JP5325211B2 - ポリペプチド、抗体可変ドメインおよびアンタゴニスト - Google Patents
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Description
TNFR1はリガンドと結合する細胞外領域と、内因性シグナル伝達活性を欠くがシグナル伝達分子と結合しうる細胞内ドメインとを含有する膜受容体である。TNFR1のTNFとの複合体は3つのTNFR1鎖と3つのTNF鎖を含有する(Banner ら, Cell, 73(3) 431-445 (1993))TNFリガンドは、3つのTNFR1鎖により結合された三量体として存在する(同著)。3つのTNFR1鎖は密接して一緒に受容体-リガンド複合体中にクラスター化されていて、このクラスター形成がTNFR1介在性シグナル伝達にとって先ず不可欠である。実際、抗TNFR1抗体などのTNFR1と結合する多価作用剤はTNFが不在でもTNFR1クラスター形成およびシグナル伝達を誘導することができ、通常、TNFR1アゴニストとして用いられる(例えば、Belka ら, EMBO, 14(6):1156-1165 (1995); Mandik-Nayak ら, J. Immunol, 167:1920-1928 (2001)を参照)。従って、TNFR1と結合する多価剤は、一般に、TNFαのTNFR1との結合をブロックしてもTNFR1の有効なアンタゴニストではない。
が丁度またはほぼ10または100μg/mlプロテアーゼおよび時間(t)が1時間の条件において耐性である。一実施形態において、可変ドメインは条件(ii)のもとで、すなわち、濃度(c')がほぼ40μg/mlプロテアーゼおよび時間(t)が丁度またはほぼ3時間の条件において耐性がある。一実施形態においては、プロテアーゼはトリプシン、エラスターゼ、ロイコザイムおよびパンクレアチンから選択される。一実施形態においては、プロテアーゼはトリプシンである。一実施形態において、プロテアーゼは痰、粘液(例えば、胃粘液、鼻粘液、気管支粘液)、気管支肺胞洗浄液、肺ホモジネート、肺抽出液、膵抽出液、胃液、唾液または涙中に見出されるプロテアーゼである。一実施形態において、プロテアーゼは眼または涙中に見出されるプロテアーゼである。一実施形態において、プロテアーゼは非細菌性プロテアーゼである。一実施形態において、プロテアーゼは動物、例えば、哺乳動物、たとえばヒトのプロテアーゼである。一実施形態において、プロテアーゼは胃腸管プロテアーゼまたは肺組織プロテアーゼ、例えば、ヒトで見出される胃腸管プロテアーゼまたは肺組織プロテアーゼである。ここに掲げたかかるプロテアーゼはまた、ライブラリーのレパートリーのプロテアーゼへの曝露に関わる本明細書に記載の方法で用いることができる。
他の実施形態において、本発明の方法はさらに、所望の生物学的活性を有するペプチドまたはポリペプチドをコードする核酸を増幅するステップを含んでなる。特別な実施形態において、前記核酸はファージ増幅、細胞増殖またはポリメラーゼ連鎖反応により増幅される。
本発明は、一実施形態において、所望の生物学的活性を有するプロテアーゼ耐性のペプチドおよびポリペプチドを選択する方法によって選択したポリペプチドおよびdAbに関する。プロテアーゼ分解に対して高度に安定で耐性がありかつ所望の生物学的活性を有するポリペプチドを選択するための効率的なプロセスを作製する方法は、2つの選択圧力を用いる。本明細書に記載した、プロテアーゼ耐性のペプチドおよびポリペプチドは、一般に生物学的活性を保有する。対照的に、ペプチドおよびポリペプチドに感受性のあるプロテアーゼは、本明細書に記載の方法でプロテアーゼにより切断または消化され、それ故にその生物学的活性を失う。従って、プロテアーゼ耐性のペプチドまたはポリペプチドは、一般に結合活性などのその生物学的活性に基づいて選択される。
一実施形態において、本明細書に記載の方法で使用するために提供されるペプチドまたはポリペプチドのレパートリーまたはライブラリーは、好適なディスプレイシステムを含む。ディスプレイシステムは、プロテアーゼ(例えば、単一プロテアーゼまたはプロテアーゼの組合わせ)、およびタンパク質分解活性を有する任意の成体抽出物、ホモジネートまたは調製物(例えば、痰、粘液(例えば、胃粘液、鼻粘液、気管支粘液)、気管支肺胞洗浄液、肺ホモジネート、肺抽出液、膵臓抽出液、胃液、唾液、涙など)による分解に耐性でありうる。ディスプレイシステムおよびディスプレイシステムと提示されるポリペプチドとの間の連結は、一実施形態において、レパートリーの最も安定なペプチドまたはポリペプチドと少なくとも同じプロテアーゼに対する耐性を有する。これにより、選択して提示されるポリペプチドをコードする核酸を容易に単離しおよび/または増幅することが可能になる。
プロテアーゼ耐性のペプチドまたはポリペプチド(例えば、プロテアーゼ耐性ポリペプチドの一集団)は、好適な方法を用いてレパートリーまたはライブラリー(例えば、ディスプレイシステムで)から選択し、単離しおよび/または回収することができる。一実施形態においては、プロテアーゼ耐性ポリペプチドを、選択可能な特徴(例えば、物理的特徴、化学的特徴、機能的特徴)に基づいて選択しまたは単離する。好適である、選択可能な機能的特徴としては、レパートリーのペプチドまたはポリペプチドの生物学的活性、例えば、ジェネリックリガンド(例えば、スーパー抗原)との結合、標的リガンド(例えば、抗原、エピトープ、基質)との結合、抗体(例えば、ペプチドまたはポリペプチド上に発現されるエピトープを介する)との結合、および触媒活性が挙げられる(例えば、Tomlinsonら、WO 99/20749;WO 01/57065;WO 99/58655を参照)。一実施形態において、選択はTNFR1との特異的結合に基づく。他の実施形態においては、選択をメンバーがプロテアーゼ耐性である第2のレパートリーを生じる機能的特性の選択に基づいて行い、次いで第2のレパートリーからTNFR1と特異的に結合するメンバーを選択する。
他の態様においては、プロテアーゼ耐性のペプチドおよびポリペプチドのレパートリー、プロテアーゼ耐性のペプチドおよびポリペプチドをコードするライブラリー、およびかかるライブラリーおよびレパートリーを作製する方法を提供する。
本発明は、プロテアーゼ耐性のペプチドまたはポリペプチドをコードする、例えば、本明細書に記載の方法により選択可能なまたは選択した、単離されたおよび/または組換え体の核酸に関する。
本明細書に記載および例示した、本発明のプロテアーゼ耐性dAbは一般にその標的リガンドと高アフィニティで結合する。従って、他の態様においては、TNFR1と高アフィニティで結合する本発明のポリペプチドまたはdAbを選択し、単離しおよび/または回収する方法が提供される。一般に、本方法は、ペプチドまたはポリペプチド(例えばdAb)のライブラリーまたはレパートリーを提供するステップ、そのライブラリーまたはレパートリーとプロテアーゼ(例えば、トリプシン、エラスターゼ、ロイコザイム、パンクレアチン、痰)をプロテアーゼ活性に好適な条件下で組合わせるステップ、およびリガンド(例えば、標的リガンド)と結合するペプチドまたはポリペプチドを選択し、単離しおよび/または回収するステップを含んでなる。ライブラリーまたはレパートリーは、プロテアーゼ感受性のペプチドまたはポリペプチドが消化されうる条件下でプロテアーゼに曝されるので、プロテアーゼの活性は低結合アフィニティを有する安定性の低いポリペプチドを排除し、それにより高アフィニティ結合ペプチドまたはポリペプチドのコレクションを作ることができる。例えば、本発明のポリペプチドまたはdAbは、1μM以上強い、または約500nM〜約0.5pMのアフィニティ(表面プラズモン共鳴により測定したKD;KD=Koff(kd)/Kon(ka))でTNFR1と結合することができる。例えば、本発明のポリペプチドまたはdAbは、約500nM、約100nM、約10nM、約1nM、約500pM、約100pM、約10pM、約1pMまたは約0.5pMのアフィニティでTNFR1と結合することができる。特別な理論に束縛されることなく、プロテアーゼに耐性のあるペプチドおよびポリペプチドはより低いエントロピーおよび/またはより高い安定化エネルギーを有すると思われる。従って、プロテアーゼ耐性と高アフィニティ結合との間の相関は、本明細書に記載の方法により選択されたペプチドおよびポリペプチドおよびdAbの表面の緻密さおよび安定性と関係がありうる。
半減期の増加は、免疫グロブリン、とりわけ抗体、そしてとりわけ小サイズの抗体フラグメントのin vivo応用に有用である。かかるフラグメント(Fv、ジスルフィド結合Fv、Fab、scFv、dAb)は身体から速やかなクリアランスを受ける;従って、これらは身体のほとんどの部分に速やかに到達でき、産生するのが速く、取扱が容易である一方、これらのin vivo応用はin vivoでの残留性が短いために制限されている。本発明の一実施形態は、リガンドのin vivo半減期増加およびその結果としてリガンドの機能活性の身体内での持続時間の延長によりこの問題を解決する。
