JP2008502309A - アントゴニスト抗cd40モノクローナル抗体およびそれらを使用するための方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明はCD40に結合できるヒト抗体、抗体の使用方法、および、CD40発現細胞上のCD40シグナル伝達の刺激により媒介される疾患の処置方法に関する。
B細胞は正常なインビボの免疫応答の間に重要な役割を果たす。外来抗原は特定のB細胞上の表面免疫グロブリンに結合し、エンドサイトーシス、プロセシング、MHC−クラスII分子上へのプロセシングされたペプチドの提示、およびB細胞表面上のB7抗原のアップレギュレーションを含む事象の連鎖をトリガーする。次に特定のT細胞がMHC−クラスII分子上の提示されたプロセシングされた抗原のT細胞受容体(TCR)認識を介してB細胞に結合する。TCRを介した刺激はT細胞を活性化し、そしてT細胞のサイトカイン生産を開始させる。更にT細胞を活性化させる第2のシグナルはT細胞上のCD28抗原とB細胞上のB7抗原の間の相互作用である。上記したシグナルを受け取ると、静止期のヒトT細胞上には発現されないCD40リガンド(CD40LまたはCD154)がT細胞表面上でアップレギュレートされる。B細胞表面上のCD40抗原へのCD40リガンドの結合はB細胞を刺激し、B細胞を可溶性免疫グロブリンの高水準を分泌するプラズマ細胞へとB細胞を成熟させる。
Thomasら「Adv.Cancer Res.」1991年,第57巻:329 Strausら「Ann.Intern.Med.」1993年,第118巻:45
リンパ腫、自己免疫疾患および移植片拒絶反応を含むCD40発現細胞上のCD40シグナル伝達の刺激により媒介される疾患を処置するための組成物および方法が提供される。組成物はヒトCD40発現細胞の表面上に位置するヒトCD40抗原に結合し得るモノクローナル抗体を包含し、ここで結合は細胞の増殖および分化を防止する。組成物はまたヒトCD40発現細胞の表面上に発現するヒトCD40抗原に特異的に結合し得るモノクローナル抗体を包含し、該モノクローナル抗体は有意なアゴニスト活性を有さず、ここで、該モノクローナル抗体の投与はDaudiヒトBリンパ腫細胞株を用いた段階型(staged)ヌードマウス異種移植片腫瘍モデルにおいてキメラ抗CD20モノクローナル抗体IDEC−C2B8の同じ濃度よりも有意に低値の腫瘍体積をもたらす。組成物はまた、これらのモノクローナル抗体の抗原結合フラグメント、これらの抗体を生産するハイブリドーマ細胞株、および、これらのモノクローナル抗体のアミノ酸配列をコードする単離された核酸分子も包含する。本発明は更に薬学的に許容しうる担体中にこれらの抗CD40抗体を含む薬学的組成物を包含する。
「腫瘍」とは本明細書においては悪性または良性に関わらず全ての新生物性の細胞の成長および増殖および全ての前癌性および癌性の細胞および組織を指す。
モノクローナル抗体CHIR−5.9およびCHIR−12.12は本発明の方法において使用するための適当なアンタゴニスト抗CD40抗体を示す。CHIR−5.9およびCHIR−12.12抗体はハイブリドーマ細胞株131.2F8.5.9(本明細書においては細胞株5.9と称する)および153.8E2.D10.D6.12.12(本明細書においては細胞株12.12と称する)により生産されるIgG1アイソタイプの完全ヒト抗CD40モノクローナル抗体である。これらの細胞株はヒトIgG1重鎖遺伝子座およびヒトκ鎖遺伝子座を含有する免疫化されたxenotypicなマウスの脾細胞を用いて作成されている(XenoMouse(登録商標)technology;Abginic;Fremont,California)。脾細胞をマウスミエローマSP2/0細胞と融合させた(Sierra BioSource)。得られたハイブリドーマを数回サブクローニングして安定なモノクローナル細胞株5.9および12.12を作成した。本発明の他の抗体はヒト免疫グロブリン遺伝子座に関してトランスジェニックであるマウスを用いて同様に、或いは、当該分野で知られるか、本発明に記載した他の方法により製造してよい。
本明細書において開示され、そして本発明の方法において使用するためのアンタゴニスト抗CD40抗体は、当業者に公知の任意の抗体作製方法を使用して作製され得る。例えば、ポリクローナル血清は、従来の方法によって調製され得る。一般的に、CD40抗原を含む溶液が最初に使用されて、適切な動物(好ましくは、マウス、ラット、ウサギ、またはヤギ)を免疫化する。入手可能な血清の量、および標識された抗ウサギ抗体および抗ヤギ抗体が利用できることに起因して、ウサギまたはヤギが、ポリクローナル血清の調製に好ましい。
上記アンタゴニスト抗CD40抗体の生物学的に活性な適切な改変体が、本発明の方法において使用され得る。このような改変体は、親のアンタゴニスト抗CD40抗体の所望の結合特性を保持する。抗体改変体を作製するための方法は、当該分野で一般的に利用可能である。
本発明の方法はCD40発現細胞上のCD40シグナル伝達の刺激により媒介される疾患を有する患者を処置するためのアンタゴニスト抗CD40抗体の使用に関する。「CD40発現細胞」とは、CD40抗原を発現する正常および悪性のB細胞を意図している。細胞におけるCD40発現を検出するための方法は当該分野で知られており、例えばPCR法、免疫組織化学、フローサイトメトリー、ウエスタンブロット、ELISA等を包含するが、これに限定されない。「悪性」B細胞とは、いずれかの新生物性のB細胞、例えばリンパ腫から誘導されたB細胞、例えば軽度−、中等度−、および高度−悪性B細胞リンパ腫、免疫芽球性リンパ腫、非ホジキンリンパ腫、ホジキン病、エプスタインーバーウィルス(EBV)誘導リンパ腫、および、エイズ関連リンパ腫、並びにB細胞急性リンパ芽球性白血病、骨髄腫、慢性リンパ性白血病、急性骨髄芽球性白血病等を意図しているが、これに限定されない。
この態様において、本明細書に記載したアンタゴニスト抗CD40抗体またはその抗原結合フラグメントは、少なくとも1つの他の癌の治療、例えば手術または外科的処置(例えば脾臓切除、肝切除、リンパ節切除、白血球搬出、骨髄移植など);放射線療法;場合により自己骨髄移植と組み合わせた化学療法、ここで適当な化学療法剤は例えばフルダラビンまたはリン酸フルダラビン、クロラムブシル、ビンクリスチン、ペントスタチン、2−クロロデオキシアデノシン(クラドリビン)、シクロホスファミド、ドキソルビシン、プレドニソンおよびこれらの組合せ(これらに限定されない)、例えばアントラサイクリン含有処方、例えばCAP(シクロホスファミド、ドキソルビシン+プレドニソン)、CHOP(シクロホスファミド、ビンクリスチン、プレドニソン+ドキソルビシン)、VAD(ビンクリスチン、ドキソルビシン+デキサメタゾン)、MP(メルファラン+プレドニソン)および化学療法に使用する他の細胞毒性および/または治療薬、例えばミトキサントロン、ダウノルビシン、イダルビシン、アスパラギナーゼ、および、代謝拮抗物質、例えば、シタラビン、メトトレキセート、5−フルオロウラシルデカルバジン、6−チオグアニン、6−メルカプトプリンおよびネララビンを包含するもの(これらに限定されない);他の抗癌モノクローナル抗体療法(例えば、アルメツズマブ(Campath(登録商標))または悪性B細胞上のCD52細胞表面糖蛋白をターゲティングした他の抗CD52抗体;リツキシマブ(Rituxan(登録商標))、完全ヒト抗体HuMax−CD20、R−1594、IMMU−106、TRU−015、AME−133、トシツモマブ/I−131トシツモマブ(Bexxar(登録商標))、イブリツモマブチウキセタン(Zevalin(登録商標))または悪性B細胞上のCD20抗原をターゲティングするいずれかの他の治療用抗CD20抗体;抗CD19抗体(例えばMT103、二重特異性抗体);抗CD22抗体(例えばヒト化モノクローナル抗体エプラツズマブ);ベバシズマブ(Avastin(登録商標))またはヒト血管内皮成長因子をターゲティングする他の抗癌抗体;悪性B細胞上のCD22抗原をターゲティングする抗CD22抗体(例えばモノクローナル抗体BL−22、アルファCD22毒素);マクロファージコロニー刺激因子をターゲティングするα−M−CSF抗体;多発性骨髄腫において過剰発現される核因子−カッパBの受容体活性化剤(RANK)およびそのリガンド(RANKL)をターゲティングする抗体;悪性B細胞上のCD23をターゲティングする抗CD23抗体(例えばIDEC−152);CD80抗原をターゲティングする抗CD80抗体(例えばIDEC−114);悪性B細胞上のCD38抗原をターゲティングする抗CD38抗体;悪性B細胞上に発現される主要組織適合複合体クラスII受容体をターゲティングする抗体(抗MHC抗体);悪性B細胞上のCD40抗原ヲターゲティングする他の抗CD40抗体(例えばSGN−40);および固形腫瘍および造血起源の腫瘍の多くにおいて発現される腫瘍壊死因子関連アポトーシス誘導リガンド受容体1(TRAIL−R1)(例えばアゴニスト性ヒトモノクローナル抗体HGS−ETR1)およびTRAIL−R2をターゲティングする抗体);小分子系癌療法、例えば微小管および/またはトポイソメラーゼ阻害剤(例えば有糸分裂抑制剤ドラスタチンおよびドラスタチン類縁体;チュブリン結合剤T900607;XL119;およびトポイソメラーゼ阻害剤アミノカンプトテシン)、SDX−105(塩酸ベンダムスチン)、イキサベピロン(エポチロン類縁体、別名BMS−247550)、蛋白キナーゼC阻害剤、例えばミドスタウリン((PKC−412,CGP41251、N−ベンゾイルスタウロスポリン)、ピキサントロン、エロキサチン(抗新生物剤)、ガナイト(硝酸ガリウム)、Thalomid(登録商標)((登録商標)サリドマイド)、サリドマイドの免疫モジュレート誘導体(例えばレブリミド(前レブミド))、AffinitakTM(蛋白キナーゼC−アルファのアンチセンス抑制剤)、SDX−101(R−エトドラック、悪性リンパ球のアポトーシスを誘導)、第2世代のプリンヌクレオシド類縁体、例えばクロファラビン、癌細胞による蛋白Bcl−2の生産の抑制剤(例えばアンチセンス剤であるオブリメルセンおよびGenasense(登録商標))、プロテオソーム抑制剤(例えばVelcadeTM(ボルテゾミブ))、小分子キナーゼ阻害剤(例えばCHIR−258)、小分子VEGF阻害剤(例えばZD−6474)、熱ショック蛋白(HSP)90の小分子阻害剤(例えば17−AAG)、ヒストンデアセチラーゼの小分子阻害剤(例えばハイブリッド/極性細胞分化HPC)剤、例えばスベラニロヒドロキサム酸(SAHA)およびFR−901228)およびアポトーシス剤、例えばTrisenox(登録商標)(3酸化砒素)およびXcytrin(登録商標)(モテキサフィンガドリニウム);ワクチン/免疫療法系癌治療法、例えばワクチン法(例えば、Id−KLH、オンコファージ、ビタレチン)、個人別免疫療法または能動的イディオタイプ免疫療法(例えばMyVax(登録商標)Personalized