ES2271970T3 - Matriz de suministro transdermico de farmacos para coadministrar estradiol y otro esteroide. - Google Patents
Matriz de suministro transdermico de farmacos para coadministrar estradiol y otro esteroide. Download PDFInfo
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Abstract
UN PARCHE TRANSDERMICO TIPO MATRICIAL, PARA COADMINISTRAR ESTRADIOL Y OTRO ESTEROIDE, CARACTERIZADO PORQUE LA MATRIZ ESTA COMPUESTA POR UN ADHESIVO PIEZOSENSIBLE DE COPOLIMERO ACRILICO QUE CONTIENE N - VINIL - 2 - PIRROLIDONA, ESTRADIOL, EL OTRO ESTEROIDE Y OPTATIVAMENTE UN REFORZADOR DE LA PERMEABILIDAD, SIENDO LOS FLUJOS RESPECTIVOS DE ESTRADIOL Y DEL OTRO ESTEROIDE A PARTIR DE LA MATRIZ INDEPENDIENTES DE LAS CONCENTRACIONES RESPECTIVAS DEL OTRO ESTEROIDE Y ESTRADIOL EN LA MATRIZ.
Description
Matriz de suministro transdérmico de fármacos
para coadministrar estradiol y otro esteroide.
Esta invención pertenece al campo del suministro
transdérmico de fármacos. Más particularmente, se refiere a un
parche transdérmico de tipo matricial para coadministrar estradiol y
otro esteroide en el que el flujo de cada esteroide a partir de la
matriz es independiente de la concentración del otro en la
matriz.
Los parches transdérmicos de tipo matricial son
aquellos en los que el fármaco está contenido y se libera a partir
de una matriz polimérica. La matriz está hecha típicamente de un
adhesivo sensible a la presión y define la superficie basal del
parche (es decir, la superficie fijada a la piel). Mientras que se
puede suministrar más de un fármaco a partir de tal matriz, los
respectivos flujos de los fármacos individuales a partir de la
matriz dependen normalmente de la concentración del otro fármaco o
fármacos en el adhesivo sensible a la presión. Esto se debe a que la
concentración de cada fármaco en la matriz afecta a la solubilidad
del otro fármaco o fármacos en el adhesivo sensible a la
presión.
La patente EPA 89310350.7 (publicada el 1 de
abril de 1990) describe un parche transdérmico de tipo matricial
para administrar estradiol y/o ésteres de estradiol. El componente
adhesivo sensible a la presión del parche es un copolímero de
acrilato de 2-etilhexilo (EHA) y
N-vinil-2-pirrolidona
(NVP). Se dice que este copolímero proporciona un medio para
mantener una concentración relativamente elevada de estradiol en la
matriz sin que se dé la cristalización del estradiol. Este adhesivo
copolimérico que contiene NVP utiliza dos monómeros con proporciones
de reactividad muy diferentes, de modo que para todos los propósitos
prácticos, es probable que el polímero tenga una estructura de
"copolímero de bloques", con dominios de cadenas de NVP y EHA
de distinta longitud. Más allá de la sugerencia de que los ésteres
de estradiol pueden usarse como un fármaco, esta solicitud no
proporciona ninguna sugerencia o datos en referencia a la inclusión
de un segundo esteroide en la matriz.
Las patentes WO 96/03131, WO 97/03629 y DE
19629468 también se conocen parches transdérmicos para coadministrar
estradiol y otro esteroide.
La invención es un parche transdérmico para
administrar estradiol y otro esteroide como se define en la
reivindicación 1, en el que la capa de la matriz comprende
monooleato de sorbitano como un potenciador de la permeación
cutánea.
En el parche de la invención, el flujo de tal
otro esteroide a partir de la capa de la matriz es independiente de
la concentración de estradiol en la capa de la matriz y el flujo de
estradiol a partir de la capa de la matriz es independiente de la
concentración del otro esteroide en la capa de la matriz.
El parche de la invención puede usarse para
proporcionar terapia de sustitución hormonal a una mujer en
necesidad de tal terapia que comprenda la aplicación del parche a la
piel de dicha mujer.
