BRPI0912690A2

BRPI0912690A2 - método para produzir um aldeìdo, microorganismo geneticamente modificado, aldeìdo, método para produzir um álcool graxo, ácido nucleico isolado e polipeptìdeo isolado

Info

Publication number: BRPI0912690A2
Application number: BRPI0912690-2A
Authority: BR
Inventors: Andreas Schimer; Mathew Rude; Shane Brubaker
Original assignee: Ls9 Inc
Priority date: 2008-05-16
Filing date: 2009-05-18
Publication date: 2012-04-17
Also published as: MX2010012192A; CN102027109B; US20220259623A1; EP2288694B1; EP2998393A1; KR20110019745A; US8268599B2; MX343063B; ES2667718T3; US11186854B2; US8658404B2; EP3483265A1; ES2536194T3; US20210040514A1; US10563231B2; WO2009140696A3; WO2009140695A1; CN105112454A; CA2722442A1; US9481899B2

Abstract

MéTODO PARA PRODUZIR UM ALDEìDO, MICRORGANISMO GENETICAMENTE MODIFICADO, ALDEìDO, MéTODO PARA PRODUZIR UM áLCOOL GRAXO, áCIDO NUCLEICO ISOLADO E POLIPEPTìDEO ISOLADO. Composições e métodos para a produção de hidrocarbonetos tais como alideídos, alcanos e alcenos são descritos neste documento. Certos hidrocarbonetos podem ser usados em biocornbustíveis.

Description

MÉTODO PARA PRODUZIR UM ALDEIDOf MICRORGANISMO GENETICAEffiNTE MODIFICADO, ALDEIDOf MÉTODO PARA PRODUZIR UM ÁLCOOL GRAXOf ÁCIDO NUCLEICO ISOLADO E POLIPEPTÍDEO ISOLADO

REFERÊNCIA A PEDIDOS RELACIONADOS

Este pedido reivindica o benefício do Pedido Provisório norte-americano n- 61/053.955, depositado em 16 de maio de 2008, cujo conteúdo está incorporado neste documento em sua totalidade.

ANTECENDENTES DA INVENÇÃO

O petróleo é um recurso natural limitado encontrado na Terra nas formas líquida, gasosa e sólida. O petróleo é primeiramente composto de hidrocarbonetos, os quais são formados principalmente por carbono e hidrogênio. Ele também contém quantidades significativas de outros elementos, tais como nitrogênio, oxigênio ou enxofre em diferentes formas.

O petróleo é um recurso valioso, mas os produtos do petróleo são desenvolvidos a custos consideráveis, tanto financeiros quanto ambientais. Primeiro, as fontes de petróleo devem ser descobertas. A exploração de petróleo é um empreendimento caro e arriscado. O custo da exploração de poços em águas profundas pode exceder os US$ 100 milhões. Além do mais, não há garantia de que esses poços contenham petróleo. Estima-se que apenas 40% dos poços perfurados conduzam a poços produtivos gerando hidrocarbonetos comerciais. Além do custo econômico, a exploração de petróleo carrega em si um elevado custo ambiental. Por exemplo, a exploração em alto mar perturba o ambiente marinho nas imediações.

Após um poço produtivo ser descoberto, o petróleo deve ser extraído da Terra a um grande custo. Durante a recuperação primária, a pressão natural do subsolo é suficiente para extrair cerca de 20% do petróleo no poço. Enquanto essa pressão natural cai, métodos secundários de recuperação são empregados, se forem econômicos. Geralmente, a recuperação secundária envolve o aumento da pressão do poço através de, por exemplo, injeção de água, injeção de gás natural ou por elevação a gás. Usando métodos secundários de recuperação, um adicional de 5% a 15% de petróleo é recuperado. Uma vez que os métodos secundários de recuperação estejam esgotados, métodos terciários de recuperação podem ser usados, se for econômico.

Métodos terciários envolvem a redução da viscosidade do petróleo de forma a facilitar a extração. Usando métodos terciários de recuperação, um adicional de 5% a 15% de petróleo é recuperado. Portanto, mesmo sob as melhores circunstâncias, apenas 50% do petróleo em um poço pode ser extraído. A extração de petróleo ainda carrega um custo ambiental. Por exemplo, a extração de petróleo pode resultar em grandes infiltrações de petróleo ascendendo até a superfície. Além disso, a perfuração em alto mar envolve a dragagem do solo oceânico, o que perturba ou destrói o ambiente marinho nas imediações.

Como os depósitos de petróleo não são encontrados uniformemente por toda a Terra, o petróleo deve ser transportado por grandes distâncias das regiões produtoras de petróleo até as regiões consumidoras de petróleo. Além dos custos de transporte, há também o risco ambiental de derramamentos de óleo devastadores.

Em sua forma natural, o petróleo cru extraído da Terra possui poucos usos comerciais. Ele é uma mistura de hidrocarbonetos (por exemplo, parafinas (ou alcanos), olefinas (ou alcenos) , alcinos, naftenos (ou cicloalcanos) , compostos alifáticos, compostos aromáticos etc.) de variados comprimentos e complexidades. Além disso, o petróleo cru contém outros compostos orgânicos (por exemplo, compostos orgânicos contendo nitrogênio, oxigênio, enxofre etc.) e impurezas (por exemplo, enxofre, sal, ácido, metais etc.).

Portanto, o petróleo cru deve ser refinado e purificado antes que possa ser usado comercialmente. Devido à sua alta densidade energética e seu transporte fácil, a maioria do petróleo é refinada em combustíveis, tais como combustíveis de transportes (por exemplo, gasolina, diesel, combustível de avião etc.), óleo de aquecimento, gás líquido de petróleo etc.

O petróleo cru é igualmente uma fonte primária de matérias- primas para a produção de petroquímicos. As duas classes principais de matérias-primas derivadas a partir do petróleo são olefinas de cadeia pequena (por exemplo, etileno e propileno) e aromáticos (por exemplo, benzeno e isômeros de xileno). Essas matérias-primas são derivadas a partir de cadeias de hidrocarbonetos maiores no petróleo cru através de seu craqueamento a um custo considerável usando uma variedade de métodos, tais como craqueamento catalítico, craqueamento a vapor ou reforma catalítica. Essas matérias-primas são usadas para fazer petroquímicos, os quais não podem ser diretamente refinados a partir do petróleo cru, tais como monômeros, solventes, detergentes ou adesivos.

Um exemplo de uma matéria-prima derivada a partir do petróleo cru é o etileno. O etileno é usado para produzir petroquímicos tais como polietileno, etanol, óxido de etileno, etileno glicol, poliéster, éter glicol, etoxilato, acetato de vinila, 1,2-dicloroetano, tricloroetileno, tetracloroetileno, cloreto de vinila e cloreto de polivinila. Outro exemplo de matéria- prima é o propileno, que é usado para produzir álcool isopropilico, acrilonitrila, polipropileno, óxido de propileno, propileno glicol, éteres de glicol, butileno, isobutileno,1,3-butadieno,elastômeros sintéticos, poliolefinas, alfaolefinas, álcoois graxos, ácido acrílico, polímeros acrílicos, cloreto de alila, epicloroidrina e resinas de epóxi.

Esses petroquímicos podem, então, ser utilizados para fazer especialidades químicas, tais como plásticos, resinas, fibras, elastômeros, fármacos, lubrificantes ou géis. Especialidades químicas particulares que podem ser produzidas a partir de matérias-primas petroquímicas são: ácidos graxos, hidrocarbonetos (por exemplo, de cadeia longa, de cadeia ramificada, saturado, insaturado etc.), álcoois graxos, ésteres, aldeídos graxos, cetonas, lubrificantes etc.

As especialidades químicas possuem muitos usos comerciais. Os ácidos graxos são usados comercialmente como surfactantes, por exemplo, em detergentes ou sabões. Eles também podem ser usados como aditivos em combustíveis, óleos lubrificantes, tintas, laças, velas, óleo de salada, encurtamento, cosméticos e emulsificantes. Além disso, os ácidos graxos são usados como ativadores de aceleração em produtos de borracha. Os ácidos graxos também podem ser usados como uma matéria-prima para produzir metil ésteres, amidas, aminas, cloretos ácidos, anidridos, dímeros cetenos e ácidos peróxidos e ésteres.

Os hidrocarbonetos possuem muitos usos comerciais. Por exemplo, alcanos de cadeia mais curta são usados como combustíveis. Metano e etano são os principais constituintes do gás natural. Alcanos de cadeia mais longa (por exemplo, de cinco a dezesseis carbonos) são usados como combustíveis de transporte (por exemplo, gasolina, diesel ou combustível de aviação). Alcanos contendo mais do que dezesseis átomos de carbono são componentes importantes de óleos combustíveis e óleos lubrificantes. Alcanos ainda mais longos, os quais são sólidos à temperatura ambiente, podem ser usados, por exemplo, como uma cera de parafina. Alcanos que contenham aproximadamente trinta e cindo carbonos são encontrados no betume, o qual é usado para pavimentação de estradas. Além disso, alcanos de cadeia mais longa podem ser craqueados para produzir hidrocarbonetos de cadeia mais curta, comercialmente úteis.

Assim como os alcanos de cadeia mais curta, os alcenos de cadeia mais curta são usados em combustíveis de transportes.

Alcenos de cadeia mais longa são usados em plásticos, lubrificantes e lubrificantes sintéticos. Além do mais, alcenos são usados como uma matéria-prima para produzir álcoois, ésteres, plastificantes, surfactantes, aminas terciárias, agentes de recuperação de óleo melhorados, ácidos graxos, tióis, anidridos alcenilsucínicos, epóxidos, alcanos clorados, alcenos clorados, ceras, aditivos de combustível e redutores de fluxo de arraste.

Álcoois graxos possuem muitos usos comerciais. Os álcoois graxos de cadeia mais curta são usados nas indústrias de cosméticos e de alimentos como emulsificantes, emolientes e espessantes. Devido à sua natureza anfifílica, os álcoois graxos se comportam como surfactantes não iônicos, os quais são úteis como detergentes. Além disso, os álcoois graxos são usados em ceras, gomas, resinas, pomadas farmacêuticas e loções, aditivos de óleos lubrificantes, têxteis antiestáticos e agentes finalizadores, plastificantes, cosméticos, solventes industriais e solventes para gorduras. Os ésteres possuem muitos usos comerciais. Por exemplo, o biodiesel, um combustível alternativo, é composto de ésteres (por exemplo, metil éster de ácido graxo, etil éster de ácido graxo etc.). Alguns ésteres com baixo peso molecular são voláteis com um odor agradável, o que faz com que eles sejam usados como fragrâncias ou agentes flavorizantes. Além disso, os ésteres são usados como solventes para laças, tintas e vernizes. Além do mais, algumas substâncias que ocorrem naturalmente, tais como ceras, gorduras e óleos, são compostas de ésteres. Os ésteres são também usados como agentes de amolecimento em resinas e plásticos, plastificantes, retardadores de chamas e aditivos em gasolina e óleo. Além disso, ésteres podem ser usados na produção de polímeros, filmes, têxteis, corantes e fármacos.

Aldeídos são usados para produzir muitas especialidades químicas. Por exemplo, aldeídos são usados para produzir polímeros, resinas (por exemplo, Bakelite) , corantes, flavorizantes, plastificantes, perfumes, fármacos e outros químicos. Alguns são usados como solventes, conservantes ou desinfetantes. Alguns compostos naturais e sintéticos, tais como vitaminas e hormônios, são aldeídos. Além disso, muitos açúcares contêm grupos aldeídos.

Cetonas são usadas comercialmente como solventes. Por exemplo, a acetona é freqüentemente usada como um solvente, mas também é uma matéria-prima para a produção de polímeros. Cetonas são igualmente usadas em laças, tintas, explosivos, perfumes e processamento têxtil. Além disso, cetonas são usadas para produzir álcoois, alcenos, alcanos, iminas e enaminas. Ademais, o petróleo cru é uma fonte de lubrificantes. Os lubrificantes derivados de petróleo são tipicamente compostos de olefinas, particularmente poliolefinas e alfaolefinas. Os lubrificantes podem tanto ser refinados a partir do petróleo cru quanto serem manufaturados usando matérias-primas refinadas a partir do petróleo cru.

A obtenção dessas especialidades químicas a partir do petróleo cru exige um investimento financeiro significativo bem como xima grande quantidade de energia. Isso também é um processo ineficiente porque freqüentemente os hidrocarbonetos de cadeia longa no petróleo cru são craqueados para produzir monômeros menores. Esses monômeros são, então, usados como a matéria- prima para a produção de especialidades químicas mais complexas.

Além dos problemas com a exploração, a extração, o transporte e o refino do petróleo, o petróleo é uma fonte limitada e em encolhimento. Uma estimativa de consumo de petróleo no mundo é de 30 bilhões de barris por ano. Por algumas estimativas, prevê-se que, de acordo com os níveis atuais de produção, as reservas mundiais de petróleo podem ser esgotadas antes do ano 2050.

Finalmente, a queima de combustíveis à base de petróleo libera gases do efeito estufa (por exemplo, dióxido de carbono) e outras formas de poluição do ar (por exemplo, monóxido de carbono, dióxido de enxofre etc.). Conforme a demanda mundial por combustível aumenta, a emissão de gases do efeito estufa e outras formas de poluição do ar também aumentam. A acumulação de gases do efeito estufa na atmosfera conduz a um aumento do aquecimento global. Portanto, além de danificar o meio ambiente de forma local (por exemplo, derramamentos de óleo, dragagem dos ambientes marinhos etc.), a queima de petróleo também danifica o meio ambiente globalmente.

Devido aos desafios inerentes colocados pelo petróleo, há uma necessidade por uma fonte renovável ao petróleo a qual não necessite ser explorada, extraída, transportada por longas distâncias ou substancialmente refinada como o petróleo. Também há uma necessidade por uma fonte renovável ao petróleo que possa ser produzida economicamente sem criar o tipo de dano ao meio ambiente produzido pela indústria do petróleo e pela queima dos combustíveis à base de petróleo. Por razões parecidas, há também uma necessidade por uma fonte renovável de químicos que são tipicamente derivados a partir do petróleo.

SUMÁRIO DA INVENÇÃO

A invenção é baseada, pelo menos em parte, na identificação de genes de cianobactérias que codificam polipeptídeos de hidrocarbonetos biossintéticos. De acordo, em um aspecto, a invenção destaca um método de produção de aldeído, o método compreendendo a produção em uma célula hospedeira de iam polipeptídeo composto da seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82, ou uma variável desta, e isolando o aldeído da célula hospedeira.

Em algumas concretizações, o polipeptídeo compreende uma seqüência de aminoácido contendo pelo menos cerca de 7 0%, pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90%, pelo menos cerca de 91%, pelo menos cerca de 92%, pelo menos cerca de 93%, pelo menos cerca de 94%, pelo menos cerca de 95%, pelo menos cerca de 96%, pelo menos cerca de 97%, pelo menos cerca de 9 8% ou pelo menos cerca de 99% de identificação com a SEQ ID NO: 66,68,70,72,74,76,78,80 ou 82. Em algumas concretizações, o polipeptídeo compreende a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 com uma ou mais substituições, adições, inserções ou supressões de aminoácidos. Em algumas concretizações, o polipeptídeo possui atividade de redutase. Em ainda outras concretizações, o polipeptídeo compreende a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82, com uma ou mais substituições conservadoras de aminoácidos. Por exemplo, o polipeptídeo compreende uma ou mais das seguintes substituições conservadoras de aminoácidos: reposição de um aminoácido alifático, tal como alanina, valina, leucina e isoleucina, com outro aminoácido alifático; reposição de uma serina com uma treonina; reposição de uma treonina com uma serina; reposição de um resíduo ácido, tal com ácido aspártico e ácido glutâmico, com outro resíduo ácido; reposição de um resíduo carregando um grupo amida, tal como asparagina e glutamina, com outro resíduo carregando um grupo amida; troca de um resíduo básico, tal como lisina e arginina, com outro resíduo básico; e reposição de um resíduo aromático, tal como fenilalanina e tirosina, com outro resíduo aromático. Em algumas concretizações, o polipeptídeo possui Φ cerca de 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 15, 20, 30, 40, 50, 60, 70, 80, 90, 100 ou mais substituições, adições, inserções ou supressões de aminoácidos. Em algumas concretizações, o polipeptídeo possui atividade redutase.

Em outras concretizações, o polipeptídeo compreende a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63 ou 64. Em certas concretizações, o polipeptídeo possui atividade redutase. Em outro aspecto, a invenção apresenta um método de produção de iam aldeído, o método compreendendo a expressão em uma célula hospedeira de um polinucleotídeo compreendendo uma seqüência de nucleotídeo contendo pelo menos cerca de 7 0%, pelo menos cerca de 75%, pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90% pelo menos cerca de 91%, pelo menos cerca de 92%, pelo menos cerca de 93%, pelo menos cerca de 94%, pelo menos cerca de 95%, pelo menos cerca de 96%, pelo menos cerca de 97%, pelo menos cerca de 98% ou pelo menos cerca de 99% de identificação de seqüência com SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, a seqüência de nucleotídeo é SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, o método ainda compreende isolar o aldeído da célula hospedeira.

Em outras concretizações, a seqüência de nucleotídeo hibridiza-se a um complemento de SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 7 9 ou 81, ou a um fragmento desta, por exemplo, sob condições de baixa estringência, média estringência, alta estringência ou muito alta estringência.

Em outras concretizações, a seqüência de nucleotídeo codifica um polipeptídeo contendo: (i) a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82; ou a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 com uma ou mais substituições, adições, inserções ou supressões de aminoácidos. Em algumas concretizações, o polipeptídeo compreende a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 com uma ou mais substituições conservadoras de aminoácidos. Em algumas concretizações, o polipetídeo possui atividade redutase. Em outras concretizações, a seqüência de nucleotídeo codifica um polipeptídeo contendo a mesma atividade biológica que um polipeptídeo compreendendo a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82. Em algumas concretizações, a seqüência de nucleotídeo é SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81 ou um fragmento desta. Em outras concretizações, a seqüência de nucleotídeo hibridiza-se a um complemento de SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81 ou a um fragmento desta, por exemplo, sob condições de baixa estringência, média estringência, alta estringência ou muito alta estringência. Em algumas concretizações, a atividade biológica é atividade redutase.

Em algumas concretizações, o método compreende a transformação de uma célula hospedeira com um vetor recombinante compreendendo uma seqüência de nucleotídeo contendo pelo menos cerca de 70%, pelo menos cerca de 75%, pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90% pelo menos cerca de 91%, pelo menos cerca de 92%, pelo menos cerca de 93%, pelo menos cerca de 94%, pelo menos cerca de 95%, pelo menos cerca de 96%, pelo menos cerca de 97%, pelo menos cerca de 98% ou pelo menos cerca de 99% de identificação de seqüência com SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, o vetor recombinante ainda compreende um promotor operacionável ligado à seqüência de nucleotídeos. Em algumas concretizações, o promotor é um promotor de desenvolvimento regulado, um específico de organela, um específico de tecido, um induzível, um constitutivo ou um específico de célula. Em concretizações particulares, o vetor recombinante compreende pelo menos uma seqüência selecionada a partir do grupo composto de (a) uma seqüência regulatória operacionalmente acoplada à seqüência de nucleotídeos; (b) um marcador de seleção operacionável acoplado à seqüência de nucleotídeo; (c) uma seqüência de marcador operacionável acoplada à seqüência de nucleotídeo; (d) uma fração de purificação operacionável acoplada à seqüência de nucleotídeo; (e) uma seqüência de secreção operacionável acoplada à seqüência de nucleotídeo; e (f) uma seqüência alvo operacionável acoplada à seqüência de nucleotídeo. Em certas concretizações, a seqüência de nucleotídeo é estavelmente incorporada dentro do DNA genômico da célula hospedeira, e a expressão da seqüência de nucleotídeo está sob controle de uma região promotora regulada.

Em qualquer um dos aspectos descritos neste documento, a célula hospedeira pode ser selecionada a partir do grupo composto de uma célula de mamífero, uma célula vegetal, uma célula de inseto, uma célula de levedura, uma célula de fungo, célula de fungos filamentosos ou célula bacteriana.

Em algumas concretizações, a célula hospedeira é uma célula bacteriana gram-positiva. Em outras concretizações, a célula hospedeira é uma célula bacteriana gram-negativa.

Em algumas concretizações, a célula hospedeira é selecionada a partir do gênero Escherichia, Bacillus, Lactobacillus, Rhodococcus, Pseudomonas, Aspergillus, Triehoderma, Neurosporaf Fusarium, Humieola, Rhizomueor, Kluyveromyces, Piehia, Mueor, Myeeliophtora, Penieillium, Phaneroehaete, Pleurotusf Trametes, Chrysosporium, Saccharomyees, Stenotrophamonas, Schizosaccharomycesf Yarrowiaf ou Streptomyees.

Em concretizações particulares, a célula hospedeira é uma célula de Baeillus lentus, uma célula de Baeillus brevis, uma célula de Bacillus stearothermophilus, uma célula de Bacillus licheniformis, uma célula de Bacillus alkalophilus, uma célula de Bacillus coagulans, uma célula de Bacillus circulans, uma célula de Baeillus pumilis, uma célula de Bacillus thuringiensis, uma célula de Baeillus elausii, uma célula de Baeillus megaterium, uma célula de Baeillus subtilis ou uma célula de Baeillus amyloliquefaeiens.

Em outras concretizações, a célula hospedeira é uma célula de Triehoderma koningii, uma célula de Triehoderma viride, uma célula de Triehoderma reesei, uma célula de Triehoderma longibraehiatum, uma célula de Aspergillus nidulans, uma célula de Aspergillus niger, uma célula de Aspergillus oryzae, uma célula de Humieola insolens, uma célula de Humieola lanuginose, uma célula de Rhodoeoeeus opaeus, uma célula de Rhizomueor miehei ou uma célula de Mueor miehei.

Ainda em outras concretizações, a célula hospedeira é uma célula de Streptomyees lividans ou uma célula de Streptomyees murinus. Em outras concretizações, a célula hospedeira é uma célula de Aetinomyeetes.

Em algumas concretizações, a célula hospedeira é uma célula CHO, uma célula COS, uma célula VERO, uma célula BHK, uma célula HeLa, uma célula Cv1, uma célula MDCK, uma célula 293, uma célula 3T3 ou uma célula PC12.

Em concretizações particulares, a célula hospedeira é uma célula de E. eoli, tais como uma de linhagem B, uma de linhagem C, uma de linhagem K ou uma célula de E. coli de linhagem W. Em outras concretizações, a célula hospedeira é uma célula hospedeira cianobactariana. Em concretizações particulares, a célula hospedeira cianobactariana é uma célula listada na Tabela 1.

Em algumas concretizações, o aldeído é secretado pela célula hospedeira.

Em determinadas concretizações, a célula hospedeira sobrexpressa um substrato descrito neste documento. Em algumas concretizações, o método ainda inclui a transformação da célula hospedeira com um ácido nucleico que codifique uma enzima descrita neste documento, e a célula hospedeira sobrexpresse um substrato descrito aqui. Em outras concretizações, o método ainda inclui a cultura da célula hospedeira na presença de pelo menos um substrato descrito neste documento. Em algumas concretizações, o substrato é um derivado de ácido graxo, um acil-ACP, um ácido graxo, um acil- CoA, um aldeído graxo, um álcool graxo ou um éster graxo.

Em algumas concretizações, o substrato derivado de ácido graxo é um substrato insaturado de derivado de ácido graxo, um Ϋ substrato monoinsaturado de derivado de ácido graxo ou um substrato saturado de derivado de ácido graxo.· Em outras concretizações, o substrato derivado de ácido graxo é uma cadeia linear de substrato derivado de ácido graxo, uma cadeia ramificada de substrato derivado de ácido graxo ou um substrato derivado de ácido graxo que inclua uma fração cíclica.

Em algumas concretizações, o alcano é um alcano C3-C25· Por exemplo, o derivado de ácido graxo é um derivado de ácido graxo C6-C25. Por exemplo, o derivado de ácido graxo é um derivado de ácido graxo C3, C4, Cs, Ce, C7, C8, Cg, C10, C11, C12, C13, C14, C15, C16, C17, C18, C19, C20, C21, C22, C23, C24 ou C25. Em concretizações particulares, o derivado de ácido graxo é tetradecanoil-ACP, hexadecanoil-ACP, hexadecenoil-ACP ou octadecenoil-ACP.

Em certas concretizações dos aspectos descritos neste documento, o aldeído é um aldeído C3-C25. Por exemplo, o aldeído é um aldeído C3, C4, C5, Ce, C7, C8, Cg, Ci0, C11, C12, C13, C14, C15, C16, C17, C18, C19, C20, C21, C22, C23, C24 ou C25. Em algumas concretizações, o aldeído é tetradecanal, hexadecanal, hexadecenal, octadecanal, octadecenal, metiltetradecanal, metiltetradecenal, metilhexadecanal, metil hexadecenal, metiloctadecanal ou metiloctadecenal.

Em algumas concretizações, o aldeído é um aldeído de cadeia linear, um aldeído de cadeia ramificada ou um aldeído cíclico.

Em algumas concretizações, o método inclui ainda isolar o aldeído da célula hospedeira ou do meio de cultura.

Em outro aspecto, a invenção destaca um microrganismo geneticamente modificado compreendendo uma seqüência de controle exógena estavelmente incorporada dentro do DNA genômico do microrganismo. Em uma concretização, a seqüência de controle é integrada à montante a um polinucleotídeo compreendendo uma seqüência de nucleotídeo contendo pelo menos cerca de 7 0% de identificação de seqüência com SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, a seqüência de nucleotídeo possui pelo menos cerca de 75%, pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90%, pelo menos cerca de 91%, pelo menos cerca de 92%, pelo menos cerca de 93%, pelo menos cerca de 94%, pelo menos cerca de 95%, pelo menos cerca de 96%, pelo menos cerca de 97%, pelo menos cerca de 98% ou pelo menos cerca de 99% de identificação de seqüência com SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, a seqüência de nucleotídeo é SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81.

Em algumas concretizações, o polinucleotídeo é endógeno ao microrganismo. Em algumas concretizações, o microrganismo expressa um nível elevado de um aldeído em relação a um tipo selvagem de microrganismo. Em algumas concretizações, o microrganismo é uma cianobactéria.

Em outro aspecto, a invenção apresenta um método de preparo de um aldeído, o método compreendendo a cultura de um microrganismo geneticamente modificado descrito neste documento sob condições adequadas para a expressão genética e o isolamento do aldeído.

Em outro aspecto, a invenção destaca um método de preparo de um aldeído, compreendendo o contato de um substrato com (i) um polipeptídeo contendo pelo menos 70% de identificação com a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82, ou um variante desta; (ii) um polipeptídeo codificado por uma seqüência de nucleotídeo contendo pelo menos 70% de identificação com SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81, ou uma variante desta; ou (iii) um polipeptídeo compreendendo a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63 ou 64. Em algumas concretizações, o polipeptídeo possui atividade redutase.

Em algumas concretizações, o polipeptídeo tem pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90%, pelo menos cerca de 91%, pelo menos cerca de 92%, pelo menos cerca de 93%, pelo menos cerca de 94%, pelo menos cerca de 95%, pelo menos cerca de 96%, pelo menos cerca de 97%, pelo menos cerca de 98% ou pelo menos cerca de 99% de identificação de seqüência com SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82.

Em algumas concretizações, o polipeptídeo possui a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82.

Em algumas concretizações, o polipeptídeo é codificado por uma seqüência de nucleotídeo contendo pelo menos cerca de 75%, pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90%, pelo menos cerca de 91%, pelo menos cerca de 92%, pelo menos cerca de 93%, pelo menos cerca de 94%, pelo menos cerca de 95%, pelo menos cerca de 96%, pelo menos cerca de 97%, pelo menos cerca de 98% ou pelo menos cerca de 99% de identificação de seqüência com SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, o polipeptídeo é codificado por uma seqüência de nucleotídeo contendo SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81.

Em algumas concretizações, o substrato biológico é um derivado de ácido graxo, um acil-ACP, um ácido graxo, um acil-CoA, um aldeído graxo, um álcool graxo ou um éster graxo.

