PL162959B1 - Method for manufacturing a complex of cyclosporine antibiotics - Google Patents

Method for manufacturing a complex of cyclosporine antibiotics

Info

Publication number
PL162959B1
PL162959B1 PL28287689A PL28287689A PL162959B1 PL 162959 B1 PL162959 B1 PL 162959B1 PL 28287689 A PL28287689 A PL 28287689A PL 28287689 A PL28287689 A PL 28287689A PL 162959 B1 PL162959 B1 PL 162959B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
cyclosporin
complex
antibiotics
cyclosporine
sources
Prior art date
Application number
PL28287689A
Other languages
English (en)
Inventor
Antaine Jekkel
Gabor Ambrus
Sarudy Eva Toth
Istvan M Szabo
Dobos A Hulberne
Attila Andor
Karoly Albrecht
Kalman Konczol
Valeria Szell
Laszlone Tomori
Imre Moravcsik
Kalman Polya
Janos Erdei
Lajos Kiss
Bela Makadi
Karoly Nagy
Bela Palotas
Jozefne Deli
Karoly Buzasi
Aniko Molnarne
Gyorgy Sandtha
Vilma Szaszhegyesi
Original Assignee
Biogal Gyogyszergyar
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Biogal Gyogyszergyar filed Critical Biogal Gyogyszergyar
Publication of PL162959B1 publication Critical patent/PL162959B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/145Fungal isolates
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • A61P37/06Immunosuppressants, e.g. drugs for graft rejection
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K7/00Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K7/64Cyclic peptides containing only normal peptide links
    • C07K7/645Cyclosporins; Related peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Crystals, And After-Treatments Of Crystals (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania kompleksu antybiotyków cyklosporynowych lub skladników tego kompleksu, to jest cyklosporyny A, cyklosporyny B i cyklosporyny C, przez aerobowa fermen- tacje nitkowatego szczepu grzyba, w którym zachodzi biosynteza tych antybiotyków na pozywce zawierajacej przyswajalne zródla wegla i azotu oraz sole mineralne i izolowanie wytworzonych produktów, znamienny tym, ze prowadzi sie hodowle szczepu nowego gatunku grzyba Tolypoc- ladium varium wytwarzajacego kompleks antybiotyków cyklosporynowych na pozywce zawie- rajacej zródla wegla, organiczne i nieorganiczne zródla azotu i sole mineralne, w warunkach aerobowych, w temperaturze 25-30°C, po czym ewentualnie izoluje sie i oczyszcza kompleks antybiotyków cyklosporynowych lub skladniki tego kompleksu. ( 1 9 ) PL (1 1 ) 162959 ( 1 3 ) B1 (51) IntCl5: C12P 21/04 C12N 1/14 C12R 1:645 PL PL PL PL PL PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania kompleksu antybiotyków cyklosporynowych lub składników tego kompleksu, to jest cyklosporyny A, cyklosporyny B i cyklosporyny C, przez fermentację aerobową.
Cyklosporyny są cyklicznymi, obojętnymi, niepolarnymi oligopeptydami jedenastoczłonowymi, różniącymi się niektórymi resztami aminokwasowymi. Cyklosporynę A i cyklosporynę B wyizolowali jako pierwsi A.Riigger i inni (Helv.Chim.Acta 59, 1075, 1976), natomiast cyklosporyny B, D, E i G wyizolowali R.Traber i inni (Helv.Chim.Acata 60, 1568, 1977) z hodowli grzyba NRRL 8044, wcześniej oznaczonego jako Trichoderma polysporum (Lingex Pers.) Rifai. Później szczep ten, po skorygowaniu systematyki, opisano w literaturze jako Tolypocladium inflatum Gams.
Obecnie znanych jest 25 różnych antybiotyków cyklosporynowych oznaczonych liteiami od A do Z (HeIv.Chim.Acta 70, 13, 1987). Spośród nich, substancją najbardziej cenną, o wybiórczym działaniu immunosupresyjnym, jest cyklosporyna A.
Cyklosporyna A znana była początkowo jako łagodny antybiotyk pizeciwgizybiczy. Jej ważne działanie immunosupresyjne poz.nano później (J.F.Borel i inni, Immunology 32, 1017 , 1977)
Serie badań in vitro i in vivo potwierdziły, że cyklosporynyA, C i G są bardzo specyficznymi środkami immunosupresyjnymi.
Cyklosporyna A hamuje reakcje immunologiczne, zarówno typu humoralncgo jak i komórkowego. Mechanizm jej działania polega na hamowaniu proliferacji komórek T oraz hamowaniu syntezy interleukiny II.
Pierwsze doniesienia o leczniczym zastosowaniu cyklospoiyny A pizy transplantacji oiganów ludzkich pojawiły się w 1978 r. Po raz pierwszy zastosowano ją przy tiansplantacji nerek (R.J. Calne i inni, Lancet 1978/2, 1323) i szpiku kostnego (R.L.Powieś i inni, Lancet 1978 /2, 1327).
Przy transplantacjach organów (nerek, trzustki, wątroby, serca, płuc) i szpiku kostnego reakcja odrzucenia organu lub szpiku kostnego przez organizm może być zahamowana pizez podanie cyklosporyny A.
162 959
Cyklosporynę A stosuje się ponadto z dobrymi wynikami do leczenia niektórych chorób autoimmunologicznych (zapalenia jjagodówki, pierwotnie postępującego gośćca stawowego, łuszczycy i miastenii).
