JP5474784B2 - 結合アッセイ用多孔性固相及びこれを用いた結合アッセイ法 - Google Patents

Description

本発明は、メンブレンなどの多孔性固相を用いて検出を行う測定試料成分の結合アッセイ法において、多孔性固相における測定試料の展開不良、感度不良、又は測定波形の乱れが改善された結合アッセイ用多孔性固相に関する。また該結合アッセイ用多孔性固相を用いる結合アッセイ法に関する。詳細には、（Ａ）一般式（Ｉ）で表される化合物からなる糖含有界面活性剤、（Ｂ）構成脂肪酸の炭素数が５〜１４であるショ糖脂肪酸エステルからなる糖含有界面活性剤、及び（Ｃ）ステロイド系界面活性剤からなる群、から選ばれる一種以上の界面活性剤を、測定試料添加前の多孔性固相に含むことを特徴とする、結合アッセイ用多孔性固相及び該結合アッセイ用多孔性固相を用いる結合アッセイ法を提供するものである。

メンブレンなどの多孔性固相を用いて検出を行う測定試料成分の結合アッセイ法（例えば、イムノクロマト法）における測定試料の多孔性固相での展開不良には様々な原因が考えられる。例えば、多孔性固相の細孔よりも大きいために細孔内を移動・通過することが困難な物質（例えば、血球等）が測定試料中に混在している場合や、測定試料中で可溶化していた成分がアッセイ中に不溶化して目詰まりを起こす場合などがあげられる。このような場合、本来は多孔性固相を移動・通過するべき測定対象物、遊離状態の標識抗体あるいは測定対象物と標識抗体との複合体や、検出試薬中の標識物質と同様の活性をもつ測定試料中の物質（例えば、酸化酵素）などが多孔性固相を移動・通過せずに所望の位置以外に滞留してしまうという問題が生じる。その結果、測定対象の存在と関連付けられる本来のシグナル強度が得られず検出が困難になったり（測定不能あるいは偽陰性として表われる）、シグナルの検出を妨害する非特異反応が起きたりして（測定不能あるいは偽陽性として表われる）、測定信頼性の低下や再現性不良の一因になると考えられる。

従来、多孔性固相における目詰まりを回避する方法として、測定試料を多孔性固相に展開する前に、測定試料中の夾雑物（多孔性固相の細孔より大きい物質（血球等）や不溶化しやすい成分など）を遠心分離やフィルターを用いて分離除去する方法や、夾雑物を特定の条件で沈殿、吸着等させて除去する方法が用いられている。しかし、いずれの方法も操作に時間がかかる上、操作中の測定試料のロスを避けることができず、操作のために更なるコストも必要となる。また、測定試料が感染性の病原微生物を含む場合、測定を行う医師や研究者などの試験実施者への感染リスクが高くなるという問題もある。

結合アッセイ法における非特異的干渉の回避を目的として、インキュベーション媒体中に界面活性剤を添加する方法（例えば特許文献１）が広く用いられている。しかし、添加する界面活性剤の種類によっては、固相担体に結合させている抗体などの捕捉試薬が該担体より脱離したり、固相担体と抗体の結合反応そのものが阻害されることにより、特異的なシグナルが極端に低下し必要な検出感度を確保できないことがある。また、この方法を多孔性固相を用いる結合アッセイ法に適用すると、特許文献１におけるグリコシド型界面活性剤などのように界面活性剤が検出感度へ影響しない場合でも、測定試料の希釈によって測定試料成分のアッセイ系中での絶対量が低下し、必要な検出感度を確保できない場合がある。また、特許文献１では専ら非特異的干渉の回避を課題としており、測定試料の展開不良については言及も示唆もされておらず、課題としての認識はない。

全血を測定試料とする免疫測定法において、遠心分離による測定試料の前処理を省略する方法として、結合アッセイ用ストリップにおける全血供給部と多孔性固相（メンブレン）との間に血球分離パッドを設置する方法がある。該方法によれば、血球成分を分離パッドに保持させ、短時間では血球成分が該分離パッドから多孔性固相に流出しないようにする一方で、血漿成分を血球成分に先行してイムノクロマトグラフ展開膜へ展開させることにより、血球成分が測定に影響しないようにすることができる。

しかしながら、上記のように血球分離パッドを設置する構造を採用した場合でも、夾雑物の大きさに由来する目詰まり以外の原因で展開（移動・通過）不良となることがある。そのような原因としては、測定試料の粘性の高さや測定中に生じる多孔性固相の乾燥があげられる。高粘性の測定試料、つまり、血球のような固体成分を多く含む測定試料やタンパク質高含有の測定試料、あるいは水分が蒸発した測定試料は、そもそも流動性が悪いために多孔性固相での展開に時間を要し、均等に展開せず測定再現性を欠く原因となっていた。

従来、血液（全血）、血漿、血清、唾液、喀痰、糞など固形成分を含有するかあるいは粘性が高い測定試料を、イムノクロマト法で測定する場合、予め測定試料を適当な希釈液（インキュベーション媒体）で希釈する必要があった。該希釈液としては、リン酸緩衝化生理食塩液（ＰＢＳ）などが用いられており、測定試料の分散性を高めるために、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）などを希釈液に添加することも一般的に行われている。しかしながら、市販のＢＳＡには免疫グロブリン等の不純物が混入していることがあり、非特異反応を惹起することもあった。また、希釈液に界面活性剤を含有させようとした場合の問題は先述したとおりであり、希釈液の組成を工夫して解決しようとする方法の一番の問題が、希釈によってアッセイに供される測定試料中の測定対象物の含量あるいは濃度が低下してしまう点にあることも先述したとおりである。

一方、クロマトグラフアッセイ用多孔質膜（メンブレン）の機械的強度を上げ且つクロマトグラフ実行中の流体の蒸発（乾燥）を防ぐ目的でメンブランをラミネートした場合、ラミネート用接着剤の成分に起因して多孔質膜の親水性が低下し測定試料の展開不良が生じることが報告されている（特許文献２）。該特許文献２における展開不良は、接着剤の成分を選択し、かつメンブレンをアルキルスルホン酸系の界面活性剤で処理した上でラミネートする方法を採用してメンブレンの親水性を高めることにより克服しているが、固形成分を含有するかあるいは粘性の高い測定試料の展開不良については課題として認識されておらず、解決策は示されていない。

また、多孔性膜を固相担体として用いる酵素免疫測定の構成要素のひとつとして、アルキルグリコシド系界面活性剤またはステロイド系界面活性剤を含有する酵素免疫測定用固相洗浄液が開示されている（特許文献３）。この洗浄液は、測定試料あるいは測定対象と免疫学的に結合する標識物質を固相担体に添加した後、多孔性膜を通過・移動できず膜上に留まってしまった測定試料中の非特異反応の原因物質や遊離の標識物質を洗い流す目的で使用されている。特許文献３の方法の洗浄液は、多孔性膜上における免疫反応後、膜上に残った物質を洗い流すため、固相担体上に測定試料の添加とは別に添加されるものであるから、洗浄液の準備工程及び測定試料を測定系に添加した後、洗浄液をさらに添加する工程が必要であり、操作が煩雑になる。そもそも、特許文献３の方法は、膜上に残った物質を洗い流すことを前提としており、膜の目詰まりを未然に防止するという発想は存在せず、本発明の課題である、測定試料の展開不良を改善することはできない。
また、特許文献３の実施例に記載されるようなフロースルー式では洗浄工程を具備する場合もあるが、例えば、多数の測定試料を一度に測定しようとする場合、実用的時間内に再現性良く測定するためには、加圧や吸引（メンブレン下の吸水パッドの容量を増やすなど）などの補助手段が必要となり、簡便性やコストの面で不利益なものとなる。

さらにまた、生理活性物質を固定化した基板（アレイ）の洗浄に非イオン界面活性剤を用いる方法も開示されており（特許文献４）、非イオン界面活性剤としてアルキルグルコシド系界面活性剤が挙げられている。しかし、本引用文献発明は、アレイ上に蛋白質やペプチドを固定し、培養細胞から調整したライセート中のプロテインキナーゼ活性を検出するに際し、ライセート中の成分がアレイ基板表面に非特異吸着するのを防ぐため測定前にアレイを洗浄するもので、界面活性剤を含む洗浄液をアレイ上に添加して流すことを想定している。このように本引用文献の目的はもっぱら非特異反応防止であり、上記特許文献１と同様に、測定試料の展開不良の問題については言及も示唆もされておらず、課題としての認識はない。

さらにまた、イムノクロマト法において測定対象物と検出試薬との複合体を検出する方法として、反射光の強度を測定し、それを元に吸光度（反射吸光度）を算出する方法がある。反射吸光度は、測定ラインとその近傍の反射光強度を測定して、その比を用いて算出するが、該方法を使用する際、複合体が検出される測定ラインの上流側および下流側（特に下流側）付近の反射光強度が上昇して測定波形に乱れがみられることがある。測定対象物が低濃度の測定試料（検体）における該複合体の検出時には、測定波形の乱れを無視してベースラインを引くことができないため、特異的シグナル（ピーク）を正確に検出することができず、測定自体が不可能となることがある。このような測定波形の乱れの発生頻度と程度は一定ではないため、測定の再現性が低下したり、測定の都度適切な測定値の補正を行うこと（いいかえれば測定波形の確認）が必要であった。
なお、白色のメンブレンを用い光学的に検出する通常のイムノクロマト法において、該測定波形の乱れは、メンブレンにおける該当部位の色がその周辺の色よりも白く、色が抜けているように見える現象として目視でもとらえることができる。
このような測定波形の乱れを問題としてとらえた従来技術はなく、該問題を解消する方法は今までに知られていない。

特開平６−２３５７３０公報 特開平３−１２０４６８公報 特開平１０−３３２６９７公報 特開２００８−９２９０５号公報

本発明の課題は、全血などの測定試料採取後、遠心分離などの測定試料に対する特段の前処理操作や測定試料添加後の追加操作を必要とせず、迅速、簡便、正確かつ安価に分析することのできる、結合アッセイ法用の多孔性固相及び該多孔性固相を使用した結合アッセイ法を提供することにある。