Em algumas concretizações, o derivado de ácido graxo é iam derivado de ácido graxo C3-C25. Por exemplo, o derivado de ácido graxo é um derivado de ácido graxo C3, C4, C5, C6, C7, C8, C9, C10, C11, C12, C13, C14, C15, C16, C17, C18, C19, C20, C21, C22, C23, C24 ou C25. Em concretizações particulares, o substrato de derivado de ácido graxo é tetradecanoil-ACP, hexadecanoil-ACP, hexadecenoil-ACP ou octadecenoil-ACP. Em certas concretizações, o aldeído é um aldeído C3-C25· Por exemplo, o aldeído é um aldeído C3, C4, C5, Ce, C7, Ce, C9, C10, Cll, C12, C13, C14, C15, Cl6, C17, C18, C19, C20, C21, C22, C23, C24 OU C25. Em algumas concretizações, o aldeído é tetradecanal, hexadecanal, hexadecenal, octadecanal, octadecenal, metiltetradecanal, metiltetradecenal, metilhexadecanal, metilhexadecenal, metiloctadecanal, metiloctadecenal.

Em outro aspecto, a invenção apresenta um aldeído produzido através de qualquer um dos métodos ou mi crorganismos descritos neste documento. Em concretizações particulares, o aldeído possui um õ13C de cerca de -15,4 ou maior. Por exemplo, o aldeído tem um õ13C de cerca de -15,4 a cerca de -10,9, por exemplo, de cerca de -13,92 a cerca de -13,84. Em outras concretizações, o aldeído tem um fM14C de pelo menos cerca de 1,003. Por exemplo, o aldeído tem um fM14C de pelo menos cerca de 1,01 ou pelo menos cerca de 1,5. Em algumas concretizações, o aldeído tem um fM14C de cerca de 1,111 a cerca de 1,124.

Em outro aspecto, a invenção apresenta um método de produção de um álcool graxo, o método compreendendo a produção, em uma célula hospedeira, de um polipeptídeo compreendendo a seqüência de aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, ·70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82, ou uma variante destas, e isolar o álcool graxo da célula hospedeira. Em algumas concretizações, o álcool graxo é secretado pela célula.

Em algumas concretizações, o polipeptídeo compreende uma seqüência de aminoácidos tendo pelo menos cerca de 70%, pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90%, pelo menos cerca de 91%, pelo menos cerca de 92%, pelo menos cerca de 93%, pelo menos cerca de 94%, pelo menos cerca de 95%, pelo menos cerca de 96%, pelo menos cerca de 97%, pelo menos cerca de 98% ou pelo menos cerca de 99% de identidade de seqüência com a SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 .

Em algumas concretizações, o polipeptídeo compreende a seqüência de aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 com uma ou mais substituições, adições, inserções ou supressões de aminoácidos. Em algumas concretizações, o polipeptídoe possui atividade redutase. Em ainga outras concretizadções o polipeptídeo compreende a seqüência de aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 80 ou 82 com uma ou mais substituições conservadoras de aminoácidos. Por exemplo, o polipepetídeo compreende uma ou mais das seguites substituições conservadoras de aminoácidos: troca de um aminoácido alifático, tal como alanina, valina, leucina e isoleucina por outro aminoácido alifático; troca de uma serina por uma treonina; troca de uma treonina por uma serina; troca de um resíduo acídico, tal como ácido aspártico e ácido glutâmico por outro resíduo acídico; troca de iam resíduo que tenha um grupo amida, tal como asparagina e glutamina, por outro resíduo que tenha iam grupo amida; troca de um resíduo básico, tal como lisina e arginina, por outro resíduo básico; e troca de um resíduo aromático, tal como fenilalanina e tirosina por outro resíduo aromático. Em algumas concretizações, o polipeptídeo possui cerca de 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 15, 20, 30, 40, 50, 60, 70, 80, 90, 100 ou mais substituições, adições, inserções ou supressões de aminoácidos. Em algumas concretizações, o polipeptídeo possui atividade redutase. Em outras concretizações, o polipeptídeo comreende a seqüência de aminoácidos de SEQ ID NO: 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63 ou 64. Em certas concretizações, o polipeptídeo possui atividade redutase.

Em outro aspecto, a invenção apresenta um método para produção de um álcool graxo, o método compreendendo expressar em uma célula hospedeira um polinucleotídeo compreendendo uma seqüência de nucleotídeos tendo pelo menos cerca de 7 0%, pelo menos cerca de 7 5%, pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90%, pelo menos cerca de 91%, pelo menos cerca de 92%, pelo menos cerca de 93%, pelo menos cerca de 94%, pelo menos cerca de 95%, pelo menos cerca de 96%, pelo menos cerca de 97%, pelo menos cerca de 98% ou pelo menos cerca de 99% de identidade de seqüência com a SEQ ID NO: 65, 67, 69, 70, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, o método compreende ainda isolar o álcool graxo da célula hospedeira.

Em outras concretizações, a seqüência de nucleotídeos hibridiza com um complemento da SEQ ID NO: 65, 67, 69, 70, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81 ou com iam fragmento desta, por exemplo, sob condições de baixa estrigência, média estringência, alta estringência ou estringência muito alta.

Em outras concretizações, a seqüência de nucleotídeos codifica um polipeptídeo compreendendo: (i) a seqüência de aminoácidos de SEQ ID NO: 6 6, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82; ou (ii) a seqüência de aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 com uma ou mais substituições, adições, inserções ou supressões de aminoácidos. Em algumas concretizações, o polipeptídeo compreende a seqüência de aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 com uma ou mais substituições de aminoácidos conservadoras. Em algumas concretizações, o polipeptideo possui atividade redutase.

Em outras concretizações, a seqüência de nucleotídeos codifica um polipeptideo tendo a mesma atividade biológica que um polipeptideo compreendendo a seqüência de aminoácidos de SEQ ID NO: 6 6, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82. Em algumas concretizações, a seqüência de nucleotídeos é SEQ ID NO:65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81 ou um fragmento destas. Em outras concretizações, a seqüência de nucleotídeos hibridiza com um complemento de SEQ ID NO:65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81 ou com um fragmento desta, por exemplo, sob condições de baixa estringência, média estringência, alta estringência ou estringência muito alta. Em algumas concretizações, a atividade biológica é atividade redutase.

Em algumas concretizações, o método compreende transformar uma célula hospedeira com um vetor recombinante compreendendo uma seqüência de nucleotídeos tendo pelo menos cerca de 7 0%, pelo menos cerca de 75%, pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90%, pelo menos cerca de 91%, pelo menos cerca de 92%, pelo menos cerca de 93%, pelo menos cerca de 94%, pelo menos cerca de 95%, pelo menos cerca de 96%, pelo menos cerca de 97%, pelo menos cerca de 98% ou pelo menos cerca de 99% de identidade de seqüência com a SEQ ID NO: 65, 67, 69, 70, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, o vetor recombinante compreende ainda um promotor operacionalmente ligado à seqüência de nucleotídeos. Em algumas concretizações o promotor é regulado de maneira desenvolvida, um promotor específico de organela, específico de tecido, induzível, constitutivo ou específico de célula. Em concretizações particulares, o vetor recombinante compreende pelo menos uma seqüência selecionada a partir do grupo composto de (a) uma seqüência regulatória operacionalmente acoplada à seqüência de nucleotídeos; (b) um marcador de seleção operacionável acoplado à seqüência de nucleotídeo; (c) uma seqüência de marcador operacionável acoplada à seqüência de nucleotídeo; (d) uma fração de purificação operacionável acoplada à seqüência de nucleotídeo; (e) uma seqüência de secreção operacionável acoplada à seqüência de nucleotídeo; e (f) uma seqüência alvo operacionável acoplada à seqüência de nucleotídeo. Em certas concretizações, a seqüência de nucleotídeo é estavelmente incorporada dentro do DNA genômico da célula hospedeira, e a expressão da seqüência de nucleotídeo está sob controle de uma região promotora regulada.

Em algumas concretizações, o método inclui ainda expressar um gene codificando uma álcool desidrogenase recombinante na célula hospedeira.

Em qualquer destes aspectos da invenção descrita neste documento, os métodos podem produzir álcoois graxos compreendendo álcoois graxos C6-C25- Em algumas concretizações, o álcool graxo compreende um álcool graxo C6, C7, C8, C9, C10, C11, C12, C13, C14, C15, C16, C17 , C18, C19, C20, C21, C22, C23, C24 OU C25. Em concretizações particulares, o álcool graxo é 1- decanol, 1-dodecanol, 1-miristil álcool, 1-hexadecanol, octadecenol, tetradecenol ou hexadecenol.

Em outras concretizações, o álcool graxo compreende um álcool graxo de cadeia linear. Em outras concretizações, o álcool graxo compreende um álcool graxo de cadeia ramificada. Em ainda outras concretizações, o álcool graxo compreende uma parte cíclica. Em outras concretizações, o álcool graxo é um álcool graxo insaturado. Em outras concretizações, o álcool graxo é um álcool graxo monoinsaturado. Em ainda outras concretizações, o álcool graxo é um álcool graxo saturado.

Em outro aspecto, a invenção apresenta iam álcool graxo produzido por qualquer um dos métodos ou qualquer um dos microrganismos descritos neste documento, ou um surfactante compreendendo um álcool graxo produzido por qualquer um dos métodos ou qualquer um dos microrganismos descritos aqui.

Em algumas concretizações, o álcool graxo possui um δ C de cerca de -15,4 ou maior. Em algumas concretizações, o álcool graxo possui um õ13C de cerca de -15,4 a cerca de -10,9, ou de cerca de -13,92 a cerca de -13,84.

Em algumas concretizações, o álcool graxo possui um fM14C de pelo menos cerca de 1,003. Em certas concretizações, o álcool graxo possui um fM14C de pelo menos cerca de 1,01 ou pelo menos cerca de 1,5. Em algumas concretizações, o álcool graxo possui um fM14C de cerca de 1,111 a cerca de. 1,124.

Em outro aspecto, a invenção destaca um ácido nucleico isolado consistindo de não mais do que cerca de 500 nucleotídeos de SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, o ácido nucleico consiste de não mais do que cerca de 3 00 nucleotídeos, não mais do que cerca de 350 nucleotídeos, não mais do que cerca de 400 nucleotídeos, não mais do que cerca de 450 nucleotídeos, não mais do que cerca de 550 nucleotídeos, não mais do que cerca de 600 nucleotídeos, ou não mais do que cerca de 650 nucleotídeos de SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, o ácido nucleico codifica um polipeptídeo contendo atividade redutase.

Em outro aspecto, a invenção destaca um ácido nucleico isolado consistindo em não mais do que cerca de 99%, não mais do que cerca de 98%, não mais do que cerca de 97%, não mais do que cerca de 96%, não mais do que cerca de 95%, não mais do que cerca de 94%, não mais do que cerca de 93%, não mais do que cerca de 92%, não mais do que cerca de 91%, não mais do que cerca de 90%, não mais do que cerca de 85%, ou não mais do que cerca de 80% de nucleotídeos de SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81. Em algumas concretizações, o ácido nucleico codifica um polipeptídeo contendo atividade redutase.

Em outro aspecto, a invenção destaca um polipeptídeo isolado consistindo em não mais do que cerca de 200, não mais do que cerca de 175, não mais do que cerca de 150 ou não mais do que cerca de 100 dos aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82. Em algumas concretizações, o polipeptídeo possui atividade redutase.

Em outro aspecto, a invenção destaca um polipeptídeo isolado consistindo em não mais do que cerca de 99%, não mais do que cerca de 98%, não mais do que cerca de 97%, não mais do que cerca de 96%, não mais do que cerca de 95%, não mais do que cerca de 94%, não mais do que cerca de 93%, não mais do que cerca de 92%, não mais do que cerca de 91%, não mais do que cerca de 90%, não mais do que cerca de 85%, ou não mais do que cerca de 80% dos aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82. Em algumas concretizações, o polipeptídeo possui atividade redutase. DEFINIÇÕES

Ao longo do relatório descritivo, uma referência pode ser feita usando um nome de gene ou de polipeptídeo abreviado, mas entende-se que tal nome abreviado de gene ou de polipeptídeo representa ao gênero dos genes ou dos polipeptídeos. Tais nomes de genes incluem todos os genes que codificam o mesmo polipeptídeo e os polipeptídeos homólogos contendo a mesma função fisiológica. Os nomes de polipeptídeos incluem todos os polipeptídeos que possuem a mesma atividade (por exemplo, que catalisem a mesma reação química essencial).

Os números de acesso referidos neste documento são derivados a partir da base de dados do NCBI (National Center for Biotechnology Information), mantida pelo National Institue of Health, EUA. Salvo indicação em contrário, os números de acesso são como fornecidos na base de dados de abril de 2009.

Os números EC são estabelecidos pelo Comitê de Nomenclatura da União Internacional de Bioquímica e Biologia Molecular (NC- IUBMB) (disponível em http://www.chem.qmul.ac.uk/iubmb/ enzyme/). Os números EC referidos neste documento são derivados a partir da base de dados do KEGG Ligand, mantida pela Enciclopédia Quioto de Genes e Genômica, patrocinada em parte pela Universidade de Tóquio. Salvo indicação em contrário, os números EC são como fornecidos na base de dados de março de 2 008.

Os artigos "um" e "uma" são usados neste documento para se referirem a um ou mais de um (i.e., a pelo menos um) dos objetos gramaticais do artigo. A título de exemplo, "um elemento" significa um elemento ou mais de um elemento. O termo "cerca de" é usado neste documento para significar um valor de ± 20% de um valor numérico dado. Assim, "cerca de 60%" significa iam valor entre 60 ± (20% de 60) (i.e., entre 48 e 70).

Como usado neste documento, o termo "aldeído" significa um hidrocarboneto contendo a fórmula RCHO caracterizada por um grupo carbonila insaturado (C=O). Em uma concretização preferida, o aldeído é qualquer aldeído feito a partir de um ácido graxo ou de um derivado de ácido graxo. Em uma concretização, o grupo R é de pelo menos cerca de 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19 ou 20 carbonos de comprimento.

Como usado neste documento, um "gene biossintético de aldeído" ou um "polinucleotídeo biossintético de aldeído" é um ácido nucleico que codifica um polipeptídeo biossintético de aldeído.

Como usado neste documento, um "polipeptídeo biossintético de aldeído" é um polipeptídeo que seja uma parte da via biossintética de um aldeído. Tais polipeptídeos podem agir sobre iam substrato biológico para produzir um aldeído. Em algumas instâncias, o polipeptídeo biossintético de aldeído possui atividade redutase.

Como usado neste documento, o termo "alcano" significa um hidrocarboneto contendo apenas ligações simples de carbono- carbono.

Como usado neste documento, iam "gene biossintético de alcano" ou um "polinucleotídeo biossintético de' alcano" é um ácido nucleico que codifica um polipeptídeo biossintético de alcano. Como usado neste documento, um "polipeptídeo biossintético de alcano" é um polipeptídeo que seja uma parte da via biossintética de um alcano. Tais polipeptídeos podem agir sobre um substrato biológico para produzir um alcano. Em algumas instâncias, o polipeptídeo biossintético de alcano possui atividade descarbonilase.

Como usado neste documento, um "gene biossintético de alceno" ou um "polinucleotídeo biossintético de alceno" é um ácido nucleico que codifica um polipeptídeo biossintético de alceno.

Como usado neste documento, um "polipeptídeo biossintético de alceno" é um polipeptídeo que seja uma parte da via biossintética de um alceno. Tais polipeptídeos podem agir sobre um substrato biológico para produzir um alceno. Em algumas instâncias, o polipeptídeo biossintético de alceno possui atividade descarbonilase.

Como usado neste documento, o termo "atenuar" significa enfraquecer, reduzir ou diminuir. Por exemplo, um polipeptídeo pode ser atenuado modificando-se o polipeptídeo para reduzir sua atividade (por exemplo, modificando uma seqüência de nucleotídeo que codifique o polipeptídeo).

Como usado neste documento, o termo "biodiesel", significa um biocombustível que pode ser iam substituto do diesel, o qual é derivado do petróleo. 0 biodiesel pode ser usado em motores de combustão interna a diesel tanto de uma forma pura, a qual é referida como biodiesel "puro", quanto como uma mistura em qualquer concentração com diesel à base de petróleo. O biodiesel pode incluir ésteres ou hidrocarbonetos, tais como aldeídos e alcanos. Como usado neste documento, o termo "biocombustível" refere-se a qualquer combustível derivado a partir de biomassa. Os biocombustíveis podem ser substituídos por combustíveis à base de petróleo. Por exemplo, biocombustíveis são, inclusive, combustíveis de transportes (por exemplo, gasolina, diesel, combustível de jatos etc.), combustíveis de aquecimento e combustíveis geradores de eletricidade. Os biocombustíveis são uma fonte renovável de energia.

Como usado neste documento, o termo "biomassa" refere-se a uma fonte de carbono derivada a partir de material biológico. A biomassa pode ser convertida em biocombustível. Uma fonte exemplar de biomassa é matéria de planta. Por exemplo, milho, cana-de-açúcar ou switchgrass podem ser usados como biomassa. Outro exemplo não limitante de biomassa é matéria animal, por exemplo, estrume de vaca. A biomassa também inclui produtos resíduos a partir da indústria, da agricultura, da silvicultura, das famílias. Exemplos de tais produtos resíduos que podem ser usados como biomassa são resíduos de fermentação, palha, madeira serrada, esgoto, lixo e restos de comida. A biomassa também inclui fontes de carbono, tais como carboidratos (por exemplo, monossacarídeos, dissacarídeos ou polissacarídeos).

Como usado neste documento, o sintagma "fonte de carbono" refere-se a um substrato ou composto adequado para ser usado como uma fonte de carbono para o crescimento de célula procariótica ou eucariótica simples. As fontes de carbono podem estar em diversas formas, incluindo, mas não se limitando a, polímeros, carboidratos, ácidos, álcoois, aldeídos, cetonas, aminoácidos, peptídeos e gases (por exemplo, CO e CO2) . Estas incluem, por exemplo, diversos monossacarídeos, tais como glicose, frutose, manose e galactose; oligossacarídeos, tais como fruto-oligossacarídeo e galacto-oligossacarídeo; polissacarídeos, tais como xilose e arabinose; dissacarídeos, tais como sacarose, maltose e turanose; material celulósico, tal como metil celulose e carboximetil celulose de sódio; ésteres de ácido graxo saturados ou insaturados; tais como succinato, lactato e acetato; álcoois, tais como etanol se suas misturas. A fonte de carbono pode também ser um produto da fotossíntese, incluindo, mas não se limitando a, glicose. Uma fonte de carbono preferida é a biomassa. Outra fonte de carbono preferida é a glicose.

Como usado neste documento, um "aditivo de redução em ponto de turvação" é um aditivo adicionado a uma composição para diminuir ou baixar o ponto de turvação de uma solução.

Como usado neste documento, o sintagma "ponto de turvação de um fluido" significa a temperatura na qual sólidos dissolvidos não estão mais completamente solúveis. Abaixo desta temperatura, os sólidos começam a precipitar como uma segunda fase, dando ao fluido uma aparência turva. Na indústria do petróleo, o ponto de turvação se refere à temperatura abaixo a qual um material solidificado ou outro hidrocarboneto pesado se cristaliza em óleo cru, óleo refinado ou combustível para formar uma aparência turva. A presença de materiais solidificados influencia no comportamento .seguinte do fluido, na tendência de o fluido entupir os filtros de combustíveis, injetores, etc., na acumulação de materiais solidificados sobre superfícies frias (por exemplo, incrustar um gasoduto ou permutador de aquecimento), e nas características de emulsão do fluido com água. Uma seqüência de nucleotídeo é "complementar" à outra seqüência de nucleotídeo se cada uma das bases das duas seqüências combinarem (i.e., for capaz de formar pares de base Watson Crick). 0 termo "filamento complementar" é usado neste documento alternadamente com o termo "complemento". 0 complemento de um filamento de ácido nucleico pode ser o complemento de um filamento de codificação ou o complemento de iam filamento de não codificação.

Como usado neste documento, o termo "condições suficientes para permitir expressão" significa quaisquer condições que permitam a uma célula hospedeira produzir um produto desejado, tal como um polipeptídeo, um aldeído ou um alcano descrito neste documento. Condições adequadas incluem, por exemplo, condições de fermentação. Condições de fermentação podem compreender muitos parâmetros, tais como faixas de temperaturas, níveis de aeração e meios de composição. Cada uma dessas condições, individualmente e em combinação, permite à célula hospedeira crescer. 0 meio de cultura exemplar inclui caldos e géis. Geralmente, o meio inclui uma fonte de carbono, tal como glicose, frutose, celulose, ou semelhantes, que pode ser metabolizado diretamente pela célula hospedeira. Além disso, enzimas podem ser usadas no meio para facilitar a mobilização (por exemplo, a despolimerização do amido ou da celulose de açúcares fermentáveis) e o subsequente metabolismo da fonte de carbono.

Para determinar se as condições são suficientes para permitir expressão, a célula hospedeira pode ser cultivada, por exemplo, por cerca de 4, 8, 12, 24, 36 ou 48 horas. Durante e/ou após a cultura, amostras podem ser obtidas e analisadas para determinar se as condições permitem expressão. Por exemplo, as células hospedeiras nas amostras ou no meio no qual as células hospedeiras cresceram podem ser testadas para a presença de um produto desejado. Durante o teste para a presença de um produto, análises, tais como, mas não limitadas a, TLC, HPLC, GC/FID, GC/MS, LC/MS e MS podem ser usadas.

Entende-se que os polipeptídeos descritos neste documento devem conter conservante adicional ou substituições de aminoácido não essencial, o qual não possui um efeito substancial sobre as funções do polipeptideo. Se uma substituição particular for tolerada ou não (i.e., não adversamente afetará as propriedades biológicas desejadas, tais como a atividade descarbonilase) pode ser determinada como descrito em Bowie et al. , Science (1990) 247:1306-1310. Uma "substituição conservadora de aminoácido" é uma na qual o residuo de aminoácido é substituído com um resíduo de aminoácido contendo uma cadeia lateral, semelhante. Famílias de resíduos de aminoácidos contendo cadeias laterais semelhantes foram definidas no estado da técnica. Essas famílias incluem aminoácidos com cadeias laterais básicas (por exemplo, lisina, arginina, histidina), cadeias laterais ácidas (por exemplo, ácido aspártico, ácido glutâmico), cadeias laterais de polos descarregados (por exemplo, glicina, asparagina, glutamina, I serina, treonina, tirosina, cisteína), cadeias laterais não polares (por exemplo, alanina, valina, leucina, isoleucina, prolina, fenilalanina, metionina, triptofano) , cadeias laterais betarramifiçadas (por exemplo, treonina, valina, isoleucina), e cadeias laterais aromáticas (por exemplo, tirosina, fenilalanina, triptofano, histidina).

Como usado neste documento, "elemento de controle" significa um elemento de controle transcricional. Elementos de controle incluem promotores e potenciadores. O termo "elemento promotor", "promotor" ou "seqüência promotora" refere-se a uma seqüência de DNA que funcione com um interruptor que ative a expressão de um gene. Se o gene é ativado, diz-se que é transcrito ou participa de transcrição. A transcrição envolve a síntese de mRNA a partir do gene. Um promotor, portanto, serve como um elemento regulatório transcricional e também fornece um local para a iniciação da transcrição do gene em mRNA. Elementos de controle interagem especificamente com pronteínas celulares envolvidas na transcrição (MANIATIS et al., Science 236:1237, 1987).

Como usado neste documento, o termo "sintase de éster" significa um peptídeo capaz de produzir ésteres graxos. Mais especificamente, uma sintase de éster é um peptídeo que converte um tioéster em um éster graxo. Em uma concretização preferida, a sintase de éster converte um tioéster (por exemplo, acil-CoA) em um éster graxo.

Em uma concretização alternativa, uma sintase de éster utiliza um tioéster e um álcool como substratos para produzir um éster graxo. Sintases de éster são capazes de usar tioésteres de cadeias curtas e longas como substratos. Além disso, sintases de éster são capazes de usar álcoois de cadeias curtas e longas como substratos.

Exemplos não limitantes de sintases de éster são sintases de cera, sintases de éster de cera, acil CoA: transacilases de álcool, aciltransferades e acil coenzima A graxo:aciltransferases de álcool graxo. Sintases de éster exemplares são classificadas em número de classificação enzimática EC 2,3,1,75. Exemplares de número de acesso GenBank são fornecidos na Tabela A. <table>table see original document page 34</column></row><table> <table>table see original document page 35</column></row><table> <table>table see original document page 36</column></row><table> <table>table see original document page 37</column></row><table> <table>table see original document page 38</column></row><table> <table>table see original document page 39</column></row><table> <table>table see original document page 40</column></row><table> <table>table see original document page 41</column></row><table> <table>table see original document page 42</column></row><table> <table>table see original document page 43</column></row><table> <table>table see original document page 44</column></row><table> <table>table see original document page 45</column></row><table> <table>table see original document page 46</column></row><table> <table>table see original document page 47</column></row><table> <table>table see original document page 48</column></row><table> <table>table see original document page 49</column></row><table> <table>table see original document page 50</column></row><table> <table>table see original document page 51</column></row><table> <table>table see original document page 52</column></row><table> <table>table see original document page 53</column></row><table> <table>table see original document page 54</column></row><table> <table>table see original document page 55</column></row><table> <table>table see original document page 56</column></row><table> <table>table see original document page 57</column></row><table> <table>table see original document page 58</column></row><table> <table>table see original document page 59</column></row><table> <table>table see original document page 60</column></row><table> <table>table see original document page 61</column></row><table> <table>table see original document page 62</column></row><table> <table>table see original document page 63</column></row><table> <table>table see original document page 64</column></row><table> <table>table see original document page 65</column></row><table> <table>table see original document page 66</column></row><table> <table>table see original document page 67</column></row><table> Como usado neste documento, o termo "ácido graxo" significa um ácido carboxílico contendo a fórmula RCOOH. R representa um grupo alifílico, preferencialmente um grupo alquila. R pode compreender entre cerca de 4 e cerca de 22 átomos de carbono.

Ácidos graxos podem ser saturados, monoinsaturados ou polinsaturados. Em uma concretização preferencial, o ácido graxo é feito a partir de uma via biossintética de ácido graxo.

Como usado neste documento, o termo "via biossintética de ácido graxo" significa uma via biossintética que produza ácidos graxos. A via biossintética de ácido graxo inclui enzimas de ácido graxo que podem ser projetadas, como descrito neste documento, para produzir ácidos graxos e, em algumas concretizações, podem ser expressadas com enzimas adicionais para produzir ácidos graxos contendo características desejadas de cadeia de carbono.

Como usado neste documento, o termo "derivado de ácido graxo" significa produtos feitos em parte a partir da via biossintética de ácido graxo do organismo hospedeiro de produção. O "derivado de ácido graxo" também inclui produtos feitos em parte a partir de acil-ACP ou de derivados de acil- ACP. A via biossintética de ácido graxo inclui enzimas de sintase de ácido graxo que podem ser projetadas como descrito neste documento para produzir derivados de ácido graxo e, em alguns exemplos, podem ser expressadas com enzimas adicionais para produzir derivados de ácidos graxos contendo características desejadas de cadeia de carbono. Derivados de ácido graxo exemplares incluem, por exemplo, ácidos graxos, acil-CoA, aldeído graxo, álcoois de cadeias longas e curtas, hidrocarbonetos, álcoois graxos e ésteres (por exemplo, ceras, ésteres de ácido graxos ou ésteres graxos). Como usado neste documento, o termo "enzimas de derivados de ácidos graxos" significa todas as enzimas que podem ser expressadas ou sobrexpressadas na produção de derivados de ácido graxo. Essas enzimas são coletivamente referidas neste documento como enzimas de derivados de ácidos graxos. Essas enzimas devem ser parte da via biossintética de ácido graxo. Exemplos não limitantes de enzimas de derivados de ácido graxo incluem sintases de ácido graxo, tioesterases, sintases de acil-CoA, redutases de acil-CoA, desidrogenases de álcool, aciltransferases de álcool, redutase de acil-CoA formadora de álcool graxo, sintases de éster, polipeptídeos biossintéticos de aldeído e polipeptídeos biossintéticos de alcano. Enzimas de derivados de ácido graxo convertem um substrato em um derivado de ácido graxo. Em alguns exemplos, o substrato pode ser xim derivado de ácido graxo o qual a enzima de derivado de ácido graxo converta em um derivado de ácido graxo diferente.