W literaturze patentowej opisano następujące mikroorganizmy używane do wytwarzania kompleksu cyklosporyny: Cylindrocarpon lucidum Booth, NRRL 5760 (szwajcarski opis patentowy nr 589716), Tolypocladium inflatum Gams, NRRL 8044 (według wcześniejszej systematyki -Trichoderma polysporum (Link ex Pers/Rifai) szwajcarski opis patentowy nr 603 790); według Bisseta (1983) - Tol. inflatum W.Gams (1971) jest synonimem Tol.niveum (Rostrup) Bisset comb. mov. i Fusarium solani, MCI-1549, MCI-1550 (publikacja japońskiego złgoszenia patentowego nr 8 263 093). W procesach fermentacji prowadzonych z użyciem wyżej wymienionych mikroorganizmów wytwarza się cyklosporynę na niskim poziomie po długim czasie fermentacji, a także i wydajność izolacji jest niska. Istniała zatem potrzeba znalezienia szczepów mikroorganizmów zdolnych do wytwarzania kompleksu antybiotyków cyklosporynowych lub składników tego kompleksu, w wyższych stężeniach i w bardziej korzystnych warunkach niż przy użyciu poprzednich szczepów.
W wyniku badań szczepów grzybów nitkowatych izolowanych z gleby, nieoczekiwanie odkryto szczep mikroorganizmu, w którym zachodzi biosynteza kompleksu antybiotyków cyklosporynowych.
W oparciu o powyższe odkrycie opracowano sposób, będący przedmiotem wynalazku, to jest sposób wytwarzania kompleksu antybiotyków cyklosporynowych i/lub składników tego kompleksu czyli cyklosporyny A, cyklosporyny B i cyklosporyny C, przez aerobową fermentację nitkowatego szczepu grzyba, w którym zachodzi biosynteza powyższego antybiotyku na pożywce zawierającej przyswajalne źródła węgla i azotu oraz sole mineralne i izolowanie wytworzonych produktów, przy czym sposób ten polega na tym, że prowadzi się hodowlę szczepu nowego gatunku grzyba Tolypocladium varium wytwarzającego kompleks cyklosporyny, zwłaszcza Tolypocladium varium sp.nov. CY/93, zdeponowanego w Narodowej Kolekcji Mikroorganizmów Rolniczych i Przemysłowych w Budapeszcie (Węgry) pod numerem NCAIM/P/F 001005, na pożywce zawierającej źródła węgla, organiczne i nieorganiczne źródła azotu i sole mineralne, w warunkach aerobowych,w temperaturze 25-30°C, po czym ewentualnie izoluje się i oczyszcza kompleks antybiotyków cyklosporynowych lub składniki tego kompleksu.
W wyniku procesu prowadzonego sposobem według wynalazku uzyskuje się brzeczkę o wysokim stężeniu cyklosporyny. Brzeczka fermentacyjna, oprócz cyklosporyny A, jako produktu głównego, zawiera ponadto również niewielkie ilości cykosporyny B i cyklosporyny C.
Mikroorganizmu służącego do biosyntezy, oznaczonego symbolem CY/93, nie można było zaliczyć na podstawie badań taksonomicznych do żadnego gatunku grzyba wytwarzającego kompleks antybiotyków cyklosporynowych. Gatunek Tolypocladium varium sp.nov. CY/93 jest nowym taksonem rodzaju Tolypocladium, dającym się zróżnicować na poziomie gatunku.
Cechy taksonomiczne uzyskanego nowego gatunku grzyba porównano z podstawowymi, charakterystycznymi właściwościami rodzaju Tolypocladium.
Rodzaj Tolypocladium opisał po raz pierwszy Gams w 1971 r. jako nowy rodzaj rodziny Moniliales rosnących na glebie. Cechami charakterystycznymi tego rodzaju są powolny wzrost, białe kolonie poduszkowantego kształtu, terminalne i boczne fialida rozwijające się częściowo na krótkim bocznym odgałęzieniu z silnie nabrzmiałą podstawą i włókienkowatą, często łukowato wygiętą szyjką, kończącą się jednokomórkowym konidium. W obrębie tego rodzaju Gams wyodrębnił 3 nowe gatunki, to jest T.geodes, T.cylindrosporum i T.inflatum. T.geodes odznacza się wyraźną wonią gleby charakterystyczną dla Actinomycetes, natomiast nowy T.vaiiumsp.nov.CY/93 jest zupełnie pozbawiony tej cechy. Ponadto, komórki podstawowe T.geodes są znacznie węższe niż odpowiednie komórki T.varium sp.nov.CY/93. Konidia T.cylindrosporum są charakterystycznie długie i wydłużone, podczas gdy konidia T.varium sp.nov.CY/93 są kuliste i tylko lekką wydłużone. Konidia T.inflatum są owalne, dłuższe niż te, które obserwuje się w hodowli T.varium sp.nov.CY/93. Fialida T.inflatum tworzą się charakterystycznie baldaszkowato, albo bezpośrednio na strzępkach albo na komórkach podstawowych odługości 2 do 3μηι. W T.varium sp.nov.CY/93 nie obserwuje się takich baldaszkowatych form ułożenia, wykrywa się je tylko od czasu do czasu, sporadycznie. Głównie z powodu bawełno-podobnej, powietrznej grzybni o barwie
162 959 białej, kolonie wszystkich znanych gatunków w Tolypocladium mają barwę białą, a odwrotna strona tych kolonii ma barwę żółtawo-szarą, żółtą lub jest bezbarwna. Nie wytwarzają one typowych, rozpuszczalnych barwników.
Natomiast T. varium sp.nov.CY/93 można odróżnić w ten sposób, że na pożwyce zawierającej glukozę i pepton oraz wyciąg słodowo-drożdżowy wytwarzany jest z czasową zmiennością rozpuszczalny pigment o barwie odpowiednio ciemnoszarej i czarnej. Badania taksonomiczne nowego gatunku w porównaniu z innymi znanymi gatunkami Tolypocladium przeprowadzono opierając się na publikacjach: W.Gams, Persoonia, 6 185-191 (1971), G.L.Barron, Can. J.Bot. 5R, 439-442 (1980) i J.Bisset, Can.J.Bot. 61, 1311-1329 (1983).
Cechy diagnostyczne Tolypocladium varium sp.nov.CY/93 można podsumować następująco.
