JP6772062B2 - 癌の免疫療法 - Google Patents

Description

［相互参照］
本出願は２０１３年１２月２日付けで出願された米国仮出願第６１／９１０７２８号に基づく優先権を主張するものであり、該仮出願はその全体が引用することにより本明細書の一部をなす。

本発明は、例えば癌及び自己免疫障害を含む細胞増殖性障害又は感染性疾患の治療のための、免疫原性組成物、免疫原性組成物の作製方法、及び免疫原性組成物を使用する方法に関する。

より詳細には、本発明は腫瘍免疫耐性機構に関与する標的遺伝子の発現を調節するよう特異的に設計された、オリゴヌクレオチドで処理された細胞を提供する。

免疫療法は、「免疫応答を誘導し、亢進させ、又は抑制することによる疾患の治療」である。免疫応答を惹起し、又は増幅させるよう設計された免疫療法には、免疫活性化療法があり、一方、免疫応答を減少させ、又は抑制する免疫療法は、免疫抑制療法として分類される。

癌の免疫療法は、この数十年にわたり臨床診療においてますます重要となってきている。今日の治療標準における主要なアプローチには、組換えモノクローナル抗体（ｍＡｂ）を使用した受動免疫療法がある。ｍＡｂは、抗体依存性細胞介在性細胞傷害（ＡＤＣＣ）といった、個体自身の体液性免疫応答に関連する機構を介して、腫瘍の発生に関与する主要な抗原に結合し、中等度の細胞介在性免疫力を生じることによって作用する。

免疫療法アプローチを示す別のグループは腫瘍細胞を破壊することができる細胞の投与を基礎としている。投与される細胞は、患者自身の、単離してｅｘ−ｖｉｖｏにて増殖させた腫瘍浸潤リンパ球（ＴＩＬ）であってよい。ＴＩＬは種々の腫瘍関連抗原（ＴＡＡ）を認識することができる場合もあれば、特定の抗原を認識させるようｉｎ ｖｉｔｒｏにてＴＩＬを再活性化させ、増殖させることができる場合もある。ＴＩＬを基礎とした治療アプローチは通常、「養子細胞移入」（ＡＣＴ）と呼ばれる。

ＡＣＴを更に発展させたものに、特異的腫瘍関連抗原（ＴＡＡ）を認識する受容体を発現させるＴ細胞の遺伝子改変がある。このような改変は、特異的Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）の発現又はＣＤ３／共刺激分子膜貫通及び細胞質ドメインに融合させたＴＡＡ特異的抗体からなるキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）の発現を誘導することができる。

ＡＣＴ法はまた、免疫応答の拡大を誘起させることなく、腫瘍細胞に直接作用するという点で、受動免疫療法アプローチとして考えることもできる。しかし、ｍＡｂとは異なり、ＡＣＴ剤は、選択された受容体の遮断、及びＡＤＣＣ等の中等度の細胞応答とは対照的に、腫瘍細胞を完全に破壊することができる。

個体自身の免疫系の抗腫瘍応答を生じる能力を回復させる多くの能動的免疫療法の開発が進められている。能動的免疫治療剤は多くの場合、癌治療用ワクチン又は単に癌ワクチンと呼ばれる。多くの癌ワクチンは現在臨床試験中であり、最近では、ｓｉｐｕｌｅｕｃｅｌｌ−Ｔが米国ＦＤＡによって承認されたこのようなワクチンの最初のものとなった。

細胞介在性免疫応答を生じる様々な抗原及び様々な機序を用いた癌ワクチンにはいくつかのクラスがある。或るクラスのワクチンは、腫瘍細胞によって選択的に発現した抗原のペプチド断片を基材としている。このペプチドは単独で又は補助剤及びサイトカイン、例えば顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）を含み得る免疫刺激剤と組み合わせて投与される。

別のクラスの癌ワクチンは抗原として使用される改変（例えば、亜致死的に照射した）腫瘍細胞を、また免疫刺激剤と組み合わせたものを基材とする。現在臨床試験中のこの種のワクチンは、自己（例えば、ＯｎｃｏＶＡＸ、ＬｉｐｏＮｏｖａ）と同種（例えば、Ｃａｎｖａｘｉｎ、Ｏｎｙｖａｘ−Ｐ、ＧＶＡＸ）との両方の腫瘍細胞株を基材とする。

更に別のクラスの癌ワクチンは樹状細胞を使用する。樹状細胞（ＤＣ）はその性質により、強力な抗原依存性細胞介在性免疫応答を生じ、ｉｎ ｖｉｖｏにて治療用Ｔ細胞を惹起することができる「プロフェッショナルな」抗原提示細胞である。ＤＣを基材とした癌ワクチンは通常、患者から単離され又は患者の造血前駆細胞若しくは単球を培養することによりｅｘ ｖｉｖｏにて作製されたＤＣを含む。ＤＣに更に腫瘍抗原を負荷し、時にはＧＭ−ＣＳＦ等の免疫刺激剤と組み合わせる。多くのＤＣワクチンが現在臨床試験中であり、最初にＦＤＡに承認されたワクチンである、ｓｉｐｕｌｅｕｃｅｌｌ−ＴはＤＣを基材とする。

免疫抑制の機序及び免疫抑制緩和に対する治療アプローチ
免疫系の主要な生理学的機能の１つは、新生物細胞を認識し、かつ排除することであり、そのため、腫瘍の何らかの進行に必須となるのは、免疫耐性機構を発達させることである。一旦発達すると、これらの機構は、天然の免疫系が腫瘍の成長に作用するのを妨げるだけでなく、癌への任意の免疫療法アプローチの有効性を制限する。重大な免疫耐性機構は、免疫チェックポイントと呼ばれることもある免疫抑制経路を含む。免疫抑制経路は、腫瘍細胞と、ＡＣＴ治療剤を含むＣＤ８＋細胞傷害性Ｔリンパ球との間の相互作用において特に重要な役割を果たす。重大な免疫チェックポイントには、Ｔ細胞表面上に発現する抑制性受容体、とりわけ例えばＣＴＬＡ−４、ＰＤ１、及びＬＡＧ３がある。

科学及び医療の団体は、免疫チェックポイントを減弱させる重要性について認識していた。免疫抑制を緩和する一方法は、特別に設計された薬剤により免疫チェックポイントを遮断することである。ＣＴＬＡ−４遮断抗体であるイピリムマブは、近年ＦＤＡによって承認された。ＰＤ１を遮断するいくつかの分子は現在臨床開発中である。

免疫抑制機構はまた、樹状細胞の機能に対して、結果としてＤＣを基材とする癌ワクチンの有効性に負の方向に影響を及ぼす。免疫抑制機構は、ＤＣのＭＨＣクラスＩ経路を介した腫瘍抗原を提示し、かつ抗腫瘍免疫のためにナイーブＣＤ８＋Ｔ細胞をプライミングする能力を阻害するおそれがある。ＤＣの免疫抑制機構に関与する重要な分子にはユビキチンリガーゼＡ２０及び広域免疫抑制タンパク質ＳＯＣＳ１がある。

癌に対する免疫療法アプローチの有効性をこのアプローチと免疫チェックポイントの阻害剤とを組み合わせることにより増大させることができる。多くの進行中の前臨床試験及び臨床試験では、癌ワクチンと他の免疫治療剤とチェックポイント遮断剤、例えばイピリムマブとの間の潜在的な相乗効果を探索している。このような併用アプローチは、有意に改善された臨床成果をもたらす可能性がある。

しかし、癌免疫治療剤をチェックポイント遮断剤と組み合わせて使用するには多くの欠点がある。例えば、免疫チェックポイント遮断は免疫自己寛容の破壊につながり、それにより主に発疹、大腸炎、肝炎、及び内分泌障害を含む「免疫関連有害事象」と呼ばれる自己免疫／自己炎症性副作用の新規の症候群を誘発するおそれがある（非特許文献１）。

報告されているチェックポイント阻害剤の毒性プロファイルは、他のクラスの腫瘍崩壊剤（oncologic agents）について報告された毒性プロファイルとは異なる。これらの毒性プロファイルは、皮膚、消化管、内分泌腺、肺、肝臓、眼内、及び神経系を含む多臓器系の炎症事象を含む（非特許文献２）。

上記の観点から、チェックポイント阻害剤におけるこれまでに報告されている多臓器系の有害な炎症事象の危険がなく、チェックポイント阻害剤及び他のクラスの腫瘍崩壊剤と組み合わせて使用することができる新たな癌治療剤が必要とされている。腫瘍又は感染疾患耐性機構と関連した遺伝子を標的とするオリゴヌクレオチド作用物質を組み合わせて細胞を処理することによって調製された本発明の免疫療法用細胞、このような治療用細胞を作製する方法、及び作製された治療用細胞を用いて疾患を治療する方法は、この長い間望まれていた必要性を満たすものである。

Corsello他、J.Clin. Endocrinol. Metab., 2013, 98:1361 Hodi, 2013, Annals of Oncology, 24: Supp1, i7

細胞増殖性障害及び感染性疾患に対する免疫療法アプローチの有効性を、これらのアプローチと免疫チェックポイントの遮断剤とを組み合わせることにより増大させることができる。癌ワクチンと他の免疫治療剤とチェックポイント阻害剤との間の多くの相乗効果により、併用アプローチが細胞増殖性障害及び免疫疾患における臨床転帰を有意に改善させることができる機会が得られる。

本明細書に開示の本発明の種々の実施の形態は、免疫抑制機構に関与する標的遺伝子の発現を調節するよう、ｅｘ ｖｉｖｏにてオリゴヌクレオチドで細胞を処理することによって得られた治療用細胞を含む組成物を含む。オリゴヌクレオチド作用物質は、ロックド核酸（ＬＮＡ）、メトキシエチルギャップマー（gapmers）等を含むアンチセンスオリゴヌクレオチド（ＡＳＯ）又はｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ阻害剤、モルフォリノ、ＰＮＡ等であってよい。オリゴヌクレオチドは自己送達性（ｓｄ）ＲＮＡｉ作用物質が好ましい。オリゴヌクレオチドに、例えば少なくとも１つの２−Ｏ−メチル修飾、２’−フルオロ修飾、及び／又はホスホロチオエート修飾を含む化学修飾を行うことができる。オリゴヌクレオチドは、１つ又は複数の疎水性の修飾物、例えば１つ又は複数のステロール、コレステロール、ビタミンＤ、ナフチル、イソブチル、ベンジル、インドール、トリプトファン、又はフェニル疎水性修飾物を含むことができる。オリゴヌクレオチドは、疎水性に修飾されたｓｉＲＮＡ−アンチセンスハイブリッドであってよい。オリゴヌクレオチドは、膜貫通送達系、例えば脂質を含む送達系と組み合わせて使用することができる。

