JP5759643B2 - 差異荷電粒子移動度によるリポ蛋白質の分析 - Google Patents

Description

本発明は一般に，イオン移動度測定装置および方法を利用した，診断目的での粒子サイズの分析およびリポ蛋白質等の生物学的粒子の分析の分野に関連する。本発明はさらに，生物分子，例えば，限定されないが，リポ蛋白質，およびリポ蛋白質を含有する生物学的複合体を精製および単離するための方法および装置を提供する。

以下の説明は，本発明の理解を助けるためにのみ提供される。引用される参考文献または提供される情報のいずれも，本発明に対する従来技術であると認めるものではない。

心臓血管疾患は米国の死亡原因の１位である。将来の心臓疾患のリスクを判定するために最も一般的に用いられ受け入れられている方法は，患者の個人データおよび現在の健康状態に加えて，コレステロールおよびリポ蛋白質の血清レベルを測定することを含む。生化学マーカー，例えば，限定されないが，コレステロールおよびリポ蛋白質レベルについて，リスクを判定するためによく確立されたカットオフ値の推奨値がある。しかし，コレステロールおよびリポ蛋白質の測定は，明らかに，そのすべてではない。これは，早期心臓疾患のリスクを有するヒトの５０％もが，現在のところ，ＡＴＰＩＩＩガイドライン（すなわち，Ａｄｕｌｔ Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ Ｐａｎｅ ｌＩＩＩガイドライン，ｔｈｅ
Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌ Ｅｄｕｃａｔｉｏｎ Ｐｒｏｇｒａｍおよびｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｈｅａｒｔ，Ｌｕｎｇ ａｎｄ Ｂｌｏｏｄ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅから発行）には包含されていないためである。

血液中のリポ蛋白質および他の脂質を測定する方法としては，例えば，限定されないが，空腹時総コレステロール，トリグリセリド，ＨＤＬ（高密度リポ蛋白質）および／またはＬＤＬ（低密度リポ蛋白質）コレステロール濃度の評価が挙げられる。現在，ＬＤＬコレステロールを測定するために最も広く用いられている方法は，間接的フリードワルド（Ｆｒｉｅｄｅｗａｌｄ）法（Ｆｒｉｅｄｅｗａｌｄ，ｅｔ ａｌ．，Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ．，１９７２，１８：４９９−５０２）である。フリードワルドアッセイ法は，次の３段階を必要とする：１）血漿トリグリセリド（ＴＧ）および総コレステロール（ＴＣ）の測定，２）ＶＬＤＬ（超低密度リポ蛋白質）およびＬＤＬ（低密度リポ蛋白質）の沈殿，および３）ＨＤＬコレステロール（ＨＤＬＣ）の定量。ＶＬＤＬＣを血漿トリグリセリドの５分の１と見積もって，ＬＤＬコレステロール濃度（ＬＤＬＣ）は次式で計算される：
ＬＤＬＣ＝ＴＣ−（ＨＤＬＣ＋ＶＬＤＬＣ）
フリードワルド法は一般的に有用であるが，場合によっては正確性が限定される。例えば，３段階のいずれかにおいて誤差が生じうる。これは，部分的には，この方法が各段階において異なる手順を用いることを必要とするためである。さらに，フリードワルド法は，ＶＬＤＬＣ濃度が血漿トリグリセリドの濃度の５分の１であると仮定するため，ある程度間接的である。したがって，ある患者のＶＬＤＬがこの比率から外れている場合，さらなる誤差が生ずる。

血液中リポ蛋白質を評価する別の方法は，リポ蛋白質のサイズおよび密度を測定することを含む。リポ蛋白質のサイズ分布は，遺伝的および非遺伝的影響の両方のため，個体により様々である。リポ蛋白質の直径は，典型的には約７ｎｍから約１２０ｎｍの範囲である。この直径サイズ範囲内に，心臓血管疾患の重要な予測因子である粒子のサブ画分が存在する。例えば，ＶＬＤＬは血流中でトリグリセリドを輸送する。したがって，血流中の高ＶＬＤＬレベルは，高トリグリセリド血症の指標である。これらのサブ画分は，これらの物質の量をリポ蛋白質サイズまたは密度の関数として示す分析手法により同定すること
ができる。

リポ蛋白質密度分析に関しては，超遠心分離により単離されたリポ蛋白質を，種々の塩密度のバックグラウンドで分析用超遠心分離を行うことにより浮遊特性について分析し，このことにより，水和したＬＤＬ密度を決定することができる。これはＬｉｎｄｇｒｅｎら（Ｂｌｏｏｄ Ｌｉｐｉｄ ａｎｄ Ｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎｓ：Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｏｎ Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ，Ｅｄ．Ｇ．Ｌ．Ｎｅｌｓｏｎ，Ｗｉｌｅｙ，１９９２，ｐ．１８１−２７４（本明細書に参照として組み込まれる））に記載されている。例えば，ＬＤＬクラスは，平衡密度勾配超遠心分離として知られる調製用分離技術を用いることにより，密度または直径に基づいてさらに７個のサブクラスに分けることができる。特定のＬＤＬサブクラスである，ＬＤＬ−ＩＩＩａ，ＩＩＩｂ，ＩＶａおよびＩＶｂのレベルの上昇は，ＣＨＤ（すなわち冠動脈性心疾患），例えば，アテローム性動脈硬化症のリスクの増大と密接に関連していることが知られている。さらに，総血清コレステロールレベルおよびＬＤＬおよびＨＤＬ画分中のコレステロールレベルの決定は，冠動脈性心疾患のリスクの診断試験として日常的に用いられている。リポ蛋白質のクラスおよびサブクラス分布はより予測性の高い試験であるが，これは高価であり時間がかかるため，典型的には限定された数の患者についてのみ，医師によって依頼される。

リポ蛋白質のサイズの測定に関しては，現在のところ，単一の許容された方法はない。臨床の設定においてリポ蛋白質のサイズを測定するための既知の方法としては，垂直自動プロファイル（ＶＡＰ）（例えば，Ｋｕｌｋａｒｎｉ，ｅｔａｌ．，Ｊ．Ｌｉｐ．Ｒｅｓ．，１９９４，３５：１５９−１６８を参照）が挙げられ，これは，ショートスピン単一垂直超遠心分離により分離したリポ蛋白質の各クラス中のコレステロールを，フロー分析装置を用いて酵素的に，次に分光学的に分析し，そして，得られたデータを分析する。

別の方法（例えば，Ｊｅｙａｒａｊａｈ，Ｅ．Ｊ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｌｉｎ Ｌａｂ Ｍｅｄ．，２００６，２６：８４７−７０を参照）は，核磁気共鳴（ＮＭＲ）を用いて，リポ蛋白質サブクラスの濃度を決定する。この方法においては，血液，血漿または血清サンプルのＮＭＲ化学シフトスペクトルを取得する。次に，観察された全血漿サンプルのスペクトルを，コンピュータ手段により，リポ蛋白質サブクラスの予め得られたＮＭＲスペクトルの既知の重み付けされた和とマッチさせる。次に，サンプルのスペクトルと計算されたスペクトルとの間のベストフィットを与える重み付け因子を用いて，血液サンプル中の構成リポ蛋白質サブクラスの濃度を見積もる。

別の方法である，電気泳動勾配ゲル分離（例えば，米国特許５，９２５，２２９を参照；本明細書に参照として組み込まれる）は，ＬＤＬサブクラスを分離するための勾配ゲル塩基泳動法である。ＬＤＬ画分を勾配ゲル電気泳動により分離すると，超遠心分離により得られるものと匹敵する結果が得られる。この方法は，ＬＤＬサブクラスの細かい分解が可能であり，主として実験室で用いられている。しかし，ゲル分離法は，すべての成分についての均一な染色および続く光学的な測定に依存しており，非均一的な発色性に悩まされる。すなわち，すべてのリポ蛋白質が同等によく染色されるわけではない。したがって，差異染色取り込みは誤差のある定量的結果を与えうる。したがって，非均一的な発色性のため，測定されたピークがリポ蛋白質の１つのクラスまたはサブクラスと別のものとの混同が引き起こされるのに十分な程度偏りうるという，誤差のある定性的な結果が生ずる場合がある。さらに，勾配ゲル電気泳動は完了するまでに長い時間がかかる。

実際，生物学的サンプルからのリポ蛋白質を定量的および定性的に測定するより最近の方法が，Ｂｅｎｎｅｒら（米国特許７，２５９，０１８；本明細書に参照として組み込まれる）によって記載され，この方法は，粒子サイズおよび／またはイオン移動度装置を利
用する。

本発明によれば，気相電気泳動移動度分子分析装置を利用したリポ蛋白質の差異荷電粒子移動度分析（本明細書において“イオン移動度分析”とも称される）用のサンプルを調製する方法，およびかかる方法に有用な装置が提供される。

第１の観点においては，本発明は，リポ蛋白質のクラスおよびサブクラスの差異荷電粒子移動度分析に適した，リポ蛋白質を精製する方法を提供する。この方法は以下の工程を含む：（ａ）サンプルの下に第１の溶液を含む遠心チューブを用意し，該サンプルは，１またはそれ以上のリポ蛋白質および非リポ蛋白質成分を有しており，該第１の溶液は１．００ｇ／ｍＬより高く約１．２１ｇ／ｍＬ以下の第１の密度を有しており；そして（ｂ）非リポ蛋白質成分がリポ蛋白質から離れてチューブの底に向かって移動するのに十分な条件でチューブを遠心分離に供し，このことにより精製されたリポ蛋白質を得る。ある態様においては，第１の密度は約１．１５ｇ／ｍＬから約１．２１ｇ／ｍＬの範囲内である。ある態様においては，第１の溶液は好ましくは水性溶液であり，より好ましくは水またはその重水素形である。

本発明のこの観点の文脈においては，リポ蛋白質を含むサンプルは，本明細書に記載されるようにして，哺乳動物からの血液標本を加工処理することにより得る。この加工処理は，任意に，塩，例えば，限定されないが，Ｎａ，Ｋ，および／またはＣｓのＣｌ，Ｂｒ，および／またはＩ塩を添加することにより密度を調節することを含む。

さらに本発明のこの観点においては，ある態様において，遠心チューブ中のサンプルの上に隣接した第２の溶液が提供され，該第２の溶液は，好ましくは第１の溶液より低密度である。したがって，第２の溶液の密度は１．００ｇ／ｍＬ以上であり，第１の溶液の密度より低い。ある態様においては，第２の溶液は水性溶液である。驚くべきことに，遠心チューブ内でリポ蛋白質含有サンプルに低密度を有する溶液を重層することにより，遠心分離による分離の後にリポ蛋白質の回収が増大することが見いだされた。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，より高密度のリポ蛋白質含有溶液からより低密度の溶液への，好ましくは水性の重層した第２の溶液へのイオン流が，その中の脂質の浮力を変化させ，その結果リポ蛋白質の回収が増大すると考えられる。

本明細書において用いる場合，“遠心分離”とは，溶液を適当な装置中での高速回転により生ずる遠心分離力に供することにより，密度および密度に関連する分子量の関数として，溶液中の物質を分離しまたは分析することを表す。

本明細書において用いる場合，“精製する”および同様の用語は，特定の成分の他の成分に対する相対的濃度の増加を表す。例えば，限定されないが，リポ蛋白質溶液から脂質を取り除くことは，脂質画分を犠牲にしてリポ蛋白質画分を精製することを構成する。遠心分離の文脈において，“精製する”および同様の用語は，遠心分離後に，当該技術分野においてよく知られる方法により，例えば，限定されないが，吸引および／または分画により，分離した成分の抽出を可能とするのに十分な遠心チューブ中での分離を表すことが理解される。驚くべきことに，遠心分離前に，例えば，限定されないが，溶液の塩濃度を低下させることによりリポ蛋白質含有溶液の密度を低下させると，リポ蛋白質のある種の画分，例えばＬＤＬおよびＨＤＬ画分の回収が増大することが見いだされた。

本明細書において用いる場合，“リポ蛋白質”および“リポ蛋白質粒子”との用語は，哺乳動物血液から得られる粒子を表し，これは，例えば，限定されないが，コレステロー
ルおよび他の脂質との非共有結合によりパッケージされて生物学的に組み立てられているアポリポ蛋白質を含む。リポ蛋白質は，好ましくは，約７−１２０ｎｍのサイズ範囲を有する生物学的粒子を表し，本明細書に定義されるＶＬＤＬ（超低密度リポ蛋白質），ＩＤＬ（中間密度リポ蛋白質），ＬＤＬ（低密度リポ蛋白質），Ｌｐ（ａ）［リポ蛋白質（ａ）］，ＨＤＬ（高密度リポ蛋白質）およびカイロミクロンを含む。

本明細書において用いる場合，“アポリポ蛋白質”との用語は，リポ蛋白質を構成する脂質結合蛋白質を表す。当該技術分野において知られるように，アポリポ蛋白質は，５つの主要なクラスに分類される：ＡｐｏＡ，ＡｐｏＢ，ＡｐｏＣ，ＡｐｏＤ，およびＡｐｏＥ。

本明細書において用いる場合，“生物学的粒子”との用語は，生きた起源に由来する，非共有結合的に結合した分子の集合を有する物質を表す。生物学的粒子の非限定的例としては，アポリポ蛋白質および脂質から組み立てられているリポ蛋白質；非共有結合的に結合したコート蛋白質と糖蛋白質から組み立てられているウイルス成分；抗体とその対応する抗原から組み立てられている免疫複合体等が挙げられる。

本明細書において用いる場合，“マーカー”，“生化学マーカー”との用語，および同様の用語は，疾病または状態との相関が知られている天然に生ずる生物分子（またはこれらの誘導体）を表す。

本明細書において数値の文脈で用いる場合，“約”との用語は，その＋／−１０％の値を表す。

別の観点においては，本発明はリポ蛋白質を精製する方法を提供し，この方法は以下の工程を含む：（ａ）サンプルおよびサンプルの下に隣接して位置する第１の溶液を含む遠心チューブを用意し，サンプルは１またはそれ以上のリポ蛋白質および非リポ蛋白質成分を含み，サンプルはさらにＲｅａｃｔｉｖｅ Ｇｒｅｅｎデキストランおよび硫酸デキストラン（ＤＳ）を含み，第１の溶液は重水（Ｄ₂Ｏ）を含み；そして（ｂ）非リポ蛋白質
成分がリポ蛋白質から離れてチューブの底に向かって移動するのに十分な条件で遠心チューブを遠心分離に供する。ある態様においては，次にこのようにして分離した精製リポ蛋白質を取り出して，差異荷電粒子移動度分析に供する。ある態様においては，第１の溶液の密度は１．０ｇ／ｍＬから約１．２１ｇ／ｍＬである。ある態様においては，第１の溶液の密度は１．００ｇ／ｍＬから約１．１０ｇ／ｍＬである。ある態様においては，第１の溶液は実質的にＤ₂Ｏである。

