DE2209067A1 - Neue Antibiotika, ihre Herstellung und die medizinischen Zusammensetzungen, die sie enthalten - Google Patents
Neue Antibiotika, ihre Herstellung und die medizinischen Zusammensetzungen, die sie enthaltenInfo
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Description
Neue Antibiotika, ihre Herstellung und die medizinischen Zusammensetzungen, die sie enthalten
Die vorliegende Erfindung betrifft zwei neue Antibiotika, die im folgenden mit den Nummern 23 671 RP und 23 672 RP bezeichnet
werden, ihre Herstellung durch Züchtung eines im folgenden vollständiger identifizierten Streptomyces, der Streptomyces
chryseus, DS 12 370 (NRRL 3892) genannt wird.
Die Antibiotika 23 671 RP und 23 672 RP besitzen eine
oedeutende antimikrobiell Wirksamkeit, hauptsächlich gegen die Gram-positiven Keime, insbesondere gegen
Staphylokokken, sowie gegen Mycobakterien, insbesondere gegen den Stamm von Tuberkelbazillus H 37 Rv. Außerdem besitzen
sie den Vorteil, nur eine geringe Toxizität aufzuweisen.
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Physikalisch-chemische Eigenschaften:
Das Antibiotikum 23 671 RP ist durch die folgenden physikalisch-chemischen
Eigenschaften gekennzeichnet:
Aussehen: weißes kristallines Pulver Elementaranalyse: Das Antibiotikum 23 671 RP besteht aus
Kohlenstoff, Wasserstoff und Sauerstoff in den folgenden Mengenanteilen:
C = 58,45 - 58,6 %, H =8,6 - 8,7 %, 0 = 31,35 - 31,55 %
Löslichkeit: Das Antibiotikum 23 671 RP ist in Wasser bei
200C praktisch unlöslich. Es ist in Alkoholen, Aceton,
Äther, Dimethylformamid und chlorierten Lösungsmitteln löslich.
Schmelzpunkt (<ofler-Bank): I30 - 132°C
[αJD = -71,5° + 1,5° (c = 1 % in Methanol)
UV-Spektrum: In methanolischer Lösung weist das Antibiotikum
23 07I RP ein Absorptionsmaximum bei 285 nm
(e] *m = 1,04) und ein Minimum bei 252 nm (e] ^ « 0,67)
In Flg. 1 ist das UV-Spektrum von 23 67I RP in Lösung in
Methanol bei einer Konzentration von 2 110/Ug/cm gezeigt.
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IR-Spektrum (die Bestimmung wurde an mit Kaliumbromid verpreßt
em Produkt vorgenommen);
Dieses Spektrum ist in Fig. 2 gezeigt, in der als Abszisse
einerseits die Wellenlängen in Mikron (oberer Maßstab) und andererseits die Wellenzahlen in em (unterer Maßstab) und
als Ordinate die optischen Dichten aufgetragen sind«.
In der nachfolgenden Tabelle I sind die Hauptinfrarotabsorptionsbanden
von 2j5 671 RP, ausgedrückt in Wellenzahlen
(cm~ ), angegeben.
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st | 1325 | Sch | 905 | m | SSt | = sehr stark | |
2980 | st | 1295 | m | 870 | sch | St | = stark |
2940 | st | 1260 | Sch | Ö35 | m | m | = mittel |
2920 | Sch | 1235 | m | 805 | sch | sch | = schwach |
2890 | m | 1215 | ssch | 780 | m | ssch | = sehr schwach |
2840 | sch | 1162 | SSt | 745 | ssch | Sch | = Schulter |
1735 | SSt | 1115 | st | 725 | ssch | ||
1710 | Sch | 1095 | Sch | 700 | sch | ||
1630 | m | IO8O | SSt | 660 | Sch | ||
1455 | st | 1060 | st | 645 | Sch | ||
1412 | m | 1035 | Sch | 600 | sch | ||
1375 | st | 1000 | st | 500 | sch | ||
1350 | m | 985 | Sch | 455 | m | ||
13^5 | Sch | 965 | m | 420 | sch | ||
1330 | m | 920 | m | 395 | sch | ||
Chromatographische Wanderungen
DUnnschichtchromatographie eines Gemische von Kieselgel H
und Aluminiumoxyd H (75 ·* 25 %) unter den folgenden Bedingungen:
Auftrag 100/Ug
Entwicklung mit reinem Äthylacetat in gesättigter Kammer (bei 22°C)
Nachweis durch Aufsprühen von konzentrierter Schwefelsäure,
Das 23 671 RP besitzt einen Rf-Wert von 0,26.
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Dünnschichtchromatographie mit Silioagel Merck P 25^ und
Entwicklung mit dem System A'thy lace tat, Chloroform und Aceton (1:1:1 Volumina) und Nachweis unter den vorstehenden
Bedingungen:
Das 23 671 RP weist einen Rf-Wert von 0,62 auf.
Das Antibiotikum 23 672 RP ist durch die folgenden physikalisch-chemischen
Eigenschaften gekennzeichnet;
Aussehen: weißes kristallines Pulver.
Elementaranalyse: Das Antibiotikum 23 672 RP besteht aus
Kohlenstoff, Wasserstoff und Sauerstoff in den folgenden
Mengenanteilen:
C =58,6 - 58,7 % H= 8,4 - 8,5 % Q = 32,6 - 32,8 %
Löslichkeit: Das Antibiotikum 23 672 RP ist in Wasser bei
200C praktisch unlöslich, Es ist in. Alkoholen, Aceton,
Äther, Dimethylformamid und den chlorierten Lösungsmitteln löslich.
Schmelzpunkt (Kofier-Bank)? 15J» - 155
0C
[a]^4'5 =-71* + 1,5° (e = 1 % in Methanol)
UV-Spektrum; In methaneliseher1 "/igung weist- das 23 672 RP
ein Absorptionsmaximum bei 285 nm. (ßl ^ - 0,67)
und ein Minimum bei. 254 bxü (El ^ = Ο,ϊο) aufo In
Fig. 3 ist das UV-Spektrun: von 2J>
6?£ KF In Lösung in
Methanol bei Konzentrationen, von 'tO;6,, 106 und "i 155yUg/cm"
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IR-Spektrum (die Bestimmung wurde an mit Kaliumbromid verpreStern
Produkt vorgenommen): Dieses Spektrum ist in Flg. gezeigt, in der als Abszisse einerseits die Wellenlängen
in Mikron (oberer Maßstab) und andererseits die Wellenzahlen in cm~ (unterer Maßstab) und als Ordinate die optischen
Dichten aufgetragen sind.
In der nachfolgenden Tabelle II sind die Hauptinfrarotabsorptionsbanden
von 23 672 RP, ausgedrückt in Wellenzahlen
(cm~ ), angegeben.
3450 | SSt | 1240 | m | 895 | sch | sst = sehr stark |
3210 | Sch | 1210 | sch | 860 | sch | st . = stark |
2965 | St | 1185 | Sch | 83O | m | m = mittel |
2921 | St | 1155 | SSt | 8OO | sch | sch = schwach |
2890 | Sch | 1135 | sch | in | m | ssch = sehr schwach |
2870 | sch | 1-108 | St | 740 | ssch | Sch = Schulter |
2830 | Sch | 1090 | Sch | 715 | ssch | |
2040 | ssch | 1075 | m | 692 | sch | |
1740 | SSt | 1070 | sch | 655 | Sch | |
1625 | m | 1055 | SSt | 635 | Sch | |
1450 | St | 1025 | Sch | 595 | m | |
1405 | m | 995 | St | 545 | m | |
1375 | St | 975 | Sch | 490 | m | |
1347 | m | •955 | m | 450 | m | |
1325 | m | 922 | Sch | 415 | Sch | |
1255 | sch | 912 | m | |||
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Dünnschichtchromatographie mit einem Gemisch von Kieselgel H und Aluminiurnoxyd H (75 : 25 $) unter den gleichen Bedingungen
wie bei dem Antibiotikum 23 67I RP: Das 23 672 RP
weist einen Rf-Wert von 0,17 auf.
