív kontrollok) 2E + + 6/6
n = 6 LA-2 - - - 0/3
C. B-17 Scidegér törzs (az egerek száma) Mivel történt a kezelés Arthritis kialakulása B. burgdorferi kimutatása
1 2 3
hét múlva
n = 2 anti-OspA (natív) IMS - - - 0/2
n = 3 anti-OspA (rekomb.) IMS - - - 0/3
Az első antitest beadást (100 pl) i. p. végezzük a 0. napon (aO. napon oltjuk az egereket lxlO8 B. burgdorferi ZS7 sejttel, s. c. a faroktőbe).
A további antitest adást a 4. napon (100 pl), a 7. napon (200 pl), a 11. napon (200 pl), a 14. napon (300 pl) és a
18. napon (300 pl) végezzük (i. p.).

Claims (24)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Eljárás Lyme-kór elleni passzív oltóanyag előállítására, azzal jellemezve, hogy (i) egy donor állatot - előnyösen egeret - B. burgdorferi ZS7 vagy ZS7 és B31 mikroorganizmussal vagy ezek részeivel immunizálunk, (ii) immunkompetens B-sejteket izolálunk az immunizált donor állat limfocitáiból vagy 1 épsejtjei bői, (iii) a B-sejteket mielómasejtekkel fuzionáltatjuk és (iv) a keletkező hibridómák közül szelektáljuk az OspA és/vagy OspB antigént felismerő antitesteket termelő sejteket, (v) a szelektált hibridómákat tenyésztjük és a termelt antitesteket a tenyészetből elválasztjuk, majd egy vagy több antitestet a vakcinakészítésben szokásos hordozó-, töltő- és segédanyaggal összekeverünk. (Elsőbbsége: 1990.05. 17.)
  2. 2. Az i. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az (i) lépésben az immunizáláshoz teljes B. burgdorferi ZS7 mikroorganizmust (DSM 5527) alkalmazunk. (Elsőbbsége: 1990.05. 17.)
  3. 3. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az (iv) lépésben az IgG osztályba, különösen az IgGl alosztályba tartozó antitestet termelő sejteket szelektáljuk. (Elsőbbsége: 1990. 05. 17.)
  4. 4. A 3. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az (iv) lépésben az ECACC 90 050 405 sejtvonallal megegyező tulajdonságú sejteket szelektáljuk. (Elsőbbsége: 1990. 05. 17.)
  5. 5. A 3. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a (iv) lépésben az ECACC 90 050 406 sejtvonallal megegyező tulajdonságú sejteket szelektáljuk. (Elsőbbsége: 1990.05. 17.)
  6. 6. A 3. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a (iv) lépésben az ECACC 90 050 407 sejtvonal9
    HU 212716 Β lal megegyező tulajdonságú sejteket szelektáljuk. (Elsőbbsége: 1990.05. 17.)
  7. 7. Eljárás Lyme-kór elleni passzív oltóanyag előállítására, azzal jellemezve, hogy (i) egy donor állatot - előnyösen egeret - B. burgdorferi ZS7 vagy ZS7 és B31 mikroorganizmussal vagy ezek részeivel immunizálunk, (ii) immunkompetens B-sejteket izolálunk az immunizált donor állat limfocitáiból vagy lépsejtjeiből, (iii) a B-sejteket mielómasejtekkel fuzionáltatjuk és (iv) a keletkező hibridómák közül szelektáljuk az OspA antigént felismerő antitesteket termelő sejteket, (v) a szelektált hibridómákat tenyésztjük és a termelt antitesteket a tenyészetből elválasztjuk, majd egy vagy több antitestet a vakcinakészítésben szokásos hordozó-, töltő- és segédanyaggal összekeverünk. (Elsőbbsége: 1989.09. 19.)
  8. 8. A 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az (i) lépésben az immunizáláshoz teljes B. burgdorferi ZS7 mikroorganizmust (DSM 5527) alkalmazunk. (Elsőbbsége: 1989. 09. 19.)
  9. 9. A 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a (iv) lépésben az IgG osztályba, különösen az IgGl alosztályba tartozó antitestet termelő sejteket szelektáljuk. (Elsőbbsége: 1989.09. 19.)
  10. 10. A 9. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a (iv) lépésben az ECACC 89 89 091 302 sejtvonallal megegyező tulajdonságú sejteket szelektáljuk. (Elsőbbsége: 1989. 09. 19.)
  11. 11. Eljárás Lyme-kór ellen passzív oltóanyag hatóanyagként alkalmazható monoklonális antitest előállítására. azzal jellemezve, hogy az ECACC 89 091 302 hibridóma sejtvonalal tenyésztjük, és a termelt LA-2 monoklonális antitestet elválasztjuk a tenyészettől. (Elsőbbsége: 1989.09. 19.)