別の観点においては，本発明は差異荷電粒子移動度分析用にリポ蛋白質を精製する方法を提供し，この方法は遠心分離を含まず，下記の工程を含む：ａ）リポ蛋白質および非リポ蛋白質を含む溶液を１またはそれ以上のポリアニオン化合物および１またはそれ以上の二価カチオンと混合し；ｂ）混合溶液中でリポ蛋白質を含む沈殿物を形成させ；そしてｃ）工程ｂ）の後に，沈殿したリポ蛋白質を回収し，沈殿したリポ蛋白質を再溶解した後に差異荷電粒子分析に供する。

別の観点においては，本発明は，差異荷電粒子移動度分析用にリポ蛋白質を精製する方法を提供し，この方法は遠心分離を含まず，以下の工程を含む：ａ）リポ蛋白質および非リポ蛋白質を含む溶液を，リポ蛋白質に結合してリポ蛋白質／リポ蛋白質捕捉リガンド複合体を形成しうる１またはそれ以上のリポ蛋白質捕捉リガンドと混合し；ｂ）リポ蛋白質／リポ蛋白質捕捉リガンド複合体を単離し；そしてｃ）リポ蛋白質をリポ蛋白質／リポ蛋白質捕捉リガンド複合体から放出し，リポ蛋白質を差異荷電粒子移動度分析に供する。ある態様においては，リポ蛋白質は，ＨＤＬ，ＬＤＬ，Ｌｐ（ａ），ＩＤＬおよびＶＬＤＬ
からなる群より選択される。ある態様においては，リポ蛋白質捕捉リガンドは，アプタマーおよび抗体の群より選択される。ある態様においては，リポ蛋白質捕捉リガンドは抗体である。

本明細書に記載されるリポ蛋白質の単離および／または精製を企図する観点のある態様においては，本発明は，リポ蛋白質のサイズ分布を分析する方法を提供し，この方法は以下の工程を含む：（ａ）本明細書に記載される任意の方法にしたがって１またはそれ以上のリポ蛋白質を用意し；そして（ｂ）１またはそれ以上のリポ蛋白質を荷電粒子移動度分析に供し，このことによりリポ蛋白質のサイズ分布を決定する。上述の観点のある態様においては，この方法は，患者サンプル中で，ＨＤＬ，ＬＤＬ，ＩＤＬ，およびＶＬＤＬ，より好ましくはＨＤＬ，ＬＤＬ，ＩＤＬ，ＶＬＤＬおよびＬｐ（ａ）の濃度を決定するために用いられる。患者サンプルは，好ましくは血漿または血清である。本明細書に記載される方法はまた，測定すべき出発サンプル中のリポ蛋白質濃度のより正確な判定を得るために，内部標準，例えば１またはそれ以上の標識したリポ蛋白質（例えば蛍光標識）を用いて，加工処理中のサンプルの減少をモニターすることを含んでいてもよい。

別の観点においては，本発明は，リポ蛋白質のサイズ分布を分析する方法を提供し，この方法は以下の工程を含む：（ａ）差異荷電粒子移動度分析に供した１またはそれ以上のリポ蛋白質について，粒子サイズの１またはそれ以上の領域における差異移動度粒子サイズ分布を決定し；（ｂ）非リポ蛋白質試薬または非リポ蛋白質サンプル材料の粒子サイズ分布に対する寄与を減算して，リポ蛋白質の粒子サイズ分布を求め；そして（ｃ）リポ蛋白質粒子サイズ分布をディスプレイ，プリンタまたはメモリに出力する。

別の観点においては，本発明は，コンピュータコードが保存されているコンピュータ読み取り可能な媒体を提供する。リポ蛋白質のサイズ分布を分析するためのコンピュータコードは，（ａ）差異荷電粒子移動度分析に供した１またはそれ以上のリポ蛋白質について，粒子サイズの１またはそれ以上の領域における差異移動度粒子サイズ分布を決定し；（ｂ）非リポ蛋白質試薬または非リポ蛋白質サンプル材料の粒子サイズ分布に対する寄与を減算して，リポ蛋白質粒子サイズ分布を求め；そして（ｃ）リポ蛋白質サイズ分布をディスプレイ，プリンタまたはメモリに出力することを含む。

別の観点においては，本発明は，差異荷電粒子移動度分析用の装置を提供し，この装置は，（ａ）サンプルをキャピラリーを通して運搬する１またはそれ以上のポンプ，（ｂ）サンプルがキャピラリー中を流れる間にサンプルの粒子を荷電するイオン化装置，および（ｃ）サンプルについて荷電粒子の差異荷電粒子移動度分析を行うイオン移動度分析装置を含む。イオン化装置は，キャピラリーの周りに導電ユニオンを含んでいてもよい。１つの態様においては，導電ユニオンはキャピラリーの一部にマイクロタイト領域を形成し，ここを通過するサンプルに電荷を与え，このことによりサンプルの粒子を荷電する。

ある態様では，装置はさらに，差異荷電粒子移動度分析用のサンプルを１またはそれ以上のポンプに提供するオートサンプラーを含む。

ある態様においては，１またはそれ以上のポンプは，サンプルをナノフローポンプに提供する高フローポンプ，およびサンプルをキャピラリーに提供するナノフローポンプを含むことができる。高フローポンプは，１分間に約１５−２５マイクロリットルの速度でサンプルを送出することができ，ナノフローポンプは１分間に約１００−２００ナノリットルの速度でサンプルを送出することができる。

図１は，３．７時間の超遠心分離の間に血漿サンプルからのリポ蛋白質の回収に及ぼす密度の影響を示す。サンプルは，異なる密度溶液を用いて二重に調製し，３．７時間遠心分離した。リポ蛋白質画分を回収し，これを透析した後，差異荷電粒子移動度により分析した。各パネルは，それぞれの二重の実験のプロファイルを示す。溶液密度：Ａ＝１．２３ｇ／ｍＬ；Ｂ＝１．１８１ｇ／ｍＬ；Ｃ＝１．１７０ｇ／ｍＬ；Ｄ＝１．１６５ｇ／ｍＬ。横軸はリポ蛋白質直径（ｎｍ）であり，縦軸は任意スケールの質量座標であり，この質量座標はサイズ（例えば直径）の関数として計数した粒子の実際の数に対して直線性を有する。 図２は，Ｄ₂Ｏまたは低塩プロトコル（Ｄ₂Ｏなし）のいずれかを用いる遠心分離分離実験における，血漿からのリポ蛋白質の回収の比較を示す。濃色のプロファイルはＤ₂Ｏを高密度の溶液（１．１０７ｇ／ｍＬ）として用いたときの２時間の遠心分離を反映する。淡色のプロファイルは，ＫＢｒを高密度の溶液（１．１５１ｇ／ｍＬ）として用いたときの３．７時間の遠心分離を反映する。Ａ−２時間遠心分離のアルブミンのピーク高さを示す；Ｂ−３．７時間遠心分離のアルブミンのピーク高さを示す。横軸はリポ蛋白質直径（ｎｍ）であり，縦軸は任意スケールの質量座標であり，これらは図１の凡例で説明したとおりである。 図３は，遠心分離分離実験においてＤ₂ＯをＲＧＤ／ＤＳ［ＲＧＤ：デキストランとコンジュゲート化したＲｅａｃｔｉｖｅ Ｇｒｅｅｎ １９（ＲＧ１９）；ＲＧＤ／ＤＳ：ＲＧＤとＤＳの組み合わせ］と組み合わせて用いた，血漿からのＡｐｏＡ１，ＡｐｏＢおよび総コレステロール（ＴＣ）の回収の結果を示す。横軸は測定した分析物を示す。各ボックスに付けられた数字は，個々の患者のＩＤ番号系を表す。 図４は，ＲＧＤを用いる遠心分離による精製の後の，血漿からのリポ蛋白質の回収の結果を示す。ＲＧＤを種々の濃度でサンプルに添加し，Ｄ₂Ｏを高密度溶液として用いて２時間１５分間遠心分離した。用いた４種の異なる濃度のＲＧＤについて，アルブミンのピーク高さが示される；Ａ，１０ｍｇ／ｍＬ ＲＧＤ；Ｂ，１５ｍｇ／ｍＬ ＲＧＤ；Ｃ，２０ｍｇ／ｍＬ ＲＧＤ；およびＤ，２５ｍｇ／ｍＬ ＲＧＤ。横軸はリポ蛋白質直径（ｎｍ）であり，縦軸は任意スケールの質量座標であり，これらは図１の凡例で説明したとおりである。 図５は，ＲＧＤおよびエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）またはＲＧＤ／ＤＳおよびＥＤＴＡ，および任意に酢酸アンモニウム（ＡＡ）を用いる遠心分離による精製後の，血漿からのリポ蛋白質の回収の結果を示す。凡例：（Ａ）７．５ｍｇ／ｍＬ ＲＧＤおよび２．５ｍｇ／ｍＬ ＤＳで抽出，２５ｍＭ酢酸アンモニウムおよび５ｕｇ／ｍＬのＤＳで希釈；（Ｂ）７．５ｍｇ／ｍＬ ＲＧＤおよび２．５ｍｇ／ｍＬ ＤＳで抽出，２５ｍＭ酢酸アンモニウムで希釈；（Ｃ）７．５ｍｇ／ｍＬ ＲＧＤで抽出，２５ｍＭ酢酸アンモニウムおよび５ｕｇ／ｍＬ ＤＳで希釈；（Ｄ）７．５ｍｇ／ｍＬ ＲＧＤで抽出，２５ｍＭ酢酸アンモニウムで希釈。横軸はリポ蛋白質直径（ｎｍ）であり，縦軸は任意スケールの質量座標であり，これらは図１の凡例で説明したとおりである。 図６は，ＤＳを希釈バッファに加えて伝統的密度分離および透析を行った結果を示す。ＡおよびＢ：酢酸アンモニウム希釈バッファ中に５ｕｇ／ｍＬ ＤＳを含む。ＣおよびＤ：酢酸アンモニウム希釈バッファ中にＤＳを含まない。横軸はリポ蛋白質直径（ｎｍ）であり，縦軸は任意スケールの質量座標であり，これらは図１の凡例で説明したとおりである。 図７は，得られたリポ蛋白質プロファイルを，差異荷電粒子移動度分析によるリポ蛋白質分画の典型的な結果とともに示す。横軸はリポ蛋白質直径（ｎｍ）であり，縦軸は差異荷電粒子移動度データおよび当該技術分野において知られるパラメータから計算した質量である。ハッチングで示される領域は相対的リスクを表し，斜線の領域は中程度のリスクを，縦線の領域は低リスクを，網掛けの領域は高リスクを，影付きの領域は不確定のリスクを示す。 図８は，本発明のある態様にしたがう差異荷電粒子移動度分析用の装置を示す。 図９は，図８の装置とともに用いるための接続ユニオンの態様を示す。

“ＶＬＤＬ，ＩＤＬ，ＬＤＬ，およびＨＤＬ”は，表１において示されるような，リポ蛋白質の分類を表す。表１においてサイズについて用いた値は，当該技術分野において知られるように，ゲル電気泳動法により決定されることが理解される。本明細書に記載される差異荷電粒子移動度分析方法を用いることにより，差異荷電粒子移動度分析を用いて得られたリポ蛋白質直径の測定はすべて，ゲル電気泳動を用いて得られたデータと比べてより小さい直径にシフトしていることが認められた。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，この相違は，ゲルのキャリブレーションによるものと考えられる。このシフトは直線性があるように見え，下記の式：
０．８６ｘゲル直径＝ＩＭ 直径
により概算される。

表１は，伝統的なゲル電気泳動測定を用いて種々のリポ蛋白質画分に割り当てられた標準的なクラスおよびサブクラスの意味を記載する：超低密度リポ蛋白質（ＶＬＤＬ），そのサブクラスＶＬＤＬ ＩおよびＩＩ；中間密度リポ蛋白質（ＩＤＬ），そのサブクラスＩＤＬ ＩおよびＩＩ，；低密度リポ蛋白質（ＬＤＬ），そのサブクラスＩ，ＩＩａ，ＩＩｂ，ＩＩＩａ，ＩＩＩｂ，ＩＶａおよびＩＶｂ；および高密度リポ蛋白質（ＨＤＬ），これは典型的にはいくつかのサブクラス，例えば，ＨＤＬ ＩＩａ，ＩＩｂ，ＩＩＩａ，ＩＩＩｂ，およびＩＩＩｃを含む。

いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，差異荷電粒子移動度分析の直径とゲル電気泳動の直径との間に認められる相違は，電気泳動ゲルに加えられた固有の電界の影響下においてゲルマトリクスと相互作用したリポ蛋白質のゆがみにも起因すると考
えられる。サイズの相違はまた，粒子密度（分析用超遠心分離による分離から得られた）を電子顕微鏡から得られた粒子サイズに変換するために用いた歴史的データによるものであるかもしれない。

本明細書において用いる場合，“カイロミクロン”とは，７０−１２０ｎｍのサイズであり，対応する密度が１．００６ｇ／ｍＬ未満である生物学的粒子を意味する。カイロミクロンは，心臓疾患，例えばＣＨＤの予測において臨床的意義を有するとは見いだされていない。

“ＡｐｏＡ”は，当該技術分野において知られるように，ＨＤＬの蛋白質成分である。“ＡｐｏＢ”はＬＤＬ，ＩＤＬ，Ｌｐ（ａ），およびＶＬＤＬの蛋白質成分であり，実際に低密度リポ蛋白質の主要なアポリポ蛋白質であり，当該技術分野において知られるようにヒト遺伝子座２ｐ２４−ｐ２３を有する。

本明細書において用いる場合，“アルブミン”とは，当該技術分野において知られるように，血漿の約６０％を構成し，約１．３５ｇ／ｍＬの密度を有する偏在蛋白質を表す。

“Ｌｐ（ａ），”および“リポ蛋白質（ａ）”とは，血清中に見いだされ，ＩＤＬおよびＬＤＬとは異なる分子組成を有するある種のリポ蛋白質を表し，アポリポ蛋白質ａ［ａｐｏ（ａ）］との複合体として見いだされる。Ｌｐ（ａ）は，ＬＤＬおよびＩＤＬと重複する粒子サイズを有しており，したがって，Ｌｐ（ａ）粒子がサンプル中に存在すると，粒子サイズ分析が干渉されうる。ある患者は，天然に生ずる低いＬｐ（ａ）濃度を有しているが，ＬＤＬサイズ測定の前にＬｐ（ａ）を除去して，さもなくば有意なＬｐ（ａ）濃度を有する患者について不正確な測定値を与えることを回避することは，優れた実務であると考えられる。このようにして，Ｌｐ（ａ）によるサイズ干渉問題の可能性を回避することができる。

本発明は，差異荷電粒子移動度分析において用いるための装置および方法，および差異荷電粒子移動度分析用のサンプルの調製を企図する。差異荷電粒子移動度分析は，電界を通る空気の層流中で行うと，所定のサイズおよび電荷状態をもつ粒子は予測可能な様式で振る舞うという原理を利用している。したがって，差異荷電粒子移動度分析は，荷電粒子を電界に暴露したときに，分析すべき荷電粒子のサイズを判定する手法である。

