ES2302885T3 - Metodo de diagnostico in vitro de la infeccion por circovirus porcino de tipo ii y reactivos de diagnostico. - Google Patents
Metodo de diagnostico in vitro de la infeccion por circovirus porcino de tipo ii y reactivos de diagnostico. Download PDFInfo
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Abstract
Método de diagnóstico de la infección por un circovirus porcino de tipo II, responsable en el cerdo del síndrome de debilitamiento generalizado posterior al destete (PMWS), método en el que se ponen en contacto una muestra de fluido fisiológico o una extracción de tejido de un cerdo y un reactivo de diagnóstico específico del circovirus de tipo II y se revela la posible presencia de antígeno, anticuerpo o ácido nucleico específico del circovirus porcino de tipo II, en esta muestra o extracción.
Description
Método de diagnóstico in vitro de la
infección por circovirus porcino de tipo II y reactivos de
diagnóstico.
La presente invención se refiere a nuevas cepas
de circovirus porcino (PCV de Porcine Circo Virus)
responsables del síndrome PMWS (Porcine Multisystemic Wasting
Syndrome o Post-Weaning Multisystemic Wasting
Syndrome, también llamado síndrome de debilitamiento
generalizado posterior al destete) a reactivos y a métodos que
permiten su detección y a métodos de vacunación y a vacunas, así
como a métodos de producción de estos reactivos y vacunas.
El PCV se ha detectado originalmente como
contaminante no citopatógeno en líneas celulares de riñón de cerdos
PK/15. Este virus se ha clasificado en los Circoviridae con el virus
de la anemia del pollo (CAV de Chicken Anemia Virus) y el
virus PBFDV (Pscittacine Beak and Feather Disease Virus). Son
virus pequeños (de 15 a 24 nm) sin envuelta, cuya característica
común es que contienen un genoma en forma de ADN de cadena sencilla
circular de 1,76 a 2,31 kb. En un primer momento se pensó que este
genoma codificaba un polipéptido de aproximadamente 30 kDa (Todd
et al., Arch Virol 1991, 117: 129-135). Sin
embargo, trabajos recientes han demostrado una transcripción más
compleja (Meehan B. M. et al., 1997, 78:
221-227). Por otro lado, no se conocen homologías
significativas de secuencia de nucleótidos ni de determinantes
antigénicos comunes entre los tres tipos de circovirus
conocidos.
Se considera que el PCV obtenido de las células
PK/15 no es patógeno. Su secuencia se conoce del documento B. M.
Meehan et al., J Gen Virol 1997 (78) 221-227.
Sólo muy recientemente los autores han pensado que las cepas de PCV
podrían ser patógenas y estar asociadas al síndrome PMWS (Gupi P. S.
Nayar et al., Can Vet J, vol. 38, 1997:
385-387 y Clark E. G., Proc Am Assoc Swine Prac
1997: 499-501). Nayar et al., han detectado
ADN de PCV en cerdos que presentan el síndrome PMWS mediante
técnicas de PCR. Sin embargo, hasta la fecha no se ha aislado ni
purificado ninguna cepa silvestre de PCV.
El síndrome PMWS detectado en Canadá, en los
Estados Unidos y en Francia se caracteriza en el plano químico por
una pérdida progresiva de peso y por manifestaciones tales como
taquipnea, disnea e ictericia. En el plano patológico, el síndrome
se traduce en infiltraciones linfocitarias o granulomatosas,
linfadenopatías y, más raramente, hepatitis y nefritis
linfocitarias o granulomatosas (Clark E. G., Proc. Am. Assoc. Swine
Prac. 1997: 499-501; La Semaine Vétérinaire Nº 26,
suplemento de La Semaine Vétérinaire 1996 (834); La Semaine
Vétérinaire 1997 (857): 54; Gupi P. S. Nayar et al., Can Vet
J, vol. 38, 1997: 385-387).
La Depositante ha conseguido aislar cinco nuevas
cepas de PCV a partir de extracciones pulmonares o ganglionares
procedentes de ganaderías situadas en Canadá, en los Estados Unidos
(California) y en Francia (Bretaña), en los sucesivo denominadas
circovirus de acuerdo con la invención. Estos virus se han
descubierto en lesiones de cerdos afectados por el síndrome PMWS,
pero no en cerdos sanos.
La Depositante tiene además la secuencia del
genoma de cuatro de estas cepas, a saber las cepas procedentes de
Canadá y de los Estados Unidos, así como dos cepas francesas. Las
cepas presentan una homología muy grande entre sí a nivel de
nucleótido, superando el 96% y mucho menor con la cepa PK/15,
aproximadamente el 76%. Por lo tanto, las nuevas cepas pueden
considerarse representativas de un nuevo tipo de circovirus porcino,
denominado en este documento tipo II, estando el tipo I
representado por la PK/15.
La presente invención describe el circovirus
porcino de grupo II, tal como se ha definido anteriormente, aislado
o en forma de preparación purificada.
La invención se refiere a cualquier circovirus
porcino que puede aislarse a partir de una muestra fisiológica o de
una extracción tisular, particularmente de lesiones, de un cerdo
enfermo que presenta el síndrome PMWS, particularmente siguiendo el
método descrito en los ejemplos, en particular circovirus de tipo
II.
La presente invención describe más
particularmente preparaciones purificadas de cinco cepas, que se han
depositado en la ECACC (European Collection of Cell Cultures,
Centre for Applied Microbiology & Research, Porton Down,
Salisbury, Whiltshire SP4 OJG, Reino Unido) el jueves 2 de octubre
de 1997:
- -
- Nº de acceso V97100219 (llamado en este documento Imp.1008PCV)
- -
- Nº de acceso V97100218 (llamado en este documento Imp.1010PCV)
- -
- Nº de acceso V97100217 (llamado en este documento Imp.999PCV) y, el viernes 16 de enero de 1998:
- -
- Nº de acceso V98011608 (llamado en este documento Imp 1011-48285)
- -
- Nº de acceso V98011609 (llamado en este documento Imp 1011-48121)
La invención pretende considerar circovirus
porcinos aislados de un cerdo enfermo y/o los circovirus que tienen
una similitud serológica significativa con las cepas de la invención
y/o los circovirus que tienen una hibridación cruzada con las cepas
de la invención en condiciones de rigurosidad tales que no haya
hibridación con la cepa de PCV PK/15.
Las cepas virales aisladas de una muestra
fisiológica o de una extracción tisular, particularmente de una
lesión, de un cerdo que presenta el síndrome PMWS pueden propagarse
ventajosamente en líneas celulares tales como particularmente
líneas celulares de riñón de cerdo, en particular células PK/15
libres de contaminación (en particular por PCV, así como por
pestivirus, adenovirus porcino y parvovirus porcino) con vistas a su
multiplicación o específicamente para la producción de antígeno,
completo (por ejemplo virus) y/o subunidades (por ejemplo,
polipéptidos).
De manera muy notable e inesperada, estos
aislados se han mostrado muy productivos en cultivo en células
PK/15, lo que presenta ventajas innegables para la producción de
virus o de antígeno, en particular para la producción de vacuna
inactivada.
La presente invención describe las preparaciones
de circovirus aislados después de pasos por células, particularmente
líneas celulares, por ejemplo células PK/15, cultivadas in
vitro y que están infectadas por al menos uno de los circovirus
de acuerdo con la invención o por cualquier circovirus porcino que
pueda aislarse a partir de una muestra fisiológica o de una
extracción tisular, particularmente de lesiones, de un cerdo que
presenta el síndrome PMWS. La invención también describe los
sobrenadantes o extractos de cultivo, opcionalmente purificados
mediante técnicas convencionales y de manera general cualquier
preparación antigénica obtenida a partir de cultivos in
vitro.