Immunotherapy、以前の名称GTOP−99)、Promune(登録商標)(CpG7909、toll−like受容体9(TLR9)の合成アゴニスト);インターフェロン−アルファ療法、インターロイキン−2(IL−2)療法、IL−12療法、IL−15療法、およびIL−21療法;ステロイド療法;または他の癌療法と組み合わせて(これらに限定されない)投与され;ここで付加的な癌治療剤はアンタゴニスト抗CD40抗体療法の前、最中、または後に投与してよい。即ち、化学療法、放射線療法、他の抗癌抗体療法、小分子系癌療法またはワクチン/免疫療法系癌療法の場合のように複合療法が他の治療薬の投与と組み合わせたアンタゴニスト抗CD40抗体またはその抗原結合フラグメントの投与を含む場合は、本発明の方法は別々の処方物または単一の処方物を用いた同時投与、またはいずれかの順序における連続的投与を包含する。本発明の方法が複合療法の用法を含む場合は、これらの療法は同時に行うことができ、即ち、アンタゴニスト抗CD40抗体またはその抗原結合フラグメントは他の癌治療薬と同時に、または同じ時間枠内で投与される(即ち、治療は同時進行してよいが、アンタゴニスト抗CD40抗体またはその抗原結合フラグメントは他の癌治療薬と厳密に同時に投与されない)。或いは、アンタゴニスト抗CD40抗体またはその抗原結合フラグメントは他の癌治療薬の前または後に投与してもよい。異なる癌治療薬の逐次的投与は、投与された患者が治療の第1の過程に応答して後退または再発の可能性が低減するか否かに関わらず実施してよい。複合療法が細胞毒処方物の投与と組み合わせたアンタゴニスト抗CD40抗体またはその抗原結合フラグメントの投与を含む場合、好ましくはアンタゴニスト抗CD40抗体またはその抗原結合フラグメントは細胞毒処方物の投与の前に投与する。
本発明のアンタゴニスト抗CD40抗体はCD40発現細胞媒介疾患、例えばSLE、PBC、ITP、多発性硬化症、乾癬、クローン病、移植片拒絶反応およびB細胞リンパ腫を防止または治療するために治療上有効である濃度において投与する。この目的を達成するためには、抗体は当該分野で知られている許容される賦形剤種々を使用して処方物してよい。典型的には抗体は静脈内または腹腔内のいずれかの注射により投与される。この投与を達成するための方法は当該分野で知られている。局所または経口投与してよい、または粘膜を通過する伝達が可能な、組成物を得ることも可能である。
本発明はまた新生物B細胞生育を特徴とする癌に関して患者を処置するための医薬の製造におけるアンタゴニスト抗CD40抗体またはその抗原結合フラグメントの使用を提供し、この場合、医薬は少なくとも1種の他の癌治療薬の投与と協調させる。新生物B細胞生育を特徴とする癌は例えば上記したB細胞関連癌、例えば非ホジキンリンパ腫、慢性リンパ性白血病、多発性骨髄腫、B細胞リンパ腫、高度悪性B細胞リンパ腫、中等度悪性B細胞リンパ腫、軽度悪性B細胞リンパ腫、B細胞急性リンパ芽球性白血病、骨髄芽球性白血病およびホジキン病、プラズマ細胞腫、濾胞性リンパ腫、濾胞性小分裂リンパ腫、濾胞性大細胞リンパ腫、濾胞性混合型小分裂リンパ腫、散在小分裂細胞リンパ腫、散在小リンパ球性リンパ腫、プロリンパ球性白血病、リンパプラズマ細胞様リンパ腫、辺縁域リンパ腫、粘膜関連リンパ様組織リンパ腫、単球性B細胞リンパ腫、脾型リンパ腫、ヘアリー細胞白血病、散在性大細胞リンパ腫、縦隔大B細胞リンパ腫、リンパ腫様肉芽腫症、血管内リンパ腫、散在混合型細胞リンパ腫、散在性大細胞リンパ腫、免疫芽球性リンパ腫、バーキットリンパ腫、エイズ関連リンパ腫および皮膜細胞リンパ腫を包含するが、これらに限定されない。
ヒトIgMおよびIgGの濃度はELISAで推定した。96穴のELISAプレートを4℃で16時間インキュベートすることにより0.05M炭酸塩緩衝液(pH9.6)中の2μg/mLヤギ抗ヒトIgGMAb(The Jackson Laboratory,Bar Harbor,Maine)または2μg/mLヤギ抗ヒトIgMMAb4102(Bio Source International,California)でコーティングした。プレートをPBS−0.05%Tween−20(PBS−Tween)で3回洗浄し、そして1時間BSAで飽和させた。2回洗浄後、プレートを被験試料の種々の希釈度において37℃で2時間インキュベートした。3回洗浄後、1μg/mLペルオキシダーゼ標識ヤギ抗ヒトIgGMAbまたはヤギ抗ヒトIgMMabと共に37℃で2時間インキュベートすることにより結合Igを検出した。プレートを4回洗浄し、結合ペルオキシダーゼ活性を基質としてO−フェニレンジアミンを添加することにより明らかにした。ヒトIgGまたはIgM標準物質(Caltaq、Burlingame,California)を用いて各試験の標準曲線を求めた。
血液添加前30分に、50mLポリスチレン試験管当たり20mLのFicoll−Paque溶液(低内毒素;Pharmacia)を3試験管に添加した。Ficoll−Paque溶液を室温に加温した。1:10希釈度で3Lのブリーチ液を調製し、血液に接触した前試験管およびピペットを洗浄するために使用した。血液をFicoll−Paque溶液の上面にFicoll層を撹乱させずに1.5mL血液/Ficoll−Paque 1mLとなるように層化した。遠心分離機のブレーキをオフにしたまま、室温で30分間1700rpmで試験管を遠心分離した。上層(血漿)を可能な限り大量に除去し、溶液の第2層を除去することのないよう真空を最小限とした。BおよびTリンパ球を含有する第2層を滅菌パスツールピペットを用いて採取し、2本の50mL容量のポリスチレン試験管内に入れた。採取物を3倍容量の無添加冷RPMIで希釈し、試験管を10分間1000RPMで遠心分離した。培地を吸引除去し、両方の50mL試験管の細胞を合計10mLの冷RPMI(添加剤含有)中に再懸濁し、15mLの試験管に移した。細胞を血球計で計数し、次に10分間1000RPMで遠心分離した。培地を除去し、細胞を4mLRPMI中に再懸濁した。この画分はPBMCを含有していた。
ダイナビーズ(抗hCD19)100μLを5mLプラスチック試験管に入れた。滅菌PBS3mLをビーズに添加して混合し、磁気ホルダー内にいれ、次に2分間静置させた。溶液をパスツールピペットを用いて除去した。滅菌PBS3mLを添加し、混合し、磁気ホルダー内にいれ、次に2分間静置させた。滅菌PBSを用いたこの操作を再度反復して合計3洗浄とした。PBMCをビーズに添加し、40℃で30分間インキュベートした。PBMCおよびビーズを含有する試験管を磁気ホルダー中に2分間入れ、次に溶液を磁気ホルダー中の新しい5mL試験管に移した。2分後、溶液を新しい15mL試験管に移した。この工程を更に4回反復し、最初の4回の溶液を15mL試験管に収集し、次に5分間1000RPMで遠心分離した。この工程によりT細胞分離のためのペレットが得られた。
10Xカラム洗浄緩衝液2mLおよび滅菌蒸留水18mLを混合することにより1Xカラム洗浄緩衝液20mLを用いてヒトT細胞エンリッチメントカラム(R&D systems、抗hCD3カラムキット)を調整した。カラムを70%エタノールで清浄化し、15mL試験管の最上部に置いた。カラムの上蓋をまず外すことにより、カラムの底部に空気が引き込まれないようにした。次に、下蓋を外し、先端を70%エタノールで清浄化した。カラム内の液体を15mL試験管に流下させた。カラム緩衝液が白色フィルターの高さまで流下した後に、新しい滅菌15mL試験管をカラム下に置いた。B細胞枯渇PBMC画分を緩衝液1mLに懸濁し、カラム最上部に添加した。細胞を10分間室温でカラムと共にインキュベートした。1Xカラム洗浄緩衝液各々2mLの4回分でカラムからT細胞を溶離させた。収集したT細胞を5分間1000RPMで遠心分離した。上澄みを除去し、細胞を10mLRPMI中に再懸濁した。細胞を計数し、再度遠心分離した。上澄みを除去し、T細胞の精製を終了した。細胞を90%FCSおよび10%DMSO中に保存し、−80℃で凍結した。
Ramos細胞(106細胞/試料)を4℃で20分間一次抗体(PBS−BSA中10μg/mL)100μL中でインキュベートした。PBS−BSAまたはHBSS−BSAで3洗浄した後、細胞を4℃で20分間ヤギ抗(ヒトIgG)抗体のFITC標識F(ab’)2フラグメント(Caltaq)100μL中でインキュベートした。PBS−BSAで3洗浄、そしてPBSで1洗浄の後、細胞をPBS0.5mL中に再懸濁した。分析はFACSCAN V(Becton Dickinson,San Jose,California)を用いて実施した。