Como usado neste documento, o temo "peptídeos formadores de álcool graxo" significa um peptídeo capaz de catalisar a conversão de acil-CoA para álcool graxo, incluindo redutase de acil-CoA formadora de álcool graxo (FAR, EC 1,1,1,*), redutase de acyl-CoA (EC 1,2,1,50) ou desidrogenase de álcool (EC 1,1,1,1). Adicionalmente, uma habilidade comum no estado da arte apreciará que alguns peptídeos formadores de álcool graxo catalisem outras reações também. Por exemplo, alguns peptídeos de redutase de acil-CoA aceitarão outros substratos além dos ácidos graxos. Tais peptídeos não específicos estão, portanto, também incluídos. Seqüências de ácido nucleico codificando peptídeos formadores de álcool graxo são conhecidos no estado da técnica, e tais peptídeos estão publicamente disponíveis. Exemplares de número de acesso GenBank são fornecidos na Tabela A. Como usado neste documento, "enzima de ácido graxo" significa qualquer enzima envolvida na biossíntese de ácido graxo. Enzimas de ácido graxo podem ser expressadas ou sobrexpressadas nas células hospedeiras para produzir ácidos graxos. Exemplos não limitantes de enzimas de ácido graxo incluem sintases de ácido graxo e tioesterases.

Como usado neste documento, o temo "éster graxo." significa um éster. Em uma concretização preferida, um éster graxo é qualquer éster feito a partir de um ácido graxo, por exemplo, um éster de ácido graxo. Em uma concretização, um éster graxo contém um lado A (i.e., a cadeia de carbono anexada ao oxigênio carboxilado) e um lado B (i.e., a cadeia de carbono compreendendo o carboxilato fonte) . Em uma concretização preferida, quando o éster graxo é derivado a partir da via biossintética de ácido graxo, o lado A é contribuído por um álcool e o lado B é contribuído pelo um ácido graxo. Qualquer álcool pode ser usado para formar o lado A dos ésteres graxos.

Por exemplo, o álcool pode ser derivado a partir da via biossintética de ácido graxo. Alternativamente, o álcool pode ser produzido através de vias biossintéticas de ácidos não graxos. Além disso, o álcool pode ser fornecido exogenamente.

Por exemplo, o álcool pode ser fornecido na fermentação de caldo em instâncias nas quais o éster graxo seja produzido por um organismo. Alternativamente, um ácido carboxílico, tal com um ácido graxo ou ácido acético, pode ser fornecido exogenamente em instâncias nas quais o éster graxo seja produzido por um organismo que possa também produzir álcool.

As cadeias de carbono que compreendem o lado A ou o lado B podem ser de qualquer comprimento. Em uma concretização, o lado A do éster é de pelo menos cerca dei, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 10, 12, 14, 16 ou 18 carbonos de comprimento. O lado B do éster é de pelo menos cerca de 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24 ou 26 carbonos de comprimento. O lado A e/ou o lado B podem ser cadeia linear ou ramificada. As cadeias ramificadas devem ter um ou mais pontos de ramificação. Além disso, as cadeias ramificadas devem incluem ramificações cíclicas. Ademais, o lado A e/ou o lado B pode ser saturado ou insaturado. Se insaturado, o lado A e/ou o lado B pode ter um ou mais pontos de insaturação.

Em xama concretização, o éster graxo é produzido biossinteticamente. Nessa concretização, primeiro o ácido graxo é "ativado". Exemplos não limitantes de ácidos graxos "ativados" são acil-CoA, acil-ACP e acil fosfato. Acil-CoA pode ser um produto direto da biossíntese ou da degradação de ácido graxo. Além disso, acil-CoA pode ser sintetizado a partir de um ácido graxo livre, de uma CoA ou de um nucleotídeo adenosina trifostado (ATP). Em exemplo de uma enzima que produz acil-CoA é sintase de acil-CoA.

Após o ácido graxo ser ativado, ele pode ser prontamente transferido para um recipiente nucleófilo. Exemplares nucleófilos são álcoois, tióis ou fosfatos.

Em uma concretização, o éster graxo é uma cera. A cera pode ser derivada a partir de um álcool de cadeia longa e de um ácido graxo de cadeia longa. Em uma outra concretização, o éster graxo pode ser derivado a partir de um acil-tioéster graxo e um álcool. Em outra concretização, o éster graxo é um tioéster de ácido graxo, por exemplo, acil Coenzima A (CoA) graxo. Em outras concretizações, o éster graxo é um acil pantotenato graxo, uma proteína transportadora de acila (ACP) ou um éster fosfato graxo. Esteres graxos possuem muitos usos. Por exemplo, ésteres graxos podem ser usados como biocombustível.

Como usado neste documento, "fração de carbono moderno" ou Im possui o mesmo significado como definido pelo National Institute os Standards and Technology (NIST) Materiais e Referência Padrão (SRMs) 4990B e 4990C, conhecido como padrões de ácidos oxálicos HOxI e HOxII, respectivamente. A definição fundamental refere-se a 0,95 vezes a razão do isótopo 14CV12C HOxI (referido a AD 1950). Isso é grosseiramente equivalente ao decaimento corrigido da madeira pré-Revolução Industrial. Para a biosfera de vida atual (material de planta), fM é de aproximadamente 1,1.

Cálculos de "homologia" entre duas seqüências podem ser realizados como se segue. As seqüências são alinhadas para fins de comparação ideal (por exemplo, lacunas podem ser introduzidas em um ou ambos de uma primeira e uma segunda seqüência aminoácido ou ácido nucleico para melhor alinhamento, e seqüências não homólogas podem ser ignoradas para fins de comparação). Em uma concretização preferida, o comprimento de uma seqüência de referência que esteja alinhada para fins de comparação é de pelo menos cerca de 30%, preferencialmente de pelo menos 40%, mais preferencialmente de cerca de 50%, ainda mais preferencialmente de cerca de 60%, e ainda mais preferencialmente de cerca de 70%, de pelo menos cerca de 80%, de pelo menos cerca de 90% ou cerca de 100% do comprimento da seqüência de referência. Os resíduos de aminoácido ou nucleotídeos nas posições correspondentes ao aminoácido ou nucleotídeos são então comparados. Quando uma posição na primeira seqüência é ocupada pelo menos resíduo de aminoácido ou nucleotídeo como a posição correspondente na segunda seqüência, então as moléculas são idênticas naquela posição (como usado neste documento, a "identidade" do aminoácido ou do ácido nucleico é equivalente à "homologia" do aminoácido ou do ácido nucleico). A identidade percentual entre as duas seqüências é uma função do número de posições idênticas compartilhadas pelas seqüências, levando-se em conta o número de lacunas e o comprimento de cada lacuna, o que precise ser introduzido para o melhor alinhamento das duas seqüências.

A comparação de seqüências e a determinação de homologia percentual entre as duas seqüências podem ser adquiridas usando algoritmo matemático. Em uma concretização preferida, a homologia percentual entre duas seqüências de aminoácidos é determinada usando-se o Needleman e Wunsch (1970), J. Mol. Biol. 48:444-453, algoritmo que foi incorporado ao programa GAP na embalagem do software GCG, usando tanto uma matriz Blossum 62 quanto uma matriz PAM250, e um peso de lacuna de 16, 14, 12, 10, 8, 6 ou 4 e um peso de comprimento de 1, 2, 3, 4, 5 ou 6. Em ainda outra concretização preferida, a homologia percentual entre duas seqüências de nucleotideos é determinada usando o programa GAP no pacote do software GCG, usando uma matriz NWSgapdna.CMP e um peso de lacuna de 40, 50, 60, 70 ou 80 e um peso de comprimento de 1, 2, 3, 4, 5 ou 6. Um conjunto particularmente preferido de parâmetros (e o único que deve ser usado se o praticante estiver incerto sobre quais parâmetros devem ser aplicados para determinar se uma molécula está dentro de uma limitação de homologia das reivindicações) é uma matriz de pontuação Blossum 62 com uma penalidade de lacuna de 12, uma penalidade de lacuna ampla de 4 e uma penalidade de lacuna de frameshift de 5.

Como usado neste documento, uma "célula hospedeira" é uma célula usada para produzir um produto descrito neste documento (por exemplo, um aldeído ou alcano descrito neste documento).

Uma célula hospedeira pode ser modificada para expressar ou sobrexpressar genes selecionados ou para ter atenuada a expressão de genes selecionados. Exemplos não limitantes de células hospedeiras incluem células de planta, animal, humana, bactéria, levedura ou de fungos filamentosos.

Como usado neste documento, o termo "hibridiza sob condições de baixa estringência, média estringência, alta estringência ou muito alta estringência" descreve condições para hibridização e lavagem. A orientação para realizar reações de hibridização pode ser encontrada em Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, NY (1989), 6,3,1-6,3,6. Métodos aquosos e não aquosos são descritos nessa referência e tanto um quanto outro pode ser usado. Condições específicas de hibridização referidas neste documento são como se segue: 1) condições de hibridização de baixa estringência em 6X de cloreto de sódio/citrato de sódio (SSC) a cerca de 45aC, seguido por duas lavagens em 0,2X SSC, 0,1% SDS a pelo menos 50°C (a temperatura das lavagens pode ser aumentada para 55aC para condições de baixa estringência); 2) condições de hibridização de média estringência em 6X SSC a cerca de 45aC, seguida por uma ou mais lavagens em 0,2X SSC, 0,1% SDS a 60aC; 3) condições de hibridização em elevada estringência em 6X SSC a cerca de 45aC, seguida de uma ou mais lavagens em 0,2X SSC, 0,1% SDS a 65 aC; e preferencialmente 4) condições de hibridização em muito elevada estringência são 0,5M de fosfato de sódio, 7% SDS a 652C, seguido de uma ou mais lavagens a 0, 2X SSC, 1% SDS a 65 aC. Condições muito elevadas de estringência (4) são as condições preferidas salvo em contrário especificado. O termo "isolado" como usado neste documento com respeito aos ácidos nucleicos, tais como DNA ou RNA, refere-se a moléculas separadas a partir de outros DNAs ou RNAs, respectivamente, que são apresentados na fonte natural de ácido nucleico. Além disso, "um ácido nucleico isolado" inclui fragmentos de ácido nucleico, tais como fragmentos que não ocorrem naturalmente. 0 termo "isolado" é também usado neste documento para se referir a polipeptídeos, que são isolados a partir de outras proteínas celulares, e engloba tanto os polipeptídeos edógenos purificados quanto os polipeptídeos recombinantes. O termo "isolado" como usado neste documento também refere-se a um ácido nucleico ou polipeptídeo que seja substancialmente livre de material celular, material viral ou meio de cultura quando produzido por técnicas de DNA recombinante. O termo "isolado" como usado neste documento também se refere a um ácido nucleico ou polipeptídeo que seja substancialmente livre de precursores químicos ou outras químicas quando sintetizado quimicamente.

Como usado neste documento, o "nível de expressão de um gene em uma célula" refere-se ao nível de mRNA, às transcrições nascentes de pré-mRNA, aos processos de transcrição intermediários, ao(s) mRNA(s) maduro(s) e/ou aos produtos da degradação codificados pelo gene na célula.

Como usado neste documento, o termo "microrganismo" significa espécies microbiais procarióticas e eucarióticas a partir de domínios Archea, Bactéria e Eucarya, o último incluindo levedura e fungos filamentosos, protozoa, algae ou alto protista. O termo "célule microbial", como usado neste documento, significa uma célula a partir de um microrganismo. Como usado neste documento, o termo "ácido nucleico" refere-se a polinucleotídeos, tais como ácido desoxirribonucleico (DNA) , e, quando apropriado, ácido ribonucleico (RNA). 0 termo ainda inclui análogos tanto do RNA quanto do DNA feitos a partir de nucleotideos análogos e, como aplicável à concretização sendo descrita, polinucleotídeos simples (senso e antissenso) e de filamento duplo, ESTs, cromossomos, cDNAs, mRNAs e rRNAs.

Como usado neste documento, o termo "operacionalmente ligado" significa que a seqüência de nucleotídeo selecionada (por exemplo, codificando um polipeptídeo descrito neste documento) esteja em proximidade com um promotor para permitir que o promotor regule a expressão da seqüência de nucleotídeo selecionada. Além disso, o promotor está localizado à montante da seqüência de nucleotídeo selecionada em termos da direção de transcrição e tradução. Por "operacionalmente ligado" destina-se que uma seqüência de nucleotídeo e uma seqüência(s) regulatória sejam conectadas de tal forma que permita a expressão do gene quando as moléculas apropriadas (por exemplo, proteínas ativadoras transcricionais) estiverem ligadas à seqüência(s) regulatória.

O termo "ou" é usado neste documento para significar, e é usado alternadamente com, o termo "e/ou", salvo em contexto claramente indicando o contrário.

Como. usado neste documento, "sobrexpressar" significa expressar ou provocar que seja expressado um ácido nucleico, polipeptídeo ou hidrocarboneto em um célula a um concentração maior do que seja normalmente expressado em uma célula de tipo selvagem correspondente. Por exemplo, um polipeptídeo pode ser "sobrexpressado" em uma célula hospedeira recombinante quando o polipeptídeo está presente em uma concentração maior na célula hospedeira recombinante comparada a sua concentração em uma célula hospedeira não recombinante da mesma espécie.

Como usado neste documento, "coeficiente de partição" ou "P" é definido como a concentração de equilíbrio de um composto em uma fase orgânica dividida pela concentração em equilíbrio em uma fase aquosa (por exemplo, caldo de fermentação) . Em uma concretização de um sistema bifásico descrito neste documento, a fase orgânica é realizada pelo aldeído ou alcano durante o processo de produção. Entretanto, em alguns exemplos, uma fase orgânica pode ser fornecida, tal como pelo fornecimento de uma camada de octano, para facilitar a separação do produto.

Durante a descrição de um sistema de duas fases, as características de partição de um composto podem ser descritas como IogP. Por exemplo, um composto com um IogP de 1 seria a partição 10:1 para a fase orgânica. Um composto com um IogP de -1 seria a partição 1:10 para a fase orgânica. Escolhendo-se um caldo de fermentação apropriado e a fase orgânica, um aldeído ou alcano com um valor de IogP elevado pode separar dentro da fase orgânica mesmo que em concentrações muito baixas no vaso de fermentação.

Como usado neste documento, o termo "purificar", "purificado" ou "purificação" significa a remoção ou o isolamento de uma molécula a partir de seu ambiente por, por exemplo, isolamento ou separação. Molécula "substancialmente purificadas" são pelo menos cerca de 60% livres, preferencialmente pelo menos cerca de 7 5% livres, e mais preferencialmente pelo menos cerca de 90% livres de outros componentes com os quais elas são associadas. Como usado neste documento, esses termos também se referem à remoção de contaminantes de uma amostra. Por exemplo, a remoção de contaminantes pode resultar em ' um aumento na porcentagem de aldeídos ou alcanos em uma amostra. Por exemplo, quando aldeídos ou alcanos são produzidos em uma célula hospedeira, os aldeídos ou alcanos podem ser purificados pela remoção de proteínas da célula hospedeira. Após a purificação, a porcentagem de aldeídos ou alcanos na amostra é aumentada.

Os termos "purificar", "purificado" ou "purificação" não exigem pureza absoluta. Eles são termos relativos. Assim, por exemplo, quando aldeídos ou alcanos são produzidos em células hospedeiras, um aldeído purificado ou alcano purificado é aquele que é substancialmente separado dos outros componentes celulares (por exemplo, ácidos nucleicos, polipeptídeos, lipídeos, carboidratos ou outros hidrocarbonetos). Em outro exemplo, uma preparação de aldeído purificado ou alcano purificado é aquela na qual o aldeído ou alcano é substancialmente livre de contaminantes, tais como aqueles que podem estar presentes na fermentação seguinte. Em algumas concretizações, um aldeído ou um alcano é purificado quando pelo menos cerca de 50% de peso de uma amostra for composta do aldeído ou do alcano. Em outras concretizações, um aldeído ou um alcano é purificado quando pelo menos cerca de 60%, 7 0%, 80%, 85%, 90%, 92%, 95%, 98% ou 99% ou mais do peso de uma amostra for composto pelo aldeído ou alcano.

Como usado neste documento, o temo "polipeptídeo recombinante" refere-se a um polipeptídeo que seja produzido por técnicas de DNA recombinante, onde geralmente o DNA codifica o polipeptídeo expressado ou o RNA é inserido dentro de um vetor de expressão adequado e que seja, por sua vez, usado para transformar a célula hospedeira para produzir o polipeptídeo ou RNA. Como usado neste documento, o temo "substancialmente idêntico" (ou "substancialmente homólogo") é usado para se referir a uma primeira seqüência de aminoácido ou nucleotídeo que contenha um número suficiente de resíduos de aminoácido ou nucleotídeos idêntico ou equivalente (por exemplo, com uma cadeia lateral semelhante, por exemplo, substituições de aminoácido conservadas) a uma segunda seqüência de aminoácidos ou nucleotídeos tal que a primeira e a segunda seqüências de aminoácidos ou nucleotídeos tenham atividades similares.

Como usado neste documento, o termo "sintase" significa uma enzima que catalisa um processo de síntese. Como usado neste documento, o termo sintase inclui sintases, sintetases ou ligases.

Como usado neste documento, o termo "trasnfecção" significa a introdução de um ácido nucleico (por exemplo, por meio de um vetor de expressão) dentro de uma célula recipiente pela transferência gênica mediada de ácido nucleico.

Como usado neste documento, "transformação" refere-se a um processo no qual o genótipo da célula é modificado como resultado da absorção nuclear de ácido nucleico exógeno. Isso deve resultar na célula transformada expressando uma forma recombinante de um RNA ou polipeptídeo. No caso de expressão antissenso a partir do gene transferido, a expressão de uma forma que ocorra naturalmente do polipeptídeo é interrompida.

Como usado neste documento, uma "proteína de transporte" é um polipeptídeo que facilita o movimento de um ou mais compostos dentro e/ou fora de uma organela celular e/ou uma célula. Como usado neste documento, uma "variante" de polipeptídeo X refere-se a um polipeptídeo contendo a seqüência de aminoácido de polipeptídeo X na qual um ou mais resíduos de aminoácidos seja alterado. A variante deve conter mudanças conservantes ou mudanças não conservantes. A orientação em determinar quais resíduos de aminoácidos devem ser substituídos, inseridos ou apagados sem afetar a atividade celular pode ser encontrada usando-se programas de computadores bem-conhecidos no estado da técnica, por exemplo, o software LASERGENE (DNASTAR).

O termo "variante", quando usado no contexto de uma seqüência de polinucleotídeo, deve englobar uma seqüência de polinucleotídeo relacionada àquela de um gene ou à seqüência de codificação deste. Essa definição deve ainda incluir, por exemplo, variantes "alélicas", "de encaixe", de "espécies" ou "polimórficas". Uma variante de encaixe deve conter uma identificação significante a uma polinucleotídeo de referência, mas geralmente terá um número maior ou menor de polnucleotídeos devido ao encaixe alternativo de éxons durante o processamento de mRNA. O polipeptídeo correspondente deve possuir domínios funcionais adicionais ou uma ausência de domínios. Variantes de espécies são seqüências de polinucleotídeos que variam de uma espécie para outro. Os polipeptídeos resultantes geralmente possuirão identificação de aminoácido significante relativa uma com a outra. Uma variante polimórfica é uma variação na seqüência de polinucleotídeos de um gene particular entre indivíduos de uma dada espécie.

Como usado neste documento, o termo "vetor" refere-se a uma molécula de ácido nucleico capaz de transportar outro ácido nucleico para o qual este tenha sido ligado. Um tipo de vetor útil é vim episoma (i.e., um ácido nucleico capaz de replicação extracromossomial). Vetores úteis são aqueles capazes de replicações autônomas e/ou expressões de ácidos nucleicos aos quais eles estão ligados. Vetores capazes de direcionar a expressão de genes para os quais eles estão operacionalmente ligado são referidos neste documento como "vetores de expressão. Em geral, vetores de expressão úteis em técnicas de DNA recombinante estão freqüentemente na forma de "plasmídeos", o que se refere geralmente a voltas circulares de DNA de filamento duplo que, em sua forma de vetor, não são ligados ao cromossomo. No presente relatório descritivo, "plasmídeos" e "vetor" são usados alternadamente, já que o plasmídeo é a forma de vetor mais comumente usada. Entretanto, também incluídas estão outras formas de vetores de expressão que servem de funções equivalentes e que se tornaram conhecidas no estado da técnica subseqüentemente neste documento.

Salvo em definição contrária, todos os termos técnicos e científicos usados neste documento possuem o mesmo significado como entendidos comumente por aquele de habilidade ordinária no estado da técnica à qual esta invenção pertence. Embora os métodos e os materiais semelhantes ou equivalentes àqueles descritos neste documento possam ser usados na prática ou no teste da presente invenção, métodos e materiais adequados são descritos abaixo. Todas as publicações, os pedidos de patentes, as patentes ou outras referências mencionadas neste documento estão incorporadas para referência em sua totalidade. No caso de conflito, o presente relatório descritivo, incluindo as definições, controlará. Além disso, os materiais, os métodos e os exemplos são ilustrativos apenas e não têm a intenção de serem limitantes. Outras características e vantagens da invenção serão aparentes a partir da seguinte descrição detalhada e das reivindicações.

BREVE DESCRIÇÃO DAS FIGURAS

FIG. 1A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células Prochlorococcus marinus CCMP1986. FIG. IB é um padrão de fragmentação de massa do pico a 7,55 min da FIG. IA.

FIG. 2A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células Nostoe punetiforme PCC73102. FIG. 2B é um padrão de fragmentação de massa do pico a 8,73 min da FIG. 2A.

FIG. 3A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células Gloeobaeeter violaeeus ATCC29082. FIG. 3B é um padrão de fragmentação de massa do pico a 8,72 min da FIG. 3A.

FIG.4A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células Synechoeystis sp. PCC6803. FIG. 4B é um padrão de fragmentação de massa do pico a 7,36 min da FIG. 4A.

FIG. 5A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células Synechoeystis sp. PCC6803. FIG. 5B é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células Synechoeystis sp. PCC6803 com a exclusão dos genes sll0208 e sll0209.

FIG. 6A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células do tipo selvagem de E. eoli MG1655. FIG. 6B é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. eoli MGl655 expressndo Synechocoeeus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65). FIG. 7 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli expressando Cyanothece sp. ATCC51142 cce_1430 (YP_001802846) (SEQ IDNO.-69).

FIG. 8A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7 942_1594)(SEQ ID NO:65). FIG. 8A retrata um padrão de fragmentação dè massa do pico a 6,98 min da FIG. 8A e de 8-heptadeceno.

FIG. 9 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178 (ZP_00108838) (SEQ ID NO:5).

FIG. 10 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Synechocystis sp. PCC6803 S110208 (NP_442147) (SEQ IDNO:3).

FIG. 11 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MGl655 expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Nostoe sp. PCC7210 alr5283 (NP_489323) (SEQ ID N0:7).

FIG. 12 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Acaryochloris marina MBIC11017 AM1_4041 (YP_001518340) (SEQ ID NO:46) otimizado de códon.

FIG. 13 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Synechococcus elongatus PCC7942 ΥΡ_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Thermosynechococcus elongatus BP-I tlll313 (NP_682103) (SEQ ID NO:47) otimizado de códon.

FIG. 14 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. eoli MG1655 expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Synechococcus sp. JA-3-3Ab CYA_0415 (YP_473897) (SEQ ID NO:48) otimizado de códon.

FIG. 15 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. eoli MG1655 expressando Synechoeoceus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Gloeobaeter violaeeus PCC7421 gll3146 (NP_926092) (SEQ ID NO:15).

FIG. 16 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. eoli MG1655 expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Prochlorococcus marinus MIT9313 PMT1231 (NP_895059) (SEQ ID NO:49) otimizado de códon.

FIG. 17 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. eoli MG1655 expressando Synechoeoceus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Prochlorococcus marinus CCMP1986 PMMO532 (NP_892 650) (SEQ ID NO:19).

FIG. 18 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. eoli MG1655 expressando Synechoeoceus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Prochlorococcus marinus NATL2A PMN2A_1863 (YP_293054) (SEQ ID NO:51) otimizado de códon. FIG. 19 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Synechococcus sp. RS9917 RS9917_09941 (ZP_01079772) (SEQ ID NO:52) otimizado de códon.

FIG. 20 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Synechoeoceus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Synechococcus sp. RS9917 RS9917_12945 (ZP_01080370) (SEQ ID NO:53) otimizado de códon.

FIG. 21 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de Ξ. coli MG1655 expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Cyanotheee sp. ATCC51142 cce_0778 (YP_001802195) (SEQ ID NO:27).

FIG. 22 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Synechoeoceus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Cyanothece sp. PCC7425 Cyan7425_0398 (YP_002481151) (SEQ ID NO:29).

FIG. 23 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Synechoeoceus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Cyanothece sp. PCC7425 Cyan7425_2986 (YP_002483683) (SEQ ID NO:31).

FIG. 24A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Prochlorococcus marinus CCMP1986 PMMO533 (NP_892651) (SEQ ID NO: 71) . FIG. 24B é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Prochlorococcus marinus CCMP1986 PMMO533 (NP_892651) (SEQ ID NO:71) e Prochlorococcus marinus CCMP1986 PMMO532 (NP_892650) (SEQ IDNO.-19).

FIG. 25A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 MadE laeZ::Ptrc 'tesA-fadD. FIG. 25B é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MGl 6 55 AfadE IacZ:: Ptrc 'tesA-fadD expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Aearyoehloris marina MBIC11017 AMl_4041 (YP_001518340) (SEQ ID NO:9).

FIG. 26A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 HfadE IacZ:: Ptrc 'tesA-fadD expressando Synechocystis sp. PCC6803 S110209 (NP_442146) (SEQ ID NO: 67) . FIG. 26B é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 AfadE IacZ: :Ptrc 'tesA-fadD expressando Synechocystis sp. PCC6803 sll0208 (NP_442147) (SEQ ID NO:3).

FIG. 27A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 AfadE IacZ:: Ptrc ' tesA-fadD expressando a descendência M. smegmatis MC2 155 MSMEG_5739 (YP_889972) (SEQ ID NO:85). FIG. 27B é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 AfadE IacZ:: Ptrc 'tesA-fadD expressando a descendência M. smegmatis MC2 155 MSMEG_5739 (YP_889972) (SEQ ID NO:85) e Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178 (ZP_00108838) (SEQ ID NO:5). FIG. 28 é xima representação gráfica de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 àfadE IacZ:: Ptrc 'tesA-fadD expressando a descendência M. smegmatis MC2 155 MSMEG_5739 (YP_889972) (SEQ ID NO:85) tanto sozinha quanto em combinação com Nostoc sp. PCC7120 alr5283 (SEQ ID N0:7), Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178 (SEQ ID N0:5), P. mariunus CCMP1986 PMM0532 (SEQ ID N0:19), G. violaceus PCC7421 gll3146 (SEQ ID NO:15), Synechococcus sp. RS9917_09941 (SEQ ID NO:2 3), Synechoeoecus sp. RS9917-12945 (SEQ ID NO:25) ou A. marina MBIC11017 AM1_4041 (SEQ ID N0:9).

FIG. 29A é uma representação da estrutura tridimensional de uma proteína subunidade β ribonuclease redutase classe I, RNRp. FIG. 29B é uma representação da estrutura tridimensional do lugar ativo de Prochlorococcus marinus MIT9313 PMT1231 (NP_895059) (SEQ ID NO: 17) . FIG.29C é uma representação da estrutura tridimensional do lugar ativo de Prochlorococcus marinus MIT9313 PMT1231 (NP_895059) (SEQ ID N0:17).

FIG. 30A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MGl655 expressando Nostoe punctiforme PCC73102 Npun02 00417 8 (ZP_00108838) (SEQ ID N0:5). FIG. 30B é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando a variante Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178 (ZP_00108838) Y123F. FIG. 30C é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando a variante Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178 (ZP_00108838) Y126F.

FIG. 31 retrata traços GC/MS de hidrocarbonetos produzidos in vitro usando Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178 (ZP_00108838) (SEQ ID NO:6) e octadenal (A); Npun02004178 (ZP_00108838) (SEQ ID NO:6), octadenal, redutase de ferredoxina de espinafre e NADPH (B); octadenal, ferredoxina de espinafre, redutase de ferredoxina de espinafre e NADPH (C); OU Npun02004178 (ZP_00108838) (SEQ ID N0:6), ferredoxina de espinafre e ferredoxina de espinafre (D).