La invención también describe los principios
activos inmunógenos y las vacunas que contienen al menos un antígeno
tal como se ha definido anteriormente.
Pueden ser principios activos inmunógenos a base
de virus completos vivos atenuados o vacunas preparadas con estos
principios activos, realizándose la atenuación de acuerdo con los
métodos habituales, por ejemplo mediante el paso por células,
preferiblemente mediante paso por células de cerdo, particularmente
de una línea, tales como células PK/15 (por ejemplo de 50 a 150,
particularmente del orden de 100, pasos). Estas vacunas comprenden
en general un vehículo o diluyente aceptable en el plano
veterinario, opcionalmente un adyuvante aceptable en el plano
veterinario así como opcionalmente un estabilizante de
liofilización.
Estas preparaciones antigénicas y vacunas
comprenderán preferiblemente de 10^{3} a 10^{8} TCID50.
También pueden ser principios activos
inmunógenos o vacunas a base de antígeno de circovirus de acuerdo
con la invención, en estado inactivado. Las vacunas comprenden
además un vehículo o diluyente aceptable en el plano veterinario
con opcionalmente además un adyuvante aceptable en el plano
veterinario.
Los circovirus de acuerdo con la invención, con
las fracciones que pueden estar presentes, se inactivan de acuerdo
con las técnicas conocidas por el especialista en la técnica. La
inactivación se realizará preferiblemente por vía química, por
ejemplo mediante exposición del antígeno a un agente químico tal
como formaldehído (formol), paraformaldehído,
\beta-propiolactona o etilenimina o sus derivados.
El método de inactivación preferido será en este documento la
exposición a un agente químico y en particular a etilenimina o a
\beta-propiolactona.
Preferiblemente, las vacunas inactivadas de
acuerdo con la invención estarán potenciadas, ventajosamente al
estar presentes en forma de emulsiones, por ejemplo de agua en
aceite o aceite en agua, de acuerdo con técnicas bien conocidas por
el especialista en la técnica. El carácter adyuvante también podrá
proceder de la incorporación al principio activo de un compuesto
adyuvante habitual.
Entre los adyuvantes que pueden utilizarse,
pueden mencionarse como ejemplo el hidróxido de alúmina, saponinas
(por ejemplo Quillaja saponina o Quil A; véase el documento Vaccine
Design, The Subunit and Adjuvant Approach, 1995, editado por
Michael F. Powel y Mark J. Newman, Plennum Press, Nueva York y
Londres, p. 210), Avridine® (Vaccine Design p. 148), DDA (Bromuro
de dimetildioctadecilamonio, Vaccine Design p. 157), Polifosfaceno
(Vaccine Design p. 204) o también emulsiones de aceite en agua a
base de aceite mineral, de escualano (por ejemplo, emulsión SPT,
Vaccine Design p. 147), de escualeno (por ejemplo MF59, Vaccine
Design p. 183) o de agua en aceite a base de aceite metabolizable
(preferiblemente de acuerdo con el documento
WO-A-94 20071) así como las
emulsiones descritas en el documento
US-A-5 422 109. También pueden
seleccionarse asociaciones de adyuvantes, por ejemplo Avridine® o
DDA asociado a una emulsión.
Estas vacunas comprenderán preferiblemente de
10^{6} a 10^{8} TCID50.
Los adyuvantes de vacuna viva podrán
seleccionarse entre los que se dan para la vacuna inactivada. Se
prefieren las emulsiones. A las indicadas para la vacuna
inactivada, pueden añadirse las descritas en el documento
WO-A-9416681.
Como estabilizante de liofilización, pueden
mencionarse como ejemplo el SPGA (Bovamik et al., J.
Bacteriology 59, 509,950), hidratos de carbono tales como sorbitol,
manitol, almidón, sacarosa, dextrano o glucosa, proteínas tales
como albúmina o caseína, derivados de estos compuestos o tampones
tales como fosfatos de metales alcalinos.
La Depositante ha obtenido además el genoma de
cuatro de los aislados, identificados como SEC ID Nº 1 a 4 y
opcionalmente 6.
La presente invención describe por lo tanto un
fragmento de ADN que contiene toda o parte de una de estas
secuencias. Es evidente que la invención describe automáticamente
las secuencias equivalentes, es decir las secuencias que no cambian
la funcionalidad ni la especificidad de cepa de la secuencia
descrita ni de los polipéptidos codificados por esta secuencia. Por
supuesto se incluirán las secuencias que difieran por degeneración
del código genético.
La invención describe también las secuencias
equivalentes en el sentido en que son capaces de hibridarse a la
secuencia anterior en condiciones de rigurosidad elevada y/o tienen
una gran homología con las cepas de la invención y pertenecen al
grupo II definido anteriormente.
Estas secuencias y sus fragmentos podrán
utilizarse ventajosamente para la expresión in vitro o in
vivo de polipéptidos con ayuda de vectores apropiados.
En particular, se han identificado marcos
abiertos de lectura que forman fragmentos de ADN de acuerdo con la
invención, utilizables a tal efecto, en la secuencia genómica de los
circovirus de tipo II. La invención describe cualquier polipéptido
que contiene al menos uno de estos marcos abiertos de lectura
(secuencia de aminoácidos correspondiente). Preferiblemente, la
invención describe una proteína formada esencialmente por MAL4,
MAL7, MAL10 o MAL13.
Para la expresión de subunidades in
vitro, como medio de expresión, se recurrirá preferiblemente a
E. coli o al baculovirus
(US-A-4 745 051). Se integra la o
las secuencias codificantes o sus fragmentos en el genoma del
baculovirus (por ejemplo baculovirus Autographa californica
Nuclear Polyhedrosis Virus AcNPV) y a continuación se propaga este
último en células de insecto por ejemplo Spodoptera
frugiperda Sf9 (depósito ATCC CRL 1711). También pueden
producirse las subunidades en células eucariotas tales como
levaduras (por ejemplo Saccharomyces cerevisiae) o células
de mamífero (por ejemplo CHO, BHK).
La invención también describe los polipéptidos
que se producirán in vitro mediante estos medios de expresión
y después opcionalmente se purificarán de acuerdo con técnicas
convencionales. La invención también describe las vacunas de
subunidad que comprenden al menos un polipéptido, tal como los
obtenidos de este modo, o un fragmento, en un vehículo o diluyente
aceptable en el plano veterinario y opcionalmente un adyuvante
aceptable en el plano veterinario.
Para la expresión in vivo con vistas a la
realización de vacunas vivas recombinantes, se inserta la o las
secuencias codificantes o sus fragmentos en un vector de expresión
apropiado en condiciones que permitan la expresión del o de los
polipéptidos. Como vectores apropiados, pueden utilizarse virus
vivos, preferiblemente capaces de multiplicarse en el cerdo, no
patógenos para el cerdo (no patógeno de forma natural o artificial),
de acuerdo con técnicas bien conocidas por el especialista en la
técnica. Podrán utilizarse particularmente herpesvirus de cerdo
tales como los virus de la enfermedad de Aujeszky, adenovirus
porcino, poxvirus, particularmente virus vaccinia, avipox,
canarypox, swinepox. También pueden utilizarse como vectores ADN
plasmídicos (WO-A-90 11092,
WO-A-93 19813,
WO-A-94 21797,
WO-A-95 20660).
La invención describe también por lo tanto los
vectores y vacunas vivas recombinantes o plasmídicas (vacunas
polinucleotídicas o ADN) realizados de este modo, comprendiendo
además las vacunas un vehículo o diluyente aceptable en el plano
veterinario.
Las vacunas descritas por la invención (vivas
atenuadas, inactivadas, de subunidad, vivas recombinantes,
plasmídicas) podrán comprender uno o más principios activos
(antígenos) de uno o más (2 ó 3) de los circovirus de acuerdo con
la invención.