de Boer et al.(1988)J.Immunol.Meth.113:143の記載に従って、50%ポリエチレングリコールを用いて10:1の比で免疫化されたマウス由来の脾細胞をSP2/0またはP3x63Ag8.653ネズミミエローマ細胞と融合させた。融合細胞をヒポキサンチン(0.1mM)、アミノプテリン(0.01mM)、チミジン(0.016mM)および0.5ng/mLhIL−6(Genzyme, Cambridge,Massachusetts)を添加した完全IMDM培地に再懸濁した。次に融合細胞を96穴組織培養プレートのウェル間に分配し、各ウェルが平均1成長ハイブリドーマを含むようにした。
IgG1アイソタイプの数種の完全ヒトアンタゴニスト抗CD40モノクローナル抗体を作成した。ヒトIgG1重鎖遺伝子座およびヒトκ鎖遺伝子座を担持したトランスジェニックマウス(Abgenix γ−1 XenoMouse(登録商標)technology(Abgenix;Fremont,California))を用いてこれらの抗体を作成した。CD40細胞外ドメインを発現するSF9昆虫細胞を免疫原として使用した。合計31マウス脾臓をマウスミエローマSP2/0細胞と融合させることによりELISAにおいて組み換えCD40を認識する895抗体を作成した(表1Aおよび1B)。Abgenix XenoMouse(登録商標)technologyを用いて製造したハイブリドーマの平均約10%がヒトκ鎖の代わりにマウスラムダ軽鎖を含む。マウスラムダ軽鎖を含有する抗体を選抜した。やはり細胞表面CD40への結合を示した260抗体のサブセットを更に分析するために選択した。一連のサブクローニング操作の間に選択された安定なハイブリドーマを結合および機能の試験におけるその後の特性化のために使用した。
候補抗体の可変領域をコードするcDNAをPCR増幅し、クローニングし、そして配列決定した。CHIR−12.12抗体の軽鎖および重鎖のアミノ酸配列をそれぞれ図9Aおよび9Bに示す。配列番号2(mAb CHIR−12.12の軽鎖)および配列番号4(mAb CHIR−12.12の重鎖)も参照できる。mAb CHIR−12.12の重鎖の変異体は図9B(配列番号5も参照)に示す通りであり、これは配列番号4の153位のアラニン残基に対するセリン残基の置換を有する点において配列番号4と異なる。CHIR−12.12.抗体の軽鎖および重鎖をコードするヌクレオチド配列をそれぞれ図10Aおよび10Bに示す。配列番号1(mAb CHIR−12.12の軽鎖のコーディング配列)および配列番号3(mAb CHIR−12.12の重鎖のコーディング配列)も参照できる。CHIR−5.9抗体の軽鎖および重鎖のアミノ酸配列をそれぞれ図11Aおよび9Bに示す。配列番号6(mAb CHIR−5.9の軽鎖)および配列番号7(mAb CHIR−5.9の重鎖)も参照できる。mAb CHIR−5.9の重鎖の変異体は図11B(配列番号8も参照)に示す通りであり、これは配列番号7の158位のアラニン残基に対するセリン残基の置換を有する点において配列番号7と異なる。
候補抗体CHIR−5.9およびCHIR−12.12は細胞表面CD40へのCD40リガンドの結合を防止し、そして予備結合したCD40リガンドを置き換える。リンパ腫細胞株(Ramos)の細胞表面CD40へのCD40リガンドの結合を防止する抗体CHIR−5.9およびCHIR−12.12の能力を調べた。両方の抗体(未標識)の結合はフローサイトメトリー試験により測定した場合PE−CD40リガンドのその後の結合を防止した(図2A)。試験の第2のセットにおいて、細胞表面CD40に予備結合したCD40リガンドを置き換える能力について2抗体を試験した。両抗体とも予備結合CD40リガンドを競合排除するために有効であり、CHIR−5.9がCHIR−12.12より僅かにより有効であった(図2B)。
候補モノクローナル抗体CHIR−5.9およびCHIR−12.12はCD40との結合については相互に競合するが、IgG2抗CD40mAbである15B8とは競合しない(国際出願WO02/28904参照)。Biacoreを用いた抗体競合結合アッセイをアミンカップリングを介して固定したプロテインAを有するCM5バイオセンサーを用いて設計し、これを用いて抗CD40、CHIR−12.12または15B8のいずれかをキャプチャーした。通常の会合/解離の結合曲線がCD40−hisの種々の濃度において観察された(データ示さず)。競合試験のためには、CHIR−12.12または15B8のいずれかをプロテインAの表面上にキャプチャーする。その後、CD40−his/CHIR−5.9Fab複合体(100nMCD40:1μMCHIR−5.9Fab)の種々の濃度のものを修飾された表面を通過させて流動させた。CHIR−12.12の場合は複合体の会合は観察されず、CD40−hisへのCHIR−12.12の結合をCHIR−5.9がブロックすることを示していた。15B8については、FabCHIR−5.9複合体の会合が観察され、CD40結合部位への15B8の結合をCHIR−5.9がブロックしないことを示していた。しかしながら、複合体のオフ率は劇的に上昇した(データ示さず)。
プロテインAをアミンカップリングによりCM5バイオセンサーチップに固定化した。10μL/分の速度で1.5分間修飾バイオセンサーチップ上にヒト抗CD40モノクローナル抗体を1.5μg/mLでキャプチャーさせた。組み換え可溶性CD40−hisを種々の濃度デバイオセンサー表面上に流動させた。抗体および抗原を0.01M HEPSpH7.4、0.15M NaCl、3mM EDTA、0.005%SurfactantP20(HBS−EP)中に希釈した。速度定数および親和性定数はBiaevaluationソフトウエアおよび1:1相互作用モデル/グローバルフィットを用いて求めた。
CD40リガンドによるCD40の捕獲はヒトB細胞の増殖を誘導する。アンタゴニスト抗CD40抗体はこの増殖を抑制すると期待される。2種の候補抗体(CHIR−5.9およびCHIR−12.12)の正常ヒト対象由来のPBMCのCD40リガンド誘導増殖を抑制する能力について試験した。ホルムアルデヒド固定CHO細胞トランスフェクト体発現CD40リガンド(CD40L)をCD40リガンドの原料として使用した。ヒトPBMCは抗CD40mAb CHIR−5.9またはCHIR−12.12の種々の濃度の存在下においてCD40リガンドを発現するホルムアルデヒド固定CHO細胞と共に4日間培養した。増殖はトリチウム化チミジンの取り込みにより測定した。細胞を14〜18時間37℃でトリチウム化標識チミジンでパルシングした。
CD40リガンドは正常B細胞およびB細胞リンパ腫細胞を活性化して増殖させる。一部の抗CD40抗体(アゴニスト)の結合は正常および癌B細胞の増殖のための同様の刺激シグナルを与えることができる。強力なB細胞刺激活性を有する抗体はB細胞リンパ腫の治療的投与のための適当な候補ではない。2種の候補抗体が正常ボランティアドナー由来のB細胞の増殖を誘導する能力について試験した。正常ドナーPMBC由来のFicoll−Hypaque Plus勾配遠心分離により精製したB細胞を合計4日間種々の濃度の候補抗体(0.001〜100μg/mLの範囲)と共に96穴プレート中培養した。陽性対照群においては、PBMCをCD40リガンドを発現するホルムアルデヒド固定CHO細胞と共に培養した。B細胞の黄色は14〜18時間37℃でトリチウム化標識チミジンの取り込みにより測定した。CHO細胞上に提示されるCD40リガンドは145の平均刺激指数(SI)をもたらすB細胞の旺盛な増殖を誘導したが、候補抗体はCHIR−12.12およびCHIR−5.9についてそれぞれ2.89および5.08の刺激指数で弱い増殖を誘導したのみであった(n=3)(表6)。
候補抗体はADCCの機序によりCD40担持標的細胞(リンパ腫系統)を殺傷することができる。CHIR−5.9およびCHIR−12.12の両方はIgG1アイソタイプの完全ヒト抗体であり、そして、ADCCの機序により標的細胞の殺傷を誘導する能力を有することが期待される。それらがインビトロの試験において癌細胞株を殺傷する能力があるかどうか調べた。2種のヒトリンパ腫系統(RamosおよびDaudi)をこれらの試験の標的細胞として選択した。8正常ボランティアドナー由来のPBMCまたはリッチ化NK細胞をこれらの試験のエフェクター細胞として使用した。リンパ腫癌細胞株の標的細胞の両方に対してCHIR−5.9と比較してCHIR−12.12の場合により強力なADCC応答が観察された。リンパ腫細胞株はリツキシマブ(Rituxan(登録商標))に対する標的抗原であるCD20も発現し、これにより、リツキシマブADCC活性にこれら2種の候補mAbのADCC活性を比較するこが可能となった。リンパ腫細胞株標的については、1μg/mLの濃度で使用した場合、CHIR−5.9、CHIR−12.12およびリツキシマブについてそれぞれ35%、59%および47%の平均の特異的溶解は観察された(表9)。2種の抗体は補体依存性細胞毒性(CDC)試験においてはそれほど活性を示さなかった。
NHL細胞を患者の生検リンパ節から単離し、使用時まで液体窒素中に保存した。分析の時点における細胞の生存性は90%を超過していた。2人のリツキシマブ感受性および3人のリツキシマブ抵抗性の患者(合計5患者)に由来する細胞を直接標識15B8−FITCまたは15B8+抗huIgG2−FITCのいずれかで染色し、フローサイトメトリーで分析した。全患者由来のNHL細胞はCD40を発現することが判明した。表10はNHL細胞の76%がCD40を発現すること示している(範囲60〜91%)。
CD40リガンドはNHL患者由来のリンパ腫細胞の生存および増殖のための刺激シグナルを与える。一部の抗CD40抗体(アゴニスト)の結合は患者の癌細胞の増殖に対して同様の刺激シグナルを与えることができる。強力なB細胞刺激活性を有する抗体はB細胞リンパ腫の適当な候補ではない。2種の候補抗体が3患者由来のNHL細胞の増殖を誘導する能力について試験した。リンパ節(LN)生検から単離された細胞を種々の濃度の候補抗体(範囲0.01〜300μg/mL)と共に合計3日間培養した。細胞の増殖はトリチウム化チミジンの取り込みにより測定した。2種の候補mAbの何れも試験した何れの濃度においても癌細胞の増殖を誘導しなかった(表11)。外部から添加したB細胞成長因子であるIL−4の存在下であっても抗体はNHL細胞の増殖を誘導しなかった(3患者細胞の1つにおいて試験)。これらの結果はCHIR−5.9およびCHIR−12.12はアゴニスト抗CD40抗体ではなく、そして患者由来のNHL細胞のインビトロ増殖を刺激しないことを示している。