Dziesięciodniowe kolonie mają średnicę od 10 do 25 mm, ich powierzchnia pokryta jest bawelno-podobną, licznie zarodnikującą grzybnią powietrzną o barwie białej. Spodnia strona kolonii jest zabarwiona na kolor żółtoszary lub brudnoszary. Na niektórych złożonych pożywkach wytwarza się rozpuszczalny, ciemnoszary barwnik. Na strzępkach powietrznej grzybni obserwuje się sporulację zarówno na końcach jak i boczną. Fialida występują pojedynczo, rzadko, sporadycznie w baldaszkach (werticilach), bezpośrednio na strzępkach albo na krótkich (12-3pm) komórkach podstawowych. Fialida zbudowane są z nabrzmiałej podstawy (2-4 X 2-3gm) i długiej nitkowatej szyjki (2-4 X 5-0,6pm). Konidia główek są małe (2-3 X 1,3-2,2μιη), na ogół kuliste i gładkie. Specyficzna nazwa „varium“ odzwierciedla zmienność fialidów. Tol. varium wykazuje w swym cyklu życiowym pewne podobieństwo do rodzaju Harposporium. Szczep oznaczony CY/93, w hodowli powierzchniowej, nie potrafi wykorzystać rafinozy, natomiast rośnie w hodowli powierzchniowej, na następujących źródłach węgla: mannit, inozyt, sacharoza, fruktoza, ramnoza, galaktoza, dekstroza, arabinoza i ksyloza. Hodowle tego szczepu słabo rozwijają się na agarze odżywczym i na agarze z wyciągiem słodowym, natomiast dobrze rozwijają się na agarze z mączką sojową, na agarze Czapek'a i agarze ziemniaczanym z dekstrozą. Agar z mączką owsianą i agar z wyciągiem dekstrozowo-drożdżowym nie nadają się do przechowywania szczepu.
Tol.varium wyraźnie różni się od Tol. trigonosporum, który wytwarza konidia trójkątne w widoku z lekko wklęsłymi końcami. Tol.varium różni się także od Tol. balanoides, który wytwarza boczne fialida o kształcie butelkowatym.
Ponadto, szczep holotypowy (CY/93) Tolypocladium varium n.sp. różni się od szczepu Tolypocladium inflatum (CBS 714.70) typu autentycznego tym, że ten ostatni szczep wytwarza obfitą grzybnię powietrzną o barwie białej podczas hodowli na pożywce agarowej z maltozą, natomiast Tolypocladium varium sp.nov. CY/93 nie wytwarza takiej grzybni powietrznej. Szczep Tolypocladium inflatum wytwarza czerwonobrązowy endopigment w swej grzybni podstawowej na pożywce agarowej zawierającej związek żelaza i pepton, a grzybnia podstawowa Tolypocladium carium sp.nov. CY/93 pozostaje jasnożółta. Szczep Tolypacladium varium sp. nov. CY/93 nie wykorzystuje arabinozy, a szczep Tolypocladium inflatum wykorzystuje ją. Wykorzystując azotyn sodowy ten ostatni szczep wytwarza obfitą grzybnię, a Tolypocladium varium sp.nov. CY/93 nieznacznie wzrasta.
W poniższej tabeli przedstawiono pewne właściwości Tolypocladium varium sp. nov. CY/93 w porównaniu z innymi szczepami autentycznymi Tolypocladium orazzTrichodermapolysporum ATCC 16641 i Cylindrocarpon lucidum NRRL 5760.
TolypocladiumTohpocladiumTolypocladiumToh pot ladium Tolypocladium Trichcderma pohsporum A CC 16641 Cjlmdrocarpon lucicum SRRL S760
urtum csłindrospo- rumCBS71'70 cyhndrospo rum CBS 718 70 geodes CBS 721 70 geodes 722 70
1 1 3 4 5 6 7 8
Rozkład <elulo/\ - T — -r - . _
Crz\bniu powietrzna zielona lub mebies kawozielona • - -
W siwar/antc czerwonego rozpuszczalnego pigmentu nj agarze Kinga
U brązowego pigmentu na aga · rze zawierającym związek zclaza i pcpion
162 959
1 2 3 4 5 6 7 8
Wytwarzanie ciemnobrązowego pigmentu na agarze z gliceryną syntetyczną -t 4- -
Wykorzystanie sacharozy 1- 4- + + + * + + + + + *- + + + -t- + +
Wykorzystanie insuliny - - - - + τ -
Wzrost w 5°C + + + T + * + * + -+ + T + r +
Wzrost w 37eC - - - + 4- 4-
Odporność na ogrzewanie w 504C przez 60 minut ~ τ — ~ Η. - *
Wytwarzanie kwasu z glukozy - *4 ± ± + -«-·* — τ — + * T
Wykorzystanie whcylanu sodowego - - - * + + -* + -
Wykorzystanie maiomanu sodowego + - + + + + + + T +
Wykorzystanie winianu sodowego + + + + + + τ + +
Wytwarzanie liliowego rozpuszczalnego barwnika na agarze z tyrozyną i leucyną + + + + + + .
Dużą zaletą szczepu Tolypocladium varium sp. nov. CY/93 jest właściwość szybkiego wzrostu. Jest to cecha bardzo korzystna, jeśli przy tym uwzględni, że szczep ma zdolność wykorzystania sacharozy, glukozy, sorbozy, maltozy, fruktozy, skrobi, gliceryny oraz różnych tłuszczy i olei jako źródeł węgla oraz różnych organicznych i nieorganicznych źródeł azotu, takich jak namok kukurydziany, pepton, wyciąg drożdżowy, wyciąg mięsny, azotan sodowy, azotan amonowy, siarczan amonowy oraz różne aminokwasy. Poza wymienionymi powyżej źródłami węgla i azotu, podłoże hodowlane stosowne do wytwarzania kompleksu antybiotyków cyklosporynowych może zawierać również sole mineralne (chlorek potasowy, siarczan magnezowy, dwuwodorofosforan potasowy), pierwiastki śladowe (sole miedzi, manganu, żelaza), a ponadto witaminy i środki zapobiegające pienieniu.
