JP2018510890A - インジゴ・ナチュラリス由来のエキス及びそれを調製する方法 - Google Patents
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Abstract
Description
a)抽出工程:インジゴ・ナチュラリス、又は上記で選択された1種若しくは複数の植物の葉及び/若しくは茎を、第1の極性溶媒又は中程度の極性溶媒で抽出して、抽出混合物を得る工程、
b)濾過工程:抽出混合物を濾過して、濾液を得る工程、
c)濃縮工程:濾液を濃縮して、粗製エキスを得る工程、
d)洗浄工程:粗製エキスを、無極性溶媒、及び任意選択により第2の極性溶媒で洗浄して、洗浄混合物を得る工程、並びに
e)濾過工程:洗浄混合物を濾過して、任意選択により例えば従来の乾燥方法による乾燥工程後に、精製エキスを得る工程
を含む。
a)インジゴ・ナチュラリスを、エタノールを用いて還流状態で2〜8時間かけて抽出する工程、
b)65℃以下の温度で混合物を濾過して、濾液を得る工程、
c)濾液を濃縮して、粗製エキスを得、溶媒及び溶媒中にまだ存在する最後に残った成分を完全に除去するために、前記粗製エキスを任意選択により濾過し(水の添加を伴う)、乾燥させる工程、
d)(i)粗製エキスを、ヘキサンで50℃以下の温度において15〜60分間洗浄する工程、
(ii)工程d)(i)で得られた混合物を室温で濾過して、生成物を得、それを任意選択によりエタノール及び水で洗浄する工程、
(iii)工程d)(ii)で得られた生成物を、還流状態においてエタノールで洗浄する工程、並びに
e)工程d)で得られた洗浄混合物を室温で濾過し、得られた生成物を80℃未満の温度で乾燥させて、エキスを得、それを任意選択により微粒子化する工程
を含む方法によって調製される。
(実施例1)
精製インジゴ・ナチュラリスエキスの調製
以下の調製で使用する青黛は、Delong Pharmaceutical社から得られる(インジゴ2.62%及びインジルビン0.284%(実施例8Aに記述されているHPLC方法)及びトリプタントリン0.0046%(実施例8Bに記述されているHPLC方法))。
精製インジゴ・ナチュラリスエキスの調製
実施例1で使用した青黛500gを、アルコール(エタノール)10Lに懸濁させた。混合物を還流状態で2時間撹拌し、次に75℃で濾過した。濾液を減圧下で濃縮して、暗色の固体を得、それをヘキサン260mL中で撹拌し、1時間加熱還流させた。室温に冷却したら、懸濁液を濾過して、暗色の残渣を得た。
精製インジゴ・ナチュラリスエキスの調製
実施例1で使用した青黛500gを、酢酸エチル10Lに懸濁させた。混合物を還流状態で2時間撹拌し、次に熱い状態で濾過した。濾液を減圧下で濃縮して、暗色の固体を得た。粗製エキスをヘキサン250mL中で撹拌し、1時間加熱還流させた。室温に冷却した後、懸濁液を濾過して、暗色の残渣を得た。
精製インジゴ・ナチュラリスエキスの調製
実施例1で使用した青黛500gを、DMF2.1Lに懸濁させた。混合物を50℃で40分間撹拌した。20℃に冷却したら、懸濁液を濾過した。濾液を減圧下で濃縮して、暗色の固体を得、それをヘキサン130mL中で撹拌し、1時間加熱還流させた。20℃に冷却したら、懸濁液を濾過して、暗色の残渣を得た。
精製インジゴ・ナチュラリスエキスの調製
実施例1で使用した青黛500gを、DMF3Lに懸濁させた。混合物を30℃で1時間撹拌し、次に濾過した。濾液を減圧下で濃縮して、暗色の固体を得、それをヘキサン230mL中で撹拌し、1時間加熱還流させた。20℃に冷却したら、懸濁液を濾過して、暗色の残渣を得た。
精製インジゴ・ナチュラリスエキスの調製
青黛100gを、還流条件において92%エタノール(92%水性エタノール)2Lで2時間かけて抽出した。完了したら、混合物を、熱い状態でAF6フィルタ(ブフナー)により濾過して、濃青色から赤色の溶液を濾液として得た。この濾液を真空下で還元して乾燥させて、乾燥残渣2.4gを得た。この残渣を、ヘキサン120mLにより還流状態で1時間かけて洗浄した。完了したら、混合物を2時間かけて室温に冷却し、次に真空下で濾過して、暗赤色の精製エキス312.9mgを得た。
微粒子化工程
先の実施例で得られた精製インジゴ・ナチュラリスエキスの微粒子化工程を、以下の機器を用いて実施する。
- 微粒子化装置:スパイラルジェットミル直径200
- 供給装置:この機器は、粉末を投入して微粒子化装置に供給するために使用される。投入は、2つのスクリューの働きで行われる。このシステムによって、規則的な流れが得られる。
