DE3121926C2 - Verfahren zur Herstellung von L-Prolin durch Züchten eines Mikroorganismus - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von L-Prolin durch Züchten eines MikroorganismusInfo
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Abstract
Ein Verfahren zur Herstellung von L-Prolin durch Fermentierung, bei welchem ein Mikroorganismus gezüchtet wird, der zum Genus Corynebacterium, Arthrobacter, Brevibacterium, Microbacterium und Saccharomyces gehört und fähig ist, L-Prolin in einem Zuchtmedium zu erzeugen, um L-Prolin in der Zuchtbrühe anzureichern, aus welcher dann das L-Prolin gewonnen wird, ist dadurch gekennzeichnet, daß ein Zuchtmedium verwendet wird, welches wenigstens einen Stoff, der aus L-Glutaminsäure sowie D-, L- und DL-pyrrolidonkarbonsäure ausgewählt wird, in Verbindung mit einem Kohlenstoff lieferanten, einem Stickstofflieferanten und anorganischen Verbindungen enthält.
Description
a) als Mikroorganismus
Corynebacterium glutamicum ATCC 21 157,
Corynebacterium glutamicum ATCC 21 158,
Corynebacterium glutamicum ATCC 21 159,
Corynebacterium glutamicum ATCC 21 355,
Corynebacterium glutamicum ATCC 21 355,
Corynebacterium acetophilum FERM BP-229,
Corynebacterium acetoacidophilum
FERM BP-230.
Arthrobacter citreus FERM BP-231,
Brevibacterium lactofermentum FERM BP-232,
Brevibacterium lactofermentum FERM BP-232,
Microbacterium ammoniaphilum FERM BP- 233 oder
Saccharomyces cerevisiae ATCC 20 169 und
b) ein Nährmedium, das pro Liter 3 bis 150 g Glutaminsäure, D-, L- oder DL-Pyrrolidonkarbonsäure
enthält,
einsetzt.
Für das erfindungsgemäße Verfahren können synthetische oder organische Nährmedien verwendet werden,
solange das Nährmedium nur eine geeignete Menge an assimilierbaren Kohlenstofflieferanten, Stickstofflieferanten
und anderen organischen Substanzen sowie weiteren Nährstoffen enthält, die für das Wachstum des
jeweiligen Mikroorganismus benötigt werden. Bevorzugte Kohlenstofflieferanten sind Kohlehydrate, wie
Glukose, Fruktose, Saccharose, Sorbit, Glycerin, Maltose, Mannit, Stärkehydrolysat und Melassen, ferner organische
Säuren, wie Essigsäure, Pyruvinsäure, Milchsäure, Fumarsäure und Zitronensäure, sowie Alkohole, wie
Methanol und Äthanol. Bevorzugte Stickstofflieferanten sind Ammoniak, verschiedene anorganische und
organische Ammoniumsalze, wie Ammoniumsulfat, Ammoniumchlorid, Ammoniumphosphat und Ammoniumazetat,
ferner verschiedene Stickstoff enthaltene Verbindungen, wie Harnstoff, Pepton, Fleischextrakt,
Hefeextrakt, Reisquellwasser, Caseinhydrolysat, Sojamehlhydrolysat, fermentierte Mikrobenkörper und deren
Hydrolysate. Bevorzugte anorganische Substanzen sind Kaliumdihydrogenphosphat, Dikaliumhydrogenphosphat,
Magnesiumsulfat, Natriumchlorid, Eisensulfat, Mangansulfat und Kalziumkarbonat. Zusätzlich
können Spurenmengen an Nährstoffe, wie Biotin und Thiaminpantothensäure, verwendet werden. Bei Nährstoff
erfordernden Mikroorganismen muß dem Nährmedium eine geeignete Menge eines derartigen Nährstoffes
zugesetzt werden, wie er für das Wachstum der
Mikroorganismen erforderlich ist. Ein derartiger Zusatz
ist allerdings dann nicht erforderlich, wenn der erforderliche Nährstoff in der als Stickstofflieferant verwendeten
natürlich vorkommenden Substanz enthalten ist
Die Lieferanten für L-Glutaminsäure und L-, D- und DL-Pyrrolidonkarbonsäure, welche dem Nährmedium
zugesetzt werden müssen, sind isolierte L-Glutaminsäure und Natriumglutamat sowie L-, D- und DL-Pyrrolidonkarbonsäure,
ferner L-Glutaminsäure-Fermentierungsflüssigkeit, wie beispielsweise Glutaminsäure-Fermentierungsbrühen,
Filtrat nach Entfernung von Mikrobenzellen aus den Fermentierungsbrühen, Mutterlauge
aus der Trennung von Glutaminsäure aus Glutaminsäure-Fermentierungsflüssigkeit,
Mutterlauge aus der Trennung von Natriumglutamat, gemahlene Melassen und deren Ablauge, welche eine große Menge an Glutaminsäure
oder Pyrrolidonkarbonsäuie enthalten iowie
andere. Glutaminsäure oder Pyrrolidonkarbonsäure enthaltende Substanzen.