Las figuras 1-12 son gráficos de
datos de flujo cutáneo in vitro descritos en los ejemplos que
siguen.
Como se usa en este documento, el termino
"transdérmico" se refiere a administración percutánea y
transmucosa (por ejemplo transbucal), es decir, el paso del fármaco
por difusión a través de piel o mucosas intactas a la
circulación.
El término "otro esteroide" se refiere a un
esteroide distinto al estradiol o a un éster de estradiol. En el
parche de la invención, este otro esteroide se selecciona entre
progesterona, acetato de noretindrona, noretindrona, desogestrel,
gestrodeno, norgestrel, levo-norgestrel,
testosterona, metiltestosterona y androsteínadiona.
El término "flujo" se refiere a la tasa de
liberación in vitro de esteroide por unidad de área como se
mide usando el procedimiento descrito en los ejemplos que
siguen.
El término "independiente" se refiere a que
el flujo de cada esteroide a partir de la matriz no varía
significativamente según varía la concentración del otro esteroide
en la matriz. Normalmente, la variación en el flujo, en caso de
haberla, estará en el intervalo de \pm 35%.
El componente de adhesivo sensible a la presión
de la matriz es un copolímero acrílico que contiene NVP. El NVP
constituye 5 a 50% en moles comprendiendo otros monómeros acrílicos
40 a 95% en moles. Otros monómeros que se usan normalmente en
adhesivos copoliméricos acrílicos se describen en la sección de
antecedentes, anteriormente indicados. La patente EPA 89310350.7 por
ejemplo describe un copolímero de NVP y EHA. El EHA constituye 45 a
80% en moles, preferiblemente 55 a 70% en moles del copolímero,
mientras que el NVP constituye 20 a 55% en moles, preferiblemente 30
a 45% en moles del copolímero.
El estradiol está presente en la matriz a
aproximadamente 1 a 20% en peso, preferiblemente aproximadamente 2 a
12% en peso de la matriz. El otro esteroide constituirá normalmente
1 a 20% en peso de la matriz, dependiendo del esteroide particular
implicado. Por ejemplo, cuando el otro esteroide es acetato de
noretindrona, este constituirá normalmente 10 a 8% en peso de la
matriz y cuando el otro esteroide es testosterona, constituirá
normalmente 1 a 10% en peso de la matriz. Aunque el mecanismo
preciso por el cual el flujo de estradiol es independiente de la
concentración del otro esteroide en la matriz (y viceversa) no se
conoce, es posible que la estructura de "copolímero de bloque"
de los copolímeros acrílicos que contienen NVP pueda dar como
resultado la división selectiva de cada esteroide en un dominio de
bloque específico y la liberación a partir de ese dominio
independiente del otro esteroide.
Además del copolímero y los esteroides, la
matriz también contiene monooleato de sorbitano como un potenciador
de la permeación cutánea. Otros aditivos convencionales que se usan
en parches de tipo matricial también pueden incluirse en la matriz.
Tales aditivos incluyen, sin limitación, agentes de pegajosidad,
cargas u otros aditivos que afecten a las propiedades adhesivas de
la matriz y aditivos tales como glicerina, que reducen la irritación
cutánea, y aditivos que afecten a la solubilidad de los esteroides
en el copolímero.
La matriz puede formularse mezclando el adhesivo
(que se obtiene normalmente en disolución), estradiol, otro
esteroide, potenciador de la permeación y otros aditivos (si se
desea) en proporciones apropiadas, colando la mezcla en un sustrato
(por ejemplo un revestimiento de liberación), secando la capa colada
para eliminar el disolvente y laminar una capa de refuerzo sobre la
matriz polimérica seca. La capa de refuerzo será normalmente
oclusiva. Los materiales del revestimiento de liberación y de la
capa de refuerzo son bien conocidos en la técnica de parches
transdérmicos.
La invención se ilustra adicionalmente mediante
los ejemplos que siguen. No se pretende que estos ejemplos limiten
la invención de ninguna manera.