- リング圧力:6バール
- 噴射器圧力:3バール
- 粉末供給流:25kg/時
分析のための分析方法
A-逆相HPLC方法:
インジゴ及びインジルビンを同時に定量化するための新しい逆相HPLC方法を、欧州薬局方(Pharmeuropa Vol.20、No.1、2008年1月、118〜119頁)、中国薬局方(2010年度版、185頁)及び文献(Chen LW、Liao W、Yang M. Jia DY、He P、Chen SM、Fu CM. Determination of indigo and indirubin in Indigo Naturalis by HPLC. West China Journal of Pharmaceutical Sciences、2008年、23(6)、714〜715頁;Liu ZY、Su ZT、Gao YN、Yang M. Simultaneously determination of indigo and indirubin in Indigo Naturalis by HPLC. China Pharmacist 2010年、13(3)、324〜326頁)に基づいて確立した。
また、トリプタントリンを定量化するための新しいHPLC分析方法を確立した。青黛とその濃縮生成物である精製エキスの両方におけるトリプタントリンの濃度が低いので、試料濃度を調整するのがよい。分析は、Waters Symmetry C18カラム(5μm、3.9×150mm)により25℃で実施した。移動相は、メタノール(0.05%FAを含有、溶出剤B)及び水(0.05%FAを含有、溶出剤A)であった。勾配溶出プロファイルは、以下の通りであった。50%Bの均一濃度(12分)、50%〜100%B(1分)、100%Bの均一濃度(6分)及び100%〜50%B(1分)。流速は、1.0mL/分であり、カラム温度は、25℃であった。注入体積は、10μLであった。検出波長は、254nmであった。
精製インジゴ・ナチュラリスエキスの長期安定性
実施例6に従って調製した精製インジゴ・ナチュラリスエキスを、安定状態にしておいた。調製したエキスのHPLCの特徴は、以下の通りである。80.16%インジルビン、10.95%インジゴ、0.64%トリプタントリン。
インビトロアッセイ及び結果
A.一般試薬:
DMSO、Sigma-Aldrich社、ミズーリ州、セントルイス、カタログ番号D2650
ヤヌスキナーゼ1(JAK1)、Life technologies(商標)社、カタログ番号PV4774
ヤヌスキナーゼ1(JAK2)、Life technologies(商標)社、カタログ番号PV4210
ヤヌスキナーゼ1(JAK3)、Life technologies(商標)社、カタログ番号PV3855
CDK1、Life technologies(商標)社、カタログ番号PV3292
CDK2、Life technologies(商標)社、カタログ番号PV3267
CDK5、Life technologies(商標)社、カタログ番号PV3000
Z'-LYTE(登録商標)キナーゼアッセイキット-チロシン6ペプチド、Life technologies(商標)社、カタログ番号PV4122
Z'-LYTE(登録商標)キナーゼアッセイキット-Ser/Thr 12ペプチド、Life technologies(商標)社、カタログ番号PV3673
ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)、Life technologies(商標)社、カタログ番号C11965
RMPI-1640、Life technologies(商標)社、カタログ番号A10491
ウシ胎仔血清(FBS)、Life technologies(商標)社、カタログ番号10099141
Epilife(登録商標)培地、Life technologies(商標)社、カタログ番号M-EPI-500-CA
HKGS、Life technologies(商標)社、カタログ番号S-001-5
組換えヒトIL-2、Peprotech社、カタログ番号200-02
組換えヒトIL-6、Peprotech社、カタログ番号200-06
組換えヒトIL-3、Peprotech社、カタログ番号200-03
組換えヒトGM-CSF、Peprotech社、カタログ番号300-03
組換えヒトIL-22、Peprotech社、カタログ番号200-22
