SU1435159A3

SU1435159A3 - Способ получени L-карнитина

Info

Publication number: SU1435159A3
Application number: SU853874110A
Authority: SU
Inventors: Кулла Ханс; Лехки Павел
Original assignee: Лонца Аг. (Фирма)
Priority date: 1984-03-29
Filing date: 1985-03-28
Publication date: 1988-10-30
Also published as: ATE64154T1; CN85101191A; NO851261L; ES541663A0; CN1004146B; EP0158194A3; PL145712B1; IE850533L; IN164247B; PL252628A1; JPS60224488A; RO92477A; CS273163B2; EP0158194A2; FI86889B; CS222085A2; DE3583058D1; DK165191B; BR8501374A; FI86889C

Abstract

Изобретение относитс к бйотех ,нологии и касаетс получени Ь-карни тина. Цель изобретени - повьшение выхода.L-карнитина. Это достигаетс тем, что бактериальный ,штамм продуцента выращивают на питательной cpe-l да, содержащей в качестве источника углерода и азота 1р бутиробетаин или кротонобетаин, факторы роста в услови х аэрации до максимального накоплени целевого продукта с последующим его вьщелением, в качестве бактериального пггамма продуцента используют Agrobacterium НК 4, или Agrobac- terium НК 13, или Agrobacteriura Ж 1331, при этом у-бутиробетаин или кротонобетаин ввод т в количестве 0,1-10,0%.

Description

СО

4 00

ел

со

см

Изобретение относитс к биотехнологии и касаетс получени L-карни- тина.

Целью изобретени вл етс повьпве- ние выхода L-карнитина.

Способ заключаетс в следующем.

Предлагаемые микроорганизмы способны вырабатывать из кротонобетаина или -у-бутиробетаина L-карнитин, не разлага последнего. Все эти микроорганизмы могут быть продуцентами при том условии, что они мутированы по следующему двухстадийному методу с.елекцииг,

а)микроорганизмы, вь ращи ае1 б|1е на бетаине, у-бутиробетаине, крото- нобетаине и L-карнитине в качестве источника углерода и азота, мутируют известными приемами;

б)из культуры мутированных ьикро- организмов, полученной в результате процесса культивировани , селекциош - руют устойчивые кикроорганизмы, не разлагающие Ь-карнитина и вьфащивае-; ьше на бетаине, кротобетацне,

. тиробетаине. Выра1(ивание штаммов, растуи х на бетаине, кротонобетаине.

Описание оггамма Agrobacterium HK 4 (DSM № 2938):

у

,

усло

Mac- SS идном

палочки, частично плеоморфны

1-2 0,5-0,8

+ ,

перитрихаль- ное

у-бутиробетаине в качестве источника углерода и азота, осуществл ют путем посева смеси бактерий на кротоноёе- таиновьге питательные растворы, приготовл ют таким образом смешанные культуры, а затем по традиционным микробиологическим приемам получают чистые культуры разлагающих кротоко- бетаин микроорганизмы. Мутацию куль тур, растущих на -у-бутиробетаине, кротонобетаине в качестве источника азота и углерода, осуществл ют известными методами. Мутированные таким образом микроорганизмы подвергают селекционированию

Микроорганизмом растущим на бутиробетаине или кротонобетаине в качестве источника углерода и азота , вл етс пггамм НК 4 (DSM 2938) и его десценденты и мутанты. Этот штамм 03.03.84 за Р DSM 2938 был депонирован при Неме1Ц(ой коллекции микроорганизмов (Deutsche A.Sanmluitg von Mikroorganismen (DSM) при обществе Gesellschaft fiir Biotechnologische Forschung mbH, Griesebachstrabe, 8 4300 Gottingen, фPГ).