La invención prevé también asociar, para cada
uno de los tipos de vacunas descritos anteriormente, la vacunación
contra el circovirus porcino con una vacunación contra otros
patógenos del cerdo, en particular los que pueden estar asociados
al síndrome PMWS. Las vacunas de acuerdo con la invención,
particularmente inactivadas, podrán comprender por lo tanto otra
valencia correspondiente a otro patógeno del cerdo. Entre estos
otros patógenos del cerdo, pueden mencionarse preferiblemente el
PRRS (Porcine Reproductory and Respiratory Syndrome) (el
especialista en la técnica podrá remitirse a los documentos
WO-A-93/07898,
WO-A-94/18311,
FR-A-2 709 966; C. Chareyre et
al., Proceedings of the 15th IPVS Congress Birmingham, England,
5-9 de julio de 1998, p. 139; incorporados como
referencia) y/o Mycoplasma hyopneumoniae (el especialista en
la técnica podrá remitirse a los documentos
EP-A-597 852,
EP-A-550 477,
EP-A-571 648, O. Martinon et
al., p 157, p. 284, p. 285 y G. Reynaud et al., p. 150
del Proceedings of the 15th IPVS Congress anterior. Entre las demás
valencias interesantes, también pueden mencionarse
Actinobacillus pleuropneumoniae, E. coli y Rhinite
atrophique del cerdo, o también enfermedad de Aujeszky, peste
porcina clásica (Hog Cholera) y gripe porcina.
La presente invención también describe un método
que permite inducir una respuesta inmune en el cerdo frente a
circovirus de acuerdo con la invención. La invención describe en
particular un método de vacunación eficaz en el cerdo.
Este método prevé la administración al cerdo, en
una o más veces, de una vacuna anterior. También es posible
combinar varios tipos de vacunas anteriores en un mismo protocolo de
vacunación.
Este método no solamente prevé la administración
a los cerdos adultos, sino también a los jóvenes o a las hembras en
gestación. La vacunación de estas últimas permite otorgar una
inmunidad pasiva a los recién nacidos (anticuerpos maternos).
La presente invención también ofrece la
posibilidad de diagnosticar la presencia de circovirus de acuerdo
con la invención en el cerdo. Por lo tanto, la invención se refiere
a ensayos de diagnóstico y métodos relativos al mismo que emplean
los reactivos que se describirán a continuación.
El conocimiento de las secuencias de los
diferentes circovirus permite definir las secuencias comunes que
permiten producir reactivos adecuados para reconocer el conjunto de
los circovirus porcinos conocidos.
El especialista en la técnica también podrá
seleccionar los fragmentos de las secuencias correspondientes a las
regiones que presentan poca o ninguna homología con la secuencia
correspondiente del circovirus PK/15 para poder realizar un
diagnóstico específico.
Los alineamientos de secuencias permiten al
especialista en la técnica seleccionar un reactivo de acuerdo con
sus deseos.
Un primer reactivo consiste en las secuencias de
ADN divulgadas en este documento y sus fragmentos; que se
utilizarán particularmente como sondas o cebadores en técnicas de
hibridación o de PCR ("Polymerase Chain Reaction") bien
conocidas.
Un segundo reactivo consiste en polipéptidos
codificados por estas secuencias a partir del virus o expresados
con ayuda de un vector (véase anteriormente) o sintetizados por vía
química de acuerdo con técnicas convencionales de síntesis
peptídica.
Un tercer y cuarto reactivos consisten en
anticuerpos respectivamente policlonales y monoclonales que podrán
producirse de acuerdo con las técnicas habituales a partir de virus,
polipéptidos o fragmentos, extraídos o codificados por las
secuencias de ADN.
Estos segundo, tercer y cuarto reactivos podrán
utilizarse en un método de diagnóstico, objeto de la invención, en
el que se busca, en una muestra de fluido fisiológico (sangre,
plasma, suero, etc.) o extracción de tejido (ganglios, hígado,
pulmones, riñones, etc.) procedente de un cerdo a ensayar, la
presencia de un antígeno específico de un circovirus de acuerdo con
la invención, buscando detectar el propio antígeno o anticuerpos
dirigidos contra este antígeno.
Los antígenos y anticuerpos de acuerdo con la
invención podrán utilizarse en todas las técnicas conocidas de
diagnóstico de laboratorio.
Sin embargo, se preferirá utilizarlos en
técnicas que pueden emplearse directamente sobre el terreno por el
veterinario, el ganadero o el propietario del animal. El
especialista en la técnica dispone del conjunto de técnicas de
laboratorio y sobre el terreno y, por lo tanto, es perfectamente
capaz de adaptarlas a la utilización de este antígeno y/o de los
anticuerpos como reactivo(s) de diagnóstico.
Las técnicas de diagnóstico que se utilizarán
preferiblemente en el marco de la presente invención son
Transferencia de Western, inmunofluorescencia, ELISA e
inmunocromatografía.
Con respecto a al realización de métodos por
inmunocromatografía, el especialista podrá remitirse particularmente
al documento Robert F. Zurk et al., Clin. Chem. 31/7,
1144-1150 (1985) así como a las patentes o
solicitudes de patente WO-A-88/08
534, WO-A-91/1 2528,
EP-A-291 176,
EP-A-299 428,
EP-A-291 194,
EP-A-284 232,
US-A-5 120 643,
US-A-5 030 558,
US-A-5 266 497,
US-A-4 740 468,
US-A-5 266 497,
US-A-4 855 240,
US-A-5 451 504,
US-A-5 141 850,
US-A-5 232 835 y
US-A-5 238 652.
De este modo, se busca preferiblemente detectar
los anticuerpos específicos en la muestra mediante ensayo
indirecto, por competición o por desplazamiento. Para ello, se
utiliza el propio antígeno como reactivo de diagnóstico o un
fragmento de este antígeno, que conserva el reconocimiento de los
anticuerpos. El marcado puede ser ventajosamente un marcado con
peroxidasa o un marcado de partículas, preferiblemente con oro
coloidal.
También puede buscarse detectar el propio
antígeno en la muestra con ayuda de un anticuerpo marcado específico
de este antígeno. El marcado es ventajosamente como se ha descrito
anteriormente.
Por anticuerpo específico del antígeno
utilizable particularmente en competición o desplazamiento o para la
detección del propio antígeno, se entiende anticuerpos monoclonales
y policlonales específicos del antígeno, fragmentos de estos
anticuerpos, preferiblemente fragmentos Fab o
F(ab)'_{2}.
Otro aspecto de la invención es la producción de
anticuerpos, policlonales o monoclonales, específicos del antígeno
de acuerdo con la invención, pudiendo utilizarse estos anticuerpos a
continuación particularmente como reactivos de diagnóstico para la
detección del antígeno en una muestra de fluido fisiológico o en una
extracción de tejido o incluso para la detección de anticuerpos
presentes en dicha muestra o extracción. La invención también
incluye los fragmentos inmunológicamente funcionales de estos
anticuerpos, en particular los fragmentos F(ab) y
F(ab)'_{2}.
Los anticuerpos podrán preparase mediante
técnicas habituales. Podemos remitirnos particularmente al documento
Antibodies, A Laboratory Manual, 1988, Cold Spring Harbor
Laboratory, USA o a J.W. Goding, Monoclonal Antibodies: Principles
and Practice, Academic Press Inc., cuyos contenidos se incorporan en
este documento como referencia.
Se podrá proceder particularmente, como se
conoce en sí misma, a la fusión de células esplénicas de ratón
inmunizadas con el antígeno o con al menos uno de sus fragmentos,
con células mielomatosas adecuadas.