CD40によるCD40の係留はNHL患者由来の癌細胞の増殖を誘導する。アンタゴニスト抗CD40抗体はこの増殖を抑制することが期待される。2種の候補抗CD40抗体を種々の濃度(0.01〜100μg/mL)において、それらが患者由来のNHL細胞のCD40リガンド誘導増殖を抑制する能力を有するかどうか調べた。患者由来のNHL細胞をIL−4の存在下CD40L発現フィーダー上で懸濁液中培養した。NHL細胞の増殖は3H−チミジン取り込みにより測定した。両方の抗体ともNHL細胞のCD40リガンド誘導増殖の抑制において極めて効果的であることがわかった(表12、n=2)。CD40リガンド誘導増殖のほぼ完全な抑制が抗体濃度1.0〜10μg/mLで達成される。
長時間(7、10および14日)に渡りCD40リガンド担持細胞と共に培養した場合の生存NHL細胞数に対するCHIR−5.9の作用を調べた。CD40を介したCD40リガンド媒介シグナル伝達はB細胞の生存のために重要である。この実験セットでは7、10および14日におけるNHL細胞数に対する抗CD40抗体の作用を評価した。5患者由来のNHL細胞をIL−4の存在下CD40L発現照射フィーダー細胞上で懸濁液中培養した。対照ヒトIgGおよびCHIR−5.9抗体は第0日および第7日に10μg/mLの濃度で添加した。各条件下の生存細胞を特定の日に計数した。対照群(IgG)の細胞数は予測どおり時間に従って増大していた。対照群と比較してCHIR−5.9投与培養では減少した数の細胞が回収された。CHIR−5.9抗体による細胞数の低減の最大水準は第14日に観察され、アイソタイプ対照と比較して平均80.5%(範囲49〜94%)であった(n=5)。これらのデータを表13にまとめる。
CHIR−5.9およびCHIR−12.12は両方ともIgG1アイソタイプの完全ヒト抗体であり、そしてADCCの機序によりインビトロでリンパ腫細胞株の殺傷を誘導することがわかっている(表9)。これらの単一のNHL患者由来の癌細胞を殺傷する能力についてインビトロの試験で調べた。正常ボランティアドナー由来のリッチ化NK細胞を単離直後または37℃一夜培養後にこの試験のエフェクター細胞として使用した。単離直後のNK細胞および一夜培養後に使用したNK細胞の両方で同様の結果が得られた。患者由来のNHL細胞に対してはCHIR−5.9と比較してCHIR−12.12で高値のADCC水準が観察された。NHL細胞はリツキシマブ(Rituxan(登録商標))に対する標的抗原であるCD20も発現し、これにより、リツキシマブにこれら2種の候補mAbのADCC活性を比較するこが可能となった。抗体CHIR−12.12およびリツキシマブは同様の水準のADCC活性を示し、CHIR−5.9はこの試験では低値であった。これらのデータは図3Aおよび3Bに示す。
候補抗体はCLL患者由来の癌細胞のCD40媒介生存および増殖をブロックできる。患者由来のCLL細胞を2つの異なる条件下、即ち、ヒトアイソタイプ抗体IgG添加;およびCHIR−5.9またはCHIR−12.12モノクローナル抗体のいずれか添加において、CD40L発現ホルムアルデヒド固定CHO細胞上で懸濁液中培養した。全ての抗体はIL−4の非存在下1、10および100μg/mLの濃度で添加した。細胞計数はMTS試験により24および48時間に実施した。細胞の低減数は対照群と比較した場合にCHIR−5.9(n=6)およびCHIR−12.12(n=2)投与培養物から回復した。抗CD40mAb投与および対照抗体投与の培養物の間の細胞数のより大きい差が48時間の時点において観察された。データは表14にまとめる。
(薬理学的/インビボの薬効)
候補mAbは2つの抗腫瘍機序、即ち増殖/生存シグナルの遮断、および、ADCCの誘導のいずれか/両方により腫瘍負荷を低減する望ましい薬理学的作用をもたらすことが期待される。現在入手可能なヒトリンパ腫異種移植片モデルは原発癌細胞とは対照的にその生育および生存をCD40刺激に依存していない長期リンパ腫細胞株を使用している。従って、腫瘍増殖/生存シグナルの遮断に基づいたこれらのmAbの抗腫瘍活性の要素はこれらのモデルにおいて抗腫瘍薬効に寄与するとは期待されない。これらのモデルにおける薬きょうはADCC、即ちCHIR−5.9およびCHIR−12.12mAbに関連する第2の抗腫瘍機序に依存している。NamalwaおよびDaudi細胞株に基づいた2種の異種移植片ヒトリンパ腫モデルを、候補mAbの抗腫瘍活性に関して評価した。その治療活性を更に明らかにするために、これらの候補mAbをDaudi細胞株に基づいた段階型および非段階型の異種移植片ヒトリンパ腫モデルにおいて評価した。
合計3投薬において一週間に1回腹腔内(ip)投与した場合、2つの候補mAbの1つであるCHIR−12.12は用量依存性の態様で攻撃的な非段階型B細胞リンパ腫(Namalwa)の生育を顕著に抑制した(図4)。第2の候補mAbであるCHIR−5.9は本試験では単一の用量においてのみ試験したが、同じ用量のCHIR−12.12よりも有効性が低値であった。興味深いことに、CHIR−12.12はリツキシマブよりも本モデルにおいてより有効であることが解った。リツキシマブの低有効性はNamalwaリンパ腫細胞株上の低いCD20発現に起因する可能性がある。候補mAbで観察された薬効は、2つの癌細胞殺傷機序のうち1つ(ADCC)のみが現在の異種移植片リンパ腫モデルにおいて効力を有することから、より大きい重要性を有する。2つの殺傷機序、即ちADCCおよび生存シグナルの遮断はヒトリンパ腫患者における抗腫瘍活性に寄与することが期待される。これはヒトリンパ腫患者における薬効を達成する機会を増大させると考えられる。候補抗CD40mAbはまた、第2のB細胞リンパ腫における腫瘍生育の抑制の傾向も示している(非有効化Daudiモデル、データ示さず)。フォローアップ試験において、2つの候補抗体は非段階方および段階型のDaudiリンパ腫モデルの両方において用量依存的抗腫瘍薬効を有することが示された(それぞれ図5および6)。段階型Daudiモデルにおいて、CHIR−12.12mAbはRituxan(登録商標)の同用量よりも腫瘍体積の低減においてより有効であった。
一貫した腫瘍生育を確保するために、T細胞欠損ヌードマウスを3Gyで全身照射することにより腫瘍接種1日前に免疫系を更に抑制した。腫瘍細胞はマウス当たり5x106個で右体側部に皮下接種した。投与は腫瘍移植後1日(非段階皮下異種移植片ヒトB細胞リンパ腫モデル、NamalwaおよびDaudi)または腫瘍体積が200〜400mm3に達した時点(段階型Daudiモデル、通常は腫瘍接種の15日後)のいずれかに開始した。腫瘍担持マウスに所定用量において一週間に1回腹腔内(ip)に抗CD40mAbを注射した。腫瘍体積は一週間に2回記録した。腫瘍体積が2500mm3に達した時点で、試験を終了した。段階型Daudiモデルにおいては腫瘍体積データは第36日まで分析したが、これは一部のマウスがこの日以降に死亡したためである。完全な後退(CR)は試験終了時まで計数した。データはANOVAまたはKruskal−Wallis検定および多群比較のための相当する後試験を用いて分析した。
抗CD40mAbのマウスにおける薬物動態を単回IVおよびIP用量投与の後に試験した。抗CD40mAbはIP投与後に高い全身生体利用性および延長された終末半減期(>5日)を示した(データ示さず)。このパイロット試験は薬理学的試験の設計において利用するために実施したが、この完全ヒトmAbはマウスCD40とは交差反応しないため、このmAbの生成活性に関しては殆ど、または全く重要性を有さなかった。
モノクローナル抗体CHIR−12.12およびモノクローナル抗体CHIR−5.9により認識されるCD40上のエピトープの位置を決定するために、SDS−PAGEおよびウェスタンブロット分析を実施した。精製したCD40(0.5μg)を、還元条件下および非還元条件下で、4〜12%のNUPAGEゲル上で分離し、PVDFメンブレンに移し、そして、10μg/ml濃度のモノクローナル抗体でプローブした。ブロットを、アルカリホスファターゼ結合体化抗ヒトIgGでプローブし、そして、アルカリホスファターゼについてのWestern BlueR安定化基質(Promega)を用いて発色させた。
NamalwaおよびDaudi細胞上のCD20およびCD40分子の数を図7に示す通り0.01、0.1、1、10および100μg/mLの抗体濃度を用いて測定した。図7から解るとおり、CD20分子(リツキシマブの標的)の平均数はCD40分子(mAb CHIR−12.12の標的)の数よりもNamalwaおよびDaudi細胞株の両方において高値であった。
リツキシマブおよび候補mAb CHIR−12.12のADCC活性を標的(T)細胞としてのリンパ腫細胞株Daudiおよびエフェクター(E)細胞としての健常者ボランティア由来精製NK細胞に対して種々の濃度においてインビトロで試験した。新しく単離したヒトNK細胞をカルセイン標識Daudiリンパ腫細胞とE:T比10で混合した。細胞混合物をmAb CHIR−12.12またはリツキシマブのいずれかの所定濃度の存在下に37℃で4時間インキュベートした。上澄み中の溶解した標的細胞から放出されたカルセイン濃度を任意蛍光単位(Arbitary Fluorescent Units:AFU)として測定した。パーセント特異的溶解は100x(AFU試験−AFU自発的放出)/(AFU最大放出−AFU自発的放出)として計算し、式中AFU自発的放出は抗体またはNK細胞の非存在下で標的細胞かにより放出されたカルセインであり、そしてAFU最大放出は洗剤による溶解で標的細胞から放出されたカルセインである。