リガンドの水力学的サイズとその血清半減期はまた、本発明のTNFR1結合ポリペプチド、dAbまたはアンタゴニストを、本明細書に記載の、in vivo半減期を増加する抗原またはエピトープに結合する結合ドメイン(例えば、抗体または抗原結合フラグメント)とコンジュゲートまたは連結することにより増加することができる。例えば、本TNFR1結合剤(例えば、ポリペプチド)を、抗血清アルブミンまたは抗新生児Fc受容体抗体もしくは抗体フラグメント、例えば、抗SAまたは抗新生児Fc受容体dAb、Fab、Fab'もしくはscFvと、または抗SAアフィボディまたは抗新生児Fc受容体アフィボディまたは抗-SAアビマーと、あるいは、好ましくは限定されるものでないが、CTLA-4、リポカリン、SpA、アフィボディ、アビマー、GroElおよびフィブロネクチンからなるグループから選択されるスカフォールドを含む抗-SA結合ドメインとコンジュゲートまたは連結することができる(これらの結合ドメインの開示については2008年2月8日出願のPCT/GB2008/000453を参照されたい、なおこれらのドメインおよび配列は本明細書に参照により組み入れられかつ本明細書の開示の一部分を形成する)。コンジュゲートは、血清アルブミンに結合する結合ドメインと(共有結合または非共有結合で)結合した本発明のポリペプチド、dAbまたはアンタゴニストを含む組成物を意味する。
本発明は、一実施形態において、ポリペプチドまたはアンタゴニスト、例えば、TNFR1と結合する抗TNFR1 dAb(第1のdAb)および血清アルブミン(SA)と結合する第2のdAbを含む二重特異的リガンドを提供し、ここで、第2のdAbはSAと、表面プラズモン共鳴により測定して、1nM〜1、2、3、4、5、10、20、30、40、50、60、70、100、200、300、400または500μM(すなわち、1x10-9〜5x10-4)、または100nM〜10μM、または1〜5μMまたは3〜70nMまたは1OnM〜1、2、3、4または5μMのKDで結合する。例えば、表面プラズモン共鳴により測定して、30〜70nMで結合する。一実施形態において、第1のdAb(またはdAb単量体)はSA(例えば、HSA)と、表面プラズモン共鳴により測定して、ほぼ1、50、70、100、150、200、300nMまたは1、2または3μMのKDで結合する。一実施形態において、第1の抗SA dAbと第2のTNFR1に対するdAbを含む二重特異的リガンドについては、その標的に対する第2のdAbのアフィニティ(例えば、表面プラズモン共鳴により、例えばBiaCoreを用いて測定したKDおよび/またはKoff)は、SAに対する第1のdAbのアフィニティの1〜100000倍(例えば、100〜100000、または1000〜100000、または10000〜100000倍)である。一実施形態において、その血清アルブミンはヒト血清アルブミン(HSA)である。例えば、第1のdAbはSAとほぼ10μMのアフィニティでSAと結合する一方、第2のdAbはその標的と100pMのアフィニティで結合する。一実施形態において、その血清アルブミンはヒト血清アルブミン(HSA)である。一実施形態において、第1のdAbはSA(例えば、HSA)とほぼ50、例えば70、100、150または200nMのKDで結合する。二重特異的リガンドの詳細はWO03002609、WO04003019およびWO04058821に見出される。
MSA-16、MSA-26(これらの配列の開示についてはWO04003019を参照されたい、これらの配列およびそれらの核酸対応物は本明細書に参照により組み入れられて、本明細書の開示の一部を形成する)、
DOM7m-16(配列番号473)、DOM7m-12(配列番号474)、DOM7m-26(配列番号475)、DOM7r-1(配列番号476)、DOM7r-3(配列番号477)、DOM7r-4(配列番号478)、DOM7r-5(配列番号479)、DOM7r-7(配列番号480)、DOM7r-8(配列番号481)、DOM7h-2(配列番号482)、DOM7h-3(配列番号483)、DOM7h-4(配列番号484)、DOM7h-6(配列番号485)、DOM7h-1(配列番号486)、DOM7h-7(配列番号487)、DOM7h-22(配列番号489)、DOM7h-23(配列番号490)、DOM7h-24(配列番号491)、DOM7h-25(配列番号492)、DOM7h-26(配列番号493)、DOM7h-21(配列番号494)、DOM7h-27(配列番号495)、DOM7h-8(配列番号496)、DOM7r-13(配列番号497)、DOM7r-14(配列番号498)、DOM7r-15(配列番号499)、DOM7r-16(配列番号500)、DOM7r-17(配列番号501)、DOM7r-18(配列番号502)、DOM7r-19(配列番号503)、DOM7r-20(配列番号504)、DOM7r-21(配列番号505)、DOM7r-22(配列番号506)、DOM7r-23(配列番号507)、DOM7r-24(配列番号508)、DOM7r-25(配列番号509)、DOM7r-26(配列番号510)、DOM7r-27(配列番号511)、DOM7r-28(配列番号512)、DOM7r-29(配列番号513)、DOM7r-30(配列番号514)、DOM7r-31(配列番号515)、DOM7r-32(配列番号516)、DOM7r-33(配列番号517)(これらの配列の開示についてはWO2007080392を参照されたい、これらの配列およびそれらの核酸対応物は本明細書に参照により組み入れられて、本明細書の開示の一部を形成する;この節の配列番号はWO2007080392に記載のものである)、
dAb8(dAb10)、dAb10、dAb36、dAb7r20(DOM7r20)、dAb7r21(DOM7r21)、dAb7r22(DOM7r22)、dAb7r23(DOM7r23)、dAb7r24(DOM7r24)、dAb7r25(DOM7r25)、dAb7r26(DOM7r26)、dAb7r27(DOM7r27)、dAb7r28(DOM7r28)、dAb7r29(DOM7r29)、dAb7r29(DOM7r29)、dAb7r31(DOM7r31)、dAb7r32(DOM7r32)、dAb7r33(DOM7r33)、dAb7r33(DOM7r33)、dAb7h22(DOM7h22)、dAb7h23(DOM7h23)、dAb7h24(DOM7h24)、dAb7h25(DOM7h25)、dAb7h26(DOM7h26)、dAb7h27(DOM7h27)、dAb7h30(DOM7h30)、dAb7h31(DOM7h31)、dAb2(dAbs4,7,41)、dAb4、dAb7、dAb11、dAb12(dAb7m12)、dAb13(dAb15)、dAb15、dAb16(dAb21、dAb7m16)、dAb17、dAb18、dAb19、dAb21、dAb22、dAb23、dAb24、dAb25(dAb26、dAb7m26)、dAb27、dAb30(dAb35)、dAb31、dAb33、dAb34、dAb35、dAb38(dAb54)、dAb41、dAb46(dAbs47、52および56)、dAb47、dAb52、dAb53、dAb54、dAb55、dAb56、dAb7m12、dAb7m16、dAb7m26、dAb7r1(DOM7r1)、dAb7r3(DOM7r3)、dAb7r4(DOM7r4)、dAb7r5(DOM7r5)、dAb7r7(DOM7r7)、dAb7r8(DOM7r8)、dAb7r13(DOM7r13)、dAb7r14(DOM7r14)、dAb7r15(DOM7r15)、dAb7r16(DOM7r16)、dAb7r17(DOM7r17)、dAb7r18(DOM7r18)、dAb7r19(DOM7r19)、dAb7h1(DOM7h1)、dAb7h2(DOM7h2)、dAb7h6(DOM7h6)、dAb7h7(DOM7h7)、dAb7h8(DOM7h8)、dAb7h9
(DOM7h9)、dAb7h10(DOM7h10)、dAb7h11(DOM7h11)、dAb7h12(DOM7h12)、dAb7h13(DOM7h13)、dAb7h14(DOM7h14)、dAb7p1(DOM7p1)、およびdAb7p2(DOM7p2)(これらの配列の開示については2008年2月8日出願のPCT/GB2008/000453を参照されたい、これらの配列およびそれらの核酸対応物は本明細書に参照により組み入れられて、本明細書の開示の一部を形成する)。代わりの名称をdAbの後の括弧内に示した。例えば、dAb8はdAb10という代わりの名称を有し、すなわちdAb8(dAb10)である。これらの配列を図51aおよびbにも示した。