Se fabricaron laminados de matriz que contenían
acetato de noretindrona (NEA, Schering AG, Berlín, Alemania) como se
indica a continuación. El porcentaje de adhesivo sólido de un
adhesivo copolimérico acrílico EHA/NVP (TSR Adhesive, Sekisui
Chemical Co., Japón) se determinó pesando una pequeña cantidad de
solución adhesiva en un plato de aluminio previamente pesado. El
disolvente se evaporó secando durante toda la noche en un horno de
convección a 70ºC y se volvió a pesar el plato. El porcentaje de
sólidos se calculó dividiendo el peso seco por el peso húmedo y
multiplicando por 100. Se pesaron cantidades conocidas de solución
de adhesivo TSR en botellas de vidrio. A partir del peso de la
solución de adhesivo y del porcentaje de adhesivo sólido se calculó
la cantidad de adhesivo en la solución. Se añadieron cantidades
apropiadas de NEA y de potenciador de la permeación monooleato de
sorbitano (ARLACEL 80, ICI Americas, Wilmington, Delaware) para dar
varias composiciones como se muestra en la Tabla I que sigue
(Formulaciones 1-3), calculándose todos los
porcentajes sobre la base del peso seco. Cada botella de vidrio se
tapó entonces de forma hermética, se selló con película de
laboratorio (PARAFILM "M", American National Can Company,
Greenwich, CT) y se dejó en rotación toda la noche.
Posteriormente se dispensaron aproximadamente 8
ml de la solución de fármaco/monooleato de sorbitano/TSR sobre un
revestimiento de liberación (revestimiento de liberación de
poliéster siliconizado, Release Technologies, Inc. W. Chicago,
Illinois) y se colaron con un cuchillo de colado con un hueco de
0,25 mm (10 mil). Esta mezcla de colado se secó en un horno de
convección a 70ºC durante 15 minutos para dar una película seca de
aproximadamente 0,05 mm (2,0 mil) de espesor. Entonces se laminó una
película de refuerzo (película de refuerzo de polietileno, 3M Corp.,
St. Paul, Minnesota) sobre la capa adhesiva seca utilizando un
rodillo de goma. Este laminado de matriz se usó para mediciones
cutáneas in vitro que se llevaron a cabo como se describe a
continuación.
Se realizaron estudios cutáneos in vitro
usando celdas de difusión de Franz modificadas. Se cortó membrana
epidérmica humana separada por calor en tiras rectangulares. Los
laminados de matriz (descritos anteriormente) se cortaron en
perforaciones circulares de 0,71 cm^{2} de área superficial.
Después de que retirar y desechar el revestimiento de liberación,
las perforaciones circulares se laminaron sobre la superficie del
estrato córneo de la membrana epidérmica. Cada porción del sándwich
compuesto por la perforación de matriz y piel se cargó entre los
compartimentos donante y receptor de una celda de difusión, con el
lado epidérmico orientado hacia el compartimento receptor, y se
sujetó en su lugar con unas abrazaderas. El compartimento receptor
se rellenó entonces con una disolución de azida sódica al 0,02% y la
celda se colocó en un baño de agua circulante calibrado para
mantener la temperatura de la superficie de la piel a 32 \pm 1ºC.
A intervalos predeterminados se recogía todo el contenido del
compartimento receptor para cuantificar el fármaco y el
compartimento receptor se rellenaba entonces con medio receptor
nuevo, teniendo cuidado de eliminar cualquier burbuja de aire en la
interfaz piel/disolución. La cantidad acumulada de fármaco permeada
por unidad de área en un tiempo dado t(Q_{t},
\mug/cm^{2}) se determinó de la siguiente forma:
Q_{t} =
\sum\limits^{t}_{n=0} (C_{n} *
V)/A
en la que C_{n} es la
concentración (mg/ml) de fármaco en la muestra de receptor para el
correspondiente tiempo de muestreo, V es el volumen de líquido en la
cámara receptora (\approx 6,3 cm^{3}) y A es el área de difusión
de la celda (0,64 cm^{2}). La pendiente de la línea que mejor se
adapte al gráfico de Q_{t} frente a t da el flujo en estado
estacionario (J_{SS}, \mug/cm^{2}/h); el punto de intersección
de esta línea con el eje del tiempo da el tiempo de retraso
(t_{L},
h).
