WO2019131981A1 - 幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法 - Google Patents

幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法 Download PDF

Info

Publication number
WO2019131981A1
WO2019131981A1 PCT/JP2018/048389 JP2018048389W WO2019131981A1 WO 2019131981 A1 WO2019131981 A1 WO 2019131981A1 JP 2018048389 W JP2018048389 W JP 2018048389W WO 2019131981 A1 WO2019131981 A1 WO 2019131981A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
meth
stem cell
cell culture
group
acid
Prior art date
Application number
PCT/JP2018/048389
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
聡 羽根田
百里子 真鍋
亮馬 石井
博貴 井口
山内　博史
大村　貴宏
Original Assignee
積水化学工業株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 積水化学工業株式会社 filed Critical 積水化学工業株式会社
Priority to EP18893580.3A priority Critical patent/EP3733833A4/en
Priority to AU2018398052A priority patent/AU2018398052B2/en
Priority to CN201880083524.8A priority patent/CN111511897A/zh
Priority to KR1020207021351A priority patent/KR102371343B1/ko
Priority to JP2019562494A priority patent/JP6751823B2/ja
Priority to SG11202005430VA priority patent/SG11202005430VA/en
Priority to US16/958,182 priority patent/US20200370009A1/en
Publication of WO2019131981A1 publication Critical patent/WO2019131981A1/ja
Priority to US16/919,452 priority patent/US20200399576A1/en

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/20—Material Coatings
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08F—MACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED BY REACTIONS ONLY INVOLVING CARBON-TO-CARBON UNSATURATED BONDS
    • C08F124/00—Homopolymers of compounds having one or more unsaturated aliphatic radicals, each having only one carbon-to-carbon double bond, and at least one being terminated by a heterocyclic ring containing oxygen
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L79/00—Compositions of macromolecular compounds obtained by reactions forming in the main chain of the macromolecule a linkage containing nitrogen with or without oxygen or carbon only, not provided for in groups C08L61/00 - C08L77/00
    • C08L79/02—Polyamines
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M21/00—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses
    • C12M21/06—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses for in vitro fertilization
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00—Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C12M25/02—Membranes; Filters
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00—Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C12M25/06—Plates; Walls; Drawers; Multilayer plates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00—Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C12M25/14—Scaffolds; Matrices
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0068—General culture methods using substrates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0603—Embryonic cells ; Embryoid bodies
    • C12N5/0606—Pluripotent embryonic cells, e.g. embryonic stem cells [ES]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0607—Non-embryonic pluripotent stem cells, e.g. MASC
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0696—Artificially induced pluripotent stem cells, e.g. iPS
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0697—Artificial constructs associating cells of different lineages, e.g. tissue equivalents
    • C12N5/0698—Skin equivalents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08F—MACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED BY REACTIONS ONLY INVOLVING CARBON-TO-CARBON UNSATURATED BONDS
    • C08F8/00—Chemical modification by after-treatment
    • C08F8/28—Condensation with aldehydes or ketones
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L2666/00—Composition of polymers characterized by a further compound in the blend, being organic macromolecular compounds, natural resins, waxes or and bituminous materials, non-macromolecular organic substances, inorganic substances or characterized by their function in the composition
    • C08L2666/28—Non-macromolecular organic substances
    • C08L2666/36—Nitrogen-containing compounds
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/70—Enzymes
    • C12N2501/72—Transferases (EC 2.)
    • C12N2501/727—Kinases (EC 2.7.)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/30—Synthetic polymers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/70—Polysaccharides

