JP2016198110A5 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
JP2016198110A5
JP2016198110A5 JP2016147146A JP2016147146A JP2016198110A5 JP 2016198110 A5 JP2016198110 A5 JP 2016198110A5 JP 2016147146 A JP2016147146 A JP 2016147146A JP 2016147146 A JP2016147146 A JP 2016147146A JP 2016198110 A5 JP2016198110 A5 JP 2016198110A5
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
nucleic acid
locus
interest
genomic locus
cell
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP2016147146A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2016198110A (ja
JP6517755B2 (ja
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Publication of JP2016198110A publication Critical patent/JP2016198110A/ja
Publication of JP2016198110A5 publication Critical patent/JP2016198110A5/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP6517755B2 publication Critical patent/JP6517755B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Description

いくつかの方法において、改変された真核細胞は、対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性である。いくつかの方法において、改変された真核細胞は、対象とするゲノム遺伝子座で半接合性である。任意に、1つの染色体における対象とするゲノム遺伝子座での標的遺伝子改変は、内因性核酸配列の欠失及び第1の核酸の挿入を含む。任意に、標的遺伝子改変は、(1)2つの相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)第1の染色体における対象とするゲノム遺伝子座への第1の核酸の挿入及び第2の染色体における対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む。第1の染色体は、2つの相同染色体のうちの一方であり得、第2の染色体は、もう一方の相同染色体であり得る。
いくつかのそのような方法において、改変非ヒトES細胞は、対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性である。いくつかのそのような方法において、改変非ヒトES細胞は、対象とするゲノム遺伝子座で半接合性である。任意に、1つの染色体における対象とするゲノム遺伝子座での標的遺伝子改変は、内因性核酸配列の欠失及び第1の核酸の挿入を含む。任意に、標的遺伝子改変は、(1)2つの相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)第1の染色体における対象とするゲノム遺伝子座への第1の核酸の挿入及び第2の染色体における対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む。第1の染色体は、2つの相同染色体のうちの一方であり得、第2の染色体は、もう一方の相同染色体であり得る。
上記の方法のいくつかにおいて、標的遺伝子改変は、2対立遺伝子の遺伝子改変である。上記の方法のいくつかにおいて、2対立遺伝子の遺伝子改変は、2つの相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失及び第1の核酸の挿入を含む。上記の方法のいくつかにおいて、改変真核細胞、改変マウス細胞、または改変ヒト細胞は、対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性である。上記の方法のいくつかにおいて、改変真核細胞、改変マウス細胞、または改変ヒト細胞は、対象とするゲノム遺伝子座で半接合性である。上記の方法のいくつかにおいて、1つの染色体における対象とするゲノム遺伝子座での標的遺伝子改変は、内因性核酸配列の欠失及び第1の核酸の挿入を含む。上記の方法のいくつかにおいて、標的遺伝子改変は、(1)第1及び第2の相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)第1の相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座への第1の核酸の挿入及び第2の相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む。
対象とするゲノム遺伝子座で標的遺伝子改変を含むF0世代非ヒト動物またはマウスを生み出すための方法であって、(a)上記の方法のいずれかを用いて、非ヒトまたはマウスES細胞を改変することと、(b)対象とするゲノム遺伝子座で標的遺伝子改変を含む改変非ヒトまたはマウスES細胞を特定することと、(c)改変非ヒトまたはマウスES細胞を非ヒトまたはマウス宿主胚に導入することと、(d)代理母において非ヒトまたはマウス宿主胚を懐胎することと、を含み、代理母が、対象とするゲノム遺伝子座で標的遺伝子改変を含むF0世代非ヒト動物またはマウスを生み出す、方法も提供される。
例えば、本発明は、以下を提供する。
(項目1)
マウス細胞またはヒト細胞における対象とするゲノム遺伝子座でのゲノムを改変するための方法であって、大きな標的化ベクター(LTVEC)の存在下で、前記ゲノムを、Casタンパク質、前記対象とするゲノム遺伝子座の標的配列にハイブリダイズするCRISPR RNA、及びtracrRNAと接触させることを含み、
前記LTVECが、少なくとも10kbであり、前記対象とするゲノム遺伝子座の5’標的配列に相同である5’相同性アーム、及び前記対象とするゲノム遺伝子座の3’標的配列に相同である3’相同性アームが隣接する第1の核酸を含み、
前記LTVECの存在下で、前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、及び前記tracrRNAと接触させた後、前記ゲノムが、前記対象とするゲノム遺伝子座の領域の欠失及び前記対象とするゲノム遺伝子座の前記第1の核酸の挿入を含む標的遺伝子改変を含むように改変され、
(i)欠失した前記対象とするゲノム遺伝子座の領域が、少なくとも30kbであり、
かつ/または
(ii)前記挿入された第1の核酸が少なくとも30kbである、前記方法。
(項目2)
前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、前記tracrRNA、及び前記LTVECが、前記マウス細胞または前記ヒト細胞に導入される、項目1に記載の前記方法。
(項目3)
前記対象とするゲノム遺伝子座での前記標的遺伝子改変を含む、前記改変マウス細胞または前記改変ヒト細胞を特定することをさらに含む、項目1または2に記載の前記方法。(項目4)
前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAが、単一転写産物の形態で一緒に導入される、項目2または3に記載の前記方法。
(項目5)
前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAが、別々に導入される、項目2または3に記載の前記方法。
(項目6)
(a)前記Casタンパク質が、タンパク質、前記Casタンパク質をコードするメッセンジャーRNA(mRNA)、または前記Casタンパク質をコードするDNAの形態で、前記マウス細胞または前記ヒト細胞に導入され、
(b)前記CRISPR RNAが、前記CRISPR RNAをコードするRNAまたはDNAの形態で、前記マウス細胞または前記ヒト細胞に導入され、かつ
(c)前記tracrRNAが、前記tracrRNAをコードするRNAまたはDNAの形態で、前記マウス細胞または前記ヒト細胞に導入される、項目2〜5のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目7)
前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、及び前記tracrRNAが、タンパク質−RNA複合体として、前記マウス細胞または前記ヒト細胞に導入される、項目6に記載の前記方法。
(項目8)
(a)前記Casタンパク質をコードする前記DNAが、前記Casタンパク質をコードする第2の核酸に作動可能に連結された第1のプロモータを含む第1の発現構築物の形態であり、
(b)前記CRISPR RNAをコードする前記DNAが、前記CRISPR RNAをコードする第3の核酸に作動可能に連結された第2のプロモータを含む第2の発現構築物の形態であり、かつ
(c)前記tracrRNAをコードする前記DNAが、前記tracrRNAをコードする第4の核酸に作動可能に連結された第3のプロモータを含む第3の発現構築物の形態であり、
前記第1、第2、及び第3のプロモータが、前記マウス細胞または前記ヒト細胞において活性である、項目6に記載の前記方法。
(項目9)
前記第1、第2、及び/または第3の発現構築物が、単一の核酸分子上にある、項目8に記載の前記方法。
(項目10)
(a)前記Casタンパク質をコードする前記DNAが、前記Casタンパク質をコードする第2の核酸に作動可能に連結された第1のプロモータを含む第1の発現構築物の形態であり、かつ
(b)前記CRISPR RNAをコードする前記DNA及び前記tracrRNAをコードする前記DNAが、単一転写産物において、前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAを含むgRNAをコードする第3の核酸に作動可能に連結された第2のプロモータを含む第2の発現構築物の形態であり、
前記第1及び第2のプロモータが、前記マウス細胞または前記ヒト細胞において活性である、項目6に記載の前記方法。
(項目11)
前記第1及び前記第2の発現構築物が、単一の核酸分子上にある、項目10に記載の前記方法。
(項目12)
前記標的遺伝子改変が、単一ステップにおける前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、及び前記対象とするゲノム遺伝子座での前記第1の核酸の挿入を同時に含む、項目1〜11のいずれかに記載の前記方法。
(項目13)
前記欠失した内因性核酸配列が約30kb〜約110kbであり、前記挿入された第1の核酸が約40kb〜約140kbである、項目12に記載の前記方法。
(項目14)
前記標的遺伝子改変が、2対立遺伝子の遺伝子改変である、項目1〜13のいずれかに記載の前記方法。
(項目15)
前記2対立遺伝子の遺伝子改変が、2つの相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失及び前記第1の核酸の挿入を含む、項目14に記載の前記方法。
(項目16)
前記改変マウス細胞または前記改変ヒト細胞が、前記対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性である、項目14に記載の前記方法。
(項目17)
前記改変マウス細胞または前記改変ヒト細胞が、前記対象とするゲノム遺伝子座で半接合性である、項目14に記載の前記方法。
(項目18)
1つの染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座で前記標的遺伝子改変が、内因性核酸配列の欠失及び前記第1の核酸の挿入を含む、項目16に記載の前記方法。
(項目19)
前記標的遺伝子改変が、(1)第1及び第2の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)前記第1の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座への前記第1の核酸の挿入、及び前記第2の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む、項目16に記載の前記方法。
(項目20)
前記LTVECが、少なくとも15kb、少なくとも20kb、少なくとも30kb、少なくとも40kb、少なくとも50kb、少なくとも60kb、少なくとも70kb、少なくとも80kb、または少なくとも90kbである、項目1〜19のいずれかに記載の前記方法。
(項目21)
前記LTVECが、少なくとも100kb、少なくとも150kb、または少なくとも200kbである、項目1〜20のいずれかに記載の前記方法。
(項目22)
前記第1の核酸が、少なくとも20kb、少なくとも30kb、少なくとも40kb、少なくとも50kb、少なくとも60kb、少なくとも70kb、少なくとも80kb、少なくとも90kb、少なくとも100kb、少なくとも150kb、少なくとも200kb、少なくとも250kb、または少なくとも300kbである、項目1〜21のいずれかに記載の前記方法。
(項目23)
前記第1の核酸が、約40kb〜約140kbである、項目1〜22のいずれかに記載の前記方法。
(項目24)
前記マウス細胞または前記ヒト細胞が、初代細胞または不死化細胞である、項目1〜23のいずれかに記載の前記方法。
(項目25)
前記マウス細胞または前記ヒト細胞が多能性細胞である、項目1〜23のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目26)
前記マウス多能性細胞がマウス胚幹(ES)細胞である、項目25に記載の前記方法。
(項目27)
前記ヒト多能性細胞が、ヒト胚幹(ES)細胞、ヒト成人幹細胞、発達的に制限された(developmentally restricted)ヒト前駆細胞、またはヒト誘導多能性幹(iPS)細胞である、項目25に記載の前記方法。
(項目28)
前記ヒトiPS細胞が、基本培地及び補充物を含む培地において維持され、前記培地が、
(a)白血病抑制因子(LIF)ポリペプチド、
(b)グリコーゲン合成酵素キナーゼ(GSK3)阻害剤、及び
(c)MEK阻害剤を含み、
前記培地が、約175mOsm/kg〜約280mOsm/kgのオスモル濃度を有する、項目27に記載の前記方法。
(項目29)
前記Casタンパク質がCas9である、項目1〜28のいずれかに記載の前記方法。
(項目30)
前記標的配列には、プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)配列が直ぐ隣接する、項目1〜29のいずれかに記載の前記方法。
(項目31)
前記LTVECの前記5’及び前記3’相同性アームの合計が、約10kb〜約150kbである、項目1〜30のいずれかに記載の前記方法。
(項目32)
前記LTVECの前記5’及び前記3’相同性アームの合計が、約10kb〜約20kb、約20kb〜約40kb、約40kb〜約60kb、約60kb〜約80kb、約80kb〜約100kb、約100kb〜約120kb、または約120kb〜150kbである、項目1〜31のいずれかに記載の前記方法。
(項目33)
前記標的遺伝子改変が、
(a)相同またはオーソロガス核酸配列による内因性核酸配列の置換、
(b)内因性核酸配列の欠失、
(c)内因性核酸配列の欠失であって、
約5kb〜約10kb、約10kb〜約20kb、約20kb〜約40kb、約40kb〜約60kb、約60kb〜約80kb、約80kb〜約100kb、約100kb〜約150kb、または約150kb〜約200kb、約200kb〜約300kb、約300kb〜約400kb、約400kb〜約500kb、約500kb〜約1Mb、約1Mb〜約1.5Mb、約1.5Mb〜約2Mb、約2Mb〜約2.5Mb、または約2.5Mb〜約3Mbの範囲に及ぶ、内因性核酸配列の欠失、
(d)外因性核酸配列の挿入、
(e)約5kb〜約10kb、約10kb〜約20kb、約20kb〜約40kb、約40kb〜約60kb、約60kb〜約80kb、約80kb〜約100kb、約100kb〜約150kb、約150kb〜約200kb、約200kb〜約250kb、約250kb〜約300kb、約300kb〜約350kb、または約350kb〜約400kbの範囲に及ぶ、外因性核酸配列の挿入、
(f)相同またはオーソロガス核酸配列を含む外因性核酸配列の挿入、
(g)ヒト及び非ヒト核酸配列を含むキメラ核酸配列の挿入、
(h)部位特異的リコンビナーゼ標的
配列が隣接する条件付き対立遺伝子の挿入、
(i)前記多能性細胞において活性なプロモータに作動可能に連結された選択可能なマーカーまたはレポーター遺伝子の挿入、あるいは、
(j)それらの組み合わせ、を含む、項目1〜32のいずれかに記載の前記方法。
(項目34)
前記5’標的配列及び前記3’標的配列が、少なくとも5kbであるが3Mb未満だけ離れている、項目1〜33のいずれかに記載の前記方法。
(項目35)
前記5’標的配列及び前記3’標的配列が、少なくとも5kbであるが10kb未満、少なくとも10kbであるが20kb未満、少なくとも20kbであるが40kb未満、少なくとも40kbであるが60kb未満、少なくとも60kbであるが80kb未満、少なくとも約80kbであるが100kb未満、少なくとも100kbであるが150kb未満、または少なくとも150kbであるが200kb未満、少なくとも約200kbであるが約300kb未満、少なくとも約300kbであるが約400kb未満、少なくとも約400kbであるが約500kb未満、少なくとも約500kbであるが約1Mb未満、少なくとも約1Mbであるが約1.5Mb未満、少なくとも約1.5Mbであるが約2Mb未満、少なくとも約2Mbであるが約2.5Mb未満、または少なくとも約2.5Mbであるが約3Mb未満だけ離れている、項目1〜34のいずれかに記載の前記方法。
(項目36)
前記5’標的配列及び前記3’標的配列が、少なくとも20kb、少なくとも30kb、少なくとも40kb、少なくとも50kb、少なくとも60kb、少なくとも70kb、少なくとも80kb、少なくとも90kb、少なくとも100kb、少なくとも110kb、少なくとも120kb、少なくとも130kb、少なくとも140kb、少なくとも150kb、少なくとも160kb、少なくとも170kb、少なくとも180kb、少なくとも190kb、または少なくとも200kbだけ離れている、項目1〜35のいずれかに記載の前記方法。
(項目37)
前記5’標的配列及び前記3’標的配列が、約30kb〜約110kbだけ離れている、項目1〜36のいずれかに記載の前記方法。
(項目38)
前記対象とするゲノム遺伝子座が、インターロイキン−2受容体ガンマ遺伝子座、ApoE遺伝子座、Rag1遺伝子座、Rag2遺伝子座、Rag1遺伝子座及びRag2遺伝子座の両方、Adamts5遺伝子座、Trpa1遺伝子座、Folh1遺伝子座、Erbb4遺伝子座、Lrp5遺伝子座、C5(Hc)遺伝子座、Ror1遺伝子座、またはDpp4遺伝子座を含む、項目1〜37のいずれかに記載の前記方法。
(項目39)
前記対象とするゲノム遺伝子座が、染色体外DNAを含む、項目1〜38のいずれかに記載の前記方法。
(項目40)
対象とするゲノム遺伝子座で標的遺伝子改変を含むF0世代マウスを生み出すための方法であって、
(a)改変マウスES細胞を形成するために、大きな標的化ベクター(LTVEC)の存在下で、マウスES細胞における前記ゲノムを、Casタンパク質、前記対象とするゲノム遺伝子座の標的配列にハイブリダイズするCRISPR RNA、及びtracrRNAと接触させることであって、
前記LTVECが、少なくとも10kbであり、前記対象とするゲノム遺伝子座の5’標的配列に相同である5’相同性アーム、及び前記対象とするゲノム遺伝子座の3’標的配列に相同である3’相同性アームが隣接する第1の核酸を含み、
前記LTVECの存在下で、前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、及び前記tracrRNAと接触させた後、前記ゲノムが、前記対象とする遺伝子改変を含むように改変され、前記対象とする遺伝子改変が、前記対象とする遺伝子座の領域の欠失及び前記対象とするゲノム遺伝子座で前記第1の核酸の挿入を含み、
(i)欠失した前記対象とするゲノム遺伝子座の領域が、少なくとも30kbであり、
かつ/または
(ii)前記挿入された第1の核酸が少なくとも30kである、接触させることと、
(b)前記対象とするゲノム遺伝子座で前記標的遺伝子改変を含む前記改変ES細胞を特定することと、
(c)前記改変マウスES細胞をマウス宿主胚に導入することと、
(d)代理母において前記マウス宿主胚を懐胎させることと、を含み、
前記代理母が、前記対象とするゲノム遺伝子座で前記標的遺伝子改変を含む前記F0世代マウスを生み出す、前記方法。
(項目41)
前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAが、単一転写産物の形態で一緒に導入される、項目40に記載の前記方法。
(項目42)
前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAが、別々に導入される、項目40に記載の前記方法。
(項目43)
(a)前記Casタンパク質が、タンパク質、前記Casタンパク質をコードするメッセンジャーRNA(mRNA)、または前記Casタンパク質をコードするDNAの形態で、前記マウスES細胞に導入され、
(b)前記CRISPR RNAが、前記CRISPR RNAをコードするRNAまたはDNAの形態で、前記マウスES細胞に導入され、かつ
(c)前記tracrRNAが、前記tracrRNAをコードするRNAまたはDNAの形態で、前記マウスES細胞に導入される、項目40〜42のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目44)
前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、及び前記tracrRNAが、タンパク質−RNA複合体として、前記マウスES細胞に導入される、項目43に記載の前記方法。
(項目45)
(a)前記Casタンパク質をコードする前記DNAが、前記Casタンパク質をコードする第2の核酸に作動可能に連結された第1のプロモータを含む第1の発現構築物の形態であり、
(b)前記CRISPR RNAをコードする前記DNAが、前記CRISPR RNAをコードする第3の核酸に作動可能に連結された第2のプロモータを含む第2の発現構築物の形態であり、かつ
(c)前記tracrRNAをコードする前記DNAが、前記tracrRNAをコードする第4の核酸に作動可能に連結された第3のプロモータを含む第3の発現構築物の形態であり、
前記第1、第2、及び第3のプロモータが、前記マウスES細胞において活性である、項目43に記載の前記方法。
(項目46)
前記第1、第2、及び第3の発現構築物が、単一の核酸分子上にある、項目45に記載の前記方法。
(項目47)
(a)前記Casタンパク質をコードする前記DNAが、前記Casタンパク質をコードする第2の核酸に作動可能に連結された第1のプロモータを含む第1の発現構築物の形態であり、かつ
(b)前記CRISPR RNAをコードする前記DNA及び前記tracrRNAをコードする前記DNAが、単一転写産物において、前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAを含むgRNAをコードする第3の核酸に作動可能に連結された第2のプロモータを含む第2の発現構築物の形態であり、
前記第1及び第2のプロモータが、前記マウスES細胞において活性である、項目43に記載の前記方法。
(項目48)
前記第1及び前記第2の発現構築物が、単一の核酸分子上にある、項目47に記載の前記方法。
(項目49)
前記標的遺伝子改変が、前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、及び前記対象とするゲノム遺伝子座での前記第1の核酸の挿入を同時に含む、項目40〜48のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目50)
前記標的遺伝子改変が、2対立遺伝子の遺伝子改変である、項目40〜49のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目51)
前記2対立遺伝子の遺伝子改変が、2つの相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失及び前記第1の核酸の挿入を含む、項目50に記載の前記方法。
(項目52)
前記改変マウスES細胞が、前記対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性である、項目50に記載の前記方法。
(項目53)
前記改変マウスES細胞が、前記対象とするゲノム遺伝子座で半接合性である、項目50に記載の前記方法。
(項目54)
1つの染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での前記標的遺伝子改変が、内因性核酸配列の欠失及び前記第1の核酸の挿入を含む、項目52に記載の前記方法。
(項目55)
前記標的遺伝子改変が、(1)第1及び第2の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)前記第1の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座への前記第1の核酸の挿入及び前記第2の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む、項目52に記載の前記方法。
(項目56)
前記Casタンパク質がCas9である、項目40〜55のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目57)
真核細胞における対象とするゲノム遺伝子座でゲノムを改変するための方法であって、大きな標的化ベクター(LTVEC)の存在下で、前記ゲノムを、Casタンパク質、前記対象とするゲノム遺伝子座の標的配列にハイブリダイズするCRISPR RNA、及びtracrRNAと接触させることを含み、
前記LTVECが、少なくとも10kbであり、前記対象とするゲノム遺伝子座の5’標的配列に相同である5’相同性アーム、及び前記対象とするゲノム遺伝子座の3’標的配列に相同である3’相同性アームが隣接する第1の核酸を含み、
前記真核細胞がラット細胞ではなく、
前記LTVECの存在下で、前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、及び前記tracrRNAと接触させた後、前記ゲノムが、前記対象とするゲノム遺伝子座の領域の欠失及び前記対象とするゲノム遺伝子座の前記第1の核酸の挿入を含む標的遺伝子改変を含むように改変され、
(i)欠失した前記対象とするゲノム遺伝子座の領域が、少なくとも30kbであり、
かつ/または
(ii)前記挿入された第1の核酸が少なくとも30kbである、前記方法。
(項目58)
前記非ラット真核細胞が、多能性細胞、非多能性細胞、哺乳動物細胞、ヒト細胞、非ヒト哺乳動物細胞、齧歯類細胞、マウス細胞、ハムスター細胞、または線維芽細胞である、項目57に記載の前記方法。
(項目59)
前記非ラット真核細胞が、初代細胞または不死化細胞である、項目57に記載の前記方法。