Die Menge an im Medium enthaltener Glutaminsäure oder Pyrrolidonkarbonsäure kann je nach der Art der
verwendeten Mikroorganismen und der Zeit des Zusatzes der Säure und auch aufgrund der unterschiedlichen
Zusammensetzung des Nährmediums schwanken und beträgt 3 bis 150 g/l des Mediums. Bei Konzentrationen
von mehr als 150 g/I können allerdings negative Auswirkungen hinsichtlich des zur Einstellung des pH-Wertes
verwendeten Salzes sowie der Viskosität beobachtet werden. Die Säure kann dem Nährmedium auf
einmal oder nach Impfung intermittierend zugesetzt werden, bis die Mikroorganismen ständig wachsen. Die
Bedingungen der L-Prolin-Fermentierung können je nach den verwendeten Mikroorganismen schwanken,
und die Temperatur beträgt vorzugsweise 25 bis 400C. Während der Fermentierung wird der pH-Wert des Mediums
vorzugsweise auf 6 bis 9 gehalten, indem beispielsweise anorganische oder organische Substanzen
verwendet werden, welche einen sauren oder alkalischen pH-Wert besitzen, wie Harnstoff und Kalziumkarbonat.
Unter diesen Bedingungen wird die Fermentierung aerob durchgeführt, um eine möglichst große
Menge an L-Prolin vorzugsweise in etwa 24 bis 120 Stunden anzureichern. Die Gewinnung von L-Prolin aus
den fermentierten Brühen kann durch an sich bekannte Verfahren erfolgen, wie beispielsweise durch Verwendung
von Ionentauscherharz und Kristallisierung aus Methanol oder durch Kombination beider Methoden.
Die Erfindung wird nachstehend anhand einiger Beispiele erläutert; die Prolinmenge wurde nach einer bekannten
Methode bestimmt (J. Biol. Chem., 199/1952,
S. 91-95).
Ein Zuchtmedium (30 ml) mit untenstehender Zusammensetzung wurde in einen 250-ml-Erlenmeyerkolben
eingefüllt, sterilisiert und mit Corynebacterium acetophilum
FERM BP-229 geimpft. Die Fermentierung wurde 24 h lang bei 28° C durchgeführt, wobei mit 220 U/
min geschüttelt wurde.
Das Hauptmedium hatte nachstehende Zusammensetzung:
Fleischextrakt
Pepton
Hefeextrakt
Natriumchlorid
(pH =7,2)
Pepton
Hefeextrakt
Natriumchlorid
(pH =7,2)
10 g/l
10 g/l
3 g/l
3 g/l
Ablaugen | 170 g/l |
(als Glukose) | |
Sojamehlhydrolysat | 20 g/l |
KH^PO4 | 0,6 g/l |
MgSO4 · 7 H2O | 0,6 g/l |
(NH4);SO4 | 23,4 g/l |
FeSO4 · 7 H2O | 0,012 g/l |
Thiaminhydrochlorid | 100μg/l |
CaCO3 | 30 g/l |
(pH = 7,4) |
Dem Hauptmedium wurde eine vorgegebene Menge von Natrium-L-Glutamat oder DL-Pyrrolidonkarbonsäure
gemäß Tabelle 1 zugesetzt. Das Medium (300 ml) wurde dann in einen 2-l-Erlenmeyerkolben mit einer
Prallfläche übergeführt. Nach der Sterilisierung wurde jedes Hauptmedium jeweils mit 30 ml dieser Zuchtkultur
geimpft und dann bei 280C 4 Tage lang unter Schütteln
mit 220 U/min gezüchtet. Für jeden Fall ist die angereicherte Menge an L-Prolin in nachstehender Tabelle
1 angegeben.
