JP4209678B2 - 標的遺伝子の発現を阻害する方法および腫瘍を治療するための医薬 - Google Patents

標的遺伝子の発現を阻害する方法および腫瘍を治療するための医薬 Download PDF

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Description

本発明は、細胞内の少なくとも１つの標的遺伝子の発現を阻害する方法、ならびに腫瘍を治療するための医薬に関する。
２本鎖オリゴリボヌクレオチドによって標的遺伝子の発現を阻害する方法は、ＷＯ ９９／３２６１９に開示されている。この方法は無脊椎動物の細胞内の遺伝子の発現の阻害を目的としている。このため、２本鎖オリゴリボヌクレオチドは、少なくとも２５塩基からなる、標的遺伝子と同一の、配列を示す必要がある。
細胞内の標的遺伝子の発現を阻害する方法ならびに医薬は、ＷＯ ００／４４８９５に開示されている。この方法において、２本鎖構造を有するオリゴリボヌクレオチド（ｄｓＲＮＡ）は、細胞内に導入される。１つのｄｓＲＮＡ鎖は、標的遺伝子と少なくとも部分的に相補性を有する、最大で４９の連続するヌクレオチド対から成る領域を示す。医薬は、所定の標的遺伝子の発現を阻害する少なくとも１つのｄｓＲＮＡを含み、ここで、１つのｄｓＲＮＡ鎖は、標的遺伝子と少なくとも部分的に相補的である。
抗アポトーシスタンパク質Ｂｃｌ−２およびＢｃｌ−ｘＬの発現の増大は、多くの腫瘍の発生および進行に関与していることは、Ｇａｕｔｓｃｈｉ Ｏ．ら、（２００１）Ｊ Ｎａｔｌ Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔ ９３、４６３頁〜４７１頁に開示されている。ヌードマウスにおいて生じさせたインビボのデータは、Ｂｃｌ−２およびＢｃｌ−ｘＬ遺伝子の発現に対して指向された１本鎖アンチセンスオリゴリボヌクレオチドによる組み合わせ治療が、腫瘍の成長を約５０％から６０％減少し得たことを証明している。このために、１日に、体重１ｋｇあたり２０ｍｇのオリゴリボヌクレオチドでの治療が必要であった。大量のオリゴリボヌクレオチドが必要とされるので、この治療は比較的高価である。それに加えて、使用された１本鎖オリゴリボヌクレオチドは、血清中で速やかに分解され得る。アンチセンスオリゴリボヌクレオチドは、少なくとも標的細胞にある標的遺伝子のｍＲＮＡの量と同じ量で、最終的に標的細胞に導入されなければならないので、大量のオリゴリボヌクレオチドが必要である。この方法は、腫瘍の減縮ではなく、単に腫瘍の成長の減少を達成したにすぎない。
ＷＯ ００／４４８９５ Ｇａｕｔｓｃｈｉ Ｏ．ら、（２００１）Ｊ Ｎａｔｌ Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔ ９３、４６３頁〜４７１頁
本発明の課題は、最先端技術の、これらの欠点を取り除くことである。特に腫瘍細胞の増殖を、効果的かつ経済的に阻害することができる方法および医薬を開示する。
本発明の条件に従って、腫瘍細胞中のアポトーシスを阻害もしくは妨害する少なくとも１つの標的遺伝子の発現を阻害する方法であって、少なくとも１つの２本鎖リボ核酸（ｄｓＲＮＡ）が、上記の腫瘍細胞へと導入される方法が意図される。ここで、上記の２本鎖リボ核酸のＳ１鎖は、標的遺伝子に少なくとも部分的に相補的である２５未満の連続したヌクレオチドからなる領域を含む。「標的遺伝子」という用語は、腫瘍細胞内の２本鎖ＤＮＡのＤＮＡ鎖であって、すべての転写される領域を含む転写のためのマトリックスとして供されるＤＮＡ鎖に相補的であるＤＮＡ鎖を意味するものと理解される。そのような標的遺伝子は、一般的にセンス鎖である。