JP7448174B2 - アミロイドベータ中間領域エピトープおよびそれに対する立体配座選択的抗体 - Google Patents
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Description
本出願は2015年11月9日に出願された米国特許出願第62/253044号、2016年7月18日に出願された米国特許出願第62/363,566号、2016年7月22日に出願された米国特許出願第62/365,634号および2016年9月12日に出願された米国特許出願第62/393,615号の優先権の利益を主張するPCT出願であり、上記の出願はそれぞれ参照により本明細書に組み込まれる。
本開示は、アミロイドベータ(AベータまたはAβ)エピトープおよびそれに対する抗体、より具体的には、Aベータオリゴマー内で選択的に接触可能な立体配座Aベータエピトープならびに関連する抗体組成物およびその使用に関する。
CDR-H1 GYSFTSYW(配列番号22)
CDR-H2 VHPGRGVST(配列番号23)
CDR-H3 SRSHGNTYWFFDV(配列番号24)
CDR-L1 QSIVHSNGNTY(配列番号25)
CDR-L2 KVS(配列番号26)
CDR-L3 FQGSHVPFT(配列番号27)
a.生体試料と、本明細書に記載される抗体または本明細書に記載されるイムノコンジュゲートとを接触させること;および
b.何らかの抗体複合体の存在を検出することを含む、方法を含む。
a.抗体:Aベータオリゴマー複合体の形成が可能な条件下で、試料と、Aベータオリゴマーに特異的かつ/または選択的な本明細書に記載される抗体または本明細書に記載されるイムノコンジュゲートとを接触させること;および
b.何らかの複合体の存在を検出することを含み、
検出可能な複合体の存在により、試料がAベータオリゴマーを含有し得ることが示される。
本明細書では、アルツハイマー病に関連するオリゴマー種を含めたAベータの毒性オリゴマー種内で優先的に接触可能なエピトープを標的とし得る抗体、免疫療法組成物および方法が提供される。Aベータのオリゴマー種内での抗体結合に特異的かつ/または選択的に接触可能であり得るAベータの領域が特定された。
本明細書で使用される「Aベータ(A-beta)」という用語は、代替的に「アミロイドベータ」、「アミロイドβ」、Aベータ(Abeta)、Aベータ(A-beta)または「Aβ」と呼ばれ得る。アミロイドベータは、36~43個のアミノ酸よりなるペプチドであり、あらゆる種のあらゆる野生型および変異型、特にヒトAベータを包含する。Aベータ40は40アミノ酸型を指し、Aベータ42は42アミノ酸型を指すなど。ヒト野生型Aベータ42のアミノ酸配列は配列番号32で示される。
本発明者らは、Aベータ中にHQKを含むエピトープ領域を特定した。これには、Aベータペプチド上のアミノ酸13~16の位置のHHQK(配列番号1)およびAベータペプチド上のアミノ酸14~17の位置のHQKL(配列番号20)が含まれる。本発明者らはさらに、そのエピトープまたはその一部が立体配座エピトープであり得ること、およびHQK、HHQK(配列番号1)および/またはHQKL(配列番号20)またはその一部がAベータのオリゴマー種中の抗体結合に選択的に接触可能であり得ることを明らかにした。
したがって、本開示は、アミノ酸HHQK(配列番号1)またはHQKL(配列番号20)またはHQKなどのその一部よりなるAベータ中の立体配座エピトープを特定するものであり、HHQK(配列番号1)はAベータのアミノ酸残基13~16に対応し、HQKL(配列番号20)は、アミノ酸14~17に対応する。実施例で示すように、HHQK(配列番号1)およびHQKL(配列番号20)がAベータ線維において不規則になりやすい領域として特定された。残基HHQK(配列番号1)およびHQKV(配列番号20)は、集団座標法を用いた予測で明らかになった。残基HHQK(配列番号1)はまた、Promis G-oモデルアルゴリズムを用いて明らかになった。
環状ペプチド:1.49;1.37;0.73;1.04
直鎖状ペプチド:1.46;1.47;1.41;1.37
線維:1.12;1.12;0.99;1.15
実施例6および7で示されるように、環状化合物CGHHQKG(配列番号2)は、免疫原性であり、対応する直鎖状ペプチドに比べて、環状化合物に選択的に結合する多くの抗体を産生する。本明細書に記載のように、シクロ(CGHHQKG)(配列番号2)を用いて産生された抗体には、環状化合物に選択的で、モノマーよりAベータオリゴマーに選択的に結合し、AD組織において顕著な斑を欠く抗体が含まれた。本明細書に記載されるエピトープHHQK(配列番号1)および/またはその一部は、ADに含まれるAベータのミスフォールドされた伝播性の株における潜在的な標的となり得、その立体配座エピトープを認識する抗体は、例えば、そのような伝播性の株の検出に有用であり得る。さらに環状化合物に対し産生された抗体は、Aベータ凝集を阻害し、さらに、Aベータオリゴマー誘導される神経細胞毒性を阻害し、それらの治療薬としての使用を示唆する。
実施例で示したように、(CGHHQKG)(配列番号2)を含む免疫原を用いて産生された抗体は、直鎖状CGHHQKG(配列番号2)に比べて、シクロ(CGHHQKG)(配列番号2)に選択的に結合し、また、モノマーAベータおよびAベータ線維斑と比較して、合成および/または天然のオリゴマーAベータ種に選択的に結合した。さらに、シクロ(CGHHQKG)(配列番号2)に対して産生させた抗体によりAベータ凝集のin vitroでの伝播を阻害することができた。さらに、毒性アッセイで示したように、(CGHHQKG)(配列番号2)に対して産生させた抗体は、Aベータオリゴマー神経細胞毒性を抑制した。