Se evaluaron tres formulaciones (Tabla I,
Formulaciones 1-3) con carga progresivamente en
aumento de NEA (1,5-6% p/p) junto con una
formulación de control para determinar el flujo cutáneo in
vitro como se ha descrito anteriormente sobre pieles del mismo
donante. El propósito de la formulación de control fue minimizar la
variabilidad inherente entre las pieles y permitir una mejor
deducción de las tendencias en los resultados. Los flujos de fármaco
in vitro de las formulaciones de prueba se normalizaron sobre
la base de una piel individual en relación a los flujos de la
formulación de control que se condujo simultáneamente sobre las
mismas pieles donantes en este y posteriores experimentos. Este
procedimiento de normalización minimizó de forma significativa la
variabilidad entre pieles y permitió una fácil comparación de
rendimiento de flujo relativo entre las formulaciones en este y
posteriores experimentos. Los flujos de NEA obtenidos para las
Formulaciones 1-3 y para la formulación de control
se resumen en la Tabla II. Las proporciones de flujo normalizadas se
representan gráficamente en la Figura 1.
Como se puede ver a partir de los datos
presentados en la Figura 1, un incremento de 4 veces en la carga de
fármaco da como resultado un incremento proporcional de 4 veces en
el flujo. Los flujos normalizados in vitro de NEA por lo
tanto presentan una dependencia lineal y de Fick de la concentración
de fármaco entre cargas de 1,5-6% p/p en matrices
hechas con el adhesivo copolimérico acrílico TSR que contiene
NVP.
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepararon laminados de matriz que contenían
estradiol (E2, Berlichem, Wayne, Nueva Jersey) como se ha descrito
anteriormente en el Ejemplo 1 (A) excepto porque se usó E2 como
fármaco en lugar de NEA. Se disolvieron previamente las cantidades
necesarias de E2 en alcohol isopropílico (IPA) y se añadieron a la
solución de colado para dar varias composiciones como se muestra en
la Tabla III que sigue (Formulaciones 5-7).
Estas formulaciones se evaluaron para determinar
el flujo cutáneo in vitro junto con una formulación de
control E2 (Formulación 8). Los flujos cutáneos in vitro para
las tres formulaciones de prueba y la formulación de control sobre
las mismas pieles se presentan en la Tabla IV que sigue. Las
proporciones de flujo normalizadas se representan gráficamente en la
figura 2.
Como se puede ver a partir de los datos
presentados en la Figura 2, un incremento de 3 veces en la carga de
fármaco da como resultado un incremento proporcional de 3 veces en
el flujo. Los flujos normalizados in vitro de E2 por lo tanto
presentan una dependencia lineal y de Fick de la concentración de
fármaco entre cargas de 3-9% p/p en matrices hechas
con el adhesivo copolimérico acrílico TSR que contiene NVP.
\newpage
Se prepararon matrices que contenían tanto E2
como NEA en combinación como se ha descrito anteriormente en el
Ejemplo 1(A). Se disolvieron previamente las cantidades
necesarias de E2 en alcohol isopropílico (IPA) y se añadieron a la
disolución de colado junto con NEA y monooleato de sorbitano para
dar varias composiciones como se muestra en la Tabla V que sigue
(Formulaciones 9-17).
Estas formulaciones se evaluaron para determinar
el flujo cutáneo in vitro junto con formulaciones de control
de NEA y E2 (Formulaciones 4 y 8, respectivamente) descritas
anteriormente en los Ejemplos 1(A) y 1(B)
respectivamente. Los flujos cutáneos in vitro para las
formulaciones de prueba y para las formulaciones de control sobre
las mismas pieles se presentan en la Tabla VI, Las proporciones de
flujo de NEA y E2 normalizadas se representan gráficamente en las
Figuras 3 y 4, respectivamente.
