JP6153874B2 - 非侵襲的出生前倍数性呼び出しのための方法 - Google Patents
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2545/00—Reactions characterised by their quantitative nature
- C12Q2545/10—Reactions characterised by their quantitative nature the purpose being quantitative analysis
- C12Q2545/114—Reactions characterised by their quantitative nature the purpose being quantitative analysis involving a quantitation step
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
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- C12Q2600/16—Primer sets for multiplex assays
Description
本願は、2011年2月9日に出願された米国仮特許出願第61/462,972号;2011年3月2日に出願された米国仮特許出願第61/448,547号;2011年4月12日に出願された米国仮特許出願第61/516,996号;2011年5月18日に出願された米国特許出願第13/110,685号;および2011年6月23日に出願された米国仮特許出願第61/571,248号の利益を主張し、これらの特許出願のすべては、それらのすべての教示のために本明細書中に参考として援用される。
本開示は、一般に、非侵襲的出生前倍数性呼び出しのための方法に関する。
出生前診断の現行の方法では、医師および親に、成長している胎児の異常を警告することができる。出生前診断をしないと、50人に1人の乳児が重大な身体的または精神的ハンディキャップを持って生まれ、30人に1人もが先天性奇形のいくつかの形態を有する。残念ながら、標準の方法は、正確度が乏しいか、または流産のリスクを有する侵襲的な手順を伴う。母系の血中ホルモンレベルまたは超音波測定に基づく方法は非侵襲的であるが、同様に正確度が低い。羊水穿刺、絨毛膜絨毛生検および胎児の血液試料採取などの方法は正確度が高いが、侵襲的であり、著しいリスクを有する。米国では全妊娠のおよそ3%に対して羊水穿刺が実施されたが、その使用頻度は過去15年にわたって減少している。
妊娠初期に母系の血清において測定される妊娠関連血漿タンパク質A(PAPP−A)のレベルが低いことは、13トリソミー、18トリソミー、および21トリソミーを含めた胎児の染色体異常に関連し得る。さらに、妊娠初期のPAPP−Aレベルが低いことにより、胎内発育遅延(SGA)の乳児または死産を含めた有害な妊娠転帰を予測することができる。妊娠中の女性は、多くの場合、妊娠初期での血清スクリーニングを受け、これは、一般に、女性を、ホルモンであるPAPP−Aおよびベータヒト絨毛性ゴナドトロピン(ベータ−hCG)の血中レベルについて検査することを伴う。いくつかの場合には、女性は、可能性のある生理的欠陥を探すための超音波も受ける。特に、項部浮腫(nuchal translucency)(NT)測定により、胎児における異数性のリスクを示すことができる。多くの地域では、出生前スクリーニングのための標準の処置は、妊娠初期での血清スクリーニングとNT検査の組合せを包含する。
本明細書には、妊娠中の胎児における染色体の倍数性状態を決定するための方法が開示されている。本明細書に例示されている態様によると、ある実施形態では、妊娠中の胎児における染色体の倍数性状態を決定するための方法は、胎児の母親由来の母系DNAおよび胎児由来の胎児DNAを含む第1のDNAの試料を得るステップと、調製された試料が得られるようにDNAを単離することによって第1の試料を調製するステップと、染色体上の複数の多型遺伝子座における、調製された試料中のDNAを測定するステップと、調製された試料に対して行ったDNA測定から、複数の多型遺伝子座における対立遺伝子数をコンピュータで算出するステップと、それぞれが、染色体における可能性のある異なる倍数性状態に関する、複数の倍数性仮説をコンピュータで作製するステップと、各倍数性仮説について、染色体上の複数の多型遺伝子座における予測される対立遺伝子数についての同時分布モデルをコンピュータで構築するステップと、同時分布モデルおよび調製された試料において測定された対立遺伝子数を用いて、倍数性仮説のそれぞれの相対的確率(conditional probability)をコンピュータで決定するステップと、最大の確率を有する仮説に対応する倍数性状態を選択することによって胎児の倍数性状態を呼び出すステップとを含む。
本発明の好ましい実施形態において、例えば以下の項目が提供される。
(項目1)
妊娠中の胎児における染色体の倍数性状態を決定するための方法であって、
該胎児の母親由来の母系DNAおよび該胎児由来の胎児DNAを含む第1のDNAの試料を得るステップと、
調製された試料が得られるように該DNAを単離することによって該第1の試料を調製するステップと、
該染色体上の複数の多型遺伝子座における該調製された試料中の該DNAを測定するステップと、
該調製された試料に対して行った該DNA測定から、該複数の多型遺伝子座における対立遺伝子数をコンピュータで算出するステップと、
それぞれが、該染色体における可能性のある異なる倍数性状態に関する、複数の倍数性仮説をコンピュータで作製するステップと、
各倍数性仮説について、該染色体上の該複数の多型遺伝子座における予測される該対立遺伝子数についての同時分布モデルをコンピュータで構築するステップと、
該同時分布モデルおよび該調製された試料において測定された該対立遺伝子数を用いて、該倍数性仮説のそれぞれの相対的確率をコンピュータで決定するステップと、
最大の確率を有する該仮説に対応する該倍数性状態を選択することによって該胎児の該倍数性状態を呼び出すステップと
を含む方法。
(項目2)
前記第1の試料中の前記DNAが母系の血漿を起源とする、項目1に記載の方法。
(項目3)
前記第1の試料を調製する前記ステップが、前記DNAを増幅するステップをさらに含む、項目1に記載の方法。
(項目4)
前記第1の試料を調製する前記ステップが、複数の多型遺伝子座における前記第1の試料中の前記DNAを優先的に富化するステップをさらに含む、項目1に記載の方法。
(項目5)
前記複数の多型遺伝子座における前記第1の試料中の前記DNAを前記優先的に富化するステップが、
複数の環状化前プローブであって、それぞれのプローブが該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、該プローブの3’末端および5’末端が該遺伝子座の多型部位から少数の塩基で隔てられているDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、該少数が、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21〜25、26〜30、31〜60、またはそれらの組合せであるプローブを得るステップと、
該環状化前プローブと該第1の試料由来のDNAをハイブリダイズさせるステップと、
該ハイブリダイズしたプローブ末端間のギャップを、DNAポリメラーゼを用いて埋めるステップと、
該環状化前プローブを環状化するステップと、
該環状化されたプローブを増幅するステップと
を含む、項目4に記載の方法。
(項目6)
前記複数の多型遺伝子座における前記DNAを前記優先的に富化するステップが、
複数のライゲーション媒介性PCRプローブであって、それぞれのPCRプローブが該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、該PCRプローブの上流部および下流部が、該遺伝子座の多型部位から少数の塩基で隔てられているDNAの一方の鎖上のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、該少数が、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21〜25、26〜30、31〜60、またはそれらの組合せであるPCRプローブを得るステップと、
該ライゲーション媒介性PCRプローブと前記第1の試料由来の前記DNAをハイブリダイズさせるステップと、
該ライゲーション媒介性PCRプローブ末端間のギャップを、DNAポリメラーゼを用いて埋めるステップと、
該ライゲーション媒介性PCRプローブをライゲーションするステップと、
ライゲーションされた該ライゲーション媒介性PCRプローブを増幅するステップと
を含む、項目4に記載の方法。
(項目7)
前記複数の多型遺伝子座における前記DNAを前記優先的に富化するステップが、
該多型遺伝子座を標的とする複数のハイブリッド捕捉プローブを得るステップと、
該ハイブリッド捕捉プローブを、前記第1の試料中の前記DNAとハイブリダイズさせるステップと、
DNAに関する該第1の試料からハイブリダイズしていないDNAの一部または全部を物理的に除去するステップと
を含む、項目4に記載の方法。
(項目8)
前記複数のハイブリッド捕捉プローブが、前記多型部位と隣接しているがオーバーラップはしていない領域とハイブリダイズするように設計されている、項目7に記載の方法。
(項目9)
前記複数のハイブリッド捕捉プローブが、前記多型部位と隣接しているがオーバーラップはしていない領域とハイブリダイズするように設計されており、該隣接捕捉プローブの長さが、約120塩基未満、約110塩基未満、約100塩基未満、約90塩基未満、約80塩基未満、約70塩基未満、約60塩基未満、約50塩基未満、約40塩基未満、約30塩基未満、および約25塩基未満からなる群から選択することができる、項目7に記載の方法。
(項目10)
前記複数のハイブリッド捕捉プローブが、前記多型部位とオーバーラップする領域とハイブリダイズするように設計されており、該複数のハイブリッド捕捉プローブが、各多型遺伝子座に対する少なくとも2つのハイブリッド捕捉プローブを含み、各ハイブリッド捕捉プローブが、一方の多型遺伝子座において別の対立遺伝子と相補的であるように設計されている、項目7に記載の方法。
(項目11)
複数の多型遺伝子座における前記DNAを前記優先的に富化するステップが、
複数の内側のフォワードプライマーであって、それぞれのプライマーが該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、該内側のフォワードプライマーの3’末端が、前記多型部位の上流にあり少数の塩基で該多型部位から隔てられているDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、該少数が、1塩基対、2塩基対、3塩基対、4塩基対、5塩基対、6〜10塩基対、11〜15塩基対、16〜20塩基対、21〜25塩基対、26〜30塩基対または31〜60塩基対からなる群から選択されるプライマーを得るステップと、
必要に応じて、複数の内側のリバースプライマーであって、それぞれのプライマーが該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、該内側のリバースプライマーの3’末端が、該多型部位の上流にあり少数の塩基で該多型部位から隔てられているDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、該少数が、1塩基対、2塩基対、3塩基対、4塩基対、5塩基対、6〜10塩基対、11〜15塩基対、16〜20塩基対、21〜25塩基対、26〜30塩基対または31〜60塩基対からなる群から選択されるプライマーを得るステップと、
該内側のプライマーを該DNAとハイブリダイズさせるステップと、
ポリメラーゼ連鎖反応を用いて該DNAを増幅してアンプリコンを形成するステップとを含む、項目4に記載の方法。
(項目12)
複数の外側のフォワードプライマーであって、それぞれのプライマーが前記多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、前記内側のフォワードプライマーの上流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されているプライマーを得るステップと、
必要に応じて、複数の外側のリバースプライマーであって、それぞれのプライマーが該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、前記内側のリバースプライマーのすぐ下流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されているプライマーを得るステップと、
第1のプライマーを該DNAとハイブリダイズさせるステップと、
前記ポリメラーゼ連鎖反応を用いて該DNAを増幅するステップと
をさらに含む、項目11に記載の方法。
(項目13)
複数の外側のリバースプライマーであって、それぞれのプライマーが前記多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、前記内側のリバースプライマーのすぐ下流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されているプライマーを得るステップと、