La invención también se refiere a una
preparación, preferiblemente pura o parcialmente purificada o
incluso en bruto, de anticuerpos monoclonales o policlonales
específicos del antígeno, particularmente anticuerpos de ratón o de
conejo.
La presente invención también permite determinar
epítopos de interés particularmente en base a las secuencias de ADN
descritas en este documento, sean estos epítopos de interés para
vacunas o epítopos de interés para diagnóstico. A partir de la
secuencia de ADN del genoma del circovirus de acuerdo con la
invención, el especialista en la técnica puede determinar él mismo,
epítopos de acuerdo con métodos conocidos, por ejemplo el programa
informático apropiado o PEPSCAN. Los epítopos son regiones
inmunodominantes de proteínas y por esta razón son regiones
expuestas en la superficie de las proteínas. Por lo tanto, pueden
ser reconocidos por los anticuerpos y de este modo pueden emplearse
particularmente en el campo del diagnóstico para la preparación de
anticuerpos con fines de diagnóstico o para la realización de
péptidos correspondientes utilizables como reactivos de
diagnóstico.
Como mínimo, un epítopo es un péptido que tiene
de 8 a 9 aminoácidos. En general se prefiere un mínimo de 13 a 25
aminoácidos.
Por lo tanto, el especialista en la técnica es
capaz, utilizando una o más de estas técnicas así como otras
técnicas disponibles, de encontrar epítopos para la realización de
péptidos o de anticuerpos con fines de diagnóstico.
La invención también se refiere a un kit de
diagnóstico que comprende este antígeno y/o anticuerpos policlonales
o monoclonales específicos de este antígeno. Son en particular kits
de diagnóstico correspondientes a las técnicas de diagnóstico
descritas anteriormente.
\vskip1.000000\baselineskip
A continuación la invención se describirá con
más detalle con ayuda de ejemplos de realización no limitantes,
tomados en referencia al dibujo, en el que:
Figura 1: secuencia de ADN del genoma de la cepa
Imp 1011-48121
Figura 2: secuencia de ADN del genoma de la cepa
Imp 1011-48285
Figura 3: secuencia de ADN del genoma de la cepa
Imp 999
Figura 4: secuencia de ADN del genoma de la cepa
Imp 1010
Figura 5: alineamiento de las 4 secuencias de
acuerdo con las figuras 1 a 4 con la secuencia de la cepa de PCV
PK/15
Figura 6: secuencia de ADN del genoma de la cepa
Imp 999 tal como se define en el primer depósito en Francia del 3 de
octubre de 1997.
Figura 7: alineamientos de la secuencia de la
figura 6 con la secuencia de la cepa PK/15
\vskip1.000000\baselineskip
SEC ID Nº 1 secuencia de ADN del genoma de la
cepa Imp 1011-48121
SEC ID Nº 2 secuencia de ADN del genoma de la
cepa Imp 1011-48285
SEC ID Nº 3 secuencia de ADN del genoma de la
cepa Imp 999
SEC ID Nº 4 secuencia de ADN del genoma de la
cepa Imp 1010
SEC ID Nº 5 secuencia de ADN del genoma de la
cepa PK/15
SEC ID Nº 6 secuencia de ADN del genoma de la
cepa Imp 999 tal como se define en el primer depósito en Francia
del 3 de octubre de 1997.
\vskip1.000000\baselineskip
Se han recogido muestras de tejidos en Francia,
en Canadá y en los Estados Unidos a partir de pulmones y de
ganglios linfáticos de lechones. Estos lechones presentaban signos
clínicos típicos del síndrome de debilitamiento generalizado
posterior al destete. Para facilitar el aislamiento de los virus,
las muestras de tejidos se han congelado a -70ºC inmediatamente
después de la autopsia.
Para el aislamiento viral, se han preparado
suspensiones que contienen aproximadamente el 15% de muestra de
tejido en un medio mínimo que contiene sales de Earl (EMEM,
BioWhittaker UK Ltd., Wokingham, UK), penicilina (100 Ul/ml) y
estreptomicina (100 \mug/ml) (medio MEM-SA),
mediante trituración de los tejidos con arena estéril por medio de
un mortero y una maza estériles. A continuación, esta preparación
triturada se recupera en MEM-SA y después se
centrifuga a 3000 g durante 30 minutos a +4ºC para recoger el
sobrenadante.
Previamente a la siembra de los cultivos
celulares, se ha añadido un volumen de 100 \mul de cloroformo a 2
ml de cada sobrenadante y se mezcla de forma continua durante 10
minutos a temperatura ambiente. A continuación se transfiere esta
mezcla a un tubo de microcentrífuga, se centrifuga a 3000 g durante
10 minutos y después se recoge el sobrenadante. A continuación este
sobrenadante se utiliza como inóculo para los experimentos de
aislamiento viral.
Todos los estudios de aislamiento viral se han
realizado en cultivos de células PK/15, conocidas porque no están
contaminadas con circovirus porcino (PCV), pestivirus, adenovirus
porcinos y parvovirus porcino (Allan G. et al., Pathogenesis
of porcine circovirus experimetal infections of
colostrum-deprived piglets and examination of pig
foetal material. Vet. Microbiol. 1995. 44.
49-64).
El aislamiento de los circovirus porcinos se ha
realizado de acuerdo con la siguiente técnica:
Se han disociado monocapas de células PK/15
mediante tripsinización (con una mezcla de
tripsina-verseno) a partir de cultivos confluyentes
y se han suspendido en medio MEM-SA que contiene el
15% de suero fetal bovino no contaminado con pestivirus (= medio
MEM-G) a una concentración final de aproximadamente
400.000 células por ml. A continuación se han mezclado fracciones
en alícuotas de 10 ml de esta suspensión celular con fracciones en
alícuotas de 2 ml de los inóculos descritos anteriormente y las
mezclas finales se han dividido en alícuotas en volúmenes de 6 ml
en dos tubos Falcon de 25 cm^{2}. Estos cultivos se han incubado a
continuación a +37ºC durante 18 horas en atmósfera que contenía el
10% de CO_{2}. Después de la incubación, el medio de cultivo de
las monocapas semi-confluyentes se ha tratado con
300 mM de D-glucosamina (Nº de Cat G48175, Sigma
Aldrich Company Limited, Poole, UK) (Tischr I. et al., Arch.
Virol. 1987 96 39-57) y después se ha continuado la
incubación durante un periodo suplementario de
48-72 horas a +37ºC. Después de esta última
incubación, uno de los dos Falcon de cada inóculo se ha sometido a
3 ciclos sucesivos de congelación/descogelación. Las células PK/15
del Falcon restante se han tratado con una solución de
tripsina-verseno, se han resuspendido en 20 ml de
medio MEM-G y después se han sembrado en Falcon de
75 cm^{2} a una concentración 400.000 células/ml. A continuación,
los Falcon recién sembrados se han "sobreinfectado" mediante la
adición de 5 ml del lisado correspondiente obtenido después de los
ciclos de congelación/descongelación.
Se ha extraído un volumen de 5 ml de la
suspensión "sobreinfectada" y se ha sembrado en una placa de
Petri de 55 mm de diámetro que contiene un portaobjetos de vidrio
estéril y desgrasado. Los cultivos en tubos y en portaobjetos de
vidrio se han incubado a +37ºC y se han tratado con glucosamina como
se ha descrito en el ejemplo 1. Los cultivos en portaobjetos de
vidrio se han recogido de 24 a 48 horas después del tratamiento con
glucosamina y se han fijado con acetona durante 10 minutos a
temperatura ambiente o con el 10% de formaldehído tamponado durante
4 horas. Después de esta fijación, todos los portaobjetos de vidrio
se han almacenado a -70ºC, en gel de sílice, antes de su
utilización para los estudios de hibridación in situ y los
estudios de marcado inmunocitoquímico.