本発明者らは、メンブレンなどの多孔性固相を用いて検出を行う測定試料成分の結合アッセイ法における多孔性固相での測定試料の展開不良、感度不良、再現性不良、又は測定波形の乱れを改善する方法について鋭意検討を行い、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、（Ａ）一般式（Ｉ）で表される化合物からなる糖含有界面活性剤、（Ｂ）構成脂肪酸の炭素数が５〜１４であるショ糖脂肪酸エステルからなる糖含有界面活性剤、及び（Ｃ）ステロイド系界面活性剤からなる群、から選ばれる一種以上の界面活性剤を、測定試料添加前の多孔性固相に含むことを特徴とする、結合アッセイ用多孔性固相及び該結合アッセイ用多孔性固相を用いる結合アッセイ法であり、詳細には、以下の［１］〜［２４］に記載のものである。
［１］（Ａ）下記一般式（Ｉ）
Ｒ¹−（Ｇ）_x （Ｉ）
（式中、Ｒ¹は置換基を有していてもよい直鎖又は分岐鎖の炭素数５〜１０のアルキル基を表し、Ｇは炭素数５又は６の還元糖に由来する残基であり、_xは還元糖の縮合度を示す値であって１〜３の数を示す。Ｒ¹とＧとは、酸素原子又はイオウ原子を介するエーテル結合により連結されている）で表される化合物からなる糖含有界面活性剤、
（Ｂ）構成脂肪酸の炭素数が５〜１４であるショ糖脂肪酸エステルからなる糖含有界面活性剤、
（Ｃ）ステロイド系界面活性剤
上記（Ａ）〜（Ｃ）からなる群から選ばれる一種以上の界面活性剤を、測定試料の添加前に含むことを特徴とする、結合アッセイ用多孔性固相。
［２］（Ａ）からなる群が、ｎ−オクチル−β−Ｄ−グルコシド及び／又はｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシドである、［１］に記載の結合アッセイ用多孔性固相。
［３］（Ｂ）からなる群が、モノカプロン酸スクロース及び／又はモノラウリン酸スクロースである、［１］に記載の結合アッセイ用多孔性固相。
［４］（Ｃ）からなる群が、コール酸ナトリウム及び／又は３−［（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ］−２−ヒドロキシプロパンスルホン酸（ＣＨＡＰＳ）である、［１］に記載の結合アッセイ用多孔性固相。
［５］結合アッセイが、免疫測定法である、［１］〜［４］のいずれかに記載の結合アッセイ用多孔性固相。
［６］結合アッセイが、ラテラルフロー式、ディップスティック式又はフロースルー式メンブレンアッセイ法である［１］〜［５］のいずれかに記載の結合アッセイ用多孔性固相。
［７］捕捉試薬が固定化されている、［１］〜［６］のいずれかに記載の結合アッセイ用多孔性固相。
［８］捕捉試薬が、抗体、特異的捕捉物質又は抗原である、［７］に記載の結合アッセイ用多孔性固相。
［９］［１］〜［８］のいずれかに記載の結合アッセイ用多孔性固相を含むことを特徴とする結合アッセイ用ストリップ。
［１０］検出試薬を含有するコンジュゲートリリースパッドをさらに含む、［９］に記載の結合アッセイ用ストリップ。
［１１］検出試薬が、標識された抗体、標識された特異的捕捉物質又は標識された抗原である、［１０］に記載の結合アッセイ用ストリップ。
［１２］標識が、粒径の異なる２種類の金コロイドによる標識である、［１１］に記載の結合アッセイ用ストリップ。
［１３］コンジュゲートリリースパッドがアミノ酸類を含む、［１０］〜［１２］のいずれかに記載の結合アッセイ用ストリップ。
［１４］サンプルパッド及び／又は血球分離パッドをさらに含む、［９］に記載の結合アッセイ用ストリップ。
［１５］サンプルパッドが抗凝固剤を含む、［１４］に記載の結合アッセイ用ストリップ。
［１６］以下の（１）〜（４）
（１）サンプルパッド
（２）サンプルパッドの下にサンプルパッドに接して配置された、検出試薬を含有するコンジュゲートリリースパッド
（３）コンジュゲートリリースパッドと下記（４）の多孔性固相の間に配置された血球分離パッド
（４）捕捉試薬が固定化された多孔性固相、
からなるラテラルフロー式結合アッセイ法を行うためのストリップにおいて、多孔性固相が［１］〜［８］のいずれかに記載の結合アッセイ用多孔性固相であることを特徴とする結合アッセイ用ストリップ。
［１７］［９］〜［１６］のいずれかに記載の結合アッセイ用ストリップを搭載したデバイス。
［１８］［１］〜［８］のいずれかに記載の多孔性固相を使用することを特徴とする結合アッセイ法。
［１９］［９］〜［１６］のいずれかに記載の結合アッセイ用ストリップを使用することを特徴とする結合アッセイ法。
［２０］測定試料が［１］に記載の結合アッセイ用多孔性固相を移動及び／又は通過する際に形成される、該多孔性固相上に固定化された捕捉試薬によって捕捉された測定試料中の測定対象物と検出試薬との複合体、を測定する結合アッセイ法。
［２１］測定試料が、全血である［１８］〜［２０］のいずれかに記載の結合アッセイ法。
［２２］
（Ａ）下記一般式（Ｉ）
Ｒ¹−（Ｇ）_x （Ｉ）
（式中、Ｒ¹は置換基を有していてもよい直鎖又は分岐鎖の炭素数５〜１０のアルキル基を表し、Ｇは炭素数５又は６の還元糖に由来する残基であり、_xは還元糖の縮合度を示す値であって１〜３の数を示す。Ｒ¹とＧとは、酸素原子又はイオウ原子を介するエーテル結合により連結されている）で表される化合物からなる糖含有界面活性剤、
（Ｂ）構成脂肪酸の炭素数が５〜１４であるショ糖脂肪酸エステルからなる糖含有界面活性剤、
（Ｃ）ステロイド系界面活性剤
上記（Ａ）〜（Ｃ）からなる群から選ばれる一種以上の界面活性剤を、測定試料の添加前に含む結合アッセイ用多孔性固相を用いることを特徴とする、ラテラルフロー式あるいはディップスティック式結合アッセイ方法における測定試料の展開不良を改善する方法。
［２３］測定試料が、Ｈｔ値が５０％以上の試料である［２２］に記載の方法。
［２４］
（Ａ）下記一般式（Ｉ）
Ｒ¹−（Ｇ）_x （Ｉ）
（式中、Ｒ¹は置換基を有していてもよい直鎖又は分岐鎖の炭素数５〜１０のアルキル基を表し、Ｇは炭素数５又は６の還元糖に由来する残基であり、_xは還元糖の縮合度を示す値であって１〜３の数を示す。Ｒ¹とＧとは、酸素原子又はイオウ原子を介するエーテル結合により連結されている）で表される化合物からなる糖含有界面活性剤、
（Ｂ）構成脂肪酸の炭素数が５〜１４であるショ糖脂肪酸エステルからなる糖含有界面活性剤、
（Ｃ）ステロイド系界面活性剤
上記（Ａ）〜（Ｃ）からなる群から選ばれる一種以上の界面活性剤を、測定試料の添加前に含む結合アッセイ用多孔性固相を用いることを特徴とする、ラテラルフロー式あるいはディップスティック式結合アッセイ方法における測定試料の測定波形の乱れを改善する方法。

本発明は、多孔性固相を用いて検出を行う測定試料成分の結合アッセイ法において、（Ａ）一般式（Ｉ）で表される化合物からなる糖含有界面活性剤、（Ｂ）構成脂肪酸の炭素数が５〜１４であるショ糖脂肪酸エステルからなる糖含有界面活性剤、及び（Ｃ）ステロイド系界面活性剤からなる群、から選ばれる一種以上の界面活性剤を、測定試料の添加前に含む新規な結合アッセイ用多孔性固相及び該結合アッセイ用多孔性固相を用いる新規な結合アッセイ法を提供する。本発明により、結合アッセイ用多孔性固相での測定試料の展開不良が改善され、特に、固形成分を含有するかあるいは粘性の高い測定試料を測定する際の偽陰性・偽陽性を回避した、再現性の良好な測定が可能になる。また、希釈液や洗浄液の準備を含めた測定試料の前処理および、測定試料添加後の洗浄工程を必要としないので、操作が簡便である。さらに、本発明により、測定感度が高く、また測定波形の乱れもない、良好な測定を実現できる。

結合アッセイ用ストリップ（テストストリップ）の模式構造図である。 高Ｈｔ値模擬全血を測定試料とし、本発明の展開不良改善効果を確認した試験成績を示した図である（実施例３）。 高Ｈｔ値模擬全血を測定試料とし、本発明の展開不良改善効果を測定再現性で確認した試験成績を示した図である（実施例４）。 高Ｈｔ値模擬全血を測定試料とし、各界面活性剤の濃度を変更して本発明の展開不良改善効果を測定再現性で確認した試験成績を示した図である（実施例５）。 コントロールラインを含むテストストリップの模式構造図である（実施例６）。 濃縮血漿を測定試料とし、テストラインにおける本発明の展開不良改善効果を測定再現性で確認した試験成績を示した図である（実施例７）。 濃縮血漿を測定試料とし、コントロールラインにおける本発明の展開不良改善効果を測定再現性で確認した試験成績を示した図である（同上）。 濃縮血漿を測定試料とし、テストラインにおける本発明の展開不良改善効果を測定再現性で確認した試験成績を示した図である（実施例９）。 濃縮血漿を測定試料とし、コントロールラインにおける本発明の展開不良改善効果を測定再現性で確認した試験成績を示した図である（同上）。 ２種類の粒径の金コロイドを使用した本発明の多孔性固相を用いた場合の展開不良改善効果を確認した試験成績を示した図である（実施例１０）。 高Ｈｔ値模擬全血を測定試料とし、コール酸ナトリウムの濃度を変更して本発明の展開不良改善効果を測定再現性で確認した試験成績を示した図である（実施例１１）。 濃縮血漿を測定試料とし、本発明の界面活性剤とそれ以外の界面活性剤で前処理した場合の測定波形の乱れ改善効果の有無を確認した試験成績を示した図である（実施例１２）。 濃縮血漿を測定試料とし、本発明の界面活性剤とそれ以外の界面活性剤で前処理した場合の測定感度の再現性改善効果を確認した試験成績を示した図である（実施例１２）。 濃縮血漿を測定試料とし、本発明の界面活性剤とそれ以外の界面活性剤を本発明の方法以外で使用した場合の測定波形の乱れ改善効果を確認した試験成績を示した図である（実施例１３）。 濃縮血漿を測定試料とし、本発明の界面活性剤とそれ以外の界面活性剤を本発明の方法以外で使用した場合の測定感度の再現性改善効果を確認した試験成績を示した図である（実施例１３）。 健常人全血を測定試料とし、各種抗凝固剤を添加したサンプルパッドを用いた場合の展開不良改善効果を測定再現性で確認した試験成績を示した図である（実施例１４）。 健常人血漿を測定試料とし、各種アミノ酸を添加したコンジュゲートリリースパッドを用いた場合の展開不良改善効果を測定再現性で確認した試験成績を示した図である（実施例１５）。

本発明において、「測定試料」とは、血液（全血）、血清、血漿、リンパ液、尿、糞便、腹水、胸水、組織・細胞などを指す。そして、前記全血などから遠心分離、ろ過、精製などの手段により分離・分画された測定試料成分、有機溶媒などにより抽出された測定試料成分、界面活性剤などにより可溶化された測定試料成分、緩衝液などにより希釈された測定試料成分、化学反応などにより修飾・改変された測定試料成分などを含み、本発明の結合アッセイ用多孔性固相を用いた測定に供し得るものを指す。本発明の測定試料は、本発明の結合アッセイ用多孔性固相に添加、展開する時点で液体（流体）である。場合によって植物、河川、土壌なども本発明の測定試料に含まれる。なお、本発明において「展開」とは、多孔性固相を面積が最も広い面を上に向けて置いたときの水平方向すなわち多孔性固相の最長辺方向へ液体が流れる「移動」と、多孔性固相を面積が最も広い面を上に向けて置いたときの垂直方向すなわち多孔性固相の最短辺方向へ液体が流れる「通過」とを含む。
以下、測定試料が全血である場合を中心に本発明を実施するための最良の形態について説明する。