W korzystnym wariancie sposobu według wynalazku, ciekłą pożywkę zaszczepia się zawiesiną konidiów i grzybni przygotowaną przez hodowlę Tolypocladium varium sp. nov. CY/93 na skosach agarowych. Po trzydniowej inkubacji, uzyskaną hodowlę wstępną stosuje się do inokulacji pożywki stosowanej do produkcji antybiotyku, po czym prowadzi się inkubację w temperaturze 25-30°C, korzystnie 25°C, w ciągu 5-7 dni. Podczas fermentacji, wartość pH utrzymuje się w zakresie 6,0-2,5, korzystnie 5,2. Fermentację prowadzi się w warunkach aerobowych, energicznie mieszając (750-1000 obrotów/minutę) i przepuszczając 300 litrów powietrza/godzinę.
Zawartość cyklosporyny w brzeczce monitoruje się podczas fermentacji metodami testów mikrobiologicznych i wysokosprawnej chromatografii cieczowej. Po osiągnięciu maksymalnego stężenia antybiotyku, izoluje się go z brzeczki znanymi metodami ekstrakcji i/lub adsorpcji.
Stężenie cyklosporyny w brzeczce oznacza się na podstawie pomiaru aktywności przeciwgrzybiczej metodą dyfuzyjną na płytkach. Do testów można stosować Aspergillus niger, Aspergillus japonicus i Curvularia lunata (M.Deryfuss i inni, European J.Appl. Microbiol. 3, 125-133 (1976)). Przy oznaczaniu stężenia cyklosporyny w brzeczce metodą HPLC, próbki brzeczki rozcieńcza się 10-krotnie metanolem (F. Kreuzig, J. Chromatog. 290,181 (1984)). Zastosowanie nowego szczepu Tolypocladium varium sp. nov. CY/93 pozwala na wytwarzanie kompleksu antybiotyków cyklosporynowych zawierającego cyklosporynę A jako produkt główny oraz małe ilości cyklosporyny B i cyklosporyny C z wysoką wydajnością 950/fg/ml.
Do izolacji kompleksu antybiotyków cyklosporynowych z brzeczki fermentacyjnej stosuje się korzystnie metody ekstrakcji. Przed ekstrakcją grzybnię oddziela się przez filtrację lub wirowanie. Antybiotyki wytworzone w procesie fermentacji wypłukuje się z komórek mikroorganizmu, korzystnie niższymi alkanolami, zwłaszcza metanolem albo ketonami ogranicznymi, zwłaszcza acetonem. Ekstrakcję cyklosporyn znajdujących się w przesączu z brzeczki prowadzi się za pomocą
162 959 nie mieszających się z wodą rozpuszczalników organicznych, takich jak octan etylowy, octan n-butylowy, dwuchlorometan, 1,2-dwuchloroetan lub chloroform, korzystnie octan n-butylowy. Uzyskany po ekstrakcji surowy produkt zanieczyszczony jest wytwarzanymi przez grzyba barwnikami czerwonym i fioletowym. Usuwa się je przez- adsorpcję na węglu aktywnym lub żelu krzemionkowym. Ewentualne zanieczyszczenia lipidowe (środek przeciw pienieniu) oddziela się przez rozdział w układzie eter naftowy-metanol zawierającym 10%o wody. Zanieczyszczenia przechodzą do warstwy eteru naftowego. Warstwę metanolowo-wodną zatęża się pod zmniejszonym ciśnieniem, po czym prowadzi się ekstrakcję pozostałości wodnej dwuchlorometanem. Po odparowaniu rozpuszczalnika uzyskuje się oczyszczoną cyklosporynę. Cyklosporynę A oddziela się od pozostałych składników kompleksu, występujących w małych ilościach, techniką chromatografii kolumnowej i rekrystalizacji.
Strukturę wyizolowanych produktów wyjaśniono metodami UV, IR, iH-NMR, i3C-NMR, spektroskopii masowej i analizy aminokwasów.
Wynalazek ilustrują poniższe przykłady.
Przykład I. Z hodowli Tolypocladium varium sp. nov. CY/93 na skosie agarowym z wyciągiem słodowo-drożdżowym przygotowuje się na zawiesinę konidiów lub grzybni w 5 ml 0,9% roztworu chlorku sodowego. lml tej zawiesiny stosuje się do zaszczepienia 100 ml sterylnej pożywki inokulacyjnej IC w kolbie Erlenmeyera o pojemności 500 ml.
Skład pożywki IC
Glukoza 40 g
Pepton kazeinowy 5g
Azotan sodowy 3g
Dwuwodorofosforan potasowy 2g
Chlorek potasowy 0,5 g
Siarczan magnezowy - 7 H2O 0,5 g
Siarczan żelazawy - 7 H2O 0,0 lg
w 1000 ml wody wodociągowej.
Przed sterylizacją, pH pożywki doprowadza się do wartości 5,2 i mieszaninę sterylizuje się w temperaturze 121°C w ciągu 25 minut. Hodowlę inkubuje się w temperaturze 25°C na wstrząsarce rotacyjnej (340obrotów/minutę), po czym porcjami po 5 ml tej hodowli inokulum szczepi się 15 kolb Erlenmeyera o pojemności 500 ml, zawierających po 100 ml sterylnej pożywki FCi.