La hibridación in situ se ha realizado en
tejidos extraídos de cerdos enfermos y fijados con formaldehído y
también en preparaciones de cultivos de células inoculadas para el
aislamiento viral (véase el ejemplo 2) y fijadas en portaobjetos de
vidrio.
Se han utilizado sondas genómicas completas
correspondientes al circovirus porcino PK/15 (PCV) y al virus de la
anemia infecciosa del pollo (chicken anemia virus = CAV). El
plásmido pPCV1, que contiene la forma de replicación del genoma de
PCV clonada en forma de un único inserto de 1,7 kilopares de bases
(kpb) (Meehan B. et al., Sequence of porcine circovirus DNA:
affinities with plant circoviruses. J. Gen. Virol. 1997. 78.
221-227) se ha utilizado como fuente de ADN viral
específico para PCV. Un plásmido análogo, pCAA1, que contiene la
forma de replicación de 2,3 kpb del circovirus aviar CAV se ha
utilizado como control negativo. Las reservas de glicerol
respectivas de estos dos plásmidos se han utilizado para la
producción y la purificación de los plásmidos de acuerdo con la
técnica de lisis alcalina (Sambrook J. et al., Molecular
cloning: A Laboratory Manual, 2ª Edición. Cold Spring Harbor
Laboratory. Cold Spring Harbor. New York. 1989) para que a
continuación sirvan de matrices para la preparación de las sondas.
Las sondas de circovirus representativas de los genomas completos
de PCV y de CAV se han producido a partir de los plásmidos
purificados descritos anteriormente (1 \mug para cada sonda) y de
cebadores hexanucleotídicos al azar utilizando un kit comercial de
marcado no radiactivo ("DIG DNA labelling kit", Boehringer
Mannheim, Lewes, UK) de acuerdo con las recomendaciones del
proveedor.
Las sondas marcadas con digoxigenina se han
suspendido en un volumen de 50-100 \mul de agua
estéril antes de su utilización para la hibridación in
situ.
Las muestras de tejidos de cerdos enfermos,
incluidas en parafina y fijadas con formaldehído, así como las
preparaciones de cultivos de células infectadas, fijadas con
formaldehído, se han preparado para la detección de los ácidos
nucleicos de PCV de acuerdo con la siguiente técnica:
Se han recortado secciones de 5 \mum de grosor
a partir de bloques de tejido incluidos en parafina, se han
desparafinado y después se han rehidratado en soluciones sucesivas
de alcohol a concentración decreciente. Las secciones de tejidos y
los cultivos de células fijadas con formaldehído se han incubado
respectivamente durante 15 minutos y 5 minutos a +37ºC en una
solución de proteinasa K al 0,5% en tampón Tris-HCl
0,05 M, EDTA 5 mM (pH 7,6). Los portaobjetos se han colocado a
continuación en una solución de glicina al 1% en agua destilada
esterilizada en un autoclave, durante 30 segundos, se lavan dos
veces con un tampón PBS (phosphate buffer saline) 0,01 m (pH 7,2) y
finalmente se lavan durante 5 minutos en agua destilada estéril.
Finalmente se secan al aire libre y se ponen en contacto con las
sondas.
Cada preparación de tejido/sonda se ha
recubierto con un cubreobjetos apropiado y desengrasado y después se
coloca en un horno a +90ºC durante 10 minutos, a continuación se
pone en contacto con un bloque de hielo durante 1 minuto y
finalmente se incuba durante 18 horas a +37ºC. A continuación, las
preparaciones se sumergen brevemente en un tampón de sal de
sodio-citrato (SSC) 2x (pH 7,0) para eliminar los
cubreobjetos protectores y después se lavan dos veces durante 5
minutos en tampón SSC 2x y finalmente se lavan 2 veces durante 5
minutos en tampón PBS.
Después de estos lavados, las preparaciones se
han sumergido en una solución de ácido maleico 0,1 M, NaCl 0,15 M
(pH 7,5) (tampón maleico) durante 10 minutos y después se incuban en
una solución del 1% de reactivo de bloqueo (Nº de Cat. 1096176,
Boehringer Mannheim UK, Lewis, East Sussex UK) en tampón maleico
durante 20 minutos a +37ºC.
Las preparaciones se han incubado a continuación
con una solución a 1/250 de un anticuerpo monoclonal
anti-digoxigenina (Boehringer Mannheim), diluido en
tampón de bloqueo, durante 1 hora a +37ºC, se lavan en PBS y
finalmente se incuban con un anticuerpo biotinilado
anti-inmunoglobulina de ratón durante 30 minutos a
+37ºC. Las preparaciones se han lavado en PBS y la actividad
peroxidasa endógena se ha bloqueado mediante un tratamiento con una
solución de peróxido de hidrógeno al 0,5% en PBS durante 20 minutos
a temperatura ambiente. Las preparaciones se lavan una vez más en
PBS y se tratan con un sustrato
3-amino-9-dietilcarbazol
(AEC) (Cambridge Bioscience, Cambridge, UK) preparado
extemporáneamente.
Después de un último lavado con agua corriente,
las preparaciones se han contra-teñido con
hematoxilina "se azulean" en agua corriente y se montan en
portaobjetos de microscopio con un líquido de montaje (GVA Mount,
Cambridge Bioscience, Cambridge, UK). Los controles del experimento
incluían la utilización de una sonda negativa no pertinente (CAV) y
de una sonda positiva (PCV) en muestras procedentes de cerdos
enfermos y de cerdos no enfermos.
La selección inicial de todas las preparaciones
de cultivo celular fijadas con acetona se ha realizado mediante una
técnica de inmunoflourescencia indirecta (IFI) utilizando una
dilución al 1/100 de una reserva de sueros de cerdos adultos. Esta
reserva de sueros comprende sueros de 25 cerdas adultas de Irlanda
del Norte y se sabe que contiene anticuerpos contra una gran
variedad de virus porcinos, incluyendo PCV: parvovirus porcino,
adenovirus porcino y virus PRRS. La técnica IFI se ha realizado
mediante el contacto del suero (diluido en PBS) con los cultivos
celulares durante una hora a +37ºC, seguido de dos lavados en PBS. A
continuación, los cultivos de células se tiñen con una dilución a
1/80 en PBS de un anticuerpo de conejo
anti-inmunoglobulina de cerdo conjugado con
isotiocianato de fluoresceína durante una hora y después se lavan en
PBS y se montan en tampón glicerol previamente a la observación al
microscopio con luz ultravioleta.
La hibridación in situ, que utiliza una
sonda genómica de PCV, realizada en tejidos extraídos de lechones
franceses, canadienses y californianos que presentan lesiones de
debilitamiento generalizado y fijadas con formaldehído, ha revelado
la presencia de ácidos nucleicos de PCV asociados a las lesiones, en
varias de las lesiones estudiadas. No se ha observado ninguna señal
cuando la sonda genómica de PCV se ha utilizado en tejidos
extraídos de cerdos no enfermos o cuando se ha utilizado la sonda de
CAV en tejidos de cerdos enfermos. La presencia de ácido nucleico
de PCV se ha identificado en el citoplasma y el núcleo de numerosas
células mononucleares que infiltran las lesiones en los pulmones de
los lechones californianos. La presencia de ácido nucleico de PCV
también se ha descubierto en pneumocitos, células epiteliales
bronquiales y bronquiolares y en células endoteliales de pequeñas
arteriolas, vénulas y vasos linfáticos.
