JP4709203B2 - アルギンオリゴ糖及びその誘導体、並びにそれらの調製と用途 - Google Patents
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Description
アルギン酸ナトリウムの塩(重量平均分子量8,235Da、中国海洋大学蘭太薬業有限公司提供)を1g取り、蒸留水を添加して1%溶液にし、塩酸でpH値を4に調節して、高圧釜の中、110℃で4時間加熱した。取り出して冷却した後に、pH値をNaOH溶液で7に調節し、攪拌しながら濾液をゆっくりと濾液体積の4倍の工業用アルコールに入れ、一晩放置した。アルコール沈殿物質を吸引ろ過により乾燥させ、無水エタノールで洗浄、脱水して得られた白い濾過ケークをオーブン中、60℃で乾燥してアルギンオリゴ糖の粗製物を得た。
5gの上記調製のアルギンオリゴ糖を5%の溶液に調製した。50mlの10%水酸化ナトリウム溶液に25mlの5%硫酸銅溶液を添加し、すぐ均一に混合し、そして直ちに5%のアルギンオリゴ糖溶液40mlを添加し、沸騰水浴中で、れんがの赤色の沈殿がそれ以上発生しなくなるまで加熱した。遠心分離により、沈殿物を取り除き、少量の上清液を取って上記の割合で5%の硫酸銅溶液と10%水酸化ナトリウム溶液に添加し、れんが赤色の沈殿が発生するかを検査した。発生しなかった場合、上清液に4倍体積の95%エタノールを添加して一晩放置沈殿させ、沈殿物を吸引ろ過で乾燥させ、さらに無水エタノールで繰り返し脱水してからオーブン中、60℃で乾燥させることによってアルギンオリゴ糖酸化分解生成物の粗製物を得た。
上記のアルギンオリゴ糖調製中得られた画分が含有するアルギンオリゴ糖に対し、構造決定を行った。その結果、このシリーズのアルギンオリゴ糖はβ−D−マンヌロン酸がα−1,4グリコシド結合により結合されたアルギンオリゴ糖であることが確認された。その構造式は以下である。
上記溶出液の第292mL前後画分に含まれるアルギンオリゴ糖を適当な濃度まで希釈し、UV−2102紫外−可視分光光度計を用いて、190nm〜400nmの間でスキャンした結果、当該画分が紫外群に特異的な吸収ピークがないことが確認された。このことは構造中に共役二重結合が存在しないことを示している。しかし、190〜200nm付近に非特異的な吸収が存在しているため、脱塩を行う時、当該群域の紫外光で分析することができる。
0.5mg上記画分のオリゴ糖を取り、KBrで製錠し、NEXUS−470型赤外分光計によって赤外線スペクトル測定を行った。その結果、3420.79、3214.64、2924.61cm−1に水酸基の対称伸縮振動、また1600.25cm−1にカルボキシル酸塩のカルボニル基による対称的な伸縮振動がそれぞれ確認され、1406.54cm−1に水酸基の変角振動、1146.42cm−1にカルボキシル基の炭素酸素結合の対称伸縮振動、1045.77cm−1にアンヒドロエーテルの逆対称伸縮振動、804.02cm−1にマンヌロン酸の環状骨格の逆対称伸縮振動が確認された。この化合物が、カルボキシル基、水酸基とマンヌロン酸の環状骨格を含有する構造を有していることを表している。
質量スペクトル分析に用いたのはBruker Daltonics社のBIFLEX II型MALDI−TOF質量分析計であり、質量スペクトル図(図2、そのデータは表1に示している)で示しているように、m/z:1073.9のピークは分子イオンピーク[M−H]−1、m/z:1096.6のピークは[M+Na−2H]−1、m/z:1028.0のピークは[M−H2O−CO−H]−1、m/z:821.2のピークは[M−ManA−CH2O−2H2O−H]−1、m/z:704.3のピークは[M−2ManA−H2O−H]−1で、m/z:634.4のピークは[M−2ManA−2(CH2O)−CO−H]−1で、m/z:536.5のピークは[M−2H]2−、m/z:357.4のピークは[M−3H]3−である。上記画分が含有するオリゴ糖のESI−MSにおける分子イオンピークはm/z:1073.9であるため、その分子量が1074であることが示唆された。