Como se puede ver a partir de los datos
presentados en la Figura 3, un incremento de 4 veces en la carga de
NEA da como resultado un incremento proporcional de 4 veces en el
flujo de NEA. De forma similar, un incremento de 3 veces en la carga
de E2 da como resultado un incremento proporcional de 3 veces en el
flujo de E2. (Figura 4). Los flujos normalizados in vitro de
NEA y E2 por lo tanto presentan una dependencia lineal y de Fick de
la concentración de fármaco en presencia del contrario en matrices
hechas con el adhesivo copolimérico acrílico TSR que contiene NVP
sobre el intervalo de cargas de fármaco investigado
(0-6% de carga de NEA y 0-9% de
carga de E2).
La pendiente de cada una de las tres rectas de
regresión lineal (datos de flujos de NEA en presencia de E2
normalizados, Figura 3) se compararon estadísticamente con la
pendiente de la recta de regresión lineal para las formulaciones de
NEA sin E2 usando una prueba de la t de Student. Los resultados
indicaron que no había diferencia estadísticamente significativa
(p>0,10) en las pendientes entre cada una de las tres rectas de
regresión lineal (para formulaciones de NEA que contenían E2) en
relación a la pendiente de la recta de regresión lineal para las
formulaciones de NEA sin E2. Esto confirma que la presencia de E2 en
la matriz no afecta al flujo de NEA en sistemas hechos con el
adhesivo copolimérico acrílico TSR que contiene NVP.
La pendiente de cada una de las tres rectas de
regresión lineal (datos de flujos de E2 en presencia de NEA
normalizados, Figura 4) se compararon estadísticamente con la
pendiente de la recta de regresión lineal para las formulaciones de
E2 sin NEA usando una prueba de la t de Student. Los resultados
indicaron que no había diferencia estadísticamente significativa
(p>0,10) en las pendientes entre cada una de las tres rectas de
regresión lineal (para formulaciones de E2 que contenían NEA) en
relación a la pendiente de la recta de regresión lineal para las
formulaciones de E2 sin NEA. Esto confirma que la presencia de NEA
en la matriz no afecta al flujo de E2 en sistemas hechos con el
adhesivo copolimérico acrílico TSR que contiene NVP.
Los datos anteriores muestran claramente que en
sistemas preparados con el adhesivo copolimérico acrílico TSR que
contiene NVP sobre el intervalo de cargas de fármaco investigado
(0-6% de carga de NEA y 0-9% de
carga de E2), el flujo de cada esteroide depende únicamente de su
concentración y no se ve afectado por la presencia del otro
esteroide.
Se prepararon matrices de NEA solo como se ha
descrito en el Ejemplo 1(A), excepto porque el adhesivo usado
fue DUROTAK 87-2516 (un adhesivo copolimérico
acrílico que contiene EHA, acetato de vinilo y acrilato de
hidroxietilo, National Starch and Chemical Co, Bridgewater, NJ) Este
adhesivo no contiene
N-vinil-2-pirrolidona.
Se disolvieron las cantidades necesarias de NEA y monooleato de
sorbitano en la disolución de adhesivo para dar varias composiciones
finales como se muestra en la Tabla VII que sigue (Formulaciones
1-4).
Estas formulaciones se evaluaron para determinar
el flujo cutáneo in vitro junto con una formulación de
control (Formulación 5). Los flujos cutáneos in vitro para
las tres formulaciones de prueba y la formulación de control sobre
las mismas pieles se presentan en la Tabla VIII a que sigue. Las
proporciones de flujo normalizadas se representan gráficamente en la
Figura 5.
Como se puede ver a partir de los datos
presentados en la Figura 5, un incremento de 4 veces en la carga de
fármaco da como resultado un incremento proporcional de 4 veces en
el flujo. Los flujos normalizados in vitro de NEA por lo
tanto presentan una dependencia lineal y de Fick de la concentración
de fármaco entre cargas de 2-8% p/p en matrices
hechas con el adhesivo copolimérico acrílico DUROTAK
87-2516.
