JP6641441B2 - 生体組織から単離できる多能性幹細胞 - Google Patents

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Description

本発明は生体組織由来の多能性幹細胞に関する。
プラナリアやイモリは体の一部を切断された後でも体を再生し得る。これらの、高い再
生能力は、間葉系に存在する多能性幹細胞(adult pluripotent stem cell)の存在によっ
ている。一方、ヒトなどの高等生物においては、組織再生能はこれらの動物に比較しては
るかに低い。胚盤胞の内部細胞塊（ICM: Inner cell mass)は、多能性細胞の集まりと認
識されており、外胚葉、中胚葉、内胚葉系の細胞に分化する能力を持つ。しかしながら、
発生が進むと共にこのような多能性が制限されていき、組織に特化した細胞に分化してい
く。
近年、組織再生に貢献し得る成人幹細胞又は組織幹細胞が注目されている。しかし、哺
乳類の成体に、プラナリアやイモリのように多能性（pluripotent）幹細胞が存在するか
否かは不明であった。
成体から得られる分化能を有する細胞として、例えば骨、軟骨、脂肪細胞、神経細胞、
骨格筋等への分化能を有する骨髄間葉系細胞画分（MSC: Bone marrow stromal cell)が報
告されている（非特許文献１及び２を参照）。しかしながら、骨髄間葉系細胞画分は様々
な細胞を含む細胞群であり、その分化能は多様でありながら本体がはっきりせず、また特
定の細胞に分化させるために特定の化合物による刺激や遺伝子導入等が必要であり、分化
誘導システムを構築する必要があった。
さらに、成体由来の多能性幹細胞としてiPS細胞（induced pluripotent stem cell）（
特許文献１、特許文献２、非特許文献３等を参照）が報告されていた。しかしながら、iP
S細胞の樹立には、間葉系細胞である皮膚線維芽細胞画分(dermal fibroblast)に特定の遺
伝子や特定の化合物を体細胞に導入するという特定の物質を用いた誘導操作が必要であっ
た。
特許第4183742号公報 特開2008-307007号公報
M. DEZAWA et al., The Journal of Clinical Investigation, 113, 12, pp. 1701-1710, (2004) M. DEZAWA et al., SCIENCE, 2005 July 8, 309, pp. 314-317, (2005) Okita K. et al. SCIENCE, 2008 Nov 7, 322(5903), pp.949-953
本発明は、生体組織から多能性幹細胞を直接得る方法の提供及びその方法により得られ
た多能性幹細胞の提供を目的とする。
本発明者らは、骨髄間葉系細胞画分（MSC: Bone marrow stromal cell)についての研究
過程において、無処理のヒトMSC細胞から極めて低い頻度で特徴的な細胞塊が形成される
ことを見出した。初期の細胞塊の外見はES細胞に酷似していた。しかしながら、ES細胞と
は異なり無限増殖をせずに、ある一定の期間である大きさに到達すると増殖が停止し、さ
らに毛、色素細胞などの種々の細胞を含む不均一な集団となった。また、この細胞塊につ
いて免疫細胞化学(immunocytochemistry)を行ったところ、外胚葉、中胚葉及び内胚葉マ
ーカーにそれぞれ陽性の細胞が細胞塊内に混在して検出された。本発明者らは、この結果
より、無処理の通常に維持・培養されている(naive)ヒトMSC細胞画分中に多能性細胞に相
当する細胞が存在する可能性を考え、さらに鋭意検討を行った。
生体がストレスに曝されたり、傷害を受けると休眠状態の組織幹細胞が活性化され、組
織再生に寄与することが知られている。本発明者は、骨髄間葉系細胞画分や皮膚線維芽細
胞画分等の間葉系細胞又は中胚葉系細胞を培養している際に種々の方法でストレス刺激を
与え（例えば、無血清培養、Hank's Balanced Salt Solution(HBSS)による培養、低酸素
培養、トータル３時間の間欠的短時間トリプシン培養、８時間若しくは16時間の長時間の
トリプシン培養等）、生存している細胞を集め、メチルセルロース（MC)含有培地中で浮
遊培養（MC培養という）を行った。その結果、最大直径150μmまでの種々の大きさの胚様
体様（embryoid body-like）細胞塊の形成が認められた。特に長時間のトリプシン処理を
行ったヒト皮膚線維芽細胞画分及びヒトMSC画分において、最も多くの胚様体様細胞塊の
形成率が認められた。
本発明者らは、得られた胚様体様細胞塊中の細胞の特性を調べ、該細胞が多能性幹細胞
の特性を有していることを見出した。さらに、本発明者らは、得られた胚様体様細胞塊中
の細胞が従来報告されていた多能性幹細胞が有しない特性を有することを見出し、さらに
、得られた細胞塊中の細胞の発現タンパク質を調べ、従来報告されていたES細胞、iPS細
胞などの多能性幹細胞とは異なる発現パターンを示すことを見出した。
本発明者らは、さらに上記多能性幹細胞の表面抗原としてSSEA-3が発現していることを
見出し、SSEA-3の発現を指標に上記多能性幹細胞を生体組織からも単離し得ることを見出
した。
本発明者らは、上記多能性幹細胞は、新規な多能性幹細胞であり、従来報告されていた
ES細胞やiPS細胞などの多能性幹細胞と異なり、生体組織から誘導操作なしに、直接得ら
れる多能性幹細胞であることを見出し、本発明を完成させるに至った。本発明者らは、該
多能性幹細胞をMuse細胞（Multilineage-differentiating Stress Enduring cells)と名
付けた。
すなわち、本発明は以下のとおりである。
[１] 生体組織から単離できるSSEA-3陽性の多能性幹細胞。
該多能性幹細胞は、培養線維芽細胞や骨髄幹細胞等の生体組織の培養物からも単離する
ことができ、また単一細胞として単離することができる。
[２] CD105陽性の[１]の多能性幹細胞。
[３] CD117(c-Kit)陰性及びCD146陰性の[１]又は[２]の多能性幹細胞。
[４] CD117陰性、CD146陰性、NG2陰性、CD34陰性、vWF陰性及びCD271陰性の[１]又は[２
]の多能性幹細胞。
[５] CD34陰性、CD117陰性、CD146陰性、CD271陰性、NG2陰性、vWF陰性、Sox10陰性、Sn
ail陰性、Slug陰性、Tyrp1陰性及びDct陰性の[１]又は[２]の多能性幹細胞。
[６] テロメラーゼ活性が低いか又は無い、[１]〜[５]のいずれかの多能性幹細胞。
[７] 三胚葉に分化する能力を持つ、[１]〜[６]のいずれかの多能性幹細胞。
本発明の多能性幹細胞は、in vitroの接着培養で三胚葉に分化する能力を有し、in vit
roで誘導培養することにより、皮膚、肝、神経、筋、骨、脂肪等に分化し得る。また、in
vivoで精巣に移植した場合にも三胚葉に分化する能力を有する。さらに、静注により生
体に移植することで損傷を受けた臓器（皮膚、脊髄、肝、筋肉等）に生着し分化する能力
を有する。
[８] 腫瘍性増殖を示さない、[１]〜[７]のいずれかの多能性幹細胞。
本発明の多能性幹細胞は、浮遊培養で増殖速度約１．３日で増殖するが10日間程度で増
殖が止まるという性質を有し、さらに精巣に移植した場合少なくとも半年間は癌化しない
という性質を有する。
[９] セルフリニューアル能を持つ、[１]〜[８]のいずれかの多能性幹細胞。
本発明の多能性幹細胞は、浮遊培養と接着培養の操作を繰り返すことにより増殖させる
ことができる。また、本発明の多能性幹細胞は他の体性幹細胞と同じく、非対称分裂をす
る。
[１０] ストレス耐性である、[１]〜[９]のいずれかの多能性幹細胞。
[１１] 貪食能が高い、[１]〜[１０]のいずれかの多能性幹細胞。
[１２] 以下に示す２２個のオドラント受容体の少なくとも一つが陽性の[１]〜[１１]の
いずれかの多能性幹細胞：
olfactory receptor, family 8, subfamily G, member 2 (OR8G2)；
olfactory receptor, family 7, subfamily G, member 3 (OR7G3)；
olfactory receptor, family 4, subfamily D, member 5 (OR4D5)；
olfactory receptor, family 5, subfamily AP, member 2 (OR5AP2)；
olfactory receptor, family 10, subfamily H, member 4 (OR10H4)；
olfactory receptor, family 10, subfamily T, member 2 (OR10T2)；
olfactory receptor, family 2, subfamily M, member 2 (OR2M2)；
olfactory receptor, family 2, subfamily T, member 5 (OR2T5)；
olfactory receptor, family 7, subfamily D, member 4 (OR7D4)；
olfactory receptor, family 1, subfamily L, member 3 (OR1L3)；
olfactory receptor, family 4, subfamily N, member 4 (OR4N4)；
olfactory receptor, family 2, subfamily A, member 7 (OR2A7)；
guanine nucleotide binding protein (G protein), alpha activating activity polype
ptide, olfactory type (GNAL)；
olfactory receptor, family 6, subfamily A, member 2 (OR6A2)；
olfactory receptor, family 2, subfamily B, member 6 (OR2B6)；
olfactory receptor, family 2, subfamily C, member 1 (OR2C1)；
olfactory receptor, family 52, subfamily A, member 1 (OR52A1)；
olfactory receptor, family 10, subfamily H, member 3 (OR10H3)；
olfactory receptor, family 10, subfamily H, member 2 (OR10H2)；
olfactory receptor, family 51, subfamily E, member 2 (OR51E2)；
olfactory receptor, family 5, subfamily P, member 2 (OR5P2)；及び
olfactory receptor, family 10, subfamily P, member 1 (OR10P1)。
[１３] 以下に示す５個のケモカイン受容体の少なくとも一つが陽性の[１]〜[１２]のい
ずれかの多能性幹細胞：
chemokine (C-C motif) receptor 5（CCR5)；
chemokine (C-X-C motif) receptor 4（CXCR4)；
chemokine (C-C motif) receptor 1（CCR1)；
Duffy blood group, chemokine receptor(DARC)；及び
chemokine (C-X-C motif) receptor 7(CXCR7)。
[１４] 中胚葉系組織または間葉系組織由来である、[１]〜[１３]のいずれかの多能性幹
細胞。
[１５] [１]〜[１４]のいずれかの多能性幹細胞を含む細胞塊または細胞画分。
[１６] 生体組織から、以下の(i)〜(vi)の特性の少なくとも１つの特性を指標に多能性
幹細胞又は多能性細胞画分を単離する方法：
(i) SSEA-3陽性；
(ii) CD105陽性；
(iii) CD117陰性及びCD146陰性；
(iv) CD117陰性、CD146陰性、NG2陰性、CD34陰性、vWF陰性及びCD271陰性；
(v) CD34陰性、CD117陰性、CD146陰性、CD271陰性、NG2陰性、vWF陰性、Sox10陰性、Sna
il陰性、Slug陰性、Tyrp1陰性及びDct陰性；並びに
(vi) テロメラーゼ活性が低いか又は無い。
[１７] 生体組織由来細胞を細胞ストレスに暴露し生き残った細胞を回収することを含む
多能性幹細胞又は多能性細胞画分を単離する方法。
[１８] 細胞ストレスが、プロテアーゼ処理、低酸素条件下での培養、低リン酸条件下で
の培養、血清飢餓状態での培養、糖飢餓状態での培養、放射線曝露下での培養、熱ショッ
クへの曝露下での培養、有害物質存在下での培養、活性酸素存在下での培養、機械的刺激
下での培養及び圧力処理下での培養から選択される、[１７]の多能性幹細胞又は多能性細
胞画分を単離する方法。
[１９] 細胞ストレスが、トリプシン処理である、[１８]の多能性幹細胞又は多能性細胞
画分を単離する方法。
[２０] [１]〜[１４]のいずれかの多能性幹細胞の派生細胞又は誘導細胞である多能性幹
細胞。
該派生細胞又は誘導細胞として、例えば、遺伝子の導入や、化合物を添加により誘導し
た細胞が挙げられる。また、本発明の幹細胞由来のiPS細胞が挙げられる。
[２１] [１]〜[１４]のいずれかの多能性幹細胞の派生細胞又は誘導細胞である分化した
細胞。
[２２] [１]〜[１４]及び[２０]のいずれかの多能性幹細胞を含む医薬組成物。
[２３] [２１]の分化した細胞を含む医薬組成物。
本明細書は本願の優先権の基礎である米国仮出願61/213,788号及び米国仮出願61/290,1
59号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
本発明により、生殖細胞や初期胚を利用することなく、かつ外来遺伝子の導入や特定の
化合物の導入等の人為的な誘導操作を経ずに、生体組織から多能性幹細胞を得ることがで
きる。外来遺伝子の導入等の人為的操作を経ないために、本発明の多能性幹細胞は効率的
に作製することが可能であり、治療に用いる場合であっても安全に用いることができる。
また、本発明の多能性幹細胞は、再生医療や機能不全組織の治療等に用いることができ、
さらに、細胞分化や組織再生の研究等に用いることができる。
図１-１は、間葉系細胞画分、Muse細胞及びMuse細胞由来の胚様体様細胞塊の関係を示す図である。図１に示すように、SSEA-3陽性細胞を直接分離し、長時間のストレスをかけることなく浮遊培養することによりMuse細胞由来の胚様体様細胞塊を得ることができる。 図１-２は、Muse細胞を大量に増殖させる方法を示す図である。 図２は、Muse細胞由来の胚様体様細胞塊/無処理細胞画分での発現量の比が高い因子を示す図である。 図３は、Muse細胞由来の胚様体様細胞塊/ヒトES細胞での発現量の比が高い因子を示す図である。 図４は、MACSソーティングのプロトコールを示す図である。 図５は、ヒト線維芽細胞(H-fibroblast)画分の16時間の長時間トリプシン処理後（図５a)及び1800〜2200rpm/分で３分間ボルテックス処理を行った後（図５b)のトリパンブルー染色像にて死細胞の除去を示す写真である。 図６は、各種細胞の写真である。図６aは富Muse細胞画分の中の１細胞（バーは10μm）、図６bはヒトES細胞由来の胚様体細胞塊（バーは25μm)、図６cは直径約25μmのMuse細胞由来の胚様体様細胞塊（バーは25μm)、図６dはヒトES細胞由来細胞塊４日目のアルカリフォスファターゼ染色像（バーは25μm)、図６e〜gはMuse細胞由来の胚様体様細胞塊のOct3/4(e)、Sox2(f)及びPAR4(g)の免疫染色像を示す写真である。 図７-１は、H-fibroblast画分及びヒトMSC(H-MSC)画分由来の細胞塊の特徴を示す写真である。図７-１a及びbは無処理ヒトMSC画分の通常の接着培養において自発的に生じた細胞塊（バーは100μm）を示す。図７-１c及びdは０日目(c)及び７日目（d)のH-fibroblast-1画分の長時間トリプシン処理後のMC培養の状態を示し（バーは100μm）、図７-１dの矢印はMuse細胞由来胚様体様細胞塊を示す。図７-１e及びfはMC培養７日後のH-fibroblast-1画分から形成されたMuse細胞由来胚様体様細胞塊を示す（バーは50μm）。 図７-２は、H-fibroblast画分及びヒトMSC(H-MSC)画分由来の細胞塊の特徴を示す写真である。図７-２g-lはH-fibroblast画分から形成されたMuse細胞由来胚様体様細胞塊（図７-２g、i及びk）及びH-MSC画分から形成されたMuse細胞由来胚様体様細胞塊（図７-２h、j及びl)のNanog（図７-２g及びj）、Oct3/4（図７-２h）、SSEA-3（図７-２i)、PAR4（図７-２k)及びSox2（図７-２ｌ)の局在を示す免疫染色の結果を示す（バーは50μm）。 図７-３は、H-fibroblast画分及びヒトMSC(H-MSC)画分由来の細胞塊の特徴を示す写真である。図７-３m-oはヒトES細胞（図７-３m）、H-fibroblast画分由来のMuse細胞由来胚様体様細胞塊（図７-３n）及び無処理H-fibroblast-1画分(図７-３o）のアルカリフォスファターゼ染色の結果を示す（バーは50μm）。 図７-４は、H-fibroblast画分及びヒトMSC(H-MSC)画分由来の細胞塊の特徴を示す電子顕微鏡写真である。図７-４p-rはヒトES細胞胚様体（図７-４p、MC培養３日目）、H-fibroblast-1画分由来のMuse細胞由来胚様体様細胞塊（図７-４q及びr、MC培養５日目）の電子顕微鏡像を示す（バーは５μm）。 