必要に応じて、複数の外側のフォワードプライマーであって、それぞれのプライマーが該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、前記内側のフォワードプライマーの上流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されているプライマーを得るステップと、
前記第1のプライマーを該DNAとハイブリダイズさせるステップと、
前記ポリメラーゼ連鎖反応を用いて該DNAを増幅するステップと
をさらに含む、項目11に記載の方法。
(項目14)
前記第1の試料を調製する前記ステップが、
該第1の試料中の前記DNAにユニバーサルアダプタを付加するステップと、
該第1の試料中の前記DNAを、前記ポリメラーゼ連鎖反応を用いて増幅するステップと
をさらに含む、項目11に記載の方法。
(項目15)
増幅された前記アンプリコンの少なくとも小部分が100bp未満、90bp未満、80bp未満、70bp未満、65bp未満、60bp未満、55bp未満、50bp未満または45bp未満であり、前記小部分が10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%または99%である、項目11に記載の方法。
(項目16)
前記DNAを増幅する前記ステップが、1つまたは複数の個々の反応容積で行われ、個々の反応容積のそれぞれが、100超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーの対、200超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーの対、500超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーの対、1,000超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーの対、2,000超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーの対、5,000超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーの対、10,000超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーの対、20,000超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーの対、50,000超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーの対、または、100,000超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーの対を含有する、項目11に記載の方法。
(項目17)
前記第1の試料を調製する前記ステップが、該第1の試料を複数の部分に分割するステップであって、前記複数の多型遺伝子座のサブセットにおける各部分内の前記DNAが優先的に富化されるステップをさらに含む、項目11に記載の方法。
(項目18)
前記内側のプライマーを、望ましくないプライマー2重鎖を形成する可能性があるプライマー対を同定するステップ、および望ましくないプライマー2重鎖を形成する可能性があると同定されたプライマーの対の少なくとも1つを前記複数のプライマーから除去するステップによって選択する、項目11に記載の方法。
(項目19)
前記内側のプライマーが、前記標的の多型遺伝子座の上流または下流のいずれかとハイブリダイズするように設計された領域を含有し、必要に応じて、PCR増幅が可能になるように設計されたユニバーサルプライミング配列を含有する、項目11に記載の方法。
(項目20)
前記プライマーの少なくとも一部が、個々のプライマー分子各々について異なるランダムな領域をさらに含有する、項目11に記載の方法。
(項目21)
前記プライマーの少なくとも一部が、分子バーコードをさらに含有する、項目11に記載の方法。
(項目22)
前記胎児の一方の親または両親から遺伝子型データを得るステップをさらに含む、項目1に記載の方法。
(項目23)
前記胎児の一方の親または両親から遺伝子型データを得る前記ステップが、
該両親由来の前記DNAを調製するステップであって、前記複数の多型遺伝子座における前記DNAを優先的に富化し、調製された親のDNAを得るステップを含むステップと、
必要に応じて、該調製された親のDNAを増幅するステップと、
該複数の多型遺伝子座における該調製された試料中の該親のDNAを測定するステップと
を含む、項目22に記載の方法。
(項目24)
前記染色体上の前記複数の多型遺伝子座の前期予測される対立遺伝子数の確率についての同時分布モデルを構築する前記ステップを、前記一方の親または両親から得られた前記遺伝子データを用いて行う、項目22に記載の方法。
(項目25)
前記第1の試料を母系の血漿から単離し、前記母親から遺伝子型データを得る前記ステップを、前記調製された試料に対して行った前記DNA測定から該母系の遺伝子型データを推定するステップによって行う、項目22に記載の方法。
(項目26)
前記優先的な富化により、前記調製された試料と前記第1の試料の間に、2倍以下、1.5倍以下、1.2倍以下、1.1倍以下、1.05倍以下、1.02倍以下、1.01倍以下、1.005倍以下、1.002倍以下、1.001倍以下および1.0001倍以下からなる群から選択される係数の程度の、平均の対立遺伝子の偏りがもたらされる、項目4に記載の方法。
(項目27)
前記複数の多型遺伝子座がSNPである、項目1に記載の方法。
(項目28)
前記調製された試料中の前記DNAを測定する前記ステップを配列決定するステップによって行う、項目1に記載の方法。
(項目29)
妊娠中の胎児における染色体の倍数性状態の決定に役立つ診断ボックスであって、項目1に記載の方法における調製するステップおよび測定するステップを実行することができる診断ボックス。
(項目30)
前記対立遺伝子数がバイナリーではなく確率的なものである、項目1に記載の方法。
(項目31)
前記複数の多型遺伝子座における前記調製された試料中の前記DNAの測定値を、前記胎児がハプロタイプに関連づけられる遺伝性の1つまたは複数の疾患を有するか否かを決定するためにも用いる、項目1に記載の方法。
(項目32)
対立遺伝子数の確率についての同時分布モデルを構築する前記ステップを、染色体内の異なる場所における染色体乗換えの確率に関するデータを使用して、前記染色体上の多型対立遺伝子間の依存性をモデリングすることによって行う、項目1に記載の方法。
(項目33)
対立遺伝子数についての同時分布モデルを構築する前記ステップと各仮説の前記相対的確率を決定する前記ステップをどちらも、参照染色体を使用することを必要としない方法を用いて行う、項目1に記載の方法。
(項目34)
各仮説の前記相対的確率を決定する前記ステップが、前記調製された試料中の胎児DNAの推定される小部分を使用する、項目1に記載の方法。
(項目35)
対立遺伝子数の確率を算出するステップおよび各仮説の前記相対的確率を決定するステップにおいて使用する前記調製された試料からの前記DNA測定値が、一次遺伝子データを含む、項目1に記載の方法。
(項目36)
最大の確率を有する前記仮説に対応する前記倍数性状態を選択するステップを、最尤推定または最大事後推定を使用して行う、項目1に記載の方法。
(項目37)
前記胎児の前記倍数性状態を呼び出す前記ステップが、
前記同時分布モデルおよび前記対立遺伝子数の確率を用いて決定される前記倍数性仮説のそれぞれの前記相対的確率と、読み取り数解析、ヘテロ接合率の比較、親の遺伝子情報を使用する場合にのみ利用可能な統計量、特定の親の状況に対して正規化された遺伝子型シグナルの確率、前記第1の試料または前記調製された試料の推定される胎児の割合を用いて算出される統計量、およびそれらの組合せからなる群から選択される統計学的技法を用いて算出される該倍数性仮説のそれぞれの相対的確率とを組み合わせるステップをさらに含む、項目1に記載の方法。
(項目38)
前記呼び出された倍数性状態について信頼度推定値を算出する、項目1に記載の方法。
(項目39)
前記胎児の前記呼び出された倍数性状態に基づいて、妊娠中絶すること、または妊娠を維持することの一方から選択される臨床的措置をとるステップをさらに含む、項目1に記載の方法。
(項目40)
妊娠4週から5週の間;妊娠5週から6週の間;妊娠6週から7週の間;妊娠7週から8週の間;妊娠8週から9週の間;妊娠9週から10週の間;妊娠10週から12週の間;妊娠12週から14週の間;妊娠14週から20週の間;妊娠20週から40週の間;妊娠初期;妊娠中期;妊娠後期;またはそれらの組合せにおいて実施することができる、項目1に記載の方法。
(項目41)
項目1に記載の方法を用いて生成した、決定された妊娠中の胎児における染色体の倍数性状態を示す報告。
(項目42)
項目11に記載の方法で使用するために設計された、妊娠中の胎児における標的染色体の倍数性状態を決定するためのキットであって、
前記複数の内側のフォワードプライマーおよび、必要に応じて前記複数の内側のリバースプライマーであって、該プライマーのそれぞれが前記標的染色体上の前記多型部位のうちの1つのすぐ上流および/または下流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されているプライマーと、必要に応じてさらに別の染色体であって、該ハイブリダイズする領域が、少数の塩基によって該多型部位から隔てられており、該少数が、1、2、3、4、5、6〜10、11〜15、16〜20、21〜25、26〜30、31〜60、およびそれらの組合せからなる群から選択される染色体
とを含むキット。
(項目43)
胎児のゲノムDNAおよび母系のゲノムDNAを含む母系の組織試料において胎児の異数性の存在または不在を決定するための方法であって、
a)該母系の組織試料から、胎児のゲノムDNAと母系のゲノムDNAの混合物を得るステップと、
b)ステップa)の胎児のゲノムDNAと母系のゲノムDNAの混合物から無作為に選択されたDNA断片の大規模並行DNA配列決定を行って、該DNA断片の配列を決定するステップと、
c)ステップb)で得られた配列が属する染色体を同定するステップと、
d)ステップc)のデータを用いて、母系のゲノムDNAと胎児のゲノムDNAの該混合物中の少なくとも1つの第1の染色体の量を決定するステップであって、該少なくとも1つの第1の染色体が、該胎児において正倍数性であると推定されるステップと、
e)ステップc)のデータを用いて、母系のゲノムDNAと胎児のゲノムDNAの該混合物中の第2の染色体の量を決定するステップであって、該第2の染色体が、該胎児において異数性であることが疑われるステップと、
f)胎児DNAと母系DNAの該混合物中の胎児DNAの割合を算出するステップと、
g)該第2の標的染色体が正倍数性である場合、ステップd)の数を用いて該第2の標的染色体の量の予測される分布を算出するステップと;
h)該第2の標的染色体が異数性である場合、ステップd)の第1の数およびステップf)で算出された、胎児DNAと母系DNAの該混合物中の胎児DNAの前記割合を用いて該第2の標的染色体の量の予測される分布を算出するステップと、
i)最尤法または最大事後法を用いて、ステップe)で決定された該第2の染色体の量がステップg)で算出された該分布またはステップh)で算出された該分布のどちらの一部である可能性がより高いかを決定し、それにより、胎児の異数性の存在または不在を示すステップと
を含む方法。
ある実施形態では、本開示は、DNAの混合試料(すなわち、胎児の母親由来のDNA、および胎児由来のDNA)から測定された遺伝子型データから、および必要に応じて、母親由来の遺伝物質(genetic material)および場合によっては同様に父親由来の遺伝物質の試料から測定された遺伝子型データから、妊娠中の胎児における染色体の倍数性状態を決定するためのex vivo方法であって、該決定を、同時分布モデルを用い、親の遺伝子型データを考慮して、胎児における可能性のある異なる倍数性状態についての予測される対立遺伝子分布の集合を作製し、予測される対立遺伝子分布と、混合試料において測定された実際の対立遺伝子分布とを比較し、予測される対立遺伝子分布パターンが観察された対立遺伝子分布パターンと最も厳密に一致する倍数性状態を選択することによって行う方法を提供する。ある実施形態では、混合試料は、母系の血液または母系の血清もしくは血漿に由来する。ある実施形態では、DNAの混合試料を、複数の多型遺伝子座で優先的に富化することができる。ある実施形態では、優先的な富化は、対立遺伝子の偏りが最小限になるように行う。ある実施形態では、本開示は、複数の遺伝子座において対立遺伝子の偏りが少なくなるように優先的に富化されたDNAの組成に関する。ある実施形態では、対立遺伝子分布(複数可)を、混合試料由来のDNAについて配列決定することによって測定する。ある実施形態では、同時分布モデルにより、対立遺伝子が二項様式で分布することが仮定される。ある実施形態では、種々の供給源からの現存の組換え頻度を考慮して、例えば、International HapMap Consortiumからのデータを使用して、遺伝的に連鎖している遺伝子座について予測同時対立遺伝子分布の集合を作製する。