式(I)で示されるアルギンオリゴ糖(n=4)を取り、JNM−ECP600型NMR分析計を用いてNMRスペクトル測定を行った。1H NMR、13C NMRの結果を表2と表3に示す。
高解像度の1H−NMRを用いて、アルギンオリゴ糖の組成成分を分析した。アノマー炭素のシグナルの強度によって、アルギンオリゴ糖サンプル中のマンヌロン酸とグルロン酸の比率(M/G)を定量分析した。乾燥させたサンプルを3〜5mg取り、中性のpDの条件でD2Oに溶解させ、0.3mg EDTAを添加して、Bruker DPX−300型NMR分析計で測定した。スペクトルは70℃で記録され、D2Oのピークが異なるプロトン共振群から遠く離れるようにした。シグナル相対強度をピーク面積積分値で表示する。その結果、M残基のH−1シグナルは4.64ppmと4.66ppm(それぞれMM、MG、配列中のM残基のH−1シグナル)。G残基のH−1シグナルは全てが5.05ppmのところ(2重ピーク)にあり、サンプルのMとGの相対含有量は、両者のH−1ピークの強度で表すことができ、公式は次の通りである。
上記のアルギンオリゴ糖の酸化分解生成物調製で得られた画分に含有されているアルギンオリゴ糖の酸化分解生成物に対し構造決定を行った。その結果、この系列のアルギンオリゴ糖の酸化分解生成物はβ−D−マンヌロン酸がα−1,4グリコシド結合により形成されたアルギンオリゴ糖誘導体であることが確認された。その構造式は以下の通りである。
アルギンオリゴ糖酸化分解生成物を適量取り、蒸留水で一定の濃度の溶液を調製して、島津製のUV−260型紫外分光光度計(190nm〜700nm)紫外可視分光光度計で全波長のスキャンを行った。測定により、アルギンオリゴ糖酸化分解生成物は、紫外と可視光域に特徴の吸収ピークを示さなかった。
NICOLE NEXUS−470型赤外分光計によって赤外線スペクトル測定を行った。その結果を表4に示している。
Bruker Auance DPX−300型NMRスペクトルメーターを用い、アルギンオリゴ糖酸化分解生成物の水素と炭素のスペクトルを測定した。1H−NMR分析により、スペクトル図は主にβ−D−マンヌロン酸の6個の水素原子のシグナルから構成され、各シグナル分裂を帰属した後、アルギンオリゴ糖酸化分解生成物は主にマンヌロン酸から構成されていることを確認した。もし、還元末端1位がアルデヒド基であれば、H−1αとβの化学シフトはそれぞれ5.11と4.81ppmである。アルギンオリゴ糖の還元末端1位がアルデヒド基からカルボキシル基に酸化するため、H−1は消えてしまい、それぞれの5.11と4.81ppmにあるシグナルもなくなる。13C−NMRの結果により、サンプルのスペクトル図は主にβ−D−マンヌロン酸6個の炭素原子のシグナルから構成され、各シグナル分裂を帰属した後、中間体の分子は主にマンヌロン酸から構成されていることが判った。中間体のスペクトルと比べた結果、マンヌロン酸特有の還元末端C−1シグナル(94ppm)がなくなっていた。還元末端C−1のシグナルが低磁場の175.81ppmにシフトされていた。これはアルギンオリゴ糖の還元末端1位がアルデヒド基からカルボキシル基に酸化したため、そのC−1の化学シフトがアルデヒド基の94ppm付近からカルボキシル基の炭素の175.81ppmに変化したからである。
質量スペクトル分析に用いたのはBruker Daltonics社のBIFLEX II型MALDI−TOF質量分析計、結果は図4に示した通りである。図から、m/z:1113.7のピークは[M+Na]+1、m/z:1113.7のピークは[M−O+Na]+1、m/z:1083.7のピークは[M−CH2O+Na]+1、m/z:1067.6のピークは[M−CH2O−O+Na]+1、m/z:1053.6ピークは[M−2(CH2O)+Na]+1、m/z:979.6のピークは[M−3(CH2O)−CO2+Na]+1、m/z:921.6のピークは[M−4(CH2O)−CO2−CO+Na]+1であることが分かる。アルギンオリゴ糖酸化分解生成物の質量スペクトル解析を表5に示した。