皿中で通常分離し、浮遊する小型球形コロニーとして成長するラットESCを示す。 ラットESCにより発現される様々な多能性マーカーを示す。AはOct−4(緑色)を示し、BはSox−2(赤色)を示し、CはDAPI(青色)を示し、DはrESCにより発現される多能性マーカーのオーバーレイを示す。 ラットESCがアルカリホスファターゼ(多能性マーカー)の光レベルを発現することを示す。 42X,Yである細胞系列DA.2Bの核型を示す。ラットESCが多くの場合、4倍体となるため、核型分析が行われ、そのため、細胞系列は、分裂中期の染色体の広がりを計数することにより事前に選別され、大部分が正常な計数を有する細胞系列が、正式に核型分析された。 ACI.G1ラットES細胞株の染色体数の分析を示す写真を提供する。 ACI.G1ラットES細胞株の染色体数の分析を示す写真を提供する。 DA.2BラットES細胞株の染色体数の分析を示す写真を提供する。 DA.2BラットES細胞株の染色体数の分析を示す写真を提供する。 DA.2CラットES細胞株の染色体数の分析を示す写真を提供する。 DA.2CラットES細胞株の染色体数の分析を示す写真を提供する。 図1のラットESCの拡大図を示す。 生殖細胞系列を通したラットESCゲノムの胚盤胞注射及び伝達によるキメラの生成を示す。キメラは、親ACI.G1ラットESCを用いた胚盤胞注射により生成された。高い割合のキメラが、通常、アルビノ鼻を有する。 図9にアスタリスク()で標識されたACI/SDキメラが雄親となるアルビノ同腹子を有するF1アグーチ子を示す。 ラットのApoE遺伝子座の概略図を提供し、亜鉛フィンガーヌクレアーゼ(ZFN1及びZFN2)の切断部位を灰色バーで示す。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、5kb及び5.4kb)に対応するゲノム領域を濃灰色ボックスで示す。ApoE遺伝子のエクソン1は、非コードであり、5’相同性アームに最も近い白抜きのボックスとして示される。ApoE遺伝子の3つのイントロンは、線で示される。エクソン2及び3は、コード領域を含み、点状の灰色ボックスとして示される。エクソン4は、点状の灰色影付き及び白抜きのボックスで示されるコード配列及び非コード配列の両方を含む。 同じ間隔を有し、マウスにおけるように、Setd5遺伝子とThumpd3遺伝子との間にあるラットのRosa26遺伝子座の標的化を示す。パネルAは、マウスのRosa26遺伝子座の構造を示す。マウスのRosa26転写物は、2つまたは3つのエクソンから成る。パネルBは、ラットのRosa26遺伝子座の構造を示し、ラットの遺伝子座は、マウスエクソン1(Ex1a)に対して相同的なエクソンに加えて、第2のエクソン1(Ex1b)を含むが、第3のエクソンは、ラットにおいては確認されていない。パネルCは、標的とするラットのRosa26対立遺伝子を示し、5kbの相同性アームはそれぞれ、DA rESCからのゲノムDNAを用いたPCRによってクローン化され、標的とする対立遺伝子は、ラットのRosa26イントロンにおいて117bpの欠失を置換するスプライシング受容体(SA)−lacZ−hUB−neoカセットを含む。 X−galで染色された14週齢の野生型ラットの対照脳を示す。対照脳は、LacZに対して低レベルの背景染色を示した(背面図)。 rRosa26ヘテロ接合ラット(14週齢)の脳におけるLacZ発現を示す。lacZレポーターは、rRosa26ヘテロ接合体の脳全体にわたって遍在的に発現した。 X−galで処理された14週齢の野生型ラットの対照心臓及び胸腺(挿入図)を示す。対照心臓及び胸腺は、LacZに対して低レベルの背景染色を示した。 14週齢のrRosa26ヘテロ接合ラットの対照心臓及び胸腺(挿入図)におけるLacZ発現を示す。lacZレポーターは、rROSA26ヘテロ接合体の心臓及び胸腺全体にわたって遍在的に発現した。 X−galで処理された14週齢の野生型ラットの対照肺を示す。対照肺は、LacZに対して低レベルの背景染色を示した。 14週齢のrRosa26ヘテロ接合体ラットの肺におけるLacZ発現を示す。lacZレポーターは、rRosa26ヘテロ接合体の肺全体にわたって遍在的に発現した。 E12.5ラット胚におけるLacZ発現を示す。低レベルの背景LacZ染色を示す野生型対照胚(H)と比較して、rRosa26ヘテロ接合体胚は、胚全体にわたってLacZレポーターの遍在的発現を示した。 E14.5ラット胚におけるLacZ発現を示す。低レベルの背景LacZ染色を示す野生型対照胚(J)と比較して、rRosa26ヘテロ接合体ラット胚は、胚全体にわたってLacZレポーターの遍在的発現を示した。 選択カセット(lacZ−neoカセット)を含む標的化ベクターの電気穿孔後のラットES細胞内に生じる相同または非相同的組み換え事象を示す。 ゲノム編集エンドヌクレアーゼ(例えば、ZFN及びTALEN)が標的ゲノム配列において二本鎖切断(DSB)を誘導し、ES細胞において非相同末端結合(NHEJ)を活性化する機構を示す。 標的化ベクターの相同的組み換えの効率を改善するためにZFN/TALENを利用する遺伝子標的技術を示す。DSBは、二本鎖切断を表す。 改変ラットのApoE遺伝子座のキメラ生成及び生殖細胞系列の伝達によって生み出されたApoE−ZFN−AB5キメラを示す。標的改変は、ジンクフィンガーヌクレアーゼによって支援された。 ZFN U及びZFN Dを標的とするジンクフィンガーヌクレアーゼと組み合わせたIL2r−γ標的化事象の概略図を提供する。ZFN U及びZFN Dによって標的とされるラットのIL2r−γ遺伝子座の領域を示す(配列番号93)。ZFN切断部位を図に示す。 ZFN U及びZFN Dを標的とするジンクフィンガーヌクレアーゼと組み合わせたまたはgRNA(gRNA1、gRNA2、gRNA3、gRNA4)と組み合わせたIL2r−γ標的化事象の概略図を提供する。ZFN U及びZFN DまたはgRNA1〜4によって標的とされたラットのIL2r−γ遺伝子座の領域を示し、ZFN切断部位を示す。 ラットのApoE遺伝子座及び標的化プラスミドの概略図を提供する。上の概略図は、ラットのApoE遺伝子座ならびに5’及び3’相同性アーム(それぞれ、5kb及び5.4kb、濃い灰色ボックス)に対応するゲノム領域のゲノム構造を示す。ApoE遺伝子のエクソン1は、非コードであり、5’相同性アームに最も近い白抜きのボックスとして示される。ApoE遺伝子の3つのイントロンは、線で示される。エクソン2及び3は、コード領域を含み、点状の灰色ボックスとして示される。エクソン4は、点状の灰色影付き及び白抜きのボックスで示されるコード配列及び非コード配列の両方を含む。下パネルは、標的化プラスミドを示す。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、5kb及び5.4kb)は、濃い灰色ボックスで示される。標的化ベクターは、レポーター遺伝子(lacZ)、及びloxP部位(白抜き矢印)が隣接する自己欠失カセットを含む。自己欠失カセットは、Crei遺伝子に作動可能に連結されたマウスPrm1プロモータ、及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む。 ジンクフィンガーヌクレアーゼと、レポーター遺伝子(LacZ)、ならびにCrei遺伝子に作動可能に連結されたマウスPrm1プロモータ、及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む、自己欠失カセットを含む標的化ベクターとを用いた、ラットES細胞におけるApoE遺伝子座を標的化するための概略図を提供する。図21Bは、ホモ接合性標的ApoE遺伝子座を示す。 ラットのApoE遺伝子座及び大きな標的化ベクター(LTVEC)の概略図を提供する。上パネルは、ラットのApoE遺伝子座ならびに5’及び3’相同性アーム(それぞれ、45kb及び23kb、濃い灰色ボックス)に対応するゲノム領域のゲノム構成を示す。ApoEのエクソン1は、非コードであり、5’相同性アームに最も近い白抜きのボックスとして示される。ApoE遺伝子の3つのイントロンは、線で示され、エクソン2及び3は、コード領域を含み、点状の灰色ボックスとして示される。エクソン4は、点状の灰色影付き及び白抜きのボックスで示されるコード配列及び非コード配列の両方を含む。下パネルは、ラットのApoE遺伝子座を改変するためのLTVECを示す。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、45kb及び23kb)は、濃い灰色ボックスで示される。LTVECは、レポーター遺伝子(lacZ)、ならびにCrei遺伝子に作動可能に連結されたマウスPrm1プロモータ、及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む、loxP部位(白抜き矢印)が隣接する自己欠失カセットを含む。 ラットのApoE遺伝子座の概略図を提供し、標的化ベクターと標的同種染色体領域との間の相同的組み換えを増強するために大きな標的化ベクター(LTVEC)と一緒に使用される、ジンクフィンガーヌクレアーゼ(ZFN1及びZFN2)における切断部位を灰色バーで示す。 3.2kbの欠失と、レポーター遺伝子(eGFP)ならびに薬物選択カセット(hUb−neo)及びマウスPrm1プロモータに作動可能に連結されたCrei遺伝子を含む自己欠失カセットの挿入とによって破壊されたラットのIL2r−γ遺伝子座を示す。 3.2kbの欠失と、レポーター遺伝子(eGFP)ならびにマウスPrm1プロモータに作動可能に連結されたCrei遺伝子及び薬物選択カセット(hUb−Neo)を含む自己欠失カセットの挿入とによって破壊されたラットのIL2r−γ遺伝子座の別の図を提供する。 ラットRag2遺伝子座を改変するためのラットRag2遺伝子座及び大きな標的化ベクター(LTVEC)の概略図を提供する。上パネルは、ラットRag2遺伝子座ならびに5’及び3’相同性アーム(それぞれ、48kb及び84kb、濃い灰色ボックス)に対応する同種ゲノム領域のゲノム構成を示す。Rag2は、点状の灰色影付きで示される単一のエクソンを含む。下パネルは、LTVECである。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、48kb及び84kb)は、濃い灰色ボックスで示される。LTVECは、レポーター遺伝子(lacZ)、ならびにCrei遺伝子に作動可能に連結されたラットPrm1プロモータ、及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む、loxP部位(白抜き矢印)が隣接する自己欠失カセットを含む。 ラットのRag1/Rag2遺伝子座、及びRag2の標的化(Rag2の欠失)またはRag2/Rag1の二重標的化(Rag2/Rag1の欠失)のいずれかによって欠失したゲノム領域のゲノム構造を提供する。 遺伝子座を改変するために使用される、ラットのRag2及びRag1遺伝子座ならびに大きな標的化ベクター(LTVEC)の概略図を提供する。上パネルは、Rag1及びRag2遺伝子座ならびに5’及び3’相同性アーム(それぞれ、48kb及び15kb、濃い灰色ボックス)に対応する同種ゲノム領域のゲノム構成を示す。Rag2及びRag1はそれぞれ、点状の灰色影付きで示される単一のエクソンを含む。下パネルは、LTVECである。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、48kb及び15kb)は、濃い灰色ボックスで示される。LTVECは、レポーター遺伝子(lacZ)、ならびにCrei遺伝子に作動可能に連結されたラットPrm1プロモータ、及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む、loxP部位(白抜き矢印)が隣接する自己欠失カセットを含む。 II2rg−/yキメララット(パネルA〜C)及び野生型DAラット(パネルD〜F)からの末梢血単核細胞(PBMC)におけるGFP発現ならびにT−細胞マーカーCD3(パネルA及びD)、B−細胞マーカーB220(パネルB及びE)、及びNK細胞マーカーCD161a(パネルC及びF)のフローサイトメトリー分析を示す。二重陽性細胞を象限R8に示す。図29は、II2rg−/y PBMCが成熟リンパ球マーカーを発現しないことを示す。 II2rg−/yキメララット(パネルA〜C)及び野生型DAラット(パネルD〜F)からの末梢血単核細胞(PBMC)におけるGFP発現ならびにT−細胞マーカーCD3(パネルA及びD)、B−細胞マーカーB220(パネルB及びE)、及びNK細胞マーカーCD161a(パネルC及びF)のフローサイトメトリー分析を示す。二重陽性細胞を象限R8に示す。図29は、II2rg−/y PBMCが成熟リンパ球マーカーを発現しないことを示す。 GFP陽性リンパ球が、3つのII2rg−/yキメラのうち2つのキメラにおける末梢血中に検出されたことを示す。 ラットIl2rg遺伝子座の完全ヒト化におけるラットIl2rg遺伝子座及び標的化プラスミドの概略図を提供する。上パネルは、ラットIl2rg遺伝子座ならびに5’及び3’相同性アーム(それぞれ、4.3kb及び4.0kb、灰色ボックス)に対応する同種ゲノム領域のゲノム構成を示す。下パネルは、標的化プラスミドである。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、4.3kb及び4.0kb)は、灰色ボックスで示される。標的化プラスミドは、ヒトIL−2rgゲノム領域、及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む、loxP部位(白抜き矢印)が隣接する欠失カセットを含む。 ラットのIl2rg遺伝子座の細胞外ドメインヒト化におけるラットIl2rg遺伝子座及び標的化プラスミドの概略図を提供する。上パネルは、ラットIl2rg遺伝子座ならびに5’及び3’相同性アーム(それぞれ、4.3kb及び4.0kb、灰色ボックス)に対応する同種ゲノム領域のゲノム構成を示す。下パネルは、標的化プラスミドである。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、4.3kb及び4.0kb)は、灰色ボックスで示される。標的化プラスミドは、IL−2Rgゲノム領域のヒト細胞外ドメイン、ならびにCrei遺伝子に作動可能に連結されたラットPrm1プロモータ、及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む、loxP部位(白抜き矢印)が隣接する自己欠失カセットを含む。 ヒトIL−2rgタンパク質(配列番号20、NP_000197.1)、ラットIL−2rgタンパク質(配列番号21、NP_543165.1)、及びラットIL−2rgタンパク質の残りに融合されたIL−2rgのヒト細胞外ドメインを含むキメラIL−2rgタンパク質(配列番号22)の配列アライメントを提供する。ヒトIL−2rgとラットIL−2rgとの間の結合を垂直線で示す。 マウスLrp5遺伝子のCRISPR/Cas9支援によるヒト化の概略図を提供し、LTVECを上パネルに示し、マウスLrp5遺伝子座を下パネルに示す。ヒト化領域は、細胞外ドメインである。矢印は、各gRNA(gA、gB、gB2、gC、gD、gE2、gE、gF)及びZFN(a〜d)における標的部位を示す。 欠失の大きさが増加するLTVEC標的化遺伝子(図35A)及びヒト遺伝子の挿入の大きさが増加するLTVEC(図35B)の標的化効率の割合(%)を示す。LTVECを、単独で(灰色四角形または三角形)またはZFNと組み合わせて(黒色四角形または三角形)使用した。 欠失の大きさが増加するLTVEC標的化遺伝子(図35A)及びヒト遺伝子の挿入の大きさが増加するLTVEC(図35B)の標的化効率の割合(%)を示す。LTVECを、単独で(灰色四角形または三角形)またはZFNと組み合わせて(黒色四角形または三角形)使用した。 マウスTrpa1遺伝子の全コード領域のCRISPR/Cas9支援によるヒト化の概略図を提供し、LTVECを上パネルに示し、マウスTrpa1遺伝子座を下パネルに示す。矢印は、各gRNA(gA、gA2、gB、gC、gD、gE2、gE、gF)における標的部位を示す。 マウスFolh1遺伝子の細胞外ドメイン(エクソン2から終止コドン)のCRISPR/Cas9支援によるヒト化の概略図を提供し、LTVECを上パネルに示し、マウスFolh1遺伝子座を下パネルに示す。矢印は、各gRNA(gA、gA2、gB、gC、gD、gE、gE2、gF)における標的部位を示す。 マウスC5(Hc)遺伝子のエクソン2から終止コドンまでの領域のCRISPR/Cas9支援によるヒト化の概略図を提供し、LTVECを上パネルに示し、マウスC5(Hc)遺伝子座を下パネルに示す。矢印は、各gRNA(gA、gB、gB2、gC、gD、gE2、gE、gF)における標的部位を示す。 マウスAdamts5遺伝子の全コード領域のCRISPR/Cas9支援によるヒト化の概略図を提供し、LTVECを上パネルに示し、マウスAdamts5遺伝子座を下パネルに示す。矢印は、各gRNA(gA、gA2、gB、gC、gD、gE2、gE、gF)における標的部位を示す。 マウスErbb4遺伝子のエクソン4〜15のCRISPR/Cas9支援のヒト化の概略図を提供し、LTVECを上パネルに示し、マウスErbb4遺伝子座を下パネルに示す。矢印は、各gRNA(gA、gB、gB2、gC、gD、gE2、gE、gF)における標的部位を示す。 マウスRor1遺伝子のエクソン2〜7のCRISPR/Cas9支援によるヒト化の概略図を提供し、LTVECを上パネルに示し、マウスのRor1遺伝子座を下パネルに示す。矢印は、各gRNA(gA、gB、gC、gD、gE、gF)における標的部位を示す。 マウスDpp4遺伝子のエクソン2から終止コドンの領域のCRISPR/Cas9支援によるヒト化の概略図を提供し、LTVECを上パネルに示し、マウスのDpp4遺伝子座を下パネルに示す。矢印は、各gRNA(gA、gB、gB2、gC、gD、gE2、gE、gF)における標的部位を示す。 X−galで染色された12週齢雌ラットの脳を示す。図43A〜Cは、野生型ラットからの脳を示し、図43D〜Fは、ApoE+/−ラットからの脳を示す。図43A及びDは背面図を示し、図43B及びEは腹側図を示し、図43C及びFは拡大図を示す。 X−galで染色された12週齢雌ラットの脳を示す。図43A〜Cは、野生型ラットからの脳を示し、図43D〜Fは、ApoE+/−ラットからの脳を示す。図43A及びDは背面図を示し、図43B及びEは腹側図を示し、図43C及びFは拡大図を示す。 X−galで染色された12週齢雌ラットの心臓(A及びC)ならびに血管の対応する拡大図(B及びD)を示す。図44A及びBは、それぞれ、野生型ラットからの心臓及び血管を示し、図44C及びDは、それぞれ、ApoE+/−ラットからの心臓及び血管を示す。染色は、心臓の心房及びいくつかの血管(例えば、大静脈)に存在した。 X−galで染色された12週齢雌ラットの肝臓を示す。図45A及びBは、野生型ラットからの肝臓を示し、図45C及びDは、ApoE+/−ラットからの肝臓を示す。図45B及びDは、肝臓の拡大図である。 6週間、9週間、12週間、及び15週間でのホモ接合性ApoEを標的とするラット、ヘテロ接合ApoEを標的とするラット、及び野生型ラットにおけるコレステロール、LDL、HDL、及びトリグリセリドレベルの検出(それぞれ、図46A〜D)を示す。 ラットのApoE遺伝子座(上パネル)、及びラットのApoE遺伝子座(下パネル)を標的とする大きな標的化ベクター(LTVEC)の概略図を示す。上パネルは、ラットのApoE遺伝子座ならびに5’及び3’相同性アーム(それぞれ、45kb及び23kb、濃い灰色ボックス)に対応するゲノム領域のゲノム構成を示す。ApoEのエクソン1は、非コードであり、5’相同性アームに最も近い白抜きのボックスとして示される。ApoE遺伝子の3つのイントロンは、線で示され、エクソン2及び3は、コード領域を含み、点状の灰色ボックスとして示される。エクソン4は、点状の灰色影付き及び白抜きのボックスで示されるコード配列及び非コード配列の両方を含む。ApoE gRNA2(配列番号87)及びgRNA3(配列番号88)における標的部位を示す。下パネルは、ラットのApoE遺伝子座を改変するためのLTVECを示す。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、45kb及び23kb)は、濃い灰色ボックスで示される。LTVECは、レポーター遺伝子(lacZ)、ならびにCrei遺伝子に作動可能に連結されたマウスPrm1プロモータ、及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む、loxP部位(白抜き矢印)が隣接する自己欠失カセットを含む。 ラットRag2遺伝子座(上パネル)、及びラットRag2遺伝子座(下パネル)を標的とする大きな標的化ベクター(LTVEC)の概略図を示す。上パネルは、ラットRag2遺伝子座ならびに5’及び3’相同性アーム(それぞれ、48kb及び84kb、濃い灰色ボックス)に対応する同種ゲノム領域のゲノム構成を示す。Rag2は、点状の灰色影付きで示される単一のエクソンを含む。Rag2 gRNA1(配列番号89)及びgRNA4(配列番号90)における標的部位を示す。下パネルは、LTVECである。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、48kb及び84kb)は、濃い灰色ボックスで示される。LTVECは、レポーター遺伝子(lacZ)、ならびにCrei遺伝子に作動可能に連結されたラットPrm1プロモータ及びハイグロマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む、loxP部位(白抜き矢印)が隣接する自己欠失カセットを含む。 ラットIl2rg遺伝子座(上パネル)、及びラットIl2rg遺伝子座(下パネル)の細胞外ドメインのヒト化のための標的化プラスミドの概略図を示す。上パネルは、ラットIl2rg遺伝子座ならびに5’及び3’相同性アーム(それぞれ、4.3kb及び4.0kb、灰色ボックス)に対応する同種ゲノム領域のゲノム構成を示す。Il2rg gRNA2(配列番号91)及びgRNA4(配列番号92)における標的部位を示す。下パネルは、標的化プラスミドである。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、4.3kb及び4.0kb)は、灰色ボックスで示される。標的化プラスミドは、IL−2Rgゲノム領域のヒト細胞外ドメイン、ならびにCrei遺伝子に作動可能に連結されたラットPrm1プロモータ、及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む、loxP部位(白抜き矢印)が隣接する自己欠失カセットを含む。 Il2rgが標的となるラットES細胞(クローンIl2rg−CG12)における遺伝座を改変するために使用される、ラットRag2及びRag1遺伝子座ならびに大きな標的化ベクター(LTVEC)の概略図を示す。上パネルは、Rag1及びRag2遺伝子座ならびに5’及び3’相同性アーム(それぞれ、48kb及び15kb、灰色ボックス)に対応する同種ゲノム領域のゲノム構成を示す。Rag2及びRag1はそれぞれ、陰影のない矢印で示される単一のエクソンを含む。下パネルは、LTVECである。5’及び3’相同性アーム(それぞれ、48kb及び15kb)は、灰色ボックスによって示される。LTVECは、内部リボソーム侵入部位(IRES)によって分離され、アクチンプロモータに作動連結された、レポーター遺伝子(eGFP)及びピューロマイシン耐性遺伝子を含む。LTVECは、Crei遺伝子に作動可能に連結されたラットPrm1プロモータ、及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたヒトユビキチンプロモータを含む薬物選択カセットを含む、loxP部位(白抜き矢印)が隣接する自己欠失カセットをさらに含む。 ヒトiPS細胞におけるLTVEC及びガイドRNAを用いたマウスAdam6a遺伝子座及びマウスAdam6b遺伝子座を含む核酸によるヒトADAM6遺伝子座の一部分の置換の概略図を示す。ガイドRNAの標的部位を、矢印によって示す。 2i培地において8日間培養されたヒトiPS細胞により示された形態を示す。図52Bは、2i培地において12日間培養されたヒトiPS細胞により示された形態を示す。 mTeSR(商標)−hLIF培地または低オスモル濃度VG2i培地において6日間培養されたヒトiPS細胞の形態を示す。図53A及び53Bは、mTeSR(商標)−hLIF培地(図3A)またはVG2i培地(図53B)において6日間培養されたヒトiPS細胞の形態を示す。図53C及び53Dは、mTeSR(商標)−hLIF培地(図53C)またはVG2i培地(図53D)において新生児ヒト包皮線維芽細胞(NuFF)のフィーダー細胞に6日間培養されたヒトiPS細胞の形態を示す。 アルカリホスファターゼに対して染色されたVG2i培地において培養された再プログラミングされたヒトiPS細胞を示す。図54B及び54Cは、NANOGの発現に対して免疫染色されたVG2i培地において培養された再プログラミングされたヒトiPS細胞を示す。 VG2i培地において培養された再プログラミングされたヒトiPS細胞の酵素解離及び継代培養を示す。図55Aは、ROCK阻害剤の不在下でトリプシンによる酵素解離前にVG2i培地において培養された再プログラミングされたヒトiPS細胞を示す。図55Bは、継代培養後1日間VG2i培地において培養されたヒトiPS細胞を示す。図55Cは、継代培養後4日間VG2i培地において培養されたヒトiPS細胞を示す。
一実施形態において、第1の核酸は、Casタンパク質においてヌクレアーゼ活性部位の少なくとも1つのアミノ酸残基を破壊する突然変異体を含み、突然変異体Casタンパク質は標的DNA領域の一方の鎖のみに切断を生じ、突然変異体は、標的DNA領域において非相同的組み換えを減少させる。
一実施形態において、標的遺伝子座の標的遺伝子改変は、2対立遺伝子である。「2対立遺伝子」とは、遺伝子の両方の対立遺伝子が標的遺伝子改変を含むことを意味する。標的遺伝子改変は、各対立遺伝子において同じであり得るか、または異なり得る。例えば、2対立遺伝子改変は、対応する相同染色体上の対応する対立遺伝子に行われる同じ改変をもたらし得るか、または対応する相同染色体上の対応する対立遺伝子に行われる異なる改変をもたらし得る。それ故に、2対立遺伝子改変は、例えば、対象とするゲノム遺伝子座で特異的改変に対してホモ接合性(すなわち、両方の対立遺伝子において特異的改変)、対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性(例えば、一方の対立遺伝子において特異的改変であり、もう一方の対立遺伝子の不活性化または破壊)、または対象とするゲノム遺伝子座で半接合性(例えば、一方の対立遺伝子において特異的改変であり、もう一方の対立遺伝子の欠失)をもたらし得る。ある特定の実施形態において、ヌクレアーゼ剤とともに標的化ベクター(例えば、LTVECを含む)の組み合わせた使用により、標的化ベクターのみの使用と比較して、細胞において対象とするゲノム遺伝子座の2対立遺伝子の標的遺伝子改変をもたらす。標的化ベクターがヌクレアーゼ剤と組み合わせて使用されるとき、2対立遺伝子の標的化効率は、標的化ベクターのみが使用されるときと比較して、少なくとも2倍、少なくとも3倍、少なくとも4倍またはそれ以上増加する。さらなる実施形態において、2対立遺伝子の標的化効率は、少なくとも0.2%、0.3%、0.4%、0.5%、0.6%、0.7%、0.8%、0.9%、1%、2%、3%、4%、もしくは5%、またはそれを超える。