従って、Ｓ１鎖は、標的遺伝子の発現の間に形成されるＲＮＡ転写物、またはそのプロセシング産物（例えば、ｍＲＮＡ）に相補的であり得る。リボ核酸が、１本または２本のリボ核酸鎖からなり、２本鎖構造を示す場合、ｄｓＲＮＡが存在する。すべてのｄｓＲＮＡヌクレオチドが、ワトソン−クリックの塩基対形成を示すわけではない。特に、単一の非相補的塩基対は、この方法を用いて全く干渉を受けない。塩基対の可能な最大数は、ｄｓＲＮＡに含まれる最も短い鎖のヌクレオチドの数である。「〜に導入される」という用語は、細胞への取り込みという意味にとらえられる。取り込みは細胞自体を用いて起こり得る。しかしながら、取り込みはまた、補助的な薬剤または装置によっても仲介され得る。
驚くべきことに、この方法を用いると、伝統的なアンチセンス技術を用いて匹敵する結果を達成するためにオリゴヌクレオチドを使用する場合に必要であるよりも、かなり少量のオリゴリボヌクレオチドで、腫瘍細胞の増殖が阻害できることが示された。これらに加えて、本発明の主題であるこの方法を使うことによって、腫瘍細胞の集団において集団の増殖を減少させるだけでなく、腫瘍細胞の全数も減少させるまでアポトーシスを誘導することが可能である。正常の細胞（すなわち、形質転換されていない細胞）を用いる方法を実装すると、コントロールのｄｓＲＮＡを用いて実施された方法と比較して、アポトーシスの比率は、有意に増加しない。コントロールｄｓＲＮＡは、上記細胞中に存在する遺伝子の１つに相補的な鎖を示さないｄｓＲＮＡである。
ｄｓＲＮＡの少なくとも１つの末端が、１〜４個のヌクレオチド、特に２または３個のヌクレオチドからなる１本鎖のオーバーハングを示す場合、特に有利であることが示された。少なくとも１つの末端に１本鎖オーバーハングを有しないｄｓＲＮＡとの比較において、このような（オーバーハングを有する）ｄｓＲＮＡは、標的遺伝子の発現阻害において特に優れた効果を示す。ここで、１つの末端とは、５’および３’末端が存在するｄｓＲＮＡ領域である。従って、Ｓ１鎖のみからなるｄｓＲＮＡは、ループ構造と１つの末端のみを示す。Ｓ１鎖およびＳ２鎖からなるｄｓＲＮＡは、２つの末端を示す。ここで、１つの末端は、Ｓ１鎖上の鎖末端およびＳ２鎖上の鎖末端に各々の場合において形成される。
１本鎖オーバーハングは、好ましくは、Ｓ１鎖の３’末端に配置される。この１本鎖オーバーハングの配置により、本方法の効力がさらに増大する。１つの例において、ｄｓＲＮＡは、１つの末端にのみ、特にＳ１鎖の３’末端に位置する末端に１本鎖オーバーハングを示す。２個の末端を示すｄｓＲＮＡにおいて、他の末端は、平滑末端（すなわちオーバーハングが存在しない）である。このようなｄｓＲＮＡは、種々の細胞培地中で、および血清中で特に安定であることがわかった。
相補的なｄｓＲＮＡ領域は、１９〜２４個のヌクレオチド、好ましくは２１〜２３個のヌクレオチド、特に２２個のヌクレオチドを有し得る。この構造を有するｄｓＲＮＡは、標的遺伝子の阻害において特に効果的である。ｄｓＲＮＡのＳ１鎖は、３０個未満のヌクレオチド、好ましくは２５個未満のヌクレオチド、特に２１〜２４個のヌクレオチドを有し得る。これらのヌクレオチドの数は、同時に、ｄｓＲＮＡ中で可能な最大の塩基対の数である。
ｄｓＲＮＡの少なくとも一方の末端は、腫瘍細胞における破壊または２本鎖構造の解離に対抗するために、改変され得る。さらに、相補的なヌクレオチド対によって生じる２本鎖構造の結合は、少なくとも１つの他の化学結合、好ましくは２つの他の化学結合によって強められ得る。この化学結合は、共有結合またはイオン性結合、水素結合、疎水性相互作用、好ましくはファンデルワールス相互作用またはスタッキング相互作用、または金属−イオン配位のいずれかによって形成され得る。また、この化学結合は、２本鎖構造においてプリンの代わりにプリンアナログを用いることによっても形成される。