Definitions

  • the present invention relates to a scaffold material for stem cell culture and a stem cell culture method using the same.
  • Stem cells are expected to be applied to drug discovery and regenerative medicine.
  • Stem cells are cells having self-replication ability and differentiation ability, and pluripotent stem cells capable of differentiating into all cell types, and tissue stem cells and tissue precursor cells capable of differentiating only into constituent cell types of somatic body tissues. is there.
  • pluripotent stem cells include human embryonic stem cells (hESCs) and human pluripotent stem cells (hPSCs) such as human induced pluripotent stem cells (hiPSCs). Culturing and expanding stem cells safely and reproducibly is an essential basic technology for medical application of these cells. In particular, in industrial use of regenerative medicine, it is necessary to treat stem cells in a large amount in an undifferentiated state.
  • a stem cell culture resin carrier using synthetic resin is proposed.
  • a polyvinyl acetal compound having a degree of acetalization of 20 to 60 mol% to provide a scaffold having excellent hydrophilicity and water resistance in culturing mouse fibroblasts. It is done.
  • the column of Example of Patent Document 2 discloses a hydrogel composed of an acrylic polymer in the culture of mouse ES cells.
  • the column of Example of Patent Document 3 discloses a flexible and flexible polyrotaxane gel in the culture of mouse iPS cells.
  • Patent Document 1 has a problem that it swells in a culture medium due to its high hydrophilicity and the scaffold resin is peeled off. In addition, there is a problem that the fixation after seeding of stem cells and pluripotent stem cells is low, and the cells do not proliferate sufficiently.
  • Patent Document 2 uses sodium salt of 2-acrylamido-2-methylpropane sulfonic acid and sodium p-styrene sulfonate, N, N'-dimethyl acrylamide, and has high hydrophilicity and thus swells in a medium. And there is a problem that the scaffold resin is peeled off.
  • Patent Document 3 has a problem that it swells in a culture medium due to its high hydrophilicity and the scaffold resin is peeled off. There is a problem that the differentiation to cardiomyocytes is promoted because it is a flexible scaffold.
  • An object of the present invention is to provide a scaffold material for stem cell culture which has appropriate hydrophilicity and strength, is highly stable after seeding of stem cells, and can efficiently proliferate cells, and a stem cell culture method using the same. I assume.
  • the present invention relates to the following contents.
  • the synthetic resin comprises at least one selected from the group consisting of a structural unit having an amine structure, a structural unit having an imine structure and a structural unit having an amide structure. Scaffolding material.
  • (11) A method of stem cell culture using the scaffold for stem cell culture according to any one of (1) to (7).
  • a scaffold material for stem cell culture which has appropriate hydrophilicity and strength, and which has high fixation after seeding of stem cells, and a stem cell culture method using the same.
  • FIG. 1A is a perspective conceptual view of a container for stem cell culture according to the embodiment, and FIG. 1B is a side sectional conceptual view thereof.
  • FIG. 2 is a perspective conceptual view of a 6-well type stem cell culture vessel according to the embodiment.
  • FIG. 3 is a diagram showing the evaluation criteria of initial adhesion 24 hours after cell seeding.
  • Each of FIG. 4A and FIG. 4B is a phase-contrast photomicrograph 24 hours after the seeding of the cell which concerns on an Example and a comparative example.
  • FIG. 5 shows the evaluation criteria of cell proliferation 5 days after cell seeding.
  • FIG. 6A and 6B is a phase-contrast photomicrograph five days after the seeding of the cell which concerns on an Example and a comparative example.
  • the present invention relates to a scaffold material for stem cell culture containing a synthetic resin, wherein the nitrogen content of the synthetic resin is 0.1% or more and 10% or less. 0.3 mass% or more and 8 mass% or less are more preferable, and 0.5 mass% or more and 5 mass% or less are more preferable.
  • the synthetic resin preferably contains 1 to 50 mol% of a Br ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ nsted basic group, and more preferably 1 to 30 mol%.
  • the elemental composition of the obtained synthetic resin can be analyzed by X-ray photoelectron spectroscopy (apparatus: ULVAC-PHI, Multifunction Scanning X-ray Photoelectron Spectrometer (XPS), PHI 5000 Versa Probe III).
  • the total amount of all elements detected is 100%, and the occupancy (%) of nitrogen in all elements is the nitrogen content.
  • the scaffold material for stem cell culture of the present invention includes an embodiment comprising only a synthetic resin. Since the scaffold material for stem cell culture has appropriate hydrophilicity and strength, the fixation after seeding of stem cells is improved. In particular, in a serum-free medium culture that does not contain feeder cells or adhesion proteins, the initial retention rate after stem cell seeding is improved.
  • the scaffold material for stem cell culture is not particularly limited as long as the requirements described above are satisfied, it is preferable to contain a synthetic resin.
  • the synthetic resin refers to a resin having as a main component a polymer (hereinafter, also simply referred to as a “polymer”) obtained by polymerizing (also referred to as simply “a monomer”) of a polymerizable monomer (hereinafter also referred to as “monomer”).
  • the above polymers also include copolymers of one or more polymerizable monomers.
  • polymer examples include (unsaturated) hydrocarbons, aromatic hydrocarbons, (unsaturated) fatty acids, aromatic carboxylic acids, (unsaturated) ketones, aromatic ketones, (unsaturated) alcohols, aromatic alcohols, Examples thereof include polymers composed of one or more polymerizable monomers of (un) saturated amines, aromatic amines, (unsaturated) thiols, aromatic thiols, and organosilicon compounds.
  • polystyrene resin examples include polyolefin, polyether, polyvinyl alcohol, polyvinyl acetal, polyester, poly (meth) acrylic acid ester, epoxy resin, polyamide, polyimide, polyurethane, polycarbonate, cellulose, polypeptide and the like.
  • poly (meth) acrylic acid esters and polyvinyl acetals are preferable and polyvinyl acetals are more preferable from the viewpoint of the fixability of stem cells.
  • These polymers may be used alone or in combination of two or more.
  • two or more types of polymers When two or more types of polymers are combined, two or more types of polymers may be mixed and used, or may be used as a polymer in which the backbones of two or more types of polymers are chemically bonded. Therefore, when combining a plurality of things as a synthetic resin, it is preferable to combine poly (meth) acrylic acid ester and polyvinyl acetal.
  • (meth) acrylic acids refers to at least one selected from the group consisting of (meth) acrylic esters and (meth) acrylic acids.
  • Poly (meth) acrylic acids are polymers obtained by polymerizing (meth) acrylic acid ester or (meth) acrylic acid which is the monomer, but (meth) acrylic acid ester or (meth) acrylic acid The thing which copolymerized other monomers is also included.
  • the (meth) acrylic acid ester is not particularly limited, but (meth) acrylic acid alkyl ester, (meth) acrylic acid cyclic alkyl ester, (meth) acrylic acid aryl ester, (meth) acrylamides, (meth) acrylic acid It is preferable to contain at least one selected from polyethylene glycols and phosphoryl choline (meth) acrylate.
  • Examples of the (meth) acrylic acid alkyl ester include methyl (meth) acrylate, ethyl (meth) acrylate, n-propyl (meth) acrylate, isopropyl (meth) acrylate, n-butyl (meth) acrylate, isobutyl (meth) ) Acrylates, t-Butyl (meth) acrylates, n-octyl (meth) acrylates, isooctyl (meth) acrylates, 2-ethylhexyl (meth) acrylates, nonyl (meth) acrylates, isononyl (meth) acrylates, decyl (meth) acrylates , Isodecyl (meth) acrylate, lauryl (meth) acrylate, stearyl (meth) acrylate, isotetradecyl (meth) acrylate and the like.
  • the (meth) acrylic acid alkyl ester is not particularly limited, but may be substituted by various substituents such as an alkoxy group having 1 to 3 carbon atoms and a tetrahydrofurfuryl group. Examples include methoxyethyl acrylate, tetrahydrofurfuryl acrylate and the like.
  • Examples of the (meth) acrylic acid cyclic alkyl ester include cyclohexyl (meth) acrylate and isobornyl (meth) acrylate.
  • Examples of the (meth) acrylic acid aryl ester include phenyl (meth) acrylate and benzyl (meth) acrylate.
  • acrylamides examples include (meth) acrylamide, N-isopropyl (meth) acrylamide, N-tert-butyl (meth) acrylamide, N, N'-dimethyl (meth) acrylamide, (3- (meth) acrylamide propyl ) Trimethylammonium chloride, 4- (meth) acryloyl morpholine, 3- (meth) acryloyl-2-oxazolidinone, N- [3- (dimethylamino) propyl] (meth) acrylamide, N- (2-hydroxyethyl) (meth) And the like) acrylamide, N-methylol (meth) acrylamide, 6- (meth) acrylamidohexanoic acid and the like.
  • Examples of the (meth) acrylic acid polyethylene glycols include methoxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, ethoxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, hydroxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, methoxy-diethylene glycol (meth) acrylate, and ethoxy -Diethylene glycol (meth) acrylate, hydroxy-diethylene glycol (meth) acrylate, methoxy-triethylene glycol (meth) acrylate, ethoxy-triethylene glycol (meth) acrylate, hydroxy-triethylene glycol (meth) acrylate etc
  • Examples of the (meth) acrylic acid phosphoryl choline include 2- (meth) acryloyl oxyethyl phosphoryl choline.
  • (meth) acrylic acid ester There is no limitation in particular as monomers other than (meth) acrylic acid ester, (meth) acrylic acid, ethylene, vinyl ester etc. are mentioned.
  • the (meth) acrylic acid esters may be used alone or in combination of two or more.
  • the above (meth) acrylic acid is a generic term of acrylic acid and methacrylic acid
  • the above (meth) acrylate is a generic term of acrylate and methacrylate.
  • synthetic resins polyvinyl acetal resin is preferably used. Hereinafter, polyvinyl acetal resin is demonstrated.
  • the polyvinyl acetal resin is a resin synthesized by acetalizing with polyvinyl alcohol with polyvinyl alcohol, and has an acetyl group, a hydroxyl group and an acetal group in the side chain.
  • the polyvinyl acetal resin may be a modified polyvinyl acetal resin having another substituent (a substituent other than an acetyl group, a hydroxyl group or an acetal group) in a side chain.
  • a substituent having a Bronsted basic group described later is preferable.
  • aldehyde used for the acetalization examples include aldehydes having a linear aliphatic group having 1 to 10 carbon atoms, a cyclic aliphatic group or an aromatic group. As these aldehydes, conventionally known aldehydes can be used.
  • aldehyde is not particularly limited, but formaldehyde, acetaldehyde, propionaldehyde, butyraldehyde, pentanal, hexanal, heptanal, octanal, nonanal, decanal, acrolein, benzaldehyde, cinnamaldehyde, perylaldehyde, formyl pyridine, formyl imidazole, formyl pyrrole Formylpiperidine, formylpiperidine, formyltriazole, formyltetrazole, formylindole, formyl isoindole, formylpurine, formylpurine, formylbenzimidazole, formylbenzotriazole, formylquinoline, formyl isoquinoline, formylquinoxaline, formylcinnoline, formylpteridine, Formylfuran, Holmy Oxolane,
  • the aldehyde is preferably formaldehyde, acetaldehyde, propionaldehyde, butyraldehyde or pentanal, and more preferably butyraldehyde.
  • the addition amount of the above-mentioned aldehyde can be appropriately set in accordance with the target acetal group amount.
  • the addition amount of the above aldehyde is 60 to 95 mol%, preferably 65 to 90 mol% with respect to 100 mol% of polyvinyl alcohol, the acetalization reaction is efficiently performed and unreacted aldehyde is easily removed. Because it is preferable.
  • the polyvinyl alcohol may be a copolymer with a vinyl compound.
  • vinyl compounds include ethylene, vinylamine, allylamine, vinylpyrrolidone, maleic anhydride, maleimide, itaconic acid and (meth) acrylic acids.
  • (meth) acrylic acid esters are not particularly limited, but (meth) acrylic acid alkyl esters, (meth) acrylic acid cyclic alkyl esters, (meth) acrylic acid aryl esters, (meth) It is preferable to contain at least one selected from acrylamides, polyethylene glycols (meth) acrylate, and phosphoryl choline (meth) acrylate.
  • Examples of the (meth) acrylic acid alkyl ester include methyl (meth) acrylate, ethyl (meth) acrylate, n-propyl (meth) acrylate, isopropyl (meth) acrylate, n-butyl (meth) acrylate, isobutyl (meth) ) Acrylates, t-Butyl (meth) acrylates, n-octyl (meth) acrylates, isooctyl (meth) acrylates, 2-ethylhexyl (meth) acrylates, nonyl (meth) acrylates, isononyl (meth) acrylates, decyl (meth) acrylates , Isodecyl (meth) acrylate, lauryl (meth) acrylate, stearyl (meth) acrylate, isotetradecyl (meth) acrylate and the like.
  • Examples of the (meth) acrylic acid cyclic alkyl ester include cyclohexyl (meth) acrylate and isobornyl (meth) acrylate.
  • Examples of the (meth) acrylic acid aryl ester include phenyl (meth) acrylate and benzyl (meth) acrylate.
  • acrylamides examples include (meth) acrylamide, N-isopropyl (meth) acrylamide, N-tert-butyl (meth) acrylamide, N, N'-dimethyl (meth) acrylamide, (3- (meth) acrylamide propyl ) Trimethylammonium chloride, 4- (meth) acryloyl morpholine, 3- (meth) acryloyl-2-oxazolidinone, N- [3- (dimethylamino) propyl] (meth) acrylamide, N- (2-hydroxyethyl) (meth) And the like) acrylamide, N-methylol (meth) acrylamide, 6- (meth) acrylamidohexanoic acid and the like.
  • Examples of the (meth) acrylic acid polyethylene glycols include methoxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, ethoxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, hydroxy-polyethylene glycol (meth) acrylate, methoxy-diethylene glycol (meth) acrylate, and ethoxy -Diethylene glycol (meth) acrylate, hydroxy-diethylene glycol (meth) acrylate, methoxy-triethylene glycol (meth) acrylate, ethoxy-triethylene glycol (meth) acrylate, hydroxy-triethylene glycol (meth) acrylate etc
  • Examples of the (meth) acrylic acid phosphoryl choline include 2- (meth) acryloyl oxyethyl phosphoryl choline.
  • the (meth) acrylic acids may be used alone or in combination of two or more.
  • the above (meth) acrylic acid is a generic term of acrylic acid and methacrylic acid
  • the above (meth) acrylate is a generic term of acrylate and methacrylate.
  • the method of adjusting the degree of acetalization to be more than 60% is not particularly limited.
  • the acetalization reaction can be sufficiently advanced by adding an excess amount of the aldehyde during the acetalization reaction.
  • the synthetic resin preferably has a Bronsted basic group at a part thereof.
  • a part of the synthetic resin is denatured by Br ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ nsted basic group, in the serum-free medium culture without feeder cells and adhesion proteins, the initial fixation rate after seeding with stem cells is improved, and it becomes easy to culture stem cells. It is from.
  • the Br ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ nsted basic group is a generic term for substituents that can receive hydrogen ion H + from other substances.
  • Examples of the Broensted basic group include amine basic groups such as a substituent having an amine structure, a substituent having an imine structure, a substituent having an amide structure, and a substituent having an imide structure. Therefore, as such synthetic resin, at least one structural unit selected from the group consisting of a structural unit having an imine structure, a structural unit having an amine structure, a structural unit having an amide structure, and a structural unit having an imide structure
  • the above synthetic resin preferably has an imine structure in the side chain.
  • the imine structure may be directly bonded to carbon constituting the main chain of the synthetic resin, or may be bonded via a linking group such as an alkylene group.
  • having an imine structure in a side chain includes having the imine structure in a graft chain of a synthetic resin.
  • the structural unit shown to following formula (1) is mentioned, for example.
  • R 1 represents a single bond or an alkylene group
  • R 2 represents a group having an imine structure
  • R 1 when R 1 is an alkylene group, the preferable lower limit of the carbon number of the alkylene group is 1, and the preferable upper limit is 12.
  • the carbon number of the above-mentioned alkylene group exceeds 12, optimum strength may not be obtained.
  • R ⁇ 1 > is an alkylene group, the more preferable upper limit of carbon number of the said alkylene group is five.
  • R 1 when R 1 is an alkylene group, examples of the alkylene group include methylene group, ethylene group, trimethylene group, tetramethylene group, pentamethylene group, hexamethylene group, octamethylene group, decamethylene group. , Linear alkylene groups such as methylmethylene group, methylethylene group, 1-methylpentylene group, branched alkylene group such as 1,4-dimethylbutylene group, cyclopropylene group, cyclobutylene group, cyclohexylene group, etc. And cyclic alkylene groups of the following. Among them, methylene group, ethylene group, trimethylene group, A linear alkyl group such as a tetramethylene group is preferable, and a methylene group and an ethylene group are more preferable.
  • R 2 it includes a functional group represented by the following formula (2).
  • R 3 represents a hydrogen atom or a hydrocarbon group having 1 to 18 carbon atoms
  • R 4 represents a hydrocarbon group having 1 to 18 carbon atoms.
  • hydrocarbon group a saturated hydrocarbon group, an unsaturated hydrocarbon group, an aromatic hydrocarbon group etc. are mentioned.
  • the above-mentioned hydrocarbon group may consist of only one kind of a saturated hydrocarbon group, an unsaturated hydrocarbon group, and an aromatic hydrocarbon group, and two or more kinds of these are used. May be
  • saturated hydrocarbon group examples include methyl group, ethyl group, n-propyl group, isopropyl group, n-butyl group, iso-butyl group, sec-butyl group, tert-butyl group, pentyl group and hexyl group. And heptyl group, 2-ethylhexyl group, octyl group, nonyl group, decyl group, undecyl group, dodecyl group, tridecyl group, tetradecyl group, pentadecyl group, octadecyl group and the like.
  • methyl group, ethyl group, n-propyl group and n-butyl group are preferable.
  • the aromatic hydrocarbon group include phenyl group, toluyl group, xylyl group, t-butylphenyl group, benzyl group and the like.
  • R 1 is a single bond
  • R 3 is a hydrogen atom, a methyl group or an ethyl group
  • R 4 is a methyl group, an ethyl group or a propyl group.
  • the lower limit of the content of the structural unit having an imine structure is preferably 0.1 mol%, and the upper limit is preferably 20.0 mol%.
  • the content of the structural unit having an imine structure is 0.1 mol% or more, the viscosity stability over time becomes good.
  • the fixability of a stem cell can be improved as content of the structural unit which has the said imine structure is 20.0 mol% or less.
  • the more preferable lower limit of the content of the constituent unit having an imine structure is 1.0 mol%, and the more preferable upper limit is 15.0 mol%.
  • the ratio of the content of the structural unit having an imine structure to the degree of acetalization described later is And 0.001 to 0.5 are preferable.
  • the synthetic resin preferably has a structural unit having an amine structure or a structural unit having an amide structure. It is preferable that the above-mentioned synthetic resin has the above-mentioned amine structure or amide structure in the side chain.
  • the amine structure or the amide structure may be directly bonded to carbon constituting the main chain of the synthetic resin, or may be bonded via a linking group such as an alkylene group.
  • the above amine structure may be a primary amine, a secondary amine, a tertiary amine or a quaternary amine. Among these, primary amines are preferable from the viewpoint of cell fixability.
  • having the above amine structure or amide structure in the side chain means having the above amine structure or amide structure in the graft chain of the synthetic resin.
  • the amine structure is preferably -NH 2 .
  • the structural unit which has the said amine structure is a structure shown to following formula (3).
  • the structural unit which has the said amide structure is a structure shown to following formula (4).
  • R 5 represents a hydrogen atom or a hydrocarbon group having 1 to 10 carbon atoms.
  • hydrocarbon group an alkyl group, an alkenyl group, a cycloalkyl group, and a cycloalkenyl group are mentioned.
  • the preferable lower limit of the content of the constituent unit having an amine structure or an amide structure is 0.1 mol%, and the preferable upper limit is 20 mol%.
  • the content of the constituent unit having the amine structure or the amide structure is 0.1 mol% or more, the addition property can be made sufficient.
  • the content is 20 mol% or less, the solubility does not increase excessively, and the removal of the modified polyvinyl acetal resin powder by the precipitation method becomes easy.
  • the more preferable lower limit of the content is 0.5 mol%, and the more preferable upper limit is 10 mol%.
  • the content of the structural unit having the above amine structure or amide structure can be measured by NMR or the like.
  • the preferable lower limit of the content which totaled the structural unit which has the said amine structure or an amide structure, and the structural unit which has an imine structure is 0.1 mol%, and a preferable upper limit is 20 mol%.
  • the more preferable lower limit of the content is 0.5 mol%, and the more preferable upper limit is 10 mol%.
  • the ratio of the content of the structural unit having an imine structure to the structural unit having an amine structure or an amide structure is preferably 0.5 / 99.5 to 99.5 / 0.5.
  • the above ratio is 0.5 / 99.5 or more, the temporal viscosity stability can be made sufficient, and when the above ratio is 99.5 / 0.5 or less, the viewpoint of the fixability of stem cells More crosslinking performance can be exhibited.
  • the more preferable lower limit of the above ratio is 5/95, and the more preferable upper limit is 75/25.
  • the acetalization degree of polyvinyl acetal resin is not specifically limited, A preferable lower limit is 60 mol%, A preferable upper limit is 90 mol%.
  • a preferable lower limit is 60 mol%
  • a preferable upper limit is 90 mol%.
  • the degree of acetalization is 60% by mole or more, stem cell fixability is excellent and cell proliferation can be performed with high efficiency.
  • the solubility to a solvent can be made favorable as the degree of acetalization is 90 mol% or less.
  • a more preferable lower limit is 65 mol%, and a more preferable upper limit is 85 mol%.
  • the degree of acetal of the above synthetic resin can be measured by NMR or the like.
  • the amount of acetyl groups of the polyvinyl acetal resin in the case of using a polyvinyl acetal resin as the above synthetic resin is not particularly limited, and the preferable lower limit is 0.0001% by mol and the preferable upper limit is 5% by mol.
  • the synthetic resin preferably includes at least one selected from the group consisting of a structural unit having an amine structure, a structural unit having an imine structure, and a structural unit having an amide structure. It is preferable that the above-mentioned synthetic resin comprises both a structural unit having an imine structure and a structural unit having an amine structure.
  • the polyvinyl alcohol obtained by saponifying the polyvinyl acetate obtained by copolymerizing the monomer which has the said imine structure, and vinyl acetate for example is The method of carrying out acetalization by a well-known method is mentioned. Also, a method of introducing an imine structure by acetalizing a polyvinyl alcohol having a structural unit having an amino group or an amide structure by a conventionally known method may be used. The modified polyvinyl alcohol having an imine structure obtained by post-modifying a polyvinyl alcohol having a structural unit having an amino group or an amide structure may be acetalized by a conventionally known method.
  • the imine structure may be introduced by post-denaturing the unmodified polyvinyl acetal resin.
  • the modified polyvinyl acetal resin may be an acetalized polyvinyl alcohol having a structural unit having an amino group or an amide structure.
  • a method of obtaining a modified polyvinyl acetal resin having an imine structure by acetalizing a polyvinyl alcohol having a structural unit having an amino group or an amide structure is preferable.
  • an imine structure can be obtained by adding an excess amount of an aldehyde and an acid catalyst used for acetalization.
  • aldehyde in excess, it is preferable to add 70 to 150 parts by weight of aldehyde to 100 parts by weight of polyvinyl alcohol having a structural unit having an amino group or an amide structure.
