DE1957980C3 - Verfahren zur Herstellung von Daunorubicin durch Züchtung eines Streptomyces - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von Daunorubicin durch Züchtung eines StreptomycesInfo
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft ein neues Verfahren
zur Gewinnung des mit der Nummer 13 057 R.P. bezeichneten Antibioticums, das den Namen Daunorubicin
(früher: Rubidomycin) erhalten hat.
In der französischen Patentschrift 15 33 151 sind das
mit der Nummer 9 865 R.P. bezeichnete Antibioticum, seine drei Hauptbestandteile, die mit den Nummern
13 213 R.P., 13 057 R.P. (oder Daunorubicin) und
13 330 R.P. bezeichnet werden, die Herstellung des Antibioticums 9 865 R.P. durch Züchtung von Streptomyces
8 899 oder Streptomyces 31 723 in geeignetem Medium und die Fraktionierung des Antibioticums
9 865 R.P. in seine drei Bestandteile beschrieben.
In der französischen Patentschrift 15 51195 ist
ebenfalls die Herstellung des Antibioticums 13 057 R.P. oder Daunorubicins durch Züchtung eines neuen
Streptomyces-Stammes beschrieben, der mit Streptomyces griseus, Varietal Rubidofaciens, Stamm
DS32041 (NRRL 3383) bezeichnet wird.
Die vorliegende Erfindung betrifft ein neues Verfahren zur Herstellung von Daunorubicin durch Züchtung
eines im folgenden näher identifizierten Mikroorganismus, der dem Genus Streptomyces angehört
und mit »Streptomyces bifurcus, DS 23 219 (NRRL 3539) bezeichnet wird, unter aeroben Bedingungen.
Dieser neue Mikroorganismus wurde aus einer in Frankreich im Departement Val-de-Marne, entnommenen
Erdprobe erhalten.
Die Isolierung dieses Stammes wurde unter Anwendung der folgenden üblichen Methode vorgenommen:
Die Erdprobe wird in sterilem destilliertem Wasser suspendiert, die Suspension wird dann auf verschiedene
Konzentrationen verdünnt, und kleine Volumina jeder Verdünnung werden auf die Oberfläche von Petrischalen
verteilt, die ein geeignetes Agarnährmedium enthalten. Nach einer Inkubation von 15 Tagen bei
26'C werden die Kolonien von Mikroorganismen, die man isolieren will, auf Schrägagar versetzt, um reichlichere
Kulturen zu erhalten.
Aus den im iolgenden dargelegten Gründen muß der Stamm Streptomyces DS 23 219 als Repräsentant einer
neuen Species angesehen werden, die mit Streptomyces bifurcus aufgrund der Tatsache bezeichnet wird, daß
man in seinen Kulturen sehr häufig eine recht besondere Form von Sporophoren antrifft, die am Ende
eine Dichotomic aufweisen und dann zwei längliche Äste aufweisen, die am Ende eines Hauptfadens sitzen.
Streptomyces bifurcus, Stamm DS 23 219, bildet zylindrische Sporen mit Abmessungen von 0,4 bis
0,5/1.0 bis 1,2 μ. Seine geraden oder schwach gebogenen Sporenfäden sind auf Luft-ausgesetzten Fäden
angeordnet, die sie isoliert oder als Trauben tragen, die eine beschränkte Anzahl von Elementen umfassen,
lläullg bildet der Hauptl'aden an seinem linde nur zwei längliche Fäden, was den Sporophoren ein ganz
besonderes gespaltenes Aussehen gibt.
Allgemein entwickelt Streptomyces bifurcus. Stamm DS 23 219, auf synthetischen Nährmedien ein gelbliches
bis hellrosa, bräunlichrosa oder rötlichbraunes vegetatives: Mycel und produziert lösliche Pigmente
von oiangerosa bis violettrosa Färbung. Auf den organischen Medien ist sein vegetatives Mycel gelbbraun
bis orangebraun, und die löslichen Pigmente, die er erzeugt, färben den Agar orangebraun bis rötlichbraun.
Er erzeugt kein Melaninpigment auf organischen Medien und kein H2S. Er bildet aus Nitraten
sowohl auf organischen Medien als auch auf synthetischen Medien Nitrile, verflüssigt Gelatine, peptonisiert
Milch langsam und verwertet Cellulose.
In der nachfolgenden Tabelle! sind die Züchtungsis
Charakteristiken und die biochemischen Eigenschaften, die Streptomyces bifurcus. Stamm DS 23 219, auf einer
gewissen Anzahl von üblicherweise zur Prüfung des Aussehens von Streptomyces-Stämmen verwendeten
Nähragarmedicn und Nährbouillons aufweist, angcgeben.
Ohne genauere Angaben sind diese Eigenschaften diejenigen, die Kulturen von etwa 2 bis
3 Wochen bei 25 C, die ein gutes Entwicklungsstadium erreicht haben, aufweisen. Eine gewisse Anzahl der
verwendeten Züchtungsmcdien wurde nach den Rezepturen hergestellt, die in »The Actinomycetes«
(S. A. Waksman, Chronica Botanica Company,
Waltham, Mass., USA, 1950, Seite 193-197) angegeben sind. In diesem Falle sind die Medien durch
den Buchstaben W, dem die Nummer folgt, die ihnen in »The Actinomycetes« gegeben wurde, bezeichnet.