Dünnschichtchromatographie mit Silicagel Merck P 25^· und
Entwicklung mit Äthylacetat: Das 23 072 RP besitzt einen
Rf-Wert von 0,38. Bei Entwicklung mit dem System Äthylacetat,
Chloroform und Aceton (1:1:1 Volumina) besitzt es einen Rf-Wert von 0,50.
Antibiotlsche Aktivität und Toxizität
A - Bakteriostatische Aktivität in vitro Die bakteriostatische Wirksamkeit der Produkte 23 67I RP
und 23 672 RP gegen eine bestimmte Anzahl von Keimen wurde
nach einer der üblicherweise für diesen Zweck verwendeten Verdünnungsmethoden bestimmt. Für jeden Keim wurde die
kleinste Konzentration an Substanz bestimmt, die unter definierten Bedingungen jede sichtbare Entwicklung in einer
geeigneten Nährbouillcn verhindert. Die Ergebnisse der verschiedenen
Bestimmungen sind in der nachfolgenden Tabelle zusammengestellt, in der die minimalen bakteriostatischen
Konzentrationen in Mikrogramm Substanz je cnr Versuchsmedium
ausgedrückt sind.
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Tabelle III·
Geprüfte Bakterienorganismen | Minimale bakteriostatische Konzentrationen ,ug/cm |
23 672 RP |
Staphylococcus aureus, Stamm Smith | 23 671 RP | 0,67 |
Staphylococcus aureus, Stamm 133 (Institut Pasteur) |
0,70 | 1,2 |
Staphylococcus aureus, Stamm 209 P ■ ATCC 6538 P |
0,90 | 0,54 |
Staphylococcus aureus, Stamm 209 P - ATCC 6538 P gegen Carbomycin resistent gemacht |
0,38 | >200 |
Staphylococcus aureus, Stamm 209 P - ATCC 6538 P gegen Erythromycin resistent ge macht |
> 200 | 170 |
Staphylococcus aureus, Stamm 209 P - ATCC 6538 P gegen Spiramycin resistent gemacht |
110 | 0,86 |
Staphylococcus aureus, Stamm 209 P - ATCC 6538 P gegen Pyostacin resistent gemacht |
0,56 | 55 |
Sarcina lutea - ATCC 9341 | 48 | 0,07 |
Streptococcus faecalis - ATCC 9790 | 0,05 | 1,5 |
Streptococcus viridans (Institut Pasteur) |
1,7 | 6,7 |
Streptococcus pyogenes haemolyticus (Stamm Dig 7, Institut Pasteur) |
8,3 | 0,24 |
Diplococcus pneumoniae (Stamm TiI, Institut Pasteur) |
0,19 | 1,1 |
Bacillus Subtilis - ATCC 6633 | 2,3 | 0,35 |
Bacillus cereus - ATCC 6030 | 0,15 | 0,10 |
Mycobacterium species - ATCC 6O7 | 0,05 | 0,42 |
Mycobacterium parasmegmatis (1 75 - Lausanne) |
0,52 | 0,35 |
1,2 |
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Geprüfte Bakterienorganismen | B) | Minimale bakteriostatische Konzentrationen /Ug/cra^ |
RP | 23 672 RP j |
23 671 | >200 | |||
Escherichia coli - ATCC 96J7 | >200 | >200 | ||
Shigella dysenteriae - Shiga L (Institut Pasteur) |
>200 | >200 | ||
Salmonella paratyphi A (Lacasse, Institut Pasteur) |
>200 | >200 | ||
Salmonella schottmuelleri (paratyphi Pougenc (Institut Pasteur) |
>200 | >200 | ||
Proteus vulgaris | >200 | >200 >200 |
||
Klebsiella pneumoniae - ATCC 10.031 Pseudomonas aeruginosa (Stamm Bass - Institut Pasteur) |
>200 >200 |
>200 | ||
Brucella bronchiseptica (CN 38? - Wellcome Institut) |
>200 | >200 | ||
Pasteurella multocida (A 125 - Institut Pasteur) |
>200 | >30 | ||
Mycoplasma gallisepticum | ||||
Diese verschiedenen Bestimmungen zeigen., daß die Aktivität der
Produkte 23 671 RP und 23 672 RF hauptsächlich bei Keimen auftritt,
die die Färbung nach Gram annehmen. Außerdem ist ersichtlich, daß das 23 671 RP und das 23 672 RP in vitro eine
gekreuzte Resistenz mit Carbomycin, Erythromycin, Pyostaein,
jedoch nicht mit Spiramycin aufweisen.
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- ίο -
B - Antituberkulöse Wirksamkeit In vitro :
Die Aktivität von 23 t>71 RP und 23 672 RP gegen Mycobacterium
tuberculosis H 37 Rv wurde in flüssigem Medium nach Dubos nach der Technik der aufeinanderfolgenden
Verdünnungen bestimmt. Das Ei^gebnis dieser Bestimmung ist
in der nachfolgenden Tabelle IV gezeigt.
I V
Produkt | ö71 672 |
RP RP |
Hemm konzentra t i on | gegenüber H | 37 | Rv | (x) | /Ug/ml |
23 23 |
0, 1, |
6 (1,25) 25 (5 ) |
(x) Die erste Zahl gibt die Konzentration an, bei der die
Hauptinhibierung der Kultur erhalten wird; die zweite Zahl (zwischen Klammern) gibt die Konzentration an,
bei der die vollständige Inhibierung auftritt.
Das 23 671 RP ist doppelt so wirksam als das 23 672 RP.
Die Aktivität des 23 671 RP in vitro wurde gegenüber gegen
verschiedene Antibiotika resistente Mycobakterien bestimmt, um eine eventuelle gekreuzte Resistenz zu zeigen. Trotz
sehr geringer Unterschiede in der Aktivität von einem Stamm zum andern behält das 23 071 RP seine Aktivität gegen Stämme,
die gegen Rifampicin, Streptomycin, Neomycin und Kanamycin hochgradig resistent sind, und gegenüber Stämmen, die gegen
Viomycin und Griselimycin mäßig resistent sind, bei.
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C - Toxizität
Das 2j5 671 RP weist eine mäßige Toxizität auf, und das
23 672 RP ist praktisch atoxisch, wie die folgenden Ergebnisse
zeigen. Die akute Toxizität wurde bei der Maus bei Verabreichung auf oralem Wege und auf subcutanem Wege bestimmt.
23 671 RP: DLC
750 mg/kg s.o. 585 mg/kg p.o.
23 672 RP: DL50 = atoxisch bei 25OO mg/kg s.c.
= atoxisch bei 25OO mg/kg p.o,
D - Antimikrobielle Wirksamkeit in vivo \ Die Aktivität der beiden Produkte bei der experimentellen
Infektion (auf intraperitonealern Weg) mit Staphylococcus ' der Maus wurde bei Verabreichung auf oralem Wege und auf
subcutanem Wege bestimmt.
Die DCp-0 bei der Behandlung von Staphylokokkeninfektion sind
in der nachfolgenden Tabelle V in mg/kg Körpergewicht angegeben.
Tabelle V
23 071 RP | p.o. | s.c. | 235 672 RP | p.o. | s.c. |
40 | 25 | 85 | 35 |
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E - Aktivität gegen Tuberkulose in vivo
Die Aktivität von 23 671 RP und 23 ü?2 RP in vivo wurde bei
mit einem virulenten menschlichen Stamm infizierten Mäusen bestimmt.
Bei Dosen zwischen 100 und 200 mg/kg s.c. und zwischen 100
und 250 mg/kg p.o. verlängern die Antibiotika 23 67I RP und 2^ 672 RP das Leben der behandelten Tiere gegenüber demjenigen von Vergleichstieren signifikant.
und 250 mg/kg p.o. verlängern die Antibiotika 23 67I RP und 2^ 672 RP das Leben der behandelten Tiere gegenüber demjenigen von Vergleichstieren signifikant.