一つの実施の形態において、細胞は癌又は感染性疾患患者から得られ、及び／又はそれらの患者に由来し、例えば腫瘍浸潤リンパ球（ＴＩＬ）及び／又はＴ細胞、抗原提示細胞、例えば樹状細胞、ナチュラルキラー細胞、人工多能性幹細胞、幹細胞セントラル記憶型Ｔ細胞等であってよい。Ｔ細胞及びＮＫ細胞は、高親和性Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）及び／又はキメラ抗体又は抗体断片−Ｔ細胞受容体（ＣＡＲ）を発現するよう遺伝子操作されることが好ましい。一つの実施の形態において、キメラ抗体／抗体断片は、好ましくは腫瘍細胞に発現した抗原に結合することができる。免疫細胞を、プラスミド、ウイルス性送達ビークル又はｍＲＮＡを用いたトランスフェクションにより操作することができる。

一つの実施の形態において、キメラ抗体又は断片は、Ｂ細胞のＣＤ１９受容体と結合し、及び／又は黒色腫腫瘍等の腫瘍上に発現する抗原に結合することができる。このような黒色腫発現型抗原には、例えばＧＤ２、ＧＤ３、ＨＭＷ−ＭＡＡ、ＶＥＧＦ−Ｒ２等がある。

修飾のための本明細書にて同定される標的遺伝子としては、細胞傷害性Ｔ細胞抗原４（ＣＴＬＡ４）、プログラム細胞死タンパク質１（ＰＤ１）、腫瘍成長因子受容体ベータ（ＴＧＦＲ−ベータ）、ＬＡＧ３、ＴＩＭ３及びアデノシンＡ２ａ受容体；ＢＡＸ、ＢＡＣ、Ｃａｓｐ８及びＰ５３を含むがそれらに限定されない抗アポトーシス遺伝子；Ａ２０ユビキチンリガーゼ（ＴＮＦＡＩＰ３、ＳＯＣＳ １（サイトカインシグナル伝達の抑制因子、ＩＤＯ（インドールアミン−２，３−ジオキシゲナーゼ；トリプトファン分解酵素）、ＰＤ−Ｌ１（ＣＤ２７４）（表面受容体、Ｔ細胞上でのＰＤ １との結合因子）、ノッチリガンドデルタ１（ＤＬＬ １）、Ｊａｇｇｅｄ １、Ｊａｇｇｅｄ ２、ＦａｓＬ（アポトーシス促進表面分子）、ＣＣＬ１７、ＣＣＬ２２（制御性Ｔ細胞を誘引する分泌型ケモカイン）、ＩＬ１０受容体（ＩＬ１０ＲＡ）、ｐ３８（ＭＡＰＫ１４）、ＳＴＡＴ３、ＴＮＦＳＦ４（ＯＸ４０Ｌ）、マイクロＲＮＡのｍｉＲ−１５５、ｍｉＲ−１４６ａ、ＢＡＸ、ＢＡＣ、Ｃａｓｐ８及びＰ５３を含むがそれらに限定されない抗アポトーシス遺伝子、及び同様の遺伝子、並びにそれらの組合せが挙げられる。代表的な標的配列を表１に挙げる。

操作された治療用細胞を、標的遺伝子の１つ又は複数の発現を阻害するよう設計されたＲＮＡｉ作用物質を用いて処理する。ＲＮＡｉ作用物質は標的遺伝子にハイブリダイズするガイド配列を含むことができ、ＲＮＡ干渉機構を介して標的遺伝子の発現を阻害するが、この場合標的領域は表１に挙げた群から選択される。ＲＮＡ作用物質を化学修飾することができ、少なくとも１つの２’−Ｏ−メチル、２’−Ｏ−フルオロ、及び／又はホスホロチオエート修飾物、並びに少なくとも１つの疎水性修飾物、例えばコレステロール等を含むことが好ましい。

本明細書に記載の免疫原性組成物は、癌及び／又は感染性疾患を含む増殖性障害の治療に有用であり、腫瘍免疫耐性機構に関与する標的遺伝子の発現を調節するよう、オリゴヌクレオチドを用いたｅｘ−ｖｉｖｏでの細胞の処理によって作製される。ｅｘ ｖｉｖｏでの細胞の処理は、腫瘍抑制機構に関与する遺伝子、例えば表１に挙げる遺伝子を標的とし、かつその発現を阻害することができるオリゴヌクレオチドを細胞に投入することを含む。オリゴヌクレオチドは、脂質（複数の場合もあり）及びベクター、例えばウイルスベクターの１つ又は複数を含み得る膜貫通送達系と組み合わせて使用することができる。

本発明は、腫瘍免疫耐性機構に関与する１つ又は複数の標的遺伝子、例えば表１の標的遺伝子の１つ又は複数の発現を調節するよう、１つ又は複数のオリゴヌクレオチドで処理した細胞を含む免疫原性組成物を、その組成物を必要とする対象に投与することにより細胞増殖性障害又は感染性疾患を治療する方法を含む。

本発明は好ましくは、本明細書に記載の標的遺伝子の組合せを標的とする複数のオリゴヌクレオチド作用物質で処理した免疫原性細胞を含む。この組合せは、腫瘍免疫耐性機構を阻害するため、複数の抑制性受容体遺伝子、サイトカイン受容体遺伝子、調節遺伝子、及び／又はアポトーシス因子を標的とすることができる。

本発明は、新規の免疫療法用細胞、免疫療法用細胞を作製する方法、及びこのような細胞を使用する治療方法に関する。

本明細書において、例えばＴＩＬ、ＴＣＲ、ＣＡＲ、及び他の細胞型、並びに樹状細胞を基材とした癌ワクチンを基礎とした受動細胞移入を含むがそれらに限定されない広範な種々の細胞を基礎とした免疫療法への適用可能な免疫チェックポイント阻害の新たな方法について説明する。自己送達性ＲＮＡｉ技術は、免疫細胞を含む任意の細胞型の短鎖オリゴヌクレオチドの効率的なトランスフェクションをもたらし、免疫療法の治療の有効性の増大をもたらす。さらに、アポトーシス経路の主要活性因子、とりわけ例えばＢＡＣ、ＢＡＸ、Ｃａｓｐ８、及びＰ５３の阻害を介してアポトーシスを阻止することによって活性化した免疫細胞を保護することができる。

オリゴヌクレオチドによって改変された活性化免疫細胞が、対象に投与する単一の治療剤に移入されているが、ワクチンと免疫治療剤との組合せが個別に投与され、またチェックポイント阻害剤が個別に投与された場合に比べ多くの利点をもたらしている。これらの利点には、単一の治療剤（免疫耐性遺伝子を標的とするオリゴヌクレオチドにより改変された活性化免疫細胞）中にはチェックポイント阻害剤に関連する副作用がないことがある。

請求された、免疫療法用細胞、免疫耐性経路を標的とするオリゴヌクレオチド分子の導入により免疫療法用細胞を作製する方法、並びに増殖性及び感染性疾患を治療する方法は、任意の既知の免疫療法用細胞及び免疫療法用細胞を作製する方法よりも改善されているが、それは、
１）チェックポイント阻害剤と他の免疫耐性機構阻害剤とを組み合わせる単一の治療用組成物と、
２）傷害性の減少と、
３）他の組成物と比べたときの有効性の増大と、
が得られるためである。

上記の実施形態の特徴は、添付の図面を参照するとともに以下の詳細な説明を参照することにより容易に理解されるだろう。

ｓｄＲＮＡ分子の構造を示す概略図である。 ＨｅＬａ細胞のＧＡＰＤＨ及びＭＡＰ４Ｋ４のｓｄＲＮＡ誘導性サイレンシングを示すグラフである。 ＮＫ−９２細胞の３つの遺伝子に関するｓｄＲＮＡ作用物質を用いた多重標的のｓｄＲＮＡ誘導性ノックダウンを示すグラフである。 ＴＰ５３及びＭＡＰ４Ｋ４を標的とするｓｄＲＮＡ作用物質による、ヒト初代Ｔ細胞の遺伝子発現のノックダウンを示すグラフである。 ヒト初代Ｔ細胞のＣＴＬＡ４及びＰＤ１のｓｄＲＮＡ誘導性ノックダウンを示すグラフである。 ヒト初代Ｔ細胞のｓｄＲＮＡによるＰＤＣＤ１及びＣＴＬＡ−４表面発現の減少を示すグラフである。 ヒトＰＢＭＣのＴ細胞及びＢ細胞へのＭＡＰ４Ｋ４−ｃｙ３のｓｄＲＮＡ送達を示すグラフである。

本発明は特許請求の範囲により規定されており、免疫耐性（阻害性オリゴヌクレオチド）の抑制因子の発現を減少させ、及び／又は阻害するよう特別に設計され、選択されたオリゴヌクレオチド、このような阻害性オリゴヌクレオチドでの処理によって改変された細胞を含む組成物、このような組成物を作製する方法、及び上記組成物を増殖性及び／又は感染性疾患の治療に用いる方法を含む。特に、それぞれが標的とする免疫抑制因子に干渉し、その活性を減少させるよう特に設計されたオリゴヌクレオチド作用物質の組合せを用いて細胞を処理する。

好ましくは、オリゴヌクレオチド作用物質の組合せは、チェックポイント阻害剤遺伝子、例えばＣＴＬＡ４、ＰＤ−１／ＰＤ−１Ｌ、ＢＴＬＡ（Ｂ及びＴリンパ球アテニュエーター）、ＫＩＲ（キラー免疫グロブリン様受容体）、Ｂ７−Ｈ３、Ｂ７−Ｈ４受容体、及びＴＧＦ−ベータ２型受容体；免疫細胞を不活性化するサイトカイン受容体、例えばＴＧＦ−ベータ受容体Ａ及びＩＬ−１０受容体；免疫細胞によるサイトカイン産生を調節する調節遺伝子／転写因子、例えばＳＴＡＴ−３及びＰ３８、ｍｉＲ−１５５、ｍｉＲ−１４６ａ；並びに細胞死につながるカスケードに関与するアポトーシス因子、例えばｐ５３及びＣａｃｐ８から選択される多数の免疫抑制遺伝子を標的とする。