Die Literaturstellen für die anderen Züchtungsmcdien oder die Zusammensetzungen derselben sind
die folgenden:
Anm. A: »Hickey and Trcsner's Agar«, T. G. Pridham u. Mitarb., Antibiotics Annual, 1956-1957,
Seite 950,
Anm. B: K. L. Jones, Journal of Bacteriology, 57,
142, 1949,
Anm. C: Rezeptur W-23, versetzt mit 2% Agar, Anm. D: »Yeast Extract Agar«, T. G. Pridham
u. Mitarb., Antibiotics Annual, 1956-1957, Seite 950,
Anm. E: »Tomato Paste Oatmeal Agar«, T. G. Pridham u. Mitarb., Antibiotics Annual, 1956-1957,
Seite 950,
Anm. F: W. E. G rundy u. Mitarb., Antibiotics
and Chem., 2, 401, 1952,
Anm. G: »Inorganic Salts - Starch Agar«, T. G. Pridham u. Mitarb., Antibiotics Annual, 1956-1957,
Seite 951,
so Anm. H: entspricht der Rezeptur W-I, wobei 30g
Saccharose durch 15 g Glucose ersetzt sind,
\nm. I: entspricht der Rezeptur W-I, wobei 30g Saccharose durch 15 g Glycerin ersetzt sind,
Anm. J: »Plain gelatin«, hergestellt nach den Angaben
des »Manual of Methods for Pure Culture Study of Bacteria« der Society of American Bacteriologists,
Geneva, N.Y., II.sn.u,
Anm. K: »Manual of Methods for Pure Culture Study of Bacteria« der Society of American Bacterio-(10
logists, Geneva, N.Y., Il-o-m,
Anm. L: »Manual of Methods lor Pure Culture Study of Bacteria« der Society of American Bacteriologists,
Geneva. N.Y., Il.-,,.,.,,
Anm. M: entspricht dor Re/eplur W-If, wobei 30 g
(>s Saccharose durch 15 g Glucose ersel/t sind,
Anm. N: entspricht der Re/eplur W-18, wobei die .Saccharose weggelassen und durch kleine Filterpapierstreifen
ersct/1 ist. die teilweise in die Flüssigkeit
3 | 19 57 980 | 4 | Entwick | Vegetatives | Anm. Q: H. D. Tresner und F. Danga, Journal | Bacteriology, 76, 239-244, 195S. | keines | |
. 42, S. A. Waksman, The Williams and Wilkins | lungsgrad | Mycel oder | Seite 333, of | |||||
ir eintauchen. | Nr | % Anm. O: Handelsübliches Magermilchpulver, nach Company, Baltimore, 1961, | Unterseite | Lösliches Beobachtungen | ||||
& den Angaben < | der Kultur | Luftausgesetzter | Pigment und biochemische | |||||
Jes Herstellers zubereitet. | Teil (umfaßt | Eigenschaften | ||||||
-ti Anm. P: The Actinomycetes, Band 2, | Gesamtheit von | schwach- | ||||||
Tabelle I | (2) | (3) | luftausgesetztem | rosabraun | ||||
,/_ Kulturmedium | gut | hellgelb | Mycel und | |||||
braunes vege | Spekulation) | (5) (ό) | ||||||
tatives Mycel; | (4) | sehr schwach- zylindrische Sporen mit Ab- | ||||||
gut entwickelt | hellgrau; sehr | rosabräunlich messungen von 0,4 bis | hellrötlich- | |||||
mäßig | 0,5/1,0 bis 1,2 μ; gerade oder | orangebraun | ||||||
entwickelt | schwach gebogene Sporen | |||||||
(D | ziemlich | gelbliches bis | faden; häufig Sporophoren von | |||||
-;' Agar nach | gut | hellgelblich- | zweigeteilter Form | |||||
ΐ Hickey und | braunes | orangebraun | ||||||
V Tresner | vegetatives | keiner | ||||||
v (Anm. A) | Mycel | |||||||
ziemlich | gelbliches bis | |||||||
gut | hellgelblich- | |||||||
: Agar nach | braunes | schwach rosa- | ||||||
.;■■ Bennett | vegetafives | keiner | orangebraun | |||||
(Anm. B) | Mycel | |||||||
gut | hellorange- | |||||||
braunes | keines | |||||||
Agar nach | vegetatives | |||||||
Emerson | Mycel | hellblaugrau; | ||||||
(Anm. C) | mäßig | |||||||
gut | hellorange- | entwickelt | hellgräulich- gute Löslichmachung von | |||||
braunes | rosa Calciummalat | |||||||
Agar mit | vegetatives | |||||||
Hefeextrakt | Mycel | blaugrau; | ||||||
nach | ziemlich gut | |||||||
Pridham | ziemlich | bräunlich | entwickelt | keines | ||||
(Anm. D) | gut | oranges | ||||||
Agar mit | vegetatives | |||||||
Hafer und | Mycel | keiner | ||||||
Tomate nach | sehr | hellbräunlich- | hcllrü'lich- | |||||
Pridham | mäßig | gelbes | orange | |||||
(Anm. E) | vegetatives | |||||||