非侵襲的な出生前診断のプロセスは、いくつものステップを伴う。ステップのいくつかとしては、(1)胎児から遺伝物質を得るステップと、(2)混合試料中に存在する可能性がある胎児の遺伝物質をex vivoで富化するステップと、(3)遺伝物質をex vivoで増幅するステップと、(4)遺伝物質の特定の遺伝子座をex vivoで優先的に富化するステップと、(5)遺伝物質をex vivoで測定するステップと、(6)遺伝子型データを、ex vivoで、コンピュータで分析するステップとを挙げることができる。これらの6つおよび他の関連性のあるステップの実施を減少させるための方法が本明細書に記載されている。該方法のステップの少なくとも一部は、直接体には適用されない。ある実施形態では、本開示は、体から単離され、分離された組織および他の生物材料に適用される処置および診断の方法に関する。該方法のステップの少なくとも一部は、コンピュータで実行される。
本明細書に記載の方法を用いて、標的の遺伝物質が、ある量の他の遺伝物質の存在下で見いだされる、子、胎児または他の標的個体の遺伝子型の決定を補助することができる。いくつかの実施形態では、遺伝子型とは、1つまたは複数の染色体の倍数性状態を指し得、1つまたは複数の疾患に関連づけられる対立遺伝子またはそのいくつかの組合せを指し得る。本開示では、考察は、胎児DNAが母系の血液中に見いだされる場合に胎児の遺伝子の状態を決定することに焦点が当てられるが、この例は、この方法を適用することができる可能性のある状況に限定することを示していない。さらに、該方法は、標的DNAの量が非標的DNAに対していかなる割合で存在する場合にも適用可能であり、例えば、標的DNAは、存在するDNAの0.000001%から99.999999%の間のいずれを構成してもよい。さらに、非標的DNAは、関連性のある非標的個体(複数可)の一部または全部からの遺伝子データが既知である限りは、必ずしも1つの個体由来である必要はなく、さらには関連する個体由来である必要はない。ある実施形態では、本明細書に開示されている方法を用いて、胎児DNAを含有する母系の血液から胎児の遺伝子型データを決定することができる。該方法は、妊娠中の女性の子宮内に複数の胎児がいる場合、または他の混入DNA、例えば、他の既に生まれている同胞由来のDNAが試料に存在する可能性がある場合にも用いることができる。
いくつかの実施形態は、PARENTAL SUPPORT(商標)(PS)法と組み合わせて用いることができ、PARENTAL SUPPORT(商標)(PS)法の複数の実施形態は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許出願第11/603,406号(米国特許出願公開第20070184467号)、米国特許出願第12/076,348号(米国特許出願公開第20080243398号)、米国特許出願第13/110,685号、PCT出願第PCT/US09/52730号(PCT公開第WO/2010/017214号)、およびPCT出願第PCT/US10/050824号(PCT公開第WO/2011/041485号)に記載されている。PARENTAL SUPPORT(商標)は、遺伝子データを解析するために使用することができる、インフォマティクスに基づく手法である。いくつかの実施形態では、本明細書に開示されている方法は、PARENTAL SUPPORT(商標)法の一部とみなすことができる。いくつかの実施形態では、PARENTAL SUPPORT(商標)法は、標的個体の遺伝子データを高い正確度で、その個体由来の1つまたは少数の細胞の遺伝子データ、または標的個体由来のDNAおよび1つまたは複数の他の個体由来のDNAからなるDNAの混合物の遺伝子データを決定するため、詳細には、標的個体における疾患関連対立遺伝子、他の対象の対立遺伝子、および/または1つまたは複数の染色体の倍数性状態を決定するために使用することができる方法の集合である。PARENTAL SUPPORT(商標)とは、これらの方法のいずれも指し得る。PARENTAL SUPPORT(商標)は、インフォマティクスに基づく方法の例である。
一塩基多型(SNP)とは、同じ種の2つのメンバーのゲノム間で異なる可能性がある一塩基を指す。この用語の使用は、各変異体が存在する頻度に対するいかなる限定も意味するべきではない。
本開示との関連において、仮説とは、可能性のある遺伝子の状態を指す。仮説とは、可能性のある倍数性状態を指し得る。仮説とは、可能性のある対立遺伝子の状態を指し得る。仮説の集合とは、可能性のある遺伝子の状態の集合、可能性のある対立遺伝子の状態の集合、可能性のある倍数性状態の集合、またはそれらの組合せを指し得る。いくつかの実施形態では、仮説の集合は、集合からの1つの仮説が、任意の所与の個体の実際の遺伝子の状態に対応するように設計することができる。いくつかの実施形態では、仮説の集合は、あらゆる可能性のある遺伝子の状態が、集合からの少なくとも1つの仮説によって記載することができるように設計することができる。本開示のいくつかの実施形態では、方法の一態様は、どの仮説が問題の個体の実際の遺伝子の状態に対応するかを決定することである。
親の状況
親の状況とは、標的の2体の親の一方または両方についての、2つの関連性のある染色体のそれぞれの所与の対立遺伝子の遺伝子の状態を指す。ある実施形態では、親の状況とは、標的の対立遺伝子の状態を指すのではなく、親の対立遺伝子の状態を指すことに留意されたい。所与のSNPについての親の状況は、父系の2つと母系の2つの、4塩基対からなってよく、これらは互いに同じであってよい、または異なってよい。「m1m2|f1f2」と書くことが一般的であり、ここでm1およびm2は、2つの母系染色体上の所与のSNPの遺伝子の状態であり、f1およびf2は2つの父系染色体上の所与のSNPの遺伝子の状態である。いくつかの実施形態では、親の状況は、「f1f2|m1m2」と書くことができる。下付き文字の「1」および「2」は、第1の染色体および第2の染色体の所与の対立遺伝子における遺伝子型を示すことに留意されたい。どの染色体を「1」とし、どの染色体を「2」とするかの選択は任意であることにも留意されたい。
非侵襲的な出生前診断は、非侵襲的に、例えば、妊娠中の母親に対する採血によって得られる遺伝物質から胎児の遺伝子の状態を決定するために用いることができる重要な技法である。血液を分離し、血漿単離し、その後血漿DNAを単離することができる。サイズ選択を用いて、適切な長さのDNAを単離することができる。DNAを遺伝子座の集合において優先的に富化することができる。次いで、このDNAを、遺伝子型決定アレイにハイブリダイズさせ、蛍光を測定することによって、またはハイスループットシーケンサーで配列決定することによる、いくつもの手段によって測定することができる。
標的個体の倍数性状態を決定するための方法が本明細書に開示されている。標的個体は、割球、胚または胎児であってよい。本開示のいくつかの実施形態では、標的個体における1つまたは複数の染色体の倍数性状態を決定するための方法は、本文書に記載のステップのいずれか、およびそれらの組合せを包含し得る:
いくつかの実施形態では、胎児の遺伝子の状態を決定することにおいて使用する遺伝物質の供給源は、母系の血液から単離された胎児有核赤血球などの胎児の細胞であってよい。該方法は、妊娠中の母親由来の血液試料を得るステップを包含し得る。該方法は、視覚的な技法を用いて、色の特定の組合せは有核赤血球と独自に関連づけられ、色の同様の組合せは母系の血液中に存在する任意の他の細胞には関連づけられないというアイデアに基づいて胎児の赤血球を単離するステップを包含し得る。有核赤血球に関連づけられる色の組合せは、染色することによってより区別可能にすることができる核の周りのヘモグロビンの赤色、および、例えば青色に染色することができる核材料の色を含んでよい。母系の血液から細胞を単離し、それをスライドに広げ、次いで、赤色(ヘモグロビン由来)と青色(核材料由来)の両方が認められる点を同定することにより、有核赤血球の場所を同定することが可能となり得る。次いで、これらの有核赤血球を、マイクロマニピュレーターを使用して抽出し、遺伝子型決定および/または配列決定技法を用いて、これらの細胞の遺伝物質の遺伝子型の態様を測定することができる。
非侵襲的な出生前対立遺伝子呼び出しまたは倍数性呼び出しのための方法の一部としてDNAの試料を標的遺伝子座の集合において富化し、その後、配列決定する技法を使用することにより、いくつもの予想外の利点が付与され得る。本開示のいくつかの実施形態では、該方法は、インフォマティクスに基づく方法、例えば、PARENTAL SUPPORT(商標)(PS)で使用するための遺伝子データを測定するステップを包含する。実施形態のいくつかの最終の転帰は、胚または胎児のすぐに使用可能な遺伝子データである。具体化された方法の一部として、個体および/または関連する個体の遺伝子データを測定するために用いることができる多くの方法が存在する。ある実施形態では、標的の対立遺伝子の集合の濃度を富化するための方法が本明細書に開示されており、該方法は、以下のステップの1つまたは複数を含む:遺伝物質を標的化増幅するステップ、遺伝子座に特異的なオリゴヌクレオチドプローブを添加するステップ、特定のDNA鎖をライゲーションするステップ、所望のDNAの集合を単離するステップ、反応の望ましくない構成成分を除去するステップ、ハイブリダイゼーションによって特定のDNAの配列を検出するステップ、およびDNAの配列決定方法によって1つまたは複数のDNA鎖の配列を検出するステップ。いくつかの場合には、DNA鎖とは標的遺伝物質を指し得、いくつかの場合には、DNA鎖とはプライマーを指し得、いくつかの場合には、DNA鎖とは合成された配列、またはそれらの組み合わせを指し得る。これらのステップは、いくつもの異なる順序で行うことができる。分子生物学の高度な可変性を考慮すると、どの方法、およびどのステップの組み合わせが、種々の状況において上手く実施されないか、上手く実施されるか、または最も上手く実施されるかは通常明白ではない。
現行の配列決定手法を用いて、試料中の対立遺伝子の分布を推定することができる。そのような方法の1つは、ショットガン配列決定と称される、プールDNAから配列を無作為にサンプリングするステップを包含する。配列決定データにおける特定の対立遺伝子の割合は、一般には、非常に低く、単純統計量によって決定することができる。ヒトゲノムは、およそ30億の塩基対を含有する。したがって、使用した配列決定方法により100bpの読み取りが生じた場合、特定の対立遺伝子は、およそ3,000万回の配列読み取りごとに1回測定される。
本開示のいくつかの実施形態は、文献において以前に記載されている「連結逆方向プローブ」(LIP)を使用することを伴う。LIPとは、環状DNA分子を作製することを伴う技術を包含することを意味する総称であり、プローブは、標的の対立遺伝子の両側の標的のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、したがって、適切なポリメラーゼおよび/もしくはリガーゼ、および適切な条件、緩衝液および他の試薬の添加により、標的の対立遺伝子をわたるDNAの相補的な逆方向領域が完成し標的の対立遺伝子に見いだされる情報を捕捉するDNAの環状ループを作製される。LIPは、環状化前プローブ(pre−circularized probe)、環状化前プローブ(pre−circularizing probe)または環状化プローブとも称される。LIPプローブは、長さが50ヌクレオチドから500ヌクレオチドの間の直鎖DNA分子であってよく、ある実施形態では、長さが70ヌクレオチドから100ヌクレオチドの間であってよく、いくつかの実施形態では、本明細書に記載されているよりも長くてよい、または短くてよい。本開示の他の複数の実施形態は、LIP技術の異なる具体化、例えば、Padlockプローブおよび分子逆方向プローブ(MIP)を伴う。
ライゲーション媒介性PCRは、DNAの混合物における1つまたは複数の遺伝子座を増幅することによってDNAの試料を優先的に富化するために用いるPCRの方法であり、該方法は、プライマー対の集合を得るステップであって、対の各プライマーが標的特異的配列および非標的配列を含有し、標的特異的配列が、標的領域であって、1つが多型部位の上流、および1つが多型部位の下流である標的領域とアニーリングするように設計されており、該標的特異的配列が、多型部位から0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11〜20、21〜30、31〜40、41〜50、51〜100、または、100超隔てられていてよいステップと、上流のプライマーの3’末端からDNAを重合させて、それと、標的分子と相補的なヌクレオチドを有する下流のプライマーの5’末端との間の一本鎖領域を充填するステップと、上流のプライマーの最後の重合した塩基を、近接する下流のプライマーの5’塩基とライゲーションさせるステップと、重合し、ライゲーションした分子のみを、上流のプライマーの5’末端および下流のプライマーの3’末端を含有する非標的配列を使用して増幅するステップとを含む。別個の標的に対するプライマー対を同じ反応において混合することができる。非標的配列は、ユニバーサル配列としての機能を果たし、したがって、首尾よく重合し、ライゲーションした全てのプライマー対を、増幅プライマーの単一の対を用いて増幅することができる。
