DE2730964C3 - Verfahren zur Herstellung von L-Lysin auf mikrobiologischem Wege - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von L-Lysin auf mikrobiologischem WegeInfo
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Description
Die essentielle Aminosäure L-Lysin stellt ein wertvolles
Arzneimittel bzw. einen wertvollen Zusatz zu Lebens- und Futtermitteln dar.
Zur Herstellung von L-Lysin auf mikrobiologischem Wege wurden bisher die nachstehenden Verfahren
vorgeschlagen: Verfahren unter Verwendung von Mutanten mit einem Bedarf an Homoserin (oder
Methionin und Threonin) (vgl. US-PS 2 979439) oder unter Verwendung von Mutanten mit einem NährjtoiYbedarf
an Threonin, Methionin, Arginin, Histidin. Leucin, Isoleucin, Phenylalanin, Cystin oder Cystein
(vgl. US-PS 3 700557); Verfahren unter Verwendung von Mutanten mit einer Resistenz gegen
Lysinanaloge (vgl. US-PS 3 707441), unter Verwendung von Mutanten, die zur Bildung von L-Lysin fähig
sind und resistent gegen Bacitracin, Penicillin G oder Polymyxin sind (vgl. US-PS 3687810); sowie Verfahren
unter Verwendung von Mutanten mit einem Nährstoffbedarf für Homoserin. Threonin, Threonin
und Methionin. Leucin, Isoleucin oder Gemische davon und einer Resistenz gegen Lysin, Threonin, Isoleucin
oder deren Analoge (vgl. US-PS 3 708395), und unter Verwendung von Mutanten mit einer Resistenz
gegen Lysinanaloge und einem Nährstoffbedarf an Serin, Prolin. Alanin, Nicotinamid, Nicotinsäure,
Pantothensäure. Thiamin. Guanin, Adenin, Hypoxanthin oder Vitamin B1, (vgl. US-PS 3825472).
Aus der DIZ-OS 253f999 ist ein Verfahren zur
biotechnischen Herstellung von L-Lysin durch Züchtung einer L-Lysin bildenden Mutante von coryneformen.
Glutaminsäure bildenden Bakterien in einem Nährmedium bekannt, das dadurch gekennzeichnet
ist. daß man als L-Lysin bildende Mutante einen Mikroorganismus der Art Brcvibactcrium aminogenes,
Brevibacterium divaricatum. Brevibacterium flavum.
Brcvihactcrium lactofcrmenlum. Brevibacterium roscuin.
BrcMhiitcriiim sacchamUticum. Firevibacteriiim
immiiriophilitim. ('orvnehactcrium ticctoacidophilum.
Comiebaclerium glutamicum, ("oryncbacterium
herailis. ('(imiehacterium liliiim. Corynchacteriiiin
ciillunae. Microbactcrium ammoniaphilum oder
Arlhrobacter sp. in einem ersten Nährmedium züchtet,
iliis -issimilicrbare Kohlenstoff- iiml Stickstoffciuellen
sowie 2 his I 5(1 ml Liter einer Kuliurhrühe Λ
enthält, die bei der Züchtung eines L-Leucin bildenden Mikroorganismus der Art Brevibacterium aminogenes,
Brevibacterium divaricatum, Brevibacterium flavum, Brevibacterium lactofermentum, Brevibacterium
roseum, Brevibacterium saccharolyticum, Brevibacterium immariophilium, Corynebacterium acetoacidophilum,
Corynebacterium glutamicum, Corynebacterium herculis, Corynebacterium lilium, Corynebacterium
callunae, Microbacterium ammoniaphilum oder Arthrobacter sp. in einem zweiten Nährmedium
erhalten worden ist.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, ein verbessertes
Verfahren zur Herstellung von L-Lysin unter Verwendung bestimmter Stämme der Gattung Corynebacterium
zu schaffen, die resistent sind gegen mindestens eine Verbindung aus der Gruppe der
Asparaginsäureanalogen und Sulfonamide (Sulfa-Arzneistoffe) und die eine merklich verbesserte Fähigkeit
zur Bildung von L-Lysin aufweisen. Diese Aufgabe wird durch die Erfindung gelöst. Die Erfindung
betrifft somit den in den Patentansprüchen gekennzeichneten Gegenstand.