FIG. 32 retrata traços GC/MS de hidrocarbonetos produzidos in vitro usando Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178 (ZP_00108838) (SEQ ID N0:6), NADPH, octadenal e tanto (A) ferredoxina de espinafra quanto redutase de ferredoxina de espinafre; (B) N. punctiforme PCC73102 Npun02003626 (ZP_00109192) (SEQ ID NO:88) e N. punctiforme PCC73102 Npun02001001 (ZP_00111633) (SEQ ID N0:90); (C) Npun02003626 (ZP_00109192) (SEQ ID NO:88) e N. punctiforme PCC73102 Npun0200353 0 (ZP_00109422) (SEQ ID NO:92); ou (D) Npun02003626 (ZP_00109192) (SEQ ID NO: 88) e N. punctiforme PCC73102 Npun02003123 (ZP_00109501) (SEQ IDNO-.94).

FIG. 33A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos in vitro usando octadecanoil-CoA, Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:66), NADH e Mg2+. FIG. 33B é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos in vitro usando octadecanoil-CoA, Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:66), NADPH e Mg2+. FIG. 33C é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos in vitro usando octadecanoil-CoA, Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7 942_1594) (SEQ ID NO:66) e NADPH.

FIG. 34A é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos in vitro usando octadecanoil-CoA, NADPH marcado, Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:66) e NADPH não marcado. FIG. 34B é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos in vitro usando octadecanoil-CoA, NADPH marcado, Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO: 66) e S-(4-2H)NADPH. FIG. 34C é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos in vitro usando octadecanoil-CoA, NADPH marcado, Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:66) e R-(4- 2H)NADPH.

FIG. 35 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos no sobrenadante livre de células produzidos pelas células de E. coli MG1655 àfadE em meio Che-9 expressando Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Sunpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65).

FIG. 3 6 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos no sobrenadante livre de células produzidos pelas células de E. coli MG1655 àfadE em meio Che-9 expressando Synechoeoceus elongatus PCC7942 YP_400611 (Sunpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) e Nostoe punetiforme PCC73102 Npun02004178 (ZP_00108838) (SEQ ID NO:5).

FIG. 37 é um traço GC/MS de hidrocarbonetos produzidos pelas células de E. coli MG1655 expressando Nostoc sp. PCC7120 alr5283 (NP_489323) (SEQ ID NO: 7) e Nostoc sp. PCC7120 alr5284 (NP_489324) (SEQ ID NO:81).

DESCRIÇÃO DETALHADA DA INVENÇÃO

A invenção fornece composições e métodos de produção de aldeidos, álcoois graxos e hidrocarbonetos (tais como alcanos, alcenos e alcinos) a partir de substratos, por exemplo, de um acil-ACP, de um ácido graxo, de uma acil-CoA, de um aldeido graxo, ou de iam substrato de álcool graxo (por exemplo, como descrito em PCT/US08/058788, especificamente incorporado para referência neste documento). Tais aldeidos, alcanos e alcenos são úteis como biocombustíveis (por exemplo, substitutos para gasolina, diesel, combustível de jatos etc.), especialidades químicas (por exemplo, lubrificantes, aditivos de combustíveis etc.) ou matéria-prima para outras conversões químicas (por exemplo, combustível, polímeros, plásticos, têxteis, solventes, adesivos etc.). A invenção é baseada, em parte, na identificação de genes que estejam envolvidos na biossíntese de aldeído, alcano e alceno.

Tais genes biossintéticos de alcano e alceno incluem, por exemplo, Synechococcus elongatus PCC7942 Synpcc7942_1593 (SEQ ID NO:1), Synechoeystis sp. PCC6803 S110208 (SEQ ID N0:3), Nostoe punetiforme PCC73102 Npun02004178 (SEQ ID N0:5), Nostoc sp. PCC 7120 alr5283 (SEQ ID N0:7), Aearioehloris marina MBIC11017 AM1_4041 (SEQ ID NO:9), Thermosynechocoeeus elongatus BO-I tlll313 (SEQ ID N0:11), Synechoeoceus sp. JA-3- 3A CYA_0415 (SEQ ID N0:13), Gloeobaeter violaeeus PCC 7421 gll3146 (SEQ ID N015), Prochlorococcus marinus MIT9313 PM123 (SEQ ID NO:17), Prochloroeoecus marinus subespécie pastoris str. CCMP1986 PMM0532 (SEQ ID N0:19), Prochloroeoecus marinus str. NATL2A PMN2A_1863 (SEQ ID N0:21), Synechoeoceus sp. RS9917 RS9917_09941 (SEQ ID NO:23), Synechococcus sp. RS9917 RS9917_09945 (SEQ ID NO:25), Cyanothece sp. ATCC51142 cce_0778 (SEQ ID NO: 27) , Cyanothece sp. PCC7245 Cyan742 5DRAFT_122 0 (SEQ ID NO:2 9), Cyanothece sp. PCC7245 cce_0778 (SEQ ID N0:31), t Anabaena variabilis ATCC29413 YP_323043 (Ava_2533) (SEQ ID NO:33) e Synechococcus elongatus PCC6301 YP_170760 (syc0050_d) (SEQ ID NO:35). Outros genes biossintéticos de alcano e alceno são listados na Tabela 1 e na Tabela B.

Genes biossintéticos de aldeído incluem, por exemplo, Synechoeoceus elongatus PCC7942 Synpcc7942_1594 (SEQ ID NO:65), Synechocystis sp. PCC6803 S110209 (SEQ. ID NO:67), Cyanothece sp. ATCC51142 cce_1430 (SEQ ID NO:69), Prochlorococcus marinus subespécie pastoris str. CCMP1986 PMMO 533 (SEQ ID NO:71), Prochlorococcus marinus str. NATL2A PMN2A_1863 (SEQ ID ΝΟ.-21), Gloeobacter violaceus PCC7421 NP_96091 (gll3145) (SEQ ID NO:73), Nostoc punetiforme PCC73102 ZP_00108837 (Npun02004176) (SEQ ID NO:75), Anabaena variabilis ATCC29413 YP_323044 (Ava_2534) (SEQ ID NO:77), Synechococcus elongatus PCC6301 YP_170761 (syc0051_d) (SEQ ID NO:79) e Nostoe sp. PCC 7120 alr5284 (SEQ ID NO:81). Outros genes biossintéticos de aldeídos são listados na Tabela 1 e na Tabela C.

Usando os métodos descritos neste documento, aldeídos, álcoois graxos, alcanos e alcenos podem ser preparados usando-se um ou mais genes biossintéticos de aldeído, alcano e/ou alceno ou polipeptídeos descritos neste documento, ou variantes destes, utilizando células hospedeiras métodos livres de células. Tabela 1: Genes biossintéticos homólogos de aldeídos e alcanos em genomas cianobacteriais

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Tabela B [FIG. 38]. Lista de exemplos de homólogos de Synechócoccus elongatus PCC7942 YP_400610 (Synpcc7942_1593) (SEQ ID NO:l) a partir de uma base de dados metagenômica.

Números de Acesso de 10 de abril de 2009

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Corte utilizado: >50% de identidade e >25% de comprimento do synpcc7942_1593 Tabela C [FIG. 39]. Lista de exemplos de homólogos de Synechococcus elongatus PCC7942 YP_400611 (Synpcc7942_1594) (SEQ ID NO:65) a partir de uma base de dados metagenômica.

Números de Acesso de 10 de abril de 2009

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Corte utilizado: >50% de identidade e >25% do comprimento do synpcc7942_1594 Genes biossintéticos de aldeído, alcano e alceno e variantes

Os métodos e as composições descritos neste documento incluem, por exemplo, genes biossintéticos de alcano ou alceno contendo a seqüência de nucleotideo de SEQ ID NO: 1, 3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19, 21, 23, 25, 27, 29, 31, 33 ou 35, assim como as variantes de polinucleotídeos desta. Em algumas instâncias, o gene biossintético de alcano ou alceno codifica um ou mais motivos de aminoácidos descritos neste documento. Por exemplo, o gene biossintético de alcano ou alceno pode codificar um polipeptídeo compreendendo a SEQ ID NO: 37, 38, 39, 41, 42, 43 ou 44. O gene biossintético de alcano ou alceno pode também incluir um polipeptídeo compreendendo a SEQ ID NO: 40 e também qualquer uma de SEQ ID NO: 37, 3 8 ou 39.

Os métodos e as composições descritas neste documento também incluem, por exemplo, genes biossintéticos de aldeído contendo a seqüência de nucleotídeos de SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81, assim como variantes de polinucleotídeos desta. Em algumas instância, o gene biossintético de aldeído codifica um ou mais motivos de aminoácido descrito neste documento. Por exemplo, o gene biossintético de aldeído pode codificar um polipeptídeo compreendendo a SEQ ID NO: 54, 55, ► 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63 ou 64.

As variantes podem ocorrer naturalmente ou ser criadas in vitro. Em particular, tais variantes podem ser criadas usando técnicas de engenharia genética, tais como mutagênese direcionada local, mutagênese química aleatória, procedimentos de supressão Exonuclease III e técnicas de clonagem padrão.

Alternativamente, tais variantes, fragmentos, análogos ou derivados podem ser criados usando síntese química ou procedimentos de modificação. Os métodos de produção de variantes são bem-conhecidos no estado da técnica. Eles incluem procedimentos nos quais seqüências de ácido nucleico obtidos a partir de isolados naturais são modificados para gerar ácidos nucleicos que codifiquem polipeptídeos contendo características que melhorem seus valores nas aplicações industriais ou laboratoriais. Em tais procedimentos, um grande número de seqüências de variantes contendo uma ou mais diferenças de nucleotídeos com respeito à seqüência obtida a partir do isolado natural são geradas e caracterizadas. Tipicamente, essas diferenças de nucleotídeo resultam em mudanças de aminoácidos em relação aos polipeptídeos codificados pelos ácidos nucleicos a partir dos isolados naturais.

Por exemplo, variantes podem ser criadas usando-se PCR propensa a erro (ver, por exemplo, LEUNG et al. Technigue 1:11-15, 1989; e CALDWELL et al., PCR Methods Applic. 2:28-33, 1992) . Em PCR propensa a erro, PCR é realizada sob condições nas quais a fidelidade de cópia da polimerase do DNA é baixa, tal que uma elevada taxa de pontos de mutações é obtida ao longo de todo o comprimento do produto da PCR. Brevemente, em tais procedimentos, os ácidos nucleicos a serem mutagenizados (por exemplo, uma seqüência de polinucleotídeos biossintéticos de aldeído ou alcano) são misturados com os detonadores de PCR, o tamponador de reação, MgCl2, MnCl2, Taq polimerase e uma concentração apropriada de dNTPs para alcançar uma taxa elevada de ponto de mutação ao longo de todo o comprimento do produto da PCR. Por exemplo, a reação pode ser realizada usando 20fmoles de ácido nucleico a ser mutagenizado (por exemplo, uma seqüência de polinucleotídeos biossintéticos de aldeído ou alcano), 3 0 pmoles de cada detonador de PCR, um tamponador de reação compreendendo 50mM de KCl, 10 mM de Tris HCl (pH 8,3) e 0,01% de gelatina, 7 mM de MgCl2, 0,5 mM de MnCl2, 5 unidades de Taq polimerase, 0,2 niM de dGTP, 0,2 mM de dATP, 1 mM de dCTP e 1 mM de dTTP. A PCR pode ser realizada por 30 ciclos de 94aC por 1 min, 45aC pode min e 729C por 1 min. Entretanto, apreciar-se-á que esses parâmetros possam ser variados como apropriado. Os ácidos nucleicos mutagenizados são então clonados dentro de um vetor apropriado e as atividades do polipeptídeos codificadas pelo ácido nucleico mutagenizado são avaliadas.

As variantes podem também ser criadas usando-se mutagênese direta de oligonucleotídeos para gerar mutações em lugares específicos em qualquer DNA clonado de interesse. A mutagênese de oligonucleotídeo é descrita em, por exemplo, Reidhaar-Olson et al., Sciense 241:53-57, 1988. Brevemente, em tais procedimentos uma pluralidade de oligonucleotídeos de filamento duplo carregando uma ou mais mutações para serem introduzidas dentro do DNA clonado são sintetizadas e inseridas dentro do DNA clonado para serem mutagenizadas (por exemplo, uma seqüência de polinucleotídeos biossintéticos de aldeído ou alcano). Os clones contendo o DNA mutagenizado são recuperados, e as atividades dos polipeptídeos que eles codificam são avaliadas.

Outro método para a geração de variantes é a montagem por PCR.

A montagem por PCR envolve a montagem de um produto de PCR a partir de uma mistura de pequenos fragmentos de DNA. Um grande número de reações de PCR diferentes ocorre em paralelo no mesmo frasco, com os produtos de uma reação detonando os produtos de outra reação. A montagem por PCR é descrita em, por exemplo, patente norte-americana na 5.965.408.

Ainda outro método de geração de variantes é a mutagênese sexual da PCR. Na mutagênese sexual da PCR, a recombinação homóloga forçada ocorre entre moléculas de DNA de diferente, mal altamente relacionadas, seqüência de DNA in vitro como resultado da fragmentação aleatória da molécula de DNA baseada na homologia de seqüência. Isso é seguido pela fixação do cruzamento pela extensão de detonação em uma reação de PCR. A mutagênese sexual de PCR é descrita em, por exemplo, Stemmer, PNASr USA 91:10747-10751, 1994.

Variantes também podem ser criadas por mutagênes in vitro. Em algumas concretizações, mutações aleatórias em uma seqüência de ácido nucleico são geradas pela propagação da seqüência em um filamento bacteriano, tais como um filamento de E. coli, que carrega mutações em uma ou mais das vias de reparação de DNA. Tais filamentos "mutadores" possuem uma taxa de mutação aleatória mais alta que aquela de um filamento do tipo selvagem. A propagação de uma seqüência de DNA (por exemplo, uma seqüência de polinucleotídeos biossintéticos de aldeído ou alcano) em um desses filamentos eventualmente gerará mutações aleatórias dentro do DNA. Filamentos mutadores adequados para o uso para mutagênese in vivo são descritas, por exemplo, na publicação de PCT n9 WO 91/16427.

Variantes também podem ser geradas usando mutagênese de cassete. Em mutagênese de cassete, uma pequena região de uma molécula de DNA duplamente filamentada é substituída com um "cassete" de oligonucleotídeo sintético que difere da seqüência nativa. O oligonucleotídeo freqüentemente contém uma seqüência nativa completamente e/ou parcialmente randomizada.

A mutagênese de conjunto recursivo também pode ser usada para gerar variantes. A mutagênese de conjunto recursivo é um algoritmo para a engenharia de proteína (i.e., mutagênese de proteína) desenvolvida para produzir populações diversas de mutantes fenotipicamente relacionados cujos membros difiram em seqüência de aminoácidos. Esse método utiliza um mecanismo de resposta para controlar as sucessivas rodadas de mutagênese de cassete combinatória. Mutagênese de conjunto recursivo é descrito em, por exemplo, Arkin et al. PNASf USA 89:7811-7815, 1992.

Em algumas concretizações, as variantes são criadas usando-se mutagênese de conjunto exponencial. Mutagênese de conjunto exponencial é um processo para gerar bibliotecas combinatórias com uma elevada porcentagem de mutantes únicos e funcionais, onde grupos pequenos de resíduos sejam randomizados em paralelo para identificar, em cada posição alterada, os aminoácidos que conduzem às proteínas funcionais. Mutagênese de conjunto exponencial é descrita em, por exemplo, Delegrave et al., Biotech. Res. 11:1548-1552, 1993. Mutagênese aleatória e direcionada de local são descritas em, por exemplo, Arnold, Curr. Opin. Biotech. 4:450-455, 1993.

Em algumas concretizações, as variantes são criadas usando-se procedimentos de embaralhamento, nos quais porções de uma pluralidade de ácidos nucleicos que codifiquem polipeptídeos distintos são fundidas juntas para criar seqüências quiméricas de ácido nucleico que codifiquem polipeptídeos quiméricos, como descrito em, por exemplo, patentes norte-americanas n2 5.965.408 e 5.939.250.

Variantes de polinucleotídeos ainda incluem análogos de ácido nucleico. Análogos de ácido nucleico podem ser modificados na metade de base, na metade de açúcar ou no suporte principal de fosfato para melhorar, por exemplo, a estabilidade, a hibridização ou a solubilidade do ácido nucleico. Modificações na metade de base incluem desoxiuridina para desoxitimidina e 5-metil-2'-desoxicitidina ou 5-bromo-2'-desoxicitidina para desoxicitidina. Modificações na metade de açúcar incluem a modificação da 2' hidroxila do açúcar de ribose para formar os açúcares 2'-O-metil ou 2'-0-alila. O suporte principal de fosfato de desoxirribose pode ser modificado para produzir ácidos nucleicos morfolinos, nos quais cada metade de base está ligada e um anel morfolino de 6 membros ou a ácido nucleico de peptídeo, no qual o suporte principal de desoxifosfato é substituído por um suporte principal de pseudopeptídeo e as quatro bases são retidas. (Ver, por exemplo, Summerton et al. , Antisense Nucleic Acid Drug Dev. (1997) 7:187-195; e Hyrup et al. , Bioorgan. Med. Chem. (1996) 4:5-23.) Além disso, o suporte principal de desoxifosfato pode ser substituído com, por exemplo, um suporte principal de fosforotioato ou fosforoditioato, uma fosforoamidita ou um suporte principal de fosfotriéster de alquila.

Os polipeptídeos biossintéticos de aldeído e alcano Synpcc7942_1594 (SEQ ID NO: 66) e Synpcc7942_1593 (SEQ ID NO: 2) possuem homólogos em outra cianobactéria (exemplos não limitantes são retratados na Tabela 1). Assim, qualquer seqüência de polinucleotídeo codificando um homólogo listado na Tabela 1, ou uma variante deste, pode ser usada como polinucleotídeo biossintético de aldeído ou alcano nos métodos descritos neste documento. Cada cianobactéria listada na Tabela 1 possui cópias de ambos os genes. 0 nível de identificação da seqüência do gene produz taxas a partir de 61% a 73% para Synpcc7942_1594 (SEQ ID NO: 66) e a partir de 43% a 78% para Synpcc7 942_1593 (SEQ ID N0:2).

Outros homólogos do polipeptídeo biossintético de aldeído Synpcc7942_1594 (SEQ ID NO: 66) estão listados na Tabela C, e qualquer seqüência de polinucleotídeo codificando um homólogo listado na Tabela C, ou uma variante desta, pode ser usada como um polinucleotídeo biossintético de aldeído nos métodos descritos neste documento. Outros homólogos do polipeptídeo biossintético de alcano Synpcc7942_1593 (SEQ ID NO:2) estão listados na Tabela B, e qualquer seqüência de polinucleotídeo codificando um homólogo listado na Tabela B, ou uma variante desta, pode ser usada como um polinucleotídeo biossintético de alcano nos métodos descritos neste documento.

Em certas instâncias, um gene biossintético de aldeído, alcano e/ou alceno é otimizado de códon para a expressão em uma célula hospedeira. Por exemplo, para a expressão em E. coli, um ou mais códons podem ser otimizados como descritos em, por exemplo, Grosjean et al., Gene 18:199-209 (1982).

Polipeptídeos biossintéticos de aldeído, alcano e alceno e variantes

Os métodos e as composições descritos neste documento também incluem polipeptídeos biossintéticos de alcano ou alceno contendo a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34 ou 36, assim com variantes de polipeptídeos desta. Em algumas instâncias, um polipeptídeo biossintético de alcano ou alceno é aquele que inclui um ou mais dos motivos de aminoácidos descritos neste documento. Por exemplo, o polipeptídeo biossintético de alcano ou alceno pode incluir a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 37, 38, 39, 41, 42, 43 e 44. 0 polipeptídeo biossintético de alcano ou alceno pode também incluir a seqüência de aminoácido de SEW ID Ne: 40 e também qualquer uma de SEQ ID NO: 37, 38 ou 39.

Os métodos e as composições descritas neste documento também incluem polipeptídeo biossintéticos de aldeído contendo a seqüência de aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82, assim como variantes de polipeptídeos desta. Em algumas instâncias, um polipeptídeo biossintético de aldeído é aquele que inclui um ou mais dos motivos de aminoácidos descritos neste documento. Por exemplo, o polipeptídeo biossintético de aldeído pode incluir uma seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63 ou 64.

As variantes de polipeptídeo biossintético de aldeído, alcano e alceno podem ser variantes nas quais um ou mais resíduos sejam substituídos com um resíduo de aminoácido conservado ou não conservado (preferencialmente um resíduo conservado de aminoácido). Tal resíduo substituído de aminoácido pode ou não pode ser aquele codificado pelo código genético.

Substituições conservadoras são aquelas que substituem um aminoácido dado em um polipeptídeo por outro aminoácido de características semelhantes. Substituições conservadoras típicas são as seguintes substituições: substituições de um aminoácido alifático, tal como alanina, valina, leucina e isoleucina, com outro aminoácido alifático; substituição de uma serina com uma treonina, ou vice-versa; substituição de um resíduo ácido, tal como ácido aspártico e ácido glutâmico, com outro resíduo ácido; substituição de um resíduo carregando um grupo amida, tal como asparagina e glutamina, com outro resíduo carregando um grupo amida; mudança de um resíduo básico, tal como lisina e arginina, com outro resíduo básico; e substituição de um resíduo aromático, tal como fenilalanina e tirosina, com outro resíduo aromático.

Outras variantes de polipeptídeo são aquelas nas quais um ou mais resíduo de aminoácido incluam um grupo substituto. Ainda outras variantes de polipeptídeo são quelas nas quais o polipeptídeo esteja associado com outro composto, tal como um composto para aumentar a meia-vida do polipeptídeo (por exemplo, polietileno glicol).

Variantes de polipeptídeo adicionais são aquelas nas quais aminoácidos adicionais são fundidos aos polipeptídeos, tais como uma seqüência líder, uma seqüência secretória, uma seqüência de proteína ou uma seqüência que facilite a purificação, o enriquecimento ou a estabilização do polipeptídeo.

Em algumas instâncias, uma variante de polipeptídeo biossintético de alcano ou alceno retém a mesma função biológica que um polipeptídeo contendo uma seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34 ou 36 (por exemplo, retém a atividade biossintética de alcano ou alceno) e possui uma seqüência de aminoácido substancialmente idêntica a esta.

Em outras instâncias, variantes de polipeptídeo biossintético de alcano ou alceno possuem pelo menos cerca de 50%, pelo menos cerca de 55%, pelo menos cerca de 60%, pelo menos cerca de 65%, pelo menos cerca de 70%, pelo menos cerca de 75%, pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90%, pelo menos cerca de 95% ou mais que cerca de 95% de homologia à seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34 ou 36. Em outra concretização, as variantes de polipeptídeo incluem um fragmento compreendendo pelo menos cerca de 5, 10, 15, 20, 25, 30, 35, 40, 50, 75, 100 ou 150 aminoácidos consecutivos deste. Em algumas instâncias, uma variante de polipeptídeo biossintético de aldeido retém a mesma função biológica que um polipeptídeo contendo uma seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 (por exemplo, retém a atividade biossintética de aldeido) e possui uma seqüência de aminoácido substancialmente idêntica a esta.

Ainda em outras instâncias, variantes de polipeptídeo biossintético de aldeido possuem pelo menos cerca de 50%, pelo menos cerca de 55%, pelo menos cerca de 60%, pelo menos cerca de 65%, pelo menos cerca de 70%, pelo menos cerca de 75%, pelo menos cerca de 80%, pelo menos cerca de 85%, pelo menos cerca de 90%, pelo menos cerca de 95% ou mais que cerca de 95% de homologia à seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 e 82. Em outra concretização, as variantes de polipeptídeo incluem um fragmento compreendendo pelo menos cerca de 5, 10, 15, 20, 25, 30, 35, 40, 50, 75, 100 ou 150 aminoácidos consecutivos deste.

As variantes de polipeptídeo ou os fragmentos deste podem ser obtidos isolando-se os ácidos nucléicos codificando-os usando as técnicas descritas neste documento ou expressando ácidos nucléicos sintéticos os codificando. Alternativamente, variantes de polipeptídeos ou fragmentos destes podem ser obtidos por meio de enriquecimento bioquímico ou por procedimentos de purificação. A seqüência de variantes de polipeptídeos ou fragmentos podem ser determinados pela digestão proteolítica, pela eletroforese de gel e/ou pelo microssequenciamento. A seqüência das variantes de polipeptídeo biossintético de alcano ou alceno ou fragmentos podem ser, então, comparados à seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30, 32, 34 ou 36 usando-se qualquer um dos programas descritos neste documento. A seqüência de variantes de polipeptídeo biossintético de aldeído ou fragmentos podem ser comparados à seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 usando-se qualquer um dos programas descritos neste documento.

As variantes de polipeptídeo e os fragmentos destas podem ser testados para a produção de atividade aldeído, álcool graxo, alcano e/ou alceno usando métodos rotineiros. Por exemplo, as variantes de polipeptídeo ou os fragmentos podem entrar em contato com um substrato (por exemplo, um substrato de derivado de ácido graxo ou outro substrato descrito neste documento) sob condições que permitam à variante de polipeptídeo funcionar. Um decréscimo no nível do substrato ou um aumento no nível de um aldeído, alcano ou alceno pode ser medido para determinar a atividade de produção de aldeído, álcool graxo, alcano ou alceno, respectivamente.

Anticorpos de polipeptídeo biossintético de antialdeído, antiálcool grado, antialcano e antialceno

Os polipeptídeos biossintéticos de aldeído, álcool graxo, alcano e alceno descritos neste documento podem também ser flr usados para produzir anticorpos dirigidos contra polipeptídeos biossintéticos de aldeído, álcool graxo, alcano e alceno. Tais anticorpos podem ser usados, por exemplo, para detectar a expressão de um polipeptídeo biossintético de aldeído, álcool graxo, alcano e alceno usando métodos conhecidos no estado da arte. O anticorpo pode ser, por exemplo, um anticorpo policlonal; um anticorpo monoclonal ou fragmento de ligação de antígeno deste; um anticorpo modificado tal como um anticorpo quimérico, um anticorpo remodelado, um anticorpo humanizado ou um fragmento destes (por exemplo, Fabl, Fab, F(abl)2); ou um anticorpo biossintético, por exemplo, um anticorpo de cadeia simples, um anticorpo de domínio simples (DAB) , Fv, um Fv de cadeia simples (scFv), ou semelhantes.

Os métodos para o preparo e o uso de anticorpos policlonais e monoclonais são descritos, por exemplo, em Harlow et al., Using Antibodies: A Laboratory Manual: Portable Protocol I. Cold Spring Harbor Laboratory (l9 de dezembro de 1998). Métodos para o preparo de anticorpos modificados e fragmentos de anticorpo (por exemplo, anticorpos quiméricos, anticorpos remodelados, anticorpos humanizados ou fragmentos destes, por exemplo, fragmentos de.. Fab', Fab, F(ab')2); ou anticorpos biossintéticos (por exemplo, anticorpos de cadeia simples, anticorpos de domínio simples (DABs), Fv, Fv de cadeia simples (scFv), e semelhantes), são conhecidos no estado da técnica e podem ser encontrados, por exemplo, em Zola, Monoclonal Antibodies: Preparation and Use of Monoclonal Antibodies and Engineered Antibody Derivatives, Springer Verlag (15 de dezembro de 2000, Ia edição).

Substratos

As composições e os métodos descritos neste documento podem ser usados para produzir aldeídos, alcoóis graxos, alcanos 11 e/ou alcenos a partir de um substrato apropriado. Com quanto não se deseja ser limitado por uma teoria particular, acredita-se que os polipeptídeos biossintéticos de alcano ou alceno descritos neste documento produzam alcanos ou alcenos a partir de substratos por meio de um mecanismo de descarbonilação. Em algumas instâncias, o substrato é um derivado de ácido graxo, por exemplo, um aldeído graxo, e iam alcano contendo padrões de ramificação particulares e comprimento de cadeia de carbono pode ser produzido a partir de um derivado de ácido graxo, por exemplo, um aldeído graxo, contendo aquelas características particulares. Em outras instâncias, o substrato é um derivado insaturado de ácido graxo, por exemplo, um aldeído graxo insaturado, e um alceno contendo padrões de ramificação particulares e comprimento de cadeia de carbono que podem ser produzidos a partir de um derivado insaturado de ácido graxo, por exemplo, um aldeído graxo insaturado, contendo aquelas características particulares.