さらなる態様は、本明細書に記載される化合物、免疫原、核酸、ベクターまたは抗体を含む組成物である。
さらなる態様は、無菌バイアルなどのバイアルあるいはその他の筐体に入った本明細書に記載されるi)抗体および/またはその結合フラグメント、ii)核酸、iii)ペプチドまたは免疫原、iv)組成物あるいはv)組換え細胞と、任意選択で参照物質および/またはキットの使用のための説明書とを含む、キットに関する。
本明細書に記載される化合物、免疫原および抗体を作製する方法が含まれる。
a.抗体:Aベータオリゴマー複合体の形成が可能な条件下で、生体試料と、本明細書のAベータオリゴマーに特異的かつ/または選択的な本明細書に記載される抗体とを接触させること;および
b.何らかの複合体の存在を検出することを含み、
検出可能な複合体の存在により、試料がAベータオリゴマーを含有し得ることが示される。
(a)抗体-抗原複合体の生成が可能な条件下で、前記対象の試験試料と本明細書に記載される抗体とを接触させること;
(b)被験試料中の抗体-抗原複合体の量を測定すること;および
(c)被験試料中の抗体-抗原複合体の量と対照とを比較することを含み、
対照と比較して試験試料中に抗体-抗原複合体が検出されることにより、試料がAベータを含むことが示される。
実施例1
集団座標予測
ミスフォールドされたエピトープを予測する方法は、2015年11月9日に出願され参照により本明細書に組み込まれる米国特許出願第62/253044号、「Systems and methods for predicting misfolded protein epitopes by collective coordinate biasing」に記載されている「集団座標バイアス」によって得られる。そこに記載されているように、この方法は、あるタンパク質(またはペプチド凝集体)にグローバル座標のバイアスをかけて、そのタンパク質(またはペプチド凝集体)をミスフォールドさせた後、部分的に構造化されていないタンパク質(またはペプチド凝集体)のフォールドされない可能性が最も高いアンフォールド領域を予測する、分子動力学に基づくシミュレーションを用いるものである。バイアスシミュレーションを実施し、各残基インデックスに対応する溶媒接触表面積(SASA)(検討するタンパク質の初期構造のものと比較した)。SASAはH2Oが接触可能な表面積を表す。SASAの(検討するタンパク質の初期構造のものと比較した)正の変化は、関連する残基インデックスの領域におけるアンフォールドを示すと考え得る。この方法をそれぞれが独自の形態を有する単鎖、および3種類のAベータ株、すなわち、3回対称性構造(またはモノマー)(PDBエントリー2M4J)のAβ-40ペプチド、2回対称性構造(PDBエントリー2LMN)のAβ-40モノマーおよび一本鎖平行in-register(例えば、一本の鎖の残基が近接する鎖の同じ残基と相互作用するベータシートが反復したもの)構造(PDBエントリー2MXU)のAβ-42モノマーに適用した。
第2のエピトープ予測モデルは、天然の状態からの部分的なタンパク質アンフォールドの自由エネルギーランドスケープに基づいている。天然の状態は、実験的に誘導された線維構造と見なされる。タンパク質が天然の状態から一次配列の所定の量だけ部分的にアンフォールドしている場合、エピトープ候補は、不規則に最小自由エネルギーを費やさせるコンティグ配列セグメントである。与えられたタンパク質立体配座の自由エネルギーは、立体配座エントロピーおよびアンフォールド状態に適する極性官能基の溶媒和、ならびに静電気的およびファンデルワールス的、エントロピー的に天然の状態を安定化するタンパク質内相互作用を含むいくつかの寄与要因から生じる。
アンフォールド中に起こる自由エネルギー変化を説明する近似モデルは、固定エネルギーを天然の状態の全ての接点に割り付け、接点は、固定カットオフ距離rcutoff内の1対の重(非水素)原子として定義される。G-o様モデルは、タンパク質フォールディングの前に記載の調査では、うまく実施された。G-o様モデルは、天然タンパク質相互作用形態から生じる効果を単離し、実際には、アンフォールド自由エネルギーランドスケープは、単一の天然状態構造から容易に計算できる。
ΔFG-o(U)=ΔEG-o(U)-TΔSG-o(U) (1)
部分的アンフォールタンパク質の自由エネルギーランドスケープが得られると、可変エネルギー閾値Ethが適用され、3個以上のアミノ酸を含み、閾値未満のエネルギーコストを有するセグメントがエピトープ候補として予測される。予測は、変化する閾値Ethに対し安定である。
この方法を用いて予測されたエピトープを実施例2に記載する。
I.立体配座特異的エピトープ
本開示は、オリゴマーAベータペプチド、特に、ミスフォールドタンパク質種である毒性のオリゴマーのAβペプチドに選択的であり得る抗体に関する。このAβペプチドのプリオン様伝播およびシナプス小胞との干渉は、アルツハイマー病(AD)で生じるシナプス機能障害および認知機能低下が原因であると考えられている。Aβは、ガンマセクレターゼによるアミロイド前駆体タンパク質(APP)の切断により生じる長さ36~43アミノ酸のペプチドである。AD患者では、Aβは、モノマー、線維中、および可溶性オリゴマー中に存在する。AβはAD患者の脳にみられるアミロイド斑の主成分である。
エピトープHHQK(配列番号1)は、実施例1に記載し、図1に示すように、集団座標法から予測される2MXU株、およびPromis G-o法 から予測される2M4J株由来のエピトープとして出てきたものである。
残基インデックスに関数としての環状ペプチドの曲率を、直鎖状ペプチドおよび線維の曲率と比較した。