Se prepararon laminados de matriz que contenían
E2 como se ha descrito anteriormente en el Ejemplo 1(A)
excepto porque se usó E2 como el fármaco en lugar de NEA y DUROTAK
87-2516 se usó como adhesivo en lugar de TSR. Se
disolvieron previamente las cantidades necesarias de E2 en IPA y se
añadieron a la disolución de colado para dar varias composiciones
como se muestra en la Tabla IX que sigue (Formulaciones
6-8)
Estas formulaciones fueron evaluadas para
determinar el flujo cutáneo in vitro junto con una
formulación de control de E2 (Formulación 5). Los flujos cutáneos
in vitro de las tres formulaciones de prueba y la formulación
de control sobre las mismas pieles se presentan en a Tabla X. Las
proporciones de flujo normalizadas se representan gráficamente en la
Figura 6.
Como se puede ver a partir de los datos
presentados en la Figura 6, los flujos normalizados in vitro
de E2 aumentan linealmente con concentraciones de fármaco entre
1-4% p/p de carga en matrices hechas con adhesivo
DUROTAK 87-2516.
Se prepararon laminados de matriz que contenían
tanto E2 como NEA en combinación como se ha descrito anteriormente
en el Ejemplo 1(A) excepto porque el adhesivo usado fue
DUROTAK 87-2516 en lugar de TSR. Se disolvieron
previamente las cantidades necesarias de E2 en alcohol isopropílico
(IPA) y se añadieron a la disolución de colado junto con NEA y
monooleato de sorbitano para dar varias composiciones como se
muestra en la Tabla XI que sigue (Formulaciones
9-20).
Estas formulaciones se evaluaron para determinar
el flujo cutáneo in vitro junto con una formulación de
control (Formulación 5) descrita anteriormente en los Ejemplos
3(A) y 3(B). Los flujos cutáneos in vitro para
las formulaciones de prueba y para las formulaciones de control
sobre las mismas pieles se presentan en la tabla XII. Las
proporciones de flujo normalizadas de NEA y E2 se representan
gráficamente en las figuras 7 y 8, respectivamente.
Como se puede ver a partir de los datos en la
Figura 7, un aumento de 4 veces en la carga de NEA no dio como
resultado un aumento proporcional de 4 veces en el flujo de NEA. De
forma similar, un aumento de 4 veces en la carga de E2 no dio como
resultado un aumento proporcional de 4 veces en el flujo de E2
(Figura 8). Los flujos in vitro normalizados de NEA y E2 por
lo tanto no mostraban dependencia lineal y de Fick de la
concentración de esteroide en presencia del contrario en matrices
hechas con el adhesivo DUROTAK 87-2516 sobre el
intervalo de cargas de fármaco investigado (0-8% de
carga de NEA y 0-4% de carga de E2).
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
\newpage
Los datos anteriores muestran claramente que los
flujos de E2 y NEA in vitro se ven influenciados por la
presencia del contrario, no siguen las leyes de Fick de la difusión
y no son proporcionales a la concentración de esteroide en los
laminados de matriz hechos con adhesivo DUROTAK
87-2516 sobre el intervalo de concentraciones de
esteroide investigado (carga de NEA 0-8% y carga de
E2 0-4%). El flujo independiente de los dos
esteroides en presencia del contrario y la proporcionalidad en el
flujo cutáneo como una función del esteroide en la matriz es
aparentemente única para adhesivo copolimérico acrílico que contiene
NVP.
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepararon matrices sólo de testosterona (TS,
Upjohn Company, Kalamazoo, MI) como se ha descrito en el Ejemplo
1(A) excepto porque el esteroide usado fue TS en lugar de
NEA. Se disolvieron previamente las cantidades necesarias de TS en
IPA y se añadieron a la disolución de colado para dar varias
composiciones como se muestra en la Tabla XIII que sigue
(Formulaciones 1-3).