  • aldehyde acetaldehyde, propionaldehyde, n-butyraldehyde, isobutyraldehyde, n-valeraldehyde and phenylaldehyde are preferable.
  • the acid catalyst In the method of adding the acid catalyst in excess, it is preferable to add the acid catalyst by 0.5% by weight or more of the whole. Furthermore, it is preferable to add 5.0 to 70.0 parts by weight of an acid catalyst to 100 parts by weight of polyvinyl alcohol having a structural unit having an amino group or an amide structure. In particular, hydrochloric acid, nitric acid, sulfuric acid and paratoluenesulfonic acid are preferable as the acid catalyst.
  • the acetalization can be carried out using a known method, and is preferably carried out in an aqueous solvent, a mixed solvent of water and an organic solvent compatible with water, or an organic solvent.
  • an organic solvent compatible with water for example, an alcohol-based organic solvent can be used.
  • the organic solvent include alcohol organic solvents, aromatic organic solvents, aliphatic ester solvents, ketone solvents, lower paraffin solvents, ether solvents, amine solvents and the like.
  • the alcohol-based organic solvent include methanol, ethanol, n-propanol, isopropanol, n-butanol, tert-butanol and the like.
  • Examples of the aromatic organic solvent include xylene, toluene, ethylbenzene, methyl benzoate and the like.
  • Examples of the aliphatic ester solvents include methyl acetate, ethyl acetate, butyl acetate, methyl propionate, ethyl propionate, methyl butyrate, ethyl butyrate, methyl acetoacetate, ethyl acetoacetate and the like.
  • Examples of the ketone solvents include acetone, methyl ethyl ketone, methyl isobutyl ketone, cyclohexanone, methyl cyclohexanone, benzophenone, acetophenone and the like.
  • Examples of the lower paraffinic solvents include hexane, pentane, octane, cyclohexane and decane.
  • Examples of the ether solvents include diethyl ether, tetrahydrofuran, ethylene glycol dimethyl ether, ethylene glycol diethyl ether, propylene glycol diethyl ether and the like.
  • Examples of the amide solvents include N, N-dimethylformamide, N, N-dimethyl tecetamide, N-methyl pyrrolidone, acetanilide and the like.
  • amine solvents examples include ammonia, trimethylamine, triethylamine, n-butylamine, di-n-butylamine, tri-n-butylamine, aniline, N-methylaniline, N, N-dimethylaniline and pyridine. These can be used alone or in combination of two or more solvents. Among these, ethanol, n-propanol, isopropanol and tetrahydrofuran are particularly preferable from the viewpoint of solubility in a resin and ease of purification.
  • the acetalization is preferably performed in the presence of an acid catalyst.
  • the above-mentioned acid catalyst is not particularly limited, and mineral acids such as sulfuric acid, hydrochloric acid, nitric acid and phosphoric acid, carboxylic acids such as formic acid, acetic acid and propionic acid, methanesulfonic acid, ethanesulfonic acid, benzenesulfonic acid and paratoluene sulfone And sulfonic acids such as acids.
  • These acid catalysts may be used alone or in combination of two or more. Among them, hydrochloric acid, nitric acid and sulfuric acid are preferable, and hydrochloric acid is particularly preferable.
  • the polyvinyl acetal resin may be a graft copolymer with the vinyl compound.
  • vinyl compounds include ethylene, allylamine, vinyl pyrrolidone, maleic anhydride, maleimide, itaconic acid and (meth) acrylic acids.
  • the graft copolymer contains a graft copolymer (hereinafter, also simply referred to as "graft copolymer”) having "a unit composed of a polyvinyl acetal" and a "unit composed of a vinyl compound".
  • the "unit made of polyvinyl acetal” and the "unit made of vinyl compound” refer to the "polyvinyl acetal" and the "unit made of vinyl compound” present in the graft copolymer.
  • a graft copolymer having a unit composed of a unit composed of polyvinyl acetal and a unit composed of a unit composed of a vinyl compound is a “unit composed of polyvinyl acetal” constituting a main chain or a “unit composed of a vinyl compound”
  • branched copolymer refers to a “polyvinyl acetal unit” or “vinyl compound unit” constituting different side chains.
  • the molecular weight of the graft copolymer is not particularly limited, but the number average molecular weight (Mn) is 10000 to 600000, the weight average molecular weight (Mw) is 20000 to 1200000, and the ratio (Mw / Mn) thereof is 2.%. It is preferably from 0 to 40. When the Mn, Mw, and Mw / Mn are in such ranges, the strength of the stem cell scaffold material is suitably maintained.
  • the degree of acetalization in the graft copolymer may be determined by, for example, dissolving the soluble matter in the above xylene in deuterated dimethyl sulfoxide and measuring the degree of acetalization by 1 H-NMR measurement.
  • the polyvinyl acetal resin contains 0.1 to 30% by mole of at least one structural unit selected from the group consisting of a structural unit having an imine structure, a structural unit having an amine structure, and a structural unit having an amide structure. preferable. It is more preferable to contain 1 to 10 mol% from the viewpoint of cell adhesion immediately after seeding.
  • the method of confirming content of the structural unit which has an amine structure, the structural unit which has an amide structure, and the structural unit which has an imine structure the method of confirming by 1 H-NMR etc. are mentioned, for example.
  • the terms used in the present specification will be explained.
  • “Stem cells” refer to cells having self-replication ability and differentiation ability.
  • pluripotent stem cells those capable of self-replication and capable of differentiating from one cell to all cells of endoderm, mesoderm and ectoderm are referred to as "pluripotent stem cells”.
  • pluripotent stem cells for example, induced pluripotent stem cells (hereinafter referred to as "iPS cells"), embryonic stem cells (hereinafter referred to as “ES cells”), Muse cells (multilinege) Differentiating stress enduring cells), embryonic cancer cells (embryonic germ cells), embryonic germ stem cells (embryonic germ cells), mGS cells (multipotent germ stem cells) and the like can be mentioned.
  • tissue stem cells are capable of self-replication and belong to ectodermal tissue, endodermal tissue, mesodermal tissue, or germline tissue, and are restricted to constituent cell types of the organ to which they belong Those showing differentiation ability are referred to as “tissue stem cells” and “tissue precursor cells”.
  • Tissue stem cells and tissue precursor cells include, for example, neural stem cells, neural crest stem cells, retinal stem cells, corneal stem cells, keratinocyte epidermal stem cells, melanocyte stem cells, mammary stem cells, hepatic stem cells, enteric stem cells, airway stem cells, hematopoietic stem cells, mesenchymal stem cells Cardiac stem cells, vascular endothelial progenitor cells, pericytes of vascular blood, skeletal muscle stem cells, adipose stem cells, renal progenitor cells, sperm stem cells and the like.
  • the above-mentioned stem cell type is not particularly limited by using the stem cell scaffold material of the present invention, but it can be used as a stem cell scaffold material.
  • stem cells particularly iPS cells.
  • stem cells in a serum-free medium culture that does not contain feeder cells or adhesion proteins, the initial retention rate after seeding with stem cells is improved, and stem cells can be cultured preferably.
  • stem cells there can be mentioned, for example, the stem cells described in “More clearly! Stem cells and regenerative medicine” (by Yodosha, Kenji Nagafune).
  • the lower limit of the polymerization degree of the polyvinyl acetal resin is preferably 100, more preferably 200, still more preferably 500, and still more preferably 1500.
  • the upper limit of the polymerization degree is preferably 6000, more preferably 3000, and still more preferably 2500.
  • pluripotent stem cells are considered to have a low establishment rate in culture after seeding, but the above scaffold material for stem cell culture is not easily swelled by the water of the culture medium, and maintains adequate hydrophilicity and strength This is because the establishment rate after seeding of pluripotent stem cells is improved.
  • the present invention also relates to a container for stem cell culture using the scaffold material for stem cell culture described above. That is, it is a container for stem cell culture, and the container for stem cell culture relates to the container for stem cell culture provided with the resin film which consists of the above-mentioned stem cell scaffolding material in at least one copy of the stem cell culture area.
  • FIG. 1A is a perspective conceptual view of a container for stem cell culture according to the embodiment, and FIG. 1B is a side sectional conceptual view thereof.
  • the shape of the stem cell culture vessel is not particularly limited. For example, a bottomed cylindrical petri dish 1 as shown in FIG. 1A is prepared, and a resin film 12 is provided as shown in FIG. Aspects can be mentioned.
  • the scaffold material for stem cell culture is, in addition to use for planar culture (two-dimensional culture method) in stem cell culture, a state closer to in vivo, for example, culture of stem cells on a substrate such as porous membrane or hydrogel It can be used for (three-dimensional culture method). This is because stem cells can be efficiently propagated by using a scaffold for cell culture for a bioreactor or the like.
  • the scaffold material for cell culture is preferably used in a two-dimensional culture method because it has appropriate hydrophilicity and strength.
  • the shape and size of the container for planar culture are not particularly limited, and examples thereof include a cell culture test plate provided with one or more wells and a cell culture flask.
  • a stem cell culture vessel having six wells as shown in FIG. 2 can be used.
  • the number of wells of the above-mentioned microplate is not limited, and, for example, 2, 4, 6, 12, 24, 48, 96, 384 and the like can be mentioned.
  • the shape of the well is not particularly limited, and examples thereof include a perfect circle, an ellipse, a triangle, a square, a rectangle, a pentagon, and the like.
  • the shape of the bottom of the well is not particularly limited, and examples thereof include a flat bottom, a round bottom, and irregularities.
  • the material of the cell culture test plate provided with one or more wells and the cell culture flask is not particularly limited, and examples thereof include polymer resins, metals, and inorganic materials.
  • the polymer resin include polystyrene, polyethylene, polypropylene, polycarbonate, polyester, polyisoprene, cycloolefin polymer, polyimide, polyamide, polyamide imide, (meth) acrylic resin, epoxy resin, silicone and the like.
  • the metal include stainless steel, copper, iron, nickel, aluminum, titanium, gold, silver, platinum and the like.
  • Examples of the inorganic material include silicon oxide (glass), aluminum oxide, titanium oxide, zirconium oxide, iron oxide, silicon nitride and the like.
  • the scaffold for cell culture can be used in a suspension culture method in which stem cells are freely suspended and grown in a culture medium.
  • Method of culturing pluripotent stem cells In the method for culturing pluripotent stem cells, it is preferable to seed the cell mass on a scaffold for stem cell culture containing a synthetic resin.
  • a cell mass can be obtained by adding a cell release agent to a culture vessel that has become confluent and disrupting the cells uniformly by pipetting.
  • the cell release agent is not particularly limited, but is preferably an ethylenediamine / phosphate buffer solution.
  • the size of the cell mass is preferably 50 to 200 ⁇ m.
  • the present invention provides an invention using a scaffold material for stem cell culture as another embodiment in addition to the scaffold material for stem cell culture described above.
  • a stem cell culture carrier (medium) containing the above-described stem cell culture scaffold material and a polysaccharide.
  • polysaccharides various polysaccharides can be used without particular limitation. Among them, water-soluble polysaccharides are preferred.
  • a fiber for stem cell culture comprising a scaffold material for stem cell culture.
  • the scaffold material for stem cell culture is preferably coated on a fiber.
  • the scaffold material for stem cell culture may be in the form of being impregnated or kneaded into fibers.
  • the stem cell culture fiber is difficult to adhere to a planar structure such as a flask, but is suitable for a three-dimensional culture method of stem cells that easily adheres to a three-dimensional structure such as a fibril-like structure.
  • stem cells it is particularly suitable for culturing adipose stem cells.
  • the scaffold material for stem cell culture may be crosslinked. It is because water swelling property can be suppressed and strength can be raised suitably by being bridged.
  • a crosslinking agent may be further added to the scaffold material for stem cell culture to cause crosslinking.
  • the crosslinking agent is not particularly limited, and examples thereof include polyalcohols, polycarboxylic acids, hydroxycarboxylic acids, metal soaps, polysaccharides and the like.
  • the polyalcohol is not particularly limited, but ethylene glycol, propylene glycol, butanediol, pentanediol, hexanediol, heptanediol, octanediol, nonanediol, decanediol, dodecanediol, undecanediol, undecanediol, diethylene glycol, triethylene glycol, tetraethylene
  • examples thereof include glycol, polyethylene glycol, catechol, pyrogallol, diboronic acid, methylene diboronic acid, ethylene diboronic acid, propylene diboronic acid, phenylene diboronic acid, biphenyl diboronic acid, and bisphenol derivatives.
  • the polycarboxylic acid is not particularly limited, and oxalic acid, malonic acid, succinic acid, glutaric acid, adipic acid, pimelic acid, suberic acid, azelaic acid, sebacic acid, phthalic acid, poly (meth) acrylic acid and the like can be mentioned. .
  • the hydroxycarboxylic acid is not particularly limited, but glycolic acid, lactic acid, thalthronic acid, glyceric acid, hydroxybutyric acid, malic acid, tartaric acid, tartaric acid, citric acid, isocitric acid, leucine acid, mevalonic acid, pantoic acid, ricinoleic acid, Ricinereidiic acid, cerebronic acid, quinic acid, shikimic acid, hydroxybenzoic acid, salicylic acid, creosote acid, vanillic acid, silicic acid, pyrocatechic acid, resorcylic acid, protocatechuic acid, gentisic acid, orsellinic acid, gallic acid, mandelic acid, benzyl Acids, atrolactic acid, melilotonic acid, phlorettic acid, coumaric acid, umbellic acid, caffeic acid, ferulic acid, sinapinic acid, hydroxystearic acid and the like can be mentioned.
  • the metal soap is not particularly limited, and examples thereof include fatty acids such as stearic acid, lauric acid, ricinoleic acid and octylic acid, and salts of metals such as lithium, sodium, magnesium, calcium, barium, zinc and aluminum.
  • the polysaccharides are not particularly limited, but pectin, guar gum, xanthan gum, tamarind gum, carrageenan, propylene glycol, carboxymethylcellulose, amylose, amylopectin, glycogen, cellulose, chitin, agarose, carrageenan, heparin, hyaluronic acid, xyloglucan, glucomannan An acid etc. are mentioned.
  • the degree of acetalization (mol%), the amount of acetyl groups (mol%) and the amount of hydroxyl groups (mol%) are as follows: 1 H-NMR (nuclear magnetic resonance spectrum) It measured using.
  • Example 1 (Preparation of polyvinyl butyral) In a reactor equipped with a stirrer, 300 g of 2700 mL of ion-exchanged water and 300 g of polyvinyl alcohol (average polymerization degree 250, saponification degree 97 mol%) containing 2 mol% of the structural unit having an amino group shown in the above formula (3) The mixture was heated and dissolved with stirring to obtain a solution. Next, 35 mass% hydrochloric acid as a catalyst is added to this solution so that the concentration of hydrochloric acid is 0.2 mass%, the temperature is adjusted to 15 ° C., and then n-butyraldehyde (n-BA) is stirred. 22 g was added.
  • n-butyraldehyde (n-BA) was added to precipitate white particles of polyvinyl butyral.
  • 35 mass% hydrochloric acid was added so that the concentration of hydrochloric acid was 1.8 mass%, and after heating to 550 ° C., aging was carried out at 50 ° C. for 2 hours.
  • the solution was cooled and neutralized, and then polyvinyl butyral was washed with water and dried to obtain polyvinyl butyral.
  • the obtained polyvinyl butyral had an average polymerization degree of 250, a hydroxyl content of 20 mol%, an acetyl content of 1 mol%, and an acetalization degree of 77 mol%.
  • Elemental composition of the obtained resin was analyzed by X-ray photoelectron spectroscopy (apparatus: ULVAC-PHI, Multifunctional Scanning X-ray Photoelectron Spectrometer (XPS), PHI 5000 VersaProbe III), and all elements detected 100%, and the occupancy rate (%) of nitrogen in all elements was taken as the nitrogen content.
  • X-ray photoelectron spectroscopy Appatus: ULVAC-PHI, Multifunctional Scanning X-ray Photoelectron Spectrometer (XPS), PHI 5000 VersaProbe III
  • a polyvinyl butyral solution was obtained by dissolving 1 g of the obtained polyvinyl butyral in 19 g of butanol. Discharge 150 ⁇ L of the obtained polyvinyl butyral solution onto a ⁇ 22 mm cover glass (Matsunami Co., Ltd., using No. 1 dust removed with an air duster) and spin it at 2000 rpm for 20 seconds using a spin coater to make it smooth A resin film was obtained. The obtained resin film was placed on a polystyrene dish with a diameter of 22 mm together with the cover glass to obtain a cell culture vessel. Tests were conducted on a cell culture vessel provided with a resin film under the following conditions.
  • TeSRE 8 medium is inoculated with 1.0 ⁇ 10 5 cells into a culture vessel, and medium TeSR E8 (STEM CELL Co., Ltd.) 2.
  • Cultivation was carried out in the presence of 1 mL and 10 ⁇ M of ROCK-Inhibitor (Y27632) at 37 ° C. in a 5% CO 2 incubator. The medium was changed by removing 750 ⁇ l of the medium every 24 hours and adding 250 ⁇ l of fresh TeSR E8.
  • FIGS. 4A and 4B The results of the obtained Examples and Comparative Examples are summarized in FIGS. 4A and 4B.
  • (2) Cell Proliferation In the cell culture test, cell images after 5 days after cell seeding were obtained using a phase contrast microscope 10 ⁇ 4 ⁇ phase contrast microscope (IX 73, manufactured by Olympus Corporation). At that time, an image of a field of view showing the most average adhesion form in the culture vessel was obtained. Evaluation of cell proliferation was performed by comparing the obtained images with sample 1 to sample 10 in FIG. In FIG. 5, it was evaluated highly as colonies grew by cell growth. In addition, since the colonies start to be stacked in the vertical direction (front side direction of the screen) when the colonies grow too much in the horizontal direction (vertical and horizontal direction of the screen), light transmittance tends to be low.
  • Example 2 It replaces with polyvinyl alcohol (average polymerization degree 250, saponification degree 97 mol%) containing 2 mol% of structural units having an amino group shown in the above formula (3), average polymerization degree 1600, saponification degree 97 mol%, The test was conducted in the same manner as in Example 1 except that a polyvinyl alcohol containing 2 mol% of the structural unit having an amino group shown in (3) was used.
  • Example 3 Polyvinyl alcohol having an average polymerization degree of 250 and a saponification degree of 97 mol% instead of polyvinyl alcohol (average polymerization degree 250, saponification degree 97 mol%) containing 2 mol% of structural units having an amino group shown in the above formula (3)
  • Polyvinyl acetal was obtained in the same manner as in Example 1 except for using. 100 parts by weight of the obtained polyvinyl acetal having a degree of polymerization of about 250 and 1 part by weight of N-vinylpyrrolidone were dissolved in 500 parts by weight of tetrahydrofuran to obtain a resin solution.
  • Example 1 0.05 parts by weight of Irgacure 184 (manufactured by BASF Corporation) was dissolved and applied onto a PET film.
  • a composite resin solution was obtained by irradiating a light having a wavelength of 365 nm with an integrated light quantity of 2000 mJ / cm 2 using a UV conveyor apparatus “ECS 301 G1” manufactured by Eye Graphics Co., Ltd. at 25 ° C.
  • the resulting composite resin solution was vacuum dried at 80 ° C. for 3 hours to obtain a composite resin. It was about 40,000 when the weight average molecular weight by polystyrene conversion was measured by GPC method using "2690 Separations Model" by Waters company about the obtained resin as a column.
  • the obtained composite resin was adjusted to a 3% by weight butanol solution, and tested in the same manner as in Example 1.
  • Example 4 The test was conducted in the same manner as in Example 3 except that 10 parts by weight of N-vinylpyrrolidone was added to 100 parts by weight of polyvinyl acetal. The weight average molecular weight of the obtained resin was about 60,000.
  • Example 5 The test was conducted in the same manner as in Example 3 except that 30 parts by weight of N-vinylpyrrolidone was added to 100 parts by weight of polyvinyl acetal. The weight average molecular weight of the obtained resin was about 50,000.
  • Example 6 The test was conducted in the same manner as in Example 3 except that 2 parts by weight of N-isopropylacrylamide was added to 100 parts by weight of polyvinyl acetal. The weight average molecular weight of the obtained resin was about 60,000.
  • Example 7 The test was conducted in the same manner as Example 3 except that 2 parts by weight of polyamide was added to 100 parts by weight of polyvinyl acetal. The weight average molecular weight of the obtained resin was about 60,000.
  • Example 8 The test was conducted in the same manner as in Example 3 except that 2 parts by weight of poly-L-lysine was added to 100 parts by weight of polyvinyl acetal. The weight average molecular weight of the obtained resin was about 50,000.
  • Example 9 An acrylic monomer solution was obtained by dissolving 5 parts by weight of N-vinylpyrrolidone, 15 parts by weight of butyl methacrylate, 30 parts by weight of ethyl acrylate, and 50 parts by weight of methyl methacrylate in 300 parts by weight of tetrahydrofuran. Two parts by weight of Irgacure 184 (manufactured by BASF Corp.) was dissolved in the obtained acrylic monomer solution, and the solution was coated on a PET film.
  • Irgacure 184 manufactured by BASF Corp.
  • An acrylic resin solution was obtained by irradiating a light having a wavelength of 365 nm with an integrated light quantity of 2000 mJ / cm 2 using a UV conveyor apparatus “ECS 301 G1” manufactured by Eye Graphics Co., Ltd. at 25 ° C.
  • the obtained acrylic resin solution was vacuum dried at 80 ° C. for 3 hours to obtain an acrylic resin.
  • the obtained acrylic resin was adjusted to a 3% by weight butanol solution, and tested in the same manner as in Example 1.
  • the weight average molecular weight of the obtained resin was about 90,000.
  • Comparative Example 1 The test was conducted in the same manner as in Example 1 using only a polystyrene dish without using a scaffold resin.
  • Comparative Example 2 The test was conducted in the same manner as in Example 1 except that the amount of n-butyraldehyde added was changed to 22 g and 88 g instead of 22 g and 148 g in Example 1.
  • Comparative Example 3 The test was conducted in the same manner as in Example 1 except that polyvinyl alcohol having an average polymerization degree of 1000 and a saponification degree of 98 mol% was used as the synthetic resin.
  • Comparative Example 4 A polyacrylamide resin was obtained by mixing 100 parts by weight of N-isopropyl acrylamide, 75 parts by weight of ethyl acetate and 0.5 parts by weight of azobisisobutyronitrile, and performing polymerization at 65 ° C. for 8 hours in a nitrogen atmosphere. It was about 90,000 (degree of polymerization about 800) when the weight average molecular weight by polystyrene conversion was measured by GPC method using "2690 Separations Model" by Waters company about the obtained resin as a column. The test was conducted in the same manner as Example 1 except that the obtained polyacrylamide resin was used as a synthetic resin.
  • Comparative Example 5 The test was conducted in the same manner as Comparative Example 4 except that 100 parts by weight of ethyl acrylate was used instead of 100 parts by weight of N-isopropylacrylamide. The weight average molecular weight of the obtained resin was about 60,000.
  • Comparative Example 6 The test was conducted in the same manner as Comparative Example 4 except that 100 parts by weight of butyl methacrylate was used instead of 100 parts by weight of N-isopropylacrylamide. The weight average molecular weight of the obtained resin was about 80,000.
  • Comparative Example 7 The test was conducted in the same manner as in Example 3 except that 70 parts by weight of N-vinylpyrrolidone was added to 30 parts by weight of polyvinyl acetal. The weight average molecular weight of the obtained resin was about 90,000.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Gynecology & Obstetrics (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)