Der die Antibiotika 23 671 RP und 23 672 RP erzeugende
Organismus ist ein Stamm von Streptomyces, der aus einer
in Indien entnommenen Erdprobe isoliert wurde und der die Nummer DS 12 370 erhalten hat. Dieser Stamm wurde im
Northern Regional Research Laboratory unter der Nummer NRRL 3892 hinterlegt und ist frei zugänglich. Dieser Organismus
weist Charakteristiken auf, die nicht ermöglichen, ihn als eine bereits beschriebene Species zu identifizieren,
und muß als eine neue Species angesehen werden, die die Bezeichnung Streptomyces chryseus erhalten hat.
Streptomyces chryseus, Stamm DS 12 370 bildet zylindrische Sporen mit Abmessungen von 0,3 bis 0,4 /u/0,8 bis 1,4 ,u. Die
Sporenfäden sind gerade oder schwach gebogen und zumeist isoliert auf den Fäden, die sie tragen, angeordnet. Sie sind
manchmal verhältnismäßig kurz, doch können sie eine beträchtlichere Länge haben, und bis zu mehreren zehn Sporen aufweisen.
Durch seine Sporulationsart läßt sich dieser Stamm in die Sektion Rectus-Flexibilis der Klassifikation nach Pridham einordnen
.
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Streptomyces chryseus, Stamm DS 12 370 entwickelt sich gut
bei 250C1 ziemlich gut bei 370C, weniger gut bei 450C und
nicht bei 500C. Er erzeugt kein Meianinpigment auf organischen
Medien. Die Färbung seines vegetativen Mycels ist ein beständiges Gelb, im allgemeinen in den heilehromgelben bis
dunkeIchromgelben Tönen. Er bildet ein weißes, im allgemeinen
ziemlich spärliches Luft-ausgesetztes Myeel. Dieses Luftausgesetzte
Mycel bleibt während des Auftretens der Sporulation weiß, die sich nur langsam und schwierig auf den
Medien entwickelt, auf denen sie auftritt.
Die Züchtungscharakteristiken und die biochemischen Eigenschaften von Streptomyces chryseus, Stamm DS 12 370 sind in
der nachfolgenden Tabelle VI zusammengestellt. Es sind dies
diejenigen von Kulturen, die ein gutes Entwicklungsstadium
erreicht haben, das heißt Kulturen von 3 Wochen bis zu 1 Monat bei 250C, falls es nicht anders angegeben ist. Diese
Eigenschaften wurden auf Nähragar und Bouillons beobachtet, die üblicherweise zur Bestimmung der morphologischen Eigenschaften
von Stämmen von Streptoaiyoes verwendet werden, wobei
die Kulturen auf Agarmedien auf Schrägagar durchgeführt wurden. Eine gewisse Anzahl der verwendeten Züchtungsmedien
wurden nach den Rezepturen hergestellt, die in "The Actinomyeetes", S.A. Waksman. Chronica Botanica Company, Waltham,
Mass., USA, 1950, Seite 193 ~ 197* angegeben sind. In diesem
Falle sind die Medien durch den Buchstaben W, dem die Nummer folgt, die ihnen in "The Actinomycetes" gegeben wurden, bezeichnet.
Die Literaturstellen oder die Zusammensetzungen der anderen Züchtungsmedien sind die folgenden:
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Anm. A: "Hickey and Tresner's Agar", T.G. Prldham u. Mitarb.,
Antibiotics Annual, 1956 - 1957, S. 950
Anm. B: K.L. Jones, Journal of Bacteriology, 57, 142, 1949
Anm. C: Rezeptur W-23, versetzt mit 2 % Agar
Anm. D: "Yeast Extract Agar", T.G. Pridham u. Mitarb.,
Antibiotics Annual, 1956 - 1957, S. 950
Antibiotics Annual, 1956 - 1957, S. 950
Anm. E: "Tomato Paste Oatmeal Agar", T.G. Pridham u. Mitarb.,
Antibiotics Annual, 1956 - 1957, S. 950
Anm. P: "Melanin formation medium", The Actinomycetes, Bd. 2,
S. yy$, No. 42, S.A. Waksman, The Williams and Wilkins
Company, Baltimore, I96I
Anm. G: W.E. Grundy u. Mitarb. ,Antibiotics and Chem. 2_, 401, 1952
Anm. H: "inorganic Salts - Starch Agar", T.G. Pridham u. Mitarb.,
Antibiotics Annual, 1956 - 1957, S. 951
Anm. I: entspricht der Rezeptur W-1, wobei 3 % Saccharose durch
1,5 % Glucose ersetzt sind
Anm. J: entspricht der Rezeptur W-1, wobei 3 % Saccharose durch
1,5 % Glycerin ersetzt sind
Anm. K: entspricht der Rezeptur W-I8, wobei 3 % Saccharose
durch 1,5 % Glucose ersetzt sind
Anm. L: entspricht der Rezeptur W-I8, wobei die Saccharose
weggelassen und durch kleine Filterpapierstreifen
ersetzt ist, die teilweise in die Flüssigkeit eintauchen
ersetzt ist, die teilweise in die Flüssigkeit eintauchen
Anm. M: "Manual of Methods for Pure Culture Study of Bacteria" der Society of American Bacteriologists, Geneva, N.Y.,
H50 - 18.
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Anm. N: "Plain Gelatin", hergestellt nach den Angaben in "Manual of Methods for Pure Culture" Study of
Bacteria" der Society of American Bacteriologists, Geneva, N.Y., H50 - 18
Anm. P: Handelsübliches Magermilchpulver, nach den Angaben
des Herstellers zubereitet
Anm. Q1: Für die Untersuchung der Produktion von H3S von
H.D. Tresner und P. Danga, Journal of Bacteriology, 76, 239 - 244, 1958, angegebenes Medium.