一実施形態において、標的遺伝子座での標的遺伝子改変は、半接合性の遺伝子的に改変された細胞をもたらす。「半接合性」とは、標的遺伝子座の1つのみの対立遺伝子(すなわち、2つの相同染色体のうちの1つの染色体上の対立遺伝子)が存在するか、または1つの対立遺伝子のみが発現可能であり、機能的であることを意味する。他の実施形態において、標的遺伝子改変は、より一般に、複合ヘテロ接合性をもたらす。複合ヘテロ接合性は、標的遺伝子座の両方の対立遺伝子(すなわち、両方の相同染色体上の対立遺伝子)が改変されるが、それらは異なる方法(例えば、一方の対立遺伝子において挿入及びもう一方の対立遺伝子の不活性化または破壊)で改変される状況を含む。ある特定の実施形態において、ヌクレアーゼ剤を用いた標的化ベクター(例えば、LTVECを含む)の組み合わせた使用により、細胞において対象とするゲノム遺伝子座の半接合性の標的遺伝子改変をもたらす。ある特定の実施形態において、ヌクレアーゼ剤を用いた標的化ベクター(例えば、LTVECを含む)の組み合わせた使用により、細胞において対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性を形成する標的遺伝子改変をもたらす。一実施形態において、1つの染色体における対象とするゲノム遺伝子座での標的遺伝子改変は、内因性核酸配列の欠失及び挿入核酸の挿入を含む。他の実施形態において、標的遺伝子改変は、(1)2つの相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)第1の染色体における対象とするゲノム遺伝子座への挿入核酸の挿入及び第2の染色体における対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む。第1の染色体は、2つの相同染色体のうちの第1の相同染色体であり得、第2の染色体は、2つの相同染色体のうちの第2の相同染色体であり得る。他の実施形態において、標的改変は、(1)第1の相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失及び対象とするゲノム遺伝子座への挿入核酸の挿入、ならびに(2)第2の相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む。内因性核酸配列の破壊は、例えば、ヌクレアーゼ剤により形成される対象とするゲノム遺伝子座で二本鎖切断が非相同末端結合(NHEJ)媒介のDNA修復によって修復されるとき、これは対象とするゲノム遺伝子座で核酸配列の挿入または欠失を含む突然変異対立遺伝子を作製し、それにより、対象とするゲノム遺伝子座の破壊を生じることをもたらし得る。破壊の例には、対象とするゲノム遺伝子座で調節要素(例えば、プロモータまたはエンハンサー)の変更、ミスセンス突然変異、切断突然変異、ヌル突然変異、または(例えば、フレームシフト突然変異を生じる)少数のヌクレオチドの挿入もしくは欠失が含まれる。破壊の別例は、ナンセンス突然変異である。破壊は、対立遺伝子の不活性化(すなわち、機能の喪失)または喪失をもたらし得る。
ホモ接合性及び半接合性の標的遺伝子改変は、これらの突然変異を含む遺伝子的に改変された細胞が以下に論じられる遺伝子的に改変された動物を生み出すために使用されるとき、意図された標的遺伝子改変に対して非ヘテロ接合性(すなわち、ホモ接合性または半接合性)である遺伝子的に改変された動物を生み出すためのプロセスがより効率であり、繁殖ステップをあまり必要としないのであまり時間がかからないため、有利である。複合ヘテロ接合性または半接合性をもたらす標的遺伝子改変(例えば、一方の対立遺伝子において挿入及びもう一方の対立遺伝子の不活性化、破壊、または喪失)は、同じ理由により有利であり得る。
他の実施形態において、標的ゲノム改変は、対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性である改変された多能性細胞を形成する。他の実施形態において、標的ゲノム改変は、対象とするゲノム遺伝子座で半接合性である改変された多能性細胞を形成する。いくつかの実施形態において、1つの染色体における対象とするゲノム遺伝子座での標的遺伝子改変は、内因性核酸配列の欠失及び外因性核酸の挿入を含む。例えば、標的遺伝子改変は、(1)2つの相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)第1の染色体における対象とするゲノム遺伝子座への外因性核酸の挿入及び第2の染色体における対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含むことができる。第1の染色体は、2つの相同染色体のうちの第1の相同染色体であり得、第2の染色体は、2つの相同染色体のうちの第2の相同染色体であり得る。
41.該標的遺伝子改変が、(1)2つの相同染色体における該対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)第1の染色体における該対象とするゲノム遺伝子座への該第1の核酸の挿入及び第2の染色体における該対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む、実施形態39に記載の該方法。
81.該標的遺伝子改変が、(1)2つの相同染色体における対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)第1の染色体における対象とするゲノム遺伝子座への第1の核酸の挿入及び第2の染色体における対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む、実施形態79に記載の該方法。
実施例2:ラットにおけるゲノム遺伝子座の不活性化
2.1:エンドヌクレアーゼ剤を用いた内因性ゲノム遺伝子座の不活性化
内因性ラットゲノム遺伝子座で突然変異対立遺伝子を導入するために、本明細書に記載されるラットES細胞は、ZFN1及び2(またはTALEN1及び2)を発現する発現ベクター(またはmRNA)で電気穿孔される。これらのタンパク質は、約6bp〜約40bpだけ離れている、反対のストランド上でそれらの標的配列と結合する。二本鎖切断が、標的遺伝子座内に形成され、細胞が、非相同末端結合(NHEJ)による修復を試みている。多くの場合、NHEJは、欠失の形成をもたらし、しばしば、(ほとんどの場合、フレームシフト突然変異を生じることによって)遺伝子の機能を破壊する。突然変異対立遺伝子を含む陽性クローンを特定するために、薬物選択が行われないので、電気穿孔した細胞を低密度でプレーティングする。コロニーを選出し、突然変異が生じなかったかどうかを確認するために、標的部位でアッセイした(例えば、上述の対立遺伝子(MOA)アッセイの改変を用いて)。次いで、突然変異対立遺伝子を含む選択されたES細胞を宿主ラット胚、例えば、プレ桑実胚期または胞胚期のラット胚に導入し、代理母の子宮内に移植して、創始ラット(F0ラット)を作製する。続いて、創始ラットを野生型ラットと繁殖させて、突然変異対立遺伝子に対してヘテロ接合性であるF1子孫を作製する。ヘテロ接合性のF1ラットの交配により、突然変異対立遺伝子に対してホモ接合性の子孫を生み出すことができる。
3.2.(a)(i):ラットアポリポタンパク質E(ApoE)遺伝子座の標的化
ラットアポリポタンパク質E(ApoE)遺伝子座を標的として、ApoE機能を破壊した。ApoE遺伝子座の標的化は、ApoE遺伝子座に相同である5’及び3’相同性アームが隣接するlacZ−hUb−neoカセットを含む標的化ベクターを用いて行われた。図20は、ラットのApoE遺伝子座が、1.8kbの欠失と、プロタミンプロモータにより駆動されるCrei遺伝子を含む自己欠失カセットをさらに含む、lacZ−hUb−neoカセットの挿入とによって破壊された遺伝子的に改変されたラットのApoE遺伝子座を示す。電気穿孔法の条件は以下の通りであった:6ug DNA、2.05×10細胞、400V、200uF:342V、593usec;2i+10uM ROCKi中の15cmの2倍濃厚なneoR MEF上にプレーティング。
3.2.(b)(i):大きな標的化ベクター(LTC)を用いたラットアポリポタンパク質E(ApoE)遺伝子座の標的改変
約45kbのApoE遺伝子座に対して5’相同性アーム及び約23kbのApoE遺伝子座に対して3’相同性アームが隣接するlacZ−マウスPrm1−Creiカセットを含む大きな標的化ベクター(LTVEC)を用いて、ApoE遺伝子座の標識化が行われる。図22は、ApoE遺伝子座が、1.83kbの欠失と、lacZ遺伝子ならびにmPrm1−Creiカセット及びhUb−neo選択カセットを含む自己欠失カセットの挿入とによって破壊されたラットのApoE遺伝子座を示す。実施例3.2(a)(i)において用いられる方法を用いて、このベクターをラットES細胞に導入することができる。
3.3(a):ラットインターロイキン−2受容体ガンマ(IL2r−γ)遺伝子座の標的化
ラットインターロイキン−2受容体ガンマ(IL2r−γまたはIl2rg)遺伝子座を標的として、IL2r−γ機能を破壊した。IL2r−γは、IL−2、IL−4、IL−7、IL−9、IL−15、IL−21によるシグナル伝達において重要な役割を果たし、IL2r−γにおける突然変異は、T、B、及びNK細胞の成長において著しい欠陥と関連する。
IL2r−γ遺伝子座の標的化は、図24に示されるIL2r−γ遺伝子座に相同である5’及び3’相同性アームが隣接するeGFP−hUb−neoカセットを含む標的化ベクターを用いて行われた。図25は、ラットのIL2r−γ遺伝子座が3.2kbの欠失により破壊されたラットのIL2r−γ遺伝子座のゲノム構造を示す。標的とするIL2r−γ遺伝子座はまた、eGFP遺伝子、ならびにマウスプロタミン1プロモータに作動可能に連結されたCrei及びネオマイシン耐性遺伝子に作動可能に連結されたhUbプロモータを含む薬物選択カセットを含む自己欠失カセット、からなった。
3.3(b):ラットインターロイキン−2受容体ガンマ(IL2r−γ)遺伝子座の標的改変
ラットインターロイキン−2受容体ガンマ(IL2r−γ)遺伝子座を標的として、ラットにおけるIL2r−γ機能を破壊した。図25は、ラットIl2rg遺伝子座のゲノム構造(図25の上パネル)及び遺伝子座に導入された標的化ベクター(図25の下パネル)を示す。eGFPは、遺伝子的に改変されたラットの免疫表現型がFACSを用いて試験され得るように、レポーターとして選択された。自己欠失カセット(hUb−Neo、Prm1−Cre)を用いて、薬物選択カセット及びF0ラットの雄胚細胞において特異的なCre遺伝子を欠失した。さらに、標的化ベクターは、ラットIl2rg遺伝子の全コード領域(約3.2kb)を欠失するように設計された。
例えば、本発明は、好ましい実施形態において、以下の項目を提供する。
(項目1)
マウス細胞またはヒト細胞において対象とするゲノム遺伝子座でゲノムを改変するための方法であって、大きな標的化ベクター(LTVEC)の存在下で、前記ゲノムを、Casタンパク質、前記対象とするゲノム遺伝子座の標的配列にハイブリダイズするCRISPR RNA、及びtracrRNAと接触させることを含み、
前記LTVECが、少なくとも10kbであり、前記対象とするゲノム遺伝子座の5’標的配列に相同である5’相同性アーム、及び前記対象とするゲノム遺伝子座の3’標的配列に相同である3’相同性アームが隣接する第1の核酸を含み、前記第1の核酸が、少なくとも30kbであり、かつ/または前記5’標的配列及び前記3’標的配列が少なくとも30kb離れており、
前記LTVECの存在下で、前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、及び前記tracrRNAと接触させた後、前記ゲノムが、前記対象とするゲノム遺伝子座で前記第1の核酸の挿入を含む標的遺伝子改変を含むように改変される、前記方法。
(項目2)
前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、前記tracrRNA、及び前記LTVECが、前記マウス細胞または前記ヒト細胞に導入される、項目1に記載の前記方法。
(項目3)
前記対象とするゲノム遺伝子座で前記標的遺伝子改変を含む、前記改変マウス細胞または前記改変ヒト細胞を特定することをさらに含む、項目1または2に記載の前記方法。
(項目4)
前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAが、単一転写産物の形態で一緒に導入される、項目2または3に記載の前記方法。
(項目5)
前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAが、別々に導入される、項目2または3に記載の前記方法。
(項目6)
(a)前記Casタンパク質が、タンパク質、前記Casタンパク質をコードするメッセンジャーRNA(mRNA)、または前記Casタンパク質をコードするDNAの形態で、前記マウス細胞または前記ヒト細胞に導入され、
(b)前記CRISPR RNAが、前記CRISPR RNAをコードするRNAまたはDNAの形態で、前記マウス細胞または前記ヒト細胞に導入され、かつ
(c)前記tracrRNAが、前記tracrRNAをコードするRNAまたはDNAの形態で、前記マウス細胞または前記ヒト細胞に導入される、項目2〜5のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目7)
前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、及び前記tracrRNAが、タンパク質−RNA複合体として、前記マウス細胞または前記ヒト細胞に導入される、項目6に記載の前記方法。
(項目8)
(a)前記Casタンパク質をコードする前記DNAが、前記Casタンパク質をコードする第2の核酸に作動可能に連結された第1のプロモータを含む第1の発現構築物の形態であり、
(b)前記CRISPR RNAをコードする前記DNAが、前記CRISPR RNAをコードする第3の核酸に作動可能に連結された第2のプロモータを含む第2の発現構築物の形態であり、かつ
(c)前記tracrRNAをコードする前記DNAが、前記tracrRNAをコードする第4の核酸に作動可能に連結された第3のプロモータを含む第3の発現構築物の形態であり、
前記第1、第2、及び第3のプロモータが、前記マウス細胞または前記ヒト細胞において活性である、項目6に記載の前記方法。
(項目9)
前記第1、第2、及び/または第3の発現構築物が、単一の核酸分子上にある、項目8に記載の前記方法。
(項目10)
(a)前記Casタンパク質をコードする前記DNAが、前記Casタンパク質をコードする第2の核酸に作動可能に連結された第1のプロモータを含む、第1の発現構築物の形態であり、かつ
(b)前記CRISPR RNAをコードする前記DNA及び前記tracrRNAをコードする前記DNAが、単一の転写産物において前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAを含むgRNAをコードする第3の核酸に作動可能に連結された第2のプロモータを含む、第2の発現構築物の形態であり、
前記第1及び第2のプロモータが、前記マウス細胞または前記ヒト細胞において活性である、項目6に記載の前記方法。
(項目11)
前記第1及び前記第2の発現構築物が、単一の核酸分子上にある、項目10に記載の前記方法。
(項目12)
前記標的遺伝子改変が、単一ステップにおける前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、及び前記対象とするゲノム遺伝子座での前記第1の核酸の挿入を同時に含む、項目1〜11のいずれかに記載の前記方法。
(項目13)
前記欠失した内因性核酸配列が約30kb〜約110kbであり、前記挿入された第1の核酸が約40kb〜約140kbである、項目12に記載の前記方法。
(項目14)
前記標的遺伝子改変が、2対立遺伝子の遺伝子改変である、項目1〜13のいずれかに記載の前記方法。
(項目15)
前記2対立遺伝子の遺伝子改変が、2つの相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失及び前記第1の核酸の挿入を含む、項目14に記載の前記方法。
(項目16)
前記改変マウス細胞または前記改変ヒト細胞が、前記対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性である、項目14に記載の前記方法。
(項目17)
前記改変マウス細胞または前記改変ヒト細胞が、前記対象とするゲノム遺伝子座で半接合性である、項目14に記載の前記方法。
(項目18)
1つの染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での前記標的遺伝子改変が、内因性核酸配列の欠失及び前記第1の核酸の挿入を含む、項目16に記載の前記方法。
(項目19)
前記標的遺伝子改変が、(1)第1及び第2の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)前記第1の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座への前記第1の核酸の挿入、及び前記第2の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む、項目16に記載の前記方法。
(項目20)
前記LTVECが、少なくとも15kb、少なくとも20kb、少なくとも30kb、少なくとも40kb、少なくとも50kb、少なくとも60kb、少なくとも70kb、少なくとも80kb、または少なくとも90kbである、項目1〜19のいずれかに記載の前記方法。
(項目21)
前記LTVECが、少なくとも100kb、少なくとも150kb、または少なくとも200kbである、項目1〜20のいずれかに記載の前記方法。
(項目22)
前記第1の核酸が、少なくとも20kb、少なくとも30kb、少なくとも40kb、少なくとも50kb、少なくとも60kb、少なくとも70kb、少なくとも80kb、少なくとも90kb、少なくとも100kb、少なくとも150kb、少なくとも200kb、少なくとも250kb、または少なくとも300kbである、項目1〜21のいずれかに記載の前記方法。
(項目23)
前記第1の核酸が、約40kb〜約140kbである、項目1〜22のいずれかに記載の前記方法。
(項目24)
前記マウス細胞または前記ヒト細胞が、初代細胞または不死化細胞である、項目1〜23のいずれかに記載の前記方法。
(項目25)
前記マウス細胞または前記ヒト細胞が多能性細胞である、項目1〜23のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目26)
前記マウス多能性細胞がマウス胚幹(ES)細胞である、項目25に記載の前記方法。
(項目27)
前記ヒト多能性細胞が、ヒト胚幹(ES)細胞、ヒト成人幹細胞、発達的に制限された(developmentally restricted)ヒト前駆細胞、またはヒト誘導多能性幹(iPS)細胞である、項目25に記載の前記方法。
(項目28)
前記ヒトiPS細胞が、基本培地及び補充物を含む培地において維持され、前記培地が、
(a)白血病抑制因子(LIF)ポリペプチド、
(b)グリコーゲン合成酵素キナーゼ(GSK3)阻害剤、及び
(c)MEK阻害剤を含み、
前記培地が、約175mOsm/kg〜約280mOsm/kgのオスモル濃度を有する、項目27に記載の前記方法。
(項目29)
前記Casタンパク質がCas9である、項目1〜28のいずれかに記載の前記方法。(項目30)
前記標的配列には、プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)配列が直ぐ隣接する、項目1〜29のいずれかに記載の前記方法。
(項目31)
前記LTVECの前記5’及び前記3’相同性アームの合計が、約10kb〜約150kbである、項目1〜30のいずれかに記載の前記方法。
(項目32)
前記LTVECの前記5’及び前記3’相同性アームの合計が、約10kb〜約20kb、約20kb〜約40kb、約40kb〜約60kb、約60kb〜約80kb、約80kb〜約100kb、約100kb〜約120kb、または約120kb〜150kbである、項目1〜31のいずれかに記載の前記方法。
(項目33)
前記標的遺伝子改変が、
(a)相同もしくはオーソロガス核酸配列による内因性核酸配列の置換、
(b)内因性核酸配列の欠失、
(c)内因性核酸配列の欠失であって、
約5kb〜約10kb、約10kb〜約20kb、約20kb〜約40kb、約40kb〜約60kb、約60kb〜約80kb、約80kb〜約100kb、約100kb〜約150kb、または約150kb〜約200kb、約200kb〜約300kb、約300kb〜約400kb、約400kb〜約500kb、約500kb〜約1Mb、約1Mb〜約1.5Mb、約1.5Mb〜約2Mb、約2Mb〜約2.5Mb、または約2.5Mb〜約3Mbの範囲に及ぶ、内因性核酸配列の欠失、
(d)外因性核酸配列の挿入、
(e)約5kb〜約10kb、約10kb〜約20kb、約20kb〜約40kb、約40kb〜約60kb、約60kb〜約80kb、約80kb〜約100kb、約100kb〜約150kb、約150kb〜約200kb、約200kb〜約250kb、約250kb〜約300kb、約300kb〜約350kb、または約350kb〜約400kbの範囲に及ぶ、外因性核酸配列の挿入、
(f)相同もしくはオーソロガス核酸配列を含む外因性核酸配列の挿入、
(g)ヒト及び非ヒト核酸配列を含むキメラ核酸配列の挿入、
(h)部位特異的リコンビナーゼ標的配列が隣接する条件付き対立遺伝子の挿入、
(i)前記多能性細胞において活性なプロモータに作動可能に連結された選択可能なマーカーまたはレポーター遺伝子の挿入、または、
(j)それらの組み合わせ、を含む、項目1〜32のいずれかに記載の前記方法。
(項目34)
前記5’標的配列及び前記3’標的配列が、少なくとも5kbであるが3Mb未満だけ離れている、項目1〜33のいずれかに記載の前記方法。
(項目35)
前記5’標的配列及び前記3’標的配列が、少なくとも5kbであるが10kb未満、少なくとも10kbであるが20kb未満、少なくとも20kbであるが40kb未満、少なくとも40kbであるが60kb未満、少なくとも60kbであるが80kb未満、少なくとも約80kbであるが100kb未満、少なくとも100kbであるが150kb未満、または少なくとも150kbであるが200kb未満、少なくとも約200kbであるが約300kb未満、少なくとも約300kbであるが約400kb未満、少なくとも約400kbであるが約500kb未満、少なくとも約500kbであるが約1Mb未満、少なくとも約1Mbであるが約1.5Mb未満、少なくとも約1.5Mbであるが約2Mb未満、少なくとも約2Mbであるが約2.5Mb未満、または少なくとも約2.5Mbであるが約3Mb未満だけ離れている、項目1〜34のいずれかに記載の前記方法。
(項目36)
前記5’標的配列及び前記3’標的配列が、少なくとも20kb、少なくとも30kb、少なくとも40kb、少なくとも50kb、少なくとも60kb、少なくとも70kb、少なくとも80kb、少なくとも90kb、少なくとも100kb、少なくとも110kb、少なくとも120kb、少なくとも130kb、少なくとも140kb、少なくとも150kb、少なくとも160kb、少なくとも170kb、少なくとも180kb、少なくとも190kb、または少なくとも200kbだけ離れている、項目1〜35のいずれかに記載の前記方法。
(項目37)
前記5’標的配列及び前記3’標的配列が、約30kb〜約110kbだけ離れている、項目1〜36のいずれかに記載の前記方法。
(項目38)
前記対象とするゲノム遺伝子座が、インターロイキン−2受容体ガンマ遺伝子座、ApoE遺伝子座、Rag1遺伝子座、Rag2遺伝子座、Rag1遺伝子座及びRag2遺伝子座の両方、Adamts5遺伝子座、Trpa1遺伝子座、Folh1遺伝子座、Erbb4遺伝子座、Lrp5遺伝子座、C5(Hc)遺伝子座、Ror1遺伝子座、またはDpp4遺伝子座を含む、項目1〜37のいずれかに記載の前記方法。
(項目39)
前記対象とするゲノム遺伝子座が、染色体外DNAを含む、項目1〜38のいずれかに記載の前記方法。
(項目40)
対象とするゲノム遺伝子座で標的遺伝子改変を含むF0世代マウスを生み出すための方法であって、
(a)改変マウスES細胞を形成するために、大きな標的化ベクター(LTVEC)の存在下で、マウスES細胞における前記ゲノムを、Casタンパク質、前記対象とするゲノム遺伝子座の標的配列にハイブリダイズするCRISPR RNA、及びtracrRNAと接触させることであって、
前記LTVECが、少なくとも10kbであり、前記対象とするゲノム遺伝子座の5’標的配列に相同である5’相同性アーム、及び前記対象とするゲノム遺伝子座の3’標的配列に相同である3’相同性アームが隣接する第1の核酸を含み、前記第1の核酸が、少なくとも30kbであり、かつ/または前記5’標的配列及び前記3’標的配列が少なくとも30kb離れている、接触させることと、
(b)前記対象とするゲノム遺伝子座で前記標的遺伝子改変を含む前記改変マウスES細胞を特定することと、
(c)前記改変マウスES細胞をマウス宿主胚に導入することと、
(d)代理母において前記マウス宿主胚を懐胎させることと、を含み、
前記代理母が、前記対象とするゲノム遺伝子座で前記標的遺伝子改変を含む前記F0世代マウスを生み出す、前記方法。
(項目41)
前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAが、単一転写産物の形態で一緒に導入される、項目40に記載の前記方法。
(項目42)
前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAが、別々に導入される、項目40に記載の前記方法。
(項目43)
(a)前記Casタンパク質が、タンパク質、前記Casタンパク質をコードするメッセンジャーRNA(mRNA)、または前記Casタンパク質をコードするDNAの形態で、前記マウスES細胞に導入され、
(b)前記CRISPR RNAが、前記CRISPR RNAをコードするRNAまたはDNAの形態で、前記マウスES細胞に導入され、かつ
(c)前記tracrRNAが、前記tracrRNAをコードするRNAまたはDNAの形態で、前記マウスES細胞に導入される、項目40〜42のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目44)
前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、及び前記tracrRNAが、タンパク質−RNA複合体として、前記マウスES細胞に導入される、項目43に記載の前記方法。
(項目45)
(a)前記Casタンパク質をコードする前記DNAが、前記Casタンパク質をコードする第2の核酸に作動可能に連結された第1のプロモータを含む第1の発現構築物の形態であり、
(b)前記CRISPR RNAをコードする前記DNAが、前記CRISPR RNAをコードする第3の核酸に作動可能に連結された第2のプロモータを含む第2の発現構築物の形態であり、かつ
(c)前記tracrRNAをコードする前記DNAが、前記tracrRNAをコードする第4の核酸に作動可能に連結された第3のプロモータを含む第3の発現構築物の形態であり、
前記第1、第2、及び第3のプロモータが、前記マウスES細胞において活性である、項目43に記載の前記方法。
(項目46)
前記第1、第2、及び第3の発現構築物が、単一の核酸分子上にある、項目45に記載の前記方法。
(項目47)
(a)前記Casタンパク質をコードする前記DNAが、前記Casタンパク質をコードする第2の核酸に作動可能に連結された第1のプロモータを含む、第1の発現構築物の形態であり、かつ
(b)前記CRISPR RNAをコードする前記DNA及び前記tracrRNAをコードする前記DNAが、単一の転写産物において前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAを含むgRNAをコードする第3の核酸に作動可能に連結された第2のプロモータを含む、第2の発現構築物の形態であり、
前記第1及び第2のプロモータが、前記マウスES細胞において活性である、項目43に記載の前記方法。
(項目48)
前記第1及び前記第2の発現構築物が、単一の核酸分子上にある、項目47に記載の前記方法。
(項目49)
前記標的遺伝子改変が、前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、及び前記対象とするゲノム遺伝子座での前記第1の核酸の挿入を同時に含む、項目40〜48のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目50)
前記標的遺伝子改変が、2対立遺伝子の遺伝子改変である、項目40〜49のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目51)
前記2対立遺伝子の遺伝子改変が、2つの相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失及び前記第1の核酸の挿入を含む、項目50に記載の前記方法。
(項目52)
前記改変マウスES細胞が、前記対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性である、項目50に記載の前記方法。
(項目53)
前記改変マウスES細胞が、前記対象とするゲノム遺伝子座で半接合性である、項目50に記載の前記方法。
(項目54)
1つの染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での前記標的遺伝子改変が、内因性核酸配列の欠失及び前記第1の核酸の挿入を含む、項目52に記載の前記方法。
(項目55)
前記標的遺伝子改変が、(1)第1及び第2の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)前記第1の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座への前記第1の核酸の挿入及び前記第2の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む、項目52に記載の前記方法。
(項目56)
前記Casタンパク質がCas9である、項目40〜55のいずれか一項に記載の前記方法。
(項目57)
真核細胞において対象とするゲノム遺伝子座でゲノムを改変するための方法であって、大きな標的化ベクター(LTVEC)の存在下で、前記ゲノムを、Casタンパク質、前記対象とするゲノム遺伝子座の標的配列にハイブリダイズするCRISPR RNA、及びtracrRNAと接触させることを含み、
前記LTVECが、少なくとも10kbであり、前記対象とするゲノム遺伝子座の5’標的配列に相同である5’相同性アーム、及び前記対象とするゲノム遺伝子座の3’標的配列に相同である3’相同性アームが隣接する第1の核酸を含み、前記第1の核酸が、少なくとも30kbであり、かつ/または前記5’標的配列及び前記3’標的配列が少なくとも30kb離れており、
前記真核細胞がラット細胞ではなく、
前記LTVECの存在下で、前記Casタンパク質、前記CRISPR RNA、及び前記tracrRNAと接触させた後、前記ゲノムが、前記対象とするゲノム遺伝子座での前記第1の核酸の挿入を含む標的遺伝子改変を含むように改変される、前記方法。
(項目58)
前記非ラット真核細胞が、多能性細胞、非多能性細胞、哺乳動物細胞、ヒト細胞、非ヒト哺乳動物細胞、齧歯類細胞、マウス細胞、ハムスター細胞、または線維芽細胞である、項目57に記載の前記方法。
(項目59)
前記非ラット真核細胞が、初代細胞または不死化細胞である、項目57に記載の前記方法。