最も好ましくは、オリゴヌクレオチド作用物質は自己送達性ＲＮＡｉ作用物質であり、これは疎水性に修飾されたｓｉＲＮＡ−アンチセンスハイブリッド分子であり、該分子はセンス及びアンチセンス鎖のそれぞれの３’末端にオーバーハングを含む又は含まない、約１３塩基対〜２２塩基対の二本鎖領域と、約２ヌクレオチド〜９ヌクレオチドのアンチセンス鎖の３’末端に一本鎖の尾部とを含む。オリゴヌクレオチドは、少なくとも１つの２’−Ｏ−メチル修飾物、少なくとも１つの２’−Ｏ−フルオロ修飾物、及び少なくとも１つのホスホロチオエート修飾物、並びにステロール、コレステロール、ビタミンＤ、ナフチル、イソブチル、ベンジル、インドール、トリプトファン、フェニル等の疎水性調節因子（図１を参照）から選択される少なくとも１つの疎水性修飾物を含有する。オリゴヌクレオチドは複数のこのような修飾物を含有することができる。

定義
本明細書及び添付の特許請求の範囲に使用される場合、以下の用語は他に求められない限り、記載の意味を有するものとする。

本明細書で使用される増殖性疾患としては、癌、アテローム性動脈硬化症、関節リウマチ、乾癬、特発性肺線維症、強皮症、肝硬変等を含む、細胞の過剰増殖及び細胞基質の交替を特徴とする疾患及び障害が挙げられる。癌としては、小細胞肺癌、結腸癌、乳癌、肺癌、前立腺癌、卵巣癌、膵臓癌、黒色腫、慢性骨髄白血病等の血液系腫瘍、及び腫瘍関連の免疫耐性を抑える免疫療法による介在が必要な同様の癌の１つ又は複数が挙げられるが、これらに限定されない。

免疫標的遺伝子を少なくとも４つの一般的な分類：（１）チェックポイント阻害剤、（２）免疫細胞を不活性化させるサイトカイン受容体、（３）抗アポトーシス遺伝子、及び（４）調節遺伝子、例えば転写因子にグループ分けすることができる。

本明細書において使用される場合、免疫チェックポイント阻害剤（ＩＣＩ）は、細胞傷害性Ｔリンパ球抗原−４（ＣＴＬＡ−４）並びにプログラム細胞死タンパク質−１（ＰＤ−１）及びそのリガンドＰＤ−Ｌ１等のいくつかのチェックポイントタンパク質に結合して遮断し、免疫系による癌細胞等の罹患細胞の攻撃を妨げる阻害性タンパク質を無効化することで、腫瘍特異的Ｔ細胞を放出して、腫瘍細胞に対するエフェクター機能を発揮する免疫治療剤を含む。

本明細書において使用される場合、腫瘍関連免疫耐性遺伝子は免疫応答のチェックポイント阻害に関与する遺伝子、例えばＣＴＬＡ−４及びＰＤ−１／ＰＤ−Ｌ１；ＴＧＦ−ベータ、ＬＡＧ３、Ｔｉｍ３、アデノシンＡ２ａ受容体を含む。

本明細書において使用される場合、調節遺伝子は免疫細胞によるサイトカイン産生を調節する転写因子等を含み、ｐ３８、ＳＴＡＴ３、マイクロＲＮＡ、ｍｉＲ−１５５、ｍｉＲ−１４６ａを含む。

本明細書において使用される場合、抗アポトーシス遺伝子は、ＢＡＸ、ＢＡＣ、Ｃａｓｐ８、Ｐ５３等及びそれらの組合せを含む。

本明細書において使用される場合、感染性疾患は、細菌、ウイルス、寄生生物、又は真菌の１つ又は複数を含むがそれらに限定されない病原性微生物により生じる疾患を含むがそれらに限定されず、この場合、免疫療法の干渉として病原関連免疫耐性及び／又は過活動性免疫応答を抑制する。

本明細書において使用される場合、免疫原性組成物は、１つ又は複数のオリゴヌクレオチド作用物質で処理した細胞を含み、この場合細胞はＴ細胞を含む。Ｔ細胞を、例えば高親和性Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）、キメラ抗体−Ｔ細胞受容体（ＣＡＲ）を発現するよう遺伝子操作することができ、この場合キメラ抗体断片は、Ｂ細胞のＣＤ１９受容体及び／又は腫瘍細胞上で発現される抗原に結合することができる。一実施形態において、キメラ抗体断片は、ＧＤ２、ＧＤ３、ＨＭＷ−ＭＡＡ、及びＶＥＧＦ−Ｒ２から選択された、黒色腫腫瘍で発現される抗原に結合する。

本明細書に記載の免疫原性組成物には、抗原提示細胞、樹状細胞、操作されたＴ細胞、ナチュラルキラー細胞、人工多能性幹細胞及び幹細胞セントラル記憶型Ｔ細胞を含む幹細胞を含む細胞が含まれる。処理した細胞はまた、１つ又は複数のオリゴヌクレオチド作用物質、好ましくは免疫抑制機構に関与する遺伝子を特異的に標的とするｓｄＲＮＡｉ作用物質を含み、この場合オリゴヌクレオチド作用物質は上記の標的遺伝子の発現を阻害する。

一実施形態において、標的遺伝子は、Ａ２０ユビキチンリガーゼ、例えばＴＮＦＡＩＰ３、ＳＯＣＳ １（サイトカインシグナル伝達の抑制因子）、Ｔｙｒｏ３／Ａｘ１／Ｍｅｒ（ＴＬＲシグナル伝達の抑制因子）、ＩＤＯ（インドールアミン−２，３−ジオキシゲナーゼ、トリプトファン分解酵素）、ＰＤ−Ｌ１／ＣＤ２７４（表面受容体、Ｔ細胞のＰＤ１に結合）、ノッチリガンドデルタ（ＤＬＬ １）、Ｊａｇｇｅｄ １、Ｊａｇｇｅｄ ２、ＦａｓＬ（アポトーシス促進表面分子）、ＣＣＬ１７、ＣＣＬ２２（制御性Ｔ細胞を誘引する分泌型ケモカイン）、ＩＬ−１０受容体（ＩＬ１０Ｒａ）、ｐ３８（ＭＡＰＫ１４）、ＳＴＡＴ３、ＴＮＦＳＦ４（ＯＸ４０Ｌ）、マイクロＲＮＡのｍｉＲ−１５５、ｍｉＲ−１４６ａ、ＢＡＸ、ＢＡＣ、Ｃａｓｐ８、及びＰ５３を含むがそれらに限定されない抗アポトーシス遺伝子、及びそれらの組合せから選択される。

特に好ましい標的遺伝子は表１に示すものである。

本明細書において使用される場合、ｅｘ−ｖｉｖｏでの処理は、免疫抑制機構に関与する標的遺伝子の発現を調節するオリゴヌクレオチド作用物質で処理された細胞を含む。オリゴヌクレオチド作用物質は、例えば、ロックドヌクレオチド類似体、メチルオキシエチルギャップマー、シクロ−エチル−Ｂ核酸、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ阻害剤、モルフォリノ、ＰＮＡ等を含む、アンチセンスオリゴヌクレオチドであってよい。好ましくは、オリゴヌクレオチド作用物質は、免疫抑制機構に関与する遺伝子を標的とするｓｄＲＮＡｉ作用物質である。オリゴヌクレオチド作用物質によりｉｎ ｖｉｔｒｏにて処理される細胞は、ｉｎ ｖｉｔｒｏにて増殖させた免疫細胞であってよく、増殖性又は感染性疾患を有する対象から得られた細胞であってよい。代替法として、細胞又は組織を例えばｉｎ ｓｉｔｕの注入及び／又は静脈内注射によりｉｎ ｖｉｖｏにて処理することができる。

本明細書において使用される場合、オリゴヌクレオチド又はオリゴヌクレオチド作用物質は、デオキシリボヌクレオチド、リボヌクレオチド、又は修飾ヌクレオチド、及び一本鎖若しくは二本鎖の形態のそれらのポリマーを含む複数の「ヌクレオチド」を含有する分子を指す。この用語は、既知のヌクレオチド類似体又は修飾骨格残基若しくは結合を含有するヌクレオチドを包含し、これらのヌクレオチドは合成、天然、及び非天然であり、基準となる核酸と類似の結合特性を有し、基準となるヌクレオチドと同じように代謝する。このような類似体の例として、ホスホロチオエート、ホスホロアミド酸、メチルホスホン酸、キラル−メチルホスホン酸、２−Ｏ−メチルリボヌクレオチド、ペプチド−核酸（ＰＮＡ）を含むがそれらに限定されない。

本明細書において使用される場合、ヌクレオチドは、天然の塩基（標準）及び当技術分野において既知の修飾塩基を含むものを包含する。ヌクレオチドは、非修飾であるか、又は糖、リン酸及び／又は塩基部分にて修飾することができる（同義的にヌクレオチド類似体、修飾ヌクレオチド、非天然ヌクレオチド、非標準的ヌクレオチド等とも呼ばれる；例えば、国際公開９２／０７０６５号及び国際公開９３／１５１８７号を参照のこと）。核酸分子に導入することができる塩基修飾の非限定的な例としては、ヒポキサンチン、プリン、ピリジン−４−オン、ピリジン−２−オン、フェニル、プソイドウラシル、２，４，６−トリメトキシベンゼン、３−メチルウラシル、ジヒドロウリジン、ナフチル、アミノフェニル、５−アルキルシチジン（例えば５−メチルシチジン）、５−アルキルウリジン（例えばリボチミジン）、５−ハロウリジン（例えば５−ブロモウリジン）又は６−アザピリミジン又は６−アルキルピリミジン（例えば６−メチルウリジン及びプソイドウリジン）、プロピン等が挙げられる。「修飾塩基」という句は、例えば、１’位にて修飾された、アデニン、グアニン、シトシン、及びウラシル以外のヌクレオチド塩基又はそれらの等価物を含む。

本明細書において使用される場合、「デオキシリボヌクレオチド」という用語は、天然及び合成の、非修飾及び修飾されたデオキシリボヌクレオチドを包含する。修飾物は、オリゴヌクレオチドの糖部分に対する変化、塩基部分に対する変化及び／又はデオキシリボヌクレオチド間の結合に対する変化を含む。