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Tabelle VI
ro
CD CD OO CO
Kulturmedium | Entwicklungs grad |
vegetatives Mycel (v.M.) oder Unter seite der Kultur |
Luft-ausgesetzter Teil (umfaßt Gesamt heit von Luft- ausgesetztem Mycel und Sporulation) |
Lösliches Pigment |
Beobachtungen und biochemi sche Eigen schaften |
(D | (2) | O) | (2O | (5) | (6) |
Agar nach Hickey und Tresner (Anm. A) |
gut | dickes und ge faltetes v.M., dunkelchromgelb |
weiß; sehr spärlich entwickelt |
keines | |
Agar nach Bennett (Anm. B) |
gut | dickes und ge faltetes v.M., dunkelchromgelb |
weiß; sehr schwache Spuren |
sehr schwach bräunlich gelb |
|
Agar nach Emerson (Anm. C) |
gut | dickes und ge faltetes v.M., dunkelchromgelb |
weiß; sehr geringe Spuren |
keines | |
Agar mit Hefeextrakt nach Pridham (Anm. D) |
gut | dickes und ge faltetes v.M., dunkelchromgelb |
keiner | keines | |
Agar mit Hafer und Tomate nach |
gut | dickes und ge faltetes v.M., hellbraungelb |
weiß; sehr spärlich entwickelt |
keines | |
ΓL lUüdHI (Anm. E) |
|||||
Grlucose- pepton- agar (W-b) |
gut | gelbbraune Unterseite |
weiß; ziemlich gut entwickelt |
sehr schwach braungelb |
σ\ ι
tv) fsj
CD CD O CD
PO O CD
(D | (2) | b) | (4) | keiner | (5) | (6) |
Nähragar (W-5) |
mäßig | hellbraungelbes v.M. |
weiß; mäßig ent wickelt |
keines | ||
Tyrosin- Hefeextrakt- agar zur Bildung von Melanin (Anm. P) |
ziemlich gut | hellgelbe Unterseite |
weiß; spärlich entwickelt |
keines | Bildung von Melanin: negativ (nach den Angaben des Autors durchgeführte Ablesungen) |
|
Agar mit Calcium- malat nach Krainsky (Anm. G) |
sehr mäßig | hellbraun gelbe Unter seite |
keiner | keines | Löslich- machung von Malat: positiv, ziemlich gut |
|
Agar mit Ovalbumin (W-12). |
sehr spärlich | schwach gelbliches v.M.; sehr spärlich entwickelt |
keiner | keines | ||
Glucose- asparagin- agar (W-2) |
mittel | hellchromgelbes v.M. |
weiß; in Form von Spuren |
schwach bräun lich- gelb |
||
Glycerin- asparagin- agar (w-3) |
ziemlich gut | d unke1chromgelbe s v.M. |
schwach bräun- lich- ' gelb |
O CO O
(D | (2) | (3) | (4)·. | weiß; | (5) | (6) |
Agar mit | gut | dickes und ge | sehr spärlich | keines | zylindrische | |
Stärke nach | faltetes v.M., | entwickelt | Sporen mit | |||
Pridham | dunkelchromgeIb | Abmessungen von | ||||
(Anm. H) | 0,3 - 0,4/U / 0,8 - 1,4yu; |
|||||
gerade oder ge | ||||||
bogene Sporen | ||||||
fäden | ||||||
Hydrolyse von | ||||||
Stärke: | ||||||
weiß; | positiv | |||||
Stärke-Nitrst- | gut | dickes und ge | in Form von | keines | Hydrolyse von | |
Agar | faltetes v.M., | Spuren | Stärke: | |||
(W-10) | he1Igelbbraun; | positiv | ||||
dunkelchrom- | ||||||
gelbe Unterseite | weiß; | |||||
Syntheti | gut | dickes und ge | sehr spärlich | schwach | ||
scher Agar | faltetes v.M., | entwickelt | braun | |||
nach Czapek | hellchromgelb; | gelb | ||||
mit Saccha | dunkelchromgelbe | |||||
rose | Unterseite | |||||
(w-D | weiß; | |||||
Syntheti | ziemlich gut | heiIchromgelbe | sehr spärlich | schwach^ | ||
scher Agar | Unterseite | entwickelt | braungeit | |||
nach Czapek | ||||||
mit Glucose | ||||||
(Anm. I) | weiß; | |||||
Syntheti | gut | dunkelchromgelbe | sehr mäßig | schwach | zylindrische | |
scher Agar | Unterseite | entwickelt | gelb | Sporen mit Ab | ||
nach Czapek | braun | messungen von | ||||
mit Glycerin | 0,3 - 0,4/U / A R Λ Il f \ ι · |
|||||
(Anm. J) | gerade δα^v*ge | |||||
I | bogene Sporen- | |||||
.1 | - - | # | fäden |
CD CO CD CD
ro
CD CD
00 CO
(D | (2) | O) | (2O | (5) | (6) |
Stärke - Nitrat- Bouillon (W-19) |
ziemlich gut | dicker Schleier; gelbe Unterseite |
weiß; sehr mäßige entwickelt . |
keines | Produktion von Nitriten aus Nitraten: stark positiv |
Bouillon naoh Czapek mit Saccha rose (W-18) |
mittel | weißlicher Schleier | weiß; mäßig entwickelt |
keines | Produktion von Nitriten aus Nitraten: stark positiv |
Bouillon nach Czapek mit Glucose (Anm. K) |
mittel | weißlicher Schleier: | weiß; sehr mäßig ■ entwickelt |
keines | Produktion von Nitriten aus Nitraten: stark positiv |
Bouillon nach Czapek mit Cellu lose (Anm. L) |
keiner | keine Verwer tung von Cellulose |
|||
Nitratierte Nährbouillon (Anm. M) |
ziemlich gut | ziemlich gut ent wickelter Schleier; gelbliche Unterseite |
weiß; mäßig entwickelt |
keines | Produktion von Nitriten aus Nitraten: stark positiv |
Kultur auf Kartoffeln (W-27) . |
sehr gut | sehr dickes und stark gefaltetes v.M., Chromgelb |
weiß; in Form von Spüren |
schwach bräun lich |
ro ο to
CD CD
VD
ro
CD CD OO CO
(D | (2) | (3) | (*) | (5) | (6) |
Reine Gelatine mit 12 % (Anm. N) |
gut | dicke zentrale Kolonie; hellgelbe Unterseite |
weiß; mittelmäßig entwickelt |
keines | gute Ver flüssigung von Gelatine |
Magermilch a) bei 250C (Anm. P) |
gut | hellgelblicher Ring |
Peptonisation mit anschlie ßender Ko agulation; wenig Ver änderung des pH-Werts |
||
Magermilch b) bei 370C |
mäßig | schlecht ent wickelter gelber Ring |
Koagulation mit anschließender Peptonisation; sehr schwaches Sauerwerden des pH-Werts |
||
Agar nach Presner und Danga (Anm. Q) |
gut | gelbes v.M. | weiß; spärlich entwickelt |
sehr schwach bräun lich |
Produktion von H2S: negativ (nach den An gaben des Autors durch geführte Ab lesungen) |
CD CD CD
ro
Streptomyces chryseus, Stamm DS 12 JfJO weist eine Gesamtheit
von Eigenschaften auf, die mit keiner derjenigen der bereits beschriebenen Stämme genau übereinstimmt.
Unter den Species, deren Beschreibung in "Bergey^s Manual of
Determinative Bacteriology" (7· Auflage, The Williams and Wilkins Company, Baltimore, I96I) sowie in "The Actinomycetes"
(Bd. 2, S.A. Waksman, The Williams and Wilkins Company, Baltimore,
1901) gegeben ist, ist die Species, der er sich durch
seine Eigenschaften am meisten nähert, in einem oder dem anderen dieser Werke Streptomyces achromogenes.
Wie S. chryseus, Stamm DS 12 370 produziert S. achromogenes
ein braunes lösliches Pigment hauptsächlich auf synthetischen Medien und kein solches Pigment oder ein solches Pigment
nur in sehr schwacher Weise auf den meisten organischen Medien. Er bildet gerade oder gebogene nicht spiralige Sporophoren,
und seine Sporen sind zylindrisch.
S. achromogenes zeigt jedoch ein vegetatives Mycel, dessen
Tönung je nach den Medien ungefärbt bis bräunlich oder braungelblich ist, wobei die Tönung selbst nach braunrötlich auf
"Eimedien" geht. Diese Tönungen sind mit dem ausgeprägten Chromgelb nicht vergleichbar, das das vegetative Mycel von
Streptomyces chryseus, Stamm DS 12 JfJO auf der Gesamtheit aller Medien, sowohl der synthetischen als auch der organischen,
auf denen er gezüchtet wurde, färbt. Außerdem bildet S. achromogenes im Gegensatz zu S. chryseus, Stamm DS 12 JfJO
auf "Glycerin-Nitrat-Agar" ein Luft-ausgesetztes Mycel, das
eine dunkelgräuliche Färbung erreicht, produziert ein braunrötliches lösliches Pigment auf Kartoffeln und ein hellbraunes
lösliches Pigment auf Gelatine und verflüssigt diese letztere nur sehr schwach. Dies ist der Grund, warum die beiden Stamme,
obwohl sie sich in gewissen Punkten ähnlich sind, nicht als vergleichbar angesehen werden können.
209837/1247
Die Fähigkeit von S. chryseus, Stamm DS 12 370, verschiedene
Kohlenstoffquellen und Stickstoffquellen zur Gewährleistung seiner Entwicklung zu verwerten, wurde nach dem Prinzip der
Methode nach Pridham und Gottlieb (J. of Ba'ct. 56, 107 - 114,
19^8) bestimmt. Der Entwicklungsgrad wurde auf dem von diesen
Autoren angegebenen Grundmedium beobachtet, wobei die Glucose durch die verschiedenen jeweilig untersuchten Kohlenstoffquellen
oder das (NH^)2SOh durch die verschiedenen jeweils
untersuchten Stickstoffquellen ersetzt wurde, und zwar nach einer geeigneten Inkubationszeit bei 250C. Die Ergebnisse
sind in der nachfolgenden Tabelle angegeben.