Glucose- | Mycel | keiner | ||||||
Pepton-Agar | mäßig | farbloses bis | ||||||
(W-6) | hellbräunlich- | |||||||
rosa | ||||||||
Nähragar | vegetatives | keiner | ||||||
(W-5) | Mycel | |||||||
schlecht | farbloses bis | |||||||
hellrosa | ||||||||
Agar mit | vegetatives | |||||||
Calcium- | M.u-el | keiner | ||||||
malat nach | /icmlich | hellorange- | ||||||
K rai nsky | gut | brauncs bis | ||||||
(Anm. F) | hcllrotbrauncs | |||||||
Agar mit | vegetatives | blaugrau; | ||||||
Ovalhumin | Mvcel | sehr mäßig | ||||||
(W-12) | entwickelt | |||||||
Glueose- | ||||||||
Asparagin- | ||||||||
A gar | ||||||||
(W-2) | ||||||||
Entwick | 5 | Vegetatives | 19 57 980 | Lösliches | 6 | |
lungsgrad | Mycel oder | Pigment | ||||
Fortsetzung | Unterseite | Beobachtungen | ||||
Kulturmedium | der Kultur | !■unausgesetzter | und biochemische | |||
Teil (umfaßt | Eigenschaften | |||||
Gesamtheit von | ||||||
(2) | (3) | luftausgeset/tem | (5) | |||
ziemlich | rosa braungelb | Mycel und | orangerosa | |||
gut | bis rot | Sporulationl | bis rot | (6) | ||
(I) | (4) | |||||
Glycerin- | rosagrau bis | |||||
Asparagin- | mäßig | rötlichrosa bis | blaugrau; ziem | hellviolett- | ||
Agar | hellrosabraunes | lich spärlich | rosabraun | |||
(W-3) | vegetatives | entwickelt | Hydrolyse \on Stärke: | |||
Stärke- | Mycel | hellgräulich; | positiv | |||
Nitrat-Agar | ziemlich | rötlichorange- | spärlich | hellrötlich- | ||
'W-IO) | gut | braune | entwickelt | braun | ||
Unterseite | zylindrische Sporen mit Ab | |||||
Agar mit | iiellbläulichgrau | messungen von 0,4 bis | ||||
Stärke nach | bis hell- | 0,5/1,0 bis 1,2 μ; gerade oder | ||||
Pridham | rosagrau; | schwach gebogene Sporen- | ||||
(Anm. G) | mäßig | fäden; häufig Sporophoren von | ||||
gut | hellgelbliches | entwickelt | violcttrosa | zweigeteilter Form; Hydrolyse | ||
bis rötlichrosa | \on Stärke: positiv | |||||
vegetatives | ||||||
Synthetischer | Mycel | keiner | ||||
Agar nach | ||||||
Czapek mit | gut | hellgelbliches | blaßrosa bis | |||
Saccharose | bis hcllrosa- | blaßorange | ||||
(W-I) | brauncs | |||||
Synthetischer | vegetatives | keiner | ||||
Agar nach | Mycel | |||||
Czapek | gut | violettroles | intensiv | |||
mit Glucose | vegetatives | purpurviolett; | ||||
(Anm. H) | Mycel | reichlich | ||||
Synthetischer | rosagrau bis | |||||
Agar nach | violcttgrau: | |||||
Czapek | gut | sehr gut ent | mäßig | rötlichbraun | ||
mit Glycerin | wickeltes, sehr | entwickelt | ||||
(Anm. I) | dickes und stark | |||||
Kultur | gefaltetes vege | keiner | ||||
auf | tatives Mycel: | |||||
Kartoffeln | hellbräunlich | |||||
(W-27) | bis hell- | |||||
rötlichbraun | ||||||
mäßig | weißliches | keines | ||||
vegetatives | ||||||
Mycel | Verflüssigung: positiv | |||||
Reine | keiner | |||||
Gelatine | ziemlich | gelblicher | keines | |||
mit 12% | gut | Ring | ||||
(Anm. J) | Reduktion von Nitraten zu | |||||
Nitrat- | mäßig | kleine gräu | keiner | keines | Nitriten: Stark positiv | |
Nähragar | liche Kolonien, | |||||
(Anm. K) | die sich an der | Reduktion von Nitraten zu | ||||
Glucose- | Oberfl !»ehe | keiner | Mitriten: positiv | |||
Nitrat- | agglomerieren | |||||
Houillon nach | mittel | rosa Schleier, | keines | |||
1) im m ic k | dick, gut | |||||
(Anm. 1.) | entwickelt | Reduktion von Nitraten zu | ||||
Ik)UiII(In nach | keiner | Nitriten: positiv | ||||
C ζ a ρ c k | ||||||
mit Saccharose | ||||||
l-'orlsci/unu
Kullurmeilium | Entwick | Vegetatives | Luftausgcsclzter | Lösliches | Beobachtungen |
lungsgrad | Myccl oder | Teil (umfallt | Pigment | und biochemische | |
Unterseite | üesamtheit von | lügenschal'tcn | |||
der Kultur | luftausgcset/tcm | ||||
Mycel und | |||||
Sporulation) | |||||