\vskip1.000000\baselineskip
Estas formulaciones se evaluaron para determinar
el flujo cutáneo in vitro junto usando una formulación que
contenía TS como control (Formulación 4). Los flujos cutáneos in
vitro para las tres formulaciones de prueba y la formulación de
control sobre las mismas pieles se presentan en la tabla XIV. Las
proporciones de flujo normalizadas se representan gráficamente en la
Figura 9.
Como se puede ver a partir de los datos
presentados en la Figura 9, un incremento de 2 veces en la carga de
fármaco da como resultado un incremento proporcional de 2 veces en
el flujo. Los flujos normalizados in vitro de TS por lo tanto
presentan una dependencia lineal y de Fick de la concentración de
fármaco entre cargas de 2,5-5% p/p en matrices
hechas con el adhesivo TSR.
Se prepararon laminados de matriz que contenían
E2 como se ha descrito anteriormente en el Ejemplo 1 (A) excepto
porque se usó E2 como fármaco en lugar de NEA. Se disolvieron
previamente las cantidades necesarias de E2 en IPA y se añadieron a
la solución de colado para dar varias composiciones como se muestra
en la Tabla XV que sigue (Formulaciones 5-7).
Estas formulaciones se evaluaron para determinar
el flujo cutáneo in vitro junto con una formulación de
control E2 (Formulación 8). Los flujos cutáneos in vitro para
las tres formulaciones de prueba y la formulación de control sobre
las mismas pieles se presentan en la Tabla XVI. Las proporciones de
flujo normalizadas se representan gráficamente en la Figura 10.
Como se puede ver a partir de los datos
presentados en la figura 10, un incremento de 3,5 veces en la carga
de fármaco da como resultado un incremento proporcional de 3,5 veces
en el flujo. Los flujos normalizados in vitro de E2 por lo
tanto presentan una dependencia lineal y de Fick de la concentración
de fármaco entre cargas de 3-10,5% p/p en matrices
hechas con el adhesivo TSR.
Se prepararon matrices que contenían tanto E2
como TS en combinación como se ha descrito anteriormente en el
Ejemplo 1(A). Se disolvieron previamente las cantidades
necesarias de E2 y TS en alcohol isopropílico (IPA) y se añadieron a
la disolución de colado junto con monooleato de sorbitano para dar
varias composiciones como se muestra en la Tabla XVII que sigue
(Formulaciones 9-17).
Estas formulaciones se evaluaron para determinar
el flujo cutáneo in vitro junto con formulaciones de control
de TS y E2 (Formulaciones 4 y 8, respectivamente) descritas
anteriormente en los ejemplos 2(A) y 2(B)
respectivamente. Los flujos cutáneos in vitro para las
formulaciones de prueba y para las formulaciones de control sobre
las mismas pieles se presentan en la Tabla XVIII que sigue, Las
proporciones de flujo de TS y E2 normalizadas se representan
gráficamente en las Figuras 11 y 12, respectivamente.
Como se puede ver a partir de los datos
presentados en la Figura 11, un incremento de 2 veces en la carga de
TS da como resultado un incremento proporcional de 2 veces en el
flujo de TS. De forma similar, un incremento de 3,5 veces en la
concentración de E2 da como resultado un incremento proporcional de
3,5 veces en el flujo de E2 (Figura 12). Los flujos normalizados
in vitro de TS y E2 por lo tanto presentan una dependencia
lineal y de Fick de la concentración de esteroide en presencia del
contrario en matrices hechas con el adhesivo copolimérico acrílico
TSR que contiene NVP sobre el intervalo de cargas de esteroide
investigado (0-5% de TS y 0-10,5%
de E2).
La pendiente de cada una de las tres rectas de
regresión lineal (datos de flujos de TS en presencia de E2
normalizados, Figura 11) se compararon estadísticamente con la
pendiente de la recta de regresión lineal para las formulaciones de
TS sin E2 usando una prueba de la t de Student. Los resultados
indicaron que no había diferencia estadísticamente significativa
(p>0,10) en las pendientes entre cada una de las tres rectas de
regresión lineal (para formulaciones de TS que contenían E2) en
relación a la pendiente de la recta de regresión lineal para las
formulaciones de TS sin E2. Esto confirma que la presencia de E2 en
la matriz no afecta al flujo de TS en sistemas hechos con el
adhesivo copolimérico acrílico TSR que contiene NVP.