209837/1247
Tabelle VII
Geprüfte Kohlen stoffquellen |
Verwertung | negativ | Geprüfte Stick st off quellen |
Verwertung | negativ |
J-Ribose | positiv | NaNCK | positiv | ||
D-Xylose | positiv | NaNO2 | positiv | ||
L-Arabinose | (NH^)2SO4 | positiv | zögernd | ||
L-Rhamnose | positiv | (NH^)2HPO4 | positiv | negativ | |
b-Glucose | positiv | Adenosin | positiv | ||
L D-Galactose |
positiv | negativ | Uracil | ||
D-Fructose | positiv | zögernd | Harnstoff | positiv | |
D-Mannose | positiv | L-Asparagin | positiv | ||
L-Sorbose | Glykokoll | positiv, | |||
Lactose | positiv, | Sarcosin | negativ | ||
Maltose | positiv | DL-Alanin | positiv | ||
Saccharose | positiv | negativ | DL-Valin | positiv | |
- Trehalose | positiv | DL-Asparaginsäure | positiv | zögernd | |
Cellobiose | positiv | negativ | L-Glutaminsäure | positiv | negativ |
Raffinose | L-Arginin | positiv | |||
Dextrin | positiv | L-Lysin | |||
Inulin | DL-Serin | positiv | negativ | ||
Stärke | positiv | negativ | DL-Threonin | positiv | |
Glykogen | positiv | DL-Methionin | positiv. | ||
Glycerin | positiv | negativ | Taurin | negativ | |
Erythrlt | L-Tyrosin | positiv | |||
Adonit | positiv | DL-Prolin | positiv | ||
Dulcit | L -Hy d r oxy pr ο 1 in | ||||
D-Mannit | positiv | L-Histidin | positiv | ||
D-Sorbit | positiv | L-Tryptophan | positiv | ||
Inosit | positiv | Betain | |||
209837/1247
2209057
Verfahren zur Herstellung der Antibiotika 23 671 RP und 23 67g RP
Das Verfahren zur Herstellung von 23 671 RP und 23 072 RP besteht
im wesentlichen darin, Streptornyces chryseus, Stamm.
DS 12 370 oder seine Mutanten in einem geeigneten Medium und unter geeigneten Bedingungen zu züchten und die im Verlaufe der Züchtung gebildeten Produkte abzutrennen.
DS 12 370 oder seine Mutanten in einem geeigneten Medium und unter geeigneten Bedingungen zu züchten und die im Verlaufe der Züchtung gebildeten Produkte abzutrennen.
Die Züchtung von Streptomyces chryseus, Stamm DS 12 yjO kann
nach jeder beliebigen aeroben Oberflächenzüchtungsmethode oder SubmerszUchtungsmethode erfolgen, doch ist die letztere aus
Gründen der Bequemlichkeit zu bevorzugen. Man verwendet zu
diesem Zweck die verschiedenen Apparaturtypen, die jetzt
üblicherweise in der FermentetionsIndustrie verwendet werden.
diesem Zweck die verschiedenen Apparaturtypen, die jetzt
üblicherweise in der FermentetionsIndustrie verwendet werden.
Man kann insbesondere den folgenden Weg für die Durchführung der Arbeitsgänge einschlagen:
Streptomyces chryseus, DS 12 370 - Stammansatz
Kultur auf Agar
Kultur im Kolben unter Bewegung
Impfkultur im Fermenter
Produktionskultur im Fermenter
209837/1247
Das Permentationsmedium soll im wesentlichen eine assimilierbare Kohlenstoffquelle und eine assimilierbare Stickstoffquelle,
Mineralstoffe und gegebenenfalls Wachstumsfaktoren enthalten, wobei alle diese Bestandteile in Form von gut definierten Produkten
oder von komplexen Gemischen, wie man sie in biologischen Produkten verschiedenen Ursprungs antrifft, zugeführt
werden können.
Als assimilierbare Kohlenstoffquellen kann man Kohlehydrate, wie beispielsweise Glucose, Maltose, Dextrine, Stärke,oder andere
Kohlehydratsubstanzen, wie beispielsweise Zuckeralkohole, z.B. Glycerin oder Mannit, oder wie gewisse organische Säuren,
verwenden. Gewisse tierische oder pflanzliche öle, wie beispielsweise
Schmalzöl oder Sojaöl, können mit Vorteil diese verschiedenen Kohlehydratqueilen ersetzen oder ihnen beigefügt
werden.
Die geeigneten assimilierbaren Stickstoffquellen sind außerordentlich
verschiedenartig. Sie können sehr einfache chemische Substanzen, wie beispielsweise anorganiscne oder organische
Ammoniumsalze, Harnstoff und gewisse Aminosäuren, sein. Sie können auch in Form von komplexen Substanzen, die den
Stickstoff hauptsächlich in protidischer Form enthalten, zugeführt
werden, wie beispielsweise in Form von Casein, Lactalbumin,
Gluten und deren Hydrolysate*!., Sojamehl, Arachismehl,
Fischmehl, Fleischextrakten, Hefe extrakt en, Distillers'
Solubles und Maisqueliwasser.
Unter den zugeführten mineralischen Stoffen können gewisse eine Pufferwirkung oder eine neutralisierend® Wirkung besitzen,
wie beispielsweise die Alkali- oder Erdalkaliphosphate oder Calcium- und Magnesiumcarbonate
209837/1247
Andere führen zu dem zur Entwicklung von Streptomyces chryseus,
Stamm DS 12 370 und zur Erzeugung von 23 671 RP und 23. 672 RP
erforderlichen Ionengleichgewicht, wie beispielsweise Alkali- und Erdalkalichloride und -sulfate. Schließlich wirken gewisse
in spezieller Weise als Aktivatoren der Stoffwechselreäktionen von Streptomyces chryseus. Es sind dies die Zink-, Kobalt-,
Eisen-, Kupfer- und Mangansalze.
Der pH-Wert des Fermentationsmediums sollte zu Beginn der Züchtung zwischen 6,0 und 7,8 und vorzugsweise zwischen 6,5
und 7,5 liegen. Die zur Fermentation optimale Temperatur beträgt 25 bis 300C, doch wird auch eine zufriedenstellende
Produktion bei Temperaturen zwischen 23 und 33°C erhalten.
Die Belüftung der Züchtung kann zwischen ziemlich weiten Werten variieren. Es wurde jedoch gefunden, daß Belüftungen
von 0,3 bis 3 Liter Luft je Liter Bouillon und je Minute besonders
gut geeignet sind. Die maximale Ausbeute an 23 67I RP
und 23 672 RP wird nach 2- bis 8-tägiger Züchtung erhalten, wobei diese Zeitspanne hauptsächlich von dem verwendeten Medium
abhängt.
Das 23 671 RP und das 23 672 RP können aus den Fermentations maischen
in verschiedener Weise isoliert werden:
Das Gemisch der beiden Antibiotika wird direkt aus den Fermentationsmaischen
mit mit Wassern nicht mischbaren Lösungsmitteln, wie beispielsweise aliphatischen Alkoholen mit zumindest
4 Kohlenstoffatomen, wie Butanol, Estern, wie Äthylacetat, chlorierten Lösungsmitteln, wie Dichloräthan, Methylenchlorid
oder Chloroform, und Ketonen, wie Methylisobutylketon, extrahiert. Es ist vorteilhaft, diesen Arbeitsgang bei pH 7
oder einem schwach alkalischen pH-Wert vorzunehmen.
209837/1 247
Nach Filtrieren und Dekantieren kann das rohe Gemisch aus den zuvor genannten organischen Lösungen durch Einengen der Lösung
unter vermindertem Druck und anschließende Ausfällung mit einem Nichtlösungsmittel oder schlechten Lösungsmittel,
wie beispielsweise Hexan, isoliert werden.
