WO2003008571A2 - Cadenas quiméricas codificantes para proteínas inductoras de efectos contra virus - Google Patents

Cadenas quiméricas codificantes para proteínas inductoras de efectos contra virus Download PDF

Info

Publication number
WO2003008571A2
WO2003008571A2 PCT/CU2002/000006 CU0200006W WO03008571A2 WO 2003008571 A2 WO2003008571 A2 WO 2003008571A2 CU 0200006 W CU0200006 W CU 0200006W WO 03008571 A2 WO03008571 A2 WO 03008571A2
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
sequence
protein
identified
chimeric
den
Prior art date
Application number
PCT/CU2002/000006
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2003008571A3 (es
WO2003008571A9 (es
Inventor
Lisset Hermida Cruz
Rayner Rodriguez Diaz
Laura Lazo Vazquez
Aida Zulueta Morales
Carlos Lopez Abarrategui
Iris Valdes Prado
Ricardo De La C. Silva Rodriguez
Glay Chinea Santiago
Gerardo Enrique Guillen Nieto
María Guadalupe GUZMAN TIRADO
Beatriz De La Caridad Sierra Vazquez
Raúl Rafael ESPINOSA PEREZ
Original Assignee
Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia
Instituto De Medicina Tropical 'pedrokouri'
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority to BR0211178-0A priority Critical patent/BR0211178A/pt
Priority to MXPA04000486A priority patent/MXPA04000486A/es
Priority to JP2003514888A priority patent/JP4417712B2/ja
Priority to CA2453300A priority patent/CA2453300C/en
Priority to DK02760073T priority patent/DK1418180T3/da
Priority to DE60217129T priority patent/DE60217129T2/de
Priority to EP02760073A priority patent/EP1418180B1/en
Priority to US10/484,114 priority patent/US7279164B2/en
Application filed by Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia, Instituto De Medicina Tropical 'pedrokouri' filed Critical Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia
Publication of WO2003008571A2 publication Critical patent/WO2003008571A2/es
Publication of WO2003008571A3 publication Critical patent/WO2003008571A3/es
Publication of WO2003008571A9 publication Critical patent/WO2003008571A9/es
Priority to US11/705,696 priority patent/US7566457B2/en
Priority to US12/483,607 priority patent/US7947281B2/en
Priority to US13/094,287 priority patent/US8105606B2/en

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12—Antivirals
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12—Antivirals
    • A61P31/14—Antivirals for RNA viruses
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A61P37/04—Immunostimulants
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0006—Oxidoreductases (1.) acting on CH-OH groups as donors (1.1)
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2319/00—Fusion polypeptide
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011—Details
    • C12N2770/24011—Flaviviridae
    • C12N2770/24111—Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
    • C12N2770/24122—New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Definitions