Conquanto não se deseja ser limitado por uma teoria particular, acredita-se que os polipeptídeos biossintéticos de aldeído descritos neste documento produzam aldeídos a partir de substratos por meio de um mecanismo de redução. Em certas instâncias, o substrato é um acil-ACP.

Conquanto não se deseja ser limitado por uma teoria particular, acredita-se que os alcoóis graxos descritos neste documento sejam produzidos a partir de substratos por meio de um mecanismo de redução. Em certas instâncias, o substrato é um aldeído graxo.

Em conformidade, cada etapa dentro de uma via biossintética que conduza à produção desses substratos pode ser modificada para produzir ou sobreproduzir o substrato de interesse. Por exemplo, os genes conhecidos envolvidos nas vias biossintéticas do ácido graxo, do aldeído graxo e do álcool graxo podem ser expressados, sobrexpressados ou atenuados na célula hospedeira para produzir um substrato desejado (ver, por exemplo, PCT/US08/058788, especificamente incorporado como referência neste documento). Exemplares de genes são fornecidos na Tabela A. Síntese dos Substratos

A sintase de ácido graxo (FAS) é um grupo de polipeptídeos que catalisa a iniciação e o alongamento de cadeias acila (MARRAKCHI et al. Biochemical Society, 30:1050-1055, 2002). A proteína transportadora de acila (ACP) juntamente com as enzimas na via FAS controlam o comprimento, o grau de saturação e a ramificação dos derivados de ácido graxo produzidos. A vida biossintética de ácido graxo envolve os acetil-CoA e malonil-CoA precursores. As etapas nesta via são catalisadas por enzimas da biossíntese de ácido graxo (FAB) e família de gene de carboxila de acetil-CoA (acc) (ver, por exemplo, Heath et al. Prog. LipidRes. 40(6):467-97 (2001)).

Células hospedeiras podem ser projetadas para expressar substratos de derivados de ácido graxo expressando ou sobrexpressando recombinantemente os genes sintases de acetil- CoA e/ou malonil-CoA. Por exemplo, para aumentar a produção de acetil-CoA, um ou mais dos seguintes genes pode ser expressado na célula hospedeira: pdh, panK, aceEF (codificando o componente E1p desidrogenase e o componente E2p di- hidrolipoamida aciltransferase dos complexos piruvato e 2- oxoglutarato desidrogenase), fabH, fabD, fabG, acpP, e fabF. Exemplares de número de adesão GenBank para esses genes são: pdh (BAB34380, AAC73227, AAC73226), panK (também conhecido como coaA, AAC76952), aceEF (AAC73227, AAC73226) , fabH (AAC74175), fabD (AAC74176), fabG (AAC74177), acpP (AAC74178), fabF (AAC74179). Adicionalmente, os níveis de expressão de fadE, gspA, IdhA, pflb, adhE, pta, poxB, ackA e/ou ackB podem ser atenuados ou desligados em um célula hospedeira manipulada pela transformação com plasmídeos condicionalmente replicativos ou não replicativos contendo mutações nulas ou mutações de supressão dos genes correspondentes ou substituindo as seqüências promotoras ou melhoradoras. Exemplares de número de adesão GenBank para esses genes são: fadE (AAC73325) , gspA (AAC76632), IdhA (AAC74462), pflb (AAC73989), adhE (AAC74323), pta (AAC75357), poxB (AAC73958), ackA (AAC75356) e ackB (BAB81430) . As células hospedeiras resultantes terão aumentado os níveis de produção de acetil- CoA guando crescidas em um ambiente apropriado.

A sobrexpressão de malonil-CoA pode ser efetuada introduzindo- se accABCD (por exemplo, número de adesão AAC73296, EC 6,4,1,2) dentro de uma célula hospedeira. Os ácidos graxos podem ser, então, sobrexpressados em células hospedeiras introduzindo-se dentro da célula hospedeira uma seqüência de DNA codificando uma lipase (por exemplo, números de adesão CAA89087, CAA98876).

Além disso, a inibição de PlsB pode levar a um aumento dos níveis de acil-ACP de cadeia longa, o que inibirá as primeiras etapas na via (por exemplo, accABCD, fabH e fabl) . A mutação plsB (por exemplo, número de adesão AAC77011) D311E pode ser usada para aumentar a quantidade de acil-CoA disponível.

Além disso, uma célula hospedeira pode ser projetada para sobrexpressar um gene sfa (supressor de fabA, por exemplo, de número de adesão AAN79592) para aumentar a produção de ácidos graxos monoinsaturados (ROCK et al. J. Bacteriology 178:5382- 5387, 1996).

Em algumas instâncias, as células hospedeiras podem ser projetadas para expressar, sobrexpressar ou atenuar a expressão de uma tioesterase para aumenta a produção de substrato de ácido graxo. O comprimento da cadeira de um substrato de ácido graxo é controlado pela tioesterase. Em algumas instâncias, um gene t es ou fat pode ser sobrexpressado. Em outras instâncias, os ácidos graxos Cio podem ser produzidos atenuando-se a tioesterase C18 (por exemplo, números de adesão AAC73596 e POADAl), que utiliza C18:1-ACP, e expressando a tioesterase Cio (por exemplo, número de adesão Q39513), que utiliza C10-ACP. Isso resulta em uma população de ácidos graxos relativamente homogênea que possua uma cadeira de carbono de 10 de comprimento. Em ainda outras instâncias, ácidos graxos de C14 podem ser produzidos atenuando-se as tioesterases endógenas que produzem ácidos graxos sem C14 e expressando as tioesteraes, que usam C14-ACP (por exemplo, número de adesão Q39473). Em algumas situações, os ácidos graxos de C12 podem ser produzidos expressando-se tioesterases que usam C12-ACP (por exemplo, número de adesão Q4163 5) e atenuando-se tioesterases que produzam ácidos graxos sem C12. A sobreprodução de acetil-CoA, malonil-CoA e ácido graxo pode ser verificada usando-se métodos conhecidos no estado da técnica, por exemplo, usando precursores radioativos, HPLC e GC-MS subsequente à Iise [quebra/separação] celular. Exemplos não limitantes de tioesterases que podem ser usadas nos métodos descritos neste documento estão listados na Tabela 2.

Tabela 2: Tioesterases

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*MAYER et al., BMC Plant Biology 7:1-11, 2007

Formação de aldeídos, álcoois graxos, alcanos e alcenos ramificados

Aldeídos, álcoois graxos, alcanos e alcenos podem ser produzidos de forma a conter pontos de ramificação usando-se derivados de ácido graxo como substratos. Por exemplo, embora o E. coli produza naturalmente cadeias lineares de derivados de ácido graxo, (sFAs), o E. coli pode ser manipulado para produzir derivados de ácido graxo de cadeia ramificada (brFAs) pelas introdução e expressão ou sobrexpressão de genes que forneçam precursores ramificados no E. coli (por exemplo, as famílias de genes bkd, ilv, icm e fab). Além disso, uma célula hospedeira pode ser manipulada para expressar ou sobrexpressar genes que codifiquem proteínas para o alongamento de brFAs (por exemplo, ACP, FabF, etc.) e/ou para suprimir ou atenuar os genes correspondentes da célula hospedeira que normalmente conduzem aos sFAs. A primeira etapa na formação de brFAs é a produção de ácidos alfa-ceto correspondentes pela aminotranferase de um aminoácido de cadeia ramificada. As células hospedeiras podem, endogenamente, incluir genes codificando tais enzimas ou tais genes podem ser introduzidos recombinantemente. E. coli, por exemplo, endogenamente expressa tal enzima IlvE (EC 2,6,1,42; acesso GenBank YP_02 6247). Em algumas células hospedeiras, uma aminotransferase de aminoácido heterólogo de cadeia ramificada pode não ser expressada. Entretanto, E. coli IlvE ou qualquer outra aminotransferase de aminoácido de cadeia ramificada (por exemplo, IlvE a partir de Lactococcus lactis (acesso no GenBank AAF34406), IlvE a partir de Pseudomonas putida (acesso no GenBak NÇ_745648) ou IlvE a partur de Streotomyees eoelieolor (acesso no GenBank NP_629657), se não endógena, pode ser introduzida e expressada recombinantemente.

A segunda etapa é a descarboxilação oxidativa dos a-cetoácidos aos acil-CoA de cadeia ramificada correspondentes. Essa reação pode ser catalisada por uma desidrogenada complexa de um a- cetoácido de cadeia ramificada (bkd; EC 1,2,4,4) (DENOYA et al. J. Baeteriol. 177:3504, 1995), que consiste em subunidades Ε1α/β (descarboxilase) , E2 (diidrolipoil transacilase) e E3 (diidrolipoil desidrogenase). Essas desidrogenases complexas de α-cetoácidos de cadeia ramificada são semelhantes às desidrogenases complexas de α-cetoglutaratos. Qualquer microrganismo que possua brFAs e/ou cresça em aminoácidos de cadeia ramificada pode ser usado como uma fonte para isolar genes bkd para a expressão em células hospedeiras, por exemplo, a E. coli. Além disso, o E. coli possui o componente E3 como parte de sua desidrogenase complexa de piruvato (Ipdl EC 1,8,1,4, adesão no GenBak NP_414658). Assim, ele pode ser suficiente para expressar apenas os genes Ε1α/β e E2 bkd. A Tabela 3 lista exemplos não limitante de genes bkd a partir de vários mi cr organismos que podem ser recombinantemente introduzidos e expressados em uma célula hospedeira para fornecer precursores de acil-CoA de cadeia ramificada.

Tabela 3: Genes bkd a partir de microrganismos selecionados

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Em outro exemplo, isobutiril-CoA pode ser feito em uma célula hospedeira, por exemplo, em E. coli, através da coexpressão de uma redutase de crotonil-CoA (Ccr, EC 1,6,5,5, 1,1,1,1) e de mutase de isobutiril_CoA (grande subunidade IcmA, EC 5,4,99,2; pequena subunidade IcmB, EC 5,4,99,2) (HAN e REYNOLDS, J. Bacteriol. 179:5157, 1997). Crotonil-CoA é um intermediário na biossíntese de ácido graxo em E. coli e outros microrganismos. Exemplos não limitantes de genes ccr e ICM a partir de microrganismos selecionados estão listados na Tabela 4. Tabela 4: Genes ccr e ICM a apatir de microrganismos selcionados

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Além da expressão de genes bkd, a iniciação da biossíntese de brFA utiliza β-cetoacil proteína de transporte sintase III (FabH, EC 2,3,1,41) com especificidade para acil-CoAs de cadeia ramificada (LI et al., J. Bacteriol. 187:3795-3799, 2005). Exemplos não limitantes de tais enzimas FabH estão listados na tabela 5. Genes fabH que são envolvidos na biossíntese de ácido graxo de qualquer microrganismo contendo brFA podem ser expressado na célula hospedeira. As enzimas BKD e FabH das células hospedeiras que naturalmente não produzem brFA podem não sustentar a produção de brFA. Além disso, bkd e fabH podem ser expressados recombinantemente. Vetores contendo os genes bkd e fabH podem ser inseridos dentro de uma célula hospedeira. Igualmente, o nível endógeno da produção de Bkd e FabH pode não ser suficiente para produzir brFA. Nesse caso, eles podem ser sobrexpressados. Além disso, outros componentes da via de biossíntese de ácido graxo pode ser expressados ou sobrexpressados, tal como proteínas transportadoras de acil (ACPs) e β-cetoacil proteína de transporte sintase II (fabF, EC 2,3,1,41) (exemplos não limitantes de candidatos estão listados na Tabela 5) . Além de expressar esses genes, alguns genes na via biossintética de ácido graxo endógeno podem ser atenuados na célula hospedeira (por exemplo, os genes E. coli fabH (número de acesso no GenBank NP_415609) e/ou fabF (número de acesso no GenBank NP_415613)). Tabela 5: Genes fabH, ACP e fabF a partir de microrgani sinos selecionados com bfFAs

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Formação de aldeídos cíclicos, álcoois graxos, alcanos e alcenos

Aldeídos cíclicos, álcoois graxos, alcanos e alcenos podem ser produzidos usando-se derivados de ácido graxo cíclico como substratos. Para produzir substratos de derivados de ácido graxo cíclico, os genes que fornecem precursores cíclicos (por exemplo, as famílias de gene ans, chc e plm) podem ser introduzidos dentro da célula hospedeira e expressados para permitir a iniciação da biossíntese de ácido graxo a partir dos precursores cíclicos. Por exemplo, para converter uma célula hospedeira, tal como E. coli, em uma capaz de sintetizar derivados de ácido graxo ω-cíclico (cyFA), um gene que forneça o precursor cíclico ciclo-hexilcarbonil-CoA (CHC- CoA) (CROPP et al., Nature Biotech. 18:980-983, 2000) pode ser introduzido e expressado na célula hospedeira. Exemplos não limitantes de genes que forneçam CHC-CoA em E. coli incluem: ansJ, ansK, ansL, chcA e ansM a partir do conjunto de gene ansatrienina de Streptomyces collinus (CHEN et al. Eur. J. Biochem. 261:98-107, 1999) ou plmJ, plmK, plmL, chcA e plmM a partir do conjunto de gene f oslactomicina B de Streptomyces SP. HK803 (PALANIAPPAN et al. J. Biol. Chem., 278:35552-35557, 2003) juntos com o gene chcB (PATTON et al. , Biochem. 39:7595- 7604, 2000) a partir de S. collinus, S. avermitilis ou S. coelicolor (ver Tabela 6) . Os genes listados na Tabela 5 podem, então, ser expressados para permitir a iniciação e o alongamento de ácidos graxos ω-cíclicos. Alternativamente, os genes homólogos podem ser isolados a partir de microrganismos que produzem cyFA e são expressados em uma célula hospedeira (por exemplo, E. coli).

Tabela 6: Genes para a síntese de CHC-CoA

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*Apenas chcA está registrado no GenBank na entrada U72144, ansJKLM estão de acordo com Chen et al. {Eur. J. Biochem. 261:98-107, 1999).

Os genes listados na Tabela 5 [fabH, ACP e fabF) permitem a iniciação e o alongamento de derivados de ácido graxo ω- cíclico porque possuem ampla especificidade de substrato. Se a coexpressão de qualquer um desses genes com os genes listados na Tabela 6 não produzir cyFA, então os homólogos fabH, ACP e/ou fabF a partir de microrganismos que façam cyFAs (por exemplo, aqueles listados na Tabela 7) podem ser isolados (por exemplo, usando-se iniciadores de PCR degenerados ou provas de seqüência de DNA heterólogas) e coexpressados.

Tabela 7: Exemplos não limitantes de microrganismos que contenham ácidos graxos ω-cíclicos

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* Utiliza ciclo-heptilcarbonil-CoA e não ciclo-hexilcarbonil- CoA como precursor para a biossíntese de cyFA.

Níveis de saturação de aldeído, álcool graxo e alceno

O grau de saturação em derivados de ácido graxo pode ser controlado pela regulação do grau de saturação de derivados de ácido graxo intermediários. As famílias de gene sfa, gns e fab podem ser expressadas ou sobrexpressadas para controlar a saturação dos ácidos graxos. A Tabela A lista exemplos não limitantes de genes nessas famílias de genes que podem ser usadas nos métodos de nas células hospedeiras descritos neste documento.

Células hospedeiras podem ser projetadas para produzir ácidos graxos insaturados manipulando-se a célula hospedeira para sobrexpressar fabB ou pelo crescimento da célula hospedeira a baixas temperaturas (por exemplo, menos que 37sC). FabB possui predileção por cis-53decenoil-ACP e resulta na produção de ácido graxo insaturado em E. coli. A sobrexpressão de fabB resulta na produção de uma porcentagem significante de ácidos graxos insaturados (DE MENDOZA et al., J. Biol. Chem. 258:2098-2101, 1983. O gene fabB deve ser inserido e expressado em células hospedeiras que naturalmente não contenham o gene. Esse derivados insaturados de ácido graxo podem, então, se usados como intermediários em células hospedeiras que sejam projetadas para produzir derivados de ácido graxo, tais como aldeídos graxos, álcoois graxos ou alcenos.

Em outras instâncias, um repressor de biossíntese de ácido graxo, por exemplo, fabR (acesso no GenBank NP_418398), pode ser suprimido, o que também irá resultar no aumento da produção de ácido graxo insaturado em E. coli (ZHANG et al., J. Biol. Chem. 277:15558, 2002). Deleções semelhantes podem ser feitas em outras células hospedeiras. Outro aumento nos derivados insaturados de ácido graxo pode ser alcançado, por exemplo, pela sobrexpressão de fabM (trans-2, cis-3-decenoil- ACP isomerase, acesso no GenBank DAA05501) e pela expressão controlada de fabK (trans-2-enoil-ACP redutase II, acesso no GenBank NP_357969) a partir de Streptococcus pneumoniae (MARRAKCHI et al., J. Biol. Chem. 277:44809, 202), enquanto se suprime fabl de E. coli (trans-2-enoil-ACP redutase, acesso no GenBank NP_415804). Em alguns exemplos, o gene endógeno fabF pode ser atenuado, assim aumentando a porcentagem de palmitoleato (C16:l) produzido.

Outros substratos

Outros substratos que podem ser usados para produzir aldeído, álcoois graxos, alcanos e alcenos nos métodos descritos neste documento são acil-ACP, acil-CoA, um aldeido graxo ou um álcool graxo, o que está descrito, por exemplo, em PCT/US08/058788. Exemplos de genes que podem ser alterados para expressar ou sobrexpressar esses substratos em células hospedeiras estão listados na Tabela A. Outros exemplares de genes são descritos em PCT/US08/058788.

Manipulação genética de células hospedeiras para produzir aldeídos, álcoois graxos, alcano ou alcenos

Diferentes células hospedeiras podem ser usadas para produzir aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos, como descrito neste documento. Uma célula hospedeira pode ser uma célula procariótica ou eucariótica. Por exemplo, um polipeptídeo descrito neste documento pode ser expressado em células bacterianas (tais como E. coli), células de insetos, células de levedura ou mamíferas (tais como células de ovário de hamster chinês (CHO), células COS, células VERO, células BHK, células HeLa, células Cvl, células MDCK, céluas 293, células 3T3 ou células PC12). Outros exemplares de células hospedeiras incluem células a partir de membros dos gêneros Escherichiar Bacillus, Lactobacillus, Rhodococcus, Pseudomonas, Aspergillus, Triehoderma, Neurospora, Fusarium, Humieola, Rhizomueor, Kluyveromyces, Piehiar Mueor, Myeeliophtora, Penieilliumr Phaneroehaete, Pleurotus, Trametes, Chrysosporium, Saccharomyees, Schizosaceharomyees, Yarrowia ou Streptomyees. Ainda outros exemplares de células hospedeiras podem ser uma célula Baeillus lentus, uma célula Baeillus brevis, uma célula Baeillus stearothermophilus, uma célula Bacillus lieheniformis, uma célula Baeillus alkalophilus, uma célula Baeillus eoagulans, uma célula Baeillus eireulans, uma célula Baeillus pumilis, uma célula Bacillus thuringiensis, uma célula Baeillus elausii, uma célula Bacillus megaterium, uma célula Baeillus subtilis, uma célula Baeillus amyloliquefaeiens, uma célula Triehoderma koningii, uma célula Triehoderma viride, uma célula Triehoderma reesei, uma célula Triehoderma longibraehiatum, uma célula Aspergillus awamori, uma célula Aspergillus fumigates, uma célula Aspergillus foetidus, uma célula Aspergillus nidulans, uma célula Aspergillus niger, uma célula Aspergillus oryzae, uma célula Humicola insolens, uma célula Humicola lanuginose, uma célula Rhizomucor miehei, uma célula Mucor michei, uma célula Streptomyces lividans, uma célula Streptomyees murinus, ou uma célula Aetinomyeetes.

Outros exemplos não limitantes de células hospedeiras são aqueles listados na Tabela 1.

E uma concretização preferida, a célula hospedeira é uma célula de E. eoli. Em uma concretização mais preferida, a célula hospedeira é E. eoli de linhagens B, C, K ou W. Outras células hospedeiras adequadas são conhecidas daqueles hábeis no estado da técnica.

Diferentes métodos bem conhecidos no estado da técnica podem ser usados para manipular geneticamente células hospedeiras para produzir aldeidos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos.

Os métodos incluem o uso de vetores, preferencialmente vetores de expressão, contendo um ácido nucleico codificando um polipeptídeo biossintético de aldeído, álcool graxo, alcano e/ou alceno descrito neste documento, ou uma variante ou iam fragmento de polipeptídeo deste. Como usado neste documento, o termo "vetor" refere-se a uma molécula de ácido nucleico capaz de transportar outro ácido nucleico ao qual ele tenha sido ligado. Um tipo de vetor é um "plasmídeo", que se refere a uma volta circular de DNA de dois filamentos dentro do qual segmentos adicionais de DNA possam ser ligados. Outro tipo de vetor é um vetor viral, no qual segmentos adicionais de DNA podem ser ligados dentro do genoma viral. Certos vetores são capazes de replicação autônoma em uma célula hospedeira na qual eles sejam introduzidos (por exemplo, vetores bacterianos contendo uma origem bacteriana de replicação e vetores mamíferos epissomáticos). Outros vetores (por exemplo, vetores mamíferos não epissomáticos) são integrados ao genoma de uma célula hospedeira até a introdução dentro da célula hospedeira e são, então, replicados juntos com o genoma hospedeiro. Além do mais, certos vetores, tais como vetores de expressão, são capazes de direcionar a expressão de genes aos quais eles sejam operacionalmente ligados. Em geral, vetores de expressão usados em técnicas de DNA recombinante estão freqüentemente na forma de plasmídeos. Entretanto, outras formas de vetores de expressão, tais como vetores virais (por exemplo, retrovírus de replicação defeituosa, adenovírus e vírus adenoassociados) , também podem ser usadas.

Os vetores de expressão recombinante descritos neste documento incluem um ácido nucleico descrito neste documento em uma forma adequada para a expressão do ácido nucleico em uma célula hospedeira. Os vetores de expressão recombinante podem incluir uma ou mais seqüências de controle, selecionadas na base da célula hospedeira a ser usada para a expressão. A seqüência de controle é operacionalmente ligada à seqüência de ácido nucleico para ser expressada. Tais seqüências de controle são descritas, por exemplo, em Goeddel, Gene Expression Technology: Methods in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, Califórnia (1990). Seqüências de controle incluem aquelas que direcionam a expressão constitutiva de uma seqüência de nucleotídeo apenas em determinadas células hospedeiras (por exemplo, seqüências regulatórias específicas de tecido). Será apreciado por aqueles hábeis no estado da técnica que o projeto do vetor de expressão possa depender de tais fatores como a escolha da célula hospedeira a ser transformada, o nível de expressão de proteína desejado etc.

Os vetores de expressão descritos neste documento podem ser introduzidos dentro de células hospedeiras para produzir polipeptídeos, incluindo a fusão de polipeptídeos, codificados pelos ácidos nucleicos, como descrito neste documento.

Vetores de expressão recombinante podem ser projetados para a expressão de um polipeptídeo biossintético de aldeído, álcool graxo, alcano e/ou alceno ou variantes em células procarióticas ou eucarióticas (por exemplo, células bacterianas, tais como E. coli, células de insetos (usando-se vetores de expressão de baculovírus), células de levedura ou células de mamíferos). Células hospedeiras adequadas são ainda discutidas em Goeddel, Gene Expression Technology: Methods in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, Califórnia (1990) . Alternativamente, o vetor de expressão recombinante pode ser transcrito ou traduzido in vitro, por exemplo, usando-se seqüências regulatórias de promotor T7 e polimerase T7.

A expressão de polipeptídeos em procariontes, por exemplo, E. coli, é mais freqüentemente realizada com vetores contendo promotores constitutivos ou induzíveis direcionando a expressão tanto de polipeptídeos de fusão quanto de não fusão. Vetores de fusão adicionam iam número de aminoácidos a um f polipeptídeo codificado neles, normalmente a um aminoterminal do polipeptídeo recombinante. Tais vetores de fusão tipicamente servem a três propósitos: (1) aumentar a expressão do polipeptídeo recombinante; (2) aumentar a solubilidade do polipeptídeo recombinante; e (3) auxiliar na purificação do polipeptídeo recombinante agindo como um ligante em purificação de afinidade. Freqüentemente, em vetores de expressão de fusão, um local de clivagem proteolítica é introduzido na junção da metade de fusão e o polipeptídeo recombinante. Isso permite a separação do polipeptídeo recombinante da metade de fusão após a purificação do polipeptídeo de fusão. Exemplos de tais enzimas, e suas seqüências cognatas de reconhecimento, incluem o Fator Xa, trombina e enteroquinase. Exemplares de vetores de expressão de fusão incluem pGEX (Pharmacia Biotech Inc.; SMITH et al. Gene (1988) 67:31-40), pMAL (New England Biolabs, Bervely, Mass.) e pRITS (Pharmacia, Piscataway, NJ), que fundem glutationa S-transferase (GST), maltose E ligando proteína ou proteína A, respectivamente, ao polipeptídeo recombinante alvo.

Exemplos de vetores de expressão E. coli induzíveis de não fusão incluem pTrc (AMAMN et al., Gene (1988) 69:301-315) e pET 11d (STUDIER et al., Gene Expression Technology: Methods in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, Califórnia (1990) 60-89). A expressão do gene alvo a partir do vetor pTrc baseia-se na transcrição hospedeira de polimerase de RNA a partir de um promotor de fusão trp-lac híbrido. A expressão do gene alvo a partir do vetor pET 11d baseia-se na transcrição a partir do promotor de fusão T7 gn10-lac mediado por uma polimerase de RNA viral (T7 gnl) coexpressada. Essa polimerase viral é fornecida pelas linhagens hospedeiras BL21(DE3) ou HMS174(DE) a partir de um prófago λ residente nutrindo um gene T1 gn1 sub o controle transcricional do promotor lacUV 5.

Uma estratégia para maximizar a expressão de polipeptídeo recombinante é expressar o polipeptídeo em uma célula hospedeira com uma capacidade debilitada para clivar proteoliticamente o polipeptídeo recombinante (ver GOTTESMAN, Gene Expression Technology: Methods in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, Califórnia (1990) 119-128). Outra estratégia é alterar a seqüência de ácido nucléico a ser inserida dentro de um vetor de expressão de forma que os códons individuais para cada aminoácido sejam aqueles preferencialmente utilizados na célula hospedeira (WADA et al. Nucleic Acids Res. (1992) 20:2111-2118). Tal alteração de seqüências de ácido nucléico pode ser realizada por técnicas padrão de síntese de DNA.

Em outra concretização, a célula hospedeira é uma célula de levedura. Nesta concretização, o vetor de expressão é um vetor de expressão de levedura. Exemplos de vetores para a expressão em levedura S. cerevisiae incluem pYepSecl (BALDARI et al. EMBO J. (1987) 6:229-234), pMFa (KURJAN et al. Cell (1982) 30:933-943), pJRY88 (SCHULTZ et al. Gene (1987) 54:113-123), pYES2 (Invitrogen Corporation, San Diego, Califórnia), e picZ (Invitrogen Corp. San Diego, Califórnia).

Alternativamente, um polipeptídeo descrito neste documento pode ser expressado em células de insetos usando-se vetores de expressão de baculovírus. Vetores de baculovírus disponíveis para expressão de proteínas em cultura de células de insetos (por exemplo, células Sf9) incluem, por exemplo, as séries PAC (SMITH et al. Mol. Cell Biol. (1983) 3:2156-2165) e as séries ρVL (LUCKLOW et al. Virology (1989) 170:31-39).

Ainda em outra concretização, os ácidos nucleicos descritos neste documento podem ser expressados em células de mamíferos usando-se um vetor de expressão de mamífero. Exemplos de vetores de expressão de mamíferos incluem pCDM8 (SEED, Nature (1987) 329:840) e pMT2PC (KAUFMAN et al., EMBO J. (1987) 6:187-195). Quando usado em células de mamíferos, as funções de controle do vetor de expressão podem ser fornecidas por elementos regulatórios virais. Por exemplo, promotores comumente usados são derivados a partir de polioma, Adenovírus 2, citomegalovírus e Simian Vírus 40. Outros sistemas de expressão adequados tanto para células procariotas quanto eucariotas estão descritos nos capítulos 16 e 17 de SAMBROOK et al., eds. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd ed., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbos, NY, 1989.