以下の実験に用いるアルギンオリゴ糖はBio−Gel−P6ゲル濾過カラム分離後の6糖である。
18〜22gのオスのBalb/cマウス(山東大学実験動物センター提供)を取り、重量測定して6群、即ちコントロール群、モデル群、およびアルギンオリゴ糖投与量が低い、中、高い(15、30、60のmg/kg)の3つの群、陽性コントロールの0.2mg/kg、HBY(河南竹林衆生製薬公司予豫中製薬工場が生産)投与群に分けた。動物を群に分けた後、3日目から0.5ml/20gの量で相応の薬物を与え始め、コントロール群、モデル群には等量の生理食塩水を与え、毎日1回、実験が終わるまで続けた。
動物を水泳実験が終わった後、頭を切り落としてからすぐに氷上で皮質とヒポキャンパス(海馬)を分離して、液体窒素により1時間急速冷凍した後、−80℃の冷蔵庫に保存する。実験するとき、皮質とヒポキャンパスそれぞれに生理食塩水で10%と5%の均一の懸濁液を調製して、3600回転/分で遠心分離して得た上清液をMDA、CuZn−SOD、GSH−PX、Na+K+−ATPase、AchEとCHAT活性測定に供した。CHATは同位元素標識合成法を採用し、そのほかの指標と総タンパクの測定は南京建成生物工程研究所生産の試薬箱で測定した。
Aβモデルの大脳皮質のChAT活性は、コントロール群より著しく低い(P<0.05)。アルギンオリゴ糖とHBYを手術前及び手術後に投与することによって、いずれもChAT活性を上昇させることができる。その中、アルギンオリゴ糖30、60mg/kgとHBYの治療効果は、大脳皮質に明らかな統計学の有意差を有する。結果を表8に示した。
モデルマウスの脳内SOD活性は、コントロール群より低く、その抗酸化活性低下を示唆しているが、まだ統計学の有意差を備えない。60mg/kgのアルギンオリゴ糖による予防と治療群の大脳皮質とヒポキャンパスの二つの部位のSOD活性が著しく上昇し、アルギンオリゴ糖抗痴呆メカニズムは脳の抗酸化活性の上昇と関係していることを示唆した。結果を表9に示した。
モデル群のマウスの皮質とヒポキャンパスのMDA含有量はコントロール群と比較して著しい差がない。早期にアルギンオリゴ糖を投与し、治療を続けたマウスの脳内MDA含有量は低下していた。30、60mg/kgの群とHBY群のMDAは著しく低下し、2種類の薬物のいずれも脳内の酸化ダメージとフリーラジカル損害現象を改善できることを示唆し、脳組織を酸化損害から保護することができる。結果を表10に示した。
モデル群マウスの皮質とヒポキャンパス部位のGSH−PX活性はコントロール群より低く、その中、ヒポキャンパス部位は著しい差を示した(P<0.05)。アルギンオリゴ糖を与えた後にある程度高くなり、その中、アルギンオリゴ糖60mg/kg群の皮質、HBY群のヒポキャンパスの酵素活性はモデルと比較して著しい差を示した(p<0.05)。結果を表11に示した。
モデル群マウスの皮質とヒポキャンパスのNa+、K+−ATP酵素活性は、コントロール群より著しく低く、Aβが脳内神経細胞のエネルギー代謝に対して顕著な影響を与えていることを示唆した。早期にアルギンオリゴ糖を投与し、治療を続けたマウスの脳内のこの酵素の活性が著しく上昇し、3つの投与量群はいずれも大脳皮質のNa+、K+−ATP酵素活性が著しく上昇し、さらに、高投与量群はヒポキャンパス部位のNa+、K+−ATP酵素活性を顕著に高めることができ、当該治療効果はHBYより強い。よって、脳内のエネルギー代謝のレベルを高めることは、アルギンオリゴ糖が脳の機能を保護し、さらに抗痴呆効果を発揮する一つの手段であると考えられる。結果を表12に示した。