  • the present invention is related to the field of biotechnology and the pharmaceutical industry, in particular with the obtaining of chimeric nucleotide chains which, when introduced into an expression vector, result in proteins capable of inducing serotype humoral response.
  • specific and protection against infection with the Dengue virus, hereinafter referred to as DEN avoiding the effects of non-specific serotype viral amplification causing the hemorrhages and clinical complications described in this type of pathology.
  • Dengue virus is an enveloped virus whose lipid membrane contains two of its three structural proteins: the envelope protein and the membrane protein. This protein envelope surrounds an icosahedral nucleocapsid composed of the third of its structural proteins. , the capsid protein. This virus belongs to the family Flavivir ⁇ dae and there are four different serotypes. Its transmission to man is carried out through the Aedes aegypti mosquito, which belongs to the Stegomia family.
  • the disease produced in humans by this virus was considered benign and was described as Dengue Fever or Classic Dengue (FD) until the appearance of a more serious and sometimes lethal modality characterized by hemorrhagic fever and shock, called: Dengue Hemorrhagic Fever and Dengue Shock Syndrome (FHD / SCD) (Hammon WMc. New haemorragic fever in children in the Philippines and Thailand Trans Assoc Physicians 1960; 73 : 140-155)
  • Vain epidemiological studies have been carried out, showing as a risk factor the sequential infection by two different viral serotypes (Kour ⁇ GP, Guzmán MG, Bravo JR Why dengue hemorrhagic fever in Cuba?
  • recombinant antigens have been obtained as possible components of a subunit vaccine (Fe ⁇ ghny, R, Borrous, J. and Putnak R. Dengue type-2 virus envelope protein made using recombinant baculovirus proteets mice agamst virus challenge. Am. J. Trop Med. Hyg. 1994.
  • the main antigen is the protein DENe of the envelope of the virus Said protein is the major component of the surface of the vmon and it is proposed that it mediates the binding of the virus to the cellular receptor (A Heinz FX, Berge R, Turna W et al A topological and functional model of epitopes on the structural glycoprotein of tick -borne encephalitis virus defined by monoclonal antibodies Virology 1983, 126.
  • tick-mediated encephalitis virus TBE
  • This protein has structural homology with that of the tick-mediated encephalitis virus (TBE) (Rey, FA, Heinz, FX, Mandl, C, et al The envelope glycoprotei ⁇ from tick borne encephalitis virus at 2 A resolution Nature 1995, 375-291-298) and among the serotypes it is structurally conserved
  • Insect cells constitute one of the systems used for the expression of various foreign genes that use baculoviruses as vectors. These vectors have been used for the expression of different combinations of structural and non-structural proteins of the Japanese Encephalitis virus (JEV), of DEN-1, DEN-2 and DEN-4, (Matsuura Y, Miyamoto M, Soto T et al Characte ⁇ zation of japanese encephalitis virus envelope protein expressed by recombmant baculoviruses Virology 1989, 173 677-682, Deubel V, Bordier, Megret F et al Processing, secretion and immunoreactivity of carboxy terminally truncated dengue-2 envelope proteins expressed in insect cell by recombinant baculoviruses Virology 1991, 180 440-447, Putnak R, Fe ⁇ ghny R, Burrous J et al Dengue 1 virus envelope glycoprotein gene expressed in recombmant baculovirus elicit virus neutral
  • the MDH protein As for the MDH protein, a homology search was carried out with other sequences in the EMBL database and revealed that the first 110 amino acids are highly similar to the region of the lipoic acid binding domain and the flexible arm of the dihydrolipoamide acetyltransferase (enzyme E2 of the pyruvate dehydrogenase and -cetoglutarate dehydrogenase complexes) complexes, and the rest of the protein was highly similar to lipoamide dehydrogenase (LPDH), enzyme E3 of said complexes (Stephens, P.
  • LPDH lipoamide dehydrogenase
  • the mutant protein MDH used in our invention has been used in phase I clinical trials in humans, demonstrating the absence of reactogenicity and therefore its feasibility of use, in addition to not being recognized by the serum of patients with primary biliary cirrhosis (Pérez, A., F. Dickinson, Z. Cinza, A. Ru ⁇ z, T. Serrano, J. Sosa, S. González, Y. Gutiérrez, C. Nazábal, O. Gutiérrez, D. Guzmán, M. D ⁇ az, M. Delgado E. Caballero, G. Sardinas, A. Alvarez, A. Mart ⁇ n, G. Guillen, R. Silva.
  • This invention describes the production of chimeric ⁇ ucleotide chains which, when introduced into an expression vector, result in chimeric proteins capable of inducing a specific serotype humoral response and protection against Dengue virus infection, such as
  • the first of these chains is formed by a sequence that codes for a fragment of the protein E (DENe) of each of the Dengue viral serotypes (DEN), linked to the sequence that codes for the N-terminal of a mutant protein with dehydrogenase (MDH) activity of N.
  • DENe fragment of the protein E
  • MDH dehydrogenase
  • meningitidis in a second chimeric chain the sequence coding for the DENe protein fragment of each viral serotype, was fused to the entire MDH protein gene in two different positions: at a site within of a sequence coding for a structural domain of the MDH protein (the lipoic acid binding domain and at the 3 ' end of the gene), and in the Third chimeric chain sequences corresponding to DENe protein fragments of two different virus serotypes, DEN-2 and DEN-4, are inserted into two different positions of the MDH gene: at a site within the sequence encoding the binding domain to lipoic acid (serotype 4) and at the 3 ' end of the gene (serotype 2), we call it dimeric.
  • the chimeric proteins were obtained in a soluble way in the cytoplasm of the bacteria.
  • An easily scalable purification process was developed by metal chelate chromatography (IMAC) that allowed obtaining pure proteins for the study of immunogenicity.
  • IMAC metal chelate chromatography
  • LAHI hyperimmune ascitic liquids
  • mice When immunizing with all recombinant chimeric proteins, a neutralizing and protective response was obtained in mice.
  • the highest neutralizing titers were obtained with the sequences fused to the complete MDH gene and with the dimeric one, regardless of the position of the fragment belonging to the DENe protein. This demonstrated a potentiating effect of the MDH-mediated immune response that can be explained by the influence on the folding of the DENe protein fragment reflected in the antigenicity results. It was also demonstrated for the first time, and contrary to that described in the prior art, that the insolubility of these proteins does not influence the ability to generate an adequate immune response.
  • the immune response generated in all cases was specific serotype (antibodies against immunized homologous serotype), in viral neutralization, hemagglutination inhibition and ELISA.
  • serotype-specific antibodies implies that they are not able to recognize antigenic determinants, originating from heterologous serotype viruses, that favor the immunopotentiation phenomenon. This characteristic is of great importance for a vaccine candidate against Dengue since the recognition of antibodies to heterologous serotypes can be one of the causes of Hemorrhagic Dengue (DHF).
  • DHF Hemorrhagic Dengue
  • mutant protein MDH consisted of the elimination of the lipoic acid binding site in the ETDKAT sequence, which consists of the covalent binding of this fatty acid with the amino-epsilo ⁇ groups of lysine (K) (Tuaillon N, Andre C, Briand JP et al.
  • Plasmids PLL1, PLL2, PLL3, PLH1, PLH2, PLH3, PAZ1, PAZ2, PAZ3, PID1, PID2 and PID3 were deposited according to the Budapest Treaty in the Belgian Coordinated collection of Microorganism - BCCM TM, LMBP-COLLECTION, with date and under pending access numbers respectively
  • N-term Nucleotide sequence that codes for the region of the first 45 amino acids of the MDH
  • DEN Fragment of the envelope protein of DEN-1 N-term: Nucleotide sequence that codes for the region of the first 45 amino acids of the MDH.
  • N-term Nucleotide sequence that codes for the region of the first 45 amino acids of the MDH Figure 8. Cloning strategy of the E3 fragment to obtain PAZ2.
  • DENe3 Fragment of the envelope protein of DEN-3 Dehydrogenase mutant MDH.
  • MDH dehydrogenase mutant.
  • the nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the DEN-2 virus envelope protein (Sec. Id. No. 22) was amplified with the oligonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 1 and Sequence No. .2 from the viral strain of DEN-2 genotype Jamaica (Deubel V., Kinney RM, Trent DW Nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the ⁇ onstructural proteins of Dengue type 2 virus, Jamaica genotype: Comparative analysis of the full- length genome.Virology 1988.165: 234-244)
  • the vector was generated by Xba l / Bam Hl digestion of the PM108 His plasmid, which contains the nucleotide sequence encoding the N-terminal region of the MDH and for a sequence of 6 histidines (Sequence No.23). After the ligation process, the possible recombinants were analyzed by restriction and the positives were sequenced to check the junctions.
  • the competent W3110 cells Hill CW, Harnish BW 1982. Transposition of a chro osomal segment bounded by redundant rRNA genes in Escherichia coli. J Bacteriology. 149: 449-457) were transformed with the selected clone called pLL1 (Fig. 1 and Sequence No.24).
  • the blomasa obtained from the strain transformed with pLL1 and grown at 37 ° C was broken in the French press.
  • the recombinant protein was obtained mostly in an insoluble way associated with the precipitate of cell rupture.
  • an extraction with 6 M urea was performed and the supernatant, containing the PLL1 protein, was applied on a G-25 column to remove the chaotropic agent.
  • the fraction obtained was applied on a Banating sepharose FF column (Pharmacia, UK), in the presence of Cu ++ ions.
  • the purified fraction of PLL1 was characterized both by recognition with different po clonal and monoclonal sera as well as by human sera positive to
  • mice 25 Balb / c mice were immunized with 35 ug ip of the purified PLL1 preparation using Freud's adjuvant. A portion of these animals (10 mice) were bled after the fourth dose and anti-DEN antibodies were determined by ELISA. titers against DEN-2 while, compared to the rest of the serotypes, no reactivity was obtained (table 2 and table 5).
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units Table 4. Viral neutralization assay with sera from animals immunized with PLL1.
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titres were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the envelope protein of the DEN-2 virus was amplified with the oligonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 1 and Sequence No. 3 from of the viral strain of DEN-2 genotype Jamaica (Deubel V., Kinney RM, Trent DW Nucleotide sequence and deduced ammo acid sequence of the nonstructural proteins of Dengue type 2 virus, Jamaica genotype Comparative analysis of the full-length genome.Virology 1988.165 234-244)
  • the vector was generated by Xba l / Eco Rl digestion of the PM84 His plasmid, which contains the nucleotide sequence of the MDH plus the encoder for a 6 histidine tail (Sequence No. 26) This digestion allows the insertion of the PCR amplified fragment into the coding region for a structural domain of the MDH After the ligation process, the possible recombinants were analyzed by restriction and the positive ones were sequenced to check the binding
  • the competent MM294 cells (Hanahan D 1983 Studies on transformation of Eschenchia coli with plasmids J Mol Biol 166 557-580) were transformed with the selected clone called pLL2 (Fig 2 and Sequence No.
  • EXAMPLE 6 Purification of the PLL2 protein
  • the biomass obtained from the strain transformed with pLL2 and grown at 37 ° C was broken in the French press.
  • the recombinant protein was obtained in a more soluble way. From the soluble fraction, affinity chromatography was performed by metal chelates. The matrix used was Banating Sepharose FF previously coupled with CuX ions. A wash with 15 mM Imidazole was performed and then elution was performed with 100 M imidazole. On the other hand, the most soluble fraction of the recombinant protein was extracted with 8 M urea.
  • the purified fraction of PLL2 was characterized both by recognition with different polyclonal and several monoclonal sera as well as by Dengue positive human sera (Table 6).
  • the highest recognitions for Dot blotting were obtained with the LAHI ant ⁇ -DEN-2 Recognition by LAHI against the other serotypes were lower, in decreasing order: DEN-1 and DEN-3 and finally DEN-4, which was virtually imperceptible In the case of antibodies generated by other flaviviruses such as Yellow Fever, and San Encephalitis Luis did not obtain any recognition.
  • great reactivity greater than that obtained with PLL1 was observed both by Dot blotting and Western blotting.
  • mice 25 Balb / c mice were immunized with 20 ug ip of the purified preparation of both soluble and insoluble PLL2, using Freud's Adjuvant. A part of the animals (10 mice) were bled after the fourth dose and the anti-DEN antibodies were determined by ELISA. High titers against DEN-2 were obtained while, compared to the rest of the serotypes, no reactivity was obtained (Table 7 and Table 10). In parallel, the IHA test was performed, obtaining positive titers only for DEN-2 (Table 8 and Table 10). ).
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemaggluti ⁇ ation of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units
  • the nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the DEN-2 virus envelope protein (Sequence No.22) was amplified with the oligonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No.4 and Sequence No.5 a from the viral strain of DEN-2 genotype Jamaica (Deubel V, Ki ⁇ ney RM, Trent DW Nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the nonstructural proteins of Dengue type 2 virus, Jamaica genotype: Comparative analysis of the full-length genome.
  • the vector was generated by Bam Hl / Bam Hl digestion of plasmid pD4, which contains the MDH gene with a sequence of 6 histidines without stop codon (Sequence No.9). This allows fusion of the protein fragment sequence of the DEN envelope to the MDH C-terminal sequence. After the ligation process, the possible recombinants were analyzed by restriction and the positives were sequenced to check the junctions.
  • the competent W3110 cells were transformed with the selected clone called pLL3 (fig. 3 and Sequence No.10). After colony growth in LB liquid medium, an SDS-PAGE of the cell lysate was performed.
  • a band of approximately 80 kDa corresponding to 20% of total proteins in the cell was obtained.
  • the size obtained corresponds to the sum of the MDH and the DENe protein fragment of DEN-2.
  • This band was recognized with AntP-DEN-2 AcP antibodies contained in a LAHI.
  • the protein was called PLL3 (Sequence No.11).
  • EXAMPLE 10 Purification of the PLL3 protein.
  • the biomass obtained from the strain transformed with pLL3 and grown at 37 ° C was broken in the French press.
  • the recombinant protein was obtained in a soluble and insoluble manner. From the insoluble fraction, the recombinant protein was extracted with 6M Urea and then a buffer change was made for G-25. From the sample in 10mM Tris, affinity chromatography was performed by metal chelates. The matrix used was Banating Sepharose FF previously coupled with CuX ions. A wash with 30 mM Imidazole was performed and then elution was performed with 250 mM imidazole. Finally, the pure preparation was applied on a G-25 column to obtain it in the formulation buffer (PBS) and perform the immunological studies.
  • PBS formulation buffer
  • the purified fraction of PLL3 was characterized both by recognition with different murine polyclonal and monoclonal sera, as well as by Dengue positive human sera (Table 11).
  • the highest recognitions for Dot blotting were obtained with the LAHI anti-DEN-2.
  • the recognition by LAHI against the other serotypes was lower, in decreasing order: DEN-1 and DEN-3 and finally DEN-4, which was virtually imperceptible.
  • no recognition was obtained.
  • mice were immunized with 20 ug ip of the purified PLL3 preparation using Freund's Adjuvant. A part of the animals (10 mice) were bled after the fourth dose and the anti-DEN antibodies were determined by ELISA. High titers against DEN-2 were obtained, whereas no reactivity was obtained against the rest of the serotypes (table 12 and table 15). At the same time, the Hemagglutmation Inhibition test was carried out, obtaining positive titers only to DEN-2 (Table 13 and Table 15). Finally, the neutralization test was carried out in vitro, reaching titres of up to 1/1280 against DEN-2 (Table 14). No neutralizing titles were obtained against the rest of the serotypes (table 15) In the three techniques tested, a great serotype specificity was observed in the antibodies generated similar to that obtained with immunization with PLL2
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titres were defined as the highest dilution of serum where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the envelope protein of the DEN-1 virus was amplified with the oligonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 6 and Sequence No. 7 a split of the DEN-1 viral strain (Chu MC, O'Rourke E J., Trent DW Genetic relatedness to ong structual protein genes of dengue 1 strains.J virus. Viral Gen 1989. 70: 1701-1712).
  • the vector was generated by Xba l / Bam Hl digestion of the PM108 His plasmid, which contains the nucleotide sequence encoding the N-terminal region of the MDH and for a sequence of 6 histidms (Sequence No.23). After the ligation process, the possible recombinants were analyzed by restriction and the positives were sequenced to check the junctions.
  • the competent W3110 cells were transformed with the selected clone called pLH1 (Fig. 4 and Sequence No. 33) After the growth of the colony in medium. LB liquid, an SDS-PAGE of the cell lysate was performed A band of approximately 25 kDa corresponding to 10% of total proteins in the cell was obtained.
  • the size obtained corresponds to the sum of the N-terminal region of the DH and the DENe protein fragment of DEN-1. This band was recognized with anti-DEN-1 AcP contained in an LAHI.
  • the protein was called PLH1 (Sequence No.34) EXAMPLE 14. Purification of the PLH1 protein
  • the biomass obtained from the strain transformed with pLH1 was broken in the French press.
  • the recombinant protein was obtained in an insoluble way associated with the precipitate of cell rupture.
  • an extraction with 7 M urea was performed and the supernatant, containing the PLL1 protein, was applied on a G-25 column to remove the agent.
  • chaotropic The fraction obtained was applied on a Banating sepharose FF column (Pharmacia, UK), in the presence of Cu ++ ions and equilibrated with 10 mM Tris pH 8 0 Elution was performed with 60 mM Imidazole and the volume obtained was applied in a G-25 column to obtain the protein in the formulation buffer (PBS). This preparation was used for immunological studies.
  • EXAMPLE 15 Antigenic characterization of PLH1
  • the purified fraction of PLH1 was characterized both by recognition with different mun po clonal and monoclonal sera as well as by Dengue positive human sera (Table 16). The highest recognitions for Dot blotting were obtained with the anti-hypertensive ascites fluid ant ⁇ -DEN-1. The recognition by LAHI against the other serotypes was lower. In the case of antibodies generated by other flaviviruses such as Yellow Fever and St. Louis Encephalitis, no recognition was obtained. Finally, the reactivity was analyzed against three high-titre human sera and three of under title to DEN-1, obtaining a considerable signal in both cases by Western blotting. Table 16. Reactivity of the PLH1 protein against monoclonal and polyclonal antibodies Acs * Specificity " * PLH1
  • EXAMPLE 16 Characterization of the antibody response generated by PLH1 25 Balb / c mice were immunized with 35 ug ip of the purified preparation of PLH1 using Freund's Adjuvant A portion of these animals (10 mice) were bled after the fourth dose and anti-DEN antibodies were determined by ELISA High titers against DEN-1 were obtained while, compared to the rest of the serotypes, no reactivity was obtained (Table 17 and Table 20) In parallel, the IHA test was performed obtaining positive titers only to DEN-1 (table 18 and table 20) Finally, the in vitro neutralization test was carried out evidencing neutralizing titles (1 320) against DEN-1 while against the rest of the serotypes there was no neutralization of viral effectivity (table 19 and Table 20) These results indicate the great serotype-specificity of the antibodies generated by PLH1. Table 17. Antibody titers against DEN-1 of sera obtained after immunization with PLL1
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titers were defined as the highest dilution of serum where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained. Table 20. Cross-reactivity test, against all viral serotypes by ELISA, IHA and viral neutralization, with the sera of animals immunized with PLH1
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titres were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • DEN-1 virus (Chu MC, O'Rourke EJ, Trent D W. Genetic relatedness among structual protein genes of dengue 1 strains virus J Gen V ⁇ rol. 1989 70.1701-1712).
  • the vector was generated by Xba l / Eco Rl digestion of the PM84 His plasmid, which contains the nucleotide sequence of the MDH plus the encoder for a 6 histidine tail (Sequence No. 26) This digestion allows the insertion of the PCR amplified fragment into the coding region for a structural domain of the MDH After the ligation process, the possible recombinants were analyzed by restriction and the positives were sequenced to check the junctions The MM294 competent cells were transformed with the selected clone called pLH2 (Fig. 5 and Sequence No .35). After the growth of the colony in LB liquid medium, an SDS-PAGE of the cell lysate was performed.
  • the biomass obtained from the strain transformed with pLH2 was broken in the French press.
  • the recombinant protein was obtained in a soluble and insoluble way. From the insoluble fraction, the protein was extracted with Urea 7M and then a buffer change was made for G-25. From the sample in 10mM Tris, affinity chromatography was performed by metal chelates. The matrix used was Banating Sepharose FF previously coupled with Cu t + ions. A wash with 40 mM Imidazole was performed and then elution was performed with 200 mM imidazole. Finally, the pure preparation was applied in a column of G-25 to obtain it in the formulation buffer (PBS) and perform immunological studies.
  • PBS formulation buffer
  • the purified fraction of PLH2 was characterized both by recognition with different polyclonal and monoclonal serum sera, as well as by Dengue positive human sera (Table 21)
  • EXAMPLE 20 Characterization of the antibody response generated by PLH2 25 Balb / c mice were immunized with 20 ug ip of the purified preparation of PLH2, using Freund's adjuvant. A part of the animals (10 mice) were bled after the fourth dose and the anti-DEN antibodies were determined by ELISA. High titers against DEN-1 were obtained while, compared to the rest of the serotypes, no reactivity was obtained (Table 22 and Table 25). In parallel, the I HA test was performed. obtaining positive titles only to DEN-1 (table 23 and table 25). Finally, the in vitro neutralization test was performed, reaching 1/1280 titers against DEN-1 (table 24). No neutralizing titles were obtained against the rest of the serotypes (table
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained. Table 25. Cross-reactivity assay, against all viral serotypes by ELISA, IHA and viral neutralization, with sera from animals immunized with PLH2.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titres were defined as the highest dilution of serum where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the DEN-1 virus envelope protein (Sequence No. 32) was amplified with the oligonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 9 and Sequence No. 10 to from the viral strain of DEN-1 (Chu MC, O'Rourke EJ, Trent DW Genetic relatedness among structual protein genes of dengue 1 strains.J virus. Gen. Virol. 1989. 70: 1701-1712).
  • the vector was generated by Bam Hl / Bam Hl digestion of plasmidlo pD4, which contains the MDH gene with a sequence of 6 histidines without stop codon (Sequence No.29). This allows the fusion of the sequence of the fragment of the E to the 3 ' end of the MDH gene. After the ligation process, the possible recombinants will be analyzed by restriction and the positives were sequenced to check the junctions The competent W3110 cells were transformed with the selected clone called pLH3 (Fig 6 and Sequence No.