図８-１は、Muse細胞由来胚様体様細胞塊（M-cluster)のクローナリティー及びセルフリニューアルを示す図であり、Muse細胞のクローナリティー及びセルフリニューアルを決定するために行った実験の概要を示す図である。 図８-２は、Muse細胞の浮遊培養における増殖速度を示す図である。 図８-３は単一のMuse細胞由来胚様体様細胞塊（H-fibroblast-1由来、第１世代（サイクル））から増殖した細胞(clonally expanded cells)の正常核型を示す図である。 図９-１は、Muse細胞由来胚様体様細胞塊の分化を示す図である。a-cはH-fiboroblas-1画分由来の分化細胞の塊のα平滑筋アクチン及び神経フィラメント（図９-１a及びb）並びにα-フェトプロテイン(図９-１c）の局在を示す免疫染色像である（バーは図９-１aが500μm、図９-１b及びcが50μm）。図９-１aの矢頭は接着したMuse細胞由来胚様体様細胞塊を示す。 図９-２は無処理細胞画分、H-fibroblast画分由来の第１及び第３世代のMuse細胞由来胚様体様細胞塊（Cluster)をゲラチン上で培養し自発的分化を誘導した細胞群におけるα-フェトプロテイン（α-FP）、GATA6、MAP-2及びNkx2.5発現のRT-PCR分析の結果を示す。陽性コントロールとしてはα-FPに対してヒト胎児肝臓を、GATA6、MAP-2及びNkx2.5に対してはヒト胚全体を用いた。 図９-３e-lは富Muse細胞画分を投与した免疫不全マウスの精巣を示す。図９-３eはコントロール(intact)となる無傷の精巣並びにマウスES細胞(mES cells)（８週）、MEF(フィーダー細胞）（８週）、Muse細胞由来胚様体様細胞塊(M-cluster)（６ヶ月）及び富Muse細胞画分(Muse)（６ヶ月）を投与した精巣を示す。図９-３f-iは富Muse細胞画分又はMuse細胞由来胚様体様細胞塊を投与した精巣組織の神経フィラメントM（図９-３f、写真では緑に染色）、α-フェトプロテイン（図９-３g、写真では緑に染色）及び平滑筋アクチン（図９-３h、図では赤に染色）の免疫染色像を示す（バーは50μm）。図９-３iの３枚のパネルはヒトミトコンドリア（緑に染色）及び平滑筋アクチン（赤に染色）の二重染色像を示す（バーは20μm）。図９-３j-lは富Muse細胞画分を投与した精巣の組織像を示す（図９j及びk）。図９kに認められるチューブ様の構造はヒトミトコンドリアに対する抗体で染色されている（バーは図９-３jが500μm、図９-３k-lが50μm)。 図１０aは、H-fibroblast(Fibro-1, Fibro-2)及びH-MSC(MSC-1, MSC-2)のpluripotency及び未分化細胞状態に関与する因子の定量PCRの結果を示す図である（その２）。図中のカラムの模様は富Muse細胞画分及びMuse細胞由来胚様体様細胞塊（７日目）の無処理細胞画分に比較した遺伝子発現レベルを示す。白は富Muse細胞群又はMuse細胞由来胚様体様細胞塊/無処理細胞画分の比が1/３より大きく３より小さいものを示し、グレーは富Muse細胞画分又はMuse細胞由来胚様体様細胞塊/無処理細胞画分の比が３より大きいものを示し、斜線は富Muse細胞画分又はMuse細胞由来胚様体様細胞塊/無処理細胞画分の比が1/3より小さいものを示す。 図１０bは、H-MSC由来の無処理細胞画分（Naive)、富Muse細胞画分(Muse)及びMuse細胞由来胚様体様細胞塊(M-cluster)（７日目）のテロメラーゼ活性を示す図である。熱不活性化サンプル（Heat)を陰性コントロールとして用いた。 図１１は、H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来の無処理細胞画分、富Muse細胞画分及びMuse細胞由来胚様体様細胞塊のDNAマイクロアレイ分析の結果を示す図である。 図１２は、ヒト骨髄の単核球成分からSSEA-3/CD105二重陽性細胞として直接採取したMuse細胞をMC培養し、形成された胚様体様細胞塊を示す写真である。図１２aはヒト骨髄から単離し８時間の長時間トリプシン処理を行った単核細胞画分をMC培養し（8hr-hBM-MC、７日)形成されたMuse細胞由来胚様体様細胞塊を示す（バーは100μm）。図１２bは8hr-hBM-MC（７日）により形成されたMuse細胞由来胚様体様細胞塊のアルカリフォスファターゼ染色像を示す（バーは50μm）。 図１３は、無処理H-MSC-1画分（naive 1）、無処理H-MSC-2画分（naive 2)（いずれもネガティブコントロール）、並びに８時間のトリプシン処理を行ったヒト骨髄由来単核細胞画分（8hr-hBM)あるいはトリプシン処理を行わないヒト骨髄由来単核細胞画分（naive hBM)から形成されたMuse細胞由来胚様体様細胞塊をゲラチンの上で培養し自発的分化を誘導した細胞群におけるα-フェトプロテイン（α-FP)、GATA6、MAP-2及びNkx2.5のRT-PCR分析の結果を示す図である。 図１４は、H-fibroblast画分（無処理細胞） 及びH-MSC画分（無処理細胞）のFACS分析の結果を示す図である。 図１５-１は、無処理細胞画分中のSSEA-3陽性細胞（１５-１a左）、及びFACSソーティングにより採取したSSEA-3陽性細胞由来の単一Muse細胞由来胚様体様細胞塊からクローン増殖したSSEA-3陽性細胞（１５−１a右）の染色像を示す写真である。図中のバーは100μmである。 図１５−２は、Muse細胞（H-fibroblast)の細胞分裂中の非対称分裂に関わる因子であるNumblike（緑色）の局在を示す染色像を示す写真である。図中のバーは10μmである。 図１５-３は、H-fibroblast由来のSSEA-3陰性細胞（図１５-３c)及びSSEA-3陽性細胞（図１５−３d）の電子顕微鏡写真である。図中のバーは５μmである。 図１５-４は、H-fibroblast由来Muse細胞のOct3/4（緑色）（図１５-４e）、Sox2（緑色）（図１５-４f）及びSSEA-3（赤色）（図１５-４g）の染色像を示す写真である。 図１６-１は、超免疫不全マウス(Nog マウス)損傷組織におけるGFP標識SSEA-3陽性Muse細胞画分の分化を示す写真である。図１６-１N及びOは圧迫損傷脊髄（４週間後）におけるGFP陽性細胞であり、ニューロフィラメント（赤色）及びヒトゴルジ複合体（白色）を発現している。OはNの四角で囲んだ部分の拡大像である。図１６-１Pは損傷肝臓（４週間後）のGFP陽性標識細胞であり、ヒトアルブミン（赤色）及びヒトゴルジ複合体（白色）を発現している。 図１６-２は、RT-PCRで調べた、SSEA-3陽性Muse細胞を移植した肝臓におけるヒトアルブミンの発現を示す写真である。 図１６-３は、超免疫不全マウス(Nog マウス)損傷組織におけるGFP標識SSEA-3陽性Muse細胞画分の分化を示す写真であり、ヒトジストロフィン（赤色）を発現している筋肉（３週間後）のGFP陽性細胞を示す写真である。 図１７-１は、単一Muse細胞から形成されたMuse細胞由来胚様体様細胞塊から増殖させた細胞の分化を示す写真である。図１７-１A〜Dは、神経誘導の結果を示し、Aは形成されたsphereを示し、さらにsphereの免疫染色データとしてBはネスチン、CはMusashi、DはNuroDの発現を示す。Eはこれらのsphereをさらに神経系細胞への分化をさせたものであり、MAP-2陽性細胞を示す。図１７-１F〜Gは、骨細胞誘導の結果を示し、オステオカルシン（F)及びALP（G)の発現を示す。図１７-１H及びIは、脂肪細胞誘導の結果を示し、Hは油滴を含む細胞を示し、Iはオイルレッド染色の結果を示す。図１７-１Jは、肝臓細胞誘導の結果を示し、α-フェトプロテイン陽性細胞を示す。 図１７-２は、RT-PCRで調べた、肝細胞誘導した細胞におけるヒトアルブミン及びヒトα-フェトプロテインの発現を示す写真である。 図１８-1は、RT-PCRで調べた、SSEA-3陽性Muse細胞におけるSox10、Snail1、Slug、Tyrp1及びDctの発現を示す写真である。 図１８−２は、FACSで分析したNG2、CD34、vWF、CD117、CD146及びCD271の発現を示す図である。無処理ヒト皮膚線維芽細胞において、周皮細胞（pericyte)マーカーであるNG２、内皮前駆細胞マーカーであるCD34及びvWFは陰性であり、SSEA-3陽性細胞でも陰性であった。メラノブラストマーカーであるCD117、周皮細胞（pericyte)マーカーであるCD146、NCSCマーカーであるCD271は、無処理ヒト皮膚線維芽細胞では、わずかに陽性細胞が認められたが（それぞれ0.2％、0.2％及び0.8％）、それらはSSEA-3陰性細胞であったためMuse細胞ではないと考えられる。 図１８-３は、Muse細胞がフェライトを貪食したことを示す図である。 図１９は、Muse細胞から作製したiPS細胞の形成を示す写真であり、図１９aは、皮膚線維芽細胞（NHDF）由来Muse細胞から誘導されたヒトiPS細胞の形態を示し、図１９b〜fは、多能性細胞マーカー（bがNonog、cがOct3/4、dがSox2、eがSSEA-3、fがTra-1-60)の発現を示す。 図２０は、Nonog（E)、Oct3/4（F)、Sox2（G)及びTra-1-81（H)の免疫組織化学の結果を示す写真である。 図２１は、Muse由来iPS細胞（Mi-1,Mi-2）及びSSEA-3陰性細胞から増殖したコロニー（(-)-1, (-)-2）のRT-PCRにより調べた多能性マーカーの発現を示す写真である。 図２２-１は、Oct3/4, Sox2, Klf4, c-Myseをレトロウイルスで導入し、その後フィーダー細胞MEF上で培養した30日後のSSEA-3陽性及び陰性細胞から形成されたコロニーのTra-1-81免疫染色の結果を示す写真である。ヒトES細胞をコントロールとして用いている。SSEA-3陽性細胞からのコロニー（a1）及びヒトES細胞（a2）はTra-1-81陽性であるが、SSEA-3陰性細胞からのコロニーはすべて陰性である。 図２２-２は、２２−１と同じくMEFで３０日培養した段階におけるSSEA-3陽性及び陰性細胞の多能性マーカー（内因性Oct3/4（endo Oct)、内因性Sox2（endo Sox2)、Nanog、内因性Klf4（endo Klf4）、Rex1及びUTF1）の発現を示す写真である。SSEA-3陰性細胞群ではSox2, Nanogのシグナルが見られない。 図２２-３は、Muse細胞から誘導したiPS細胞(Muse細胞由来iPS細胞)（図２２-３C及びC1)及びSSEA-3陰性細胞から増殖したコロニー（図２２-３D及びD1)のコロニーを示す写真である。 図２３-１は、皮膚線維芽細胞（NHDF）由来Muse細胞から誘導されたiPS細胞のin vitroでの分化の様子を示す写真である。図２３-１iは、内胚葉マーカーであるα-フェトプロテイン（緑色）及び中胚葉マーカーである平滑筋アクチン（赤色、青色はDNA)の発現を示し、図２３-１jは、外胚葉マーカーである神経フィラメント（緑色）の発現を示す。 図２３-２は、Muse細胞から誘導されたiPS細胞のin vitroでの分化のRT-PCR分析結果を示す図であり、３胚葉マーカーの発現を示す。 図２３-３は、皮膚線維芽細胞（NHDF）由来Muse細胞から誘導されたiPS細胞から形成されたテラトーマの組織構造を示す写真であり、HE（Hematoxylin及びeosin)染色により、iPS細胞が種々の組織に分化していることを示している。図２３-３mは、軟骨（cartilage)、図２３-３nは筋肉(Muscle)、図２３-３oは神経上皮（neural epithelium）、図２３-３pは色素上皮（pigmented epithelium）、図２３-３qは円柱上皮（columnar epithelium)を示す。 図２４は、SSEA-3陰性細胞画分、Muse細胞由来胚様体様細胞塊及びMuse由来iPS細胞のNanog遺伝子及びOct3/4遺伝子のBisulfite（亜硫酸水素塩）シーケンスの結果を示す図である。それぞれのカラムの数値は、転写開始部位（TSS)の下流に対すCpGの位置を示す。白丸はメチル化されていないシトシンを、黒丸は、メチル化されたシトシンを示す。 図２５は、無処理線維芽細胞（Naive)、Muse細胞由来胚様体様細胞塊（Cluster)及びiPS細胞中の細胞周期に関連した因子の定量PCRの結果を示す図である。「/Naive」で示されるカラム中、白カラムは、無処理細胞に対するMuse画分又はMuse細胞由来胚様体様細胞塊との比が２未満で1/2より大きいことを示す。また、塗りつぶされたカラムは比が２より大きいことを示し、斜線が引かれたカラムは、比が1/2より小さいことを示す。「/iPS」で示されるカラム中、「＊」は、発現された遺伝子の量がiPSよりMuse細胞由来胚様体様細胞塊で大きいことを示し、「＊＊」は、発現された遺伝子の量がMuse細胞由来胚様体様細胞塊よりiPSで大きいことを示す。 図２６は、無処理線維芽細胞（Naive)、Muse細胞由来胚様体様細胞塊（Cluster)及びiPS細胞中の多能性及び未分化細胞状態に関連した因子の定量PCRの結果を示す図である。各カラムの意味は図２５と同じである。 図２７は、ヒト及びマウスモデルにおいて作製されたiPS細胞株の誘導効率に関する論文報告をまとめた図である。図２７は核のリプログラミングを誘導する転写因子の組合せを示している。
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明は、生体の生体組織から直接得ることができる多能性(pluripotent)幹細胞又は
多能性幹細胞画分及び該多能性幹細胞又は該多能性幹細胞画分を単離する方法、並びに該
方法により得られた生体組織由来の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分である。本発明の
多能性幹細胞をMuse細胞（multilineage differentiating stress enduring cells)とい
う。
本発明において、細胞画分というときは、単離したい細胞を少なくとも一定量含む細胞
群のことをいう。例えば、多能性幹細胞画分とは、多能性幹細胞を１％以上、10％以上、
30％以上、50％以上、70％以上、90％以上、又は95％以上含む細胞群が挙げられ、多能性
幹細胞の培養によって得られる細胞塊や多能性幹細胞を濃縮した細胞群を含む。また、前
記細胞画分を実質的に均一な細胞画分ということもある。
生体は、哺乳動物の生体をいい、ある程度発生が進んだ動物体をいう。本発明において
、生体には、受精卵や胞胚期より発生段階が前の胚は含まれないが、胎児や胞胚を含む胞
胚期以降の発生段階の胚は含まれる。哺乳動物は限定されないが、例えばヒト、サル等の
霊長類、マウス、ラット、ウサギ、モルモット等のげっ歯類、ネコ、イヌ、ヒツジ、ブタ
、ウシ、ウマ、ロバ、ヤギ、フェレット等が含まれる。本発明の多能性幹細胞は、生体の
組織由来である点で、胚性幹細胞（ES細胞）や胚性生殖幹細胞（EG細胞）と明確に区別さ
れる。
中胚葉系組織とは、動物の初期発生途上で現れる中胚葉起源の組織をいい、筋肉系組織
、結合組織、循環系組織、排泄系組織、生殖系組織等が含まれる。例えば、本発明の多能
性幹細胞は、骨髄液や真皮結合組織等の皮膚組織から得ることができる。
間葉系組織とは、骨、軟骨、脂肪、血液、骨髄、骨格筋、真皮、靭帯、腱、心臓、など
の組織をいう。例えば、本発明の多能性幹細胞は、骨髄や皮膚から得ることができる。ま
た、臍帯から得ることもできる。
細胞が組織から直接得ることができるとは、組織から単離することができ、外来遺伝子
や外来タンパク質の導入又は化合物の投与などの化合物処理等の人為的な誘導操作を経ず
に得られることを意味する。ここで、外来遺伝子は、限定されないが、例えば体細胞の核
を初期化し得る遺伝子をいい、例えば、Oct3/4遺伝子等のOctファミリー遺伝子、Klf遺伝
子等のKlfファミリー遺伝子、c-Myc遺伝子等のMycファミリー遺伝子、Sox2遺伝子等のSox
ファミリー遺伝子が挙げられる。また、外来タンパク質としてはこれらの遺伝子がコード
するタンパク質やサイトカインが挙げられる。さらに、化合物としては、例えば、上記の
体細胞の核を初期化し得る遺伝子の発現を誘導する低分子化合物やDMSO、還元剤として機
能する化合物, DNA メチル化剤等が挙げられる。本発明の多能性幹細胞は、生体あるいは
組織から直接得ることができるという点で、iPS(induced pluripotent stem cell)細胞及
びES細胞とは明確に区別される。なお、本発明においては、細胞の培養、細胞の表面マー
カーを指標に細胞又は細胞画分を単離すること、細胞を細胞ストレスに曝露すること、及
び細胞に物理的衝撃を与えることは、人為的な誘導操作には含まれない。また、本発明の
多能性細胞は、リプログラミング又は脱分化の誘導を必要とせずに得られることを特徴と
してもよい。
本発明の多能性幹細胞は、生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等に存在していると考え
られ、本発明においては、これらの組織に存在している細胞又は細胞画分を単離する。本
発明の多能性幹細胞は、例えば、骨髄に存在しており、骨髄から血液等を介して生体の各
組織に供給される可能性がある。このため骨髄や、皮膚等の生体の各組織、さらには血液
から単離することが可能である。
多能性幹細胞とは、pluripotencyを有している細胞をいい、以下の特性を有する。
（１） Nanog、Oct3/4、SSEA-3、PAR-4及びSox2等の多能性マーカー（Pluripotent mark
er）を発現する。
（２） １細胞から増殖し、自己のクローンを作り続けるクローナリティー（Clonality
）を有する。
（３） 自己複製（セルフリニューアル）能を有する。
（４） ３胚葉系（内胚葉系、中胚葉系及び外胚葉系）へin vitro及びin vivoで分化し
得る。
（５） マウスの精巣や皮下に移植した場合、３胚葉系への分化を呈する。