Banker GAらのRat hippocampal neurons in dispersed cell culture. Brain Res, 1977, 126:397-425に記載の方法を参照して初代細胞の皮質神経細胞を育成し、培養後1週間から実験を行い始めた。すなわち、8日目に細胞液の交換を行い、細胞中へ最終濃度が0、10、50、100μg/mlのアルギンオリゴ糖を添加して、37℃でインキュベートして24時間育てた後に、老化したAβ25−35(Aβ25−35を滅菌した超純水に溶解し、濃度1mg/mlにして、37℃で7日間放置老化して得られた老化Aβを分けて詰めた後に−20℃で冷凍保存した)を添加し、最終濃度30μMにした後、24時間育成を続けた。その後、10μl、5mg/mlのMTTを添加し、37℃で4時間インキュベートしてから上清液を取り除いて、150μl DMSOを添加してマイクロプレートリーダーにて波長570nm、参照波長630nmを測定することによって吸収値を測定した。
1.アルギンオリゴ糖のAβ25−35が引き起こすSH−SY5Y細胞の死亡に対する影響
SH−SY5Y細胞を2×105個/穴で6穴プレートに接種し、細胞が解け合った後に0、50、100μg/mlのアルギンオリゴ糖を添加して24時間作用させる。さらに、最終濃度が30μMの老化Aβ25−35(Sigma社の製品)を添加して48時間引き続き育成して、消化、細胞収集し、1200回転で5分遠心分離の後、上清を除去、pH7.2の燐酸塩緩衝液(PBS)で細胞を2回洗浄、100u/ml RNase(Hyclone社の製品)と5μg/mlPI(Hyclone社の製品)の混合液200μlを添加して4℃で30分インキュベートした。フローサイトメーター(米国BD社の製品)で測定を行って、すべての試料を8000細胞ずつ計った。
(1)アルギンオリゴ糖のAβ1−40アミロイド線維形成に対する影響
新しく調製したAβ1−40と0、10、50、100μg/mlのアルギンオリゴ糖をTBS緩衝液(100mM Tris、50mM NaCl、pH7.4)に混合して、37℃で24時間インキュベートしてからTh−Tを添加して、蛍光分光光度計を用い、λex=450nm、λem=480nmでTh−T蛍光の強さを測定した。
Aβ1−40を無菌超純水に溶解させ、1mg/mlの溶液を調製してからEppendorf管に分けて入れ、37℃で7日間放置し、老化させた。1mg/mlの老化Aβ1−40を取りアルギンオリゴ糖と混合し、37℃で3日間インキュベートして、試料を2%酢酸ウランでネガティブ染色し、Aβ1−40アミロイド線維の形態をJEM−1200EX電子顕微鏡で観察した。その結果、Aβ1−40が7日間老化した後に互いに交錯、集中して組んでアミロイド線維を形成していたが、アミロイド線維化Aβ1−40にアルギンオリゴ糖を添加して3日間インキュベートしたものは、Aβアミロイド線維量が明らかに減少し、アミロイド線維が断裂、短かくなっていた。その結果を図10に示した。AはAβ、BはヘパリンとAβ,Cはアルギンオリゴ糖とAβ共同インキュベートしたものである。
無菌TBS(pH7.4,100mM Tris,50mM NaCl)を用いて、Aβ1−40を250μg/ml濃度に調製し、それぞれ350μl/管でEppendorf管に分け入れ、それぞれに100μg/ml濃度の無菌アルギンオリゴ糖を添加し、均一に混合後、37℃で12時間放置してから、J−500A型CD計(日本JASCO社製)で立体構造の変化を分析した。
SPR技術(BIAcore X、スウェーデンUppsala)により、25℃、5μl/minの流速でHBS−EP緩衝液を流過させた(0.01M HEPES、150mmol/L NaCl、3.4mmol/L EDTA−Na2、0.005%(V/V)トゥイーン−20、pH7.4)。Aβ1−40をHBS−EP緩衝液で1mg/mlの充填液に調製し、分け詰めた後に37℃に置く。それぞれ放置してから0、0.5、1、2、4、6日目にAβ1−40を取り、それを5段階の濃度倍率に希釈してから、25℃、5μl/minの流速でアルギンオリゴ糖のチップ(注射体積は10μl)を通過しながら、Aβとアルギンオリゴ糖の結合曲線を記録した。2M NaClを用いてチップを再生する。