MSA-16、MSA-26、
DOM7m-16(配列番号473)、DOM7m-12(配列番号474)、DOM7m-26(配列番号475)、DOM7r-1(配列番号476)、DOM7r-3(配列番号477)、DOM7r-4(配列番号478)、DOM7r-5(配列番号479)、DOM7r-7(配列番号480)、DOM7r-8(配列番号481)、DOM7h-2(配列番号482)、DOM7h-3(配列番号483)、DOM7h-4(配列番号484)、DOM7h-6(配列番号485)、DOM7h-1(配列番号486)、DOM7h-7(配列番号487)、DOM7h-22(配列番号489)、DOM7h-23(配列番号490)、DOM7h-24(配列番号491)、DOM7h-25(配列番号492)、DOM7h-26(配列番号493)、DOM7h-21(配列番号494)、DOM7h-27(配列番号495)、DOM7h-8(配列番号496)、DOM7r-13(配列番号497)、DOM7r-14(配列番号498)、DOM7r-15(配列番号499)、DOM7r-16(配列番号500)、DOM7r-17(配列番号501)、DOM7r-18(配列番号502)、DOM7r-19(配列番号503)、DOM7r-20(配列番号504)、DOM7r-21(配列番号505)、DOM7r-22(配列番号506)、DOM7r-23(配列番号507)、DOM7r-24(配列番号508)、DOM7r-25(配列番号509)、DOM7r-26(配列番号510)、DOM7r-27(配列番号511)、DOM7r-28(配列番号512)、DOM7r-29(配列番号513)、DOM7r-30(配列番号514)、DOM7r-31(配列番号515)、DOM7r-32(配列番号516)、DOM7r-33(配列番号517)(この節の配列番号はWO2007080392に記載の配列番号である)、
dAb8、dAb10、dAb36、dAb7r20、dAb7r21、dAb7r22、dAb7r23、dAb7r24、dAb7r25、dAb7r26、dAb7r27、dAb7r28、dAb7r29、dAb7r30、dAb7r31、dAb7r32、dAb7r33、dAb7h21、dAb7h22、dAb7h23、Ab7h24、Ab7h25、Ab7h26、dAb7h27、dAb7h30、dAb7h31、dAb2、dAb4、dAb7、dAb11、dAb12、dAb13、dAb15、dAb16、dAb17、dAb18、dAb19、dAb21、dAb22、dAb23、dAb24、dAb25、dAb26、dAb27、dAb30、dAb31、dAb33、dAb34、dAb35、dAb38、dAb41、dAb46、dAb47、dAb52、dAb53、dAb54、dAb55、dAb56、dAb7m12、dAb7m16、dAb7m26、dAb7r1、dAb7r3、dAb7r4、dAb7r5、dAb7r7、dAb7r8、dAb7r13、dAb7r14、dAb7r15、dAb7r16、dAb7r17、dAb7r18、dAb7r19、dAb7h1、dAb7h2、dAb7h6、dAb7h7、dAb7h8、dAb7h9、dAb7h10、dAb7h11、dAb7h12、dAb7h13、dAb7h14、dAb7p1、およびdAb7p2。
dAb8、dAb10、dAb36、dAb7h21、dAb7h22、dAb7h23、Ab7h24、Ab7h25、Ab7h26、dAb7h27、dAb7h30、dAb7h31、dAb2、dAb4、dAb7、dAb11、dAb12、dAb13、dAb15、dAb16、dAb17、dAb18、dAb19、dAb21、dAb22、dAb23、dAb24、dAb25、dAb26、dAb27、dAb30、dAb31、dAb33、dAb34、dAb35、dAb38、dAb41、dAb46、dAb47、dAb52、dAb53、dAb54、dAb55、dAb56、dAb7h1、dAb7h2、dAb7h6、dAb7h7、dAb7h8、dAb7h9、dAb7h10、dAb7h11、dAb7h12、dAb7h13およびdAb7h14と、少なくとも約90%、または少なくとも約95%、または少なくとも約96%、または少なくとも約97%、または少なくとも約98%、または少なくとも約99%アミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含みうる。
一実施形態においては、(1以上の)半減期延長部分(例えば、アルブミン、トランスフェリンならびにそれらの断片および類似体)が本発明のTNFR1結合ポリペプチド、dAbまたはアンタゴニストとコンジュゲートまたは結合されている。TNFR1結合フォーマットに使用する好適なアルブミン、アルブミン断片またはアルブミン変異体の例は、WO 2005077042に記載されており、この開示は本明細書に参照により組み入れられかつ本明細書の開示の一部を形成する。特に、次のアルブミン、アルブミン断片またはアルブミン変異体を本発明に使用することができる:
・配列番号1(WO 2005077042に開示されたもので、この配列は明白に参照により本開示に組み入れられる);
・WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸1〜387を含んでなるアルブミン断片もしくは変異体;
・次からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むアルブミン、またはそれらの断片もしくは変異体:(a)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸54〜61;(b)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸76〜89;(c)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸92〜100;(d)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸170〜176;(e)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸247〜252;(f)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸266〜277;(g)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸280〜288;(h)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸362〜368;(i)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸439〜447;(j)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸462〜475;(k)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸478〜486;および(l)WO 2005077042の配列番号1のアミノ酸560〜566。
・WO03076567に、例えば、図3に記載のヒト血清アルブミン(この配列は参照により本明細書に明白に組み入れられる);
・66,500の式分子量をもつ585個のアミノ酸の単一非グリコシル化ポリペプチド鎖から成るヒト血清アルブミン(HA)(Melounら, FEBS Letters 58:136 (1975);Behrensら, Fed.Proc.34:591 (1975);Lawnら, Nucleic Acids Research 9:6102-6114 (1981);Minghettiら, J. Biol. Chem. 261:6747 (1986)を参照);
・Weitkampら、Ann. Hum. Genet. 37:219(1973)に記載されたアルブミンの多型変異体または類似体または断片;
・EP 322094に記載のアルブミン断片または変異体、例えば、HA(1〜373)、HA(1〜388)、HA(1〜389)、HA(1〜369)、およびHA(1〜419)ならびに1〜369および1〜419の間の断片;
・EP399666に記載のアルブミン断片または変異体、例えば、HA(1〜177)およびHA(1〜200)およびHA(1〜X)(ここでXは178〜199の任意の番号である)の間の断片。
前記のように、本発明の実施形態は、本発明のポリペプチドおよび可変ドメインをコードするコドン最適化ヌクレオチド配列を提供する。以下の説明に示すように、同じ可変ドメインをコードする約70%同一性のコドン最適化配列を作ることができる(この場合、可変ドメインアミノ酸配列はDOM1h-131-206と同一である)。この例では配列を、ピキア・パストリス(Pichia pastoris)(コドン最適化配列1〜3)または大腸菌(コドン最適化配列4および5)による発現について最適化した。