Vetores podem ser introduzidos em células procariotas ou eucariotas através de técnicas convencionais de transformação ou transfecção. Como usado neste documento, os termos "transformação" e "transfecção" referem-se a uma variedade de técnicas reconhecidas no estado da técnica para a introdução de ácido nucleico estrangeiro (por exemplo, DNA) dentro de uma célula hospedeira, incluindo a coprecipitação de fosfato de cálcio ou de cloreto de cálcio, a transfecção de DEAE-dextran mediado, lipofecção ou eletroporação. Métodos adequados para a transformação ou a transfecção de células hospedeiras podem ser encontrados em, por exemplo, Sambrook et al. (supra).

Para a transformação estável de células bacterianas, sabe-se que, dependendo do vetor de expressão e da técnica de transformação usados, apenas uma pequena fração de células será absorvida e replicará o vetor de expressão. A fim de identificar e selecionar esses transformantes, um gene que codifique um marcador selecionável (por exemplo, resistência a antibióticos) pode ser introduzido dentro da célula hospedeira junto com o gene de interesse. Marcadores selecionáveis incluem aqueles que conferem resistência a drogas, tais como ampacilina, canamicina, cloranfenicol ou tetraciclina. Ácidos nucleicos codificando um marcador selecionável podem ser introduzidos em uma célula hospedeira no mesmo vetor que aquele codificando um polipeptídeo descrito neste documento ou pode ser introduzido em um vetor separado. Células estavelmente transfectadas com o ácido nucleico introduzido podem ser identificadas através de seleção por droga (por exemplo, células que incorporaram o gene do marcador selecionável irão sobreviver, enquanto as outras células morrerão).

Para a transfecção estável de células de mamíferos, sabe-se que, dependendo do vetor de expressão e da técnica de transfecção usados, apenas uma pequena fração de células deve integrar o DNA estrangeiro dentro de seu genoma. A fim de identificar e selecionar esses integrantes, um gene que codifique um marcador selecionável (por exemplo, resistente a antibióticos) pode ser introduzido dentro das células hospedeiras junto com o gene de interesse. Marcadores selecionáveis preferidos incluem aqueles que conferem resistência a drogas, tais como G418, higromicina e metotrexato. Ácidos nucleicos codificando um marcador selecionável podem ser introduzidos em uma célula hospedeira no mesmo vetor que aquele codificando um polipeptídeo descrito neste documento ou podem ser introduzidos em um vetor separado. Células estavelmente transfectadas com o ácido nucleico introduzido podem ser identificadas através de seleção por droga (por exemplo, células que incorporaram o gene de marcador selecionável irão sobreviver, enquanto as outras células morrerão).

Em certos métodos, um polipeptídeo biossintético de aldeído e um polipeptídeo biossintético de alcano ou alceno são coexpressados em uma única célula hospedeira. Em métodos alternativos, um polipeptídeo biossintético de aldeído e um polipeptídeo desidrogenase de álcool são coexpressados em uma única célula hospedeira. Proteínas de transporte

Proteínas de transporte podem exportar polipeptídeos e hidrocarbonetos (por exemplo, aldeídos, alcanos e/ou alcenos) para fora da uma célula. Muitas proteínas de transporte e de efluxo servem para excretar uma ampla variedade de compostos e podem ser naturalmente modificadas para serem seletivas para tipos particulares de hidrocarbonetos.

Exemplos não limitantes de proteínas de transporte adequadas são proteínas de transporte cassete de ligação a ATP (ABC), proteínas de efluxo e proteínas transportadoras de ácido graxo (FATP). Exemplos não limitantes adicionais de proteínas de transporte adequadas incluem as proteínas de transporte ABC a partir de organismos tais como Caenorhabditis elegans, Arabidopsis thalania, Alkaligenes eutrophus e Rhodococcus erythropolis. Exemplares de proteína de transporte ABC que podem ser usadas estão listados na Tabela A (por exemplo, CER5, AtMRP5, AmiS2 e AtPGPl). Células hospedeiras também podem ser escolhidas por sua habilidade endógena de secretar hidrocarbonetos. A eficiência de produção de hidrocarboneto e secreção dentro do ambiente da célula hospedeira (por exemplo, meio de cultura, caldo de fermentação) pode ser expressada como uma razão de produto intracelular para produto extracelular. Em alguns exemplos, a razão pode ser cerca de 5:1, 4:1, 3:1, 2:1, 1:1, 1:2, 1:3, 1:4 ou 1:5.

Fermentação

A produção e o isolamento de aldeído, alcoóis graxos, alcanos e/ou alcenos podem ser melhorados empregando-se técnicas benéficas de fermentação. Um método para maximizar a produção enquanto se reduzem os gastos é aumentar a porcentagem da fonte de carbono que é convertida em produtos de hidrocarboneto. Durante o ciclo de vida celular normal, o carbono é usado nas funções celulares, tais como produção de lipídios, sacarídeos, proteínas, ácidos orgânicos e ácidos nucleicos. A redução da quantidade de carbono necessária para as atividades relacionadas ao crescimento pode aumentas a eficiência da conversão de fonte de carbono em produto. Isso pode ser alcançado, por exemplo, primeiramente crescendo-se as células hospedeiras até uma densidade desejada (p of exemplo, uma densidade alcançada no pico de fase log de crescimento) . Em tal ponto, os genes checkpoint da replicação podem ser aproveitados para parar o crescimento das células. Especificamente, mecanismos quorum sensing (revisto em CAMILLI et al. Science 311:1113, 2006; VENTURI, FEMS Microbio. Rev. 30:274-291, 2006; e READING et al. FEMS Microbiol. Lett. 254:1-11, 2006) podem ser usado para ativar genes checkpoint, tais como p53, p21 ou outros genes checkpoint.

Genes que podem ser ativados para interromper a replicação e o crescimento da célula em E. coli incluem genes umuDC. A sobrexpressão de genes umuDC interrompe a progressão a partir da fase estacionária ao crescimento exponencial (MURLI et al. J. of Bact. 182:1127, 2000) O UmuC é uma polimerase de DNA que pode realizar síntese de translesão sobre lesões não codificantes - a mecânica básica da maioria das mutagênesis UV e químicas. Os produtos do gene umuDC estão envolvidos no processo de síntese de translesão e também servem como um ponto de checagem de perda da seqüência de DNA. Os produtos do gene umuDC incluem UmuC, UmuD, umuD', UmuD'2C, UmuD' 2 e UmuD2.

Simultaneamente, genes de produção de produtos podem ser ativados, assim minimizando a necessidade por vias de replicação e de manutenção para serem usadas enquanto um aldeído, um alcano e/ou um alceno estiver sendo feito. Células hospedeiras também podem ser projetadas para expressas umuC e umuD a partir de E. coli em pBAD24 sob o sistema promotor prpBCDE através da síntese de novo desse gene com genes apropriados de produção de produto final.

A porcentagem de entrada de carbonos convertidos em aldeídos, alcoóis graxos, alcanos e/ou alcenos pode ser um direcionador de custos. Quanto mais eficiente for o processo (i.e., quanto mais elevada a porcentagem de entrada de carbonos convertidos em aldeídos, alcoóis graxos, alcanos e/ou alcenos), menos caro o processo será. Para fontes de carbono contendo oxigênio (por exemplo, glicose e outras fontes baseadas em carboidratos), o oxigênio deve ser liberado na forma de dióxido de carbono.

Para cada 2 átomos de oxigênio liberados, um átomo de carbono também é liberado levando a uma eficiência metabólica máxima teórica de aproximadamente 34% (p/p) (para produtos de derivados de ácido graxo). Essa figura, entretanto, muda para outros produtos de hidrocarbonetos e fontes de carbono.

Eficiências típicas na literatura são de aproximadamente menos de 5%. Células hospedeiras projetadas para produzir aldeídos, alcanos e/ou alcenos podem ter eficiência superior a cerca de 1, 3, 5, 10, 15, 20, 25 e 30%. E um exemplo, células hospedeiras podem exibir uma eficiência de cerca de 10% a cerca de 2 5%. Em outros exemplos, tais células hospedeiras podem exibir uma eficiência de cerca de 25% a cerca de 30%. Em outros exemplos, células hospedeiras podem exibir eficiência superior a 30%.

A célula hospedeira pode ser adicionalmente projetada para expressar celulossomas recombinantes, como aqueles descritos na aplicação PCT número PCT/US2007/003736. Esses celulossomas podem permitir que a célula hospedeira utilize material celulósico como fonte de carbono. Por exemplo, a célula hospedeira pode ser adicionalmente manipulada para expressar invertases (EC 3.2.1.26) de forma que a sacarose possa ser usada com lima fonte de carbono. Semelhantemente, a célula hospedeira pode ser projetada usando-se os ensinamentos descritos nas patentes norte-americanas números 5.000.000, 5.028.539, 5.424.202, 5.482.846 e 5.602.030, de forma que a célula hospedeira possa assimilar o carbono eficientemente e usar materiais celulósicos como fontes de carbono.

Em um exemplo, a câmara de fermentação pode encerrar uma fermentação que esteja em redução contínua. Nessa instância, um ambiente redutivo estável pode ser criado. O equilíbrio de elétron pode ser mantido pela liberação de dióxido de carbono (na forma gasosa). Esforços para ampliar o equilíbrio de NAD/H e NADP/H podem também facilitar a estabilização do equilíbrio de elétrons. A disponibilidade de NADPH intracelular pode também ser melhorada manipulando-se a célula hospedeira para expressar uma transidrogenase NADHrNADPH. A expressão de uma ou mais transidrogenases NADHrNADPH converte o NADH produzido em glicólise ao NADPH, o que pode melhorar a produção de aldeídos, alcanos e/ou alcenos.

Para uma produção em pequena escala, as células hospedeiras manipuladas podem crescer em lotes de, por exemplo, cerca de 100mL, 500mL, 1L, 2L, 5L ou 10L; fermentadas e induzidas a expressar os desejados aldeídos, alcoóis graxos, alcanos e/ou alcenos baseados nos genes específicos codificados nos plasmídeos apropriados. Por exemplo, células de E. coli BL21(DE3) alimentando pBAD24 (com resistência à ampicilina e via de síntese de aldeído, álcool graxo, alcano ou alceno) assim como pUMVC1 (com resistência à canamicina e o sistema de sobrexpressão de acetil CoA/malonil CoA) podem ser incubadas durante a noite em frascos de 2L a 37aC, agitados a > 200rpm em 500mL meio LB, suplementadas com 7 5μg/mL de ampicilina e 50pg/mL de canamicina até que as culturas atinjam um OD600 de > 0,8. Ao alcançar um OD600 de > 0,8, as células podem ser suplementadas com 25mM de proprionato de sódio (pH 8,0) para ativar os sistemas de genes manipulados para a produção e para interromper a proliferação celular por meio de ativação das proteínas UmuC e UmuD. A indução pode ser realizada por 6h a 30aC. Após a incubação, o meio pode ser examinado para aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos usando-se GC-MS.

Para a produção em larga escala, as células hospedeiras manipuladas podem crescer em lotes de 10L, 100L, 1000L ou maiores; fermentadas e induzidas a expressar os desejados aldeídos, alcoóis graxos, alcanos e/ou alcenos baseados nos genes específicos codificados nos plasmídeos apropriados. Por exemplo, células de E. coli BL21(DE3) alimentando pBAD24 (com resistência à ampicilina e via de síntese de aldeído, álcool graxo, alcano ou alceno) assim como pUMVC1 (com resistência à canamicina e o sistema de sobrexpressão de acetil CoA/malonil CoA) podem ser incubadas a partir de uma cultura semente para fermentações de 10L (5L para fermentações de 100L, etc.) e meio LB (livre de glicerol) com 50 ug/mL de canamicina e 75 ug/mL de ampicilina a 372C, e agitados a > 200rpm até que as culturas atinjam um OD600 de > 0,8 (tipicamente 16h). O meio pode ser continuamente suplementado para manter 25mM de proprionato de sódio (pH 8,0) para ativar os sistemas de genes manipulados para a produção e para interromper a proliferação celular por meio de ativação das proteínas UmuC e UmuD. O meio pode ser continuamente suplementado com glicose para manter a concentração de 25g/10O mL. Após a primeira hora de indução, partes de não mais que 10% do volume total da célula podem ser removidas a cada hora e a elas é permitido sentar sem agitação para permitir aos aldeídos, alcanos e/ou alcenos ascender à superfície e iniciar uma fase de separação espontânea. O componente aldeído, álcoois graxos, alcano e/ou alceno pode ser, então, coletado, e a fase aguosa retornada à câmara de reação. A câmara de reação pode ser operada continuamente. Quando o OD600 atinge abaixo de 0,6, as células podem ser substituídas com um novo lote crescido a partir de uma cultura semente.

Produção de aldeídos, álcoois graxos, alcanos e alcenos usando métodos livres de células

Em alguns métodos descritos neste documento, um aldeído, álcoois graxos, alcano e/ou alceno podem ser produzidos usando-se um polipeptídeo purificado descrito neste documento e um substrato descrito neste documento. Por exemplo, uma célula hospedeira pode ser manipulada para expressar polipeptídeo biossintético de aldeído, álcoois graxos, alcano e/ou alceno ou variantes, como descrito neste documento.

Extratos livres de células podem, então, ser gerados usando-se métodos conhecidos. Por exemplo, as células hospedeiras podem ser lisadas usando-se detergentes ou por sonicação. Os polipeptídeos expressados podem ser purificados usando-se métodos conhecidos. Após a obtenção de extratos livres de células, os substratos descritos neste documento podem ser adicionados aos extratos livres de células e mantidos sob condições para permitir a conversão dos substratos em aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos. Os aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos podem, então, ser separados e purificados usando-se técnicas conhecidas. Processamento de pós-produção

Os aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos produzidos durante a fermentação podem ser separados a partir do meio de fermentação. Qualquer técnica conhecida para a separação de aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos a partir do meio aquoso pode ser usada. Um exemplar de processo de separação é um processo de separação de duas fases (bifásico). Esse processo envolve a fermentação das células hospedeiras geneticamente manipuladas sob condições suficientes para produzir um aldeído, álcoois graxos, alcano e/ou alceno, permitindo ao aldeíds, álcoois graxos, alcano e/ou alceno serem coletados e uma fase orgânica, e separando a fase orgânica do caldo aquoso de fermentação. Esse método pode ser praticado tanto em um lote quanto em um conjunto de fermentação continua.

A separação bifásica utiliza a imiscibilidade relativa de aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos para facilitar a separação. Imiscível refere-se à inabilidade relativa de um composto dissolver-se em água, e é definida pelo coeficiente de partição do composto. Aquele de habilidade comum ao estado da arte apreciará que, escolhendo-se um caldo de fermentação e a fase orgânica, de modo que o aldeído, o alcano e/ou o alceno sendo produzidos possuam um elevado valor de logP, o aldeído, o alcano e/ou o alceno podem separar-se na fase orgânica, mesmo que em concentrações muito baixas no recipiente de fermentação.

Os aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos produzidos pelos métodos descritos neste documento podem ser relativamente imiscíveis no caldo de fermentação, assim como no citoplasma. No entanto, o aldeído, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos podem ser coletados em uma fase orgânica tanto intracelularmente quanto extracelularmente. A compilação dos produtos na fase orgânica pode diminuir o impacto do aldeído, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos na função celular e pode permitir à célula hospedeira produzir mais produtos.

Os métodos descritos neste documento podem resultar na produção de compostos homogêneos nos quais pelo menos cerca de 60%, 70%, 80%, 90% ou 95% dos aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos produzidos tenham comprimentos * de cadeia de carbono que variem de menos que cerca de 6 carbonos, menos que cerca de 4 carbonos ou menos que cerca de 2 carbonos. Esses compostos podem também ser produzidos com um grau de saturação relativamente uniforme. Esses compostos podem ser usados diretamente como combustíveis, aditivos de combustível, especialidades químicas, matérias-primas para a produção de outros compostos químicos (por exemplo, polímeros, surfactantes, plásticos, têxteis, solventes, adesivos etc.), ou aditivos de produtos de cuidados pessoais. Esses compostos podem igualmente ser usados como matérias-primas para reações subsequentes, por exemplo, hidrogenação, quebra catalítica (via hidrogenação, pirólise, ou ambas), para fazer outros produtos.

Em algumas concretizações, os aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos produzidos usando-se métodos descritos neste documento podem conter entre cerca de 50% a cerca de 90% de carbono, ou cerca de 5% e cerca de 2 5% de hidrogênio. Em outras concretizações, os aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos produzidos usando-se métodos descritos neste documento podem conter entre cerca de 65% e cerca de 85% de carbono, ou entre cerca de 10% e cerca de 15% de hidrogênio. Composições Combustíveis e Composições de Especialidade Química

Os aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos descritos neste documento podem ser usados como combustível ou convertido em combustível, ou como uma especialidade química. Aquele de habilidade comum ao estado da arte apreciará que, dependendo do propósito pretendido do combustível ou especialidade química, diferentes aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos podem ser produzidos e usados. Por exemplo, um aldeído, álcool graxo, alcano e/ou alceno ramificado pode ser desejável para combustível de automóvel o qual se pretenda usar em climas frios. Além disso, quando os aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos descritos neste documento são usados com uma matéria-prima para a produção de combustível ou especialidade química, aquele de habilidade comum ao estado da técnica apreciará que as características da matéria-prima de aldeído, álcool graxo, alcano e/ou alceno afetem as características do combustível ou especialidade química produzido. Portanto, as características do produto combustível ou especialidade química podem ser selecionadas pela produção de aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos especiais para uso como matéria-prima.

Usando-se os métodos descritos neste documento, biocombustíveis possuindo qualidades combustíveis desejadas podem ser produzidos a partir de aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos. Aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos biologicamente produzidos representam uma nova fonte de biocombustíveis, que pode ser usada como combustível de jato, diesel ou gasolina. Alguns biocombustíveis feitos usando-se aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos não foram produzidos a partir de fontes renováveis e são novas composições de matéria. Esses novos combustíveis ou especialidades químicas podem ser diferenciados dos combustíveis ou especialidades químicas derivadas a partir do carbono petroquímico com base na impressão digital isotópica de carbono duplo. Adicionalmente, a fonte específica de carbono de fonte biológica (por exemplo, glicose vs. glicerol) pode ser determinada pela impressão digital isotópica de carbono duplo (ver, por exemplo, patente norte-americana na 7.169.588, em particular da col. 4, linha 31, à col. 6, linha 8).

Os aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos e os biocombustíveis associados, as especialidades químicas e as misturas podem ser diferenciadas a partir de seus homólogos derivados de petroquímico com base no 14C (fM) e na impressão digital isotópica de carbono duplo. Em alguns exemplos, o aldeído, álcool graxo, alcano e/ou alceno na composição de biocombustível pode ter uma fração de carbono moderno (fM 14C) de, por exemplo, pelo menos cerca de 1,003, 1,010 ou 1,5.

Em alguns exemplos, uma composição de biocombustível pode ser feita para incluir aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos contendo δ13C de cerca de -15,4 a cerca de -10,9, onde os aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos contam-se pelo menos cerca de 85% do material de biofonte (i.e., derivado de uma fonte renovável, tal como biomassa, materiais celulósicos e açúcares) na composição.

A habilidade para diferenciar esses produtos biologicamente derivados é benéfica no rastreamento desses materiais no comércio. Por exemplo, combustíveis ou especialidades químicas compreendendo tanto perfis isótopos de carbono biologicamente derivados quanto à base de petróleo podem ser diferenciados dos combustíveis e especialidades químicas feitas apenas de materiais à base de petróleo. Assim, os aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos descritos neste documento podem ser seguidos no comércio ou identificados no comércio como um biocombustível com base em seus perfis únicos. Além disso, outros materiais concorrentes podem ser identificados como sendo biologicamente derivados ou derivados a partir de uma fonte petroquímica.

Aditivos de combustíveis são usados para melhorar a performance de um combustível ou motor. Por exemplo, aditivos de combustível podem ser usados para alterar o ponto de resfriamento/gelificação, o ponto de nuvem, a lubricidade, a viscosidade, a estabilidade oxidativa, a qualidade da ignição, o nível de octano e/ou o ponto de centelha. Nos Estados Unidos, todos os aditivos de combustível devem ser registrados na Agência de Proteção Ambiental (EPA). Os nomes de aditivos de combustível e as companhias que os vendem estão publicamente disponíveis contactando-se a EPA ou vendo pelo website da agência. Aquele de habilidade comum ao estado da técnica apreciará que os biocombustíveis à base de aldeído e/ou alcano descritos neste documento possam ser misturados com um ou mais aditivos de combustíveis para conferir a I qualidade desejada.

Os biocombustíveis à base de aldeídos, álcoois graxos, alcanos e/ou alcenos descritos neste documento podem ser misturados a outros combustíveis, tais como diversos álccois, tais como etanol e butanol, e produtos derivados de petróleo, tais como gasolina, diesel ou combustível de jato.

Em alguns exemplos, a mistura pode incluir pelo menos cerca de 10%, 15%, 20%, 30%, 40%, 50% ou 60% por peso de aldeído, álcoois graxos, alcano ou alceno. Em outros exemplos, uma composição de biocombustível pode ser feita para incluir pelo menos cerca de 5%, 10%, 15%, 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, 90% ou 95% de aldeído, álcoois graxos, alcano ou alceno que inclua uma cadeia de carbono que seja de 8, 10, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21 ou 22 carbonos em comprimento. Tais composições de biocombustível podem opcionalmente incluir pelo menos um aditivo selecionado a partir de um aditivo de redução de ponto de nuvem que possa diminuir o ponto de nuvem para menos que cerca de 5 9C ou 0aC; um surfactante; uma microemulsão; a pelo menos cerca de 5%, 10%, 15%, 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, 90% ou 95% combustível diesel a partir de triglicerídeos; gasolina derivada de petróleo, ou combustível diesel a partir de petróleo.

EXEMPLOS

A invenção é ainda descrita nos exemplos seguintes, os quais não limitam o escopo da invenção descrito nas reivindicações.

Exemplo 1. Detecção e verificação de biossíntese de alcano na cianobactéria selecionada

Sete cianobactérias, cujas seqüências genômicas completas estão disponíveis ao público, foram selecionadas para I verificação e / ou detecção de biossíntese de alcanos: Synechococcus elongatus PCC7942, Synechococcus elongatus PCC63 01, Anabaena variabilis ATCC29413, Synechoeystis sp. PCC6803, Nostoe punetiforme PCC73102, Gloeobaeter violaeeus ATCC 29082, e Prochloroeoceus marinus CCMP 1986. Apenas as três primeiras linhagens de cianobactérias a partir dessa lista haviam sido relatadas previamente para conter alcanos (HAN et al., J. Am. Chem. Soe. 91:5156-5159 (1969); FEHLER et al., Bioehem. 9:418-422 (1970)). As linhagens cresceram fotoautotroficamente em frascos de agitação em IOOmL do meio apropriado (listado na Tabela 8) por 3-7 dias a 3OsC a uma intensidade de luz de aproximadamente 3.500 lux. As células foram extraídas para a detecção de alcano da seguinte forma: as células de ImL de volume de cultura foram centrifugadas por 1 min a 13.000 rpm, as pelotas de células foram ressuspensas em metanol, centrifugadas por 1 min e então sonicadas por 30 min. Após a centrifugação por 3 min a 13.000 rpm, os sobrenadantes foram transferidos para frascos frescos e analisados por GC-MS. As amostras foram analisadas tanto em coluna capilar DP-5 de 30 m (0,25 mm de diâmetro interno) quanto em coluna capilar DP-5 de alta temperatura de 30 m (0,25 mm diâmetro interno) utilizando o seguinte método.

Depois de uma injecção sem separação de 1 uL (temperatura de entrada realizada a 300°C) na coluna do CG/MS, a fornada foi realizada a 100°C por 3 minutos. A temperatura foi aumentada para 320°C a uma taxa de 20°C/min. A fornada foi realizada a 32OaC pode mais 5 min. A taxa de fluxo do transportador de gás hélio foi 1, 3mL/min. O quadrupolo MS escaneado de 50 a 550 m/z. Os tempos de retenção e os padrões de fragmentação dos picos de produto foram comparadas com as referências para confirmar a identidade de pico.

Das sete linhagens, seis produziram principalmente heptadecano e um produziu pentadecano (P. marinus CCMP1986); uma destas linhagens produziu meti1-heptadecano além de heptadecano (A. variabilis ATCC29413) (ver Tabela 8) . Assim, a biossíntese de alcanos em três cianobactérias anteriormente relatadas foi verificada, e biossíntese de alcanos foi detectado em quatro cianobactérias que não eram conhecidas anteriormente para produzir alcanos: P. marinus CCMP 1986 (ver Figura 1), N. punctiforme PCC73102 (ver Figura 2), G. violaceus ATCC 29082 (ver Figura 3) e Synechocystis sp. PCC6803 (ver Figura 4) . A Figura IA retrata o traço GC/MS de células Prochlorococcus marinus CCMP 1986 extraídas com metanol. O pico em 7,55 min tinha o mesmo tempo de retenção do pentadecano (Sigma). Na Figura IB, o padrão de fragmentação de massas do pico de pentadecano é mostrado. O pico de 212 corresponde ao peso molecular de pentadecano.

A Figura 2A mostra o traço GC/MS de células Nostoc punctiforme PCC73102 extraídas com metanol. 0 pico em 8,73 min tem o mesmo tempo de retenção do heptadecano (Sigma). Na Figura 2B, o padrão de fragmentação de massas do pico de heptadecano é mostrado. O pico de 240 corresponde ao peso molecular de heptadecano.

A Figura 3A mostra o traço de GC/MS de células Gloeobaeeter violaeeus ATCC29082 extraídas com metanol. O pico em 8,72 min tem o mesmo tempo de retenção do heptadecano (Sigma). Na Figura 3B, o padrão de fragmentação de massas do pico de heptadecano é mostrado. O pico de 240 corresponde ao peso molecular de heptadecano.

A Figura 4A mostra o traço GC/MS de células Synechocystie sp. PCC6803 extraídas com metanol. O pico em 7,36 min tem o mesmo tempo de retenção do heptadecano (Sigma). Na Figura 4B, o padrão de fragmentação de massas do pico de heptadecano é mostrado. O pico de 240 corresponde ao peso molecular de heptadecano. Tabela 8: Hidrocarbonetos detectados na cianobactéria selecionada

<table>table see original document page 149</column></row><table>

Análise Genômica rendeu dois genes que estavam presentes nas linhagens de produção de alcano. O homólogo da Synechococcus elongatus PCC7 942 desses genes estão representados na Tabela 9 e são Synpcc7942_1593 (SEQ ID NO: 1) e Synpcc7942_1594 (SEQ ID NO: 65).

Tabela 9: Genes cianobacteriais de produção de alcano

<table>table see original document page 149</column></row><table> Exemplo 2: Supressão dos genes sll0208 e SÍ10209 em Synechocystis sp. PCC6803 conduz à perda da biossíntese de alcano

Os genes que codificam a descarbonilase suposta (sll0208; NP 442147) (SEQ ID NO: 3) e a enzima geradora de aldeídos (s 110209; NP 442146) (SEQ ID NO: 67) de Synechocystis sp. PCC6803 foram eliminados da seguinte forma. Cerca de 1 kb à montante e DNA flanqueado à jusante foram amplificados com o iniciador sll0208/9- Kol (CGCGGATCCCTTGATTCTACTGCGGCGAGT) com o iniciador sll0208/9-

KO2 (CACGCACCTAGGTTCACACTCCCATGGTATAACAGGGGCGTTGGACTCCTGTG) O iniciador sll0208/9- KO3 (GTTATACCATGGGAGTGTGAACCTAGGTGCGTGGCCGACAGGATAGGGCGTGT) com

O iniciador S110208/9-K04 (CGCGGATCCAACGCATCCTCACTAGTCGGG), respectivamente. Os produtos de PCR foram usado em uma PCR cruzada com iniciadores sll0208/9-K01 e sll0208/9- K04 para amplificar o cassete de eliminação aproximadamente 2kb sll0208/sll0209, que foi clonado no local BamHI do vetor de clonagem pUC19. Um cassete de resistência à canamicina (aph, KanR) foi, então, amplificado a partir do plasmídeo pRL27 (LARSEN et al. Arch. Microbiol. 178:193 (2002)), usando iniciadores Kan-aph-F (CATGCCATGGAAAGCCACGTTGTGTCTCAAAATCTCTG) e Kan-aph-R (CTAGTCTAGAGCGCTGAGGTCTGCCTCGTGAA) , que foi então seccionado com NcoI e XbaI e clonado nos locais NeoI e AvrII do cassete de eliminação sll0208/sll0209, criando um cassete de inserção de KanR supressão de sll0208/sll0209 em pUCl9. 0 vetor contendo cassete, que não se multiplica em cianobactérias, foi transformado em Synechoeystis sp. PCC6803 (ZANG et al., 2007, J. Microbiol. vol. 45, p. 241) e transformantes (por exemplo, integrantes cromossômicas por dupla recombinação homóloga) foram selecionados em placas de ágar BG-Il contendo 100ug/mL de canamicina em uma incubadora equipadas com luz a 3OsC. As colônias resistentes à canamicina foram relistradas uma vez e, então, sujeitadas à análise genotípica usando-se PCR com iniciadores de diagnósticos.