Abstract

合成樹脂を含有する幹細胞培養用足場材料であって、合成樹脂の窒素含有量が０．１質量％以上１０質量％以下である幹細胞培養用足場材料。この幹細胞培養用足場材料によれば、適度な親水性と強度を備え、幹細胞の播種後の定着性が高く、高効率に細胞増殖が可能である。

Description

幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法
　本発明は、幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法に関する。
　幹細胞は創薬や再生医療への応用が期待されている。幹細胞は、自己複製能と分化能を有する細胞であり、全ての細胞種へ分化可能な多能性幹細胞と、同系列の体組織の構成細胞種へのみ分化可能な組織幹細胞および組織前駆細胞がある。多能性幹細胞は、例えばヒト胚性幹細胞（ｈＥＳＣ）や、ヒト人工多能性幹細胞（ｈｉＰＳＣ）などのヒト多能性幹細胞（ｈＰＳＣ）等が挙げられる。幹細胞を安全に、そして再現性良く培養し、増殖させることは、これらの細胞を医療応用する上では必須の基盤技術となる。特に、再生医療の産業利用上においては、幹細胞を未分化状態で多量に扱う必要がある。そのため、天然および合成の高分子やフィーダー細胞を用いて幹細胞の増殖を行うと共に、多能性能（または多分化能）を維持する技術について広範な研究が行われている。特に天然高分子としてラミニン、ヴィトロネクチンなどの接着タンパク質やマウス肉腫由来のマトリゲルを使用すると播種後の細胞定着性が非常に高いことが知られている。
　しかし、天然高分子は生産性が非常に低いため高価であること、天然由来物質であるためロット間にバラツキが見られること、動物由来の成分による安全性上の懸念があることが課題として挙げられる。
　上記課題を解決するために、合成樹脂を使用した幹細胞培養樹脂担体が提案されている。例えば、特許文献１の実施例の欄には、マウス線維芽細胞の培養において、親水性かつ耐水性に優れる足場材を提供するためにアセタール化度が２０～６０モル％のポリビニルアセタール化合物が開示されている。特許文献２の実施例の欄にはマウスＥＳ細胞の培養において、アクリルポリマーによって構成されたハイドロゲルが開示されている。特許文献３の実施例の欄にはマウスｉＰＳ細胞の培養において、親水性を有し、かつ柔軟なポリロタキサンゲルが開示されている。
特開２００６-３１４２８５号公報 特開２０１０-１５８１８０号公報 特開２０１７-２３００８号公報
　しかしながら、特許文献１には、親水性が高いため培地中で膨潤し、足場材樹脂が剥がれる問題がある。また、幹細胞や多能性幹細胞の播種後の定着性が低く、十分に増殖しないという問題がある。特許文献２には、２－アクリルアミド－２－メチルプロパンスルホン酸ナトリウム塩、および、ｐ－スチレンスルホン酸ナトリウム、Ｎ，Ｎ’－ジメチルアクリルアミドを使用しており、親水性が高いため培地中で膨潤し、足場材樹脂が剥がれる問題がある。特許文献３には、親水性が高いため培地中で膨潤し、足場材樹脂が剥がれる問題がある。柔軟な足場材であるために心筋細胞への分化が促進されるという問題がある。
　以上より、適度な親水性と強度を備える幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法が求められている。
　本発明は、適度な親水性と強度を備え、幹細胞の播種後の定着性が高く、高効率に細胞増殖が可能な幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法を提供することを目的とする。
　本発明は以下の内容に関する。
（１）合成樹脂を含有する幹細胞培養用足場材料であって、合成樹脂の窒素含有量が０．１質量％以上１０質量％以下である幹細胞培養用足場材料。
（２）合成樹脂が、１モル％以上５０モル％以下でブレンステッド塩基性基を備える、（１）記載の幹細胞培養用足場材料。
（３）ブレンステッド塩基性基を有する化合物がアミン系塩基性基である（２）記載の幹細胞培養用足場材料。
（４）合成樹脂が、アミン構造を有する構成単位、イミン構造を有する構成単位およびアミド構造を有する構成単位からなる群より選択される少なくとも１つを備える（２）又は（３）記載の幹細胞培養用足場材料。
（５）合成樹脂がアミド構造を有する構成単位を備える（１）、（２）、（４）のいずれか１つに記載の幹細胞培養用足場材料。 
（６）合成樹脂がイミン構造を有する構成単位およびアミン構造を有する構成単位の両方を備える（１）、（２）、（４）のいずれか１つに記載の幹細胞培養用足場材料。
（７）幹細胞が多能性幹細胞である（１）～（６）のいずれか１つに記載の幹細胞培養用足場材料。
（８）（１）～（７）のいずれか１つに記載の幹細胞培養用足場材料を備える、幹細胞培養用容器。
（９）（１）～（７）のいずれか１つに記載の幹細胞培養用足場材料と、
　多糖類と、を含有する幹細胞培養用担体。 
（１０）（１）～（７）のいずれか１つに記載の幹細胞培養用足場材料を備える幹細胞培養用繊維。
（１１）（１）～（７）のいずれか１つに記載の幹細胞培養用足場材料を用いる幹細胞の培養方法。
　本発明によれば、適度な親水性と強度を備え、幹細胞の播種後の定着性が高い幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法が提供される。
図１Ａは実施の形態に係る幹細胞培養用容器の斜視概念図、図１Ｂはその側面断面概念図である。 図２は実施の形態に係る６ウェル型の幹細胞培養用容器の斜視概念図である。 図３は細胞播種後２４時間後の初期接着性の評価基準を示す図である。 図４Ａ及び図４Ｂのそれぞれは、実施例及び比較例に係る細胞の播種後２４時間後の位相差顕微鏡写真である。 図５は細胞播種後５日後の細胞増殖性の評価基準を示す図である。 図６Ａ及び図６Ｂのそれぞれは、実施例及び比較例に係る細胞の播種後５日後の位相差顕微鏡写真である。
　以下に、実施形態を挙げて本発明の説明を行うが、本発明は以下の実施形態に限定されるものではない。
［幹細胞培養用足場材料］
　本発明者らは鋭意検討した結果、窒素含有量が０．１％以上１０％以下である合成樹脂を用いることで、上述の課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。
　即ち、本発明は、合成樹脂を含有する幹細胞培養用足場材料であって、合成樹脂の窒素含有量が０．１％以上１０％以下である幹細胞培養用足場材料に関する。
　窒素含有量は０．３質量％以上８質量％以下がより好ましく、０．５質量％以上、５質量％以下がより好ましい。合成樹脂としては、ブレンステッド塩基性基を１モル％以上５０モル％以下含むことが好ましく、１モル％以上３０モル％以下含むことがより好ましい。
　得られた合成樹脂の元素組成はＸ線光電子分光法（装置：アルバック・ファイ社製、多機能走査型Ｘ線光電子分光分析装置（ＸＰＳ）、ＰＨＩ　５０００　ＶｅｒｓａＰｒｏｂｅ　ＩＩＩ）によって分析できる。検出された全元素の総量を１００％とし、全元素中における窒素の占有率（％）を窒素含有量とする。
　なお、本発明の幹細胞培養用足場材料には、合成樹脂のみからなる態様が含まれる。
　この幹細胞培養用足場材料は、適度な親水性と強度を備えるため、幹細胞の播種後の定着性が向上する。特にフィーダー細胞や接着タンパク質を含まない無血清培地培養において、幹細胞播種後の初期定着率が向上する。
　幹細胞培養用足場材料は、上述の要件を満たせば成分は特に制限されないが、合成樹脂を含有することが好ましい。
　合成樹脂は、重合性モノマー（以下、単に「モノマー」ともいう）を重合（重縮合も含む）して得られるポリマー（以下、単に「ポリマー」ともいう）を主成分とするものをいう。上記ポリマーは一種または二種以上の重合性モノマーのコポリマーも含む。
　上記ポリマーとしては、例えば、（不）飽和炭化水素、芳香族炭化水素、（不）飽和脂肪酸、芳香族カルボン酸、（不）飽和ケトン、芳香族ケトン、（不）飽和アルコール、芳香族アルコール、（不）飽和アミン、芳香族アミン、（不）飽和チオール、芳香族チオール、有機ケイ素化合物の１種以上の重合性モノマーからなるポリマーが挙げられる。
　具体的な上記ポリマーとしては、例えば、ポリオレフィン、ポリエーテル、ポリビニルアルコール、ポリビニルアセタール、ポリエステル、ポリ（メタ）アクリル酸エステル、エポキシ樹脂、ポリアミド、ポリイミド、ポリウレタン、ポリカーボネート、セルロース、ポリペプチド等が挙げられる。これらのなかでも、幹細胞の定着性の観点より、ポリ（メタ）アクリル酸エステル、ポリビニルアセタールが好ましく、ポリビニルアセタールがより好ましい。
　なお、これらのポリマーは、一種類で用いてもよいし、二種類以上組み合わせて用いてもよい。二種類以上のポリマーを組み合わせる場合は、二種類以上のポリマーを混合して用いてもよいし、二種類以上のポリマーの骨格を化学結合させたポリマーとして用いてもよい。したがって、合成樹脂として、複数のものを組み合わせる場合には、ポリ（メタ）アクリル酸エステルと、ポリビニルアセタールを組み合わせることが好ましい。
　本明細書における「（メタ）アクリル酸類」とは、（メタ）アクリル酸エステル及び（メタ）アクリル酸からなる群より選択される少なくとも１種をいう。またポリ（メタ）アクリル酸類は、そのモノマーである（メタ）アクリル酸エステル又は（メタ）アクリル酸を重合することによって得られる重合体であるが、（メタ）アクリル酸エステル又は（メタ）アクリル酸以外のモノマーを共重合したものも含む。
　上記（メタ）アクリル酸エステルとしては特に限定されないが、（メタ）アクリル酸アルキルエステル、（メタ）アクリル酸環状アルキルエステル、（メタ）アクリル酸アリールエステル、（メタ）アクリルアミド類、（メタ）アクリル酸ポリエチレングリコール類、（メタ）アクリル酸ホスホリルコリンより選択される少なくとも１種を含有することが好ましい。
　上記（メタ）アクリル酸アルキルエステルとしては、例えば、メチル（メタ）アクリレート、エチル（メタ）アクリレート、ｎ－プロピル（メタ）アクリレート、イソプロピル（メタ）アクリレート、ｎ－ブチル（メタ）アクリレート、イソブチル（メタ）アクリレート、ｔ－ブチル（メタ）アクリレート、ｎ－オクチル（メタ）アクリレート、イソオクチル（メタ）アクリレート、２－エチルヘキシル（メタ）アクリレート、ノニル（メタ）アクリレート、イソノニル（メタ）アクリレート、デシル（メタ）アクリレート、イソデシル（メタ）アクリレート、ラウリル（メタ）アクリレート、ステアリル（メタ）アクリレート、イソテトラデシル（メタ）アクリレートなどが挙げられる。
　なお、これらの（メタ）アクリル酸アルキルエステルは、特に制限はないが、炭素原子数１～３のアルコキシ基、テトラヒドロフルフリル基等の種々の置換基で置換されていてもよい。例としては、メトキシエチルアクリレート、テトラヒドロフルフリルアクリレート等が挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸環状アルキルエステルとしては、例えば、シクロヘキシル（メタ）アクリレート、イソボルニル（メタ）アクリレートなどが挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸アリールエステルとしては、例えば、フェニル（メタ）アクリレート、ベンジル（メタ）アクリレートなどが挙げられる。
　上記アクリルアミド類としては、例えば、（メタ）アクリルアミド、Ｎ－イソプロピル（メタ）アクリルアミド、Ｎ－ｔｅｒｔ－ブチル（メタ）アクリルアミド、Ｎ，Ｎ’－ジメチル（メタ）アクリルアミド、(３－（メタ）アクリルアミドプロピル)トリメチルアンモニウムクロリド、４－（メタ）アクリロイルモルホリン、３－（メタ）アクリロイル－２－オキサゾリジノン、 Ｎ－[３－(ジメチルアミノ)プロピル]（メタ）アクリルアミド、Ｎ－(２－ヒドロキシエチル)（メタ）アクリルアミド、Ｎ－メチロール（メタ）アクリルアミド、６－（メタ）アクリルアミドヘキサン酸などが挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸ポリエチレングリコール類としては、例えば、メトキシ-ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシ-ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、ヒドロキシ-ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、メトキシ-ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシ-ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、ヒドロキシ-ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、メトキシ-トリエチレングルコール（メタ）アクリレート、エトキシ-トリエチレングルコール（メタ）アクリレート、ヒドロキシ-トリエチレングルコール（メタ）アクリレートなどが挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸ホスホリルコリンとしては、例えば、２－（メタ）アクリロイルオキシエチルホスホリルコリンが挙げられる。
　（メタ）アクリル酸エステル以外のモノマーとしては、特に限定はなく、（メタ）アクリル酸、エチレン、ビニルエステル等が挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸エステルは単独で用いてもよく、２種以上を併用してもよい。なお、本明細書において、上記（メタ）アクリル酸とは、アクリル酸及びメタクリル酸を総称するものであり、上記（メタ）アクリレートとは、アクリレート及びメタクリレートを総称するものとする。
　合成樹脂のなかでも、ポリビニルアセタール樹脂を用いることが好ましい。以下、ポリビニルアセタール樹脂について説明する。
（ポリビニルアセタール樹脂）
　ポリビニルアセタール樹脂は、ポリビニルアルコールに対して、アルデヒドによりアセタール化することにより合成される樹脂であり、側鎖にアセチル基と水酸基、そしてアセタール基を有する。ポリビニルアセタール樹脂は、側鎖にその他の置換基（アセチル基、水酸基、アセタール基以外の置換基）を有する変性ポリビニルアセタール樹脂であってもよい。その他の置換基としては、後述するブレンステッド塩基性基を有する置換基が好ましい。
　上記アセタール化に用いられるアルデヒドとしては、炭素数１～１０の鎖状脂肪族基、環状脂肪族基又は芳香族基を有するアルデヒドが挙げられる。これらのアルデヒドとしては、従来公知のアルデヒドを使用できる。
　上記アルデヒドの種類は特に限定されないが、ホルムアルデヒド、アセトアルデヒド、プロピオンアルデヒド、ブチルアルデヒド、ペンタナール、ヘキサナール、ヘプタナール、オクタナール、ノナナール、デカナール、アクロレイン、ベンズアルデヒド、シンナムアルデヒド、ペリルアルデヒド、ホルミルピリジン、ホルミルイミダゾール、ホルミルピロール、ホルミルピペリジン、ホルミルピペリジン、ホルミルトリアゾール、ホルミルテトラゾール、ホルミルインドール、ホルミルイソインドール、ホルミルプリン、ホルミルプリン、ホルミルベンゾイミダゾール、ホルミルベンゾトリアゾール、ホルミルキノリン、ホルミルイソキノリン、ホルミルキノキサリン、ホルミルシンノリン、ホルミルプテリジン、ホルミルフラン、ホルミルオキソラン、ホルミルオキサン、ホルミルチオフェン、ホルミルチオラン、ホルミルチアン、ホルミルアデニン、ホルミルグアニン、ホルミルシトシン、ホルミルチミン、ホルミルウラシルなどが挙げられる。上記アルデヒドは鎖状であっても環状であっても良い。
　上記アルデヒドはホルムアルデヒド、アセトアルデヒド、プロピオンアルデヒド、ブチルアルデヒド、ペンタナールであることが好ましく、ブチルアルデヒドがさらに好ましい。
　上記アルデヒドの添加量としては、目的とするアセタール基量にあわせて適宜設定することができる。特に、ポリビニルアルコール１００モル％に対して、上記アルデヒドの添加量を６０～９５モル％、好ましくは６５～９０モル％とすると、アセタール化反応が効率よく行われ、未反応のアルデヒドも除去しやすいため好ましい。
　上記ポリビニルアルコールはビニル化合物との共重合体であっても良い。ビニル化合物としては、エチレン、ビニルアミン、アリルアミン、ビニルピロリドン、無水マレイン酸、マレイミド、イタコン酸、（メタ）アクリル酸類が挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸類のうち、（メタ）アクリル酸エステルとしては特に限定されないが、（メタ）アクリル酸アルキルエステル、（メタ）アクリル酸環状アルキルエステル、（メタ）アクリル酸アリールエステル、（メタ）アクリルアミド類、（メタ）アクリル酸ポリエチレングリコール類、（メタ）アクリル酸ホスホリルコリンより選択される少なくとも１種を含有することが好ましい。
　上記（メタ）アクリル酸アルキルエステルとしては、例えば、メチル（メタ）アクリレート、エチル（メタ）アクリレート、ｎ－プロピル（メタ）アクリレート、イソプロピル（メタ）アクリレート、ｎ－ブチル（メタ）アクリレート、イソブチル（メタ）アクリレート、ｔ－ブチル（メタ）アクリレート、ｎ－オクチル（メタ）アクリレート、イソオクチル（メタ）アクリレート、２－エチルヘキシル（メタ）アクリレート、ノニル（メタ）アクリレート、イソノニル（メタ）アクリレート、デシル（メタ）アクリレート、イソデシル（メタ）アクリレート、ラウリル（メタ）アクリレート、ステアリル（メタ）アクリレート、イソテトラデシル（メタ）アクリレートなどが挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸環状アルキルエステルとしては、例えば、シクロヘキシル（メタ）アクリレート、イソボルニル（メタ）アクリレートなどが挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸アリールエステルとしては、例えば、フェニル（メタ）アクリレート、ベンジル（メタ）アクリレートなどが挙げられる。
　上記アクリルアミド類としては、例えば、（メタ）アクリルアミド、Ｎ－イソプロピル（メタ）アクリルアミド、Ｎ－ｔｅｒｔ－ブチル（メタ）アクリルアミド、Ｎ，Ｎ’－ジメチル（メタ）アクリルアミド、(３－（メタ）アクリルアミドプロピル)トリメチルアンモニウムクロリド、４－（メタ）アクリロイルモルホリン、３－（メタ）アクリロイル－２－オキサゾリジノン、 Ｎ－[３－(ジメチルアミノ)プロピル]（メタ）アクリルアミド、Ｎ－(２－ヒドロキシエチル)（メタ）アクリルアミド、Ｎ－メチロール（メタ）アクリルアミド、６－（メタ）アクリルアミドヘキサン酸などが挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸ポリエチレングリコール類としては、例えば、メトキシ-ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシ-ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、ヒドロキシ-ポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、メトキシ-ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシ-ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、ヒドロキシ-ジエチレングリコール（メタ）アクリレート、メトキシ-トリエチレングルコール（メタ）アクリレート、エトキシ-トリエチレングルコール（メタ）アクリレート、ヒドロキシ-トリエチレングルコール（メタ）アクリレートなどが挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸ホスホリルコリンとしては、例えば、２－（メタ）アクリロイルオキシエチルホスホリルコリンが挙げられる。