DNA配列
対応するAA配列
・WT配列と74.1%ヌクレオチド配列同一性
コドン最適化配列2
DNA配列
対応するAA配列
・WT配列と71.1%ヌクレオチド配列同一性
コドン最適化配列3
DNA配列
対応するAA配列
・WT配列と72.6%ヌクレオチド配列同一性
コドン最適化配列4
DNA配列
対応するAA配列
・WT配列と76.5%ヌクレオチド配列同一性
コドン最適化配列5
DNA配列
対応するAA配列
・WT配列と78.4%ヌクレオチド配列同一性
例示A:ヒトTNFR1に対するドメイン抗体のリード選択と特徴付け
作製したドメイン抗体はファージライブラリーから誘導した。可溶体選択および受動吸収されたヒトTNFR1に対するパニングの両方を、関連の標準的方法によって実施した。ヒトTNFR1を可溶性組換えタンパク質として、R&D systems(カタログ番号636-R1-025/CF)またはPeprotech(カタログ番号310-07)のいずれかから購入し、直接(受動選択の場合)、または一級アミンを介するカップリングを利用するビオチン化後に使用し、次いで生物学的アッセイにおけるその活性の品質管理ならびに質量分析によるそのMWおよびビオチン化程度の分析を行った。典型的には、3ラウンドの選択を、毎回、次のラウンドの抗原のレベルを低下して実施した。
DOM1h-131のアフィニティ成熟を進めて、より高い効力と改善された生物物理学的特徴をもつ突然変異体を作製した(DOM1h-131から誘導したリードのアミノ酸配列については図3を参照)。エラープローンPCRポリメラーゼ(Genemorph II、Stratagene)を用いて、エラープローンライブラリー(dAb配列当たり1アミノ酸変化の平均数、ライブラリーサイズ8x107)を作製した後、これらのエラープローンライブラリーを用いて、7ラウンドの選択を実施した。この計画によって、クローンDOM1h-131-8、すなわち、4つのアミノ酸変化(フレームワーク1(FR1)に1つ、CDR1に1つ、CDR3に1つ、およびFR4に1つ)によって、MRC-5細胞アッセイ(〜4nM)により測定した効力でほぼ100倍の改善を与える分子を単離した。このアッセイでは、MRC-5細胞を試験サンプルと1時間インキュベートし、次いでTNF-α(200pg/ml)を加えた。一晩インキュベーションの後、IL-8放出を、IL-8 ABI 8200細胞の検出アッセイ(FMAT)を用いて測定した。TNF-α用量曲線が各実験に含まれた。このアッセイにおいて、dAbとTNFR1結合を競合するために用いたTNF-αの濃度(200pg/ml)は、最大TNF-α応答のほぼ70%であった。
DOM1H-131-202、DOM1H-131-511およびDOM1H-131-206のヒトTNFR1との結合に対するBIAcore(登録商標)結合アフィニティアセスメント。
ヒトTNFR1に対するdAbの効力を受容体結合アッセイで測定した。このアッセイは、TNF-αのTNFR1との結合およびこの相互作用をブロックする可溶性dAbの能力を測定する。TNFR1-FC融合体を、ヤギ抗ヒトIgG(H&L)を予めコートしたビーズ上に捕獲する。受容体をコートしたビーズを、黒色側板で透明底の384ウエルプレート中で、TNF-α(10ng/ml)、dAb、ビオチンコンジュゲートした抗TNFαおよびストレプトアビジンalex afluor 647と共にインキュベートした。6時間後に、そのプレートをABI 8200細胞検出システムで読取り、ビーズに関係する蛍光を測定した。もしdAbがTNF-αとTNFR1の結合をブロックすれば、蛍光強度は低下しうる。
3種のリード分子の一次アミノ酸配列を用いて、ピキア・パストリス(Pichia pastoris)における分泌発現について最適化コドンを作製した。DOM1H-131-206の最適化コドンと非最適化コドンとの間には75%配列同一性が存在する。3種の合成遺伝子を発現ベクターpPIC-Zα(Invitrogenから入手)中にクローニングし、次いで2つのピキア属(Pichia)株、X33およびKM71H中に形質転換した。形質転換した細胞を増加する濃度のゼオシン(100、300、600および900μg/ml)上にプレーティングし、多重の組込み体をもつクローンを選択した。各細胞株および構築物に対してほぼ15クローンを選択し、発現スクリーニングを行った。ピキア・パストリス(Pichia pastoris)において遺伝子コピー数の高/低と発現レベルの間の相関は完全には判らないので、いくつかのクローンをゼオシン濃度範囲全域から拾った。高生産性について広範囲にスクリーニングを行わなかったクローンを用いて、5L発酵槽試験を行った。これによって、相当な量のさらなる研究用材料の生産が可能になった。
プロテインA系クロマトグラフィ樹脂を広範囲に用いて、VHdAbを菌培養上清から精製した。これによって、ほとんどの場合に通常>90%の高純度材料を生じる単一ステップ精製方法が可能になり、いくつかの分子に対しては、低pHの溶出条件にすると凝集物の形成をもたらすことができる。dAbに対するアフィニティ樹脂の能力が限られている問題もあり;これは、発酵槽からの処理する樹脂の相当な量を使用することを意味しうる。特徴付けおよびさらなる安定性および噴霧器研究のための高品質材料を生産するために、下流の精製プロセスは、一次捕獲ステップとして混合モードの電荷誘導樹脂を使い、次いでアニオン交換を行うように工夫した。著しい最適化をすることなく、この方法によりほぼ95%の純度で発現されたdAbのほぼ70%の回収が可能になった。
5L発酵槽試験から得た材料を、同一性についてはエレクトロスプレー質量分析、アミノ末端配列決定および等電点電気泳動を用いて、また純度についてはSDS-PAGE、SECおよびGelcode糖タンパク質染色キット(Pierce)を用いて特徴付けた。
各タンパク質の最初の5残基のアミノ末端配列分析を(EVQLL...)と予測した。質量分析は、50:50 H2O:0.1%氷酢酸を含有するアセトニトリルにバッファー交換しておいたタンパク質のサンプルについて、C4 Zip-チップ(Millipore)を用いて実施した。3種のタンパク質のそれぞれについて測定した質量は、内部ジスルフィド結合の形成による-2の質量差を認めると、一次アミノ酸配列(平均質量を用いて計算した)に基づく理論質量の0.5Da内にあった。IEFを用いて、各タンパク質に対して異なるpIに基づいてタンパク質を同定した。
3種のタンパク質を1μgおよび10μg量で重複して非還元SDS-PAGEゲルに供給した。全ての事例で単一バンドが観察された。サイズ排除クロマトグラフィも実施して純度のレベルを実証した。サイズ排除クロマトグラフィ(SEC)については、lOOμgの各タンパク質を0.5ml/分で流通するTOSOH G2000 SWXLカラムに供給した。移動相はPBS/10%エタノールであった。
COPDの適応については、dAbを肺中に、例えば噴霧器デバイスを用いて送達する必要がありうる。この事は、タンパク質が使用する噴霧器の型に応じて、ある範囲の剪断および熱ストレスを受けること、従って肺環境でプロテアーゼによる酵素分解を受けうるを意味する。この型のデバイスを用いて、タンパク質を送達して、正しい粒子径分布を形成し、噴霧器送達後に機能性を保持することができるかを確認した。それ故に、各分子のある範囲の物理的なストレスに対する内因的安定性を研究して、基線安定性および最も感受性の高い安定性を示すアッセイを決定した。各タンパク質の安定性は、溶解に用いたバッファー溶液に依存しうるものであり、いくつかの前製剤の研究が必要であった。バッファー、pHなどの情報も、下流の精製プロセスおよび引き続いての貯蔵中のタンパク質の安定性を理解するために有用でありうる。ある範囲の物理的ストレスへの曝露中の分子の変化を特徴づけるために、ある範囲の分析技法、例えば、サイズ排除クロマトグラフィ(SEC)、SDS-PAGEおよび等電点電気泳動(IEF)を利用した。
DOM1H-131-202、DOM1H-131-511およびDOM1H-131-206のプロテアーゼ安定性を、過剰プロテアーゼ中の所定時間のプレインキュベーション後に、残留結合活性のBIAcore(登録商標)分析により評価した。およそ1400RUのビオチン化TNFR1をストレプトアビジン(SA)チップにコートした。25OnMのDOM1H-131-202、DOM1H-131-511およびDOM1H-131-206を、PBS単独と、または1OOμg/mlのトリプシン、エラスターゼまたはロイコザイムと共に、1、3、および24時間、30℃にてインキュベートした。プロテアーゼインヒビターのカクテルを加えることにより、反応を停止した。dAb/プロテアーゼ混合物を次いでTNFR1コートしたチップ上に、参照セル差引きをして、通過させた。チップ表面は、各注入サイクルの間に、10μlの0.1MグリシンpH 2.2を用いて再生した。ヒトTNFR1と結合した(10秒間)、プロテアーゼと予めインキュベートしたDOM1H-131-202、DOM1H-131-511およびDOM1H-131-206の画分を、プロテアーゼとインキュベーションしてないdAb結合と比較して測定した。BIAcore(登録商標)試験は25℃で行った。