可溶性CD40リガンド(CD40L)はB細胞を活性化し、そして、生存および増殖の増強およびNFκB、ERK/MAPK、PI3K/Aktおよびp38シグナル伝達経路の活性化を含む機能的応答の種々の特徴を含む。加えて、CD40L媒介CD40刺激は、正常B細胞における分解PARPの低下および抗アポトーシス蛋白、XIAPおよびMcl−1の誘導により生存シグナルを提供する。CD40L媒介CD40刺激はまたTRAF2およびTRAF3をCD40細胞質ドメインに結合させる。
これらの実験においては、健常者ドナー由来の0.6x106の正常ヒトB細胞(パーセント純度85〜95%)を1μg/mLのsCD40L(Alexis,Corp.,Bingham,Nottinghamshire,UK)で刺激した。次にCHIR−12.12(10μg/mL)および対照IgGを添加した。細胞を0、20分、2時間、6時間、18時間および26時間で収集した。分解カスパーゼ−9、分解カスパーゼ−3、分解PARPおよびβ−アクチン対照をウエスタンブロットにより細胞溶解物中で検出した。
これらの実験においては、健常者ドナー由来の0.6x106の正常ヒトB細胞(パーセント純度85〜95%)を1μg/mLのsCD40L(Alexis,Corp.,Bingham,Nottinghamshire,UK)で刺激した。次にCHIR−12.12(10μg/mL)および対照IgGを添加した。細胞を0、20分、2時間、6時間、18時間および26時間で収集した。Mcl−1、XIAP、CD40およびβ−アクチン対照をウエスタンブロットにより細胞溶解物中で検出した。
これらの実験においては、健常者ドナー由来の1.0x106の正常ヒトB細胞(パーセント純度85〜95%)を1μg/mLのsCD40L(Alexis,Corp.,Bingham,Nottinghamshire,UK)で刺激した。次にCHIR−12.12(10μg/mL)および対照IgGを添加した。細胞を0および20分に収集した。ホスホリル化IKKα(Ser180)およびIKKβ(Ser181)および前IKKβ対照はウエスタンブロットにより細胞溶解物中で検出した。
これらの実験においては、健常者ドナー由来の0.6x106の正常ヒトB細胞(パーセント純度85〜95%)を1μg/mLのsCD40L(Alexis,Corp.,Bingham,Nottinghamshire,UK)で刺激した。次にCHIR−12.12(0.01,0.1、0.2,0.5、1.0μg/mL)および対照IgGを添加した。細胞を24時間で収集した。分解PARPおよびβアクチン対照はウエスタンブロットにより細胞溶解物中で検出した。
これらの実験においては、健常者ドナー由来の0.6x106の正常ヒトB細胞(パーセント純度85〜95%)を1μg/mLのsCD40L(Alexis,Corp.,Bingham,Nottinghamshire,UK)で刺激した。次にCHIR−12.12(0.5、2および10μg/mL)および対照IgGを添加した。細胞を22時間で収集した。分解PARPおよびβアクチン対照はウエスタンブロットにより細胞溶解物中で検出した。Mcl−1、XIAP、分解PARPおよびβアクチン対照はウエスタンブロットにより細胞溶解物中で検出した。
これらの実験においては、健常者ドナー由来の1.0x106の正常ヒトB細胞(パーセント純度85〜95%)にCHIR−12.12(10μg/mL)および対照IgGのみを投与した(即ち抗体添加前にsCD40Lによる予備刺激を細胞に与えなかった)。細胞は0,4,14および16時間で収集した。XIAP、分解PARPおよびβアクチン対照はウエスタンブロットにより細胞溶解物中で検出した。
これらの実験においては、健常者ドナー由来の1.0x106の正常ヒトB細胞(パーセント純度85〜95%)を1%FBS含有培地中で血清枯渇させ、そして1μg/mLのsCD40L(Alexis,Corp.,Bingham,Nottinghamshire,UK)で刺激した。培養物にCHIR−12.12(1および10μg/mL)および対照IgGを投与した。細胞を0および20分間で収集した。ホスホ−IKKα、ホスホ−IKKβ、全IKKβ、ホスホERK、全ERK、ホスホ−Akt、全Akt、ホスホ−p38および全p38はウエスタンブロットにより細胞溶解物中で検出した。
これらの実験においては、健常者ドナー由来の1.0x106の正常ヒトB細胞(パーセント純度85〜95%)を1%FBS含有培地中で血清枯渇させ、そして1μg/mLのsCD40L(Alexis,Corp.,Bingham,Nottinghamshire,UK)で刺激した。培養物にはまたCHIR−12.12(1および10μg/mL)、Wortmanin(PI3K/Akt阻害剤;1および10μM)、LY294002(PI3K/Akt阻害剤;10および30μM)およびPD98095(MEK阻害剤、10および30μg/mL)を投与した。細胞を0および20分間で収集した。ホスホ−ERK、ホスホ−Akt、全Akt、ホスホ−IKKα/βおよび全体をウエスタンブロットにより細胞溶解物中で検出した。
これらの実験においては、健常者ドナー由来の4.0x106の正常ヒトB細胞(パーセント純度85〜95%)を1%FBS含有培地中で4時間血清枯渇させ、そして1μg/mLのsCD40L(Alexis,Corp.,Bingham,Nottinghamshire,UK)で20分間刺激した。細胞を0および20分間で収集した。CD40はポリクローナル抗CD40(Santa Cruz Biotechnology,CA)で免疫沈降させ、抗TRAF2mAb(Santa Cruz Biotechnology,CA)、抗TRAF3mAb(Santa Cruz Biotechnology,CA)および抗CD40mAb(Santa Cruz Biotechnology,CA)を用いたウエスタンブロットにおいてプロービングした。
臨床研究者等との共同作業により、候補mAbをNHLおよびCLLおよび多発性骨髄腫患者由来の原発癌細胞に対する種々の活性(下記に列挙)について試験する。
・増殖試験におけるアンタゴニスト活性(8NHL患者、8CLL患者および8MM患者)
・アネキシンV試験によるアポトーシス作用(3〜4NHL患者、4CLL患者および4MM患者)
・アネキシンV試験による生存シグナルの逆行(3NHL患者、3CLL患者および3MM患者)
・補体依存性細胞毒性(4NHL患者、4CLL患者および4MM患者)
・抗体依存性細胞毒性(6NHL患者、6CLL患者および6MM患者)
(実施例22:毒性試験のための該当動物種の発見)
これらの2候補抗体はげっ歯類CD40と交差反応しないため、毒性額的作用を試験するためには他の種を発見しなければならない。
CHIR−12.12およびCHIR−5.9mAbの相対的腫瘍ターゲティングプロファイルを調べるために、蛍光標識候補mAbおよびアイソタイプ対照抗体を腫瘍担持マウスに投与する。腫瘍標本および正常臓器を投与後種々の時点で採取する。腫瘍および正常臓器内の標識抗体の蓄積を分析する。
CHIR−5.9およびCHIR−12.12mAbによる腫瘍生育抑制を媒介する機序を解明するために、以下の試験を行う。
本試験の目的は生物物理額的および生物化学的な方法の両方によりアンタゴニスト抗CD40抗体CHIR−12.12の安定性に対する溶液pHの影響を検討することによりこの抗体のための旨適な溶液環境を選択することであった。示差操作熱量分析(DSC)の結果によれば、CHIR−12.12のコンホーメーション安定性はpH5.5〜6.5を有する処方物において旨適となった。SDS−PAGE、サイズエクスクルージョンHPLC(SEC−HPLC)およびカチオン交換HPLC(CEX−HPLC)分析の組合せに基づけばCHIR−12.12の物理化学的安定性は約5.0〜5.5のpHにおいて旨適となった。これらの結果に基づけば、この抗体を含む1つの推奨される液体薬学的処方物は約10mMのクエン酸ナトリウム、約150mMの塩化ナトリウムを中に製剤され、約5.5のpHを有する約20mg/mLのCHIR−12.12を含む処方物である。
処方物試験に使用したCHIR−12.12はCHO細胞培養方法により生産したヒトモノクローナル抗体である。このmAbは分子量150kDaを有し、そして、ジスルフィド結合により連結された2つの軽鎖および2つの重鎖よりなる。これを種々の癌および自己免疫/炎症性疾患の処置のために、正常および悪性のB細胞を含むCD40発現細胞上のCD40細胞表面受容体に対してターゲティングさせる。
種々の処方物試料のコンホーメーション安定性は1℃/分で15℃から90℃まで加熱しながらMicro CalVP−DSCを用いてモニタリングした。
フラグメント化および凝集は非還元および還元条件下において4〜20%トリスグリシンゲルを用いて推定した。蛋白はクーマシーブルー染色により検出した。
蛋白のフラグメント化および凝集は更にWater Alliance HPLCによりTosohass TSK−GEL 3000SWXLカラム、移動相として100mMリン酸ナトリウム、pH7.0を用いながら0.7mL/分の流量で測定した。
電荷変化関連の分解はWaters 600sHPLCシステムによりDionex Propac WCX−10カラム、移動相Aとして50mMHEPES、pH7.3および移動層Bとして500mM NaCl含有50mM HEPS、pH7.3を用いながら0.5℃/分の流量で測定した。
(コンホーメーション安定性試験)
CHIR−12.12の熱による展開(unfolding)は少なくとも2種の熱遷移を示しており、恐らくはそれぞれFabおよびFcドメインの展開と融解を表わしていると考えられる。より高温においては、蛋白は凝集し、DSCシグナルは消失すると推定される。処方物スクリーニング目的のために、本試験においては最低熱遷移温度を融点、即ちTmと定義した。図13は処方物のpHの関数として熱融解温度を示す。pH5.5〜6.5の処方物はより高い熱融解温度により明らかにされる通り、より高いコンホーメーション安定性を有する抗CD40をもたらした。