本明細書において使用される場合、「ＲＮＡ」という用語は、少なくとも１つのリボヌクレオチド残基を含む分子と定義される。「リボヌクレオチド」という用語は、ｂ−Ｄ−リボフラノース部分の２’位にヒドロキシル基を含むヌクレオチドと定義される。ＲＮＡという用語は、二本鎖ＲＮＡ、一本鎖ＲＮＡ、単離されたＲＮＡ、例えば部分的に精製されたＲＮＡ、本質的に純粋なＲＮＡ、合成ＲＮＡ、組換えにより作製されたＲＮＡ、並びに１つ又は複数のヌクレオチドの付加、欠失、置換及び／又は変異により天然のＲＮＡと異なる変異ＲＮＡを含む。本明細書に記載のＲＮＡ分子のヌクレオチドは、非標準的なヌクレオチド、例えば非天然のヌクレオチド若しくは化学合成されたヌクレオチド又はデオキシヌクレオチドも含むことができる。これらの変異ＲＮＡを類似体又は天然ＲＮＡの類似体と呼ぶことができる。

本明細書において使用される場合、「修飾ヌクレオチド」はヌクレオシド、ヌクレオ塩基、ペントース環、又はリン酸基に１つ又は複数の修飾を有するヌクレオチドを指す。例えば、修飾ヌクレオチドには、アデノシン一リン酸、グアノシン一リン酸、ウリジン一リン酸及びシチジン一リン酸を含有するリボヌクレオチドと、デオキシアデノシン一リン酸、デオキシグアノシン一リン酸、デオキシチミジン一リン酸及びデオキシシチジン一リン酸を含有するデオキシリボヌクレオチドとが除外される。修飾物は、ヌクレオチドを修飾する酵素、例えばメチルトランスフェラーゼによる修飾から得た天然のものを含む。

修飾ヌクレオチドはまた、合成又は非天然のヌクレオチドを含む。ヌクレオチドの合成又は非天然の修飾物は、２’修飾物、例えば２’−Ｏ−メチル、２’−メトキシエトキシ、２’−フルオロ、２’−アリル、２’−Ｏ−［２−（メチルアミノ）−２−オキソエチル］、４’−チオ、４’−ＣＨ２−Ｏ−２’−架橋、４’−（ＣＨ２）２−Ｏ−２’−架橋、２’−ＬＮＡ、及び２’−Ｏ−（Ｎ−メチルカーバメート）を含むもの又は塩基類似体を含むものを含む。本開示に記載の２’−修飾ヌクレオチドと関連して、「アミノ」は修飾又は非修飾され得る２’−ＮＨ２又は２’−Ｏ−ＮＨ２を意味する。このような修飾基は、例えば米国特許第５６７２６９５号及び同第６２４８８７８号に記載されている。

本明細書において使用される場合、「マイクロＲＮＡ」すなわち「ｍｉＲＮＡ」は一本鎖ＲＮＡを形成する核酸を指し、この一本鎖ＲＮＡは、ｍｉＲＮＡを遺伝子又は標的遺伝子と同じ細胞内にて発現させるとき、遺伝子又は標的遺伝子の発現を変化させる（発現を減少させ、又は阻害し、発現を調節し、発現を直接又は間接的に亢進させる）能力を有する。一実施形態において、ｍｉＲＮＡは標的遺伝子に対して実質的又は完全な同一性を有し、一本鎖ｍｉＲＮＡを形成する核酸を指す。いくつかの実施形態において、ｍｉＲＮＡは、ｐｒｅ−ｍｉＲＮＡの形態であってよく、この場合ｐｒｅ−ｍｉＲＮＡは二本鎖ＲＮＡである。ｍｉＲＮＡの配列は完全長の標的遺伝子又はそれらの部分配列に対応し得る。通例、ｍｉＲＮＡは少なくとも約１５ヌクレオチド長〜５０ヌクレオチド長である（例えば、一本鎖ｍｉＲＮＡの各配列が１５ヌクレオチド長〜５０ヌクレオチド長であり、二本鎖ｐｒｅ−ｍｉＲＮＡが約１５塩基対〜５０塩基対の長さである）。いくつかの実施形態において、ｍｉＲＮＡは２０塩基ヌクレオチド〜３０塩基ヌクレオチドである。いくつかの実施形態において、ｍｉＲＮＡは２０ヌクレオチド長〜２５ヌクレオチド長である。いくつかの実施形態において、ｍｉＲＮＡは２０ヌクレオチド長、２１ヌクレオチド長、２２ヌクレオチド長、２３ヌクレオチド長、２４ヌクレオチド長、２５ヌクレオチド長、２６ヌクレオチド長、２７ヌクレオチド長、２８ヌクレオチド長、２９ヌクレオチド長、又は３０ヌクレオチド長である。

本明細書において使用される場合、標的遺伝子は、免疫耐性機構に関与する遺伝子の発現を調節するとして知られる又は同定される遺伝子を含み、抑制性受容体等の遺伝子のいくつかのグループ、例えば、ＣＴＬＡ４及びＰＤ１；免疫細胞を不活性化させるサイトカイン受容体、例えばＴＧＦ−ベータ受容体、ＬＡＧ３、Ｔｉｍ３、アデノシンＡ２ａ受容体、及びＩＬ１０受容体；調節遺伝子、例えばＳＴＡＴ３、ｐ３８、ｍｉｒ１５５、及びｍｉｒ１４６ａ；並びに細胞死につながるカスケードに関与するアポトーシス因子、例えばＰ５３、Ｃａｓｐ８、ＢＡＸ、ＢＡＣ、及びそれらの組合せの１つであってよい。表１に挙げた好ましい標的遺伝子も参照されたい。

本明細書において使用される場合、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）は、短鎖干渉ＲＮＡ又はサイレンシングＲＮＡとしても知られており、センス及びアンチセンスＲＮＡ鎖を含み、それぞれが一般に約１０２２ヌクレオチド長であり、場合により３’末端に１ヌクレオチド〜３ヌクレオチドのオーバーハングを含む、二本鎖ＲＮＡ分子の一グループと定義される。ｓｉＲＮＡはＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）経路において活性であり、相補的ヌクレオチド配列により特異的標的遺伝子の発現を干渉する。

本明細書において使用される場合、ｓｄＲＮＡは、非対称な二本鎖ＲＮＡ−アンチセンスオリゴヌクレオチドハイブリッドとして形成される「自己送達性」ＲＮＡｉ作用物質を指す。二本鎖ＲＮＡは、約１９ヌクレオチド〜２５ヌクレオチドのガイド（センス）鎖及び約１０ヌクレオチド〜１９ヌクレオチドのパッセンジャー（アンチセンス）鎖を含み、この二本鎖形成により約５ヌクレオチド〜９ヌクレオチドの一本鎖のホスホロチオエート化された尾部が生じる。

ＲＮＡ配列は安定化及び疎水性の修飾物、例えばステロール、例えばコレステロール、ビタミンＤ、ナフチル、イソブチル、ベンジル、インドール、トリプトファン、及びフェニルを用いて修飾されてよく、これらは任意のトランスフェクション試薬又は配合物の非存在下において、安定性及び効率的な細胞の取り込みをもたらす。ＩＦＮ−誘導性タンパク質に対する免疫応答アッセイ試験では、ｓｄＲＮＡが他のＲＮＡｉ作用物質に比べ、免疫賦活性プロファイルの低下を生じることが示されている。例えば、Byrne他、Dec. 2013, J. Ocular Pharmacology and Therapeutics, 29(10): 855-864を参照されたい。

細胞を基材とした免疫治療剤：
一般に、細胞は、癌等の増殖性疾患又はウイルス感染症等の感染性疾患の対象から得られる。得られた細胞を得られたまま直接処理し、又はオリゴヌクレオチドを用いた処理の前に細胞培養において増殖させることができる。細胞を、腫瘍細胞表面（ＣＡＲ）上に発現される特異的抗原又はＭＨＣクラスＩに提示される細胞内腫瘍抗原（ＴＣＲ）を認識する受容体を発現するよう遺伝的に改変することもできる。

オリゴヌクレオチド作用物質
アンチセンスオリゴヌクレオチド
低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）は、短鎖干渉ＲＮＡ又はサイレンシングＲＮＡとしても知られ、二本鎖のＲＮＡ分子であり、一般に１９塩基対〜２５塩基対の長さである。ｓｉＲＮＡを、相補的ヌクレオチド配列により特異的遺伝子の発現を干渉するＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）に使用する。

二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＲＮＡ）は一般にＲＮＡの一対の相補鎖、一般にセンス（パッセンジャー）鎖及びアンチセンス（ガイド）鎖を含む任意の分子を定義するために使用することができ、一本鎖オーバーハング領域を含むことができる。ｄｓＲＮＡという用語は、ｓｉＲＮＡと対照的に一般に、ダイサーを含む切断酵素系の作用によってより大きなｄｓＲＮＡ分子から放出されたｓｉＲＮＡ分子の配列を含む前駆体分子を指す。

ｓｄＲＮＡ（自己送達性）は、細胞に取り込ませるための送達ビークルを必要とせず、従来のｓｉＲＮＡと比べ薬理学的に改良された、新しいクラスの共有結合により修飾したＲＮＡｉ化合物である。「自己送達性ＲＮＡ」、すなわちｓｄＲＮＡは疎水性に修飾されたＲＮＡ干渉−アンチセンスハイブリッドであり、ｉｎ ｖｉｔｒｏでの初代細胞において、及びｉｎ ｖｉｖｏでの局所投与時に高い効果を示している。毒性のない堅固な取り込み及び／又はサイレンシングが、真膚、筋肉、腫瘍、肺胞マクロファージ、脊髄、並びに網膜細胞及び網膜組織を含むいくつかの組織において明示されている。真膚層及び網膜において、ｓｄＲＮＡのｍｇ用量での皮内及び硝子体内注射は強力な長時間のサイレンシングを誘導した。