  • EXAMPLE 22 Purification of the PLH3 protein.
  • the biomass obtained from the strain transformed with pLH3 was broken in the French press.
  • the recombinant protein was obtained in a soluble and more soluble way. From the insoluble fraction, the recombinant protein was extracted with Urea 6M and then a buffer change was made with G- From the sample in 10mM Tris, an affinity chromatography was performed by metal chelates. The matrix used was Banating Sepharose FF previously coupled with Cu ++ ions. A wash with 30 mM Imidazole was performed and then the elution was performed with imidazole 250. mM Finally, the pure preparation was applied on a G-25 column to obtain it in the formulation buffer (PBS) and perform the immunological studies.
  • PBS formulation buffer
  • the purified fraction of PLH3 was characterized both by recognition with different po clonal and monoclonal sera, as well as by Dengue positive human sera (Table 26).
  • the highest recognition for Dot blotting was obtained with the LAHI ant ⁇ -DEN-1 while recognition. with LAHI against the other serotypes, it was lower.
  • no recognition was obtained.
  • the reactivity was analyzed against three high-titre and three low-titre human sera. to DEN-1, obtaining a considerable signal in both cases by Dot blotting and Western blotting
  • EXAMPLE 24 Characterization of the antibody response generated by PLH3 25
  • Balb / c mice were immunized with 20 ug ip of the purified preparation of PLH3 using Freund's Adjuvant A portion of the animals (10 mice) were bled after the fourth dose and anti-DEN antibodies were determined by ELISA High titers against DEN-1 were obtained while no other reactivity was obtained against the rest of the serotypes (table 27 and table 30).
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • Neutralizing titres were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the DEN-3 virus envelope protein (Sequence No. 19) was amplified with the oligonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 1 1 and Sequence No. 12 from the viral strain of DEN-3 (Osatomi K, Sumiyoshi H Complete nucleotide sequence of dengue type 3 genus virus and RNA V ⁇ rology 1990 176 (2): 643-647).
  • the vector was generated by Xba l / Bam Hl digestion of the PM108 His plasmid, which contains the nucleotide sequence encoding the N-thermal region of the MDH and for a sequence of 6 histidines (Sequence No. 23) After the ligation process , the possible recombinants were analyzed by restriction and the positives were sequenced to check the junctions.
  • the competent W3110 cells were transformed with the selected clone called pAZ1 (Fig. 7 and Sequence No.40). After the growth of the colony in LB liquid medium, an SDS-PAGE of the cell lysate was performed. A band of approximately 25 kDa corresponding to 10% of total proteins in the cell was obtained.
  • the size obtained corresponds to the sum of the N-terminal region of the MDH and the DENe protein fragment of DEN-3. This band was recognized with anti-DEN-3 AcP contained in a LAHI.
  • the protein was called PAZ1 (Sequence No. 41) EXAMPLE 26. Purification of the PAZ1 protein.
  • the purified fraction of PAZ1 was characterized both by recognition with different polyclonal and several monoclonal sera, as well as by Dengue positive human sera (Table 31).
  • the highest recognition for Dot blotting was obtained with the LAHI anti-DEN-3. This result is consistent with the fact that the cloned region belongs to serotype 3.
  • the recognition by LAHI against the other serotypes was lower. In the case of antibodies generated by other flaviviruses such as Yellow Fever and St. Louis Encephalitis, no recognition was obtained.
  • reactivity was analyzed against four human sera of high titer and three of low titer to DEN-3, obtaining a considerable signal in both cases by Western blotting and Dot blotting. Table 31.
  • mice were immunized with 35 ug ip of the purified PAZ1 preparation using Freund's adjuvant. A part of these animals (10 mice) were bled after the fourth dose and the anti-DEN antibodies were determined by ELISA. High titers against DEN-3 were obtained while, compared to the rest of the serotypes, no reactivity was obtained (table 32 and table 35). In parallel, the IHA test was performed, obtaining positive titers only for DEN-3 (Table 33 and Table 35). Finally, the in vitro neutralization test was carried out evidencing neutralizing titles (1,320) against DEN-3 while against the rest of the serotypes there was no neutralization of viral infectivity (table 34 and table 35). These results indicate the great serotype-specificity of the antibodies generated by PAZ1. Table 32. Antibody titers against DEN-3 of sera obtained after immunization with PAZ1.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hergglutinating units.
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutmation of goose erythrocytes against 8 viral hergglutinating units.
  • Neutralizing titres were defined as the highest dilution of serum where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • the nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the DEN-3 virus envelope protein (Sequence No. 29) was amplified with the oligonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 1 and Sequence No. 13 from of the DEN-3 viral strain (Osatomi K, Sumiyoshi H Complete nucleotide sequence of dengue type 3 virus genome RNA. Virology 1990. 176 (2): 643-647).
  • the vector was generated by Xba l / Eco Rl digestion of the PM84 His plasmid, which contains the nucleotide sequence of the MDH plus the encoder for a 6 histidine tail (Sequence No.
  • the biomass obtained from the strain transformed with pAZ2 was broken in the French press.
  • the recombinant protein was obtained in a soluble and insoluble way. From the insoluble fraction, the recombinant protein was extracted with Urea 6M and then a buffer change was made for G-25. From the sample in 10mM Tris, affinity chromatography was performed by metal chelates. The matrix used was Banating Sepharose FF previously coupled with Cu ++ ions. A wash with 50 mM Imidazole was performed and then elution was performed with 150 mM imidazole. Finally, the pure preparation was applied on a G-25 column to obtain it in the formulation buffer (PBS) and perform the immunological studies.
  • PBS formulation buffer
  • the purified fraction of PAZ2 was characterized both by recognition with different murine polyclonal and monoclonal sera, as well as by Dengue positive human sera (Table 36).
  • the highest recognitions for Dot blotting were obtained with the LAHI anti-DEN-3.
  • the recognition by LAHI against the other serotypes was lower.
  • no recognition was obtained.
  • the reactivity was analyzed against three human sera of high titer and three of low titer to DEN-3, obtaining a considerable signal in both cases by Dot blotting and Western blotting.
  • mice 25 Balb / c mice were immunized with 20 ⁇ g of the purified PAZ2 preparation using Freund's Adjuvant. A part of the animals (10 mice) were bled after the fourth dose and the anti-DEN antibodies were determined by ELISA. High titers against DEN-3 were obtained while, compared to the rest of the serotypes, no reactivity was obtained (Table 37 and Table 40). In parallel, the IHA test was performed, obtaining positive titers only for DEN-3 (Table 38 and Table 40). ) Finally, the m vitro neutralization test was carried out, reaching titres of 1/1280 against DEN-3 (table 39). Neutralizing titles were not obtained against the rest of the serotypes (table 40).
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titres were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • EXAMPLE 33 Obtaining pAZ3
  • the nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the envelope protein of the DEN-3 virus (Sequence No. 39) was amplified with the gonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 14 and Sequence No. 15 from the viral strain of DEN-3 (Osatomi K, Sum ⁇ yoshi H Complete nucleotide sequence of dengue type 3 virus and RNA.
  • the vector was generated by Bam Hl digestion / Bam Hl of plasmid pD4, which contains the MDH gene with a sequence of 6 histidines without stop codon (Sequence No.26) After the ligation process, the possible recombinants were analyzed by restriction and the positives were sequenced to check the junctions
  • the competent W3110 cells were transformed with the selected clone called pAZ3 (Fig. 9 and Sequence No. 44) After the growth of the colony in LB liquid medium, an SDS-PAGE of the cell lysate was performed. A band of approximately 80 kDa corresponding to 20% of total proteins in the cell was obtained. The size obtained corresponds to the sum of the MDH and the DENe protein fragment of DEN-3. This band was recognized with anti-DEN- AcP. 3 contained in a LAHI The protein was called PAZ3 (Sequence No.45).
  • the biomass obtained from the strain transformed with pAZ3 was broken in the French press.
  • the recombinant protein was obtained in a soluble and insoluble way. From the insoluble fraction, the protein was extracted with Urea 7M and then a buffer change was made for G-25. From the sample in 10mM Tris, an affinity chromatography was performed by metal chelates. The matrix used was Banating Sepharose FF previously coupled with Cu * ions. A 45 mM Imidazole wash was performed and then elution was performed with imidazole 230 mM Finally, the pure preparation was applied on a G-25 column to obtain it in the formulation buffer (PBS) and perform the immunological studies.
  • PBS formulation buffer
  • the purified fraction of PAZ3 was characterized both by recognition with different polyclonal and several monoclonal sera, as well as by Dengue positive human sera (table 41).
  • the highest recognitions for Dot blotting were obtained with the LAHI ant ⁇ -DEN-3 Recognition by LAHI against the other serotypes it was lower In the case of antibodies generated by other flaviviruses such as Yellow Fever, and St Louis Encephalitis no recognition was obtained Finally, the reactivity against three human sera of high title and three of low title to DEN-3, obtaining a considerable signal in both cases by Western blotting and Dot blotting
  • EXAMPLE 36 Characterization of the antibody response generated by PAZ3 25 Balb / c mice were immunized with 20 ug i p of the purified PAZ3 preparation using Freu ⁇ d adjuvant. A part of the animals (10 mice) were bled after the fourth dose and the anti-DEN antibodies were determined by ELISA. High titers against DEN-3 were obtained, whereas no reactivity was obtained against the rest of the serotypes (Table 42). and table 45) In parallel, the I HA test was performed, obtaining positive titers only for DEN-3 (table 43 and table 45). Finally, the in vitro neutralization test was performed, reaching 1 1280 titers against DEN-3 (table 44) No neutralizing titles were obtained against the rest of the serotypes (table 45).
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titres were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • the nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the DEN-4 virus envelope protein (Sequence No. 46) was amplified with the gonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 17 and Sequence No. 18 from DEN-4 viral strain (Zhao B, Mackow ER, Buckler-White AJ, Markoff L, Chancock RM, Lai C-J, Makino Y Clonmg full-length Dengue type 4 viral DNA sequences Analysis of genes coding for structural proteins Virology 1986 155 77-88)
  • the vector was generated by Xba l / Bam Hl digestion of the PM108 His plasmid which contains the nucleotide sequence encoding the N-terminal region of the MDH and for a sequence of 6 histidms (Sequence No.
  • the competent W3110 cells were transformed with the selected clone called plD1 (Fig 10 and Sequence No. 47) After cr growth of the colony in LB liquid medium, an SDS-PAGE of the cell lysate was performed A band of approximately 25 kDa corresponding to 10% of total proteins in the cell was obtained. The size obtained corresponds to the sum of the N-terminal region of the MDH and the DENe protein fragment of DEN-1. This band was recognized with anti-DEN-4 AcP contained in a LAHI. The protein was called PID1 (Sequence No.48). EXAMPLE 38. Purification of the PID1 protein
  • the biomass obtained from the strain transformed with plD1 and grown at 37 ° C was broken in the French press.
  • the recombinant protein was obtained in an insoluble way associated with the precipitate of cell rupture.
  • an extraction with 6 M urea was performed and the supernatant, containing the PLL1 protein, was applied on a G-25 column to remove the agent.
  • chaotropic The fraction obtained was applied on a Banating sepharose FF column (Pharmacia, UK), in the presence of Cu ++ ions.
  • the elution was performed with 60 mM Imidazole and the volume obtained was applied on a G-25 column to obtain the protein. in the formulation buffer (PBS). This preparation was used for immunological studies EXAMPLE 39. Antigenic characterization of PID1.
  • the purified fraction of PID1 was characterized both by recognition with different po clonal and monoclonal serum sera as well as by Dengue positive human sera (table 46).
  • the highest recognitions for Dot blotting were obtained with LAHI anti-DEN-4 Recognition by LAHI against the other serotypes it was lower In the case of antibodies generated by other flaviviruses such as Yellow Fever and San Luis Encephalitis no recognition was obtained.
  • the reactivity was analyzed against three human sera of high title and three of low title to DEN-4, obtaining a considerable signal in both cases by Western blotting and Dot blotting
  • mice 25 Balb / c mice were immunized with 35 ug i.p of the purified preparation of PID1 using Freund's Adjuvant. A part of these animals (10 mice) were bled after the fourth dose and the anti-DEN antibodies were determined by ELISA. High titers against DEN-4 were obtained while, compared to the rest of the serotypes, no reactivity was obtained (table 47 and table 50). In parallel, the IHA test was performed, obtaining positive titers only for DEN-4 (Table 48 and Table 50).
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titres were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • the nucleotide sequence coding for amino acids 286 to 426 of the DEN-4 virus envelope protein (Sequence No. 46) was amplified with the oligonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 16 and Sequence No. 18 from the DEN-4 viral strain (Zhao B, Mackow ER, Buckler-White AJ, Markoff L, Chancock RM, Lai C-J., Makino and Clonmg full-length Dengue type 4 viral DNA sequences Analysis of genes coding for structural proteins Virology 1986.
  • the vector was generated by Xba l / Eco Rl digestion of the PM84 His plasmid, which contains the nucleotide sequence of the MDH plus the encoder for a 6 histidine tail (Sequence No. 26) This digestion allows insertion of the PCR amplified fragment within the coding region for a structural domain of the MDH After the ligation process, the possible recombinants were analyzed by restriction and the positives were sequenced to check the junctions Competent MM294 cells were transformed with the selected clone called plD2 (Fig. 11 and Sequence No.49) After the growth of the colony in LB liquid medium, an SDS-PAGE of the cell lysate was made.
  • the purified fraction of PID2 was characterized both by recognition with different murine polyclonal and monoclonal sera, as well as by Dengue positive human sera (table 51)
  • mice 25 Balb / c mice were immunized with 20 ug ip of the purified PID2 preparation using Freund's adjuvant. A part of the animals (10 mice) were bled after the fourth dose and the anti-DEN antibodies were determined by ELISA. High titers against DEN-4 were obtained while, compared to the rest of the serotypes, no reactivity was obtained (table 52 and table 55). In parallel, the I HA test was performed, obtaining positive titers only for DEN-4 (table 53 and table 55). Finally I know Performed the in vitro neutralization test, attaining 1/1280 titers against DEN-4 (table 54). Neutralizing titres were not obtained against the rest of the serotypes (Table 55).
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemaggluti ⁇ a ⁇ ó ⁇ of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutmation of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titres were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the envelope protein of the DEN-4 virus was amplified with the oligonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 19 and Sequence No.
  • EXAMPLE 46 Purification of the PID3 protein.
  • the biomass obtained from the strain transformed with plD3 was broken in the French press.
  • the recombinant protein was obtained in a soluble and insoluble way. From the insoluble fraction, the recombinant protein was extracted with Urea 6M and then a buffer change was made for G-25. From the sample in 10mM Tris, affinity chromatography was performed by metal chelates. The matrix used was Banating Sepharose FF previously coupled with Cu ++ ions. A wash with 40 mM Imidazole was performed and then elution was performed with 200 mM imidazole. Finally, the pure preparation was applied on a G-25 column to obtain it in the formulation buffer (PBS) and perform the immunological studies EXAMPLE 47. Antigenic characterization of PID3
  • the purified fraction of PID3 was characterized both by recognition with different murine polyclonal and monoclonal sera, as well as by Dengue positive human sera (Table 56).
  • the highest acknowledgments for Dof blotting were obtained with the LAHI anti-DEN-4.
  • the recognition by LAHI against the other serotypes was lower.
  • no recognition was obtained.
  • the reactivity was analyzed against three human sera of high titer and three of low titer to DEN-4, obtaining a considerable signal in both cases by Western blotting and Dof blotting. Table 56.
  • EXAMPLE 48 Characterization of the antibody response generated by PID3 25 Balb / c mice were immunized with 20 ug i.p of the purified PAZ3 preparation using Freund's adjuvant. A part of the animals (10 mice) were bled after the fourth dose and the anti-DEN antibodies were determined by ELISA. High titers against DEN-4 were obtained, whereas no reactivity was obtained against the rest of the serotypes (Table 57). and table 60) In parallel, the IHA test was performed, obtaining positive titers only for DEN-4 (table 58 and table 60). Finally, the in vitro neutralization test was performed, reaching high titers against DEN-4 (1280) (table 59). No neutralizing titles were obtained against the rest of the serotypes (table 60).
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the herglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • Neutralizing titres were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • the nucleotide sequence encoding amino acids 286 to 426 of the DEN-4 virus envelope protein (Sequence 46) was amplified with the oligonucleotides identified in the sequence listing as Sequence No. 16 and Sequence No. 21 from DEN-4 viral strain (Zhao B., Mackow E R., Buckler-White AJ, Markoff L, Chancock RM, Lai C-J., Makino Y Cloning full-length Dengue type 4 viral DNA sequences. Analysis of genes coding for structural proteins Virology 1986. 155: 77-88).
  • the vector was generated by Xba / Xba I digestion of plasmid pLL3, which contains the MDH gene with a sequence of 6 histidines in the 3 'region of the gene and the sequence of the DEN-2 E fragment at the end 3 'This allows obtaining two regions of E of serotypes 4 and 2 fused in the same MDH gene.
  • the possible recombinants were analyzed by restriction and the positives were sequenced to check the junctions.
  • Competent MM294 cells were transformed with the selected clone called pD4D2 (Fig 13 and Sequence No.53). After colony growth in LB medium, an SDS-PAGE of the cell lysate was performed.
  • a band of approximately 110 kDa corresponding to 20% of total proteins in the cell was obtained.
  • the size obtained corresponds to the sum of the MDH and the two fragments of the DENe protein of the DEN This band was recognized with AcP anti-DEN-2 and anti DEN-4 contained in a LAHI
  • the protein was named PD4D2 (Sequence No.54).
  • EXAMPLE 50 Purification of PD4D2 protein.
  • the biomass obtained from the strain transformed with pD4D2 was broken in the French press.
  • the recombi ⁇ a ⁇ te protein was obtained in a soluble and insoluble form. From the insoluble fraction, the recombinant protein was extracted with Urea 6M and then a buffer change was made with G -25 From the sample in 10mM Tris, chromatography was performed of affinity for metal chelates The matrix used was Banating Sepharose FF previously coupled with Cu ++ ions. A 30 mM Imidazole wash was performed and then the elution was performed with 250 mM imidazole. Finally, the pure preparation was applied on a G column. -25 to obtain it in the formulation buffer (PBS) and perform immunological studies
  • the purified fraction of PD4D2 was characterized both by recognition with different polyclonal and monoclonal sera, as well as by Dengue positive human sera (Table 61).
  • the highest recognitions for Dot blotting were obtained with LAHI ant ⁇ -DEN-2 and ant ⁇ -DEN- 4
  • the recognition by LAHI against the other serotypes was lower.
  • recognition for the 3H5 monoclonal antibody similar to that obtained was maintained.
  • PLL2 and PLL3 Finally, the reactivity against high and low titre human sera against DEN-2 and DEN-4 was analyzed, obtaining a considerable signal in both cases by Western blotting and Dot blotting
  • mice 25 Balb / c mice were immunized with 20 ug ip of the purified PAZ3 preparation using Freund's adjuvant
  • One part of the animals (10 mice) were bled after the fourth dose and the anti-DEN antibodies were determined by ELISA.
  • High titers against DEN-2 and DEN-4 were obtained while, compared to the rest of the serotypes, no reactivity was obtained (Table 62 and Table 65).
  • the I HA test was performed, obtaining positive titers only for DEN-2 and DEN-4 (Table 63 and Table 65).
  • the in vitro neutralization test was performed, reaching high titers against DEN-2 (> 1: 1280) and DEN-4 (> 1: 1280) (table 64). No neutralizing titles were obtained against the rest of the serotypes (table 65).
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting the hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutinating units.
  • Neutralizing titers were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • Table 65 Cross-reactivity assay against all viral serotypes by ELISA, IHA and viral neutralization, with sera from animals immunized with PD4D2.
  • IHA titers were defined as the highest dilution capable of inhibiting hemagglutination of goose erythrocytes against 8 viral hemagglutmant units.
  • Neutralizing titres were defined as the highest serum dilution where a 50% reduction in the number of viral plaques was obtained.
  • mice that were not bled from each group were used.
  • Each of the animals received a dose of 100 LD 50 of lethal DEN by intracranial inoculation and were observed for 21 days to obtain the lethality percentages. They were used as controls positive groups of 15 mice immunized with the four viral preparations (DEN-1, DEN-2, DEN-3 and DEN-4) All mice in these groups survived while the mice in the control group (-) became ill in all 7 -11 days after the challenge obtaining 100% mortality.
  • the groups immunized with the fusion proteins tested showed between 80% and 100% protection, obtaining in all cases significant differences with respect to the control group (Table 66).
  • Example 54 Lymphoproliferative Response
  • the results in table 66 reflect the stimulation indices obtained, showing a specific serotype response.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Obtención de cadenas quiméricas codificantes para proteínas que inducen en el receptor efectos contra virus, las cuales estimulan la producción de una respuesta humoral serotipo especifica y protección frente a la infección por los virus del Dengue, evitándose los efectos de amplificación viral serotipo inespecíficos causantes de las hemorragias y complicaciones clínicas descritas en este tipo de patología. Estas cadenas de ácidos nucleicos están compuestas por la combinación especifica de fragmentos pertenecientes al gen de una proteína mutante con actividad deshidrogenasa de N.meningitidis y fragmentos que codifican para una región de la proteína E de la envoltura de los virus del Dengue, las cuales al insertarse en un vector de expresión, dan como resultado las proteínas quiméricas con características especificas. Las moléculas quiméricas resultantes de esta invención son aplicables a la industria farmacéutica en la obtención de preparados vacunales y diagnósticos de alta especificidad serotípica para uso en humanos.