pH4.5〜9.0のCHIR−12.12処方物試料を2ヶ月40℃でインキュベート氏、SDS−PAGE分析に付した(データ示さず)。非還元条件下では、pH5.5より高値の処方物においては23kDaおよび27kDaの分子量(MW)を有する物質種が観察され、全ての処方物において51kDaのMWを有する物質種が観察されたが、pH5.0〜5.5ではより少量であった。100kDaのMWを有する物質種がpH7.5およびpH9.0で観察された。
SEC−HPLC分析は主要ピーク物質種として未損傷のCHIR−12.12を、主要ピーク物質種から分離した前ピーク物質種として凝集物質種を、主要ピーク物質種の広報のショルダーピークとして大型フラグメント物質種を検出し、そして小型フラグメント物質種が主要ピーク物質種後方に検出された。5℃および25℃で3ヶ月インキュベートした後、蛋白フラグメントおよび凝集物の無視できる量(<1.0%)が上記処方物中に検出され、そしてCHIR−12.12の主要ピーク物質種は99%純度より高値のままであった(データ示さず)。しかしながら、表21に示す通り、40℃で保存すると蛋白フラグメントが徐々に形成され、そしてpH4.5およびpH6.5〜9.0においてはより多くのフラグメントが形成された。3ヶ月40℃でCHIR−12.12処方物をインキュベートした後、約2〜3%の凝集物がpH7.5およびpH9.0で検出されたが、他のpHの処方物では1%未満の凝集塊が検出された(データ示さず)。SEC−HPLC結果はCHIR−12.12がpH約5.0〜6.0でより安定であることを示している。
CEX−HPLCは主要ピーク物質種としての未損傷のCHIR−12.12、主要ピーク物質種より早く溶離する酸性変異体、および主要ピーク物質種より後方に溶離するC末端リジン付加変異体を検出した。表22は残存主要ピークCHIR−12.12物質種および酸性変異体のパーセンテージの溶液pHへの依存性を示す。対照試料は既に高水準の酸性物質種(〜33%)を含有しており、これはおそらくは早期の醗酵および精製工程によるものと考えられる。より高いpHの溶液に対するCHIR−12.12の感受性は2つの事実により顕在化する。第1に、pH9.0の初期処方物試料(t=0)は既に対照より12%多い酸性物質種を形成している。第2に、酸性物質種のパーセンテージはpH上昇に伴って急激に増大している、電荷変化関連分解は脱アミド化に起因すると考えられる。上記したデータはこの型のCHIR−12.12の分解はpH約5.0〜5.5において最小限となったことを示している。
pHはCHIR−12.12のコンホーメーションおよび物理化学的安定性に対して有意な作用を有している。電荷変化関連分解はCHIR−12.12の主要分解経路であると判明し、これはpH5.0〜5.5で最小限となった。全体的な安定性のデータに基づけば、この抗体を含む1つの推奨される液体薬学的処方物は約10mMのクエン酸ナトリウム、約150mMの塩化ナトリウムを中に製剤され、約5.5のpHを有する約20mg/mLのCHIR−12.12を含む処方物である。
(臨床目標)
全体的な臨床目標はB細胞腫瘍の効果的な処置を、抗CD40IgG1でそれらをターゲティングすることにより行うことである。これらの腫瘍はB細胞リンパ腫、慢性リンパ性白血病(CLL)、急性リンパ芽球性白血病(ALL)、多発性骨髄腫(MM)、ヴァルデンストレームマクログロブリン血症および全身キャッスルマン病を包含する。これらの疾患に関するシグナルは、第I相において活性の一部の尺度が得られると考えられるが、第II相において決定される。当初は薬剤を単一剤として検討するが、開発が進行するに従って化学療法および他の抗体と組み合わせられる。
・安全性と薬物動態を評価−B細胞悪性疾患対象における用量漸増
・安全性、耐容性およびCD40の結成マーカーの変化に基づいて用量を選択。一般的にMTDを調べるが、薬効の他の指標(CD40+B細胞の枯渇等)も用量設定のために十分である。
・特に異なる適応症に対して1用量より多くを検討、例えばCLL用量はNHL用量と異なってよい。即ち第II相においては何らかの用量設定が必要となる場合がある。
・患者はリアルタイム薬物動態(Pk)サンプリングとともに毎週投与する。初期は4週間のサイクルが可能な最大投薬である。Pkは検討する疾患、CD40の密度等に応じて大きく変動する場合がある。
・本治験はB細胞リンパ腫、CLLおよび潜在的に他のB細胞悪性疾患を有する対象に対してオープンとする。
・試験の中断または継続の判断は安全性、用量および抗腫瘍活性の予備的兆候に基づく。
・応答率により測定された薬剤の活性を第II相において測定する。
・第II相の用量の発見。
B細胞リンパ腫、CLLおよび多発性硬化症(MM)を集中的に上記した腫瘍型において数種の治験を開始する。軽度悪性および中等度/高度悪性のNHLにおいては、CD40はリンパ腫の程度に応じて異なる機能を有する場合があるため別の治験が必要となる場合がある。軽度悪性疾患の場合はCD40は生存因子としてより機能し、アポトーシスを防止する。より高度な悪性の疾患の場合はCDシグナル伝達の中断は細胞死をもたらす場合がある。1種より多い用量、および1種より多いスケジュールを無作為第II相設定において試験してよい。
する。
・CLL:Campath(登録商標)および化学療法に対して抵抗性であった患者。
・軽度悪性NHL:Rituxan(登録商標)またはCHOP−R不成功例。
・中等度悪性NHL:CHOP−R不成功例。
・多発性骨髄腫:化学療法不成功例。
*試験の中断または継続の判断は第II相における処置コンセプトの証明に基づく。
*代用マーカーを臨床薬効の早期指標として使用できるかどうか判断する。
*第III相の用量を発見。
第III相は第II相においてどこでシグナルを検出したか、およびどのような競合的治療法が標準と考えられるかによる。シグナルが処置の標準がないような疾患の段階にある場合、シングルアームの十分コントロールされた試験を中核的治験として使用する。標準と考えられる競合薬剤がある場合は、head−to−headの試験を実施する。
Claims (54)
- ヒトCD40発現細胞の表面上に発現されるヒトCD40抗原に特異的に結合し得るヒトモノクローナル抗体であって、該モノクローナル抗体は、有意なアゴニスト活性を有さず、ここで該モノクローナル抗体は、モノクローナルキメラ抗CD20モノクローナル抗体IDEC−C2B8の等しい量に対して増加された抗腫瘍活性を示し、ここで該抗腫瘍活性は、DaudiヒトBリンパ腫細胞株を用いた段階型ヌードマウス異種移植片腫瘍モデルにおいてアッセイされる、ヒトモノクローナル抗体。
- 請求項1に記載のヒトモノクローナル抗体であって、該抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−12.12;
b)特許寄託番号PTA−5543としてATCCに寄託されたハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
e)該ハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
f)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;
h)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜g)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
i)前述の項目a)〜h)のいずれか1項のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択される、モノクローナル抗体。 - 前記モノクローナル抗体が、少なくとも約10−6M〜約10−12Mの親和性(KD)で、前記ヒトCD40抗原に結合する、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 請求項1に記載のモノクローナル抗体を生産し得る、ハイブリドーマ細胞株。
- CD40の発現によって特徴付けられる癌を処置するための方法であって、該方法は、
請求項1に記載のヒト抗CD40モノクローナル抗体の有効量をヒト患者に投与する工程
を包含する、方法。 - 前記癌が、非ホジキンリンパ腫、慢性リンパ性白血病、多発性骨髄腫、B細胞リンパ腫、高度悪性B細胞リンパ腫、中等度悪性B細胞リンパ腫、軽度悪性B細胞リンパ腫、B細胞急性リンパ芽球性白血病、骨髄芽球性白血病およびホジキン病からなる群より選択される請求項5に記載の方法。
- ヒトCD40発現細胞の表面上に発現されるヒトCD40抗原に特異的に結合し得るヒトモノクローナル抗体であって、該モノクローナル抗体は、有意なアゴニスト活性を有さず、これにより、該モノクローナル抗体が該細胞の表面上に発現された該CD40抗原に結合した場合、該細胞の増殖または分化が阻害され、ここで該抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
i)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;
j)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜i)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
k)前述の項目a)〜j)のいずれか1項のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択される、モノクローナル抗体。 - 前記フラグメントが、Fabフラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメントおよび単鎖Fvフラグメントからなる群より選択される、請求項7に記載の抗原結合フラグメント。