本方法の好ましい実施形態において、標的遺伝子は、Ｂｃｌ−２ファミリー、特にＢｃｌ−２、Ｂｃｌ−ｗ、またはＢｃｌ−ｘＬに属する少なくとも１つの遺伝子である。また、いくつかの遺伝子が標的遺伝子であることも可能である。それゆえ、Ｂｃｌ−２およびＢｃｌ−ｘＬの両方が、標的遺伝子であり得る。Ｂｃｌ−２ファミリーの遺伝子の阻害が、特に良好である。なぜなら、これらの発現の増加は、多くの腫瘍細胞の発生および増殖に関連しているからである。数個の抗アポトーシス遺伝子を発現する腫瘍遺伝子が存在することから、数個の標的遺伝子の阻害が有利である。
ｄｓＲＮＡは、好ましくは、添付の配列表に記載の、配列番号１の配列を有するＳ２鎖と、配列番号２の配列を有するＳ１鎖とからなるか、または配列番号３の配列を有するＳ２鎖と、配列番号４の配列を有するＳ１鎖からなる。このようなｄｓＲＮＡは、特に、Ｂｃｌ−２標的遺伝子の発現の阻害において有効である。腫瘍細胞は、膵臓癌細胞であり得る。ｄｓＲＮＡを腫瘍細胞へと導入するために、ｄｓＲＮＡを取り囲むミセル構造、好ましくはリポソーム、またはｄｓＲＮＡを取り囲むキャプシドが、使用され得る。特に、キャプシドは、天然ウイルスキャプシド、または化学的手段または酵素手段によって生成される合成キャプシド、またはそれから誘導される構造であり得る。
さらに、本発明は、少なくとも１つの標的遺伝子の発現を阻害するための少なくとも１つの二本鎖リボ核酸（ｄｓＲＮＡ）を含有する腫瘍疾患を治療するための医薬に関し、ここで、ｄｓＲＮＡのＳ１鎖は、標的遺伝子に対して少なくとも部分的に相補的な２５個未満の連続したヌクレオチドからなる領域を有する。ここで、標的遺伝子は、それが発現することによって、腫瘍細胞でのアポトーシスを阻害または阻止する遺伝子である。医薬の投与量は、少なくとも１つの標的遺伝子の発現が、阻害され得るようなものである。驚くべきことに、そのような医薬は、非常に低用量で使用され得ることが示されている。１日当たり、１ｋｇ体重当たり５ｍｇのｄｓＲＮＡの投与量は、腫瘍細胞での標的遺伝子の発現の阻害または完全な抑制に十分である。このような投与量では、副作用は大幅に回避される。
好ましくは、ｄｓＲＮＡの少なくとも一端は、１〜４個、特に２個または３個のヌクレオチドからなる一本鎖のオーバーハングを有する。一本鎖のオーバーハングは、Ｓ１鎖の３’末端に位置していてもよい。ｄｓＲＮＡが、一端のみに一本鎖のオーバーハングを有する場合、特にＳ１鎖の３’末端に一本鎖のオーバーハングを有する場合、特に有利である。このようなｄｓＲＮＡは、体内で特に安定であることが実証されている。このｄｓＲＮＡは、両端に一本鎖のオーバーハングを有するｄｓＲＮＡに比べ、血液中での排出または分離が遅い。これが低投与量を可能にする。
相補的な領域は、１９〜２４個、好ましくは２１〜２３個、特に２２個のヌクレオチドを発現してもよい。Ｓ１鎖は、３０個未満、好ましくは２５個未満、そして特に２１〜２４個のヌクレオチドを有し得る。一実施形態において、ｄｓＲＮＡの少なくとも一端は、腫瘍細胞内での破壊または分離に対抗するために修飾される。相補的なヌクレオチド対によって生じる二本鎖構造の結合は、少なくとも１つ、好ましくは２つのさらなる化学結合によって増強されてもよい。
標的遺伝子は、好ましくは、Ｂｃｌ−２ファミリー、特にＢｃｌ−２、Ｂｃｌ−ｗまたはＢｃｌ−ｘＬのうちの少なくとも１つに属する遺伝子である。Ｂｃｌ−２標的遺伝子およびＢｃｌ−ｘＬ標的遺伝子の両方に特異的なｄｓＲＮＡを発現する医薬は、特に効果的である。