分子が最高の安定性を有するpHを決定するために、示差走査熱量計(DSC)を用いてBritton-Robinsonバッファー中の各dAbの融点(Tm)を測定した。Britton-Robinsonは3成分バッファー系(酢酸塩、リン酸塩およびホウ酸塩)から構成されるので、前記溶液中で3〜10のpH範囲を生じうる。理論的pIはタンパク質一次アミノ酸配列から決定した。DSCから求めた、dAbがその最高の内因熱安定性を有するpHは、DOM1H-131-202(202)についてはpH7、DOM1H-131-206(206)についてはpH7〜7.5そしてDOM1H-131-511(511)についてはpH7.5であることを見出した。その後の全てのストレスおよび安定性試験については、次のpHを各dAbに対して用いた;Britton-Robinsonバッファー中で、DOM1H-131-202(202)およびDOM1H-131-206(206)に対してpH7.0、およびDOM1H-131-511(511)に対してpH7.5。結果を次の表3に総括する:
表3:Britton-Robinsonバッファー中で1mg/mlにてDSCにより測定した、DOM1H-131-202(202)、DOM1H-131-206(206)およびDOM1H-131-511(511)のpHおよびTmの総括
全てのリードdAbを遠心Vivaspin濃縮機で濃縮し(5Kカットオフ)、それらの最大溶解度と濃縮時の回収レベルを決定した。実験は、Britton-Robinsonバッファー中で最も安定なpHにて実施した。サンプル体積と濃度を経時的に測定し、予測濃度からの偏差ならびにサンプルの%回収を記録した。
色々な噴霧器と製剤バッファーを試験することにより、本dAbは広範囲の噴霧化デバイスを用いて効果的に送達しうることを実証した。さらに重要なこととして、初めて、dAbの製剤バッファー中の噴霧化が有効な肺送達に所望される粒子径分布(<5μmの液滴のパーセントを用いて比較して)を生じる一方、タンパク質機能性を維持することを示した。これをさらに以下に記載する。
DOM1H-131-511(511)を、液剤用噴霧器の3つの主なグループ、すなわち、超音波噴霧器、ジェット噴霧器および振動メッシュ噴霧器からのそれぞれ2つのデバイスを含む、6つの噴霧器デバイスで試験した。各デバイスにおいて、dAbを5mg/mlにてある範囲のPEG濃度にわたり試験した。各サンプルについて、<5μmの液滴サイズのパーセントを、Malvern Spraytekデバイス(Malvern Instruments Limited、UK)を用いて測定し、その結果を図35に示した。噴霧後の各サンプルの安定性を、SECを用いて試験し、カップに残留する材料中のおよび採集したエーロゾル中の、両方の二量化したサンプルの量を分析した。結果は図36に見ることができる。二量体形成の程度が低いほど、安定性は高い。
DOM1H-131-511(511)は安定性が低いので、その5OmMリン酸塩製剤バッファーはPEG1000およびスクロースの両方を含有しかつその粘度は、dAbを剪断および熱ストレスから保護するのを助けるために、1.2%(w/vスクロース)を含有する5OmMリン酸塩バッファー中の約2%〜約10% PEG1000の溶液の粘度にほぼ等しいとして規定される範囲内にある。DOM1H-131-202(202)およびDOM1H-131-206(206)の両方はより高いTmを有しかつ熱ストレスに対してかなり改善された安定性を示すので、全ての分子を元来の製剤バッファーおよびBritton-Robinsonバッファー(製剤バッファーより低い粘度を有する)中で試験した。dAbを、E-flowとPariLC+デバイスの両方で、処理時間3.5分間、タンパク質濃度5mg/mlにて試験し、Malvern Spraytekデバイスを用いて粒子径分布を決定した。比較として、噴霧器デバイスを用いて送達する嚢胞性線維症用の市販薬(呼称、標準プロテインX)を、それ自体の製剤バッファー中で試験した。結果を図37に示す。肺深部中への良い送達と分布のための理想的な粒子径は6ミクロン未満、例えば<5μmである。全てのdAbは、Britton-Robinsonバッファーおよび製剤バッファー(前記の通り)の両方で比較しうるレベルの5μm未満の粒子径を与える。しかし、より高い粘度の製剤バッファーは、正しいサイズ範囲、例えば、<5μm内の粒子を生成するのに特に有利でありうる。デバイスのカップ中のdAbの濃度は、噴霧前後のA280測定値により決定した。タンパク質濃度は有意に変化しないことが見出され、タンパク質もまたビヒクルも送達中に選択的に噴霧されないことを示した。
上記の通り、dAbなどのポリペプチドはある範囲の市販の噴霧器デバイスで噴霧することができ、重要なこととして、これらは噴霧後に安定性および生物学的活性を保持し、噴霧後に顕著な凝集が観察されないことを実証した。PEGなどの増粘賦形剤をバッファー製剤に加えると、粒子径分布および5μm未満の液滴サイズのパーセントを改善することができ、従って、潜在的に肺深部へのdAb送達を改善する。
ファージベクターpDOM13
糸状ファージ(fd)ディスプレイベクター、pDOM13を用いた。このベクターはファージコートタンパク質IIIとの融合タンパク質を生成する。pDOM13のマルチクローニングサイトを図1に図解する。dAbをコードする遺伝子はSalI/NotIフラグメントとしてクローニングした。
ファージディスプレイされた、ある範囲のトリプシン耐性をもつドメイン抗体(dAb)についての試験プロテアーゼ選択
dAbすなわち、IL-1R1と結合するDOM4-130-54、TNFR1と結合するDOM1h-131-511、VEGFAと結合するDOM15-10、DOM15-26およびDOM15-26-501をコードする遺伝子を、pDOM13にクローニングして、これらのdAbを提示するファージを標準技法により作製した。ファージをPEG沈降により精製し、PBSに再懸濁し、そして滴定した。
各dAbを1時間室温にてある範囲のトリプシン濃度(100μg/ml、10μg/mlおよび0μg/ml)で処理した。トリプシン活性をRoche Completeプロテアーゼインヒビター(IX)を用いてブロックし、次いでファージを2% Marvellを含むPBSに希釈し、5OnMのビオチン化抗原(組換えヒトVEGF(R&D systems))と共に1時間室温にてインキュベートした。1時間室温にて2% Marvellを含むPBSで予めブロックしたストレプトアビジンコートしたビーズ(Dynabeads M-280(Invitrogen))を加え、次いでその混合物を5分間室温にてインキュベートした。Dynabeadsとのインキュベーションステップは全て回転ホィール上で行った。ビーズを1mlの0.1% Tween-20を含むPBSで8回洗浄して無結合のファージを洗い流した。結合したファージを0.5mlの0.1MグリシンpH2.2で溶出し、100μlの1M Tris-HCL pH8.0で中和した。溶出したファージを用いて指数関数的に増殖するTG1細胞に感染させ(1時間、37℃にて)テトラサイクリンプレート上にまいた。プレートを一晩、37℃にてインキュベートし、コロニーを計数した(表4を参照)。最良の結果は100μg/mlトリプシンとのインキュベーションによる選択から観察された。DOM15-26の収率は、DOM15-10およびDOM15-26-501と比較して約10倍増加した。
DOM4-130-54を上記と類似のプロトコルで試験した。変えたパラメーターは、トリプシンの濃度、インキュベーションの温度と長さであった。バイオパニングを、IL-R1-Fc(IL-IR1とFcの融合体)に対して、PBS中の1nMの濃度で行った。ファージ力価の有意な低下は、100μg/mlトリプシンによる一晩、37℃でのファージのインキュベーション後にのみ観察された(表5を参照)。
DOM1h-131ファージ(アミノ酸配列がDOM1h-131-511と密接に関連がある)を、0μg/ml、10μg/ml、100μg/mlおよび1000μg/mlトリプシンで1時間室温にて処理した。消化を25 x 完全プロテアーゼインヒビター(Roche)を加えて阻害した。ファージの連続2倍希釈液を1nM TNFR1でコートしたELISAプレートに流下して、結合ファージを抗M13-HRPで検出した。
ファージ提示したドメイン抗体のレパートリーの、プロテアーゼ選択