(I) | (2) | O) | (4) | (M | (h) |
Bouillon nach Czapek
mit Glucose (Anm. M) Bouillon nach Czapek
mit Cellulose (Anm. N)
Magermilch (Anm. O)
Tyrosin-Hefeextrakt- Agar zur Bildung von Melanin (Anm. P) Agar nach
Trcsner und Danga (Anm. Q)
mittel
mittel
gut
mäßig
gut
rosaviolett
keiner
kleine rosaweiße Kolonien auf dem aus der Bouillon herausragenden Papier
gelblicher Ring
rosa wc iß keines
keines
keiner
hellbräunlichrosa
rosaweiß bis rosagrau; mäßig entwickelt
hellbräunlich- keiner gelb hellbräunlichrosa
hellbräunlichgelb
Reduktion von Nitraten zu Nitriten: positiv
Reduktion von Nitraten zu Nitriten: positiv; Verwertung von Cellulose:
positiv
keine Koagulation; langsame Peptonisation, erst nach
1 Monat Züchtung beginnend; pH unverändert in 1 Monat Bildung von Melanin: negativ
Produktion von H2S: negativ
Die Fähigkeit von Streptomyces bifurcus, Stamm DS 23 219, verschiedene Kohlenstoffquellen und
Stickstoffquellen zur Gewährleistung seiner Entwicklung zu verwerten, wurde nach dem Prinzip der Methode
von Pridham und Gott lieb (J. of Bact. 56,
107-114. 1948) bestimmt. Der Entwicklungsgrad wurde auf dem von diesen Autoren angegebenen Grund-Tabelle
Ί medium beobachtet, wobei die Glucose durch die verschiedenen jeweilig untersuchten Kohlenstoff-4°
quellen oder das (NH4J2SO4 durch die verschiedenen
jeweils untersuchten Stickstoffquellen ersetzt wurde. Die Ergebnisse sind in der nachfolgenden Tabelle II
angegeben.
Geprüfte Kohlenstoffquellen
Verwertung Geprüfte Stickstoffquellen
Verwertung
D-Xylose L-Arabinose L-Rhamnose D-GIucose
D-Galactose D-Fructose D-Mannose L-Sorbose Lactose Maltose Saccharose
Trehalose Cellobiose Raffinose
+ aber langsam NaNO3 NaNO2
(NH4J2SO4
(NH4J2HPO4
Adenin Adenosin Uracil Harnstoff L-Asparagin Glykokoll Sarcosin
DL-Alanin DL-Valin DL-Asparaginsäure
ίο
rortscl/iini!
Geprüfte Kohlenstol'f- | Verwertung | - | + | Iicprüfte S tickstol !quellen | Verwertung | - | P 1957980.742 |
u,uellen | - | + | - | ||||
Dextrin | + | - | + | L-Glutaminsäure | + | + aber langsam | S. bifurcus |
Inulin | + | + | L-Arginin | + | + | ||
Stärke | + | L-Lysin | + | + | NRRL 3539 | ||
Glykogen | + | DT 12 15863 | DL-Serin | + | + | ||
Glycerin | + | DL-Threonin | + | + | |||
Erythrit | S. coeruleorubidus | DL-Methionin | |||||
Adonit | Taurin | ||||||
Dulcit | NRRL 3045 NRRL 3046 | DL-Phenylalanin | |||||
D-Mannit | L-Tyrosin | ||||||
D-Sorbit | DL-Prolin | ||||||
Inosit | L-Hydroxyprolin | ||||||
Salicin | ! ι Betain | ||||||
Vergleichstabelle III | |||||||
Verwertung von | BE-PS 639897 DT18G9187 | ||||||
(FARMITALIA) | |||||||
S. peucetius S. griseus, | |||||||
var. rubido | |||||||
IM 3868 (Rutgers faciens - | |||||||
Institute) NRRL 3383 |
Stärke
L-Arabinose L-Rhamnose Lactose Saccharose Trehalose
Raffinose Inulin Adonit D-Sorbit Inosit Uracil Sarcosin Betain
Produktion v. Daunorubicin
a) berechnet auf die Brühe
b) an kristallisiertem Produkt (Hydrochlorid)
positiv positiv langsam und positiv positiv
schwach
positiv positiv negativ negativ positiv
positiv positiv negativ negativ positiv
positiv positiv negativ positiv positiv
+ ± positiv negativ positiv
positiv negativ positiv
jedoch langsam
positiv positiv positiv negativ positiv
negativ ± negativ positiv
positiv positiv negativ negativ negativ
positiv positiv negativ negativ positiv
± positiv negativ positiv
negativ positiv
negativ positiv
negativ positiv
34 μg/cm3 22,5
0,240 g/hl 0,051 g/hl 1,25 g/hl 1,89 g/hl 0,775 g/hl
(Beispiel 3-7) (Beispiel 9-10) (Beispiel 8 und 9) (Beispiel 2-5)
Die Gesamtheit der Charakteristiken, die Streptomyces
bifurcus, Stamm DS 23 219, aufweist, hat nicht ermöglicht, ihn als eine der bereits beschriebenen
Species zu identifizieren. Er muß daher als Repräsentant einer neuen Species angesehen werden.