  12. 12. Eljárás Lyme-kór elleni passzív oltóanyag hatóanyagaként alkalmazható monoklonális antitest előállítására, azzal jellemezve, hogy az ECACC 9 005 406 hibridóma sejtvonalat tenyésztjük, és a termelt LA26.1 monoklonális antitestet elválasztjuk a tenyészettől. (Elsőbbsége: 1990. 05. 17.)
  13. 13. Eljárás Lyme-kór elleni passzív oltóanyag hatóanyagaként alkalmazható monoklonális antitest előállítására, azzal jellemezve, hogy az ECACC 9 005 405 hibridóma sejtvonalat tenyésztjük, és a termelt LA25.1 monoklonális antitestet elválasztjuk a tenyészettől. (Elsőbbsége: 1990. 05. 17.)
  14. 14. Eljárás Lyme-kór elleni passzív oltóanyag hatóanyagaként alkalmazható monoklonális antitest előállítására. azzal jellemezve, hogy az ECACC 9 005 407 hibridóma sejtvonalat tenyésztjük, és a termelt LA27.1 monoklonális antitestet elválasztjuk a tenyészettől. (Elsőbbsége: 1990. 05. 17.)
  15. 15. Eljárás az 1. ábra szerinti aminosav-szekvenciával rendelkező rekombináns OspA-antigén előállítására, azzal jellemezve, hogy a nevezett antigént kódoló DNS-szekvenciát egy vektorba - előnyösen egy prokarióta vektorba - beépítjük, az így kapott rekombináns vektorral egy alkalmas gazdasejtet transzformálunk, a transzformált gazdasejtet megfelelő körülmények között tenyésztve az antigént kifejezzük. (Elsőbbsége: 1989.09. 19.)
    15. A 15. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy (1) az 1. ábra szerinti DNS-szekvenciát vagy (2) a genetikai kód keretén belül ennek megfelelő szekvenciát építjük be egy rekombináns vektorba. (Elsőbbsége: 1989.09. 19.)
  16. 17. A 15. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy rekombináns vektorként egy plazmid vektort alkalmazunk. (Elsőbbsége: 1990. 05. 17.)
  17. 18. A 15. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy rekombináns plazmid vektorként a ZS7/31-2 jelű plazmidot (DSM 5528) alkalmazzuk. (Elsőbbsége: 1990.05. 17.)
  18. 19. A 15. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az antigént β-galaktozidáz-fúziós protein vagy nem-fuzionált protein formájában fejezzük ki. (Elsőbbsége: 1989. 09. 19.)
  19. 20. Eljárás OspA és/vagy OspB antigén előállítására, azzal jellemezve, hogy a B. burgdorferi ZS7 genomjából származó génbankot az ECACC 9 005 405, 9 005 406 vagy 9 005 407 hibridóma sejtvonal által termelt egy vagy több antitesttel átvizsgáljuk, és a nevezett antitesttel vagy antitestekkel pozitív immunológiai reakciót adó kiónokat izoláljuk. (Elsőbbsége: 1990.05. 17.)
  20. 21. Eljárás OspA antigén előállítására, azzal jellemezve, hogy a B. burgdorferi ZS7 genomjából származó génbankot all. igénypont szerint előállított, egy vagy több antitesttel átvizsgáljuk, és a nevezett antitesttel vagy antitestekkel pozitív immunológiai reakciót adó kiónokat izoláljuk. (Elsőbbsége: 1989. 09. 19.)
  21. 22. A 21. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a gének átvizsgálását all. igénypont szerint előállított LA-2 monoklonális antitesttel végezzük. (Elsőbbsége: 1989. 09. 19.)
  22. 23. Eljárás Lyme-kór elleni aktív oltóanyag előállítására, azzal jellemezve, hogy egy rekombináns OspA antigént vagy egy immunogén epitópját a vakcinakészítésben szokásos hordozóanyaggal, töltőanyaggal és segédanyaggal összekeverjük. (Elsőbbsége: 1989. 09. 19.)
  23. 24. Eljárás patogén B. burgdorferi mikroorganizmus törzs izolálása, azzal jellemezve, hogy immunhiányos Scid-egereket a fenti törzzsel megfertőzzünk, és Scid-egerek véréből és/vagy ízületeiből a patogén mikroorganizmust izoláljuk. (Elsőbbsége: 1989. 09. 19.)
  24. 25. A 24. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a DSM 5527 számon letétbe helyezett B. burgdorferi ZS7 törzset izoláljuk. (Elsőbbsége: 1989. 09. 19.)
    HU 212716 Β
HU905816A 1989-09-19 1990-09-07 Method for the preparation of vaccine against lyme disease HU212716B (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE3931236 1989-09-19
DE4015911A DE4015911A1 (de) 1989-09-19 1990-05-17 Impfstoff gegen die lyme-krankheit