標的ゲノムにおける特異的な配列の集合を優先的に富化することは、いくつものやり方で実現することができる。本文書の他の箇所に、特異的な配列の集合を標的とするためにLIPをどのように用いることができるかについての記載があるが、これらの適用の全てにおいて、他の標的化および/または優先的な富化方法を、同じ目的のために同等に良好に用いることができる。別の標的化方法の1つの例はハイブリダイゼーション手法による捕捉である。商業的なハイブリダイゼーション技術による捕捉のいくつかの例としては、AGILENTのSURE SELECT、およびILLUMINAのTRUSEQが挙げられる。ハイブリダイゼーションによる捕捉では、所望の標的の配列と相補的またはほぼ相補的なオリゴヌクレオチドの集合をDNAの混合物とハイブリダイズさせ、次いで混合物から物理的に分離することが可能になる。所望の配列が標的化オリゴヌクレオチドとハイブリダイズしたら、標的化オリゴヌクレオチドを物理的に取り出す作用により、標的の配列も取り出されることになる。ハイブリダイズしたオリゴを取り出したら、それらを、それらの融解温度を上回るまで加熱し、増幅することができる。標的化オリゴヌクレオチドを物理的に取り出すためのいくつかのやり方は、標的化オリゴを固体支持体、例えば磁気ビーズまたはチップと共有結合させることによる。標的化オリゴヌクレオチドを物理的に取り出すための別のやり方は、標的化オリゴヌクレオチドを、別の分子部分に対する強力な親和性を有する分子部分と共有結合させることによる。そのような分子対の例は、例えばSURE SELECTにおいて使用されるビオチンおよびストレプトアビジンである。したがって、その標的の配列をビオチン分子に共有結合的に付着させ、ハイブリダイゼーション後に、ストレプトアビジンを付加した固体支持体を使用して、標的の配列がハイブリダイズしたビオチン化オリゴヌクレオチドをプルダウンすることができる。
いくつかの実施形態では、PCRを用いて、ゲノムの特定の場所を標的とすることができる。血漿試料において、元のDNAは高度に断片化されている(一般には、500bp未満、平均長200bp未満)。PCRでは、増幅を可能にするために、フォワードプライマーとリバースプライマーの両方が同じ断片とアニーリングしなければならない。したがって、断片が短い場合、PCRアッセイでは、同様に比較的短い領域を増幅しなければならない。MIPSのように、多型の位置がポリメラーゼ結合部位と近すぎると、異なる対立遺伝子からの増幅に偏りが生じる。現在、SNPを含有するものなどの多型領域を標的とするPCRプライマーは、一般には、プライマーの3’末端が1つまたは複数の多型の塩基のすぐ隣の塩基とハイブリダイズするように設計される。本開示のある実施形態では、フォワードPCRプライマーおよびリバースPCRプライマーの両方の3’末端が、標的の対立遺伝子の変異の位置(多型部位)と1つまたは少数の位置だけ離れている塩基とハイブリダイズするように設計する。多型部位(SNPまたは他の種類のもの)と、プライマーの3’末端がハイブリダイズするように設計された塩基との間の塩基の数は、1塩基であってよい、2塩基であってよい、3塩基であってよい、4塩基であってよい、5塩基であってよい、6塩基であってよい、7〜10塩基であってよい、11〜15塩基であってよい、または、16〜20塩基であってよい。フォワードプライマーおよびリバースプライマーは、多型部位から離れた異なる数の塩基とハイブリダイズするように設計することができる。
本明細書には、血漿から得られたゲノムDNA由来の100〜数万をも超える標的配列(例えば、SNP遺伝子座)の標的化増幅を可能にする方法が開示されている。増幅された試料は、プライマー二量体産物を比較的含まず、標的遺伝子座における対立遺伝子の偏りが少ない。増幅の間または増幅後に、産物に配列決定適合性アダプタを付加する場合、これらの産物の分析を配列決定によって実施することができる。
従来のPCRアッセイ設計により、明確な胎児の分子が著しく損失するが、この損失は、mini−PCRアッセイと称される非常に短いPCRアッセイを設計することによって著しく低下させることができる。母系の血清中の胎児のcfDNAは高度に断片化されており、断片サイズはほぼガウス様式で分布しており、平均が160bpであり、標準偏差が15bpであり、最小サイズが約100bpであり、最大サイズが約220bpである。標的の多型に関する断片の開始位置および終了位置の分布は、必ずしもランダムではないが、個々の標的の間で、および集合的に全ての標的の間で広範に変動し、1つの特定の標的遺伝子座の多型部位は、その遺伝子座を起源とする種々の断片の中で開始から終了までの任意の位置を占有し得る。mini−PCRという用語は、さらなる制限または限定なく、通常のPCRを等しく良好に指し得ることに留意されたい。
高度多重PCRにより、多くの場合、プライマー二量体形成などの非生産的な副反応がもたらす産物DNAが非常に高い割合で産生され得る。ある実施形態では、非生産的な副反応を引き起こす可能性が最も高い特定のプライマーを、プライマーライブラリーから除去して、ゲノムにマッピングされる増幅されたDNAを高い割合でもたらすプライマーライブラリーを得ることができる。問題のあるプライマー、すなわち、特に二量体を安定させる可能性があるプライマーを除去するステップにより、予想外に、その後の配列決定による分析のための非常に高いPCR多重化レベルが可能になった。プライマー二量体および/または他の悪影響を及ぼす産物によって性能が著しく低下する配列決定などの系では、他に記載されている多重化よりも10倍超、50倍超、および100倍超高度な多重化が実現された。これは、過剰なプライマー二量体が感知できるほど結果に影響を及ぼさないプローブに基づく検出方法、例えば、マイクロアレイ、TaqMan、PCRとは対照的であることに留意されたい。当技術分野における一般的な考えでは、配列決定するための多重化PCRは、同じウェルでは約100アッセイに限られることにも留意されたい。例えば、FluidigmおよびRain Danceは、1つの試料について並行した反応で48または1000のPCRアッセイを実施するためのプラットフォームを提供する。
PCRを行う場合に可能である多くのワークフローが存在し、本明細書に開示されている方法に典型的ないくつかのワークフローが記載されている。本明細書において概説されているステップは、他の可能性のあるステップを排除することを意図しておらず、かつ、方法が適正に機能するために本明細書に記載のステップいずれかが必要であることも意味しない。多数のパラメータの変形または他の改変が文献において公知であり、本発明の核心に影響を及ぼすことなく行うことができる。1つの特定の一般的なワークフローが下に示され、その後にいくつもの可能性のある変形物(variant)が続く。変形物とは、一般には、可能性のある二次PCR反応、例えば、行うことができる異なる種類のネスティング(ステップ3)を指す。変形物は、本明細書に明確に記載されているものと違う時間において、または異なる順序で行うことができることに留意することが重要である。
直接多重mini−PCR:タグを付けたプライマーを用いた複数の標的配列の特異的標的増幅(STA)が図1に示されている。101は、Xに対象の多型遺伝子座を有する二本鎖DNAを示す。102は、ユニバーサル増幅のためにライゲーションアダプタを付加した二本鎖DNAを示す。103は、PCRプライマーがハイブリダイズした、ユニバーサル増幅された一本鎖DNAを示す。104は、最終のPCR産物を示す。いくつかの実施形態では、STAは、100超、200超、500超、1,000超、2,000超、5,000超、10,000超、20,000超、50,000超、100,000超、または200,000超の標的に対して行うことができる。その後の反応において、タグ特異的プライマーにより全ての標的配列を増幅し、サンプリングインデックスを含めた、配列決定するために必要な全ての配列を含むタグを伸長する。ある実施形態では、プライマーにタグ付けしなくてよい、または特定のプライマーのみにタグを付けてよい。配列決定アダプタは、従来のアダプタライゲーションによって付加することができる。ある実施形態では、最初のプライマーはタグを担持してよい。
異なる程度のネスティング、および異なる程度の多重化を伴って増幅を実施するための多くのやり方が存在する。図9では、フローチャートが、可能性のあるワークフローのいくつかと共に示されている。10,000プレックスPCRの使用は単なる例であり、これらのフローチャートは他の多重化の程度に対しても同等に良好に機能することに留意されたい。
例えば、配列決定するためのライブラリーを作出するためにユニバーサルタグを付けたアダプタを付加する場合、アダプタをライゲーションするためのいくつものやり方が存在する。1つのやり方は、試料DNAを平滑末端化し、A−テーリングを実施し、T−オーバーハングを有するアダプタとライゲーションすることである。アダプタをライゲーションするための、いくつもの他のやり方が存在する。ライゲーションすることができるアダプタもいくつも存在する。例えば、DNAの2つの鎖からなり、一方の鎖が二本鎖領域、およびフォワードプライマー領域によって指定される領域を有し、他方の鎖が第1の鎖上の二本鎖領域と相補的な二本鎖領域、およびリバースプライマーを伴う領域によって指定されるY−アダプタを使用することができる。アニーリングする場合、二本鎖領域は、Aオーバーハングを有する二本鎖DNAとライゲーションするために、T−オーバーハングを含有してよい。
所与の多型遺伝子座に存在する対立遺伝子を決定するために配列決定を用いる場合、配列読み取りは、一般には、プライマー結合部位(a)の上流で開始され、次いで、多型部位(X)が読まれる。タグは一般には、図11の左側に示されている通り配置される。101は、対象の多型遺伝子座「X」およびタグ「b」が付加されたプライマー「a」を有する一本鎖標的DNAを指す。非特異的なハイブリダイゼーションを回避するために、プライマー結合部位(「a」と相補的な標的DNAの領域)は、一般には、18〜30bpの長さである。配列タグ「b」は、一般には約20bpであり、理論上は、これらは約15bpより長い任意の長さであってよいが、多くの人々は配列決定プラットフォームの企業から販売されているプライマー配列を使用する。「a」と「X」の間の距離「d」は、対立遺伝子の偏りを回避するために少なくとも2bpであってよい。多重PCR増幅を、過剰なプライマー間相互作用を回避するために慎重なプライマーの設計が必要である、本明細書に開示されている方法または他の方法を用いて実施する場合、許容できる「a」と「X」の間の距離「d」のウィンドウは、相当に変動し得る:2bp〜10bp、2bp〜20bp、2bp〜30bpまたは、さらには2bp〜30bp超。したがって、図11の左側に示されているプライマーの配置を用いる場合、配列読み取りは、多型遺伝子座を測定するために十分に長い読み取りを得るために、最小の40bpでなければならず、また、「a」および「d」の長さに応じて配列読み取りは60bpまたは75bpまでが必要になる場合がある。通常、配列読み取りが長いほど、所与の数の読み取りについて配列決定するための費用および時間が増し、したがって、必要な読み取りの長さを最小化することにより、時間と金の両方を節約することができる。さらに、平均で、読み取りの初期の塩基の読み取りは、読み取り後期の読み取りよりも正確な読み取りであるので、必要な配列読み取りの長さを減らすことにより、多型領域の測定の正確度を上げることもできる。
断片化されたDNAに伴う1つの問題は、その長さが短いので、多型がDNA鎖の末端の近くにある見込みが長い鎖よりも高いことである(例えば、101、図10)。多型をPCRによって捕捉するためには、多型の両側に適切な長さのプライマー結合部位が必要であるので、プライマーと標的の結合部位の間のオーバーラップが不十分であることに起因して、標的の多型を有するかなりの数のDNAの鎖が捕捉し損なわれる。ある実施形態では、標的DNA101にはライゲーションアダプタ102を付加することができ、標的プライマー103は、設計された結合領域(a)の上流に付加したライゲーションアダプタタグ(lt)と相補的な領域(cr)を有し得る(図13参照);したがって、結合領域(aと相補的な101の領域)が一般にハイブリダイゼーションのために必要な18bpよりも短い場合には、ライブラリータグと相補的なプライマーの領域(cr)により、PCRが進行することができるところまで結合エネルギーを増大させることができる。より短い結合領域に起因して失われる任意の特異性は、適切に長い標的結合領域を有する他のPCRプライマーによって補うことができることに留意されたい。この実施形態は、直接PCRまたは本明細書に記載の他の方法のいずれか、例えば、ネステッドPCR、セミネステッドPCR、ヘミネステッドPCR、片側ネステッドまたはセミネステッドまたはヘミネステッドPCRまたは他のPCRプロトコールと組み合わせて用いることができることに留意されたい。
ある実施形態では、本開示は、本開示に記載の方法のいずれかを部分的にまたは完全に実行することができる診断ボックスを含む。ある実施形態では、診断ボックスは、診察室、病院の検査室または患者をケアする場所に合理的に近い任意の適切な場所に置かれてよい。ボックスは、方法全体を完全に自動化された様式で実行することを可能にし得る、またはボックスは、技師が手動で完了するための、1つまたはいくつものステップを必要とする場合がある。ある実施形態では、ボックスは、少なくとも母系の血漿について測定された遺伝子型データを解析することを可能にし得る。ある実施形態では、ボックスは、診断ボックスで測定された遺伝子型データを、次いで遺伝子型データを解析し、場合によっては報告の作製も行う外部の計算設備に伝達する手段と連結することができる。診断ボックスは、水性試料または液体試料を1つの容器から別の容器に移すことができるロボットユニットを含んでよい。診断ボックスは、固体と液体の両方のいくつもの試薬を含んでよい。診断ボックスは、ハイスループットシーケンサーを含んでよい。診断ボックスは、コンピュータを含んでよい。