1.アルギンオリゴ糖の体外におけるアミリン損害膵島β細胞に対する保護作用
ヒト膵島β細胞NIT株を10%FBSを含むDMEM培地を用い、1×104個/穴で96穴アッセイプレートで接種して培養し、細胞混合後、0、10、50、100μg/mのアルギンオリゴ糖を添加して24時間作用させる。続いて、最終濃度が30μMの老化アミリン(amylin)(略称IAPP)を添加し、48時間引き続き培養した後に、MTT法で細胞生存率を測定した。その結果、アルギンオリゴ糖で24時間前処理することで、IAPPの細胞に対する毒性作用を顕著に改善でき、細胞の生存を強化でき、しかも薬物の投与量の増加に伴って、このような改善作用ももっと顕著になっている。結果は図12に示した通りである。一群ごとの実験回数は6で、その値は平均数±標準偏差で表示し、##はコントロール群と比較した統計学の差(p<0.01)を示し、*および**はIAPP群と比較して統計学の差(p<0.05およびp<0.01)があることを表示している。アルギンオリゴ糖は、IAPPの膵島β細胞の損害に対する拮抗作用を有することを示唆している。
体重18〜22gオスのNIHマウス60匹を、正常な群、モデル群、アルギンオリゴ糖50、150、450mg/kg投与群と5mg/kgグリベンクラミド投与群に分けた。試験当日、正常な群以外の動物に150mg/kgのストレプトゾトシンを腹腔注射した。連続して10日間相応の薬物を投与して、11日目に眼球をとって血を取り、血糖濃度を測った。その結果、各薬物投与群マウスの血糖濃度は明らかにモデル群より低い。従って、アルギンオリゴ糖は、ストレプトゾトシンによる糖尿病マウスモデルに対して一定の治療の作用を有することを示唆している(表13)。
以上のデータをStatview統計処理ソフトで分析した。その結果を“平均値±標準偏差”(Mean values±SE)で表し、分散分析(ANOVA)を用いて比較を行った。
Claims (10)
- n=2〜10であることを特徴とする請求項1に記載のアルギンオリゴ糖誘導体、あるいはそれらの製薬学的に許容される塩。
- n=4〜8であることを特徴とする請求項2に記載のアルギンオリゴ糖誘導体、あるいはそれらの製薬学的に許容される塩。
- アルギナート水溶液を高圧釜の中、pH2〜6、反応温度約100〜120℃の条件で2〜6時間反応させる酸加水分解工程;
前記酸加水分解反応終了後、pH値を7に調節するpH調節工程;
更に酸化剤を添加し、反応温度100〜120℃の条件で15分〜2時間反応させる酸化分解工程;
前記酸化分解反応終了後、pH値を7に調節するpH調節工程を含むことを特徴とする請求項1に記載のアルギンオリゴ糖誘導体、あるいはそれらの製薬学的に許容される塩の調製方法。 - 上記アルギナートがアルギン酸ナトリウムであり、前記酸加水分解反応がpH4、反応温度110℃の条件で4時間行われることを特徴とする請求項4に記載の調製方法。
- pH値を7に調節した後、エタノールで沈殿を生じさせ、得られた沈殿物質を吸引ろ過し、脱水、乾燥、脱塩を行うことを特徴とする請求項4に記載の調製方法。
- 前記酸化剤が水酸化銅であり、前記酸化分解反応が100℃で30分行われることを特徴とする請求項4に記載の調製方法。
- 請求項1〜3のいずれかに記載のアルギンオリゴ糖誘導体と製薬学的に許容されるキャリアーを含有することを特徴とする薬学用組成物。
- 前記薬学用組成物が老年性痴呆症の予防と治療用薬物、β−アミロイド線維形成阻害剤、糖尿病の予防と治療用薬物、アミロイド線維破壊促進剤、膵島アミロイド線維形成阻害剤のいずれか一種類であることを特徴とする請求項9に記載の薬学用組成物。
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