電気的移動度はイオンの物理学的な特性であり，イオンに電界を与えたときにイオンが獲得する速度に関連する。電気移動度Ｚは次のように定義される：
（Ｖ＝終端速度，Ｅ＝粒子運動を引き起こす電界）
粒子直径は次式から得られる：
（ｎ＝粒子上の電荷の数（この場合には１個の電荷），ｅ＝１．６×１０^-19クーロン／
電荷，Ｃ_c＝粒子サイズ依存性スリップ補正係数，η＝気体粘度，ｄ＝粒子直径）
したがって，ｄについて解くと，以下の関係が得られる：

すなわち，既知のパラメータの関数として粒子直径について明確な相関が得られる。パラメータを異なる値に設定することにより，異なる粒子直径の荷電粒子を選択することができ，これは以下に詳細に説明され，当該技術分野において知られている。差異荷電粒子移動度分析の好ましい方法においては，分析の間に荷電粒子に作用する電界強度Ｅを変化させる。

差異荷電粒子移動度分析においては，粒子（例えばリポ蛋白質等）は，一連の空気の層流を用いてシステム中を運ばれる。揮発性溶液中のリポ蛋白質を約５％のＣＯ₂を含むエ
レクトロスプレーチャンバに導入し，ここでリポ蛋白質を脱溶媒和させる。エレクトロスプレーチャンバにおいては，脱溶媒和され，荷電したリポ蛋白質を，例えば，限定されないが，チャンバ中のα粒子エミッタにより導入されるイオン化空気で中和する。Ｆｕｃｈの式にしたがって，予測可能な割合の粒子が単一の電荷をもってチャンバから現れ，チャンバから差異移動度分析装置（ＤＭＡ）に運搬される。Ｆｕｃｈの式の詳細については，Ｆｕｃｈｓ，Ｎ．Ａ．：Ｔｈｅ Ｍｅｃｈａｎｉｃｓ ｏｆ Ａｅｒｏｓｏｌｓ，Ｍａｃｍｉｌｌａｎ，１９６４を参照。“差異移動度分析装置，”“ＤＭＡ”および同様の用語は，荷電粒子をイオン電気移動度に基づいて分類するための装置を表し，これは当該技術分野において知られており，下記に説明される。差異荷電粒子移動度分析においては，粒子が既知の均一な電荷をもつ場合，分類された粒子のサイズはその移動度から決定することができる。ＤＭＡ中では，粒子はチャンバの上部外表面から入り，早く流れる空気の層流（すなわち“シースフロー”）中を運ばれる。シースフローはフィルターを通した空気（粒子を除去するため）であり，２０Ｌ／分間の一定速度でＤＭＡを通って連続的に循環する。粒子がＤＭＡ（シースフローにより運ばれる）を通過するにつれて，チャンバを横切る電位は既知の速度で急速に上昇する。電位が変化するにつれて，異なる直径の粒子は，チャンバの底の内表面においてスリットを通して回収される。粒子は，その電荷および直径に依存して，ＤＭＡを通る非線形経路を進む。任意の所定の電位において，既知のサイズの粒子は回収スリットを通過することを可能とする経路をたどる。回収スリットを通過した粒子は，別の層流の空気流により捕らえられ，粒子カウンターに運ばれる。粒子カウンターは，例えばレーザー検出システムにより検出し計数することができるサイズに圧縮することにより粒子を拡大する。粒子が回収されたときにＤＭＡに適用された電位がわかれば，粒子直径およびそのサイズで存在する粒子の数を正確に決定することができる。異なる粒子サイズについて，このデータを時間の関数としてビンとして集積し記憶する。このようにして，任意の所定のサイズ範囲の粒子の数を測定し，データを集めるのに必要な時間，エレクトロスプレー装置に導入されるサンプルの流速，およびそのサイズでの荷電粒子の数に基づいて，粒子の濃度に変換することができる。

リポ蛋白質の単離および／または精製を企図する本発明の方法においては，最初のサンプル収集および調製は，当該技術分野においてよく知られる方法により行うことができる。典型的には，まず２−５ｍｌの空腹時血液標本を採取する。典型的には，少なくとも１２時間絶食した被検者にはカイロミクロンは存在しない。したがって，ＶＬＤＬサイズとカイロミクロンサイズの重複は絶食により回避される。次に，標本をまず遠心分離器（例えば，臨床遠心分離器）で，好ましくは約１０分間，約２０００ｘＧで分離する。この遠心分離は標本から細胞成分を除去するのに十分である。この過程の間に，より高密度の細胞成分はサンプルの底に階層化する。次に，上部にリポ蛋白質を含む残部のより低密度の血漿標本を，当該技術分野においてよく知られる方法，例えば吸引により取り出す。

歴史的には，遠心分離用の調製においては，血漿標本を，塩化ナトリウム（ＮａＣｌ），臭化ナトリウム（ＮａＢｒ）等の無機塩の高純度溶液または固体を用いて，特定の密度に調節することができる。以前のプロトコルのいくつかにおいては，特定の密度は，密度階層が形成されたときにリポ蛋白質材料が浮遊するよう，分析すべきリポ蛋白質材料の最も高い密度と等しいかまたはそれより高いように選択される。“密度階層が形成される”との用語および同様の用語は，遠心分離に供される溶液における成分の階層化を表す。これらの密度は表１に示される。次に，密度調節したサンプルを例えば，約１８時間，１００，０００ｘＧで超遠心分離して，非リポ蛋白質性の蛋白質をリポ蛋白質から分離する。非リポ蛋白質性の蛋白質，特にアルブミンは，血漿標本から，好ましくは超遠心分離により除去することができる。リポ蛋白質は超遠心分離の間にサンプルに最上部に浮遊するであろう。したがって，最低密度から最高密度まで順番に密度調節して遠心分離することにより，リポ蛋白質の種々のクラスおよびサブクラスを順番に抽出することができる。典型的には，遠心分離したサンプルの抽出後に，密度の調節用に加えられた塩を除去するために透析工程が必要であろう。この透析工程は，典型的には，当該技術分野においてよく知られる条件下で，４−１２時間を要する。

本明細書に記載されるリポ蛋白質含有サンプルの遠心分離の条件は，生化学的分離の技術分野においてよく知られている。例えば，限定されないが，サンプルは，典型的には，１０℃で，１−４時間，２２３，０００ｘＧで遠心分離する。ある態様においては，遠心分離は，５０，０００−１００，０００，１００，０００−１２０，０００，１２０，０００−１５０，０００，１５０，０００−２００，０００，２００，０００−２３０，０００，２３０，０００−２５０，０００ｘＧ，またはさらに高い力の遠心分離力を用いる。ある態様においては，遠心分離の時間は，１，２，２．２，２．４，２．６，２．８，３．０，３．１，３．２，３．３，３．４，３．５，３．６，３．７，３．８，３．９，４，５，６，７，８，９，１０，１１，１２，１３，１４，１５，１６，１７，１８時間，またはそれより長い。差異荷電粒子移動度による分析の前に，遠心チューブの最上部から脂質画分のアリコートを取り出し（例えば１０−２００μＬ），２５ｍＭ酢酸アンモニウム（ＡＡ），０．５ｍＭ水酸化アンモニウム（ｐＨ７．４）で希釈する（例えば１：８００）。有利には，本明細書に記載されるある態様においては，本発明の方法と組み合わせた透析工程は不要であり，このことにより分析に要する時間が短くなる。

リポ蛋白質を企図する本発明の態様においては，リポ蛋白質は，ＨＤＬ，ＬＤＬ，ＩＤＬ，Ｌｐ（ａ），およびＶＬＤＬからなる群より選択される。ある態様においては，リポ蛋白質はＨＤＬである。

本明細書に提供されるリポ蛋白質を企図する観点のある態様においては，リポ蛋白質は，当該技術分野においてよく知られる方法により，または本明細書に記載されるようにして得られる血漿標本に由来するものであることができる。“生物学的標本，”“生物学的サンプル”との用語および同様の用語は，外植された，採取された，または他の方法により回収された生物学的組織または液体を表し，例えば，限定されないが，全血，血清および血漿が挙げられる。血液の文脈において“血漿”との用語は，全血を固体と液体成分とに分離したときに得られる液体を表す。血液の文脈において“血清”との用語は，全血を凝固させた後に固体と液体成分とに分離したときに得られる液体を表す。本発明の観点のいずれかのある態様においては，生物学的標本はヒト起源のものである。本明細書に記載される観点のいずれかのある態様においては，生物学的標本は血清である。本明細書に記載される観点のいずれかのある態様においては，生物学的標本は血漿である。

遠心分離を企図する本発明のある態様においては，遠心分離は平衡に到達しない。“遠心分離平衡”および同様の用語は，当該技術分野においてよく知られるように，遠心分離された溶液の成分が中性密度浮力に達するよう十分な時間，十分な遠心分離力で行われる
遠心分離を表す。驚くべきことに，本明細書に記載される遠心分離平衡に到達しないような短縮化した遠心分離プロトコルが，それにもかかわらずリポ蛋白質の有意な精製を与えうることが見いだされた。

リポ蛋白質および非リポ蛋白質成分を含有するサンプルの遠心分離を企図する本発明のある態様においては，遠心分離の後に精製したリポ蛋白質を遠心チューブの最上部から回収する。“遠心チューブの最上部”および同様の用語は，遠心分離ローターの外側から見たときに，遠心チューブの上部に存在する液体を表し，これは最も上部の液体を含んでいてもよいが，必ずしもそうでなくてもよい。

リポ蛋白質の精製に関する本発明のいずれかの方法に加えて，驚くべきことに，溶液の密度を約１．２１ｇ／ｍＬ以下に低下させ，平衡に達しないよう遠心分離することにより，ＬＤＬおよびＨＤＬの回収，すなわち精製が実際に向上することが見いだされた。

リポ蛋白質密度は，当該技術分野においてよく知られる様々な物理学的，生化学的方法，例えば，限定されないが，平衡密度超遠心分離および分析用超遠心分離により直接決定することができる。リポ蛋白質密度はまた粒子サイズおよび粒子サイズと密度との既知の関係に基づいて間接的に決定してもよい。リポ蛋白質サイズは，当該技術分野においてよく知られる種々の生化学的方法，例えば，限定されないが，本明細書に記載される方法により決定することができる。

イオン移動度分析は，イオン電気移動度分析または荷電粒子移動度分析としても知られており，本明細書に記載される他の方法と比較して，物理学的原理に基づいて粒子サイズを正確に測定するのみならず，それぞれのサイズに存在する粒子の数を直接計数し，このことにより各リポ蛋白質についてリポ蛋白質のサイズおよび濃度を直接測定することができるという点において利点を有する。イオン移動度分析は，エアロゾル中の粒子の分析に日常的に用いられており，イオン移動度分析に適した分析装置は，大きな生物学的高分子を分析するよう適合されている。イオン移動度分析は非常に感度が高くかつ正確な方法論であるが，それにもかかわらず，イオン移動度分析は系に導入されたすべての粒子を測定するという欠点を有する。したがって，分析の前に目的とする化合物を単離および／または精製することがきわめて重要である。リポ蛋白質はこの方法の候補である。これは，リポ蛋白質は密度および本明細書に記載される他の特徴に基づいて他の血清蛋白質から単離することができるためである。

種々の密度の溶液を用いて遠心分離することにより精製した，血漿サンプルからのリポ蛋白質の差異荷電粒子移動度の結果の例を図１に示す。これらの実験においては，血清サンプル（２５ｕＬ）を，４つの異なる密度の塩（ＫＢｒ）溶液のクッション（２００ｕＬ）上に重層した。溶液の密度は，１．１６５，１．１７０，１．１８１，および１．２３ｇ／ｍＬであった。各サンプルを２２３，０００ｘＧで３．７時間超遠心分離した。遠心分離後に最上部の１００μＬを取り出した。各密度から分画したリポ蛋白質サンプルを，酢酸アンモニウム（２５ｍＭ），水酸化アンモニウム（０．５ｍＭ）（ｐＨ７．４）に対して一晩透析した。透析の後，各サンプルを差異荷電粒子移動度により分析した。得られたプロファイルを図１に示す。１．２３ｇ／ｍＬより低い密度において見られるＨＤＬ領域におけるリポ蛋白質プロファイルにおいて減少が明らかである。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，この知見は，より低い塩溶液を用いると血漿蛋白質がより効率よく除去できるためであると考えられる。

さらに図１を参照すると，横軸は粒子サイズ（すなわち直径）であり，縦軸は任意スケールの質量である。粒子質量対独立変数（例えば，サイズ，密度，移動度等）分布における曲線の下の面積は，リポ蛋白質粒子質量を直接代表する。測定手法は，個々の粒子をサ
イズ（直径）の関数として計数することに依存している。したがって，粒子の体積および密度を用いて，特定のサイズをもつ粒子の数を質量の値に変換することが可能である。リポ蛋白質の密度は，よく知られるように粒子サイズの関数であり，例えば，文献から入手可能である。図に示される質量の値は，相対値を示すよう単純に拡大／縮小されているが，希釈係数ならびにイオン移動度分光光度計を通過するサンプルおよび空気の流速を用いて，血漿中のリポ蛋白質の実際の質量に変換することができる。したがって，ある態様においては，非平衡遠心分離の前に，リポ蛋白質含有溶液の密度をより高い密度のリポ蛋白質（例えばＨＤＬ）を分離することが予測されるよりも低い値に調節することにより，実際にＨＤＬおよびＬＤＬを分離することができる。有益なことに，リポ蛋白質含有サンプルの密度を低下させる方法は，アルブミンからの分離も増加させる。

本明細書に提供されるリポ蛋白質および非リポ蛋白質成分を含むサンプルの遠心分離を企図する観点のある態様においては，第１の溶液はＤ₂Ｏを含む。ある態様においては，
第１の溶液の密度は，Ｄ₂Ｏの含有量により実質的に決定され，ここで，第１の溶液は１
．００−約１．１０ｇ／ｍＬの密度を有する。Ｄ₂Ｏの密度は２５℃で約１．１０７ｇｍ
／ｍＬである。したがって，本発明のある態様においては，水性成分は０−９９％またはそれより多いＤ₂Ｏを含む。ある態様においては，Ｄ₂Ｏの量は，例えば，限定されないが，１０−９９，２０−９９，３０−９９，４０−９９，５０−９９，１０−９０，２０−９０，３０−９０，４０−９０，５０−９０％等の範囲内である。ある態様においては，Ｄ₂Ｏの含有量は特定の値，例えば，限定されないが，約１，２，５，１０，２０，３０
，４０，５０，６０，７０，８０，９０，９５，９６，９７，９８，９９％のＤ₂Ｏであ
り，１００％であってもよい。ある態様においては，第１の溶液は実質的にＤ₂Ｏである
。“本質的にＤ₂Ｏ”との用語は，さらに加えられたＨ₂Ｏを含まない水性成分を含むＤ₂
Ｏを表す。“実質的にＤ₂Ｏ”との用語および同様の用語は，Ｄ₂Ｏの含有量が５０％より高い範囲，例えば，限定されないが，５５％，６０％，６５％，７０％，７５％，８０％，８５％，９０％，９５％，９９％のＤ₂Ｏであり，１００％であってもよいことを表す
。