ｄｓＲＮＡは、添付の配列表に基づく配列番号１を有するＳ２鎖および配列番号２を有するＳ１鎖から構成されるか、または配列番号３を有するＳ２鎖および配列番号４を有するＳ１鎖から構成されていてもよい。この医薬で治療され得る腫瘍疾患は、膵臓ガンであり得る。膵臓ガンに対して十分な成功率がある治療法は現在存在していない。約３％という５年間の生存率は、全てのガンの中で最も低い。ｄｓＲＮＡは、溶液中に存在するか、またはミセル構造、好ましくはリポソーム、もしくはカプシドによって囲まれて医薬中に存在していてもよい。ミセル構造またはカプシドは、腫瘍細胞中でのｄｓＲＮＡの取り込みを促進し得る。医薬は、吸入、経口摂取または注射、特に静脈内もしくは腹腔内注射、または腫瘍細胞への直接注射に適した調製物であり得る。吸入または注射に適した調製物は、最も単純には、ｄｓＲＮＡおよび生理学的耐容性を有する緩衝溶液、特にリン酸緩衝生理食塩水から構成され得る。驚くべきことに、このような緩衝液に単に溶解したｄｓＲＮＡは、特別なビヒクル中にパッケージする必要もなく、腫瘍細胞に取り込まれ、標的遺伝子の発現を阻害する。
図面を参照して、本発明の実施例について説明する。
ヒト膵臓ガン細胞系ＹＡＰ Ｃの細胞（微生物および細胞培養物のドイツコレクション、Ｂｒａｕｎｓｃｈｗｅｉｇ、（Ｎｏ．ＡＣＣ３８２）から入手可能）は、１０％ ウシ胎仔血清（ＦＣＳ）および１％ ペニシリン／ストレプトマイシンを含むＲＰＭＩ １６４０培養液（Ｂｉｏｃｈｒｏｍ Ｃｏｒｐ．，Ｂｅｒｌｉｎ）中で、３７℃、５％ ＣＯ2の一定条件下で培養した。ヒト表皮の線維芽細胞を、１０％ ＦＣＳおよび１％ ペニシリン／ストレプトマイシンを含むダルベッコＭＥＭ中で、同様の条件で培養した。
トランスフェクションに用いた二本鎖のオリゴリボヌクレオチドは、以下に示す配列（配列表の配列番号１〜配列番号６に指定した）を有する。
ｄｓＲＮＡ １は、ヒトＢｃｌ−２遺伝子の第１の配列に相補的である。

Ｓ２：５’− ｃａｇ ｇａｃ ｃｕｃ ｇｃｃ ｇｃｕ ｇｃａ ｇａｃ ｃ−３’（配列番号１）
Ｓ１：３’−ｃｇ ｇｕｃ ｃｕｇ ｇａｇ ｃｇｇ ｃｇａ ｃｇｕ ｃｕｇ ｇ−５’（配列番号２）

ｄｓＲＮＡ ２は、ヒトＢｃｌ−２遺伝子の第２の配列に相補的である。

Ｓ２：５’− ｇ ｃｃｕ ｕｕｇ ｕｇｇ ａａｃ ｕｇｕ ａｃｇ ｇｃｃ−３’（配列番号３）
Ｓ１：３’−ｕａｃ ｇｇａ ａａｃ ａｃｃ ｕｕｇ ａｃａ ｕｇｃ ｃｇｇ−５’（配列番号４）

ｄｓＲＮＡ ３は、ネオマイシン抵抗性遺伝子の配列に相補的である。

Ｓ２：５’− ｃ ａａｇ ｇａｕ ｇａｇ ｇａｕ ｃｇｕ ｕｕｃ ｇｃａ−３’（配列番号５）
Ｓ１：３’−ｕｃｕ ｇｕｃ ｃｕａ ｃｕｃ ｃｕａ ｇｃａ ａａｇ ｃｇ−５’（配列番号６）
トランスフェクションを、オリゴフェクタミン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐ．，Ｋａｒｌｓｒｕｈｅ）と共に６−ウェルプレートで行った。２５０，０００個の細胞を、各ウェルに配置した。二本鎖のオリゴリボヌクレオチドのトランスフェクションを、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎが推奨するオリゴフェクタミン用のプロトコルに従って行った（データは６−ウェルプレートの１ウェルに関する）。