　上記（メタ）アクリル酸類は単独で用いてもよく、２種以上を併用してもよい。なお、本明細書において、上記（メタ）アクリル酸とは、アクリル酸及びメタクリル酸を総称するものであり、上記（メタ）アクリレートとは、アクリレート及びメタクリレートを総称するものとする。
　上記アセタール化度が６０％を超えるように調整する方法は特に限定されないが、アセタール化反応の際に上記アルデヒドを過剰量添加することでアセタール化反応が十分に進行させることが可能である。
　本明細書において、合成樹脂は、その一部にブレンステッド塩基性基を有することが好ましい。合成樹脂の一部がブレンステッド塩基性基により変性されている場合、フィーダー細胞や接着タンパク質を含まない無血清培地培養において、幹細胞播種後の初期定着率が向上し、幹細胞の培養がし易くなるからである。
　上記ブレンステッド塩基性基は、水素イオンＨ＋を他の物質から受け取ることができる置換基の総称である。上記ブレンステッド塩基性基としては、例えば、アミン構造を有する置換基、イミン構造を有する置換基、アミド構造を有する置換基、イミド構造を有する置換基等のアミン系塩基性基が挙げられる。
　従って、このような合成樹脂としては、イミン構造を有する構成単位、アミン構造を有する構成単位、アミド構造を有する構成単位、及びイミド構造を有する構成単位からなる群から選択される少なくとも一種を構成単位として含む合成樹脂が好ましい。
　本発明において、上記イミン構造とは、Ｃ＝Ｎ結合を有する構造をいう。上記合成樹脂は、イミン構造を側鎖に有することが好ましい。また、上記イミン構造は、合成樹脂の主鎖を構成する炭素に直接結合してもよく、アルキレン基等の連結基を介して結合していてもよい。なお、上記イミン構造を側鎖に有するとは、上記イミン構造を合成樹脂のグラフト鎖に有することを含む。上記イミン構造を有する構成単位としては、例えば、下記式（１）に示す構成単位が挙げられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
 　式（１）中、Ｒ１は、単結合、又は、アルキレン基を表し、Ｒ２は、イミン構造を有する基を表す。
　上記式（１）中、Ｒ１がアルキレン基である場合、該アルキレン基の炭素数の好ましい下限は１、好ましい上限は１２である。上記アルキレン基の炭素数が１２を超えると、最適な強度が得られないことがある。上記Ｒ１がアルキレン基である場合、上記アルキレン基の炭素数のより好ましい上限は５である。
　上記式（１）中、Ｒ１がアルキレン基である場合、該アルキレン基としては、例えば、メチレン基、エチレン基、トリメチレン基、テトラメチレン基、ペンタメチレン基、ヘキサメチレン基、オクタメチレン基、デカメチレン基等の直鎖状アルキレン基、メチルメチレン基、メチルエチレン基、１－メチルペンチレン基、１，４－ジメチルブチレン基等の分岐状アルキレン基、シクロプロピレン基、シクロブチレン基、シクロヘキシレン基等の環状アルキレン基等が挙げられる。なかでも、メチレン基、エチレン基、トリメチレン基、
テトラメチレン基等の直鎖状アルキル基が好ましく、メチレン基、エチレン基がより好ましい。
　上記Ｒ２としては、下記式（２）に示す官能基が挙げられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
 　式（２）中、Ｒ３は水素原子又は炭素数１～１８の炭化水素基を表し、Ｒ４は炭素数１～１８の炭化水素基を表す。
　上記炭化水素基としては、飽和炭化水素基、不飽和炭化水素基、芳香族系炭化水素基等が挙げられる。なお、上記炭化水素基は、飽和炭化水素基、不飽和炭化水素基、芳香族系炭化水素基のいずれか一種のみからなるものであってもよく、これらが２種以上用いられたものであってもよい。
　上記飽和炭化水素基としては、例えば、メチル基、エチル基、ｎ－プロピル基、イソプロピル基、ｎ－ブチル基、ｉｓｏ－ブチル基、ｓｅｃ－ブチル基、ｔｅｒｔ－ブチル基、ペンチル基、へキシル基、へプチル基、２－エチルヘキシル基、オクチル基、ノニル基、デシル基、ウンデシル基、ドデシル基、トリデシル基、テトラデシル基、ペンタデシル基、オクタデシル基等が挙げられる。なかでも、メチル基、エチル基、ｎ－プロピル基、ｎ－ブチル基が好ましい。
　上記芳香族系炭化水素基としては、例えば、フェニル基、トルイル基、キシリル基、ｔ－ブチルフェニル基、ベンジル基等が挙げられる。
　上記合成樹脂において、上記イミン構造を有する構成単位中、Ｒ１が単結合、Ｒ３が水素原子、メチル基又はエチル基、Ｒ４がメチル基、エチル基又はプロピル基であることが好ましい。
　上記合成樹脂は、イミン構造を有する構成単位の含有量の好ましい下限が０．１モル％、好ましい上限が２０．０モル％である。上記イミン構造を有する構成単位の含有量が０．１モル％以上であると、経時粘度安定性が良好なものとなる。上記イミン構造を有する構成単位の含有量が２０．０モル％以下であると、幹細胞の定着性を高めることができる。上記イミン構造を有する構成単位の含有量のより好ましい下限は１．０モル％、より好ましい上限は１５．０モル％である。
　上記合成樹脂において、合成樹脂として変性ポリビニルアセタール樹脂を用いる場合、イミン構造を有する構成単位の含有量と、後述するアセタール化度の比率（イミン構造を有する構成単位の含有量／アセタール化度）は、０．００１～０．５が好ましい。上記範囲内とすることで、高い強度及び優れた接着性を両立して、接着後の耐久性を向上させることが可能となる。
　上記合成樹脂は、アミン構造を有する構成単位又はアミド構造を有する構成単位を有することが好ましい。
　上記合成樹脂は、上記アミン構造又はアミド構造を側鎖に有することが好ましい。また、上記アミン構造又はアミド構造は、合成樹脂の主鎖を構成する炭素に直接結合してもよく、アルキレン基等の連結基を介して結合していてもよい。更に、上記アミン構造は第一級アミンでもよく、第二級アミンでもよく、第三級アミンでもよく、第四級アミンでもよい。これらのなかでも、細胞定着性の観点より、第一級アミンが好ましい。
　なお、上記アミン構造又はアミド構造を側鎖に有するとは、上記アミン構造又はアミド構造を合成樹脂のグラフト鎖に有することを意味する。
　特に、上記アミン構造は、－ＮＨ２であることが好ましい。なお、本発明において、アミド構造とは、－Ｃ（＝Ｏ）－ＮＨ－を有する構造をいう。なかでも、上記アミン構造を有する構成単位は、下記式（３）に示す構造であることが好ましい。また、上記アミド構造を有する構成単位は、下記式（４）に示す構造であることが好ましい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
 　式（４）中、Ｒ５は水素原子又は炭素数１～１０の炭化水素基を表す。なお、上記炭化水素基としては、アルキル基、アルケニル基、シクロアルキル基、シクロアルケニル基が挙げられる。
　上記アミン構造又はアミド構造を有する構成単位の含有量の好ましい下限は０．１モル％、好ましい上限は２０モル％である。上記アミン構造又はアミド構造を有する構成単位の含有量が０．１モル％以上であると、付加特性を充分なものとすることができる。上記含有量が２０モル％以下であると、溶解性が上がりすぎることがなく、沈殿法による変性ポリビニルアセタール樹脂粉末の取り出しが容易となる。上記含有量のより好ましい下限は０．５モル％、より好ましい上限は１０モル％である。なお、上記アミン構造又はアミド構造を有する構成単位の含有量はＮＭＲ等で測定可能である。また、上記アミン構造又はアミド構造を有する構成単位と、イミン構造を有する構成単位とを合計した含有量の好ましい下限は０．１モル％、好ましい上限は２０モル％である。上記含有量のより好ましい下限は０．５モル％、より好ましい上限は１０モル％である。
　上記合成樹脂において、イミン構造とアミン構造又はアミド構造の双方を有する場合、イミン構造を有する構成単位と、アミン構造又はアミド構造を有する構成単位との含有量の比率（イミン構造を有する構成単位／アミノ基又はアミド構造を有する構成単位）は、０．５／９９．５～９９．５／０．５であることが好ましい。上記比率が０．５／９９．５以上であると、経時粘度安定性を充分なものとすることができ、上記比率が９９．５／０．５以下であると、幹細胞の定着性の観点より架橋性能を充分に発揮することができる。上記比率のより好ましい下限は５／９５、より好ましい上限は７５／２５である。
　上記合成樹脂としてポリビニルアセタール樹脂を用いる場合、ポリビニルアセタール樹脂のアセタール化度は特に限定されないが、好ましい下限が６０モル％、好ましい上限は９０モル％である。アセタール化度が６０モル％以上であると、幹細胞の定着性に優れ、高効率に細胞増殖を行うことができる。また、アセタール化度が９０モル％以下であると、溶剤への溶解性を良好なものとすることができる。より好ましい下限が６５モル％、より好ましい上限が８５モル％である。上記合成樹脂のアセタール度はＮＭＲ等で測定可能である。
　上記合成樹脂としてポリビニルアセタール樹脂を用いる場合のポリビニルアセタール樹脂のアセチル基量は特に限定されず、好ましい下限が０．０００１モル％、好ましい上限が５モル％である。
　上記合成樹脂は、アミン構造を有する構成単位、イミン構造を有する構成単位およびアミド構造を有する構成単位からなる群より選択される少なくとも１つを備えることが好ましい。
　上記合成樹脂は、イミン構造を有する構成単位およびアミン構造を有する構成単位の両方を備えることが好ましい。
　上記変性ポリビニルアセタール樹脂を作製する方法としては、例えば、上記イミン構造を有する単量体と、酢酸ビニルとを共重合させることによって得られたポリ酢酸ビニルをケン化し得られたポリビニルアルコールを、従来公知の方法によりアセタール化する方法が挙げられる。また、アミノ基又はアミド構造を有する構成単位を有するポリビニルアルコールを、従来公知の方法によりアセタール化することでイミン構造を導入する方法を用いてもよい。アミノ基又はアミド構造を有する構成単位を有するポリビニルアルコールを後変性して得られたイミン構造を有する変性ポリビニルアルコールを、従来公知の方法によりアセタール化する方法を用いてもよい。更に、未変性のポリビニルアセタール樹脂を後変性させることでイミン構造を導入してもよい。すなわち、上記変性ポリビニルアセタール樹脂は、アミノ基又はアミド構造を有する構成単位を有するポリビニルアルコールのアセタール化物であってもよい。これらのなかでは、アミノ基又はアミド構造を有する構成単位を有するポリビニルアルコールをアセタール化してなることでイミン構造を有する変性ポリビニルアセタール樹脂を得る方法が好ましい。特に、このような方法を用いる場合、アセタール化に使用するアルデヒド、酸触媒の量を過剰に添加することでイミン構造を得ることが出来る。
　上記アルデヒドを過剰に添加する方法では、アミノ基又はアミド構造を有する構成単位を有するポリビニルアルコール１００重量部に対して、アルデヒドを７０～１５０重量部添加することが好ましい。特に、アルデヒドとしては、アセトアルデヒド、プロピオンアルデヒド、ｎ－ブチルアルデヒド、イソブチルアルデヒド、ｎ－バレルアルデヒド、フェニルアルデヒドが好ましい。
　上記酸触媒を過剰に添加する方法では、酸触媒を全体の０．５重量％以上添加することが好ましい。また、アミノ基又はアミド構造を有する構成単位を有するポリビニルアルコール１００重量部に対して、酸触媒を５．０～７０．０重量部添加することが好ましい。特に、酸触媒としては、塩酸、硝酸、硫酸、パラトルエンスルホン酸が好ましい。
　上記アセタール化は、公知の方法を用いることができ、水溶媒中、水と水との相溶性のある有機溶媒との混合溶媒中、あるいは有機溶媒中で行うことが好ましい。上記水との相溶性のある有機溶媒としては、例えば、アルコール系有機溶剤を用いることができる。上記有機溶媒としては、例えば、アルコール系有機溶剤、芳香族有機溶剤、脂肪族エステル系溶剤、ケトン系溶剤、低級パラフィン系溶剤、エーテル系溶剤、アミン系溶剤等が挙げられる。上記アルコール系有機溶剤としては、例えば、メタノール、エタノール、ｎ－プロパノール、イソプロパノール、ｎ－ブタノール、ｔｅｒｔ－ブタノール等が挙げられる。上記芳香族有機溶剤としては、例えば、キシレン、トルエン、エチルベンゼン、安息香酸メチル等が挙げられる。
　上記脂肪族エステル系溶剤としては、例えば、酢酸メチル、酢酸エチル、酢酸ブチル、プロピオン酸メチル、プロピオン酸エチル、酪酸メチル、酪酸エチル、アセト酢酸メチル、アセト酢酸エチル等が挙げられる。
　上記ケトン系溶剤としては、例えば、アセトン、メチルエチルケトン、メチルイソブチルケトン、シクロヘキサノン、メチルシクロヘキサノン、ベンゾフェノン、アセトフェノン等が挙げられる。上記低級パラフィン系溶剤としては、ヘキサン、ペンタン、オクタン、シクロヘキサン、デカン等が挙げられる。上記エーテル系溶剤としては、ジエチルエーテル、テトラヒドロフラン、エチレングリコールジメチルエーテル、エチレングリコールジエチルエーテル、プロピレングリコールジエチルエーテル等が挙げられる。上記アミド系溶剤としては、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ－ジメチルテセトアミド、Ｎ－メチルピロリドン、アセトアニリド等が挙げられる。
上記アミン系溶剤としては、アンモニア、トリメチルアミン、トリエチルアミン、ｎ－ブチルアミン、ジｎ－ブチルアミン、トリｎ－ブチルアミン、アニリン、Ｎ－メチルアニリン、Ｎ，Ｎ－ジメチルアニリン、ピリジン等が挙げられる。
　これらは、単体で用いることもできるし、２種以上の溶媒を混合で用いることもできる。これらのなかでも、樹脂に対する溶解性及び精製時の簡易性の観点から、エタノール、ｎ－プロパノール、イソプロパノール、テトラヒドロフランが特に好ましい。
　上記アセタール化は、酸触媒の存在下において行うことが好ましい。上記酸触媒は特に限定されず、硫酸、塩酸、硝酸、リン酸等の鉱酸や、ギ酸、酢酸、プロピオン酸等のカルボン酸や、メタンスルホン酸、エタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、パラトルエンスルホン酸等のスルホン酸が挙げられる。これらの酸触媒は、単独で用いられてもよく、２種以上の化合物を併用してもよい。なかでも、塩酸、硝酸、硫酸が好ましく、塩酸が特に好ましい。
　上記ポリビニルアセタール樹脂は上記ビニル化合物とのグラフト共重合体であっても良い。ビニル化合物としては、エチレン、アリルアミン、ビニルピロリドン、無水マレイン酸、マレイミド、イタコン酸、（メタ）アクリル酸類が挙げられる。
　上記グラフト共重合体は「ポリビニルアセタールからなるユニット」と「ビニル化合物からなるユニット」とを有するグラフト共重合体（以下、単に「グラフト共重合体」ともいう）を含有する。ビニル化合物とは、エテニル基（Ｈ２Ｃ＝ＣＨ－）を有する構成単位を有する化合物をいう。
　本発明において、「ポリビニルアセタールからなるユニット」及び「ビニル化合物からなるユニット」とは、グラフト共重合体中に存在している「ポリビニルアセタール」、「ビニル化合物からなるユニット」のことをいう。また、ポリビニルアセタールからなるユニット及びビニル化合物からなるユニットからなるユニットを有するグラフト共重合体は、主鎖を構成する「ポリビニルアセタールからなるユニット」又は「ビニル化合物からなるユニット」に、該主鎖とは異なる側鎖を構成する「ポリビニルアセタールからなるユニット」又は「ビニル化合物からなるユニット」が結合した分岐状の共重合体のことをいう。
　上記グラフト共重合体の分子量としては特に制限は無いが、数平均分子量（Ｍｎ）が１００００～６０００００で、重量平均分子量（Ｍｗ）が２００００～１２０００００で、これらの比（Ｍｗ／Ｍｎ）が２．０～４０であることが好ましい。Ｍｎ、Ｍｗ、Ｍｗ／Ｍｎがこのような範囲であると、上記幹細胞足場材料の強度が好適に保たれる。
　上記グラフト共重合体におけるアセタール化度は、上記キシレンにおける可溶分を重水素化ジメチルスルホキシドに溶解し、１Ｈ-ＮＭＲ測定によりアセタール化度を測定する方法等が挙げられる。
　ポリビニルアセタール樹脂は、イミン構造を有する構成単位、アミン構造を有する構成単位、及びアミド構造を有する構成単位からなる群から選択される少なくとも一種の構成単位を、０．１～３０モル％含むことが好ましい。播種直後の細胞接着性の観点から１～１０モル％含むことがより好ましい。
なお、アミン構造を有する構成単位、アミド構造を有する構成単位、イミン構造を有する構成単位の含有量を確認する方法としては、例えば、１Ｈ―ＮＭＲで確認する方法等が挙げられる。
　ここで、本明細書で用いられる用語の説明を行う。
　「幹細胞」とは、自己複製能と分化能を有する細胞をいう。幹細胞のうち、自己複製能を有し、かつ、１つの細胞から、内胚葉、中胚葉、外胚葉の全ての細胞へ分化できるものを「多能性幹細胞」という。
　多能性幹細胞としては、例えば、人工多能性幹細胞（induced pluripotent stem cell、以下「ｉＰＳ細胞」という。）、胚性幹細胞（embryonic stem cells、以下「ＥＳ細胞」という。）、Ｍｕｓｅ細胞（multilinege differentiating stress enduring cells）、胚性がん細胞（embryonic germ cell）、胚性生殖幹細胞（embryonic germ cell）、ｍＧＳ細胞（multipotent germ stem cell）等が挙げられる。
　幹細胞のうち、自己複製能を有し、外胚葉系組織、内胚葉系組織、中胚葉系組織、生殖系組織のいずれかに属し、それが属している臓器の構成細胞種への限られた分化能を示すものを「組織幹細胞」および「組織前駆細胞」という。
　組織幹細胞および組織前駆細胞としては、例えば、神経幹細胞、神経堤幹細胞、網膜幹細胞、角膜幹細胞、ケラチノサイト表皮幹細胞、メラノサイト幹細胞、乳腺幹細胞、肝幹細胞、腸幹細胞、気道幹細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞、心臓幹細胞、血管内皮前駆細胞、血管周皮細胞、骨格筋幹細胞、脂肪幹細胞、腎前駆細胞、精子幹細胞等が挙げられる。
　本発明の幹細胞足場材料を使用することで、上記幹細胞種は特に問わないが、幹細胞足場材料として使用することができる。なかでも、多能性幹細胞、特にｉＰＳ細胞の培養に用いられることが好ましい。フィーダー細胞や接着タンパク質を含まない無血清培地培養において、幹細胞播種後の初期定着率が向上し、幹細胞の培養を好適に行うことができる。