ｓｄＲＮＡは優れた機能的ゲノミクスツールであり、初代細胞及びｉｎ ｖｉｖｏでのＲＮＡｉを可能にするが、従来のｓｉＲＮＡに比べ比較的ヒット率が低い。１つの遺伝子に対して多くの配列をスクリーニングする必要があり、これが治療用途に対する制限因子とはならないが、ｓｄＲＮＡ技術の機能的ゲノミクスへの応用に対してかなりの制約となり、何千の遺伝子に対する費用効率のよい化合物選択が必要となる。ｓｄＲＮＡ構造、化学特性、標的位置、配列選択等を最適化するため、独自のアルゴリズムを開発し、ｓｄＲＮＡ潜在性の予測に利用している。ｅｘ ｖｉｖｏ及びｉｎ ｖｉｖｏにて全ての細胞型に活性であるｓｄＲＮＡ試薬の利用可能性が、機能的ゲノミクス及び標的層化／検証研究を可能にする。

独自のアルゴリズム
ｓｄＲＮＡ配列を、ＨｅＬａ細胞のルシフェラーゼレポーターアッセイにおける５００個を超えるｓｄＲＮＡ配列の機能的スクリーニングに基づき設計された独自の選択アルゴリズムを元に選択した。その回帰分析を使用し、遺伝子抑制アッセイにおいて、ｓｄＲＮＡ二本鎖の特異的ヌクレオチドの発生頻度と任意の特定位置での修飾との相関及びその機能性について確立した。このアルゴリズムにより機能的ｓｄＲＮＡ配列の予測が可能になり、４０％を超える確率で１μＭ濃度にて７０％を超えるノックダウンと規定される。

表１は独自のアルゴリズムを用いて同定され、細胞免疫療法の組成物及び本明細書に記載の方法に有用である予測遺伝子標的を示す。

ＲＮＡｉ作用物質の送達：
ＢＴＬＡ（Ｂ及びＴリンパ球アテニュエーター）、ＫＩＲ（キラー免疫グロブリン様受容体）、Ｂ７−Ｈ３受容体及びＢ７−Ｈ４受容体並びにＴＧＦ−ベータ２型受容体；Ａｐｐｌｉｃ ＢＴＬＡ（Ｂ及びＴリンパ球アテニュエーター）、ＫＩＲ（キラー免疫グロブリン様受容体）、Ｂ７−Ｈ３受容体及びＢ７−Ｈ４受容体並びにＴＧＦ−ベータ２型受容体；ｐｒｉｍ ＢＴＬＡ（Ｂ及びＴリンパ球アテニュエーター）、ＫＩＲ（キラー免疫グロブリン様受容体）、Ｂ７−Ｈ３受容体及びＢ７−Ｈ４受容体並びにＴＧＦ−ベータ２型受容体におけるＲＮＡｉ技術の機能的ゲノミクス試験への応用；ａｒｙ細胞及びｉｎ ｖｉｖｏではｓｉＲＮＡの脂質への配合又は他の細胞送達技法の使用に対する要件により制限される。送達問題を回避するため、自己送達性ＲＮＡｉ技術は追加の配合物又は技法を必要とすることなく、ＲＮＡｉ作用物質を用いて細胞を直接トランスフェクションさせる方法を提供する。トランスフェクションが困難な細胞株をトランスフェクションさせる能力、ｉｎ ｖｉｖｏでの高い活性、及び使用の簡便さは、従来のｓｉＲＮＡを基礎とした技法に対して有意な機能的利点を示す組成物及び方法の特徴である。ｓｄＲＮＡｉ技術は、化学合成された化合物を広範囲の初代細胞及び組織にｅｘ−ｖｉｖｏ及びｉｎ ｖｉｖｏの両方にて直接送達することを可能にする。

ＢＴＬＡ（Ｂ及びＴリンパ球アテニュエーター）、ＫＩＲ（キラー免疫グロブリン様受容体）、Ｂ７−Ｈ３受容体及びＢ７−Ｈ４受容体並びにＴＧＦ−ベータ２型受容体の自己送達を可能にするため、従来のｓｉＲＮＡ分子では、大きさを実質的に小さくし、ＲＮＡｉ装置による耐性があまり高くない膨大な化学修飾物を導入する必要があり、活性分子を見つける可能性が極めて低くなる（低ヒット率）。対照的に、ｓｄＲＮＡ技術はヒトにおけるサイレンシング効率が明示され、ｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏでの初代細胞及び組織への効率的なＲＮＡｉ送達を可能にする。

ｓｄＲＮＡ分子の一般的な構造を図１に示す。ｓｄＲＮＡは疎水性に修飾されたｓｉＲＮＡ−アンチセンスオリゴヌクレオチドハイブリッド構造体として形成され、例えばByrne他、Dec. 2013, J. Ocular Pharmacology and Therapeutics, 29(10): 855-864に開示されている。

オリゴヌクレオチド修飾物：２’−Ｏ−メチル、２’−Ｏ−フルオロ、ホスホロチオエート
オリゴヌクレオチド作用物質は、治療剤の安定性及び／又は有効性を増大させ、治療する細胞又は組織へのオリゴヌクレオチドの効率的な送達を行うために１つ又は複数の修飾物を含むことが好ましい。このような修飾物は少なくとも１つのＢＴＬＡ（Ｂ及びＴリンパ球アテニュエーター）、ＫＩＲ（キラー免疫グロブリン様受容体）、Ｂ７−Ｈ３受容体及びＢ７−Ｈ４受容体並びにＴＧＦ−ベータ２型受容体；ＢＴＬＡ（Ｂ及びＴリンパ球アテニュエーター）、ＫＩＲ（キラー免疫グロブリン様受容体）、Ｂ７−Ｈ３受容体及びＢ７−Ｈ４受容体並びにＴＧＦ−ベータ２型受容体；２’−Ｏ−メチル修飾物、少なくとも１つの２’−Ｏ−フルオロ修飾物及び少なくとも１つのジホスホロチオエート修飾物を含む。さらに、オリゴヌクレオチドをステロール、コレステロール、ビタミンＤ、ナフチル、イソブチル、ベンジル、インドール、トリプトファン、及びフェニルから選択される１つ又は複数の疎水性修飾物を含むよう修飾する。疎水性修飾物はステロールが好ましい。

オリゴヌクレオチド作用物質の細胞への送達
オリゴヌクレオチドを好ましくは脂質、ウイルスベクター等を含む膜貫通送達系と組み合わせて細胞に送達することができる。最も好ましくは、オリゴヌクレオチド作用物質は自己送達ＲＮＡｉ作用物質であり、いかなる送達作用物質も必要としない。

併用療法
本発明において、例えば特定の要件のための要素及び／又は代替物の特定の組合せが最も好ましい。この目的は、免疫抑制遺伝子をサイレンシングするためにオリゴヌクレオチドの標的とするのに適切な遺伝子を決定し、独自のアルゴリズムを使用し、最も適切な標的配列を選択することにより実現される。

免疫療法用細胞は、免疫抑制に関与し、選択された標的疾患及び遺伝子に適切な種々の遺伝子を標的とする多数のオリゴヌクレオチド作用物質を含むよう修飾されることが好ましい。例えば、好ましい免疫療法の細胞はＣＴＬＡ−４とＰＤ−１との両方をノックダウンするよう修飾されたＴ細胞である。

オリゴヌクレオチドと免疫抑制に関与する関連遺伝子との更なる組合せには、表１の選択された標的配列の種々の組合せがある。

ＢＴＬＡ（Ｂ及びＴリンパ球アテニュエーター）、ＫＩＲ（キラー免疫グロブリン様受容体）、Ｂ７−Ｈ３受容体及びＢ７−Ｈ４受容体並びにＴＧＦ−ベータ２型受容体；（Ｂ及びＴリンパ球アテニュエーター）、ＫＩＲ（キラー免疫グロブリン様受容体）、Ｂ７−Ｈ３受容体及びＢ７−Ｈ４受容体並びにＴＧＦ−ベータ２型受容体；好ましいＢＴＬＡ（Ｂ及びＴリンパ球アテニュエーター）、ＫＩＲ（キラー免疫グロブリン様受容体）、Ｂ７−Ｈ３受容体及びＢ７−Ｈ４受容体並びにＴＧＦ−ベータ２型受容体；治療剤の組合せには以下の標的の遺伝子発現をノックダウンするよう操作された細胞を含む：
ａ） ＣＴＬＡ４及びＰＤ１
ｂ） ＳＴＡＴ３及びｐ３８
ｃ） ＰＤ１並びにＢａｘＰＤ１、ＣＴＬＡ４、Ｌａｇ−１、ＩＬＭ−３及びＴＰ５３
ｄ） ＰＤ１及びＣａｓｐ８
ｅ） ＰＤ１及びＩＬ１０Ｒ

本明細書に記載の治療用組成物は、増殖性障害又は感染性疾患に罹患した対象を治療するのに有用である。特に、免疫療法の組成物は、対象の免疫機構の抑制を特徴とする疾患の治療に有用である。本明細書に記載のｓｄＲＮＡ作用物質は、疾患関連免疫抑制経路に関与する標的遺伝子に特異的に設計される。

対象を治療する方法は、免疫抑制機構に関与する遺伝子、例えば表１又は別途本明細書に記載の遺伝子のいずれかの発現を阻害することができるｓｄＲＮＡｉ作用物質を含む免疫原性組成物を、その組成物を必要とする対象に投与することを含む。

上記の本発明の実施形態は単なる例示を意図するものであり、多くの変形及び変更が当業者であれば明らかであるだろう。全てのこのような変形及び変更は、添付のいずれかの特許請求の範囲に記載の本発明の範囲内であることが意図される。

実施例１
自己送達性ＲＮＡｉ免疫治療剤
本明細書に記載の免疫治療剤を、免疫抑制機構に関与する特定の遺伝子を標的とし、ノックダウンするよう設計された特定のｓｄＲＮＡ作用物質で細胞を処理することにより作製した。特に、以下の細胞及び細胞株をｓｄＲＮＡで処理することに成功し、特定のヒト細胞の標的となる遺伝子発現の少なくとも７０％をノックダウンすることが示された。

これらの試験は、これらの免疫原性作用物質をトランスフェクションに対して正常なかなり耐性の高い細胞の標的遺伝子の発現を抑制することに利用されることを明示し、作用物質が任意の細胞型の標的細胞の発現を減少させることができることを示唆する。