（６） アルカリフォスファターゼ染色で陽性となる。
本発明の多能性幹細胞は、pluripotencyを有している点で、成人幹細胞、組織幹細胞と
は明確に区別される。また、本発明の多能性幹細胞は、pluripotencyを有している単一の
又は複数の細胞として単離されている点で、骨髄間葉系細胞等の細胞画分とは明確に区別
される。
さらに、本発明の多能性幹細胞は、以下の特性を有する。
（i） 増殖速度が比較的緩やかで、分裂周期が１日以上、例えば1.2〜1.5日である。た
だし、ES細胞やiPS細胞が示すような無限増殖は示さない。
（ii） 免疫不全マウスに移植した場合に内胚葉系、中胚葉系及び外胚葉系への分化を示
す。ES細胞やiPS細胞ではテラトーマが短期間で癌化するのに比べ、半年以上癌化しない
ことを特徴とする。
（iii) 浮遊培養により胚様体様細胞塊を形成する。
（iv) 浮遊培養にて胚様体様細胞塊を形成し、10日程度で増殖が停止する。その後、接
着培養に移動させることにより再増殖する。
（v） 増殖の際に非対称分裂を伴う。
（vi） 核型は正常である。
（vii） テロメラーゼ活性が無いか又は低い。ここで、テロメラーゼ活性が無いか又は
低いとは、例えばTRAPEZE XL telomerase detection kit（Millipore社）を用いてテロメ
ラーゼ活性を検出した場合に検出できないか又は低いことをいう。テロメラーゼ活性が低
いとは、例えば、ヒト線維芽細胞と同程度のテロメラーゼ活性を有しているか、あるいは
Hela細胞に比べて1/5以下、好ましくは1/10以下のテロメラーゼ活性を有していることを
いう。
（viii） メチル化の状態については、Muse細胞から誘導したiPS細胞に関してはNanogお
よびOct3/4のプロモータ領域のメチル化レベルが低い。
（ix） 貪食能が高い。
（x） 腫瘍性増殖を示さない。ここで、腫瘍性増殖を示さないとは、浮遊培養を行った
場合、一定の大きさの細胞塊（クラスター）に達すると増殖が止まり、無限増殖しないこ
とをいう。また免疫不全マウスの精巣に移植しても奇形腫を形成しないことである。なお
、上記(i)〜(iv)等も腫瘍性増殖を示さないことに関連する。
すなわち、本発明の細胞は、例えば以下の多能性幹細胞である。
（A） 生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等から得られる細胞であって、当該細胞内に
化学物質、外来遺伝子又は外来タンパク質を導入することなく直接得ることができる多能
性幹細胞。
（B） 生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等が、骨髄、皮膚、血液、臍帯、脂肪などか
らなる群から選択される上記（１）の特性を有する多能性幹細胞。
（C） リプログラミングまたは脱分化を誘導することなく得ることができる、上記（A）
又は（B）の多能性幹細胞。
（D） 精巣へ移植した場合に、少なくとも半年間は癌化しない、上記（A）又は（B）の
多能性幹細胞。
（E） ES細胞、iPS細胞のように無限増殖を示さない、上記（A）又は（B）の多能性幹細
胞。
（F） 生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等由来の多能性幹細胞であって、生体の中胚
葉系組織又は間葉系組織等の細胞をプロテアーゼで処理したときに生き残る、プロテアー
ゼに耐性である多能性幹細胞。
さらに、本発明の多能性幹細胞は、生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等の細胞に細胞
ストレスをかけ、生き残った細胞を回収することにより単離することができる。ここで、
細胞ストレスとは外的ストレスをいい、プロテアーゼ処理、低酸素条件下での培養、低リ
ン酸条件下での培養、血清飢餓状態での培養、糖飢餓状態での培養、放射線曝露下での培
養、熱ショックへの曝露下での培養、有害物質存在下での培養、活性酸素存在下での培養
、機械的刺激下での培養、圧力処理下での培養等によりストレスに曝露することをいう。
この中でもプロテアーゼ処理、すなわちプロテアーゼ存在下での培養が好ましい。プロテ
アーゼは限定されず、トリプシン、キモトリプシン等のセリンプロテアーゼ、ペプシン等
のアスパラギン酸プロテアーゼ、パパイン、キモパパイン等のシステインプロテアーゼ、
サーモリシン等の金属プロテアーゼ、グルタミン酸プロテアーゼ、N-末端スレオニンプロ
テアーゼなどを用いることができる。プロテアーゼを培養に添加する際の添加濃度は限定
されず、一般的にシャーレ等で培養した付着細胞を剥がすときに用いる濃度で用いればよ
い。本発明の多能性幹細胞は、上記外的ストレスに耐性を有する幹細胞、例えば、トリプ
シンに耐性を有する細胞ということができる。
生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等は限定されず、骨髄単核細胞、皮膚細胞等の線維
芽細胞画分、歯髄組織、眼球組織、毛根組織等が含まれる。細胞としては、培養細胞も組
織から採取した細胞も用いることもできる。この中でも、骨髄細胞、皮膚細胞が望ましく
、例えば、ヒト骨髄間葉系細胞（MSC)画分又はヒト皮膚線維芽細胞画分が挙げられる。骨
髄間葉系細胞画分は、骨髄穿刺液を２〜３週間培養することにより得ることができる。
上記の各種のストレスを受けた組織の細胞の大部分は死滅し、生き残った細胞中に本発
明の多能性幹細胞が含まれる。細胞にストレスをかけたのち、死細胞を除去する必要があ
るが、プロテアーゼを用いた場合は、これらの死細胞はプロテアーゼの作用により分解さ
れる。
また、細胞にストレスをかけた後に、細胞に物理的衝撃を与え壊れ易くなった細胞を除
去してもよい。物理的衝撃は、例えば激しいピペッティング、激しい攪拌、ボルテックス
等により与えることができる。
細胞に細胞ストレスをかけ、必要に応じて物理的衝撃を与えた後に、細胞群を遠心分離
にかけ、生き残った細胞をペレットとして得て回収することにより、本発明の多能性幹細
胞を単離することができる。また、このようにして得られた細胞からさらに、下記の表面
マーカーを指標に本発明の多能性幹細胞又は多能性細胞画分を単離することもできる。
また、外傷や火傷等のストレスを受けた生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等を培養し
、遊走した細胞を回収しても本発明の多能性幹細胞又は多能性細胞画分を単離することが
できる。傷害を受けた組織の細胞はストレスに曝露されるので、本発明においては、傷害
を受けた生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等を培養することも生体の中胚葉系組織又は
間葉系組織細胞等に細胞ストレスをかけるという。
一例として、これらの細胞をトリプシン処理する方法について説明する。このときのト
リプシン濃度は、限定されないが、例えば接着細胞の通常の培養において、培養容器に接
着した接着培養を剥がすときに用いられる濃度範囲で用いればよく、0.1〜１％、好まし
くは0.1〜0.5％が例示される。例えば、10〜50万個の細胞を含む生体の中胚葉系組織又は
間葉系組織等由来の細胞を上記濃度のトリプシン溶液５ml中でインキュベーションするこ
とにより外的ストレスに曝すことができる。トリプシン処理時間は、５〜24時間、好まし
くは５〜20時間程度である。本発明においては、８時間以上のトリプシン処理、例えば８
時間又は16時間の処理を長時間トリプシン処理という。
トリプシン処理後、上記のように、ピペッティング、攪拌、ボルテックス等により物理
的衝撃を与えることが望ましい。それは死んだ細胞あるいは死にかけている細胞を除去す
るためである。
トリプシン処理後の浮遊培養の際には細胞同士の凝集を防ぐために、例えば、メチルセ
ルロースゲル等のゲル中でインキュベーションするのが望ましい。また、細胞の培養容器
への付着を防ぎ浮遊状態を維持するために、容器をPoly(2-hydroxyethyl methacrylate)
等でコートしておくことが望ましい。
外的ストレスに曝した細胞を遠心分離により集め培養を行うと細胞塊（細胞クラスター
）を形成する。この細胞塊の大きさは直径25μmから150μm程度である。本発明の多能性
幹細胞（Muse細胞）は、この外的ストレスに曝して生き残った細胞集団中に濃縮した状態
で含まれる。この細胞集団を富Muse細胞画分(Muse enriched population）と呼ぶ。富Mus
e細胞画分中のMuse細胞の存在割合は、ストレス処理の方法により異なる。
このように本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分がストレスをかけた後も生存す
ることは、本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分がストレス耐性であることを示し
ている。
生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等由来の細胞の培養に用いる培地、培養条件は通常
の動物細胞の培養で用いる培地、培養条件を採用すればよい。また、公知の幹細胞培養用
培地を用いてもよい。培地には、適宜ウシ胎児血清等の血清やペニシリン、ストレプトマ
イシン等の抗生物質及び種々の生理活性物質を添加してもよい。
さらに、本発明は、本発明の生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等から直接得ることが
できる多能性幹細胞の派生細胞又は誘導細胞である多能性幹細胞も含む。派生細胞又は誘
導細胞とは前記多能性幹細胞を培養して得られる細胞又は細胞群、あるいは前記多能性幹
細胞に外来遺伝子の導入等の人為的な誘導操作を行い得られる細胞をいい、子孫細胞も含
む。なお、本発明時点において報告されているiPS細胞は、皮膚線維芽細胞などの生体組
織の分化した細胞に外来遺伝子導入等することによりリプログラミングした結果、多能性
幹細胞に誘導された細胞といわれており、本発明の組織から直接得ることができ、すでに
多能性幹細胞としての性質を有する細胞に外来遺伝子導入等の人為的な誘導操作を行い得
られた細胞は、iPS細胞と区別される。
本発明の多能性幹細胞を浮遊培養することにより、胚様体様(Embryoid body(EB body)-
like)細胞塊が得られるが、本発明はこの胚様体様細胞塊及び胚様体様細胞塊に含まれる
細胞も包含する。胚様体は、本発明の多能性幹細胞を浮遊培養することにより、細胞塊と
して形成される。この際、本発明においては、本発明の多能性幹細胞を培養することによ
り得られる胚様体をMuse細胞由来胚様体様細胞塊と呼ぶことがある（Mクラスター（M-clu
ster）と呼ぶこともある）。胚様体様細胞塊を形成するための浮遊培養の方法として、メ
チルセルロース等の水溶性ポリマーを含有した培地を用いた培養（Nakahata, T. et al.,
Blood 60, 352-361 (1982)）やハンギングドロップ培養（Keller,J.Physiol.(Lond)168:
131-139,1998）等が挙げられる。本発明は前記胚様体様細胞塊からセルフリニューアルし
て得られる胚様体様細胞塊及び胚様体様細胞塊に含まれる細胞及び多能性幹細胞も包含す
る。ここで、セルフリニューアルとは、胚様体様細胞塊に含まれる細胞を培養し、再度胚
様体様細胞塊を形成させることをいう。セルフリニューアルは１〜複数回のサイクルを繰
り返せばよい。また、本発明は前記いずれかの胚様体様細胞塊及び胚様体様細胞塊に含ま
れる細胞から分化した細胞及び組織も包含する。
図１-１に間葉系細胞（ヒト線維芽細胞、ヒト骨髄間葉系細胞、新鮮骨髄液）画分とMus
e細胞及びMuse細胞由来の胚様体様細胞塊の関連を示す。間葉系細胞様細胞塊に長時間ト
リプシン処理（Long term trypsin incubation; LTT)等のストレス刺激を与えると、Muse
細胞が濃縮されMuse細胞を多く含む細胞画分が得られ（富Muse細胞画分と呼ぶ）、該細胞
画分中のMuse細胞を浮遊培養すると胚様体様細胞塊（Muse細胞由来胚様体様細胞塊）が得
られる。胚様体様細胞塊をゼラチンでコートした培養皿で培養すると３胚葉の細胞に分化
する。また、図１-１に示すように、SSEA-3陽性細胞を直接分離し、長時間のストレスを
かけることなく浮遊培養することによりMuse細胞由来の胚様体様細胞塊を得ることができ
る。
Muse細胞は、浮遊培養で一旦増殖が停止しても、接着培養に移すことにより増殖を開始
する。浮遊培養−接着培養−SSEA-3発現を指標にした分離を繰り返すことにより、Muse細
胞を大量に増殖させることが可能である（図１-２）。
さらに、本発明の多能性幹細胞又は多能性細胞画分は、生体組織から細胞ストレスに暴
露せずに直接単離することもできる。すなわち、本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞
画分は、生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等から外来遺伝子を導入することなく、誘導
操作なしに以下の方法で単離することができる。
生体組織は、限定されないが、生体の中胚葉系組織又は間葉系組織、例えば、骨髄、皮
膚、臍帯等が挙げられる。骨髄を用いる場合、骨髄の単核球分画を用いることができる。
単離は、Muse細胞の表面に多く発現している細胞表面マーカーを利用して行うことができ
、例えばSSEA-3の発現を指標に単離することができる。本発明の多能性幹細胞をSSEA-3陽
性Muse細胞ということもある。さらに、Muse細胞は間葉系細胞マーカーであるCD105を発
現しており、SSEA-3陽性であり、CD105陽性である。従って、SSEA-3及びCD105の両方の発
現を指標に単離することができる。これらの細胞表面マーカーを利用することにより、本
発明の多能性幹細胞を単一細胞として単離でき、単離した単一細胞を、培養により増殖さ
せることができる。なお、本発明は、ヒト以外の哺乳動物の生体組織からSSEA-3に相当す
るマーカーによって単離できる多能性幹細胞をも含むものとする。
一方、Muse細胞は、NG2、CD34、vWF（フォンビルブランド因子）、c-kit（CD117)、CD1
46、CD271（NGFR)が陰性である。さらに、Sox10、Snai1、Slug、Tyrp1、Dctが陰性である
。
NG2、CD34、vWF、CD117、CD146、CD271などの表面抗原が陰性かどうか、発現が弱いか
どうかはこれらの抗原に対する抗体であって、発色酵素、蛍光化合物等で標識した抗体を
用いて細胞が染色されたか否かを顕微鏡観察等により決定することができる。例えば、こ
れらの抗体を用いて細胞を免疫染色して、表面抗原の有無を決定することができ、また該
抗体を結合させた磁性ビーズを用いても決定することができる。また、FACS又はフローサ
イトメーターを用いても表面抗原があるかどうか決定することができる。フローサイトメ
ーターとしては例えばFACSAria(ベクトン・ディッキンソン社製)、FACS vantage(ベクト
ン・ディッキンソン社製)、FACS Calibur(ベクトン・ディッキンソン社製)等を用いるこ
とができる。
また、Sox10、Snai1、Slug、Tyrp1、Dctなどの転写因子に関してはRT-PCR等の手法によ
り発現を調べることもできる。
これらの表面抗原が陰性とは、上記のようにFACSを用いて分析した場合に、陽性細胞と
してソーティングされないこと、あるいはRT-PCRにより発現を調べた場合に、発現が認め
られないことをいい、これらの手法により検出できない程度発現していたとしても、本発
明においては陰性とする。また、上記マーカーが陽性であることが公知の造血幹細胞等の
細胞と同時に測定を行い、これらの陽性細胞と比較して、ほとんど検出されないか、ある
いは有意に発現量が低い場合に陰性としてもよい。
本発明の細胞は、これらの細胞表面の抗原特性に基づいて単離することができる。
上記のように、Muse細胞は、SSEA-3陽性を指標に単離することができ、さらにCD105の
発現を指標に単離することができるが、さらに、NG2、CD34、vWF（フォンビルブランド因
子）、c-kit（CD117)、CD146、CD271（NGFR)、Sox10、Snai1、Slug、Tyrp1及びDctからな
る群から選択される１１個のマーカーのうち少なくとも１個、例えば、２個、３個、４個
、５個、６個、７個、８個、９個、１０個又は１１個のマーカーの非発現を指標に単離す
ることができる。例えば、CD117及びCD146の非発現を指標に単離することができ、さらに
、CD117、CD146、NG2、CD34、vWF及びCD271の非発現を指標に単離することができ、さら
に、上記の１１個のマーカーの非発現を指標に単離することができる。
表面マーカーを用いて単離する場合、生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等から１個又
は複数個の本発明の多能性幹細胞を、培養等を経ることなく直接単離することが可能であ
る。また、本発明の多能性幹細胞を、細胞形態を顕微鏡等を使って目視することにより同
定して単離することが可能である。
生体の中胚葉系組織又は間葉系組織等に細胞ストレスをかけた後に、生存した細胞群か
ら表面マーカーを用いて単離してもよい。
また、上記のマーカーに加えて、本発明の多能性幹細胞又は多能性細胞画分は、他の特
定の因子の高発現によっても特徴付けられる。
無処理の骨髄間葉系細胞画分又は皮膚線維芽細胞画分から本発明の多能性幹細胞である
Muse細胞が得られ、さらにMuse細胞を培養することによりMuse細胞由来の胚様体（EB)様
細胞塊が得られる。Muse細胞、無処理細胞、Muse由来胚様体様細胞塊及びヒトES細胞にお
いて発現している因子を比較検討することにより、Muse細胞で高発現している因子がわか