オリゴマー選択的エピトープを特定するためのさらなるコンピュータ支援が、オリゴマー内の露出エピトープの代わりである環状ペプチドの側鎖二面角分布ならびに主鎖二面角のラマチャンドランφおよびψ分布の両方によって得られる。いくつかの角度は、線維またはモノマー中の対応する分布とは実質的に異なる。
13H、14H、15Q、および16Kのそれぞれの二面角のエントロピーを調査した。それぞれの残基の二面角のエントロピーを図4のパネルのA~Dにプロットしている。15Qおよび16Kのいくつかの二面角のエントロピーが直鎖状型と比較して減少しており、このことは、直鎖状型およびおそらくモノマーとは異なる傾向がある立体配座においてこれらの角度の形が制約されることを示している。パネルEは、線維のエントロピー比べた残基13H、14H、15Q、および16Kの合計側鎖エントロピー(ラマチャンドラン主鎖角度は含まない)のプロットで、例えば、環状ペプチドのΔSはS(環状)-S(線維)である。これは、環状ペプチドでは、エントロピーは、線維に比較して増大し、直鎖状ペプチドの13H、15Q、および16Kでは増大するが、14Hでは線維に比較して減少する。加えて、環状ペプチドは直鎖状ペプチドよりも小さいエントロピーを有するように見える。パネルFは、線維のエントロピーに比べた残基13H、14H、15Q、および16Kに対する合計側鎖エントロピー+ラマチャンドラン主鎖エントロピーのプロットである。これは再度、15Qおよび16Kでは、エントロピーが、線維に比較して増大するが、環状ペプチドは、これらの残基で、直鎖状ペプチドより小さいエントロピーを有し、したがって、より強く拘束されていることを示す。他方では、H14は、環状および直鎖状型において、線維より小さいエントロピーを示し、直鎖状型では、全ての内で最小エントロピーを示す。これは、線維は、ペプチドの他の部分を拘束し、実際にH14のエントロピーを増大させることを意味する。再度、パネルGは、今度は直鎖状モノマーのエントロピーに比べた残基13H、14H、15Q、および16Kに対する合計立体配座エントロピーのプロットである。これは、残基H13、Q15、およびK16に対する環状ペプチド中の、直鎖状ペプチドに比べて、減少した立体配座エントロピーを示す。しかし、合計エントロピー減少は、約1kBにすぎない。しかし、このわずかに制限されたセットの立体配座になる確率は、exp(-ΔS)≒0.37未満である。理由は環状立体配座がかなりのエントロピーを有するにしても、二面角の重なり合いにおいて上記し、および下記実施例VIIIの構造的重なり合いで記載のように、それらは別々の重なり合わない立体配座分布に対応しているためである。
エピトープが抗体に対して露出する主鎖配向は、ペプチドが直鎖状型であるか、環状型であるか、または繊維型であるかによって異なる。この相違は、直鎖状ペプチドおよび環状ペプチドの両方の各残基13H、14H、15Q、および16Kについて、主鎖に沿ってラマチャンドラン角ファイおよびプサイ(またはφおよびψ)をプロットすることにより定量化することができる。配列CGHHQKG(配列番号2)からなる直鎖状ペプチドおよび環状ペプチドの両方ならびに線維構造2M4JにおけるHHQK(配列番号1)の残基13H、14H、15Q、および16Kについて平衡シミュレーションでサンプリングしたファイ角およびプサイ角を図5にプロットする。図5、パネルBから、環状ペプチドの14H、15Q、および16Kに対する主鎖二面角分布は、直鎖状ペプチドまたは線維に対しサンプリングした二面角の分布とは異なることがわかる。
図6、パネルAは、Aベータペプチドの天然配列による各アミノ酸の固有溶解度のプロットである。図6、パネルBは、環状ペプチド、直鎖状ペプチド、および線維の平衡アンサンブル中の各残基の平均溶媒接触表面積(SASA)のプロットである。これは、環状ペプチド中の残基HHQK(配列番号1)のSASAが線維より増大し、加えて、SASAが直鎖状ペプチドより中程度に増大することを示し、より多くの表面が露出され、したがって、抗体結合に接触可能となると可能性があることを示す。露出の増大は、残基K16にとって最も重要であり、これは、直鎖状ペプチドに比べてSASAの最大の増大を示す。
立体配座間に標準的な構造的アライメントの測定基準を用い、次いでクラスタリング解析を実施することにより、配列HHQK(配列番号1)が環状ペプチドにおいて直鎖状ペプチドとは異なる立体配座を提示するという決定的証拠を確認することができる。直鎖状ペプチドおよび環状ペプチドのCGHHQKG(配列番号2)ならびにPDB ID 2M4Jに対応する構造の完全長線維について立体配座の平衡アンサンブルを得る。これらのアンサンブルから残基HHQK(配列番号1)に関する立体配座のスナップショットを収集し、次いで環状ペプチドアンサンブルの最も大きいクラスター、直鎖状ペプチドアンサンブルの最も大きいクラスター、および線維アンサンブル中のHHQK(配列番号1)の最も大きいクラスターの重心を構造的に整列させ、その後、3つの平均二乗偏差(RMSD)の値を記録し、プロットする。ここでは、最大クラスターアルゴリズム(http://www.sbg.bio.ic.ac.uk/maxcluster)によりクラスタリングを実施する。図9に、直鎖状アンサンブル、環状アンサンブルおよび線維アンサンブルの3つの対応するRMSD値を三次元散布図としてプロットする。図9、パネルA、B、Cは、3次元散布図の3つの異なる図を示す。
立体配座拘束エピトープを含む環状化合物構築
シクロ(CGHHQKG)(配列番号2)などのHHQK(配列番号1)を含むペプチドは頭-尾環化することができる。
シクロ(CGHHQKG)(配列番号2)