Die Tatsache, daß unter Verwendung von Stämmen der Gattung Corynebacterium mit einer Resistenz gegen
mindestens eine Verbindung aus der Gruppe Asparaginsäureanaloge und Sulfonamide die Produktion
von L-Lysin auf mikrobiologischem Wege verbessert werden kann, ist bisher nicht beschrieben worden.
Beispiele für Asparaginsäureanaloge sind Asparaginsäurehydroxamat,
a-Methylasparaginsäure, /J-Methylasparaginsäure, Cysteinsulfinsäure, Difluorbernsteinsäure
und Hadacidin. Beispiele für Sulfonamide (Sulfa-Arzneistoffe) sind Sulfaguanidin.
Sulfadiazin, Sulfamethacin, Sulfamerazin, Sulfamethizol,
Sulfamethomidin, Sulfamethoxypyridazin, Sulfathiazol, Homosulfamin, Sulfadimethoxin, Sulfamethoxazol
und Sulfaisoxazol.
Corynebacterium glutamicum NRRL-B-8182 ist
ein Stamm mit einer Resistenz gegen Asparaginsäureanaloge, während Corynebacterium glutamicum
NRRL-B-8183 ein Stamm mit einer Resistenz gegen Sulfonamide ist. Der Stamm NRRL-B-8182 ist eine
Mutante. die auf folgende Weise erhalten wurde: Zellen von Corynebacterium glutamicum ATCC 21543
mit einer Fähigkeit zur Bildung von L-Lysin (Bedarf an Homoserin und Leucin und Resistenz gegen S-[ß-Aminoäthyl)-cystein;
vgl. CA-PS 939518) werden in einem 0,1 η Tris-Maleinsäure-Puffer vom pH-Wert
6,0 in einer Konzentration von 10" Zellen/ml suspendiert.
Diese Suspension wurde bis zu einer Endkonzciuration
von 0,2 mg/ml mit N-Methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidin versetzt und 30 Minuten bei Raumtemperatur
stehengelassen. Anschließend wurde die Suspension auf eine Agarplatte mit einem Minimalmedium der nachstehend angegebenen Zusammensetzung
mit einem Gehalt an 1 mg/ml Asparaginsäurehydroxamat, einem Asparaginsäureanalogen, ausgestrichen.
Der aus den wachsenden Kolonien ausgewählte Stamm unterscheidet sich klar vom Ausgangsstamm
ATCC 21 543 in bezug auf die Resistenz
gegen Asparaginsiiurchydroxaniat. Der Stamm
NRRL-B-SI 83 ist eine Mutante. die auf analoge
Weise erhalten wurde, wobei aber eine Agarplatte mit
einem Minimalmcdium mit einem Gehalt an I mg- nil
SulfiiMK'tliazin. einem Siilfonamid. einstelle von Asparaginsäurehydroxamat
verwendet wurde. Der erhaltene Stamm unterscheidet sich in be/im auf seine Re-
sistenz gegen Sulfamethazin und Sulfadiazin vom
Ausgangsstamm.
Das Minimalmedium der Agarplatte hatte folgende Zusammensetzung:
7H,Ö
//H1O
//H1O
Glucose
Ammoniumsulfat
KH1PO4
K1HPO4
MgSO4 · 7H1O
FeSO4 ·
MnSO4
Biotin
Vitamin Β,-hydrochlorid
Methionin
Threonin
Leucin
pH-Wert
0,5
0,3
0,15
0,05
0,05
g/dl
g/dl
g/dl
g/dl
g/dl
g/dl
g/dl
g/dl
g/dl
0,001 g/dl
0,001 g/dl
0,01 g/dl
0,001 g/dl
0,01 g/dl
100
1
1
50
20
200
7,2
μg/Liter
mg/Liter
mg/Liter
mg/Liter
mg/Liter
g/dl
mg/Liter
mg/Liter
mg/Liter
mg/Liter
g/dl
Die mikrobiologischen Eigenschaften von Corynebacterium
glutamicum sind in The Journal of General and Applied Microbiology, Bd. 18 (1967), S. 279 bis
301, beschrieben.