　この様な幹細胞としては、例えば「もっとよくわかる！幹細胞と再生医療」（羊土社、長船健二著）に記載の幹細胞を挙げることができる。
　合成樹脂として、ポリビニルアセタール樹脂を用いる場合のポリビニルアセタール樹脂の重合度の下限は、１００が好ましく、２００がより好ましく、５００がさらに好ましく、１５００がさらにより好ましい。重合度が上記範囲であると、細胞培養にしようする培地で膨潤しても足場材強度を好適に保つことが出来ることから、細胞増殖性が向上する。重合度の上限は６０００が好ましく、３０００がより好ましく、２５００がさらに好ましい。重合度が上記範囲であると、取り扱い性が良く、足場材を好適に成形出来る。
［幹細胞の培養方法］
　上述の幹細胞培養用足場材料によれば、様々な幹細胞を培養することができるが、その特性を考慮すると、幹細胞のなかでも多能性幹細胞の培養に用いることが好ましい。一般的に、多能性幹細胞は播種後の培養の定着率が低いとされているが、上述の幹細胞培養用足場材料は、培養培地の水分によって膨潤し難く、適度な親水性と強度を維持できるので、多能性幹細胞の播種後の定着率が向上するからである。
［幹細胞培養用容器］
　本発明は上述の幹細胞培養用足場材料を用いた幹細胞培養用容器にも関する。即ち、幹細胞培養用容器であって、幹細胞培養用容器は、幹細胞の培養領域の少なくとも一部に、上述の幹細胞足場材料からなる樹脂膜を備える幹細胞培養用容器に関する。
　図１Ａは実施の形態に係る幹細胞培養用容器の斜視概念図、図１Ｂはその側面断面概念図である。幹細胞培養用容器の形状は特に制限されないが、例えば図１Ａに示すような有底円柱状のシャーレ１を用意し、その底面の幹細胞の培養領域に、図１Ｂに示すように樹脂膜１２を設ける態様が挙げられる。
　幹細胞培養用足場材料は、幹細胞の培養において、平面培養（二次元培養方法）に用いることの他に、生体内により近い状態、例えば多孔質膜やハイドロゲルなどの基材上での幹細胞の培養（三次元培養方法）に用いることができる。細胞培養用足場材料をバイオリアクター等に用いることにより、効率良く幹細胞を増殖させることができるからである。
　細胞培養用足場材料は、適度な親水性と強度を備えることから、二次元培養方法に用いられることが好ましい。
　平面培養（二次元培養方法）用容器としては、形状や大きさは特に限定されないが、１つまたは複数のウェル（穴）を備える細胞培養用テストプレートや、細胞培養用フラスコが挙げられる。例えば、図２に示すような６つのウェルを有する幹細胞培養用容器を用いることができる。上記マイクロプレートのウェルの数は限定されず、例えば、２、４、６、１２、２４、４８、９６、３８４等が挙げられる。
　上記ウェルの形状は特に限定されないが、真円、楕円、三角形、正方形、長方形、五角形等が挙げられる。上記ウェル底面の形状は特に限定されないが、平底、丸底、凹凸等が挙げられる。
　１つまたは複数のウェル（穴）を備える細胞培養用テストプレートや、細胞培養用フラスコの材質は特に限定されないが、高分子樹脂や金属、無機材料が挙げられる。上記高分子樹脂としては、ポリスチレン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリカーボネート、ポリエステル、ポリイソプレン、シクロオレフィンポリマー、ポリイミド、ポリアミド、ポリアミドイミド、（メタ）アクリル樹脂、エポキシ樹脂、シリコーン等が挙げられる。金属としては、ステンレス、銅、鉄、ニッケル、アルミ、チタン、金、銀、白金等が挙げられる。無機材料としては、酸化ケイ素（ガラス）、酸化アルミ、酸化チタン、酸化ジルコニウム、酸化鉄、窒化ケイ素等が挙げられる。
　上述の他にも、細胞培養用足場材料は、幹細胞を培地中で自由に浮遊させて成長させる浮遊培養方法に用いることができる。
［多能性幹細胞の培養方法］
　多能性幹細胞の培養方法においては、合成樹脂を含有する幹細胞培養用足場材料上に細胞塊を播種することが好ましい。
　細胞塊は、コンフルエントになった培養容器に細胞剥離剤を添加し、ピペッティングにより均一に破砕処理することで得ることが出来る。細胞剥離剤としては、特に限定されないが、エチレンジアミン／リン酸緩衝溶液が好ましい。細胞塊の大きさは５０～２００μｍであることが好ましい。
［その他の実施の形態］
　本発明は、上述の幹細胞培養用足場材料の他にも、その他の実施の形態として、幹細胞培養用足場材料を用いた発明が提供される。
　例えば、上述の幹細胞培養用足場材料と、多糖類と、を含有する幹細胞培養用担体（媒体）が提供される。多糖類としては、特に制限なく様々な多糖類を用いることができる。なかでも水溶性多糖類が好ましい。
　その他にも、幹細胞培養用足場材料を備える幹細胞培養用繊維が提供される。この場合、幹細胞培養用足場材料は、繊維上に塗布されていることが好ましい。また幹細胞培養用足場材料は、繊維中に含漬されたり、練り込まれている形態であってもよい。幹細胞培養用繊維は、フラスコなどの平面構造には接着しにくいが、線維（fibril）状構造などの立体構造には接着しやすい幹細胞の三次元培養方法に適している。幹細胞のなかでも、特に脂肪幹細胞の培養に適している。
　上記幹細胞培養用足場材料は架橋されていても良い。架橋されることで水膨潤性を抑制し、好適に強度を上げることができるからである。幹細胞培養用足場材料に更に架橋剤を加えて架橋させてもよい。
　架橋剤としては特に限定されないが、ポリアルコールやポリカルボン酸、ヒドロキシカルボン酸、金属石鹸、多糖類等が挙げられる。
　ポリアルコールとしては特に限定されないが、エチレングリコール、プロピレングリコール、ブタンジオール、ペンタンジオール、ヘキサンジオール、ヘプタンジオール、オクタンジオール、ノナンジオール、デカンジオール、ドデカンジオール、ウンデカンジオール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、テトラエチレングリコール、ポリエチレングリコール、カテコール、ピロガロール、ジボロン酸、メチレンジボロン酸、エチレンジボロン酸、プロピレンジボロン酸、フェニレンジボロン酸、ビフェニルジボロン酸、ビスフェノール誘導体等が挙げられる。
　ポリカルボン酸としては特に限定されないが、シュウ酸、マロン酸、コハク酸、グルタル酸、アジピン酸、ピメリン酸、スベリン酸、アゼライン酸、セバシン酸、フタル酸、ポリ（メタ）アクリル酸等が挙げられる。
　ヒドロキシカルボン酸としては特に限定されないが、グリコール酸、乳酸、タルトロン酸、グリセリン酸、ヒドロキシ酪酸、リンゴ酸、酒石酸、シトマル酸、クエン酸、イソクエン酸、ロイシン酸、メバロン酸、パントイン酸、リシノール酸、リシネライジン酸、セレブロン酸、キナ酸、シキミ酸、ヒドロキシ安息香酸、サリチル酸、クレオソート酸、バニリン酸、シリング酸、ピロカテク酸、レソルシル酸、プロトカテク酸、ゲンチジン酸、オルセリン酸、没食子酸、マンデル酸、ベンジル酸、アトロラクチン酸、メリロト酸、フロレト酸、クマル酸、ウンベル酸、コーヒー酸、フェルラ酸、シナピン酸、ヒドロキシステアリン酸等が挙げられる。
　金属石鹸としては特に限定されないが、ステアリン酸、ラウリン酸、リシノール酸、オクチル酸などの脂肪酸と、リチウム、ナトリウム、マグネシウム、カルシウム、バリウム、亜鉛、アルミニウムなどの金属の塩が挙げられる。
多糖類としては特に限定されないが、ペクチン、グアーガム、キサンタンガム、タマリンドガム、カラギーナン、プロピレングリコール、カルボキシメチルセルロース、アミロース、アミロペクチン、グリコーゲン、セルロース、キチン、アガロース、カラギーナン、ヘパリン、ヒアルロン酸、キシログルカン、グルコマンナン酸等が挙げられる。
　以下に、実施例及び比較例を挙げて本発明を説明するが本発明は以下の実施例に限定解釈されることはない。なお、得られた合成樹脂における、アミン構造を有する構成単位の含有量（モル％）、イミン構造を有する構成単位の含有量（モル％）、アミド構造を有する構成単位の含有量（モル）、アセタール化度（モル％）、アセチル基量（モル％）、水酸基量（モル％）は、合成樹脂をＤＭＳＯ－ｄ６（ジメチルスルホキサイド）に溶解し、１Ｈ－ＮＭＲ（核磁気共鳴スペクトル）を用いて測定した。
［実施例１］
（ポリビニルブチラールの調製）
　攪拌装置を備えた反応機に、イオン交換水２７００ｍＬ、上記式（３）に示すアミノ基を有する構成単位を２モル％含有するポリビニルアルコール（平均重合度２５０、鹸化度９７モル％）を３００ｇ投入し、攪拌しながら加熱溶解し、溶液を得た。次に、この溶液に触媒として３５質量％塩酸を、塩酸濃度が０．２質量％となるように添加し、温度を１５℃に調整した後、攪拌しながらｎ－ブチルアルデヒド(ｎ-ＢＡ)２２ｇを添加した。その後、ｎ-ブチルアルデヒド(ｎ-ＢＡ)１４８ｇを添加したところ、白色粒子状のポリビニルブチラールが析出した。析出してから１５分後に、３５質量％塩酸を、塩酸濃度が１．８質量％になるように添加し、５５０℃に加熱した後、５０℃で２時間熟成させた。次いで、溶液を冷却し、中和した後、ポリビニルブチラールを水洗し、乾燥させることにより、ポリビニルブチラールを得た。
　得られたポリビニルブチラールは、平均重合度２５０、水酸基量２０モル％、アセチル基量１モル％、アセタール化度７７モル％であった。
　得られた樹脂の元素組成をＸ線光電子分光法（装置：アルバック・ファイ社製、多機能走査型Ｘ線光電子分光分析装置（ＸＰＳ）、ＰＨＩ　５０００　ＶｅｒｓａＰｒｏｂｅ　ＩＩＩ）によって分析し、検出された全元素の総量を１００％とし、全元素中における窒素の占有率（％）を窒素含有量とした。
（細胞培養用容器の調製）
　得られたポリビニルブチラール１ｇをブタノール１９ｇに溶解させることで、ポリビニルブチラール溶液を得た。得られたポリビニルブチラール溶液１５０μＬをφ２２ｍｍのカバーガラス（松浪社製、２２丸Ｎｏ．１をエアダスターで除塵して使用）上に吐出し、スピンコーターを用いて２０００ｒｐｍ、２０秒回転させて平滑な樹脂膜を得た。得られた上記樹脂膜をカバーガラスごとφ２２ｍｍのポリスチレンディッシュに配置することにより細胞培養用容器を得た。
　以下の条件において樹脂膜を備える細胞培養用容器について試験を行った。
（細胞培養試験の方法）
　得られた細胞培養用容器にリン酸緩衝生理食塩水１ｍＬを加えて３７℃のインキュベーター内で１時間静置した。ディッシュ内のリン酸緩衝生理食塩水を除いた後、ｈ－ｉＰＳ細胞２５３Ｇ１を１．５×１０４を播種し、培地ＴｅＳＲ Ｅ８（ＳＴＥＭ　ＣＥＬＬ社製）１ｍＬおよび、ＲＯＣＫ－Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ（Ｙ２７６３２）１０μＭ存在下、３７℃、ＣＯ２濃度５％のインキュベーター内で培養を行った。２４時間毎に培地を７５０μＬ除き、新たなＴｅＳＲ Ｅ８ ２５０μＬを加え、ＲＯＣＫ－Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ（Ｙ２７６３２）１０μＭに調整することで培地交換を行った。
（細胞塊培養試験の方法）
　得られた細胞培養用容器にリン酸緩衝生理食塩水１ｍＬを加えて３７℃のインキュベーター内で１時間静置後、培養容器内のリン酸緩衝生理食塩水を除いた。３５ｍｍディッシュにコンフルエント状態になったｈ－ｉＰＳ細胞２５２Ｇ１のコロニーを加え、次に１ｍＬの０．５ｍＭエチレンジアミン／リン酸緩衝溶液を加え、室温で２分静置した。その後、エチレンジアミン/リン酸緩衝溶液を除き、１ｍＬのＴｅＳＲＥ８培地でピペッティングにより５０～２００μｍに砕かれた細胞塊を１．０×１０５を培養容器に播種し、培地ＴｅＳＲ Ｅ８（ＳＴＥＭ　ＣＥＬＬ社製）１ｍＬおよび、ＲＯＣＫ－Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ（Ｙ２７６３２）１０μＭ存在下、３７℃、ＣＯ２濃度５％のインキュベーター内で培養を行った。２４時間毎に培地を７５０μＬ除き、新たなＴｅＳＲ Ｅ８を２５０μＬ加えることで培地交換を行った。
（培養評価の方法）
（１）初期接着性
　細胞培養試験において、細胞播種後２４時間後の細胞像を位相差顕微鏡１０×１０倍の位相差顕微鏡（オリンパス社製、ＩＸ７３）を用いて取得した。その際、培養容器内の最も平均的な接着形態を示す視野の画像の取得を行った。得られた画像を図３の見本１～見本１０と照らし合わせて、接着細胞数と接着細胞形態を加味して初期接着性の評価を行った。なお、図３において、見本１から見本８に向かうほど細胞が増加していることが示されている。また見本８から見本１０に向かうほど、細胞の仮足が伸長し、より良好な接着状態にあることが示されている。得られた実施例及び比較例の結果を図４Ａ、図４Ｂにまとめて示す。
（２）細胞増殖性
　細胞培養試験において、細胞播種後５日経過後の細胞像を位相差顕微鏡１０×４倍の位相差顕微鏡（オリンパス社製、ＩＸ７３）を用いて取得した。その際、培養容器内の最も平均的な接着形態を示す視野の画像の取得を行った。得られた画像を図５の見本１～見本１０と照らし合わせることで細胞増殖性の評価を行った。図５において、細胞増殖によりコロニーが成長するほど高評価とした。なお、コロニーは横方向（画面の縦横方向）に成長し過ぎると縦方向（画面の手前側方向）に積み重なり始めるため、光の透過性が低くなる傾向がある。得られた実施例及び比較例の結果を図６Ａ、図６Ｂにまとめて示す。
（３）接着維持性
　細胞塊培養試験において、細胞塊の接着維持可能時間を以下の基準に従って評価した。
　０：培地交換後３０分未満で全ての細胞が剥離した。
　１：培地交換後３０分以上接着維持したが、１時間未満で全ての細胞が剥離した。
　２：培地交換後１時間以上接着維持したが、２４時間未満で全ての細胞が剥離した。
　３：培地交換後２４時間以上接着維持した。
　得られた細胞塊はアルカリフォスファターゼ（ＡＬＰ）染色試験により未分化性が保たれていることを確認した。
［実施例２］
　上記式（３）に示すアミノ基を有する構成単位を２モル％含有するポリビニルアルコール（平均重合度２５０、鹸化度９７モル％）に代えて、平均重合度１６００、鹸化度９７モル％、上記式（３）に示すアミノ基を有する構成単位を２モル％含有するポリビニルアルコールを使用したこと以外は、実施例１と同様にして試験を行った。
［実施例３］
　上記式（３）に示すアミノ基を有する構成単位を２モル％含有するポリビニルアルコール（平均重合度２５０、鹸化度９７モル％）に代えて、平均重合度２５０、鹸化度９７モル％のポリビニルアルコールを使用すること以外は実施例１と同様にしてポリビニルアセタールを得た。得られた重合度約２５０のポリビニルアセタール１００重量部、および、Ｎ－ビニルピロリドン１重量部を５００重量部のテトラヒドロフランに溶解させて樹脂溶液を得た。得られた樹脂溶液にＩｒｇａｃｕｒｅ１８４（ＢＡＳＦ社製）０．０５重量部を溶解させ、ＰＥＴフィルム上に塗布した。塗布物を２５℃にてアイグラフィックス社製、ＵＶコンベア装置「ＥＣＳ３０１Ｇ１」を用い、３６５ｎｍの波長の光を積算光量２０００ｍＪ／ｃｍ２で照射することで複合樹脂溶液を得た。得られた複合樹脂溶液を８０℃、３時間真空乾燥させることで複合樹脂を得た。得られた樹脂について、カラムとしてＷａｔｅｒｓ社製「２６９０　Ｓｅｐａｒａｔｉｏｎｓ　Ｍｏｄｅｌ」を用いて、ＧＰＣ法によってポリスチレン換算による重量平均分子量を測定したところ、約４万であった。得られた複合樹脂を３重量％ブタノール溶液に調整し、実施例１同様にして試験を行った。
［実施例４］
　ポリビニルアセタール１００重量部に対してＮ－ビニルピロリドン１０重量部を添加したこと以外は、実施例３と同様にして試験を行った。得られた樹脂の重量平均分子量は約６万であった。
［実施例５］
　ポリビニルアセタール１００重量部に対してＮ－ビニルピロリドン３０重量部を添加したこと以外は、実施例３と同様にして試験を行った。得られた樹脂の重量平均分子量は約５万であった。
［実施例６］
　ポリビニルアセタール１００重量部に対してＮ－イソプロピルアクリルアミド２重量部を添加したこと以外は、実施例３と同様にして試験を行った。得られた樹脂の重量平均分子量は約６万であった。
［実施例７］
　ポリビニルアセタール１００重量部に対してポリアミド２重量部を添加したこと以外は、実施例３と同様にして試験を行った。得られた樹脂の重量平均分子量は約６万であった。
［実施例８］
　ポリビニルアセタール１００重量部に対してポリ－Ｌ－リジン２重量部を添加したこと以外は、実施例３と同様にして試験を行った。得られた樹脂の重量平均分子量は約５万であった。
［実施例９］
　Ｎ－ビニルピロリドン５重量部、および、ブチルメタクリレート１５重量部、エチルアクリレート３０重量部、メチルメタクリレート５０重量部をテトラヒドロフラン３００重量部に溶解させてアクリルモノマー溶液を得た。得られたアクリルモノマー溶液にＩｒｇａｃｕｒｅ１８４（ＢＡＳＦ社製）２重量部を溶解させ、ＰＥＴフィル上に塗布した。塗布物を２５℃にてアイグラフィックス社製、ＵＶコンベア装置「ＥＣＳ３０１Ｇ１」を用い、３６５ｎｍの波長の光を積算光量２０００ｍＪ／ｃｍ２で照射することでアクリル樹脂溶液を得た。得られたアクリル樹脂溶液を８０℃、３時間真空乾燥させることでアクリル樹脂を得た。得られたアクリル樹脂を３重量％ブタノール溶液に調整し、実施例１と同様にして試験を行った。得られた樹脂の重量平均分子量は約９万であった。
［比較例１］
　足場材樹脂を用いず、ポリスチレンディッシュのみで実施例１と同様にて試験を行った。
［比較例２］
　ｎ-ブチルアルデヒドの添加量を実施例１の２２ｇ、および１４８ｇに代えて２２ｇ、および、８８ｇとしたこと以外は実施例１と同様にして試験を行った。
［比較例３］
　合成樹脂として平均重合度１０００、鹸化度９８モル％のポリビニルアルコールを使用したこと以外は、実施例１と同様にして試験を行った。
［比較例４］
　Ｎ－イソプロピルアクリルアミド１００重量部、酢酸エチル７５重量部、アゾビスイソブチロニトリル０．５重量部を混合し、窒素雰囲気下、６５℃で８時間重合を行うことでポリアクリルアミド樹脂を得た。得られた樹脂について、カラムとしてＷａｔｅｒｓ社製「２６９０　Ｓｅｐａｒａｔｉｏｎｓ　Ｍｏｄｅｌ」を用いて、ＧＰＣ法によってポリスチレン換算による重量平均分子量を測定したところ、約９万（重合度約８００）であった。合成樹脂として、得られたポリアクリルアミド樹脂を使用したこと以外は実施例１と同様にして試験を行った。
［比較例５］
　Ｎ－イソプロピルアクリルアミド１００重量部に代えてエチルアクリレート１００重量部を使用したこと以外は比較例４と同様にして試験を行った。得られた樹脂の重量平均分子量は約６万であった。
［比較例６］
Ｎ－イソプロピルアクリルアミド１００重量部に代えてブチルメタクリレート１００重量部を使用したこと以外は比較例４と同様にして試験を行った。得られた樹脂の重量平均分子量は約８万であった。
［比較例７］
　ポリビニルアセタール３０重量部に対してＮ－ビニルピロリドン７０重量部を添加したこと以外は、実施例３と同様にして試験を行った。得られた樹脂の重量平均分子量は約９万であった。
　得られた結果をまとめて表１に示す。なお、いずれの実施例及び比較例においても分化した細胞は観察されなかった。 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005