組換えヒトTNFα、R&D社、カタログ番号210-TA-010
リポ多糖(LPS)、Calbiochem社、カタログ番号437650
抗ヒトCD3 Functional Grade(登録商標)精製(aCD3)(クローン:OKT3) eBioscience社、カタログ番号16-0037-85
抗ヒトCD28 Functional Grade(登録商標)精製(aCD28)(クローン:CD28.2)、eBioscience社、カタログ番号16-02897-85
ホスホ(phospo)-STAT3(Y705)抗体(ウサギ-抗ヒト)、Cell Signaling Technology社、カタログ番号9145
ホスホ-STAT5(Y694)抗体(ウサギ-抗ヒト)、Cell Signaling Technology社、カタログ番号9359
アクチン抗体(マウス-抗ヒト)、Sigma-Aldrich社、カタログ番号A1978
ヤギ抗ウサギIgGAlexa 488、Life technologies(商標)社、カタログ番号A11034
ヤギ-抗ウサギIROYE 800CW、Li-COR Bioscience社、カタログ番号926-32211
ヤギ-抗マウスIROYE 800CW、Li-COR Bioscience社、カタログ番号926-32210
ヒトIFNγ ELISAキット、R&D社、カタログ番号DY285
ヒトTNFα ELISAキット、R&D社、カタログ番号DY210
ヒトIL-1β ELISAキット、R&D社、カタログ番号DY201
ヒトIL-6 ELISAキット、R&D社、カタログ番号DY206
チアゾリル青色テトラゾリウム青色(MTT)、Sigma-Aldrich社、カタログ番号M2128
CellTiter-Glo(登録商標)発光細胞生存率アッセイ、Promega社、カタログ番号G7572
CytoTox-ONE(商標)均質膜完全性アッセイ、Promega社、カタログ番号G7891
ルシフェラーゼアッセイ、Promega社、カタログ番号E4550
iBlot(登録商標)転写スタック、レギュラー(ニトロセルロース)、Life technologies(商標)社、カタログ番号IB3010-01
ヨウ化プロピジウム、Sigma-Aldrich社、カタログ番号P4170
リボヌクレアーゼA、Sigma-Aldrich社、カタログ番号R6513
1×PBSバッファー(1L):NaCl8.0g、KCl0.2g、Na2HPO4-12H2O3.58g、KH2PO40.24g、MilliQ ddH2O 1Lに溶解、pHを7.4に調整。
1×SDSローディングバッファー:50mMのTris-HCl/pH8.8、2%SDS、10%グリセロール、0.1%ブロモフェノールブルー、100mMのDTT。
Shanghai Institutes for Biological Sciences(SIBS)から購入したヒト肝細胞癌細胞株、HepG2(中国、上海、カタログ番号TCHu 72)を、10%FBSを含有するDMEM中で培養した。
JAK1/2/3キナーゼアッセイは、組換えヒトJAK1/2/3及びZ'-LYTE(登録商標)キナーゼアッセイキット-チロシン6ペプチドを使用してインビトロで実施した。CDK1/2/5キナーゼアッセイは、組換えヒトCDK1/2/5及びZ'-LYTE(登録商標)キナーゼアッセイキット-Ser/Thr 12ペプチドを使用してインビトロで実施した。すべての反応(20μL)を、4%DMSO溶液中、2.5μLの正の対照(JAKキナーゼアッセイではCP-690550及びCDKキナーゼアッセイではスタウロスポリン)又は試験物質(すなわち、試料)、5μLのキナーゼ/ペプチド基質混合物又はホスホ-ペプチド溶液、2.5μLのATP溶液(100μM)又は1.33×キナーゼバッファーを添加することによって開始した。384ウェルアッセイプレート(Corning社、カタログ番号3575)を混合し、室温で1時間インキュベートした。次に、展開溶液5μLを各ウェルに添加し、混合し、室温で更に1時間インキュベートした。次に、キナーゼ反応を、停止試薬5μLを添加することによって停止させた後、Perkin-Elmer Victor III(Perkin-Elmer Life Sciences社、マサチューセッツ州、ボストン)プレートリーダーを使用して、450nm及び520nmの蛍光のものを記録した。