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HU905816D0 HU905816D0 (en) 1991-03-28
HUT59613A HUT59613A (en) 1992-06-29
HU212716B true HU212716B (en) 1996-10-28

Family

ID=25885304

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU905816A HU212716B (en) 1989-09-19 1990-09-07 Method for the preparation of vaccine against lyme disease
HU95P/P00108P HU211228A9 (en) 1989-09-19 1995-04-24 Vaccine against lyme disease

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU95P/P00108P HU211228A9 (en) 1989-09-19 1995-04-24 Vaccine against lyme disease

Country Status (24)

Country Link
US (6) US5178859A (hu)
EP (5) EP0643974B1 (hu)
JP (3) JP3205932B2 (hu)
KR (2) KR100205462B1 (hu)
AT (4) ATE191499T1 (hu)
AU (1) AU651560B2 (hu)
CA (1) CA2025597C (hu)
CZ (2) CZ284538B6 (hu)
DE (5) DE4015911A1 (hu)
DK (4) DK0418827T3 (hu)
ES (4) ES2082812T3 (hu)
FI (1) FI102248B1 (hu)
GR (3) GR3018995T3 (hu)
HK (2) HK1002405A1 (hu)
HR (1) HRP940545B1 (hu)
HU (2) HU212716B (hu)
IE (1) IE903377A1 (hu)
NO (2) NO311767B1 (hu)
NZ (1) NZ235260A (hu)
PL (2) PL170229B1 (hu)
PT (1) PT95349B (hu)
SI (1) SI9011773B (hu)
SK (3) SK283089B6 (hu)
YU (2) YU48250B (hu)