Claims (11)

  1. 　合成樹脂を含有する幹細胞培養用足場材料であって、
    　前記合成樹脂の窒素含有量が０．１質量％以上１０質量％以下である幹細胞培養用足場材料。
  2. 　前記合成樹脂が、ブレンステッド塩基性基を１モル％以上５０モル％以下含む、請求項１記載の幹細胞培養用足場材料。
  3. 　前記ブレンステッド塩基性基がアミン系塩基性基である請求項２記載の幹細胞培養用足場材料。
  4. 　前記合成樹脂が、アミン構造を有する構成単位、イミン構造を有する構成単位およびアミド構造を有する構成単位からなる群より選択される少なくとも１つを備える請求項２又は３記載の幹細胞培養用足場材料。
  5. 　前記合成樹脂がアミド構造を有する構成単位を備える請求項１，２，４のいずれか1項記載の幹細胞培養用足場材料。 
  6. 　前記合成樹脂がイミン構造を有する構成単位およびアミン構造を有する構成単位の両方を備える請求項１，２，４のいずれか1項記載の幹細胞培養用足場材料。
  7. 　前記幹細胞が多能性幹細胞である請求項１～６のいずれか１項記載の幹細胞培養用足場材料。
  8. 　請求項１～７のいずれか１項記載の幹細胞培養用足場材料を備える、幹細胞培養用容器。
  9. 　請求項１～７のいずれか１項記載の幹細胞培養用足場材料と、
    　多糖類と、を含有する幹細胞培養用担体。 
  10. 　請求項１～７のいずれか１項記載の幹細胞培養用足場材料を備える幹細胞培養用繊維。
  11. 　請求項１～７のいずれか１項記載の幹細胞培養用足場材料を用いる幹細胞の培養方法。
     
PCT/JP2018/048389 2017-12-27 2018-12-27 幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法 WO2019131981A1 (ja)