る。ここで、因子とは遺伝子転写産物、タンパク質、脂質、糖を含む。
図２に、Muse細胞由来胚様体様細胞塊/無処理細胞での発現量の比が高い因子を示す。
特に以下の１８個の因子の比が高い。
(i) SSEA-3
(ii) v-fos FBJ murine osteosarcoma viral oncogene homolog
(iii) solute carrier family 16, member 6 (monocarboxylic acid transporter 7)
(iv) tyrosinase-related protein 1
(v) Calcium channel, voltage-dependent, P/Q type, alpha 1A subunit
(vi) chromosome 16 open reading frame 81
(vii) chitinase 3-like 1 (cartilage glycoprotein-39)
(viii) protease, serine, 35
(ix) kynureninase (L-kynurenine hydrolase)
(x) solute carrier family 16, member 6 (monocarboxylic acid transporter 7)
(xi) apolipoprotein E
(xii) synaptotagmin-like 5
(xiii) chitinase 3-like 1 (cartilage glycoprotein-39)
(xiv) ATP-binding cassette, sub-family A (ABC1), member 13
(xv) angiopoietin-like 4
(xvi) prostaglandin-endoperoxide synthase 2 (prostaglandin G/H synthase and cycl
ooxygenase)
(xvii) stanniocalcin 1
(xviii) coiled-coil domain containing 102B
本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分は、上記因子の少なくとも２つ、３つ、４
つ、５つ、６つ、７つ、８つ、９つ、10、11、12、13、14、15、16、17又は18が高発現し
ていることを特徴として、少なくとも２つの因子が高発現していることを指標に単離する
ことができる。
図３に、Muse細胞由来胚様体様細胞塊/ヒトES細胞での発現量の比が高い因子を示す。
特に以下の２０個の因子の比が高い。
(a)matrix metallopeptidase 1 (interstitial collagenase)
(b)epiregulin
(c)chitinase 3-like 1 (cartilage glycoprotein-39)
(d)Transcribed locus
(e)chitinase 3-like 1 (cartilage glycoprotein-39)
(f)serglycin
(g)MRNA full length insert cDNA clone EUROIMAGE 1913076
(h) Ras and Rab interactor 2
(i) lumican
(j) CLCA family member 2, chloride channel regulator
(k) interleukin 8
(l) Similar to LOC166075
(m) dermatopontin
(n) EGF, latrophilin and seven transmembrane domain containing 1
(o) insulin-like growth factor binding protein 1
(p) solute carrier family 16, member 4 (monocarboxylic acid transporter 5)
(q) serglycin
(r) gremlin 2, cysteine knot superfamily, homolog (Xenopus laevis)
(s) insulin-like growth factor binding protein 5
(t) sulfide quinone reductase-like (yeast)
本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分は、上記因子の少なくとも２つ、３つ、４
つ、５つ、６つ、７つ、８つ、９つ、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19又は20が
高発現していることを特徴として、少なくとも２つの因子が高発現していることを指標に
単離することができる。
さらに、本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分は、上記(i)〜(xviii)の因子の少
なくとも２つと上記(a)〜(t)の因子の少なくとも２つが同時に高発現していてもよく、こ
れらの遺伝子が高発現していることを指標に単離することができる。
さらに、本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分は多能性マーカー以外のオドラン
ト（odorant）受容体（オルファクトリーレセプター; olfactory receptor）群及びケモ
カイン（chemokine）受容体群の因子を発現していること、すなわち特定のオドラント受
容体やケモカイン受容体陽性であることを特徴とする。
本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分で発現しているオドラント受容体として例
えば、以下の２２個の受容体が挙げられる。
olfactory receptor, family 8, subfamily G, member 2 (OR8G2)；
olfactory receptor, family 7, subfamily G, member 3 (OR7G3)；
olfactory receptor, family 4, subfamily D, member 5 (OR4D5)；
olfactory receptor, family 5, subfamily AP, member 2 (OR5AP2)；
olfactory receptor, family 10, subfamily H, member 4 (OR10H4)；
olfactory receptor, family 10, subfamily T, member 2 (OR10T2)；
olfactory receptor, family 2, subfamily M, member 2 (OR2M2)；
olfactory receptor, family 2, subfamily T, member 5 (OR2T5)；
olfactory receptor, family 7, subfamily D, member 4 (OR7D4)；
olfactory receptor, family 1, subfamily L, member 3 (OR1L3)；
olfactory receptor, family 4, subfamily N, member 4 (OR4N4)；
olfactory receptor, family 2, subfamily A, member 7 (OR2A7)；
guanine nucleotide binding protein (G protein), alpha activating activity polype
ptide, olfactory type (GNAL)；
olfactory receptor, family 6, subfamily A, member 2 (OR6A2)；
olfactory receptor, family 2, subfamily B, member 6 (OR2B6)；
olfactory receptor, family 2, subfamily C, member 1 (OR2C1)；
olfactory receptor, family 52, subfamily A, member 1 (OR52A1)；
olfactory receptor, family 10, subfamily H, member 3 (OR10H3)；
olfactory receptor, family 10, subfamily H, member 2 (OR10H2)；
olfactory receptor, family 51, subfamily E, member 2 (OR51E2)；
olfactory receptor, family 5, subfamily P, member 2 (OR5P2)；及び
olfactory receptor, family 10, subfamily P, member 1 (OR10P1)
本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分で発現しているケモカイン受容体としては
以下の５個の受容体が挙げられる。
chemokine (C-C motif) receptor 5（CCR5)；
chemokine (C-X-C motif) receptor 4（CXCR4)；
chemokine (C-C motif) receptor 1（CCR1)；
Duffy blood group, chemokine receptor(DARC)；及び
chemokine (C-X-C motif) receptor 7(CXCR7)
本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分は、上記の嗅覚受容体の少なくとも１個を
発現しており、あるいは、上記のケモカイン受容体の少なくとも１個を発現している。
これらのオドラント受容体やケモカイン受容体と受容体に結合する遊走因子の作用で本
発明の多能性幹細胞は、損傷組織へ遊走し、生着し、その場で分化する。例えば、肝臓、
皮膚、脊髄、筋肉が損傷した場合、特定の遊走因子と細胞表面に発現しているオドラント
受容体の働きで、それぞれの組織に遊走し、生着し、肝臓（内胚葉）、皮膚（外胚葉）、
脊髄（外胚葉）、筋肉（中胚葉）細胞に分化し、組織を再生することができる。
さらに、本発明の多能性幹細胞であるMuse細胞が豊富に含まれる富Muse細胞画分におい
て、Rex1、Sox２、KLF-4、c-Myc、DPPA2、ERAS、GRB7、SPAG9、TDGF1等がアップレギュレ
ートされており、Muse細胞の細胞塊において、DAZL、DDX4、DPPA4、Stella、Hoxb1、PRDM
1、SPRY2等がアップレギュレートされている。
また、本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分においては、造血幹細胞マーカーで
あるCD34及びCD117の発現は認めらないかもしくは発現が極めて低い。
本発明は、Muse細胞のみならず、Muse細胞を濃縮した細胞集団、Muse細胞を増殖させた
細胞集団、Muse細胞を分化させた細胞集団を含み、さらに、Muse細胞やMuse細胞由来の細
胞を含む研究用キット、細胞チップ、治療用デバイスも含む。
本発明の多能性幹細胞は、pluripotencyを有しており、あらゆる組織へと分化し得る。
該多能性幹細胞又は多能性細胞画分は、再生医療等に用いることができる。例えば、各種
組織、各種器官等の再生に用いることができる。具体的には皮膚、脳脊髄、肝臓、筋肉等
が挙げられる。本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分を損傷あるいは障害を受けた
組織、器官等に直接あるいは近傍に投与することにより、該多能性幹細胞はその組織、器
官内に侵入し、その組織特有の細胞に分化し、組織、器官の再生、再建に貢献し得る。ま
た、静脈投与等により全身投与してもよい。この場合、該多能性幹細胞は、例えば、損傷
を受けた組織や器官をホーミング等により指向し、そこに到達・侵入した上で、その組織
や器官の細胞に分化し、組織、器官の再生、再建に貢献し得る。
投与は、例えば皮下注、静注、筋注、腹腔内注等の非経口投与や経口投与、あるいは胚
への子宮内注射等により行うことができる。また、局所投与でも全身投与でもよい。局所
投与は例えばカテーテルを利用して行うことができる。投与量は、再生しようとする器官
、組織の種類や、サイズにより適宜決定することができる。
再生しようとする器官は限定されず、骨髄、脊髄、血液、脾臓、肝臓、肺、腸管、眼、
脳、免疫系、循環系、骨、結合組織、筋、心臓、血管、膵臓、中枢神経系、末梢神経系、
腎臓、膀胱、皮膚、上皮付属器、乳房−乳腺、脂肪組織、および口、食道、膣、肛門を含
む粘膜等を含む。また、治療対象となる疾患として、癌、心血管疾患、代謝疾患、肝疾患
、糖尿病、肝炎、血友病、血液系疾患、脊髄損傷等の変性または外傷性神経疾患、自己免
疫疾患、遺伝的欠陥、結合組織疾患、貧血、感染症、移植拒絶、虚血、炎症、皮膚や筋肉
の損傷等が挙げられる。
細胞は医薬として許容される基材と共に投与してもよい。該基材は例えばコラーゲン等
でできた生体親和性が高い物質や、生分解性の物質できており、粒子状、板状、筒状、容
器状等の形状とすればよく、細胞を該基材に結合させあるいは該基材中に収容して投与す
ればよい。
また、本発明の多能性幹細胞をin vitroで分化誘導し、さらに分化した細胞を用いて組
織を構築させ、該分化した細胞又は該組織を移植してもよい。本発明の多能性幹細胞は、
腫瘍化しないので、移植した前記分化した細胞又は該組織に本発明の多能性幹細胞が未分
化のまま含まれていても癌化の可能性が低く安全である。これらの再生医療において、移
植した細胞又は組織のレシピエントによる拒絶を避けるためには、再生医療を受けようと
する患者から中胚葉系組織又は間葉系組織等を採取し、該組織から本発明の多能性幹細胞
又は多能性細胞画分を単離し、利用することが望ましい。さらに、本発明の多能性幹細胞
又は多能性幹細胞画分を組織の変性や機能不全を原因とする疾患の治療に用いることがで
きる。この場合、例えば、本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分をex vivoで濃縮
し、増殖させ、あるいは分化させて体内に戻せばよく、例えば、多能性幹細胞を特定の組
織の細胞に分化させ、該細胞を治療しようとする組織に移植すればよい。また、細胞の移
植により、in situ 細胞治療を行うこともできる。この場合、対象細胞の例として、肝臓
細胞、神経細胞やグリア細胞などの神経系細胞、皮膚細胞、骨格筋細胞などの筋肉細胞が
挙げられ、本発明の多能性幹細胞をこれらの細胞に分化させ、移植し、in situで治療を
行うことができる。該治療により、例えば、パーキンソン病、脳梗塞、脊髄損傷、筋変性
疾患などを治療することができる。本発明の多能性幹細胞は、腫瘍化しないので、このよ
うな治療に用いても癌化の可能性が低く安全である。
また、本発明の多能性幹細胞を、分化させて血液や血液成分を形成させることにより、
血液や血液成分をex vivo、in vitroで形成させることができる、血液成分として、赤血
球、白血球、血小板等が挙げられる。このようにして形成させた血液や血液成分を、自家
輸血や他家輸血に用いることができる。
上記のように、本発明の多能性幹細胞又は多能性幹細胞画分を治療に用いる場合、ex v
ivo、in vivo、in vitroのいずれで分化させてもよい。本発明の多能性幹細胞は、例えば
、骨芽細胞、軟骨細胞、脂肪細胞、線維芽細胞、骨髄間質、骨格筋、平滑筋、心筋、眼、
内皮、上皮、肝、膵、造血、グリア、神経細胞、稀突起膠細胞等に分化する。本発明の多
能性幹細胞の分化は、分化因子の存在下で、培養することにより達成することができる。
分化因子としては、塩基性繊維芽細胞成長因子（bFGF）、血管内皮成長因子（VEGF）、ジ
メチルスルホキシド（DMSO）およびイソプロテレノール；あるいは繊維芽細胞成長因子4
（FGF4）、肝細胞成長因子（HGF）等が挙げられる。本発明は、本発明の多能性幹細胞か
ら分化した細胞も包含する。
本発明の多能性幹細胞を治療に用いる場合、タンパク質性の抗癌物質や生理活性物質等
をコードする遺伝子を導入してもよい。これにより、本発明の多能性幹細胞は、治療薬の
デリバリー機能も有することになる。このような物質として例えば、抗血管新生薬が挙げ
られる。
本発明は、Muse細胞、Muse細胞からできた胚様体様細胞塊、及びMuse細胞や前記胚様体
様細胞塊から分化させて得られた細胞若しくは組織・器官を含む、細胞移植治療用材料若
しくは細胞移植治療用組成物、又は再生医療用材料若しくは再生医療用組成物を包含する
。該組成物はMuse細胞、Muse細胞からできた胚様体様細胞塊、又はMuse細胞や前記胚様体
様細胞塊から分化させて得られた細胞若しくは組織・器官に加えて、医薬的に許容される
緩衝液や希釈液等を含む。
さらに、患者から細胞を採取し、Muse細胞を単離し、該Muse細胞を用いて種々の診断に
用いることができる。例えば、Muse細胞から患者の遺伝子を採取し、遺伝子情報を得て、
該情報を反映させた正確な診断が可能になる。例えば、被験体の細胞由来のMuse細胞を分
化させることで、被験者と同じ遺伝子背景などの性質を持った各組織・器官の細胞を得る
ことができるため、疾病の診断や病態解明、薬剤の効果や副作用の診断、などに関し、各
々の被験者の性質に合わせ適切な診断を行うことができる。すなわち、Muse細胞、Muse細
胞からできた胚様体様細胞塊、及びMuse細胞や前記胚様体様細胞塊から分化させて得られ
た細胞若しくは組織・器官は診断用材料として用いることができ、例えば、本発明は、被
験体からMuse細胞を単離し、該Muse細胞又はMuse細胞から分化させて得られた、被験体と