Die Trennung der Antibiotika 23 671 RP und 23 672 RP kann aus
den organischen Extrakten der Fermentationsmaischen, gegebenenfalls nach Einengen dieser Extrakte, durch Anwendung geeigneter
chromatographischer Techniken vorgenommen werden. Eine bequeme Arbeitsweise besteht darin, das aus der Extraktion
der Maische stammende Gemisch durch Leiten über eine Kolonne von Florisil (Magnesiumsilicat) unter gradieller Elution mit
Lösungsmitteln mit einem System auf der Basis von chlorierten Lösungsmitteln zu fraktionieren. Diese erste Fraktionierung,
die durch chromatographische Analyse des Eluats durch Dünnschichtchromatographie
an Kieselgel geleitet wird, führt zu zwei Fraktionen: Fraktion A, die an 23 67I RP angereichert
ist und noch 23 672 RP enthält, und einer weiteren Fraktion B mit einem großen Mengenanteil an 23 672 RP, die noch 23 67I RP
enthält.
Die Fraktion A wird ihrerseits durch Chromatographie an einer
Silicagel- oder Aluminiumoxydsäule unter Elution mit einem System von Lösungsmitteln steigender Polaritäten fraktioniert.
Ein geeignetes System ist beispielsweise ein Gemisch von Hexan und Äthylacetat, das fortschreitend an Äthylacetat angereichert
ist, oder eine Reihe von reinen oder gemischten oder mit einem niedrigen Alkohol, wie beispielsweise Methanol, versetzten
chlorierten Lösungsmitteln.Die Fraktionen, die das 23 67I RP
enthalten, werden durch chromatographische DünnschichtanaIyse
mittels Kieselgel festgestellt. Das 23 671 RP wird schließlich durch Umkristallisation aus einem Gemisch Äther-Hexan
und anschließendes Waschen der Kristalle mit Isopropyläther gereinigt. 209837/1247
Die Fraktion B wird ebenfalls zur Isolierung des 23 672 RP
durch erneute Führung durch eine Kolonne von Florisil unter Elution mit einer Reihe von Lösungsmitteln steigender Polarität
auf der Basis von chlorierten Lösungsmitteln und A'thylacetat fraktioniert. Die fraktionierte Elution wird durch
Analyse durch Dünnschichtchromatographie unter Verwendung von Kieselgel verfolgt, und das isolierte 23 672 RP wird
durch Umkristallisation aus einem Gemisch Äther-Hexan und anschließende Umkristallisation aus Tetrachlorkohlenstoff
gereinigt.
Die folgenden Beispiele dienen zur weiteren Erläuterung der Erfindung. Im folgenden wird die Aktivität stets mittels
mikrobiologischer Diffusionsmethode mit Staphylococcus aureus 209 P (ATCC 6538 P) als empfindlichem Keim und, bezogen auf
eine halb gereinigte Probe von 23 671 RP, die als Eichmaß
für die Bestimmung verwendet wird und einen Gehalt von 64O/Ug/mg aufweist, bestimmt.
Diese Aktivität wird in /Ug/mg für die Festsubstanzen ausgedrückt.
Die Aktivität von 23 672 RP wird ebenfalls in /Ug/mg
ausgedrückt. Hierbei wird berücksichtigt, daß bei der Methode durch Diffusion das 23 67I RP viermal so aktiv als das
23 672 RP gegenüber Staphylococcus aureus 209 P ist.
209837/1247
- 29 Beispiel 1
In einen 170 Liter-Fermenter | 600 g |
teile ein: | 600 g |
Peρton | 1200 g |
Fleischextrakt | 600 g |
Dextrose | 240 g |
Natriumchlorid | ad 110 1 |
Agar | |
Leitungswasser | |
Der pH-Wert wird mit 14O cnr 1On-Natronlauge auf 7*50 eingestellt. Man sterilisiert das Medium durch Einleiten von
Dampf von 1220C während 4o Minuten. Nach Abkühlen beträgt das
Volumen der Bouillon 120 1 und der pH-Wert 6,90. Man beimpft mit 200 cnr einer gerührten bzw. geschüttelten Erlenrneyer-Kultur
von Streptomyces chryseus, DS 12 370 (NRRL 3892). Die
Kultur wird bei 300C 26 Stunden lang unter Bewegung und unter
Belüftung mit steriler Luft entwickelt. Sie ist dann zur Beimpfung der Produktionskultur geeignet.
Die Produktionskultur wird in einem 800 Liter-Fermenter durchgeführt,
der mit den folgenden Substanzen beschickt ist: Distillers1 Solubles 2 kg
Prinzeßbohnen 16 kg
Prinzeßbohnen 16 kg
Glycerin 4 kg
Natriumchlorid 2 kg
Leitungswasser ad 360 1
-7.
Der pH-Wert wird mit 400 cnr 10n-Natronlauge auf 8,25 eingestellt.
Man sterilisiert das Medium durch Durchleiten von Dampf von 1220C während 40 Minuten. Nach Abkühlen setzt man
zu der Bouillon 10 1 einer sterilen wässrigen Lösung mit einem Gehalt von 4 kg Dextrose zu.
209837/1247
Das Gesamtvolumen der Bouillon beträgt dann 400 1 und der pH-Wert 6,90. Man beimpft mit 4o 1 der zuvor beschriebenen
Impfkultur aus dem 170 Liter-Fermenter. Die Züchtung
wird bei 280C während 97 Stunden unter Bewegen mittels einer
Turbine, die mit 260 U/min betrieben wird und unter Belüftung mit steriler Luft in einer Menge von 35 m /Stunde
durchgeführt. Der pH-Wert beträgt dann 7,55 und das Volumen
der Maische 370 l.Die vorhandene Antibiotikamenge beträgt 110/ug/cm .
10 1 der gemäß Beispiel 1 erhaltenen Maische mit einem Gehalt von 85 /Ug/cm werden in einen mit einem Rührer ausgestatteten
Behälter eingebracht und mit 900 g Filterhilfe versetzt·. Das Rühren wird eine Viertelstunde bei pH 7*5 fortgesetzt.
Das Gemisch wird über ein Filter, das mit einem Bett von 2 kg Filterhilfe versehen ist, filtriert. Man gewinnt 10 1
Filtrat.
Dieses Filtrat wird aufeinanderfolgend mit 4 1 und 3 1 Butanol
extrahiert, wobei das Gemisch mit einer 6n-Chlorwasserstofflösung
auf pH 7 eingestellt wird.
Der Butylextrakt wird bei 300C unter vermindertem Druck
(20 mm Hg) bis auf ein Volumen von 100 cnr eingeengt.
209837/1247
Durch Zugabe von 1 1 Hexan zu dem Rückstand wird ein rohes Gemisch von 23 671 RP und 23 672 RP ausgefällt, das gewaschen,
abgesaugt und getrocknet wird. Das Gemisch wiegt 2,1 g und liegt in Form eines braunen amorphen Pulvers mit
einem Gehalt von 36yug/mg vor.
380 1 gemäß Beispiel 1 erhaltene Maische mit einem Gehalt
von 110/Ug/cnr werden in ein mit einem Rührer ausgestattetes
Gefäß eingebracht, und der pH-Wert wird mittels einer ver-•
dünnten Natriumhydroxydlösung auf 8 eingestellt. Das Rühren wird 1/2 Stunde fortgesetzt. Dann setzt man 30 kg Filterhilfe
zu. Das Gemisch wird auf einer Filterpresse filtriert und der Filterkuchen mit 100 1 Wasser, das mit 6n-Natronlauge
bis zu pH 8 alkalisch gemacht ist, gewaschen.
Das Filtrat, dessen Volumen 380 l beträgt, wird durch Zugabe
einer 6η-SaIzsäurelösung auf pH 7 eingestellt, 10 Minuten
gerührt und dann im Gegenstrom mittels einer 2rstufigen
Zentrifuge mit 230 1 Methylenchlorid extrahiert.
Der Methylenchloridextrakt wird unter vermindertem Druck (20 mm Hg) bei 300C bis auf ein Volumen von 1 1 eingeengt.
Das Methylenchloridkonzentrat wird dann durch eine Säule von 1,5 kg Florisil (Durchmesser: 7*5 cm; Höhe: 65 cm) geleitet.