Skład pożywki FCi
Glukoza 80 g
Trypton 40 g
Mocznik 2g
Siarczan amonowy 12g
Azotan sodowy 3g
Dwuwodorofosfosran potasowy 2g
Chlorek potasowy 0,5 g
Siarczan magnezowy -7H2O 0,5 g
Siarczan żelazawy -7 H2O Ol g
w 1000 ml wody wodociągowej
Przed sterylizacją, pH pożywki doprowadza się do wartości 5,2, po czym mieszaninę sterylizuje się w temperaturze 121°C w ciągu 25 minut. Kolby inkubuje się w temperaturze 25°C na wstrząsarce rotacyjnej (340obrotów/minutę). Stężenie antybiotyku w brzeczce podczas fermentacji monitoruje się wykonując testy dyfuzji na płytkach, stosując Aspergillus niger jako organizm testowy. Przy oznaczeniach stężenia kompleksu cyklosporyny w brzeczce, jako standard stosuje się cyklosporynę A.
162 959
Fermentację prowadzi się przez 168 godzin, uzyskując stężenie kompleksu cyklosporyny w brzeczce równe 400 /yg/ml. Kompleks cyklosporyny izoluje się następująco.
Komórki z litra brzeczki filtruje się i antybiotyki wymywa się z komórek dwukrotnie 200 ml metanolu. Roztwór metanolowo-wodny zatęża się pod zmniejszonym ciśnieniem, po czym prowadzi się ekstrakcję kompleksu antybiotyku z koncentratu wodnego porcjami po 50 ml octanu n-butylowego. Ekstrakcję cyklosporyny zawartej w przesączu z brzeczki prowadzi się 200 ml octanu n-butylowego. Ekstrakty octanu n-butylowego łączy się, suszy nad bezwodnym siarczanem sodowym i odparowuje pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze 40°C. 3,7 g uzyskanego surowego produktu rozpuszcza się w 10 ml metanolu i przenosi na wierzchołek kolumny wypełnionej żelem Sephadex LH-20 (długość kolumny 40 cm, średnica 2,5 cm) traktowanym uprzednio metanolem. Zanieczyszczenia lipidowe oddziela się przez eluowanie metanolem. Frakcje zawierające kompleks cyklosporyny odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze 40°C. Rozdział składników uzyskanego kompleksu cyklosporyny (1,05 g) prowadzi się metodą chromatografii, w kolumnie wypełnionej 20 g żelu krzemionkowego Kiselgel 40 (Reanal, Budapeszt). Eluowanie prowadzi się mieszaninami chloroformu i metanolu, zawierającymi zwiększające się stopniowo objętości metanolu. Eluowanie rozpoczyna się 100 ml chloroformu i kontynuuje się mieszaninami chloroform-metanol po 100 ml, zwiększając zawartość metanolu w kolejnych porcjach rozpuszczalnika o 0,5%. Zawartość cyklosporyny w poszczególnych frakcjach oznacza metodą chromatografii cienkowarstwowej na płytkach Kieselgel 60 F254 , DC Alufoil (Merck), stosując jako rozpuszczalnik rozwijający mieszaninę octanu etylowego i izopropanolu (95:5), a do detekcji - pary jodu. Cyklosporyny A, B i C eluuje się z kolumny mieszaninami metanolu z chloroformem, zawierającymi odpowiednio 2,0%, 2,5% i 3,0% metanolu. Frakcje zawierające czyste składniki odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem i otrzymuje się 225 mg cyklosporyny A (temperatura topnienia 137-140°C, [ct]d = -189°C (metanol)), 25 mg cyklosporyny B (temperatura topnienia 149-151°^ i 52 mg cyklosporyny C (temperatura topnienia 150-152°C).
Przykład II. Pięć litrów pożywki inokulacyjnej IC sterylizuje się w temperaturze 121°C w ciągu 45 minut w K^-litrowym fermentorze laboratoryjnym, po czym zawartość fermentora zaszczepia się 200 ml wytrząsanej hodowli inokulum, przygotowanej w sposób opisany w przykładzie I i prowadzi się inkubację w temperaturze 25°C, mieszając z szybkością 750 obrotów/minutę i napowietrzając hodowlę przez przepuszczanie 3001/godz. powietrza. Proces fermentacji prowadzi się przez 72 godziny. Następnie, 500 ml tej hodowli inokulum szczepi się 5 litrów pożywki FC2 w 10-litrowym fermentorze laboratoryjnym. Pożywkę tę sterylizuje się uprzednio w temperaturze 121°C w ciągu 45 minut.
Skład pożywki FC2
Glukoza 80 g
Trypton 40 g
Mocznik 2g
Siarczan amonowy 12g
Azotan sodowy 3g
Dwuwodorofosforan potasowy 2g
Chlorek potasowy 0,5 g
Siarczan magnezowy -7H2O 0,5 g
Siarczan miedziowy ÓH2O 0,01 g
Siarczan manganowy -7H2O 0,01 g
Siarczan żelazawy -7 H2O 0,01 g
w 1000 ml wody wodociągowej
Przed sterylizacją, pH pożywki doprowadza się do wartości 5,2. Zaszczepioną hodowlę inkubuje się w temperaturze 25°C, mieszając z szybkością 750 obrotów/minutę i przepuszczając 3001/godz. powietrza. W tych warunkach prowadzi się fermentację przez 144 godziny aż do osiągnięcia maksymalnej zawartości cyklosporyny, po czym zbiera się brzeczkę.
Cyklosporynę A izoluje się z 4,8 litra brzeczki fermentacyjnej zawierającej 500//g/ml kompleksu cyklosporyny w następujący sposób.
162 959
Komórki mikroorganizmu odwirowuje się, po czym wymywa się kompleks cyklosporyny z komórek dwiema porcjami po litrze metanolu. Roztwór metanolowo-wodny zatęża się pod zmniejszonym ciśnieniem, następnie prowadzi się ekstrakcję kompleksu antybiotyku z wodnego koncentratu 2 porcjami po 250 ml octanu n-butylowego (2 X 250 ml).