環状化合物シクロ(CGHHQKG)(配列番号2)を上記の通りに合成し、次いでBSAおよび/またはKLHとコンジュゲートした(CPC Scientific社、サニーベール、カリフォルニア州)。PBS緩衝液に溶かしたSMCCによりBSAまたはKLHを再活性化し、次いで、純粋なペプチドをPBS緩衝液に溶かした溶液をコンジュゲーション混合物に加え、コンジュゲーション混合物を室温で2時間攪拌した。次いで、コンジュゲーション混合物を透析後に凍結乾燥させて、コンジュゲーション産物を得た。
抗体の生成および選択
立体配座拘束化合物、任意選択で環状化合物、例えばシクロ(CGHHQKG)(配列番号2)ペプチドなどのHHQK(配列番号1)を含む環状ペプチドなどとキーホールリンペットヘモシアニン(KLH)とを結合させる。シクロペプチドシクロ(CGHHQKG)(配列番号2)を記載のように作製し、カナダ動物管理協会により承認されたプロトコルに従ったマウスモノクローナル抗体作製のために(ImmunoPrecise Antibodies LTD(ビクトリア、ブリティッシュコロンビア州、カナダ))に送付した。マウス血清を、抗体の産生に使用した立体配座ペプチドを用いてスクリーニングしたが、しかし、BSAと結合した関連ペプチド、例えば、シクロ(CGHHQK-PEG2)-ペプチド(配列番号4)を用いても同様にスクリーニングできる。
斑/線維との結合の有無の評価
免疫染色には、本明細書に記載される抗体、陽性対照の6E10(1μg/ml)およびアイソタイプ対照の、例えば、IgG1、IgG2aおよびIgG2b(1μg/ml、Abcam社)を一次抗体として用いる。切片を4℃で一晩インキュベートし、TBS-Tで3×5分間洗浄する。西洋ワサビペルオキシダーゼとコンジュゲートした抗マウスIgG(1:1000、ECL社)を切片に添加し、45分間インキュベートし、次いでTBS-Tで3×5分間洗浄する。DAB発色試薬(Vector Laboratories社、バーリントン、オンタリオ州、カナダ)を加え、バックグランド染色に対して所望の標的レベルに達したとき、切片を蒸留水でリンスする。切片をマイヤーのヘマトキシリンで対比染色し、脱水し、カバーガラスをかけた。スライドを光学顕微鏡(Zeiss Axiovert 200M、Carl Zeiss Canada社、トロント、オンタリオ州、カナダ)下で検査し、Leica社のDC300デジタルカメラおよびソフトウェア(Leica Microsystems Canada社、リッチモンドヒル、オンタリオ州)を用いて代表的な画像を50倍、200倍および400倍の倍率で記録する。
方法および材料
免疫原
米国カリフォルニア州サニーベールのCPC Scientific社でペプチドを作製した(環状および直鎖状両方)。トリフルオロ酢酸対イオンプロトコルを用いてペプチドをKLH(免疫感作用)およびBSA(スクリーニング用)とコンジュゲートした。ペプチドを脱塩し、MSおよびHPLCにより確認し、純度95%であると判断された。ペプチドをIPA社に発送し、マウスを用いたモノクローナル抗体の作製に使用した。
キーホールリンペットヘモシアニン(KLH)と結合したシクロ(CGHHQKG)(配列番号2)に対するハイブリドーマおよびモノクローナル抗体をいくつか作製した。
リンパ球を単離し、ポリエチレングリコール(PEG1500)の存在下でマウスSP2/0ミエローマ細胞と融合させた。融合した細胞をHAT選択を用いて培養した。この方法では、半固形メチルセルロース系HAT選択培地を用いてハイブリドーマ選択とクローン化とを1つの段階に組み合わせる。半固形培地上で単一細胞由来のハイブリドーマが増殖してモノクローナルコロニーを形成した。融合事象から10日後、得られたハイブリドーマクローンを96ウェル組織培養プレートに移し、中期対数増殖期に達するまで(5日)HT含有培地で増殖させた。
ハイブリドーマの組織培養上清を間接ELISAによりスクリーニング抗原(環状ペプチド-BSA)(一次スクリーニング)で試験し、ヤギ抗IgG/IgM(H&L)-HRP二次抗体を用いてIgG抗体およびIgM抗体の両方について探索し、TMB基質で発色させた。このアッセイで0.2OD超であったクローンを次の試験ラウンドに進めた。陽性培養物をスクリーニング抗原で再試験して分泌を確認し、無関係の抗原(ヒトトランスフェリン)で再試験して非特異的mAbを除去し、偽陽性を除外した。抗体捕捉ELISAにより目的とする全クローンにアイソタイピングを実施して、それらがIgGアイソタイプであるのか、またはIgMアイソタイプであるのかを判定した。また、目的とする全クローンを間接ELISAにより他の環状ペプチド-BSAコンジュゲートおよび直鎖状ペプチド-BSAコンジュゲートで試験して、交差反応性を評価した。
簡潔に述べれば、ELISAプレートを4℃の炭酸塩コーティング緩衝液(pH9.6)O/N中0.1ug/ウェルのシクロ(CGHHQKG)(配列番号2)コンジュゲートBSA 100uL/ウェルでコートし、脱脂粉乳の3%PBS溶液を用いて室温で1時間ブロックした。一次抗体:37℃で振盪しながら1時間インキュベートした100uL/ウェルのハイブリドーマ上清。二次抗体:37℃で1時間振盪したPBS-Tween中100uL/ウェルの1:10,000ヤギ抗マウスIgG/IgM(H+L)-HRP。全洗浄段階をPBS-Tweenで30分間実施した。基質3,3’,5,5’,-テトラメチルベンジジン(TMB)を50uL/ウェルで加え、暗所で発色させ、等体積の1M HClで停止させた。