4つのレパートリーを、次のdAb:DOM4-130-54、DOM1h-131-511、DOM15-10およびDOM15-26-555を親分子として作製した。Stratagene Mutazyme IIキット、ビオチン化したプライマーおよび50μl反応液に対して5〜50pgのテンプレートを用いて、無作為変異誘発をPCRにより遺伝子に導入した。SalIおよびNotIでの消化の後に、インサートをストレプトアビジンコートしたビーズで無消化の産物から精製し、pDOM13の対応する部位にライゲートした。大腸菌TB1細胞を、精製ライゲーション混合物を用いて形質転換し、テトラサイクリン-耐性クローンの大レパートリーを得た:8.5x108(DOM4-130-54)、1.5x109(DOM1h-131-511)、6x108(DOM15-10)および3xlO9(DOM15-26-555)。
4ラウンドの選択をこれらのライブラリーで行い、改善されたプロテアーゼ耐性をもつdAbを選択した。
第1のラウンドの選択は、2nMビオチン化したhVEGF(ヒト血管内皮成長因子)濃度で、プロテアーゼ処理無しで行ってライブラリーをクリーンアップし、抗原と高いアフィニティで結合しないクローンを除去した。ラウンド1からの出力は約108(DOM15-10の1010ファージおよびDOM15-26-555の1011ファージの入力と比較して)であり、ライブラリーの大部分が抗原と高アフィニティで結合したことを示す。
選択出力の分析:DOM4-130-54およびDOM1h-131-511レパートリー
ラウンド3およびラウンド4からの全ての出力をpDOM5ベクター中にサブクローンし、そしてJM83細胞中に形質転換した。pDOM5ベクターはpUC119系のベクターであった。タンパク質の発現はPlacプロモーターにより駆動する。GAS1リーダー配列(WO 2005/093074を参照)は単離された、可溶性dAbの大腸菌JM83の周辺質および培養上清中への分泌を保証した。96および72個の個々のコロニーをラウンド3およびラウンド4から無作為に拾って発現させた。
選択出力の分析:DOM15-10およびDOM15-26-555レパートリー
トリプシン前処理による選択の効果を、最初に、モノクローナルファージELISAに与えるトリプシン消化の有無で試験した。各ライブラリーの選択の第2ランドから18個のコロニーおよび選択の第3ランドから24個のコロニーを拾ったクローンDOM15-10、DOM15-26-501およびDOM15-26を対照として用いた。さらなる対照には、トリプシン選択の第2および第3ラウンド後の各ライブラリーからの増幅および精製ファージ溶液が含まれた。
DOM1h-131-511変異体の同定
DOM1h-131-203、DOM1h-131-204およびDOM1h-131-206をさらに詳しく分析した。これらを、異なるトリプシン濃度(0〜100μg/mlの範囲)による一晩、37℃におけるインキュベーション後に、50OnMのdAb濃度にてBIAcoreで比較した。BIAcoreトレースを図7に示す。その結果は、高濃度のトリプシン(100μg/ml)におけるタンパク質分解に対して、両方の変異体がそれらの親より耐性があることを明らかに示す。また2つのdAb、DOM1h-131-202およびDOM1h-131-206をそれらの親と、ロイコザイム、エラスターゼおよびパンクレアチンを含むある範囲の他のプロテアーゼに対して、上記条件下で100μg/mlのプロテアーゼ濃度において比較した。これらのdAbは、試験した全てのプロテアーゼに対して、親と比較して、タンパク質分解に対する耐性が増加することを示した。エラスターゼおよびロイコザイムについてのBIAcoreトレースを図8に示す。
DOM4-130-54変異体の同定
DOM4-130-201およびDOM4-130-202をさらに詳しく分析した。これらを、異なるトリプシン濃度(0〜100μg/mlの範囲)による一晩37℃におけるBIAcoreトレースを図10に示す。その結果は明らかに、高濃度のトリプシン(100μg/ml)におけるタンパク質分解に対して、全ての3つの変異体がそれらの親より耐性があることを示す。また、DOM4-130-201およびDOM4-130-202を、ロイコザイム、エラスターゼおよびパンクレアチンを含むある範囲の他のプロテアーゼに対して、その親と上記条件下で、100μg/mlのプロテアーゼ濃度で比較した。その結果は、トリプシンより明らかでなかったが、リードdAbは、試験した全てのプロテアーゼに対して、親と比較してタンパク質分解に対して耐性の増加を示した。エラスターゼおよびロイコザイムについてのBIAcoreトレースを図11に示す。
DOM1h-131-511およびDOM4-130-54変異体のさらなる特徴付け
dAbを最初に示差走査熱量計(DSC)を用いて分析し、トリプシン耐性の増加が融点(Tm)の増加と相関があるかどうかを確認した。トリプシン安定性の増加はTmの増加と確かに相関がある(表9を参照)。
DOM15-26-555変異体の同定
DOM15-26-588、DOM15-26-589、DOM15-26-591、およびDOM15-26-593を、それらの親ならびに、効力および安定性に最大のインパクトを有しうる突然変異(E6VおよびF100S/I)を組み合わせて変異誘発により作製した2つのさらなるdAb、DOM15-26-594およびDOM15-26-595と一緒に、さらに詳しく分析した。配列を図12に示した。200μg/mlの濃度のトリプシンとインキュベーション後に、クローンをBIAcoreで10OnMのdAb濃度におけるhVEGFとの結合について比較した。反応は3時間および24時間、37℃にて攪拌しながら(250rpm)実施した。最良のクローン、DOM15-26-593とその親のBIAcoreトレースを図13に示す。他の結果を図14にチャートとして示す。結果は明らかに、24時間のトリプシン処理後のタンパク質分解に対して、全ての変異体が親より耐性であることを示す。
DOM15-10変異体の同定
DOM15-10-11を、その親DOM15-10と一緒に、さらに詳しく分析した。配列を図16に示す。トリプシンとの200μg/mlの濃度にてインキュベーション後に、dAbを、BIAcoreでhVEGF結合について10OnMのdAb濃度にて比較した。反応を1時間、3時間および24時間、37℃にて攪拌しながら(250rpm)実施した。これらのdAbのBIAcoreトレースを図17に示す。結果は明らかに、24時間のトリプシン処理後のタンパク質分解に対して、選択した変異体が親より耐性があることを示す。
DOM15-26-555およびDOM15-10変異体のさらなる特徴付け
dAbを示差走査熱量計(DSC)を用いて分析して、トリプシン耐性の増加が融点(Tm)の増加と相関があるかどうかを確認した。結果を表13に示す。DOM15-26-555変異体のトリプシン耐性と融点との間には相関がある。リードDOM15-26-588とDOM15-26-593はTmの改善を示したが、他のクローンは示さなかった。注目すべきことは、DOM15-26-555とDOM15-10親分子の両方はスタート時に、DOM4-130-54およびDOM1h-131-511親分子(スタート時のTm:57.9〜54.1℃)より遥かに高いTm(63.3〜63.7℃)を有するが、プロテアーゼ耐性クローンは全体に、類似した範囲のTm(DOM1h-131-511/DOM4-130-54変異体は65.1℃の平均Tm、そしてDOM15-26-55/DOM15-10変異体は64.9℃の平均Tm)に到達することである。
ほとんどのタンパク質(ドメイン抗体を含む)は2つの状態:フォールドされた状態(生物学的活性分子に導く)とフォールドされてないの状態(機能的活性を保持しない)で存在する。これらの2つの状態は全ての温度で共存し、各状態の相対的比率は通常、定数K(フォールディングと無フォールディングの動力学定数の関数である)により決定される。融点は通常、K=1、すなわち、フォールドしたタンパク質の分率がフォールドしてないタンパク質の分率と等しい温度として定義される。定数Kはタンパク質の安定化と不安定化の分子間相互作用により決定され、それ故に、タンパク質のアミノ酸配列により主に決定される。温度、pH、バッファー組成、圧力などの外因パラメーターがKに、それ故に融点に影響を与える。
プロテアーゼ耐性リードに対するPK関係データ
4つのdAb系列のそれぞれについての親dAbおよびプロテアーゼ耐性dAbをさらにin vivoで評価した(リストと詳細については下表15を参照)。
短剣符:RBAアッセイにより決定した。
1は低い。
2は中度である。
3は良い。
4は高い。
5は非常に高い。
DOM4-130-54は良い。
DOM1h-131-511は良い。
DOM15-10は低い。
DOM15-26-501は低い。