同じ遺伝子背景を有する組織や器官を用いて被験体の疾病等を診断する方法を包含する。
また、Muse細胞を分化させることで体細胞を大量に得ることができるため、疾病のメカ
ニズム解明等の基礎的研究、治療薬開発、薬剤の効果や毒性に関するスクリーニング、薬
剤評価などを行うことができる。すなわち、Muse細胞、Muse細胞からできた胚様体様細胞
塊、及びMuse細胞や前記胚様体様細胞塊から分化させて得られた細胞若しくは組織・器官
を薬剤評価や薬剤スクリーニングの材料として用いることができる。例えば、本発明はMu
se細胞を分化・増殖させ、体細胞を得て、該体細胞に候補薬剤を投与し、体細胞の応答を
調べることにより、薬剤のスクリーニングや薬剤評価を行う方法を包含する。
また、種々の（例えば様々なHLA型の）Muse細胞をライブラリー化したMuse細胞バンク
を構築することで、上記のMuse細胞利用場面における細胞を必要に応じて提供できる体制
を実現でき、例えば、上記に挙げた目的の他、緊急に要する細胞移植治療のための拒絶反
応の無い（少ない）細胞提供、などを行うことができる。すなわち、本発明は種々の遺伝
子特性を有するMuse細胞を単離し、集めることにより、異なる遺伝子特性を有するMuse細
胞のライブラリー、すなわちMuse細胞バンクを作製する方法を包含する。また、Muse細胞
だけでなく、Muse細胞からできた胚様体様細胞塊、及びMuse細胞や前記胚様体様細胞塊か
ら分化させて得られた細胞若しくは組織・器官を得てライブラリーやバンクを構築するこ
ともできる。本発明においては、これらのMuse細胞からできた胚様体様細胞塊、及びMuse
細胞や前記胚様体様細胞塊から分化させて得られた細胞若しくは組織・器官を得てライブ
ラリーやバンクも細胞ライブラリー又は細胞バンクと称する。本発明は、このようにして
作製した細胞ライブラリー又は細胞バンクを包含する。該細胞ライブラリー又は細胞バン
クは例えば、異なる遺伝的特性を有する細胞等が収納された複数のチューブ等の容器から
なり、該細胞は凍結されていてもよい。例えば、被験体において、組織や器官を移植し、
あるいは再生する必要が生じた場合に、上記細胞ライブラリー又は細胞バンクから、前記
被験体に遺伝的背景等に関して適合した細胞を選択し、該細胞を用いて移植や再生治療を
行うことができる。
本発明は、疾患の治療のために、本発明の多能性幹細胞や該細胞画分や該細胞由来の派
生細胞や誘導細胞の治療上有効な量を治療を必要としている患者に投与することを含む治
療方法を包含する。ここで、有効な量とは、例えば、投与する細胞数で特定することがで
き、疾患の種類や重篤度により適宜決定することができる。上記治療法においては、本発
明の多能性幹細胞は、テラトーマ（奇形腫）を形成しないため、患者にテラトーマが形成
されない。また、自己細胞由来のMuse細胞を投与する場合、患者を放射線照射や化学療法
等の処置により骨髄機能を欠損させる必要はないが、自己細胞ではないMuse細胞を用いる
場合は、上記処置を行えばよい。
さらに、Muse細胞は、iPS細胞(induced pluripotent stem cell）のソースとなり得る
。Muse細胞をソースとしたiPS細胞の作製効率は他の細胞（例えば、SSEA-3発現を指標に
分画していない皮膚線維芽細胞）をソースとした場合に比べ、はるかに（少なくとも25倍
以上）高い。
Muse細胞に特定の遺伝子を導入し、あるいは特定の化合物を導入すること等により細胞
形質を変化させることによりiPS細胞を作製することができる。細胞形質の変化は、リプ
ログラミングや癌化を含み、現在知られている方法、あるいは将来的に確立されるあらゆ
る方法を用いることができる。
例えば、特許4182742号の記載に従って遺伝子をMuse細胞に導入し、あるいは図２７の
記載に従って、Muse細胞からiPS細胞を確立することができる。また、図２７に記載の方
法以外に、化学物質、外来遺伝子又は外来タンパク質を導入して、iPS細胞を樹立するこ
とが可能であるといえる。Muse細胞からのiPS細胞の確立は、例えば後述の実施例に記載
の方法で行うことができる。
このようにしてMuse細胞から得られたiPS細胞をMuse由来iPS細胞（Muse-iPSC）と呼ぶ
ことがあり、本発明は該Muse由来iPS細胞をも包含する。Muse由来iPS細胞は、Muse細胞由
来の増殖性を有する多能性幹細胞ということができる。
本発明を以下の実施例によって具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって
限定されるものではない。
実施例１ 富Muse細胞画分及びMuse細胞由来胚様体様細胞塊の調製並びに特性分析
材料及び方法
本実施例において、以下の細胞を用いた。
間葉系細胞として、２株のヒト皮膚線維芽細胞画分及び４株のヒトMSC（bone marrow s
tromal cell)画分を用いた。ヒト線維芽細胞画分は、（１）H-fibroblast-1（正常ヒト線
維芽細胞（NHDF）、Lonza社より入手）及び（２）H-fibroblast-2（成人ヒト皮膚線維芽
（HDFA)、ScienCell社より入手）を用いた。ヒトMSC画分としては、H-MSC-1、H-MSC-2、H
-MSC-3及びH-MSC-4をLonza社及びALLCELLS社より入手して用いた。ヒトMSC画分について
は、Pittenger, M. F. et al. Science 284, 143-147 (1999)；Dezawa, M. et al. J Cli
n Invest 113, 1701-1710 (2004)；Dezawa, M. et al. Science 309, 314-317 (2005)に
詳細に記載されている。
細胞は10％FBS及び0.1mg/mlカナマイシン含有α-MEM(alpha-minimum essential medium
)を用いて、37℃、５％CO2条件下で培養した。入手したものの最初の培養を第１代とし、
その後細胞が95％コンフルエントになったところで、細胞培養液：培地の比を1:2として
継代し、４〜10代継代したものを用いた。
ヒトES細胞（hESC）は京都大学より入手したkyoto hESC-1(KhES-1)を用いた。
マウスES細胞（TT2細胞）及びヒトES細胞（KhES-1)はC57BL/6マウスの12.5日胚より確
立したマウス由来フィーダー細胞存在下で維持した。
以下の方法で実験を行った。
１．間葉系細胞のストレス刺激
ストレス刺激として低栄養条件での培養、低血清濃度での培養、低酸素濃度での培養、
繰返しトリプシン処理、長時間トリプシン処理を行うため以下の培養条件を採用した。
（１）無血清培地（STEMPRO MSC SFM（Invitrogen社）を用いた２日間の培養（無血清）
（２）Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS)バッファー（Invitrogen社）を用いた２日
間の培養（HBSS)
（３）10％FBS含有α-MEMを用いての低酸素濃度（１％)での２日間の培養（10％FBS＋Low
O2）
（４）トリプシン中（0.25％トリプシン-HBSS）での１時間インキュベーション３回の処
理（トータル３時間のトリプシン処理）（Try 3× 1hr)
（５）トリプシン中での８時間インキュベーション(LTT 8hr)
（６）トリプシン中での16時間インキュベーション(LTT 16hr)
陰性対照として、ヒト末梢血単核細胞画分を用いた。
上記（４）、（５）及び（６）の条件の場合、100,000個〜500,000個の細胞を５mlトリ
プシン溶液中に浮遊させて培養を行った。上記の（１）〜（３）のストレス刺激の場合、
刺激後、細胞を５分間のトリプシン処理により集め、（４）〜（６）のストレス刺激の場
合、細胞を直接チューブに集めた。
ストレス刺激後に生じる大量の死細胞はボルテックス処理することにより破壊した。す
なわち、最大500,000個の細胞を含む５mlの培地を15mlのファルコンチューブに移し、ボ
ルテックスミキサー（IKA Works社）を用いて1800〜2200rpm/minで３分間ボルテックス処
理を行った。その後、2000rpmで15分間遠心分離を行い、上清を除去した。生細胞の回収
率は約70〜80％であった。
２．MC培養
本実施例においては、細胞をメチルセルロース含有培地中で浮遊培養した。メチルセル
ロース含有培地中での培養をMC培養と呼ぶ。MC培養については、Nakahata, T. et al., B
lood 60, 352-361 (1982)に記載されている。
細胞が容器底に付着するのを防ぐために、培養ディッシュをPoly-HEMA(Poly(2-hydroxy
ethyl methacrylate)でコートした。すなわち、600mgのpoly-HEMA（SIGMA社）を95％エタ
ノール40mlに37℃で攪拌して溶解し、ディッシュに添加し（96ウェル培養ディッシュの場
合40μl/ウェル、12ウェルディッシュの場合200μl/ウェル）、一晩乾燥させた。
MC(MethoCult H4100）(StemCell technologies社より入手）を20％FBS含有α-MEMに最
終濃度２％で懸濁した。ゲル状のMC培地中の細胞濃度は細胞同士の凝集を抑える十分な細
胞間距離を確保できる8000細胞/mlとした。細胞とMC培地を穏やかなピペッティングによ
り十分混合し、poly-HEMAコートした培養ディッシュに移した。乾燥を防ぐために、10％F
BS含有α-MEMを３日毎に最初のMC培養の容積の1/10量、ゆっくりと添加した。
細胞塊（細胞塊は、本発明の多能性幹細胞Muse細胞由来の細胞塊であるためMuse細胞由
来胚様体様細胞塊と呼ぶ）のクローニングは７日目に行った。0.01MのPBSを培地に添加し
、2000rpmで20分間遠心し、上清を捨てた。この処理を３回繰返し、細胞を洗浄した。回
収した細胞ペレットを10μlの0.01M含有トリパンブルー溶液に懸濁し、スライドガラスに
載せ位相差顕微鏡を用いて写真を撮った。直径25μmより大きい、ヒトES細胞と外観が似
ているトリパンブルー陰性細胞塊のみをMuse細胞由来胚様体様細胞塊として数えた。Muse
細胞由来胚様体様細胞塊の形成率は細胞塊の数/すべての生細胞数（すべてのトリパンブ
ルー陰性細胞）により算出した。細胞計数の際、細胞塊はその大きさにかかわらず１細胞
として数えた。これは、Muse細胞由来胚様体様細胞塊中に含まれる細胞の数の正確な計測
は困難だからである。
ヒトES細胞においては、細胞を注意深くフィーダー細胞が含まれないように単離し、上
記の方法でMC培養を行った。培養３日目に位相差顕微鏡観察像を得た。
３．単一細胞浮遊培養
96ウェルディッシュを上記の方法でpoly-HEMAでコートし、10％FBS含有α-MEMを用いて
限界希釈法にて、単一細胞をそれぞれのウェルに播き、位相差顕微鏡にてウェル中の実際
の細胞数を計数し、細胞が入っていないウェル、あるいは複数入っているウェルは計測か
ら除外した。培養10日目に胚様体（EB)（Muse細胞由来胚様体様細胞塊）形成を計数した
。それぞれの細胞株に対して３回の実験を行い、一回の実験では最低250ウェル以上の観
察を行った。
４．アルカリフォスファターゼ染色
H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来のMuse細胞由来胚様体様細胞塊を集め生理食塩水
で数回洗浄し、Leukocyte Alkaline Phosphatase kit(sigma社）を用いて染色した。
５．Muse細胞由来胚様体様細胞塊のin vitroでの分化
MC培養又は単一細胞浮遊培養の７〜10日後、H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来の胚
様体様細胞塊をガラスマイクロピペットにより採取し、ゼラチンコート培養ディッシュ又
はカバーガラス上に移しさらに７日間培養すると細胞塊から細胞が広がる。かかる細胞に
おける分化の有無を免疫組織化学分析及びRT-PCR分析に供した。
６．免疫組織化学
細胞を0.01M PBS中４％パラホルムアルデヒドで固定し、H-fibroblast画分及びH-MSC画
分由来の富Muse細胞画分又はMuse細胞由来胚様体様細胞塊を遠心分離により集め、OCTコ
ンパウンド中に埋め込み８μmの凍結切片を作製した。細胞塊は、ゼラチンコートスライ
ドガラス上で固定し、免疫組織化学分析に供した。
１次抗体として、Nanog (1:500, Chemicon社)、Oct3/4 (1:800,大阪大学 Dr. H. Hamad
aより入手)、Sox2 (1:1000, Abcam社)、PAR4(1:100, Santa Cruz社)、SSEA-3(1:20, DSHB
社)、平滑筋アクチン(1:100, Lab Vision社)、neurofilament M (1:200, Chemicon社)、
α-フェトプロテイン(1:100, DAKO社)、マウスNumblike (1:500, カリフォルニア大学サ
ンフランシスコ校のDr. Yuh-Nung Janより入手)及びtype 1コラーゲン(1:20, Southern B
iotech社)に対する抗体を用いた。２次抗体として、Alexa 488又は568とコンジュゲート
した抗ウサギIgG、抗マウスIgG又は抗マウスIgM抗体(Molecular Probes社)を用いて、免
疫組織化学分析を行った。
７．核型の決定
H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来のMuse細胞由来胚様体様細胞塊（Muse細胞由来胚
様体様細胞塊から単一細胞を取り再度Muse細胞由来胚様体様細胞塊を形成させることを１
〜３回繰り返したもの）からの増殖細胞(clonally expanded cells)の核型をquinacrine-
Hoechst染色により決定した。
８．免疫不全マウス精巣への細胞の注入
無処理細胞画分、並びにH-fibroblast画分及びH-MSC画分由来の富Muse細胞画分及びMus
e細胞由来胚様体様細胞塊を用いた。富Muse細胞画分の場合、長時間トリプシン処理後血
清を添加し、0.01M PBSで３回洗浄した。Muse細胞由来胚様体様細胞塊もMC培養から採取
後に同PBSで３回洗浄した。１×105個の細胞をPBSに浮遊し、NOGマウス（登録商標）（NO
D/Shi-scid, IL-2RγKO Jic、８週齢、財団法人 実験動物中央研究所より入手）の精巣
にガラスマイクロチューブを用いて注入した。Muse細胞由来胚様体様細胞塊を用いた場合
、レーザ共焦点顕微鏡の３Dグラフィック分析手法を用いて、50個のMuse細胞由来胚様体
様細胞塊を取り、Muse細胞由来胚様体様細胞塊のトータル体積を測定し核の数で除するこ
とにより、それぞれの構成細胞の平均体積を測定した。測定の結果、1.5×105細胞/μlで
あることが算定され、この算定にしたがって上記数の細胞を集め、NOGマウス精巣に注入
した。マウスは注入６ヵ月後に実験に供した。
対照試験として、１×106のマウスES細胞（陽性対照）及びマイトマイシンC処理MEF（
マウス胚性フィーダー細胞）（陰性対照）をSCIDマウス精巣に注入し、注入後８週後に実
験に供した。
９．光学顕微鏡により細胞の高解像度分析
H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来の富Muse細胞画分及びMuse細胞由来胚様体様細胞
塊について、安定な高解像度光学顕微鏡を用いてヒトMSC、線維芽細胞及び神経細胞など
の細胞タイプの観察を行った。
１０．電子顕微鏡による極薄切片観察
Muse細胞由来胚様体様細胞塊、H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来のSSEA-3陽性細胞
及びSSEA-3陰性細胞、並びにヒトES細胞の細胞塊を遠心分離により集め、100mMリン酸バ
ッファー（pH7.2)中2.5％グルタルアルデヒドで30分間固定し、１％寒天中に包埋し、1mm
3に切り、PBSで洗浄後、100mMリン酸バッファー(pH7.2)中２％OsO4で４℃で10分間染色し
た。サンプルを蒸留水で洗浄後、５滴の２％酢酸ウラニルで４℃で20分間染色した。蒸留
水で洗浄後、染色サンプルを50％、70％又は90％エタノールを用いて４℃で10分間脱水し
、次いで100％エタノールを３回交換することにより完全に脱水した。得られたサンプル
を酸化プロピレンで５分間置換し、酸化プロピレン中50％エポキシレジン中に60分間包埋
した。これを純粋なエポキシレジンに包埋し、60℃オーバーナイトで硬化させた。超薄切
片は70〜80nmの厚さで作製し、CCDカメラ付きの100kV 電子顕微鏡で観察した。
１１．Muse細胞由来胚様体様細胞塊の増殖速度
H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来のMuse細胞由来胚様体様細胞塊について細胞群の
倍化時間を測定するために、それぞれのMuse細胞由来胚様体様細胞塊をひとつずつ96ウェ
ルプレートに移し、15分間のトリプシン処理を行った後にガラスマイクロピペットを用い
てピペッティングを行った。細胞の数を計測し、所定の時間後ごとに少なくとも20〜30個
のMuse細胞由来胚様体様細胞塊について分析した。
１２．RT-PCR
無処理細胞画分（24ウェルスケール中の約10,000細胞）及びH-fibroblast画分及びH-MS
C画分（24ウェルスケール中の約10,000細胞）由来のin vitroで単一Muse細胞由来胚様体
様細胞塊から分化した細胞（１〜３サイクル）を用いた。トータルRNAを、NucleoSpin RN
A XS(Macherey-Nagel社）を用いて抽出、精製し、第１鎖cDNAをSuperScript VILO cDNA S
ynthesis Kit (Invitrogen)を用いて調製した。PCR反応は適切なプライマーを設計し、Ex
Taq DNA polymerase (タカラバイオ社）を用いて行った。用いたプライマーは以下のと