Claims (58)

  1. 多能性細胞における対象とするゲノム遺伝子座でのゲノムを改変するためのインビトロの方法であって、
    前記多能性細胞に、Cas9タンパク質、前記対象とするゲノム遺伝子座のCRISPR標的配列にハイブリダイズするCRISPR RNA、tracrRNA、及び大きな標的化ベクター(LTVEC)を導入することを含み、
    前記LTVECが、少なくとも10kbのサイズであり、かつ
    (i)前記対象とするゲノム遺伝子座の5’標的配列に相同である5’相同性アーム;及び
    (ii)前記対象とするゲノム遺伝子座の3’標的配列に相同である3’相同性アームが隣接する挿入核酸を含み、
    前記多能性細胞は、非ヒト哺乳動物多能性細胞またはヒト誘導多能性幹細胞であり、
    前記多能性細胞に、前記Cas9タンパク質、前記CRISPR RNA、前記tracrRNA、及び前記LTVECを導入した後、前記多能性細胞のゲノムが、前記対象とするゲノム遺伝子座の領域の少なくとも30kbの欠失及び/または前記対象とするゲノム遺伝子座の前記挿入核酸の少なくとも30kbの挿入を含む標的遺伝子改変を含むように改変され、ここで、前記標的遺伝子改変が前記対象とするゲノム遺伝子座の前記挿入核酸の少なくとも30kbの挿入を含む場合、前記LTVECは少なくとも30kbの大きさである、方法。
  2. 前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAが、前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAを含む単一の核酸分子として導入される、請求項1に記載の方法。
  3. 前記単一の核酸分子が、単一ガイドRNA(sgRNA)の形態で一緒に融合した前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAを含む、請求項2に記載の方法。
  4. 前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAが、別々に導入される、請求項1に記載の方法。
  5. (a)前記Cas9タンパク質が、タンパク質、前記Cas9タンパク質をコードするメッセンジャーRNA(mRNA)、または前記Cas9タンパク質をコードするDNAの形態で導入され、
    (b)前記CRISPR RNAが、前記CRISPR RNAをコードするRNAまたはDNAの形態で導入され、かつ
    (c)前記tracrRNAが、前記tracrRNAをコードするRNAまたはDNAの形態で導入される、請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
  6. 前記Cas9タンパク質、前記CRISPR RNA、及び前記tracrRNAが、タンパク質−RNA複合体として導入される、請求項5に記載の方法。
  7. (a)前記Cas9タンパク質をコードする前記DNAが、前記Cas9タンパク質をコードする第1の核酸に作動可能に連結された第1のプロモータを含む第1の発現構築物の形態であり、
    (b)前記CRISPR RNAをコードする前記DNAが、前記CRISPR RNAをコードする第2の核酸に作動可能に連結された第2のプロモータを含む第2の発現構築物の形態であり、かつ
    (c)前記tracrRNAをコードする前記DNAが、前記tracrRNAをコードする第3の核酸に作動可能に連結された第3のプロモータを含む第3の発現構築物の形態であり、
    ここで、前記第1、第2、及び第3のプロモータが、前記多能性細胞において活性であり、
    前記第1、第2及び第3の発現構築物は、単一の核酸分子上にあるか、または複数の核酸分子上にある、請求項5に記載の方法。
  8. (a)前記Cas9タンパク質をコードする前記DNAが、前記Cas9タンパク質をコードする第1の核酸に作動可能に連結された第1のプロモータを含む第1の発現構築物の形態であり、かつ
    (b)前記CRISPR RNAをコードする前記DNA及び前記tracrRNAをコードする前記DNAが、前記CRISPR RNA及び前記tracrRNAを含むgRNAをコードする第2の核酸に作動可能に連結された第2のプロモータを含む第2の発現構築物の形態であり、
    ここで、前記第1及び第2のプロモータが、前記多能性細胞において活性であり、
    前記第1及び第2の発現構築物は、単一の核酸分子上にあるか、または別々の核酸分子上にある、請求項5に記載の方法。
  9. 前記標的遺伝子改変が、前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、及び前記対象とするゲノム遺伝子座での前記挿入核酸の挿入を同時に含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載の方法。
  10. 前記欠失した内因性核酸配列が30kb〜110kbであり、前記挿入核酸が40kb〜140kbである、請求項9に記載の方法。
  11. 前記標的遺伝子改変が、2対立遺伝子の遺伝子改変である、請求項1〜10のいずれか1項に記載の方法。
  12. 前記2対立遺伝子の遺伝子改変が、2つの相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失及び前記挿入核酸の挿入を含む、請求項11に記載の方法。
  13. 前記改変多能性細胞が、前記対象とするゲノム遺伝子座で複合ヘテロ接合性であるか、または半接合性である、請求項11に記載の方法。
  14. 1つの染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での前記標的遺伝子改変が、内因性核酸配列の欠失及び前記挿入核酸の挿入を含む、請求項13に記載の方法。
  15. 前記標的遺伝子改変が、(1)第1及び第2の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座での内因性核酸配列の欠失、ならびに(2)前記第1の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座への前記挿入核酸の挿入、及び前記第2の相同染色体における前記対象とするゲノム遺伝子座の破壊を含む、請求項14に記載の方法。
  16. 前記LTVECが、少なくとも40kbであるか;あるいは
    前記標的遺伝子改変が、目的のゲノム遺伝子座の領域の欠失を含み、ここで、前記欠失が少なくとも30kbであり、かつ前記LTVECが、少なくとも15kbである、
    請求項1〜15のいずれか1項に記載の方法。
  17. 前記標的遺伝子改変が、前記挿入核酸の挿入を含み、前記挿入核酸が、少なくとも40kbであるか;あるいは
    前記標的遺伝子改変が、対象とするゲノム遺伝子座の領域の欠失および前記挿入核酸の挿入を含み、ここで、前記欠失が少なくとも30kbであり、かつ前記挿入核酸が、少なくとも10kbである、請求項1〜16のいずれか1項に記載の方法。
  18. 前記挿入核酸が、40kb〜140kbである、請求項1〜17のいずれか1項に記載の方法。
  19. 前記CRISPR標的配列には、プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)配列が直ぐ隣接する、請求項1〜18のいずれか1項に記載の方法。
  20. 前記LTVECの前記5’及び前記3’相同性アームの合計が、10kb〜150kbである、請求項1〜19のいずれか1項に記載の方法。
  21. 前記LTVECの前記5’及び前記3’相同性アームの合計が、30kb〜150kbである、請求項20に記載の方法。
  22. 前記LTVECが、100kb〜300kbの長さである、請求項1〜21のいずれか1項に記載の方法。
  23. 前記標的遺伝子改変が、
    (a)相同またはオーソロガス核酸配列による内因性核酸配列の置換、
    (b)内因性核酸配列の欠失、
    (c)内因性核酸配列の欠失であって、
    少なくとも30kb〜3Mbの範囲に及ぶ、内因性核酸配列の欠失、
    (d)外因性核酸配列の挿入、
    (e)少なくとも30kb〜400kbの範囲に及ぶ、外因性核酸配列の挿入、
    (f)相同またはオーソロガス核酸配列を含む外因性核酸配列の挿入、
    (g)ヒト及び非ヒト核酸配列を含むキメラ核酸配列の挿入、
    (h)部位特異的リコンビナーゼ標的配列が隣接する条件付き対立遺伝子の挿入、
    (i)前記多能性細胞において活性なプロモータに作動可能に連結された選択可能なマーカーまたはレポーター遺伝子の挿入、あるいは、
    (j)それらの組み合わせ、を含む、請求項1〜22のいずれか1項に記載の方法。
  24. 前記標的遺伝子改変が、前記対象とするゲノム遺伝子座の領域の欠失を含み、
    前記欠失が、少なくとも40kbであるか;あるいは
    前記標的遺伝子改変が、前記対象とするゲノム遺伝子座における前記挿入核酸の挿入および前記対象とするゲノム遺伝子座の領域の欠失を含み、前記挿入は少なくとも30kbであり、かつ前記欠失は、少なくとも10kbである、
    請求項1〜23のいずれか1項に記載の方法。
  25. 欠失する前記ゲノム遺伝子座の領域が、30kb〜110kbである、請求項1〜24のいずれか1項に記載の方法。
  26. 前記標的遺伝子改変が、前記対象とするゲノム遺伝子座の領域の欠失と、前記挿入核酸の前記対象とするゲノム遺伝子座での挿入とを含み、前記欠失が少なくとも30kbであり、かつ前記挿入が少なくとも30kbである、請求項1〜25のいずれか1項に記載の方法。
  27. 前記LTVECが100kb〜300kbであり、前記5’及び前記3’相同性アームの合計が、30kb〜150kbであり、前記標的遺伝子改変が、前記対象とするゲノム遺伝子座の領域の欠失と、前記挿入核酸の前記対象とするゲノム遺伝子座での挿入とを含み、前記欠失が30kb〜110kbであり、前記挿入が40kb〜140kbである、請求項1〜26のいずれか1項に記載の方法。
  28. 前記対象とするゲノム遺伝子座が、前記多能性細胞に対して内因性である、請求項1〜27のいずれか1項に記載の方法。
  29. 前記対象とするゲノム遺伝子座が、前記多能性細胞の前記ゲノムに組み込まれたDNAの異種または外因性セグメントを含む、請求項1〜27のいずれか1項に記載の方法。
  30. 前記対象とするゲノム遺伝子座が、免疫グロブリン遺伝子座である、請求項1〜29のいずれか1項に記載の方法。
  31. 前記免疫グロブリン遺伝子座が、哺乳動物免疫グロブリン重鎖可変領域アミノ酸配列をコードする、請求項30に記載の方法。
  32. 前記免疫グロブリン遺伝子座が、哺乳動物免疫グロブリン軽鎖可変領域アミノ酸配列をコードする、請求項30に記載の方法。
  33. 前記免疫グロブリン遺伝子座が、再配列されない哺乳動物λ及び/またはκ軽鎖可変領域核酸配列を含む、請求項32に記載の方法。
  34. 前記免疫グロブリン遺伝子座が、再配列される哺乳動物λ及び/またはκ軽鎖可変領域核酸配列を含む、請求項32に記載の方法。
  35. 前記対象とするゲノム遺伝子座が、T細胞受容体遺伝子座である、請求項1〜29のいずれか1項に記載の方法。
  36. 前記T細胞受容体遺伝子座が、T細胞受容体アルファ遺伝子座である、請求項35に記載の方法。
  37. 前記対象とするゲノム遺伝子座が、インターロイキン−2受容体ガンマ遺伝子座、ApoE遺伝子座、Rag1遺伝子座、Rag2遺伝子座、Rag1遺伝子座及びRag2遺伝子座の両方、Adamts5遺伝子座、Trpa1遺伝子座、Folh1遺伝子座、Erbb4遺伝子座、Lrp5遺伝子座、C5(Hc)遺伝子座、Ror1遺伝子座、またはDpp4遺伝子座を含む、請求項1〜29のいずれか1項に記載の方法。
  38. 前記挿入核酸が、ヒト免疫グロブリン重鎖可変領域のアミノ酸配列をコードするゲノム核酸配列を含む、請求項1〜37のいずれか1項に記載の方法。
  39. 前記挿入核酸が、V 1−2、V 1−3、V 1−8、V 1−18、V 1−24、V 1−45、V 1−46、V 1−58、V 1−69、V 2−5、V 2−26、V 2−70、V 3−7、V 3−9、V 3−11、V 3−13、V 3−15、V 3−16、V 3−20、V 3−21、V 3−23、V 3−30、V 3−30−3、V 3−30−5、V 3−33、V 3−35、V 3−38、V 3−43、V 3−48、V 3−49、V 3−53、V 3−64、V 3−66、V 3−72、V 3−73、V 3−74、V 4−4、V 4−28、V 4−30−1、V 4−30−2、V 4−30−4、V 4−31、V 4−34、V 4−39、V 4−59、V 4−61、V 5−51、V 6−1、V 7−4−1、V 7−81、またはそれらの組み合わせを含む1つ以上の機能的なヒトV 遺伝子セグメントを含む、請求項38に記載の方法。
  40. 前記挿入核酸が、D1−1、D1−7、D1−14、D1−20、D1−26、D2−2、D2−8、D2−15、D2−21、D3−3、D3−9、D3−10、D3−16、D3−22、D4−4、D4−11、D4−17、D4−23、D5−12、D5−5、D5−18、D5−24、D6−6、D6−13、D6−19、D6−25、D7−27、またはそれらの組み合わせを含む1つ以上の機能的なヒトD遺伝子セグメントを含む、請求項38または39に記載の方法。
  41. 前記挿入核酸が、J 1、J 2、J 3、J 4、J 5、J 6、またはそれらの組み合わせを含む1つ以上の機能的なJ 遺伝子セグメントを含む、請求項38〜40のいずれか1項に記載の方法。
  42. 前記挿入核酸が、ヒト免疫グロブリン軽鎖可変領域のアミノ酸配列をコードするゲノム核酸配列を含む、請求項1〜37のいずれか1項に記載の方法。
  43. 前記挿入核酸が、Vκ4−1、Vκ5−2、Vκ7−3、Vκ2−4、Vκ1−5、Vκ1−6、Vκ3−7、Vκ1−8、Vκ1−9、Vκ2−10、Vκ3−11、Vκ1−12、Vκ1−13、Vκ2−14、Vκ3−15、Vκ1−16、Vκ1−17、Vκ2−18、Vκ2−19、Vκ3−20、Vκ6−21、Vκ1−22、Vκ1−23、Vκ2−24、Vκ3−25、Vκ2−26、Vκ1−27、Vκ2−28、Vκ2−29、Vκ2−30、Vκ3−31、Vκ1−32、Vκ1−33、Vκ3−34、Vκ1−35、Vκ2−36、Vκ1−37、Vκ2−38、Vκ1−39、Vκ2−40、またはそれらの組み合わせを含む1つ以上のヒトVκ遺伝子セグメントを含む、請求項42に記載の方法。
  44. 前記挿入核酸が、Vλ3−1、Vλ4−3、Vλ2−8、Vλ3−9、Vλ3−10、Vλ2−11、Vλ3−12、Vλ2−14、Vλ3−16、Vλ2−18、Vλ3−19、Vλ3−21、Vλ3−22、Vλ2−23、Vλ3−25、Vλ3−27またはそれらの組み合わせを含む1つ以上のヒトVλ遺伝子セグメントを含む、請求項42または43に記載の方法。
  45. 前記挿入核酸が、Jκ1、Jκ2、Jκ3、Jκ4、Jκ5、またはそれらの組み合わせを含む1つ以上のヒトJκ遺伝子セグメントを含む、請求項42〜44のいずれか1項に記載の方法。
  46. 前記挿入核酸が、ヒトT細胞受容体の少なくとも1つの領域をコードするポリヌクレオチドを含む、請求項1〜37のいずれか1項に記載の方法。
  47. 前記T細胞受容体が、T細胞受容体アルファである、請求項46に記載の方法。
  48. 前記挿入核酸が、少なくとも1つの疾患対立遺伝子を含む、請求項1〜37のいずれか1項に記載の方法。
  49. 前記挿入核酸が、ヒト遺伝子の少なくとも1つのヒト疾患対立遺伝子を含む、請求項48に記載の方法。
  50. 前記多能性細胞が非ヒト哺乳動物多能性細胞であり、前記標的遺伝子改変により、(a)相同もしくはオーソロガスなヒト核酸配列の挿入、(b)相同もしくはオーソロガスなヒト核酸配列による内因性核酸配列の置換、または(c)それらの組み合わせを含むヒト化ゲノム遺伝子座がもたらされる、請求項1〜49のいずれか1項に記載の方法。
  51. 前記多能性細胞が非ヒト哺乳動物多能性細胞であり、前記標的遺伝子改変が、相同もしくはオーソロガスなヒト核酸配列による内因性核酸配列の置換を含む、請求項50に記載の方法。
  52. 前記哺乳動物多能性細胞が、ヒト誘導多能性幹細胞である、請求項1〜51のいずれか1項に記載の方法。
  53. 前記ヒト誘導多能性幹細胞が、基本培地及び補充物を含む培地において維持され、前記培地は、
    (a)白血病抑制因子(LIF)ポリペプチド、
    (b)グリコーゲン合成酵素キナーゼ(GSK3)阻害剤、及び
    (c)MEK阻害剤
    を含み、前記基本培地は、180mOsm/kg〜250mOsm/kgのオスモル濃度を有する、請求項52に記載の方法。
  54. 前記哺乳動物多能性細胞が、齧歯類多能性細胞である、請求項1〜51のいずれか1項に記載の方法。
  55. 前記齧歯類多能性細胞が、ラット胚幹(ES)細胞またはマウスES細胞である、請求項54に記載の方法。
  56. 前記齧歯類多能性細胞が、ラットES細胞である、請求項55に記載の方法。
  57. 前記ラットES細胞は、分裂期に不活性化したマウス胎児線維芽細胞のフィーダー細胞層上で、表3に示される2i培地により、胚盤胞副産物を培養することによって得ることができ、
    前記ラットES細胞は、c−Mycの発現を欠き、
    前記ラットES細胞は、培養物中で浮遊する球形コロニーを形成し、
    前記ラットES細胞は、正常な核型を有し、
    前記標的遺伝子改変は、生殖細胞系列を通して伝達されることが可能である、請求項56に記載の方法。
  58. (a)前記対象とするゲノム遺伝子座で前記標的遺伝子改変を含む、改変されたラットES細胞を特定することと、
    (b)前記改変されたラットES細胞をラット宿主胚に導入することと、
    (c)代理母において前記ラット宿主胚を懐胎させることと
    をさらに含み、前記代理母が、前記対象とするゲノム遺伝子座で前記標的遺伝子改変を含むF0世代ラットを生み出す、請求項56または57に記載の方法。
JP2016147146A 2013-12-11 2016-07-27 ゲノムの標的改変のための方法及び組成物 Active JP6517755B2 (ja)

Applications Claiming Priority (12)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201361914768P 2013-12-11 2013-12-11
US61/914,768 2013-12-11
US201462017416P 2014-06-26 2014-06-26
US62/017,416 2014-06-26
US201462029261P 2014-07-25 2014-07-25
US62/029,261 2014-07-25
US201462052906P 2014-09-19 2014-09-19
US62/052,906 2014-09-19
US201462059527P 2014-10-03 2014-10-03
US62/059,527 2014-10-03
US201462064384P 2014-10-15 2014-10-15
US62/064,384 2014-10-15

Related Parent Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2016538790A Division JP6174811B2 (ja) 2013-12-11 2014-10-15 ゲノムの標的改変のための方法及び組成物

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2019079554A Division JP6670412B2 (ja) 2013-12-11 2019-04-18 ゲノムの標的改変のための方法及び組成物

Publications (3)

Publication Number Publication Date
JP2016198110A JP2016198110A (ja) 2016-12-01
JP2016198110A5 true JP2016198110A5 (ja) 2017-11-24
JP6517755B2 JP6517755B2 (ja) 2019-05-22

Family

ID=51830654

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2016538790A Active JP6174811B2 (ja) 2013-12-11 2014-10-15 ゲノムの標的改変のための方法及び組成物
JP2016147146A Active JP6517755B2 (ja) 2013-12-11 2016-07-27 ゲノムの標的改変のための方法及び組成物
JP2019079554A Active JP6670412B2 (ja) 2013-12-11 2019-04-18 ゲノムの標的改変のための方法及び組成物

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2016538790A Active JP6174811B2 (ja) 2013-12-11 2014-10-15 ゲノムの標的改変のための方法及び組成物

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2019079554A Active JP6670412B2 (ja) 2013-12-11 2019-04-18 ゲノムの標的改変のための方法及び組成物

Country Status (12)

Country Link
US (7) US9546384B2 (ja)
JP (3) JP6174811B2 (ja)
KR (2) KR101773782B1 (ja)
CN (2) CN110951779B (ja)
AU (3) AU2014360811B2 (ja)
BR (1) BR112016013400B1 (ja)
CA (1) CA2933433C (ja)
IL (1) IL245674B (ja)
MX (2) MX388127B (ja)
RU (2) RU2725520C2 (ja)
SG (1) SG10201700961TA (ja)
WO (1) WO2015088643A1 (ja)