Families Citing this family (45)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK590288D0 (da) 1988-10-24 1988-10-24 Symbicom Ab Kemiske forbindelser
US6143872A (en) * 1988-10-24 2000-11-07 Symbicom Aktiebolag Borrelia burdorferi Osp A and B proteins and immunogenic peptides
US7094391B1 (en) * 1988-10-24 2006-08-22 The University Of Texas System Compositions and methods for administering Borrelia burgdorferi antigens
US5777095A (en) * 1988-10-24 1998-07-07 Symbicom Aktiebolag Osp A and B Sequence of Borrelia burgdonferi strains ACA1 and IP90
DE4015911A1 (de) * 1989-09-19 1991-03-28 Max Planck Gesellschaft Impfstoff gegen die lyme-krankheit
US5582829A (en) * 1990-04-05 1996-12-10 Rx Technologies, Inc. Sonicated borrelia burgdorferi vaccine
SG47447A1 (en) 1990-06-15 1998-04-17 Univ Yale Compositions and methods for the prevention and diagnosis of lyme disease
ATE196425T1 (de) * 1990-07-06 2000-10-15 American Home Prod Impfstoff gegen die lyme-krankheit
CA2057536C (en) * 1990-12-21 1999-10-26 John J. Dunn Cloning and expression of borrelia lipoproteins
US6872550B1 (en) 1991-07-11 2005-03-29 Baxter Vaccine Ag Immunogenic formulation of OspC antigen vaccines for the prevention and treatment of lyme disease and recombinant methods for the preparation of such antigens
US6221363B1 (en) * 1991-07-11 2001-04-24 Baxter Aktiengesellschaft Vaccine for the prevention of lyme disease
US6676942B1 (en) 1991-08-15 2004-01-13 Smithkline Beecham Biologicals (S.A.) Osp a proteins of Borrelia burgdorferi subgroups, encoding genes and vaccines
EP0877085A1 (en) * 1991-08-15 1998-11-11 SMITHKLINE BEECHAM BIOLOGICALS s.a. OspA protein of borrelia burgdorferi subgroups, encoding genes and vaccines
WO1993008299A1 (en) * 1991-10-18 1993-04-29 Connaught Laboratories Inc. Preparation of recombinant borrelia proteins
EP0540457A1 (en) * 1991-10-22 1993-05-05 Symbicom Ab Improvements in Borrelia burgdorferi diagnosis and prophylaxis
US6303129B1 (en) * 1992-07-28 2001-10-16 Rx Technologies Production of borrelia burgdorferi vaccine, product produced thereby and method of use
US5656451A (en) * 1993-07-30 1997-08-12 Yale University OspE, OspF, and S1 polypeptides in borrelia burgdorferi
US6716591B1 (en) 1993-07-30 2004-04-06 Yale University B. burgdorferi polypeptides
US7008625B2 (en) 1993-11-01 2006-03-07 Research Foundation Of The State University Of New York Recombinant constructs of Borrelia burgdorferi
US5558993A (en) * 1994-06-17 1996-09-24 The Regents Of The University Of California Cloned Borrelia burgdorferi virulence protein
GB9511909D0 (en) * 1995-06-12 1995-08-09 Microbiological Res Authority Vaccine
US6437116B1 (en) 1996-02-21 2002-08-20 Board Of Regents, The University Of Texas System VMP-like sequences of pathogenic borrelia
DE19632862B4 (de) 1996-08-14 2006-08-03 Mikrogen Molekularbiologische Entwicklungs-Gmbh Immunologisch aktive Proteine von Borrelia burgdorferi, dafür kodierende Nukleinsäuren sowie deren Verwendung in Testkits und als Impfstoffe
US6458555B1 (en) * 1996-08-21 2002-10-01 Gerd Bach Cytologic method of examining mucous membranes
US6060082A (en) * 1997-04-18 2000-05-09 Massachusetts Institute Of Technology Polymerized liposomes targeted to M cells and useful for oral or mucosal drug delivery
DE19740735A1 (de) * 1997-09-16 1999-03-18 Max Planck Gesellschaft Arzneimittel zur Therapie einer manifesten Lyme-Borreliose
US6306623B1 (en) * 1998-02-24 2001-10-23 The University Of California Leptospiral major outer membrane protein LipL32
WO2000006745A1 (en) 1998-07-31 2000-02-10 Gundersen Lutheran Medical Foundation, Inc. Uses of the borreliacidal epitope(s) of borrelia burgdorferi outer surface protein c (ospc) as vaccine
WO2000056298A2 (en) * 1999-03-19 2000-09-28 Luitpold Pharmaceuticals, Inc. Treatment of lyme disease with polysulfated glycosaminoglycan formulations
WO2000078345A1 (en) * 1999-06-21 2000-12-28 Milkhaus Laboratory, Inc. Method for treatment of lyme disease
ES2298249T3 (es) 2000-08-18 2008-05-16 Research Foundation Of State University Of New York Ospa modificada de borrelia burgdorferi.
US7847084B2 (en) 2002-12-20 2010-12-07 Board Of Regents, The University Of Texas System VMP-like sequences of pathogenic Borrelia species and strains
SG176451A1 (en) 2006-11-03 2011-12-29 Schering Plough Ltd Canine lyme disease vaccine
EP2361930A3 (en) 2007-03-26 2011-10-26 Dako Denmark A/S Multimers of MHC-peptide complexes and uses thereof in Borrelia infectious diseases
EP2167536A1 (en) 2007-07-03 2010-03-31 Dako Denmark A/S Mhc multimers, methods for their generation, labeling and use
US10611818B2 (en) 2007-09-27 2020-04-07 Agilent Technologies, Inc. MHC multimers in tuberculosis diagnostics, vaccine and therapeutics
US10968269B1 (en) 2008-02-28 2021-04-06 Agilent Technologies, Inc. MHC multimers in borrelia diagnostics and disease
US10722562B2 (en) 2008-07-23 2020-07-28 Immudex Aps Combinatorial analysis and repair
GB0817244D0 (en) 2008-09-20 2008-10-29 Univ Cardiff Use of a protein kinase inhibitor to detect immune cells, such as T cells
US10369204B2 (en) 2008-10-02 2019-08-06 Dako Denmark A/S Molecular vaccines for infectious disease
US11992518B2 (en) 2008-10-02 2024-05-28 Agilent Technologies, Inc. Molecular vaccines for infectious disease
CA2781110C (en) * 2009-11-17 2018-07-31 Abaxis, Inc. Peptides and methods for the detection of lyme disease antibodies
US8758772B2 (en) 2011-11-04 2014-06-24 Abaxis, Inc. Peptides and methods for the detection of lyme disease antibodies
PL223175B1 (pl) 2012-10-22 2016-10-31 Inst Chemii Bioorganicznej Polskiej Akademii Nauk Szczepionka przeciw boreliozie, konstrukt genetyczny, rekombinowane białko, sposób otrzymywania konstruktu genetycznego, sposób otrzymywania szczepionki, sposób otrzymywania rekombinowanych białek, zastosowanie rekombinowanych białek do wytwarzania szczepionki przeciwko boreliozie
US9610336B1 (en) * 2014-07-16 2017-04-04 Amiram Katz Immunotherapy for lyme disease