Образование фенилаланин деаминазы орнитйндекарбоксилазы

Проскауера

нитрата+

+

субстрата

Пигменты

не диффундирующие диффундирукщие . флуоресцирунщие Образование кислоты (тест OF) из глюкозы

анаэробно

фруктозы аэробно - ASS глюкозы + ксилозы-

трегалозы+

этанолаОбразование газа из глюкозы

ONPG+

Образование

аргининдигйдролазы лизиндекарбоксилазы 6 кpoopгaнизмoм , полученным в результате мутации и селекционировани из указанного микроорганизма, которы обладает устойчивостью, не. разлагает L-карнитина, а вь ел ет его и растет на кротон оветаине или --бутиробетаине, вл етс штаммAgrobacteriura НК 13.Это

Описание штамма Agrobactererium НК 13 (DSM № 2903)

у

усло

Мас

SS ом агаре

палочки

частично

плеоморфны

1-2 0,5-0,8

+

перитрихаль- ное

+ +

+

+ +

Автотрофный рост на Hj 3-кетолактоза

Рост на бетаине Ь-карнитине v-бутиробетаине кротонобетаине

штамм 23.01.84 был передан обществу Gesellschaft fOr Biotechnologische Torsehung mbH, briesebachstrabe 8,- 4300 Gettingen, ФРГ, на хранение за № DSM 2903 в коллекции Deutsche 8аш- ralung von Mikroorganismen (DSM).

Образование

фенилаланиндеаминазы - орнитиндекарбокСилазы H-zS

Реакци Фогес-Пр

Образование

индоланитрита из ни

Денитрификаци

Образование левана

лецитиназыуреазы

Деградаци

крахмала; желатина казеинатирозинатвина 80 ДНК эскулина

Продолжение кол

Пигменты

не диффундирующие диффундирующие флуоресцируюпще Образование кислоты

(тест OF) из

глюкозы аэробно анаэробно фруктозы аэробно ASS глюкозы ксилозы

трегалозы

этанолаОбразование газа из

глюкозы

ONPG .

Образование

аргининдигидролазы лизиндекарбоксилаз

Примером устойчивого десцендента микроорганизма НК 13, не разлагающего , а ввдел кщего L-карнитин и расту- 1цего на бетаине, L-глутамате и кротонобетаине , L-глутамате и бутиробетаине , глутамате и L-карнитине вл етс штамм НК 1331. Его вьщел ли в виде спонтанно и хорошо растущей ко- лонии мутантов с поверхности плотной

Описание штамма Agrobacterium НК 1331 (DSM №3225):

Форма клеток

Длина, мкм Оирина, мкм Подвижность Жгутикование

I )

Реакци по Граму

Споры

Образование

поли- оксибутирата

оксидазы

каталазы Рост в анаэробных

услови х

4ГС

рН 5,.6

палочкиОбразование частично феннлаланинде- плеоморфны аминазы

1-2орнитиндекарбокси-1

0,5-0,8лазы

+VHIS.перитрихаль- Реакци Фогес-Проскуера

ное Образование

индола

-нитрита из нитрата

Денитрификаци

+ f

Образование левана лецитиназы уреазы

Деградаци , крахмала желатина казеина

4- +

Продолжение крлонки 2

спользование субстрата

ацетатащтратамалонатаглицинанорлейцина

ксилозы

фруктозы

глюкозы втотрофчый рост

на Н,

3-кетолактоза ост на

бетаине

L-карнитине

J-бутиробетаине

кротонобетаине

L-глутамате и

|сротонобетаине

L-глутамате и

бутиробетаине

L-глутамате и

L-карнитине

+

-I

агаровой питательной среды, содержащей L-глутамат и 2«-бутиробетаин, Указанный штамм 08.02.85 бьт передан обществу besellscaft fiir Bio- technologische Forschung mbH, briese- bachstrabe 8, 4300, Gbttingen, ФРГ, на хранение за № DSM 3225 в коллекции Deutsche Sammlungvon Mikroorganismen (DSM).

+ +

Образование левана лецитиназы уреазы

Деградаци , крахмала желатина казеина

Продолжение ко

на агаре Мас- Coukey

на агаре SSна центримидном ага Пигменты

не диффундирующие диффундирующие

флуоресдарующиеОбразойание кислоты

(тест OF) из

глюкозы аэробно анаэробнофруктозы аэробно ASS глюкозы ксилозы

трегалозы

этанола

Образование газа из

глюкозыONPG

Образование.