Families Citing this family (202)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6596541B2 (en) 2000-10-31 2003-07-22 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods of modifying eukaryotic cells
US20050144655A1 (en) 2000-10-31 2005-06-30 Economides Aris N. Methods of modifying eukaryotic cells
WO2011159847A2 (en) 2010-06-15 2011-12-22 The Regents Of The University Of California Receptor tyrosine kinase-like orphan receptor 1 (ror1) single chain fv antibody fragment conjugates and methods of use thereof
CA3027071A1 (en) 2011-01-14 2013-07-19 The Regents Of The University Of California Therapeutic antibodies against ror-1 protein and methods for use of same
EP2734621B1 (en) 2011-07-22 2019-09-04 President and Fellows of Harvard College Evaluation and improvement of nuclease cleavage specificity
SG11201406547YA (en) 2012-04-25 2014-11-27 Regeneron Pharma Nuclease-mediated targeting with large targeting vectors
SI3401400T1 (sl) 2012-05-25 2019-10-30 Univ California Postopki in sestavki za RNA usmerjeno modifikacijo tarčne DNA in za RNA usmerjeno modulacijo prepisovanja
ES2702315T3 (es) 2012-08-24 2019-02-28 Univ California Anticuerpos y vacunas para su uso en tratar cánceres ROR1 e inhibir metástasis
EP3138911B1 (en) 2012-12-06 2018-12-05 Sigma Aldrich Co. LLC Crispr-based genome modification and regulation
CN109913495B (zh) 2013-02-20 2022-11-25 瑞泽恩制药公司 大鼠的遗传修饰
US9885033B2 (en) 2013-03-15 2018-02-06 The General Hospital Corporation Increasing specificity for RNA-guided genome editing
US10760064B2 (en) 2013-03-15 2020-09-01 The General Hospital Corporation RNA-guided targeting of genetic and epigenomic regulatory proteins to specific genomic loci
SG10201808935WA (en) 2013-04-16 2018-11-29 Regeneron Pharma Targeted modification of rat genome
US10011850B2 (en) 2013-06-21 2018-07-03 The General Hospital Corporation Using RNA-guided FokI Nucleases (RFNs) to increase specificity for RNA-Guided Genome Editing
US20150044192A1 (en) 2013-08-09 2015-02-12 President And Fellows Of Harvard College Methods for identifying a target site of a cas9 nuclease
US9359599B2 (en) 2013-08-22 2016-06-07 President And Fellows Of Harvard College Engineered transcription activator-like effector (TALE) domains and uses thereof
US9340800B2 (en) 2013-09-06 2016-05-17 President And Fellows Of Harvard College Extended DNA-sensing GRNAS
US9388430B2 (en) 2013-09-06 2016-07-12 President And Fellows Of Harvard College Cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof
US9526784B2 (en) 2013-09-06 2016-12-27 President And Fellows Of Harvard College Delivery system for functional nucleases
ES2844174T3 (es) * 2013-09-18 2021-07-21 Kymab Ltd Métodos, células y organismos
CA2930015A1 (en) 2013-11-07 2015-05-14 Editas Medicine, Inc. Crispr-related methods and compositions with governing grnas
US10787684B2 (en) * 2013-11-19 2020-09-29 President And Fellows Of Harvard College Large gene excision and insertion
JP6174811B2 (ja) 2013-12-11 2017-08-02 リジェネロン・ファーマシューティカルズ・インコーポレイテッドRegeneron Pharmaceuticals, Inc. ゲノムの標的改変のための方法及び組成物
US9840699B2 (en) 2013-12-12 2017-12-12 President And Fellows Of Harvard College Methods for nucleic acid editing
CA2936312A1 (en) 2014-01-08 2015-07-16 President And Fellows Of Harvard College Rna-guided gene drives
ES2833299T3 (es) 2014-02-04 2021-06-14 Jumpcode Genomics Inc Fraccionamiento del genoma
PT3105328T (pt) 2014-02-11 2020-07-06 Univ Colorado Regents Engenharia de genomas multiplexada possibilitada por crispr
US9497945B2 (en) 2014-05-30 2016-11-22 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Humanized dipeptidyl peptidase IV (DPP4) animals
MX385689B (es) 2014-06-06 2025-03-18 Regeneron Pharma Métodos y composiciones para modificar un locus dirigido.
WO2015200805A2 (en) 2014-06-26 2015-12-30 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for targeted genetic modifications and methods of use
CN107075484B (zh) * 2014-07-18 2022-01-28 国立大学法人京都大学 从多能性干细胞诱导细胞免疫治疗用t细胞的方法
WO2016022363A2 (en) 2014-07-30 2016-02-11 President And Fellows Of Harvard College Cas9 proteins including ligand-dependent inteins
AU2015330699B2 (en) 2014-10-10 2021-12-02 Editas Medicine, Inc. Compositions and methods for promoting homology directed repair
EP3561052A1 (en) 2014-10-15 2019-10-30 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for generating or maintaining pluripotent cells
HK1243340A1 (zh) 2014-10-24 2018-07-13 Avectas Limited 透细胞质膜的传递
EP4464338A3 (en) 2014-11-07 2025-02-12 Editas Medicine, Inc. Systems for improving crispr/cas-mediated genome-editing
US11319555B2 (en) * 2014-11-20 2022-05-03 Duke University Compositions, systems and methods for cell therapy
ES2731437T3 (es) 2014-11-21 2019-11-15 Regeneron Pharma Métodos y composiciones para la modificación genética dirigida mediante el uso de pares de ARN guías
MX388784B (es) 2014-12-19 2025-03-20 Regeneron Pharma Métodos y composiciones para la modificación genética dirigida a través de direccionamiento múltiple de una sola etapa.
WO2016138292A1 (en) 2015-02-25 2016-09-01 Igenomx International Genomics Corporation Methods and compositions for in silico long read sequencing
IL274285B (en) 2015-03-16 2022-07-01 Regeneron Pharma Non-human animal exhibiting diminished upper and lower motor neuron function and sensory perception
RU2017142352A (ru) 2015-05-06 2019-06-06 Снипр Текнолоджиз Лимитед Изменение популяций микроорганизмов и модификация микробиоты
US10966414B2 (en) 2015-05-26 2021-04-06 California Institute Of Technology Population control using engineered translocations
EP4335927A3 (en) 2015-06-16 2024-06-19 The Jackson Laboratory Genetically modified non-human animals and methods relating to complement dependent cytotoxicity
EP3313989B1 (en) 2015-06-29 2024-12-25 Ionis Pharmaceuticals, Inc. Modified crispr rna and modified single crispr rna and uses thereof
EP3331906A1 (en) 2015-08-06 2018-06-13 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Tunable endogenous protein degradation
US9926546B2 (en) 2015-08-28 2018-03-27 The General Hospital Corporation Engineered CRISPR-Cas9 nucleases
KR102668608B1 (ko) 2015-08-28 2024-05-24 더 제너럴 하스피탈 코포레이션 조작된 crispr-cas9 뉴클레아제
US9512446B1 (en) 2015-08-28 2016-12-06 The General Hospital Corporation Engineered CRISPR-Cas9 nucleases
EP3350315A4 (en) 2015-09-18 2019-07-17 The Regents of The University of California METHOD FOR THE AUTOCATALYTIC GENOMIC PROCESSING AND NEUTRALIZATION OF AUTO CATALYTIC GENOMIC PROCESSING AND COMPOSITIONS THEREFOR
MX2018003445A (es) 2015-09-22 2018-08-01 Genentech Inc Expresion de proteinas que contienen fc.
AU2016326711B2 (en) 2015-09-24 2022-11-03 Editas Medicine, Inc. Use of exonucleases to improve CRISPR/Cas-mediated genome editing
IL258821B (en) 2015-10-23 2022-07-01 Harvard College Nucleobase editors and their uses
CN108471731A (zh) * 2015-11-06 2018-08-31 杰克逊实验室 大型基因组dna敲入及其用途
US11085057B2 (en) 2015-12-02 2021-08-10 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for modifying a target nucleic acid
JP7449646B2 (ja) * 2015-12-30 2024-03-14 アヴェクタス リミテッド 細胞および組織への遺伝子編集タンパク質および組成物の、ベクターなしでの送達
AU2017217868B2 (en) * 2016-02-12 2023-05-25 Jumpcode Genomics, Inc. Method for target specific RNA transcription of DNA sequence
US11339427B2 (en) 2016-02-12 2022-05-24 Jumpcode Genomics, Inc. Method for target specific RNA transcription of DNA sequences
EP3219799A1 (en) 2016-03-17 2017-09-20 IMBA-Institut für Molekulare Biotechnologie GmbH Conditional crispr sgrna expression
WO2017165826A1 (en) 2016-03-25 2017-09-28 Editas Medicine, Inc. Genome editing systems comprising repair-modulating enzyme molecules and methods of their use
EP3440194A1 (en) * 2016-04-04 2019-02-13 ETH Zurich Mammalian cell line for protein production and library generation
EP4047092B1 (en) 2016-04-13 2025-07-30 Editas Medicine, Inc. Cas9 fusion molecules, gene editing systems, and methods of use thereof
US11248216B2 (en) 2016-04-25 2022-02-15 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for genomic editing
MX2018014172A (es) * 2016-05-20 2019-08-22 Regeneron Pharma Métodos para romper la tolerancia inmunológica usando múltiples arn guías.
CN109640644B (zh) 2016-06-03 2021-10-26 瑞泽恩制药公司 表达外源末端脱氧核苷酸转移酶的非人动物
GB201609811D0 (en) 2016-06-05 2016-07-20 Snipr Technologies Ltd Methods, cells, systems, arrays, RNA and kits
US11293021B1 (en) 2016-06-23 2022-04-05 Inscripta, Inc. Automated cell processing methods, modules, instruments, and systems
WO2017223538A1 (en) 2016-06-24 2017-12-28 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Methods for generating barcoded combinatorial libraries
MX2018016330A (es) 2016-06-27 2020-02-17 Univ California Combinaciones para tratamiento del cáncer.
US10548302B2 (en) 2016-07-29 2020-02-04 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Fibrillin-1 mutations for modeling neonatal progeroid syndrome with congenital lipodystrophy
WO2018025206A1 (en) * 2016-08-02 2018-02-08 Kyoto University Method for genome editing
KR20250103795A (ko) 2016-08-03 2025-07-07 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 아데노신 핵염기 편집제 및 그의 용도
CA3033327A1 (en) 2016-08-09 2018-02-15 President And Fellows Of Harvard College Programmable cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof
WO2018039438A1 (en) 2016-08-24 2018-03-01 President And Fellows Of Harvard College Incorporation of unnatural amino acids into proteins using base editing
JP7588390B2 (ja) 2016-10-14 2024-11-22 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ 核酸塩基エディターのaav送達
CN106544360B (zh) * 2016-10-17 2019-11-05 扬州大学 一种终止lncRNA双等位基因转录的方法
WO2018085586A1 (en) * 2016-11-02 2018-05-11 David Kiewlich Plasmid vectors for expression of large nucleic acid transgenes
CA3038720A1 (en) 2016-11-04 2018-07-12 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Non-human animals having an engineered immunoglobulin lambda light chain locus
WO2018119359A1 (en) 2016-12-23 2018-06-28 President And Fellows Of Harvard College Editing of ccr5 receptor gene to protect against hiv infection
CN118140872A (zh) 2017-01-19 2024-06-07 欧莫诺艾比公司 来自具有多个重链免疫球蛋白基因座的转基因啮齿类动物的人抗体
CA3053006C (en) 2017-02-08 2023-09-05 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Regulating chimeric antigen receptors
JP7203427B2 (ja) * 2017-02-14 2023-01-13 ユニバーシティ オブ ピッツバーグ - オブ ザ コモンウェルス システム オブ ハイヤー エデュケイション ヒト人工多能性幹細胞を操作して肝臓組織を作製する方法
WO2018165504A1 (en) 2017-03-09 2018-09-13 President And Fellows Of Harvard College Suppression of pain by gene editing
CN110662556A (zh) 2017-03-09 2020-01-07 哈佛大学的校长及成员们 癌症疫苗
JP2020510439A (ja) 2017-03-10 2020-04-09 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ シトシンからグアニンへの塩基編集因子
BR112019019655A2 (pt) 2017-03-23 2020-04-22 Harvard College editores de nucleobase que compreendem proteínas de ligação a dna programáveis por ácido nucleico
CN106987604B (zh) * 2017-03-29 2021-05-28 北京希诺谷生物科技有限公司 一种制备动脉粥样硬化疾病模型犬的方法
CN110799525A (zh) 2017-04-21 2020-02-14 通用医疗公司 具有改变的PAM特异性的CPF1(CAS12a)的变体
CN110891965A (zh) * 2017-04-24 2020-03-17 杜邦营养生物科学有限公司 植物中使用的抗crispr蛋白的方法和组合物
US12157883B2 (en) * 2017-05-05 2024-12-03 California Institute Of Technology DNA sequence modification-based gene drive
WO2018209320A1 (en) 2017-05-12 2018-11-15 President And Fellows Of Harvard College Aptazyme-embedded guide rnas for use with crispr-cas9 in genome editing and transcriptional activation
JP7324713B2 (ja) 2017-05-25 2023-08-10 ザ ジェネラル ホスピタル コーポレイション 改善された精度および特異性を有する塩基エディター
WO2018228534A1 (zh) * 2017-06-16 2018-12-20 中国科学院上海生命科学研究院 制备免疫缺陷的大鼠的方法及其应用
WO2018233596A1 (zh) * 2017-06-20 2018-12-27 江苏恒瑞医药股份有限公司 体外敲除T细胞中靶基因的方法以及该方法中使用的crRNA
US9982279B1 (en) 2017-06-23 2018-05-29 Inscripta, Inc. Nucleic acid-guided nucleases
US10011849B1 (en) 2017-06-23 2018-07-03 Inscripta, Inc. Nucleic acid-guided nucleases
IL271561B2 (en) 2017-06-27 2025-08-01 Regeneron Pharma Non-human animals comprising a humanized asgr1 locus
CA3066253C (en) 2017-06-30 2023-10-31 Inscripta, Inc. Automated cell processing methods, modules, instruments, and systems
EP3652312A1 (en) 2017-07-14 2020-05-20 Editas Medicine, Inc. Systems and methods for targeted integration and genome editing and detection thereof using integrated priming sites
JP7466905B2 (ja) 2017-07-18 2024-04-15 ザ ボード オブ トラスティーズ オブ ザ レランド スタンフォード ジュニア ユニバーシティー 二段階相同組換え修復によるスカーレスゲノム編集
JP2020534795A (ja) 2017-07-28 2020-12-03 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ ファージによって支援される連続的進化(pace)を用いて塩基編集因子を進化させるための方法および組成物
WO2019028032A1 (en) 2017-07-31 2019-02-07 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. EMBRYONIC STEM CELLS OF TRANSGENIC MOUSE CASES AND MICE AND USES THEREOF
WO2019028029A1 (en) 2017-07-31 2019-02-07 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. EVALUATION OF CRISPR / CAS INDUCED RECOMBINATION WITH IN VIVO EXOGENIC DONOR NUCLEIC ACID
JP2020533957A (ja) 2017-07-31 2020-11-26 リジェネロン・ファーマシューティカルズ・インコーポレイテッドRegeneron Pharmaceuticals, Inc. Crisprリポーター非ヒト動物およびその使用
US20190045761A1 (en) * 2017-08-11 2019-02-14 Recombinetics, Inc. Inducible disease models methods of making them and use in tissue complementation
US10738327B2 (en) 2017-08-28 2020-08-11 Inscripta, Inc. Electroporation cuvettes for automation
US11319532B2 (en) 2017-08-30 2022-05-03 President And Fellows Of Harvard College High efficiency base editors comprising Gam
EP3678680A4 (en) 2017-09-05 2021-12-01 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. ADMINISTRATION OF A GENE EDITING SYSTEM CONTAINING A SINGLE RETROVIRAL PARTICLE AND METHODS OF GENERATION AND USE
US20190119701A1 (en) * 2017-09-08 2019-04-25 Life Technologies Corporation Methods for improved homologous recombination and compositions thereof
EP3585162B1 (en) 2017-09-29 2023-08-30 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Rodents comprising a humanized ttr locus and methods of use
WO2019068022A1 (en) 2017-09-30 2019-04-04 Inscripta, Inc. CONTINUOUS FLOW ELECTROPORATION INSTRUMENTATION
KR20250107288A (ko) 2017-10-16 2025-07-11 더 브로드 인스티튜트, 인코퍼레이티드 아데노신 염기 편집제의 용도
KR102444458B1 (ko) * 2017-11-10 2022-09-19 리제너론 파마슈티칼스 인코포레이티드 Slc30a8 돌연변이를 포함하는 비인간 동물 및 사용 방법
CA3076377A1 (en) 2017-11-30 2019-06-06 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Non-human animals comprising a humanized trkb locus
WO2019118949A1 (en) 2017-12-15 2019-06-20 The Broad Institute, Inc. Systems and methods for predicting repair outcomes in genetic engineering
WO2019148166A1 (en) * 2018-01-29 2019-08-01 Massachusetts Institute Of Technology Methods of enhancing chromosomal homologous recombination
CN116349651A (zh) 2018-03-19 2023-06-30 瑞泽恩制药公司 使用crispr/cas系统对动物进行转录调制
US10760075B2 (en) 2018-04-30 2020-09-01 Snipr Biome Aps Treating and preventing microbial infections
CA3093850A1 (en) 2018-03-26 2019-10-03 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Humanized rodents for testing therapeutic agents
AU2019241967A1 (en) 2018-03-29 2020-11-19 Inscripta, Inc. Automated control of cell growth rates for induction and transformation
US10376889B1 (en) 2018-04-13 2019-08-13 Inscripta, Inc. Automated cell processing instruments comprising reagent cartridges
US10508273B2 (en) 2018-04-24 2019-12-17 Inscripta, Inc. Methods for identifying selective binding pairs
US10557216B2 (en) 2018-04-24 2020-02-11 Inscripta, Inc. Automated instrumentation for production of T-cell receptor peptide libraries
US10858761B2 (en) 2018-04-24 2020-12-08 Inscripta, Inc. Nucleic acid-guided editing of exogenous polynucleotides in heterologous cells
KR20210045360A (ko) 2018-05-16 2021-04-26 신테고 코포레이션 가이드 rna 설계 및 사용을 위한 방법 및 시스템
WO2019226953A1 (en) 2018-05-23 2019-11-28 The Broad Institute, Inc. Base editors and uses thereof
IL292273B2 (en) 2018-08-14 2023-10-01 Inscripta Inc Devices, modules and methods for improved detection of edited sequences in living cells
US10752874B2 (en) 2018-08-14 2020-08-25 Inscripta, Inc. Instruments, modules, and methods for improved detection of edited sequences in live cells
US10532324B1 (en) 2018-08-14 2020-01-14 Inscripta, Inc. Instruments, modules, and methods for improved detection of edited sequences in live cells
US11142740B2 (en) 2018-08-14 2021-10-12 Inscripta, Inc. Detection of nuclease edited sequences in automated modules and instruments
WO2020081149A2 (en) 2018-08-30 2020-04-23 Inscripta, Inc. Improved detection of nuclease edited sequences in automated modules and instruments
US20220053741A1 (en) 2018-09-13 2022-02-24 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Complement Factor H Gene Knockout Rat as a Model of C3 Glomerulopathy
US11851663B2 (en) 2018-10-14 2023-12-26 Snipr Biome Aps Single-vector type I vectors
AU2019368215B2 (en) 2018-10-22 2023-05-18 Inscripta, Inc. Engineered enzymes
US11214781B2 (en) 2018-10-22 2022-01-04 Inscripta, Inc. Engineered enzyme
WO2020092453A1 (en) 2018-10-29 2020-05-07 The Broad Institute, Inc. Nucleobase editors comprising geocas9 and uses thereof
US11965172B2 (en) 2018-11-05 2024-04-23 California Institute Of Technology DNA sequence modification-based gene drive
CN111321171A (zh) * 2018-12-14 2020-06-23 江苏集萃药康生物科技有限公司 一种应用CRISPR/Cas9介导ES打靶技术制备基因打靶动物模型的方法
CN113423831B (zh) 2018-12-20 2023-03-10 瑞泽恩制药公司 核酸酶介导的重复扩增
EP3898983A4 (en) * 2018-12-20 2023-07-19 Peking University COMPOSITIONS AND METHODS FOR HIGHLY EFFICIENT GENE SCREENING USING BARCODED GUIDE RNA CONSTRUCTS
US12351837B2 (en) 2019-01-23 2025-07-08 The Broad Institute, Inc. Supernegatively charged proteins and uses thereof
WO2020163396A1 (en) 2019-02-04 2020-08-13 The General Hospital Corporation Adenine dna base editor variants with reduced off-target rna editing
NZ777640A (en) 2019-02-15 2025-11-28 Merck Sharp & Dohme Automated biomanufacturing systems, facilities, and processes
NL2022714B1 (en) 2019-03-11 2020-09-18 Academisch Ziekenhuis Leiden Optimised RAG1 deficient SCID Gene Therapy
EP3942042A1 (en) 2019-03-19 2022-01-26 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for editing nucleotide sequences
WO2020198174A1 (en) 2019-03-25 2020-10-01 Inscripta, Inc. Simultaneous multiplex genome editing in yeast
US11001831B2 (en) 2019-03-25 2021-05-11 Inscripta, Inc. Simultaneous multiplex genome editing in yeast
CN117178959A (zh) 2019-04-04 2023-12-08 瑞泽恩制药公司 包括人源化凝血因子12基因座的非人动物
CA3136119A1 (en) * 2019-04-10 2020-10-15 University Of Utah Research Foundation Htra1 modulation for treatment of amd
EP3956349A1 (en) 2019-04-17 2022-02-23 The Broad Institute, Inc. Adenine base editors with reduced off-target effects
US20220340926A1 (en) * 2019-05-27 2022-10-27 Transgenic Inc. Exon-humanized mouse
AU2020286382A1 (en) 2019-06-04 2021-11-04 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Non-human animals comprising a humanized TTR locus with a beta-slip mutation and methods of use
AU2020288623A1 (en) 2019-06-06 2022-01-06 Inscripta, Inc. Curing for recursive nucleic acid-guided cell editing
MX2021015122A (es) * 2019-06-07 2022-04-06 Regeneron Pharma Animales no humanos que comprenden un locus de albumina humanizado.
US10907125B2 (en) 2019-06-20 2021-02-02 Inscripta, Inc. Flow through electroporation modules and instrumentation
AU2020297499A1 (en) 2019-06-21 2022-02-03 Inscripta, Inc. Genome-wide rationally-designed mutations leading to enhanced lysine production in E. coli
US10927385B2 (en) 2019-06-25 2021-02-23 Inscripta, Inc. Increased nucleic-acid guided cell editing in yeast
US12435330B2 (en) 2019-10-10 2025-10-07 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for prime editing RNA
WO2021102059A1 (en) 2019-11-19 2021-05-27 Inscripta, Inc. Methods for increasing observed editing in bacteria
WO2021108363A1 (en) 2019-11-25 2021-06-03 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Crispr/cas-mediated upregulation of humanized ttr allele
AU2020402526B2 (en) 2019-12-10 2025-01-23 Inscripta, Inc. Novel MAD nucleases
US10704033B1 (en) 2019-12-13 2020-07-07 Inscripta, Inc. Nucleic acid-guided nucleases
IL292895A (en) 2019-12-18 2022-07-01 Inscripta Inc Cascade/dcas3 complementation assays for in vivo detection of nucleic acid-guided nuclease edited cells
US10689669B1 (en) 2020-01-11 2020-06-23 Inscripta, Inc. Automated multi-module cell processing methods, instruments, and systems
AU2021213705A1 (en) 2020-01-27 2022-06-16 Inscripta, Inc. Electroporation modules and instrumentation
WO2021154791A1 (en) 2020-01-28 2021-08-05 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Non-human animals comprising a humanized pnpla3 locus and methods of use
EP4099821A1 (en) 2020-02-07 2022-12-14 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. <smallcaps/>? ? ?klkb1? ? ? ? ?non-human animals comprising a humanizedlocus and methods of use
EP4125348A1 (en) 2020-03-23 2023-02-08 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Non-human animals comprising a humanized ttr locus comprising a v30m mutation and methods of use
CN115552002A (zh) * 2020-04-06 2022-12-30 株式会社标志融合 基因组改造方法及基因组改造试剂盒
US20210332388A1 (en) 2020-04-24 2021-10-28 Inscripta, Inc. Compositions, methods, modules and instruments for automated nucleic acid-guided nuclease editing in mammalian cells
WO2021226558A1 (en) 2020-05-08 2021-11-11 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for simultaneous editing of both strands of a target double-stranded nucleotide sequence
US11787841B2 (en) 2020-05-19 2023-10-17 Inscripta, Inc. Rationally-designed mutations to the thrA gene for enhanced lysine production in E. coli
KR20230156819A (ko) * 2020-06-06 2023-11-14 란자테크, 인크. 아세토락테이트 탈카복실화효소 유전자위에 녹인이 있는 미생물
CN111647663B (zh) * 2020-06-18 2022-07-01 安徽农业大学 一种鸡步行数性状的分子遗传标记及应用
US20230232796A1 (en) 2020-06-26 2023-07-27 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Non-human animals comprising a humanized ace2 locus
EP4214314A4 (en) 2020-09-15 2024-10-16 Inscripta, Inc. Crispr editing to embed nucleic acid landing pads into genomes of live cells
US11512297B2 (en) 2020-11-09 2022-11-29 Inscripta, Inc. Affinity tag for recombination protein recruitment
CA3204158A1 (en) 2021-01-04 2022-07-07 Juhan Kim Mad nucleases
US20240376451A1 (en) 2021-01-07 2024-11-14 Inscripta, Inc. Mad nucleases
WO2022154343A1 (ko) * 2021-01-13 2022-07-21 재단법인대구경북과학기술원 Apoe christchurch 돌연변이를 포함하는 알츠하이머 저항성 세포 모델 및 이의 제조방법
AR124712A1 (es) 2021-01-29 2023-04-26 Merck Sharp & Dohme Composiciones de anticuerpos del receptor de muerte programada 1 (pd-1) y métodos para obtener las composiciones de los mismos
US11884924B2 (en) 2021-02-16 2024-01-30 Inscripta, Inc. Dual strand nucleic acid-guided nickase editing
DE112022001365T5 (de) 2021-03-05 2024-02-15 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University In vivo dna zusammenbau und analyse
US20240318114A1 (en) 2021-07-15 2024-09-26 Just-Evotec Biologics, Inc. Bidirectional tangential flow filtration (tff) perfusion system
CN118251491A (zh) 2021-10-28 2024-06-25 瑞泽恩制药公司 用于敲除C5的CRISPR/Cas相关方法及组合物
WO2023081847A1 (en) 2021-11-04 2023-05-11 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Non-human animals comprising a modified cacng1 locus
CN118632622A (zh) 2021-12-08 2024-09-10 瑞泽恩制药公司 突变型肌纤蛋白疾病模型及其用途
US20230279442A1 (en) 2021-12-15 2023-09-07 Versitech Limited Engineered cas9-nucleases and method of use thereof
WO2023122506A1 (en) 2021-12-20 2023-06-29 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Non-human animals comprising humanized ace2 and tmprss loci
EP4475671A1 (en) 2022-02-07 2024-12-18 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for defining optimal treatment timeframes in lysosomal disease
EP4476245A1 (en) 2022-02-11 2024-12-18 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for screening 4r tau targeting agents
WO2023235725A2 (en) 2022-05-31 2023-12-07 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Crispr-based therapeutics for c9orf72 repeat expansion disease
GB202209518D0 (en) 2022-06-29 2022-08-10 Snipr Biome Aps Treating & preventing E coli infections
IL317261A (en) 2022-07-29 2025-01-01 Regeneron Pharma Non-human animals containing a modified transferrin receptor locus
CA3261296A1 (en) 2022-08-05 2024-02-08 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. TDP-43 VARIANTS RESISTANT TO AGGREGATION
CA3266599A1 (en) 2022-09-07 2024-11-07 Quantitative Biosciences, Inc. UNIQUE VARIABLE DOMAIN ANTIBODIES SPECIFIC TO FENTANYL AND USE IN A CONTINUOUS AGGLUTINATION TEST
US20240224964A9 (en) 2022-09-29 2024-07-11 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Correction of hepatosteatosis in humanized liver animals through restoration of il6/il6r/gp130 signaling in human hepatocytes
WO2024163650A1 (en) 2023-02-01 2024-08-08 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Animals comprising a modified klhdc7b locus
WO2024189098A1 (en) 2023-03-13 2024-09-19 Iomx Therapeutics Ag Platform technology for the identification of modulators of immune effector cell function
WO2025122754A1 (en) 2023-12-07 2025-06-12 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Gaa knockout non-human animals
WO2025128343A1 (en) 2023-12-11 2025-06-19 Just-Evotec Biologics, Inc. Protein expression using trans-splicing and split selectable markers
WO2025250495A1 (en) 2024-05-28 2025-12-04 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Acceleration of human hepatocyte engraftment in humanized liver animals by supplementing paracrine ligands or agonists that activate human liver regeneration signals