Os mutantes de inserção-supressão foram cultivados em 12mL de meio BGll com 50 pg/mL de canamicina por 4 dias a 30°C em uma incubadora de agitação equipada com luz. 1 mL de caldo foi então centrifugado (1 min a 13.000 g) e os aglomerados de células foram extraídos com 0,1 mL de metanol. Após a extração, as amostras foram novamente centrifugadas e os sobrenadantes foram submetidos à análise de GC-MS, conforme descrito no Exemplo 1.

Como mostrado na Fig. 5, as linhagens de Synechocystis sp. PCC6803 das quais os genes s110208 e s110209 foram suprimidos perderam sua capacidade de produzir heptadeceno e octadecenal. Este resultado demonstra que os genes s110208 e s110209 em Synechocystis sp. PCC6803 e os genes ortólogos em outra cianobactéria (ver Tabela 1) são responsáveis pela biossíntese de alcanos e aldeídos graxos nestes organismos.

Exemplo 3: Produção de aldeídos graxos e álcoois graxos em E. eoli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf1594

O DNA genômico codificando Synechoeoceus elongatus PCC7942 orf1594 (YP_400611; enzima suposta geradora de aldeídos) (SEQ ID NO: 65) foi amplificado e clonado nos locais NcoI e EcoRI do vetor OP-80 (pCL1920 derivados) sob o controle do promotor Ptrc. A construção resultante ("OP80-PCC7942_1594") foi transformada em E. eoli MG1655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo com 1% (p/v) de glicose como fonte de carbono e suplementado com 100 µg/mL de espectinomicina. Quando a cultura atingiu OD600 de 0,8-1,0, ela foi induzida com 1MM de IPTG e as células foram cultivadas por um adicional de 18-20 horas a 379C. Células de 0,5mL de cultura foram extraídas com 0, 5mL de acetato de etila. Após a sonicação por 60 min, a amostra foi centrifugada a 15.000 rpm por 5 min. A camada de solvente foi analisada por CG-MS, conforme descrito no Exemplo

Como mostrado na Fig. 6, células de E. coli transformadas com o vetor condutor de Synechococcus elongatus PCC7942 orfl594 produziram os seguintes aldeídos graxos e álcoois graxos: hexadecanal, octadecenal, tetradecenol, hexadecanol,

hexadecenol e octadecenol. Esse resultado indica que PCC7942 orfl594 (i) gera aldeídos in vivo como possíveis substratos para descarbonilação e (ii) pode reduzir acil-ACPs como substratos, que são a forma mais abundante dos ácidos graxos ativados em células de E. coli do tipo selvagem. Portanto, a enzima foi denominada de acil-ACP redutase. In vivo, os aldeídos graxos aparentemente são ainda mais reduzidos para os álcoois graxos correspondentes por uma atividade endógena de E. coli aldeído redutase.

Exemplo 4: Produção de aldeídos graxos e álcoois graxos em E. coli através da expressão heteróloga de Cyanothece sp. ATCC51142 cce_1430

O DNA genômico codificando Cyanothece sp. ATCC51142 cce_1430 (YP_00180284 6; enzima suposta geradora de aldeídos) (SEQ ID NO: 69) foi amplificado e clonado nos locais Ncol e EcoRI do vetor OP-80 (pCLl920 derivados), sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi transformada em E. coli MGl655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo com 1% (p/v) de glicose como fonte de carbono e suplementado com 100 yg/mL de espectinomicina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 26. Como mostrado na Fig. 7, células de E. coli transformadas com o vetor transportador de Cyanothece sp. ATCC51142 cce_1430 produziram os seguintes aldeidos graxos e álcoois graxos: hexadecanal, octadecenal, tetradecenol, hexadecanol, hexadecenol e octadecenol. Esse resultado indica que ATCC51142 cce_1430 (i) gera aldeidos in vivo como possíveis substratos para descarbonilação e (ii) pode reduzir acil-ACPs como substratos, que são a forma mais abundante dos ácidos graxos ativados em células de E. coli do tipo selvagem. Portanto, esta enzima também é uma acil-ACP redutase.

Exemplo 5: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Synechococcus elongatus PCC7942 orf11593

O DNA genômico codificando Synechoeoceus elongatus PCC7942 orf1593 (YP_400610; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 1) foi amplificado e clonado nos locais NdeI e Xhol do vetor OP-183 (ρACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MGl655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo e suplementadas com 100 ug/mL de espectinomicina e 100 pg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 1.

Como mostrado na Fig. 8, células de E. coli cotransformadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e S. elongatus PCC7942_1593 produziram os mesmos aldeidos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Esse resultado indica que PCC7942_1593 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeído graxo.

Exemplo 6: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178 O DNA genômico codificando Nostoe punctiforme PCC73102 Npun02004178 (ZP_00108838; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 5) foi amplificado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP-183 (pACYC derivados), sob o controle do promotor Ptrc. A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MG1655e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo e suplementadas com 100 μg/mL de espectinomicina e 100 μg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 1.

Como mostrado na Fig. 9, células de E. coli co transformados com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e N. punctiforme PCC73102 Npun02004178 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também tridecano, pentadecano, pentadeceno e heptadeceno. Esse f resultado indica que Npun02004178 em E. coli converte tetradecanal, hexadecenal, hexadecanal e octadecenal para tridecano, pentadecano pentadeceno e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de a1deí do graxo.

Exemplo 7: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Synechocystis sp. PCC6803 sll0208

O DNA genômico codificando Syneehocystis sp. PCC6803 sll0208 (NP_4 42147; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 3) foi amplificado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP-183 (pACYC derivados), sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MGl655 e as células foram cultivadas a 370C em meio M9 mínimo suplementado com 100 yg/mL de espectinomicina e 100 yg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 1.

Como mostrado na Fig. 10, células de E. coli co transformadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e Synechocystis sp. PCC6803 sll0208 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Esse resultado indica que Npun02004178 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeído graxo.

Exemplo 8: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Nostoc sp. PCC7210 alr5283

O DNA genômico codificando Nostoc sp. PCC7210 alr5283 ) (NP_4 89323; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 7) foi amplificado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP-183 (pACYC derivados), sob o controle do promotor Ptrc. A construção resultante foi cotransformada com OP80- PCC7942_1594 em E. coli MG 1655 e as células foram cultivadas a 37 0C em meio M9 mínimo suplementado com 100 yg/mL de espectinomicina e 100 yg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC- MS, conforme descrito no Exemplo 1. Como mostrado na Fig. 11, células de E. coli cotransformadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e Nostoc sp. PCC7210 alr5283 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Esse resultado indica que alr5283 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeído graxo.

Exemplo 9: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Acaryochloris marina MBIC11017 AMl_4041 0 DNA genômico codificando Acaryochloris marina MBIC11017 AM1_4041 (YP_001518340; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 9) foi otimizado de códon para a expressão em E. coli (SEQ ID NO: 46), sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP- 183 (derivados pACYC) sob o controle do promotor Ptrc.. A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MGl655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 pg/mL de espectinomicina e 100 yg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme )descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 12, células de E. coli co transformadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e A.marina MBIC11017 AM1_4041 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também tridecano, pentadecano, pentadeceno e heptadeceno. Esse resultado indica que a AM1_4041 em E. coli converte tetradecanal, hexadecenal, hexadecanal e octadecenal para tridecano, pentadecano, pentadeceno e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeido graxo.

Exemplo 10: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orfL1594 e Thermosynechococcus elongatus BP-I t!11313 O DNA genômico codificando Thermosynechoeoecus elongatus BP-I tlll313 (NP_682103; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 11) foi otimizado de códon para a expressão em E. coli (SEQ ID NO: 47), sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP- 183 (derivados pACYC) sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MGl655 e as células foram cultivadas a 370C em meio M9 mínimo suplementado com 100 μg/mL de espectinomicina e 100 yg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 13, células de E. coli cotrans formadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e T. elongatus BP-I tlll313 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Esse resultado indica que tlll313 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeido graxo.

Exemplo 11: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf 11594 e Synechococcus sp. JA-3-3Ab CYA_04-15

O DNA genômico codificando Synechococcus sp. JA-3-3Ab CYA_0415 (YP_473 897; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 13) foi otimizado de códon para a expressão em E. coli (SEQ ID NO: 48), sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP- 183 (ρ AC YC derivados) sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada com OP80-

PCC7942_1594 em E. coli MG 1655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100µg/mL de espectinomicina e 100 yg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC- MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 14, células de E. coli cotransformadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e Synechococcus sp. JA-3-3Ab CYA_0415 produziram os mesmo aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Esse resultado indica que Npun02004178 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeído graxo.

Exemplo 12: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Gloeobacter violaceus PCC7421 g113146 O DNA genômico codificando Gloeobacter violaceus PCC7421 g113146 (NP_926092; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 15) foi amplificado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP- 183 (pACYC derivados) , sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MGl655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 pg/mL de espectinomicina e 100 pg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisados por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 1. Como mostrado na Fig. 15, células de E. coli cotransformadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e G. violaceus PCC7421 gll3146 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Esse resultado indica que gll3146 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeido graxo.

Exemplo 13: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf!1594 e Prochlorococcus marinus MIT9313 PMT1231 O DNA genômico codificando Prochloroeoceus marinus MIT9313 PMT1231 (NP_895059; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 17) foi otimizado de códon para a expressão em E. coli (SEQ ID NO: 49), sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP- 183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotrans formada com OP8C)-PCC7942_1594 em E. coli MGl655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 pg/mL de espectinomicina e 100 pg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 16, células de E. coli cotrans formados com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e P.marinus MIT9313 PMT1231 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Este resultado indica que a PMT1231 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeido graxo. Exemplo 14: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Prochlorococcus marinus CCMP1986 PMMO532

O DNA genômico codificando Prochloroeoceus marinus CCMP1986 PMMO 532 (NP_892650; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 19) foi amplificado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP- 183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MG 1655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 μg/mL de espectinomicina e 100 pg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 1.

Como mostrado na Fig. 17, células de E. coli cotrans formadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e P.marinus CCMP1986 PMM0532 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Esse resultado indica que PMM0532 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeído graxo.

Exemplo 15: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Prochlorococcus marinus NATL2A PMN2A_1863

O DNA genômico codificando Prochlorococcus mariunus NATL2A PMN2A_1863 (YP_293 054; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 21) foi otimizado de códon para a expressão em E. coli (SEQ ID NO: 51) , sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP- 183 (pACYC derivados), sob o controle do promotor Ptrc. A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MG1655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio Μ9 mínimo suplementado com 100 ug/mL de espectinomicina e 100 ug/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 18, células de E. coli cotransformadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e P.mariunus NATL2A PMN2A_1863 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Esse resultado indica que PMN2A_1863 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeído graxo.

Exemplo 16: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Synechococcus sp. RS9917 RS9917_09941 O DNA genômico codificando Synechoeoceus sp. RS9917 RS9917_09941 (ZP_01079772; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO:

23) foi otimizado de códon para a expressão em E. coli (SEQ ID NO: 52), sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP-183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MG 1655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 ug/mL de espectinomicina e 100 ug/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 19, células de E. coli cotransformadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e Synechoeoceus sp. RS9917 RS9917_09941 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Esse resultado indica que RS9917_09941 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeído graxo.

Exemplo 17: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Synechococcus sp. RS9917 RS9917_12945 0 DNA genômico codificando Synechoeoceus sp. RS9917 RS9917_12945 (ZP_01080370; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 25) foi otimizado de códon para a expressão em E. coli (SEQ ID NO: 53), sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP-183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc. A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MG 1655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 ug/mL de espectinomicina e 100 ug/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 20, células de E. coli cotransformadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e Synechoeoceus sp. RS9917 RS9917_12945 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também pentadecano e heptadeceno. Esse resultado indica que RS9917_12945 em E. coli converte hexadecanal e octadecenal para pentadecano e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeído graxo. Exemplo 18: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Cyanothece sp. ATCC51142 cce_0778

O DNA genômico codificando Cyanotheee sp. ATCC51142 cce_0778 (YP_001802195; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 27) foi sintetizado e clonado nos locais NdeI e Xhol do vetor OP-183 (pACYC derivados) no âmbito do controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada com OP80-PCC7942_1594 em E. coli MGl655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 ug/mL de espectinomicina e 100 ug/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 21, células de E. coli cotransformados com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e Cyanothece sp. ATCC51142 cce_0778 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também tridecano, pentadecano, pentadeceno e heptadeceno. Esse resultado indica que ATCC51142 cce_0778 em E. coli converte tetradecanal, hexadecenal, hexadecanal e octadecenal para tridecano, pentadecano, pentadeceno e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aIdeido graxo.

Exemplo 19: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Cyanothece sp. PCC7425 Cyan7425_0398

O DNA genômico codificando Cyanothece sp. PCC7425 Cyan7 425_0398 (YP_002481151; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 29) foi sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP-183 (derivados pACYC) sob o controle do promotor Ptrc. A construção resultante foi cotransformados com OP80- PCC7942_1594 em Ε. coli MG1655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 ug/mL de espectinomicina e 100 ug/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC- MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 22, células de E. coli cotransformados com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942_1594 e Cyanothece sp. PCC7425 Cyan7425_0398 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também tridecano, pentadecano, pentadeceno e heptadeceno. Esse resultado indica que Cyan7425_0398 em E. coli converte tetradecanal, hexadecenal, hexadecanal e octadecenal para tridecano, pentadecano, pentadeceno e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeído graxo.

Exemplo 20: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf11594 e Cyanothece sp. PCC7425 Cyan7425_2986

O DNA genômico codificando Cyanothece sp. PCC7425 Cyan7 4 2 5_2 986 (YP_002483683; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 31) foi sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP-183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada com OP80- PCC7942_1594 em E. coli MG1655 e as células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 ug/mL de espectinomicina e 100 ug/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC- MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 23, células de E. coli co transformadas com os vetores de transporte S. elongatus PCC7942J594 e Cyanothece sp. PCC7425 Cyan7425_2986 produziram os mesmos aldeídos graxos e álcoois graxos como no Exemplo 3, mas também tridecano, pentadecano, pentadeceno e heptadeceno. Esse resultado indica que Cyan7425_2986 em E. coli converte tetradecanal, hexadecenal, hexadecanal e octadecenal para tridecano, pentadecano, pentadeceno e heptadeceno, respectivamente, e, portanto, é uma descarbonilase ativa de aldeído graxo.

Exemplo 21: Produção de alcanos e alcenos em E. coli através da expressão heteróloga de Prochlorococcus marinus CCMP1986 PMM0533 e Prochlorococcus mariunus CCMP1986 PMMO532 O DNA genômico codificando P.mariunus CCMP1986 PMM0533 (NP_892 651; enzima suposta geradora de aldeído) (SEQ ID NO: 71) e Proehloroeoeeus mariunus CCMP1986 PMMO532 (NP_892650; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 19) foram amplificados e clonados nos locais NeoI e EeoRl do vetor OP-80 e nos locais NdeI e XhoI do vetor OP-183, respectivamente. As construções resultantes foram transformadas em separado e cotransformadas em E. coli MG 1655 e as células foram cultivadas a 370C em meio M9 mínimo suplementado com 100 ug/mL de espectinomicina e 100 ug/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 24A, células de E. coli transformadas apenas o vetor de transporte P.mariunus CCMP1986 PMM0533 não produziram quaisquer aldeídos graxos ou álcoois graxos. No entanto, as células de E. coli cotransformados com vetores de transporte PMM0533 e PMM0532 produziram hexadecanol, pentadecano e heptadeceno (Fig. 24B). Esse resultado indica que PMM0533 só fornece substratos de aldeído graxo para a reação de descarbonilação quando interage com uma descarbonilase, como PMM0532.

Exemplo 22: Produção de alcanos e alcenos em uma linhagem E. coli produtora de acil-CoA graxo através da expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf!594 e Acaryochloris marina MBIC11017 AM1_4041

O DNA genômico codificando Aearyoehloris marina MBIC11017 AMl_4041 (YP_0 01518340; descarbonilase suposta de aldeido graxo) (SEQ ID NO: 9) foi sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP-183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada com C)P80-PCC7942_1594 em E. coli MG1655 AfadE laeZ:-.Ptrc 1 tesA- fadD. Esta linhagem expressa uma versão citoplasmática da tioesterase Ξ. coli, iTesAi e a sintetase acil-CoA E, coli, FADO, sob o controle do promotor Ptrc e, portanto, produz acil- CoAs graxos. As células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 µg/mL de espectinomicina e 100 ug/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 1.

Como mostrado na Fig. 25, essas células E. coli cotransformadas com S. elongatus PCC7942_1594 e A. marina MBIC11017 AM1_4041 também produziram alcanos e álcoois graxos. Esse resultado indica que S. elongatus PCC7942_1594 é capaz de usar acil-CoA como substrato para a produção de hexadecanal, hexadecenal e octadecenal, que é então convertido em pentadecano, pentadeceno e heptadeceno, respectivamente, por A. marina MBIC11017 AM1_4041.

Exemplo 23: Produção de alcanos e alcenos em uma linhagem E. coli produtora de acil-CoA graxo através da expressão heteróloga de Synechocystis sp. PCC6803 SÍ10209 e Synechocystis sp. PCC6803 sll0208

O DNA genômico codificando Synechoeystis sp. PCC6803 S110208 (NP_442147; descarbonilase suposta de aldeído graxo) (SEQ ID NO: 3) foi sintetizado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP-183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc. O DNA genômico codificando Synechoeystis sp. PCC6803 sll0209 (NP_442146; acil-ACP redutase) (SEQ ID NO: 67) foi sintetizado e clonado nos locais WcoI e EcoRI do vetor OP-183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor. Ptrc- As construções resultantes foram cotransformadas com a E. coli MGl655 LfadE IaeZiiPtrc 'tesA-fadD. Esta linhagem expressa uma versão citoplasmática da tioesterase E. coli, v TesA, e a sintetase acil-CoA E. coli, FADD, sob o controle do promotor Ptrc, portanto, produz acil-CoAs graxos. As células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 pg/mL de espectinomicina e 100 μg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC- MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 26, essas células de E. coli transformadas com Synechocystis sp. PCC6803 sll0209 não produziram quaisquer aldeídos graxos ou álcoois graxos. No entanto, quando cotransformadas com Synechocystis sp. PCC6803 S110208 e sll0209, elas produziram alcanos, aldeídos graxos e álcoois graxos. Esse resultado indica que Synechocystis sp. PCC6803 S110209 é capaz de usar acil-CoA como substrato para a produção de aldeídos graxos como hexadecanal, tetradecanal e octadecenal, mas só quando coexpressedo com uma descarbonilase de aldeído graxo. Os aldeídos graxos, aparentemente, são ainda mais reduzidos para os álcoois graxos correspondentes, tetradecanol, hexadecanol e octadecenol, por atividade endógena de E. coli aldeído redutase. Neste experimento, octadecenal foi convertido em heptadeceno por Synechocystis sp. PCC6803 S110208.

Exemplo 24: Produção de alcanos e alcenos em uma linhagem E. coli produtora de aldeído através da expressão heteróloga de Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178 e vários de seus homólogos

O DNA genômico codificando Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178 (ZP_00108838; descarbonilase suposta de aldeído graxo) (SEQ ID NO: 5) foi amplificado e clonado nos locais Ndel e XhoI do vetor OP-183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc- O DNA genômico codificando Mycobacterium smegmatis de linhagem MC2155 orf MSMEG_5739 (YP_889972, redutase suposta de ácido carboxílico) (SEQ ID NO: 85) foi amplificado e clonado nos locais NeoT e EeoRI do vetor OP-180 (pCLl920 derivados) sob o controle do promotor Ptrc. As duas construções resultantes foram cotransformadas em E. coli MG 1655 AfadD IacZ::Ptrc-y tesA. Nesta linhagem, aldeídos graxos foram fornecidos pela MSMEG_5739, que reduz ácidos graxos livres (formados pela ação de 'TesA) para aldeídos graxos. As células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo suplementado com 100 ug/mL de espectinomicina e 100 pg/mL de carbenicilina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 1.

Como mostrado na Fig. 27, essas células de E. coli cotransformadas com os vetores de transporte N. punctiforme PCC73102 Npun02004178 e M. smegmatis linhagem MC 2 155 MSMEG_5 739 produziram pentadeceno, tridecano e pentadecano. Esse resultado indica que Npun02004178 em E. coli converte tetradecanal, hexadecenal e hexadecanal fornecidos pela MSMEG_5 739 redutase de ácido carboxílico para tridecano, pentadeceno e pentadecano. Como mostrado na figura. Como Mostrado Na Fig. 28, no mesmo modelo experimental, as seguintes descarbonilases de aldeídos graxos também converteram os aldeídos graxos fornecidos por MSMEG_5739 para os alcanos correspondentes quando expressados em E. coli MGl 655 AfadD IacZ:: Ptrc- ' tesA: Nostoc sp. PCC7210 alr5283 (SEQ ID NO: 7), P. mariunus CCMP1986 PMM0532 (SEQ ID NO: 19), G. violaceus PCC7421 gll3146 (SEQ ID NO: 15), Synechococcus sp. RS9917_09941 (SEQ ID NO: 23), Synechococcus sp. RS9917_12945 (SEQ ID NO: 25), e A. marina MBIC11017 AMl_4041 (SEQ ID NO: 9).

Exemplo 25: Descarbonilases cianobacteriais de aldeídos graxos pertencem à classe das proteínas de diferro não heme. Mutagênese direcionada de local de histidinas conservadas para fenilalaninas em Nostoe punetiforme PCC73102 Npun02004178 não abole sua função catalítica

Conforme discutido no Exemplo 13, a proteína hipotética PMT1231 a partir de Prochlorococcus marinus MIT9313 (SEQ ID NO: 18) é uma descarbonylase ativa de aldeído graxo. Com base na estrutura tridimensional da PMT1231, que está disponível na resolução 1,8 A (pdb20C5A) (ver Fig. 29B), descarbonilases cianobacteriaiss de aldeído graxo têm semelhança estrutural com proteínas diferro não heme, em especial com as proteínas de classe I ribonuclease redutase subunidade β, RNRp (RIGGS e STUBBE-GELASCO, TIBS 1998, vol 23, p. 438) (ver Fig. 29A) . As classes Ia e Ib RNRP contêm um radical tirosil diférrico que medeia a atividade catalítica de RNRa (redução de ribonucleotídeos para desoxirribonucleotídeos). Em E. coli RNRp, esta tirosina está na posição 122 e está próximo a uma das moléculas de local ativo de ferro. O alinhamento estrutural mostrou que PMT1231 continha uma fenilalanina na mesma posição que RNRb tyrl22, sugerindo um mecanismo catalítico diferente para descarbonilases cianobacteriais de aldeídos graxos. No entanto, um alinhamento de todos as descarbonilases mostrou que dois resíduos de tirosina foram completamente conservados em todas as seqüências, e tyrl35 e tyrl3 8 com respeito à PMT1231, com tyrl35 estanado na proximidade (5,5 A) para uma das moléculas de local ativo de ferro (ver Fig. 29C ) . Para verificar se um dos dois resíduos de tirosina conservado está envolvido no mecanismo catalítico de descarbonilases cianobacteriais de aldeídos graxos, estes resíduos foram substituídos por fenilalanina em Npun02004178 (tyr123 e tyrl26), como segue.

O DNA genômico codificando s. elongatus PCC7942 ORF1594 (SEQ ID NO: 65) foi clonado nos locais NcoI e EcoRI do vetor OP-80 (pCLl920 derivados) sob o controle do promotor Ptrc. 0 DNA genômico codificando de N. punctiforme PCC73102 Npun02004178 (SEQ ID NO: 5) também foi clonado nos locais NdeI e Xhol do vetor OP-183 (pACYCl77 derivados), sob o controle do promotor Ptrc. Esta última construção foi utilizada como modelo para introduzir uma mutação nas posições 123 e 126 da proteína descarbonilase, mudando a tirosina para fenilalaninas utilizando os iniciadores gttttgcgatcgcagcatttaacatttacatccccgttgccgacg e. gttttgcgatcgcagcatataacattttcatccccgttgccgacg,

respectivamente. As construções resultantes foram, então, transformadas em E. coli MG1655. As células foram cultivadas a 37°C em meio M9 mínimo acrescido de glicose 1% (p/v) e 100 μg/mL de carbenicilina e espectinomicina. As células foram cultivadas e extraídas como no Exemplo 3.

Como mostrado na Fig. 30, as duas variantes de proteína Npun02004178 Tyr a Phe foram ativadas e produziram alcanos quando coexpressedas com S. elongatus PCC7942 ORF1594. Esse resultado indica que em contraste com as proteínas de classes Ia e Ib ΚΝRβ, ο mecanismo catalítico de descarbonilases de aldeído graxo não envolve um radical tirosil.

Exemplo 26: Caracterização bioquímica de Nostoc puneti forme PCC73102 Npun02004178

O DNA genômico codificando N. punetiforme PCC73102 Npun02004178 (SEQ ID NO: 5) foi clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor pET-15b sob o controle do promotor T7. A proteína resultante Npun02004178 continha uma N-terminal His-tag. Uma linhagem de E. coli BL21 (DE3) (Invitrogen) foi transformada com o plasmídeo através de técnicas de transformação química de rotina. A expressão da proteína foi realizada pela primeira inoculação de uma colônia da linhagem de E. coli em 5 mL de meio LB suplementado com 100 mg/L de carbenicilina e agitada durante a noite a 37°C para produzir uma cultura starter. Essa cultura starter foi usada para inocular 0,5 L de LB meio suplementado com 100 mg/L de carbeneci llina. A cultura foi agitada a 37°C até um valor de OD600 de 0,8 ser alcançado e, em seguida, foi adicionado IPTG para uma concentração final de 1 mM. A cultura foi então agitada a 37°C por aproximadamente 3h adicionais. A cultura foi então centrifugada a 3.700 rpm por 20 min a 4°C. O sedimento foi então ressuspenso em 10 mL de tamponador contendo 100 mM de tamponador fosfato de sódio a pH 7,2 suplementado com bactérias ProteaseArrest (GBiosciences). As células foram então sonicados a 12 W em gelo por 9 s com 1,5 s de sonicação seguido de 1,5 s de repouso. Este procedimento foi repetido cinco vezes, com intervalos de um minuto entre cada ciclo de sonicação. O extrato de célula livre foi centrifugado a 10.000 rpm por 30 min a 4°C. 5 mL de Ni-NTA (Qiagen) foi adicionado ao sobrenadante e a mistura foi suavemente mexido a 4°C. A suspensão foi passada através de uma coluna para remover a resina a partir do lisado. A resina foi lavada com 30 mL de tamponador contendo 100 mM de tamponador fosfato de sódio a pH 7,2 acrescido de 3 0 mM de imidazol. Finalmente, a proteína foi eluída com 10 mL de 100 mM de tamponador fosfato de sódio em pH 7,2 acrescido de 250 mM de imidazol. A solução de proteína foi dialisada com 200 volumes de 100 mM de tamponador fosfato de sódio em pH 7,2 com 20% de glicerol. A concentração de proteínas foi determinada utilizando o ensaio de Bradford (BioRad) . 5,6 mg / mL de proteína Npun02004178 foram obtidos.

Para sintetizar octadecanal para a reação de descarbonilase, 500 mg de octadecanol (Sigma) foram dissolvidos em 25 mL de diclorometano. Em seguida, 200 mg de clorocromato de piridínio (TCI América) foram adicionados à solução e agitados durante a noite. A mistura de reação foi seca sob vácuo para remover o diclorometano. Os demais produtos foram ressuspendidos em hexano e filtrados através de papel de filtro Whatman. 0 filtrado foi então seco sob vácuo e ressuspenso em 5 mL de hexano e purificado por cromatografia flash em sílica. A mistura foi carregada para a coluna de alimentação por gravidade em hexano e em seguida lavada com dois volumes da coluna de hexano. 0 octadecanal foi então eluído com uma mistura de 8:1 de hexano e acetato de etila. Frações contendo octadecanal foram agrupadas e analisadas através dos métodos CG/MS descritos abaixo. 0 produto final foi 95% puro, como determinado por este método.