いくつかの実施形態では、本開示に記載の方法を実現するために設計された複数のプライマーを含むキットを処方することができる。プライマーは、本明細書に開示されている外側のフォワードプライマーおよびリバースプライマー、内側のフォワードプライマーおよびリバースプライマーであってよく、プライマーの設計のセクションに開示されている通り、キット内の他のプライマーに対する結合親和性が低いように設計されたプライマーであってよく、関連するセクションに記載のとおりハイブリッド捕捉プローブまたは環状化前プローブであるかまたはそのいくつかの組合せであってよい。ある実施形態では、本明細書に開示されている方法で使用するために設計された、妊娠中の胎児における標的染色体の倍数性状態を決定するためのキットであって、複数の内側のフォワードプライマー、および必要に応じて複数の内側のリバースプライマー、および必要に応じて、外側のフォワードプライマーおよび外側のリバースプライマーであって、該プライマーのそれぞれが、標的染色体および必要に応じて、さらに別の染色体上の多型部位のうちの1つのすぐ上流および/または下流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されているプライマー、を含むキットを処方することができる。ある実施形態では、プライマーキットは、本文書の他の箇所に記載されている診断ボックスと組み合わせて用いることができる。
胎児に関するゲノムの情報、例えば、胎児の倍数性状態を決定するために、胎児の血液と母系の血液の混合物について測定された配列決定データに対してインフォマティクス分析を実施する場合、対立遺伝子の集合における対立遺伝子分布を測定することが有利であり得る。残念ながら母系の血液試料の血漿において見いだされるDNA混合物から胎児の倍数性状態を決定することを試みる場合などの多くの場合、利用可能なDNAの量は、混合物において優良な忠実度で対立遺伝子分布を直接測定するためには十分でない。これらの場合には、DNA混合物を増幅することにより、所望の対立遺伝子分布を優良な忠実度で測定することができる十分な数のDNA分子がもたらされる。しかし、配列決定するためのDNAの増幅に一般に用いられる増幅の現行の方法は、多くの場合、非常に偏りがある、つまり、多型遺伝子座の両方の対立遺伝子が同じ量で増幅されない。偏りのある増幅の結果、元の混合物における対立遺伝子分布とかなり異なる対立遺伝子分布がもたらされ得る。ほとんどの目的のためには、多型遺伝子座に存在する対立遺伝子の相対的な量を非常に正確に測定することは必要とされない。対照的に、本開示のある実施形態では、多型対立遺伝子を特異的に富化し、対立遺伝子の比を保存する増幅または富化方法は有利である。
生物学的な現象または医学的状態の存在または不在を検出するための当技術分野で公知の大多数の方法は、状態と相関するメトリックを測定し、メトリックが所与の閾値の一方の側にあれば、その状態が存在し、メトリックが閾値の他方の側にあれば、その状態は存在しないという単一仮説棄却検定を用いることを包含する。単一仮説棄却検定では、帰無仮説と対立仮説の間の決定を行う際に帰無分布を調べるだけである。対立分布を考慮に入れなければ、観察されたデータを考慮して各仮説の尤度を推定することはできず、したがって、呼び出しに対する信頼度を算出することができない。したがって、単一仮説棄却検定を用いて、特定の場合と関連する信頼度についての感受性を伴わずにyesまたはnoの答えを得る。
本明細書には、配列データを考慮して胎児の倍数性状態を決定するための方法が記載されている。いくつかの実施形態では、この配列データは、ハイスループットシーケンサーで測定することができる。いくつかの実施形態では、配列データは、母系の血液から単離された浮動性DNAを起源とするDNAについて測定することができ、ここで、浮動性DNAは、いくらかの母体起源のDNA、およびいくらかの胎児/胎盤起源のDNAを含む。このセクションでは、分析された混合物中の胎児DNAの割合は未知であり、データから推定されると仮定して胎児の倍数性状態を決定する本開示の一実施形態が記載される。混合物中の胎児DNAの割合(「胎児の割合」)または胎児DNAの百分率を別の方法によって測定することができ、また、それが胎児の倍数性状態の決定において既知であると仮定される実施形態も記載される。いくつかの実施形態では、胎児DNAと母系DNAの混合物である母系の血液試料自体に対して行った遺伝子型決定測定値のみを使用して胎児の割合を算出することができる。いくつかの実施形態では、測定されたか、または別の方法で既知である母親の遺伝子型および/または測定されたか、または別の方法で既知である父親の遺伝子型を用いてその割合を算出することもできる。別の実施形態では、胎児の倍数性状態は、単に、問題の染色体について算出された胎児DNAの割合に基づいて、ダイソミーであると仮定される参照染色体について算出された胎児DNAの割合と比較して決定することができる。
・NR個の浮動性DNA配列測定値の集合S=(s1,…,sNR)。この方法では、SNP測定値を利用するので、非多型の遺伝子座に対応する配列データは全て無視することができる。簡易型では、各SNPに対して(A,B)計数を得、AおよびBが、所与の遺伝子座に存在する2つの対立遺伝子に対応する場合、SはS=((a1,b1),…,(aN,bN))と書くことができ、式中、aiはSNP i上のA計数であり、biはSNP i上のB計数であり、Σi=1:N(ai+bi)=NRである、および
・以下からなる親のデータ
○SNPマイクロアレイまたは他の強度に基づく遺伝子型決定プラットフォームからの遺伝子型:母親M=(m1,…,mN)、父親F=(f1,…,fN)、mi,fi∈(AA,AB,BB)および/または
○配列データ測定値:NRM個の母親の測定値SM=(sm1,…,smnrm)、NRF個の父親測定値SF=(sf1,…,sfnrf)。上記の単純化と同様、各SNPについて(A,B)計数が得られる場合、SM=((am1,bm1),…,(amN,bmN))、SF=((af1,bf1),…,(afN,bfN))。
・モノソミー:
○母系H10(母親由来の1つのコピー)
○父系H01(父親由来の1つのコピー)
・ダイソミー:H11(母親および父親それぞれにつき1つのコピー)
・単純なトリソミー、乗換えは考慮しない:
○母系:H21_一致(母親由来の2つの同一のコピー、父親由来の1つのコピー)、H21_不一致(母親由来の両方のコピー、父親由来の1つのコピー)
○父系:H12_一致(母親由来の1つのコピー、父親由来の2つの同一のコピー)、H12_不一致(母親由来の1つのコピー、父親由来の両方のコピー)
・複合トリソミー、乗換えを考慮する(同時分布モデルを用いる):
○母系H21(母親由来の2つのコピー、父親由来の1つのコピー)、
○父系H12(母親由来の1つのコピー、父親由来の2つのコピー)
他の実施形態では、他の倍数性状態、例えば、零染色体性(H00)、片親性ダイソミー(H20およびH02)、およびテトラソミー(H04、H13、H22、H31およびH40)を考慮することができる。
ある実施形態では、単純仮説について、以下の通りLIK(D|H)を決定することができる。単純仮説Hについて、染色体全体についての仮説Hの対数尤度LIK(H)を、既知のまたは導かれた子の割合cfを仮定して、個々のSNPの対数尤度の合計として算出することができる。ある実施形態では、データからcfを導くことが可能である。
p(AA|pAi)=(pAi)2,p(AB|pAi)=2(pAi)*(1−pAi),p(BB|pAi)=(1−pAi)2
父親の遺伝子型の確率、p(f|i)は同様に決定することができる。
P(D|m,f,c,H,cf,i)=P(SM|m,i)P(M|m,i)P(SF|f,i)P(F|f,i)P(S|m,c,H、cf,i)
母親のSNPアレイデータの尤度:SNPアレイ遺伝子型が正確であると仮定して、真の遺伝子型mと比較した、SNP iにおける母親のSNPアレイ遺伝子型データの確率miは、単に、
P(S|m,c,H,cf,i)=P(S|μ(m,c,cf,H),i)
である。
P(S|μ(m,c,cf,H),i)=Px(ai)
式中、X〜Binom(p(A),ai+bi)、p(A)=μ(m,c,cf,H)。正確なアラインメントおよびSNP当たりの(A,B)計数が未知である、より複雑な場合には、P(S|μ(m,c,cf,H),i)は積分した二項式の組合せである。
いくつかの実施形態では、方法は、各倍数性仮説について、染色体上の複数の多型遺伝子座における予測される対立遺伝子数についての同時分布モデルを構築することを包含し、そのような目的を実現するための1つの方法がここに記載されている。多くの場合、トリソミーは、通常、乗換えに起因して、純粋に一致または不一致ではなく、したがって、このセクションでは、可能性のある乗換えを考慮に入れて、一致トリソミーと不一致トリソミーが組み合わされた複合仮説H21(母系トリソミー)およびH12(父系トリソミー)についての結果が導かれる。
SNP1について、i=1、LIK(D|E,1:1)=LIK(D|E,1)。
およびi=3:Nについて同様である。
最も可能性が高い子の割合(cf*)は、cf*=argmaxcfLIK(cf)として導かれる。
親のSNPアレイデータドロップアウト:母親のゲノムのデータMについて、ドロップアウト後の遺伝子型をmdとすると、
P(SM|m,i)=PX|m(ami)、ここで、X|m〜Binom(pm(A),ami+bmi)。
X|m〜BetaBinom(pm(A),ami+bmi,s)。
P(S|m,c,cf,H,i)=Px(ai)
式中、X〜Binom(p(A),ai+bi)、p(A)=μ(m,c,cf,H)。
P(SM|m,i)=PX|m(ami)、X|m〜BetaBinom(pm(A)+wi,ami+bmi,s)、
浮動性DNA配列データ確率推定値:
P(S|m,c,cf,H,i)=PX(ai)、X〜BetaBinom(p(A)+wi,ai+bi,s)。
(1)母系DNAと胎児DNAの混合物を含む第1の試料は、サイズ=N0分子、通常、1,000〜40,000の範囲、p=真の%refの元のDNAの量を含有すると仮定する。
X3〜BetaBinomial(L(F(p,b),pr,pg)、N*H(p,b))
式中、p=参照DNAの真の量であり、b=SNP当たりの偏りであり、上記のように、pgは正確な読み取りの確率であり、prは、上記の通り、悪い読み取りの場合、不正確に読み取られたが、思いがけなく正確な対立遺伝子に見える読み取りの確率であり:
F(p,b)=peb/(peb+(1−p))、H(p,b)=(ebp+(1−p))2/eb、L(p,pr,pg)=p*pg+pr*(1−pg)である。
血漿中に存在する予測される対立遺伝子の比がrである(母系の遺伝子型および胎児の遺伝子型に基づいて)単一のSNPを考慮に入れる。予測される対立遺伝子の比は、母系DNAと胎児DNAの組合せにおいて、予測される対立遺伝子Aの割合と定義される。母系の遺伝子型gmおよび子の遺伝子型gcについて、予測される対立遺伝子の比は、遺伝子型が同様に対立遺伝子の比で示されると仮定して、方程式1によって示される。
r=fgc+(1−f)gm(1)
SNPにおける観察は、存在する各対立遺伝子でマッピングされた読み取りの数、naおよびnbからなり、合計して読み取りの深さdになる。閾値が既にマッピング確率およびphredスコアに適用されており、したがって、マッピングおよび対立遺伝子の観察を正確であるとみなすことができると仮定する。phredスコアとは、特定の塩基における特定の測定値が誤りである確率に関する数値尺度である。ある実施形態では、塩基を配列決定によって測定した場合、phredスコアは、呼び出された塩基に対応する色素の強度と他の塩基の色素の強度の比から算出することができる。尤度を観察するための最も単純なモデルは、d読み取りのそれぞれが、対立遺伝子の比rを有する大規模なプールからそれぞれ独立に抜き取られたと仮定する二項分布である。方程式2によりこのモデルが説明される。
F(a,b,gc,gm,f)=P(na=a,nb=b|gc,gm,f)=P(na=a,nb=b|r(gc,gm,f))(3)
ある実施形態では、子の割合を以下の通り決定することができる。出生前検査のための胎児の割合fの最尤推定値は、父系の情報を使用することなく導くことができる。これは、父系の遺伝子データが入手不可能である場合、例えば、記録の父親が実際には胎児の遺伝学的父親ではない場合に関連性があり得る。胎児の割合は、母系の遺伝子型が0または1である場合にSNPの集合から推定し、その結果、可能性のある胎児の遺伝子型2つのみの集合がもたらされる。S0を、母系の遺伝子型が0であるSNPの集合と定義し、S1を、母系の遺伝子型が1であるSNPの集合と定義する。S0における可能性のある胎児の遺伝子型は0および0.5であり、可能性のある対立遺伝子の比の集合R0(f)={0,f/2}がもたらされる。同様に、R1(f)={1−f/2,1}である。この方法は、母系の遺伝子型が0.5であるSNPを含むように自明に拡張され得るが、これらのSNPは、可能性のある対立遺伝子の比のより大きな集合に起因して情報価値が低い。
Gm、Gc 真の母系の遺伝子型および子の遺伝子型
Gaf、Gtf 父親とされる人の真の遺伝子型および真の父親の真の遺伝子型
G(gc,gm,gtf)=P(Gc=gc|Gm=gm,Gtf=gtf) 遺伝形質確率
P(g)=P(Gtf=g) 特定のSNPにおける遺伝子型gの母集団頻度
各SNPにおける観察は血漿対立遺伝子の比に対して独立して条件づけられると仮定して、父系性仮説の尤度はSNPにおける尤度の積である。以下の方程式により、単一のSNPについての尤度が導かれる。方程式8は、任意の仮説hの尤度についての一般的な表現であり、次いで、HtおよびHfの特定の場合に分解される。