Family Cites Families (224)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5981175A (en) 1993-01-07 1999-11-09 Genpharm Internation, Inc. Methods for producing recombinant mammalian cells harboring a yeast artificial chromosome
DE19525285C2 (de) 1995-06-28 1999-04-15 Inst Pflanzengenetik & Kultur In vitro Testverfahren zum Nachweis Chemikalien-induzierter embryotoxischer/teratogener Effekte
JP2000505294A (ja) 1996-02-16 2000-05-09 ザ ユニバーシティ オブ エディンバラ 分化の阻害のためのdia/lif―欠損胚幹細胞により発現されるサイトカイン
US5830729A (en) 1996-04-18 1998-11-03 Institut Pasteur I Sce I-induced gene replacement and gene conversion in embryonic stem cells
US6136566A (en) 1996-10-04 2000-10-24 Lexicon Graphics Incorporated Indexed library of cells containing genomic modifications and methods of making and utilizing the same
WO1999005266A2 (en) 1997-07-26 1999-02-04 Wisconsin Alumni Research Foundation Trans-species nuclear transfer
EP1141360A4 (en) 1998-12-31 2002-11-06 David Gladstone Inst Transgenic rodents and rodent cell lines that express HIV receptors.
US6599692B1 (en) 1999-09-14 2003-07-29 Sangamo Bioscience, Inc. Functional genomics using zinc finger proteins
CA2361191A1 (en) 1999-02-03 2000-08-10 The Children's Medical Center Corporation Gene repair involving the induction of double-stranded dna cleavage at a chromosomal target site
US20030104526A1 (en) 1999-03-24 2003-06-05 Qiang Liu Position dependent recognition of GNN nucleotide triplets by zinc fingers
DE60023936T2 (de) 1999-12-06 2006-05-24 Sangamo Biosciences Inc., Richmond Methoden zur verwendung von randomisierten zinkfingerprotein-bibliotheken zur identifizierung von genfunktionen
US6586251B2 (en) 2000-10-31 2003-07-01 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods of modifying eukaryotic cells
US6596541B2 (en) * 2000-10-31 2003-07-22 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods of modifying eukaryotic cells
US7105348B2 (en) 2000-10-31 2006-09-12 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods of modifying eukaryotic cells
US20050144655A1 (en) 2000-10-31 2005-06-30 Economides Aris N. Methods of modifying eukaryotic cells
JP2004537260A (ja) 2000-12-07 2004-12-16 サンガモ バイオサイエンシーズ, インコーポレイテッド ジンクフィンガータンパク質による血管新生の調節
CA2435394C (en) 2001-01-22 2018-01-09 Sangamo Biosciences, Inc. Modified zinc finger binding proteins
WO2002057308A2 (en) 2001-01-22 2002-07-25 Sangamo Biosciences, Inc. Zinc finger polypeptides and their use
AUPR451401A0 (en) 2001-04-20 2001-05-24 Monash University A method of nuclear transfer
EP1476547B1 (en) 2002-01-23 2006-12-06 The University of Utah Research Foundation Targeted chromosomal mutagenesis using zinc finger nucleases
EP1485475B2 (en) 2002-03-15 2017-09-20 Cellectis Hybrid and single chain meganucleases and use thereof
AU2003218382B2 (en) 2002-03-21 2007-12-13 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for using zinc finger endonucleases to enhance homologous recombination
US7612250B2 (en) 2002-07-29 2009-11-03 Trustees Of Tufts College Nuclear transfer embryo formation method
EP1581610A4 (en) 2002-09-05 2009-05-27 California Inst Of Techn USE OF CHIMERIC NUCLEASES TO STIMULATE GEN-TARGETING
WO2004031346A2 (en) 2002-09-06 2004-04-15 Fred Hutchinson Cancer Research Center Methods and compositions concerning designed highly-specific nucleic acid binding proteins
US20030175968A1 (en) 2002-10-30 2003-09-18 Golic Kent G. Gene targeting method
US7344886B2 (en) 2002-11-29 2008-03-18 Boehringer Ingelheim Pharma Gmbh & Co., Kg Neomycin-phosphotransferase-genes and methods for the selection of recombinant cells producing high levels of a desired gene product
AU2004204509A1 (en) 2003-01-13 2004-07-29 Mario R. Capecchi Persistent expression of candidate molecule in proliferating stem and progenitor cells for delivery of therapeutic products
US7205148B2 (en) 2003-06-11 2007-04-17 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Genome mutation by intron insertion into an embryonic stem cell genome
US8409861B2 (en) 2003-08-08 2013-04-02 Sangamo Biosciences, Inc. Targeted deletion of cellular DNA sequences
US7888121B2 (en) 2003-08-08 2011-02-15 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for targeted cleavage and recombination
KR101386690B1 (ko) * 2004-03-04 2014-04-22 도쿠리츠교세이호진 고쿠리츠간켄큐센터 래트 배아 줄기 세포
EP1591521A1 (en) 2004-04-30 2005-11-02 Cellectis I-Dmo I derivatives with enhanced activity at 37 degrees C and use thereof
EP1789540B9 (en) 2004-09-03 2012-02-22 Moraga Biotechnology Inc. Non-embryonic totipotent blastomer-like stem cells and methods therefor
US20060063231A1 (en) 2004-09-16 2006-03-23 Sangamo Biosciences, Inc. Compositions and methods for protein production
PL2767161T3 (pl) 2004-10-19 2018-09-28 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Sposób wytwarzania zwierzęcia homozygotycznego pod względem modyfikacji genetycznej
FR2879622B1 (fr) 2004-12-17 2008-02-01 Agronomique Inst Nat Rech Procede in vitro de production d'ovocytes ou d'oeufs presentant une modification genomique ciblee
WO2006097784A1 (en) 2005-03-15 2006-09-21 Cellectis I-crei meganuclease variants with modified specificity, method of preparation and uses thereof
WO2006097854A1 (en) 2005-03-15 2006-09-21 Cellectis Heterodimeric meganucleases and use thereof
US10022457B2 (en) 2005-08-05 2018-07-17 Gholam A. Peyman Methods to regulate polarization and enhance function of cells
AU2007232393A1 (en) 2006-03-30 2007-10-11 The University Court Of The University Of Edinburgh Culture medium containing kinase inhibitors. and uses thereof
GB0615327D0 (en) 2006-03-30 2006-09-13 Univ Edinburgh Culture medium containing kinase inhibitors and uses thereof
WO2007117410A2 (en) * 2006-03-31 2007-10-18 Medarex, Inc. Transgenic animals expressing chimeric antibodies for use in preparing human antibodies
CN101117633B (zh) 2006-08-03 2011-07-20 上海交通大学附属儿童医院 一种细胞核移植方法
MX2009006303A (es) 2006-12-14 2009-10-21 Dow Agrosciences Llc Proteinas de dedo de zinc no canonicas optimizadas.
US7771967B2 (en) 2006-12-22 2010-08-10 The J. David Gladstone Institutes Nucleic acid encoding apolipoprotein E-I3
US10155038B2 (en) 2007-02-02 2018-12-18 Yale University Cells prepared by transient transfection and methods of use thereof
DE602008003684D1 (de) 2007-04-26 2011-01-05 Sangamo Biosciences Inc Gezielte integration in die ppp1r12c-position
SG182144A1 (en) 2007-06-01 2012-07-30 Omt Inc Compositions and methods for inhibiting endogenous immunoglobulin genes and producing transgenic human idiotype antibodies
WO2009076464A2 (en) 2007-12-10 2009-06-18 Aliva Biopharmaceuticals, Inc. Methods for sequential replacement of targeted region by homologous recombination
CA2734235C (en) 2008-08-22 2019-03-26 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for targeted single-stranded cleavage and targeted integration
US20100076057A1 (en) * 2008-09-23 2010-03-25 Northwestern University TARGET DNA INTERFERENCE WITH crRNA
EP2180058A1 (en) 2008-10-23 2010-04-28 Cellectis Meganuclease recombination system
US9206404B2 (en) 2008-12-04 2015-12-08 Sangamo Biosciences, Inc. Method of deleting an IgM gene in an isolated rat cell
US20110239315A1 (en) 2009-01-12 2011-09-29 Ulla Bonas Modular dna-binding domains and methods of use
EP2206723A1 (en) 2009-01-12 2010-07-14 Bonas, Ulla Modular DNA-binding domains
WO2010107493A2 (en) 2009-03-20 2010-09-23 Sangamo Biosciences, Inc. Modification of cxcr4 using engineered zinc finger proteins
US8772008B2 (en) 2009-05-18 2014-07-08 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for increasing nuclease activity
ES2948572T3 (es) 2009-07-08 2023-09-14 Kymab Ltd Modelos de roedores y moléculas terapéuticas
US20120178647A1 (en) 2009-08-03 2012-07-12 The General Hospital Corporation Engineering of zinc finger arrays by context-dependent assembly
WO2011020005A1 (en) 2009-08-14 2011-02-17 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. miRNA-REGULATED DIFFERENTIATION-DEPENDENT SELF-DELETING CASSETTE
JP5843775B2 (ja) 2009-10-13 2016-01-13 ステムセル テクノロジーズ インコーポレーティッド 幹細胞を分化させるための重量オスモル濃度の操作法
WO2011051390A1 (en) 2009-10-28 2011-05-05 Helmholtz Zentrum München - Deutsches Forschungszentrum für Gesundheit und Umwelt (GmbH) Homologous recombination in the oocyte
TR201903376T4 (tr) 2009-10-29 2019-04-22 Regeneron Pharma Çok fonksiyonlu alleller.
US20120315670A1 (en) 2009-11-02 2012-12-13 Gen9, Inc. Compositions and Methods for the Regulation of Multiple Genes of Interest in a Cell
WO2011068103A1 (ja) 2009-12-01 2011-06-09 独立行政法人国立がん研究センター ラット胚性幹細胞を用いたキメララットの作製法
NO2510096T3 (ja) 2009-12-10 2015-03-21
JP5595517B2 (ja) 2009-12-21 2014-09-24 リジェネロン・ファーマシューティカルズ・インコーポレイテッド ヒト化FcγRマウス
CN102791865B (zh) 2009-12-21 2015-07-01 凯津公司 用于转染原生质体的改进技术
US9695432B2 (en) 2010-01-22 2017-07-04 Dow Agrosciences Llc Excision of transgenes in genetically modified organisms
US20130045492A1 (en) 2010-02-08 2013-02-21 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods For Making Fully Human Bispecific Antibodies Using A Common Light Chain
WO2011100058A1 (en) 2010-02-09 2011-08-18 Sangamo Biosciences, Inc. Targeted genomic modification with partially single-stranded donor molecules
CN103025344B (zh) 2010-05-17 2016-06-29 桑格摩生物科学股份有限公司 新型dna-结合蛋白及其用途
GB201009732D0 (en) 2010-06-10 2010-07-21 Gene Bridges Gmbh Direct cloning
AU2011265306C1 (en) 2010-06-11 2015-01-22 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Production of fertile XY female animals from XY ES cells
US8945868B2 (en) 2010-07-21 2015-02-03 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for modification of a HLA locus
WO2012018726A1 (en) 2010-08-02 2012-02-09 Cellectis Sa Method for increasing double-strand break-induced gene targeting
US9528124B2 (en) 2013-08-27 2016-12-27 Recombinetics, Inc. Efficient non-meiotic allele introgression
WO2012129198A1 (en) * 2011-03-23 2012-09-27 Transposagen Biopharmaceuticals, Inc. Genetically modified rat models for obesity and diabetes
DK2714738T3 (en) 2011-05-24 2019-01-28 Zyngenia Inc MULTIVALENT AND MONOVALENT MULTISPECIFIC COMPLEXES AND THEIR APPLICATIONS
EP2718446A2 (en) 2011-06-07 2014-04-16 Helmholtz Zentrum München Deutsches Forschungszentrum für Gesundheit und Umwelt (GmbH) Improved recombination efficiency by inhibition of nhej dna repair
SMT202100243T1 (it) 2011-10-28 2021-05-07 Regeneron Pharma Topi con recettori delle cellule t geneticamente modificati
GB2496375A (en) 2011-10-28 2013-05-15 Kymab Ltd A non-human assay vertebrate comprising human antibody loci and human epitope knock-in, and uses thereof
US9637739B2 (en) 2012-03-20 2017-05-02 Vilnius University RNA-directed DNA cleavage by the Cas9-crRNA complex
WO2013141680A1 (en) 2012-03-20 2013-09-26 Vilnius University RNA-DIRECTED DNA CLEAVAGE BY THE Cas9-crRNA COMPLEX
SG11201406547YA (en) 2012-04-25 2014-11-27 Regeneron Pharma Nuclease-mediated targeting with large targeting vectors
CA2871524C (en) 2012-05-07 2021-07-27 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for nuclease-mediated targeted integration of transgenes
SI3401400T1 (sl) 2012-05-25 2019-10-30 Univ California Postopki in sestavki za RNA usmerjeno modifikacijo tarčne DNA in za RNA usmerjeno modulacijo prepisovanja
EP2858486A4 (en) 2012-06-12 2016-04-13 Hoffmann La Roche METHOD AND COMPOSITIONS FOR GENERATING ALLELES WITH CONDITIONAL KNOCKOUT
CN105188767A (zh) 2012-07-25 2015-12-23 布罗德研究所有限公司 可诱导的dna结合蛋白和基因组干扰工具及其应用
SG11201503059XA (en) 2012-10-23 2015-06-29 Toolgen Inc Composition for cleaving a target dna comprising a guide rna specific for the target dna and cas protein-encoding nucleic acid or cas protein, and use thereof
EP3138911B1 (en) 2012-12-06 2018-12-05 Sigma Aldrich Co. LLC Crispr-based genome modification and regulation
WO2014093479A1 (en) 2012-12-11 2014-06-19 Montana State University Crispr (clustered regularly interspaced short palindromic repeats) rna-guided control of gene regulation
ES2701749T3 (es) 2012-12-12 2019-02-25 Broad Inst Inc Métodos, modelos, sistemas y aparatos para identificar secuencias diana para enzimas Cas o sistemas CRISPR-Cas para secuencias diana y transmitir resultados de los mismos
US20140310830A1 (en) 2012-12-12 2014-10-16 Feng Zhang CRISPR-Cas Nickase Systems, Methods And Compositions For Sequence Manipulation in Eukaryotes
BR112015013784A2 (pt) 2012-12-12 2017-07-11 Massachusetts Inst Technology aplicação, manipulação e otimização de sistemas, métodos e composições para manipulação de sequência e aplicações terapêuticas
US8697359B1 (en) 2012-12-12 2014-04-15 The Broad Institute, Inc. CRISPR-Cas systems and methods for altering expression of gene products
EP2931898B1 (en) 2012-12-12 2016-03-09 The Broad Institute, Inc. Engineering and optimization of systems, methods and compositions for sequence manipulation with functional domains
EP3064585B1 (en) 2012-12-12 2020-02-05 The Broad Institute, Inc. Engineering and optimization of improved systems, methods and enzyme compositions for sequence manipulation
ES2536353T3 (es) 2012-12-12 2015-05-22 The Broad Institute, Inc. Ingeniería de sistemas, métodos y composiciones de guía optimizadas para manipulación de secuencias
WO2014093701A1 (en) 2012-12-12 2014-06-19 The Broad Institute, Inc. Functional genomics using crispr-cas systems, compositions, methods, knock out libraries and applications thereof
CN113355357B (zh) 2012-12-12 2024-12-03 布罗德研究所有限公司 对用于序列操纵的改进的系统、方法和酶组合物进行的工程化和优化
CN105658796B (zh) 2012-12-12 2021-10-26 布罗德研究所有限公司 用于序列操纵的crispr-cas组分系统、方法以及组合物
DK3553174T3 (da) 2012-12-17 2025-08-04 Harvard College Rna-guided modificering af humant genom
DK3491915T5 (da) 2012-12-27 2024-09-02 Keygene Nv Fremgangsmåde til at inducere en målrettet translokation i en plante
WO2014127287A1 (en) 2013-02-14 2014-08-21 Massachusetts Institute Of Technology Method for in vivo tergated mutagenesis
CN109913495B (zh) 2013-02-20 2022-11-25 瑞泽恩制药公司 大鼠的遗传修饰
EP2958996B1 (en) 2013-02-25 2019-10-16 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for enhancing nuclease-mediated gene disruption
EP2922393B2 (en) 2013-02-27 2022-12-28 Helmholtz Zentrum München - Deutsches Forschungszentrum für Gesundheit und Umwelt (GmbH) Gene editing in the oocyte by cas9 nucleases
US10612043B2 (en) 2013-03-09 2020-04-07 Agilent Technologies, Inc. Methods of in vivo engineering of large sequences using multiple CRISPR/cas selections of recombineering events
US20140315985A1 (en) 2013-03-14 2014-10-23 Caribou Biosciences, Inc. Compositions and methods of nucleic acid-targeting nucleic acids
US9234213B2 (en) 2013-03-15 2016-01-12 System Biosciences, Llc Compositions and methods directed to CRISPR/Cas genomic engineering systems
US20140273230A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 Sigma-Aldrich Co., Llc Crispr-based genome modification and regulation