ELISAプレートを1)4℃の炭酸塩コーティング緩衝液(pH9.6)O/N中0.1ug/ウェルのシクロ(CGHHQKG)コンジュゲートBSA(配列番号2)100uL/ウェル;2))4℃の炭酸塩コーティング緩衝液(pH9.6)O/N中0.1ug/ウェルの直鎖状CGHHQKGコンジュゲートBSA(配列番号2)100uL/ウェル;または3)4℃の炭酸塩コーティング緩衝液(pH9.6)O/N中0.1ug/ウェルの陰性ペプチド100uL/ウェルでコートした。一次抗体:37℃で振盪しながら1時間インキュベートした100uL/ウェルのハイブリドーマ上清。二次抗体:37℃で1時間振盪したPBS-Tween中100uL/ウェルの1:10,000ヤギ抗マウスIgG/IgM(H+L)-HRP。全洗浄段階をPBS-Tweenで30分間実施した。基質TMBを50uL/ウェルで加え、暗所で発色させ、等体積の1M HClで停止させた。
抗体捕捉実験を用いてハイブリドーマ抗体にアイソタイピングを実施した。捕捉プレートをpH9.6の炭酸塩コーティング緩衝液中、4℃で一晩、100uL/ウェルの1:10,000ヤギ抗マウスIgG/IgM(H&L)抗体でコートした。ブロッキング段階は用いなかった。一次抗体(ハイブリドーマ上清)を加えた(100ug/mL)。二次抗体:37℃で1時間振盪したPBS-Tween中100uL/ウェルの1:5,000ヤギ抗マウスIgGγ-HRPまたは1:10,000ヤギ抗マウスIgMμ-HRP。全洗浄段階をPBS-Tweenで30分間実施した。基質TMBを50uL/ウェルで加え、暗所で発色させ、等体積の1M HClで停止させた。
抗体とAベータモノマーおよびAベータオリゴマーとの結合に関するSPR解析
Aベータモノマーおよびオリゴマー調製
氷冷ヘキサフルオロイソプロパノール(HFIP)にAベータモノマーおよびAベータオリゴマーの調製組換えAベータ40およびAベータ42ペプチド(California Peptide社、ソルトレイクシティ、ユタ州、米国)を溶かした。一晩蒸発させることによりHFIPを除去し、SpeedVac遠心機で乾燥させた。モノマーの調製には、ペプチド薄膜をDMSOで戻して5mMとし、dH2Oでさらに100μMに希釈し、直ちに使用した。5mMのDMSOペプチド溶液を無フェノールレッドF12培地(Life Technologies社、バーリントン、オンタリオ州、カナダ)で希釈して最終濃度100μMとすることによりオリゴマーを調製し、4℃で24時間~7日間インキュベートした。
SPR解析高強度レーザー光および高速光学式走査を用いて結合相互作用をリアルタイムでモニターする分析用バイオセンサーであるMolecular Affinity Screening System(MASS-1)(Sierra Sensors社、ハンブルク、ドイツ)を用いて、全SPR測定を実施した。SPR直接結合アッセイを用いて組織培養上清の一次スクリーニングを実施し、このアッセイでは、High Amine Capacity(HAC)センサーチップ(Sierra Sensors社、ハンブルク、ドイツ)の個々のフローセル上にBSAコンジュゲートペプチド、Aベータ42モノマーおよびAベータ42オリゴマーを共有結合で固定化し、表面に抗体を流した。二次スクリーニングでは、プロテインGで精製したmAbをSPR間接(捕捉)結合アッセイを用いて解析し、このアッセイでは、プロテインA誘導体化センサーチップ(XanTec Bioanalytics社、デュッセルドルフ、ドイツデュッセルドルフ、ドイツ)上に抗体を捕捉し、表面にAベータ40モノマー、Aベータ42オリゴマー、可溶性脳抽出物および脳脊髄液を流した。SPR直接結合アッセイで、HACセンサーチップの個々のフローセル上にAベータ42モノマーおよびAベータ42オリゴマーを共有結合で固定化し、精製mAbを流すことにより抗体の特異性を検証した。
可溶性脳抽出物およびCSF試料のSPR解析
可溶性脳抽出物およびCSFの調製
UBC Alzheimer’s and Related Disorders Clinicで評価した患者からヒトの脳組織およびCSFを採取した。推定ADの臨床診断はNINCDS-ADRDA基準[5]に基づくものである。腰椎穿刺後1時間以内にCSFをポリプロピレンチューブに収集し、処理し、100μLポリプロピレンバイアルに等分し、-80℃で保管する。
SPR解析AD患者4例および同年齢の対照4例の脳抽出物ならびにAD患者9例および同年齢の対照9例のCSF試料をプールし解析した。プロテインA誘導体化センサーチップの別個のフローセル上に精製mAbを捕捉し、表面に希釈試料を180秒間注入し、次いで、緩衝液で120秒間解離を実施し、表面を再生した。マウス対照IgG参照の表面結合およびアッセイ緩衝液の減算により結合応答を二重参照し、異なる試料のグループを比較した。
組織培養上清の一次スクリーニングでは、Aベータ42モノマーおよびAベータ42オリゴマーを直接結合アッセイに用いた。二次スクリーニングでは、Aベータ40モノマーおよびAベータ42オリゴマー、可溶性脳抽出物およびCSF試料を間接(捕捉)結合アッセイに用いた。
一次スクリーニング
次の合成Aベータ42オリゴマーを上記の通りに作製および固定化し、抗体結合応答を解析した。Aベータ42オリゴマーに対する抗体結合応答を環状に対する結合応答と比較した。
Aベータ42オリゴマー結合をさらに検証および確認するため、抗体を共有結合で固定化し、次いで、市販の調製済みの安定なAベータ42オリゴマー(SynAging社、ヴァンドゥーヴル=レ=ナンシー、フランス)を表面に注入した。
ELISA試験では、ハイブリドーマクローンの大部分がシクロペプチドと結合することがわかった。
次のクローンをシクロおよび直鎖状HHQK(配列番号1)化合物に対する結合選択性についてELISAにより試験した。複数のクローンがCGHHQKGコンジュゲートBSA(配列番号2)よりも優先的にシクロ(CGHHQKG)コンジュゲートBSA(配列番号2)と結合した。