Ekstrakcję kompleksu cyklosporyny prowadzi się z przesączu z brzeczki fermentacyjnej 2 porcjami po 500 ml octanu n-butylowego. Wszystkie ekstrakty octanu n-butylowego łączy się, suszy nad bezwodnym siarczanem sodowym i odparowuje się roztwór pod zmniejsznym ciśnieniem w temperaturze 40°C. Wstępne oczyszczanie 19,2 g surowego produktu prowadzi się metodą chromatograficzną, w kolumnie wypełnionej 100 g żelu Kieselgel 60 (rozmiary cząstek 0,0630,2 mm), stosując do eluowania mieszaninę chloroformu metanol i octanu (92:4:4). Obecność kompleksu cyklosporyny w poszczególnych frakcjach oznacza się metodą chromatografii cienkowarstwowej, stosując płytki Kieselgel 60 F254, DC Alufoil (Merck), mieszaninę heksanu i acetonu (2:1) jako układ rozwijający i odczynnik chlor/tolidyna do detekcji. Frakcje zawierające kompleks cyklosporyny odparowuje się do suchej pozostałości. Pozostałość po odparowaniu (5,28 g) poddaje się chromatografii w kolumnie, uzyskując cyklosporynę A. Kolumnę wypełnia się 115 g żelu Kieselgel 60 (rozmiary cząstek 0,063-0,2 mm), a eluowanie prowadzi się mieszaninami heksanu i acetonu o stopniowo wzrastającej zawartości acetonu. Cyklosporynę A eluuje się z kolumny mieszaniną zawierającą 23% acetonu. Po odparowaniu frakcji zawierających cyklosporynę A uzyskuje się l,46g tego antybiotyku.
Przykład III. Z hodowli Tolypocladium varium sp.nov.CY/93 na skosie agarowym z wyciągiem słodowo-drożdżowym przygotowuje się zawiesinę konidiów lub grzybni w 5 ml 0,9% roztworu chlorku sodowego i stosuje się do zaszczepienia 800 ml pożywki inokulacyjnej IC, opisanej w przykładzie I, uprzednio wysterylizowanej w 3-litrowej kolbie Erlenmeyera. Zawartość kolby inkubuje się na wstrząsarce rotacyjnej (340 obrotów/minutę) w temperaturze 25°C przez 2,5 dnia, po czym tą hodowlą zaszczepia się 5 litrów pożywki FC3, uprzednio wysterylizowanej w 10-llirowvm fermentorze laboratoryjnym w temperaturze 121°C przez 45 minut.
Skład pożywki FC3
Sorboza 60 g
Trypton 40 g
Mocznik 2g
Siarczan amonowy 12g
Azotan sodowy 3g
Dwuwodorofosforan potasowy 2g
Chlorek potasowy 0,5 g
Siarczan magnezowy ·7 H2O 0,5 g
Siarczan manganowy ·7 H2O 0,01 g
Siarczan żelazawy ·7 H2O 0,01 g
w ' 1000 ml wody wodociągowej
Przed sterylizacją, pH pożywki doprowadza się do wartości 5,2. Zaszczepioną hodowlę inkubuje się w temperaturze 25°C, mieszając z szybkością 1000 obrotów/minutę i przepuszczając 3001/godz. powietrza. Proces fermentacji prowadzi się przez 168 godzin, do czasu aż zawartość kompleksu cyklosporyny w brzeczce osiągnie poziom 600jtfg/ml (oznaczenie zawartości metodą mikrobiologiczną).
Po izolacji prowadzonej w sposób opisany w przykładzie II uzyskuje się 310 mg cyklosporyny A z litra brzeczki.
Przykład IV. Z 5-7 dniowych hodowli Tolypocladium varium sp.nov.CY/93(NCAIN/P/F 001005) na skosie agarowym z wyciągiem słodowo-drożdżowym przygotowuje się zawiesinę konidiów lub grzybni w 5 ml 0,9% roztworu chlorku sodowego i stosuje się ją do zaszczepienia 500 ml pożywki inokulacyjnej IC opisanej w przykładzie I, uprzednio wysterylizowanej w 3-litrowej kolbie Erlenmeyera. Zawartość kolby inkubuje się na wstrząsarce rotacyjnej (340obrotów/minutę) w temperaturze 25°C w ciągu 3 dni, po czym tą hodowlą zaszczepia się 5 litrów pożywki FC4, uprzednio wysterylizowanej w 10-łltrowym fermentorze laboratoryjnym w temperaturze 121°C w ciągu 45 minut.
162 959
Skład pożywki FC4
Maltoza 80 g
Trypton 40 g
Mocznik 2g
Siarczan amonowy 12g
Azotan sodowy 3g
Dwuwodorofosforan potasowy 2g
Chlorek potasowy 0,5 g
Siarczan magnezowy ·7 H2O 0,5 g
Siaiczan manganowy -7H2O 0,01 g
Siarczan miedziowy ·5 H2O 0,01 g
Siarczan żelazawy ·7 H2O 0,01 g
w 1000 ml wody wodociągowej
Przed sterylizacją, pH pożywki doprowadza się do wartości 5,2. Po inokulacji, brzeczkę fermentacyjną inkubuje się w temperaturze 25°C, mieszając na wstrząsarce rotacyjnej z szybkością 1000 obrotów/minutę i przepuszczając 3001/godz. powietrza. Proces fermentacji prowadzi się przez 144 godziny. Po tym czasie brzeczka zawiera 620pg/mI kompleksu cyklosporyny (według oznaczenia mikrobiologicznego).
Izolację prowadzi się w sposób opisany w przykładzie I. Z litra brzeczki uzyskuje się 305 mg cyklosporyny A.