Nach der in Bergeys Manual of Determinative Bacteriology (7. Auflage, The Williams and Wilkins Company,
Baltimore, 1957) angegebenen Klassifikation von Streptomyces machen ihn seine Eigenschaften, auf
organischen Medien kein Melaninpigment zu bilden, auf Kartoffeln ein lösliches rötlichbraunes Pigment zu
entwickeln und auch auf Kartoffeln ein hellrötlichbraunes vegetatives Mycel zu entwickeln, dem Streptomyces
noursei ähnlich. Er steht jedoch mit diesem
letzteren in keinem Verhältnis, der spiralige Sporophoren
bildet und dessen sporuliertes luftausgesetztes Mycel eine rosa Farbe annimmt, während er nur nichtspiralige
Sporenfaden bildet und ein hellblaugraues sporuliertes luftausgesetztes Mycel aufweist.
In The Actinomycetes (Band 2, S. A. Waksman,
The Williams and Wilkins Company, Baltimore, 1961, Seite 158) befindet sich eine Beschreibung von drei
anderen Species, die mit Streptomyces noursei die Eigenschaft teilen, auf organischen Medien kein
Melaninpigment zu bilden, auf Kartoffeln ein rötliches lösliches Pigment freizusetzen und auf Kartoffeln ein
rosa bis rötliches vegetatives Mycel zu bilden, nämlLch
Streptomyces albogriseolus, Streptomyces spiralis und Streptomyces fragil is. Diese drei Species weisen jedoch
gegenüber dem Stamm Streptomyces bifurcus. Stamm
DS 23 219, wesentliche Unterschiede auf, die zeigen, daß sie unbestreitbar Species sind, die ihm nicht entsprechen
können: Streptomyces albogriseolus und Streptomyces spiralis bilden spiralige Sporophoren und
gehören daher in die Sektion Spira der Klassifikation von Pridham, während Streptomyces bifurcus, Stamm
DS 23 219, der nur gerade oder schwach gebogene Sporenfaden bildet, in die Sektion Rectus-Flexibilis
dieser gleichen Klassifikation gehört. Was Streptomyces fragilis anbetrifft, so zeigt die rosa Farbe, die
sein luftausgesetztes Mycel bei Erreichung der Sporulation annimmt, daß er in keiner Beziehung zu Streptomyces
bifurcus, Stamm DS 23 219, steht, dessen luftausgesetztes Mycel, wie bereits ausgeführt wurde, sich
hellblaugrau färbt, wenn er sporuliert ist.
Streptomyces bifurcus, Stamm DS 23 219, kann daher nicht als einer der am nächsten kommenden Stämme
identifiziert werden.
Das neue Verfahren zur Gewinnung von Daunorubicin besteht im wesentlichen darin, Streptomyces
bifuicus, Stamm DS 23 219, oder seine Mutanten in einem geeigneten Medium und unter geeigneten Bedingungen
zu züchten und das im Verlaufe der Züchtung gebildete Antibioticum abzutrennen.
Die Züchtung durch Fermentation von Streptomyces bifurcus, Stamm DS 23 219, ergibt im wesentlichen
Daunorubicin, jedoch auch die anderen Bestandteile des Antibioticums 9 865 R.P., die von dem Daunorubicin
im Verlaufe von Extraktions- und Reinigungsarbeitsgängen abgetrennt werden und gegebenenfalls
isoliert werden können. Das Hauptziel der vorliegenden Erfindung ist jedoch die Herstellung von Daunorubicin.
Die Züchtung von Streptomyces bifurcus, Stamm DS 23 219, kann nach jeder beliebigen aeroben Oberflächenzüchtungsmethode
oder Submerszüchtungsmethode erfolgen, doch ist diese letztere aus Gründen der Bequemlichkeit zu bevorzugen. Man verwendet
zu diesem Zweck die verschiedenen Apparaturtypen, die jetzt üblicherweise in der Fermentationsindustrie
verwendet werden.
Man kann insbesondere den folgenden Weg für die Durchführung der Arbeitsgänge einschlagen:
Stamm DS 23 219 - Stammansatz
I
Kultur auf Agar
Kultur auf Agar
I
Kultur im Kolben unter Bewegung
Kultur im Kolben unter Bewegung
Impfkultur im Fermenter
ί
Produktionskultur im Fermenter
Produktionskultur im Fermenter
Das Fermentationsmedium soll im wesentlichen eine assimilierbare Kohlenstoffquelle und eine assimilierbare
Stickstoffquelle, Mineralstoffe und gegebenenfalls Wachstumsfaktoren enthalten, wobei alle diese
Bestandteile in Form von gut definierten Produkten oder von komplexen Gemischen, wie man sie in
biologischen Produkten verschiedenen Ursprungs antrifft, zugeführt werden können.