「測定試料成分」とは、上記「測定試料」に含まれる成分であって、例えば、フィブリン分解産物（例えばＤダイマー）、可溶性フィブリン、ＴＡＴ（トロンビン−アンチトロンビン複合体）、ＰＩＣ（プラスミン−プラスミンインヒビター複合体）などの凝固・線溶マーカー、酸化ＬＤＬ、ＢＮＰ（脳性ナトリウム利尿ペプチド）などの循環関連マーカー、アディポネクチンなどの代謝関連マーカー、ＣＥＡ（癌胎児性抗原）、ＡＦＰ（α−フェトプロテイン）、ＣＡ１９−９、ＣＡ１２５、ＰＳＡ（前立腺特異抗原）などの腫瘍マーカー、ＣＲＰ（Ｃ反応性蛋白）、ＩｇＡ、ＩｇＧ、ＩｇＭなどの炎症関係マーカー、インフルエンザ、ＨＩＶ（ヒト免疫不全ウイルス）、ＨＢＶ（Ｂ型肝炎ウイルス）、ＨＣＶ（Ｃ型肝炎ウイルス）、トキソプラズマ、クラミジア、梅毒などの感染症関連マーカー、アレルゲン特異ＩｇＥ（免疫グロブリンＥ）、ホルモン、薬物、ＳＮＰｓ（一塩基多型）に係わる核酸鎖及びその断片、該核酸鎖の相補鎖、などが例示される。なお本明細書において、「測定試料成分」の語は「測定対象」あるいは「測定対象物」と表記する場合もある。

本発明が奏する、固形成分を含有するかあるいは粘性の高い測定試料を測定する際の多孔性固相における展開不良を改善する効果を最も享受できる測定試料としては、例えば、血球を多く含み血漿量が正常より少ないヘマトクリット（Ｈｔ）値が高い全血やタンパク質高含有などにより流動性を欠く測定試料、すなわち「Ｈｔ値が高い試料」あるいは「粘性の高い測定試料」が挙げられる。これらは、測定試料中における水分（液体）含量が低い測定試料である。Ｈｔ値が高い試料としては、例えば基準範囲を超えるＨｔ値５０％以上の試料が挙げられる。これらは、何らかの疾患に起因して赤血球が増加している場合や脱水症状により単位全血あたりの血漿量が正常より少ない場合を含む。また、測定試料採取の後あるいは結合アッセイ開始後に何らかの理由により測定試料中の水分が蒸発し、乾燥・濃縮されてしまった測定試料も含まれる。

本発明において、「捕捉試薬」とは、測定試料成分と特異的な結合反応を生起し、測定試料成分との間で複合体を形成し得るものをいい、抗原に対する抗体、「特異的捕捉物質」、抗体に対する抗原が含まれる。該「特異的捕捉物質」には、リガンドに対するレセプター、核酸鎖に対する相補鎖やアプタマー、特定の糖を含有する物質に対するレクチンなどが含まれる。さらに、測定対象をいずれとするか、アッセイ系をどのように設計するか等により、例えば抗体に対する抗原など、前述した対応関係において測定試料成分として挙げたものが本発明の捕捉試薬になり得ることは、当業者であれば容易に理解されよう。また、これらの捕捉試薬は、測定試料成分との間で複合体を形成し得ることを限度として、種類を問わず、また物質全体とその機能断片を含むこと、例えば捕捉試薬が抗体である場合、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体の種類、それらの機能断片（Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）₂、Ｆｖ等）などが含まれることも当業者であれば容易に理解されよう。

本発明において、「検出試薬」とは「コンジュゲート」と同義であり、検出のための標識物質で標識された捕捉試薬または標識された測定対象物と同一特性を有するか、結合アッセイにおいて等価なものをいい、具体的には標識された抗体、標識された特異的捕捉物質、標識された抗原などである。標識物質としては、金属コロイド粒子（金コロイドなど）や着色ラテックス粒子などの可視化可能な微小粒子、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリ性ホスファターゼ、β−Ｄ−ガラクトシダーゼなどの酵素、ヨウ素¹²⁵などの放射性同位元素、アクリジニウム化合物、ルミノールなどの発光物質、フルオレセインイソチオシアネートあるいはユーロピウム（ＩＩＩ）キレートなどの蛍光物質などが知られており、抗体等への標識方法（標識物質の導入・結合方法）も公知の方法を制限なく使用することができる。

本発明において、「サンプルパッド」とは、測定対象となる測定試料成分を含み得る測定試料を受け入れる部位であり、パッドに成型された状態で液体の測定試料を吸収し、液体と測定試料成分とが通り抜けることができるどんな物質及び形態をも含む。サンプルパッドに適した材料の具体例として、ガラス繊維（グラスファイバー）、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッド（Ｌｙｄａｌｌ社）が用いられる。該サンプルパッドは、サンプルパッドそれ自体として、あるいはサンプルパッドを経由して測定試料の供給を受けるコンジュゲートリリースパッドや血球分離パッドの機能を併せもたせることもできる。

サンプルパッドには、結合アッセイ用多孔性固相における非特異的反応（吸着）を防止・抑制する目的で、結合アッセイ法に通常使用されるブロッキング試薬等を含むことができる。このような試薬としては、ＨＥＴＥＲＯ ＢＬＯＣＫ（オメガバイオロジカルス社、５００−１１−００１）等をあげることができる。さらにサンプルパッドには、測定中（特に、結合アッセイ用多孔性固相への測定対象物到達前）の血液凝固の回避及び血液凝固に由来する非特異反応の抑制を目的として、例えば1種類以上の抗凝固剤を含み得る。該抗凝固剤としては、本発明の効果を損なわないことを限度として、通常抗凝固剤として使用されるヘパリン、クエン酸、フッ化ナトリウム（ＮａＦ）、およびキレート剤（それぞれ塩や水和物を含む）を用いることができる。キレート剤としては、ＥＤＴＡ、ＣｙＤＴＡ、ＤＴＰＡなどをあげることができる。

本発明において、「コンジュゲートリリースパッド」とは、測定試料成分と特異的に反応する検出試薬を内在し、測定試料が該コンジュゲートリリースパッドを通過する際、検出試薬と測定試料成分が特異的な反応によって複合体を形成する機能を有する部位をいう。該コンジュゲートリリースパッドは、それ単独で結合アッセイ用多孔性固相に接するように配置されていてもよいし、あるいは、前記サンプルパッドと接触して配置され、毛管流によってサンプルパッドを通過した測定試料を受入れ、引き続き該測定試料を毛管流によって前記サンプルパッドとは異なる面で接触する後記「血球分離パッド」へ移送するように配置してもよい。なお、サンプルパッド、コンジュゲートリリースパッド、血球分離パッドの一種以上の部位の選択や、選択された部位を結合アッセイ用多孔性固相にどのように配置するかは、ストリップを設計する意図等により適宜に変更可能であることは当業者であれば容易に理解されよう。

該コンジュゲートリリースパッドに適した材料として、紙、セルロース混合物、ニトロセルロース、ポリエステル、アクリロニトリルコポリマー、ガラス繊維またはレーヨンのような不織繊維が挙げられるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッド（日本ポール社、Ｎｏ．８９６４）が用いられる。

該コンジュゲートリリースパッドには、アッセイの信頼性を担保するための「コントロール試薬」、例えば、標識物質で標識された測定試料成分と反応しない抗体や標識物質で標識されたＫＬＨ（スカシ貝ヘモシアニン）などの高抗原性タンパク質などを含み得る。これらコントロール試薬は、測定試料中に存在する可能性が考えられない成分（物質）であり、後述する「コントロール捕捉試薬」との適切な対応があれば適宜に選択可能である。また、該コンジュゲートリリースパッドは、検出試薬（存在する場合にはコントロール試薬も）を安定な状態に保ち、測定試料と接した際に、これらを迅速かつ効果的に溶解、流動化し、測定試料中に含まれる可能性のある測定対象物と特異的に反応するのを促進する目的で、例えば１種類以上の安定化剤、溶解補助剤等を含み得る。該安定化剤、溶解補助剤等としては、例えばウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、スクロース、カゼイン、アミノ酸類などをあげることができる。アミノ酸類は、特に好ましくはグリシンあるいはセリンが用いられる。

本発明において、「血球分離パッド」とは、前記コンジュゲートリリースパッドと接触して配置され、毛管流によってコンジュゲートリリースパッドを通過した測定試料を受入れ、引き続き該測定試料を毛管流によって該コンジュゲートリリースパッドとは異なる面で接触する「多孔性固相」へ移送する部位である。

血球分離パッドは、測定試料中の細胞成分の一部をろ過する固有の能力を有し、測定試料が全血である場合、血漿又は血清から全血中の細胞成分の一部を分離し得る親水性かつ吸収性の材料からなる。なお、測定試料が細胞成分を含有しないものであっても、血球分離パッドの細孔より大きな固形成分を含有する場合には、細胞成分の分離と同様に該固形成分を分離することができるので、血球分離パッドの語が、血球の分離のみに用いられるものを指すのではなく、広く測定試料中の固形成分の分離に用いられるものを指すことは当業者には当然に理解されるものである。

血球分離パッドに適した材料として、吸水性又は非吸水性の、繊維性又は非繊維性マトリックス、例えばシリカゲル、アルミナ、珪藻土等のような親水性無機粉末；スポンジ物質；粘土質物質；布；親水性天然重合体物質、特にセルロース系多孔性ビーズのようなセルロース系物質、及び特にろ紙又はクロマトグラフィー紙のような繊維含有紙；並びに酢酸セルロース、ポリ塩化ビニル、ポリアクリルアミド、ポリアクリレート、ポリウレタン、架橋デキストラン、アガロース、及びその他のこのような架橋又は非架橋水不溶性親水性ポリマーのような合成又は修飾天然ポリマーが挙げられるがこれらに限定されない。同様に、他の好適な材料としては、繊維性又は非繊維性マトリックス、例えばガラス繊維マトリックス；並びに合成ポリマー、例えばポリプロピレン、ポリエチレン、ナイロン、フッ化ポリビニリデン、及びポリスルホンが挙げられるがこれらに限定されない。硬質多孔性プラスチックも、全血中の血球成分を分離することができ、かつ、血漿又は血清を透過させて多孔性固相と接触させるのに十分な程度に多孔性である限りは、血球分離パッドとして有用である。好適には、ポリスルホン製パッド（日本ポール社、ＢＴＳ−ＳＰ３００）
が用いられる。

本発明にいて、「吸収体」とは、結合アッセイ用多孔性固相の捕捉試薬担持部を移動・通過した測定試料を吸収することにより、測定試料の展開を制御する液体吸収性を有する部位である。ラテラルフロー式およびディップスティック式においては、ストリップ構成の最下流に設ければよく、フロースルー式においては、例えば捕捉試薬を固定化した膜の下部に設ければよい。該吸収体としては、例えば、ろ紙を用いることができるが、これに限定されない。好適には、ワットマン社、７４０−Ｅが用いられる。