Przykład V. Z 5-7 dniowej hodowli Tolypocladium varium nov.sp.CY/93 (NCAIM/P/F 001005) na skosie agarowym z wyciągiem słodowo-drożdżowym przygotowuje się zawiesinę konidiów lub grzybni w 5 ml 0,9% roztworu chlorku sodowego i stosuje się ją do inokulacji 500 ml pożywki inokulacyjnej IC, opisanej w przykładzie I, uprzednio wysterylizowanej w 3-litrowej kolbie Erlenmeyera. Zawartość kolby inkubuje sią na wstrząsarce rotacyjnej (340 obrotów/minutę), w temperaturze 25°C wciągu 2 dni, po czym tą hodowlą zaszczepia się 5 litrów pożywki FC1, uprzednio wysterylizowanej w 10-litrowym fermentorze laboratoryjnym w temperaturze 121°C, w ciągu 45 minut. Po inokulacji, brzeczkę fermentacyjną miesza się z szybkością 750 obrotów/minutę w temperaturze 25°C, przepuszczając 3001/godz. powietrza. Po 96 godzinach hodowli dodaje się wysterylizowany, wodny roztwór 100 g maltozy i kontynuuje się fermentację do 144 godzin. Po tym czasie zawartość kompleksu cyklosporyny w brzeczce wynosi 950/ig/mi (według oznaczenia mikrobiologicznego). Łącznie zbiera się 4,8 litrów brzeczki. Po izolacji prowadzonej w sposób podany w przykładzie II uzyskuje się 2,75 g cyklosporyny A.
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz.
Cena 10 000 zł

Claims (3)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania kompleksu antybiotyków cyklosporynowych lub składników tego kompleksu, to jest cyklosporyny A, cyklosporyny B i cyklosporyny C, przez aerobową fermentację nitkowatego szczepu grzyba, w którym zachodzi biosynteza tych antybiotyków na pożywce zawielającej przyswajalne źródła węgla i azotu oraz sole mineralne i izolowanie wytworzonych produktów, znamienny tym, że prowadzi się hodowlę szczepu nowego gatunku grzyba Tolypocladium varium wytwarzającego kompleks antybiotyków cyklosporynowych na pożywce zawierającej źródła węgla, organiczne i nieorganiczne źródła azotu i sole mineralne, w warunkach aerobowych, w temperaturze 25-30°C, po czym ewentualnie izoluje się i oczyszcza kompleks antybiotyków cyklosporynowych lub składniki tego kompleksu.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako szczep nowego gatunku grzyba stosuje się Tylopocladium varium sp.nov.CY/93, zdeponowany w Narodowej Kolekcji Mikroorganizmów Rolniczych i Przemysłowych w Budapeszcie (Węgry), pod numerem NCAIM/P/F 001005.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że proces fermentacji prowadzi się na pożywce zawierającej pepton, siarczan amonowy i trypton jako źródła azotu oraz glukozę, maltozę, sorbozę i sorbit jako źródła węgla.
PL28287689A 1988-12-20 1989-12-20 Method for manufacturing a complex of cyclosporine antibiotics PL162959B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU886497A HU201577B (en) 1988-12-20 1988-12-20 Process for producing cyclosporin antibiotics

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL162959B1 true PL162959B1 (en) 1994-01-31

Family

ID=10971727

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL28287689A PL162959B1 (en) 1988-12-20 1989-12-20 Method for manufacturing a complex of cyclosporine antibiotics

Country Status (23)

Country Link
US (1) US5156960A (pl)
EP (1) EP0379708B1 (pl)
JP (1) JPH0763356B2 (pl)
AT (1) AT393135B (pl)
BG (1) BG60274B1 (pl)
CA (1) CA2006144C (pl)
CZ (1) CZ283557B6 (pl)
DD (1) DD290356A5 (pl)
DE (1) DE58908740D1 (pl)
DK (1) DK174719B1 (pl)
FI (1) FI92603C (pl)
FR (1) FR2640641B1 (pl)
GB (1) GB2227489B (pl)
HU (1) HU201577B (pl)
IT (1) IT1237799B (pl)
LV (2) LV10102B (pl)
NO (1) NO175873C (pl)
PL (1) PL162959B1 (pl)
RU (1) RU1836425C (pl)
SE (1) SE505442C2 (pl)
SK (1) SK279768B6 (pl)
UA (1) UA13320A (pl)
YU (1) YU47100B (pl)

Families Citing this family (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1992013094A1 (fr) * 1991-01-25 1992-08-06 Fujisawa Pharmaceutical Co., Ltd. Procede pour produire de la cyclosporine a et/ou c
ATE127528T1 (de) * 1991-04-06 1995-09-15 Dresden Arzneimittel Verfahren zur fermentativen herstellung und isolierung von cyclosporin a sowie neue cyclosporin- bildende stämme.