Angehäufte Menge an L-Prolin durch Zusatz von
(A) Natriumglutamat oder
(B) L-Pyrrolidonkarbonsäure
(A) Natriumglutamat oder
(B) L-Pyrrolidonkarbonsäure
Zusatz (g/l) | A (g/l) | B(g/I) |
0 | 25,1 | 24,8 |
35 1 | 25,3 | 25,1 |
3 | 26,9 | 27,7 |
10 | 31,4 | 30,1 |
20 | 35,6 | 34,8 |
50 | 39,1 | 35,4 |
40 90 | 40,5 | 36,6 |
100 | 40,7 | 36,8 |
Beispiel 2 |
Arthrobacter citreus FERM BP-231, Microbacterium ammoniaphilum FERM BP-233, Brevibacterium lactofermentum
FERM BP-232 und Saccharomyces cerevisiae ATCC 20 169 wurden jeweils nach dem Verfahren
so gemäß Beispiel 1 behandelt, wobei das Hauptmedium jedoch nachstehende Zusammensetzung hatte:
Glukose | 100 g/l |
KH2PO4 | 0,5 g/l |
K2HPO4 | 0,5 g/l |
(NH4J2SO4 | 30 g/l |
Sojamehlhydrolysat | 20 g/l |
Biotin | 100 μg/l |
MgSO4 · 7 H2O | 0,25 g/l |
FeSO4 · 7 H2O | 12 mg/1 |
MnSO4 · 4 H2O | 12 mg/1 |
ZnSO4 · 7 H2O | 10 mg/1 |
Thiaminhydrochlorid | 100μg/l |
CaCO3 | 30 g/l |
(pH = 7,2) |
Vor der Verwendung wurde dem Hauptmedium Na-Irium-L-Glutamat
(20g/l) oder L-Pyrrolidonkarbonsäu-
5 6
re (20 g/l) zugesetzt, um L-Prolin gemäß Tabelle 2 anzu- beimpft und bei 28° C unter Schütteln mit 220 U/min
reichern. 24 h lang gezüchtet
Einem Hauptmedium, bestehend aus Tabelle 2
5 Saccharose 20 g/l
Angehäufte Menge an L-Prolin durch Zusatz von Ammoniumazetai 7 g/l
(A) Natriumglutamat oder MgSO4 · 7 H2O 0,6 g/l
(B) L-Pyrrolidonkarbonsäure KH2PO4 4 g/1
(1) ArthrobactercitreusFERMBP-231 (NH4J2SO4 40 g/l
(2) Brevibacterium lactofermentum FERM BH-232 io Sojamehlhydrolysat 20 g/l
(3) Miwobacterium ammoniaphilum FERM BP-233 FeSO4 · 7 H2O 0,012 g/l
(4) Saccharomyces cerevisiae ATCC 20 169 MnSO4 -4H2O 0,012 g/l
ZnSO4 · 7 H2O 0,01 g/l
Zusatz (g/l) (1) (2) (3) (4) Biotin 100μgl
15 Thiaminhydrochlorid 100 μgl
Ohne - 4,3 6,8 3,2 2,1 (pH = 7,4)
A 20 13,1 17,4 16,1 11,3
B 20 12,9 16,2 15,3 10,5 wurde eine Mutterlauge zugesetzt, die durch Kristalli
sierung und Trennung von Natriumglutamat in einer
B e i s ρ i e 1 3 20 Menge von 20 g/l, berechnet als Glutaminsäure, erhal
ten worden war. Jeweils 700 ml der Mischung wurde in
Die gleiche Behandlung, wie im Beispiel 1 beschrie- eine Gärflasche gefüllt und sterilisiert. Danach wurde
ben, wurde unter Verwendung von Corynebacterium das Hauptmedium mit jeweils 200 ml der Zuchtkultur
glutamicum ATCC 21 355 und eines Nährmediums geimpft und bei 300C unter aeroben Bedingungen gedurchgeführt,
welches nachstehende Zusammensetzung 25 züchtet. Während der Fermentierung wurde der pH-hatte:
Wert des Mediums auf 7,0 durch Zusatz von Essigsäure
lösung eingestellt.