母系の血清中に含有される浮動性DNAを測定することによって、または任意の混合試料中の遺伝子型の材料を測定することによって胎児の倍数性状態を決定することは、非自明の作業である。いくつもの方法であって、例えば、推測が、胎児が特定の染色体においてトリソミーである場合は、母系の血液中に見いだされるその染色体由来の全体的なDNAの量が参照染色体に対して上昇するというものである読み取り数解析を実施する方法が存在する。そのような胎児においてトリソミーを検出するための1つのやり方は、各染色体について予測されるDNAの量を、例えば、所与の染色体に対応する分析集合内のSNPの数に従って、または染色体の独自にマッピング可能な部分の数に従って正規化することである。測定値が正規化されたら、特定の閾値を超えるDNAの量が測定された任意の染色体をトリソミーであると決定する。この手法は、Fanら PNAS、2008年;105巻(42号);16266〜16271頁に記載されており、Chiuら BMJ 2011年;342巻:c7401頁にも記載されている。Chiuらの論文では、正規化は、以下の通りZスコアを算出することによって実現された:
検査例における第21染色体の百分率についてのZスコア=((検査例における第21染色体の百分率)−(参照対照における第21染色体の百分率の平均))/(参照対照における第21染色体の百分率の標準偏差)。
ある実施形態では、本明細書に開示されている方法では、多型遺伝子座の各対立遺伝子の独立した観察の数の定量的尺度を利用し、ここで、これには対立遺伝子の比を算出するステップは包含されない。これは、遺伝子座の2つの対立遺伝子の比に関する情報をもたらすが、いずれかの対立遺伝子の独立した観察の数を定量化しない、一部のマイクロアレイに基づく方法などの方法とは異なる。当技術分野で公知のいくつかの方法では、独立した観察の数に関する定量的情報がもたらされ得るが、倍数性の決定をもたらす算出には対立遺伝子の比のみを利用し、定量的情報は利用しない。独立した観察の数に関する情報を保持することの重要性を例示するために、2つの対立遺伝子、AおよびBを有する試料の遺伝子座を考慮に入れる。第1の実験では20の対立遺伝子Aおよび20の対立遺伝子Bを観察し、第2の実験では200の対立遺伝子Aおよび200の対立遺伝子Bを観察する。どちらの実験でも比(A/(A+B))は0.5と等しいが、第2の実験は、第1の実験よりも対立遺伝子AまたはBの頻度の確実性に関するより多くの情報を伝える。当該方法では、対立遺伝子の比を利用するのではなく、定量的データを使用して、各多型遺伝子座における最も可能性が高い対立遺伝子頻度をより正確にモデリングする。
H*=argmaxHLIK(D|H)*priorprob(H)。
LIK(D|H)=LIK(D|H,cfr*,N*)
か、または、
(b)この仮定および参照染色体のデータに基づいて、子の割合およびノイズレベルの分布を推定する。詳細には、cfrおよびNについてただ1つの値に固定しないが、確率p(cfr,N)を可能性のあるcfr、N値の広い範囲に割り当てる:
p(cfr,N)〜LIK(D(ref.chrom)|H11,cfr,N)*priorprob(cfr,N)
式中、priorprob(cfr,N)が特定の子の割合およびノイズレベルの事前確率であり、以前の知見および実験によって決定される。所望であれば、単にcfr,Nの範囲にわたって一様にする。次いで、
上記のどちらの方法も優良な結果をもたらす。
いくつかの実施形態では、仮説の対数尤度をSNPごとに決定することができる。特定のSNP iについて、胎児の倍数性についての仮説Hおよびパーセント胎児DNA cfを仮定すると、観察されたデータDの対数尤度は、:
配列の長さの分布は母系DNAと胎児DNAで異なり、胎児の方が一般に短いことが報告されている。本開示のある実施形態では、以前の知見を経験的なデータの形態で用い、母親のDNA(P(X|母系))と胎児DNA(P(X|胎児))の両方の予測される長さの事前分布を構築することが可能である。長さxの新しい未確認のDNA配列を考慮すると、母系または胎児のいずれかを考慮したxの事前尤度に基づいて、DNAの所与の配列が母系DNAまたは胎児DNAのいずれかである確率を定めることが可能である。詳細には、P(x|母系)>P(x|胎児)である場合は、DNA配列を母系に分類することができ、P(x|母系)=P(x|母系)/[(P(x|母系)+P(x|胎児)]であり、p(x|母系)<p(x|胎児)である場合は、DNA配列を胎児に分類することができ、P(x|胎児)=P(x|胎児)/[(P(x|母系)+P(x|胎児)]である。本開示のある実施形態では、その試料に対して特異的である母系の配列の長さおよび胎児の配列の長さの分布を、高い確率で母系または胎児に割り当てることができる配列を考慮に入れることによって決定することができ、次いで、その試料に特異的な分布を、その試料についての予測されるサイズ分布として用いることができる。
診断薬に関する多くの臨床試験、例えば、Chiuら BMJ 2011年:342巻:c7401頁では、いくつものパラメータを用いるプロトコールを設定し、次いで、試験における患者のそれぞれに対して同じパラメータを用いて同じプロトコールを実行する。遺伝物質を測定するための方法として配列決定を用いて母親が妊娠中の胎児の倍数性の状態を決定する場合には、1つの関係するパラメータは読み取りの数である。読み取りの数とは、実際の読み取りの数、意図された読み取りの数、シーケンサーの分割レーン、完全なレーンまたは完全なフローセルを指し得る。これらの試験では、読み取りの数は、一般には、全てまたはほぼ全ての試料が正確度の所望のレベルを実現することを確実にするレベルで設定する。配列決定は、現在のところ費用のかかる技術であり、マッピング可能な100万の読み取り5回当たりおよそ$200の費用がかかり、一方価格が下がると、同様のレベルの正確度で作動するが読み取りが少ない配列決定に基づく診断を可能にする任意の方法により、かなりの量の金が必ず節約される。
母系の血液中に見いだされる胎児DNAにおいて測定された胎児の遺伝子情報を使用してNPDを実現できるいくつもの方法が存在する。これらの方法のいくつかは、SNPアレイを使用して胎児DNAの測定を行うことを包含し、いくつかの方法は非標的化配列決定を包含し、いくつかの方法は標的化配列決定を包含する。標的化配列決定ではSNPを標的とすることができ、STRを標的とすることができ、他の多型遺伝子座を標的とすることができ、非多型の遺伝子座またはそのいくつかの組み合わせを標的とすることができる。これらの方法のいくつかは、測定を行う機械のセンサーによってもたらされる強度データから対立遺伝子の同一性を呼び出す、商業的なまたは専有の対立遺伝子呼び出し元を使用することを含めてよい。例えば、ILLUMINA INFINIUMシステムまたはAFFYMETRIX GENECHIPマイクロアレイシステムは、DNAの相補的なセグメントとハイブリダイズすることができるDNA配列を付着させたビーズまたはマイクロチップを含み、ハイブリダイゼーションすると、センサー分子の蛍光性が変化し、それを検出することができる。配列決定方法、例えば、ILLUMINA SOLEXA GENOME SEQUENCERまたはABI SOLID GENOME SEQUENCERもあり、これは、DNAの断片の遺伝子配列について配列決定し、配列決定される鎖と相補的なDNAの鎖が伸長すると、伸長したヌクレオチドの同一性が、一般には、相補的なヌクレオチドに付加した蛍光性タグまたは放射性タグを介して検出される。これらの方法の全てにおいて、遺伝子型データまたは配列決定データは、一般には、蛍光もしくは他のシグナルまたはそれがないことに基づいて決定される。これらのシステムは、一般には、蛍光または他の検出デバイスのアナログ出力(一次遺伝子データ)から特定の対立遺伝子の呼び出し(二次遺伝子データ)を行う低レベルのソフトウェアパッケージと組み合わせる。例えば、SNPアレイ上の所与の対立遺伝子の場合には、該ソフトウェアにより、蛍光強度がある特定の閾値を上回る、または下回る量である場合に、特定のSNPが存在するまたは存在しないという呼び出しを行う。同様に、シーケンサーの出力は、色素のそれぞれについて検出された蛍光のレベルを示すクロマトグラムであり、該ソフトウェアにより、特定の塩基対が、AもしくはTまたはCもしくはGであるという呼び出しを行う。ハイスループットシーケンサーにより、一般には、読み取りと称される一連のそのような測定が行われ、配列決定された、最も可能性が高いDNA配列の構造が示される。クロマトグラムの直接的なアナログ出力は、本明細書では一次遺伝子データであると定義され、該ソフトウェアによって行われる塩基対/SNPの呼び出しは、本明細書では二次遺伝子データとみなされる。ある実施形態では、一次データとは、遺伝子型決定プラットフォームの加工されていない出力である生の強度データを指し、遺伝子型決定プラットフォームとは、SNPアレイまたは配列決定プラットフォームを指し得る。二次遺伝子データとは、加工された遺伝子データであって、対立遺伝子の呼び出しが行われている、または配列データが塩基対に割り当てられている、かつ/または配列読み取りがゲノムにマッピングされているデータを指す。
異数性または他の遺伝的欠陥を出生前診断または出生前スクリーニングするために用いることができる多くの方法が存在する。本文書の他の箇所、ならびに、2006年11月28日に出願された米国実用新案出願第11/603,406号;2008年3月17日に出願された米国実用新案出願第12/076,348号、およびPCT実用新案出願第PCT/S09/52730号に、関連する個体の遺伝子データを使用して、胎児などの標的個体の遺伝子データが公知であるまたは推定される正確度を上昇させる方法の1つが記載されている。出生前診断のために用いる他の方法は、母系の血液中の、種々の遺伝子の異常と相関する特定のホルモンのレベルを測定するステップを包含する。この例はトリプルテストと称される、母系の血液中のいくつか(一般に、2つ、3つ、4つまたは5つ)の異なるホルモンのレベルを測定する検査である。複数の方法を用いて所与の転帰の尤度を決定し、どの方法もそれ自体が決定的でない場合には、これらの方法によって生じる情報を組み合わせて、個々の方法のいずれよりも正確な予測を行うことが可能である。トリプルテストでは、3つの異なるホルモンから生じる情報を組み合わせることにより、個々のホルモンレベルにより予測され得るよりも正確な遺伝子の異常の予測がもたらされ得る。
非侵襲的な出生前診断の1つの難しさは、現行の妊娠由来の胎児の細胞と以前の妊娠由来の胎児の細胞を鑑別することである。一部では、前の妊娠由来の遺伝物質(genetic matter)はいくらかの時間の後に消えると考えられているが、決定的な証拠は示されていない。本開示のある実施形態では、PARENTAL SUPPORT(商標)(PS)法、および父系のゲノムの知見を使用して、母系の血液中に存在する父系起源の胎児DNA(すなわち胎児が父親から遺伝によって受け継いだDNA)を決定することが可能である。この方法では、相が特定された親の遺伝子情報を利用することができる。相が特定されていない遺伝子型の情報から、祖父母の遺伝子データ(例えば、祖父の精子から測定された遺伝子データ)を使用して、または、他の生まれた子からの遺伝子データ、または流産の試料から親の遺伝子型の相を特定することが可能である。父系の細胞のHapMapに基づく相の特定またはハプロタイピングによって、相が特定されていない遺伝子情報の相を特定することもできる。上首尾のハプロタイピングは、染色体が緊密な束である有糸分裂の相にある細胞を静止させ、マイクロフルイディクスを使用して別々の染色体を別々のウェルに入れることによって実証されている。別の実施形態では、相が特定された親のハプロタイプデータを使用して、父親由来の2種以上の相同体の存在を検出することが可能であり、これは、2人以上の子由来の遺伝物質が血液中に存在することを意味する。胎児において正倍数性であることが予測される染色体に焦点を当てることにより、胎児がトリソミーを患っている可能性を除外することができる。また、胎児DNAが現在の父親由来でないかどうかを決定することが可能であり、その場合、他の方法、例えば、トリプルテストを用いて遺伝子の異常を予測することができる。
当技術分野で公知の方法では、妊娠中の胎児の性別を、母親の血液からを決定することを試みる人は、胎児の浮動性DNA(fffDNA)が母親の血漿中に存在するという事実を用いている。母系の血漿中のY特異的遺伝子座を検出することができれば、これは、妊娠中の胎児が男であることを意味する。しかし、先行技術で公知の方法を用いる場合、いくつかの場合には、fffDNAの量が、男の胎児の場合にY特異的遺伝子座が検出されることを確実にするには低すぎるので、血漿中のY特異的遺伝子座が検出されないことでは、妊娠中の胎児が女であることは必ずしも保証されない。
ある実施形態では、胎児の倍数性の状態を決定するための方法は、単一遺伝子障害についての同時検査が可能になるように拡張することができる。単一遺伝子疾患の診断は、異数性試験のために用いる同じ標的化手法に影響を及ぼし、さらなる特異的な標的を必要とする。ある実施形態では、単一遺伝子NPD診断は連鎖解析による。多くの場合、cfDNA試料の直接的な試験は、母系DNAが存在することにより、胎児が母親の変異を遺伝によって受け継いだかどうかを決定することが実質的に不可能になるので、信頼できない。独自の父系的に由来する対立遺伝子を検出することは困難が少ないが、疾患が優性であり、父親が保有する場合にのみ完全に情報価値があり、それによりこの手法の有用性が限定される。ある実施形態では、該方法は、PCRまたは関連する増幅手法を包含する。
第1ラウンドのDNA増幅の間に試料中の元のDNA分子のそれぞれについて独自に同定された分子を生成することによって、試料中のDNA分子の数を決定するための方法が本明細書に記載されている。上記の目的を実現し、その後に単一分子配列決定法またはクローン配列決定法が続く手順が本明細書に記載されている。