FI92334C (fi) * 1992-12-30 1994-10-25 Leiras Oy Menetelmä syklosporiinien tuottamiseksi ja menetelmässä käytettävä uusi Tolypocladium-kanta
SI9300303A (en) * 1993-06-08 1994-12-31 Krka Tovarna Zdravil Process for isolation of hypolipemic effective substance
KR100304324B1 (ko) * 1994-10-13 2001-11-22 김용규 사이클로스포린a의제조방법
KR100341355B1 (ko) * 1994-10-14 2002-10-25 주식회사종근당 사이클로스포린a의제조방법
KR0126610B1 (ko) * 1994-10-18 1997-12-29 김충환 고생산 세포융합변이균주에 의한 사이클로스포린 a의 제조방법
EP0725076B1 (en) * 1995-02-01 2001-06-06 National Research Development Corporation of India A process for the preparation of cyclosporin A from tolypocladium species
EP0846699A1 (en) * 1995-06-29 1998-06-10 Fujisawa Pharmaceutical Co., Ltd. Substance wf16616, process for production thereof, and use thereof
DE19611094C2 (de) 1996-03-21 1999-06-17 Dresden Arzneimittel Verfahren zur Reinigung von Cyclosporin A und/oder verwandten Cyclosporinen aus einem Cyclosporin-haltigen Rohextrakt unter Anwendung chromatographischer Verfahren mit Kieselgel als Adsorbens
US5709797A (en) * 1996-06-05 1998-01-20 Poli Industria Chimica S.P.A. Method of isolating cyclosporins
US5747330A (en) * 1996-06-05 1998-05-05 Poli Industria Chimica Antibiotic producing microbe
WO2000040219A1 (en) 1998-12-30 2000-07-13 Dexcel Ltd. Dispersible concentrate for the delivery of cyclosporin
US7732404B2 (en) 1999-12-30 2010-06-08 Dexcel Ltd Pro-nanodispersion for the delivery of cyclosporin
ATE306558T1 (de) 2000-02-29 2005-10-15 Biocon Ltd Herstellung und reinigung von cyclosporin-a
US7696165B2 (en) 2006-03-28 2010-04-13 Albany Molecular Research, Inc. Use of cyclosporin alkyne analogues for preventing or treating viral-induced disorders
US7696166B2 (en) 2006-03-28 2010-04-13 Albany Molecular Research, Inc. Use of cyclosporin alkyne/alkene analogues for preventing or treating viral-induced disorders
EP2151450A1 (de) * 2008-07-29 2010-02-10 Sandoz AG Verfahren zur Aufarbeitung von mikrobiologisch hergestellten zyklischen Oligopeptiden
EP2701701B1 (en) * 2011-04-28 2018-01-24 Celgene Corporation Methods and compositions using pde4 inhibitors for the treatment and management of autoimmune and inflammatory diseases
GB201319791D0 (en) * 2013-11-08 2013-12-25 Sigmoid Pharma Ltd Formulations
CN117025407A (zh) * 2023-06-28 2023-11-10 中国人民解放军海军特色医学中心 一株弯颈霉属真菌及其在制备抗辐损伤药物中的应用

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4117118A (en) * 1976-04-09 1978-09-26 Sandoz Ltd. Organic compounds
DE2819094A1 (de) * 1977-05-10 1978-11-23 Sandoz Ag Cyclosporin-derivate, ihre verwendung und herstellung
US4215199A (en) * 1978-06-05 1980-07-29 Sandoz Ltd. Antibiotic production
SE448386B (sv) * 1978-10-18 1987-02-16 Sandoz Ag Nya cyklosporinderivat, forfarande for framstellning av dem samt farmaceutisk komposition innehallande dem
US4764503A (en) * 1986-11-19 1988-08-16 Sandoz Ltd. Novel cyclosporins

Also Published As

Publication number Publication date
FI92603B (fi) 1994-08-31
FI92603C (fi) 1994-12-12
HU201577B (en) 1990-11-28
RU1836425C (ru) 1993-08-23
YU241589A (en) 1991-02-28
US5156960A (en) 1992-10-20
CA2006144C (en) 1995-02-21
CZ283557B6 (cs) 1998-05-13
JPH0763356B2 (ja) 1995-07-12
DD290356A5 (de) 1991-05-29
DK640989A (da) 1990-06-21
DK640989D0 (da) 1989-12-18
LV10500A (lv) 1995-02-20
JPH02231071A (ja) 1990-09-13
BG60274B2 (en) 1994-03-31
SE8904262D0 (sv) 1989-12-19
UA13320A (uk) 1997-02-28
SK279768B6 (sk) 1999-03-12
NO175873B (pl) 1994-09-12
LV10500B (en) 1995-08-20
EP0379708A1 (de) 1990-08-01
DE58908740D1 (de) 1995-01-19
GB8928715D0 (en) 1990-02-28
IT1237799B (it) 1993-08-31
SK722589A3 (en) 1999-03-10
SE505442C2 (sv) 1997-08-25
BG60274B1 (bg) 1994-03-31
CA2006144A1 (en) 1990-06-20
HUT52164A (en) 1990-06-28
GB2227489A (en) 1990-08-01
NO895160L (no) 1990-06-21
AT393135B (de) 1991-08-26
NO895160D0 (no) 1989-12-20
GB2227489B (en) 1992-09-16
FR2640641B1 (fr) 1991-05-10
LV10102B (en) 1995-02-20
YU47100B (sh) 1994-12-28
FI896157A0 (fi) 1989-12-20
NO175873C (no) 1994-12-21
ATA289189A (de) 1991-01-15
LV10102A (lv) 1994-05-10
EP0379708B1 (de) 1994-12-07
CZ722589A3 (cs) 1998-01-14
DK174719B1 (da) 2003-10-06
FR2640641A1 (fr) 1990-06-22
SE8904262L (sv) 1990-06-21
IT8922765A0 (it) 1989-12-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL162959B1 (en) Method for manufacturing a complex of cyclosporine antibiotics
JP3111470B2 (ja) 新規ポリペプチド化合物およびその製造法
FI92334B (fi) Menetelmä syklosporiinien tuottamiseksi ja menetelmässä käytettävä uusi Tolypocladium-kanta
WO1994016091A9 (en) A process for producing immunosuppressives and a novel microbial species to be employed therein
US5747330A (en) Antibiotic producing microbe
EP0781348B1 (en) Process for manufacturing cyclosporin a by highly productive fusant strain
CN110832066B (zh) 一种伊维菌素B1b产生菌及其应用
US5854276A (en) Substance WF16616, process for production thereof, and use thereof
CN109182180B (zh) 一种灰棕褐链霉菌及其发酵生产巴弗洛霉素a1的应用
US5516686A (en) Fungicidal antibiotic producing Streptomyces sp. NCIMB 40212
US5426038A (en) Process for production of an antibiotic compound with Zalerion arboricola
KR0143769B1 (ko) 항균성 폴리펩티드 화합물과 그 제조방법 및 이를 함유하는 약학 조성물
SI8912415A (sl) Mikrobni postopek za proizvodnjo imunosupresivnih antibiotikov
KR20000049023A (ko) Fr900482 및 유사 화합물의 신규한 제조방법
KR830001245B1 (ko) 항생물질 마이코플라네신의 제조방법
EP0187528B1 (en) A new compound fr-68504, production thereof and use thereof
EP0525846A1 (en) Sporomiella intermedia and processes therefrom
CN109321612A (zh) 一种发酵生产巴弗洛霉素a1的方法