72 h nach Beginn der Fermentierung betrug der Essigsäureverbrauch 15% auf Basis des Ausgangsvolu-30
mens des Mediums; die angereicherte L-Prolinmenge betrug 38,8 g/l bei FERM BP-229 bzw. 30,1 g/l bei
FERM BP-230. Zum Vergleich wurde die gleiche Behandlung ohne Zusatz von Glutaminsäurelösung durchgeführt,
wobei die entsprechende L-Prolin-Werte 35 25,4 g/l bei FERM BP-229 bzw. 21,3 g/l bei FERM
BP-230 ausmachte.
24 h nach Beginn der Fermentierung wurde dem Medium 40 g/l Paraldehyd zugesetzt. Die Fermentierung
wurde bei 28° C 4 Tage lang unter Schütteln mit 220
U/min durchgeführt. Es sammelte sich 27,0 g/l L-Prolin 45
an. Die gleiche Behandlung unter Zusatz von 20 g/l Natriumglutamat ergab 38,9 g/l angesammeltes L-Prolin.
wurde bei 28° C 4 Tage lang unter Schütteln mit 220
U/min durchgeführt. Es sammelte sich 27,0 g/l L-Prolin 45
an. Die gleiche Behandlung unter Zusatz von 20 g/l Natriumglutamat ergab 38,9 g/l angesammeltes L-Prolin.
wurde in einen 2-1-Erlenmeyerkolben mit Prallfläche ge- 65
füllt und sterilisiert. Danach wurde das Zuchtmedium
mit Corynebacterium acetophilum FERM BP-229 bzw.
Corvnebacterium acetoacidoDhilum FERM BP-230
füllt und sterilisiert. Danach wurde das Zuchtmedium
mit Corynebacterium acetophilum FERM BP-229 bzw.
Corvnebacterium acetoacidoDhilum FERM BP-230
Glukose | 120 g/l |
Harnstoff | 3 g/l |
Ammoniumsulfat | 30 g/l |
Ammoniumchlorid | 30 g/l |
KH2PO4 | 1,5 g/l |
K2HPO4 | 0,5 g/l |
MgSO4 · 7 H2O | 0,5 g/l |
FeSO4 · 7 H2O | 0,02 g/l |
MnSO4 ■ 4 H2O | 0,02 g/l |
Biotin | 50 μδ/1 |
Thiaminhydrochlorid | lmg/1 |
Pepton | 10 g/l |
(pH = 7,2) |
Beispiel | 4 | 60 g/l |
Ein Zuchtmedium (200 ml), bestehend aus | 2 g/l | |
Saccharose | 0,5 g/l | |
KH2PO4 | 0,01 g/l | |
MgSO4 · 7 H2O | 0,01 g/l | |
FeSO4 · 7 H2O | 5 g/l | |
MgSOi · 4 H2O | ΙΟΟμβΙ | |
Maisquellwasser | ΙΟΟμβΙ | |
Thiaminhydrochlorid | 20 g/l | |
Biotin | 3 g/l | |
Sojamehlhydrolysat | ||
Harnstoff | ||
(pH = 7,4) |
Claims (1)
- Patentanspruch:Verfahren zur Herstellung von L-Prolin durch Züchten eines Mikroorganismus und Gewinnen des L-Prolins aus der Fermentationsflüssigkeit, dadurch gekennzeichnet, daß mana) als Mikroorganismus Corynebacterium glutamicium ATCC 21 157, Corynebacterium glutamicum ATCC 21 158, Corynebacterium glutamicum ATCC 21 159, Corynebacterium glutamicum ATCC 21 355, Corynebacterium acetophilum FERM BP-229, Corynebacterium acetoacidophilum FERM BP-230, Arthrobacter citreus FERM BP-231, Brevibacterium lactofermentum FERM BP-232, Microbacterium ammoniaphilum FERM BP- 233 oder Saccharomyces cerevisiae ATCC 20 169 undb) ein Nährmedium, das pro Liter 3 bis 150 g Glutaminsäure, D-, L- oder DL-Pyrrolidonkarbonsäure enthält,einsetzt.Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von L-Prolin durch Züchten eines Mikroorganismus und Gewinnen des L-Prolins aus der Fermentationsflüssigkeit.Derartige Verfahren sind allgemein bekannt. Dabei hat man schon einen Wildstamm, einen bestimmten Nährstoff erforderlichen Stamm oder einen gegenüber einem bestimmten chemischen Wirkstoff widerstandsfähigen Stamm, beispielsweise einen Mikroorganismus vom Genus Brevibacterium, Microbacterium, Micrococcus, Paracolobacterium, Bacilus, Escherichia, Kurthia, Microbacterium, Corynebacterium oder Saccharomyces, eingesetzt (JP-PS 11751/68, 13679/68, 1193/69, 1198/69, 6631/69, 26911/69, 38876/73, 28431/74, 33190/76,40158/76,41386/79 und 105293/79). Ferner hat man bei solchen Verfahren schon die Konzentration anorganischer Salze im Nährmedium auf einen vorgegebenen Bereich einzustellen (JP-PS 38557/71 und 42597/71). Andererseits ist es bekannt, daß die Biosynthese von L-Prolin über L-Glutaminsäure durchgeführt werden kann, und daß die Absonderung von L-Prolin von Escherichia coli durch Zusatz von L-Glutaminsäure zum Nährmedium begünstigt werden kann; dieses Verfahren ist jedoch praktisch ohne Wert, weil die Menge an abgesondertem L-Prolin mit etwa 0,03 g/l nur sehr gering ist (Biochernica et Biophysica Acta, Vol. 104/1965, S. 397). Es wird auch berichtet, daß die Ausbeute an L-Prolin durch Züchtung von Kurthia catenaforma bei Zusatz eines oberflächenaktiven Wirkstoffes und L-Glutaminsäure zum Nährmedium verbessert werden kann (Microbiology, Vol. 23/1972, S. 759-764). Es ist jedoch bisher niemals berichtet worden, daß L-Prolin in größeren Mengen in der Fermentationsflüssigkeit angereichert werden kann, wenn die Züchtung durch V wendung einer Gruppe bestimmter Bakterien, und zwar der sogenannten Glutaminsäure erzeugenden Bakterien, wie die zum Genus Corynebacterium, Brevibacterium, Arthrobacter und Microbacterium gehören (J. of the Japanese Agricultural Chem. Soc, Vol. 42/1968, S. 703-710; Amino Acids and Nucleic Acids, Nr. 16/1967, S. 126—133), in einem Nährmedium durchgeführt wird, welchem L-Glutaminsäure zugesetzt wird. Bekannt ist es schließlich noch. L-Prolin unter Einsatz von Kurthia catenaform ATCC 21 144 in einem Nährmedium mit Zusatz von L-Asparaginsäure herzustellen, wobei in der Fermentationsflüssigkeit 18,4 g/l L-Prolin angesammelt werden (DE- AS 16 42 752).Da L-Prolin in großem Umfang bei der Herstellung von Medikamenten, Nahrungsmitteln und dergleichenίο verwendet wird, besteht ein großes Interesse an wirtschaftlichen Verfahren zur L-Prolin-Herstellung mit weiteren Mikroorganismen. Folglich besteht die Aufgabe der Erfindung darin, für das Verfahren der eingangs genannten Art geeignete weitere Mikroorganismen zu finden, die eine möglichst hohe L-Prolin-Ausbeute ergeben.Diese Aufgabe wird bei dem einangs genannten Verfahren gemäß der Erfindung dadurch gelöst, daß man
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