Das Konzentrat durchströmt das Florisil von oben nach unten in 3 Stunden. Die Säule wird anschließend weiter von oben
nach unten mit 15 1 Methylenchlorid in einer Menge von 1,5 1/ Stunde gewaschen. Die verschiedenen Abflußflüssigkeiten werden
verworfen, und die Kolonne wird dann mittels eines Lösungsmittelgradienten durch fortschreitende Zugabe von 20 1
eines Methylenchlorid-Methanol-Gemischs (95 : 5 Volumina)
zu 5 1 Methylenchlorid eluiert. Der Elutionsdurchsatz beträgt 1,5 l/Stunde. 209837/1 247
Das Eluat wird alle 500 cnr fraktioniert. Man erhält so
44 Fraktionen. Jede Fraktion wird durch Dünnschichtchromatographie durch Aufbringen von 20/Ul Lösung auf eine Dünnschicht
aus Silicagel Merck F 254 in gesättigter Kammer (bei
22°C) und mit einem Lösungsmittelgemisch CHCl^-CH^OH
(87 t 13 Volumina) analysiert. Die Wanderungen werden durch
Aufsprühen von konzentrierter Schwefelsäure nachgewiesen. Die Rf-Werte sind die folgenden:
23 671 RP Rf= 0,55 2^ 072 RP Rf = 0,45·
Nach den Ergebnissen dieser Analyse sammelt man getrennt die Fraktionen, die hauptsächlich 23 67I RP enthalten, und diejenigen,
die hauptsächlich 2} 672 RP enthalten, und engt die so erhaltenen beiden Lösungen bei 300C unter vermindertem
Druck (20 mm Hg) zur Trockne ein.
Man erhält so 30 g rohes 2J>
67I RP' in Form eines hellbeigen amorphen Pulvers mit einem Gehalt von 525 /Ug/mg und 7 g
rohes 23 762 RP in Form eines hellbeigen amorphen Pulvers.
36 g gemäß Beispiel 3 hergestelltes rohes 23 67I RP mit
einem Gehalt von 815/Ug/mg werden durch Rühren in I80 cm
Aceton gelöst.
Die Acetonlösung wird mit 220 g Kieselgel Merck F 254 (0,05
bis 0,2 mm) versetzt. Dann wird das Ganze bei 45eC unter
vermindertem Druck (20 mm Hg) 4 Stunden getrocknet.
209837/ 1247
Der Rückstand wird auf das obere Ende einer Säule von 2 kg Kieselgel Merck P 254 (0,05 - 0,2 mm), eingefüllt in Hexan,
(Durchmesser 5 cm; Höhe 1 m) aufgebracht.
Die Kolonne wird nacheinander wie folgt gewaschen mit:
5 1 Hexan
8 1 Hexan-Äthylacetat-Gemisch (75 : 25 Volumina) '
8 1 Hexan-Äthylacetat-Gemisch (50 : 50 Volumina)
6 1 Hexan-Äthylacetat-Gemisch (25 : 75 Volumina)
Die Abflußflüssigkeiten werden verworfen.
Die Säule wird dann mit 12 1 Äthylacetat eluiert. Das Eluat
wird alle 100 cnr fraktioniert, und die Fraktionen werden durch Dünnschichtchromatographie nach der zuvor beschriebenen
Technik analysiert.
Die das 23 67I RP enthaltenen Fraktionen werden bei
unter vermindertem Druck (20 mm Hg) zur Trockne eingeengt.
Man erhält so 20 g Antibiotikum 23 671 RP in Form eines
gelblichen amorphen Pulvers mit einem Gehalt von praktisch 1000/Ug/mg.
209837/1247
16,5 g des gemäß Beispiel 3 hergestellten rohen 23 67I RP
mit einem Gehalt von 400 /Ug/mg werden unter Rühren in
250 cnr Methylenchlorid gelöst. Man setzt 250 cm Isopropyläther
zu dieser Methylenchloridlösung zu. Das erhaltene Gemisch wird dann über einem Faltenfilter geklärt und dann
durch eine Säule von 400 g auf pH 4 angesäuertem Aluminiumoxyd geleitet (Durchmesser: 4 cm; Höhe: 33 cm).
Man entwickelt die Säule durch aufeinanderfolgendes Durchleiten in der folgenden Reihenfolge:
1.) 1 1 Methylenchlorid-Isopropyläther-Gemisch (1 : 1 Volumina)
2.) 1 1 reines Methylenchlorid
3.) 11 Methylenchlorid-Chloroform-Gemisch (1:1 Volumina)
4.) 11 reines Chloroform
5«) 1 1 Chloroform-Methanol (9 : 1 Volumina)
Man erhält so 5 Fraktionen F 1, F 2, F 3, F 4 und F 5, die
durch DUnnschichtchromatographie nach der ζμνοΓ beschriebenen
Technik geprüft werden.
Die Fraktion F 1 ist ohne Interesse und wird verworfen.
Die Fraktionen F 2 und F 3 werden vereinigt und bei 300C
unter vermindertem Druck (20 mm Hg) zur Trockne eingeengt. Man erhält so 8,3 g Antibiotikum 23 671 RP in Form eines
weißlichen amorphen Pulvers mit einem Gehalt von 1000yUg/mg.
Die Fraktionen F 4 und F 5 werden vereinigt und dann wie zuvor zur
Trockne eingeengt. Man erhält so 7,2 g Antibiotikum 23 672 RP
in Form eines weißlichen amorphen Pulvers mit einem Gehalt von 860 yug/mg an 23 672 RP.
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20 g Antibiotikum 23 671 RP, hergestellt gemäß Beispiel 5, werden unter Rühren in 400 cnr Äthyläther gelöst. Die erhaltene
Lösung wird durch Filtrieren über ein Faltenfilter geklärt.
Man setzt langsam und unter Rühren 16OO cnr Hexan zu. Das
erhaltene Gemisch wird 2 Stunden bei 40C stehengelassen. Es
scheiden sich Kristalle ab, die abfiltriert, gewaschen und getrocknet werden. Man erhält so 18 g Antibiotikum 23 671 RP
in Form eines weißen kristallinen Pulvers.
25 g kristallisiertes Antibiotikum 23 671 RP, hergestellt
gemäß Beispiel 6 werden in 515 cnr Isopropyläther unter kräftigem
Rühren, das 2 Stunden aufrechterhalten wird, suspendiert.
Die Suspension wird anschließend über ein Glasfrittenfilter
filtriert. Das erhaltene Produkt wird gewaschen und unter vermindertem Druck (5 mm Hg) bei 500C 24 Stunden getrocknet.
Man erhält so 20,2 g Antibiotium 23 67I RP in Form eines
weißen kristallinen Pulvers mit einem Gehalt von 1000 /Ug/mg.
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13 g rohes 23 6'J 2 RP, hergestellt nach der in Beispiel 3 angegebenen
Weine, werden in 1300 crn Aceton gelöst. Die
Acetonlösung wird durch Zugabe von J, 1 g Aktivkohle 2 S
entfärbt.
Acetonlösung wird durch Zugabe von J, 1 g Aktivkohle 2 S
entfärbt.
Die so entfärbte Acetonlösung wird bei 300C unter vermindertem
Druck (20 mm Hg) zur Trockne eingeengt.
Der Rückstand wird in 50 cm Benzol wieder in Lösung gebracht
und auf das obere Ende einer Säule von 500 g Florisil aufgebracht (Durchmesser: 1,5 cm; Höhe: 55 cm).
Die Säule wird nacheinander mit den folgenden Mitteln gewaschen :
2 1 Benzol
3 1 Methylenchlorid
2 1 Methylenchlorid-Äthylacetat-Gemisch (95 : 5 Volumina)
2 1 Methylenchlorid-Äthylacetat-Gemisch (90 : 10 Volumina)
2 1 Methylenchlorid-Äthylacetat-Gemisch (80 : 20 Volumina)
5 1 Methylenchlorid-Äthylacetat-Gemisch (50 : 50 Volumina)
2 1 Äthylacetat
Man erhält so mehrere Fraktionen, die durch Dünnschicht Chromatographie
nach der zuvor angegebenen Technik analysiert werden.