DOM4-130-202は非常に高い。
DOM1h-131-206は非常に高い。
DOM15-10-11は高い。
DOM15-26-593は高い。
VH dAb(下線部)については:
EVQ......GQGTLVTVSSASTHTCPPCPAPELLGGP...(hIgG1Fc)...PGK*
VK dAb(下線部)については:
DIQ.........GQGTKVEIKRTVAAPSTHTCPPCPAPELLGGP...(hIgG1Fc)...PGK*。
・hIL-1R1抗原捕獲アッセイ:
4μg/mL 抗-hIL-1R1でコートする。
ブロックする。
500ng/mL shIL-1R1を加える。
サンプルを加える。
抗-ヒトFcHRPの1:10,000で検出する。
0.1μg/mL sTNFR1でコートする。
ブロックする。
サンプルを加える。
抗-ヒトFcHRPの1:10,000で検出する。
0.25μg/mL VEGFでコートする。
ブロックする。
サンプルを加える。
抗-ヒトFcHRPの1:10,000で検出する。
DOM10-53-474でのトリプシン選択
精製DOM10-53-474のトリプシン安定性:
DOM10-53-474はIL-13と高能力で結合するドメイン抗体である。トリプシンの存在のもとでこのdAbの安定性を評価するために、精製dAbをトリプシンで長時間消化し、それをゲル上で泳動させて可能なタンパク質分解を試験した。25μlの精製DOM10-53-474(1mg/ml)をlμlの配列決定グレードトリプシン(1mg/ml)とインキュベートして25:1のdAb:トリプシン分子量比を得て、これを30℃にてインキュベートした。dAbをトリプシンと1時間、4時間および24時間インキュベートし、4μlのRoche完全プロテアーゼインヒビターを加えてプロテアーゼ活性を中和し、次いで氷上でインキュベートした。時点0のサンプルを、トリプシンを加えずにプロテアーゼインヒビターをdAbに加えることにより作った。次いで、2μlのサンプルを、製造業者の指示書に従いLabchipを用いて電気泳動により分析した。
ファージ提示したDOM10-53-474のトリプシン安定性を評価するために、DOM10-53-474をコードする遺伝子をpDOM33のSal/Not部位中にクローニングし(図50)、標準技法によってファージを作製した。ファージをPEG沈降により精製し、PBSに再懸濁して滴定した。
トリプシンによる分解に対してさらに耐性のあるdAbを選択する目的で、Stratergene Mutazyme 11キット、ビオチン化プライマーおよび50μl反応用の5〜50pgのテンプレートを用いて、PCRにより、無作為突然変異をDOM10-53-474をコードする遺伝子に導入した。Sal1およびNot1での消化の後に、インサートをストレプトアビジンコートしたビーズで無消化の産物を除去して精製し、pDOM33の対応する部位中にライゲートした。大腸菌TB1細胞を、精製ライゲーション混合物を用いて形質転換し、DOM10-53-474のエラープローン・ライブラリーを得た。ライブラリーのサイズは1.9x109であり、アミノ酸突然変異率は1.3であった。
トリプシンの存在のもとでのファージ選択により、リードDOM0101(抗TNFR1)dAb中に導入された貯蔵および生物物理学的改善:
リード分子DOM1h-131-511のプロテアーゼ耐性を改善するために、トリプシンの存在のもとでファージ選択を先に記載の通り行った。本方法は、親DOM1h-131-511分子と比較して改善されたトリプシン安定性をもつある範囲のクローンを生産した。トリプシンの作用に対して最も有意な改善を示した2つのクローン、DOM1h-131-202とDOM1h-131-206を選択してさらに特徴付けを行った。以下に概説したさらなる研究は、トリプシンの作用に改善された耐性をもつと共に、主に分子の剪断および熱ストレスに対する安定性に関する他の有利な効果が存在することを示す。これらの2つのパラメーターは、バイオ医薬品製品の貯蔵および有効期間安定性を増加するための中心的役割を果たす。
3種のリード分子の一次アミノ酸配列をコードする遺伝子を用いて、ピキア・パストリス(Pichia pastoris)において分泌性タンパク質を生産した。3種の合成遺伝子(DOM1h-131-511、DOM1h-131-202およびDOM1h-131-206)を発現ベクターpPIC-Zα中にクローニングし、次いで2種のPichia菌株、X33およびKM71H中に形質転換した。形質転換した細胞を増加する濃度のゼオシン(100、300、600および900μg/ml)上にプレーティングし、多重組込体をもつクローンを選択した。次いでいくつかのクローンを2Lフラスコ中でスクリーニングして高発現細胞株を同定した。次いで最良の発現クローンを用いて5Lスケールで発酵槽にて材料を生産した。
特徴付けとさらなる安定性研究のための高品質材料を生産するために、下流の精製プロセスを工夫し、一次捕獲ステップとして混合モード電荷誘導樹脂(Capto MMC)を、次いでアニオン交換(Q Sepharose)を利用した。大きな最適化をすることなく、この方法によりほぼ95%の純度で発現されるdAbのほぼ70%の回収が可能になった。材料を、同一性についてはエレクトロスプレー質量分析、アミノ末端配列決定および等電点電気泳動を用いて、純度についてはSDS-PAGEおよびSEC(サイズ排除クロマトグラフィ)を用いて特徴付けた。
各タンパク質の最初の5残基のアミノ末端配列分析は(EVQLL...)と予想した。質量分析を、50:50 H2O:(0.1%氷酢酸を含有する)アセトニトリルにバッファー交換しておいたタンパク質のサンプルについて、C4 Zip-チップ(Millipore)を用いて実施した。3種のタンパク質のそれぞれについて測定した質量は、内部ジスルフィド結合の形成による-2の質量差を容認すると、一次アミノ酸配列(平均質量を用いて計算した)に基づく理論質量の0.5Da内にあった。IEFを用いて、各タンパク質に対して異なるそのpIに基づいてタンパク質を同定した。
3種のタンパク質を1μgおよび10μg量で重複して非還元SDS-PAGEゲルに供給した。全ての場合に単一バンドを観察した。
プロテアーゼ安定性の評価:
DOM1h-131-511、DOM1h-131-202およびDOM1h-131-206のプロテアーゼ安定性を、過剰プロテアーゼ中で所定時間のプレインキュベーション後の残留結合活性をBIAcore(登録商標)により分析して評価した。およそ1400RUのビオチン化TNFR1をストレプトアビジン(SA)チップにコートした。25OnMのDOM1h-131-511、DOM1 h-131-202およびDOM1h- 131-206を、PBSだけと、またはlOOμg/mlのトリプシン、エラスターゼまたはロイコザイムと共に、1、3、および24時間、30℃にてインキュベートした。プロテアーゼインヒビターのカクテルを加えることにより、反応を停止した。dAb/プロテアーゼ混合物を、参照セル差引を用いて、次いでTNFR1コートしたチップ上を通過させた。チップ表面を、各注入サイクルの間に、10μlの0.1MグリシンpH2.2を用いて再生した。プロテアーゼで(10秒で)予めインキュベートした、ヒトTNFR1と結合したDOM1h-131-511、DOM1h-131-202およびDOM1h-131-206の画分を、プロテアーゼ無処理のdAb結合と比較して測定した。BIAcore(登録商標)試験は25℃にて実施した。以下のデータは3つの独立実験から得たものである。バーグラフは結果の平均値を示し、誤差バーは結果の標準誤差を示す(図24)。
リード分子が最高の安定性を有するpHを決定するために、示差走査熱量計(DSC)を用いてBritton-Robinsonバッファー中の各dAbの融点(Tm)を測定した。Britton-Robinsonは3成分バッファー系(それぞれ40mlの酢酸、リン酸およびホウ酸)から構成されるので、前記溶液中で3〜10のpH範囲を得ることができる。理論的pIはタンパク質一次アミノ酸配列から決定した。DSCから、dAbが最高の内因熱安定性を有するpHは、DOM1h-131-202についてはpH 7、DOM1h-131-206についてはpH 7〜7.5そしてDOM1h-131-511についてはpH 7.5であることを見出した。その後のストレスおよび安定性試験については、全て、次のpHを各dAbに対して用いた;Britton-Robinsonバッファー中でDOM1h-131-202、GSK1995057A DOM1h-131-206に対してpH 7.0、およびDOM1h-131-511(511)に対してpH 7.5。結果を表20に総括する。