En los cerdos enfermos franceses, la presencia
de ácido nucleico de PCV se ha detectado en el citoplasma de
numerosos linfocitos foliculares y en las células mononucleares
intrasinusoidales de los ganglios linfáticos. El ácido nucleico de
PCV también se ha detectado en los sincitios ocasionales. En función
de estos resultados de detección, se han seleccionado muestras de
pulmones de cerdos californianos, de ganglios linfáticos
mesentéricos de cerdos franceses y de órganos de cerdos canadienses
para fines de aislamiento de las nuevas cepas de circovirus
porcino.
No se ha observado ningún efecto citopático
(ECP) en los cultivos de células inoculadas con las muestras
extraídas de lechones franceses (cepa Imp.1008), californianos
(cepa Imp.999) y canadienses (cepa Imp.1010) que muestran signos
clínicos del síndrome de debilitamiento generalizado. Sin embargo,
el inmuno-marcado de las preparaciones procedentes
de los cultivos de células inoculadas, después de la fijación con
acetona y con una reserva de sueros policlonales de cerdos, ha
revelado una fluorescencia nuclear en numerosas células en los
cultivos inoculados a partir de pulmones de lechones californianos
(cepa Imp.999), a partir de ganglios linfáticos mediastínicos de
lechones franceses (cepa Imp.1008) y a partir de órganos de lechones
canadienses (cepa Imp.1010).
Las formas de replicación de las nuevas cepas de
circovirus porcino (PCV) se han preparado a partir de células PK/15
infectadas (véase el ejemplo 1) (10 tubos Falcon de 75 cm^{2})
recogidas después de 72-76 horas de incubación y
tratadas con glucosamina, como se describe para la clonación de la
forma de replicación de CAV (Todd. D. et al., Dot blot
hybridization assay for chicken anemia agent using a cloned DNA
probe. J. Clin. Microbiol. 1991. 29. 933-939). El
ADN de doble cadena de estas formas de replicación se ha extraído de
acuerdo con una modificación de la técnica de Hirt (Hirt B.
Selective extraction of polyoma virus DNA from infected cell
cultures. J. Mol. Biol. 1967. 36. 365-369), como se
describe por Molitor (Molitor T.W. et al., Porcine
parvovirus DNA: characterization of the genomic and replicative form
DNA of two virus isolates. Virology. 1984. 137.
241-254).
El ADN (1-5 \mug) extraído de
acuerdo con la técnica de Hirt se ha tratado con nucleasa S1
(Amersham) de acuerdo con las recomendaciones del proveedor y
después este ADN se ha digerido con diferentes enzimas de
restricción (Boehringer Mannheim, Lewis, East Sussex, UK) y los
productos de la digestión se han separado mediante electroforesis
en gel de agarosa al 1,5% en presencia de bromuro de etidio como se
describe por Todd et al., (Purification and biochemical
characterization of chicken anemia agent. J. Gen. Virol. 1990. 71.
819-823).
El ADN extraído de los cultivos de la cepa
Imp.999 posee un sitio único EcoRI, 2 sitios SacI y no posee sitio
PstI. Este perfil de restricción es por lo tanto diferente del
perfil de restricción presentado por la cepa de PCV PK/15 (Meehan
B. et al., Sequence of porcine circovirus DNA: affinities
with plant circoviruses. 1997. 78. 221-227) que por
el contrario posee un sitio PstI y no posee sitio EcoRI.
El fragmento de restricción de aproximadamente
1,8 kpb generado mediante digestión de la forma de replicación de
cadena doble de la cepa de PCV Imp.999 con la enzima de restricción
EcoRI se ha aislado después de electroforesis en gel de agarosa al
1,5% (véase el ejemplo 3) utilizando un kit comercial Qiagen
(QIAEXII Gel Extraction Kit, Nº de Cat 20021, QIAGEN Ltd., Crawley,
West Sussex, UK). Este fragmento de restricción
EcoRI-EcoRI se ha ligado a continuación con el
vector pGEM-7 (Promega, Medical Supply Company,
Dublín, Irlanda), previamente digerido con las mismas enzimas de
restricción y desfosforilado, siguiendo las técnicas convencionales
de clonación (Sambrook J. et al., Molecular Cloning: A
Laboratory Manual, 2ª Edición. Cold Spring Harbor Laboratory. Cold
Spring Harbor. New York. 1989). Los plásmidos obtenidos se han
transformado en una cepa hospedadora de Escherichia coli
JM109 (Stratagene, La Jolla, USA) de acuerdo con técnicas
convencionales. El fragmento de restricción
EcoRI-EcoRI de la cepa de PCV Imp.999 también se ha
clonado en el sitio EcoRI del vector pBlueScript SK+ (Stratagene
Inc., La Jolla, USA). Entre los clones obtenidos para cada cepa
hospedadora, se han seleccionado al menos 2 clones que contienen
los fragmentos del tamaño esperado. A continuación, los clones
obtenidos se han cultivado y los plásmidos que contienen el genoma
completo de la cepa Imp.999 se han purificado en volumen pequeño (2
ml) o en volumen grande (250 ml) de acuerdo con las técnicas
convencionales de preparación y de purificación de los
plásmidos.
La secuencia de nucleótidos de 2 clones EcoRI
Imp.999 (clones pGEM-7/2 y pGEM-7/8)
se ha determinado de acuerdo con la técnica de los
didesoxinucleótidos de Sanger utilizando el kit de secuenciación
"AmpliTaq DNA polymerase FS" (Nº de Cat 402079 PE Applied
Biosystems, Warrington, UK) y un aparato de secuenciación automática
Applied BioSystems ABI373A de acuerdo con las recomendaciones del
proveedor. Las reacciones de secuenciación iniciales se han
realizado con los cebadores universales M13 "forward" (directo)
y "reverse" (inverso). Las reacciones de secuenciación
siguientes se han generado de acuerdo con la técnica de "paseo con
cebadores" (primer walking). Los oligonucleotidos necesarios
para estas posteriores secuenciaciones han sido sintetizados por
Life Technologies (Inchinnan Business Park, Paisley, UK).
Las secuencias generadas se han reunido y
analizado por medio del programa MacDNASIS versión 3.2. (Nº de Cat
22020101, Appligene, Durham, UK). Los diferentes marcos abiertos de
lectura se han analizado por medio del algoritmo BLAST disponible
en el servidor del ``National Center for Biotechnology Information
(NCBI, Bethesda, MD, USA).
La secuencia completa (fragmento
EcoRI-EcoRI) obtenida inicialmente a partir del clon
pGEM-7/8 (SEC ID Nº 6) se presenta en la figura Nº
6. La secuencia comienza arbitrariamente después de la G del sitio
EcoRI y presenta varias incertidumbres en el plano de los
nucleótidos.
A continuación la secuenciación se ha optimizado
y la SEC ID Nº 3 (Figura 3) da la secuencia total de esta cepa, que
se ha hecho comenzar arbitrariamente en el inicio del sitio EcoRI, o
sea G como primer nucleótido.
Se procede de manera similar para la obtención
de la secuencia de los otros tres aislados de acuerdo con la
invención (véase SEC ID Nº 1, 2 y 4 y figuras 1, 2 y 4).
El tamaño del genoma de estas cuatro cepas
es:
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ Imp 1011-48121 \+ \hskip3cm \+ 1767 nucleótidos\cr Imp 1011-48285 \+ \+ 1767 nucleótidos\cr Imp 999 \+ \+ 1768 nucleótidos\cr Imp 1010 \+ \+ 1768 nucleótidos\cr}
Cuando la secuencia generada a partir de la cepa
Imp.999 se ha utilizado para una búsqueda de homología frente a
secuencias contenidas en el banco de datos GenBank, la única
homología significativa que se ha detectado es una homología de
aproximadamente el 76% (a nivel de ácido nucleico) con la secuencia
de la cepa PK/15 (Números de acceso Y09921 y U49186) (véase la
figura Nº 5).