Description

CADENAS QUIMÉRICAS CODIFICANTES PARA PROTEÍNAS INDUCTORAS DE
EFECTOS CONTRA VIRUS.
Campo de la Técnica La presente invención esta relacionada con el campo de la biotecnología y la industria farmacéutica, en particular con la obtención de cadenas nucleotídicas quiméricas las cuales al ser introducidas en un vector de expresión, dan como resultado proteínas capaces de inducir respuesta humoral serotipo específica y protección frente a la infección por el virus del Dengue, nombrado en lo adelante DEN, evitándose los efectos de amplificación viral serotipo inespecíficos causantes de las hemorragias y complicaciones clínicas descritas en este tipo de patología. Arte Previo
El virus del Dengue (DEN), es un virus envuelto cuya membrana lipídica contiene dos de sus tres proteínas estructurales: la proteína de la envoltura y la proteína de la membrana Esta envoltura proteica rodea a una nucleocápsida icosaédπca compuesta por la tercera de sus proteínas estructurales, la proteína de la cápsida. Este virus pertenece a la familia Flavivirídae y existen cuatro serotipos diferentes. Su transmisión al hombre se realiza a través del mosquito Aedes aegypti, que pertenece a la familia Stegomia La enfermedad producida en el humano por este virus fue considerada como benigna y se describió como Fiebre del Dengue o Dengue Clásico (FD) hasta la aparición de una modalidad más grave y a veces letal caracterizada por fiebre hemorrágica y choque, denominada: Fiebre Hemorrágica del Dengue y Síndrome de Choque por Dengue (FHD/SCD) (Hammon WMc. New haemorragic fever in children in the Philippines and Thailand Trans Assoc Physicians 1960; 73: 140-155) Se han realizado vanos estudios epidemiológicos evidenciándose como factor de riesgo la infección secuencial por dos serotipos virales diferentes (Kourí GP, Guzmán MG, Bravo JR Why dengue hemorrhagic fever in Cuba? 2 An integral analysis Trans Roy Soc Trop Med Hyg 1987; 72 821-823). Este fenómeno se explica por la potenciación inmunológica, la cual se basa en un aumento de la mfectividad viral por incremento en la entrada del complejo virus-anticuerpo a la célula a través de los receptores Fe de la célula diana (monoc¡tos)(Halstead SB. Pathogenesis of dengue challenges to molecular biology. Science 1988; 239: 476-481). Se han desarrollado tecnologías basadas en la generación de vacunas vivas atenuadas pero en la actualidad existen múltiples incógnitas sobre los posibles beneficios de estas ya que pueden revertir a la virulencia, interferencia viral y recombinaciones intergenómicas. Alternativamente, se han obtenido antígenos recombinantes como posibles componentes de una vacuna por subunidades (Feíghny, R , Borrous, J. and Putnak R. Dengue type-2 virus envelope protein made using recombinant baculovirus proteets mice agamst virus challenge. Am. J. Trop Med. Hyg. 1994. 50(3). 322-328; Deubel, V , Staropo I , Megret, F , et al Affmity-punfied dengue-2 virus envelope glycoprotein induces neutralismg antibodies and protective immunity m mice Vac ne 1997 15, 1946-1954) El principal antigeno lo constituye la proteina DENe de la envoltura del virus Dicha proteina es el mayor componente de la superficie del vmon y se plantea que media la unión del virus al receptor celular (A Heinz FX, Berge R, Turna W et al A topological and functional model of epitopes on the structural glycoprotein of tick-borne encephalitis virus defined by monoclonal antibodies Virology 1983, 126. 525) Esta proteina presenta homología estructural con la del virus de la encefalitis mediada por garrapatas (TBE) (Rey, F A , Heinz, F X , Mandl, C , et al The envelope glycoproteiπ from tick borne encephalitis virus at 2 A° resolution Nature 1995, 375 291-298) y entre los serotipos es estructuralmente conservada
Las células de insectos constituyen uno de los sistemas utilizados para la expresión de diversos genes foráneos que emplean los baculovirus como vectores Estos vectores se han utilizado para la expresión de diferentes combinaciones de proteínas estructurales y no estructurales del virus de la Encefalitis japonesa (JEV), del DEN-1 , del DEN-2 y del DEN-4, (Matsuura Y, Miyamoto M, Soto T et al Characteπzation of japanese encephalitis virus envelope protein expressed by recombmant baculoviruses Virology 1989, 173 677- 682, Deubel V, Bordier , Megret F et al Processing, secretion and immunoreactivity of carboxy terminally truncated dengue-2 envelope proteins expressed in insect cell by recombinant baculoviruses Virology 1991 , 180 440-447, Putnak R, Feíghny R, Burrous J et al Dengue 1 virus envelope glycoprotein gene expressed in recombmant baculovirus elicit virus neutra zation antibodies m mice and protects them from virus challenge. Am J Trop Med Hyg 1991 , 45 159-167, Feíghny R, Burrous J, Putnak R Dengue type 2 virus envelope protein made using recombmant baculovirus protects mice agamst virus challenge Am J Trop Med Hyg 1994, 50 322-328) Otro sistema utilizado ha sido las células de Drosophila melanogaster con diferentes vanantes de proteina E recombmante (PCT/US96/07627) A pesar de obtenerse una respuesta funcional adecuada, al utilizar las proteínas expresadas en estos sistemas, ellos implican un alto costo para el desarrollo de procesos de producción a gran escala por lo que la expresión en levaduras ha sido una alternativa para producir proteínas recombinantes estructurales de flavivirus Sin embargo, en el caso de la proteína DENe, expresada en Pichia pastons (PCT/US96/07627, Sugrue R J , Fu H , Howe J , Chan Y Expression of the Dengue virus structural proteins in Picha pastons leads to the generation of virus-like partióles J Virol 1997 78, 1861-1866) los niveles de expresión son bajos, tanto de forma secretada como mtracelularmente, dificultándose así el proceso de purificación
Paralelamente, se han obtenido diferentes vanantes de la proteína DENe en bacterias Una de ellas fue la porción carboxilo-termmal de la proteína E del JEV fusionada a una proteina del metabolismo del Triptofano (TrpE) de E coli Ésta fue reconocida por anticuerpos monoclonales (AcM) neutralizantes en técnicas de inmuno-identificación y es producida de forma intracelular en cuerpos de inclusión, sin embargo, los preparados puros de esta proteina no fueron capaces de desarrollar en los animales receptores anticuerpos (Acs) neutralizantes, ni hubo protección durante el reto viral (Masón P W , Zogel M V , Semproni A R , et al The antigenic structure of dengue type 1 virus envelope and NS1 protein expressed in E coli J Gen Virol 1990 71 2107-2114) Adicionalmente, se desarrollo otra construcción (Sπvastava A K , Monta K , Matsuo S , et al Japanese encephalitis virus fusión protein with protein A expressed m E coli confers protectioπ m mice Microbiol Immunol 1991 35 863-870) que contiene la proteina A de Staphylococus auπos fusionada al fragmento carboxilo-terminal de la proteína E, seguida del segmento amino-terminal de la proteina no estructural del JEV, la NS1 En este caso la proteina de fusión fue producida de forma soluble facilitando su purificación por cromatografía de afinidad Al inmunizar ratones con esta proteina pura se desarrollaron altos títulos de anticuerpos neutralizantes e inhibidores de la hemaglutinacion, y se logro protección ante el reto viral con el JEV Resultados similares se obtuvieron empleando la región de la protema DENe del DEN-2 fusionada a la proteina A de S áureos (Sπvastava A K , Putnak R J , Warren R L , Hoke C H Mice immumzed with a dengue type 2 virus E and NS1 fusión protein made in Escheπchia coli are protected against lethal dengue virus infection Vaccine 1995 13 1251-1258), sin embargo, no es posible utilizar estas preparaciones en humanos debido a la presencia de la proteina A, la cual se ha demostrado que tiene una gran afinidad por la inmunoglobulma G humana Finalmente, se ha reportado la obtención de una proteina de fusión que comprende el Dominio B de la proteina DENe del DEN-2 y la protema de unión a maltosa (MBP) de E co (Simmons M , Nelson W M , Wu S J , Hayes C G Evaluation of the protective efficacy of a recombinant dengue envelope B domain fusión protein agamst dengue 2 virus mfection in mice Am J Trop Med Hyg 1998 58 655-662) llamada MBP-DomB Esta vanante proteica fue mmunogenica en ratones e indujo Acs neutralizantes En nuestro caso el objeto de esta invención trata sobre la obtención de secuencias quiméricas, como por ejemplo la primera de ellas formada por la secuencia que codifica para una región de la proteina DENe unida a la secuencia que codifica para el fragmento N-termmal de una proteina mutante con actividad deshidrogenasa (MDH) de N meningitidis, la segunda, por la secuencia que codifica para la región la proteina DENe, unida al gen completo de la proteina MDH en dos posiciones diferentes y la tercera de las secuencias quiméricas esta formada por dos fragmentos de la protema DENe de dos serotipos virales diferentes fusionados en el mismo gen de la protema MDH. Estas cadenas quiméricas al ser insertadas cada una en un vector apropiado, dan como resultado proteínas quiméricas obtenidas de forma insoluole en el citoplasma de la bacteria capaces de provocar una alta respuesta de anticuerpos neutralizantes contra DEN, inhibidores de la hemaglutinación viral y de proteger frente al reto viral en ratones inmunizados con dichas proteínas recombinantes.
Teniendo en cuenta la insolubilidad de dichas proteínas, se logró un proceso de plegamiento in vitro fácilmente escalable así como los procesos de expresión y purificación, superando a los utilizados por Simmons et al, 1998. Por otra parte, se demuestra la especificidad serotípica de los anticuerpos, generados por la inmunización con dichas proteínas en ratones, al nivel de neutralización, inhibición de la hemaglutinación y ELISA, empleándose dosis más bajas que las reportadas por Simmons et al, 1998. Este constituye el primer reporte de proteínas insolubles en E. coli conteniendo regiones de la proteína DENe del virus dengue capaces de generar una respuesta inmune funcional. Adlcionalmente, teniendo en cuenta los resultados obtenidos con la variante dimérica, es posible generar con una misma molécula anticuerpos serotipo específicos para dos serotipos de virus diferentes capaces de neutralizar la infectividad viral y proteger frente al reto con DEN en ratones. En cuanto a la proteína MDH, se ha realizado una búsqueda de homología con otras secuencias de la base de datos del EMBL y reveló que los primeros 110 aminoácidos son altamente similares a la región del dominio de unión al ácido lipóico y al brazo flexible de la dihidrolipoamida acetiltransferasa (enzima E2 de los complejos piruvato dehidrogenasa y -cetoglutarato dehidrogenasa), y el resto de la proteína era altamente similar a la lipoamida dehldrogenasa (LPDH), enzima E3 de dichos complejos (Stephens, P. E; H. M. Darlinson, y J. R. Guest.,1983. The Pyruvate. Se encontró además que en los enfermos de cirrosis biliar primaria se generaban autoanticuerpos antimitocondriales, específicos contra el sitio de unión al ácido lipóico, común entre estas proteínas (Gershwin ME, Mackay IR, Sturgess A, Coppel RL Identification and specificity of a cDNA encoding the 70 KDa mitochondrial antigen recognized in primary biliary clrrhosis. J Immunol 1987;138:3525-31). Por lo tanto, muíamos esta región de la proteína, previendo que al ser utilizada la misma como parte de nuestros antígenos vacunales quiméricos, esta pudiera generar reacciones autoinmunes. La proteína mutante MDH utilizada en nuestra invención, ha sido utilizada en ensayos clínicos de fase I en humanos demostrándose la ausencia de reactogenicidad y por consiguiente su factibilidad de uso, además de no ser reconocida por el suero de enfermos con cirrosis biliar primaria (Pérez, A., F. Dickinson, Z. Cinza, A. Ruíz, T. Serrano, J. Sosa, S. González, Y. Gutiérrez, C. Nazábal, O. Gutiérrez, D. Guzmán, M. Díaz, M. Delgado, E. Caballero, G. Sardinas, A. Alvarez, A. Martín, G. Guillen, R. Silva. Safety and preliminary immunogenicity of the recombinant outer membrane protein of Neisseria meningitidis in human volunteers. Vaccine (enviada). Sin embargo la posibilidad del uso de la mencionada proteína MBP en humanos no ha sido demostrada. (Simmons M., Nelson W.M., Wu S.J., Hayes C.G. Evaluation of the protective efficacy of a recombinant dengue envelope B domain fusión protein against dengue 2 virus infection in mice. Am J Trop Med Hyg. 1998. 58: 655-662). Descripción detallada de la invención. En esta invención se describe la obtención de cadenas πucleotídica quiméricas las cuales al ser introducidas en un vector de expresión, dan como resultado proteínas quiméricas capaces de inducir una respuesta humoral serotipo específica y protección frente a la infección por el virus del Dengue, como por ejemplo la primera de estas cadenas esta formada por una secuencia que codifica para un fragmento de la proteína E (DENe) de cada uno de los serotipos virales de Dengue (DEN), unida a la secuencia que codifica para el N-terminal de una proteína mutante con actividad deshidrogenasa (MDH) de N. meningitidis, en una segunda cadena quimérica la secuencia que codifica para el fragmento de la proteína DENe de cada serotipo viral, se fusionó al gen completo de la proteína MDH en dos posiciones diferentes: en un sitio dentro de una secuencia que codifica para un dominio estructural de la proteína MDH (el dominio de unión a ácido lipoico y en el extremo 3' del gen), y en la tercera cadena quimérica se insertan las secuencias correspondientes a fragmentos de la proteína DENe de dos serotipos de virus diferentes, el DEN-2 y el DEN-4, en dos posiciones diferentes del gen MDH: en un sitio dentro de la secuencia que codifica para el dominio de unión a ácido lipoico (el serotipo 4) y en el extremo 3' del gen (el serotipo 2), la nombramos dimérica. Las proteínas quiméricas se obtuvieron de forma ¡nsoluble en el citoplasma de la bacteria. Se desarrolló un proceso de purificación fácilmente escalable por cromatografía de quelatos metálicos (IMAC) que permitió la obtención de las proteínas puras para el estudio de inmunogenicidad. Al analizar los resultados de antigenicidad se demostró un fuerte reconocimiento de todas las proteínas quiméricas recombinantes por los líquidos ascíticos hiperinmunes (LAHI) anti-DEN, siendo mayor los obtenidos en los casos de fusión al gen completo de la MDH, lo cual evidencia un efecto positivo en la conformación de la región proveniente de la proteína DENe dado por la MDH. En los casos donde se utilizó el serotipo 2, todas las proteínas recombinantes obtenidas son reconocidas por un anticuerpo neutralizante serotipo-específíco (3H5), siendo también mayor en los casos de fusión al gen completo de la MDH, así como en la dimérica. Se observó además, que el reconocimiento por los líquidos ascíticos hiperinmunes (LAHI) del serotipo homólogo en cada caso superaba ostensiblemente el reconocimiento por los LAHI de serotipos heterólogos, demostrándose la exposición de epitopos serotipo específicos y permitiendo así su uso como diagnóstico de dengue y serotipaje.
Al inmunizar con todas las proteínas quiméricas recombinantes se obtuvo respuesta neutralizante y protectora en ratones. Los mayores títulos neutralizantes se obtuvieron con las secuencias fusionadas al gen completo de la MDH y con la dimérica, independientemente de la posición del fragmento perteneciente la proteína DENe. Esto demostró un efecto potenciador de la respuesta inmune mediado por la MDH que puede ser explicado por la influencia en el plegamiento del fragmento de la proteíπa DENe reflejado en los resultados de antigenicidad. Se demostró además por primera vez, y contrario a lo descrito en el arte previo, que la insolubilidad de estas proteínas no influye en la capacidad de generar una adecuada respuesta inmune.
La respuesta inmune generada en todos los casos fue serotipo específica (anticuerpos contra el serotipo homólogo inmunizado), en la neutralización viral, la inhibición de la hemaglutinación y ELISA. La generación de anticuerpos serotipo-específicos implica que no sean capaces de reconocer a determinantes antigénicos, provenientes de virus de serotipos heterólogos, que favorezcan el fenómeno de inmunopotenciación. Esta característica es de gran importancia para un candidato vacunal contra el Dengue ya que el reconocimiento de anticuerpos a serotipos heterólogos puede ser una de las causas del Dengue Hemorrágico (DHF). Se demostró además, la inducción de anticuerpos contra dos serotipos virales después de la inmunización con una sola de las proteínas quiméricas, lo cual posibilita la formulación de una vacuna contra los cuatro serotipos, utilizando sólo dos de nuestras proteínas quiméricas recombinantes. La obtención de la proteína mutante MDH, consistió en la eliminación del sitio de unión al ácido lipóico en la secuencia ETDKAT, que consiste en la unión covalente de este ácido graso con los grupos amino-epsiloπ de la lisina (K) (Tuaillon N, Andre C, Briand JP et al. A lipoyl synthetic octadecapeptide of dihydrolipoamide acetyltransferase specifically recognized by anti-M2 autoantibodies in Primary Biliary Cirrhosis. J Immunol 1992;148:445-50). La mutagénesis se realizó empleando la técnica de PCR, utilizándose dos pares de cebadores para amplificar la región N-terminal (desde el inicio del gen IpdA hasta el sitio de unión a ácido lipóico, 135 pb) y el C-terminal de la proteína (a partir del sitio de unión a ácido lipóico y hasta el extremo 3' del gen), quedando eliminada la posibilidad de generar reacciones autoinmunes, como se demostró en los estudios clínicos en humanos. Depósito de material biológico
Los plásmidos PLL1, PLL2, PLL3, PLH1 , PLH2, PLH3, PAZ1 , PAZ2, PAZ3, PID1, PID2 y PID3 fueron depositados según el Tratado de Budapest en el Belgian Coordinated collection of Microorganism - BCCM™ , LMBP-COLLECTION, con fecha y bajo los números de acceso pendientes respectivamente
DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Figura 1. Estrategia de clonación del fragmento de E2 para la obtención de PLL1. DENe2 Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-2
N-term: Secuencia nucleotídica que codifica para la región de los primeros 45 aminoácidos de la MDH
Figura 2. Estrategia de clonación del fragmento de E2 para la obtención de PLL2
DENe2 Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-2.
MDH mutante de deshidrogenasa Figura 3. Estrategia de clonación del fragmento de E2 para la obtención de PLL3
DENe2 Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-2.
MDH mutante de deshidrogenasa
Figura 4. Estrategia de clonación del fragmento de E1 para la obtención de PLH1
DENel Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-1. N-term: Secuencia nucleotídica que codifica para la región de los primeros 45 aminoácidos de la MDH.
Figura 5 Estrategia de clonación del fragmento de E1 para la obtención de PLH2.
DENel Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-1
MDH mutante de deshidrogenase.
Figura 6. Estrategia de clonación del fragmento de E1 para la obtención de PLH3. DENel Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-1.
MDH mutante de deshidrogenasa
Figura 7. Estrategia de clonación del fragmento de E3 para la obtención de PAZ1.
DENe3 Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-3.
N-term: Secuencia nucleotídica que codifica para la región de los primeros 45 aminoácidos de la MDH Figura 8. Estrategia de clonación del fragmento de E3 para la obtención de PAZ2.
DENe3 Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-3.
MDH mutante de deshidrogenasa
Figura 9. Estrategia de clonación del fragmento de E3 para la obtención de PAZ3.
DENe3 Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-3. MDH mutante de deshidrogenasa.
Figura 10. Estrategia de clonación del fragmento de E4 para la obtención de PID1
DENe4 Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-4
N-temr Secuencia nucleotídica que codifica para la región de los primeros 45 aminoácidos de la MDH
Figura 11. Estrategia de clonación del fragmento de E4 para la obtención de PID2 DENe4: Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-4.
MDH mutante de deshidrogenasa.
Figura 12. Estrategia de clonación del fragmento de E4 para la obtención de PID3
DENe4 Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-4. MDH: mutante de deshidrogenase.
Figura 13. Estrategia de clonación para la obtención de PD4D2. DENe4: Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-4. DENe4: Fragmento de la proteína de la envoltura del DEN-4. MDH: mutante de deshidrogenasa.
EJEMPLOS DE REALIZACIÓN
EJEMPLO 1. Obtención de PLL1
La secuencia nucleotídica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de la envoltura del virus DEN-2 (Sec. Id. No. 22) se amplificó con los oligonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No.1 y Secuencia No.2 a partir de la cepa viral de DEN-2 genotipo Jamaica (Deubel V., Kinney R.M., Trent D.W. Nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the πonstructural proteins of Dengue type 2 virus, Jamaica genotype: Comparative analysis of the full-length genome.Virology 1988.165:234-244)
El vector se generó por digestión Xba l/Bam Hl del plasmidio PM108 His, el cual contiene la secuencia nucleotídica que codifica para la región N-terminal de la MDH y para una secuencia de 6 histidinas (Secuencia No.23). Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones. Las células competentes W3110 (Hill C.W., Harnish B.W. 1982. Transposition of a chro osomal segment bounded by redundant rRNA genes in Escherichia coli. J Bacteriology. 149:449-457) se transformaron con el clon seleccionado llamado pLL1 (Fig.1 y Secuencia No.24). Luego del crecimiento de la colonia en medio líquido Louria Bertani (LB), se realizó un SDS-PAGE del lisado celular. Se obtuvo una banda de aproximadamente 25 kDa correspondiente al 10 % de proteínas totales en la célula. La talla obtenida se corresponde con la suma de la región N-terminal de la MDH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-2. Esta banda fue reconocida con anticuerpos policlonales (AcP) anti-DEN-2 contenidos en un líquido ascítico hiperinmune (LAHI). La proteína se denominó PLL1 (Secuencia No.25). EJEMPLO 2. Purificación de la proteína PLL1.
La blomasa obtenida de la cepa transformada con pLL1 y crecida a 37 °C se rompió en prensa francesa. La proteína recombinante se obtuvo mayoritariamente de forma insoluble asociada al precipitado de ruptura celular. A partir del precipitado, se realizó una extracción con urea 6 M y el sobrenadante, conteniendo la proteína PLL1 , se aplicó en una columna de G-25 para eliminar el agente caotrópico. La fracción obtenida se aplicó en una columna de Quelating sepharose FF (Pharmacia, UK), en presencia de iones Cu++. La elución se realizó con Imidazol 50 mM y el volumen obtenido se aplicó en una columna de G-25 para obtener la proteína en el tampón de formulación NaCI 100 mM, KCI2 2 mM, Na2HP04 10 mM, pH 7 2, KH2P04 1 mM (PBS) Esta preparación se utilizó para los estudios inmunológicos
EJEMPLO 3. Caracterización antigénica de PLL1
La fracción purificada de PLL1 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros po clonales y monoclonales muπnos así como por sueros humanos positivos a
Dengue (tabla 1)
Tabla 1 Reactividad de la proteína PLL1 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales
Acs" Especificidad"* PLLV
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
AcM 3H5 NT +
* Se aplicaron 10 μg de las proteínas purificada PLL1 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta ++
** Los líquidos escíticos hipeπnmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000 *** EEE virus de la Encefalitis Equina YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San Luis NT Neutralizante serotipo específico.
Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el líquido ascítico hiperinmune antι-DEN-2. Este resultado es coincidente con el hecho de que la región clonada pertenece al serotipo 2. El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor, en orden decreciente: DEN-1 y DEN-3 y por último DEN-4 que fue prácticamente imperceptible. En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno Por otra parte, también se observó reactividad con el monoclonal 3H5. Dicho reconocimiento por Western blotting fue dependiente de puente disulfuro ya que al reducir la muestra se perdía la señal. Por último se analizó la reactividad frente a tres sueros humanos de alto título y tres de bajo titulo a DEN-2, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting. EJEMPLO 4. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PLL1
Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 35 ug i p de la preparación purificada de PLL1 utilizando el adyuvante de Freud Una parte de estos animales (10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA Se obtuvieron altos títulos contra DEN-2 mientras que, frente al resto de los serotipos, no se obtuvo reactividad alguna (tabla 2 y tabla 5) Paralelamente se realizo el ensayo de Inhibición de la hemaglutinacion (IHA) obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-2 (tabla 3 y tabla 5) Finalmente se realizo el ensayo de neutralización in vitro evidenciándose títulos neutralizantes (1 320) contra DEN-2 mientras que contra el resto de los serotipos no existió neutralización de la mfectividad viral (tabla 4 y tabla 5) Estos resultados indican la gran serotipo-especificidad de los anticuerpos generados por PLL1 Tabla 2. Títulos de anticuerpos contra DEN-2 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PLL1
Figure imgf000012_0001
Tabla 3 Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteina PLL1
Figure imgf000012_0002
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales Tabla 4. Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PLL1.
Figure imgf000013_0001
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
Tabla 5. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PLL1
Figure imgf000013_0002
Figure imgf000013_0003
Figure imgf000013_0004
* Cada mezcla se formó por la unión de tres sueros
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
EJEMPLO 5. Obtención de PLL2.
La secuencia nucleotídica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de la envoltura del virus DEN-2 (Secuencia No.22), se amplifico con los oligonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No 1 y Secuencia No 3 a partir de la cepa viral de DEN-2 genotipo Jamaica (Deubel V., Kinney R.M , Trent D.W. Nucleotide sequence and deduced ammo acid sequence of the nonstructural proteins of Dengue type 2 virus, Jamaica genotype Comparative analysis of the full-length genome.Virology 1988.165 234-244)
El vector se generó por digestión Xba l/Eco Rl del plasmidio PM84 His, que contiene la secuencia nucleotídica de la MDH más la codificante para una cola de 6 histidinas (Secuencia No 26) Esta digestión permite la inserción del fragmento amplificado por PCR dentro de la región codificante para un dominio estructural de la MDH Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones Las células competentes MM294 (Hanahan D 1983 Studies on transformation of Eschenchia coli with plasmids J Mol. Biol 166 557-580) se transformaron con el clon seleccionado llamado pLL2 (Fig 2 y Secuencia No 27) Luego del crecimiento de la colonia en medio líquido LB, se realizó un SDS-PAGE del usado celular. Se obtuvo una banda de aproximadamente 80 kDa correspondiente al 10% de las proteínas totales en la célula La talla obtenida se corresponde con la suma de la talla de la MDH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-2 Esta banda fue reconocida por un LAHI antι-DEN2 y se denominó PLL2 (Secuencia No 28)
EJEMPLO 6. Purificación de la proteína PLL2 La biomasa obtenida de la cepa transformada con pLL2 y crecida a 37 °C se rompió en prensa francesa. La proteína recombmante se obtuvo de forma msoluble. A partir de la fracción soluble se realizó una cromatografía de afinidad por quelatos metálicos. La matriz utilizada fue Quelating Sepharose FF previamente acoplada con iones CuX Se realizó un lavado con Imidazol 15 mM y luego la elución se realizo con imidazol 100 M. Por otra parte, la fracción msoluble de la proteína recombinante se extrajo con urea 8 M. Posteriormente se eliminó el agente caotrópico con una columna de G-25 y el eluato se aplicó en una columna de Quelating Sepharose FF (Pharmacia, UK) en presencia de iones Cu++ La elución se llevó a cabo con Imidazol 100 mM Finalmente, la preparación pura de las dos proteínas, se aplicó en una columna de G-25 para obtenerlas en el tampón de formulación (PBS) y realizar los estudios inmunológicos EJEMPLO 7. Caracterización antigénica de PLL2
La fracción purificada de PLL2 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros policlonales y monoclonales muπnos así como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 6) Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el LAHI antι-DEN-2 El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor, en orden decreciente: DEN-1 y DEN-3 y por último DEN-4, que fue prácticamente imperceptible En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla, y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno Sin embargo, al analizar el reconocimiento por el monoclonal 3H5, se observó una gran reactividad (mayor que la obtenida con PLL1) tanto por Dot blotting como por Western blotting. Contrariamente a lo obtenido con PLL1 , el reconocimiento del monoclonal se mantiene aun en presencia de agentes reductores en la muestra, lo cual indica una diferencia conformacional entre ambas proteínas Finalmente se analizó la reactividad frente a tres sueros humanos de alto título y tres de bajo título a DEN-2, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting
Tabla 6. Reactividad de la proteína PLL2 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales
Acs**
Especificidad*"' PLL2 sol. ins*
LAHI DEN-1 ++
LAHI DEN-2 +++
LAHI DEN-3 -
LAHI DEN-4 -
LAHI EEE -
LAHI YFV -
LAHI SLV -
AcM 3H5 NT +++
* Se aplicaron 10 μg de la proteína purificada PLL2 soluble e insoluble (sol, ins) La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++ ** Los líquidos asciticos hipeπnmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000
*** EEE virus de la Encefalitis Equina, YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San Luis NT Neutralizante serotipo específico
EJEMPLO 8. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PLL2.
Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 20 ug i p de la preparación purificada de PLL2 tanto soluble como insoluble, utilizando el Adyuvante de Freud. Una parte de los animales (10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA. Se obtuvieron altos títulos contra DEN-2 mientras que, frente al resto de los serotipos no se obtuvo reactividad alguna (tabla 7 y tabla 10) Paralelamente se realizó el ensayo de IHA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-2 (tabla 8 y tabla 10). Finalmente se realizó el ensayo de neutralización in vitro alcanzándose títulos de 1/1280 contra DEN-2 Similar a lo obtenido con PLL1 , no se obtuvieron títulos neutralizantes contra el resto de los serotipos (tabla 9 y tabla 10) Los resultados de ambas vanantes de PLL2 fueron similares, indicando que no influye el estado de solubilidad de la protema en la capacidad de inducir anticuerpos funcionales
Tabla 7. Títulos de anticuerpos contra DEN-2 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PLL2 soluble e insoluble
Figure imgf000016_0001
Tabla 8. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la protema PLL2 soluble e msoluble
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
Tabla 9. Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PLL2 soluble e insoluble.
Figure imgf000017_0001
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales
Tabla 10. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PLL2 soluble e ¡nsoluble
Figure imgf000017_0002
Figure imgf000017_0003
Figure imgf000017_0004
* Cada mezcla se formó por la unión de tres sueros
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutiπación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales EJEMPLO 9. Obtención de pLL3.
La secuencia nucleotídica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de la envoltura del virus DEN-2 (Secuencia No.22) se amplificó con los oligonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No.4 y Secuencia No.5 a partir de la cepa viral de DEN-2 genotipo Jamaica (Deubel V , Kiπney R.M., Trent D.W. Nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of the nonstructural proteins of Dengue type 2 virus, Jamaica genotype: Comparative analysis of the full-length genome.Virology 1988.165 234-244) El vector se generó por digestión Bam Hl/Bam Hl del plasmidio pD4, el cual contiene el gen de la MDH con una secuencia de 6 histidinas sin codón de parada (Secuencia No.9). Esto permite la fusión de la secuencia del fragmento de la proteína de la envoltura de DEN a la secuencia del C-terminal de MDH. Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones. Las células competentes W3110 se transformaron con el clon seleccionado llamado pLL3 (fig. 3 y Secuencia No.10). Luego del crecimiento de la colonia en medio líquido LB, se realizó un SDS-PAGE del lisado celular. Se obtuvo una banda de aproximadamente 80 kDa correspondiente al 20 % de proteínas totales en la célula. La talla obtenida se corresponde con la suma de la MDH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-2. Esta banda fue reconocida con anticuerpos AcP antι-DEN-2 contenidos en un LAHI. La proteína se denominó PLL3 (Secuencia No.11). EJEMPLO 10. Purificación de la proteína PLL3.
La biomasa obtenida de la cepa transformada con pLL3 y crecida a 37 °C se rompió en prensa francesa. La proteína recombinante se obtuvo de forma soluble e insoluble A partir de la fracción insoluble, la proteína recombinante se extrajo con Urea 6M y luego se realizó una cambio de tampón por G-25. A partir de la muestra en Tris 10mM, se realizó una cromatografía de afinidad por quelatos metálicos. La matriz utilizada fue Quelating Sepharose FF previamente acoplada con iones CuX Se realizó un lavado con Imidazol 30 mM y luego la elución se realizó con imidazol 250 mM. Finalmente, la preparación pura, se aplicó en una columna de G-25 para obtenerla en el tampón de formulación (PBS) y realizar los estudios inmunológicos. EJEMPLO 11. Caracterización antigénica de PLL3
La fracción purificada de PLL3 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros policlonales y monoclonales murinos, así como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 11). Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el LAHI anti-DEN-2. El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor, en orden decreciente: DEN-1 y DEN-3 y por último DEN-4, que fue prácticamente imperceptible. En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla, y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno Sin embargo, al analizar el reconocimiento por el monoclonal 3H5, se observó una gran reactividad (similar a la obtenida con PLL2) tanto por Dot blotting como por Western blotting Contrariamente a lo obtenido con PLL1 , el reconocimiento del monoclonal se mantiene aun en presencia de agentes reductores en la muestra, lo cual indica una diferencia conformacional entre ambas proteínas Finalmente se analizó la reactividad frente a tres sueros humanos de alto título y tres de bajo título a DEN-2, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting Estos resultados fueron similares a los obtenidos con PLL2 Tabla 11. Reactividad de la proteína PLL3 frente a anticuerpos monoclonales y polidonales
Acs*
Especificidad* PLL3*
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
AcM 3H5 NT
* Se aplicaron 10 μg de la proteina purificada PLL3 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++
** Los líquidos asciticos hipeππmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000
*** EEE virus de la Encefalitis Equina, YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San
Luis NT Neutralizante serotipo especifico
EJEMPLO 12. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PLL3
Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 20 ug i p de la preparación purificada de PLL3 utilizando el Adyuvante de Freund. Una parte de los animales (10 ratones), se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA Se obtuvieron altos títulos contra DEN-2 mientras que, frente al resto de los serotipos no se obtuvo reactividad alguna (tabla 12 y tabla 15). Paralelamente se realizo el ensayo de Inhibición de la hemaglutmacion obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-2 (tabla 13 y tabla 15) Finalmente se realizo el ensayo de neutralización m vitro alcanzándose títulos de hasta 1/1280 contra DEN-2 (tabla 14). No se obtuvieron títulos neutralizantes contra el resto de los serotipos (tabla 15) En las tres técnicas ensayadas se observo una gran especificidad de serotipo en los anticuerpos generados similar a la obtenida con la inmunización con PLL2
Tabla 12. Títulos de anticuerpos contra DEN-2 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PLL3
Figure imgf000020_0001
Tabla 13. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteina PLL3
Figure imgf000020_0002
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
Tabla 14 Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PLL3
Figure imgf000021_0001
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales.
Tabla 15. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PLL3.
Figure imgf000021_0002
Figure imgf000021_0003
Figure imgf000021_0004
* Cada mezcla se formó por la unión de tres sueros.
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales.
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales.
EJEMPLO 13. Obtención de pLH1.
La secuencia nucleotídica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de la envoltura del virus DEN-1 (Secuencia No.32) se amplificó con los oligonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No.6 y Secuencia No.7 a partir de la cepa viral de DEN-1 (Chu M C , O'Rourke E J., Trent D.W.Genetic relatedness a ong structual protein genes of dengue 1 virus strains.J. Gen Viral 1989. 70:1701- 1712).
El vector se generó por digestión Xba l/Bam Hl del plasmidio PM108 His, el cual contiene la secuencia nucleotídica que codifica para la región N-terminal de la MDH y para una secuencia de 6 histidmas (Secuencia No.23). Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones Las células competentes W3110 se transformaron con el clon seleccionado llamado pLH1 (Fig 4 y Secuencia No 33) Luego del crecimiento de la colonia en medio líquido LB, se realizó un SDS-PAGE del lisado celular Se obtuvo una banda de aproximadamente 25 kDa correspondiente al 10 % de proteínas totales en la célula. La talla obtenida se corresponde con la suma de la región N-terminal de la DH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-1 Esta banda fue reconocida con AcP anti- DEN-1 contenidos en un LAHI La proteína se denominó PLH1 (Secuencia No.34) EJEMPLO 14. Purificación de la proteína PLH1
La biomasa obtenida de la cepa transformada con pLH1 se rompió en prensa francesa. La proteína recombmante se obtuvo mayoπtaπamente de forma insoluble asociada al precipitado de ruptura celular A partir del precipitado, se realizó una extracción con urea 7 M y el sobrenadante, conteniendo la proteína PLL1 , se aplicó en una columna de G-25 para eliminar el agente caotrópico. La fracción obtenida se aplicó en una columna de Quelating sepharose FF (Pharmacia, UK), en presencia de iones Cu++ y equilibrada con Tris 10 mM pH 8 0 La elución se realizó con Imidazol 60 mM y el volumen obtenido se aplicó en una columna de G-25 para obtener la proteína en el tampón de formulación (PBS). Esta preparación se utilizó para los estudios inmunológicos EJEMPLO 15. Caracterización antigénica de PLH1
Las fracción purificada de PLH1 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros po clonales y monoclonales munnos así como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 16) Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el líquido ascítico hipeπnmune antι-DEN-1. El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno Por último se analizó la reactividad frente a tres sueros humanos de alto título y tres de bajo titulo a DEN-1, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting . Tabla 16. Reactividad de la proteína PLH1 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales Acs* Especificidad"* PLH1
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
AcM 3H5 NT
* Se aplicaron 10 μg de la proteína purificada PLH1 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++
** Los líquidos ascíticos hipeπnmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000
*** EEE virus de la Encefalitis Equina, YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San Luis NT Neutralizante serotipo específico
EJEMPLO 16. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PLH1 Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 35 ug i p de la preparación purificada de PLH1 utilizando el Adyuvante de Freund Una parte de estos animales (10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA Se obtuvieron altos títulos contra DEN-1 mientras que, frente al resto de los serotipos, no se obtuvo reactividad alguna (tabla 17 y tabla 20) Paralelamente se realizó el ensayo de IHA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-1 (tabla 18 y tabla 20) Finalmente se realizo el ensayo de neutralización in vitro evidenciándose títulos neutralizantes (1 320) contra DEN-1 mientras que contra el resto de los serotipos no existió neutralización de la mfectividad viral (tabla 19 y tabla 20) Estos resultados indican la gran serotipo-especificidad de los anticuerpos generados por PLH1. Tabla 17. Títulos de anticuerpos contra DEN-1 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PLL1
Figure imgf000023_0001
Tabla 18. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteína PLH1
Figure imgf000024_0001
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales.
Tabla 19. Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PLHL
Figure imgf000024_0002
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales Tabla 20. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PLH1
Figure imgf000024_0003
Figure imgf000025_0001
* Cada mezcla se formó por la unión de tres sueros
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales
EJEMPLO 17. Obtención de pLH2
La secuencia nucleotídíca que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína déla envoltura del virus DEN-1 (Secuencia No 12) se amplifico con los oligonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No 6 y Secuencia No 8 a partir de la cepa viral de DEN-1 (Chu M C , O'Rourke E J , Trent D W.Genetic relatedness among structual protein genes of dengue 1 virus strains J Gen Vιrol.1989 70.1701- 1712).
El vector se generó por digestión Xba l/Eco Rl del plasmidio PM84 His , que contiene la secuencia nucleotídica de la MDH más la codificante para una cola de 6 histidinas (Secuencia No 26) Esta digestión permite la inserción del fragmento amplificado por PCR dentro de la región codificante para un dominio estructural de la MDH Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones Las células competentes MM294 se transformaron con el clon seleccionado llamado pLH2 (Fig 5 y Secuencia No.35). Luego del crecimiento de la colonia en medio líquido LB, se realizo un SDS-PAGE del lisado celular Se obtuvo una banda de aproximadamente 80 kDa correspondiente al 10% de las proteínas totales en la célula. La talla obtenida se corresponde con la suma de la talla de la MDH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-1 Esta banda fue reconocida por un LAHI antι-DEN-1 y se denominó PLH2 (Secuencia No 36) EJEMPLO 18. Purificación de la proteíπa PLH2
La biomasa obtenida de la cepa transformada con pLH2 se rompió en prensa francesa La proteína recombinante se obtuvo de forma soluble e insoluble A partir de la fracción insoluble, la proteína se extrajo con Urea 7M y luego se realizó una cambio de tampón por G-25 A partir de la muestra en Tris 10mM, se realizó una cromatografía de afinidad por quelatos metálicos La matriz utilizada fue Quelating Sepharose FF previamente acoplada con iones Cut+. Se realizo un lavado con Imidazol 40 mM y luego la elución se realizó con imidazol 200 mM. Finalmente, la preparación pura, se aplicó en una columna de G-25 para obtenerla en el tampón de formulación (PBS) y realizar los estudios inmunológicos.
EJEMPLO 19. Caracterización antigénica de PLH2
La fracción purificada de PLH2 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros policlonales y monoclonales munnos, así como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 21)
Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el LAHI antι-DEN-1 (mayor que la obtenida con PLH1) El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla, y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno Finalmente se analizó la reactividad frente a cinco sueros humanos de alto título y tres de bajo título a DEN-1 , obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting .
Tabla 21. Reactividad de la proteína PLH2 frente a anticuerpos monoclonales y políclonales
Acs**
Especificidad"* PLH2
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
Ac 3H5 NT
* Se aplicaron 10 μg de la proteína purificada PLH2 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++
** Los líquidos asciticos hipeππmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000
*** EEE virus de la Encefalitis Equina, YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San Luis NT Neutralizante serotipo especifico
EJEMPLO 20. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PLH2 Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 20 ug i.p de la preparación purificada de PLH2, utilizando el adyuvante de Freund. Una parte de los animales (10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA. Se obtuvieron altos títulos contra DEN-1 mientras que, frente al resto de los serotipos no se obtuvo reactividad alguna (tabla 22 y tabla 25) Paralelamente se realizó el ensayo de I HA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-1 (tabla 23 y tabla 25). Finalmente se realizó el ensayo de neutralización in vitro alcanzándose títulos de 1/1280 contra DEN-1 (tabla 24). No se obtuvieron títulos neutralizantes contra el resto de los serotipos (tabla
25).
Tabla 22. Títulos de anticuerpos contra DEN-1 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PLH2.
Figure imgf000027_0001
Tabla 23. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteína PLH2.
Figure imgf000027_0002
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales.
Tabla 24 . Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PLH2.
Figure imgf000028_0001
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales. Tabla 25. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PLH2.
Figure imgf000028_0002
Figure imgf000028_0003
Figure imgf000028_0004
* Cada mezcla se formó por la unión de tres sueros.
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales.
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales.
EJEMPLO 21. Obtención de pLH3
La secuencia nucleotídica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de ia envoltura del virus DEN-1 (Secuencia No.32) se amplificó con los oligonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No.9 y Secuencia No.10 a partir de la cepa viral de DEN-1 (Chu M.C., O'Rourke E.J., Trent D.W.Genetic relatedness among structual protein genes of dengue 1 virus strains.J. Gen. Virol.1989. 70:1701-1712).
El vector se generó por digestión Bam Hl/Bam Hl del plasmidlo pD4, el cual contiene el gen de la MDH con una secuencia de 6 histidinas sin codón de parada (Secuencia No.29). Esto permite ia fusión de la secuencia del fragmento de la E al extremo 3 'del del gen de la MDH. Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones Las células competentes W3110 se transformaron con el clon seleccionado llamado pLH3 (Fig 6 y Secuencia No 37) Luego del crecimiento de la colonia en medio liquido LB, se realizo un SDS-PAGE del lisado celular Se obtuvo una banda de aproximadamente 80 kDa correspondiente al 20 % de proteínas totales en la célula La talla obtenida se corresponde con la suma de la MDH y el fragmento de la protema DENe del DEN-2 Esta banda fue reconocida con AcP antι-DEN-1 contenidos en un LAHI La proteina se denomino PLH3 (Secuencia No 38)
EJEMPLO 22. Purificación de la proteína PLH3.
La biomasa obtenida de la cepa transformada con pLH3 se rompió en prensa francesa La proteina recombmante se obtuvo de forma soluble e msoluble A partir de la fracción insoluble, la proteina recombinante se extrajo con Urea 6M y luego se realizo una cambio de tampon por G-25 A partir de la muestra en Tris 10mM, se realizo una cromatografía de afinidad por quelatos metálicos La matriz utilizada fue Quelating Sepharose FF previamente acoplada con iones Cu++ Se realizo un lavado con Imidazol 30 mM y luego la elución se realizo con imidazol 250 mM Finalmente la preparación pura, se aplico en una columna de G-25 para obtenerla en el tampon de formulación (PBS) y realizar los estudios inmunologicos
EJEMPLO 23. Caracterización antigénica de PLH3
La fracción purificada de PLH3 se caracterizo tanto por reconocimiento con diferentes sueros po clonales y monoclonales muπnos asi como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 26) Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el LAHI antι-DEN-1 mientras que el reconocimiento con LAHI contra los otros serotipos fue menor En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla, y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno Finalmente se analizo la reactividad frente a tres sueros humanos de alto titulo y tres de bajo titulo a DEN-1 , obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Dot blotting y Western blotting
Tabla 26. Reactividad de la proteina PLH3 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales
Acs** Especificidad"* PLH3
LAHI DEN-1 +++
LAHI DEN-2 + LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
AcM 3H5 NT
* Se aplicaron 10 μg de la proteina purificada PLH3 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++
** Los líquidos asciticos hipeπnmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizo en la dilución 1 1000
*** EEE virus de la Encefalitis Equina, YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San
Luis NT Neutralizante serotipo especifico
EJEMPLO 24. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PLH3 Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 20 ug i p de la preparación purificada de PLH3 utilizando el Adyuvante de Freund Una parte de los animales (10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA Se obtuvieron altos títulos contra DEN-1 mientras que frente al resto de los serotipos no se obtuvo reactividad alguna (tabla 27 y tabla 30) Paralelamente se realizo el ensayo de I HA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-1 (tabla 28 y tabla 30) Finalmente se realizó el ensayo de neutralización m vitro alcanzándose títulos de 1/1280 contra DEN-1 (tabla 29) No se obtuvieron títulos neutralizantes contra el resto de los serotipos (tabla 30)
Tabla 27. Títulos de anticuerpos contra DEN-1 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PLH3
Figure imgf000030_0001
Tabla 28 . Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteina PLH3
Figure imgf000031_0001
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
Tabla 29. Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PLH3.
Figure imgf000031_0002
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
Tabla 30. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PLH3
Figure imgf000031_0003
Figure imgf000032_0001
* Cada mezcla se formo por la unión de tres sueros ** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutmantes virales
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales
EJEMPLO 25. Obtención de pAZ1
La secuencia nucleotídica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de la envoltura del virus DEN-3 (Secuencia No.19) se amplificó con los oligonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No.1 1 y Secuencia No.12 a partir de la cepa viral de DEN-3 (Osatomi K , Sumiyoshi H Complete nucleotide sequence of dengue type 3 virus geno e RNA Vιrology 1990 176(2):643-647).
El vector se generó por digestión Xba l/Bam Hl del plasmidio PM108 His, el cual contiene la secuencia nucleotídica que codifica para la región N-termmal de la MDH y para una secuencia de 6 histidinas (Secuencia No 23) Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones. Las células competentes W3110 se transformaron con el clon seleccionado llamado pAZ1 (Fig. 7 y Secuencia No.40). Luego del crecimiento de la colonia en medio líquido LB, se realizó un SDS-PAGE del lisado celular Se obtuvo una banda de aproximadamente 25 kDa correspondiente al 10 % de proteínas totales en la célula. La talla obtenida se corresponde con la suma de la región N-terminal de la MDH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-3. Esta banda fue reconocida con AcP anti- DEN-3 contenidos en un LAHI. La proteína se denominó PAZ1 (Secuencia No 41) EJEMPLO 26. Purificación de la proteína PAZ1.
La biomasa obtenida de la cepa transformada con pAZ1 se rompió en prensa francesa La proteína recombmante se obtuvo mayontanamente de forma insoluble asociada al precipitado de ruptura celular A partir del precipitado, se realizó una extracción con urea 6 M y el sobrenadante, conteniendo la proteína PAZ1 , se aplicó en una columna de G- 25 para eliminar el agente caotrópico La fracción obtenida se aplicó en una columna de Quelating sepharose FF (Pharmacia, UK), en presencia de iones Cu++ previamente equilibrada en Tris 10 mM pH 8 0. La elución se realizó con Imidazol 60 mM y el volumen obtenido se aplicó en una columna de G-25 para obtener la proteína en el tampon de formulación PBS Esta preparación se utilizó para los estudios inmunológicos. EJEMPLO 27. Caracterización antigénica de PAZ1
La fracción purificada de PAZ1 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros policlonales y monoclonales muπnos así como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 31) Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el LAHI anti-DEN-3. Este resultado es coincidente con el hecho de que la región clonada pertenece al serotipo 3. El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno Por último se analizó la reactividad frente a cuatro sueros humanos de alto título y tres de bajo título a DEN-3, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting y Dot blotting. Tabla 31. Reactividad de la proteína PAZ1 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales
Acε** Especificidad*** PAZ1
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
Ac 3H5 NT * Se aplicaron 10 μg de la proteína purificada PAZ1 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++
** Los líquidos ascíticos hipeπnmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000 *** EEE virus de la Encefalitis Equina, YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San Luis NT Neutralizante serotipo especifico
EJEMPLO 28. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PAZ1
Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 35 ug i p de la preparación purificada de PAZ1 utilizando el adyuvante de Freund. Una parte de estos animales (10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA Se obtuvieron altos títulos contra DEN-3 mientras que, frente al resto de los serotipos, no se obtuvo reactividad alguna (tabla 32 y tabla 35). Paralelamente se realizó el ensayo de IHA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-3 (tabla 33 y tabla 35). Finalmente se realizó el ensayo de neutralización in vitro evidenciándose títulos neutralizantes (1.320) contra DEN-3 mientras que contra el resto de los serotipos no existió neutralización de la infectividad viral (tabla 34 y tabla 35). Estos resultados indican la gran serotipo-especificidad de los anticuerpos generados por PAZ1. Tabla 32. Títulos de anticuerpos contra DEN-3 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PAZ1.
Figure imgf000034_0001
Tabla 33. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteína PAZ1
Figure imgf000034_0002
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hernaglutinantes virales
Tabla 34. Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PAZ3.
Figure imgf000034_0003
Figure imgf000035_0001
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales.
Tabla 35. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PAZ1
Figure imgf000035_0002
Figure imgf000035_0003
Figure imgf000035_0004
* Cada mezcla se formó por la unión de tres sueros
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutmación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hernaglutinantes virales
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales.
EJEMPLO 29. Obtención de pAZ2
La secuencia nucleotídica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de la envoltura del virus DEN-3 (Secuencia No.29) se amplificó con los oligonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No 1 1 y Secuencia No 13 a partir de la cepa viral de DEN-3 (Osatomi K , Sumiyoshi H Complete nucleotide sequence of dengue type 3 virus genome RNA. Virology 1990. 176(2):643-647). Ei vector se generó por digestión Xba l/Eco Rl del plasmidio PM84 His, que contiene la secuencia nucleotídica de la MDH más la codificante para una cola de 6 histidinas (Secuencia No 26) Esta digestión permite la inserción del fragmento amplificado por PCR dentro de la región codificante para un dominio estructural de la MDH Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones. Las células competentes MM294 se transformaron con el clon seleccionado llamado pAZ2 (Fig. 8 y Secuencia No.42). Luego del crecimiento de la colonia en medio líquido LB, se realizó un SDS-PAGE del lisado celular. Se obtuvo una banda de aproximadamente 80 kDa correspondiente al 10% de las proteínas totales en la célula. La talla obtenida se corresponde con la suma de la talla de la MDH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-3. Esta banda fue reconocida por un LAHI anti-DEN-3 y se denominó PAZ2 (Secuencia No.43). EJEMPLO 30. Purificación de la proteína PAZ2
La biomasa obtenida de la cepa transformada con pAZ2 se rompió en prensa francesa. La proteína recombinante se obtuvo de forma soluble e insoluble. A partir de la fracción insoluble, la proteína recombinante se extrajo con Urea 6M y luego se realizó una cambio de tampón por G-25. A partir de la muestra en Tris 10mM, se realizó una cromatografía de afinidad por quelatos metálicos. La matriz utilizada fue Quelating Sepharose FF previamente acoplada con iones Cu++. Se realizó un lavado con Imidazol 50 mM y luego la elución se realizó con imidazol 150 mM. Finalmente, la preparación pura, se aplicó en una columna de G-25 para obtenerla en el tampón de formulación (PBS) y realizar los estudios ¡nmunológicos.
EJEMPLO 31. Caracterización antigénica de PAZ2