通常、高温で長期間を耐えるタンパク質の能力は優れた安定性の指標である。これらの条件下で、タンパク質はいくつかの凝集などの物理的プロセスまたは化学的改変を受けることがある。dAb(1mg/ml)を37および50℃にて14日間、Britton-Robinsonバッファー中でインキュベートした。SECを用いて、14日間にわたり溶液中に残る単量体の量を決定した(図25)。
+4℃で非常に高いタンパク質濃度における貯蔵安定性を研究する実験を行い、これらの条件下で各分子の挙動を調べた。全てのリードdAbを、遠心式Vivaspin濃縮機(5K カットオフ)により、Britton-Robinsonバッファー中でそれらの最も安定なpHにて、ほぼ100mg/mlまで濃縮した。次いでほぼ100mg/mlのサンプルを+4℃にて7日間放置し、次いで、SECにより分析して、高濃度で貯蔵中に何らかの他の物理的な変化がサンプルに起こったかを調べた(図29)。サンプルは1 x PBS 10%エタノール(v/v)でほぼ1mg/mlに希釈した後、SECカラムに通した。
初期段階の毒物学および臨床研究のために、dAbを液剤として製剤し、噴霧デバイスを介して送達しうる。デバイス(例えば、超音波、ジェットまたは振動メッシュ)に応じて、dAbは噴霧されて所定の粒子径のエーロゾルを形成するので、ある程度の剪断および熱ストレスを受けうる。DOM1h-131-202とDOM1h-131-206の両方は、DOM1h-131-511と比較して、より高いTmを有しかつ熱ストレスに対してかなり改善された安定性を示すので、全てのdAbを、2つの噴霧器デバイスで試験してそれらが噴霧中に誘導される剪断/熱ストレスにどのように応答したかを調べた。噴霧したエーロゾルからのタンパク質とデバイス中に残存するdAb(すなわち、カップ中の)の両方を、次いでSECにより分析して、プロセス中に作製された凝集物の量を決定した。
全ての3種のリードdAbの主な分解経路は、最初に二量体化、続いてさらなる凝集および最終的に沈降に導く自己会合であると思われるので、3種のリード分子を、分析用超遠心分離(AUC)により研究して自己会合の程度を測定した。タンパク質を、沈降平衡法および沈降速度法の2つの方法により研究した。
DOM15-26-593 dAbの効力増強:
VEGFR2受容体結合アッセイにおけるDOM15-26-593dAbの親DOM15-26を越える効力の増強の一例を図40に示す。本アッセイにおいて、VEGFのVEGFR2との結合を阻止する潜在的インヒビターの能力は、プレートに基づくアッセイで測定する。本アッセイにおいては、VEGFR2-Fcキメラを96-ウエルELISAプレート上にコートし、これに、試薬dAbの希釈シリーズとインキュベートしておいた、予め定めた量のVEGFを加えた。無結合のタンパク質を洗い流した後、受容体と結合したVEGFを、抗VEGF抗体を用いて検出し、そのレベルを比色定量により決定した。用量-応答効果は、試験物質濃度の関数としてVEGF結合のパーセント阻害をプロットした。有効なインヒビターはそれ故に、低濃度でリガンド結合の実質的ブロックを示すインヒビターである。
腫瘍の治療における、VEGFブロックの治療潜在能力は30年間にわたって認められている。癌の慢性的性質によって、バイオ医薬品はその効果に介在する長い血清半減期が必要であるとされており、これは腎濾過による循環からの遊離dAbの急速なクリアランスと矛盾する。癌治療のための抗血管形成剤としてのVEGFdAbの効用を評価するために、リードドメイン抗体をハイブリッドリンカーを介して野生型ヒトIgG1 Fcとの融合体としてフォーマットし、FcRn介在性抗体サルベージ経路の利用による長い血清半減期をもつ二価分子を形成させた。
DOM15-26-593およびDOM15-26-501の薬物動態学的クリアランスのプロファイルを、DOM15-26-593およびDOM15-26-501の3ラットへの5mg/kgの濃度のi.v.投与後に測定した。血清中のDOM15-26-593およびDOM15-26-501のレベルを次いで、直接VEGF結合標準ELISAアッセイおよび抗ヒトFc抗体を用いて測定し、そして、血清サンプル中の無傷の薬物だけを検出した。全ての薬物動態学的プロファイルを下表23に示す。
実験はDOM15-26-593を用いて次の通り行った:
DOM15-26-593は2.5mg/ml以下の濃度の溶液中で計算分子量78〜81KDaの単量体として挙動し、ほぼ76kDaの無傷の計算分子量と一致した(図42aおよび42b)。
実験はDOM15-26-593を用いて次の通り行った:
トリプシン選択したdAbの熱安定性増加(65℃、図43中段パネル)はFc融合体(64.5℃、図43上段パネル)で維持されている。DOM15-26-501dAb(52℃、図43下段パネル)のTm曲線を比較のために示す。
実験はDOM15-26-593を用いて次の通り行った:
DOM15-26-593 dAbの安定性特性は、DOM15-26-593 dAbを物理的および生物学的ストレスにかけたときに、そのVEGFと結合する能力に最小限の影響しか与えないことを意味する(図44〜47(aおよびb)を参照)。例えば、その分子を、繰り返して、液体窒素(-196℃)から体温(37℃)へ、ELISAにより測定した結合活性の喪失なしに、10サイクル凍結-解凍することができる(図 44)。この処理はまた、通常のサイズ排除クロマトグラフィにより試験して、分子凝集状態に明らかな改変をもたらさない(図45)。さらなる試験は、その分子を-8O℃〜55℃の範囲の色々な温度に置くと、168時間後に最高のインキュベーション温度においてだけ、抗原結合活性のほんのわずかな低下が起こりうることを実証した(図46)。さらに、ヒトまたはカニクイザルサル由来の血清と共に37℃で14日間インキュベーションしても、ELISAにより測定したVEGF結合に対する抗原結合能力のロスを生じなかった(図47aおよび47b)。
上記の受容体結合アッセイを次の通り行った:
上記の受容体結合アッセイを用いてFc融合体の効力を評価した(図48)。DOM15-26-593 dAbはこのアッセイで効力の増加を有し、VEGFのVEGFR2との結合をin vitroでブロックするdAbの能力を確立することが見出された。DMS1529の効力も、HUVEC(ヒト臍静脈内皮細胞)アッセイで実証し、ここでは、VEGF刺激によるHUVE細胞の増殖をブロックするVEGFアンタゴニストの能力を測定した。予め定めたVEGFの量および様々な試験材料の量による固定したインキュベーション期間の終期に、細胞数を測定した。アンタゴニストの効力が大きいほど、観察される細胞増殖が低下する(図49)。
Claims (17)
- DOM1h-131-206のアミノ酸配列と同一であるアミノ酸配列を含む、請求項1に記載の抗TNFα受容体1型(TNFR1;p55)免疫グロブリン単一可変ドメイン。
- 請求項1〜3のいずれか1項に記載の抗TNFR1免疫グロブリン単一可変ドメインを含む、TNFα受容体1型アンタゴニスト。
- 第1および第2の免疫グロブリン単一可変ドメインを含んで、それぞれの可変ドメインが請求項1〜3のいずれか1項に記載されている、請求項4に記載のアンタゴニスト。
- 前記単一可変ドメインの単量体または前記単一可変ドメインのホモ二量体を含み、可変ドメインが、DOM1h-131-206のアミノ酸配列と同一である、請求項4または5に記載のアンタゴニスト。
- 経口、胃腸管、または肺送達を介して投与される医薬に使用される、請求項4〜6のいずれか1項に記載のTNFR1アンタゴニスト。
- 炎症症状を治療および/または予防するための請求項4〜6のいずれか1項に記載のTNFR1アンタゴニスト。
- 炎症症状が肺疾患、乾癬、関節炎、および炎症性腸疾患から選択される請求項8に記載のTNFR1アンタゴニスト。
- 呼吸器疾患を治療および/または予防するための請求項4〜6のいずれか1項に記載のTNFR1アンタゴニスト。
- 呼吸器疾患が肺炎症、COPD、喘息、肺炎(pneumonia)、胞性線維症、間質性肺疾患、アレルギー、および肺炎症(pulmonary inflammation)から選択される請求項10に記載のTNFR1アンタゴニスト。
- 請求項1〜3のいずれか1項に記載の可変ドメインを含む二重特異的リガンド。
- 請求項1〜3のいずれか1項に記載の免疫グロブリン単一可変ドメインを含むポリペプチドをコードする単離されたまたは組換え体の核酸。
- 請求項13に記載の核酸を含むベクター。
- 請求項13に記載の核酸または請求項14に記載のベクターを含む宿主細胞。
- 請求項1または2に記載の免疫グロブリン可変ドメインまたは請求項4〜6のいずれか1項に記載のアンタゴニスト、ならびに製薬上許容される担体、賦形剤または希釈剤を含む医薬組成物。
- 抗体定常ドメインを含む、請求項1〜3のいずれか1項に記載の免疫グロブリン単一可変ドメインまたは請求項4〜6のいずれか1項に記載のアンタゴニスト。
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