Para testar a proteína Npun02004178 para a atividade de descarbonilação, os seguintes ensaios enzimáticos foram arranjados. Reações de 200 pL foram criadas em 100 mM de tamponador fosfato de sódio em pH 7.2 com os seguintes componentes em suas respectivas concentrações finais: 3 0 μΜ de proteína Npun02004178 purificada, 200 μΜ de octadecanal, 0,11 ug/mL de ferredoxina espinafre (Sigma), 0,05 unidades/mL de ferredoxina espinafre redutase (Sigma), e 1 mM NADPH (Sigma). Os controles negativos incluem a reação acima sem NpunO2004178, a reação acima sem octadecanal, e a reação acima sem ferredoxina espinafre, ferredoxina redutase e NADPH. Cada reação foi incubada a 37aC por 2 horas antes de ser extraída com 100 uL de acetato de etila. As amostras foram analisadas por GC/MS utilizando-se os seguintes parâmetros: tempo de execução: 13,13 min; coluna: HP-5-MS Parte ne 19091S-433E (comprimento de 3 0 metros; ID: 0,25 milímetros de arco de abertura; filme: 0.25ÍM); injetar: 1 il Agilent 6850 de entrada; entrada: 3 00 C sem quebra; gás transportador: hélio, fluxo: 1,3 mL/min, temperatura do forno: 759C detido por 5 min, 320 a 40°C/min, 320 detido por 2 min; det: Agilent 5975B VL MSD; det. temp: 3309C; scan: 50-550 M/Z. 0 heptadecano da Sigma foi utilizado como iJma referência autêntica para determinar o tempo de retenção do composto e o padrão de fragmentação.

Como mostrado na Fig. 31, a conversão in vitro de octadecanal para heptadecano foi observada na presença de Npun02004178. O descarbonilação enzimática de octadecanal por Npun02004178 foi dependente da adição de ferredoxina espinafre reductase, ferredoxina e NADPH.

Em seguida, foi determinado se ferredoxinas cyanobacteriais e ferredoxinas redutases podem substituir as proteínas dos espinafres no ensaio in vitro de descarbonilase de aldeído graxo. Os seguintes quatro genes foram clonados separadamente nos locais NdeI e Xhol do pET-15b: N. puncti forme PCC73102 Npun02003626 (ZP_00109192, ferredoxina oxidorredutase petH sem o domínio vinculador n-terminal aloficocianina) (SEQ ID NO: 87), N. punctiforme PCC73102 Npun02001001 (ZP_00111633, ferredoxina 1) (SEQ ID NO: 89), N. punctiforme PCC73102 Npun.02003530 (ZP_00109422, ferredoxina 2) (SEQ ID NO: 91) e N. punctiforme PCC73102 Npun02003123 (ZP_00109501, ferredoxina 3) (SEQ ID NO: 93). As quatro proteínas foram expressas e purificadas como descrito acima. 1 mg/mL de cada ferredoxina e 4 mg/mL da ferredoxina oxidoredutase foram obtidos. As três ferredoxinas cianobacteriais foram testadas com a ferredoxina oxidorredutase cianobacterial usando-se o arranjo enzimático descrito anteriormente com as seguintes alterações. A concentração final da ferredoxina redutase foi de 60 µg/ml e a ferredoxinas estavam em 50 µg/mL. As reações enzimáticas foram extraídas por GC/MS utilizando-se os seguintes parâmetros: tempo de execução: 6,33 min; coluna: J&W 122-5711 DB-5ht (comprimento de 15 metros; ID: 0,25 milímetros arco de abertura; filme: Ο,10μΜ); injetar : 1 uL Agilent 6850 de entrada; entrada: 300sC sem quebra; gás transportador: hélio; fluxo: 1,3 mL/min; temperatura do forno: 100°C mantida por 0,5 min, 260 a 30°C/min, 260 mantida por 0,5 min; det: Agilent 5975B VL MSD; det. temp: 230°C; scan: 50-550 M/Z.

Como mostrado na Fig. 32, conversão in vitro dependente de Npun02004178 de octadecanal para heptadecano foi observada na presença de NADPH e ferredoxina oxidorredutase cianobacterial e de qualquer uma das três ferredoxinas cianobacteriais.

Exemplo 27: Caracterização bioquímica de Synechococcus elongatus PCC7942 orf1594

O DNA genômico codificando S. elongatus PCC7492 orfl594 (SEQ ID NO: 65) foi clonado nos locais NcoI e XhoI do vetor pET-28b sob o controle do promotor T7. A proteína resultante PCC7942_orf1594 continha um C-terminal His-tag. Uma linhagem de E. eolí BL21 (DE3) (Invitrogen) foi transformada com o plasmídeo e a proteína PCC7942_orf1594 foi expressa e purificada como descrito no Exemplo 22. A solução de proteína foi armazenada no tamponador seguinte: fosfato de sódio 50 mM, pH 7,5, 100 mM de NaCl, 1 niM de THP, 10% de glicerol. A concentração de proteína foi determinada utilizando-se o ensaio de Bradford (BioRad). 2 mg/mL de proteína PCC7942_orf1594 foram obtidos.

Para testar a proteína PCC7942_orf1594 para a atividade acil- ACP ou acil-CoA redutase, os seguintes ensaios de enzima foram arranjados. Reações de 100 pL foram colocados em 50 mM de tamponador Tris-HCl a pH 7,5 com os seguintes componentes em suas respectivas concentrações finais: 10 μΜ de proteína purificada PCC7942_orf1594, 0,01-1 mM de acil-CoA redutase ou acil-ACP, 2 mM de MgCl2, 0,2-2 mM de NADPH. As reações foram incubadas por Ih a 3 7 0C e foram interrompidas pela adição de 100 uL de acetato de etila (contendo 5 mg/L de 1-octadeceno como padrão interno). As amostras foram centrifugadas por 15 min e centrifugadas a velocidade máxima por 3 min para a separação de fase. 80 pL da camada superior foram transferidos para frascos de vidro GC e analisados por GC/MS, conforme descrito no Exemplo 26. A quantidade de aldeído formado foi calculada com base no padrão interno.

Como mostrado na Fig. 33, PCC7942_orf1594 foi capaz de reduzir octadecanoyl-CoA para octadecanal. A atividade redutase necessitou de cátions bivalentes tais como Mg2+, Mn2+ ou Fe2+ e NADPH como doador de elétrons. NADH apoia a atividade redutase. PCC7942_orf1594 também foi capaz de reduzir octadecenoil-CoA e octadecenoil-ACP para octadecenal. Os valores de Km para a redução da octadecanoil-CoA, octadecenoil- CoA e octadecenoil-ACP na presença de 2, mM de NADPH foram determinados como 45 ±20 μΜ, 82 ± 22 μΜ e 7,8 ± 2 μΜ, respectivamente. Esses resultados demonstram que PCC7942_orf1594, in vitro, reduz tanto acil-CoA quanto acil- ACP e que, aparentemente, a enzima tem maior afinidade para acil-ACPs em relação aos acil-CoAs. O valor de Km para a NADPH na presença de 0,5 mM de octadecanoyl-CoA para PCC7942_orf 1594 foi determinado como 400 ± 80 μΜ.

Em seguida, a transferência de hidreto estereospecífico de NADPH para iam aldeído graxo catalisada por PCC7942_orf1594 foi examinada. Deutero-NADPH foi preparado de acordo com o protocolo a seguir. 5 mg de NADP+ e 3,6 mg de D-glicose-l-d foram adicionados a 2,5 mL 50 mM de tamponador fosfato de sódio (pH 7,0). A produção enzimática de NADPH marcado foi iniciada pela adição de 5 unidades do deidrogenase de glicose a partir de qualquer Bacillus megaterium (USB Corporation) para a produção de R-(4-2H) NADPH ou Thermoplasma acidophilum (Sigma) para a produção de S-( 4-2H)NADPH. A reação foi incubada por 15 min a 37°C, centrifugada e filtrada usando uma centrífuga filtro 10 KDa MWCO Amicon Ultra (Millipore), congelada rapidamente em gelo seco e armazenada a -80°C.

A reação no ensaio in vitro continha 50 mM de Tris-HCl (pH 7,5), 10 μΜ de proteína purificada PCC7942_orf 1594, 1 mM de octadecanoyl-CoA redutase, 2 mM de MgCl2, e 50 uL de deutero- NADPH (preparado como descrito acima) em um volume total de 100 uL. Após uma incubação de 1 h, o produto da reação enzimática foi extraído e analisado conforme descrito acima. O aldeído graxo resultante detectado por GC/MS foi octadecanal (ver Fig. 34). Como a transferência de hidreto de NADPH é estereoespecífica, tanto R- (4-2H)NADPH e S- (4-2H)NADPH foram sintetizados. Octadecanal com uma unidade de massa a mais foi observado utilizando-se apenas o S- (4-2H)NADPH. O fato de que o aldeído graxo fora rotulado indica que o hidrogênio deuterado foi transferido do NADPH marcado para o aldeído graxo marcado. Isto demonstra que o NADPH é usado nesta reação enzimática e que a transferência de hidretos catalisadas por PCC7942_orf1594 é estereoespecífica.

Exemplo 28: Produção intracelular e extracelular de aldeídos graxos e álcoois graxos em E. Coli através de expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf1594 0 DNA genômico codificando Synechococcus elongatus PCC7942 orf1594 (YP_400611; acil-ACP redutase) (SEQ ID NO: 65) foi amplificado e clonado nos locais NeoI e EcoRI do vetor OP-80 (pCLl920 derivados) sob o controle do promotor Ptrc- A construção resultante foi cotransformada em E. eoli MG1655 àfadE e as células foram cultivadas a 370C em 15 mL de meio Che-9 mínimo, com 3% (p/v) de glicose como fonte de carbono e suplementado com 100 ug/mL de espectinomicina e carbenicilina, respectivamente. Quando a cultura atingiu OD60O de 0,8-1,0, ela foi induzida com ImM de IPTG e as células foram cultivadas por mais 24-48 h, a 37°C. O meio Che-9 mínimo é definido como: 6g/L de Na2HPO4, 3 g/L de KH2PO4, 0,5 g/L de NaCl, 2 g/L de NH4Cl, 0,25 g/L de MgSO4 χ 7 H2O, 11 mg/L de CaCl2, 27 mg/L de Fe3Cl χ 6 H2O, 2 mg/L de ZnCl χ 4 H2O, 2 mg/L de Na2MoO4 χ 2 H2O, 1,9 mg/L de CuSO4 χ 5 H2O, 0,5 mg/L de H3BO3, 1 mg/L de tiamina, 200 mM Bis-Tris (pH 7,25) e 0,1% (v/v) de Triton- XlOO. Quando a cultura atingiu OD60O de 1,0-1,2, ela foi induzida com 1 mM de IPTG e as células foram deixadas crescer por mais 40 horas a 37°C. Células de 0,5 mL de cultura foram extraídas com 0,5 mL de acetato de etila para a produção de hidrocarbonetos totais, conforme descrito no Exemplo 26. Além disso, as células e o sobrenadante foram separados por centrifugação (4.000 g, RT por 10 min) e extraídas em separado.

A cultura produziu 62 0 mg/L de aldeídos graxos (tetradecanal, heptadecanal, heptadecenal e octadecenal) e 1.670 mg/L de álcoois graxos (dodecanol, tetradecenol, tetradecanol, heptadecenol, heptadecanol e octadecenol). A Fig. 35 mostra o cromatograma do sobrenadante extraído. Foi determinado que 73% dos aldeídos graxos e dos álcoois graxos estavam no sobrenadante livre de célula.

Exemplo 29: Produção intracelular e extracelular de alcanos e alcenos em E. Coli através de expressão heteróloga de Synechococcus elongatus PCC7942 orf!594 e Nostoc punctiforme PCC73102 Npun02004178

O DNA genômico codificando Synechococcus elongatus PCC7942 orf1594 (YP_400611; acil-ACP redutase) (SEQ ID NO: 65) foi amplificado e clonado nos locais NeoI e EcoRI do vetor OP-80 (pCLl920 derivados) sob o controle do promotor Ptrc. O DNA genômico codificando Nostoe punetiforme PCC73102 Npun02004178 (ZP_00108838; descarbonilase de aldeído graxo) (SEQ ID NO: 5) foi amplificado e clonado nos locais NdeI e XhoI do vetor OP- 183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc- As construções resultantes foram cotransformadas em E. eoli MGl655 bfadE e as células foram cultivadas a 37°C em 15 mL de meio Che9 mínimo, com 3% (p/v) de glicose como fonte de carbono e suplementado com 100 pg/mL de espectinomicina e carbenicilina, respectivamente. As células foram cultivadas, separadas do caldo extraído, e analisadas como descrito no Exemplo 28.

A cultura produziu 323 mg/L de alcanos e alcenos (tridecano, pentadecano, pentadeceno e heptadeceno), 367 mg/L de aldeídos graxos (tetradecanal, heptadecenal, heptadecanal e octadecenal) e 819 mg/L de álcoois graxos (tetradecanol, heptadecenol, heptadecanol e octadecenol). A Fig. 3 6 mostra o cromatograma do sobrenadante extraído. Foi determinado que 86% dos alcanos, alcenos, aldeídos graxos e álcoois graxos estavam no sobrenadante livre de células.

Exemplo 30: Produção alcanos e alcenos em E. Coli através de expressão heteróloga de Nostoc sp. PCC7210 alr5284 e Nostoc sp. PCC7210 alr5283

O DNA genômico codificando Nostoc sp. PCC7210 alr5284 (NP_489324; enzima suposta geradora de aldeídos) (SEQ ID NO: 81) foi amplificado e clonado nos locais NcoI e EcoRI do vetor OP-80 (pCLl920 derivados) sob o controle do promotor Ptrc- 0 DNA genômico codificando Nostoe sp. PCC7210 alr5283 (NP_4 89323; descarbonilase suposta) (SEQ ID NO: 7) foi amplificado e clonado nos locais NdeI e Xhol do vetor OP-183 (pACYC derivados) sob o controle do promotor Ptrc- As construções resultantes foram cotransformadas em E. eoli MG1655 e as células foram cultivadas a 370C em 15 mL de meio Che9 mínimo, com 3% (p/v) de glicose como fonte de carbono e suplementado com 100 ug/mL de espectinomicina e carbenicilina, respectivamente (como descrito no Exemplo 28). Células de 0,5 mL de cultura foram extraídas e analisadas conforme descrito no Exemplo 3 e analisadas por GC-MS, conforme descrito no Exemplo 26.

Como mostrado na Fig. 37, as células de E. eoli cotransformadas com os vetores de transporte Nostoe sp. PCC7210 alr5284 e Nostoe sp. PCC7210 alr5283 produziram tridecano, pentadeceno, tetradecanol, pentadecano e hexadecanol. Esse resultado indica que a coexpressão de Nostoe sp. PCC7210 alr5284 e alr5283 é suficiente para E. eoli produzir álcoois graxos, alcanos e alcenos. OUTRAS CONCRETIZAÇÕES

É preciso entender que enquanto a invenção tem sido descrita em conjunto com a descrição detalhada da mesma, a descrição acima é destinado a ilustrar e não limitar o âmbito de aplicação da invenção, que é definida pelo alcance das reivindicações anexas. Outros aspectos, as vantagens e as modificações estão dentro do escopo das reivindicações a seguir.

Claims

1. Método para produzir um aldeído caracterizado por compreender produzir, em uma célula hospedeira, um polipeptideo compreendendo a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 ou uma variante desta, e isolar o aldeído da célula hospedeira.

2. Método para produzir um aldeído caracterizado por compreender produzir, em uma célula hospedeira, um polipeptideo compreendendo uma seqüência de aminoácido tendo pelo menos cerca de 7 0% de identificação com a SEQ ID NO: 66, - 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82, e isolar o aldeído da célula hospedeira.

3. Método para produzir um aldeído caracterizado por compreender produzir, em uma célula hospedeira, um polipeptideo compreendendo a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 com uma ou mais substituições, adições, inserções ou supressões de aminoácidos, em que o polipeptideo possui atividade de redutase.

4. Método de acordo com a reivindicação 3, caracterizado pelo polipeptideo compreender a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 com uma ou mais substituições conservadoras de aminoácidos.

5. Método para produzir um aldeído caracterizado por compreender expressar, em uma célula hospedeira, um polinucleotídeo compreendendo uma seqüência de nucleotídeo tendo pelo menos cerca de 70% de identificação com a SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81, e isolar o aldeído da célula hospedeira.

6. Método para produzir um aldeído caracterizado por compreender expressar, em uma célula hospedeira, um polinucleotídeo que se hibridize com um complemento de uma seqüência de nucleotídeos de SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, -75, 77, 79 ou 81, ou com um fragmento deste, em que o polinucleotídeo codifica um polipeptídeo contendo a mesma atividade biológica que um polipeptídeo compreendendo a SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82.

7. Método de acordo com qualquer uma das reivindicações 1, 2, -3, 4, 5 ou 6, caracterizado pelo polipeptídeo ou o polinucleotídeo advir de uma cianobactéria.

8. Método para produzir um aldeído caracterizado por compreender transformar uma célula hospedeira com um vetor recombinante compreendendo uma seqüência de nucleotídeo contendo pelo menos cerca de 7 0% de identidade de seqüência com a SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81, e isolar o aldeído da célula hospedeira.

9. Método de acordo com a reivindicação 8, caracterizado pelo vetor recombinante ainda compreender um promotor operável ligado à seqüência de nucleotídeo.

10. Método de acordo com qualquer uma das reivindicações 1, 2, -, 4, 5, 6, 7, 8 ou 9, caracterizado pela célula hospedeira ser selecionada a partir do grupo composto por uma célula mamífera, célula vegetal, célula de inseto, célula de levedura, célula de fungo, célula de fungos filamentosos e célula bacteriana.

11. Método de acordo com a reivindicação 10, caracterizado pela célula hospedeira ser uma célula E. coli.

12. Método de acordo com a reivindicação 11, caracterizado pela célula E. coli ser de uma linhagem B, de uma linhagem C, de uma linhagem K ou de linhagem W.

13. Método de acordo com a reivindicação 8, caracterizado pela célula hospedeira produzir um polipeptideo codificado pela seqüência de nucleotideo do vetor recombinante.

14. Método de acordo com a reivindicação 10, caracterizado pelo aldeído ser secretado pela célula hospedeira.

15. Método de acordo com a reivindicação 14, caracterizado pelo aldeído compreender um aldeído de C13 a C2i.

16. Método de acordo com a reivindicação 14, caracterizado pelo aldeído selecionado a partir do grupo formado por tetradecanal, hexadecanal, hexadecenal, octadecanal, octadecenal, metiltetradecanal, metiltetradecenal, metilhexadecanal, metilhexadecenal, metiloctadecanal e metiloctadecenal.

17. Método de acordo com qualquer uma das reivindicações 1, 2, - 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15 ou 16, caracterizado por compreender ainda cultivar a célula hospedeira na presença de pelo menos um substrato biológico para o polipeptideo ou para um polipeptideo codificado pela seqüência de nucleotideo.

18. Método de acordo com a reivindicação 17, caracterizado pelo substrato ser um derivado de ácido graxo.

19. Método de acordo com a reivindicação 18, caracterizado pelo derivado de ácido graxo ser um derivado de ácido graxo de C14 a C22.

20. Método de acordo com a reivindicação 17, caracterizado pelo derivado de ácido graxo ser selecionado a partir de grupo formado por tetradecanoil-ACP, hexadecanoil-ACP, hexadecenoil- ACP, octadecenoil-ACP e seus derivados.

21. Microrganismo geneticamente modificado caracterizado por compreender uma seqüência exógena de controle incorporada de forma estável dentro do DNA genômico do microrganismo à montante de um polinucleotídeo compreendendo uma seqüência de nucleotídeo contendo pelo menos cerca de 70% de identidade de seqüência à SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81, em que o microrganismo produz um nível elevado de um aldeído com relação a um microrganismo de tipo selvagem.

22. Microrganismo de acordo com a reivindicação 21, caracterizado por ser uma cianobactéria.

23. Método para produzir um aldeído caracterizado por compreender cultivar o microrganismo de acordo com a reivindicação 21 sob condições adequadas para a expressão gênica.

24. Aldeído caracterizado por ser produzido por qualquer um dos métodos de acordo com as reivindicações de 1, 2, 3, 4, 5, -6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20 ou 23.

25. Aldeído de acordo com a reivindicação 24, caracterizado pelo aldeido ter um õ13C de cerca de -15,4 ou maior.

26. Aldeido de acordo com a reivindicação 24, caracterizado pelo aldeído ter um fM14C de pelo menos cerca de 1,003.

27. Método para o preparo de iam aldeído caracterizado por compreender pôr em contato um substrato com (i) um polipeptídeo compreendendo a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82, ou uma variante dessa, ou (ii) um polipeptídeo codificado por uma seqüência de nucleotídeo contendo pelo menos 7 0% de identidade a SEQ ID NO: -65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81, ou uma variante dessa.

28. Método de acordo com a reivindicação 27, caracterizado pelo aldeído compreender um aldeído de C13 a C2i.

29. Método de acordo com a reivindicação 27, caracterizado pelo aldeído ser selecionado a partir do grupo formado por tetradecanal,hexadecanal,hexadecenal,octadecanal, octadecenal,meti1tetradecanal,metiltetradecenal, metilhexadecanal, metilhexadecenal, metiloctadecanal e metiloctadecenal.

30. Método de acordo com a reivindicação 29, caracterizado pelo substrato ser selecionado a partir do grupo formado por tetradecanoil-ACP, hexadecanoil-ACP,hexadecenoil-ACP, octadecenoil-ACP e seus derivados.

31. Método para produzir um aldeído caracterizado por compreender produzir, em uma célula hospedeira, um polipeptídeo compreendendo a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63 ou 64, em que o polipeptídeo possui atividade de redutase.

32. Método de acordo com a reivindicação 31, caracterizado pelo polipeptídeo ser a partir de uma cianobactéria.

33. Método de acordo com a reivindicação 31 ou 32, caracterizado pela célula hospedeira ser selecionada a partir do grupo formado por uma célula mamífera, célula vegetal, célula de inseto, célula de levedura, célula de fungo, célula de fungos filamentosos e célula bacteriana.

34. Método de acordo com a reivindicação 33, caracterizado pela célula hospedeira ser uma célula E. coli.

35. Método de acordo com a reivindicação 31, caracterizado pelo aldeído ser secretado pela célula hospedeira.

36. Método de acordo com a reivindicação 31, caracterizado pelo aldeído compreender um aldeído de C13 a C21.

37. Método de acordo com a reivindicação 36, caracterizado pelo aldeído ser selecionado a partir do grupo formado por tetradecanal, hexadecanal, hexadecenal, octadecanal, octadecenal, metiltetradecanal, metiltetradecenal, metilhexadecanal, metilhexadecenal, metiloctadecanal e metiloctadecenal.

38. Método de acordo com qualquer uma das reivindicações 31, - 32, 33, 34, 35, 36 ou 37, caracterizado por compreender ainda cultivar a célula hospedeira na presença de pelo menos um substrato biológico para o polipeptídeo.

39. Método de acordo com a reivindicação 38, caracterizado pelo substrato ser um derivado de ácido graxo.

40. Método de acordo com a reivindicação 39, caracterizado pelo derivado de ácido graxo ser selecionado a partir do grupo formado por tetradecanoil-ACP, hexadecanoil-ACP, hexadecenoil- ACP e octadecenoil-ACP e seus derivados.

41. Método para o preparo de um aldeído caracterizado por compreender pôr em contato um substrato com um polipeptídeo compreendendo a seqüência de aminoácido de SEQ ID NO: 54, 55, -56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63 ou 64, em que o polipeptídeo possui atividade de redutase.

42. Método de acordo com a reivindicação 41, caracterizado pelo aldeído compreender um aldeído de C13 a C21.

43. Método de acordo com a reivindicação 42, caracterizado pelo aldeído ser selecionado a partir do grupo formado por tetradecanal, hexadecanal, hexadecenal, octadecanal, octadecenal, metiltetradecanal, metiltetradecenal, metilhexadecanal, metilhexadecenal, metiloctadecanal e metiloctadecenal.

44. Método de acordo com a reivindicação 41, caracterizado pelo substrato ser um derivado de ácido graxo.

45. Método de acordo com a reivindicação 44, caracterizado pelo substrato ser selecionado a partir do grupo formado por tetradecanoil-ACP, hexadecanoil-ACP, hexadecenoil-ACP, octadecenoil-ACP e seus derivados.

46. Método para produzir um álcool graxo caracterizado por compreender produzir, em uma célula hospedeira, um polipeptídeo compreendendo a seqüência de aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82 ou uma variante desta, e isolar o álcool graxo da célula hospedeira.

47. Método para produzir um álcool graxo caracterizado por compreender produzir, em uma célula hospedeira, um polipeptídeo compreendendo uma seqüência de aminoácidos tendo pelo menos cerca de 70% de identificação com SEQ ID NO: 66, -68, 70, 72, 74, 76, 78, 80 ou 82, e isolar o álcool graxo da célula hospedeira.

48. Método para produzir um álcool graxo caracterizado por compreender expressar, em uma célula hospedeira, um polinucleotídeo compreendendo uma seqüência de nucleotídeos tendo pelo menos cerca de 70% de identidade de seqüência com SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81, e isolar o álcool graxo da célula hospedeira.

49. Método para produzir um álcool graxo caracterizado por compreender transformar uma célula hospedeira com um vetor recombinante compreendendo uma seqüência de nucleotídeos tendo pelo menos cerca de 7 0% de identidade de seqüência com SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, 73, 75, 77, 79 ou 81, e isolar o álcool graxo da célula hospedeira.

50. Método de acordo com qualquer uma das reivindicações 46, -47, 48 ou 49, caracterizado por compreender ainda expressar um gene codificando uma álcool desidrogenase recombinante na célula hospedeira.

51. Método de acordo com a reivindicação 50, caracterizado pelo fato de que o álcool graxo é secretado pela célula hospedeira.

52. Método de acordo com a reivindicação 50, caracterizado pelo fato de que o álcool graxo compreende um álcool graxo de Ce a C26.

53. Método de acordo com a reivindicação 50, caracterizado pelo fato de que o álcool graxo é 1-decanol, 1-dodecanol, álcool 1-miristílico, 1-hexadecanol, octadecenol, tetradecenol ou hexadecenol.

54. Método de acordo com a reivindicação 50, caracterizado pelo fato de que o álcool graxo compreende um álcool graxo de cadeia linear.

55. Método de acordo com a reivindicação 50, caracterizado pelo fato de que o álcool graxo compreende um álcool graxo de cadeia ramificada.

56. Método de acordo com a reivindicação 50, caracterizado pelo fato de que o álcool graxo compreende um parte cíclica.

57. Método de acordo com a reivindicação 50, caracterizado pelo álcool graxo ser um álcool graxo insaturado.

58. Método de acordo com a reivindicação 50, caracterizado pelo álcool graxo ser um álcool graxo monoinsaturado.

59. Método de acordo com a reivindicação 50, caracterizado pelo álcool graxo ser um álcool graxo saturado.

60. Ácido nucleico isolado caracterizado por ser formado por não mais que 500 nucleotídeos de SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, -73, 75, 77, 79 ou 81.

61. Ácido nucleico isolado caracterizado por ser formado por não mais que 90% de nucleotídeos de SEQ ID NO: 65, 67, 69, 71, -73, 75, 77, 79 ou 81.

62. Ácido nucleico de acordo com a reivindicação 60 ou 61, caracterizado pelo ácido nucleico codificar um polipeptídeo contendo atividade de redutase.

63. Polipeptídeo isolado caracterizado por ser formado por não mais que 200 aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, 76, -78, 80 ou 82.

64. Polipeptídeo isolado caracterizado por ser formado por não mais que 90% de aminoácidos de SEQ ID NO: 66, 68, 70, 72, 74, -76, 78, 80 ou 82.

65. Polipeptídeo de acordo com a reivindicação 63 ou 64, caracterizado por possuir atividade de redutase.