Family Cites Families (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK590288D0 (da) * 1988-10-24 1988-10-24 Symbicom Ab Kemiske forbindelser
US4772464A (en) 1985-08-01 1988-09-20 Miles Laboratories, Inc. Protective antibodies to serotypic determinants of flagellar antigens
US4888276A (en) 1986-06-26 1989-12-19 Minnesota Mining And Manufacturing Company Method and composition for the diagnosis of Lyme disease
US4721617A (en) 1986-08-14 1988-01-26 Regents Of The University Of Minnesota Vaccine against lyme disease
US5034515A (en) * 1987-09-22 1991-07-23 Wisconsin Alumni Research Foundation Staphylococcal fibronectin receptor, monoclonal antibodies thereto and methods of use
DE4015911A1 (de) * 1989-09-19 1991-03-28 Max Planck Gesellschaft Impfstoff gegen die lyme-krankheit
WO1991009870A1 (de) * 1989-12-22 1991-07-11 Mikrogen Molekularbiologische Entwicklungs-Gmbh Immunologisch aktive proteine von borrelia burgdorferi, zusammenhängende testkits und impfstoff
SG47447A1 (en) * 1990-06-15 1998-04-17 Univ Yale Compositions and methods for the prevention and diagnosis of lyme disease
ATE196425T1 (de) * 1990-07-06 2000-10-15 American Home Prod Impfstoff gegen die lyme-krankheit
CA2057536C (en) * 1990-12-21 1999-10-26 John J. Dunn Cloning and expression of borrelia lipoproteins
EP0877085A1 (en) * 1991-08-15 1998-11-11 SMITHKLINE BEECHAM BIOLOGICALS s.a. OspA protein of borrelia burgdorferi subgroups, encoding genes and vaccines
WO1993004157A1 (en) * 1991-08-27 1993-03-04 Novo Nordisk A/S Detergent compositions
WO1993008299A1 (en) * 1991-10-18 1993-04-29 Connaught Laboratories Inc. Preparation of recombinant borrelia proteins
WO1993007897A1 (en) * 1991-10-21 1993-04-29 Medimmune, Inc. Bacterial expression vectors containing dna encoding secretion signals of lipoproteins