この観点のある態様においては，リポ蛋白質含有サンプルは塩を含まないか，あってもほとんど含まない。図２（実験条件は実施例１に示される）を参照すると，Ｄ₂Ｏを用い
，密度調節用の追加の塩なしで，およびＤ₂Ｏなしの低密度塩溶液で行った遠心分離手順
の結果が示される。２時間（Ｄ₂Ｏ）および３．７時間（低密度塩溶液）後に，ＬＤＬお
よびある種のＨＤＬ画分（例えば，ＨＤＬ−ＩＩｂおよびＨＤＬ−ＩＩａ）のほぼ同等の回収が認められた。さらに図２を参照すると，Ｄ₂Ｏおよび低密度塩遠心分離法について
のプロファイルは，同様のプロファイルが得られるが，それにもかかわらず，Ｄ₂Ｏサン
プルについては遠心分離時間が短いために，アルブミン（ＨＤＬ３領域の開始点のピーク）の増加が認められる。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，塩含有量の低下と，Ｄ₂Ｏを用いる密度の増加が同時に生ずると，リポ蛋白質含有サンプルから
のリポ蛋白質の遠心分離および精製に要する時間が短縮されるようである。

図３を参照すると，図３について用いられた条件（実施例２の実験条件）では，遠心分離後にＡｐｏＡ１およびＡｐｏＢのほぼ同等の回収が認められた。このことは，Ｄ₂Ｏを
用いて得られる低密度によっては，より大きく密度の低い粒子が選択的に回収されないことを示す。

遠心分離前にリポ蛋白質含有サンプル溶液の上に隣接してより密度の低い溶液を配置することによりリポ蛋白質を精製する本発明の方法のある態様においては，無機塩，好ましくはＮａＣｌおよび／またはＮａＢｒを用いてリポ蛋白質含有溶液の密度を１回調節する。例えば，遠心チューブ中のこのサンプルの上に，リポ蛋白質含有サンプル溶液の密度より低い密度を有する第２の溶液を重層することができる。あるいは，リポ蛋白質含有サン
プル溶液を遠心チューブ中の第２の溶液の下に導入してもよい。リポ蛋白質含有サンプルの密度調節は，表１の密度にしたがって１．００−約１．２１ｇ／ｍＬの範囲内で選択して，同じまたはより低い密度を有するリポ蛋白質のクラスを分離することができる。第２の溶液の密度は，１．００ｇ／ｍＬからリポ蛋白質含有サンプル溶液の密度のちょうど下までの範囲で，好ましくは１．００から約１．１５ｇ／ｍＬの範囲で，より好ましくは１．００ｇ／ｍＬとして選択することができる。このようにして，リポ蛋白質含有サンプル溶液より低い密度を有するＨＤＬ，ＩＤＬ，ＬＤＬ，Ｌｐ（ａ）およびＶＬＤＬリポ蛋白質を同時に抽出することができる。驚くべきことに，遠心チューブ中のリポ蛋白質含有溶液に，リポ蛋白質含有溶液の上に隣接して低い密度を有する溶液を提供することにより，遠心分離による分離を用いるリポ蛋白質の回収が増加することが見いだされた。好ましい態様においては，リポ蛋白質含有画分は，チューブの最も上部のメニスカスから下方向にほぼ所望の容量で取り出す。

これらの方法に加えて，低密度サンプルでは，より高い密度のサンプルについて必要な対応する時間と比較して，リポ蛋白質含有サンプルの遠心分離による分離に要する時間が短くなることが見いだされた。遠心分離による分離の文脈において，“対応する時間”および同様の用語は，遠心分離の間の遠心分離力が同等であるときに，特定のレベルの分離を達成するのに必要な遠心分離の時間の長さを表す。例えば，限定されないが，典型的なリポ蛋白質含有サンプルから十分なアルブミンを除去するのに少なくとも２時間の遠心分離（例えば，２３０，０００ｘＧ）が必要であり，遠心分離時間がより短いと，アルブミンの除去が少なくなることが見いだされた。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，サンプルの密度を低くすることにより，アルブミン，および実際に他の非リポ蛋白質の血漿蛋白質はより容易に階層化され，したがってリポ蛋白質から分離されるようである。したがって，リポ蛋白質の精製を最適化するうえで鍵となる因子は，遠心分離の時間を短くして，ＨＤＬを保持しながらアルブミンおよび他の血漿蛋白質の損失を最大にすることである。

本明細書に提供される，リポ蛋白質および非リポ蛋白質成分を含むサンプルの遠心分離を企図する観点のある態様においては，サンプルはさらに，当該技術分野において知られるように，その中にある選択されたリポ蛋白質成分用の沈殿剤として作用することができる化合物を含む。“沈殿剤”とは，生物分子の溶液に加えたときに生物分子の沈殿を引き起こすかこれを促進することができる化合物を表す。沈殿剤は，沈殿を生じさせるために追加の試薬を必要とする場合がある。“沈殿を生じさせるための追加の試薬”および同様の用語は，沈殿剤とともに作用して，沈殿剤による沈殿を生じさせるために必要な化合物を表す。沈殿剤の例としては，限定されないが，荷電無機イオンの塩，好ましくは硫酸アンモニウム，抗体，荷電ポリマー（例えばＤＳ等）（任意にイオン種（例えば二価カチオン）の存在下で），レクチン等が挙げられる。ある態様においては，沈殿剤は，リポ蛋白質が沈殿しない条件下（例えば，ｐＨ，濃度，必要な追加の試薬の欠失等）であっても存在する。ある態様においては，沈殿剤はＤＳである。ある態様においては，沈殿物剤はＤＳであり，必要な追加の薬剤は二価カチオンである。ある態様においては，リポ蛋白質含有サンプルはＤＳを含むが二価カチオンを含まない。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，ＤＳは二価カチオンの存在下で脂質を含む粒子に結合し，ＤＳの結合は非特異的結合相互作用を妨害し，このことによりある種のリポ蛋白質の回収が促進されると考えられる。例えば，限定されないが，ＤＳを含めることにより，本明細書に記載されるいくつかの調製物からのＬＤＬの回収が著しく改善される。

リポ蛋白質および非リポ蛋白質成分を含むサンプルの遠心分離を企図する本明細書に提供される観点のある態様においては，サンプルはさらに，アルブミンとアルブミン結合化合物との複合体が形成するのに適した条件下で，アルブミン結合化合物を含む。代表的なアルブミン結合化合物としては，限定されないが，芳香族性アルブミン結合染料が挙げら
れる。芳香族性アルブミン結合染料としては，ジアゾ染料；前記ジアゾ染料のアルカリ金属塩，アルカリ土類金属塩，またはアミン塩；スルホン酸染料；前記スルホン酸染料の生理学的に許容しうるアルカリ金属塩，アルカリ土類金属塩，またはアミン塩；またはこれらの混合物が挙げられる。本発明において特に有用な芳香族性アルブミン結合染料としては，Ｒｅａｃｔｉｖｅ Ｂｌｕｅ２，Ｅｖａｎｓ Ｂｌｕｅ，Ｔｒｙｐａｎ Ｂｌｕｅ，Ｂｒｏｍｃｒｅｓｏｌ Ｇｒｅｅｎ，Ｂｒｏｍｃｒｅｓｏｌ Ｐｕｒｐｌｅ，Ｍｅｔｈｙｌ Ｏｒａｎｇｅ，Ｐｒｏｃｉｏｎｒｅｄ ＨＥ３Ｂ等が挙げられる。ある態様においては，アルブミン結合化合物は，ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ）の類似体である。アルブミン結合化合物として用いるのに適した代表的なＮＡＤ類似体としては，限定されないが，ＲＧ１９，およびＣｉｂａｃｒｏｍ Ｂｌｕｅ ３ＧＡ（ＣＢ３ＧＡ）が挙げられる。

アルブミン結合化合物の使用を企図する方法の態様においては，アルブミン結合化合物とリポ蛋白質含有サンプルを混合した後，サンプルを本明細書に記載されるようにして遠心分離する。ある態様においては，アルブミン結合化合物はクロマトグラフィー媒体とコンジュゲートさせ，このコンジュゲートは，アルブミン結合化合物と複合体化したアルブミンを，例えば，限定されないが，濾過により除去することを容易にする。ある態様においては，コンジュゲートしたアルブミン結合化合物は，遠心チューブの底に階層化して観察され，このことによりリポ蛋白質含有画分の除去（例えば吸引等により）が容易になる。アルブミン結合化合物をクロマトグラフィー媒体とコンジュゲートさせたある態様においては，クロマトグラフィー媒体は，常磁性体粒子，デキストラン，アガロースまたはＳｅｐｈａｄｅｘ（登録商標）であることができ，好ましくは，当該技術分野において知られるデキストラン“常磁性体粒子”は，リガンド，例えば，限定されないが，ストレプトアビジンでコーティングされたマグネタイトコアを有する粒子を表す。ビオチンのストレプトアビジンに対する親和性（Ｋ_d＝１０^-15Ｍ）は，生物学において，最も強くかつ安定な相互作用の１つである。すなわち，常磁性体粒子は，慣用の磁気分離技術と，汎用の高親和性の相互作用，例えばビオチン−ストレプトアビジン相互作用とを組み合わせたものである。デキストランコンジュゲート化アルブミン結合化合物は，本明細書に記載される他のコンジュゲート化クロマトグラフィー媒体より長い間溶解したままである傾向があることが観察されている。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，アルブミン結合化合物がリポ蛋白質含有サンプル中のアルブミンと長い時間相互作用できればできるほど，より多くのアルブミン含有複合体が形成され，このことによりリポ蛋白質の純度および回収率が増加すると考えられる。

アルブミン結合化合物の使用を企図する方法のさらに別の態様においては，アルブミン結合化合物は，遠心分離の間に，血漿サンプルから回収されるリポ蛋白質の量および相対比を有意に変更することなく，５０ｍｇ／ｍＬまで，またはさらにそれより高い濃度で存在する。例えば，図４を参照すると，遠心分離前に種々の量のＲＧ１９を含むリポ蛋白質含有サンプルの差異荷電粒子移動度分析は，デキストラン（ＲＧＤ）とコンジュゲートさせたＲＧ１９を含めることにより，リポ蛋白質の分布にはほとんど影響を与えることなく，リポ蛋白質が回収される。図１と図４を比較されたい。実施例３および図４を参照すると，ＨＤＬおよびＬＤＬの差異荷電粒子移動度プロファイルは類似しているが，ＲＧＤ濃度が増加するにつれて，ＨＤＬ３ピークの開始点におけるピーク（アルブミン）のサイズが低下している。さらに，より高い濃度におけるピークの高さは，低密度塩から３．７時間遠心分離した調製物において見られるものと同様である。別の態様においては，アルブミン結合化合物の濃度は，例えば，限定されないが，１，２，５，１０，１５，２０，２５，３０，３５，４０，４５ｍｇ／ｍＬであり，５０ｍｇ／ｍＬであってもよい。

ある態様においては，本発明は，ＤＳとの組み合わせでのアルブミン結合化合物の使用を提供する。図５を参照すると，ＲＧＤ，および任意にＤＳ，および任意に酢酸アンモニ
ウム（ＡＡ）を使用することにより，差異荷電粒子移動度分析により判定して，ＬＤＬおよびＨＤＬ画分の回収を調節することができる。実施例４および図５を参照すると，図５に示されるプロファイルのＨＤＬ領域には類似性があり，抽出中にＤＳが存在すると，ＨＤＬの回収が増加する。さらに，低いアルブミンピーク高さが観察された。ＨＤＬ２ａ（図５）中の１つの調製物中のピークの増加は典型的には再現性がないと考えられる。また，顕著なことは，ＬＤＬの回収の増加である。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，ここに示される結果は，抽出および希釈剤中に存在するＤＳが最良の回収および再現性を与えることを示唆する。

ある態様においては，本発明の方法により得られる精製したリポ蛋白質含有サンプルは，差異荷電粒子移動度分析の前にさらに希釈する。図６および実施例５を参照すると，差異荷電粒子移動度分析の前に２５ｍＭ酢酸アンモニウムで１：２００に希釈する工程において，ＤＳ（＋／−５ｕｇ／ｍＬ）の存在または非存在の影響を評価した。図６に示されるように，ＤＳの存在下ではＬＤＬのピーク高さが有意に増加し，一方ＨＤＬのピークプロファイルは比較的影響を受けない。

ある観点および態様においては，本発明は，遠心チューブ中でリポ蛋白質含有サンプルの下にこれと隣接して，クロマトグラフィー媒体とコンジュゲートさせたアルブミン結合化合物をＤＳと組み合わせて，さらにＤ₂Ｏ溶液と組み合わせて用いる方法を企図する。
このプロトコルを利用する典型的な手順は実施例６に記載される。

本明細書に提供される，リポ蛋白質および非リポ蛋白質成分を含むサンプルの遠心分離を企図するある態様においては，サンプルはさらに，非リポ蛋白質成分と結合して非リポ蛋白質／非リポ蛋白質捕捉リガンド複合体を形成しうる非リポ蛋白質捕捉リガンドを含み，さらに，遠心分離は，非リポ蛋白質／非リポ蛋白質捕捉リガンド複合体をリポ蛋白質成分から分離させる。“非リポ蛋白質捕捉リガンド”および同様の用語は，リポ蛋白質ではない血漿成分と結合する化合物を表す。例示的非リポ蛋白質捕捉リガンドとしては，限定されないが，当該技術分野において理解されるように，抗体およびアプタマーが挙げられる。例えば，限定されないが，抗原（すなわち，非リポ蛋白質）からの抗体（すなわち，非リポ蛋白質捕捉リガンドとして）の分離は，種々の方法，例えば，温度，ｐＨ，塩濃度等の調節により実施することができる。さらに別の例としては，限定されないが，アプタマー（すなわち，非リポ蛋白質捕捉リガンドとして）のアプタマー標的（すなわち，非リポ蛋白質）からの分離は，種々の方法，例えば，温度，ｐＨ，塩濃度，ＤＮａｓｅまたはＲＮａｓｅ等の調節により実施することができる。

本明細書に提供される，リポ蛋白質および非リポ蛋白質成分を含むサンプルの遠心分離を企図する観点のある態様においては，サンプルはさらに，リポ蛋白質成分と結合してリポ蛋白質／リポ蛋白質捕捉リガンド複合体を形成しうるリポ蛋白質捕捉リガンドを含み，遠心分離により，リポ蛋白質／リポ蛋白質捕捉リガンド複合体が非リポ蛋白質成分から分離される。“リポ蛋白質捕捉リガンド”および同様の用語は，リポ蛋白質と結合する化合物を表す。リポ蛋白質捕捉リガンドの例としては，限定されないが，当該技術分野において理解されるように，抗体およびアプタマーが挙げられる。好ましい態様においては，リポ蛋白質捕捉リガンドは抗体である。

本明細書に提供される観点の，リポ蛋白質および非リポ蛋白質成分を含むサンプルの遠心分離を企図しないある態様においては，この方法は，リポ蛋白質成分と結合してリポ蛋白質／リポ蛋白質捕捉リガンド複合体を形成しうるリポ蛋白質捕捉リガンドを企図する。