Priority Applications (8)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP18893580.3A EP3733833A4 (en) 2017-12-27 2018-12-27 SCAFFOLDING MATERIAL FOR STEM CELL CULTURES AND PROCESS FOR STEM CELL CULTURE USING IT
AU2018398052A AU2018398052B2 (en) 2017-12-27 2018-12-27 Scaffolding material for stem cell cultures and stem cell culture method using same
CN201880083524.8A CN111511897A (zh) 2017-12-27 2018-12-27 干细胞培养用支架材料以及使用了该支架材料的干细胞培养方法
KR1020207021351A KR102371343B1 (ko) 2017-12-27 2018-12-27 줄기 세포 배양용 스캐폴드 재료 및 그것을 사용한 줄기 세포의 배양 방법
JP2019562494A JP6751823B2 (ja) 2017-12-27 2018-12-27 幹細胞培養用足場材料、幹細胞培養用容器、幹細胞培養用担体、幹細胞培養用繊維及び幹細胞の培養方法
SG11202005430VA SG11202005430VA (en) 2017-12-27 2018-12-27 Scaffolding material for stem cell cultures and stem cell culture method using same
US16/958,182 US20200370009A1 (en) 2017-12-27 2018-12-27 Scaffolding material for stem cell cultures and stem cell culture method using same
US16/919,452 US20200399576A1 (en) 2017-12-27 2020-07-02 Scaffolding material for cell cultures and cell culture method using same

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2017252420 2017-12-27
JP2017-252420 2017-12-27

Related Child Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
US16/958,182 A-371-Of-International US20200370009A1 (en) 2017-12-27 2018-12-27 Scaffolding material for stem cell cultures and stem cell culture method using same
US16/919,452 Continuation-In-Part US20200399576A1 (en) 2017-12-27 2020-07-02 Scaffolding material for cell cultures and cell culture method using same

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2019131981A1 true WO2019131981A1 (ja) 2019-07-04

Family

ID=67063872

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2018/048389 WO2019131981A1 (ja) 2017-12-27 2018-12-27 幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法
PCT/JP2018/048386 WO2019131978A1 (ja) 2017-12-27 2018-12-27 幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法
PCT/JP2018/048391 WO2019131982A1 (ja) 2017-12-27 2018-12-27 幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法

Family Applications After (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2018/048386 WO2019131978A1 (ja) 2017-12-27 2018-12-27 幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法
PCT/JP2018/048391 WO2019131982A1 (ja) 2017-12-27 2018-12-27 幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法

Country Status (10)

Country Link
US (3) US20210071147A1 (ja)
EP (4) EP3733835A4 (ja)
JP (4) JP6748313B2 (ja)
KR (2) KR102370115B1 (ja)
CN (3) CN111511895A (ja)
AU (2) AU2018398052B2 (ja)
ES (1) ES2966599T3 (ja)
SG (2) SG11202005433SA (ja)
TW (3) TWI744586B (ja)
WO (3) WO2019131981A1 (ja)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020203770A1 (ja) * 2019-03-29 2020-10-08 積水化学工業株式会社 細胞培養用足場材料、細胞培養用容器、細胞培養用担体、細胞培養用繊維及び細胞の培養方法
WO2020203769A1 (ja) * 2019-03-29 2020-10-08 積水化学工業株式会社 細胞培養用足場材料、細胞培養用容器、細胞培養用繊維及び細胞の培養方法
EP4008770A4 (en) * 2019-08-02 2023-08-16 Sekisui Chemical Co., Ltd. SCAFFOLDING MATERIAL FOR CELL CULTURES AND CELL CULTURE CONTAINERS

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113242905A (zh) * 2019-03-29 2021-08-10 积水化学工业株式会社 细胞培养用支架材料以及细胞培养用容器
CN116904079A (zh) * 2019-05-15 2023-10-20 积水化学工业株式会社 由细胞培养用支架材料形成的树脂膜、细胞培养用载体和细胞培养用容器
CN114631158A (zh) 2019-10-30 2022-06-14 佳能株式会社 组合物及热传输装置
KR20230008040A (ko) * 2020-04-21 2023-01-13 세키스이가가쿠 고교가부시키가이샤 수지 조성물, 접합 유리용 중간막, 및 접합 유리
WO2022115800A2 (en) * 2020-11-30 2022-06-02 Torres Lugo Madeline Synthetic matrices for cell culture, methods of making and use thereof

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006042758A (ja) * 2004-07-02 2006-02-16 Seikagaku Kogyo Co Ltd 胚性幹細胞の培養用基材及びその用途
JP2006314285A (ja) 2005-05-13 2006-11-24 Kuraray Co Ltd 細胞培養用担体及び該細胞培養用担体を用いた細胞培養方法
JP2010158180A (ja) 2009-01-06 2010-07-22 Hokkaido Univ 足場材料
WO2013183777A1 (ja) * 2012-06-08 2013-12-12 独立行政法人理化学研究所 ヒトｅｓ細胞用培養容器
JP2017023008A (ja) 2015-07-16 2017-02-02 国立大学法人 東京医科歯科大学 ポリロタキサンブロック共重合体表面を有する培養器を用いた幹細胞の培養方法
JP2017046676A (ja) * 2015-09-04 2017-03-09 日本バイリーン株式会社 足場プレート及びその製造方法
JP2017163898A (ja) * 2016-03-16 2017-09-21 株式会社日本触媒 神経幹細胞の培養方法、およびニューロスフェロイドの形成方法

Family Cites Families (35)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2400063A1 (fr) * 1977-08-08 1979-03-09 Pasteur Institut Procede d'obtention de supports pour cultures cellulaires et supports obtenus
CA1330684C (en) * 1988-04-15 1994-07-12 Robert Krantz Pinschmidt Jr. Method for preparing poly(vinyl alcohol)- co-poly(vinylamine) via a two-phase process
EP0531562A1 (de) * 1991-09-11 1993-03-17 Doerr, Hans-Wilhelm, Prof. Dr. med. Kultivierung von Säugetierzellen
JPH06153905A (ja) * 1992-11-24 1994-06-03 Sanyo Chem Ind Ltd 細胞培養基材および細胞培養方法
JPH09131397A (ja) * 1995-09-08 1997-05-20 Kuraray Co Ltd 医療用高分子材料およびその製造方法
US5880216A (en) * 1995-12-22 1999-03-09 Kuraray Co., Ltd. Polyvinyl alcohol and gel containing the same
JPH1052268A (ja) * 1996-05-01 1998-02-24 Kanebo Ltd 微生物担持体及びその製造方法
JPH10204204A (ja) * 1996-07-31 1998-08-04 Kanebo Ltd 多孔性球状粒子及びその製造方法
JP2001089574A (ja) * 1999-07-15 2001-04-03 Kuraray Co Ltd ポリビニルアルコール系含水ゲル、その製造方法及び排水処理装置
JP2001131325A (ja) * 1999-10-29 2001-05-15 Rengo Co Ltd 多孔質球状粒子及びその製造方法
DE602004029298D1 (de) * 2003-01-23 2010-11-04 Kuraray Co Polyvinylacetal und dessen Verwendung
EP1686171B1 (en) * 2003-10-17 2015-08-05 Dai Nippon Printing Co., Ltd. Method of constructing artificial cell tissue and base material therefor
DE102004026609A1 (de) * 2004-06-01 2006-01-12 Wacker Polymer Systems Gmbh & Co. Kg Aminofunktionelle Polyvinylacetale
JP2006214285A (ja) * 2005-02-01 2006-08-17 Toyota Motor Corp 燃料噴射制御装置
JP4956753B2 (ja) * 2005-03-02 2012-06-20 国立大学法人北海道大学 細胞の分化／増殖を制御するための基材
EP1801132A1 (de) * 2005-12-21 2007-06-27 Kuraray Europe GmbH Verfahren zur Modifizierung von Polyvinylbutyralen
CN101528822A (zh) * 2006-07-05 2009-09-09 新加坡科技研究局 多孔聚合物制品
JP2006272002A (ja) * 2006-07-11 2006-10-12 Kuraray Co Ltd 医療用手当材
JP2009273444A (ja) * 2008-05-19 2009-11-26 Univ Of Tsukuba 細胞培養支持体、その製造方法及び該支持体を用いた細胞培養方法
GB0815883D0 (en) * 2008-09-01 2008-10-08 Univ Edinburgh Polymer blends
JP5308839B2 (ja) * 2009-01-21 2013-10-09 積水化学工業株式会社 ポリビニルアセタール樹脂多孔質体の製造方法
JP5715565B2 (ja) * 2009-08-07 2015-05-07 株式会社クラレ ポリビニルアセタール組成物、積層体、およびその用途
JP5687701B2 (ja) * 2010-08-19 2015-03-18 株式会社クラレ ポリビニルアセタール系粉体塗料
JP5287935B2 (ja) * 2011-06-16 2013-09-11 東レ株式会社 蛍光体含有シート、それを用いたｌｅｄ発光装置およびその製造方法
US10119119B2 (en) * 2012-01-31 2018-11-06 Carnegie Mellon University and University of Pittsburgh—Of the Commonwealth System of Higher Education Polysiloxane substrates with highly-tunable elastic modulus
CA2870999A1 (en) * 2012-04-20 2013-10-24 SlipChip, LLC Fluidic devices and systems for sample preparation or autonomous analysis
EP2821789A1 (en) * 2013-07-02 2015-01-07 ETH Zurich Microtissues
JP6384054B2 (ja) * 2014-01-31 2018-09-05 大日本印刷株式会社 細胞積層体を製造するための細胞培養容器
TW201540829A (zh) * 2014-02-28 2015-11-01 Kuraray Co 細胞培養用載體及使用其之細胞培養方法
JP6427450B2 (ja) * 2014-03-31 2018-11-21 積水化学工業株式会社 変性ポリビニルアセタール樹脂
JP6452304B2 (ja) * 2014-03-31 2019-01-16 学校法人東京女子医科大学 細胞シート培養基材、細胞シート培養基材複合物、及び細胞シート／培養基材複合の製造方法
JP6318812B2 (ja) * 2014-04-21 2018-05-09 日立化成株式会社 フィブロイン複合体
KR101754342B1 (ko) * 2015-01-26 2017-07-06 가톨릭관동대학교산학협력단 3차원적 연골배양부재 및 이를 포함하는 연골배양장치
US10711128B2 (en) * 2015-09-30 2020-07-14 Sekisui Chemical Co., Ltd. Modified polyvinyl acetal resin composition
US20190106561A1 (en) * 2017-10-10 2019-04-11 Solutia Inc. Poly(vinyl acetal) resin compositions, layers, and interlayers having enhanced properties

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006042758A (ja) * 2004-07-02 2006-02-16 Seikagaku Kogyo Co Ltd 胚性幹細胞の培養用基材及びその用途
JP2006314285A (ja) 2005-05-13 2006-11-24 Kuraray Co Ltd 細胞培養用担体及び該細胞培養用担体を用いた細胞培養方法
JP2010158180A (ja) 2009-01-06 2010-07-22 Hokkaido Univ 足場材料
WO2013183777A1 (ja) * 2012-06-08 2013-12-12 独立行政法人理化学研究所 ヒトｅｓ細胞用培養容器
JP2017023008A (ja) 2015-07-16 2017-02-02 国立大学法人 東京医科歯科大学 ポリロタキサンブロック共重合体表面を有する培養器を用いた幹細胞の培養方法
JP2017046676A (ja) * 2015-09-04 2017-03-09 日本バイリーン株式会社 足場プレート及びその製造方法
JP2017163898A (ja) * 2016-03-16 2017-09-21 株式会社日本触媒 神経幹細胞の培養方法、およびニューロスフェロイドの形成方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SAHA, K. ET AL.: "Surface-engineered substrates for improved human pluripotent stem cell culture under fully defined conditions", PROC. NATL. ACAD. SCI. USA, vol. 108, no. 46, 2011, pages 18714 - 18719, XP055624221 *
TUNMA, S. ET AL.: "Improving the attachment and proliferation of umbilical cord mesenchymal stem cells on modified polystyrene by nitrogen- containing plasma", CYTOTECHNOLOGY, vol. 65, 2013, pages 119 - 134, XP035159437 *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020203770A1 (ja) * 2019-03-29 2020-10-08 積水化学工業株式会社 細胞培養用足場材料、細胞培養用容器、細胞培養用担体、細胞培養用繊維及び細胞の培養方法
WO2020203769A1 (ja) * 2019-03-29 2020-10-08 積水化学工業株式会社 細胞培養用足場材料、細胞培養用容器、細胞培養用繊維及び細胞の培養方法
EP4008770A4 (en) * 2019-08-02 2023-08-16 Sekisui Chemical Co., Ltd. SCAFFOLDING MATERIAL FOR CELL CULTURES AND CELL CULTURE CONTAINERS

Also Published As

Publication number Publication date
EP3733835A4 (en) 2021-11-10
WO2019131978A1 (ja) 2019-07-04
CN111511897A (zh) 2020-08-07
JP6751823B2 (ja) 2020-09-09
KR20200103763A (ko) 2020-09-02
TW201930588A (zh) 2019-08-01
SG11202005430VA (en) 2020-07-29
AU2018398050A1 (en) 2020-07-16
JPWO2019131978A1 (ja) 2020-04-30
EP3733834A4 (en) 2022-01-26
EP3733834C0 (en) 2023-11-29
US20200370009A1 (en) 2020-11-26
EP3733834A1 (en) 2020-11-04
JPWO2019131982A1 (ja) 2020-05-28
EP4286508A2 (en) 2023-12-06
SG11202005433SA (en) 2020-07-29
JPWO2019131981A1 (ja) 2020-04-02
ES2966599T3 (es) 2024-04-23
TWI757572B (zh) 2022-03-11
TW201930587A (zh) 2019-08-01
TWI744586B (zh) 2021-11-01
US20200362289A1 (en) 2020-11-19
KR102370115B1 (ko) 2022-03-04
CN111511896A (zh) 2020-08-07
JP6748313B2 (ja) 2020-08-26
JP6789416B2 (ja) 2020-12-02
JP2020174682A (ja) 2020-10-29
EP3733833A4 (en) 2021-11-10
EP3733833A1 (en) 2020-11-04
KR20200103762A (ko) 2020-09-02
CN111511895A (zh) 2020-08-07
US20210071147A1 (en) 2021-03-11
TWI744587B (zh) 2021-11-01
AU2018398052B2 (en) 2024-03-28
EP4286508A3 (en) 2024-02-28
EP3733835A1 (en) 2020-11-04
TW201930586A (zh) 2019-08-01
WO2019131982A1 (ja) 2019-07-04
AU2018398052A1 (en) 2020-07-16
EP3733834B1 (en) 2023-11-29
KR102371343B1 (ko) 2022-03-07
AU2018398050B2 (en) 2024-03-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2019131981A1 (ja) 幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法
WO2020203770A1 (ja) 細胞培養用足場材料、細胞培養用容器、細胞培養用担体、細胞培養用繊維及び細胞の培養方法
JP2024033003A (ja) 細胞培養用足場材料により形成された樹脂膜、細胞培養用担体及び細胞培養用容器
WO2020203769A1 (ja) 細胞培養用足場材料、細胞培養用容器、細胞培養用繊維及び細胞の培養方法
JP7480037B2 (ja) 細胞培養用足場材料及び細胞培養用容器
US20200399576A1 (en) Scaffolding material for cell cultures and cell culture method using same
WO2020241675A1 (ja) 細胞培養用足場材料により形成された樹脂膜及び細胞培養用容器
US20200407672A1 (en) Scaffolding material for cell cultures and cell culture method using same
JP2019118345A (ja) 幹細胞培養用足場材料及びそれを用いた幹細胞培養方法
JP2021003099A (ja) 細胞接着用樹脂繊維及び細胞接着構造体
JP2019115323A (ja) 幹細胞培養用容器
JP2019115322A (ja) 幹細胞培養用容器

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 18893580

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2019562494

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2018398052

Country of ref document: AU

Date of ref document: 20181227

Kind code of ref document: A

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 20207021351

Country of ref document: KR

Kind code of ref document: A

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2018893580

Country of ref document: EP

Effective date: 20200727