La fracción purificada de PAZ2 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros policlonales y monoclonales murinos, así como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 36). Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el LAHI anti-DEN-3. El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor. En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla, y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno. Finalmente se analizó la reactividad frente a tres sueros humanos de alto título y tres de bajo título a DEN-3, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Dot blotting y Western blotting.
Tabla 36. Reactividad de la proteína PAZ2 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales.
Acs** Especificidad"* PAZ2
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
;M 3H5 NT * Se aplicaron 10 μg de la proteína purificada PAZ2 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++
** Los líquidos ascíticos hipeπnmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000 *** EEE virus de la Encefalitis Equina, YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San
Luis NT Neutralizante serotipo específico
EJEMPLO 32. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PAZ2
Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 20 ug i p de la preparación purificada de PAZ2 utilizando el Adyuvante de Freund. Una parte de los anιmales(10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA. Se obtuvieron altos títulos contra DEN-3 mientras que, frente al resto de los serotipos no se obtuvo reactividad alguna (tabla 37 y tabla 40) Paralelamente se realizó el ensayo de IHA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-3 (tabla 38 y tabla 40) Finalmente se realizó el ensayo de neutralización m vitro alcanzándose títulos de 1/1280 contra DEN-3 (tabla 39) No se obtuvieron títulos neutralizantes contra el resto de los serotipαs (tabla 40)
Tabla 37. Títulos de anticuerpos contra DEN-3 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PAZ2.
Figure imgf000037_0001
Tabla 38. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteína PAZ2
Figure imgf000037_0002
Figure imgf000038_0001
"Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
Tabla 39. Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PAZ2
Figure imgf000038_0002
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
Tabla 40. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, I HA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PAZ2
Figure imgf000038_0003
Figure imgf000038_0004
Figure imgf000038_0005
* Cada mezcla se formó por la unión de tres sueros
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales *** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
EJEMPLO 33. Obtención de pAZ3 La secuencia nucleotídica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de la envoltura del virus DEN- 3 (Secuencia No 39) se amplificó con los o gonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No 14 y Secuencia No 15 a partir de la cepa viral de DEN-3 (Osatomi K , Sumíyoshi H Complete nucleotide sequence of dengue type 3 virus geno e RNA. Virology 1990 176(2).643-647) El vector se genero por digestión Bam Hl/Bam Hl del plasmidio pD4, el cual contiene el gen de la MDH con una secuencia de 6 histidinas sin codón de parada (Secuencia No.26) Después del proceso de ligamiento, los posibles recombmantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones Las células competentes W3110 se transformaron con el clon seleccionado llamado pAZ3 (Fig. 9 y Secuencia No 44) Luego del crecimiento de la colonia en medio líquido LB, se realizo un SDS-PAGE del lisado celular. Se obtuvo una banda de aproximadamente 80 kDa correspondiente al 20 % de proteínas totales en la célula La talla obtenida se corresponde con la suma de la MDH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-3 Esta banda fue reconocida con AcP anti-DEN-3 contenidos en un LAHI La proteína se denominó PAZ3 (Secuencia No.45).
EJEMPLO 34. Purificación de la proteína PAZ3.
La biomasa obtenida de la cepa transformada con pAZ3 se rompió en prensa francesa. La proteína recombinante se obtuvo de forma soluble e insoluble A partir de la fracción insoluble, la proteína se extrajo con Urea 7M y luego se realizó una cambio de tampón por G-25. A partir de la muestra en Tris 10mM, se realizo una cromatografía de afinidad por quelatos metálicos La matriz utilizada fue Quelating Sepharose FF previamente acoplada con iones Cu*"\ Se realizó un lavado con Imidazol 45 mM y luego la elución se realizó con imidazol 230 mM. Finalmente, la preparación pura, se aplicó en una columna de G-25 para obtenerla en el tampón de formulación (PBS) y realizar los estudios inmunológicos.
EJEMPLO 35. Caracterización antigénica de PAZ3
La fracción purificada de PAZ3 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros policlonales y monoclonales muπnos, asi como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 41) Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el LAHI antι-DEN-3 El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla, y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno Finalmente se analizo la reactividad frente a tres sueros humanos de alto título y tres de bajo título a DEN-3, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting y Dot blotting
Tabla 41. Reactividad de la proteína PAZ3 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales
Acs** Especificidad*" PAZ3
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
AcM 3H5 NT
* Se aplicaron 10 μg de la proteína purificada PAZ3 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++
** Los líquidos asciticos hipeπnmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000
*** EEE virus de la Encefalitis Equina, YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San
Luis NT Neutralizante serotipo específico
EJEMPLO 36. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PAZ3 Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 20 ug i p de la preparación purificada de PAZ3 utilizando el adyuvante de Freuπd. Una parte de los animales (10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA Se obtuvieron altos títulos contra DEN-3 mientras que, frente al resto de los serotipos no se obtuvo reactividad alguna (tabla 42 y tabla 45) Paralelamente se realizó el ensayo de I HA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-3 (tabla 43 y tabla 45) Finalmente se realizó el ensayo de neutralización in vitro alcanzándose títulos de 1 1280 contra DEN-3 (tabla 44) No se obtuvieron títulos neutralizantes contra el resto de los serotipos (tabla 45).
Tabla 42. Títulos de anticuerpos contra DEN-3 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PAZ3.
Figure imgf000041_0001
Tabla 43. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteina PAZ3
Figure imgf000041_0002
"Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
Tabla 44. Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PAZ3
Figure imgf000041_0003
Figure imgf000042_0001
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
Tabla 45. Ensayo de reactividad cruzada contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PAZ3
Figure imgf000042_0002
Figure imgf000042_0003
Figure imgf000042_0004
* Cada mezcla se formo por la unión de tres sueros
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
EJEMPLO 37. Obtención de plD1
La secuencia nucleotidica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteina de la envoltura del virus DEN-4 (Secuencia No 46) se amplifico con los o gonucleotidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No 17 y Secuencia No 18 a partir de la cepa viral de DEN-4 (Zhao B , Mackow E R , Buckler-White A J , Markoff L , Chancock R M , Lai C -J , Makino Y Clonmg full-length Dengue type 4 viral DNA sequences Analysis of genes coding for structural proteins Virology 1986 155 77-88) El vector se genero por digestión Xba l/Bam Hl del plasmidio PM108 His el cual contiene la secuencia nucleotidica que codifica para la región N-terminal de la MDH y para una secuencia de 6 histidmas (Secuencia No 23) Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones Las células competentes W3110 se transformaron con el clon seleccionado llamado plD1 (Fig 10 y Secuencia No 47) Luego del crecimiento de la colonia en medio líquido LB, se realizó un SDS-PAGE del lisado celular Se obtuvo una banda de aproximadamente 25 kDa correspondiente al 10 % de proteínas totales en la célula. La talla obtenida se corresponde con la suma de la región N-terminal de la MDH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-1. Esta banda fue reconocida con AcP anti- DEN-4 contenidos en un LAHI La proteína se denomino PID1 (Secuencia No.48). EJEMPLO 38. Purificación de la proteína PID1
La biomasa obtenida de la cepa transformada con plD1 y crecida a 37 °C se rompió en prensa francesa. La proteína recombmante se obtuvo mayoπtaπamente de forma insoluble asociada al precipitado de ruptura celular A partir del precipitado, se realizó una extracción con urea 6 M y el sobrenadante, conteniendo la proteína PLL1 , se aplicó en una columna de G-25 para eliminar el agente caotrópico. La fracción obtenida se aplicó en una columna de Quelating sepharose FF (Pharmacia, UK), en presencia de iones Cu++ La elución se realizó con Imidazol 60 mM y el volumen obtenido se aplicó en una columna de G-25 para obtener la proteína en el tampón de formulación (PBS). Esta preparación se utilizó para los estudios inmunológicos EJEMPLO 39. Caracterización antigénica de PID1.
Las fracción purificada de PID1 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros po clonales y monoclonales munnos así como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 46) Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el LAHI anti-DEN-4 El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno. Por ultimo, se analizo la reactividad frente a tres sueros humanos de alto título y tres de bajo título a DEN-4, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting y Dot blotting
Tabla 46. Reactividad de la proteína PID1 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales
Acs** Especificidad*** PID1
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
AcM 3H5 NT * Se aplicaron 10 μg de la protema purificada PID1 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++
** Los líquidos ascíticos hipeπnmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000
*** EEE virus de la Encefalitis Equina, YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San
Luis NT Neutralizante serotipo específico
EJEMPLO 40. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PID1
Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 35 ug i.p de la preparación purificada de PID1 utilizando el Adyuvante de Freund. Una parte de estos animales (10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA Se obtuvieron altos títulos contra DEN-4 mientras que, frente al resto de los serotipos, no se obtuvo reactividad alguna (tabla 47 y tabla 50). Paralelamente se realizó el ensayo de IHA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-4 (tabla 48 y tabla 50). Finalmente se realizó el ensayo de neutralización in vitro evidenciándose títulos neutralizantes (1 :320) contra DEN-4 mientras que contra el resto de los serotipos no existió neutralización de la mfectividad viral (tabla 49 y tabla 50) Estos resultados indican la gran serotipo-especificidad de los anticuerpos generados por PID1
Tabla 47. Títulos de anticuerpos contra DEN-4 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PID1
Figure imgf000044_0001
Tabla 48. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteína PID1.
Figure imgf000045_0001
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
Tabla 49 Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PID1.
Figure imgf000045_0002
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales
Tabla 50. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PID1
Figure imgf000045_0003
Figure imgf000046_0001
* Cada mezcla se formo por la unión de tres sueros
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales
EJEMPLO 41. Obtención de plD2.
La secuencia nucleotídica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de la envoltura del virus DEN- 4 (Secuencia No 46) se amplificó con los oligonucleotidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No 16 y Secuencia No 18 a partir de la cepa viral de DEN-4 (Zhao B , Mackow E R , Buckler-White A J , Markoff L , Chancock R M , Lai C -J., Makino Y Clonmg full-length Dengue type 4 viral DNA sequences Analysis of genes coding for structural proteins Virology 1986. 155:77-88 El vector se generó por digestión Xba l/Eco Rl del plasmidio PM84 His , que contiene la secuencia nucleotídica de la MDH más la codificante para una cola de 6 histidinas (Secuencia No 26) Esta digestión permite la inserción del fragmento amplificado por PCR dentro de la región codificante para un dominio estructural de la MDH. Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones Las células competentes MM294 se transformaron con el clon seleccionado llamado plD2 (Fig. 11 y Secuencia No.49) Luego del crecimiento de la colonia en medio liquido LB, se realizo un SDS-PAGE del lisado celular Se obtuvo una banda de aproximadamente 80 kDa correspondiente al 10% de las proteínas totales en la célula La talla obtenida se corresponde con la suma de la talla de la MDH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-4. Esta banda fue reconocida por un LAHI antι-DEN-4 y se denominó PID2 (Secuencia No.50) EJEMPLO 42. Purificación de la proteína PID2
La biomasa obtenida de la cepa transformada con plD2 y crecida a 37 °C se rompió en prensa francesa La proteína recombinante se obtuvo de forma soluble e insoluble A partir de la fracción insoluble, la proteíπa se extrajo con Urea 6M y luego se realizó una cambio de tampón por G-25 A partir de la muestra en Tris 10mM, se realizó una cromatografía de afinidad por quelatos metálicos La matriz utilizada fue Quelating Sepharose FF previamente acoplada con iones Cu++ Se realizó un lavado con Imidazol 30 mM y luego la elución se realizó con imidazol 250 mM Finalmente, la preparación pura, se aplicó en una columna de G-25 para obtenerla en el tampón de formulación (PBS) y realizar los estudios ¡nmunológicos EJEMPLO 43. Caracterización antigénica de PID2
La fracción purificada de PID2 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros policlonales y monoclonales murinos, así como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 51)
Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el LAHI anti-DEN-4. El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor. En el caso de los anticuerpos generados por otros flavlvirus como Fiebre Amarilla y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno. Finalmente se analizó la reactividad frente a tres sueros humanos de alto título y tres de bajo título a DEN-4, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting y Dot blotting. Tabla 51. Reactividad de la proteína PID2 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales
Acs*
Especificidad*" PID2
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
Ac 3H5 NT
* Se aplicaron 10 μg de la proteíπa purificada PID2 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++.
** Los líquidos ascíticos hiperinmunes se utilizaron 1:100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1.1000. *** EEE' virus de la Encefalitis Equina, YFV. Virus de la Fiebre Amarilla, SLV. Virus de la Encefalitis de San
Luis. NT: Neutralizante εerotipo específico.
EJEMPLO 44. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PID2
Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 20 ug i.p de la preparación purificada de PID2 utilizando el adyuvante de Freund Una parte de los animales(10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA. Se obtuvieron altos títulos contra DEN-4 mientras que, frente al resto de los serotipos no se obtuvo reactividad alguna (tabla 52 y tabla 55) Paralelamente se realizó el ensayo de I HA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-4 (tabla 53 y tabla 55). Finalmente, se realizó el ensayo de neutralización in vitro alcanzándose títulos de 1/1280 contra DEN-4 (tabla 54) No se obtuvieron títulos neutralizantes contra el resto de los serotipos (tabla 55)
Tabla 52. Títulos de anticuerpos contra DEN-4 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PID2.
Figure imgf000048_0001
Tabla 53. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteína PID2.
Figure imgf000048_0002
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutiπaαóπ de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
Tabla 54. Ensayo de neutralización viral con los sueros de los anímales inmunizados con PID2
Figure imgf000048_0003
Figure imgf000049_0001
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales
Tabla 55. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PID2.
Figure imgf000049_0002
Figure imgf000049_0003
Figure imgf000049_0004
* Cada mezcla se formo por la unión de tres sueros
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutmacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
EJEMPLO 45. Obtención de plD3
La secuencia nucleotidica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de la envoltura del virus DEN- 4 (Secuencia No 46) se amplificó con los oligonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No 19 y Secuencia No 20 a partir de la cepa viral de DEN-4 (Zhao B , Mackow E R , Buckler-White A J , Markoff L , Chancock R M , Lai C -J , Makino Y Cloning full-length Dengue type 4 viral DNA sequences Aπalysis of genes coding for structural proteins Virology 1986 155 77-88) El vector se generó por digestión Bam Hl/Bam Hl del plasmidio pD4, el cual contiene el gen de la MDH con una secuencia de 6 histidinas sin codón de parada (Secuencia No.29). Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenciaron para chequear las uniones. Las células competentes W3110 se transformaron con el clon seleccionado llamado plD3 (fig. 12 y Secuencia No.51). Luego del crecimiento de la colonia en medio líquido Louria Bertani (LB), se realizó un SDS-PAGE del Usado celular. Se obtuvo una banda de aproximadamente 80 kDa correspondiente al 20 % de proteínas totales en la célula. La talla obtenida se corresponde con la suma de la MDH y el fragmento de la proteína DENe del DEN-4. Esta banda fue reconocida por AcP anti-DEN-4 contenidos en un LAHI. La proteína se denominó PID3 (Secuencia No.52).
EJEMPLO 46. Purificación de la proteína PID3.
La biomasa obtenida de la cepa transformada con plD3 se rompió en prensa francesa. La proteína recombinante se obtuvo de forma soluble e insoluble. A partir de la fracción insoluble, la proteína recombinante se extrajo con Urea 6M y luego se realizó una cambio de tampón por G-25. A partir de la muestra en Tris 10mM, se realizó una cromatografía de afinidad por quelatos metálicos. La matriz utilizada fue Quelating Sepharose FF previamente acoplada con iones Cu++. Se realizó un lavado con Imidazol 40 mM y luego la elución se realizó con imidazol 200 mM. Finalmente, la preparación pura, se aplicó en una columna de G-25 para obtenerla en el tampón de formulación (PBS) y realizar los estudios inmunológicos EJEMPLO 47. Caracterización antigénica de PID3
La fracción purificada de PID3 se caracterizó tanto por reconocimiento con diferentes sueros policlonales y monoclonales murinos, así como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 56). Los mayores reconocimientos por Dof blotting se obtuvieron con el LAHI anti-DEN-4. El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor. En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla, y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno. Finalmente se analizó la reactividad frente a tres sueros humanos de alto título y tres de bajo título a DEN-4, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting y Dof blotting. Tabla 56. Reactividad de la proteína PID3 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales.
Acs** Especificidad*" PID3
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4 LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
Ac 3H5 NT
* Se aplicaron 10 μg de la proteína purificada PID3 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++
** Los líquidos asciticos hipeπnmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000
*** EEE virus de la Encefalitis Equina, YFV Virus de la Fiebre Amarilla, SLV Virus de la Encefalitis de San
Luis NT Neutralizante serotipo especifico
EJEMPLO 48. Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PID3 Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 20 ug i.p de la preparación purificada de PAZ3 utilizando el adyuvante de Freund. Una parte de los animales (10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA Se obtuvieron altos títulos contra DEN-4 mientras que, frente al resto de los serotipos no se obtuvo reactividad alguna (tabla 57 y tabla 60) Paralelamente se realizó el ensayo de IHA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-4 (tabla 58 y tabla 60) Finalmente se realizó el ensayo de neutralización in vitro alcanzándose altos títulos contra DEN-4 (1 1280) (tabla 59) No se obtuvieron títulos neutralizantes contra el resto de los serotipos (tabla 60).
Tabla 57. Títulos de anticuerpos contra DEN-1 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PLH2.
Figure imgf000051_0001
Tabla 58. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteína PID3.
Figure imgf000052_0001
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hernaglutinacion de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales
Tabla 59. Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PID3.
Figure imgf000052_0002
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del número de placas virales
Tabla 60. Ensayo de reactividad cruzada, contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PID3.
Figure imgf000052_0003
Figure imgf000053_0001
Figure imgf000053_0002
* Cada mezcla se formo por la unión de tres sueros ** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutmantes virales
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
EJEMPLO 49. Obtención de pD4D2
La secuencia nucleotídica que codifica para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína de la envoltura del virus DEN-4 (Secuencia No 46) se amplificó con los oligonucleótidos identificados en el listado de secuencias como Secuencia No 16 y Secuencia No.21 a partir de la cepa viral de DEN-4 (Zhao B., Mackow E R., Buckler-White A.J., Markoff L, Chancock R.M., Lai C -J., Makino Y Cloning full-length Dengue type 4 viral DNA sequences. Analysis of genes coding for structural proteins Virology 1986. 155:77-88). El vector se generó por digestión Xba /Xba I del plasmidio pLL3, el cual contiene el gen de la MDH con una secuencia de 6 histidinas en la región 3' del gen y la secuencia del fragmento de la E de DEN-2 en el extremo 3' Esto permite la obtención de dos regiones de la E de los serotipos 4 y 2 fusionados en el mismo gen de la MDH. Después del proceso de ligamiento, los posibles recombinantes se analizaron por restricción y los positivos se secuenαaron para chequear las uniones. Las células competentes MM294 se transformaron con el clon seleccionado llamado pD4D2 (Fig 13 y Secuencia No.53). Luego del crecimiento de la colonia en medio LB, se realizó un SDS-PAGE del lisado celular. Se obtuvo una banda de aproximadamente 110 kDa correspondiente al 20 % de proteínas totales en la célula La talla obtenida se corresponde con la suma de la MDH y los dos fragmentos de la proteína DENe del DEN Esta banda fue reconocida con AcP anti-DEN-2 y anti DEN-4 contenidos en un LAHI La proteína se denominó PD4D2 (Secuencia No.54). EJEMPLO 50. Purificación de la proteína PD4D2.
La biomasa obtenida de la cepa transformada con pD4D2 se rompió en prensa francesa La proteína recombiπaπte se obtuvo de forma soluble e ¡nsoluble A partir de la fracción insoluble, la proteína recombinante se extrajo con Urea 6M y luego se realizó una cambio de tampón por G-25 A partir de la muestra en Tris 10mM, se realizó una cromatografía de afinidad por quelatos metálicos La matriz utilizada fue Quelating Sepharose FF previamente acoplada con iones Cu++ Se realizo un lavado con Imidazol 30 mM y luego la elución se realizo con imidazol 250 mM Finalmente, la preparación pura, se aplico en una columna de G-25 para obtenerla en el tampon de formulación (PBS) y realizar los estudios inmunologicos
EJEMPLO 51. Caracterización antigénica de PID3
La fracción purificada de PD4D2 se caracterizo tanto por reconocimiento con diferentes sueros policlonales y monoclonales muπnos asi como por sueros humanos positivos a Dengue (tabla 61) Los mayores reconocimientos por Dot blotting se obtuvieron con el LAHI antι-DEN-2 y antι-DEN-4 El reconocimiento por LAHI contra los otros serotipos fue menor En el caso de los anticuerpos generados por otros flavivirus como Fiebre Amarilla, y Encefalitis de San Luis no se obtuvo reconocimiento alguno Por otra parte se mantuvo el reconocimiento por el anticuerpo monoclonal 3H5 similar al obtenido con PLL2 y PLL3 Finalmente se analizo la reactividad frente a sueros humanos de alto y bajo titulo contra DEN-2 y DEN-4, obteniéndose una señal considerable en ambos casos por Western blotting y Dot blotting
Tabla 61. Reactividad de la proteina PD4D2 frente a anticuerpos monoclonales y policlonales
Acs** Especificida — PD4D2
LAHI DEN-1
LAHI DEN-2
LAHI DEN-3
LAHI DEN-4
LAHI EEE
LAHI YFV
LAHI SLV
Ac 3H5 NT * Se aplicaron 10 μg de la proteina purificada PD4D2 La intensidad de la señal obtenida se evaluó desde + hasta +++
** Los líquidos asciticos hipeπnmunes se utilizaron 1 100 mientras que el monoclonal 3H5 se utilizó en la dilución 1 1000 *** EEE virus de la Encefalitis Equina YFV Virus de la Fiebre Amarilla SLV Virus de la Encefalitis de San Luis NT Neutralizante serotipo especifico
EJEMPLO 52 Caracterización de la respuesta de anticuerpos generada por PD4D2
Se inmunizaron 25 ratones Balb/c con 20 ug i p de la preparación purificada de PAZ3 utilizando el adyuvante de Freund Una parte de los animales (10 ratones) se sangraron tras la cuarta dosis y los anticuerpos anti-DEN se determinaron por ELISA. Se obtuvieron altos títulos contra DEN-2 y DEN-4 mientras que, frente al resto de los serotipos no se obtuvo reactividad alguna (tabla 62 y tabla 65). Paralelamente se realizó el ensayo de I HA obteniéndose títulos positivos solamente al DEN-2 y DEN-4 (tabla 63 y tabla 65). Finalmente se realizó el ensayo de neutralización in vitro alcanzándose altos títulos contra DEN-2 (>1 :1280) y DEN-4 (>1 : 1280) (tabla 64). No se obtuvieron títulos neutralizantes contra el resto de los serotipos (tabla 65).
Tabla 62. Títulos de anticuerpos contra DEN-4 y DEN-2 de los sueros obtenidos tras la inmunización con PD4D2.
Figure imgf000055_0001
Tabla 63. Títulos por IHA de los sueros de los animales inmunizados con la proteína PD4D2.
Figure imgf000055_0002
*Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutinantes virales.
Tabla 64. Ensayo de neutralización viral con los sueros de los animales inmunizados con PD4D2.
Figure imgf000056_0001
* Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
Tabla 65. Ensayo de reactividad cruzada contra todos los serotipos virales por ELISA, IHA y neutralización viral, con los sueros de los animales inmunizados con PD4D2.
Figure imgf000056_0002
Figure imgf000056_0003
Figure imgf000056_0004
* Cada mezcla se formó por la unión de tres sueros
** Los títulos IHA se definieron como la mayor dilución capaz de inhibir la hemaglutinación de eritrocitos de ganso frente a 8 unidades hemaglutmantes virales
*** Los títulos neutralizantes se definieron como la mayor dilución del suero donde se obtuvo un 50% de reducción del numero de placas virales
EJEMPLO 53. Ensayo de protección.
Para la evaluación de la protección conferida a los ratones ante el reto con DEN letal homólogo por la inmunización con todas las vanantes ensayadas, se utilizaron los ratones que no fueron sangrados de cada grupo (15 ratones). Cada uno de los animales recibió una dosis de 100 LD50 de DEN letal por inoculación intracraneal y se observaron durante 21 días para obtener los porcentajes de letalidad. Se utilizaron como controles positivos grupos de 15 ratones inmunizados con las cuatro preparaciones virales (DEN-1 , DEN-2, DEN-3 y DEN-4) Todos los ratones de estos grupos sobrevivieron mientras que los ratones del grupo control (-), enfermaron en los 7-11 días posteriores al reto obteniéndose un 100% de mortalidad. Finalmente, los grupos inmunizados con las proteínas de fusión ensayadas presentaron entre un 80% y 100% de protección obteniéndose en todos los casos diferencias significativas respecto al grupo control (tabla 66)
Tabla 66. Porcentajes de sobrevida en ratones inmunizados con las vanantes de proteínas ensayadas frente al reto con virus DEN homólogo letal.
Figure imgf000057_0001
* Se calculó (# de ratones sobrevivientes)/ (# total de ratones) Los datos de sobrevivientes se toman 21 después del reto En el caso de los ratones inmunizados pD4D2, 15 se retaron con DEN-4 y 15 con DEN-2
Ejemplo 54. Respuesta Linfoproliferativa Los animales de los diferentes grupos inmunizados con las proteínas quiméricas que presentan el fragmento de la E de DEN-2 (PLL1 , PLL2 y PLL3), y un grupo placebo control, fueron sacrificados 15 días después de la última dosis Posteriormente, se les extrajeron los bazos y se estudió la respuesta linfoproliferativa frente a los cuatro serotipos del virus Dengue. Los resultados de la tabla 66 reflejan los índices de estimulación obtenidos, evidenciándose una respuesta serotipo específica
Tabla 67. índices de estimulación frente a los cuatro serotipos virales de los linfocitos de los ratones inmunizados con PLL1 , PLL2 y PLL3
Figure imgf000058_0001
control de síntesis espontanea de ADN ** mitógeno Phytohemaglutinina