１０μｌの二本鎖オリゴリボヌクレオチド（０．１〜１０μＭ）を、１７５μｌの添加剤を含まない細胞培養培地で希釈した。３μｌのオリゴフェクタミンを１２μｌの添加剤を含まない細胞培養培地で希釈し、室温で１０分間インキュベートした。希釈したオリゴフェクタミンを、すでに希釈した二本鎖のオリゴヌクレオチドに加え、混合し、そして室温で２０分間インキュベートした。この間、トランスフェクトされるべき細胞を添加剤を含まない細胞培養培地で１回洗浄し、そして８００μｌの新鮮な細胞培養培地を加えた。その後、前述の２００μｌのオリゴフェクタミンｄｓＲＮＡ混合液を、トランスフェクションの最終容量が１０００μｌとなるように各ウェルに添加した。その結果、二本鎖のオリゴリボヌクレオチドの最終濃度は１〜１００μＭとなる。トランスフェクションアッセイでは、３７℃で４時間インキュベートした。その後、３０％ ＦＣＳを含む細胞培養培地を、ＦＣＳの最終濃度が１０％となるように、各ウェルに５００μｌずつ加えた。このアッセイでは、次いで３７℃で１２０時間インキュベートした。
インキュベート後に上清を回収し、細胞をリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で洗浄して、トリプシンを用いて剥離し、そして１００×ｇで１０分間遠心分離した。上清を廃棄し、そして、ペレットを４℃の低浸透圧性のプロピジウムヨウ化物溶液中で３０分間暗所でインキュベートした。次いで、ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ蛍光活性化細胞選別機（ＢＤ ＧｍｂＨ，Ｈｅｉｄｅｌｂｅｒｇ）でフローサイトメトリーを用いて分析を行った。
二本鎖オリゴリボヌクレオチドのｄｓＲＮＡ １およびｄｓＲＮＡ ２は、研究したヒト膵臓ガン細胞において、Ｂｃｌ−２によって仲介されるアポトーシスの阻害を減少させる。アポトーシスを誘導または開始するために、アポトーシスに追加の刺激を与える必要はない。アポトーシス率は、インキュベート時間に依存して上昇する。図１はｄｓＲＮＡ １を用いた結果を示し、図２はｄｓＲＮＡ ２を用いた結果を示す。１２０時間のインキュベート後、未処理のＹＡＰ Ｃ コントロール細胞はわずか３．８％のアポトーシスを示し、二本鎖オリゴリボヌクレオチドを加えずに前述した方法でトランスフェクション処理した細胞（偽トランスフェクション細胞）は、わずか７．１％のアポトーシスを示した。これに対し、１００ｎＭのｄｓＲＮＡでトランスフェクションすることによって、１２０時間のインキュベート後のアポトーシス率は、ｄｓＲＮＡ １でトランスフェクションした場合は３７．２％、ｄｓＲＮＡ ２でトランスフェクションした場合は２８．９％に増加し得た。ｄｓＲＮＡ３でのコントロールトランスフェクションは、最大１３．５％のアポトーシス率をもたらした。これは、偽トランスフェクション細胞と比較しても有意に増加しないことを意味し、そして、ｄｓＲＮＡ １およびｄｓＲＮＡ ２の作用が配列に特異的であることを証明している。
コントロールとして、非形質転換細胞としての表皮線維芽細胞もまた、ｄｓＲＮＡ １およびｄｓＲＮＡ ２でトランスフェクトした。１２０時間のインキュベート後、これらの細胞は、アポトーシス率の有意な増加を示さなかった。
ヒトＢｃｌ−２遺伝子の第１の配列に相補的なｄｓＲＮＡ １を用いたトランスフェクションの１２０時間後の、ヒト膵臓ガン細胞ＹＡＰ Ｃのアポトーシス率（％）を示す図である。 ヒトＢｃｌ−２遺伝子の第２の配列に相補的なｄｓＲＮＡ ２を用いたトランスフェクションの１２０時間後の、ＹＡＰ Ｃ細胞のアポトーシス率（％）を示す図である。 ネオマイシン抵抗性遺伝子の配列に相補的なｄｓＲＮＡ ３を用いたトランスフェクションの１２０時間後の、ＹＡＰ Ｃ細胞のアポトーシス率（％）を示す図である。

Claims (16)