ハイブリドーマ上清のELISAプレスクリーニングにより、直鎖状ペプチドと比較して環状ペプチドとの結合の増大を示すクローンを特定した。そのクローンの一部はKLH-エピトープリンカーペプチドに対して反応性であった。これらはさらなる検討から除外した。本明細書に記載されるアイソタイピング法を用いて、クローンの大部分がIgGアイソタイプであることが明らかになった。
表面プラズモン共鳴を用いて、抗体クローンを含有する組織培養上清を環状ペプチド、直鎖状ペプチド、AベータオリゴマーおよびAベータモノマーとの直接結合について試験した。
二次スクリーニング
免疫組織化学
固定も抗原回復も実施していない凍結ヒト脳切片に免疫組織化学を実施した。加湿チャンバ内で無血清タンパク質ブロッキング試薬(Dako Canada社、ミシサガ、オンタリオ州、カナダ)と1時間インキュベートすることにより非特異的結合をブロックした。免疫染色には以下の一次抗体を使用した:マウスモノクローナルアイソタイプ対照IgG1、IgG2aおよびIgG2bならびに抗アミロイドβ6E10(以上、Biolegend社から購入)ならびにシクロペプチドに対して反応性を示す選択した精製クローン。いずれの抗体も1μg/mLで使用した。切片を室温で1時間インキュベートし、TBS-Tで3×5分間洗浄した。西洋ワサビペルオキシダーゼとコンジュゲートした抗マウスIgG(1:1000、ECL社)を切片に添加し、45分間インキュベートし、次いでTBS-Tで3×5分間洗浄した。DAB発色試薬(Vector Laboratories社、バーリントン、オンタリオ州、カナダ)を加え、バックグランド染色に対して所望の標的レベルに達したとき、切片を蒸留水でリンスした。切片をマイヤーのヘマトキシリンで対比染色し、脱水し、カバーガラスをかけた。スライドを光学顕微鏡(Zeiss Axiovert 200M、Carl Zeiss Canada社、トロント、オンタリオ州、カナダ)下で検査し、Leica社のDC300デジタルカメラおよびソフトウェア(Leica Microsystems Canada社、リッチモンドヒル、オンタリオ州)を用いて代表的な画像を20倍および40倍の倍率で記録した。Adobe PhotoshopでLevels Auto Correctionを用いて画像を最適化した。
UBCのClinical Research Ethics Board(C04-0595)から承認を受け、メリーランド大学のBrain and Tissue Bankからヒト脳組織を入手した。UBC Hospital Clinic for Alzheimer’s and Related Disordersで評価した患者からCSFを採取した。この試験はUBCのClinical Research Ethics Boardにより承認を受けたものであり、CSF試料を収集する前に参加者または法律上の近親者から書面による同意を得た。推定ADの臨床診断はNINCDS-ADRDA基準に基づくものとした。腰椎穿刺後1時間以内にCSFをポリプロピレンチューブに収集し、処理し、100μLポリプロピレンバイアルに等分し、-80で保管した。
SPR解析:AD患者の脳抽出物4例および同年齢の対照の脳抽出物4例をプールし解析した。TBS中でホモジナイズした脳試料には前頭皮質のブロードマン第9野が含まれていた。いずれの実験も、高強度レーザー光および高速光学式走査を用いて結合相互作用をリアルタイムでモニターする分析用バイオセンサーである、実施例6に記載のMolecular Affinity Screening System(MASS-1)(Sierra Sensors社、ハンブルク、ドイツ)を用いて実施した。本明細書に記載されるシクロペプチドに対して作製した精製抗体をプロテインA誘導体化センサーチップの別個のフローセル上に捕捉し、表面に希釈試料を180秒間注入し、次いで、緩衝液で120秒間解離を実施し、表面を再生した。マウス対照IgG参照の表面結合およびアッセイ緩衝液の減算により結合応答を二重参照し、異なる試料のグループを比較した。
CSF脳抽出物および免疫組織化学
いくつかのクローンをCSF、可溶性脳抽出物中でのAベータとの結合能について試験し、死体AD脳の組織試料を表9に示す。表9では陽性度がプラス印の数により示されている。
合成オリゴマー結合
共有結合で固定化した抗体との結合について市販の調製済み合成アミロイドベータオリゴマー(SynAging社、ヴァンドゥーヴル=レ=ナンシー)の連続2倍希釈物(7.8nM~2000nM)を試験した。対照抗体mAb6E10の結果を図16Aに示し、マウス対照IgGの結果を図16Bに示す。シクロ(CGHHQKG)(配列番号2)に対して産生させた抗体を用いた結果を図16Cに示す。
ホルマリン固定組織での免疫組織化学
CGHHQKG(配列番号2)に対して産生させた抗体を用いてヒト脳組織を評価した。患者はそれまでに、(i)老人斑および神経原線維濃縮体を示すビルショウスキー銀法、(ii)アミロイドを示すコンゴーレッドならびに(iii)濃縮体を示し老人斑が「神経突起性」であることを確認するタウ免疫組織化学法の3部よりなる方法でアルツハイマー病であることが特徴付けられ診断されていた。この組織を用いて、選択したモノクローナル抗体クローンの斑反応性を試験した。脳組織を10%緩衝ホルマリンで数日間固定し、Sakura VIP組織処理装置でパラフィン処理した。組織切片にマイクロ波による抗原回復(AR)を実施するか、または実施せずに、1μg/mlの抗体で探索した。陽性対照として、汎アミロイドベータ反応性抗体6E10を選択した抗体クローンと同時にインキュベートした。抗体を抗体希釈剤(Ventana社)で希釈し、OptiView DAB(Ventana社)で発色させた。Ventana Benchmark XT IHC染色装置で染色を実施した。Olympus BX45顕微鏡で画像を取得した。画像は神経病理学の専門知識を有する専門の病理学者が盲検的に解析した。