US20140349400A1 (en) 2013-03-15 2014-11-27 Massachusetts Institute Of Technology Programmable Modification of DNA
AU2014235968B2 (en) 2013-03-21 2018-05-24 Ospedale San Raffaele Srl Targeted disruption of T cell receptor genes using engineered zinc finger protein nucleases
JP2016522679A (ja) 2013-04-04 2016-08-04 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ CRISPR/Cas系を用いたゲノム編集の治療的使用
EP2986709A4 (en) 2013-04-16 2017-03-15 University Of Washington Through Its Center For Commercialization Activating an alternative pathway for homology-directed repair to stimulate targeted gene correction and genome engineering
WO2014172470A2 (en) 2013-04-16 2014-10-23 Whitehead Institute For Biomedical Research Methods of mutating, modifying or modulating nucleic acid in a cell or nonhuman mammal
SG10201808935WA (en) 2013-04-16 2018-11-29 Regeneron Pharma Targeted modification of rat genome
EP2796558A1 (en) 2013-04-23 2014-10-29 Rheinische Friedrich-Wilhelms-Universität Bonn Improved gene targeting and nucleic acid carrier molecule, in particular for use in plants
EP2989199B1 (en) 2013-04-23 2020-08-12 Yeda Research and Development Co., Ltd. Isolated naive pluripotent stem cells and methods of generating same
JP2016518142A (ja) 2013-05-10 2016-06-23 サンガモ バイオサイエンシーズ, インコーポレイテッド ヌクレアーゼ媒介ゲノム遺伝子操作のための送達方法および組成物
HK1223401A1 (zh) 2013-05-15 2017-07-28 桑格摩生物科学股份有限公司 用於治疗遗传病状的方法和组合物
ES2670531T3 (es) 2013-05-29 2018-05-30 Cellectis S.A. Un método para producir una escisión de ADN precisa utilizando la actividad nickasa de Cas9
ES2883131T3 (es) 2013-05-29 2021-12-07 Cellectis Métodos para la modificación de células T para inmunoterapia utilizando el sistema de nucleasa CAS guiado por ARN
ES2645393T3 (es) 2013-05-29 2017-12-05 Cellectis Métodos de manipulación de linfocitos T para inmunoterapia usando el sistema de nucleasa Cas guiada por ARN
US20140359795A1 (en) 2013-05-31 2014-12-04 Recombinetics, Inc. Genetic techniques for making animals with sortable sperm
EP3008181B1 (en) 2013-06-11 2019-11-06 The Regents of The University of California Methods and compositions for target dna modification
CN105683379A (zh) 2013-06-17 2016-06-15 布罗德研究所有限公司 用于对有丝分裂后细胞的疾病和障碍进行靶向和建模的系统、方法和组合物的递送、工程化和优化
JP6625971B2 (ja) 2013-06-17 2019-12-25 ザ・ブロード・インスティテュート・インコーポレイテッド 配列操作のためのタンデムガイド系、方法および組成物の送達、エンジニアリングおよび最適化
DK3011031T3 (da) 2013-06-17 2020-12-21 Broad Inst Inc Fremføring og anvendelse af crispr-cas-systemerne, vektorer og sammensætninger til levermålretning og -terapi
WO2014204723A1 (en) 2013-06-17 2014-12-24 The Broad Institute Inc. Oncogenic models based on delivery and use of the crispr-cas systems, vectors and compositions
EP3011030B1 (en) 2013-06-17 2023-11-08 The Broad Institute, Inc. Optimized crispr-cas double nickase systems, methods and compositions for sequence manipulation
KR20250012194A (ko) 2013-06-17 2025-01-23 더 브로드 인스티튜트, 인코퍼레이티드 바이러스 구성성분을 사용하여 장애 및 질환을 표적화하기 위한 crispr-cas 시스템 및 조성물의 전달, 용도 및 치료 적용
EP3011011A4 (en) 2013-06-19 2017-05-31 Sigma-Aldrich Co. LLC Targeted integration
US10011850B2 (en) 2013-06-21 2018-07-03 The General Hospital Corporation Using RNA-guided FokI Nucleases (RFNs) to increase specificity for RNA-Guided Genome Editing
JP2016528890A (ja) 2013-07-09 2016-09-23 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ CRISPR/Cas系を用いるゲノム編集の治療用の使用
RU2764637C2 (ru) 2013-07-09 2022-01-19 Президент Энд Фэллоуз Оф Харвард Коллидж Мультиплексная геномная инженерия, направляемая рнк
SG11201600060VA (en) 2013-07-10 2016-02-26 Harvard College Orthogonal cas9 proteins for rna-guided gene regulation and editing
JP6482546B2 (ja) 2013-07-19 2019-03-13 ラリクス・バイオサイエンス・リミテッド・ライアビリティ・カンパニーLarix Bioscience, Llc 二重対立遺伝子ノックアウトを生成するための方法および組成物
US10563225B2 (en) 2013-07-26 2020-02-18 President And Fellows Of Harvard College Genome engineering
CA3109801C (en) 2013-08-22 2024-01-09 Andrew Cigan Plant genome modification using guide rna/cas endonuclease systems and methods of use
KR102829712B1 (ko) 2013-08-29 2025-07-10 템플 유니버시티-오브 더 커먼웰쓰 시스템 오브 하이어 에듀케이션 Hiv 감염증의 rna-유도 치료를 위한 방법 및 조성물
US9388430B2 (en) 2013-09-06 2016-07-12 President And Fellows Of Harvard College Cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof
US9340800B2 (en) 2013-09-06 2016-05-17 President And Fellows Of Harvard College Extended DNA-sensing GRNAS
ES2844174T3 (es) 2013-09-18 2021-07-21 Kymab Ltd Métodos, células y organismos
WO2015048690A1 (en) 2013-09-27 2015-04-02 The Regents Of The University Of California Optimized small guide rnas and methods of use
WO2015052231A2 (en) 2013-10-08 2015-04-16 Technical University Of Denmark Multiplex editing system
CN110713995B (zh) 2013-10-17 2023-08-01 桑格摩生物科学股份有限公司 用于核酸酶介导的基因组工程改造的递送方法和组合物
EP3067419B1 (en) 2013-11-06 2021-03-17 Hiroshima University Vector for nucleic acid insertion
CA2930015A1 (en) 2013-11-07 2015-05-14 Editas Medicine, Inc. Crispr-related methods and compositions with governing grnas
US10787684B2 (en) 2013-11-19 2020-09-29 President And Fellows Of Harvard College Large gene excision and insertion
CA2928635C (en) 2013-11-28 2022-06-21 Horizon Genomics Gmbh Somatic haploid human cell line
JP6174811B2 (ja) 2013-12-11 2017-08-02 リジェネロン・ファーマシューティカルズ・インコーポレイテッドRegeneron Pharmaceuticals, Inc. ゲノムの標的改変のための方法及び組成物
WO2015089427A1 (en) 2013-12-12 2015-06-18 The Broad Institute Inc. Crispr-cas systems and methods for altering expression of gene products, structural information and inducible modular cas enzymes
KR20160089530A (ko) 2013-12-12 2016-07-27 더 브로드 인스티튜트, 인코퍼레이티드 Hbv 및 바이러스 질병 및 질환을 위한 crispr­cas 시스템 및 조성물의 전달,용도 및 치료적 적용
JP2017501149A (ja) 2013-12-12 2017-01-12 ザ・ブロード・インスティテュート・インコーポレイテッド 粒子送達構成成分を用いた障害及び疾患の標的化のためのcrispr−cas系及び組成物の送達、使用及び治療適用
IL289736B2 (en) 2013-12-12 2025-09-01 Massachusetts Inst Technology Administration, use and therapeutic applications of CRISPR–Cas gene editing systems and gene editing preparations
WO2015089351A1 (en) 2013-12-12 2015-06-18 The Broad Institute Inc. Compositions and methods of use of crispr-cas systems in nucleotide repeat disorders
WO2015089473A1 (en) 2013-12-12 2015-06-18 The Broad Institute Inc. Engineering of systems, methods and optimized guide compositions with new architectures for sequence manipulation
EP3080275B1 (en) 2013-12-13 2020-01-15 Cellectis Method of selection of transformed diatoms using nuclease
AU2014368982B2 (en) 2013-12-19 2021-03-25 Amyris, Inc. Methods for genomic integration
CA2936312A1 (en) 2014-01-08 2015-07-16 President And Fellows Of Harvard College Rna-guided gene drives
JP6479024B2 (ja) 2014-01-24 2019-03-06 ザ チルドレンズ メディカル センター コーポレーション 抗体親和性の最適化のための高スループットマウスモデル
WO2015117041A1 (en) 2014-01-30 2015-08-06 Nair Ramesh B Gene modification-mediated methods and compositions for generating dominant traits in eukaryotic systems
US10233456B2 (en) 2014-01-30 2019-03-19 The Board Of Trustees Of The University Of Arkansas Method, vectors, cells, seeds and kits for stacking genes into a single genomic site
PT3105328T (pt) 2014-02-11 2020-07-06 Univ Colorado Regents Engenharia de genomas multiplexada possibilitada por crispr
CA2939942A1 (en) 2014-02-24 2015-08-27 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for nuclease-mediated targeted integration
EP3114227B1 (en) 2014-03-05 2021-07-21 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating usher syndrome and retinitis pigmentosa
WO2015138510A1 (en) 2014-03-10 2015-09-17 Editas Medicine., Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating leber's congenital amaurosis 10 (lca10)
DK3116533T3 (da) 2014-03-12 2020-08-24 Prec Biosciences Inc Deletion af dystrophingenexon under anvendelse af genmanipulerede nukleaser
ES2974625T3 (es) 2014-03-14 2024-06-28 Cibus Us Llc Procedimientos y composiciones para aumentar la eficacia de la modificación génica dirigida mediante reparación génica mediada por oligonucleótidos
EP3119878B1 (en) 2014-03-18 2021-05-26 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for regulation of zinc finger protein expression
JP6815986B2 (ja) 2014-03-26 2021-01-20 ユニバーシティ オブ メリーランド, カレッジ パーク 大型家畜の接合体における標的化ゲノム編集
GB201406968D0 (en) 2014-04-17 2014-06-04 Green Biologics Ltd Deletion mutants
KR101823661B1 (ko) 2014-04-24 2018-01-30 기초과학연구원 마이크로 상동 기반의 유전자 녹아웃을 위한 뉴클레아제 표적 서열을 확인하는 방법
GB201407852D0 (en) 2014-05-02 2014-06-18 Iontas Ltd Preparation of libraries od protein variants expressed in eukaryotic cells and use for selecting binding molecules
EP3142706A1 (en) 2014-05-16 2017-03-22 Vrije Universiteit Brussel Genetic correction of myotonic dystrophy type 1
AU2015266770A1 (en) 2014-05-30 2016-12-08 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Compositions and methods of delivering treatments for latent viral infections
MX385689B (es) 2014-06-06 2025-03-18 Regeneron Pharma Métodos y composiciones para modificar un locus dirigido.
SG11201610405RA (en) 2014-06-16 2017-01-27 Univ Johns Hopkins Compositions and methods for the expression of crispr guide rnas using the h1 promoter
WO2015200805A2 (en) 2014-06-26 2015-12-30 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for targeted genetic modifications and methods of use
MX2017000646A (es) 2014-07-15 2017-04-27 Juno Therapeutics Inc Celulas geneticamente modificadas para terapia celular adoptiva.
US9944933B2 (en) 2014-07-17 2018-04-17 Georgia Tech Research Corporation Aptamer-guided gene targeting
WO2016011428A1 (en) 2014-07-17 2016-01-21 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Methods of treating cells containing fusion genes
CN113584015B (zh) 2014-08-27 2025-05-02 新英格兰生物实验室公司 合成子的形成
EP3186376B1 (en) 2014-08-27 2019-03-20 Caribou Biosciences, Inc. Methods for increasing cas9-mediated engineering efficiency
WO2016036754A1 (en) 2014-09-02 2016-03-10 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for rna-directed target dna modification
IL292575A (en) 2014-09-07 2022-06-01 Selecta Biosciences Inc Methods and preparations for weakening immune responses by modulating gene expression in an antiviral transfer system
WO2016049024A2 (en) 2014-09-24 2016-03-31 The Broad Institute Inc. Delivery, use and therapeutic applications of the crispr-cas systems and compositions for modeling competition of multiple cancer mutations in vivo
WO2016049163A2 (en) 2014-09-24 2016-03-31 The Broad Institute Inc. Use and production of chd8+/- transgenic animals with behavioral phenotypes characteristic of autism spectrum disorder
WO2016049258A2 (en) 2014-09-25 2016-03-31 The Broad Institute Inc. Functional screening with optimized functional crispr-cas systems
JP2017534295A (ja) 2014-09-29 2017-11-24 ザ ジャクソン ラボラトリー エレクトロポレーションによる遺伝子改変哺乳動物の高効率ハイスループット生成
KR102630014B1 (ko) 2014-10-01 2024-01-25 더 제너럴 하스피탈 코포레이션 뉴클레아제-유도 상동성-지정 복구의 효율 증가 방법
AU2015330699B2 (en) 2014-10-10 2021-12-02 Editas Medicine, Inc. Compositions and methods for promoting homology directed repair
WO2016061073A1 (en) 2014-10-14 2016-04-21 Memorial Sloan-Kettering Cancer Center Composition and method for in vivo engineering of chromosomal rearrangements
EP3561052A1 (en) 2014-10-15 2019-10-30 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for generating or maintaining pluripotent cells
BR112017007923B1 (pt) 2014-10-17 2023-12-12 The Penn State Research Foundation Método para produzir manipulação genética mediada por reações multiplex com rna em uma célula receptora, construção de ácido nucleico,cassete de expressão, vetor, célula receptora e célula geneticamente modificada
EP3207131B1 (en) 2014-10-17 2022-09-28 Howard Hughes Medical Institute Genomic probes
WO2016065364A1 (en) 2014-10-24 2016-04-28 Life Technologies Corporation Compositions and methods for enhancing homologous recombination
EP3215623A4 (en) 2014-11-06 2018-09-26 President and Fellows of Harvard College Cells lacking b2m surface expression and methods for allogeneic administration of such cells
EP4464338A3 (en) 2014-11-07 2025-02-12 Editas Medicine, Inc. Systems for improving crispr/cas-mediated genome-editing
ES2731437T3 (es) 2014-11-21 2019-11-15 Regeneron Pharma Métodos y composiciones para la modificación genética dirigida mediante el uso de pares de ARN guías
JP2017535296A (ja) 2014-11-27 2017-11-30 ダンツィガー イノベイションズ リミテッドDanziger Innovations Ltd. ゲノム編集のための核酸構築物
US20170266320A1 (en) 2014-12-01 2017-09-21 President And Fellows Of Harvard College RNA-Guided Systems for In Vivo Gene Editing
EP3230452B1 (en) 2014-12-12 2025-06-11 The Broad Institute, Inc. Dead guides for crispr transcription factors
WO2016094874A1 (en) 2014-12-12 2016-06-16 The Broad Institute Inc. Escorted and functionalized guides for crispr-cas systems
WO2016094880A1 (en) 2014-12-12 2016-06-16 The Broad Institute Inc. Delivery, use and therapeutic applications of crispr systems and compositions for genome editing as to hematopoietic stem cells (hscs)
WO2016097751A1 (en) 2014-12-18 2016-06-23 The University Of Bath Method of cas9 mediated genome engineering
MX388784B (es) 2014-12-19 2025-03-20 Regeneron Pharma Métodos y composiciones para la modificación genética dirigida a través de direccionamiento múltiple de una sola etapa.
US10190106B2 (en) 2014-12-22 2019-01-29 Univesity Of Massachusetts Cas9-DNA targeting unit chimeras
WO2016108926A1 (en) 2014-12-30 2016-07-07 The Broad Institute Inc. Crispr mediated in vivo modeling and genetic screening of tumor growth and metastasis
US20180155708A1 (en) 2015-01-08 2018-06-07 President And Fellows Of Harvard College Split Cas9 Proteins
CN107406842B (zh) 2015-01-09 2021-05-11 生物辐射实验室股份有限公司 检测基因组编辑
WO2016114972A1 (en) 2015-01-12 2016-07-21 The Regents Of The University Of California Heterodimeric cas9 and methods of use thereof
CN107429263A (zh) 2015-01-15 2017-12-01 斯坦福大学托管董事会 调控基因组编辑的方法
SG10201804715WA (en) 2015-01-28 2018-07-30 Pioneer Hi Bred Int Crispr hybrid dna/rna polynucleotides and methods of use
WO2016130697A1 (en) 2015-02-11 2016-08-18 Memorial Sloan Kettering Cancer Center Methods and kits for generating vectors that co-express multiple target molecules
EP3262173A2 (en) 2015-02-23 2018-01-03 Crispr Therapeutics AG Materials and methods for treatment of human genetic diseases including hemoglobinopathies
AU2016225179C1 (en) 2015-02-23 2022-11-03 Crispr Therapeutics Ag Materials and methods for treatment of hemoglobinopathies
US11261466B2 (en) 2015-03-02 2022-03-01 Sinai Health System Homologous recombination factors
GB201504223D0 (en) 2015-03-12 2015-04-29 Genome Res Ltd Biallelic genetic modification
EP3851530A1 (en) 2015-03-26 2021-07-21 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-mediated gene conversion
US9790490B2 (en) 2015-06-18 2017-10-17 The Broad Institute Inc. CRISPR enzymes and systems