実施例２
標的遺伝子の発現を阻害するオリゴヌクレオチド配列
以下の遺伝子を含む多くのヒト遺伝子を免疫抑制機構に関与することから、候補標的遺伝子として選択した。ＢＡＸ（ＮＭ＿００４３２４） ＢＡＫ１（ＮＭ＿００１ １８８） ＣＡＳＰ８（ＮＭ＿００１２２８） ＡＤＯＲＡ２Ａ（ＮＭ＿０００６７５） ＣＴＬＡ４（ＮＭ＿００５２１４） ＬＡＧ３（ＮＭ００２２８６） ＰＤＣＤ１（ＮＭ＿ＮＭ００５０１８） ＴＧＦＢＲ１（ＮＭ−００４６１２） ＨＡＶＣＲ２（ＮＭ＿０３２７８２） ＣＣＬ１７（ＮＭ＿００２９８７） ＣＣＬ２２（ＮＭ＿００２９９０） ＤＬＬ２（ＮＭ＿００５６１８） ＦＡＳＬＧ（ＮＭ＿０００６３９） ＣＤ２７４（ＮＭ＿００１２６７７０６） ＩＤＯ１（ＮＭ＿００２１６４） ＩＬ１０ＲＡ（ＮＭ＿００１５５８） ＪＡＧ １（ＮＭ＿０００２１４） ＪＡＧ２（ＮＭ＿００２２２６） ＭＡＰＫ１４（ＮＭ＿００１３１５） ＳＯＣＳ１（ＮＭ＿００３７４５） ＳＴＡＴ３（ＮＭ＿００３１５０） ＴＮＦＡ１Ｐ３（ＮＭ ００６２９０） ＴＮＦＳＦ４（ＮＭ ００３３２６） ＴＹＲ０２（ＮＭ＿００６２９３） ＴＰ５３（ＮＭ＿０００５４６）

上記に挙げた遺伝子のそれぞれを独自のアルゴリズムを用いて分析し、抗原提示細胞及びＴ細胞の免疫抑制を阻止する各遺伝子の配列及び標的領域を標的とする好ましいｓｄＲＮＡを同定した。結果を表１に示す。

実施例３
ＨｅＬａ細胞のｓｄＲＮＡによる標的遺伝子（ＧＡＰＤＨ）のノックダウン
ＨｅＬａ細胞（ＡＴＣＣ ＣＲＭ−ＣＣＬ−２）を２４時間、継代培養した後にトランスフェクションし、対数増殖期を維持した。表１に挙げるＧ１３のｓｄＲＮＡを含む数種のＧＡＰＤＨのｓｄＲＮＡの有効性をｑＲＴ−ＰＣＲにより試験した。

必要とする濃度の２倍のＧＡＰＤＨ、ＭＡＰ４Ｋ４（陽性対照）及びＮＴＣ（非標的対照）のｓｄＲＮＡの溶液を血清非含有ＥＭＥＭ培地において、１００μＭのオリゴヌクレオチドを０．２μＭ〜４μＭに希釈することにより調製した。

各オリゴ濃度点の培地の総容量を（５０μｌ／ウェル）×（各血清点の複製物の数）として算出した。オリゴヌクレオチドを９６ウェルプレートに５０μｌ／ウェルにて分注した。

細胞をトランスフェクション用にトリプシン処理により５０ｍｌチューブに回収し、抗生物質を含まない１０％ＦＢＳ含有培地を用いて２回洗浄し、室温にて５分間２００×ｇにて遠沈し、実験に必要なＦＢＳ量（６％）の２倍を含有し、抗生物質を含まないＥＭＥＭ培地に再懸濁させた。細胞の濃度を１２００００／ｍｌに調節し、６０００細胞／５０μｌ／ウェルの最終濃度を得た。細胞を予め希釈したオリゴを含む９６ウェルプレートに５０μｌ／ウェルにて分注し、４８時間インキュベーターに入れた。

ｑＲＴ−ＰＣＲを用いたＨｅＬａ細胞の遺伝子発現分析
ＰｕｒｅＬｉｎｋ（商標） Ｐｒｏ９６ ｔｏｔａｌ ＲＮＡ精製キット（Ambion、品番１２１７３−０１１Ａ）を用いて、Ｑｕａｎｔａ ｑＳｃｒｉｐｔ ＸＬＴ Ｏｎｅ−Ｓｔｅｐ ＲＴ−ｑＰＣＲ ＴｏｕｇｈＭｉｘ、ＲＯＸ（VWR、８９２３６６７２）により、トランスフェクションさせたＨｅＬａ細胞からＲＮＡを単離した。単離したＲＮＡの遺伝子発現をヒトＭＡＰ４Ｋ４−ＦＡＭ（Ｔａｑｍａｎ Ｈｓ０３７７４０５＿ｍ１）及びヒトＧＡＰＤＨ−ＶＩＣ（Applied Biosystems、品番４３２６３１７Ｅ）遺伝子発現アッセイを用いて分析した。

インキュベーションしたプレートを遠沈し、１００μｌ／ウェルのＰＢＳを用いて１回洗浄し、キットに含まれる６０μｌ／ウェル緩衝液を用いて溶解させた。ＲＮＡの単離が製造業者の説明書に従い行われ、ＲＮＡを１００μｌのＲＮａｓｅ非含有水を用いて溶出し、１ステップｑＲＴ−ＰＣＲ用に希釈せずに使用した。

非トランスフェクション（ＮＴ）細胞の１：５及び１：２５希釈物を、ＲＮａｓｅ非含有水を用いて標準曲線用に調製した。ｑＲＴ−ＰＣＲは、９μｌ／ウェルをロープロファイルＰＣＲプレートに分注し、先に調製したＲＮＡサンプルから１μｌのＲＮＡ／ウェルを添加することで行われた。短時間の遠心分離後、サンプルをリアルタイムサイクラーに入れ、製造業者が推奨する設定を用いて増幅させた。

ＧＡＰＤＨ遺伝子発現をｑＰＣＲにより測定し、ＭＡＰ４Ｋ４に対して正規化し、非標的ｓｄＲＮＡの存在下において発現の割合としてプロットした。その結果を標準曲線に従い正規化したものと比較した。図２に示されるように、ＧＡＰＤＨ又はＭＡＰ４Ｋ４を標的とするいくつかのｓｄＲＮＡ作用物質は有意にｍＲＮＡレベルを減少させ、１μＭのｓｄＲＮＡにおいて８０％〜９０％超のノックダウンを生じた（図２を参照のこと）。

実施例４
ＮＫ−９２細胞のｓｄＲＮＡによる多重標的のサイレンシング
ＮＫ−９２細胞をConqwestから入手し、ＦａｓｔＬａｎｅ Ｃｅｌｌ Ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ Ｋｉｔ（Qiagen、品番２１６５１３）を用いてＲＮＡの精製を行うことなく１ステップＲＴ−ＰＣＲ分析を行った。トランスフェクションのため、ＮＫ−９２細胞を遠心分離により回収し、４％ＦＢＳ及び１０００Ｕ／ｍｌのＩＬ２を含有するＲＰＭＩ培地を用いて希釈し、１００００００細胞／ｍｌに調節した。

ＭＡＰ４Ｋ４、ＰＰＩＢ又はＧＡＤＰＨを標的とする多数のｓｄＲＮＡ作用物質を血清非含有ＲＰＭＩ培地において個別に４μＭに希釈し、５０μｌ／ウェルにて個々に９６ウェルプレートに分取した。次いで調製された細胞を５０μｌの細胞／ウェルにてＭＡＰ４Ｋ４、ＰＰＩＢ又はＧＡＰＤＨのｓｄＲＮＡのいずれかを含むウェルに添加した。細胞を２４時間、４８時間、又は７２時間インキュベーションした。

特定の時点にて、プレートに播種したトランスフェクション細胞を１００μｌ／ウェルのＰＢＳを用いて１回洗浄し、ＦＣＷ緩衝液を用いて１回洗浄した。上清を除去後、２３．５μｌのＦＣＰＬ及び１．５μｌのｇＤＮＡの除去溶液（wipeout solution）の細胞プロセッシングミックスを各ウェルに添加し、室温にて５分間インキュベーションした。次いで、溶解物をＰＣＲストリップに移し、７５℃にて５分間加熱した。

ｑＲＴ−ＰＣＲを設定するため、溶解物をＦａｓｔＬａｎｅ Ｃｅｌｌ Ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ ＫｉｔのＱｕａｎｔｉＴｅｃｔ試薬及びＭＡＰ４Ｋ４−ＦＡＭ／ＧＡＰＤＨ−ＶＩＣ又はＰＰＩＢ−ＦＡＭ／ＧＡＰＤＨ−ＶＩＣ用プライマープローブミックスと混合させた。以下のＴａｑｍａｎ遺伝子発現アッセイを使用した：ヒトＭＡＰ４Ｋ４−ＦＡＭ（Ｔａｑｍａｎ、Ｈｓ００３７７４０５＿ｍ１）、ヒトＰＰＩＢ−ＦＡＭ（Ｔａｑｍａｎ、Ｈｓ００１６８７１９＿ｍ１）、及びヒトＧＡＰＤＨ−ＶＩＣ（Applied Biosystems、品番４３２６３１７Ｅ）。

９μｌ／ウェルの容量の各反応ミックスをロープロファイルＰＣＲプレートに分注した。先に調製した溶解物から１ウェル当たり１μｌの溶解物を添加した。製造業者が推奨する設定を用いてサンプルを増幅させた。

図３に示す結果は、ＮＫ−９２細胞にトランスフェクションさせたｓｄＲＮＡ作用物質による、多重標的であるＭＡＰ４Ｋ４、ＰＰＩＢ、及びＧＡＤＰＨのそれぞれの、２４時間〜７２時間のインキュベーションにおいて各標的の発現の７５％を超える阻害を含む有意なサイレンシングを明示している。

実施例５
ヒト初代Ｔ細胞のｓｄＲＮＡによるＴＰ５３及びＭＡＰ４Ｋ４のサイレンシング
初代ヒトＴ細胞をAllcells（カルフォルニア州）から入手し、１０００ＩＵ／ｍｌのＩＬ２を含有する完全ＲＰＭＩ培地において培養した。細胞を抗ＣＤ３／ＣＤ２８ Ｄｙｎａｂｅａｄｓ（Gibco、１１１３１）を用いて、製造業者の説明書に従いトランスフェクションの前に少なくとも４日間活性化させた。短時間のボルテックスにより、細胞からビーズを除去し、指定の磁石を用いてビーズを分離することにより細胞を回収した。