Al nivel de los aminoácidos, la búsqueda de
homología de la traducción de las secuencias en las 6 fases con los
bancos de datos (algoritmos BLAST X en el servidor NCBI) ha
permitido descubrir una homología del 94% con el marco abierto de
lectura correspondiente a la replicasa teórica del virus BBTV
similar al circovirus de plantas (número de identificación GenBank
1841515) codificado por la secuencia GenBank U49186.
Ninguna otra secuencia contenida en los bancos
de datos muestra homología significativa con la secuencia generada
a partir de la cepa de PCV Imp.999.
El análisis de las secuencias obtenidas a partir
de la cepa Imp.999 cultivada a partir de lesiones extraídas de
lechones californianos que presentan signos clínicos del síndrome de
debilitamiento generalizado, muestra claramente que este aislado
viral es una nueva cepa de circovirus porcino.
El alineamiento de las secuencias de nucleótidos
de las 4 nuevas cepas de PCV se ha realizado con la secuencia de la
cepa de PCV PK/15 (figura 5). Se ha realizado una matriz de
homología teniendo en cuenta las cuatro cepas nuevas y la cepa
anterior PK/15. Los resultados son los siguientes:
\vskip1.000000\baselineskip
1: Imp 1011-48121
2: Imp 1011-48285
3: Imp 999
4: Imp 1010
5: PK/15
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
La homología entre las dos cepas francesas Imp
1011-48121 e Imp 1011-48285 es
superior al 99% (0,9977).
La homología entre las dos cepas norteamericanas
Imp 999 e Imp 1010 también es superior al 99% (0,9949). La
homología entre cepas francesas y cepas norteamericanas es algo
superior al 96%.
La homología de todas estas cepas con PK/15 cae
hasta un valor comprendido entre el 75 y el 76%.
De esto se deduce que las cepas de acuerdo con
la invención son representativas de un nuevo tipo de circovirus
porcino, distinto del tipo representado por la cepa PK/15. Este
nuevo tipo, aislado de cerdos que presentan el síndrome PMWS, se
denomina circovirus porcino de tipo II, representando la PK/15 el
tipo 1. Las cepas que pertenecen a este tipo II presentan una
notable homogeneidad de secuencia de nucleótidos, incluso cuando se
han aislado de regiones geográficas muy alejadas.
\vskip1.000000\baselineskip
La secuencia de nucleótidos del aislado Imp.
1010 se ha considerado representativa de las otras cepas de
circovirus asociadas al síndrome de debilitamiento generalizado.
Esta secuencia se ha analizado con más detalle con ayuda del
algoritmo BLASTX (Altschul et al., J. Mol. Biol. 1990. 215.
403-410) y de una combinación de programas del
conjunto de programas MacVector 6.0 (Oxford Molecular Group, Oxford
OX4 4GA, UK). Ha sido posible detectar 4 marcos abiertos de lectura
(o MAL) de un tamaño superior a 20 aminoácidos en esta secuencia
(genoma circular). Estos 13 MAL son los siguientes:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Las posiciones de inicio y de fin de cada MAL se
refieren a la secuencia presentada en la figura Nº 4 (SEC ID Nº 4),
del genoma de la cepa 1010. Los límites de los MAL 1 a 13 son
idénticos para la cepa 999. También lo son para las cepas
1011-48121 y 1011-48285, salvo para
los MAL 3 y 13:
\vskip1.000000\baselineskip
MAL3 | 1432-1539, sentido, 108 nt, 35 aa |
MAL13 | 314-1377, antisentido, 705 nt, 234 aa. |
\vskip1.000000\baselineskip
De los 13 MAL, 4 presentan una homología
significativa con MAL análogos situados en el genoma del virus
clonado PCV PK-15. Se ha analizado cada uno de los
marcos abiertos de lectura presentes en el genoma de todos los
aislados de circovirus asociados al síndrome de debilitamiento
generalizado. Estos 4 MAL son los siguientes:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Las posiciones de inicio y de fin de cada MAL se
refieren a la secuencia presentada en la figura Nº 4 (SEC ID Nº 4).
El tamaño del MAL (en nucleótidos = nt) incluye el codón de
terminación.
La comparación entre la organización genómica de
los aislados PCV Imp. 1010 y PCV PK-15 ha permitido
la identificación de 4 MAL conservados en el genoma de los dos
virus. La tabla a continuación presenta los grados de homología
observados:
La mayor identidad de secuencia se ha observado
entre el MAL4 Imp. 1010 y el MAL1 PK-15 (86% de
homología). Siendo esto esperado en la medida en que esta proteína
está implicada probablemente en la replicación del ADN viral y es
esencial para la replicación viral (Meehan et al., J. Gen.
Virol. 1997. 78. 221-227; Mankertz et al.,
J. Gen. Virol. 1998. 381-384).
La identidad de secuencia entre el MAL13 Imp.
1010 y el MAL2 PK-15 es menor (66,4% de homología),
pero cada uno de estos dos MAL presenta una región básica
N-terminal muy conservada, que es idéntica a la
región N-terminal de la proteína estructural mayor
del circovirus aviar CAV (Meehan et al., Arch. Virol. 1992.
124. 301-319). Se observan mayores diferencias
entre MAL7 Imp. 1010 y MAL3 PK-15 y entre MAL10 Imp.
1010 y MAL4 PK-15. En cada caso, existe una
deleción de la región C-terminal de los MAL7 y MAL10
del aislado Imp. 1010 cuando se les compara con los MAL3 y MAL4 de
PCV PK-15. La mayor homología de secuencia se
observa a nivel de las regiones N-terminales de
MAL7/MAL3 (61,5% de homología a nivel de la envuelta) y de
MAL10/MAL4 (83% de homología a nivel de la envuelta).
Parece que la organización genómica del
circovirus porcino es bastante compleja como resultado de la extrema
compacidad de su genoma. La proteína estructural mayor es
probablemente el resultado de un corte y empalme entre varios
marcos de lectura situados en la misma hebra del genoma del
circovirus porcino. Por lo tanto, puede considerarse que cualquier
marco abierto de lectura (MAL1 a MAL13) tal como se ha descrito en
la tabla anterior, puede representar toda o parte de un proteína
antigénica codificada por el circovirus porcino de tipo II y es por
lo tanto potencialmente un antígeno utilizable para el diagnóstico
específico y/o para la vacunación. La invención se refiere por lo
tanto a cualquier proteína que comprende al menos uno de estos MAL.
Preferiblemente, la invención se refiere a una proteína formada
esencialmente por los MAL4, MAL7, MAL10 o MAL13.
El plásmido pGEM-7/8 que
contiene el genoma completo (forma de replicación) del aislado
Imp.999 se ha transfectado en células PK/15 de acuerdo con la
técnica descrita por Meehan B. et al., (Characterization of
viral DNAs from cells infected with chicken anemia agent: sequence
analysis of the cloned replicative form and transfection
capabilities of cloned genome fragments. Arch. Virol. 1992. 124.
301-319). El análisis por inmunofluorescencia
(véase el ejemplo 4) realizado en el primer paso después de la
transfección en células PK/15 no contaminadas ha demostrado que el
plásmido del clon pGEM7/8 era capaz de inducir la producción de
virus PCV infecciosos. La disponibilidad de un clon que contiene un
material genético de PCV infeccioso permite cualquier manipulación
útil sobre el genoma viral para producir virus PCV modificados
(atenuados en el cerdo o defectivos) utilizables para la producción
de vacunas atenuadas o recombinantes o para la producción de
antígenos para kits de diagnóstico.
El cultivo de las células PK/15 no contaminadas
y la multiplicación viral se realizan de acuerdo con las mismas
modalidades que en el ejemplo 1. Las células infectadas se recogen
después de una tripsinización después de 4 días de incubación a
37ºC y se numeran. El siguiente paso se inocula con 400.000 células
infectadas por ml.