本発明において、「多孔性固相」とは、通常、結合アッセイ法で用いられている多孔性膜（メンブレン）であって、測定試料が展開され最終的に測定試料成分の検出が行われる。その素材は何れであってもよく、例えば、ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート、ナイロン類、ガラス、セルロースやセルロース誘導体などの多糖類あるいはセラミックス等より製造する。具体的には、ミリポア社、東洋濾紙社、ワットマン社などより販売されているガラス繊維ろ紙やセルロースろ紙などをあげることができる。

多孔性固相には捕捉試薬が固定化されている。多孔性固相に捕捉試薬を固定化する方法は、通常用いられる方法であれば、どのようなものでもよく、捕捉試薬が多孔性固相に物理吸着あるいは化学結合等により、直接または間接的に固定化されていればよい。例えば、抗体あるいは抗原を含む溶液をメンブレンに塗布あるいは点着し、乾燥させることで抗体あるいは抗原をメンブレンに吸着・固定化させることができる。また、前記コンジュゲートリリースパッドの項で言及した「コントロール捕捉試薬」も同様の方法で多孔性固相に固定化することができる。「コントロール捕捉試薬」は、アッセイの信頼性を担保するための試薬であって、例えば標識抗体がマウス由来である場合には、抗マウス抗体（マウス抗体に対する特異性は所望により選択）などであり、コンジュゲートリリースパッドに、例えば標識されたＫＬＨなどのコントロール試薬も含む場合には、抗ＫＬＨ抗体などがコントロール捕捉試薬に該当する。コントロール捕捉試薬を多孔性固相に固定化する位置は、アッセイ系の設計に適合するよう適宜選択することができる。例えば、ラテラルフロー式あるいはディップスティック式において、標識抗体がマウス由来であり、抗マウス抗体をコントロール捕捉試薬として固定化する場合には、測定試料成分に対する捕捉試薬よりも下流に固定化させるのが一般的であるし、フロースルー式の場合、測定試料成分に対する捕捉試薬の固定化位置に対して適当な距離（複数の測定試料成分を検出するような場合には間隔）をとって固定化させるのが一般的である。要は、アッセイ系の設計とコントロール試薬及びコントロール捕捉試薬の組み合わせを考慮し、最適と考える位置に固定化すればよい。

本発明において、「ストリップ」とは、結合アッセイ用多孔性固相に、サンプルパッド、コンジュゲートリリースパッド、血球分離パッド、吸収体の一以上が適宜に配置装着されたものをいう。測定試料を希釈せず、かつ測定試料の添加以外の工程を含まずに測定を実行する場合を想定すると、結合アッセイ用多孔性固相に少なくともコンジュゲートリリースパッドを配置装着したものが、ストリップとして例示できる。該ストリップは、通常、プラスチック製粘着シートのような固相支持体上に配列させる。該固相支持体は、測定試料の毛管流を妨げない物質で構成されることはもとより、接着剤の成分が測定試料の毛管流を妨げない物質であることも同様である。なお、特許文献２にあるように、多孔性固相の機械的強度を上げ且つアッセイ中の水分の蒸発（乾燥）を防ぐ目的で多孔性固相をラミネートすることも当然に可能である。また、多孔性固相を被覆するように多孔性固相の上面にポリエス・BR>Eルフィルムなどを配置装着してラミネートした場合、測定試料の展開速度が向上するなど、測定試料の展開に関して有利な効果が確認される場合がある。該ストリップは、ストリップの大きさや、測定試料の添加方法・位置、捕捉試薬の固定化位置、シグナルの検出方法などを考慮した適当な容器（ハウジング）に格納・搭載して使用することができ、このような状態を「デバイス」という。

本発明に用いる「界面活性剤」の一つは、
（Ａ）下記一般式（Ｉ）
Ｒ¹−（Ｇ）_x （Ｉ）
（式中、Ｒ¹は置換基を有していてもよい直鎖又は分岐鎖の炭素数５〜１０のアルキル基を表し、Ｇは炭素数５又は６の還元糖に由来する残基であり、_xは還元糖の縮合度を示す値であって１〜３の数を示す。Ｒ¹とＧとは、酸素原子又はイオウ原子を介するエーテル結合により連結されている）で表される化合物からなる糖含有界面活性剤である。

本発明において用いられる直鎖又は分岐鎖の炭素数５〜１０のアルキル基としては、ペンチル基、３−メチルブチル基、ヘキシル基、メチルペンチル基、ヘプチル基、４−メチルヘキシル基、５−メチルヘキシル基、４−エチルペンチル基、オクチル基、６−メチルヘプチル基、５−メチルヘプチル基、５，５−ジメチルヘキシル基、ノニル基、デシル基などをあげることができるがこれらに限定されるものではない。アルキル基上に存在しうる置換基としては、本発明の効果を損ねないこと限度として、任意の置換基を選ぶことができる。塩素原子、フッ素原子及びヨウ素原子などのハロゲン原子、ヒドロキシ基などを例示することができる。これらのうち、炭素数７又は８の直鎖アルキル基（ｎ−ヘプチル基又はｎ−オクチル基）が好適に用いられる。

炭素数５又は６の還元糖としては、特にグルコース、ガラクトース、フルクトースをあげることができ、α体、β体のいずれでも用いることができるが、β体が好適である。これらの還元糖は、同一又は異なる還元糖による縮合物を形成していてもよい。該縮合物の具体例としては、マルトース（グルコースの２分子縮合物）、スクロース（ショ糖：グルコース１分子とフルクトース１分子の縮合物）などをあげることができる。_xは該還元糖縮合物の縮合度を示す値であって１〜３の数を示す。該_xは平均値を意味し、プロトンＮＭＲ法により測定することができる。好適な_xの値は１〜２である。

Ｒ¹とＧとは、酸素原子又はイオウ原子を介するエーテル結合により連結された、いわゆるグリコシド結合又はチオグリコシド結合を形成している。具体的には、グルコースの５位の炭素に結合している酸素原子やイオウ原子を介したエーテル結合により連結されている構造を例示することができる。

化合物の具体的な例としては、ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−グルコシド（ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−グルコピラノシド）、ｎ−オクチル−β−Ｄ−グルコシド（ｎ−オクチル−β−Ｄ−グルコピラノシド）、ｎ−ノニル−β−Ｄ−マルトピラノシド、ｎ−デシル−β−Ｄ−グルコピラノシド、ｎ−デシル−β−Ｄ−マルトピラノシドなどのアルキルグルコシド誘導体、ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシド（ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコピラノシド）、ｎ−オクチル−β−Ｄ−チオグルコシド（ｎ−オクチル−β−Ｄ−チオグルコピラノシド）、ｎ−ノニル−β−Ｄ−チオマルトピラノシド、オクチル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド、ｎ−ドデシル−β−Ｄ−マルトシドなどのアルキルチオグルコシド誘導体などを挙げることができる。これらのうち、展開不良の改善及び感度向上には、特に、ｎ−オクチル−β−Ｄ−グルコシド又はｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシドが好ましい。また、測定波形の乱れ改善には、ｎ−オクチル−β−Ｄ−グルコシド、ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシド又はｎ−ドデシル−β−Ｄ−マルトシドが好ましい。

本発明に用いる界面活性剤のもう一つは、
（Ｂ）構成脂肪酸の炭素数が５〜１４であるショ糖脂肪酸エステルからなる糖含有界面活性剤である。

ここで炭素数が５〜１４の脂肪酸としては、ペンタン酸（吉草酸）、ヘキサン酸（カプロン酸）、ヘプタン酸（エナント酸）、オクタン酸（カプリル酸）、ノナン酸（ペラルゴン酸）、デカン酸（カプリン酸）、ドデカン酸（ラウリン酸）、テトラデンカン酸（ミリスチン酸）を挙げることができる。このうち炭素数６あるいは１２の脂肪酸、すなわちヘキサン酸（カプロン酸）あるいはドデカン酸（ラウリン酸）を好適な例としてあげることができる。

ショ糖１分子に対しエステル結合する脂肪酸分子の数としては、１〜３分子を例示することできる。このうちショ糖１分子に対し脂肪酸１分子がエステル結合したショ糖脂肪酸エステルが好適である。具体的な化合物としては、モノカプロン酸スクロースやモノラウリン酸スクロースを好適な例としてあげることができる。

なお、本発明で用いる「糖含有界面活性剤」の「糖含有」とは、前述のとおり、（Ａ）一般式（Ｉ）で表される化合物、及び（Ｂ）構成脂肪酸の炭素数が５〜１４であるショ糖脂肪酸エステル、からなる群から選ばれる界面活性剤の構造中に糖または糖由来成分を含む意味で用いられる。

本発明に用いる界面活性剤のさらにもう一つは、
（Ｃ）ステロイド系界面活性剤である。

ここで、本発明に用いられるステロイド系界面活性剤とは、イオン性、非イオン性にかかわらず、疎水基にステロイド骨格を有する界面活性剤のことを指す。具体的には、コール酸塩、デオキシコール酸塩、デヒドロコール酸塩、タウロコール酸塩、グリココール酸塩、３−［（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ］プロパンスルホン酸、３−［（３−コールアミドプロピル）ジメチルアンモニオ］−２−ヒドロキシプロパンスルホン酸（ＣＨＡＰＳ）、Ｎ，Ｎ−ビス（３−Ｄ−グルコンアミドプロピル）コールアミドや、ジギトニン等のステロイドサポニンなどが挙げられ、その中でも展開不良の改善及び感度向上には、特に、コール酸ナトリウム、及びＣＨＡＰＳなどが好ましい。また、測定波形の乱れ改善には、コール酸ナトリウム、ＣＨＡＰＳ及びジギトニンが好ましい。

上記界面活性剤は単独で用いても、２種類以上組み合わせて用いてもよい。上記界面活性剤は、通常、０．００１（ｗ／ｖ）％〜２．０（ｗ／ｖ）％の濃度範囲で用いることができる。当業者であれば、実施する結合アッセイ法における上記界面活性剤以外の成分・要素の存在、メンブレンの材質などを考慮し、本発明の効果を最大発揮できるよう実験的に最適の濃度を決定することができる。好ましい濃度範囲の一例として、０．００１〜０．５％であり、より好適には０．０１〜０．５％、さらに好適には０．０１〜０．１％の濃度範囲を挙げることができる。

本発明の界面活性剤は、溶液にして使用する。界面活性剤を測定試料添加前にあらかじめ多孔性固相に含有させる方法としては、多孔性固相を本発明の界面活性剤溶液に浸漬し、乾燥させる方法などを使用することができる。

界面活性剤を多孔性固相に含有させる本発明の方法によれば、測定試料を前処理する手間がかからず、測定試料の希釈に伴う検出感度低下のおそれの問題もなく、また、コンジュゲートリリースパッドを具備させれば測定試料の添加後に検出試薬の添加工程も必要としないため、簡易に結合アッセイを行うことができる。従来行っていた測定試料の前処理は、洗浄液添加のタイミング等により測定結果にバラツキが生じていたが、本発明のあらかじめ界面活性剤が含有された多孔性固相を用いることにより前処理の手間が省けるだけでなく洗浄液添加のタイミングの調整など試験実施者の習熟が不要となり、測定精度も向上する。また、ストリップにロット間の差がある場合にも、洗浄液添加のタイミングの調整が必要であったが、本発明によれば前述のとおり改善される。