- 前記モノクローナル抗体が、少なくとも約10−6M〜約10−12Mの親和性(KD)で、前記ヒトCD40抗原に結合する、請求項7に記載のモノクローナル抗体。
- 配列番号2、配列番号4、配列番号5、配列番号6、配列番号7および配列番号8に示される配列からなる群より選択される、アミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを含む、単離された核酸分子。
- ヒトCD40発現細胞の表面上に発現されるヒトCD40抗原に対する特異性を有するヒトモノクローナル抗体を生産し得るハイブリドーマ細胞株であって、これにより該モノクローナル抗体は、有意なアゴニスト活性を有さず、これにより、該モノクローナル抗体が該細胞の表面上に発現された該CD40抗原に結合する場合、該細胞の増殖または分化が阻害され、そしてここで該モノクローナル抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
i)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;ならびに、
j)a)〜i)のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択される、ハイブリドーマ細胞株。 - 正常ヒトB細胞の増殖または分化を阻害するための方法であって、該方法は、
有効量のヒト抗CD40モノクローナル抗体に該B細胞を接触させる工程
を包含し、該ヒト抗CD40モノクローナル抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
i)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;
j)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜i)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
k)前述の項目a)〜j)のいずれか1項のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択され、該抗体またはそのフラグメントは、有意なアゴニスト活性を有さず、そしてそれにより該抗体またはその抗原結合フラグメントが、該B細胞上の該CD40抗原に結合する場合、該B細胞の増殖または分化が阻害される、方法。 - 前記モノクローナル抗体またはそのフラグメントが、少なくとも約10−6M〜約10−12Mの親和性(KD)で、前記ヒトCD40抗原に結合する、請求項12に記載の方法。
- 前記フラグメントが、Fabフラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメントおよび単鎖Fvフラグメントからなる群より選択される、請求項12に記載の方法。
- 正常ヒトB細胞の増殖を阻害するための方法であって、ここで該増殖は、該B細胞の表面上に発現されるCD40抗原とのCD40リガンドの相互作用により増強され、該方法は、
有効量のヒト抗CD40モノクローナル抗体に該B細胞を接触させる工程
を包含し、該ヒト抗CD40モノクローナル抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
i)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;
j)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜i)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
k)前述の項目a)〜j)のいずれか1項のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択され、該抗体またはそのフラグメントは、有意なアゴニスト活性を有さず、そしてこれにより、該抗体またはそのフラグメントが、該B細胞上の該CD40抗原に結合した場合、該B細胞の増殖または分化が阻害される、方法。 - 前記モノクローナル抗体が、少なくとも約10−6M〜約10−12Mの親和性(KD)で、前記ヒトCD40抗原に結合する、請求項15に記載の方法。
- 前記フラグメントが、Fabフラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメントおよび単鎖Fvフラグメントからなる群より選択される、請求項15に記載の方法。
- ヒト患者においてB細胞による抗体生産を阻害するための方法であって、該方法は、
有効量のヒト抗CD40モノクローナル抗体またはそのフラグメントをヒト患者に投与する工程
を包含し、該ヒト抗CD40モノクローナル抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
i)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;
j)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜i)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
k)前述の項目a)〜j)のいずれか1項のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択され、該抗体またはそのフラグメントは、有意なアゴニスト活性を有さず、そしてこれにより、該抗体またはそのフラグメントが該B細胞上の該CD40抗原に結合した場合、該B細胞の増殖または分化が阻害される、方法。 - 前記モノクローナル抗体が、少なくとも約10−6M〜約10−12Mの親和性(KD)で、前記ヒトCD40抗原に結合する、請求項18に記載の方法。
- 前記フラグメントが、Fabフラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメントおよび単鎖Fvフラグメントからなる群より選択される、請求項18に記載の方法。
- B細胞株の癌細胞の増殖を阻害するための方法であって、該方法は、
有効量のヒト抗CD40モノクローナル抗体に該癌細胞を接触させる工程
を包含し、該ヒト抗CD40モノクローナル抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
i)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;
j)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜i)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
k)前述の項目a)〜j)のいずれか1項のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択され、該抗体またはそのフラグメントは、有意なアゴニスト活性を有さず、そしてこれにより、該抗体またはそのフラグメントが該B細胞上の該CD40抗原に結合した場合、該B細胞の増殖または分化が阻害される、方法。 - 前記モノクローナル抗体が、少なくとも約10−6M〜約10−12Mの親和性(KD)で、前記ヒトCD40抗原に結合する、請求項21に記載の方法。
- 前記フラグメントが、Fabフラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメントおよび単鎖Fvフラグメントからなる群より選択される、請求項21に記載の方法。
- 前記癌が、非ホジキンリンパ腫、慢性リンパ性白血病、多発性骨髄腫、B細胞リンパ腫、高度悪性B細胞リンパ腫、中等度悪性B細胞リンパ腫、軽度悪性B細胞リンパ腫、B細胞急性リンパ芽球性白血病、骨髄芽球性白血病およびホジキン病からなる群より選択される、請求項21に記載の方法。
- 自己免疫疾患を処置するための方法であって、該方法は、
有効量のヒト抗CD40モノクローナル抗体をヒト患者に投与する工程
を包含し、該ヒト抗CD40モノクローナル抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
i)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;
j)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜i)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
k)前述の項目a)〜j)のいずれか1項のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択され、該抗体またはそのフラグメントは、有意なアゴニスト活性を有さず、そしてこれにより、該抗体またはそのフラグメントが該B細胞上の該CD40抗原に結合した場合に、該B細胞の増殖または分化が阻害される、方法。 - 前記モノクローナル抗体が、少なくとも約10−6M〜約10−12Mの親和性(KD)で、前記ヒトCD40抗原に結合する、請求項25に記載の方法。
- 前記フラグメントが、Fabフラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメントおよび単鎖Fvフラグメントからなる群より選択される、請求項25に記載の方法。
- 前記自己免疫疾患が、全身性エリテマトーデス、自己免疫性血小板減少性紫斑病、慢性関節リウマチ、多発性硬化症、強直性脊椎炎、重症筋無力症および尋常性天疱瘡からなる群より選択される、請求項25に記載の方法。
- CD40の発現によって特徴付けられる癌を処置するための方法であって、該方法は、有効量のヒト抗CD40モノクローナル抗体をヒト患者に投与する工程