IL-6誘発性STAT3リン酸化のために、HepG2を、96ウェルプレートに、無血清DMEM培地中1ウェル当たり5.4×103個の細胞で播種して、37℃、5%CO2で終夜置いた。CP-690550又は試験物質と共に30分間インキュベートした後、細胞を、100ng/mLのヒト組換えIL-6(1:10)を各ウェルに添加することによって15分間刺激した。
HEKaを、6ウェルプレートに2×105個の細胞/ウェルで播種し、37℃、5%CO2で終夜置いた。試験物質と共に30分間インキュベーションした後、細胞を、100ng/mLのIL-22で30分間刺激した。
レポーター遺伝子アッセイのために、293/NFκB-Lucを、96ウェルプレートに1ウェル当たり4×104個の細胞で播種して終夜置いた。アンドログラホリド(LGT)又は試験物質と共に30分間インキュベートした後、細胞を、100ng/mLのTNFα(1:10)を各ウェルに添加することによって6時間刺激した。細胞溶解液は、培地を除去し、溶解バッファーを添加することによって調製した。5×体積のルシフェラーゼアッセイ試薬を各ウェルに添加した後、プレートを読み取った。発光を、Perkin-Elmer Victor IIIプレートリーダー(Perkin-ElmerLife Sciences社、米国、マサチューセッツ州、ボストン)を使用して記録した。
初代T細胞を、96ウェルプレートに8×104個の細胞/ウェルで播種した。試験物質を培養物に添加し、37℃、5%CO2でインキュベートした。30分後、各ウェル中の細胞懸濁液を、CD3(1μg/mL)及びCD28(5μg/mL)で被覆した別の96ウェルプレートに移し、37℃で5%CO2を用いて22時間インキュベートした。培地を除去し、アッセイを行うまで-80℃で保存した。IFNγ濃度を、商業用ELISAキット(R & D Systems社)を使用して、製造者の指示に従って決定した。
HaCaTを、96ウェルプレートに4×104個の細胞/ウェルで播種して終夜置いた。次に、スタウロスポリン(Stausporine)又は試験物質を、培養物に添加し、37℃、5%CO2で72時間インキュベートした。培地を除去した後、96ウェルプレート中の細胞を、MTT100μL(1ウェル当たり10%FBSを含有するDMEM中0.5mg/mL)に曝露し、37℃、5%CO2で3時間インキュベートした。その後、上清を除去し、DMSO150μLを各ウェルに添加した。プレートを、暗室中で10分間インキュベートし、492nmにおける吸光度を、Multiskan MK3マイクロプレートリーダー(Thermo Life Sciences社、中国、香港)を使用してすぐに記録した。
CellTiter-Glo(登録商標)発光細胞生存率アッセイキットを使用して、細胞生存率を調査した。HEKaを、96ウェルの不透明壁プレートに1×104個の細胞/ウェルで播種して終夜置いた。次に、ジトラノール又は試験物質を培養物に添加し、37℃、5%CO2で48時間インキュベートした。細胞を、各ウェル中に存在する細胞培養培地の体積と等しいCellTiter-Glo(登録商標)試薬で溶解させ、内容物を2分間混合して、細胞溶解を誘発した。プレートを室温で10分間インキュベートして、発光シグナルを安定化した。発光を、Perkin-ElmerVictor IIIプレートリーダー(Perkin-Elmer Life Sciences社、米国、マサチューセッツ州、ボストン)を使用して記録した。
乳酸デヒドロゲナーゼ(LDH)放出アッセイキットを使用して、細胞傷害性を調査した。HEKaを、96ウェルの不透明壁プレートに4×104個の細胞/ウェルで播種して終夜置いた。次に、ジトラノール又は試験物質を培養物に添加し、37℃において5%CO2の下で24時間インキュベートした。上清及び細胞溶解液を調製した。上清又は細胞溶解液の体積に等しい1×体積のCytoTox-ONE(商標)試薬を、各ウェルに添加した後、30秒間混合し、25℃で10分間インキュベートした。上清又は細胞溶解液の50%体積に等しい停止溶液を、各ウェルに添加して反応を停止させ、SpectraMax M2(Molecular Devices社、米国、カリフォルニア州、サニーベール)を使用して、560nmの励起波長及び590nmの発光波長を有する蛍光を記録した。