Als assimilierbare Kohlenstoffquellen kann man Kohlehydrate, wie beispielsweise Glucose, Maitose,
Dextrine, Stärke, oder andere Kohlehydratsubstanzen, wie beispielsweise Zuckeralkohole, z. B. Mannit und
dgl., oder gewisse organische Säuren, wie beispielsweise Milchsäure oder Citronensäure, verwenden.
Gewisse tierische oder pflanzliche Öle, wie beispielsweise Schmalzöl oder Sojaöl, können diese verschiedenen
Kohlehydratquellen mit Vorteil ersetzen oder ihnen beigefügt werden.
Die geeigneten assimilierbaren Stickstoffquellen sind außerordentlich verschiedenartig. Sie können sehr
einfache chemische Substanzen, wie beispielsweise Nitrate, anorganische oder organische Ammoniumsalze,
Harnstoff oder Aminosäuren, sein. Sie können auch in Form von komplexen Substanzen, die den
Stickstoff hauptsächlich in protidischer Form enthalten, zugeführt werden, wie beispielsweise in Form
von Casein, Lactalbumin, Gluten oder deren Hydrolysaten, Sojamehl, Arachismehl, Fischmehl, Fleischextrakten,
Hefeextrakten, Distillers' Solubles und Maisquellwasser.
.Unter den zugefügten mineralischen Stoffen können
gewisse eine Pufferwirkung oder eine neutralisierende Wirkung besitzen, wie beispielsweise die Alkali- oder
Erdalkaliphosphate oder Calcium- und Magnesiumcarbonat. '
Andere führen zu dem zur Entwicklung des Streptomyces bifurcus, Stamm DS 23 219, und zur Erzeugung
des Antibioticums erforderlichen Ionengleichgewicht, wie beispielsweise die Alkali- und Erdalkalichloride
und -sulfate. Schließlich wirken gewisse in speziellerer Weise als Aktivatoren der Stoffwechselreaktionen des
Streptomyces DS 23 219. Es sind dies die Zink-, Kobalt-, Eisen-, Kupfer- und Mangansalze.
Der pH-Wert des Fermentationsmediums soll zu Beginn der Züchtung zwischen 6,0 und 7,8, vorzugsweise
zwischen 6,5 und 7,5, liegen. Die zur Fermentation optimale Temperatur beträgt 25 bis 300C, doch
wird auch bei Temperaturen zwischen 23 und 33°C eine zufriedenstellende Produktion erhalten. Die Belüftung
der Züchtung kann in ziemlich weiten Grenzen variieren. Es wurde jedoch gefunden, daß Belüftungen
von 0,3 bis 31 Luft je 1 Bouillon und je Minute besonders gut geeignet sind. Die maximale Ausbeute
an Antibioticum wird nach 2- bis 8tägiger Züchtung erhalten, wobei diese Zeitspanne hauptsächlich von
dem verwendeten Medium abhängt
Aus den vorstehenden Ausführungen ist ersichtlich, daß die zur Produktion von Daunorubicin angewendeten
allgemeinen Bedingungen der Züchtung von Streptomyces bifurcus, Stamm DS 23 219, in ziemlich
weitem Maße variieren und jedem besonderen Erfordernis angepaßt werden können.
Das Daunorubicin kann aus den Fcrmentalionsmaischen
nach verschiedenen Methoden isoliert werden.
Man kann die Kulturmaische bei einem pH-Wert zwischen 1,5 und 9 filtrieren. Unter diesen Bedingungen
geht der Hauptteil der Aktivität in das Filtrat. Nach Waschen mit Wasser enthält der Filterkuchen
praktisch keine Aktivität mehr. Es ist vorteilhaft, diesen Arbeitsgang in saurem Medium und insbesondere unter
Ansäuern mit Oxalsäure auf einen pH-Wert zwischen 1,5 und 2 durchzuführen. Es ist auch möglich die
Filtration bei einem pH-Wert zwischen 2 und 7, vorzugsweise bei einem pH-Wert in der Nähe von 2, in
Anwesenheit eines aliphatischen Alkohols mit 1 bis 3 Kohlenstoffatomen vorzunehmen.
Bei den obengenannten Extraktionsarbeitsgängen
wird das Daunorubicin in wäßriger oder wäßrig-alkoholischer Lösung erhalten, und man führt es anschließend
durch Extraktion mit einem mit Wasser nichtmischbaren organischen Lösungsmittel, wie beispielsweise
Butanol, Methylisobutylketon, Äthylacetat oder Chloroform, bei einem pH-Wert zwischen 5,5 und 9,
vorzugsweise bei einem pH-Wert in der Nähe von 7,5, in eine organische Lösung über. Gegebenenfalls nimmt
man vor dieser Extraktion eine Behandlung mit einem Ionenaustauscherharz vor. In diesem Falle wird die
wäßrige Lösung auf einen pH-Wert in der Nähe von 4 eingestellt und das Antibioticum dann an ein Kationenaustauscherharz
gebunden. Das Daunorubicin wird vorzugsweise mit Methanol, das 10% Wasser und 1 % Natriumchlorid enthält, eluiert. Das Eluat wird dann
eingeengt, um den Alkohol zu entfernen, und dann wie oben angegeben extrahiert.