本発明の効果をさらに発揮させ、最も実用的な形態とするためには、界面活性剤を多孔性固相に固定化して、乾燥状態にして用いることが重要である。また、本発明の界面活性剤を多孔性固相に固定化する部分であるが、ラテラルフロー式あるいはディップスティック式を例に説明すると、少なくとも多孔性固相における測定試料の移動領域に固定化しておく必要がある。測定試料の移動領域としては、多孔性固相のうち、直接あるいはコンジュゲートリリースパッドなどを介して測定試料が導入される部分を開始点とし、測定試料の移動方向に、捕捉試薬が固定化された部分を終点として測定試料の移動する経路が含まれていればよいが、多孔性固相の終端まで含まれていることがより好ましい。また、界面活性剤は、測定試料の移動が均一に行われるようにするために、前記移動領域に対して均一に固定化されることが重要である。このように、本発明の結合アッセイ用多孔性固相によれば、測定試料が粘性の高いものであっても、多孔性固相中を均一に展開（移動・通過）することができ、再現性に優れ、検出感度にも影響しないアッセイが実現できる。なお、前記した界面活性剤の濃度は、上記した浸漬により多孔性固相に含ませる方法を採用した場合を主として想定している。従って、例えば、噴霧して浸透させたり、多孔性固相の材料それ自体を修飾・加工して含ませるなど別の方法を採用する場合には、浸漬により多孔性固相に含ませる方法で得られる効果を対照として、採用する方法に適した濃度を決定すればよい。

前記「界面活性剤を多孔性固相に固定化して、乾燥状態にして用いる」とは、多孔性固相が界面活性剤を含有した状態で、容易に多孔性固相から界面活性剤が剥離、脱落等しない状態をいい、物理的に吸着又は化学的に結合等して固定化されていることまでは要求しない。したがって、界面活性剤溶液に多孔性固相を浸漬させ乾燥させることにより、ここでいう固定化は達成されうる。要は、アッセイ前に、多孔性固相がなんらかの形で界面活性剤を乾燥状態で保持していればよい。

上記、本発明の界面活性剤溶液には、本発明の界面活性剤のほかに、例えばリン酸緩衝剤、トリス緩衝剤やグッド緩衝剤など、通常、ブロッキング液、洗浄液、希釈液の成分として結合アッセイ法に用いられる緩衝剤を含有していてもよい。この場合の緩衝液のｐＨは特に限定されないが、ｐＨ５〜９の範囲内であることが望ましい。さらには、通常、これらの緩衝液に添加される塩化ナトリウム等の塩類、防腐剤等の添加物を適宜添加してもよい。

また、上記、本発明の界面活性剤溶液には、本発明の界面活性剤の他に、通常、結合アッセイ法において用いられ、かつ、測定系に悪影響を及ぼさない界面活性剤（ポリオキシソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンモノ−ｐ−イソオクチルフェニルエーテルなどのポリオキシエチレン系非イオン界面活性剤等）が、この分野で通常用いられている範囲の濃度で添加されていてもよい。

本発明の結合アッセイ用多孔性固相を用いる結合アッセイ法を、免疫測定法を例として説明すると以下のとおりである。測定試料受け入れ部位であるサンプルパッドと、検出試薬としての標識抗体を含むコンジュゲートリリースパッドと、細胞成分を分離するための血球分離パッドと、捕捉試薬としての抗体が固定化された本発明の界面活性剤を含む多孔性固相よりなる結合アッセイ用ストリップに対し、測定試料を添加する。測定試料がコンジュゲートリリースパッドを通過する際、標識抗体と測定試料成分（測定対象物）が反応し特異複合体を形成する。該複合体は毛細管現象によりメンブレンで展開（移動・通過）し、メンブレン上に固定化された抗体に捕捉された特異複合体の標識物質に由来するシグナルを測定する。このような本発明の結合アッセイ法において、界面活性剤があらかじめ多孔性固相のうち、測定試料の移動部分に乾燥・固定化されていることから、固形成分を含有するかあるいは粘性の高い測定試料を測定する場合でも測定試料の流動性が良く、測定試料が多孔性固相を均一に移動することが可能となった。また、捕捉試薬のライン近傍（上流側、下流側）が白く抜けるという現象の出現頻度を低減することも可能となった。

このような免疫測定法の具体的な例としては、「フロースルー式」、「ディップスティック式」、及び「ラテラルフロー式」が挙げられる。

「ラテラルフロー式」は、液体の状態の測定試料をデバイスに滴下し、測定対象である測定試料成分を特異的に結合する捕捉試薬が塗布された多孔性固相を水平方向に展開（移動）させ、測定対象に特異的に結合する検出試薬、測定対象物、多孔性固相上に固定化された捕捉試薬の三元複合体を多孔性固相上に形成させて、検出試薬に含まれる標識物質を検出あるいは定量する方法である。「フロースルー式」は液体の状態の測定試料が多孔性固相を垂直方向に展開（通過）する点で「ラテラルフロー式」とは異なるが、測定原理は同様である。

「ディップスティック式」は、予め決められた量の液体の状態の測定試料にストリップの一部を浸漬させる点が前記２種の方法と異なり、測定試料の多孔性固相での展開（移動）は測定試料（液体）が上昇することにより達成される。

測定試料の展開距離が長いほど本発明の多孔性固相における展開不良の改善効果をより享受することができる。すなわち測定試料が多孔性固相の最長辺方向に移動する「ラテラルフロー式」または「ディップスティック式」と本発明を組み合わせることによって、再現性良好な結合アッセイを行うことができる。また、本発明の界面活性剤を含む多孔性固相は展開不良が改善されているので、洗浄工程を用いない結合アッセイ法において有用であり、特にラテラルフロー式あるいはディップスティック式に好適である。

本発明の界面活性剤を含む多孔性固相やコンジュゲートリリースパッドなどの作製は実施例に記載の方法を適宜、修飾・改変して行うことができる。また、アッセイにおける測定試料と標識物質の反応は、本発明の結合アッセイ用多孔性固相が使用できることを限度としてどのような順番で行ってもよい。標識物質に由来するシグナルを測定する方法としては、公知の方法に従って行えばよく、例えば標識物質が金コロイドの場合は、吸光度あるいは反射光の強度を測定すればよい。また、標識物質が放射性同位元素の場合は、放射線の線量をカウンターにてカウントすればよい。

以下に、実施例を挙げて本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらによって何ら限定されるものではない。

〔比較例１〕従来の結合アッセイ用多孔性固相を使用したイムノクロマトデバイスの作製
（１）金コロイド標識抗Ｄダイマー抗体（抗ＤＤ抗体コンジュゲート）の作製１ＯＤ／ｍＬの金コロイド（粒径４０ｎｍ）を含む炭酸カリウム緩衝液（ｐＨ８．０）２００ｍＬに対し、９２．４μｇ／ｍＬの抗Ｄダイマーモノクローナル抗体（抗ＤＤ抗体）を含む２ｍｍｏｌ／Ｌホウ酸緩衝液（ｐＨ８．０）１０ｍＬを加え、室温で１０分間撹拌した。該金コロイド−抗ＤＤ抗体混合液に対し、１０％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）水溶液を２０ｍＬ添加し、さらに５分間撹拌の後、１０℃にて、１０，０００ｒｐｍで４５分間遠心し、沈渣（コンジュゲート）を得た。得られたコンジュゲートに対し、Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｄｉｌｕｔｉｏｎ Ｂｕｆｆｅｒ（Ｓｃｒｉｐｐｓ社製）を添加し、１７ＯＤ／ｍＬとなるように希釈し、コンジュゲートを懸濁させた。吸光度は、５２４ｎｍ（使用した金コロイドの最大吸収波長）で測定した。
（２）コンジュゲートリリースパッドの作製
上記（１）で調製したコンジュゲートを、４ＯＤ／ｍＬとなるように、１．３３％カゼイン、４％スクロース溶液（ｐＨ７．５）と混合してコンジュゲート溶液を作製し、１３．０ｍｍ×２５４ｍｍ×０．５６ｍｍ（幅×長さ×厚さ）のグラスファイバー製パッド（日本ポール社、Ｎｏ．８９６４）に該パッド体積の１．２倍容量滲みこませた。ドライオーブン内で７０℃、３０分間加温することにより乾燥させ、コンジュゲートリリースパッドとした。
（３）抗ＤＤ抗体固定化メンブレン（結合アッセイ用多孔性固相）の作製
２５ｍｍ×２５４ｍｍ×０．２３５ｍｍ（短辺×長辺×厚さ）のニトロセルロースメンブレン（ミリポア社、ＨＦ２４０）の長辺の一端から１１ｍｍ内側の位置に、長辺と並行して１ｍｇ／ｍＬ抗ＤＤ抗体及び２．５％スクロースを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）を、イムノクロマト用ディスペンサー「ＸＹＺ３０５０」（ＢＩＯ ＤＯＴ社）を用いて１μＬ／ｃｍ幅でライン状に塗布した。ドライオーブン内で７０℃、４５分乾燥し、抗ＤＤ抗体固定化メンブレンとした。
（４）サンプルパッドの作製
２５ｍｍｏｌ／Ｌ ＮａＣｌ、０．５％スクロース及び０．２５ｍｇ／ｍＬ ＨＥＴＥＲＯ ＢＬＯＣＫ（オメガバイオロジカルス社、５００−１１−００１）を含む２０ｍｍｏｌ／Ｌトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．２）よりなるサンプルパッド含浸液を、１６ｍｍ×２５４ｍｍ×０．５５ｍｍ（短辺×長辺×厚さ）に切断したグラスファイバー製パッド（Ｌｙｄａｌｌ社）に対し該パッド体積の１．１５倍容量滲みこませた。ドライオーブン内で７０℃、４５分乾燥し、サンプルパッドとした。
（５）結合アッセイ用ストリップ（テストストリップ）の作製
プラスチック製粘着シート（ｇ）に上記抗ＤＤ抗体固定化メンブレン（ｄ）を貼り、該メンブレンの抗ＤＤ抗体（ｅ）を塗布した側と反対の端に血球分離パッド（ｃ）（日本ポール社、ＢＴＳ−ＳＰ３００）を配置装着し、抗ＤＤ抗体を塗布した側の端には吸収体（ｆ）（ワットマン社、７４０−Ｅ）を配置装着した。また該血球分離パッドに重なるように上記（２）で作製したコンジュゲートリリースパッド（ｂ）を配置装着し、さらにこのコンジュゲートリリースパッドに重なるように上記（４）で作製したサンプルパッド（ａ）を配置装着して、最後に多孔性固相および吸収体を被覆するように上面にポリエステルフィルム（ｈ）を配置装着しラミネートした。このように各構成要素を重ね合わせた構造物を６ｍｍ幅に切断してテストストリップを作製した。該テストストリップの外寸は、６ｍｍ×７０ｍｍ（幅×長さ）であり、アッセイの際、プラスチック性の専用のハウジング（サンプル添加窓部及び検出窓部を有する、図１中図示せず）に格納・搭載し、イムノクロマトデバイスの形態にした。図１にテストストリップの模式構成図を示した。