La pendiente de cada una de las tres rectas de
regresión lineal (datos de flujos de E2 en presencia de TS
normalizados, Figura 12) se compararon estadísticamente con la
pendiente de la recta de regresión lineal para las formulaciones de
E2 sin TS usando una prueba de la t de Student. Los resultados
indicaron que no había diferencia estadísticamente significativa
(p>0,10) en las pendientes entre cada una de las tres rectas de
regresión lineal (para formulaciones de E2 que contenían TS) en
relación a la pendiente de la recta de regresión lineal para las
formulaciones de E2 sin TS. Esto confirma que la presencia de TS en
la matriz no afecta al flujo de E2 en sistemas hechos con el
adhesivo copolimérico acrílico TSR que contiene NVP.
Los datos anteriores muestran claramente que
sobre el intervalo de concentraciones de esteroide investigado
(0-5% de carga de TS y 0-10,5% de
E2) los flujos in vitro de E2 y TS son independientes entre
sí, siguen las leyes de la difusión de Fick y son proporcionales a
la concentración de esteroide en los laminados de matriz hechos con
el adhesivo copolimérico acrílico TSR que contiene NVP. La
independencia de los flujos de los dos esteroides en presencia del
contrario y la proporcionalidad en el flujo cutáneo in vitro
como una función de la concentración de esteroide en la matriz de
nuevo parece ser única del adhesivo copolimérico acrílico que
contiene NVP.
\vskip1.000000\baselineskip
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(Tabla pasa a página
siguiente)
Claims (8)
1. Un parche transdérmico para administrar
estradiol y otro esteroide seleccionado entre progesterona, acetato
de noretindrona, noretindrona, desogestrel, gestrodeno, norgestrel,
levo-norgestrel, testosterona, metiltestosterona y
androsteíndiona, comprendiendo dicho parche:
a) una capa de revestimiento y
b) una capa de matriz que comprende:
- (i)
- un copolímero adhesivo sensible a la presión de N-vinil-2-pirrolidona y acrilato de 2-etilhexilo;
- (ii)
- estradiol; y
- (iii)
- dicho otro esteroide
en el que la capa de matriz
comprende adicionalmente (iv) monooleato de sorbitano como un
potenciador de la permeación cutánea, y en el que el flujo de dicho
otro esteroide a partir de la capa de matriz es independiente de la
concentración de estradiol en la capa de matriz y el flujo de
estradiol a partir de la capa de matriz es independiente de la
concentración del otro esteroide en la capa de
matriz.
2. El parche transdérmico de la reivindicación
1, en el que el acrilato de 2-etilhexilo constituye
el 45 al 80% en moles del copolímero y la
N-vinil-2-pirrolidona
constituye el 20 al 55% en moles del copolímero.
3. El parche transdérmico de la reivindicación
1, en el que el acrilato de 2-etilhexilo constituye
el 55 al 70% en moles del copolímero y la
N-vinil-2-pirrolidona
constituye el 30 al 45% en moles del copolímero.
4. El parche transdérmico de la reivindicación
1, en el que la concentración de estradiol en la capa de matriz es
de aproximadamente el 1 al 20% en peso y la concentración del otro
esteroide es de aproximadamente el 1 al 20%.
5. El parche transdérmico de la reivindicación
1, en el que el otro esteroide es acetato de noretindrona.
6. El parche transdérmico de la reivindicación
1, en el que el otro esteroide es testosterona.
7. El parche transdérmico de la reivindicación
5, en el que la concentración de estradiol en la capa de matriz es
del 2 a 12% en peso, la concentración de acetato de noretindrona en
la capa de matriz es del 1 al 8% en peso.
8. El parche transdérmico de la reivindicación
5, en el que la concentración de estradiol en la capa de matriz es
del 2 a 12% en peso, la concentración de testosterona en la capa de
matriz es del 1 al 8% en peso.
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