いくつかの実施形態では、妊娠中の胎児における染色体についての決定された倍数性の状態が開示されている報告を作製するための方法が本明細書に開示されており、該方法は、胎児の母親由来のDNAおよび胎児由来のDNAを含有する第1の試料を得るステップと、胎児の一方の親または両親から遺伝子型データを得るステップと、調製された試料が得られるようにDNAを単離することによって第1の試料を調製するステップと、複数の多型遺伝子座において調製された試料中のDNAを測定するステップと、調製された試料に対して得たDNA測定値から、対立遺伝子数または複数の多型遺伝子座における対立遺伝子数の確率をコンピュータで算出するステップと、染色体における可能性のある異なる倍数性の状態について、染色体上の複数の多型遺伝子座における予測される対立遺伝子数の確率に関する、倍数性についての複数の仮説をコンピュータで作製するステップと、倍数性についての仮説のそれぞれについて、胎児の一方の親または両親からの遺伝子型データを使用して、染色体上の各多型遺伝子座の対立遺伝子数確率についての同時分布モデルをコンピュータで構築するステップと、調製された試料についての同時分布モデルおよび算出された対立遺伝子数の確率を用いて、倍数性についての仮説のそれぞれの相対的確率をコンピュータで決定するステップと、最大の確率を有する仮説に対応する倍数性の状態を選択することによって胎児の倍数性の状態を呼び出すステップと、決定された倍数性の状態が開示されている報告を作製するステップとを含む。
ここで開示されている実施形態は、以下の実施例に記載されており、これらは本開示の理解を補助するために記載され、その後に続く特許請求の範囲において定義されている本開示の範囲をいかなる形でも限定するものと解釈されるべきではない。以下の実施例は、当業者に、本記載した実施形態をどのように用いるかについての完全な開示および記載を提供するために提示されており、本開示の範囲を限定するものではなく、以下の実験が、実施した全ての実験または唯一の実験であることを示すものでもない。使用される数字(例えば、量、温度など)に関して正確さを確実にするための試みが行われているが、いくらかの実験的な誤差および偏差が考慮されるべきである。別段の指定のない限り、部分は体積による部分であり、温度は摂氏度である。記載されている方法の変形は、実験が例示することを意味する基本的な態様を変化させることなく行うことができることが理解されるべきである。
目的は、親の遺伝子型を使用して胎児の割合を算出するベイズ最尤推定(MLE)アルゴリズムにより、公開された方法と比較して非侵襲的な出生前トリソミー診断の正確度が改善されることを示すことであった。
目的は、ベイズ最尤推定(MLE)アルゴリズムにおいて、標的化配列決定手法を親の遺伝子型およびHapmapデータと組み合わせて用いることによって、特に低胎児の割合からなる試料における、胎児の18トリソミー、21トリソミー、およびXトリソミーの非侵襲的な検出を改善することであった。
目的は、母系の血漿中の浮動性胎児DNAのSNP遺伝子座を解析するための新規のインフォマティクスを用いて、三倍体の胎児においてトリソミーが高い信頼度で検出可能であるかどうかを決定することであった。
正倍数性の妊娠由来の母系の血漿から単離されたDNA、および同様に21三倍体性細胞系由来のゲノムDNAの、標準のPCR(ネスティングを使用しなかったことを意味する)を使用した800プレックス増幅のために以下のプロトコールを使用した。ライブラリーの調製および増幅は、単一チューブ平滑末端化、その後のA−テーリングを伴った。AGILENT SURESELECTキットに見いだされるライゲーションキットを使用してアダプタライゲーションを実行し、PCRを7サイクル実行した。次いで、第2染色体、第21染色体およびX染色体上のSNPを標的とする800の異なるプライマー対を使用して、STAを15サイクル行った(95℃で30秒間;72℃で1分間;60℃で4分間;65℃で1分間;72℃で30秒間)。12.5nMのプライマー濃度で反応を実行した。次いで、ILLUMINA IIGAXシーケンサーを用いてDNAについて配列決定した。シーケンサーにより190万の読み取りが出力され、その92%がゲノムにマッピングされ、ゲノムにマッピングされた読み取りのうち99%超が、標的のプライマーにより標的とされた領域のうちの1つにマッピングされた。数は血漿DNAとゲノムDNAの両方で基本的に同じであった。図15は、第21染色体において既知のトリソミーを有する細胞系から取得したゲノムDNAにおける、シーケンサーによって検出された約780SNPについての2つの対立遺伝子の比を示す。対立遺伝子分布は視覚的に読み取ることが簡単ではないので、ここでは可視化を容易にするために対立遺伝子の比がプロットされていることに留意されたい。丸印はダイソミー染色体上のSNPを示し、星印はトリソミー染色体上のSNPを示す。図16は、図Xの場合と同様に、同じデータの別の表示であり、Y軸は各SNPについて測定されたAとBの相対的な数であり、X軸は染色体によってSNPを分けたSNP数である。図16では、SNP1〜312は、第2染色体上に見いだされ、SNP313〜605は、トリソミーである第21染色体上に見いだされ、SNP606〜800はX染色体上に見出される。第2染色体およびX染色体からのデータは、相対的な配列計数が3つのクラスター内にあるとおり、ダイソミー染色体を示す:グラフの一番上がAAであり、グラフの一番下がBBであり、グラフの中央がABである。トリソミーである第21染色体からのデータは4つのクラスターを示す:グラフの一番上がAAAであり、0.65の線(2/3)の周辺がAABであり、.35の線(1/3)の周囲がABBであり、グラフの一番下がBBBである。
DNAの増幅および測定の大多数の方法により、一般に遺伝子座において見いだされる2つの対立遺伝子が、DNAの試料中の対立遺伝子の実際の量を表さない強度または計数で検出される、いくらかの対立遺伝子の偏りが生じる。例えば、単一の個体について、ヘテロ接合性遺伝子座において、ヘテロ接合性遺伝子座について予測される理論的な比である、2つの対立遺伝子の1:1の比が認められることが予想されるが、対立遺伝子の偏りに起因して、55:45または、さらには60:40が認められ得る。配列決定との関連において、読み取りの深さが低い場合には、単純な確率論的ノイズにより、有意な対立遺伝子の偏りがもたらされる可能性があることにも留意されたい。ある実施形態では、各SNPの挙動をモデリングすることが可能であり、したがって、特定の対立遺伝子について一貫した偏りが観察される場合、この偏りを補正することができる。図18は、偏り補正の前後の、二項分散によって説明することができるデータの割合を示す。図18では、星印は、800プレックス実験について、生の配列データにおいて観察された対立遺伝子の偏りを示し、丸印は、補正後の対立遺伝子の偏りを示す。対立遺伝子の偏りが全くない場合には、データがx=yの線に沿うことが予想されることに留意されたい。150プレックス標的化増幅を用いてDNAを増幅することによって生じる同様のデータの集合により、偏り補正後に1:1の線のごく近傍に包含されるデータが生じた。
プライマーのアニーリングおよび伸長の時間が数分に限られている、アダプタタグに特異的なプライマーとライゲーションしたアダプタを使用したDNAのユニバーサル増幅は、より短いDNA鎖の割合を富化する効果を有する。配列決定に適したDNAライブラリーを作製するために設計された大多数のライブラリープロトコールはそのようなステップを含み、プロトコールの例は公開されており、当業者に周知である。本発明のいくつかの実施形態では、ユニバーサルタグを有するアダプタを血漿DNAにライゲーションし、アダプタタグに特異的なプライマーを使用して増幅する。いくつかの実施形態では、ユニバーサルタグは、配列決定のために用いるものと同じタグであってよく、それはPCR増幅のためだけのユニバーサルタグであってよい、またはそれはタグの集合であってよい。胎児DNAは一般には、天然では短く、一方、母系DNAは天然では短いものと長いものの両方であり得るので、この方法は、混合物中の胎児DNAの割合を富化する効果を有する。アポトーシス性の細胞由来のDNAであると考えられ、胎児DNAと母系DNAの両方を含有する浮動性DNAは短く、大部分は200bp未満である。静脈切開後の一般的な現象である細胞溶解によって放出される細胞性DNAは、一般には、ほぼ排他的に母系であり、同様にかなり長く、大部分が500bpを超える。したがって、数分超放置した血液試料は、短い(胎児性+母系)DNAおよびより長い(母系)DNAの混合物を含有する。母系の血漿に対してユニバーサル増幅を比較的短い伸長時間で実施し、その後、標的化増幅することにより、胎児DNAの相対的な割合が、標的化増幅を単独で用いて増幅した血漿と比較して増大する傾向がある。これは、入力が血漿DNA(垂直方向の軸)である場合に測定された胎児のパーセント対入力DNAがILLUMINA GAIIxライブラリー調製プロトコールを用いて調製したライブラリーを有する血漿DNAである場合に測定された胎児のパーセントを示す図19において認めることができる。線の下に入る点は全て、ライブラリーの調製ステップにより胎児起源のDNAの割合(fraction)が富化されることを示す。赤色であった2つの血漿の試料は溶血を示し、したがって、細胞溶解によって存在する長い母系DNAの量が増大したことを示し、これは、標的化増幅の前にライブラリーの調製を実施した場合に、胎児の割合(fetal fraction)が特に有意に富化されることを示す。本明細書に開示されている方法は、溶血があるまたは比較的長い鎖の混入DNAを含む細胞が溶解し、短いDNAと長いDNAが混合した試料に混入するいくつかの他の状況が生じている場合に特に有用である。一般には、比較的短いアニーリング時間および伸長時間は30秒間から2分間の間であるが、5秒または10秒以下の短さであってよく、または5分間または10分間の長さであってよい。
正倍数性の妊娠由来の母系の血漿から単離されたDNA、および同様に21三倍体性細胞系由来のゲノムDNAの、直接PCRプロトコール、および同様にセミネステッド手法を用いた1,200プレックス増幅のために以下のプロトコールを使用した。ライブラリーの調製および増幅は、単一チューブ平滑末端化、その後のA−テーリングを伴った。AGILENT SURESELECTキットに見いだされるライゲーションキットの改変を用いてアダプタライゲーションを実行し、PCRを7サイクル実行した。標的のプライマープールでは、第21染色体由来のSNPについての550のアッセイ、ならびに第1染色体およびX染色体のそれぞれ由来のSNPについての325のアッセイを行った。どちらのプロトコールも、16nMのプライマー濃度を用いてSTAの15サイクルを伴った(95℃で30秒間;72℃で1分間;60℃で4分間;65℃で30秒間;72℃で30秒間)。セミネステッドPCRプロトコールは、29nMの内側のフォワードタグ濃度、および1μMまたは0.1μMのリバースタグ濃度を用いたSTA15サイクルの第2の増幅を伴った(95℃で30秒間;72℃で1分間;60℃で4分間;65℃で30秒間;72℃で30秒間)。次いで、ILLUMINA IIGAXシーケンサーを用いてDNAについて配列決定した。直接PCRプロトコールについては、読み取りの73%がゲノムにマッピングされ、セミネステッドプロトコールについては、配列読み取りの97.2%がゲノムにマッピングされる。したがって、セミネステッドプロトコールにより、およそ30%多くの情報がもたらされ、これは、主に、プライマー二量体を引き起こす可能性が最も高いプライマーが排除されたことに起因すると推測される。
実験において、セミネステッド1,200プレックスPCRプロトコールを用いて、1つの細胞由来のDNAおよび3つの細胞由来のDNAを増幅した。この実験は、母系の血液から単離された胎児の細胞を使用した出生前異数性試験と関連する、または生検割球または栄養外胚葉試料を使用した着床前遺伝子診断のためのものである。条件ごとに2個体(46XYおよび47XX+21)由来の1つの細胞および3つの細胞の3つの複製物が存在した。アッセイは、第1染色体、第21染色体およびX染色体を標的とした。3つの異なる溶解方法を使用した:ARCTURUS、MPERv2およびアルカリ溶解。1つの配列決定レーンにおいて多重化48試料に配列決定を実行した。アルゴリズムにより、3つの染色体のそれぞれについて、および複製物のそれぞれについての正確な倍数性呼び出しが生じた。
1つの実験では、4つの母系の血漿試料を調製し、ヘミネステッド9,600プレックスプロトコールを使用して増幅した。試料を以下のように調製した:母系の血液最大40mLを遠心分離して、バフィーコートおよび血漿を単離した。母系のゲノムDNAをバフィーコートから調製し、父系のDNAを血液試料または唾液試料から調製した。母系の血漿中の無細胞DNAを、QIAGEN CIRCULATING NUCLEIC ACIDキットを使用して単離し、TE緩衝液45μLで製造者の指示に従って溶出した。ユニバーサルライゲーションアダプタを、精製された血漿DNA35μLの各分子の末端に付加し、ライブラリーを、アダプタ特異的プライマーを使用して7サイクルにわたって増幅した。ライブラリーを、AGENCOURT AMPUREビーズを使用して精製し、水50μlで溶出した。
1つの実験では、4つの母系の血漿試料を調製し、セミネステッド9,600プレックスプロトコールを使用して増幅した。実験10の詳細は実験9と非常に類似しており、例外はネスティングプロトコールであること、および4つの試料の同一性を含めたことであった。集団内の28個の染色体全てについての倍数性呼び出しは正確に呼び出され、信頼度は99.7%を超えた。760万(97%)の読み取りがゲノムにマッピングされ、読み取りの630万(80%)が標的のSNPにマッピングされた。平均の読み取りの深さは751であり、読み取りの深さの中央値は396であった。