オリゴマー伝播の阻害
チオフラビンT(ThT)結合アッセイを用いてアミロイドベータ(Aβ)凝集に対する抗体の効果を検討することにより、その生物学的機能をin vitroで試験した。Aβ凝集は、予め形成された小さいAβオリゴマーの核によって誘導され、この核を介して伝播し、単量体Aβから可溶性オリゴマー、次いで不溶性線維への全過程には同時に、ベータシート形成の増大が伴う。このことはベンゾチアゾール塩のThTによってモニターすることができ、ThTがベータシートに富む構造に結合すると、その励起および発光の最大値がそれぞれ385nmから450nmおよび445nmから482nmに遷移し、それにより蛍光が増大する。簡潔に述べれば、Aβ1~42(Bachem Americas社、トーランス、カリフォルニア州)を可溶化し、超音波処理し、トリス-EDTA緩衝液(pH7.4)で希釈し、黒色の96ウェルマイクロタイタープレート(Greiner Bio-One社、モンロー、ノースカロライナ州)のウェルに加え、これに等体積のシクロペプチドに対する抗体または無関係のマウスIgG抗体アイソタイプ対照を加え、Aβ1~42ペプチドと抗体のモル比を1:5とした。ThTを加え、プレートを室温で24時間インキュベートし、1時間毎にWallac Victor3v 1420 Multilabel Counter(PerkinElmer社、ウォルサム、マサチューセッツ州)を用いてThT蛍光測定値(440nm励起、486nm発光)を記録した。全ウェルからバックグラウンド緩衝液の蛍光読取り値を減算し、さらに、対応するウェルから抗体単独のウェルの読取り値を減算した。
アルツハイマー病の免疫療法に最適なプロファイルの達成:毒性Aベータオリゴマーに特異的な抗体の合理的作製
コグネイト構造化ペプチドおよび合成AβOを認識することが可能であり、非構造化ペプチド、リンカーペプチドまたはAβモノマーとはほとんどまたは全く結合しないことに基づき、5種類の予測エピトープに対するIgGクローンを66種類選択し精製した。
さらなるスクリーニングにより、対照と比較してAD患者のCSFおよび脳抽出物中の天然の可溶性AβOと優先的に結合する抗体を特定した。AD脳の免疫組織化学的解析により、斑と反応しない抗体クローンを選択することができた。
毒性阻害アッセイ
シクロペプチドに対して産生させた抗体によるAベータ42オリゴマーの毒性の阻害をラット一次皮質ニューロンアッセイで試験することができる。
in vivo毒性阻害アッセイ
シクロペプチドに対して産生させた抗体によるAベータ42オリゴマーの毒性の阻害をマウス行動試験でin vivoで試験することができる。
in vivo伝播阻害アッセイ
Aベータ毒性オリゴマーのin vivoの伝播およびそれに関連する病態を様々なアルツハイマー病(AD)げっ歯類モデルで研究することができる。例えば、ヒトAPPのトランスジェニックマウス(例えば、APP23マウス)またはヒトAPPとPSEN1のトランスジェニックマウス(APPPS1マウス)は高レベルのAベータを発現し、加齢とともに炎症および神経損傷を伴うアミロイド沈着が徐々にみられるようになる。オリゴマー含有脳抽出物の脳内接種によりこの過程を大幅に加速させることができる(13、14)。これらのモデルは、脳内または全身に投与した被験抗体によるAベータオリゴマー伝播の阻害を研究するためのシステムとなる。
CDRシーケンシング
IgG3重鎖とカッパ軽鎖とを有することが明らかになった301-12G11を重鎖および軽鎖のCDRおよび可変領域として選択した。
1)
HHQK(配列番号1)
CGHHQKG、シクロ(CGHHQKG)(配列番号2)
CHHQKG、C-PEG2-HHQKG、シクロC-PEG2-HHQKG(配列番号3)
CGHHQK、CGHHQK-PEG2、シクロ(CGHHQK)-PEG2(配列番号4)
VHHQ(配列番号5)
VHHQKL(配列番号6)
HHQKL(配列番号7)
GHHQKG(配列番号9)
HHQKG(配列番号10)
GHHQK(配列番号11)
VHHQK(配列番号12)
CGHHQKGC(配列番号13)
EVHHQK(配列番号18)
HQKL(配列番号20)
CGHHQKC、シクロ(CGHHQKC)(配列番号17)
2)
HQKLVFFAED(配列番号16)
HHQKLVFFAEDVGSNK(配列番号19)
HQKLV(配列番号21)
HHQKLV(配列番号8)
HQKLVF(配列番号14)
HQKLVFF(配列番号15)
表16
ヒトAベータ1~42
DAEFRHDSGYEVHHQKLVFFAEDVGSNKGAIIGLMVGGVVIA(配列番号32)
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Claims (22)
- HHQK(配列番号1)からなるAベータペプチドと、リンカーと、からなる環状化合物であって、
前記リンカーが、前記AベータペプチドのN末端残基および前記AベータのC末端残基に共有結合しており、
前記リンカーが、アミノ酸GCGもしくはCGCからなる、
環状化合物。 - シクロ(CGHHQKG)(配列番号2)の配列からなる、請求項1に記載の化合物。
- 請求項1または2に記載の環状化合物を含む、免疫原であって、
前記化合物が、担体タンパク質または免疫原性増強物質と結合している、
免疫原。 - 前記担体タンパク質がウシ血清アルブミン(BSA)である、または前記免疫原性増強物質がキーホールリンペットヘモシアニン(KLH)である、請求項3に記載の免疫原。
- 請求項1または2に記載の環状化合物または請求項3または4に記載の免疫原において提示されるHHQK(配列番号1)の立体配座を有するAベータペプチドに特異的におよび/または選択的に結合する、単離された立体配座特異的および/または選択的な抗体であって、Aベータモノマー、Aベータ線維および/または斑よりもAベータオリゴマーに選択的に結合する、抗体。