Claims

REIVINDICACIONES
1. Cadenas nucleotídicas quiméricas caracterizadas por ser la combinación específica de secuencias correspondientes a fragmentos de la proteína E de los Flavivirus, con secuencias correspondientes al gen codificante para la proteína mutante MDH identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No.26, Secuencia No.29 o con el fragmento de estas identificado como Secuencia No.23, las cuales codifican para proteínas quiméricas capaces de inducir en el organismo receptor una respuesta inmune de anticuerpos neutralizantes y protectora, contra los Flavivirus, cuando estas proteínas se encuentran presentes en una preparación farmacéutica.
2. Cadenas nucleotídicas quiméricas de acuerdo con la reivindicación 1 , caracterizadas por ser la combinación específica de una o varias de las secuencias que codifican para los aminoácidos 286 al 426 de la proteína E de los virus del Dengue con la secuencia nucleotídica de la proteina MDH, donde dichas secuencias se encuentren insertadas y/o fusionadas con las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No.26, Secuencia No.29, o Secuencia No.23, las cuales codifican para proteínas quiméricas capaces de inducir en el organismo receptor una respuesta inmune humoral, neutralizante y protectora serotipo específica contra cada serotipo del virus Dengue.
3. Cadenas nucleotídicas quiméricas de acuerdo con las reivindicaciones 1 y 2, caracterizadas por estar formadas por las secuencias que codifican para los aminoácidos del 286 al 426 de la proteína E de cada serotipo 1 , 2, 3 y 4 de los virus Dengue, fusionada al extremo 3' de la región que codifica para los primeros 45 aminoácidos de la proteína MDH identificada como Secuencia No.23.
4. Cadenas nucleotídicas quiméricas de acuerdo con las reivindicaciones 1 y 2, caracterizadas por estar formadas por las secuencias que codifican para los aminoácidos del 286 al 426 de la proteína E de cada serotipo 1 , 2, 3 y 4 de los virus Dengue, insertada en la región que codifica para el aminoácido 45 en la secuencia nucleotídica de la MDH identificada como Secuencia No. 26.
5. Cadenas nucleotídicas quiméricas de acuerdo con las reivindicaciones 1 y 2, caracterizadas por estar formadas por las secuencias que codifican para los aminoácidos del 286 al 426 de la proteína E de cada serotipos 1 , 2, 3 y 4 de los virus Dengue fusionada al extremo 3' de la secuencia que codifica para la proteína MDH identificada como secuencia No. 29.
6. Cadenas nucleotídicas quiméricas de acuerdo con las reivindicaciones 1 y 2, caracterizadas por ser la combinación de las secuencias nucleotídicas que codifican para los aminoácidos del 286 al 426 de la proteína E de dos serotipos diferentes del virus Dengue con la secuencia de la MDH, donde una de las secuencias correspondientes a la proteina E esta insertada en la región que codifica para el aminoácido 45 de la MDH y la otra esta fusionada en la región 3' de la secuencia de la misma MDH identificada como secuencia No 29 Proteínas quiméricas recombinantes caracterizadas por ser el producto de expresión de las cadenas nucleotídicas de las reivindicaciones 1 , 2, 3, 4, 5 y 6 y ser capaces de inducir en el organismo receptor una respuesta inmune humoral, neutralizante y protectora serotipo especifica únicamente contra cada serotipo homologo del virus Dengue, cuando esta proteínas se encuentra presente en una preparación farmacéutica Proteínas quiméricas recombinantes caracterizadas por ser el producto de expresión de las cadenas nucleotídicas de las reivindicaciones 1 y 6, y ser capaces de inducir en el organismo receptor una respuesta inmune humoral, neutralizante y protectora especifica contra los dos serotipos homólogos del virus Dengue Cadena nucleotidica quimérica, identificada esencialmente por ia Secuencia No 24, de acuerdo con la reivindicación 1 , 2 y 3 caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 22 y
Secuencia No 23, la cual codifica para la proteína quimérica PLL1 Proteina quimérica PLL1 , de acuerdo con las reivindicaciones 1 ,2 y 7 caracterizada por tener esencialmente la secuencia aminoacídica identificada en el listado de secuencias como Secuencia No 25, ser el producto de expresión de la Secuencia No 24 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral, neutralizante y protectora especifica contra el virus del Dengue-2 cuando PLL1 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotídica quimérica de acuerdo con la reivindicaciones 1 , 2 y 4 identificada esencialmente como Secuencia No 27, caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 22 y Secuencia No 26, la cual codifica para la proteína quimérica PLL2 Proteina quimérica PLL2, de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia ammoacidica identificada en el listado de secuencias como Secuencia No 28, ser el producto de expresión de la Secuencia No 27 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral, neutralizante y protectora especifica contra el virus del Dengue-2 cuando PLL2 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotidica quimérica de acuerdo con la reivindicación 1 2 y 5 identificada esencialmente como Secuencia No 30, caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 22 y Secuencia No 29, la cual codifica para la proteína quimérica PLL3 Proteina quimérica PLL3 de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia aminoacidica identificada en el listado de secuencias como Secuencia No 31 , ser el producto de expresión de la Secuencia
No 30 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral, neutralizante y protectora específica contra el virus del Dengue-2 cuando PLL3 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotidica quimérica de acuerdo con la reivindicación 1 , 2 y 3 identificada esencialmente como Secuencia No 33, caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 23 y Secuencia No 32, la cual codifica para la proteína quimérica PLH1 Proteina quimérica PLH1 , de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia aminoacidica identificada en el listado de secuencias como Secuencia No 34, ser el producto de expresión de la
Secuencia No 33 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral, neutralizante y protectora específica contra el virus del Dengue-1 cuando PLH1 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotidica quimérica de acuerdo con la reivindicación 1 , 2 y 4 identificada esencialmente como Secuencia No 35, caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 26 y Secuencia No 32, la cual codifica para la protema quimérica PLH2 Proteina quimérica PLH2, de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia aminoacídica identificada en el listado de secuencias como Secuencia No 36, ser el producto de expresión de la Secuencia
No 35 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral, neutralizante y protectora especifica contra el virus del Dengue-1 cuando PLH2 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotidica quimérica de acuerdo con la reivindicación 1 2 y 5 identificada esencialmente como Secuencia No 37, caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 29 y Secuencia No 32, la cual codifica para la protema quimérica PLH3 Proteina quimérica PLH3, de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia aminoacidica, identificada en el listado de secuencias como Secuencia No 38, ser el producto de expresión de la Secuencia
No 37 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral, neutralizante y protectora especifica contra el virus del Dengue-1 cuando PLH3 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotídica quimérica de acuerdo con la reivindicación 1 , 2 y 3 identificada esencialmente como Secuencia No 40, caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 23 y
Secuencia No 39, la cual codifica para la proteina quimérica PAZ1 Proteina quimérica PAZ1 , de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia aminoacidica identificada en el listado de secuencias como Secuencia No 41 , ser el producto de expresión de la Secuencia No 40 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral neutralizante y protectora específica contra el virus del Dengue-3 cuando PAZ1 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotidica quimeπca de acuerdo con la reivindicación 1 , 2 y 4 identificada esencialmente como Secuencia No 42, caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 26 y
Secuencia No 39, la cual codifica para la proteina quimérica PAZ2 Proteina quimérica PAZ2, de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia aminoacidica identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 43, ser el producto de expresión de la Secuencia No 42 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral neutralizante y protectora especifica contra el virus del Dengue-3 cuando PAZ2 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotidica quimérica de acuerdo con la reivindicación 1 , 2 y 5, identificada esencialmente como Secuencia No 44, caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 29 y
Secuencia No 39, la cual codifica para la proteina quimérica PAZ3 Proteina quimérica PAZ3, de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia aminoacídica identificada en el listado de secuencias como Secuencia No 45, ser el producto de expresión de la Secuencia No 44 y ser capaz de inducir en el organismo receptor, una respuesta humoral neutralizante y protectora especifica contra el virus del Dengue-3 cuando PAZ3 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotidica quimérica de acuerdo con la reivindicación 1 , 2 y 3 identificada esencialmente como Secuencia No 47, caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 23 y
Secuencia No 46, la cual codifica para la proteína quimérica PID1 Proteina quimérica PID1 , de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia aminoacidica identificada en el listado de secuencias como Secuencia No 48, ser el producto de expresión de la Secuencia No 47 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral, neutralizante y protectora específica contra el virus del Dengue-4 cuando PID1 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotídica quimérica de acuerdo con la reivindicación 1 2 y 4 identificada esencialmente como Secuencia No 49, caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 26 y Secuencia No 46, la cual codifica para la proteina quimérica PID2 Proteina quimérica PID2, de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia aminoacidica identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 50, ser el producto de expresión de la Secuencia No 49 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral, neutralizante y protectora especifica contra el virus del Dengue-4 cuando PID2 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Cadena nucleotidica quimérica de acuerdo con la reivindicación 1 , 2 y 5, identificada esencialmente como Secuencia No 51 , caracterizada por ser la combinación de las secuencias identificadas en el listado de secuencias como Secuencia No 29 y Secuencia No 46, la cual codifica para la proteina quimérica PID3 Proteina quimérica PID3, de acuerdo con las reivindicaciones 1 , 2 y 7, caracterizada por tener esencialmente la secuencia ammoacídica identificada en el listado de secuencias como Secuencia No 52, ser el producto de expresión de la Secuencia No 51 y ser capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta humoral, neutralizante y protectora específica contra el virus Dengue-4 cuando PID3 se encuentra presente en una preparación farmacéutica Una preparación farmacéutica capaz de inducir en el organismo receptor una respuesta inmune protectora específica contra los virus del Dengue de acuerdo con la reivindicación 1 , caracterizada por contener dos o más de las proteínas quiméricas descritas en las reivindicaciones 1 , 2, 7, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24
26, 28, 30 y 32 y un vehículo farmacológico Una preparación farmacéutica de acuerdo con la reivindicación 33 caracterizada por ser un agente preventivo o terapéutico contra los virus del Dengue, para uso oral, intramuscular, subcutáneo, mucosal o intravenoso Un método diagnóstico caracterizado por contener una o vanas de las proteínas descritas en las reivindicaciones 1 , 2, 7, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 22, 24, 26, 28, 30 y 32 útil para el diagnostico o el serotipaje de los virus del Dengue
PCT/CU2002/000006 2001-07-16 2002-07-12 Cadenas quiméricas codificantes para proteínas inductoras de efectos contra virus WO2003008571A2 (es)