〔実施例１〕本発明のテストストリップを使用したイムノクロマトデバイスの作製
（１）本発明の抗ＤＤ抗体固定化メンブレン（結合アッセイ用多孔性固相）の作製
先ずニトロセルロースメンブレン（ミリポア社、ＨＦ２４０）を、表１に示した本発明の界面活性剤をそれぞれ０．０５％（ｗ／ｖ）の濃度で含む１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）に浸漬し、室温で３０分間振盪した。余分な液を取り除いた後、３７℃ドライオーブンで１時間乾燥した。得られた界面活性剤を含むメンブレンについて、比較例１（３）に記載の操作を行い、本発明の抗ＤＤ抗体固定化メンブレンを作製した。
（２）本発明のイムノクロマトデバイスの組み立て
比較例１（２）のコンジュゲートリリースパッド、同（４）のサンプルパッド、上記本発明の抗ＤＤ抗体固定化メンブレンを用い、比較例１（５）に記載の操作により、本発明のテストデバイスを作製した。

〔実施例２〕本発明の結合アッセイ用多孔性固相の展開不良改善効果の確認（１）
（１）高Ｈｔ値模擬全血の作製
全血を遠心分離して得た血球層に対し同一全血から得た血漿を添加し、再構成後のＨｔ値が７０％を示す高Ｈｔ値模擬全血を作製した。
（２）試験方法
高Ｈｔ値模擬全血１００μＬを、実施例１で作製した本発明のデバイスのテストストリップのサンプルパッド部に添加し、添加１５分後に展開された液体の先端を示すコンジュゲートに由来する赤紫色ラインが、テストストリップ終端の吸収紙まで到達するか否かを目視により確認した。テストストリップ終端の吸収紙まで赤紫色ラインが到達した場合には、展開不良の改善効果ありと判定した。結果を表１に示した。なお、比較例１の抗ＤＤ抗体固定化メンブレンに、コンジュゲート溶液を直接添加し、展開を確認した試験において、プラスチック製粘着シートの有無による展開時間の変動は観察されなかった。

（３）試験結果
比較例１のテストストリップでは、抗ＤＤ抗体の塗布ラインより手前までしか赤紫色ラインは移動しなかった。一方、ｎ−オクチル−β−Ｄ−グルコシド、ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシド及びモノカプロン酸スクロースを含有する本発明のテストストリップでは、テストストリップ終端の吸収紙まで赤紫色ラインの移動が確認された。
以上より、ｎ−オクチル−β−Ｄ−グルコシド、ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシド及びモノカプロン酸スクロースは、結合アッセイ用多孔性固相における測定試料の展開不良の改善効果ありと判定した（表１効果の欄に○印で表示）。

〔実施例３〕本発明の結合アッセイ用多孔性固相の展開不良改善効果の確認（２）
（１）精製Ｄダイマー（ＤＤ）添加高Ｈｔ値模擬全血（ＤＤ模擬全血）の作製全血を遠心分離して得た血球層に対し、精製ＤＤを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）および同一全血から得た血漿を添加し、ＤＤの終濃度が１．０μｇ／ｍＬかつ再構成後のＨｔ値が７０％を示すようにＤＤ模擬全血を作製した。
（２）試験方法
ＤＤ模擬全血１００μＬを、実施例１で作製した本発明の結合アッセイ用多孔性固相（ｎ−オクチル−β−Ｄ−グルコシド含有）含むイムノクロマトデバイスのサンプルパッド部に添加し、イムノクロマトリーダーＩＣＡ−１０００（浜松ホトニクス社）を用いてテストデバイスの検出窓部の反射吸光度（以下、各実施例において単に吸光度という）の変化を、添加１分後から添加１５分後まで１分間隔で経時的に測定した。なお、各実施例における吸光度の測定は、前記と同じ測定装置を用いて行った。
（３）試験結果
本発明の結合アッセイ用多孔性固相を使用したテストストリップでは、ＤＤ模擬全血添加１０分後に吸光度の増加が観察されると共に、ＤＤ模擬全血添加１５分後まで吸光度の直線的増加が認められた。この結果は二回の測定でほぼ同様であった（以上、図２中の実施例）。一方、従来の結合アッセイ用多孔性固相を使用したテストストリップでは、一回目の測定では、ＤＤ模擬全血添加１４分後まで吸光度の増加が観察されず、吸光度増加が観察された添加１５分後の吸光度も本発明のテストストリップの１０分後の吸光度よりも低い吸光度であった。また、二回目の測定ではＤＤ模擬全血添加１１分後に吸光度の増加が確認されたが、ＤＤ模擬全血添加１５分後まで測定しても本発明のテストストリップにおいて示された吸光度と同レベルの吸光度に達することはなかった（以上、図２中の比較施例）。
以上のように、本発明のテストストリップでは、極端に液体成分の少ない全血（例えばＨｔ値７０％）を測定試料とする場合であっても、良好な再現性で測定可能であり、本発明は結合アッセイ用多孔性固相における測定試料の展開不良の改善効果が顕著であることが確認された。

〔実施例４〕本発明の結合アッセイ用多孔性固相の展開不良改善効果の確認（３）
（１）ＤＤ模擬全血の作製
実施例３と同様の操作により、ＤＤ模擬全血を作製した。
（２）本発明のイムノクロマトデバイスの作製
界面活性剤としてｎ−オクチル−β−Ｄ−グルコシド、ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシド、モノラウリン酸スクロースを使用し、実施例１に記載の操作により作製した。
（３）試験方法
ＤＤ模擬全血１００μＬを上記（２）で作製した本発明のイムノクロマトデバイスのサンプルパッド部に添加し、添加１５分後のテストデバイスの検出窓部の吸光度を測定した。測定はｎ＝５で行い、測定値のＣＶ（％）を算出し、従来の結合アッセイ用多孔性固相からなるテストストリップを搭載したイムノクロマトデバイスと比較した。
（４）試験結果
本発明のテストストリップは、従来のテストストリップと比較して顕著に小さいＣＶ（％）を示した（図３）。このように、本発明の結合アッセイ用多孔性固相を使用すると、Ｈｔ値が極端に高い測定試料であっても良好な再現性での測定が可能であること、及び本発明は結合アッセイ用多孔性固相における測定試料の展開不良を改善し、正確な測定を可能にすることが確認された。

〔実施例５〕本発明の結合アッセイ用多孔性固相の展開不良改善効果の確認（４）
（１）精製Ｄダイマー（ＤＤ）添加高Ｈｔ値模擬全血（ＤＤ模擬全血）の作製全血を遠心分離して得た血球層に対し、精製ＤＤを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）および同一全血から得た血漿を添加し、ＤＤの終濃度が１．０μｇ／ｍＬかつ再構成後のＨｔ値が６２％を示すようにＤＤ模擬全血を作製した。
（２）抗ＤＤ抗体固定化メンブレン（結合アッセイ用多孔性固相）の作製
実施例１（１）に記載の本発明の抗ＤＤ抗体固定化メンブレン（結合アッセイ用多孔性固相）の作製方法において、１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）に添加した各界面活性剤の濃度を０、０．０１、０．０５、０．０７５、０．１０％（ｗ／ｖ）とした以外は、実施例１と同じ方法を用いた。
（３）試験方法
実施例４（３）と同じ方法で測定を行った。測定値のＣＶ（％）を算出して至適濃度範囲を決定した。
（４）試験結果
図４に示すように、今回試験した濃度においては、いずれの界面活性剤でも従来法と比較して良好な再現性を示した。ここでは、ＣＶ値が従来法の半分である１５％以下を満たす場合を効果ありと判断した。本試験例の界面活性剤は０．０１〜０．１０％の範囲でいずれもＣＶ値が１５％未満であり、従来法に比べ十分な効果を発揮することが確認された。

〔実施例６〕コントロールラインを含むイムノクロマトデバイスの作製
（１）コントロールライン用金コロイド標識ＫＬＨ（ＫＬＨコンジュゲート）の作製
１ＯＤ／ｍＬの金コロイド（粒径４０ｎｍ）を含む炭酸カリウム緩衝液（ｐＨ８．０）２００ｍＬに対し、６２０μｇ／ｍＬとなるようＫＬＨ粉末を溶解した２ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．１）１０ｍＬを加え、室温で１０分間撹拌した。該金コロイド−ＫＬＨ混合液に対し、１０％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）水溶液を２０ｍＬ添加し、さらに５分間撹拌の後、１０℃にて、１０，０００ｒｐｍで４５分間遠心し、沈渣（コンジュゲート）を得た。得られたコンジュゲートに対し、Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｄｉｌｕｔｉｏｎ Ｂｕｆｆｅｒ（Ｓｃｒｉｐｐｓ社製）を添加し、１７ＯＤ／ｍＬとなるように希釈し、コンジュゲートを懸濁させた。吸光度は、５３１ｎｍ（使用した金コロイドの最大吸収波長）で測定した。
（２）コンジュゲートリリースパッドの作製
比較例１（１）で調製した抗ＤＤ抗体コンジュゲートを４ＯＤ／ｍＬとなるように、上記（１）で調製したＫＬＨコンジュゲートを４．５ＯＤ／ｍＬとなるように、１．３３％カゼイン、４％スクロース溶液（ｐＨ７．５）と混合してコンジュゲート溶液を作製し、１３．０ｍｍ×２５４ｍｍ×０．５６ｍｍ（幅×長さ×厚さ）のグラスファイバー製パッド（日本ポール社、Ｎｏ．８９６４）に該パッド体積の１．２倍容量滲みこませた。ドライオーブン内で７０℃、３０分間加温することにより乾燥させ、コンジュゲートリリースパッドとした。
（３）抗ＤＤ抗体および抗ＫＬＨポリクローナル抗体固定化メンブレン（結合アッセイ用多孔性固相）の作製
実施例１（１）と同様に、ニトロセルロースメンブレンを、本発明の各界面活性剤を所定の濃度で含む１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．２)に浸漬し、室温で３０分間振盪した。余分な液を取り除いた後、３７℃ドライオーブンで１時間乾燥した。２５ｍｍ×２５４ｍｍ×０．２３５ｍｍ（短辺×長辺×厚さ）のニトロセルロースメンブレン（ミリポア社、ＨＦ２４０）の長辺の一端から内側１１ｍｍの位置に、長辺と並行して、１ｍｇ／ｍＬ抗ＤＤ抗体及び２．５％スクロースを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）を、同様に同一端から１５ｍｍの位置に、長辺と並行して、０．５ｍｇ／ｍＬ抗ＫＬＨポリクローナル抗体及び２．５％スクロースを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）を、イムノクロマト用ディスペンサー「ＸＹＺ３０５０」（ＢＩＯ ＤＯＴ社）を用いて１μＬ／ｃｍ幅でライン状に塗布した。ドライオーブン内で７０℃、４５分乾燥し、抗ＤＤ抗体固定化メンブレンとした。
（４）サンプルパッドの作製
比較例１（４）と同様にサンプルパッドを作製した。
（５）イムノクロマトデバイスの作製
上記（２）のコンジュゲートリリースパッド、同（３）のメンブレン、同（４）のサンプルパッドを用いて、比較例１（５）記載の操作により、コントロールラインを含むテストストリップおよび、イムノクロマトデバイスを作製した。図５にテストストリップの模式構成図を示した。
後述する実施例７及び実施例９において、テストラインとは、上記抗ＤＤ抗体固定化メンブレン（ｄ）の抗ＤＤ抗体（ｅ）が固定化されている位置に測定試料が到達して検出されるライン（図５（ｅ）の位置に現れる）をいい、コントロールラインとは、同メンブレンにコントロール捕捉試薬（抗ＫＬＨポリクローナル抗体）が固定化されている位置に測定試料が到達して検出されるライン（図５（ｊ）の位置に現れる）をいう。