1つの実験では、3つの母系の血漿試料を5つの均等な部分に分割し、各部分を、2,400個の多重化プライマー(4つの部分)または1,200個の多重化プライマー(1つの部分)のいずれかを使用して増幅し、合計10,800個のプライマーについて、セミネステッドプロトコールを使用して増幅した。増幅した後、配列決定するために該部分を一緒にプールした。実験11の詳細は実験9と非常に類似しており、例外は、ネスティングプロトコール、およびスプリットアンドプール手法であった。集団内の21個の染色体の全てについて、倍数性呼び出しは正確に呼び出され、信頼度は、信頼度83%で呼び出しが上手く行かなかった1つ以外は99.7%を超えた。340万の読み取りが標的のSNPにマッピングされ、平均の読み取りの深さは404であり、読み取りの深さの中央値は258であった。
1つの実験では、4つの母系の血漿試料を、4つの均等な部分に分割し、各部分を、2,400個の多重化プライマーを使用して増幅し、合計9,600個のプライマーについて、セミネステッドプロトコールを使用して増幅した。増幅した後、配列決定するために該部分を一緒にプールした。実験12の詳細は実験9と非常に類似しており、例外は、ネスティングプロトコール、およびスプリットアンドプール手法であった。集団内の28個の染色体全てについての倍数性呼び出しは正確に呼び出され、信頼度は、信頼度78%で呼び出しが上手く行かなかった1つ以外は97%を超えた。450万の読み取りが標的のSNPにマッピングされ、平均の読み取りの深さは535であり、読み取りの深さの中央値は412であった。
1つの実験では、4つの母系の血漿試料を調製し、合計9,600個のプライマーについて、9,600プレックス3重ヘミネステッドプロトコールを使用して増幅した。実験12の詳細は実験9と非常に類似しており、例外は、増幅の3つのラウンドを伴うネスティングプロトコールであり;該3つのラウンドは、それぞれ15サイクルのSTA、10サイクルのSTAおよび15サイクルのSTAを伴った。集団内の28個の染色体のうち27個についての倍数性呼び出しは正確に呼び出され、信頼度は、94.6%で正確に呼び出された1つ、および信頼度80.8%で呼び出しが上手く行かなかった1つ以外は99.9%を超えた。350万の読み取りが標的のSNPにマッピングされ、平均の読み取りの深さは414であり、読み取りの深さの中央値は249であった。
1つの実験では、細胞の集合45個を、1,200プレックスセミネステッドプロトコールを使用して増幅し、配列決定し、倍数性の決定を3つの染色体において行った。この実験は、3日目の胚由来の単一細胞生検材料または5日目の胚由来の栄養外胚葉生検材料において着床前遺伝子診断を実施する条件をシミュレートすることを意図していることに留意されたい。個々の単一細胞15個および3つの細胞の集合30個を、合計45の反応のために、45個の個々の反応チューブに入れ、各反応は、ただ1つの細胞系由来の細胞を含有したが、異なる反応は異なる細胞系由来の細胞を含有した。細胞を洗浄バッファー5μl中に調製し、ARCTURUS PICOPURE溶解緩衝液(APPLIED BIOSYSTEMS)5μlを加えることによって溶解させ、56℃で20分間、95℃で10分間インキュベートした。
Claims (19)
- 妊娠中の胎児における染色体または染色体セグメントの倍数性状態を決定するための方法であって、当該方法は、
ハイスループット配列決定または遺伝子型決定アレイを用いて、予調製試料中に存在する、該染色体または染色体セグメント上の複数の多型遺伝子座における対立遺伝子を測定し、ここで該予調製試料は、該胎児の母親由来の母系DNAおよび該胎児由来の胎児DNAを含む第1のDNAの試料から該DNAを単離し、該DNAを該複数の多型遺伝子座について優先的に富化することによって調製され、
該予調製試料について得られた測定値から、該複数の多型遺伝子座における対立遺伝子の数をコンピュータで算出し、
複数の倍数性仮説をコンピュータで作製し、ここで該複数の倍数性仮説は各々、該染色体または染色体セグメントの倍数性状態の異なる選択肢に対応し、
各倍数性仮説について、該対立遺伝子がベータ二項分布に従って分布するとの仮定の下、該染色体または染色体セグメント上の該複数の多型遺伝子座における該対立遺伝子の予測数についての同時分布モデルをコンピュータで構築し、
該同時分布モデル、該予調製試料において測定された該対立遺伝子数、および該予調製試料中の胎児DNAの推定される割合を用いて、該倍数性仮説のそれぞれの相対的確率をコンピュータで決定し、
最大の確率を有する仮説に対応する倍数性状態を該胎児の倍数性状態として選択し、ここで該倍数性状態について信頼度推定値が算出される
ことを含む方法。 - 前記第1の試料中の前記DNAが母系の血漿を起源とする、請求項1に記載の方法。
- 該複数の多型遺伝子座におけるDNAを優先的に富化するステップが、
複数のライゲーション媒介性PCRプローブを取得し、ここで、前記複数のPCRプローブの各々が、該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、該PCRプローブの上流部および下流部が、該遺伝子座の多型部位から少数の塩基で隔てられているDNAの一方の鎖上のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、該少数が、2〜30塩基対であり、
該ライゲーション媒介性PCRプローブを前記第1の試料由来の前記DNAにハイブリダイズさせ、
該ライゲーション媒介性PCRプローブ末端間のギャップを、DNAポリメラーゼを用いて充填し、
該ライゲーション媒介性PCRプローブをライゲーションし、
ライゲーションされた該ライゲーション媒介性PCRプローブを増幅する
ことを含む、請求項1に記載の方法。 - 該複数の多型遺伝子座におけるDNAを優先的に富化するステップが、
複数の内側フォワードプライマーを取得し、ここで、前記複数のプライマーの各々が、該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、該内側フォワードプライマーのそれぞれの3’末端が、該遺伝子座の多型部位の上流にあり少数の塩基で該多型部位から隔てられているDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、該少数が、2〜30塩基対であり、
必要に応じて、複数の内側リバースプライマーを取得し、ここで、前記複数のプライマーの各々が、該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、該内側リバースプライマーのそれぞれの3’末端が、該遺伝子座の多型部位の上流にあり少数の塩基で該多型部位から隔てられているDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、該少数が、2〜30塩基対であり、
該内側プライマーを該DNAとハイブリダイズさせ、
ポリメラーゼ連鎖反応を用いて該DNAを増幅してアンプリコンを形成する
ことを含む、請求項1に記載の方法。 - 前記方法が更に、
複数の外側フォワードプライマーを取得し、ここで各プライマーが、前記多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、該複数の外側フォワードプライマーの各々が、前記内側フォワードプライマーの上流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、
必要に応じて、複数の外側リバースプライマーを取得し、ここで各プライマーが、該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、該複数の外側リバースプライマーの各々が、前記内側リバースプライマーのすぐ下流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、
前記外側フォワードプライマーを該DNAとハイブリダイズさせ、
ポリメラーゼ連鎖反応を用いて該DNAを増幅する
ことをさらに含む、請求項4に記載の方法。 - 前記方法が更に、
複数の外側リバースプライマーを取得し、ここで各プライマーが、前記多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、該複数の外側リバースプライマーの各々が、対応する前記内側リバースプライマーのすぐ下流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、
必要に応じて、複数の外側フォワードプライマーを得るステップであって、それぞれのプライマーが該多型遺伝子座のうちの1つを標的とし、そして該外側フォワードプライマーのそれぞれが、対応する前記内側フォワードプライマーの上流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、
前記外側リバースプライマーを該DNAとハイブリダイズさせ、
ポリメラーゼ連鎖反応を用いて該DNAを増幅する
ことをさらに含む、請求項4に記載の方法。 - (a)前記第1の試料を調製するステップが、該第1の試料中の前記DNAにユニバーサルアダプタを付加し、該第1の試料中の前記DNAを、ポリメラーゼ連鎖反応を用いて増幅することをさらに含み;
(b)前記DNAを増幅するステップが、1つまたは複数の個々の反応容積で行われ、個々の反応容積のそれぞれが、500超の異なるフォワードプライマーとリバースプライマーとの対を含有し;あるいは
(c)前記内側プライマーが、望ましくないプライマー2重鎖を形成する可能性があるプライマー対を同定し、望ましくないプライマー2重鎖を形成する可能性があると同定されたプライマーの対の少なくとも1つを前記複数のプライマーから除去することによって選択される、請求項4に記載の方法。 - 前記方法が、前記胎児の片親または両親から、複数の多型遺伝子座における遺伝子型データを得ることをさらに含み、
(a)前記染色体または染色体セグメント上の前記複数の多型遺伝子座の予測される対立遺伝子数の確率についての同時分布モデルを構築するステップが、前記片親または両親から得られた前記遺伝子データを用いて行われるか;あるいは
(b)前記第1の試料が母系の血漿から単離されたものであり、前記母親から遺伝子型データを得るステップが、前記予調製試料に対して得られた前記測定値から該母系の遺伝子型データを推定することによって行われる、請求項1に記載の方法。 - 前記優先的な富化により、前記予調製試料と前記第1の試料の間に、2倍以下の平均の対立遺伝子の偏りがもたらされる、請求項4に記載の方法。
- 前記複数の多型遺伝子座が一塩基多型である、請求項1に記載の方法。
- 前記胎児の前記倍数性状態を呼び出すステップが、
前記同時分布モデルおよび前記対立遺伝子数の確率を用いて決定される前記倍数性仮説のそれぞれの前記相対的確率と、読み取り数解析、ヘテロ接合率の比較、親の遺伝子情報を使用する場合にのみ利用可能な統計量、特定の親の状況に対して正規化された遺伝子型シグナルの確率、前記第1の試料または前記予調製試料の推定される胎児の割合を用いて算出される統計量、およびそれらの組合せからなる群から選択される一つ以上の統計学的技法を用いて算出される該倍数性仮説のそれぞれの相対的確率とを組み合わせることをさらに含む、請求項1に記載の方法。 - 前記方法が、倍数性状態を決定するために、標的化配列決定およびベイズ最尤推定(Maximum Likelihood Estimation:MLE)を用いることを含む、請求項1に記載の方法。
- 請求項4に記載の方法で使用するために設計された、妊娠中の胎児における標的染色体または染色体セグメントの倍数性状態を決定するためのキットであって、
前記複数の内側フォワードプライマーと、必要に応じて前記複数の内側リバースプライマーとを含み、該プライマーのそれぞれが前記標的染色体または染色体セグメント上の前記多型部位のうちの1つのすぐ上流および/または下流のDNAの領域とハイブリダイズするように設計されており、該ハイブリダイズする領域が、少数の塩基によって該多型部位から隔てられており、該少数が、2〜30塩基対である、プライマーを含むキット。 - 妊娠中の胎児における染色体の倍数性状態の決定に役立つ診断ボックスであって、請求項1に記載の方法における調製するステップおよび測定するステップを実行することができる診断ボックス。
- 前記胎児の前記呼び出された倍数性状態に基づいた臨床的措置がとられるかどうかの指標となり、該臨床的措置は、妊娠中絶すること、または妊娠を維持することの一方から選択される、請求項1に記載の方法。
- 母系遺伝子データが、天然では排他的またはほぼ排他的に母系である遺伝物質の測定によって決定されるものではない、請求項8に記載の方法。
- 母系遺伝子データが、母系DNAと胎児DNAの混合物を含む母系血漿について実施される遺伝子測定から推定される、請求項8に記載の方法。
- 前記方法が更に、胎児DNAの推測を用いて、倍数性の呼び出しと、倍数性の呼び出しの信頼度推定値を計算することを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記同時分布モデルの構築が、染色体内の異なる場所における染色体乗換えの確率に関するデータを用いて、前記染色体上の多型対立遺伝子間の依存性をモデリングすることにより行われる、請求項1に記載の方法。
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