“アプタマー”との用語は，核酸，例えば，ＲＮＡまたはＤＮＡから構成され，特定の分子標的に強く結合する高分子を表す。“結合する”，“結合”および同様の用語は，分
離を可能とするのに十分に安定な複合体を生ずる相互作用または複合体形成を表す。ある態様においては，アプタマーはＡｐｏＡ１，ＡｐｏＢ，またはＡｐｏ（ａ）に特異的に結合する。本発明に有用なアプタマーを製造しスクリーニングする方法は，当該技術分野においてよく知られている。例えば，Ｇｒｉｆｆｉｎ ｅｔ ａｌ．，米国特許５，７５６，２９１（その全体はすべての目的のために本明細書に参照として組み込まれる）を参照。

当該技術分野において実施されているように，アプタマーの選択（すなわち学習）の方法には，ランダム配列と，続くポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）増幅においてプライマー結合部位として作用する既知の配列のフランキング領域との両方を含む一本鎖ランダムＤＮＡオリゴマーのプールが必要である。そのようなＤＮＡオリゴマーは，当該技術分野においてよく知られる慣用の合成法を用いて生成される。最初のかつ任意の工程として，ＰＣＲ増幅を慣用の方法により行い，増幅されたプールをデュープレックスＤＮＡをそのままにしておくか，または鎖分離の後に一本鎖ＤＮＡとして用いる。任意に，ＲＮＡに転写してもよい。この文脈において，“オリゴマープール”との用語は，そのような一本鎖またはデュープレックスＤＮＡ，またはここから転写されたＲＮＡを表す。“洗練された（ｒｅｆｉｎｅｄ）オリゴマープール”との用語は，本明細書に記載される少なくとも１ラウンドの選択に供されたオリゴマープールを表す。

上述のアプタマー学習に加えて，標的分子がその上に結合しているカラムまたは他の支持マトリクス（すなわち，標的が結合した支持体）を用いて“選択”工程を行う。結合は，当該技術分野においてよく知られるように，共有結合手段によるものでも非共有結合手段によるものでもよい。オリゴマープール，または洗練オリゴマープール，および標的を結合した支持体を，オリゴヌクレオチド−標的複合体を形成させるためにインキュベーションし，例えば，当該技術分野においてよく知られる方法による洗浄により，オリゴマープールまたは洗練オリゴマープールの複合体を形成しない画分を支持体環境から除去する。次に，当該技術分野においてよく知られる方法によりオリゴヌクレオチドを除去すると，前のオリゴマープールまたは洗練オリゴマープールと比較して標的に対する特異性が高まった洗練されたオリゴマープール画分が得られる。

あるいは，上述のアプタマー学習には，“逆選択”工程を用いることができ，この工程では，生物学的サンプルの他の構成成分に結合するアプタマーが選択される。この場合には，生物学的サンプルの他の構成成分がその上に結合しているカラムまたは他の支持マトリクス（すなわち，構成成分が結合した支持体）を用いる。オリゴマープールまたは洗練オリゴマープールと，構成成分と結合した支持体とを，オリゴヌクレオチド−結合成分複合体を形成させるためにインキュベーションし，例えば，当該技術分野においてよく知られる方法による洗浄により，オリゴマープールまたは洗練オリゴマープールの複合体を形成しない画分を支持体環境から除去する。続いて，当該技術分野においてよく知られる方法によりオリゴヌクレオチドを除去すると，前のオリゴマープールまたは洗練オリゴマープールと比較して生物学的サンプルの他の構成成分に対する特異性が高まった洗練されたオリゴマープール画分が得られる。逆選択工程において用いられる生物学的サンプルの他の構成成分の例としては，限定されないが，イムノグロブリンおよびアルブミンが挙げられる。

典型的な生成学習スキームにおいては，標的または生物学的サンプルの他の構成成分との複合体化の後に回収されたオリゴヌクレオチドをＰＣＲ増幅に供する。次に，標的または生物学的サンプルの他の構成成分への結合および特異性が高まった洗練されたオリゴマープールを与えるために，選択／増幅工程を典型的には３から６回繰り返す。このようにして得られる増幅された配列をクローニングし，配列決定することができる。任意に，標的に特異的な複数の個別のアプタマー配列が得られ，配列決定された場合には，当該技術
分野においてよく知られるように，一対でのまたは多数のアラインメント実験を行うことにより，“ヌクレオチド配列または任意に連続したヌクレオチドの領域が同定され，その存在がアプタマーの標的への結合と相関しているコンセンサス配列”を解明することができる。コンセンサス配列が同定されれば，慣用の合成または組換え手段によりコンセンサス配列を含むオリゴヌクレオチドを作製することができる。

“抗体”との用語は，高い親和性および高い特異性をもって抗原（例えば，リポ蛋白質またはサンプルの他の成分）と結合するイムノグロブリンを表す。この文脈において，“高い親和性”とは，例えば，限定されないが，１μＭ，１００ｎＭ，１０ｎＭ，１ｎＭ，１００ｐＭまたはそれより低い解離定数を表し，抗体と，抗体がそれに対して生成された抗原との結合反応を特徴づける。“生成される”との用語は，当該技術分野において長く知られている方法により高親和性抗体を製造することを表す。さらに，この文脈において，“高い特異性”との用語は，試験抗体が非標的抗原と比較して標的抗原に優先的に結合することを表し，試験抗体がそれに対して生成された標的抗原に優先的に結合する解離定数の比率，例えば，限定されないが，１，２，５，１０，２０，５０，１００，２００，５００，１０００，１００００またはそれ以上の比率により特徴づけられる。

本発明により企図される，抗体およびアプタマーを誘導化する方法としては，例えば，限定されないが，ビオチン化が挙げられる。ある態様においては，抗体またはアプタマーをビオチン化して，続くアビジンコンジュゲート化マトリクス，例えば，限定されないが，アビジンクロマトグラフィーカラムにおける単離により，当該技術分野においてよく知られる生化学的精製法による分離が容易になるようにする。ある態様においては，リポ蛋白質との複合体中のビオチン化抗体またはアプタマーをさらにストレプトアビジンコンジュゲート化磁気ビーズに供する。次に，リポ蛋白質−ビオチン化アフィニティー試薬−ストレプトアビジンの三者がコンジュゲートした磁気ビーズ複合体を，当該技術分野においてよく知られる免疫磁気方法により単離する。

この観点のある態様においては，リポ蛋白質捕捉リガンドは，当該技術分野においてよく知られる適当なリンカーを用いて固体支持体に結合させる。例示的固体支持体としては，限定されないが，常磁性体粒子，ビーズ，ゲルマトリクス材料（例えば，アガロース，Ｓｅｐｈａｄｅｘ（登録商標））等が挙げられる。

この観点に加えて，ある態様においては，本発明は，遠心分離の前にサンプルからＬｐ（ａ）を除去する方法を提供する。この方法は，以下の工程を含む：（ａ）サンプルを，Ｌｐ（ａ）が沈殿するのに十分な条件下で，ＡｐｏＢ含有リポ蛋白質用の沈殿剤と混合することによりＬｐ（ａ）の沈殿物を形成し；そして（ｂ）Ｌｐ（ａ）含有沈殿物を第１の溶液から単離する。“ＡｐｏＢ含有リポ蛋白質用の沈殿剤”および同様の用語は，当該技術分野においてよく知られるように，ＡｐｏＢを沈殿させることが知られている化合物を表す。

本明細書に記載される遠心分離法により回収されたリポ蛋白質の精製を企図する本発明のある態様においては，本発明は，回収されたリポ蛋白質からＬｐ（ａ）を除去する方法を提供し，この方法は，以下の工程を含む：（ａ）回収したリポ蛋白質を，Ｌｐ（ａ）が沈殿するのに十分な条件下で，ＡｐｏＢ含有リポ蛋白質用の沈殿剤と混合することによりＬｐ（ａ）の沈殿物を形成し；そして（ｂ）Ｌｐ（ａ）含有沈殿物を回収されたリポ蛋白質から単離する。

本明細書に記載される，リポ蛋白質を含む溶液からＬｐ（ａ）を除去するための方法に加えて，ＡｐｏＢ用の沈殿剤の例としては，限定されないが，二価カチオンの存在下におけるＤＳが挙げられる。ある態様においては，二価カチオンはＭｇ²⁺である。ＤＳを含め
ることにより，ＨＤＬの回収にはほとんど影響を与えることなく，ＬＤＬの回収が有意に増加することがわかった。ＤＳは，約０．１から５０ｍｇ／ｍＬの範囲の濃度でリポ蛋白質含有サンプルと混合することができる。ある態様においては，ＤＳの濃度は，約０．１，０．２，０．５，１．０，１．５，２．０，２．５，３．０，４．０，５．０，１０．０，１５．０，２０．０，２５．０，３０．０，４０．０ｍｇ／ｍＬであり，５０．０ｍｇ／ｍＬであってもよい。

さらに別の態様においては，本発明は，精製したＬｐ（ａ）を得る方法を提供し，この方法は以下の工程を含む：（ａ）本明細書に記載される方法のいずれかにしたがって得た沈殿物を含むＬｐ（ａ）を可溶化し；（ｂ）可溶化したＬｐ（ａ）を，Ｌｐ（ａ）−レクチン複合体が形成するのに適した条件下で，固体支持体に結合したレクチンを含む固体支持試薬と混合し；（ｃ）Ｌｐ（ａ）−レクチン複合体を単離し；そして（ｄ）Ｌｐ（ａ）をＬｐ（ａ）−レクチン複合体から放出させ，このことにより，例えば差異荷電粒子移動度分析に適した精製されたリポ蛋白質を提供する。

さらにこの方法では，レクチンは，小麦胚芽アグルチニン（ＷＧＡ），ライマメアグルチニン（ＬＧＡ），フィトヘマグルチニン（ＰＨＡ），およびカブトガニレクチン（ＨＣＬ）からなる群より選択することができる。ある態様においては，レクチンはＷＧＡであり，ある態様においては，固体支持体はアガロースを含む。そのようなレクチンを操作する方法，例えばＬｐ（ａ）と反応させて複合体を形成させること，そのような複合体を単離すること，およびレクチンを固体支持体に結合させることは，当該技術分野においてよく知られている。

さらにこの方法のある態様においては，放出工程は，Ｌｐ（ａ）−レクチン複合体をレクチンの競合リガンドで洗浄することを含む。ある態様においては，競合リガンドはＮ−アセチルグルコサミン（ＮＡＧ）である。ある態様においては，放出工程は，当該技術分野において知られるジスルフィド還元剤を用いるジスルフィド還元によりジスルフィド結合ａｐｏ（ａ）およびＡｐｏＢを還元し，このことによりＬＤＬを放出させることを含む。

本明細書に記載される遠心分離法により回収されたリポ蛋白質のさらなる精製を企図する本発明のある態様においては，本発明は，回収されたリポ蛋白質からＬｐ（ａ）を除去する方法を提供し，この方法は以下の工程を含む：（ａ）本明細書に記載される方法の任意のものにしたがって得られるＬｐ（ａ）含有沈殿物を可溶化し；（ｂ）可溶化したＬｐ（ａ）をガンマグロブリンおよびプロリンと混合し；（ｃ）沈殿剤を加えることにより混合物を沈殿させ；そして（ｄ）沈殿物からＬｐ（ａ）を回収し，このことにより差異荷電粒子移動度分析用に適した精製リポ蛋白質を与える。当該技術分野において知られるように，“ガンマグロブリン”とは，γ−クラスのイムノグロブリンを表す。沈殿剤の例としては，限定されないが，高度に荷電した無機イオンの塩が挙げられ，好ましくは硫酸アンモニウムである。本発明の態様に有用なガンマグロブリンの濃度は，０．０１−０．１ｕｇ／ｍＬ，０．１−１．０ｕｇ／ｍＬ，１．０−２．０−ｕｇ／ｍＬ，２．０−５．０ｕｇ／ｍＬ，５．０−１０．０ｕｇ／ｍＬ，１０．０−１００ｕｇ／ｍＬ，１００−１０００ｕｇ／ｍＬの範囲であることができ，さらに高くてもよい。プロリンの濃度は，１０ｕＭ−１００ｕＭ，１００−１００−ｕＭ，１−２ｍＭ，２−５ｍＭ，５−１０ｍＭの範囲であることができ，さらに高くてもよい。

回収されたリポ蛋白質を企図する本明細書に記載される方法に加えて，ある態様においては，リポ蛋白質含有溶液は不活性遠心分離マトリクスと接触している。本発明の遠心分離による精製方法の文脈において，“不活性遠心分離マトリクス”および同様の用語は，リポ蛋白質と化学的に反応しないが，それにもかかわらず精製を促進する材料を表す。い
かなる理論にも拘束されることを望むものではないが，不活性遠心分離マトリクスは，例えば，減速の間に，および／またはリポ蛋白質または他の画分をチューブからピペッティングする際に導入されるアルチファクトを最小限にするように，遠心分離の後に遠心分離チューブの内容物を安定化するよう作用すると考えられる。例示的不活性遠心分離マトリクスとしては，限定されないが，ゲルスラリーまたは不活性ビーズが挙げられる。ある態様においては，ゲルスラリーはＳｅｐｈａｄｅｘ（登録商標）ゲルマトリクスである。ある態様においては，不活性遠心分離マトリクスは不活性ビーズを含む。例示的不活性ビーズとしては，限定されないが，遠心チューブ中の第１の溶液の底に沈むよう適合されたガラスビーズ，ポリスチレンビーズ等が挙げられる。不活性ビーズは，慣用のサイズのいずれであってもよく，例えば，限定されないが，約０．１，０．２，０．５，０．６，０．７，０．８，０．９，１．０，１．１，１．２１．３，１．４，１．５，１．６，１．７，１．８，２．０，２．２，２．４，２．６，２．８，３．０，３．３，３．６，３．９，４．０ｍｍであることができ，あるいはこれより小さくても大きくてもよい。

ポリアニオン化合物および１またはそれ以上の二価カチオンを用いてリポ蛋白質を差異荷電粒子移動度分析用に精製する方法に関する本発明の観点のある態様においては，ポリアニオン化合物は，ＤＳ，アミロペクチンおよびポリビニル硫酸からなる群より選択され，好ましくはＤＳである。ある態様においては，二価カチオンは，Ｍｇ²⁺およびＣａ²⁺，好ましくはＭｇ²⁺からなる群より選択される。

ある態様においては，本発明は差異荷電粒子移動度分析用にリポ蛋白質を精製する方法を提供し，この方法は，遠心分離を含まない。ある態様においては，リポ蛋白質および非リポ蛋白質を含む溶液を，リポ蛋白質と結合してリポ蛋白質／リポ蛋白質捕捉リガンド複合体を形成しうる１またはそれ以上のリポ蛋白質捕捉リガンドと混合する。ある態様においては，リポ蛋白質／リポ蛋白質捕捉リガンド複合体が形成された後，そのように形成された複合体を，当該技術分野において知られる方法，例えば，限定されないが，免疫磁気法により単離する。ある態様においては，リポ蛋白質／リポ蛋白質捕捉リガンド複合体を単離した後，当該技術分野において知られ，本明細書に記載される方法により，リポ蛋白質／リポ蛋白質捕捉リガンド複合体からリポ蛋白質を放出させる。