ＴＰ５３又はＭＡＰ４Ｋ４を標的とするｓｄＲＮＡ作用物質を１サンプル（ウェル）当たり血清非含有ＲＰＭＩにおいて、ｓｄＲＮＡを０．２μＭ〜４μＭに個別に希釈することにより調製して、１００μｌ／ウェルにて９６ウェルプレートに個々に分取した。細胞を４％ＦＢＳ及び２０００Ｕ／ｍｌのＩＬ２を含有するＲＰＭＩ培地において１００００００細胞／ｍｌにて調製し、１００μｌ／ウェルにて予め希釈したｓｄＲＮＡを含む９６ウェルプレートに播種した。

トランスフェクションのインキュベーション時間の終わりに、プレートに播種したトランスフェクション細胞を１００μｌ／ウェルのＰＢＳを用いて１回洗浄し、本質的に実施例４に記載のように、製造業者の説明書に従いＦａｓｔＬａｎｅ Ｃｅｌｌ Ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ Ｋｉｔ試薬を用いてプロセッシングした。Ｔａｑｍａｎ遺伝子発現アッセイを以下の組合せを用いて使用した：ヒトＭＡＰ４Ｋ４−ＦＡＭ／ＧＡＰＤＨ−ＶＩＣ又はヒトＴＰ５３−ＦＡＭ（Ｔａｑｍａｎ、Ｈｓ０１０３４２４９＿ｍ１）／ＧＡＰＤＨ−ＶＩＣ。予め調製した溶解物から１８μｌ／ウェルの容量の各反応ミックスを１ウェル当たり２μｌの溶解物と混合させた。サンプルをこれまでのように増幅させた（実施例４を参照のこと）。

図４に示す結果は、Ｔ細胞にトランスフェクションさせたｓｄＲＮＡ作用物質による、ＭＡＰ４Ｋ４及びＴＰ５３の両方の、１μＭ〜２μＭのｓｄＲＮＡによる遺伝子発現の７０％〜８０％の阻害に達する有意なサイレンシングを明示している。

実施例６
黒色腫を治療するためのｓｄＲＮＡの免疫治療剤の併用
黒色腫はＴ細胞の免疫機能を抑制するため少なくとも２つの特定の経路を利用し、そのそれぞれがＰＤ１及びＣＴＬＡ４の両方を含む。ＰＤ１リガンドであるＰＤ１Ｌを発現する黒色腫腫瘍は、ＰＤ１を標的とするよう特異的に設計され、ＰＤ１発現を干渉するｓｄ−ＲＮＡｉ作用物質を用いてｅｘ−ｖｉｖｏにて前処理されたＴ細胞の標的とすることができる。ＰＤ１はＰＤＣＤ１としても知られ、ｓｄＲＮＡ介在性抑制において特に機能されると同定され、予測される特定の標的配列及び遺伝子領域をＰＤＣＤ１（ＮＭ＿００５０１８）及びＣＴＬＡ４（ＮＭ００５２１４）として表１に示す。

黒色腫腫瘍の治療は、黒色腫細胞に、Ｔ細胞、例えばＰＤ１／ＰＤＣＤ１及びＣＴＬＡ４を標的とし、例えばＰＤ１／ＰＤＣＤ１及び／又はＣＴＬＡ４として挙げた２０個の標的配列の１つ又は複数を標的とするｓｄＲＮＡを組み合わせてｅｘ−ｖｉｖｏにて前処理した腫瘍浸潤リンパ球を投入することによって行うことができる。ＰＤ１／ＰＤＣＤ１及びＦＡＳＬＧ（ＮＭ＿０００６３９）及び／又はＣＴＬＡ４を標的とするｓｄＲＮＡの組合せは、ＰＤ１Ｌ及びＦＡＳの両方を発現する腫瘍内のＴ細胞傷害性を増大させ得る。

抗ＣＴＬＡ−４及び抗ＰＤ１のｓｄＲＮＡに加えて、及びそれらと組み合わせて、黒色腫の免疫療法に使用するＴ細胞を腫瘍による免疫抑制を示す他の遺伝子を標的とするｓｄＲＮＡで処理することもできる。これらの受容体は、ＴＧＦ−ベータ１型及び２型受容体、ＢＴＬＡ（黒色腫細胞で発現されるヘルペスウイルスエントリインディケーター（ＨＶＥＭ）の結合因子）、並びに骨髄由来抑制細胞（ＭＤＳＣ）により発現するインテグリンの受容体、例えばＣＤ１１ｂ、ＣＤ１８、及びＣＤ２９を含むが、それらに限定されない。

発現した抑制タンパク質のプロファイルが未知である腫瘍に対して、ＰＤ１／ＰＤＣＤ１を標的とするｓｄＲＮＡと既知の抑制性受容体のいずれか１つとの任意の組合せは、免疫抑制の減少及び治療有効性の増大に役立てることができる。

実施例７
免疫細胞抑制を緩和するｓｄＲＮＡの組合せ
Ｔ細胞又は樹状細胞抑制を、種々のサイトカイン、例えばＩＬ１０及び／又はＴＧＦ−ベータにより調節することができる。Ｔ細胞及び樹状細胞の対応する受容体の抑制は、サイトカインの活性に利点を有し得る。例えば、抗ＰＤ１と抗ＩＬ１０ＲのｓｄＲＮＡとを組み合わせることは、抗ＰＤ１のみと比べ、サイトカインにより誘導されるＴ細胞及び樹状細胞の抑制を緩和することが期待される。

実施例８
免疫細胞抑制を緩和するｓｄＲＮＡの組合せ
免疫細胞の腫瘍抑制の機構が知られていない可能性があるとき、アポトーシス（プログラム細胞死）に関与する遺伝子、例えばｐ５３、Ｃａｓｐ８、又はアポトーシスを活性化させる他の遺伝子を抑制するためにｓｄＲＮＡ作用物質を使用することは、免疫細胞の活性を増大させる利点を有し得る。抗受容体ｓｄＲＮＡとアポトーシス促進遺伝子に対するｓｄＲＮＡとの組合せは、更に免疫細胞の死を減少させるため、それらの活性を増大させることができる。例えば、抗ＰＤ１と抗ｐ５３のｓｄＲＮＡとの組合せは更に、アポトーシスの活性を阻害することによって抑制からＴ細胞を保護することができる。

実施例９
ヒト初代Ｔ細胞のｓｄＲＮＡによるＣＴＬＡ−４及びＰＤＣＤ１のサイレンシング
本質的に実施例５に記載のように、初代ヒトＴ細胞を培養し、活性化させた。ＰＤＣＤ１及びＣＴＬＡ−４を標的とするｓｄＲＮＡ作用物質を１サンプル（ウェル）当たり血清非含有ＲＰＭＩにおいて、ｓｄＲＮＡを０．４μＭ〜４μＭに個別に希釈することにより調製して、１００μｌ／ウェルにて９６ウェルプレートに個々に分取した。細胞を４％ＦＢＳ及び２０００Ｕ／ｍｌのＩＬ２を含有するＲＰＭＩ培地において１００００００細胞／ｍｌにて調製し、１００μｌ／ウェルにて予め希釈したｓｄＲＮＡを含む９６ウェルプレートに播種した。

７２時間後、本質的に実施例４に記載のように、製造業者の説明書に従い、トランスフェクションさせた細胞を１００μｌ／ウェルのＰＢＳを用いて１回洗浄し、ＦａｓｔＬａｎｅ Ｃｅｌｌ Ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ Ｋｉｔ試薬を用いてプロセッシングした。Ｔａｑｍａｎ遺伝子発現アッセイを以下の組合せを用いて使用した：ヒトＰＤＣＤ１−ＦＡＭ（Ｔａｑｍａｎ、Ｈｓ０１５５００８８＿ｍ１）／ＧＡＰＤＨ−ＶＩＣ又はヒトＣＴＬＡ４−ＦＡＭ（Ｔａｑｍａｎ、Ｈｓ０３０４４４１８＿ｍ１）／ＧＡＰＤＨ−ＶＩＣ。予め調製した溶解物から１８μｌ／ウェルの容量の各反応ミックスを１ウェル当たり２μｌの溶解物と混合させた。サンプルをこれまでのように増幅させた（実施例４を参照のこと）。

図５に示す結果は、Ｔ細胞に送達されたｓｄＲＮＡ作用物質の組合せを使用することにより２μＭのｓｄＲＮＡで遺伝子発現の６０％〜７０％を超える阻害が得られ、ＰＤＣＤ１及びＣＴＬＡ−４の有意なサイレンシングを明示している。

実施例１０
ヒト初代Ｔ細胞のｓｄＲＮＡによるＣＴＬＡ−４及びＰＤＣＤ１表面の発現の減少
本質的に実施例５に記載のように、初代ヒトＴ細胞を培養し、活性化させた。

ＣＴＬＡ−４又はＰＤ１を標的とするｓｄＲＮＡ作用物質を１サンプル（ウェル）当たり血清非含有ＲＰＭＩにおいて、５μＭに個別に希釈し、２５０μｌ／ウェルにて２４ウェルプレートに分取した。磁性ビーズと混合させた細胞を回収し、４％ＦＢＳ及び２０００ＩＵ／ｍｌのＩＬ２を含有する２５０μｌのＲＰＭＩ培地において５０００００個の細胞に調節した。予め希釈したｓｄＲＮＡを含有して調製したプレートに細胞を２５０μｌ／ウェルにて播種した。２４時間後、ＦＢＳを細胞に添加し、１０％の最終濃度を得た。

７２時間のインキュベーション後、トランスフェクションさせた細胞を回収し、実施例５に記載のように磁石を用いて活性化ビーズから分離した。細胞を、ＰＢＳを用いて洗浄し、遠沈し、ブロック緩衝液（３％ＢＳＡを含むＰＢＳ）に２０００００細胞／５０μｌ／サンプルにて再懸濁させた。

抗体希釈液をブロック緩衝液において調製した。抗体を２つの組合せで混合した：抗ＰＤ１／抗ＣＤ３（両抗体に対して１：１００の希釈液）及び抗ＣＴＬＡ４／抗ＣＤ３（抗ＣＴＬＡ４に対して１０μｌ／１０^６個の細胞；ＣＤ３に対して１：１００）。以下の抗体を使用した：ＣＤ３に対してウサギモノクローナル［ＳＰ７］（Abcam、ａｂ１６６６９）；ＣＴＬＡ４に対してマウスモノクローナル［ＢＮＩ３］（Abcam、ａｂ３３３２０）及びＰＤ１に対してマウスモノクローナル［ＮＡＴ１０５］（Abcam、ａｂ５２５８７）。細胞を希釈した抗体と混合させ、氷上で３０分間インキュベーションした。次いで、細胞を０．２％Ｔｗｅｅｎ−２０及び０．１％アジ化ナトリウムを含有するＰＢＳを用いて２回洗浄した。