おりであった。
陽性対照としては、α-フェトプロテインプライマーについてはヒト胎児肝臓（Clonete
ch社）を用い、それ以外はヒト完全胚（Clonetech社）を用いた。
１３．定量的PCR（Q-PCR)
無処理細胞画分、H-fibroblast-1、H-fibroblast-2、H-MSC-1及びH-MSC-2由来の富Muse
細胞画分及びMuse細胞由来胚様体様細胞塊からのトータルRNAをRneasy Mini Kit（Qiagen
GmbH社）により集め、cDNAをRT2 First Strand Kit(SA Biosciences社）を用いて合成し
た。プライマーはSA Biosciences社より特注し、7300 real time PCRシステム（Applied
Biosystems社)を用いて定量的PCRを行った。得られたデータはΔΔCT方法（Livak KJ et
al., Methods 25: 402-408, 2001）により解析した。
１４．DNAマイクロアレイ分析
無処理細胞画分、H-fibroblast-1、H-fibroblast-2、H-MSC-1及びH-MSC-2由来の富Muse
細胞画分及びMuse細胞由来胚様体様細胞塊、並びに４名の健常者由来ヒト末梢血単核細胞
画分混合物を用いた。totalRNAをRneasy Mini Kit（Qiagen GmbH社）により集め、DNAマ
イクロアレイにより分析した（タカラバイオ社）。アレイシグナルは、Affimetrix Expre
ssion Console V1.1ソフトウェア）により処理しノーマライズした。Pathway Studio 6.0
(Ariadne genomics社）を用いて発現変動が認められた遺伝子を遺伝子オントロジーの機
能的カテゴリーに割り当てた。階層的クラスタリングは、MeV4による群平均クラスタリン
グの手法を用いて、遺伝子の発現変動に基づいてユークリッド距離を用いて行った（Saee
d AI et al., Biotechniques 34(2):374-378, 2003）。
１５．テロメラーゼ活性の検出
H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来の富Muse細胞画分、Muse細胞由来胚様体様細胞塊
及びHela細胞を用いた。テロメラーゼ活性は、TRAPEZE XL telomerase detection kit（M
illipore社）とEx Taqポリメラーゼ（タカラバイオ社）を用いて検出した。蛍光強度はマ
イクロプレートリーダー（TECAN社）を用いて測定した。
１６．Bisulfite（亜硫酸水素塩）シーケンス
無処理細胞画分、H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来の富Muse細胞画分及びMuse細胞
由来胚様体様細胞塊由来の１μgのゲノムDNAをCpGenome DNA modification kit(chemicon
社）で処理した。DNAをQIAquick column(Qiagen社）で精製した。ヒトOct3/4及びNanog遺
伝子のプロモータ領域をPCRにより増幅し、PCR産物をpCR2.1-TOPO中にサブクローニング
しそれぞれのサンプルについて10クローンまでをM13ユニバーサルプライマーを用いて配
列決定し、プロモータ領域のメチル化の状態を調べた。PCR増幅には、Shimazaki T et al
., EMBO J, 12:4489-4498, 1993に記載のプライマーを用いた。
１７．ヒト骨髄穿刺液からのMuse細胞由来胚様体様細胞塊形成
３人の健常人からのヒト骨髄穿刺液（ALLCELLS社より入手）から単核細胞画分をLympho
prep Tube（Axis-Shield PoC AS社）を用いて集め、８時間の長時間トリプシン処理を行
った後にMC培養を行った。またトリプシン処理をせずに直接そのままでMC培養にも持って
行った。７日目に細胞数を測定した。
１８．MACSソーティング
３人の健常人からのヒト骨髄穿刺液（ALLCELLS社より入手）由来の単核細胞画分を抗CD
105抗体とマイクロビーズのコンジュゲートと反応させ、MSカラム（Miltenyi Biotech社
）を用いてソーティングした。CD105陽性細胞をフラクション１（間葉系細胞群）として
集め、さらにCD105陰性細胞を抗CD34抗体及び抗CD117抗体の混合物とマイクロビーズのコ
ンジュゲートとインキュベートし、再度ソーティングし、CD34陽性・CD117陽性細胞（フ
ラクション２；造血幹細胞群にあたる）及びCD105陰性・CD34陰性・CD117陰性細胞（フラ
クション３）を得た（図４）。集めたサンプルを８時間の長時間トリプシン処理を行った
後にMuse細胞由来胚様体様細胞塊の形成を測定した。
１９．免疫組織化学
マウス精巣を0.02MPBS中４％パラホルムアルデヒドを用いて固定した。切片は凍結切片
として10μmの厚さで作製した。サンプルを0.02MPBSで洗浄し、20％BlockAce（雪印社）
含有バッファーを用いてブロッキングした後に免疫組織化学分析用の１次抗体とインキュ
ベートした。用いた１次抗体は、抗平滑筋アクチン抗体（1:200、Lab Vision社）、抗MAP
-2抗体（1:200、Biogenesis社）及び抗α-フェトプロテイン抗体（1:10、DAKO社）であっ
た。
２次抗体としては、Alexa488又はAlexa568を結合した抗ウサギIgG抗体、Alexa568を結
合した抗マウスIgG抗体を用い、DAPI存在下で反応させた。サンプルはニコン共焦点顕微
鏡システムC1si（ニコン）を用いて観察した。
２０．フローサイトメトリー及び細胞ソーティング
細胞をフィコエリトリン標識抗CD11c抗体、抗CD29抗体、抗CD34抗体、抗CD44抗体、抗C
D45抗体、抗CD49f抗体、抗CD54抗体、抗CD71抗体、抗CD90抗体、抗CD105抗体、抗CD166抗
体、抗CD271抗体又は抗vWF抗体（Beckton Dickinson社）又は抗SSEA-3抗体（Millipore社
）とインキュベートした。抗SSEA-3抗体を用いる場合、細胞をさらにFITC結合抗ラットIg
M抗体と反応させた。２mM EDTA及び0.5％ウシ血清アルブミンを添加したカルシウム及び
マグネシウムを含まない0.02M PBSをFACS抗体希釈液として用いた。FACSCalibur（Becton
Dickinson)によりCellQuestソフトウェア又はFACSAriaによりDIAソフトウェアを用いて
データ解析を行った。細胞をFACS抗体希釈液中で抗SSEA-3抗体とインキュベートしFACSAr
ia（Becton Dickinson)により低流速及び4 way purityソーティングモードでソーティン
グし、細胞のソーティングを行った。
２１．統計解析
データは、平均±SEMで表す。データは、Bonferroni法による一対比較によりANOVAを用
いて比較した。
結果
Ａ．H-fibroblast画分及びH-MSC画分のストレス刺激
H-fibroblast画分とH-MSC画分のストレス刺激の結果の一例を表１に示す。
ストレス刺激とボルテックス処理後、トリパンブルー染色により生細胞数を計測し、生
存率を計算した。生細胞を回収し、７日間のMC培養に供した。条件（２）の場合、大量の
死細胞が存在し、生細胞回収効率が低かったため、Muse細胞由来胚様体様細胞塊はうまく
計測できなかった。表１には「ND(not determined)」で示した。
６つの条件中で、H-fibroblast画分の16時間トリプシン処理及びH-MSC画分の８時間の
トリプシン処理が最も効率的な刺激であった。２株のH-fibroblast画分及び４株のH-MSC
画分を用いて繰返しこの実験を行ったところ、同様の傾向が認められた。陰性対照（ヒト
末梢血単核細胞画分）においては、Muse細胞由来胚様体様細胞塊は認められなかった。代
表的な観察値を表１に示す。
ND (not determined): 大量の死細胞が存在し、生細胞回収効率が低かったため、Muse細
胞由来胚様体様細胞塊を計測できなかった
Muse細胞由来胚様体様細胞塊形成効率から判断すると、16時間（H-fibroblast画分）及
び８時間（H-MSC画分）のトリプシン処理が６つの条件の中で最も効率的であると考えら
れた。16時間又は８時間トリプシン処理、1800〜2000rpm/minでの３分間のボルテックス
及び2000rpm１５分間の遠心分離の一連の操作をMuse細胞の濃縮のための長時間トリプシ
ン処理（LTT)と名付けた。ボルテックス処理後の細胞の回収率は約70〜80％であった（図
５)。
Ｂ．Muse細胞由来胚様体様細胞塊の判定基準
本実施例において、Muse細胞由来胚様体様細胞塊の判定基準を設けた。H-fibroblast画
分及びH-MSC画分由来の富Muse細胞画分中の単一細胞の平均直径は10〜13μmであった（図
６a)。これらの細胞をMC培養すると、細胞は分裂を開始した。分裂するとそれぞれの細胞
のサイズは小さくなり、８〜10μmの細胞から構成される多細胞塊が徐々に形成された（
図７e及び７f)。それぞれの細胞のサイズと外観は、MC培養したヒトES細胞に類似してい
た（図６b及び６c)。７日目に、ほとんどの多細胞塊は25μmより大きくなり、直径100〜1
50μmになった。該細胞塊はES細胞と類似した外観を有していた。Φ25μmのフィルターを
用いることにより、25μmより大きい塊を回収した（図６b）。H-fibroblast画分及びH-MS
C画分の100個のMuse細胞由来胚様体様細胞塊までの免疫細胞化学によりほとんどのMuse細
胞由来胚様体様細胞塊は多能性マーカーNanog、Oct3/4、Sox2、PAR4及びSSEA-3が陽性で
あることがわかり、アルカリフォスファターゼ染色でも陽性であった（図６e-g)。25μm
より小さい細胞塊の場合、マーカーは検出される場合とされない場合があり、また多能性
マーカーの局在はこれらのマーカーに典型的なパターンを示さない場合もあった。さらに
、細胞の外観はむしろ富Muse細胞画分に類似している場合があった。
上記結果より、直径25μを超える多細胞塊を、Muse細胞由来胚様体様細胞塊とした。
Ｃ．ヒト間葉系細胞画分から形成される細胞塊の分析
生体がストレスに曝されたり、傷害を受けると休眠状態の組織幹細胞が活性化されるこ
とが知られている。本実施例において、H-MSC画分及びH-fibroblast画分に種々の方法で
ストレスをかけ（無血清処理、Hank's Balanced Salt Solution(HBSS)による処理、低酸
素処理、トータル３時間、８時間若しくは16時間のトリプシン処理等）、生存した細胞を
集め、その後メチルセルロース（MC)含有培地中で浮遊培養（MC培養という）を行い、さ
らに8000細胞/mLの密度で７日間MC培養を行った（図７-１d）。その結果、最大で約直径1
50μmまでの種々の大きさの細胞塊の生成が認められた（図７-１e及びf）。図７-１cはH-
fibroblast-1画分のMC培養の０日目の状態を、図７-１dは７日目の状態を示す。16時間の
トリプシン処理を行ったH-fibroblast画分及び８時間のトリプシン処理を行ったH-MSC画
分において、最も多くの細胞塊の形成が認められた。図７-１e及びfにH-fibroblast-1画
分から形成された細胞塊（Muse細胞由来胚様体様細胞塊）の状態を示す。図７-１eはMC培
養７日目の状態であり、図７-１fは単一細胞の浮遊培養10日目の状態である。細胞塊をサ
イズごとにフィルターを用いて分画し、免疫細胞化学分析を行った。直径25μmを超える
細胞塊中に、Nanog、Oct3/4、SSEA-3、PAR-4及びSox2の多能性幹細胞マーカーが陽性であ
り（図７-２g-l)、さらにアルカリフォスファターゼ染色で陽性の細胞(図７-３m-o)が検
出された。これらの細胞について電子顕微鏡を用いて観察したところ、H-fibroblast画分
及びH-MSC画分から形成した細胞塊において、ES細胞と同様の核／細胞質比、細胞内器官
の減少、核中の１つ若しくは２つの巨大な核小体の存在という特徴が認められた（図７-
４p-r）。
生体のH-MSC画分及びH-fibroblast画分から、多能性マーカー陽性及びアルカリフォス
ファターゼ染色陽性を示す細胞塊を浮遊培養で形成し得る細胞を見出した。本発明者らは
、これらの細胞をMuse細胞(multilineage differentiating stress enduring cells)と名
付けた。16時間のトリプシン処理を行ったH-fibroblast画分及び８時間のトリプシン処理
を行ったH-MSC画分から形成した細胞集団を「富Muse細胞画分（Muse-enriched populatio
n）」と呼び、該集団から得た単一細胞を浮遊培養したところ、富Muse細胞画分の９〜10
％において、細胞塊の形成（Muse細胞由来細胞塊：Muse細胞由来胚様体様細胞塊）が認め
られた。このことは、富Muse細胞画分には約９〜10％のMuse細胞が含まれることを示して
いる。
単離したMuse細胞の増殖について調べたところ、培養開始後１〜２日目で細胞分裂が観
察され、細胞は10日目頃までは約1.3日の分裂周期で増殖した（図８-２）。しかし、11〜
12日目には増殖速度は低下し、14日目に直径150μmの大きさの細胞塊が形成された時点で
増殖が停止した。Muse細胞由来胚様体様細胞塊を５分のトリプシン処理でばらばらにし単
一細胞とし、単一浮遊培養を行ったところ、細胞は生存したが、増殖速度は分裂周期が５
〜７日と非常に低いままであり、細胞によっては細胞増殖の停止も観察された（図８-１
の（１））。このことは、これらの細胞塊の増殖が制限され、一旦速度が低下すると、浮
遊培養において、増殖速度は再上昇しにくいことを示す。しかしながら、単一のMuse細胞
由来胚様体様細胞塊を接着培養に移すと、増殖を再開した。５〜７日後、比較的小規模の
増殖細胞群（3000〜5000細胞）を５分のトリプシン処理でばらばらにし、MC培養すると、
約40％の効率で細胞塊の形成が認められた（図８-１の（２））。細胞群のスケールをさ
らに上げて約５〜10×104に達したところで、トリプシンで長時間処理すると、再びMuse
細胞（2nd cycle）を生成し、約10％の率でMuse細胞由来胚様体様細胞塊を形成した（図
８-１）。トリプシンでの長時間処理-浮遊培養-接着培養を５回繰り返したところ、それ
ぞれの世代において、同様の特性及びMuse細胞由来胚様体様細胞塊形成率を示した。５cy
cle目のMuse細胞由来胚様体様細胞塊においても、多能性マーカー及びアルカリフォスフ
ァターゼは陽性であった。
これらの現象が変異などを起こした異常な細胞によるものでないことを確認するために
核型検査を行った。Muse細胞由来胚様体様細胞塊由来の細胞(clonally expanded cells)
においては多くは正常な核型を有し、染色体の異常は認められなかった(図８-３）。この
ことにより正常な細胞による現象であることを示す。
上記の結果は、Muse細胞が自己複製（セルフリニューアル）能を有し、クローン増殖す
ることを示している。Muse細胞は、Muse細胞-Muse細胞由来胚様体様細胞塊-クローン増殖
の一連のサイクルにより増殖する。従って、間葉系細胞集団から大量のMuse細胞を得るこ
とが可能であると予測される。
Ｄ．Muse細胞由来胚様体様細胞塊の３胚葉細胞への分化
分化能を確かめるため、単一のMuse細胞由来胚様体様細胞塊をゼラチンでコートしたデ
ィッシュに移し分化させた。７日目にα平滑筋アクチン（中胚葉マーカー）、デスミン（
中胚葉マーカー）、神経フィラメント-M（外胚葉マーカー）、αフェトプロテイン（内胚
葉マーカー）及びサイトケラチン7（内胚葉マーカー）が検出された(図９-１a-c）。RT-P
CRにより、１から３サイクルの培養を行ったMuse細胞由来胚様体様細胞塊（第１から３cy
cle）はαフェトプロテイン及びGATA６（内胚葉マーカー）、微小管結合タンパク質２：M
AP-2（中胚葉マーカー）及びNkx2.5（中胚葉マーカー）を発現していることが確認された
が、無処理のH-fibroblast又はMSC群はゼラチンコートしたディッシュ上での培養でも分
化が認められなかった（図９-２）。
さらに、富Muse細胞画分、Muse細胞由来胚様体様細胞塊及びES細胞を免疫不全マウスの
精巣に注入し、テラトーマ（奇形腫）を形成するか否かを確かめた（図９-３e）。組織学
検査の結果、ES細胞ではすべてのマウスにおいて８週以内にテラトーマの形成が認められ
た。しかしながら、富Muse細胞画分では１３頭中１０頭で、Muse細胞由来胚様体様細胞塊
では１１頭中１０頭で、図９-３eに示すように、移植されたヒト細胞の残存と、種々の細
胞種への分化が認められた。テラトーマは少なくとも６ヶ月まで富Muse細胞画分及びMuse
細胞由来胚様体様細胞塊の移植群において形成が全く認められなかった。移植したヒト細
胞は抗ヒトミトコンドリア抗体によって標識されるが、それらの細胞は同時に外胚葉マー
カー（神経フィラメント）、内胚葉マーカー（α-フェトプロテイン）及び中胚葉マーカ
ー（平滑筋アクチン）を発現することが確認された（図９-３f-i）。
これらのデータは、H-fibroblast画分、H-MSC画分由来Muse細胞及びMuse細胞由来胚様
体様細胞塊はin vitroでも in vivoでも３胚様に分化し得ることを示している。
Ｅ．定量的PCR
多能性及び分化状態に関連したマーカーの発現を図１０に示す。Nanogの発現は、富Mus
e細胞画分及び細胞クラスターにおいては、無処理細胞に比べそれほど高くなかった。多
能性幹細胞の幾つかにおいては、Nanogはそれほど発現しない（Chou YF et al., Cell 13
5, 449-461 (2008)； Bui HT et al., Development. 135(23):3935-3945 (2008))。Nanog