別の観点においては，本発明は，差異荷電粒子移動度分析によりリポ蛋白質のサイズ分布を分析する方法を提供する。ある態様においては，１またはそれ以上のリポ蛋白質は，体液，例えば個体からの血漿標本から取得する。ある態様においては，１またはそれ以上のリポ蛋白質は，ＨＤＬ，ＬＤＬ，Ｌｐ（ａ），ＩＤＬおよびＶＬＤＬからなる群より選択される。ある態様においては，この方法はさらに，決定されたリポ蛋白質サイズ分布を用いて個体の評価を行う工程を含み，評価は，脂質に関連する健康上のリスク，心臓血管疾患，心臓血管疾患のリスク，および治療的介入に対する応答からなる群より選択される。

脂質に関連する健康上のリスク，心臓血管疾患，および心臓血管疾患のリスクの文脈において，“評価”とは，得られたリポ蛋白質のサイズ分布と，当該技術分野においてよく知られる人工死亡率およびリスク因子との統計学的相関を表す。治療的介入に対する応答の文脈においては，評価とは，治療的介入を実施する前および後のリポ蛋白質サイズ分布の比較を表す。治療的介入の例としては，限定されないが，当該技術分野において知られるように，血清コレステロールの低下，ＬＤＬ，ＩＤＬ，およびＶＬＤＬ，Ｌｐ（ａ）の低下，および／またはＨＤＬの上昇を目的として固体に薬剤を投与することが挙げられる。

ある態様においては，リポ蛋白質分析の結果は分析報告書として報告される。本発明により企図されるリポ蛋白質および他の脂質分析の文脈において，“分析報告書”とは，臨
床医，他のヘルスケア提供者，疫学者等に対して提供される報告書を表し，この報告書は，生物学的標本，例えば個体からの血漿標本の分析の結果を含む。分析報告書は，当該技術分野において知られるように，印刷された形態で，電子的な形態で，あるいは，その中のデータの分析，検討および／またはアーカイブに便利な任意の形態で表示することができる。分析報告書は，報告書の対象である個体に関する識別情報，例えば，限定されないが，氏名，住所，性別，識別情報（例えば，社会保障番号）等を含んでいてもよい。分析報告書は，当該技術分野において知られるか，および／または本明細書に記載されるように，サンプル中の脂質の生化学的特徴付け，例えば，限定されないが，トリグリセリド，総コレステロール，ＬＤＬコレステロール，および／またはＨＤＬコレステロール等の特徴付けを含んでいてもよい。分析報告書は，さらに，本明細書に記載される方法により調製されたサンプルについて行われたリポ蛋白質の特徴付け，およびその参照範囲を含んでいてもよい。“参照範囲”との用語および同様の用語は，個体の集団において通常典型的に観察される範囲を反映するものとして知られている生物学的サンプルの成分の濃度を表す。分析報告書におけるリポ蛋白質の特徴付けの例としては，差異荷電粒子移動度により決定した非ＨＤＬリポ蛋白質およびＬｐ（ａ）の濃度が挙げられる。例えば，本発明の方法により調製したサンプルについて行った差異荷電粒子移動度分析により測定されたリポ蛋白質の特徴付けのさらに別の例としては，ＶＬＤＬ，ＩＤＬ，Ｌｐ（ａ），ＬＤＬおよびＨＤＬ，およびこれらのサブクラスの濃度および参照範囲が挙げられる。分析報告書はさらに，例えば，本発明の方法により調整されたサンプルの差異荷電粒子移動度分析により得られるリポ蛋白質サイズ分布を含んでいてもよい。例示的分析報告書に含まれる項目は実施例７に示される。

実施例１−Ｄ₂Ｏおよび低塩溶液を用いるリポ蛋白質精製の比較
血清サンプル（２５ｕＬ）を，低密度塩溶液（１．１５１ｇ／ｍＬ）（すなわち，“低密度塩サンプル”）またはＤ₂Ｏ（各２００ｕＬ）のいずれかを用いて加工処理した。サ
ンプルを，２２３，０００ｘＧで３．７時間（低密度塩サンプル），または２時間（Ｄ₂
Ｏ）遠心分離した。遠心分離後に最上部１００ｕＬを取り出して，低密度塩サンプルを酢酸アンモニウム溶液に対して透析し，１：２００に希釈した後，差異荷電粒子移動度分析を行った。Ｄ₂Ｏサンプルは，遠心分離の直後に酢酸アンモニウムで１：２００に希釈し
た後，差異荷電粒子移動度分析を行った。差異荷電粒子移動度分析の結果を図２に示す。

実施例２−ＡｐｏＡ，ＡｐｏＢ，およびＴＣの回収に及ぼす精製の効果
Ｄ₂Ｏを用いる手順の間にＨＤＬ（ＡｐｏＡ１）が優先的に減少するか否かを評価する
ため，図３に示す３つのサンプル（すなわち，７４９，１０４３，１４：任意の固有の患者識別番号）について，Ｄ₂Ｏをアルブミンを除去するためのＲＧＤ／ＤＳ溶液（それぞ
れ７．５／２．５ｍｇ／ｍＬ）とともに用いて，リポ蛋白質を単離した。サンプルはそれぞれ６重に用意した。単離したそれぞれの最上部１００ｕＬを，ＡｐｏＡ１（ＨＤＬ），ＡｐｏＢ（ＬＤＬ，ＩＤＬ，ＶＬＤＬ）および総コレステロール（ＴＣ）についてそれぞれ分析した。血漿または血清アポリポ蛋白質ＡＩおよびＢは，標準化ＥＬＩＳＡにより，市販のモノクローナル捕捉抗体（Ｂｉｏｄｅｓｉｇｎ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ，Ｓａｃｏ，ＭＮ）および精製しビオチン化した抗ヒトヤギポリクローナル検出抗体（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ Ｃｏｒｐ．，Ｍｕｒｒｉｅｔａ，ＣＡ）を用いる非競合的サンドウィッチイムノアッセイで測定した。濃度は，ストレプトアビジンコンジュゲート化ペルオキシダーゼを加え，オルトフェニリンジアミンを用いて発色させることにより測定した。リポ蛋白質較正器は，ＣＤＣ＃１８８３血清参照材料（Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｄｉｓｅａｓｅ Ｃｏｎｔｒｏｌ，Ａｔｌａｎｔａ，ＧＡ）およびプールした参照血清（Ｎｏｒｔｈｗｅｓｔ Ｌｉｐｉｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｌｉｎｉｃ，Ｓｅａｔｔｌｅ，ＷＡ）を用いて標準化した。総コレステロールは，市販のアッセイキット試薬（Ｂａｙｅｒ Ｈｅａｌｔｈ Ｃａｒｅ，Ｔａｒｒｙｔｏｗｎ，ＮＹ）を用いて，
製造元の指針にしたがって，マイクロタイタープレートのウエルあたり２５μｌの血清または血漿プラス２００μｌのコレステロール試薬の分析用に改変して測定した。発色後，標準，対照，サンプルおよび試薬バックグラウンドをマイクロタイタープレートリーダーを用いて測定した。結果（図３）は，各血清中に存在する総量と比較した各サンプルの平均回収率を示す。いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，ＡｐｏＡ１とＡｐｏＢの回収が同等であったことからみて，精製手順によってＨＤＬは優先的に減少しなかった。

実施例３−リポ蛋白質画分回収に及ぼす種々のＲＧＤの影響
血清サンプルを，種々の量のＲＧＤ（１０，１５，２０，２５ｍｇ／ｍＬ）と混合し，氷上で１５分間インキュベーションした後，Ｄ₂Ｏのクッションの上に重層した。２２３
，０００ｘＧで１２０分間遠心分離した後，最上部の１００μＬを取り出し，酢酸アンモニウム溶液で１：２００に希釈した。次に，サンプルを差異荷電粒子移動度分析により分析した。結果を図４に示す。

実施例４−ＲＧ１９，ＤＳ，ＡＡを用いるリポ蛋白質の精製
図５を参照すると，抽出／精製物および希釈物の両方において，アルブミンの除去およびリポ蛋白質の回収に及ぼすＤＳの影響を評価するために，血清サンプル（５ｕＬ）を，２０μＬの７．５ｍｇ／ｍＬ ＲＧＤ単独（図５中“Ｃ／Ｄ”）または２０μＬの７．５ｍｇ／ｍＬ ＲＧＤと２．５ｍｇ／ｍＬ ＤＳとの組み合わせ（図５中“Ａ／Ｂ”）で抽出した。抽出および希釈の両方について，用いたＤＳの分子量は１０Ｋである。氷上で１５分間インキュベーションした後，各サンプルを２２３，０００ｘＧ，１０℃で，２時間１５分間遠心分離した。最上部の１００μＬを取り出し，２５ｍＭ酢酸アンモニウム溶液（図５中“Ｂ／Ｄ”）または５ｕｇ／ｍＬ ＤＳ（図５中“Ａ／Ｃ”）を含む２５ｍＭ酢酸アンモニウムのいずれかで１：２００に希釈した。

実施例５−希釈剤中でＤＳを用いたリポ蛋白質の精製の結果
図６を参照すると，当該技術分野においてよく知られる方法を用いて，１８時間の密度分離により調製したリポ蛋白質含有血清サンプルを透析後に用いて，希釈剤中のＤＳがＬＤＬの回収に及ぼす効果を評価した。遠心分離した血清サンプルのアリコートを２５ｍＭ酢酸アンモニウムでＤＳなしで１：２００に希釈し，差異荷電粒子移動度分析を行った。別のアリコートを２５ｍＭ酢酸アンモニウムで５μｇ／ｍＬのＤＳの存在下で１：２００に希釈した。各サンプルについて二重に行った試験の結果を図６に示す。

実施例６−ＲＧ１９，ＤＳ，Ｄ₂Ｏを用いるリポ蛋白質の精製
血漿から得たリポ蛋白質含有サンプルをボルテックスにより軽く混合した。５μＬのサンプルまたは任意に対照を，７．５ｍｇ／ｍＬのＲＧＤ（Ｓｉｇｍａ），２．５ｍｇ／ｍＬのＤＳ（Ｓｉｇｍａ）および０．５ｍｇ／ｍＬのＥＤＴＡ（Ｓｐｅｃｔｒｕｍ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）を含む２０μＬのアルブミン除去試薬と混合し，氷上で１５分間インキュベーションした。インキュベーションの後，サンプル混合物をＴｉ４２．２超遠心チューブ（Ｂｅｃｋｍａｎｎ）中の２００μＬのＤ₂Ｏ（Ｍｅｄｉｃａｌ Ｉｓｏｔｏｐｅｓ）
の上に重層した。次にサンプルを１０℃で２２３，０００ｘＧ（４２，０００ｒｐｍ）で１３５分間超遠心分離した。超遠心分離後，脂質画分（８５μＬ）を遠心チューブの最上部から取り出した。差異荷電粒子移動度による分析の前に，ＨＤＬ分析用に，サンプルを２５ｍＭ酢酸アンモニウム，０．５ｍＭ水酸化アンモニウム（ｐＨ７．４）で最終希釈１：８００に希釈した。ＬＤＬ分析用には，サンプルを５μｇ／ｍＬのＤＳを含む同じ希釈剤で１：２００に希釈した。最終希釈物はディープウエル９６ウエルプレート中に作製し，６℃に維持した冷却板付きオートサンプラーに置いた後，差異荷電粒子移動度分析を行った。

実施例７−血清サンプル中のリポ蛋白質の精製および分析の結果
静脈穿刺により採取した全血から血清を分離した。分離後，血清を３つに分けた。１つのアリコートは，当該技術分野においてよく知られる伝統的な方法を用いて，ＨＤＬ，トリグリセリド，および総コレステロールの含有量について分析した。ＬＤＬはこれらの結果から計算した。好ましい態様においては，トリグリセリドが４００ｍｇ／ｄＬより高い場合，ＬＤＬは直接測定した。第２のアリコートは，当該技術分野においてよく知られるイムノアッセイを用いて，そのＬｐ（ａ）含有量について分析した。第３のアリコートについて，差異荷電粒子移動度分析を用いてリポ蛋白質を分画した。

典型的な製造方法においては，サンプルを，対照，すなわち，当該技術分野において知られるように，ＬＤＬパターンＡ（対照Ａ）であることが知られている１つのサンプルおよびパターンＢ（対照Ｂ）であることが知られている１つのサンプルとともに，Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ ＪＡＮＵＳマルチプローブ装置に入れる。３０ｕＬの対照およびサンプルを別々のチューブに移し，混合し，１２０μＬのＲＧ１９デキストラン，ＤＳ，ＥＤＴＡ溶液を加える。次にチューブを氷上に移し，１５分間インキュベーションする。１５分間のインキュベーションの後，チューブをマルチプローブに戻す。別に，遠心チューブに２つの４ｍｍビーズを加え，次にこれをマルチプローブに入れ，ここで１２０μＬのＤ₂Ｏを各遠心チューブに加える。次に，対照およびサンプルをマルチプローブによりＤ₂Ｏに重層した後，超遠心分離ローター（Ｔｉ４２．２）に移す。次にサンプルを１０℃で２２３，０００ｘＧ（４２，０００ｒｐｍ）で１３５分間遠心する。遠心分離後，遠心チューブを注意深く取り出し，マルチプローブ上に置き，ここで，最上部の８５μＬ（＋／−５μＬ）を取り出して別のチューブに入れる。すべてのサンプルが回収されると，マルチプローブは対照およびサンプルのそれぞれについて２つの希釈を作製する。一方の希釈は５μｇ／ｍＬのＤＳを含む酢酸アンモニウム溶液で１：２００の最終希釈である。もう一方の希釈は，酢酸アンモニウム溶液のみで１：８００の希釈である。次に２つの希釈物を差異荷電粒子移動度装置で分析する。分析後，当該技術分野においてよく知られる換算を用いて粒子数をｎｍｏｌ／Ｌに変換する。ＨＤＬ（１：８００）およびより大きいリポ蛋白質（１：２００）からのデータを組み合わせを，アリコート１および２からの生化学的データとともに記録する。リポ蛋白質のプロファイル，ならびに総ＬＤＬ粒子濃度およびＬＤＬピーク粒子サイズも記録し，これを用いてＬＤＬ表現型を判定する。これらのデータの組み合わせから得られた例示的評価報告書を表２（数値表示）および図７（リポ蛋白質プロファイルのグラフ表示）に示す。

上述の差異荷電粒子移動度分析を用いてより正確なリポ蛋白質プロファイルを得るために，差異荷電粒子移動度装置の前の操作（例えば，サンプルの遠心分離，ピペッティングおよび希釈）の間のリポ蛋白質の損失について結果を調整してもよい。これは，１またはそれ以上のタイプの標識リポ蛋白質を内部標準としてサンプルに加えることにより行うことができる。加工の間に標識を追跡することにより，標識リポ蛋白質の回収を用いて，元のサンプル中に存在した非標識リポ蛋白質の濃度を上方に調整することができる。例えば，遠心分離後のリポ蛋白質単離物のアリコートの蛍光シグナルを測定し，出発ストックサンプル（遠心分離していない）から直接取り出したアリコートと比較する。シグナルの相違は回収された未知のサンプルの比率を表し，血漿または血清中のリポ蛋白質濃度のより正確な計算が可能となる。