二次抗体をブロック緩衝液において希釈し、合わせて混合し、抗マウスＣｙ５（Abcam、ａｂ９７０３７）に対して１：５００及び抗ウサギＡｌｅｘａ−４８８（Abcam、ａｂ１５００７７）に対して１：２０００の最終希釈液を得た。細胞を１：１の比にて希釈した抗体と混合させ、氷上にて３０分間インキュベーションした。細胞をこれまでのように洗浄し、１チューブ当たり５００μｌのＰＢＳで希釈した。データはＡｔｔｕｎｅ Ａｃｏｕｓｔｉｃ Ｆｏｃｕｓｉｎｇ Ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ（Applied Biosystems）にて即時に得られた。

図６に示されるように、ｓｄＲＮＡは、活性化したヒト初代Ｔ細胞におけるＣＴＬＡ−４及びＰＤ１の表面発現を効率的に減少させた。

実施例１１
ＭＡＰ４Ｋ４のｓｄＲＮＡのヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）のＣＤ３−及びＣＤ１９−陽性部分集合体への送達
ＰＢＭＣを１．５％ＰＨＡ溶液及び５００Ｕ／ｍｌのＩＬ２を補充した完全ＲＰＭＩにおいて培養した。トランスフェクションのため、ＰＢＭＣを遠心分離により回収し、４％ＦＢＳ及び１０００Ｕ／ｍｌのＩＬ２を含有するＲＰＭＩ培地を用いて希釈し、５０００００細胞／ウェルにて２４ウェルプレートに播種した。

ｃｙ３を用いて標識したＭＡＰ４Ｋ４のｓｄＲＮＡを０．１μＭの最終濃度となるように細胞に添加した。７２時間のインキュベーション後、トランスフェクションさせた細胞を回収し、ＰＢＳを用いて洗浄し、遠沈し、ブロック緩衝液（３％ＢＳＡを含むＰＢＳ）に２０００００細胞／５０μｌ／サンプルにて希釈した。

抗体希釈液を以下のようにブロック緩衝液において調製した：１：１００の最終希釈の抗ＣＤ３（Abcam、ａｂ１６６６９）及び１０μｌ／１００００００個の細胞の抗ＣＤ１９（Abcam、ａｂ３１９４７）。細胞を希釈した抗体と混合させ、氷上で３０分間インキュベーションした。次いで、細胞を０．２％Ｔｗｅｅｎ−２０及び０．１％アジ化ナトリウムを含有するＰＢＳを用いて２回洗浄した。

二次抗体をブロック緩衝液において、抗マウスＣｙ５（Abcam、ａｂ９７０３７）に対して１：５００及び抗ウサギＡｌｅｘａ−４８８（Abcam、ａｂ１５００７７）に対して１：２０００の最終希釈液にて希釈した。細胞を１：１の比にて希釈した抗体と混合させ、氷上にて３０分間インキュベーションした。細胞をこれまでのように洗浄し、１チューブ当たり５００μｌのＰＢＳで希釈した。データはＡｔｔｕｎｅ Ａｃｏｕｓｔｉｃ Ｆｏｃｕｓｉｎｇ Ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ（Applied Biosystems）にて即時に得られた。

図７は、ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）におけるＣＤ３陽性（ｔ細胞）の９７％超及びＣＤ１９陽性（Ｂ細胞）の９８％超の部分集合体の効率的なトランスフェクションを示す。

Claims (23)

1. ＰＤ１の発現を抑制することができるｓｄＲＮＡを含み、ここで該ｓｄＲＮＡが、配列番号２８１〜３００から選択される配列を標的とする免疫調節因子。
2. ＰＤ１の発現を抑制することができるｓｄＲＮＡを含み、ここで該ｓｄＲＮＡが、配列番号２８１〜３００から選択される配列を標的とし、ここでＰＤ１の発現を抑制するようにｓｄＲＮＡによって改変された免疫細胞をさらに含む免疫原性組成物。
3. 組成物中の免疫細胞が、異なる免疫チェックポイント遺伝子の発現を抑制するようにさらに改変された、請求項２に記載の免疫原性組成物。
4. 組成物中の免疫細胞が、少なくとも１つの抗アポトーシス遺伝子の発現を抑制するようにさらに改変されている、請求項２に記載の免疫原性組成物。
5. 組成物中の免疫細胞が少なくとも１つのサイトカイン受容体遺伝子の発現を抑制するようにさらに改変されている、請求項２に記載の免疫原性組成物。
6. 組成物中の免疫細胞が少なくとも１つの調節遺伝子の発現を抑制するようにさらに改変されている、請求項２に記載の免疫原性組成物。
7. 組成物中の免疫細胞が、表１に挙げた少なくとも１つの標的遺伝子の発現を抑制するようにさらに改変されている、請求項２に記載の免疫原性組成物。
8. 組成物中の免疫細胞が、ＣＴＬＡ４、ＴＧＦＢＲ１、ＴＧＦＲＢＲ２、ＩＬ１０ＲＡ、ＴＰ５３、ＢＡＸ、ＢＡＫ１、ＣＡＳＰ８、ＡＤＯＲＡ２Ａ、ＬＡＧ３、ＨＡＶＣＲ２、ＣＣＬ１７、ＣＣＬ２２、ＤＬＬ２、ＦＡＳＬＧ、ＣＤ２７４、ＩＤＯ１、ＩＬＩＯＲＡ、ＪＡＧ１、ＪＡＧ２、ＭＡＰＫ１４、ＳＯＣＳ１、ＳＴＡＴ３、ＴＮＦＡＩＰ３、並びにＴＹＲＯ３、ＢＴＬＡ、ＫＩＲ、Ｂ７−Ｈ３受容体及びＢ７−Ｈ４受容体からなる群から選択される少なくとも１つの標的遺伝子の発現を抑制するようにさらに改変されている、請求項２に記載の免疫原性組成物。
9. 組成物中の免疫細胞がＴ細胞、ＮＫ細胞、抗原提示細胞、樹状細胞、幹細胞、人工多能性幹細胞、及び／又は幹細胞セントラル記憶型Ｔ細胞からなる群から選択される、請求項２に記載の免疫原性組成物。
10. 免疫細胞が高親和性Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）及び／又はキメラ抗体−Ｔ細胞受容体（ＣＡＲ）を発現する１つ又は複数のトランス遺伝子を含むＴ細胞である、請求項２に記載の免疫原性組成物。
11. 免疫原性組成物がＣＴＬＡ４、ＦＡＳ、ＴＧＦＲ−ベータ、ＩＬ−１０Ｒ、ＳＴＡＴ３、Ｐ３８、ＬＡＧ３、ＴＩＭ３、ＢＴＬＡ、Ｂ７−Ｈ３及びＢ７−Ｈ４受容体、並びにアデノシンＡ２ａ受容体の１つ又は複数を標的とするｓｄＲＮＡを含む、請求項２に記載の免疫原性組成物。
12. 免疫原性組成物がＢＡＸ、ＢＡＣ、ＴＰ５３、及びＣａｓｐ８からなる群から選択される１つ又は複数の抗アポトーシス遺伝子を標的とする１つ又は複数のｓｄＲＮＡを含む、請求項４に記載の免疫原性組成物。
13. ｓｄＲＮＡがＰＤ１の発現の少なくとも５０％の阻害を誘導する、請求項２に記載の免疫原性組成物。
14. ｓｄＲＮＡが少なくとも１つの２’−Ｏ−メチル修飾及び／又は少なくとも１つの２’−Ｏ−フルオロ修飾、及び少なくとも１つのホスホロチオエート修飾を含む、請求項２に記載の免疫原性組成物。
15. ｓｄＲＮＡが少なくとも１つの疎水性修飾を含む、請求項２に記載の免疫原性組成物。
16. ｓｄＲＮＡが少なくとも１つのコレステロール分子を含むように改変される、請求項２に記載の免疫原性組成物。
17. 請求項２に記載の免疫原性組成物を製造する方法であって、当前記方法は、ＰＤ１の発現を抑制することができるｓｄＲＮＡを用いて形質転換することを含み、前記ｓｄＲＮＡは、配列番号２８１〜３００から選択される配列を標的とする、方法。
18. 免疫細胞が、ＣＴＬＡ４、ＴＧＦＢＲ１、ＴＧＦＲＢＲ２、ＩＬ１０ＲＡ、ＴＰ５３、ＢＡＸ、ＢＡＫ１、ＣＡＳＰ８、ＡＤＯＲＡ２Ａ、ＬＡＧ３、ＨＡＶＣＲ２、ＣＣＬ１７、ＣＣＬ２２、ＤＬＬ２、ＦＡＳＬＧ、ＣＤ２７４、ＩＤＯ１、ＩＬＩＯＲＡ、ＪＡＧ１、ＪＡＧ２、ＭＡＰＫ１４、ＳＯＣＳ１、ＳＴＡＴ３、ＴＮＦＡＩＰ３、並びにＴＹＲＯ３、ＢＴＬＡ、ＫＩＲ、Ｂ７−Ｈ３及びＢ７−Ｈ４受容体からなる群から選択される１つ又は複数の遺伝子の発現を阻害するｓｄＲＮＡにより、さらに形質転換される、請求項１７に記載の方法。
19. 免疫細胞がＴ細胞、ＮＫ細胞、抗原提示細胞、樹状細胞、幹細胞、人工多能性幹細胞、及び幹細胞セントラル記憶型Ｔ細胞からなる群から選択される、請求項１７に記載の方法。
20. 免疫細胞が高親和性Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）及び／又はキメラ抗体−Ｔ細胞受容体（ＣＡＲ）を発現する１つ又は複数のトランス遺伝子を含むＴ細胞である、請求項１７に記載の方法。
21. 増殖性疾患又は感染性疾患を治療することに使用するための、請求項２に記載の免疫原性組成物。
22. 前記増殖性疾患が癌である、請求項２１に記載の免疫原性組成物。
23. 前記感染性疾患が病原性感染症である、請求項２１に記載の免疫原性組成物。