Im erfindungsgemäßen Verfahren können beliebige synthetische und natürliche Nährmedien verwendet
werden, die eine Kohlenstoffquelle, Stickstoffquelle, anorganische Verbindungen und andere
notwendige Nährstoffe enthalten. Beispiele für Kohlenstoffquellen sind Kohlenhydrate, wie Glucose,
Fructose, Sorbit, Mannit, Glycerin, Stärke, Stärkehydrolysate, Melassen und Endmelassen, Kohlenwasserstoffe,
wie n-Paraffine und Kerosin, organische Säuren, wie Essigsäure, Fumarsäure, Milchsäure,
Brenztraubensäure und Bernsteinsäure, und Alkohole, wie Methanol und Äthanol. Beispiele für Stickstoffquellen
sind Ammoniak, anorganische und organische Ammoniumsalze, wie Ammoniumchlorid,
Ammoniumsulfat, Ammoniumphosphat und Ammoniumacetat, Harnstoff, Amine und andere stickstoffhaltige
Verbindungen, wie Pepton, Fleischextrakt, Hefeextrakt, Maisquellflüssigkeit, Caseinhydrolysat,
Fischmehl, aufgeschlossenes Fischmehl, entfettete Sojabohnen, aufgeschlossene entfettete Sojabohnen,
Säurehydrolysate von Sojabohnenprotein, verschiedene Mikroorganismenzellen und durch Aufschließen
von Mikroorganismenzellen erhaltene Produkte. Beispiele für anorganische Verbindungen sind Kaliumdihydrogenphosphat,
Dikaliumhydrogenphosphat, Magnesiumsulfat, Natriumchlorid, Eisen(II)-sulfat, Mangansulfat und Calciumcarbonat. Sofern im erfindungsgemäßen
Verfahren Mikroorganismen mit einem Bedarf an speziellen Wuchsstoffen verwendet werden, so sind diese Wuchsstoffe in den entsprechenden
Mengen dem Medium zuzusetzen. In manchen Fällen werden diese Wuchsstoffe als Bestandteile
von natürlichen Produkten, beispielsweise zusammen mit der Stickstoffquclle, zugesetzt.
Die Produktivität an L-Lysin durch den erfindungsgemäß verwendeten Mikroorganismus läßt sich
weiter steigern, indem man eine Leucin-Gärflüssigkcit
zusetzt, wie in Beispiel 3 erläutert ist. In diesem Fall wird vorzugsweise eine Lcucin-Gärflüssigkcit in einer
Menge von 0,2 bis 15 Volumprozent, bezogen auf das Medium, zugegeben.
ferner läßt sich die Produktivität des crfindungsgemäß
verwendeten Mikroorganismus an L-Lysin durch Zugabe von verschiedenen anderen Zusätzen zum
Medium steigern, beispielsweise durch verschiedene Antibiotika, a-Aminobuttersäure, Cystein, Norleucin,
Leucin, Asparaginsäure und Glutaminsäure,
Die Züchtung wird unter aeroben Bedingungen, beispielsweise in einer Schütte!kultur oder in Submerskultur
unter Rühren durchgeführt. Die Züchtungstemperaturen betragen im allgemeinen 20 bis
40° C und der pH-Wert des Mediums 3 bis 9, Vorzugsweise wird der pH-Wert um den Neutralpunkt
gehalten, die Züchtung kann jedoch auch unter Bedingungen außerhalb dieses Bereichs durchgeführt
werden, sofern die verwendeten Mikroorganismen dabei wachsen. Der pH-Wert des Mediums wird beispielsweise
unter Verwendung von Calciumcarbonat, organischen oder anorganischen Säuren oder Ammoniak,
Alkalihydroxiden oder pH-Puffermitteln eingestellt. Nach einer Züchtungsdauer von 1 bis 7 Tagen
hat sich L-Lysin gebildet und in der Gärflüssigkeit angereichert.
Nach beendeter Züchtung werden Niederschläge, wie Zeilen, aus der Gärflüssigkeit entfernt. Das L-Lysin
kann nach üblichen Verfahren, wie Behandlung mit Ionenaustauschern, Einengen, Adsorption und
Aussalzen, gewonnen werden.
Die Beispiele erläutern die Erfindung.