以下の方法を用いて，蛍光分子をＨＤＬサブ画分にコンジュゲートさせた。この方法は
，他のタイプのリポ蛋白質に適用することができる。順次浮遊により血漿からＨＤＬを単離して，密度区間１．０６３−１．２０ｇ／ｍＬのリポ蛋白質を得た。次に総ＨＤＬ画分をバックグラウンド塩密度１．１８４ｇ／ｍＬに対して透析し，固定角５０．３のＢｅｃｋｍａｎローターで４０，０００ｒｐｍ，１０℃で２８時間遠心分離した。次に６ｍｌの遠心チューブからピペットにより，主として大，中，および小ＨＤＬサブ画分（それぞれ，Ｔ［０−１］，Ｔ［１−３］およびＴ［３−６］）を得た。次にサブ画分を１００ｍＭＮａＨＣＯ３（ｐＨ８．５）に対して４℃で一晩透析した。各サブ画分の蛋白質濃度をローリー法を用いて測定した。

次に，ＨＤＬサブ画分を，蛍光プローブＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８（カルボン酸，スクシンイミジルエステル混合アイソマー，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ Ｃａｔ＃Ａ−２００００，分子量６４３．４２，吸収４９４ｎｍ／放出５１７ｎｍ）で，製造元の指針にしたがって標識した。簡単には，ＨＤＬサブ画分をＡＦ４８８と，示唆される最適比１０：１（ｗｔ：ｗｔ）で，ＨＤＬおよびＡＦ４８８の最適濃度をそれぞれ＞２ｍｇ／ｍｌおよび１０ｍｇ／ｍｌに維持しながら混合した。プロトコルおよび用いた溶液の量は下記の表３に示す。

次に，ＡＦ４８８で標識したＨＤＬサブ画分をバッファに２５０から＞３００００で様々に希釈して，シグナル感度について試験した。標識したＨＤＬサブ画分はまた，リポ蛋白質を単離する遠心分離の前および後に，種々の血漿調製物中に希釈して，シグナル感度について試験した。

密度＜１．２３ｇ／ｍＬで２回目の遠心分離を行って，コンジュゲートしていない蛍光標識をＨＤＬ：ＡＦ４８８コンジュゲートから除去して，標識したＨＤＬサブ画分を単離した後に，さらなる希釈および感度試験を行った。

蛍光プローブであるフルオレセイン−５−ＥＸ，スクシンイミジルエステル（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ，Ｃａｔ＃Ｆ−６１３０）を用いて，ＡＦ４８８について上述したものと同様にして，ＨＤＬサブ画分を標識した。また，上述の方法を用いて，ＶＬＤＬおよびＬＤＬを蛍光標識した。高分子量標準（Ｐｈａｒｍａｃｉａ ＨＭＷ Ｓｔａｎｄａｒｄ Ｍｉｘ，サイログロブリン，アポフェリチン，カタラーゼ，乳酸デヒドロゲナーゼおよびアルブミンを含む）と組み合わせた蛍光標識について追加の試験を行った。

例えば，限定されないが，図１，図７等により例示される，リポ蛋白質分布の分析および／またはディスプレイを企図する本発明の観点の態様においては，イオン移動度分析装置を用いて得た差異荷電粒子移動度データを加工した後に，臨床的な解釈用に提示することができる。差異荷電粒子移動度分析からの生データ，または臨床的な解釈用に提示するための加工したデータの文脈において，特に記載しないかぎり，“差異荷電粒子移動度データ”および同様の用語は，粒子の直径と相関する独立変数と，粒子数と相関する観測された従属変数とを有する差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布を表す。ある態様においては，独立変数は電圧または電圧により生ずる対応する電界（等式３を参照）である。ある態様においては，独立変数は粒子直径である。ある態様においては，従属変数は粒子数である。ある態様においては，従属変数は特定の時間，例えば，限定されないが，０．００１−０．０１，０．０１−０．１，０．１−１，１−２秒またはそれ以上の間に計数された粒子の数である。ある態様においては，特定の時間は０．１秒である。

“差異荷電粒子移動度データの加工”および同様の用語は，データの操作を表し，この操作は，総合的に，グラフおよび／または数値の結果を提供することができ，これはサンプル中の個別のリポ蛋白質クラスおよびそのサブクラスのリポ蛋白質分布，および／または濃度を正確にかつ再現性よく反映する。差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データの加工において有用な操作の例としては，限定されないが，定数による操作，関数による畳み込み，一定の数値または関数の加算および／または減算，例えば，限定されないが，夾雑物の寄与についての補正，数値の積分，平滑化，および当該技術分野において知られる他の算術的操作が挙げられる。したがって，種々の理由により差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データの加工を利用することができ，これには，限定されないが，サンプル中のリポ蛋白質の生理学的濃度を正確に反映する補正，特定の装置およびプロセスの効率について補正するための拡大／縮小，夾雑物の寄与を表すデータの除去等が含まれる。“特定の装置およびプロセスの効率”および同様の用語は，加工および分析の間の被検物質（例えばリポ蛋白質）の濃度の変化についての検出および補正を表す。特定の装置効率の例としては，エレクトロスプレーの間に導入される見かけの希釈が挙げられ，ここでは，テイラーコーンが形成されることにより，粒子を運ぶガス流中でリポ蛋白質が見かけ上希釈される。効率は，当業者によく知られる定量された効率を有する装置を用いる方法により測定される。差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データの文脈において，“夾雑物の寄与”および同様の用語は，例えば，限定されないが，差異荷電粒子移動度装置で計数された非リポ蛋白質種から生じ，ここから得られる差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データに含まれるイオン移動度装置からの粒子カウントのデータを表す。この文脈において，非リポ蛋白質種の例としては，限定されないが，本明細書に開示される任意の試薬，およびモノマー形および／またはマルチマー形のアルブミンが挙げられる。

ある態様においては，本明細書に記載される試薬による差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データに対する寄与を，データのプロセシングの間に差異荷電粒子移動度サイズ分布データから減算する。例えば，いかなる理論にも拘束されることを望むものではないが，差異荷電粒子移動度分析からの粒子サイズ分布データ（すなわち，粒子直径に対する粒子数をもつ差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データ）中のＲＧＤに起因する寄与は，選択された直径領域にわたる１またはそれ以上の減衰指数関数により表すことができると考えられる。したがって，ある態様においては，差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データは
，選択された領域において式４：
（式中，ｙ₁は，当該技術分野においてよく知られる方法により決定される，差異荷電粒
子移動度に対する寄与のベストフィットであり，ｋ₁はフィットの実験的定数であり，ｄ
は粒子直径である）
の関数にフィットする。上述の式４は，２ｎｍより大きい粒子直径について有効である。ある態様においては，フィットの領域は，３−６，３−４，３−５，３−６，４−６，または５−６ｎｍ（粒子直径）であり，好ましくは３−４ｎｍである。ある態様においては，差異荷電粒子移動度データ全体を，等式４へのあてはめから得られる関数により補正する。

ある態様においては，差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データをさらに加工して，差異荷電粒子移動度分析用に採取されたサンプル中に含まれるアルブミンに起因する寄与を計算する。ある態様においては，アルブミンについての補正の構築（すなわち，“アルブミン補正曲線”）は最初に，下記の形の区分的関数により行われる：
ここで，ｙ₂およびｙ₃は，それぞれ領域２および３における関数値であり，ｋ₂およびｋ₃は，当該技術分野においてよく知られる方法により決定される経験的定数であり，ｄは粒子直径である。“（添加されたアルブミンデータからの）経験値”とは，測定された分布中のアルブミンの量と等しいアルブミンの量を分布から減算することが，差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データに及ぼす影響を表す。

ある態様においては，アルブミンダイマーの存在を考慮してアルブミン補正曲線をさらに修正することができる。アルブミンダイマーは，典型的には，差異荷電粒子移動度分析用のサンプル中に１−１０％，１−８％，２−８％，２−７％，２−６％，２−５％の範囲で，好ましくは２％で存在すること，およびアルブミン補正曲線を特定の領域において調整して，アルブミンダイマーの存在を考慮し，段階的に抑制しうることが経験的に見いだされている。ある態様においては，この特定の領域の直径の下限は，０，１，２，３，４，５，６，７，８，９，１０，１１または１２ｎｍである。ある態様においては，この特定の領域の直径の上限は，１，２，３，４，５，６，７，８，９，１０，１１，１２，１３，１４または１５ｎｍである。ある態様においては，この特定の領域の範囲は，０−１５，５−１０，７−９，好ましくは７．９−８．４ｎｍである。したがって，アルブミン補正曲線は，等式７の形をもつ関数により修正することができる：
y’=y * ((d-lowerlimit) * 2 * dimer+(upperlimit-d) * 2) (7)
（ｙはアルブミン補正曲線であり，ｙ’はアルブミンダイマーの存在の段階的抑制後のアルブミン補正曲線であり，ｄは粒子直径であり，lowerlimitおよびupperlimitは，それぞれ補正用のサイズの下限および上限であり，dimerは選択されたパーセントダイマー濃度
である。ある態様においては，ダイマーの存在が抑制されている領域は，７．９ｎｍ（lowerlimit）と８．４ｎｍ（upperlimit）との間である。

ある態様においては，アルブミンモノマーを示す理論的曲線を，当該技術分野においてよく知られるカーブフィッティング法を用いて，特定の領域におけるサンプルの差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布にフィットさせる。ある態様においては，この理論的曲線は式８：
（ｙ_mはアルブミンモノマーの理論数の分布，ｋ_mおよびｋ_aは実験的に得られる定数であ
る）
の関数で表される。ある態様においては，ｋ_aは０．１−１０，１−５，２−４または２
−３の範囲である。ある態様においては，ｋ_aは２．５６である。ある態様においては，
この特定の領域は，０−１５，５−１０，６−９，７−８，好ましくは７．３−７．５ｎｍである。ある態様においては，アルブミンモノマーの寄与を判定して等式８にベストフィットさせた後，ここから同じ寄与のスケールで等式７を減算することにより差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データを補正する。ある態様においては，等式７を減算することによる補正は，特定の領域，例えば，限定されないが，０−１５，２−１２，４−１０，好ましくは６−１０ｎｍ中で行う。補正が１０−１１ｎｍの範囲を意図しないある態様においては，領域１０−１１ｎｍ中の対応する補正は，等式７を（１１−直径）倍し，その結果を差異荷電粒子移動度粒子サイズ分布データから減算することにより行う。

上述のプロセスは，種々の電子機器，例えばデスクトップまたはラップトップコンピュータ，または携帯端末に実装することができる。このような機器は当該技術分野においてよく知られている。さらに，結果は，モニターにディスプレイするか，プリントするか，またはメモリ装置，例えば，ハードドライブ，ＣＤＲＯＭ，ＣＤＲ／Ｗ，フラッシュメモリ等に格納することができる。さらに，結果は，ネットワークを介して他の装置から利用できるようにしてもよく，このネットワークは私的ネットワークであっても公的ネットワーク，例えばインターネットであってもよい。この点に関して，電子機器および／またはメモリ装置は，ネットワークを介してアクセス可能である。

１つの態様においては，測定値を実験的に決定された範囲と比較して，範囲内または範囲外である患者の血清または血漿の値に基づいて診断を行う。下記のチャートは，そのような診断のための範囲の１つの例示的セットを示す。

差異荷電粒子移動度スペクトロメトリは，気相粒子電気移動度に基づいてナノ粒子のサイズ分布を測定する方法を提供する。この方法論を，リポ蛋白質粒子のサイズ分布の測定に適合させた。この方法は自動化され，約１分間で，粒子直径に対して粒子数および粒子質量のプロファイルを生成する。リポ蛋白質をまず超遠心分離により濃縮し（血漿蛋白質の除去），次に揮発性バッファで希釈し，エレクトロスプレーを行った。電荷中和プロセスにより，単一の電荷をもつ粒子のよく特徴付けされた画分が得られる。荷電粒子は差異移動分析装置（ＤＭＡ）を通して取り出され，これにより狭いサイズの粒子がＤＭＡに適用される電圧の関数として通過して，粒子カウンターに達することができる。適用した電圧をスキャンすることにより，ＨＤＬ，ＬＤＬ，ＩＤＬおよびＶＬＤＬについて粒子数の分布が得られる。測定は，第１原則に基づいており，粒子サイズに関してキャリブレーションする必要はない。粒子数分布を粒子質量分布に変換する。この方法を用いて，ＬＤＬ直径のアッセイ内変動は＜０．６％であり，濃度に関しては，ＨＤＬおよびＬＤＬについては＜１０％，ＩＤＬおよびＶＬＤＬについては＜１５％であった。アッセイ間の再現性は，ＬＤＬの粒子サイズについて＜１．０％，ＨＤＬおよびＬＤＬの濃度について＜１５％，ＩＤＬの濃度について＜２０％，ＶＬＤＬの濃度について＜２５％であった。下記の表は，個々のリポ蛋白質画分についての参照範囲を生成するための用いたデータのまとめを平均およびＳＤで示す。この実験では，最適脂質／リポ蛋白質レベルについての現在のＮＣＥＰ ＡＴＰ ＩＩＩの基準に合致した合計で２５９名の健康な個体（１９１Ｆ，６８Ｍ）を用いた：総コレステロール（ｃｈｏｌ）＜２００，ＬＤＬｃｈｏｌ＜１００，ＨＤＬｃｈｏｌ＞４０（Ｍ）＞５０（Ｆ），トリグリセリド＜１５０ｍｇ／ｄＬ。この結果は，予測された性別による差異を示し，男性は小ＬＤＬ粒子の濃度がより高く，女性はＨＤＬ２ｂがより高かった。

集団（異常）の残りについて，ＡＴＰ ＩＩＩガイドラインに含まれない１またはそれ以上の基準の範囲を測定した。予測された相違，すなわち，より小さいＬＤＬの濃度の増加，ならびにＨＤＬ２ｂ（Ｂ）のサイズの減少および濃度の低下が示され，ＨＤＬ２ａおよび３はほとんど変化がなかった。

上述の方法は，種々の装置で実施することができる。例えば，Ｂｅｎｎｅｒらの米国特許７，２５９，０１８は，遠心チューブ中のサンプル溶液をキャピラリーチューブを通して放出し，キャピラリーチューブから出るときにエレクトロスプレープロセスによりイオン化する装置を記載する。すなわち，圧力チャンバにより引き起こされる圧力差がイオン化したサンプルをガス流中に移動させ，次にこれはサンプルを移動度分析装置に運ぶ。一旦，遠心分離チューブ中のサンプルを分析すると，別のチューブのサンプルを圧力チャンバ内に置く。しかし，この配置では，遠心分離チューブ中で任意の時間に少量のサンプルしか与えられないため，圧力チャンバにおける圧力が維持されていても，キャピラリーを通るサンプルの流速が時間とともに実質的に変化し，このことにより予測流速に基づくイオン移動度分析装置からの定量的測定が影響を受ける可能性がある。