〔実施例７〕本発明の結合アッセイ用多孔性固相の展開不良改善効果の確認（５）
（１）Ｄダイマー（ＤＤ）添加濃縮血漿（ＤＤ濃縮血漿）の作製
凍結乾燥した０．５ｍＬの健常人血漿を、０．２５ｍLの精製水で溶解することにより２倍濃縮した血漿を調製した。そこへ、精製ＤＤを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌトリス塩緩衝液（ｐＨ８．０）を添加し、終濃度ＤＤ１．０μｇ/ｍＬとなるようにＤＤ添加濃縮血漿を作製した。
（２）試験方法
ＤＤ濃縮血漿１００μＬを実施例６で作製したイムノクロマトデバイスのサンプルパッド部に添加し、ＤＤ濃縮血漿添加１５分後のテストデバイスの検出窓部の吸光度を測定した。測定はｎ＝５で行い、測定値のＣＶ（％）を算出し、従来法のイムノクロマトデバイス（本発明の界面活性剤を含まない以外は実施例６のイムノクロマトデバイスと同じ）と比較した。
（３）試験結果
テストラインの検出結果を図６に、コントロールラインの検出結果を図７に示す。本発明の界面活性剤のいずれを用いた場合においても、従来のイムノクロマトデバイスでの測定と比較してＣＶ（％）が減少した。コントロールラインの検出においては、従来法では展開液の先端がテストラインに到達しないために再現性不良になっていたところ、本発明の結合アッセイ用多孔性固相を用いた場合には、測定試料の展開不良の改善によって再現性が大幅に向上した。以上より、本発明の結合アッセイ用多孔性固相は、血漿成分が２倍濃厚になった状態の測定試料であっても良好な再現性での測定が可能であること、および本発明は結合アッセイ用多孔性固相における測定試料の展開不良を改善し、正確な測定を可能にすることが確認された。

〔実施例８〕本発明の結合アッセイ用多孔性固相の展開不良改善効果の確認（６）
（１）材料及び試験方法
使用した界面活性剤がコール酸ナトリウムとＣＨＡＰＳであること以外は実施例２に記載の材料及び試験方法を用いた。

（２）試験結果
コール酸ナトリウムを含有する本発明のテストストリップでも、実施例２に示した界面活性剤と同様にテストストリップ終端の吸収紙まで赤紫色ラインが移動した。
よって、コール酸ナトリウムおよびＣＨＡＰＳは、結合アッセイ用多孔性固相における測定試料の展開不良の改善効果ありと判定した（表２効果の欄に○印で表示）。

〔実施例９〕本発明の結合アッセイ用多孔性固相の展開不良改善効果の確認（７）
（１）材料及び試験方法
界面活性剤の種類がコール酸ナトリウムあるいはＣＨＡＰＳである以外は、実施例４と同じ方法を用いた。
（２）試験結果
テストラインの検出結果を図８に、コントロールラインの検出結果を図９に示す。テストライン及びコントロールラインの検出において、コール酸ナトリウムあるいはＣＨＡＰＳで処理した本発明のテストストリップは、従来法のテストストリップと比較して顕著に低いＣＶ（％）を示した（図８、図９）。特にコントロールラインの検出では、従来法のＣＶ（％）が著しく高かったが、これは展開不良のため測定試料がコントロールラインまで到達していないことに起因する。このように、コール酸ナトリウムあるいはＣＨＡＰＳを使用した場合も、Ｈｔ値が極端に高い測定試料を再現性良く測定できた。

〔実施例１０〕２種類の粒径の金コロイドの使用
（１）粒径６０ｎｍ金コロイド標識抗Ｄダイマー抗体の添加
１ＯＤ／ｍＬの金コロイド（粒径６０ｎｍ）を含む炭酸カリウム緩衝液（ｐＨ８．０）２００ｍＬに対し、４６．２μｇ／ｍＬの抗Ｄダイマーモノクローナル抗体（抗ＤＤ抗体）を含む２ｍｍｏｌ／Ｌホウ酸緩衝液（ｐＨ８．０）１０ｍＬを加え、室温で１０分間撹拌した。該金コロイド−抗ＤＤ抗体混合液に対し、１０％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）水溶液を１０ｍＬ添加し、さらに５分間撹拌の後、１０℃にて、１０，０００ｒｐｍで４５分間遠心し、沈渣（コンジュゲート）を得た。得られたコンジュゲートに対し、Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｄｉｌｕｔｉｏｎ Ｂｕｆｆｅｒ（Ｓｃｒｉｐｐｓ社製）を添加し、１７ＯＤ／ｍＬとなるように希釈し、コンジュゲートを懸濁させた。吸光度は、５３１ｎｍ（使用した金コロイドの最大吸収波長）で測定した。
（２）コンジュゲートリリースパッドの作製
４０ｎｍ金コロイド標識抗Ｄダイマー抗体と６０ｎｍ金コロイド標識Ｄダイマー抗体を、各々４ＯＤ／ｍＬとなるように、１．３３％カゼイン、４％スクロース溶液（ｐＨ７．５）と混合してコンジュゲート溶液を作製し、１３．０ｍｍ×２５４ｍｍ×０．５６ｍｍ（幅×長さ×厚さ）のグラスファイバー製パッド（日本ポール社、Ｎｏ．８９６４）に該パッド体積の１．２倍容量滲みこませた。ドライオーブン内で７０℃、３０分間加温することにより乾燥させ、コンジュゲートリリースパッドとした。
（３）本発明のイムノクロマトデバイスの作製
コンジュゲートリリースパッドが上記（２）で作製したものであること以外、実施例１と同様に行った。使用した界面活性剤はｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシドである。
（３）精製Ｄダイマー（ＤＤ）添加高Ｈｔ値模擬全血（ＤＤ模擬全血）の作製全血を遠心分離して得た血球層に対し、精製ＤＤを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）および同一全血から得た血漿を添加し、再構成後のＨｔ値が６０％を示すようにＤＤ模擬全血を作製した。ＤＤ濃度は０、３．０、１５μｇ／ｍＬになるように調整した。
（４）試験結果
２種類の粒径の金コロイドを用いた測定系において、従来法（単一粒径の金コロイド使用）と比較して本発明の多孔性固相を用いた場合では、検出感度が向上し、測定対象物が高濃度の測定試料においてもより定量的な測定が可能になった（図１０）。

〔実施例１１〕本発明の結合アッセイ用多孔性固相の展開不良改善効果の確認（８）
（１）精製Ｄダイマー（ＤＤ）添加高Ｈｔ値模擬全血（ＤＤ模擬全血）の作製全血を遠心分離して得た血球層に対し、精製ＤＤを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）および同一全血から得た血漿を添加し、ＤＤの終濃度が１．０μｇ／ｍＬかつ再構成後のＨｔ値が６０％を示すようにＤＤ模擬全血を作製した。
（２）抗ＤＤ抗体固定化メンブレン（結合アッセイ用多孔性固相）の作製
実施例１（１）に記載の本発明の抗ＤＤ抗体固定化メンブレン（結合アッセイ用多孔性固相）の作製方法において、用いた界面活性剤がコール酸ナトリウムであり、１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）に添加した界面活性剤の濃度を０、０．０１、０．０５、０．０７５、０．１、０．５％（ｗ／ｖ）とした以外は、実施例１と同じ方法を用いた。
（３）試験方法
実施例４（３）と同じ方法で測定を行った。測定値のＣＶ（％）を算出して至適濃度範囲を決定した。
（４）試験結果
図１１に示すように、今回試験した濃度においては、いずれの界面活性剤濃度でも従来法と比較して顕著に良好な再現性を示した。ここでは、ＣＶ値が従来法の半分である１０％以下を満たす場合を効果ありと判断した。本試験例の界面活性剤は０．０１〜０．５％の範囲でいずれもＣＶ値が１０％未満であり、従来法に比べ十分な効果を発揮することが確認された。

〔実施例１２〕本発明の界面活性剤とそれ以外の界面活性剤で結合アッセイ用多孔性固相を前処理した場合の測定波形の乱れ改善効果の比較
（１）Ｄダイマー（ＤＤ）添加濃縮血漿（ＤＤ濃縮血漿）の作製
凍結乾燥した０．５ｍＬの健常人血漿を、０．２５ｍLの精製水で溶解することにより２倍濃縮した血漿を調製した。そこへ、精製ＤＤを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）を終濃度１．０μｇ/ｍＬとなるように精製ＤＤを含む１０ｍｍｏｌ/Ｌトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）を添加し、ＤＤ添加濃縮血漿を作製した。
（２）イムノクロマトデバイスの作製方法
１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．２)中に含まれる界面活性剤として、０．０５％ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシドあるいは０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０、０．０５％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００を用いた以外は、実施例６（３）と同様の方法で抗ＤＤ抗体および抗ＫＬＨポリクローナル抗体固定化メンブレンを作製した。上記メンブレンを用いて実施例６（５）と同様の方法でイムノクロマトデバイスを作製した。
（３）試験方法
ＤＤ濃縮血漿１２０μＬを上記（２）で作製したイムノクロマトデバイスのサンプルパッド部に添加し、ＤＤ濃縮血漿添加１５分後のテストデバイスの検出窓部の吸光度を測定した。測定はｎ＝５で行い、それぞれ測定波形の形状を確認した。
本発明のイムノクロマトデバイス（ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシド前処理）と、界面活性剤を含浸させないニトロセルロースメンブレンを用いたイムノクロマトデバイス（従来法）及び固相に含浸させる界面活性剤にＴｒｉｔｏｎＸ−１００、Ｔｗｅｅｎ２０を用いたイムノクロマトデバイス（ＴｒｉｔｏｎＸ−１００前処理、Ｔｗｅｅｎ２０前処理）とを比較した。
（４）試験結果
図１２に、各試験条件における測定波形の形状を示した。図左側が上流側、図右側が下流側であり、下向きに検出されるピークがシグナルである。最初に現れるピークがテストラインに由来するピークであり、後に現れるピークがコントロールラインに由来するピークである。先述したように反射吸光度は、ピークとその近傍の反射光強度を測定し、その比を用いて算出するのでピーク付近の反射光強度の変化は測定精度に影響を与える。従ってピーク前後の反射光強度は一定であることが理想である。
図１２の（ａ）従来法、（ｃ）ＴｒｉｔｏｎＸ−１００前処理、（ｄ）Ｔｗｅｅｎ２０前処理のいずれにおいても、ピークの前後に上向きの反射光強度の変化が認められた。特にＴｗｅｅｎ２０で前処理した多孔性固相では、極端な反射光強度の変化（図１２（ｄ））が観察された。
これに対し、本発明の界面活性剤で前処理した多孔性固相（図１２（ｂ））は、ピーク前後で反射光強度の変化を認めなかった。
テストラインにおける反射吸光度の分布を図１３に示した。本発明の界面活性剤で前処理した多孔性固相を用いた場合には、測定される反射吸光度の分散が少なく良好な再現性を示し、かつ高感度であったが、その他の条件では分散が大きく、Ｔｗｅｅｎ２０では反射吸光度を算出できない（測定不可能になる）場合さえあった。