Priority Applications (11)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP02760073A EP1418180B1 (en) 2001-07-16 2002-07-12 Chimeric chains that code for proteins that induce effects directed against viruses
JP2003514888A JP4417712B2 (ja) 2001-07-16 2002-07-12 ウイルスに対する作用を誘導するタンパク質をコードするキメラ鎖
CA2453300A CA2453300C (en) 2001-07-16 2002-07-12 Chimeric chains that code for proteins that induce effects directed against viruses
DK02760073T DK1418180T3 (da) 2001-07-16 2002-07-12 Kimære kæder, der koder for proteiner, som inducerer virkninger mod virus
DE60217129T DE60217129T2 (de) 2001-07-16 2002-07-12 Chimärische nukleinsäuren kodierend für proteine, die effekte gegen viren induzieren
BR0211178-0A BR0211178A (pt) 2001-07-16 2002-07-12 Cadeias nucleotìdicas quiméricas, proteìnas quiméricas, preparação farmacêutica, e, método diagnóstico
US10/484,114 US7279164B2 (en) 2001-07-16 2002-07-12 Chimeric proteins that induce effects directed against viruses
MXPA04000486A MXPA04000486A (es) 2001-07-16 2002-07-12 Cadenas quimericas codificantes para proteinas inductoras de efectos contra virus.
US11/705,696 US7566457B2 (en) 2001-07-16 2007-02-13 Chimeric proteins that induce effects directed against viruses
US12/483,607 US7947281B2 (en) 2001-07-16 2009-06-12 Chimeric proteins that induce effects directed against viruses
US13/094,287 US8105606B2 (en) 2001-07-16 2011-04-26 Chimeric proteins that induce effects directed against viruses

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CU20010172A CU23245A1 (es) 2001-07-16 2001-07-16 CADENAS QUIMéRICAS CODIFICANTES PARA PROTEINAS INDUCTORAS DE EFECTOS CONTRA VIRUS. PREPARADOS UTILIZANDO PROTEINAS QUIMéRICAS
CU2001-0172 2001-07-16

Related Child Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
US10484114 A-371-Of-International 2002-07-12
US11/705,696 Division US7566457B2 (en) 2001-07-16 2007-02-13 Chimeric proteins that induce effects directed against viruses

Publications (3)

Publication Number Publication Date
WO2003008571A2 true WO2003008571A2 (es) 2003-01-30
WO2003008571A3 WO2003008571A3 (es) 2004-03-04
WO2003008571A9 WO2003008571A9 (es) 2004-04-15

Family

ID=40091633

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/CU2002/000006 WO2003008571A2 (es) 2001-07-16 2002-07-12 Cadenas quiméricas codificantes para proteínas inductoras de efectos contra virus

Country Status (18)

Country Link
US (4) US7279164B2 (es)
EP (1) EP1418180B1 (es)
JP (1) JP4417712B2 (es)
KR (1) KR100991717B1 (es)
CN (1) CN100378123C (es)
AT (1) ATE349466T1 (es)
BR (1) BR0211178A (es)
CA (1) CA2453300C (es)
CU (1) CU23245A1 (es)
DE (1) DE60217129T2 (es)
DK (1) DK1418180T3 (es)
ES (1) ES2278041T3 (es)
GT (1) GT200200150A (es)
MX (1) MXPA04000486A (es)
MY (1) MY138482A (es)
PT (1) PT1418180E (es)
WO (1) WO2003008571A2 (es)
ZA (1) ZA200400289B (es)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007059715A2 (es) 2005-11-22 2007-05-31 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Métodos y proteínas para el tratamiento profiláctico y/o terapéutico de los cuatro serotipos del virus de dengue y otros flavivirus
WO2009106019A3 (es) * 2008-02-29 2010-01-28 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Compuestos quimicos con accion antiviral contra virus dengue y otros flavivirus

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CU23245A1 (es) * 2001-07-16 2007-10-17 Inst De Medicina Tropical Pedr CADENAS QUIMéRICAS CODIFICANTES PARA PROTEINAS INDUCTORAS DE EFECTOS CONTRA VIRUS. PREPARADOS UTILIZANDO PROTEINAS QUIMéRICAS
CU23578A1 (es) * 2005-09-16 2010-09-30 Ct Ingenieria Genetica Biotech Proteína de la cápsida del virus dengue inductora de respuesta protectora y composición vacunal
CU23630A1 (es) * 2006-10-30 2011-02-24 Ct Ingenieria Genetica Biotech Moléculas peptídicas quiméricas con propiedades antivirales contra los virus de la familia flaviviridae
JP6018575B2 (ja) 2010-10-29 2016-11-02 メルク・シャープ・アンド・ドーム・コーポレーションＭｅｒｃｋ Ｓｈａｒｐ ＆ Ｄｏｈｍｅ Ｃｏｒｐ． デングウイルス組換えサブユニットスワクチン
CU24188B1 (es) * 2012-12-27 2016-07-29 Ct De Ingeniería Genética Y Biotecnología Composición vacunal contra el virus dengue
ITRM20130458A1 (it) * 2013-08-05 2015-02-05 Internat Ct For Genetic En Gineering And Vaccino genetico anti-dengue virus basato sugli ectodomini della proteina envelope
CN113651885B (zh) * 2018-04-04 2022-04-15 中国科学院微生物研究所 一种高灵敏度的黄热病毒人源单克隆抗体及其应用

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0474313A2 (en) * 1990-09-07 1992-03-11 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Nucleotide sequence coding for an outer membrane protein from Neisseria meningitidis and use of said protein in vaccine preparations
WO1996037221A1 (en) * 1995-05-24 1996-11-28 Hawaii Biotechnology Group, Inc. Subunit vaccine against flavivirus infection
WO1997026359A1 (es) * 1996-01-17 1997-07-24 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia (Cigb) Sistema de expresion de antigenos heterologos como proteinas de fusion
WO2000066791A1 (en) * 1999-04-30 2000-11-09 Chiron Corporation Neisseria genomic sequences and methods of their use

Family Cites Families (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2254055T3 (es) 1991-09-19 2006-06-16 The United States Of America, As Represented By The Secretary, Departm. Of Health And Human Services Flavivirus quimericos y/o de crecimiento restringido.
EP0907659A1 (en) 1996-05-10 1999-04-14 Schering Corporation Synthetic inhibitors of hepatitis c virus ns3 protease
CU22666A1 (es) 1996-11-25 2001-04-27 Inst De Medicina Tropical Pedro Kouri Procedimiento para la expresión de genes de los virus del dengue en la levadura pichia pastoris, adns recombinantes y microorganismos transformados
CU22683A1 (es) * 1997-01-15 2001-07-20 Inst De Medicina Tropical Pedro Kouri Epítopes de la proteína pre-m/m del virus del dengue, péptidos sintéticos, proteínas quiméricas y sus usos
ES2241157T3 (es) 1997-08-11 2005-10-16 Boehringer Ingelheim (Canada) Ltd. Peptidos inhibidores de la hepatitis c.
AU9794198A (en) 1997-10-08 1999-04-27 Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services, The Chimeric vaccine against tick-borne encephalitis virus
CU23245A1 (es) * 2001-07-16 2007-10-17 Inst De Medicina Tropical Pedr CADENAS QUIMéRICAS CODIFICANTES PARA PROTEINAS INDUCTORAS DE EFECTOS CONTRA VIRUS. PREPARADOS UTILIZANDO PROTEINAS QUIMéRICAS
WO2003101397A2 (en) * 2002-05-31 2003-12-11 Acambis, Inc. Tetravalent dengue vaccines
AU2003300831A1 (en) 2002-12-11 2004-06-30 Hawaii Biotech, Inc. Recombinant vaccine against flavivirus infection
EP1454988A1 (en) 2003-03-03 2004-09-08 Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale (Inserm) Infectious flavivirus pseudo-particles containing functional prM-E envelope proteins
WO2005002501A2 (en) 2003-04-22 2005-01-13 Children's Medical Center Corporation Novel druggable regions in the dengue virus envelope glycoprotein and methods of using the same
EP1841785A2 (en) 2005-01-19 2007-10-10 Vaxinnate Corporation Compositions comprising pathogen-associated molecular patterns and antigens and their use to stimulate an immune response
CA2508266A1 (fr) 2005-06-20 2006-12-20 Institut Pasteur Polypeptides chimeriques et leurs applications therapeutiques contre une infection a flaviviridae
CU23632A1 (es) 2006-04-28 2011-02-24 Ct Ingenieria Genetica Biotech Métodos para la identificación de candidatos terapéuticos contra enfermedades causadas por flavivirus y moléculas antivirales.

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0474313A2 (en) * 1990-09-07 1992-03-11 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Nucleotide sequence coding for an outer membrane protein from Neisseria meningitidis and use of said protein in vaccine preparations
WO1996037221A1 (en) * 1995-05-24 1996-11-28 Hawaii Biotechnology Group, Inc. Subunit vaccine against flavivirus infection
WO1997026359A1 (es) * 1996-01-17 1997-07-24 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia (Cigb) Sistema de expresion de antigenos heterologos como proteinas de fusion
WO2000066791A1 (en) * 1999-04-30 2000-11-09 Chiron Corporation Neisseria genomic sequences and methods of their use

Non-Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BLOK J ET AL: "VARIATION OF THE NUCLEOTIDE AND ENCODED AMINO ACID SEQUENCES OF THE ENVELOPE GENE FROM EIGHT DENGUE-2 VIRUSES" ARCHIVES OF VIROLOGY, vol. 105, num. 1-2, 1989, páginas 39-53, XP002230298 ISSN: 0304-8608 *
LANCIOTTI ROBERT S ET AL: "Molecular evolution and epidemiology of dengue-3 viruses." JOURNAL OF GENERAL VIROLOGY, vol. 75, num. 1, 1994, páginas 65-75, XP002230297 ISSN: 0022-1317 *
LANCIOTTI ROBERT S ET AL: "Molecular evolution and phylogeny of dengue-4 viruses." JOURNAL OF GENERAL VIROLOGY, vol. 78, num. 9, 1997, páginas 2279-2286, XP002230296 ISSN: 0022-1317 *
See also references of EP1418180A2 *
SILVA RICARDO ET AL: "Characterisation of the lpdA gene from Neisseria meningitidis by polymerase chain reaction, restriction fragment length polymorphism and sequencing." FEMS MICROBIOLOGY LETTERS, vol. 174, num. 1, 1 Mayo 1999 (1999-05-01), páginas 191-199, XP002230295 ISSN: 0378-1097 *
TETTELIN HERVE ET AL: "Complete genome sequence of Neisseria meningitidis serogroup B strain MC58." SCIENCE (WASHINGTON D C), vol. 287, num. 5459, 10 Marzo 2000 (2000-03-10), páginas 1809-1815, XP002230293 ISSN: 0036-8075 *
WANG ERYU ET AL: "Evolutionary relationships of endemic/epidemic and sylvatic dengue viruses." JOURNAL OF VIROLOGY, vol. 74, num. 7, Abril 2000 (2000-04), páginas 3227-3234, XP002230294 ISSN: 0022-538X *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007059715A2 (es) 2005-11-22 2007-05-31 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Métodos y proteínas para el tratamiento profiláctico y/o terapéutico de los cuatro serotipos del virus de dengue y otros flavivirus
WO2009106019A3 (es) * 2008-02-29 2010-01-28 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Compuestos quimicos con accion antiviral contra virus dengue y otros flavivirus
CN102006865B (zh) * 2008-02-29 2013-04-24 遗传工程与生物技术中心 化学化合物在制备用于减弱或抑制黄病毒属病毒感染的药物组合物中的用途
US8722742B2 (en) 2008-02-29 2014-05-13 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Chemical compounds having antiviral activity against Dengue virus and other Flaviviruses

Also Published As

Publication number Publication date
JP4417712B2 (ja) 2010-02-17
US8105606B2 (en) 2012-01-31
EP1418180B1 (en) 2006-12-27
CA2453300A1 (en) 2003-01-30
CN100378123C (zh) 2008-04-02
CU23245A1 (es) 2007-10-17
ZA200400289B (en) 2004-09-12
KR20040030056A (ko) 2004-04-08
WO2003008571A3 (es) 2004-03-04
DE60217129D1 (de) 2007-02-08
US20070141081A1 (en) 2007-06-21
US7279164B2 (en) 2007-10-09
ES2278041T3 (es) 2007-08-01
BR0211178A (pt) 2004-08-10
US7566457B2 (en) 2009-07-28
US7947281B2 (en) 2011-05-24
MY138482A (en) 2009-06-30
MXPA04000486A (es) 2005-03-07
CA2453300C (en) 2012-03-20
DK1418180T3 (da) 2007-05-07
US20090274718A1 (en) 2009-11-05
ATE349466T1 (de) 2007-01-15
WO2003008571A9 (es) 2004-04-15
KR100991717B1 (ko) 2010-11-03
DE60217129T2 (de) 2007-10-31
CN1531548A (zh) 2004-09-22
US20040234951A1 (en) 2004-11-25
GT200200150A (es) 2003-06-19
JP2004537306A (ja) 2004-12-16
PT1418180E (pt) 2007-04-30
EP1418180A2 (en) 2004-05-12
US20110200628A1 (en) 2011-08-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Megret et al. Use of recombinant fusion proteins and monoclonal antibodies to define linear and discontinuous antigenic sites on the dengue virus envelope glycoprotein
US8105606B2 (en) Chimeric proteins that induce effects directed against viruses
Srivastava et al. Mice immunized with a dengue type 2 virus E and NS1 fusion protein made in Escherichia coli are protected against lethal dengue virus infection
EP1944038B1 (en) Dengue virus capsid protein which induces a protective response and pharmaceutical composition
Trirawatanapong et al. Mapping of a region of dengue virus type-2 glycoprotein required for binding by a neutralizing monoclonal antibody
Hermida et al. A dengue-2 Envelope fragment inserted within the structure of the P64k meningococcal protein carrier enables a functional immune response against the virus in mice
JP2009524581A (ja) デング熱ウイルスの４種の血清型及び他のフラビウイルス属の予防的処置及び／又は治療的処置のための方法及びタンパク質
Staropoli et al. Affinity-purified dengue-2 virus envelope glycoprotein induces neutralizing antibodies and protective immunity in mice
US20180228887A1 (en) Compositions, methods of administration and uses for trivalent dengue virus formulations
KR20010022452A (ko) 플라비바이러스 감염에 대한 재조합 다이머형 엔벨롭 백신
Eckels et al. Formalin-inactivated whole virus and recombinant subunit flavivirus vaccines
Zhang et al. High-level expression of recombinant dengue virus type 2 envelope domain III protein and induction of neutralizing antibodies in BALB/C mice
ES2235310T3 (es) Epitopos de la proteina pre-m/m del virus del dengue, peptidos sinteticos.
Liu et al. Quadruple antigenic epitope peptide producing immune protection against classical swine fever virus
WO1998023754A1 (es) Procedimiento para la expresion de genes de los virus del dengue
MXPA99006629A (es) Epitopes de la proteina pre-m/m del virus del dengue, peptidos sinteticos
Vrati Immunogenicity and protective eYcacy of the E. coli-expressed domain III of Japanese encephalitis virus envelope protein in mice

Legal Events

Date Code Title Description
AK Designated states

Kind code of ref document: A2

Designated state(s): AE AG AL AM AT AU AZ BA BB BG BR BY BZ CA CH CN CO CR CU CZ DE DK DM DZ EC EE ES FI GB GD GE GH GM HR HU ID IL IN IS JP KE KG KP KR KZ LC LK LR LS LT LU LV MA MD MG MK MN MW MX MZ NO NZ OM PH PL PT RO RU SD SE SG SI SK SL TJ TM TN TR TT TZ UA UG US UZ VN YU ZA ZM ZW

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A2

Designated state(s): GH GM KE LS MW MZ SD SL SZ TZ UG ZM ZW AM AZ BY KG KZ MD RU TJ TM AT BE BG CH CY CZ DE DK EE ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE SK TR BF BJ CF CG CI CM GA GN GQ GW ML MR NE SN TD TG

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application
DFPE Request for preliminary examination filed prior to expiration of 19th month from priority date (pct application filed before 20040101)
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2453300

Country of ref document: CA

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2004/00289

Country of ref document: ZA

Ref document number: 200400289

Country of ref document: ZA

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 1020047000610

Country of ref document: KR

Ref document number: 2003514888

Country of ref document: JP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: PA/a/2004/000486

Country of ref document: MX

Ref document number: 20028143507

Country of ref document: CN

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 289/DELNP/2004

Country of ref document: IN

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2002760073

Country of ref document: EP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2002325784

Country of ref document: AU

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 1020047000610

Country of ref document: KR

COP Corrected version of pamphlet

Free format text: INDICATIONS IN RELATION TO DEPOSITED BIOLOGICAL MATERIALS, ADDED 24 PAGES (WITH AN UPDATED VERSION OF THE PAMPHLET FRONT PAGE)

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 2002760073

Country of ref document: EP

REG Reference to national code

Ref country code: DE

Ref legal event code: 8642

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 10484114

Country of ref document: US

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 1-2004-500057

Country of ref document: PH

WWG Wipo information: grant in national office

Ref document number: 2002760073

Country of ref document: EP

WWG Wipo information: grant in national office

Ref document number: 2002325784

Country of ref document: AU