と同様に、Q-PCRでのOct-4はマウスES細胞に比較するとリプログラミング体細胞において
低い（Bui HT et al., Development. 135(23):3935-3945 (2008))。従って、Nanog及び他
の多能性（pluripotency)マーカーの発現量はpluripotencyにとってそれほど重要ではな
い。
Ｆ．富Muse細胞画分及びMuse細胞由来胚様体様細胞塊の遺伝子発現
定量PCRにより多能性及び非分化状態に関連するいくつかのマーカーが富Muse細胞画分
及びMuse細胞由来胚様体様細胞塊でアップレギュレートされていることが示された。富Mu
se細胞画分は上記のように９〜10％のMuse細胞を含んでいるに過ぎないが、Rex1（ZFP42)
、Sox2、KLF-4、c-Myc、DPPA2（developmental pluripotency associated 2）、ERAS、GR
B7（Growth factor receptor-bound protein 7)、SPAG9（Sperm associated antigen）、
TDGF1（teratocarucinoma-derived growth factor1が、無処理細胞画分に比べて高度に又
は適度にアップレギュレートされていた。Muse細胞由来胚様体様細胞塊においては、DAZL
(azoospermia-like)、DDX4（VASA)、DPPA4（developmental pluripotency associated 4
）、Stella、Hoxb1、PRDM1及びSPRY2（sprouty homolog2)が無処理細胞に比べてアップレ
ギュレートされていた（図１０a）。
H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来の、無処理細胞画分、富Muse細胞画分及びMuse細
胞由来胚様体様細胞塊の全体的な遺伝子発現を、ヒト末梢血単核細胞画分をコントロール
として比較したところ、無処理細胞画分、富Muse細胞画分及びMuse細胞由来胚様体様細胞
塊の間で幾つかの遺伝子において発現パターンの変化が認められた（図１０a)。
富Muse細胞画分及びMuse細胞由来胚様体様細胞塊におけるテロメラーゼ活性は低かった
。このことは、テロメラーゼ活性がMuse細胞の増殖活性にそれほど関与していないことを
示している（図１０b）。
Ｇ．DNAマイクロアレイによる全体的遺伝子発現
108プローブのピアソン相関分析を、ヒト末梢血単核細胞（陰性対照）、無処理細胞画
分、H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来の富Muse細胞画分及びMuse細胞由来胚様体様細
胞塊について行った（図１１)。
また、DNAマイクロアレイにより、発現しているオドラント受容体及びケモカイン受容
体をピックアップした。
Ｈ．生体におけるMuse細胞の存在
上記に示した検討は、安定な培養細胞を用いて行った。細胞を成体から取り出して培養
した場合、生体内とは異なる特性を持ち得るので、Muse細胞やMuse細胞由来胚様体様細胞
塊がアーティファクトな産物である可能性は否定できない。そこで、ヒト生体すなわちヒ
ト骨髄細胞から培養を経ないで直接Muse細胞由来胚様体様細胞塊を得ることを試みた。ヒ
ト骨髄穿刺液から単核細胞画分を単離し、直接MC培養に供するか（naive hBM-MC)、ある
いは８時間のトリプシン処理を行った後にMC培養に供した（8hr-hBM-MC、トリプシン処理
後の単核細胞画分の生存率は約3.5％であった）。７日後、Muse細胞由来胚様体様細胞塊
の形成が無処理のnaive hBM-MCでは約0.004％の効率で認められ、8hr-hBM-MCでは約0.3％
すなわち約75倍の効率であった（図１２a）。これらのMuse細胞由来胚様体様細胞塊はア
ルカリフォスファターゼ染色陽性であった（図１２ｂ）。無処理のnaive hBM-MC及び8hr-
hBM-MC由来の単一Muse細胞由来胚様体様細胞塊からクローン増殖した細胞のRT-PCRにより
、α-フェトプロテイン、GATA6、MAP-2及びNkx2.5の発現が認められた（図１３）。これ
らの結果は、ヒト骨髄中にin vivoにおいてもMuse細胞が存在し、８時間のトリプシン処
理で富化しMuse細胞由来胚様体様細胞塊を形成させることができることを示している。さ
らに、骨髄の多くのタイプの細胞中で、Muse細胞がCD105陽性間葉系細胞画分に属してい
ることが確認された。
上記のように、ヒト骨髄穿刺液から直接単離した単核細胞画分中の無処理hBM-MCの形成
効率は0.004％と著しく低かった。培養中の細胞においては、細胞集団の構成が変化し得
るため、安定的な培養を行っている細胞は、骨髄から単離した無処理単核球とは異なるMu
se細胞由来胚様体様細胞塊形成傾向を示すと考えられる。これを確認するため、次いで、
ヒト骨髄穿刺液を培養し、初代MSCを回収しMC培養を行ったところ、約0.2％のMuse細胞由
来胚様体様細胞塊形成が認められた。これらの初代MSCをさらに２回又は５回継代培養し
たところ、Muse細胞由来胚様体様細胞塊形成効率は無処理細胞画分に対して約0.5％〜1.0
％それぞれ上昇した。無処理のH-fibroblast画分及びヒトMSC画分の約1.2％がMuse細胞由
来胚様体様細胞塊を形成する。これらの結果は、Muse細胞のようなストレス耐性を有する
細胞は継代培養等のin vitro培養環境で残り、このため安定な継代培養細胞画分が骨髄穿
刺液から直接単離した単核細胞画分よりもより高いMuse細胞由来胚様体様細胞塊形成効率
を示したことを示唆する。
骨髄はMSC、造血系細胞、内皮細胞を含む多種の単核細胞を含む。どの画分がMuse細胞
を含むかを調べるために、ヒト骨髄穿刺液から単離した単核細胞画分を、CD34、CD117（
いずれも造血幹細胞マーカー）及びCD105（間葉系細胞のマーカー）に対する抗体を用い
て直接MACSソーティングに供し、各々の画分を８時間トリプシン処理し、７日間MC培養を
行った。CD34陽性、CD117陽性画分にはMuse細胞由来胚様体様細胞塊はほとんど検出され
なかったが、CD34陰性、CD117陰性、CD105陽性画分にはCD34陰性、CD117陰性、CD105陰性
画分の50倍のクラスターの形成が認められた。この結果は、Muse細胞は主にCD105陽性間
葉系細胞画分中に存在することを示唆している。
Ｉ．MACSソーティング
骨髄単核細胞画分からのそれぞれのフラクションの収率は、フラクション１（CD105陽
性フラクション）で1.8％、フラクション２（CD34陽性・CD117陽性フラクション）で8.5
％、フラクション３（CD34陰性・CD117陰性・CD105陰性フラクション）で89.7％であった
。フラクション１、２及び３の細胞塊形成率は、それぞれ0.5％、０％及び0.01％であっ
た。従って、フラクション１の細胞塊形成率はフラクション３の約50倍であった。
Ｊ．FACSソーティング
一例として、SSEA-3をマーカーとしてFACSソーティングを行った。
H-fibroblast及びHMSCの両方について、SSEA-3陽性細胞及びSSEA-3陰性細胞をFACSソー
ティングにより分離し、単一細胞懸濁培養に供した。SSEA-3陽性細胞の約50〜60％がMuse
細胞由来胚様体様細胞塊を形成した。一方、SSEA-3陰性細胞ではMuse細胞由来胚様体様細
胞塊を形成しなかった。
Ｋ．Muse細胞の特徴
FACS分析により、無処理H-fibroblast画分及びH-MSC画分は間葉系細胞に発現するCD44
、CD49f、CD54、CD90、CD105陽性の画分を含むことがわかった。しかし、CD11c、CD34、C
D45、CD71、CD166、CD271及びフォンビルブランド（vWF)因子は陰性であった。富Muse細
胞画分においては、CD44及びCD54が陰性となったSSEA-3陽性画分は約0.7〜1.9％であった
（図１４）。
SSEA-3は多能性のマーカーの１つであるので、無処理のH-fibroblast画分及びH-MSC画
分中のMuse細胞由来胚様体様細胞塊形成率（約1.2％）及び富Muse細胞画分での形成率（
９〜10％）は、それぞれのSSEA-3の陽性率（無処理細胞画分は約0.7〜0.9％、富Muse細胞
画分では７〜8.3％）に似ていた。SSEA-3の陽性率は、Muse細胞のある状態を示している
可能性がある。免疫組織化学によると、無処理のH-fibroblast画分及びH-MSC画分中のSSE
A-3陽性細胞の数は１％未満であった。そこで、H-fibroblast画分及びH-MSC画分由来の富
Muse細胞画分からSSEA-3陽性細胞をソーティングし、単一浮遊培養を行った。その結果、
SSEA-3陽性細胞の50〜60％がMuse細胞由来胚様体様細胞塊を形成した。これは富Muse細胞
画分のMuse細胞由来胚様体様細胞塊形成の約６〜７倍、無処理細胞画分のMuse細胞由来胚
様体様細胞塊形成の約60倍である。一方SSEA-３陰性の細胞画分からはMuse細胞由来胚様
体様細胞塊の形成は認められなかった。FACSによるソーティングにより得られたSSEA-3陽
性細胞画分由来の単一細胞塊からクローン増殖により得られた細胞（3,000〜5,000細胞）
のSSEA-3陽性率は約45％であった（図１５-１a）。このことは、Muse細胞由来胚様体様細
胞塊の形成過程において、非対称性分裂が関与しており、単一Muse細胞由来胚様体様細胞
塊のクローン増殖においても同様であることを示唆している。実際、非対称性分裂に関与
していることが知られているNumblikeは、２つの細胞への分裂の過程で１つの細胞中にの
み存在する（図１５-２b）。これらの結果は、非対称性細胞分裂がMuse細胞の増殖に関与
していることを示唆する。
電子顕微鏡観察により、H-fibroblast画分及び長時間トリプシン処理後にソーティング
したH-MSC画分由来SSEA-3陰性細胞において核の変形と細胞質中の小胞が観察され、細胞
が障害を受けていることが示された。しかし、SSEA-3陰性細胞と陽性細胞の間で明らかな
形態的な差は認められなかった（図１５-３c及びd）。
SSEA-3陽性細胞の重要性は、移植実験においても示された。SSEA-3陰性細胞画分を移植
した場合、SSEA-3陽性細胞画分を移植した場合に比べて、組織マーカーの発現はほとんど
の細胞で認められなかった。
富Muse細胞画分において、ほとんどのSSEA-3陽性細胞はOct3/4及びSox2を共発現してお
り、細胞質中に検出された（図１５-４e及びg）。しかし、核中で発現している細胞は極
めて少なかった（図１５-４f）。この結果は、SSEA-3がMuse細胞の良いマーカーとなり得
ることを示している。一方、Muse細胞由来胚様体様細胞塊の細胞においては、Oct3/4及び
Sox2は核中に主に局在していた（図７-２h及びl）。この２つのマーカーの細胞内局在の
差異は細胞状態の差異を反映している可能性がある。
Muse細胞が長時間のトリプシン処理により人工的に誘導された可能性も否定できない。
多くのMuse細胞が骨髄中のCD105陽性細胞画分に存在する。さらに、SSEA-3陽性細胞は、M
use細胞の特性を示す。そこで、ヒト成体骨髄穿刺液からSSEA-3及びCD105の二重陽性(dou
ble positive)細胞として、Muse細胞を直接得ることを試みた。二重陽性細胞は、骨髄由
来単核球中に0.025％〜0.05％存在し、それを長時間のトリプシン処理なしに、直接単一
細胞浮遊培養に供した。７日後、11.4±1.2％の細胞（単核球の0.003〜0.005％に相当す
る）が、Muse細胞由来胚様体様細胞塊を形成し、アルカリフォスファターゼ陽性であった
。次いで、単一Muse細胞由来胚様体様細胞塊を接着培養により3,000細胞まで増殖させ、
単一浮遊培養に供した。これらの細胞中、33.5±3.1％の細胞が第２世代のMuse細胞由来
胚様体様細胞塊を形成した。また、単一Muse細胞由来胚様体様細胞塊からゼラチンでコー
トした培養ディッシュで増殖させた細胞についてRT-PCRを行ったところ、α-フェトプロ
テイン、GATA6、MAP-2及びNkx2.5の発現が認められた。これは、ヒト成体骨髄中にMuse細
胞の特性を有する細胞が存在することを示唆する。
上記のように、ストレス刺激により非幹細胞を除去することにより幹細胞を富化するこ
とができた。Muse細胞を長時間トリプシン処理とその後のSSEA-3陽性細胞のソーティング
により効率的に集めることができた。Muse細胞は、多能性マーカーを発現しアルカリフォ
スファターゼ染色陽性であり、外胚葉、中胚葉及び内胚葉系細胞に分化し得るMuse細胞由
来胚様体様細胞塊を形成した。また、増殖速度の測定において腫瘍形成性増殖に関する特
徴を有しておらず、テロメラーゼ活性も有していなかった。このことは、Muse細胞は爆発
的増殖を防ぐための多重のセキュリティーシステムを有していることを示している。Muse
細胞の非腫瘍形成性特性はMuse細胞をマウス精巣に注入する実験においても認められた。
この特性は生体機能のバランスを維持する上で都合がよく、この特性がなければ、異常増
殖や異形成により生体は破壊され、腫瘍形成やテラトーマ形成をもたらす。
Muse細胞の多能性は接着培養系では顕在化せず、浮遊培養で観察された。
通常、Muse細胞は不活性休眠状態にあり生体が、危機的状態に陥ったり、あるいは重篤
な傷害を被り、又は飢餓若しくは虚血状態等のストレス過多状態が維持されるとある種の
シグナルが伝達されて活性化すると考えられる。その後、Muse細胞は組織再生に貢献し、
細胞間相互作用や組織化に貢献する。
実施例２ SSEA-3を利用して単離したMuse細胞の特性分析
実施例１の検討において、FACSにより得たSSEA-3陽性細胞画分が多能性幹細胞の特性を
有していること、すなわちMuse細胞であることが判明したが（上記J、K等）、さらに、単
離したSSEA-3陽性細胞を用いて、in vitroでの分化能及びin vivoでの分化能を検討し、
さらにMuse由来iPS細胞の確立を行った。
１．損傷組織への移植によるin vivoでの分化能の検討
GFP（緑色蛍光タンパク質）-レンチウイルスで標識したSSEA-3陽性Muse細胞を単離し、
脊髄（圧迫損傷）、肝臓（CCl4を腹腔内注射、劇症肝炎モデル）又は腓腹筋（cardiotoxi
n注射）に損傷を与えた免疫不全マウス（NOGマウス）に静脈注射により移植した。ヒト皮
膚細胞由来のMuse細胞をGFP（緑色蛍光タンパク質）-レンチウイルスで標識し（Hayase M
et al., J Cereb Blood Flow Metab. 29(8): 1409-20, 2009）、Muse細胞由来胚様体様
細胞塊が標識細胞由来であることをGFPにより確認した。脊髄損傷はNOGマウスに対してレ
ベルTh9で行い（Farooque M et al., Acta Neuropathol., 100; 13-22, 2000）、NOGマウ
スの腓腹筋にcardiotoxinを投与し筋肉変性を誘発し、四塩化炭素をNOGマウスに腹腔内投
与し、肝臓変性を誘発した。筋肉及び肝臓については２日後、脊髄については７日後に１
×105のMuse細胞を静脈注射により移植した（各６頭のマウスを使用）。コントロールと
して、GFP標識MEC集団を静脈注射したマウスを用いた。移植の３又は４週間後に、マウス
をパラホルムアルデヒドで固定し、免疫組織化学及び共焦点レーザ顕微鏡観察に供した。
脊髄損傷の４週間後、GFP及びヒトゴルジ複合体陽性細胞がニューロフィラメントを形
成していた。（図１６-１N及びO)。また、４週間後、再生している肝臓において、GFP及
びヒトゴルジ複合体陽性細胞がヒトアルブミンを発現していた（図１６-１P）。RT-PCRの
結果によりMuse細胞を移植したNOGマウス肝臓においてヒトアルブミンの形成が示された(
図１６-２)。GFP陽性細胞を再生している筋肉に注射した場合、３週間でヒトジストロフ
ィンを発現した(図１６-３)。一方、SSEA-3陰性ヒト皮膚線維芽細胞画分を移植した場合
、細胞のインテグレートは顕著に少なく、組織マーカーが陽性の細胞はほとんど認められ
なかった。これらの結果は、Muse細胞が損傷組織に統合され、それぞれ、in vivoで外胚
葉、中胚葉及び内胚葉に分化し得ることを示す。
２．単一Muse細胞由来のMuse細胞由来胚様体様細胞塊からの増殖細胞の分化
Muse細胞の分化調節に誘導システムが有効かどうかを検討した。単一SSEA-3陽性Muse細
胞由来のMuse細胞由来胚様体様細胞塊を接着培養に供し、増殖させた。単一Muse細胞由来
の増殖細胞を回収し、４つの群に分け、それぞれの群に対して、神経、骨細胞、脂肪細胞
及び幹細胞への分化誘導を行った(n=5)。
神経誘導のためには、細胞をpoly-HEMAでコートしたディッシュを用いて１×105/mlの
密度でB-27 supplementを含むNEUROBASAI培地（Gibco社）中で７日間培養し、sphere（球
状の細胞塊）を形成させた。分化させるためにsphereをポリ-L-リシンでコートしたガラ
ス上に移し、25ng/ml FGF及び25ng/ml BDNFを含む２％ FBS中で10日間培養した。
骨細胞誘導のためには、細胞を4.2×103細胞/cm2の密度でHuman Mesenchymal Stem Cel
l Functional Identification Kit (R&D Systems)の骨細胞誘導培地を用いて14日間培養
した。
脂肪細胞誘導のためには、細胞を2.1×104細胞/cm2の密度でHuman Mesenchymal Stem C
ell Functional Identification Kit (R&D Systems)の脂肪細胞誘導培地を用いて14日間
培養した。
肝臓細胞誘導のためには、細胞を2.0×104細胞/cm2の密度でDMEM（10％FBS、10nMデキ
サメタゾン及び100ng/ml HGFを含む10×ITS（GIBOCO社）、50ng/ml FGF4を含む）を用い