Als Anzuchtstamm wird Corynebacterium glutamicum
NRRL-B-8182 mit einer Resistenz gegen Asparaginsäurehydraxamat verwendet. Der Anzuchtstamm
wird auf ein großes 50-ml-Reagenzglas (190 x 20 mm) mit einem Gehalt an 7 ml Anzuchtmedium
vom pH-Wert 7,2 überimpft. Das Anzuchtmedium enthält 4 g/dl Glucose, 0,3 g/dl Harnstoff,
0,15 g/dl KH1PO4, 0,05 g/dl K2HPO4, 0,05 g/dl
MgSO4 · 7H2O", 50 μg/Liter Biotin, 2 g/dl Pepton und
0,5 g/dl Hefeextrakt. Die Züchtung wird 24 Stunden bei 30° C durchgeführt. 2 ml der erhaltenen Anzuchtkultur
werden auf einen 300-fiiI-Erlenmeyer-Kolben
mit einem Gehalt an 20 ml Züchtungsmedium vom pH-Wert 7,2 überimpft. Dieses Medium enthält
8,5 g/dl Endmelasse (als Glucose), 2 g/dl Säurehydrolysat von Sojabohnenkuchen (als Sojabohnenkuchen),
0,5 g/dl Ammoniumsulfat, 0,3 g/dl Harnstoff, 0,05 g/dl MgSO4 · 7H2O, 0,07"g/dl KH2PO, und 3 g/
dl Calciumcarbonat. Die Züchtung wird unter Schütteln 3 Tage bei 30° C durchgeführt. In der Gärflüssigkeit
haben sich d^nn 35 mg/ml L-Lysin (als Monohydrochlorid, was auch für die nachstehenden
Angaben gilt) angereichert. Die Menge an L-Lysin. die bei gleichzeitiger Züchtung des Ausgangsstamms
ATCC 21 543 unter den gleichen Bedingungen erhalten wird, beträgt 25 mg/ml.
Nach beendeter Züchtung wird 1 Liter der Gärflüssigkeit des erfindungsgemäßen Stamms zur Entfernung
von Zellen und anderen Niederschlägen zentrifugiert. Der Überstand wird zur Adsorption von
L-Lysin über eine mit Diaion SK-1 (H *-Form, Handelsbezeichnung
für ein stark saures Ionenaustauscherharz der Mitsubishi Chemical Industries Ltd.)
gepackte Säule gegeben. Nach dem Waschen der Säule mit Wasser mit verdünntem wäßrigen Ammoniak
eluiert. Die Fraktionen mit einem Gehalt an L-Lysin werden gesammelt und eingeengt. Der pH-Wert
des Konzentrats wird mit Salzsäure auf 2 eingestellt. Sodann wird das Konzentrat gekühlt und mit Äthanol
versetzt, wobei L-Lysin auskristallisiert. Man erhält
2(i.5 g L-Lysin-Hydrochlorid in kristalliner Form.
27 JO 964
Die Züchtung wird gemäß Beispiel 1 durchgeführt, wobei als Anzuchtstamm Corynebacterium glutamicum
NRRL-B-8183 (mit einer Resistenz gegen Sulfamethazin)
verwendet wird. In der Gärflüssigkeit werden 33 mg/ml L-Lysin angereichert. Bei der Züchtung
des Ausgangsstamms ATCC 21543 unter den gleichen Bedingungen erhält man 25 mg/ml L-Lysin.
Der in Beispiel 1 eingesetzte Stamm Corynebacterium glutamicum NRRL-B-8182 wird als Anzuchtstamm
verwendet. Dieser Stamm wird in einen 300-ml-ErIenmeyer-Kolben mit einem Gehalt an
20 ml des in Beispiel 1 angegebenen Anzuchtmediums überimpft. Die Züchtung wird 24 Stunden unter
Schütteln bei 28° C durchgeführt. 1 Liter der Anzuchtkultur wird in einen 30-Liter-Glasfermenter mit
einem Gehalt an 10 Liter Züchtungsmedium vorn pH-Wert 7,2 überimpft.
Dieses Medium enthält 14 g/dl Endmelasse (als Glucose), 0,03 g/dl MgSO4 · 7H1O, 0,07 g/dl
KH1PO4, 0,3 g/dl Harnstoff, 1,8 g/dl Säurehydrolysat
von'Sojabohnenkuchen (als Sojabohnenkuchen) und 1,4 Volumprozent Leucin-Gärflüssigkeit, die auf die
nachstehend beschriebene Weise hergestellt worden ist. Die Züchtung wird 48 Stunden bei 28° C, einer
Belüftungsgeschwindigkeit von 10 Liter/min und einer Rührgeschwindigkeit von 400 U/min durchgeführt,
wobei der pH-Wert der Gärflüssigkeit mit 22prozentigem Ammoniak auf 6,8 eingestellt wird. Es
werden 58 mg/ml L-Lysin in der Gärflüssigkeit angereichert. Bei der Züchtung des Ausgangsstamms
ATCC 21 543 unter den gleichen Bedingungen erhiilt
man 43 mg/ml L-Lysin.