本発明の態様はこれらの懸念に対処する。本発明の態様にしたがえば，サンプルをキャピラリーを通して送出し，イオン移動度分析装置へと流れる間にサンプルをキャピラリー中でイオン化（ないし荷電）することにより，一定流速が達成される。図８は，本発明のある態様にしたがう，イオン移動度分析の例示的装置を示す。図８のイオン移動度分析装置１０は，米国特許７，２５９，０１８に例示されるものと同様のイオン移動度分析装置２０を含む。イオン移動度分析装置２０は，ここを通って流れる粒子を計数することがで
きる。イオン移動度分析装置２０には，例えば上述したアルゴリズムにしたがってデータをプロセシングすることができる電子装置（図に示さず），例えばコンピュータが備えられていてもよい。

サンプルの荷電粒子流れをオートサンプラー２２からイオン移動度分析装置２０に提供する。オートサンプラー２２は，サンプルを自動的に供給するロボットシステムであってもよい。そのようなオートサンプラーの１つは，モデルＨＴＣＰＡＬ，Ｌｅａｐ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ ｏｆ Ｃａｒｒｂｏｒｏ，Ｎｏｒｔｈ Ｃａｒｏｌｉｎａである。１つの態様においては，オートサンプラーは，精製されたサンプルのみをチューブのラックからまたはマルチウエルプレートからポンプに供給するロボット装置である。オートサンプラー２２は，実質的なヒトの介入なしでサンプルをイオン移動度分析用に実質的に連続して供給することができる。

サンプルはオートサンプラー２２から注入ポート２４を通って第１のポンプ２６に供給される。この点に関して，オートサンプラー２２はリザーバー（図示せず）を含んでいてもよく，精製されたサンプルはここに含まれる。注入ポート２４は第１のポンプ２６の一部であってもよい。第１のポンプ２６は，サンプルをオートサンプラー２２から比較的早い流速（例えば，１分間に１．０マイクロリットル以上）で送出することができる高流速（または高フロー）ポンプである。１つの態様においては，高フローポンプは，サンプルをオートサンプラー２２から１分間に約５−２０マイクロリットルの速度で送出する。最も好ましくは，高フローポンプは，サンプルを１分間に約１０マイクロリットルの速度で送出する。適当な高フローポンプは，Ｅｋｓｉｇｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（２０２１ Ｌａｓ Ｐｏｓｉｔａｓ Ｃｔ Ｓｕｉｔｅ １６１，Ｌｉｖｅｒｍｏｒｅ，ＣＡ）から入手される。

サンプルは第１のポンプ２６から第２のポンプ３０に供給される。第２のポンプ３０は，サンプルをキャピラリー３４に比較的遅い速度で（例えば１分間に１．０マイクロリットル以下）で送出して，サンプルの粒子の適切なイオン化ないし荷電をすることができる低流速（またはナノフロー）ポンプであり，これは下記に説明する。１つの態様においては，ナノフローポンプはサンプルをキャピラリーに１分間に約１００−２００ナノリットルの速度で送出する。最も好ましくは，ナノフローポンプはサンプルを１分間に約２００ナノリットルの速度で送出する。適当なナノフローポンプは，Ｅｋｓｉｇｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（２０２１ Ｌａｓ Ｐｏｓｉｔａｓ Ｃｔ Ｓｕｉｔｅ １６１，Ｌｉｖｅｒｍｏｒｅ，ＣＡ）から得られる。

１つの態様においては，２つのポンプの代わりに，組み合わせポンプアセンブリを用いることができる。例えば，ポンプアセンブリは，高流速部品および１またはそれ以上のナノフロー部品を含むことができる。組み合わせポンプアセンブリの一例は，Ｎａｎｏ ＬＣ１−Ｄ（Ｅｋｓｉｇｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，２０２１ Ｌａｓ Ｐｏｓｉｔａｓ Ｃｔ Ｓｕｉｔｅ １６１，Ｌｉｖｅｒｍｏｒｅ，ＣＡから入手可能）である。

１つの態様においては，第１のポンプ２６は単一のバルブ２８または複数のバルブを介してサンプルを複数のナノフローポンプに供給することができる。

キャピラリー３４に入りここを通る流れは，バルブ３２により制御することができ，これは第２のポンプ３０の一部であってもよく，またはキャピラリー３４中に配置された別個のバルブであってもよい。バルブ３２は，サンプルがキャピラリー３４を通って下流のバルブ３２に一定の流速で流れることを確実にする。バルブ３２は，一定の流速を維持するよう電気的に制御してもよい。この点に関して，バルブは，バルブ３２の下流に配置されたセンサーまたはメーターに応答して制御してもよい。

サンプル粒子は，キャピラリー３４を通る流れの間にイオン化装置４０により荷電される。当業者には理解されるように，粒子の実際のイオン化ないし荷電は，粒子がキャピラリーを出てイオン移動度分析装置に入るときに生ずる。１つの態様においては，イオン化装置４０はキャピラリー３４の一部の周りに配置された導電ユニオンアセンブリである。導電ユニオン（導電接続部としても知られる）非常に薄い流れのまわりに電流を適用して，流れに荷電を与える。１つの例示的導電ユニオンアセンブリは米国特許７，０７５，０６６（その全体参照として本明細書に組み込まれる）に記載されている。次に，荷電したサンプル粒子は，キャピラリー３４を通してイオン移動度分析装置２０に供給される。

図９Ａおよび９Ｂは，キャピラリーを通るサンプル粒子の流れを荷電するために用いられる導電ユニオンの例示的態様を示す。まず図９Ａを参照すると，導電ユニオンアセンブリ４０ａがキャピラリー３４の周りに形成されている。キャピラリー３４のイオン化領域３５の周りには，導電ユニオン４２が存在する。導電ユニオン４２に適用された電圧は，キャピラリー３４のイオン化領域３５を通る流れの中で粒子の荷電を引き起こす。導電ユニオンアセンブリ４０ａの作動の詳細な説明については，米国特許７，０７５，０６６を参照のこと。

次に，図９Ｂを参照すると，導電ユニオンアセンブリの別の態様が示されている。図９Ｂの態様においては，導電ユニオンアセンブリ４０ｂはキャピラリー３４の一部の中にマイクロタイト領域３７を形成し，これを通ってサンプルが流れる。マイクロタイト領域３７は，キャピラリーの２つの区域の間に接続部ないしシールを形成してもよい。マイクロタイト領域３７は小さいデッドボリュームを有しており，ここでサンプル粒子は荷電される。１つの態様においては，マイクロタイト領域３７は約５−５０ナノリットルのデッドボリュームを有する。最も好ましい態様においては，マイクロタイト領域３７は約１０−１５ナノリットルのデッドボリュームを有する。マイクロタイト領域３７は好ましくはステンレス製である。導電ユニオンアセンブリ４０ｂは，マイクロタイト領域３７の周りに形成された導電ユニオン４４を含む。導電ユニオン４４に電圧をかけると，粒子がマイクロタイト領域３７を通過する間に荷電される。

すなわち，イオン移動度分析装置２０には，実質的に時間により変動しない速度に制御されたサンプルのナノフローが提供される。この点に関して，流速は，好ましくは名目上の速度から５％未満，より好ましくは２％未満，最も好ましくは１％未満の変動である。このことにより，イオン移動度分析装置２０によって，より一貫性のある信頼できる分析を行うことが可能となる。

本明細書に引用される全ての特許および他の参考文献は，各参考文献の全体が個々に本明細書に参照として組み込まれるのと同じ程度に，表および図面を含め，その全体が本明細書に参照として組み込まれる。

当業者は，本発明は，記載される結果および利点，ならびに本明細書に固有のものを得るのによく適合していることを容易に理解するであろう。本明細書に好ましい態様の代表的なものとして記載される方法，変種および組成物は，例示的なものであって，本発明の範囲を限定することを意図するものではない。当業者は，その改変および他の用途をなすであろう。これらの改変は本発明の精神の中に包含され，特許請求の範囲により定義される。

当業者には，本発明の範囲よび精神から逸脱することなく，本明細書に記載される本発明に対して，置換および改変をなしうることが明らかであろう。すなわち，そのような追加の態様も本発明および特許請求の範囲の範囲内である。

本明細書に例示的に記載されている発明は，本明細書に特定的に開示されていない任意の要素または限定なしでも適切に実施することができる。したがって，例えば，本明細書のそれぞれの場合について，"・・・を含む"，"本質的に・・・からなる"および"・・・
からなる"との用語は，互いに他の２つの用語のいずれかと置き換えることができる。本
明細書において用いた用語および表現は，説明の用語として用いるものであり，限定ではなく，そのような用語および表現の使用においては，示されかつ記載されている特徴またはその一部の同等物を排除することを意図するものではなく，特許請求の範囲に記載される本発明の範囲中で種々の変更が可能であることが理解される。すなわち，好ましい態様および任意の特徴により本発明を特定的に開示してきたが，当業者には本明細書に記載される概念の変更および変種が可能であり，そのような変更および変種も特許請求の範囲に定義される本発明の範囲内であると考えられることが理解されるべきである。

さらに，発明の特徴および局面がマーカッシュグループの用語または他の代替物のグループの用語で記載されている場合，当業者は，本発明が，マーカッシュグループまたは他のグループのすべての個々のメンバーまたはメンバーのサブグループに関してもまた記載されていることを認識するであろう。

また，特に断らない限り，ある態様について種々の数値が与えられている場合，追加の態様は，任意の２つの異なる数値を範囲の終点としてとることにより記述される。そのような範囲もまた本明細書に記載される発明の範囲内である。

すなわち，追加の態様も本発明の範囲内であり，下記の特許請求の範囲内である。

Claims (19)

1. 差異荷電粒子移動度分析に適したリポ蛋白質を精製する方法であって，
   （ａ）リポ蛋白質、非リポ蛋白質、硫酸デキストランを含む溶液と、常磁性体粒子を含む固体支持体を、前記リポ蛋白質が前記固体支持体に結合する条件下でインキュベーションする；
   （ｂ）前記溶液から前記固体支持体を単離し、前記非リポ蛋白質から前記リポ蛋白質を分離する；そして
   （ｃ）前記固体支持体から前記リポ蛋白質を放出させ、ここで該放出されたリポ蛋白質は差異荷電粒子移動度分析に適したものであり、前記リポ蛋白質のサイズ分布を決定する；そして
   （ｄ）前記放出されたリポ蛋白質を差異荷電粒子移動度分析に供する；
   の各工程を含み、
   前記リポ蛋白質はＨＤＬと、ＬＤＬ、Ｌｐ（ａ）、ＩＤＬ及びＶＬＤＬからなる群から選択される１またはそれ以上と、を含み、かつ
   遠心分離を含まない方法。
2. 前記固体支持体がビーズを含む、請求項１記載の方法。
3. 前記固体支持体が、リポ蛋白質に結合可能なリポ蛋白質捕捉リガンドを含む、請求項１記載の方法。
4. 前記リポ蛋白質捕捉リガンドが、アプタマー及び抗体からなる群より選択される、請求項３記載の方法。
5. 前記リポ蛋白質を差異荷電粒子移動度分析に供する工程が、
   前記リポ蛋白質の粒子サイズの１またはそれ以上の領域における差異移動度粒子サイズ分布を決定し；
   非リポ蛋白質試薬または非リポ蛋白質サンプル材料の粒子サイズ分布への寄与を減算して、リポ蛋白質粒子サイズ分布を求め；そして
   リポ蛋白質粒子サイズ分布を、ディスプレイ、プリンタまたはメモリに出力する；
   の各工程を含む、請求項１記載の方法。
6. 前記粒子サイズ分布の決定は、前記１またはそれ以上の領域についてベストフィットを決定することを含む、請求項５記載の方法。
7. ベストフィットは次式：
   （ｙ₁は測定された差異移動度サイズ分布に対する寄与であり、ｋ₁はフィットの実験的定数であり、およびｄは粒子直径である）
   で表され；
   ベストフィットの決定はｋ₁の値を計算することを含む、請求項６記載の方法。
8. 前記減算は、前記非リポ蛋白質試薬または前記非リポ蛋白質サンプル材料の粒子サイズ分布を示す理論的曲線を適用することを含む、請求項５記載の方法。
9. 前記非リポ蛋白質試薬は、デキストラン（ＲＧＤ）とコンジュゲート化したＲｅａｃｔｉｖｅ Ｇｒｅｅｎ １９である、請求項７記載の方法。
10. 前記非リポ蛋白質サンプル材料はアルブミンである、請求項５記載の方法。
11. 差異荷電粒子移動度分析に適したリポ蛋白質を精製する方法であって，
    （ａ）リポ蛋白質、非リポ蛋白質、硫酸デキストランを含む溶液と、常磁性体粒子を含む固体支持体を、前記リポ蛋白質が前記固体支持体に結合する条件下でインキュベーションする；
    （ｂ）前記溶液から前記固体支持体を単離し、前記非リポ蛋白質から前記リポ蛋白質を分離する；
    （ｃ）前記固体支持体から前記リポ蛋白質を放出させる；
    （ｄ）前記リポ蛋白質を差異荷電粒子移動度分析に供する工程であって、
    前記リポ蛋白質の粒子サイズの１またはそれ以上の領域における差異移動度粒子サイズ分布を決定し；そして
    非リポ蛋白質試薬または非リポ蛋白質サンプル材料の粒子サイズ分布への寄与を減算して、リポ蛋白質粒子サイズ分布を求め；そして
    リポ蛋白質粒子サイズ分布を、ディスプレイ、プリンタまたはメモリに出力する；
    の各工程を含み、
    前記リポ蛋白質はＨＤＬと、ＬＤＬ、Ｌｐ（ａ）、ＩＤＬ及びＶＬＤＬからなる群から選択される１またはそれ以上と、を含み、かつ
    差異移動度粒子サイズ分布の決定は、前記１またはそれ以上の領域についてベストフィットを決定することを含む、方法。
12. 遠心分離を含まない、請求項１１記載の方法。
13. 前記固体支持体がビーズを含む、請求項１１記載の方法。
14. 前記固体支持体が、リポ蛋白質に結合可能なリポ蛋白質捕捉リガンドを含む、請求項１１記載の方法。
15. 前記リポ蛋白質捕捉リガンドが、アプタマー及び抗体からなる群より選択される、請求項１４記載の方法。
16. ベストフィットは次式：
    （ｙ₁は測定された差異移動度サイズ分布に対する寄与であり、ｋ₁はフィットの実験的定数であり、およびｄは粒子直径である）
    で表され；
    ベストフィットの決定はｋ₁の値を計算することを含む、請求項１１記載の方法。
17. 前記減算は、前記非リポ蛋白質試薬または前記非リポ蛋白質サンプル材料の粒子サイズ分布を示す理論的曲線を適用することを含む、請求項１１記載の方法。
18. 前記非リポ蛋白質試薬は、デキストラン（ＲＧＤ）とコンジュゲート化したＲｅａｃｔｉｖｅ Ｇｒｅｅｎ １９である、請求項１１記載の方法。
19. 前記非リポ蛋白質サンプル材料はアルブミンである、請求項１１記載の方法。