を包含し、該ヒト抗CD40モノクローナル抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
i)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;
j)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜i)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
k)前述の項目a)〜j)のいずれか1項のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択され、該抗体またはそのフラグメントは、有意なアゴニスト活性を有さず、そしてこれにより、該抗体またはそのフラグメントが該B細胞上の該CD40抗原に結合した場合、該B細胞の増殖または分化が阻害される、方法。 - 前記モノクローナル抗体が、少なくとも約10−6M〜約10−12Mの親和性(KD)で、前記ヒトCD40抗原に結合する、請求項29に記載の方法。
- 前記フラグメントが、Fabフラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメントおよび単鎖Fvフラグメントからなる群より選択される、請求項29に記載の方法。
- CD40発現細胞に対してアンタゴニスト活性を有する抗体を同定するための方法であって、該方法は、
モノクローナル抗体との競合結合アッセイを実施する工程
を包含し、該モノクローナル抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;ならびに
i)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜h)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
j)a)〜i)のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択される、方法。 - CD40のドメイン2に特異的に結合する、アンタゴニスト抗CD40モノクローナル抗体。
- 前記抗体が、ヒト抗体である、請求項33に記載のモノクローナル抗体。
- 前記抗体が、有意なアゴニスト活性を有さない、請求項34に記載のモノクローナル抗体。
- 前記抗体が、ハイブリドーマ細胞株5.9により生産される抗体およびハイブリドーマ細胞株12.12により生産される抗体からなる群より選択される、抗体の結合特異性を有する、請求項33に記載のモノクローナル抗体。
- 前記抗体が、特許寄託番号PTA−5542としてATCCに寄託されたハイブリドーマ細胞株および特許寄託番号PTA−5543としてATCCに寄託されたハイブリドーマ細胞株により生産される抗体からなる群より選択される、請求項33に記載のモノクローナル抗体。
- 前記抗体が、モノクローナル抗体CHIR−12.12またはCHIR−5.9の結合特性を有する、請求項33に記載のモノクローナル抗体。
- 前記抗体が、配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合する、請求項33に記載のモノクローナル抗体。
- 請求項33のモノクローナル抗体であって、該抗体は、
a)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
b)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
c)ハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
d)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
e)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;ならびに、
f)CHIR−12.12モノクローナル抗体または前述の項目a)〜e)における該モノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択される、モノクローナル抗体。 - ヒトCD40発現細胞においてCD40リガンド媒介性CD40シグナル伝達経路を阻害するための方法であって、該方法は、
有効量のヒト抗CD40モノクローナル抗体に該細胞を接触させる工程
を包含し、該ヒト抗CD40モノクローナル抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
i)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;
j)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜i)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
k)前述の項目a)〜j)のいずれか1項のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは、該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択される、方法。 - 前記モノクローナル抗体が、少なくとも約10−6M〜約10−12Mの親和性(KD)で、前記ヒトCD40抗原に結合する、請求項41に記載の方法。
- 前記フラグメントが、Fabフラグメント、F(ab’)2フラグメント、Fvフラグメントおよび単鎖Fvフラグメントからなる群より選択される、請求項41に記載の方法。
- 前記ヒトCD40発現細胞が、正常ヒトB細胞または悪性ヒトB細胞であり、そして前記CD40シグナル伝達経路が、B細胞生存性である、請求項41に記載の方法。
- ヒトCD40発現細胞の表面上に発現されたヒトCD40抗原に特異的に結合し得るヒトモノクローナル抗体を含む薬学的組成物であって、該モノクローナル抗体は、有意なアゴニスト活性を有さず、ここで、該抗体は、
a)モノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12;
b)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ12.12により生産されるモノクローナル抗体;
c)配列番号6に示される配列、配列番号7に示される配列、配列番号8に示される配列、配列番号6および配列番号7に示される両方の配列、ならびに配列番号6および配列番号8に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
d)配列番号2に示される配列、配列番号4に示される配列、配列番号5に示される配列、配列番号2および配列番号4に示される両方の配列、ならびに配列番号2および配列番号5に示される両方の配列からなる群より選択されるアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体;
e)配列番号1に示される配列、配列番号3に示される配列、ならびに配列番号1および配列番号3に示される両方の配列からなる群より選択されるヌクレオチド配列を含む核酸分子によりコードされるアミノ酸配列を有するモノクローナル抗体;
f)ハイブリドーマ細胞株5.9またはハイブリドーマ細胞株12.12により生産されるモノクローナル抗体に結合し得るエピトープに結合するモノクローナル抗体;
g)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜87を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
h)配列番号10または配列番号12に示されるヒトCD40配列の残基82〜89を含むエピトープに結合するモノクローナル抗体;
i)競合結合アッセイにおいてモノクローナル抗体CHIR−5.9またはCHIR−12.12と競合するモノクローナル抗体;
j)前述の項目a)のモノクローナル抗体、または、前述の項目c)〜i)のいずれか1項のモノクローナル抗体であって、ここで該抗体は、組み換え的に生産される、モノクローナル抗体;ならびに、
k)前述の項目a)〜j)のいずれか1項のモノクローナル抗体の抗原結合フラグメントであるモノクローナル抗体であって、ここで該フラグメントは該ヒトCD40抗原に特異的に結合する能力を保持する、モノクローナル抗体
からなる群より選択される、薬学的組成物。 - 前記組成物が、処方物のpHを、約pH5.0〜約pH7.0の範囲に維持するための量の緩衝剤を含む液体薬学的処方物である、請求項45に記載の薬学的組成物。
- 前記処方物が、同一の組成物を等張付近にするための量の等張化剤をさらに含む、請求項46に記載の薬学的組成物。
- 前記等張化剤が、塩化ナトリウムであり、該塩化ナトリウムは、約50mM〜約300mMの濃度で前記処方物中に存在する、請求項47に記載の薬学的組成物。
- 前記塩化ナトリウムが、約150mMの濃度で前記処方物中に存在する、請求項48に記載の薬学的組成物。
- 前記緩衝剤が、コハク酸塩、クエン酸塩およびリン酸塩の緩衝剤からなる群より選択される、請求項46〜49のいずれか一項にに記載の薬学的組成物。
- 前記処方物が、約1mM〜約50mMの濃度で前記緩衝剤を含む、請求項50に記載の薬学的組成物。
- 前記緩衝剤が、約5mM〜約15mMの濃度のコハク酸ナトリウムまたはクエン酸ナトリウムである、請求項51に記載の薬学的組成物。
- 前記処方物が、約0.001%〜約1.0%の量で界面活性剤を含む、請求項46〜52のいずれか1項にに記載の薬学的組成物。
- 前記界面活性剤が、ポリソルベート80であり、該ポリソルベート80は、約0.001%〜約0.5%の量で前記処方物中に存在する、請求項53に記載の薬学的組成物。
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