- 対応する直鎖状ペプチドよりも環状ペプチド中のHHQK(配列番号1)に選択的に結合する、請求項5に記載の抗体。
- 対応する直鎖状化合物に比べて前記環状化合物に対し、あるいはAベータモノマーおよび/またはAベータ線維に比べてAベータオリゴマーに対し、少なくとも2倍、より選択的である、請求項5または6に記載の抗体。
- モノクローナル抗体またはポリクローナル抗体である、請求項5~7のいずれか1項に記載の抗体。
- ヒト化抗体であるか、あるいはFab、Fab’、F(ab’)2、scFv、dsFv、ds-scFv、二量体、ナノボディ、ミニボディ、ダイアボディおよびその多量体から選択される抗体結合フラグメントである、請求項5~8のいずれか1項に記載の抗体。
- 軽鎖可変領域と重鎖可変領域を含む、請求項5~9のいずれか1項に記載の抗体であって、
前記軽鎖可変領域と重鎖可変領域は、融合されているか、または別個の鎖に存在し、
前記重鎖可変領域が、相補性決定領域CDR-H1、CDR-H2およびCDR-H3を含み、前記軽鎖可変領域が、相補性決定領域CDR-L1、CDR-L2およびCDR-L3を含み、
前記CDRのアミノ酸配列が、配列:
CDR-H1 GYSFTSYW(配列番号22)
CDR-H2 VHPGRGVST(配列番号23)
CDR-H3 SRSHGNTYWFFDV(配列番号24)
CDR-L1 QSIVHSNGNTY(配列番号25)
CDR-L2 KVS(配列番号26)
CDR-L3 FQGSHVPFT(配列番号27)
である、
抗体。 - 前記抗体は、a)i)配列番号29で示されるアミノ酸配列;もしくはii)配列番号29と少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、そのCDRの配列が配列番号22、23および24で示される、アミノ酸配列;を含む重鎖可変領域を含む、および/または前記抗体は、b)i)配列番号31で示されるアミノ酸配列;もしくはii)配列番号31と少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、そのCDRの配列が配列番号25、26および27で示される、アミノ酸配列;を含む軽鎖可変領域を含む、あるいは
前記重鎖可変領域は、配列番号29で示されるアミノ酸配列を含む、もしくはこれよりなる、および/または前記軽鎖可変領域は、配列番号31で示されるアミノ酸配列を含む、もしくはこれよりなる、
請求項10に記載の抗体。 - ヒトAベータに対する結合に関して、以下のCDR配列:
CDR-H1 GYSFTSYW(配列番号22)
CDR-H2 VHPGRGVST(配列番号23)
CDR-H3 SRSHGNTYWFFDV(配列番号24)
CDR-L1 QSIVHSNGNTY(配列番号25)
CDR-L2 KVS(配列番号26)
CDR-L3 FQGSHVPFT(配列番号27)
を含む抗体と競合する、請求項5~9のいずれか1項に記載の抗体。 - 請求項5~12のいずれか1項に記載の抗体と、検出可能な標識または細胞毒性物質と、を含むイムノコンジュゲート。
- 請求項5~12のいずれか1項に記載の抗体をコードする核酸、またはベクターに含まれている前記核酸。
- 請求項5~12のいずれか1項に記載の抗体を発現する、細胞。
- 請求項1または2に記載の化合物、請求項3または4に記載の免疫原、請求項5~12のいずれか1項に記載の抗体、請求項13に記載のイムノコンジュゲート、請求項14に記載の核酸または請求項15に記載の細胞を含む、組成物。
- 請求項1または2に記載の化合物、請求項3または4に記載の免疫原、請求項16に記載の組成物、請求項5~12のいずれか1項に記載の抗体、請求項13に記載のイムノコンジュゲート、請求項14に記載の核酸、前記核酸を含むベクターまたは請求項15に記載の細胞を含む、キット。
- 請求項5~9および12のいずれか1項に記載の抗体を作製する方法であって、請求項1または2に記載の環状化合物、請求項3または4に記載の免疫原または前記免疫原を含む組成物をヒトではない対象に投与することと、前記環状化合物または前記免疫原に対して特異的または選択的である抗体および/または当該抗体を発現する細胞を単離することと、を含む方法。
- 生体試料がAベータを含むかどうかを判定する方法であって、
a.前記生体試料を、請求項5~12のいずれか1項に記載の抗体または請求項13に記載のイムノコンジュゲートと接触させること、および
b.抗体複合体の存在を検出すること;
を含む方法。 - Aベータオリゴマーの伝播の阻害に使用するための、あるいはアルツハイマー病および/または他のAベータアミロイド関連疾患を有する対象の治療に使用するための、1)請求項5~12のいずれか1項に記載の抗体または請求項13に記載のイムノコンジュゲート、あるいは前記抗体またはイムノコンジュゲートを含む医薬組成物;2)請求項3または4に記載の免疫原、または前記免疫原を含む医薬組成物;あるいは3)1)の抗体をコードする核酸または前記核酸を含むベクター。
- 治療される対象由来の生体試料が、請求項5~12のいずれか1項に記載の抗体を用いてAベータの有無またはレベルに関して評価されている、請求項20に記載の抗体、イムノコンジュゲート、免疫原、医薬組成物、核酸またはベクター。
- 前記抗体、イムノコンジュゲート、免疫原、組成物または核酸もしくはベクターが脳または中枢神経系の他の部分に直接投与される、請求項20または21に記載の抗体、イムノコンジュゲート、免疫原、医薬組成物、核酸またはベクター。
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