Man kann die Fermentationsmaische auch einer Extraktion mit einem mit Wasser nicht mischbaren
organischen Lösungsmittel, wie beispielsweise Butanol, Äthylacetat oder Chloroform, bei einem pH-Wert
zwischen 5,5 und 9, vorzugsweise bei <-inem pH-Wert in der Nähe von 7,5, unterziehen. Ii diesem Falle
geht die gesamte Aktivität in die organ;sche Phase, die von der wäßrigen Phase nach üblichen Verfahren
abgetrennt wird.
Gleichgültig, welche Extraktionsweise gewählt wird, wird das Daunorubicin schließlich in organischer Lösung
erhalten. Es kann zu diesem Zeitpunkt vorteilhaft sein, eine Reinigung durch aufeinanderfolgende Überführung
des Antibioticums in wäßrige Lösung und dann in organische Lösung durch Änderung des
pH-Werts vorzunehmen. Das rohe Antibioticum kann anschließend aus der zuletzt erhaltenen organischen
Lösung durch Einengen oder durch Ausfällen mit einem schlechten Lösungsmittel, wie beispielsweise
Hexan, isoliert worden.
Zur Herstellung von reinerem Daunorubicin kann man die üblicherweise angewendeten Methoden, wie
beispielsweise Chromatographie an verschiedene Adsorbentien, Gegenstromverteilung oder Verteilung
zwischen verschiedenen Lösungsmitteln, anwenden.
Das Daunorubicin kann auch in Additionssalze mit Säuren, wie beispielsweise Chlorwasserstoffsäure,
übergeführt werden. Diese Salze können durch Anwendung üblicher Methoden gereinigt werden.
Das nach dem erfindungsgemäßen Verfahren erhaltene Daunorubicin und dessen Salze weisen Eigenschaften
auf, die mit denjenigen des Antibioticums 13 057 R.P. und seiner Salze, die in der französischen
Patentschrift 15 33151 beschrieben sind, identisch
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung, ohne sie zu beschränken.
In einen 170-l-Fermenter bringt man die folgenden
Bestandteile ein:
Pepton | 1200 g |
Fleischextrakt | 600 g |
Hydratisierte Glucose | 1200 g |
Agar | 240 g |
Leitungswasser, ad |
Der pH-Wert wird mit 120 cm' 10 η-Natronlauge auf
7,20 eingestellt. Man sterilisiert das Medium durch 40rninütiges Durchleiter! von Dampf von 122X. Nach
Abkühlen beträgt das Volumen der Bouillon 120 1 und der pH-Wert 6,65. Man beimpft dann mit 200 cm1
einer gerührten bzw. geschüttelten Erlenmeyer-Kultur von Streptomyces bifurcus, Stamm DS 23 219. Die
Kultur wird bei 27 C während 30 Stunden unter Bewegen und unter Belüftung mit steriler Luft entwickelt.
Sie ist dann zur Beimpfung der Produktionskultur geeignet.
Die Produktionskultur wild in einem 800-l-Fermenter durchgeführt, der mit den folgenden Substanzen beschickt
ist:
Distillers' Solubles 4 kg
Gekörnte Bohnen 12 kg
Sojaöl 8 1
Natriumchlorid 2 kg
Kobaltchlorid-Hexahydrat 8 g
Leitungswasser, ad 330 I
Nach Einstellen des pH-Werts mit 400 cm' 10 n-Natronlauge
auf 7,70 wird das Medium bei 122 1C während 4ü Minuten sterilisiert. Nach Abkühlen beträgt das
Volumen der Bouillon 3601. Es wird durch Zugabe von 401 einer sterilen wäßrigen Lösung, die 6 kg hydratisierte
Glucose enthalt, auf 4001 aufgefüllt. Der pH-Wert beträgt dann 6,80.
Man beimpft mii 40 J der Impfkultur aus dem oben beschriebenen 170-l-Fermenter. Die Züchtung wird
bei 27CC 170Stundr". unter Bewegen mittels eines
Turbinenrührers, der mit 260 U/min betrieben wird und unter Belüftung mit steriler Luft in einer Menge
von 30 mVStunde durchgeführt. Der pH-Wert des Züchtungsmediums beträgt dann 7,30 und das Volumen
der Maische 305 1. Die vorhandene Menge an
so Daunorubicin (13 057 R.P.) beträgt 22,5 μg/cm\
2001 der während der in Beispiel I beschriebenen Fermentation erhaltenen Züchtungsmaische werden
in einen mit einem Rührer und einer Heizschlange mit Dampf ausgestatteten Bottich eingebracht Man
setzt 6 kg Oxalsäure zu und erhitzt die Masse auf 500C. Man rührt bei dieser Temperatur I1Z2 Stunden
weiter. Nach dieser Zeitspanne wird die Suspension auf einer Filterpresse nach Zugabe von 30 kg Filterhilfe
filtriert. Der Filterkuchen wird auf dem Filter mit 1001 Wasser gewaschen. Das Filtrat, dessen
Volumen 2601 beträgt, wird auf +150C abgekühlt, und
der pH-Wert wird mit 10%iger Natronlauge auf 4,5 eingestellt.