, аргининдигидролазы лизиндекарбоксилазы В цел х осуществлени предлагаеого способа получени L-карнитина целесообразно сначала выравнивать предварительную культуру микроорганизма йа стерилизованной среде при аО-ад С при рН 6-8 в течение 20-50 ч. Эта предварительна культура должна содержать в качестве субстрата роста 0,1-10 мас.% -бутиробетаина и кро- тонобетаина, счита на реакционную среду. Т -Бутиробетаин или кротоно- бетаин можно использовать в виде гидрохлоридной соли, свободной внутренней соли или их производных, с помощью приготовленных по данному способу предварительных культур можно засевать питательные среды. Последние должны иметь такой же состав, что предварительные культуры посевного материала. Концентраци подвергаемых реакции кротонобетаина, -у-бугиробе- таина или смесей этих соединений в питательной среде 0,1-10 мас.%. Субстраты роста - холин, глутамат, ацетат , диметнлглицин и бетаин - целесообразно примен ть тоже в концент4351598

Продолжание колонки 2 тирозина

твина 80 ДНК

эскулина

Использование субстрата ацетата цитрата

малоната

глицина

норлейцина

ксилозы

фруктозы

глюкозы

Автотрофньй рост на Н2

3-кетолактоза Рост на бетаине

L-карнитине

.у-бутиробетаине

кротонобетаине

L-глутамате и кротонобетаине L-глутамате и бу- тиробетаине L-глутамате и L-кгр- нитине

+ f

+ + +

5

0

5

0

5

раци х, соответствующих концентраци м в предварительной культуре.

Клетки можно отдел ть центрифугированием или фильтрованием и использовать в качестве посевного материала дл приготовлени .новой культуры. Образовавшийс L-карнитин путем ка- тионообменной хроматографии вьздел ют из всплывающей жидкости и очищают перекристаллизацией.

Пример 1. Вьщеление разлагающего кротонобетаин микроорганизма .

Из почвы нейтральным раствором фосфатного буфера с перемешиванием извлекают микроорганизмы с последую- wfiM отделением крупных компонентов через фильтровальную бумагу. С помощью полученной таким образом смеси бактерий засевают питательный крото- нобетаиновый раствор до легкого помутнени . Через 9 сут помутнение, в- л к цеес мерой концентрации клеток, увеличилось в 90 раз. В результате кротонобетаин в растворе уже не об- наоуживалс и в нем в качестве про-

рукта деградации доказывались аммо- 1иевые ионы. Из указанной смешанной культуры, прибега к традиционным {lикpoбиoлorичecким приемам с нсполь- ованием плотной агаровой питатель- :ой средыу приготовл ют чистые куль- уры разлагак1|ц;их кротонобетаин мйкро рганизмов. Дл проведени дальней- их работ из них выбирают культуру, обозначаемую Agrobactererium Ж 4. ITOT штамм растет на у-бутиробетаи- е, Ь-карнитинё и бетаине.

Пример 2. Вьщеление устойчи ого не содержащего дегидрогеназу арнитина мутанта.

Культуру штамма Agrobactereriura ПС 4 с помощью мутагена Асгidin Mu- agen ICR19t (5 мкг/мл) в сукцинат- ой среде подвергают стабильной му- агенизацки, после чего клетки в це- 1ЯХ экспрессии мутаюш кфащивают на штательиом бульоне, затем перевод т етаиновую среду. Промытую культу- у внос т в L-карнитивовую среду, же через несколько часов культура ступала в логарифмическую фазу рос- а. В это врем добавл ют пенициллин

(15 мг/мп) к D-цнклосерин

0,5 мг/мл), котсфые в качестве про- тивоселекцконирующих агентов умерщв- 1ЯЮТ только растущих бактерий. В ре- ультате выживани накапливались му анты, которые не могли расти на -карнитийе. Через 30 ч число живых леток сокращалось в 100 раз. После упоавки антибиотиков культуру пере- од т в бетаиновую среду. Вьфосшую ультуру разбавл ют и распредел ют на плотной питательной среде. Отдельные клетки вьфасталш с образованием колоний и,в отдельности подвергались испытанию . В результате выбирают мутант Agrobactererium НК 13. Последний устойчив, не содержит дегидроге- назы карнитина и растет на бетаине. Прораста на бетаине, диметилглицине , хопине,глутамате или ацетате, этот штамм превращает кротонобетаин или У Фобетаин в L-карнитин и выдел ет его.