〔実施例１３〕多孔性固相への界面活性剤の添加方法の違いによる測定波形の乱れ改善効果の比較
（１）Ｄダイマー（ＤＤ）添加濃縮血漿（ＤＤ濃縮血漿）の作製
実施例１２と同様の操作により、ＤＤ濃縮血漿を作製した。
（２）固相洗浄液の調製
１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）に、ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシドあるいはＴｗｅｅｎ２０、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００を終濃度０．０５％（ｗ／ｖ）になるよう添加し、固相洗浄液を調製した。
（３）試験方法
ＤＤ濃縮血漿１２０μＬを、本発明のテストストリップ、および従来法で作製されたテストストリップの、サンプルパッド部に添加した。１５分後、本発明のテストストリップのテストデバイスの検出窓部の吸光度を測定した。従来法で作成されたテストデバイスには、ＤＤ濃縮血漿添加から５分後に、５０μＬの固相洗浄液を添加し、ＤＤ濃縮血漿添加から１５分後のテストデバイスの検出窓部の吸光度を測定した。
（４）試験結果
本発明の界面活性剤の多孔性固相への添加方法を固相洗浄液とした場合、測定波形の乱れは改善されなかった（図１４（ｃ）の矢印部分）。同様に、図１４の（ｂ）従来法、（ｄ）ＴｒｉｔｏｎＸ−１００を含む固相洗浄液、（ｅ）Ｔｗｅｅｎ２０を含む固相洗浄液のいずれでも測定波形の乱れは改善されなかった。
これに対し、本発明の界面活性剤で前処理した多孔性固相（図１４（ａ））は、ピーク前後で反射光強度の変化を認めなかった。
テストラインにおける反射吸光度の分布を図１５に示した。本発明の界面活性剤で前処理した多孔性固相を用いた場合には、測定される反射吸光度の分散が少なく良好な再現性を示し、かつ高感度であったが、その他の条件では分散が大きかった。
これより本発明の多孔性固相を用いることで、展開不良のみならず測定波形の乱れが改善されて、従来法や固相洗浄液を用いた場合よりも感度の良い測定を再現良く行えることが確認できた（図１５）。

〔実施例１４〕抗凝固剤のサンプルパッドへの添加による再現性改善効果の確認
（１）精製Ｄダイマー（ＤＤ）添加全血（ＤＤ全血）の作製
ＤＤの終濃度が１．０μｇ／ｍＬとなるように精製ＤＤを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）を健常人全血に添加し、ＤＤ全血を作製した。
（２）抗凝固剤を含むサンプルパッドを用いたイムノクロマトデバイスの作製
サンプルパッド含浸液に抗凝固剤を添加してサンプルパッドを作製した以外は、比較例と同じ方法でイムノクロマトデバイスを作製した。抗凝固剤の種類と終濃度については次の通りである。
ＥＤＴＡ−２Ｎａ（以下、ＥＤＴＡ：１又は５ｍｍｏｌ／Ｌ）、
Ｄｉｅｔｈｙｌｅｎｅｔｒｉａｍｉｎｅ−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ”，Ｎ”−ｐｅｎｔａａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ（以下ＤＴＰＡ：１ｍｍｏｌ／Ｌ）、
ｔｒａｎｓ−１，２−Ｄｉａｍｉｎｏｃｙｃｌｏｈｅｘａｎｅ−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−ｔｅｔｒａａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ（以下ＣｙＤＴＡ：１ｍｍｏｌ／Ｌ）
（３）試験方法
ＤＤ全血１２０μＬを、各抗凝固剤を含むサンプルパッドを具備するイムノクロマトデバイスの、サンプルパッド部に添加し、１５分後、各テストデバイスの検出窓部の吸光度を測定した。
（４）試験結果
抗凝固剤で処理されたサンプルパッドを用いたテストストリップは、いずれの抗凝固剤で処理されたものでも、未処理のサンプルパッドを用いたテストストリップと比較して再現性が向上した（図１６）。

〔実施例１５〕各種アミノ酸のコンジュゲートリリースパッドへの添加による再現性改善効果の確認
（１）Ｄダイマー（ＤＤ）添加血漿（ＤＤ血漿）の作製
ＤＤの終濃度が１．０μｇ/ｍＬとなるように精製ＤＤを含む１０ｍｍｏｌ／Ｌトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）を健常人血漿に添加し、ＤＤ添加血漿を作製した。
（２）各種アミノ酸のコンジュゲートリリースパッドへの添加コンジュゲート溶液に各種アミノ酸を添加してコンジュゲートリリースパッドを作製した以外は、比較例と同様にイムノクロマトデバイスを作製した。添加したアミノ酸の種類は、セリン、グリシン、グルタミン、アルギニン、アラニンで、添加終濃度はそれぞれ１０ｍｍｏｌ／Ｌとした。
（３）試験方法
ＤＤ血漿１２０μＬを、各アミノ酸を含むコンジュゲートリリースパッドを具備するイムノクロマトデバイスの、サンプルパッド部に添加し、１５分後、各テストデバイスの検出窓部の吸光度を測定した。
（４）試験結果
アミノ酸を添加したコンジュゲートリリースパッドを使用することにより再現性が向上し、特にセリン、グリシン添加によって著しく向上した（図１７）。

以下、各実施例の成績をまとめると、各試験結果より、本発明の界面活性剤で処理した結合アッセイ多孔性固相を用いれば、粘性の高い測定試料であっても、該多孔性固相において良好に測定試料が展開され、測定波形の乱れも抑えられ、また感度の高い再現性に優れた測定が可能となる。また、本発明の結合アッセイ多孔性固相に抗凝固剤処理を施したサンプルパッド及び／又はアミノ酸処理を施したコンジュゲートリリースパッドを組み合わせることにより、さらに、再現性が向上した測定が可能となる。

本発明によれば、下記、（Ａ）〜（Ｃ）；（Ａ）一般式（Ｉ）で表される化合物からなる糖含有界面活性剤、（Ｂ）構成脂肪酸の炭素数が５〜１４であるショ糖脂肪酸エステルからなる糖含有界面活性剤、及び（Ｃ）ステロイド系界面活性剤、からなる群から選ばれる一種以上の界面活性剤を用いて結合アッセイ用多孔性固相上で測定試料を展開することにより、粘性の高い測定試料であっても、該多孔性固相上で良好に展開され、偽陰性・偽陽性を回避して再現性の高い測定が可能となった。

（ａ）サンプルパッド
（ｂ）コンジュゲートリリースパッド
（ｃ）血球分離パッド
（ｄ）多孔性固相（メンブレン）
（ｅ）捕捉試薬（抗体）
（ｆ）吸収体
（ｇ）プラスチック製粘着シート
（ｈ）ポリエステルフィルム
（ｊ）コントロール捕捉試薬

Claims (19)

1. 結合アッセイ用の多孔性固相であって、
   ｎ−ヘプチル−β−Ｄ−チオグルコシドを前記多孔性固相のうち少なくとも測定試料の移動領域に乾燥状態で含み、
   前記アッセイは、測定試料が、前記固相を移動及び／又は通過することにより、該多孔性固相上に固定化された捕捉試薬によって測定試料中の測定対象物と検出試薬とによって形成される複合体、を測定するアッセイである、
   前記多孔性固相。
2. 結合アッセイが、免疫測定法である、請求項１に記載の結合アッセイ用多孔性固相。
3. 結合アッセイが、ラテラルフロー式、ディップスティック式又はフロースルー式メンブレ
   ンアッセイ法である請求項１または２に記載の結合アッセイ用多孔性固相。
4. 捕捉試薬が、抗体、特異的捕捉物質又は抗原である、請求項１〜３のいずれかに記載の結合アッセイ用多孔性固相。
5. 請求項１〜４のいずれかに記載の結合アッセイ用多孔性固相を含むことを特徴とする結合アッセイ用ストリップ。
6. 検出試薬を含有するコンジュゲートリリースパッドをさらに含む、請求項１〜５のいずれかに記載の結合アッセイ用ストリップ。
7. 検出試薬が、標識された抗体、標識された特異的捕捉物質又は標識された抗原である、請
   求項６に記載の結合アッセイ用ストリップ。
8. 標識が、粒径の異なる２種類の金コロイドによる標識である、請求項７に記載の結合アッセイ用ストリップ。
9. コンジュゲートリリースパッドがアミノ酸類を含む、請求項６〜８のいずれかに記載の結合アッセイ用ストリップ。
10. サンプルパッド及び／又は血球分離パッドをさらに含む、請求項６〜９のいずれかに記載の結合アッセイ用ストリップ。
11. サンプルパッドが抗凝固剤を含む、請求項１０に記載の結合アッセイ用ストリップ。
12. 以下の（１）〜（４）
    （１）サンプルパッド
    （２）サンプルパッドの下にサンプルパッドに接して配置された、検出試薬を含有するコ
    ンジュゲートリリースパッド
    （３）コンジュゲートリリースパッドと下記（４）の多孔性固相の間に配置された血球分
    離パッド
    （４）捕捉試薬が固定化された多孔性固相、
    からなるラテラルフロー式結合アッセイ法を行うためのストリップにおいて、多孔性固相
    が請求項１〜４のいずれかに記載の結合アッセイ用多孔性固相であることを特徴とする結合アッセイ用ストリップ。
13. 請求項５〜１２のいずれかに記載の結合アッセイ用ストリップを搭載したデバイス。
14. 請求項１〜４のいずれかに記載の多孔性固相を使用することを特徴とする結合アッセイ法。
15. 請求項５〜１２のいずれかに記載の結合アッセイ用ストリップを使用することを特徴とする結合アッセイ法。
16. 測定試料が、全血である請求項１４または１５に記載の結合アッセイ法。
17. 請求項１〜４のいずれかの結合アッセイ用多孔性固相を用いることを特徴とする、ラテラルフロー式あるいはディップスティック式結合アッセイ方法における測定試料の展開不良を改善する方法。
18. 測定試料が、Ｈｔ値が５０％以上の試料である請求項１７に記載の方法。
19. 請求項１〜４のいずれかの結合アッセイ用多孔性固相を用いることを特徴とする、ラテラルフロー式あるいはディップスティック式結合アッセイ方法における測定試料の測定波形の乱れを改善する方法。