  1. 培養した腫瘍細胞のアポトーシスを阻害または阻止する少なくとも１つの標的遺伝子の発現を阻害する方法であって、少なくとも１つの二本鎖リボ核酸（ｄｓＲＮＡ）が、前記培養した腫瘍細胞中に導入され、ここで当該ｄｓＲＮＡのＳ１鎖は、前記標的遺伝子に対して少なくとも部分的に相補的な１９〜２４個の連続したヌクレオチドからなる領域を有し、前記Ｓ１鎖の３’末端に位置するｄｓＲＮＡの末端のみが、当該Ｓ１鎖の３’末端で１〜４個のヌクレオチドからなる一本鎖オーバーハングを有し、
    前記標的遺伝子が、Ｂｃｌ−２ファミリーに属する少なくとも１つの遺伝子であることを特徴とする、方法。
  2. 前記一本鎖のオーバーハングは、２個または３個のヌクレオチドからなる、請求項１に記載の方法。
  3. 前記ｄｓＲＮＡの少なくとも一端は、前記培養した腫瘍細胞中での破壊また分離に対抗するために修飾される、請求項１または２に記載の方法。
  4. 相補的なヌクレオチド対によって生じる前記ｄｓＲＮＡの結合は、少なくとも１つの他の化学結合によって増加する、請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
  5. 前記ｄｓＲＮＡは、添付の配列表の、配列番号１を有するＳ２鎖および配列番号２を有するＳ１鎖、または配列番号３を有するＳ２鎖および配列番号４を有するＳ１鎖からなる、請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
  6. 前記培養した腫瘍細胞は膵臓ガン細胞である、請求項１〜５のいずれかに記載の方法。
  7. 前記ｄｓＲＮＡは、当該ｄｓＲＮＡを囲むミセル構造、リポソーム、または当該ｄｓＲＮＡを囲むカプシドによって、前記培養した腫瘍細胞中に導入される、請求項１〜６のいずれかに記載の方法。
  8. 腫瘍疾患を治療する医薬であって、腫瘍細胞のアポトーシスを阻害または阻止する少なくとも１つの標的遺伝子の発現を阻害する少なくとも１つの二本鎖リボ核酸（ｄｓＲＮＡ）を含み、前記ｄｓＲＮＡのＳ１鎖は、前記標的遺伝子に対して少なくとも部分的に相補的な１９〜２４個の連続したヌクレオチドからなる領域を有し、前記Ｓ１鎖の３’末端に位置するｄｓＲＮＡの末端のみが、当該Ｓ１鎖の３’末端で１〜４個のヌクレオチドからなる一本鎖オーバーハングを有し、
    前記標的遺伝子が、Ｂｃｌ−２ファミリーに属する少なくとも１つの遺伝子であることを特徴とする、医薬。
  9. 前記一本鎖のオーバーハングは、２個または３個のヌクレオチドからなる、請求項８に記載の医薬。
  10. 前記ｄｓＲＮＡの少なくとも一端は、腫瘍細胞中での破壊また分離に対抗するために修飾される、請求項８または９に記載の医薬。
  11. 相補的なヌクレオチド対によって生じる前記ｄｓＲＮＡの結合は、少なくとも１つの他の化学結合によって増加する、請求項９〜１０のいずれかに記載の医薬。
  12. 前記ｄｓＲＮＡは、添付の配列表の、配列番号１を有するＳ２鎖および配列番号２を有するＳ１鎖、または配列番号３を有するＳ２鎖および配列番号４を有するＳ１鎖からなる、請求項９〜１１のいずれかに記載の医薬。
  13. 前記腫瘍細胞は膵臓ガン細胞である、請求項９〜１２のいずれかに記載の医薬。
  14. 前記ｄｓＲＮＡは、溶液中に存在するか、ミセル構造、リポソーム、もしくはカプシドによって囲まれて医薬の中に存在する、請求項９〜１３のいずれかに記載の医薬。
  15. 前記医薬は、吸入、経口摂取、静脈内注射、腹腔内注射、または腫瘍細胞への直接注射に適した製剤である、請求項９〜１４のいずれかに記載の医薬。
  16. 前記製剤は、ｄｓＲＮＡと生理学的耐容性を有する緩衝液とからなる、請求項１５に記載の医薬。
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