Пример 3. Предварительную культуру штамма Agrobactererium НК 1 объемом 5 МП культивируют в течение 32 ч при и рН 7,0 в витаминсодержащей минеральной среде, содержа- щей 1 мас.% бетаина и 0,5 мас.Х кро- тонобетаин-хлорида. Эту культуру засеивают в культуру того же состава

, о

0 5

« , 5

5

0

5

объемом 15 л, которую потом выращивают в течение 24 ч в услови х, указанных дл предварительной культуры. По прекращении получени L-карнитина удал ют клетки центрифугированием и примен ют их затем в качестве посевного материала дл приготовлени новой культуры. Энзиматическим анализом определ ют концентрацию L-карнитина во всплывшей жидкости (19,8 л).

Содержание L-карнитина во всплывшей жидкости 4,26 мг/мл, что составл ло по выходу 95,0%. Путем катионо- обменной хроматографии вьщел ют L- карнитин из всплывшей жодкости и очищают его перекристаллизацией.

Пример 4. Щ едварительную культуру штамма Agrobactererium НК 13 объемом 5 л культивируют в течение 32 ч при и значении рН 7,0 в витаминсодержащей минеральной среде (по примеру 1), содержащей 1% холина и 0,6% у-бутиробетаин-хлорида. Эту культуру засеивают в культуру со средой того же состава объемом 15 л, которую потом В1фа1цивают в услови х примера t. По прекращении получени L-карнитина (примерно через 30 ч) отдел ют клетки методом микрофильтрации . Клеточную массу используют дл дальнейшего получени L-карнитина. Концентрацию L-карнитина в фильтрате (19,6 л) определ ют энзиматическим анализом. Содержание L-карнитина в фильтрате 5,3 мг/мл. Это соответствовало аналитическому выходу в 97,6%, счита на использованное количество 4 -бутиробетаин-хлорида.,

Пример 5. Предназначенный л дл приготовлени непрерывной культуры ферментер, содержащий 1,5 л витаминсодержащей минеральной среды (по примеру 1) с 1,5% бетаина и 1,0% у-бутиробетаин-хлорида, загружают 150 мл предварительной культуры Agrobactererium НК 13 на той же-среде. После а:эробного выращивани в тече- 1ше 20 ч при 30°С и рН 7,0 культура достигала полного роста..Потом клетки отдел ют путем центрифугировани . Согласно энзиматическому анализу всплывша жидкость содержала 8,8 г L-карнитина на литр кулктуры;

Следует отметить, что количество 0,1-10% вл етс существенным, так как только в этом случае достигает- с повышение выхода. При количествах;

n143515912

выше 10% будет иметь место осмоти-робетаин или кротонобетаин, факторы

ческое давление клеток.роста в услови х аэрации до максиДанный способ позвол ет повысить .мального накоплени целевого продуквыход L-карнитина на 15%. .е последующим его вьщелением,

отличающийс тем, что,

Claims

Формула изобретени с целью првьппени выхода Ь-карнитина,

,.в качестве бактериального штамма-проСпособ попучени L-карнитина, пре-дуцента используют Agrobacterium

дусматривающий выращивание бактери- foНК 4, или Agrobacterium НК 13, или

ального штамма-продуцента на пита-Agrobacterium НК 1331, при этом «- тельной среде, содержащей в качествебутиробетаин или кротойобетаин ввод т

источника углерода и азота у-бути-в количестве от 0,1 до 10,0%.