炎症促進性サイトカイン及びケモカインは、乾癬の病変形成において重要な役割を果たす。NFκBは、明らかに、炎症促進性サイトカイン及びケモカイン遺伝子発現の最も重要な調節因子の1つである。したがって、TNFα依存性NFκB活性化に対する青黛及びその精製エキスの阻害効力を、HEK293/NFκB-Lucにおいて調査した。Table 1(表1)に示されている通り、TNFαによって、NFκB依存性ルシフェラーゼ発現を刺激し、トリプテリジウム(Tripterygium)グリコシドでブロックされたNFκB活性化により、細胞を濃度依存方式で前処理した。インジゴ・ナチュラリス精製エキスは、実験条件で、TNFα依存性NFκB活性化に対してマイクログラム/gの活性を有していた(Table 1(表1)参照)。
すべてのIC50値を、ID Business Solutions社(英国、ギルフォード)製のXlfit(商標)ソフトウェア(バージョン2.0)を使用することによって決定した。バックグラウンドを、DMSOだけで処理した細胞を含む培養物中で定義付け、IC50算出のために差し引いた。
インジゴ・ナチュラリス精製エキスのいくつかのインビトロアッセイの結果を、以下のTable 2(表2)に示す。ここでインジゴ・ナチュラリスAは、Delong Pharmaceutical社から得たものである(インジゴ2.62%、インジルビン0.284%、トリプタントリン0.0046%)。
インビボアッセイ及び結果
A.材料及び方法
動物
Shanghai SLC AnimalCenter社から購入したBALB/cマウス、雄性、体重19〜22g。
室温:24±1℃
室内の相対湿度:40〜70%
明サイクル:蛍光で12時間の明(8:00〜20:00)、12時間の暗
動物飼育:マウス4匹/ケージ
食餌:食餌は摂取自由(照射済み、Shanghai SLAC Laboratory Animal社、中国)
水:現地供給による水道水は摂取自由(最初に都市用水をMolanimal超純水機によって濾過した)
MJ Research PTC-200 Peltierサーマルサイクラー(PTC DNA Engine(商標)システムのためのAlpha Unit(商標)ブロックアセンブリ)
Applied Biosystems 7500リアルタイムPCRシステム
デジマチックマイクロメータキャリパー:日本、ミツトヨ社。精度:0.001mm
組換えマウスIL-22(rmIL-22)、Novoprotein社(sinobio)、カタログC047、ロット0375351
大容量cDNA逆転写キット、Applied Biosystems社、パート番号:4368813、ロット:0909069
Thermo Scientific ABsolute SYBR Green Rox Mix、Thermo Scientific社、カタログ:AB-1163/A、ロット:0911/16
Protopic(登録商標)(タクロリムス、FK506)、0.1%軟膏、アステラス富山社、富山技術センター、H20100079、ロット:028680。
異なる濃度の試験試料、ビヒクル、又は0.1%のFK506軟膏を、モデルを誘発して1時間後に1%で局所投与し、次に1日目から11日目まで、毎日1日2回投与した。試験物質の投与の初日を、0日目とみなした。
局所適用、b.i.d.
単独の、又は組換えマウスIL-22(eBiosience社)100ng若しくは500ngを含有するPBS20μLの皮内注射を、30ゲージ針を使用して2日毎に11日間、麻酔下のマウスの耳に投与した。耳の厚さを、注射前の0日目及びその後注射のない日に測定した。耳の測定を、デジマチックマイクロメータキャリパー(ミツトヨ社)を使用して、耳の中心で行った。
耳を剖検で収集し、10%緩衝化ホルマリンリン酸(buffered formalin phosphate)で固定し、パラフィンに包埋し、切片を作り、ヘマトキシリン/エオシン(H&E)で染色した。顕微鏡用の切片を、病変の数及び重症度によって類別した。
耳の厚さデータの結果を、平均±S.E.Mとして表す。耳の膨潤のAUCを、0〜11日目の耳の厚さデータによって算出し、反復測定ANOVA法によって、JMP(登録商標)ソフトウェアを用いて分析した。サイトカインタンパク質及び遺伝子発現データを、一元配置ANOVAで評価した後、事後分析のためにスチューデントt試験を行った(有意性レベルは、p<0.05に設定した)。
図3を参照されたい。
インジゴ・ナチュラリス精製エキスのいくつかのインビボアッセイの結果を、Table 3(表3)に示す。
Claims (18)
- インジゴ・ナチュラリスから、又はタイワンコマツナギ、リュウキュウアイ(別名Strobilanthes cusia (Nees))、タデアイ(別名Polygonum tinctorium Aiton、P. tinctorium Lour.)及びタイセイ(別名Isatis indigotica Fort.)からなる群から選択される1種若しくは複数のインジゴ含有植物の葉及び/若しくは茎から、精製エキスを調製する方法であって、