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2016198110A5 (ja)
JP2016539655A5 (ja)
JP6670412B2 (ja) ゲノムの標的改変のための方法及び組成物
CN105308184B (zh) 大鼠基因组的靶向修饰
Zhang et al. Large genomic fragment deletions and insertions in mouse using CRISPR/Cas9
CA2128862C (en) Homogenotization of gene-targeting events
Kasparek et al. Efficient gene targeting of the Rosa26 locus in mouse zygotes using TALE nucleases
Wu et al. High-efficient FLPo deleter mice in C57BL/6J background
WO2015200805A4 (en) Methods and compositions for targeted genetic modifications and methods of use
Takeuchi et al. Flp recombinase transgenic mice of C57BL/6 strain for conditional gene targeting
Ohtsuka et al. Pronuclear injection-based mouse targeted transgenesis for reproducible and highly efficient transgene expression
Sakurai et al. A non-inheritable maternal Cas9-based multiple-gene editing system in mice
Yoshimura et al. Mouse embryonic stem cells with a multi-integrase mouse artificial chromosome for transchromosomic mouse generation
Leighton et al. Generation of chickens expressing Cre recombinase
Qu et al. Gene targeting of ErbB3 using a Cre‐mediated unidirectional DNA inversion strategy
JP4359498B2 (ja) 転写活性な座を標的化する方法
ES2975317T3 (es) Métodos y composiciones para la modificación dirigida de un genoma
Yu et al. Establishment of a rapid and scalable gene expression system in livestock by site-specific integration
JP5481661B2 (ja) 変異導入遺伝子作製方法
EP4495245A1 (en) Mhc gene group humanized animal
Anastassiadis Genetic Manipulations of Pluripotent Stem Cells
Williams et al. approved with reservations, 2 not approved