Die an 23 672 RP reichen Fraktionen werden vereinigt und dann
bei 300C unter vermindertem Druck (20 mm Hg) zur Trockne eingeengt.
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Man erhält so 4 g halb gereinigtes 23 672 RP in Form eines
weißlichen amorphen Pulvers."
4 g gemäß Beispiel 8 hergestelltes 23 ü72 RP werden in 80 cm-5
Diäthyläther gelöst. Die Kristallisation wird durch langsame Zugabe von 120 cnr Hexan bewirkt.
Man erhält so 2,5 S weiße Kristalle mit einem Gehalt von
1000/Ug/mg.
8 g gemäß Beispiel 9 hergestelltes kristallisiertes Antibiotikum 2^ 672 RP werden in 800 cnr Tetrachlorkohlenstoff
unter kräftigem Rühren, das 2 Stunden aufrechterhalten wird,
suspendiert.
Die erhaltene Suspension wird über ein Glasfrittenfilter
filtriert. Die Kristalle werden mit 50 cm Tetrachlorkohlenstoff
gewaschen und dann 2 Stunden bei 4o°C unter vermindertem Druck (5 mm Hg) getrocknet.
Das trockene Produkt wird erneut in I50 cm Tetrachlorkohlenstoff
suspendiert, und das Gemisch wird 1 Stunde unter Rückfluß erhitzt. Die erhaltene Lösung wird langsam gerührt und
15 Stunden bei 200C und dann 24 Stunden bei O0C gekühlt. Es
bilden sich Kristalle, die abfiltriert, gewaschen und 15 Stunden bei 450C unter vermindertem Druck (5 mm Hg) getrocknet
werden.
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Man erhält so 4,2 g Antibiotikum 23 672 RP in Form eines
weißen kristallinen Pulvers mit einem Gehalt von 1000/Ug/mg.
Die vorliegende Erfindung betrifft auch die medizinischen Zusammensetzungen, die zumindest eines der erfindungsgemäßen
Produkte zusammen mit jedem anderen verträglichen Produkt, das inert oder selbst physiologisch wirksam sein kann, enthalten.
Diese Zusammensetzungen können in jeder geeigneten pharmazeutischen
Form zur Verabreichung auf dem vorgesehenen Wege vorliegen.
Der Mengenanteil des oder der wirksamen Produkte in diesen Zusammensetzungen kann nach dem gewünschten therapeutischen
Effekt variieren.
In der Humantherapie sind die neuen erfindungsgemäßen Produkte
insbesondere bei Staphylokokkeninfektionen und tuberkulösen Affektionen wirksam. Sie können auf oralem, rektalem oder
parenteralem Wege verabreicht werden, wobei der orale Verabreichungsweg
der bevorzugte Verabreichungsweg bleibt. Die täglichen Dosen betragen 250 mg bis 3 g für einen Erwachsenen.
Als feste Zusammensetzungen zur Verabreichung auf oralem Wege
können Tabletten, Pillen, Pulver oder Granulate verwendet werden. Diese Zusammensetzungen können 0,5 bis 95 % an erfindungsgemäßer
Wirksubstanz, gemischt mit einem oder mehreren inerten Verdünnungsmitteln, wie beispielsweise Saccharose,
Lactose oder Stärke, enthalten. Diese Zusammensetzungen können auch andere Substanzen als die Verdünnungsmittel, wie
beispielsweise ein Gleitmittel, z.B. Magnesiumstearat, enthalten.
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Als flüssige Zusammensetzungen zur oralen Verabreichung kann man pharmazeutisch verwendbare Emulsionen, Lösungen,
Suspensionen, Sirupe und Elixiere verwenden, die inerte Verdünnungsmittel, wie beispielsweise Wasser oder Paraffinöl
enthalten. Diese Zusammensetzungen können auch andere Substanzen als die Verdünnungsmittel, wie beispielsweise
Netzmittel, Süßstoffe, geschmacksverbessernde Mittel oder Aromastoffe, enthalten.
Die erfindungsgemäßen Zusammensetzungen zur parenteralen
Verabreichung können sterile nicht-wässrige Lösungen, Suspensionen
oder Emulsionen sein. Als Lösungsmittel oder Träger kann man Propylenglykol, Polyäthylenglykol, pflanzliche
öle, insbesondere Olivenöl, und injizierbare organische
Ester, wie beispielsweise A'thyloleat, verwenden. Diese Zusammensetzungen können auch Adjuvantien, insbesondere Netzmittel,
Emulgiermittel und Dispergiermittel, enthalten. Die Sterilisation kann auf verschiedenen Wegen vorgenommen werden,
beispielsweise mittels eines bakteriologischen Filters, durch Einbringen von sterilisierenden Mitteln in die Zusammensetzung,
durch Bestrahlung oder durch Erhitzen. Sie können auch in Form von sterilen festen Zusammensetzungen
hergestellt werden, die zum Zeitpunkt des Gebrauchs in sterilem Wasser oder jedem anderen injizierbaren sterilen
Medium gelöst oder dispergiert werden können.
Die Zusammensetzungen zur rektalen Verabreichung sind Suppositorien,
die außer dem wirksamen Produkt Excipientien, wie beispielsweise Kakaobutter oder Suppowachs, enthalten können,
Das folgende Beispiel erläutert eine erfindungsgemäße Zusammensetzung.
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- 4ο -
Man stellt nach der üblichen Technik Tabletten mit einer Dosis von 100 mg 2J>
671 RP der folgenden Zusammensetzung her:
23 671 RP 0,100 g
Getreidestärke 0,090 g
kolloidale Kieselsäure 0,008 g
Magnesiumstearat 0,002 g
Diese Tabletten können in der Humantherapie in einer Menge von 3 bis 20 Tabletten je Tag für einen Erwachsenen verwendet
werden.
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Claims (2)
- Patentansprüche< jieichnet, daß das Antibiotikum 2j5 67I RP in Form eines kristallinen weißen Pulvers vom P = I30 bis I320C vorliegt, in Wasser unlöslich ist, in Alkoholen, Aceton, Äther, Dimethylformamid und chlorierten Lösungsmitteln löslich ist, aus Kohlenstoff, Wasserstoff und Sauerstoff in den Mengenanteilen C = 58,45 bis 58,6 %, H = 8,6 bis 8,7 %, O = 31,35 bis 31,55 % besteht, im UV in methanolischer Lösung bei 285 nm absorbiert und ein spezifisches Drehvermögen von [a.]^ '^ _ -71,5° + 1,5° (G = 1 % in Methanol) aufweist und daß das Antibiotikum 23 672 RP in Form eines weißen kristallinen Pulvers vom F = 153 °is 155°C vorliegt, in Wasser unlöslich ist, in Alkoholen, Aceton, Ä'ther, Dimethylformamid und chlorierten Lösungsmitteln löslich ist, aus Kohlenstoff, Wasserstoff und Sauerstoff in den Mengenanteilen C = 58,6 bis 58,7 %, H = 8,4 bis 8,5 %, 0 = 32,6 bis 32,8 % besteht, im UV in methanolischer Lösung bei 285 nm absorbiert und ein spezifisches Drehvermögen von [α]β >0 = -71° + 1,5° (c = 1 % in Methanol) aufweist.
- 2. Verfahren zur Herstellung der Produkte nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man aerob Streptomyces chryseus, DS 12 370 (NRRL 3892) oder seine Mutanten in einem geeigneten üblichen Medium und unter üblichen Bedingungen für diese Art der Züchtung züchtet und dann die im Verlaufe der Züchtung gebildeten Antibiotika abtrennt und reinigt.209837/1247J5. Pharmazeutische Zusammensetzungen, die in der Humanmedizin verwendbar sind, gekennzeichnet durch einen Gehalt von 0,5 bis 95 Gew.-^ an zumindest einem Produkt nach Anspruch 1 als Wirksubstanz, zusammen mit jedem beliebigen anderen verträglichen selbst inerten oder physiologisch· wirksamen Produkt .209 837/ 1 247Leerseite
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