Die Leucin-Gärflüssigkeit wird folgendermaßen hergestellt: Corynebacterium glutamicum ATCC
21885, ein leucinbildender Stamm, wird in einen 5-Liter-GIasfermenter mit einem Gehalt an 3 Liter
Anzuchtmedium vom pH-Wert 7,2 überimpft. Dieses Anzuchtmedium enthält 5 g/dl Glucose, 1 g/dl Pepton,
1 g/dl Hefeextrakt, 0,5 g/dl Maisquellflüssigkeit. 0,25 g/dl NaCI, 0,3 g/dl Harnstoff und 50 ng/Liter
Biotin. Die Züchtung wird 17 Stunden bei 30r' C unter
Belüften und Rühren bei einer Belüftungsgeschwindigkeit von 3 Liter/min und einer Rührjjeschwindigkeit
von 600 U/min durchgeführt. 1 Liter dieser Anzuchtkultur wird in einen 30-Liter-Glasfermenter
mit einem Gehalt an 10 Liter Züchtungsmedium ram pH-Wert 6,8 überimpft. Dieses Medium
enthält 0,5 g/dl Ammoniumacetat, 0,2 g/dl KH1PO4.
0,05 g/dl MgSO4 · 7H,O, 0,01 g/dl FeSO4 · 7H,O,
0,001 g/dl MnSO4 · ;iH2O, 50 μg/Liter Biotin und
100 μg/LiterTiaminhydrochIorid. Die Züchtung wird
60 Stunden bei 30" C unter Belüftung und Rühren bei einer Belüftungsgeschwindigkeit von 10 Liter/min
und einer Rührgeschwindigkeit von 400 U/min durchgeführt. Im Verlauf der Züchtung wird eine Lösung
mit einem Gehalt an 7 Prozent Ammoniumacetat und 38 Prozent Essigsäur.·. Kontinuierlich in die
Gärflüssigkeit eingespeist, urn eine Kühlcnsluffqueile
zur Verfügung zu stellen und den pH-Wert auf 6.8 zu halten. Man erhält eine Leucin-Gärflüssigkeit mit
einem Gehalt an 15,3 mg/m! L-Leucin. Diese Gärflüssigkeit wird als Teil des Züchlungsmediums zur
Herstellung von L-Lysin verwendet.
Das crfindunüspemäßi· Verfahren ist dem in der
DIl-OS 2.S3 i wV beschriebenen Verführen hinsichtlich
der Produktivita·, an I .-Lv si η überlegen. Dies geht
aus den Beispielen I und 2 hervor. Die Ausbeulen sind um etwa 1.3- Iu, 1.4mnl höher als bei Verwendung
von Corvnehucteriurn glutamicum AICC
21 543 Dieser Stamm hat die »!eichen Eigenschaften wie f'oivriebacicrium glutainieum ATC C 21 513. der
in Beispiel 1 der DF.-OS 2 531 W> verwendet wird
abgesehen von seiner Resistenz gegen S-(ß-Aminoäthyl)-cystein.Die Produktivität an L-Lysin vonCorynebacterium
glutamicum ATCC 21 543 is! höher als die von Corynebacterium glutamicum ATCC 21513
unter den gleichen Bedingungen, da der Stamm ATCC 21 543 dadurch verbessert worden ist, daß man
dem Ausgangsstamm ATCC 21513 Resistenz gegen
S-(ß-Am.inoäthyl)-cystein verliehen hat.
Claims (2)
1. Verfahren zur Herstellung von L-Lysin auf
mikrobiolgischem Wege, dadurch gekennzeichnet, daß man Corynebacterium glutamicum
NRRL-B-8182 oder Corynebacterium glutamicum
NRRL-B-8183, in einem Nährmedium züchtet und das in der Gärflüssigkeit angereicherte
L-Lysin gewinnt.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Nährmedium verwendet,
das eine Leucin-Gärflüssigkeit in einer Menge von 0,2 bis 15 Volumenprozent des Nährmediums
enthält, wobei die Leucin-Gärflüssigkeit durch Züchten von Corynebacterium glutamicum ATCC
21 885 erhalten worden ist.
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