てコラーゲンコートしたディッシュ上で14日間培養した。
神経誘導によりsphereが形成され、sphereは神経幹細胞マーカーであるネスチン、Musa
shi及びNeuroD陽性であることが確認された(図１７-１A〜D)。これらのsphereを分化培地
中で培養するとMAP-2又はGFAP陽性細胞に分化した（図１７-１E、MAP-2、GFAPいずれも89
±5.7％の陽性率）。細胞を骨細胞誘導したとき、オステオカルシン陽性細胞（97±3.5％
）及びアルカリフォスファターゼが認められた（図１７-１F及びG)。脂肪細胞分化につい
ては、オイルレッドで染色される脂肪滴を有する細胞が形成された（90±4.9％)(図１７-
１H〜I)。肝細胞誘導にヒトαフェトプロテイン陽性細胞（図１７-１J、87±7.6％）並び
にヒトアルブミンとヒトαフェトプロテイン陽性細胞（図１７-２)の形成がRT-PCRにより
認められた。これらの結果は、Muse細胞の３胚葉への分化が、非常に高い効率で誘導によ
り調節できることを示している。
３．ヒト成人皮膚からのSSEA-3陽性細胞の採取
培養細胞を培養したり、Muse細胞由来胚様体様細胞塊を形成させることなく、ヒト成人
皮膚から直接Muse細胞を単離することを試みた。
ヒト健常人（n=3)からの皮膚（BIOPREDIC Internationalより入手）の上皮及び脂肪組
織を除き真皮を得、真皮を10％ FBSを含むα-MEM中コラゲナーゼ/ジスパーゼと共に37℃
で36時間インキュベートした。濾過により消化された皮膚細胞を回収し、1500rpmで20分
間遠心分離し、α-MEMで洗浄し、0.25％トリプシン-HBSSで５分間インキュベートした。
細胞をさらにFACSバッファーで洗浄し、SSEA-3とインキュベートし、FACSを用いてSSEA-3
陽性細胞をソーティングした。約７cm2の皮膚組織から1.3±0.3×104の単一細胞を回収す
ることができた。SSEA-3陽性細胞は、回収した単一細胞の1.7±0.2％であった。
SSEA-3陽性細胞の21.0±1.7％が、限界希釈による単一細胞浮遊培養で７日でMuse細胞
由来胚様体様細胞塊を形成した。Muse細胞由来胚様体様細胞塊はALP陽性であり、単一のM
use細胞由来胚様体様細胞塊からゼラチンでコートしたディッシュを用いて増殖させた細
胞について、RT-PCRで確認したところ、MAP-2、Brachyury、Nkx2.5、GATA6及びα-フェト
プロテインを発現していた。この結果は、Muse細胞と同じ性質を有する細胞が上述の成人
ヒト骨髄液と同様に、成人ヒト皮膚にも存在することを示している。
ヒト成人皮膚は、SKP（皮膚由来前駆細胞）、NCSC（神経堤幹細胞）、メラノブラスト
（MB)、血管周囲細胞（PC)、内皮前駆細胞（EP)、脂肪由来幹細胞（ADSC)等の種々のタイ
プの幹細胞や前駆細胞を含んでいる。Muse細胞がこれらの幹細胞等と同じである可能性を
排除するために、Muse細胞におけるSnai1（SKPのマーカー）、Slug（SKPのマーカー）、S
ox10（NCSCのマーカー）、CD271（NCSCのマーカー）、Tyrp1（MBのマーカー）、Dct（MB
のマーカー）、CD117(c-Kit)（MBのマーカー）、CD146（PC及びADSCのマーカー）、NG2（
PCのマーカー）、CD34（EP及びADSCのマーカー）及びフォンビルブランド因子（EPのマー
カー）の発現を分析した。これらのマーカーのいずれもSSEA-3陽性細胞において、FACS分
析又はRT-PCRで認められなかった（図１８-1及び図１８-２)。この結果は、Muse細胞はヒ
ト成人皮膚に存在することが公知である幹細胞や前駆細胞と異なる細胞であることを示し
ている。
さらに、フェライト粒子を用いてMuse細胞の貪食能を調べたところ、Muse細胞はフェラ
イト粒子を容易に取り込み、高い貪食能を有していた（図１８-３）。
４．Muse由来iPS細胞（Muse-iPSC)の確立
iPS細胞は、Oct3/4遺伝子、Sox2遺伝子、Klf4遺伝子、c-Myc遺伝子、Nanog遺伝子、Lin
28遺伝子等を導入し作製されている。Muse細胞は、多能性(pluripotency)マーカーを発現
し、外胚葉、内胚葉及び中胚葉系細胞に分化し得るという点で、iPS細胞と類似した特性
を有している。そこで、Muse細胞がiPS細胞のよい材料となり得るかを検討した。
方法は以下のとおりであった。
H-fibroblast画分由来のSSEA-3陽性細胞及び陰性細胞に、Takahashi et al., Cell, 13
1, 861-872(2007)の記載に従って、レトロウイルスベクターを用いて、Nanog、Oct3/4、K
LF4及びc-Mycの４つの因子を導入し、培養した。以下に、方法の詳細を示す。
プラスミドの確立
pMXsレトロウイルスベクター(Cell Biolabs)にヒトOct3/4、Sox2、Klf4、c-Mycのopen
reading frameを組み込んだ。
レトロウイルスの感染及びiPS細胞の確立
PLAT-A細胞を100mm dishに5×106細胞の密度でまき、一晩培養した。次の日に、Fugene
HDを用いてトランスフェクションをを行った。トランスフェクションから24時間後、新
しい培地に交換した。3日後に上清を回収し、0.45μmのフィルターに通し、4μg/mlのポ
リブレンを加えた。60mm dishに1×105細胞の密度でまいたNHDF（皮膚線維芽細胞）にウ
イルス溶液を感染させた。24時間後、ウイルスの入っていない新しい培地に交換した。ウ
イルス感染から4日後にトリプシンにより剥がした細胞を、MEF（フィーダー細胞）の上に
3×104細胞の密度でまいた。翌日、培地を4ng/ml bFGFを加えたPrimate ES mediumに交換
した。その後２日に１回培地交換を行い、30日後、コロニーをピックアップし、24ウェル
プレートにまいた。
PCR分析
RNeasy mini kit(QIAGEN)によりRNAを精製した。500ngのRNAをSuperScriptIIを用いて
逆転写した。内因性のOct、Sox2、Klf4、Myc、NanogのプライマーとＰＣＲの条件等はaka
hashi et al., Cell, 131, 861-872(2007)に記載の通りで行った。
in vitroにおけるiPS細胞の分化
コラゲナーゼによりiPS細胞を採取した。細胞の塊をPoly-HEMAでコーティングしたdish
に、20％ Knockout serum replacement(Invitrogen)、2mM L-Glutamine、1×10-4M nones
sential amino acid、1×10-4M 2-mercaptoethanol(Nacalai)、0.5％Penicillin/Strepto
mycinを含むDMEM/F12培地にて培養した。培地は2日に一回交換した。7日後、EBをゼラチ
ンコートしたdishにまき、同じ培地で一週間培養した。
テラトーマの形成
60mm dishのiPS細胞をRock inhibitorにより処理し、Accutase（登録商標）により採取
しチューブに集めて遠心後、PBSに浮遊させた。これをNOG mouse（登録商標）（財団法人
実験動物中央研究所）の精巣に注射した。12週後に４％パラホルムアルデヒドにより固
定した。パラフィン切片はHE（Hematoxylin & Eosin)染色を行った。
以下の結果が得られた。
H-fibroblast画分由来のSSEA-3陽性細胞及び陰性細胞に、Takahashi et al., Cell, 13
1, 861-872(2007)の記載に従って、レトロウイルスベクターを用いて、Nanog、Oct3/4、K
LF4及びc-Mycの４つの因子を導入し、５日後にMEF上に再度まきなおし、培養した。colon
y pickupを行う直前、すなわちＭＥＦ上での培養3０日目においては、SSEA-3陰性細胞中
で形成されたコロニーは非ES細胞様コロニーであり、ＥＳ細胞のマーカーであるTra-1-80
陽性のコロニーはまったく見られなかった。一方、多くのSSEA-3陽性細胞においては陰性
の細胞群の約７倍ほどの数のコロニーを形成し、それらはTra-1-80は陽性であった。注目
すべきは、SSEA-3陰性細胞(コロニーやコロニーを形成していない細胞すべてを回収)では
、RT-PCRで測定したところ、ＭＥＦ上３０日目のcolony pick up直前でもNonog、Sox2な
どの多能性に密接に関連した重要な遺伝子は陰性であった。一方、SSEA-3陽性細胞におい
て、内因性のOct3/4、KLF4及びRex1がアップレギュレーションされており、さらにNanog
、Sox2が発現していた。予測されていたとおり、SSEA-3陽性細胞をcolony pickupし、新
たなMEF（フィーダー細胞）上に移した場合、無処理H-fibroblast画分細胞を用いた場合
よりも３０倍ほど高い効率でiPSを作製することができた。これらのiPS細胞において、免
疫細胞化学、RT-PCR及びQ-PCRにより、Tra-1-60、Tra-a-80、Rex1、UTF-1、テロメラーゼ
逆転写酵素（TERT)及びヒトES細胞において発現している因子がアップレギュレーション
しており、あるいは新たに発現していた（図１９、２１）。また、得られたMuse細胞由来
iPS細胞において、Nanog、Oct3/4、Sox2及びTRA-1-81が発現していた（図１９)。RT-PCR
により、Muse細胞由来iPS細胞ではNanog、Oct3/4及びSox2が発現しているが、SSEA-3陰性
細胞由来コロニーでは発現していないことがわかった（図２１)。
SSEA-3陽性細胞とSSEA-3陰性細胞画分とで、Oct3/4遺伝子、Sox2遺伝子、Klf4遺伝子お
よびc-Myc遺伝子の導入効率はほとんど同じであった。導入した細胞をマウスフィーダー
細胞上でディッシュ当たり１×105の密度で培養した。両方の各群でコロニーを形成した
が、SSEA-3陰性細胞画分から形成されたコロニー数は、SSEA-3陽性細胞画分の７分の１程
度であった。さらに、SSEA-3陽性細胞画分と異なり、SSEA-3陰性細胞画分では、ヒト多能
性幹細胞マーカーであるTRA-1-81陽性コロニーは、コロニーを採取する直前の培養30日後
でも認められなかった（図２２-１）。RT-PCRにより、内因性Sox2及びNanogはSSEA-3陽性
細胞由来画分のみで発現しており、SSEA-3陰性細胞画分では発現していなかった（図２２
-２)。
さらに、SSEA-3陽性及び陰性細胞画分をそれぞれ継代し、iPS細胞株を確立した。３継
代後、ヒトES細胞様の形態（平らなコロニー）を示したそれぞれのコロニー（図２２-３C
及びC1)についてRT-PCRを行い、内因性oct3/4、Sox2及びNanogを発現しているコロニーを
iPSコロニーとしてカウントした。その結果、iPS細胞は、SSEA-3陽性細胞由来コロニーの
みから形成され、効率は0.03％であった。SSEA-3陰性細胞由来コロニーからは形成されな
かった（図２２-３D及びD1)。
さらに、Muse細胞から確立したiPS細胞は、外胚葉、内胚葉及び中胚葉系細胞に分化し
、マウス精巣にてテラトーマを形成した（図２３-１〜２３-３)。
Muse細胞の増殖活性は、増殖速度及びテロメラーゼ活性の観点からそれほど高くない。
このことは、Muse細胞は、マウス精巣中で３胚葉性の細胞に分化するが、テラトーマは形
成しないことと対応している。もし、Muse細胞が皮膚や骨髄等のヒト成人組織において維
持されている場合、その増殖は厳密に調節されているはずであり、そうでなければ、Muse
細胞は生体のすべての部分で腫瘍を形成してしまうであろうことを考えても妥当である。
さらに、ある条件下で培養した杯盤葉上層（epiblast）幹細胞がマウス精巣中でテラトー
マを形成しないことが示されていることを考慮すると（Chou et al., Cell, 135, 449-46
1(2008))、多能性細胞が常にテラトーマを形成するとは言えない。Muse細胞は、最初から
多能性マーカーの発現や分化能等において多能性細胞の特性を示すので、Muse細胞は単独
でiPS細胞になり、増殖活性が上昇し、マウス精巣中でテラトーマを形成するようになる
ことが予測される。iPSの誘導メカニズムは解明されていないが、間葉系細胞中のMuse細
胞における腫瘍性増殖性の獲得の可能性がある。
無処理ヒト皮膚線維芽細胞画分から約0.001％の効率でiPS細胞が確立できたが、これは
K. Takahashi et al., Cell 131, 861 (2007)の報告と一致する。従って、SSEA-3陽性細
胞からのiPS細胞作製効率は、無処理線維芽細胞に対して30倍高かった。このことは、iPS
細胞の形成に主にMuse細胞が寄与していることを示唆している。
免疫組織化学及びRT-PCRにより、Muse由来iPS細胞から得た胚様体は、in vitroで外胚
葉（ニューロフィラメント及びMAP-2）、中胚葉（SMA、Brachyury及びNkx2.5）、及び内
胚葉細胞（α-フェトプロテイン及びGATA-6）に分化することがわかった。さらに、免疫
不全マウス精巣にMuse由来iPS細胞を投与したところ、テラトーマの形成が観察された。
一方、Muse細胞由来胚様体様細胞塊を精巣に注射した場合、６ヶ月後においてもテラトー
マの形成は認められず、MEFを注射したコントロールと比べて大きさもそれほど大きくな
らなかった。しかし、ヒトミトコンドリア並びにSMA、α-フェトプロテイン及びニューロ
フィラメントが陽性の細胞が同定された。この結果は、Muse由来iPS細胞と異なり、元々
のMuse細胞はテラトーマを形成しないが、免疫不全マウス中で外胚葉、中胚葉及び内胚葉
に分化し得ることを示す。
Muse細胞由来胚様体様細胞塊とMuse由来iPS細胞について定量PCR（Q-PCR）を行った。
結果を図２５及び２６に示す。細胞周期調節に関連した遺伝子の発現パターンは、大きく
異なっていた。細胞周期進行に関連した遺伝子のほとんどは、Muse細胞由来胚様体様細胞
塊ではダウンレギュレートされていたが、Muse由来iPS細胞ではアップレギュレートされ
ていた。一方、Muse細胞由来胚様体様細胞塊とMuse由来iPS細胞において、多能性及び未
分化状態に関与した遺伝子の発現は同様の傾向を示した。ただし、Muse細胞由来胚様体様
細胞塊におけるNanog、Oct3/4及びSox2の発現レベルはMuse由来iPS細胞よりはるかに低か
った。Nanog遺伝子及びOct3/4遺伝子のプロモータ領域のシトシン・グアニンジヌクレオ
チド（CpG)はMuse由来iPS細胞でMuse細胞由来胚様体様細胞塊に比べてメチル化の程度は
小さかった。なお、Nanog遺伝子のプロモータ領域のCpGのメチル化はSSEA-3陰性無処理細
胞画分に比べて、Muse細胞由来胚様体様細胞塊で低かった（図２４)。この結果は、Muse
細胞とMuse由来iPS細胞の間の多能性マーカーの発現レベルの差を説明する。
本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書
にとり入れるものとする。

Claims (6)

  1. 生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞からSSEA-3の発現が陽性であることを指標に得られる、以下の性質のすべてを有する、SSEA-3陽性及びCD105陽性の多能性幹細胞を含む、損傷あるいは障害を受けた組織または器官を再生するための医薬組成物：
    (i) SSEA-3陽性；
    (ii) CD105陽性；
    (iii) テロメラーゼ活性が低いか又は無い；
    (iv) 三胚葉に分化する能力を持つ；
    (v) 腫瘍性増殖を示さない；及び
    (vi) セルフリニューアル能を持つ。
  2. 生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞からSSEA-3の発現が陽性であること及び胚様体様細胞塊の形成を指標に得られる、以下の性質のすべてを有する、請求項１記載のSSEA-3陽性及びCD105陽性の多能性幹細胞を含む、損傷あるいは障害を受けた組織または器官を再生するための医薬組成物：
    (i) SSEA-3陽性；
    (ii) CD105陽性；
    (iii) テロメラーゼ活性が低いか又は無い；
    (iv) 三胚葉に分化する能力を持つ；
    (v) 腫瘍性増殖を示さない；
    (vi) セルフリニューアル能を持つ；及び
    (vii) 胚様体様細胞塊を形成する。
  3. 多能性幹細胞がCD117陰性及びCD146陰性である、請求項１又は２に記載の多能性幹細胞を含む、損傷あるいは障害を受けた組織または器官を再生するための医薬組成物。
  4. 多能性幹細胞がCD117陰性、CD146陰性、NG2陰性、CD34陰性、vWF陰性及びCD271陰性である、請求項１又は２に記載の多能性幹細胞を含む、損傷あるいは障害を受けた組織または器官を再生するための医薬組成物。
  5. 多能性幹細胞がCD34陰性、CD117陰性、CD146陰性、CD271陰性、NG2陰性、vWF陰性、Sox10陰性、Snail陰性、Slug陰性、Tyrp1陰性及びDct陰性である、請求項１又は２に記載の多能性幹細胞を含む、損傷あるいは障害を受けた組織または器官を再生するための医薬組成物。
  6. 再生しようとする組織または器官が、骨髄、脊髄、血液、脾臓、肝臓、肺、腸管、眼、脳、免疫系、循環系、骨、結合組織、筋、心臓、血管、膵臓、中枢神経系、末梢神経系、腎臓、膀胱、皮膚、上皮付属器、乳房−乳腺、脂肪組織、並びに口、食道、膣、肛門を含む粘膜からなる群から選択される、請求項１〜５のいずれか１項に記載の損傷あるいは障害を受けた組織または器官を再生するための医薬組成物。
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