Al final del cultivo viral, las células
infectadas se recogen y se lisan mediante ultrasonidos (Branson
Sonifier) o con ayuda de un triturador coloidal del tipo
rotor-estator (Ultra Turrax, IKA). A continuación,
la suspensión se centrifuga a 3700 g durante 30 minutos. La
suspensión viral se inactiva con el 0,1% de etilenimina durante 18
horas a +37ºC o con el 0,5% de beta-propiolactona
durante 24 horas a +28ºC. Si el título del virus antes de la
inactivación es insuficiente, la suspensión viral se concentra
mediante ultrafiltración utilizando una membrana con un umbral de
corte de 300 kDa (Millipore PTMK300). La suspensión viral inactivada
se conserva a +5ºC.
La vacuna se prepara de acuerdo con la siguiente
fórmula:
- -
- suspensión de circovirus porcino inactivado: 250 ml
- -
- Montanide® ISA 70 (SEPPIC): 750 ml
La fase acuosa y la fase oleosa se esterilizan
por separado mediante filtración. La emulsión se prepara mediante
mezcla y homogeneización de los ingredientes con ayuda de un
emulsor con turbina Silverson.
Una dosis de vacuna contiene aproximadamente
10^{7,5} DICT50. El volumen de una dosis de vacuna es de 0,5 ml
para administración por vía intradérmica y de 2 ml para
administración por vía intramuscular.
La vacuna se prepara de acuerdo con la siguiente
fórmula:
- -
- suspensión de circovirus porcino inactivado: 200 ml
- -
- Dehymuls HRE 7 (Henkel): 60 ml
- -
- Radia 7204 (Oleofina): 740 ml
La fase acuosa y la fase oleosa se esterilizan
por separado mediante filtración. La emulsión se prepara mediante
mezcla y homogeneización de los ingredientes con ayuda de un emulsor
con turbina Silverson.
Una dosis de vacuna contiene aproximadamente
10^{7,5} DICT50. El volumen de una dosis de vacuna es 2 ml para
administración por vía intramuscular.
<110> MERIAL
\hskip1.05cmUniversidad de Sskatchewan
\hskip1.05cmUniversidad de Belfast
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Nuevos circovirus porcinos, vacunas
y reactivos de diagnóstico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> Circovirus porcinos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<140> PCT/FR98/02107
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
10-01-1998
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> FR 9800873
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
22-01-1998
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> FR 9803707
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
20-03-1998
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> FR 9712382
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
03-10-1997
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn Ver. 2.0
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1767
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Circovirus porcino
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1767
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Circovirus porcino
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1768
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Circovirus porcino
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1768
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Circovirus porcino
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1759
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Circovirus porcino
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Circovirus porcino
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (21)
1. Método de diagnóstico de la infección por un
circovirus porcino de tipo II, responsable en el cerdo del síndrome
de debilitamiento generalizado posterior al destete (PMWS), método
en el que se ponen en contacto una muestra de fluido fisiológico o
una extracción de tejido de un cerdo y un reactivo de diagnóstico
específico del circovirus de tipo II y se revela la posible
presencia de antígeno, anticuerpo o ácido nucleico específico del
circovirus porcino de tipo II, en esta muestra o extracción.
2. Método de acuerdo con la reivindicación 1,
caracterizado porque el reactivo de diagnóstico comprende al
menos una secuencia de ADN que forma una sonda o un cebador
específico del circovirus porcino de tipo II.
3. Método de acuerdo con la reivindicación 1,
caracterizado porque el reactivo de diagnóstico comprende la
secuencia SEC ID Nº 6.
4. Método de acuerdo con la reivindicación 1,
caracterizado porque el reactivo de diagnóstico comprende al
menos un fragmento de la secuencia SEC ID Nº 6, permitiendo este
fragmento la formación de una sonda o un cebador específico del
circovirus porcino de tipo II.
5. Método de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, caracterizado porque el método se
basa en una técnica de hibridación o de Reacción en Cadena de la
Polimerasa.
6. Método de acuerdo con la reivindicación 1,
caracterizado porque el reactivo comprende un antígeno
específico del circovirus porcino de tipo II.
7. Método de acuerdo con la reivindicación 6,
caracterizado porque el reactivo comprende un epítopo o un
polipéptido específico del circovirus porcino de tipo II,
codificado por un fragmento de la secuencia SEC ID Nº 6.
8. Método de acuerdo con la reivindicación 6 ó
7, caracterizado porque el antígeno, epítopo o polipéptido
permite detectar anticuerpos en la muestra o extracción, siendo
estos anticuerpos específicos del circovirus porcino de tipo
II.
II.
9. Método de acuerdo con la reivindicación 1,
caracterizado porque el reactivo comprende un anticuerpo
específico de un antígeno del circovirus porcino de tipo II.
10. Método de acuerdo con la reivindicación 1,
caracterizado porque se utiliza un reactivo que comprende un
anticuerpo específico del circovirus porcino de tipo II y un
reactivo que comprende un antígeno específico del circovirus
porcino de tipo II.
11. Método de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 6 a 10, caracterizado porque se aplica un
método de tipo Transferencia de Western, inmunofluorescencia, ELISA
o inmunocromatografía.
12. Método de acuerdo con la reivindicación 11,
caracterizado porque se aplica un método de ensayo indirecto,
de competición o de desplazamiento.
13. Preparación aislada de anticuerpos
específicos del circovirus porcino de tipo II, responsable en el
cerdo del síndrome de debilitamiento generalizado posterior al
destete (PMWS), que puede obtenerse a partir de un circovirus
porcino de tipo II o de un fragmento antigénico de un circovirus
porcino de tipo II o a partir de un polipéptido codificado por un
fragmento de la secuencia SEC ID Nº 6.
14. Preparación de acuerdo con la reivindicación
13, caracterizada porque el circovirus porcino de tipo II se
selecciona entre los depositados en la ECACC con las referencias
V97100217, V97100218 y V97100219.
15. Preparación de acuerdo con la reivindicación
13 ó 14, caracterizada porque los anticuerpos son anticuerpos
policlonales o anticuerpos monoclonales.
16. Preparación de acuerdo con la reivindicación
13, 14 ó 15, caracterizada porque los anticuerpos comprenden
anticuerpos marcados.
17. Preparación de acuerdo con la reivindicación
16, caracterizada porque los anticuerpos se marcan con
peroxidasa o con un marcado de partículas, por ejemplo oro
coloidal.
18. Preparación antigénica aislada, que
comprende un antígeno específico del circovirus porcino de tipo II,
responsable en el cerdo del síndrome de debilitamiento generalizado
posterior al destete (PMWS), siendo este antígeno reconocido por
anticuerpos específicos del circovirus porcino de tipo II y
permitiendo diagnosticar la infección por un circovirus porcino de
tipo II.
\newpage
19. Kit para el diagnóstico de la infección por
un circovirus porcino de tipo II responsable en el cerdo del
síndrome de debilitamiento generalizado posterior al destete (PMWS),
que comprende al menos un anticuerpo y/o antígeno
tal(es) como se ha(n) definido en una cualquiera de las reivindicaciones 13 a 18.
tal(es) como se ha(n) definido en una cualquiera de las reivindicaciones 13 a 18.
20. Kit de acuerdo con la reivindicación 19,
caracterizado porque comprende los medios para realizar un
método de diagnóstico de tipo Transferencia de Western,
inmunofluorescencia, ELISA o inmunocromatografía.
21. Kit de acuerdo con la reivindicación 20,
caracterizado porque comprende los medios para realizar un
método de ensayo indirecto, de competición o de desplazamiento.
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