Das Filtrat wird in eine Säule, die 61 Amberlite IRC-50 im Säurezvklus enthält so eeleitet, daß das
Harzbett von oben nach unten mit einer Rate von 15 l/Stunde durchströmt wird. Die Säule wird anschließend
mit 301 Wasser, das in der gleichen Richtung wie das Filtrat und mit der gleichen Rate durchgeleitet
wird, und dann mit 30 1 Methanol mit einem Gehalt von 50% Wasser in einer Rate von 15 I/Stunde
von unten nach oben und dann weiterhin mit der gleichen Rate und von unten nach oben mit 501
Methanol mit einem Gehalt von 10% Wasser gewaschen.
Der Abfluß und die Waschflüssigkeiten werden verworfen, und die Säule wird mit einer von oben nach
unten durch das Harz geleiteten Lösung der folgenden Zusammensetzung eluiert:
Natriumchlorid
Wasser
Methanol, ad
Wasser
Methanol, ad
10 g
100 cm'
1000 cm'
1000 cm'
Das Eluat wird ab dem Auftreten einer orangeroten Färbung und bis zum Verschwinden dieser Färbung
gesammelt Man erhält so ein Volumen von 501, die den Hauptteil des Antibioticums enthalten.
Das Eluat wird unter vermindertem Druck (2 mm Hg) bei 35°C auf ein Volumen von 101 eingeengt.
Das Konzentrat wird bei pH 8,5 nacheinander dreimal mit je 51 Chloroform extrahiert. Der Chloroformextrakt
wird bei 30DC unter vermindertem Druck (5 mm Hg) auf ein Volumen von 50 cm3 eingeengt.
Das Antibioticum wird in Form der Base mit 500 cm3 Hexan ausgefällt, abgesaugt, gewaschen und getrocknet.
Man erhält schließlich 4,9 g rohe Base mit einem Gehalt von 64% Daunorubicin.
6,8 g des wie in Beispiel 2 erhaltenen Produkts mit einem Gehalt von 64 % Daunorubicin werden in 40 cm3
Wasser suspendisrt und durch fortschreitende Zugabvon 7 cm3 1 η-Salzsäure gelöst. Die Lösung wird durcl
Filtrieren geklärt, und Daunorubicin-hydrochlorid win durch langsame Zugabe von 11 Aceton kristallisiert
Die so erhaltenen Kristalle werden abfiltriert, mi 50 cm' Aceton gewaschen und bei 50cC unter vermin
dertem Druck (5 mm Hg) 15 Stunden getrocknet. Mai erhält 3,3 g kristalliertes Hydrochlorid mit einerr
Gehalt von 90% Daunorubicin in einer Ausbeute vor 68%.
3 g des gemäß Beispiel 3 erhaltenen Produkts werdei in 10 cm3 Methanol gelöst. Dann werden 100 cm
Chloroform nach und nach zugegeben, was die Kristal lisation von Daunorubicin-hydrochlorid bewirkt. Di<
so erhaltenen Kristalle werden abfiltriert, mit 20 cm Chloroform gewaschen und unter vermindertem Drucl
(5 mm Hg) 15Stunden bei 50C getrocknet. Mar
:o erhält 1,8 g umkristallisiertes Hydrochlorid mit einerr
Gehalt von 90% Daunorubicin. Die Ausfällung dei Kristallisationsmutterlaugen mit 200cm3 Hexan er
möglicht, eine zv jite Fraktion Daunorubicin zu erhal
ten. Nach Filtrieren, Waschen mit 50cm3 Hexan unc Trocknen bei 50'C unter vermindertem Druck (5 mrr
Hg) erhält man 1 g Daunorubicin, das in den Arbeits gang von Beispiel 3 zurückgeführt werden kann.
2,4 g des wie in Beispiel 4 beschrieben erhaltenen Daunorubicin-hydrochlorids werden in 40 cm3 Butanol
suspendiert. Nach '/2stündigem Rühren werden die
Kristalle abfiltnert, mit 10cm3 Butanol gewascher
und bei 60 C unter vermindertem Druck (0,5 mm Hg) während 8 Stunden getrocknet. Man erhält 2,1 g reines
Daunorubicin-hydrochlorid mit einer Ausbeute von 88%.
809 622/118
Claims (1)
- Patentanspruch:Verfahren zur Herstellung des Daunorubicin genannten Antibioticum: 13 057 R.P. durch Fermentation, dadurch gekennzeichnet, daß man einen neuen »Streptomyces bifurcus. Stamm DS 23 219 (NRRL 3539)« genannten Stamm verwendet.
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