a)抽出工程:インジゴ・ナチュラリス又はその植物の葉及び/若しくは茎を、極性溶媒又は中程度の極性溶媒で抽出して、抽出混合物を得る工程、
b)濾過工程:抽出混合物を濾過して、濾液を得る工程、
c)濃縮工程:濾液を濃縮して、粗製エキスを得る工程、
d)洗浄工程:粗製エキスを、無極性溶媒、及び任意選択により第2の極性溶媒で洗浄して、洗浄混合物を得る工程、並びに
e)濾過工程:洗浄混合物を濾過して、任意選択による乾燥工程後に精製エキスを得る工程
を含む、方法。 - 抽出工程a)で使用される溶媒が、ジメチルホルムアミド、酢酸エチル、エタノール、ジメチルスルホキシド、ジクロロメタン、テトラヒドロフラン、ジメチルアセトアミド、アセトン、2-ブタノン、アセトニトリル、酢酸イソプロピル、2-メチルテトラヒドロフラン、メチルtert-ブチルエーテル、水、メタノール、クロロホルム、テルペン及びそれらの組合せからなる群から選択される、請求項1に記載の方法。
- 抽出工程a)で使用される溶媒が、好ましくはジメチルホルムアミド、酢酸エチル、エタノール、ジメチルスルホキシド、ジクロロメタン、テトラヒドロフラン、ジメチルアセトアミド、アセトン、2-ブタノン、アセトニトリル、酢酸イソプロピル、2-メチルテトラヒドロフラン、メチルtert-ブチルエーテル、メタノール、クロロホルム、テルペン及びそれらの組合せからなる群から選択される有機溶媒である、請求項1又は2に記載の方法。
- 洗浄工程d)で使用される溶媒が、水、5〜8個の炭素原子を有するアルカン、2〜6個の炭素原子を有するアルコール及びそれらの組合せからなる群から選択される、請求項1から3のいずれか一項に記載の方法。
- 洗浄工程d)及び濾過工程e)が、精製エキスを得るまで少なくとも1サイクル実施される、請求項1から4のいずれか一項に記載の方法。
- 洗浄工程d)及び濾過工程e)が、2サイクルで実施される、請求項1から5のいずれか一項に記載の方法。
- 抽出工程a)で使用される溶媒が、エタノール又は水性エタノールであり、洗浄工程d)で使用される溶媒が、ヘキサン、ヘプタン、水、エタノール及びそれらの組合せからなる群から選択され、好ましくは洗浄工程d)で使用される溶媒が、ヘキサンである、請求項1から6のいずれか一項に記載の方法。
- 無極性溶媒及び第2の極性溶媒が、洗浄工程d)で使用され、好ましくはそれぞれヘキサン及びエタノールである、請求項1から7のいずれか一項に記載の方法。
- 請求項1から8のいずれか一項に記載の方法によって得ることができる、精製エキス。
- 成分としてのインジルビンと、任意選択によりインジゴ、トリプタントリン及びチンダイノンのうちの1種又は複数とを含む、精製エキス。
- 成分としてのインジルビンを、精製エキスの少なくとも65%(w/w)の量、好ましくは精製エキスの65〜90%(w/w)の量で含む、精製エキス。
- 成分としてのインジゴを、好ましくは精製エキスの0.1〜15%(w/w)の量で更に含む、請求項10又は11のいずれか一項に記載の精製エキス。
- 成分としてのトリプタントリンを、好ましくは精製エキスの0.1〜5%(w/w)の量で更に含む、請求項10から12のいずれか一項に記載の精製エキス。
- 成分としてのチンダイノンを、好ましくは精製エキスの0.1〜5%(w/w)の量で更に含む、請求項10から13のいずれか一項に記載の精製エキス。
- インジルビン、インジゴ、トリプタントリン及びチンダイノンのうちの2種以上の成分が、精製エキスの90%〜99%(w/w)の量で存在する、請求項10から14のいずれか一項に記載の精製エキス。
- 請求項10から15のいずれか一項に記載の精製エキス、及び薬学的に許容される担体を含む、医薬組成物。
- ケラチノサイトの増殖若しくは分化を阻害し、又は真皮及び上皮への単核細胞の浸潤を阻害し、又は過形成性血管をもたらす血管変化を阻害し、又は内皮細胞に対する接着分子の上方調節を阻害するのに使用するための、請求項10から15のいずれか一項に記載の精製エキス。
- 乾癬、炎症性皮膚状態、爪甲真菌症、皮膚がん、異常角質化誘発性疾患、皮膚老化、膿疱性皮膚症、及びCTCLからなる群から選択される疾患又は状態の処置のための、請求項17に記載の精製エキス。
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