Also Published As

Publication number Publication date
CZ284616B6 (cs) 1999-01-13
PT95349A (pt) 1991-05-22
JP3418171B2 (ja) 2003-06-16
IE903377A1 (en) 1991-04-10
GR3018995T3 (en) 1996-05-31
EP0633028B1 (de) 1999-11-17
NO20014624L (no) 1991-03-20
NO904062L (no) 1991-03-20
EP0643974A1 (de) 1995-03-22
EP0633313A1 (de) 1995-01-11
GR3032010T3 (en) 2000-03-31
FI102248B (fi) 1998-11-13
SK283088B6 (sk) 2003-02-04
ATE186646T1 (de) 1999-12-15
CZ97095A3 (en) 1995-09-13
NZ235260A (en) 1993-04-28
JP3205932B2 (ja) 2001-09-04
US6613331B1 (en) 2003-09-02
NO315905B1 (no) 2003-11-10
KR100202128B1 (en) 1999-06-15
SK151098A3 (en) 1999-04-13
DK0643974T3 (da) 1999-09-06
HU211228A9 (en) 1995-11-28
NO20014624D0 (no) 2001-09-24
CZ284538B6 (cs) 1998-12-16
DE59010863D1 (de) 1999-02-25
HK1002405A1 (en) 1998-08-21
YU49370B (sh) 2005-09-19
ATE191499T1 (de) 2000-04-15
SI9011773A (sl) 1998-04-30
GR3033675T3 (en) 2000-10-31
ES2145077T3 (es) 2000-07-01
NO904062D0 (no) 1990-09-18
DK0633028T3 (da) 2000-04-10
EP0633028A1 (de) 1995-01-11
JPH03209400A (ja) 1991-09-12
DE59009978D1 (de) 1996-02-01
HK1013620A1 (en) 1999-09-03
HRP940545A2 (en) 1997-04-30
EP0643974B1 (de) 1999-01-13
SK283089B6 (sk) 2003-02-04
SK151198A3 (en) 1999-04-13
SI9011773B (en) 2001-12-31
EP0861664A3 (de) 1999-02-24
DK0418827T3 (da) 1996-05-06
ES2082812T3 (es) 1996-04-01
ES2141182T3 (es) 2000-03-16
EP0861664A2 (de) 1998-09-02
AU651560B2 (en) 1994-07-28
DK0633313T3 (da) 2000-07-24
JP3328644B2 (ja) 2002-09-30
YU9097A (sh) 1999-06-15
EP0633313B1 (de) 2000-04-05
FI904597A0 (fi) 1990-09-18
US5856447A (en) 1999-01-05
PT95349B (pt) 1997-06-30
SK280285B6 (sk) 1999-11-08
EP0418827A1 (de) 1991-03-27
IE990173A1 (en) 2000-11-01
HRP940545B1 (en) 2000-06-30
PL169804B1 (pl) 1996-09-30
US5686267A (en) 1997-11-11
JP2001069969A (ja) 2001-03-21
EP0418827B1 (de) 1995-12-20
DE4015911A1 (de) 1991-03-28
JP2001204467A (ja) 2001-07-31
KR910005889A (ko) 1991-04-27
US5780030A (en) 1998-07-14
NO311767B1 (no) 2002-01-21
AU6244490A (en) 1991-03-28
CA2025597C (en) 2004-02-03
CA2025597A1 (en) 1991-03-20
ES2129551T3 (es) 1999-06-16
KR100205462B1 (ko) 1999-07-01
SK456090A3 (en) 1999-11-08
FI102248B1 (fi) 1998-11-13
HU905816D0 (en) 1991-03-28
DE59010903D1 (de) 2000-05-11
DE59010888D1 (de) 1999-12-23
ATE131732T1 (de) 1996-01-15
YU48250B (sh) 1997-09-30
US5434077A (en) 1995-07-18
CZ456090A3 (cs) 1998-08-12
HUT59613A (en) 1992-06-29
YU177390A (sh) 1993-05-28
PL170229B1 (pl) 1996-11-29
ATE175576T1 (de) 1999-01-15
US5178859A (en) 1993-01-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU212716B (en) Method for the preparation of vaccine against lyme disease
IE83320B1 (en) Vaccine against lyme disease
US5656451A (en) OspE, OspF, and S1 polypeptides in borrelia burgdorferi
CA2071863C (en) Recombinant vaccine for porcine pleuropneumonia
US5879952A (en) 43 Kd protein vaccine and method for the production thereof
US5300632A (en) Method for purifying an outer membrane protein of Haemophilus influenzae
AU673912B2 (en) Vaccine against lyme disease

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees