JP2001218591A - 北米ブタ生殖及び呼吸症候群(PRRS)ウィルスの感染性cDNAクローン及びその使用 - Google Patents
北米ブタ生殖及び呼吸症候群(PRRS)ウィルスの感染性cDNAクローン及びその使用Info
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Abstract
タを保護するための手段に関する。 【解決手段】 北米PRRSウィルスをコードする感染
性RNA分子をコードするDNA配列を含んで成るプラ
スミド、及びそのようなプラスミドを用いてのワクチン
に関する。
Description
に関し、そして陽性極性(positive polarity)RNAウ
ィルスの感染性cDNAクローン、及びそのようなcD
NAクローンを用いてのワクチン、特にブタワクチンの
構成に向けられる。
は、1987年に北米において、及び1990年にヨー
ロッパにおいて、最初に記載された、ブタに関する新規
疾病である。この疾病はそれ以来、アジアに広がってお
り、そして世界のほとんどの主要ブタ生産国に影響を及
ぼしている。一次症候群は、雌ブタ及び若い雌ブタにお
ける生殖問題、たとえば後期流産、死産及びミイラ化で
あり、そしてウィルス血症で生まれ、そしてしばしば、
生存し得ない同腹子の弱い子ブタが存在する。さらに、
前記症候は、水平的に広がり、そして発熱、無気力、苦
しい呼吸、食欲不振、遅い成長、及びしばしば、他の呼
吸病原体に関連しての死を引き起こす、若いブタにおけ
る呼吸疾患として現われる。疾病はさらに、天然におい
て又は人工受精により、感染された雄ブタの精液を通し
て雌ブタ及び若い雌ブタに伝達され得る。それらのため
に及び他の理由のために、PRRSは制御するのに困難
な疾病であり、そして従って、ブタ産業に対して最とも
経済的な損傷を与える疾病の1つであることがわかって
いる。
び血清学的に異なった型として存在するPRRSウィル
スである(Murtaugh, M.P.など., 1995, Arch-Virol. 1
40,1451-1460 ; Suarez, P.など., 1996, Virus Resear
ch 42 : 159-165) 。前記2種の型は、1980年代、
1つは北アメリカ及び他はヨーロッパにおいて、独立し
てブタ集団に、たぶん、げっ歯動物又は鳥類起原の未知
の生物学的病原体保存体から最初に侵入したように思わ
れる。原型“Lelystad, Virus ”により表わされるヨー
ロッパ型は、1991年オランダにおいて単離され、そ
して配列決定された(Terpstra, C.など., 1991, Vet.
Quart. 13 : 131-136 ; Wensvoort, G.など., 1991, Ve
t. Quart. 13 : 121-130 ; Wensvoort, G. など., WO92
/213751992 (PCT/NL 92/00096)、1992 ; Meulenberg,
J.J.M. など., 1993, Virol. 192 : 62-72)。
RRSウィルスの両者は、ウマ動脈炎ウィルス、乳酸デ
ヒドロゲナーゼ−上昇性ウィルス及びサル出血性発熱ウ
ィルスをまた包含するアルテリビリダエ(Arterivirida
e)科内に分類される。動脈炎ウィルスは、コロナウィル
ス(corronaviruses) 及びトロウィルス(toroviruses)
をまた包含するニドビラレス(Nidovirales)目内に分類
される。ニドウィルス(nidoviruses)は、一本鎖の陽性
極性RNAから成るゲノムを有する封入されたウィルス
である。陽性−鎖のRNAウィルスのゲノムRNAは、
遺伝子情報の貯蔵及び発現の両者において二重の役割を
満たす。DNAはニドウィルスにおける複製又は転写に
関与しない。従って、ニドウィルスのゲノムRNAの再
生は、ゲノム複製及びmRNA転写の組合された工程で
ある。さらに、いくつかのタンパク質が、ニドウィルス
のゲノムRNAから直接的に翻訳される。アルテリビリ
ダエ科の分子生物学が、最近、Snijder and Meulenberg
(Snijder, E.J. and Meulenberg, J.J.M., 1998, Jour
nal of General Virology 79 : 961-979) により総説さ
れている。
クチンは、従来の修飾された生存ウィルス(細胞培養
物、弱毒化されている)、又は従来の殺されたウィルス
(ビルレントウィルスの不活性化された細胞培養調製
物)のいづれかである。それらのワクチンのいくつか
は、安全性及び/又は効率に基づいて批評されている。
従って、PRRSゲノムに対する特定の付加、欠失及び
他の修飾に基づいての、PRRSワクチンの第二世代の
開発が非常に所望される。しかしながら、PRRSウィ
ルスはそれらの複製の間、いづれのDNA中間体も含ま
ないので、そのようなワクチンは、DNAレベルでの分
子生物学技法による操作のためのPRRSウィルスの十
分な長さのcDNAクローンの構成を大切に待ち続けて
来た。つい最近、ヨーロピアンPRRSウィルスの十分
な長さの感染性cDNAクローンが報告されている(Me
ulenberg, J.J.M.など., 1998 、前記;Meulenberg, J.
J.M.など., 1988, J. Virol. 72, 380-387) 。
て論ぜられるすべての他の引例は、引用により本明細書
に組込まれる。
ドする感染性RNA分子をコードする、配列番号1又は
それに対して相同の配列であるDNA配列を含んで成る
単離されたポリヌクレオチド分子を提供する。本発明は
さらに、上記の単離されたポリヌクレオチド分子により
コードされる単離された感染性RNA分子、及びそれに
対して相同の単離された感染性RNA分子を提供し、こ
こで前記単離された感染性RNA分子は北米PRRSウ
ィルスをそれぞれコードする。
ドする上記の単離されたポリヌクレオチド分子を、ベク
ター、たとえばプラスミドの形で提供する。本発明はさ
らに、北米PRRSウィルスをコードする感染性RNA
分子をコードする、配列番号1又はそれに対して相同の
配列であるDNA配列を含んで成るウィルスベクターを
提供する。本発明はさらに、北米PRRSウィルスをコ
ードする感染性RNA分子をコードする、配列番号1又
はそれに対して相同の配列であるDNA配列を含んで成
る、コードされた北米PRRSウィルスを発現すること
ができるトランスフェクトされた宿主細胞を提供する。
コードする感染性RNA分子をコードする本発明のDN
A配列を突然変異誘発し、そして前記突然変異誘発に続
いて、それらから、遺伝子的に修飾された北米PRRS
ウィルスを発現することを含んで成る、遺伝子的に修飾
された北米PRRSウィルスを製造するための方法を提
供する。
米PRRSウィルスをコードする感染性RNA分子をコ
ードするDNA配列を含んで成る単離されたポリヌクレ
オチド分子を提供する。好ましい態様において、PRR
Sウィルスは、それがブタ動物を感染する場合、それ
が、a)その動物においてPRRSを生成することがで
ないが、しかしb)動物において、PRRSウィルスに
よる感染に対しての効果的な免疫保護応答を誘発できる
よう遺伝子的に修飾される。特定の態様において、前記
DNA配列は、配列番号1又はそれに対して相同の配列
であるが、但しそれはPRRSを生成するその能力にお
いて、そのコードされたPRRSウィルスを遺伝子的に
無能にする1又は複数の突然変異を含む。
クレオチド分子によりコードされる単離された感染性R
NA分子、及びそれに対して相同の単離された感染性R
NA分子を提供し、ここで前記単離された感染性RNA
分子はPRRSを生成するその能力を無能にされた、遺
伝子的に修飾された北米PRRSウィルスをそれぞれコ
ードする。
A分子によりコードされる遺伝子的に修飾された北米P
RRSウィルスを提供し、ここで前記遺伝子的に修飾さ
れた北米PRRSウィルスは、それがブタ動物を感染す
る場合、動物にPRRSを生成することができないよう
無能にされているがまだ、動物においてPRRSウィル
スによる感染に対しての効果的な免疫保護応答を誘発す
ることができる。本発明はさらに、上記のような遺伝子
的に修飾された北米PRRSウィルスをコードする感染
性RNA分子をコードするDNA配列を含んで成るウィ
ルスベクターを提供する。本発明はさらに、上記のよう
な遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルスをコード
する感染性RNA分子をコードするDNA配列を含んで
成るトランスフェクトされた宿主細胞を提供する。
感染からブタ動物を保護するためのワクチンを提供し、
ここで前記ワクチンは、上記のような遺伝子的に修飾さ
れた北米PRRSウィルス;遺伝子的に修飾された北米
PRRSウィルスをコードする上記のような感染性RN
A分子;遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルスを
コードする、プラスミドの形での上記単離されたポリヌ
クレオチド分子;又は遺伝子的に修飾された北米PRR
Sウィルスをコードする上記ウィルスベクターを、PR
RSウィルスによる感染に対する免疫保護を生成するの
に有効な量で;及び獣医学的に許容できるキャリヤーを
含んで成る。
感染に対して免疫保護を生成するのに効果的である量の
上記のワクチンによりブタ動物をワクチン接種すること
を含んで成る、PRRSウィルスによる感染からブタ動
物を保護するための方法を提供する。
コードするヌクレオチド配列をさらに含んで成る前記ポ
リヌクレオチド分子、並びに対応する感染性RNA分
子、ベクター、トランスフェクトされた宿主細胞、遺伝
子的に修飾された北米PRRSウィルス、ワクチン、及
び哺乳類及び/又は鳥にそのようなワクチンを投与する
ための方法を提供する。そのような異種抗原性エピトー
プは、現在、当業界において知られているか、又は未来
において決定されるいづれかの抗原性エピトープからで
あり得る。非制限的態様においては、そのような抗原性
エピトープは、鳥、又はブタ動物以外の哺乳類、たとえ
ばヒトを病理学的に感染せしめることができ、そして前
記病原体に対する効果的な免疫保護応答を誘発すること
ができる病原体からである。もう1つの非制限的態様に
おいては、そのような抗原性エピトープは、北米PRR
Sウィルス以外のブタ病原体からであり、そして前記ブ
タ病原体に対する効果的な免疫保護応答を誘発すること
ができる。もう1つの非制限的態様においては、そのよ
うな抗原性エピトープは、検出できる抗原性エピトープ
である。
原性エピトープを欠いている前記ポリヌクレオチド分子
のいづれか、並びに対応する感染性RNA分子、ベクタ
ー、トランスフェクトされた宿主細胞;遺伝子的に修飾
された北米PRRSウィルス、ワクチン、及び哺乳類及
び/又は鳥にそのようなワクチンを投与するための方法
を提供する。
よりコードされるペプチドをコードする1又は複数のヌ
クレオチド配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチ
ド分子を提供し、ここで前記北米PRRSウィルスのゲ
ノム配列は配列番号1又はそれに対して相同の配列であ
る。本発明はさらに、北米PRRSウィルスによりコー
ドされるペプチドをコードする1又は複数のヌクレオチ
ド配列を含んで成るトランスフェクトされた宿主細胞を
提供し、ここで前記北米PRRSウィルスのゲノム配列
は配列番号1又はそれに対して相同の配列である。
ルスをコードする感染性RNA分子をコードするDNA
配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチド分子を
得、病原性感染を生成できないが、まだ、哺乳類又は鳥
において野生型ニドビラレスウィルスによる感染に対し
て効果的な免疫保護応答を誘発できる遺伝子的に修飾さ
れたニドビラレスウィルスをコードする感染性RNA分
子をコードするDNA配列を含んで成る単離されたポリ
ヌクレオチド分子を得るために、前記DNA配列を遺伝
子的に突然変異誘発し、そしてそのようにして得られ
た、単離されたポリヌクレオチド分子から遺伝子的に修
飾されたニドビラレスウィルスを発現することによって
調製される、遺伝子的に修飾されたニドビラレスウィル
スによりワクチン接種された哺乳類又は鳥において免疫
保護応答を誘発することができる遺伝子的に修飾された
ニドビラレスウィルスを提供する。
ドビラレスウィルスによりワクチン接種された哺乳類又
は鳥において免疫保護応答を誘発できる遺伝子的に修飾
されたニドビラレスウィルスを調製するための方法を提
供し、ここで前記方法は、野生型ニドビラレスウィルス
をコードする感染性DNA分子をコードするDNA配列
を含んで成る単離されたポリヌクレオチド分子を得、病
原性感染を生成できないが、まだ、哺乳類又は鳥におい
て野生型ニドビラレスウィルスによる感染に対して効果
的な免疫保護応答を誘発できる遺伝子的に修飾されたニ
ドビラレスウィルスをコードする感染性RNA分子をコ
ードするDNA配列を含んで成る単離されたポリヌクレ
オチド分子を得るために、前記DNA配列を遺伝子的に
突然誘発し、そしてそのようにして得られた、単離され
たポリヌクレオチド分子から遺伝子的に修飾されたニド
ビラレスウィルスを発現することを含んで成る。
修飾されたニドビラレスウィルスを、それらによりワク
チン接種された哺乳類又は鳥において野生型ニドビラレ
スウィルスに対して効果的な免疫保護応答を誘発するの
に有効な量で、及び医薬又は獣医学的使用のために許容
できるキャリヤーを含んで成る、ニドビラレスウィルス
による感染から哺乳類又は鳥を保護するためのワクチン
を提供する。
の生成及び操作は、当業者の範囲内であり、そして中で
も、次に記載される組換え技法に従って実施され得る:
Maniatis, など., 1989, Molecular Cloning, A Labora
tory Manual, Cold Spring Harbor laboratory Press,
Cold Spring Harbor, NY ; Ausubel, など., 1989, Cur
rent Protocols In Molecular Biology, Geene Publish
ing Associates & Wiley Interscience, NY ; Sambroo
k, など., 1989, Molecular Cloni ng : A Laboratory M
anual, 2d, ed., Cold Spring Harbor Laboratory Pres
s,Cold Spring Harbor, NY ; Innlsなど. (eds), 1995,
PCR Strategles, Academic Press, Inc., San Diego,
and Erlich (ed), 1992, PCR Technology, OxfordUnive
rsity Press, New York;それらのすべては、引用によ
り本明細書に組込まれる。
離されたポリヌクレオチド分子及びRNA分子、並びに
遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルスをコードす
る単離されたポリヌクレオチド分子及びRNA分子:本
発明は、北米PRRSウィルスをコードする感染性RN
A分子をコードするDNA配列を含んで成る単離された
ポリヌクレオチド分子を提供する。本発明はさらに、遺
伝子的に修飾された北米PRRSウィルスをコードする
感染性RNA分子をコードするDNA配列を含んで成る
単離されたポリヌクレオチド分子を提供する。
コードする感染性RNA分子をコードする、配列番号1
又はそれに対して相同の配列であるDNA配列を含んで
成る単離されたポリヌクレオチド分子を提供する。好ま
しい態様においては、本発明は、北米PRRSウィルス
をコードする感染性RNA分子をコードするDNA配列
を含んで成る単離されたポリヌクレオチド分子を提供
し、ここで前記DNA配列は配列番号1のヌクレオチド
1で開始し、そしてそれから、ヌクレオチド15,41
6までを含む配列であるが、但し、配列番号1のヌクレ
オチド12,622に対応するヌクレオチドがアデニン
の代わりにグアニンであり、そして配列番号1のヌクレ
オチド1,559に対応するヌクレオチドがシトシンの
代わりにチミンである。前記DNA配列は、北米PRR
S単離物P129のRNAゲノムである感染性RNA分
子をコードする。
されたポリヌクレオチド分子”、“ヌクレオチド配
列”、“オープンリーディングフレーム(ORF)”及
び同様のものは、特にことわらない限り、DNA及びR
NAの両分子を包含し、そして一本鎖及び二本鎖の両分
子を包含する。また、本出願の“配列表”セクションか
らの特定の配列を言及する場合、特にことわらない限
り、“配列表”のDNA、及びそのDNAに対応するR
NAの両者を言及することが意図され、そしてDNA及
びRNA配列に対して相補的な配列を包含する。本出願
におけるそのような場合、“〜に対応する”とは、お互
い同一であるDNA及びRNAの配列に言及するが、但
し、RNA配列はチミンの代わりにウラシルを含み、そ
してRNA分子の主鎖はデオキシリボースの代わりにリ
ボースを含む事実を除く。
ィルスのRNAゲノムに対応するDNA配列である。従
って、配列番号1に示されるDNA配列に対して相補的
なDNA配列は、北米PRRSウィルスのRNAゲノム
(すなわち、北米PRRSウィルスをコードするRN
A)のための鋳型であり、すなわちそれに対して相補的
であり、又はそれを“コードする”。それにもかかわら
ず、配列番号1に関する言及は、配列番号1に対応する
RNA配列及び配列番号1に対して相補的なDNA配列
の両者を包含する。
の配列に言及する場合、配列表における配列に対応する
配列に対して相同の配列、及び配列表における配列に対
して相補的な配列に対して相同の配列がまた包含される
ことが理解されるべきである。本発明のための“感染性
RNA分子”とは、適切な宿主細胞における機能的ビリ
オンへのウィルス複製、転写及び翻訳のための必要な要
素をコードするRNA分子であるが、但し、必要なら、
RNA分子においていづれかの遺伝子修飾、たとえば配
列欠失を補正するペプチド又は複数のペプチドが存在す
る。
のようなRNA分子が天然に実際、存在する場合、その
天然に存在する状態からいづれかの検出できる程度に精
製された前記感染性RNA分子を含んで成る物質の組成
物を意味する。同様に、“単離されたポリヌクレオチド
分子”とは、存在するなら、その天然に存在する状態か
らいづれかの検出できる程度に精製された本発明のポリ
ヌクレオチド分子を含んで成る物質の組成物を言及す
る。
分子(RNA又はDNAのいづれか)のヌクレオチド配
列は次の場合には第1ポリヌクレオチド分子のヌクレオ
チド配列に“相同”である。すなわち、前記第2ポリヌ
クレオチド分子のヌクレオチド配列は、遺伝子コードの
縮重に基づいて第1ポリヌクレオチド分子のヌクレオチ
ド配列と同一のポリアミノ酸をコードする場合、又はそ
れが本発明の実施において有用であるように第1ポリヌ
クレオチド分子のヌクレオチド配列によりコードされる
ポリアミノ酸に十分に類似するポリアミノ酸をコードす
る場合である。本発明のためには、ポリヌクレオチド分
子は本発明の実施において有用であり、ここでそれは、
感染されたブタの流体又は組織サンプルにおける北米P
RRSウィルスの存在を、標準的ハイブリダイゼーショ
ン又は増幅技法により検出するための診断用プローブと
して使用され得る。
によりコードされるポリアミノ酸は一群の複数のポリア
ミノ酸を含んで成ることができることが理解されるべき
である。一般的に、第2ポリヌクレオチド分子のヌクレ
オチド配列は、BLASTNアルゴリズムに基づいて、第1ポ
リヌクレオチド分子のヌクレオチド配列に対して少なく
とも約70%のヌクレオチド配列同一性を有する場合、
第1ポリヌクレオチド分子のヌクレオチド配列に対して
相同である(National Center for Biotechnology Info
rmation (NCBI), (Bethesda, Maryland, USA) of the U
nited States National Institute of Health)。好まし
くは、相同ヌクレオチド配列は、少なくとも約75%の
ヌクレオチド配列同一性、さらにより好ましくは、少な
くとも約85%のヌクレオチド配列同一性を有する。遺
伝子コードは縮重性であるので、相同ヌクレオチド配列
は、いづれかの数の“サイレント”塩基変化、すなわ
ち、それにもかかわらず同じアミノ酸をコードするヌク
レオチド置換を包含することができる。
が第1ヌクレオチド配列によりコードされるポリアミノ
酸に対して少なくとも70%の同一性で存続し、又は他
方では、本発の実施のために有用である限り、非−サイ
レント突然変異、すなわちコードされたポリアミノ酸に
おけるアミノ酸差異をもたらす、塩基置換、欠失又は付
加を含むことができる。相同ヌクレオチド配列は、ヌク
レオチド配列の比較により、たとえば、上記BLASTNを用
いることによって決定され得る。あるいは、相同ヌクレ
オチド配列は、選択された条件下でのハイブリダイゼー
ションにより決定され得る。
クレオチド配列は、それが中位の緊縮条件、たとえば
0.5MのNaHPO4 ,7%のドデシル硫酸ナトリウ
ム(SDS)、1mMのEDTAの溶液における65℃で
のフィルター結合DNAへのハイブリダイゼーション及
び0.2×SSC/0.1%SDSにおける42℃での
洗浄条件(Ausubel など.,上記を参照のこと)、又は下
記で定義されるような北米PRRSウィルスをコードす
る配列のハイブリダイゼーションをもたらすであろう条
件下で、配列番号1の相補体にハイブリダイズする場
合、配列番号1に対して相同である。もう1つの態様に
おいて、第2のヌクレオチド配列は、それが、高い緊縮
条件、たとえば0.5MのNaHPO4 ,7%のSD
S,1mMのEDTAの溶液における65℃でのフィルタ
ー結合DNAへのハイブリダイゼーション及び0.1×
SSC/0.1%SDSにおける68℃での洗浄条件
(Ausubelなど.,上記)下で、配列番号1の相補体にハ
イブリダイズする場合、配列番号1に対して相同であ
る。
及び単離されたRNA分子は、合成分子、及び組換え技
法、たとえばインビトロクローニング及び転写により得
られる分子の両者を包含することが、さらに理解される
べきである。本明細書において使用される場合、用語
“PRRS”とは、PRRSウィルス感染により惹起さ
れるブタにおける疾病症候群を包含する。そのような症
候群の例は、妊娠した雌ブタにおける流産、及び若いブ
タにおける遅い成長、呼吸困難、食欲不振及び死亡を包
含するが、但しそれらだけには限定されない。本明細書
において使用される場合、“PRRSを生成することが
できない”PRRSウィルスは、ブタを感染することが
できるが、しかしブタにおけるPRRS感染と通常関連
するいづれの疾病症候群も生成しないか、又はそのよう
な症候群を生成するが、しかしより低い程度であるか、
又は少数のそのような症候群を生成するか、あるいは両
者であるウィルスを意味する。
のメンバーであるいづれかの動物、たとえばブタを意味
する。“哺乳類”とは、ママアリア(Mammalia)綱のい
づれかの温血脊椎動物、たとえばヒトを包含する。用語
“PRRSウィルス”とは、本明細書において使用され
る場合、特にことわらない限り、北米又は欧州PRRS
ウィルスのいづれかの株を意味する。
PRRSウィルス単離物、たとえば1990年代初期、
アメリカ合衆国において最初に単離されたPRRSウィ
ルス(たとえば、Collins, J.E.,など., 1992, J. Vet.
Diagn. Invest. 4 : 117-126 を参照のこと);北米P
RRSウィルス単離物MN−1b(Kwang, J. など.,19
94, J. Vet. Diagn. Invest. 6 : 293-296);PRRS
のQuebec IAF-exp91株(Mardassi, H.など., 1995, Arc
h. Virol. 140 : 1405-1418);及び北米PRRSウィル
ス単離物VR2385(Meng, X.-J. など., 1994, J. Gen. V
irol. 75 : 1795-1801) (但し、それらだけには限定さ
れない)に関連する遺伝子特徴を有するいづれかのPR
RSウィルスを意味する。
により共有されるゲノムヌクレオチド配列類似性及びア
ミノ酸配列類似性を意味する。本発明のためには、北米
PRRSウィルスは、配列番号1と同じか又はそれに対
して相同のRNA配列によりコードされるウィルスであ
り、ここで用語“相同”とは、前で定義された通りであ
る。従って、北米PRRSウィルスの株は好ましくは、
配列番号1と少なくとも約70%のゲノムヌクレオチド
配列同一性、及びより好ましくは、配列番号1と少なく
とも約75%のゲノムヌクレオチド配列同一性を有し、
配列番号1との少なくとも約85%のゲノムヌクレオチ
ド配列同一性がさらにより好ましい。
91年でさらにヨーロッパにおいて最初に単離されたP
RRSウィルスに関連する遺伝子特徴を有するPRRS
ウィルスのいづれかの株を言及する(たとえば、Wensvo
ort, G.,など., 1991, Vet.Q. 13 : 121-130 を参照の
こと)。“欧州PRRSウィルス”とはまた、時々、
“Lelystadウィルス”として当業界において言及され
る。
ルスは、その特徴が本明細書に示される北米PRRSウ
ィルスの定義内にある場合、“本発明の実施において有
用”である。たとえば、本発明の単離されたポリヌクレ
オチド分子の1つによりコードされるウィルスは、たと
えばそれが、北米PRRSウィルスに関連する遺伝子特
徴を有する場合、“本発明の実施において有用な北米P
RRSウィルス”である。
ウィルスORFに対して相同のポリヌクレオチド配列に
よりコードされるペプチドは、それらが、機能的なPR
RSビリオンが細胞により生成されるように、トランス
フェクトされた宿主細胞において機能的なPRRSビリ
オンを発現するために不可欠な遺伝子が不十分な、遺伝
子的に修飾されたPRRSウィルスをコードするRNA
分子を補足することができる場合、“本発明の実施にお
いて有用”である。用語“オープンリーディングフレー
ム”又は“ORF”とは、本明細書において使用される
場合、介在性停止コドンを伴わないで、特定のPRRS
ウィルスタンパク質をコードするために必要とされる最
小ヌクレオチド配列を意味する。
らない限り、本発明のRNA分子(又はそのようなRN
A分子をコードするDNA配列を含んで成る単離された
ポリヌクレオチド分子又はウィルスベクター)が形質転
換され、又はトランスフェクトされ得る細胞を意味す
る。そのようなRNA分子、単離されたポリヌクレオチ
ド分子、又はウィルスベクターによるトランスフェクト
のための“適切な宿主細胞”は、哺乳類、特にブタ、及
び鳥類細胞を包含し、そして下記にさらに詳細に記載さ
れる。
を収容することができる細胞に侵入でき、そしてその細
胞内で、その特定のRNAゲノム(本明細書に記載され
るような、修飾されていないゲノム又は遺伝子的に修飾
されたゲノム)の遺伝子を発現することができるウィル
ス粒子である。PRRSウィルスを収容することができ
る細胞は、ブタ肺胞マクロファージ細胞及びMARC145 サ
ル腎細胞を包含する。他の哺乳類又は鳥類細胞、特に他
のブタ細胞もまた、PRRSビリオンのための適切な宿
主細胞として作用することができる。
は、下記においてさらに詳細に記載されるように、PR
RSウィルスによる感染からブタを保護するためのよく
知られている方法を用いて、生ワクチン、殺されたワク
チン又は弱毒化されたワクチンを調製するために使用さ
れ得る北米PRRSウィルスをコードする。それらの単
離されたポリヌクレオチド分子はまた、下記において詳
細に記載されるように、ブタ又は鳥を包含する哺乳類中
に異種遺伝子を供給するためのベクターとしても有用で
ある。さらに、それらの単離されたポリヌクレオチド分
子は、それらが中でも、PRRS感染からブタを保護す
るためのワクチンとして有用な、遺伝子的に修飾された
北米PRRSウィルスをコードするよう分子生物学的技
法を用いて突然変異誘発され得るので、有用である。そ
のような遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルス、
及びそれらを含んで成るワクチンはまた、下記にさらに
詳細に記載される。
れた北米PRRSウィルスを製造するための方法を提供
し、ここで前記方法は、上記のような北米PRRSウィ
ルスをコードする感染性RNA分子をコードするDNA
配列を突然変異誘発し、そして適切な発現系を用いて、
前記遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルスを発現
することを含んで成る。北米PRRSウィルス、すなわ
ち野生型又は遺伝子的に修飾されたいづれかのPRRS
ウィルスは、当業界において一般的に知られている適切
な発現系を用いて、単離されたポリヌクレオチド分子か
ら発現され得、ここで前記発現系の例は本明細書に記載
されている。たとえば、単離されたポリヌクレオチド分
子は、下記にさらに詳細に記載されるように、適切な宿
主においてコードされたウィルスを発現することができ
るプラスミドの形で存在することができる。
細書において使用される場合、及び特にことわらない限
り、遺伝子的に突然変異誘発されたことを意味し、すな
わち置換され、欠失されそして/又は付加された1又は
複数のヌクレオチドを有することを意味する。ポリヌク
レオチド分子は、当業界者に知られている組換え技法、
たとえば特定部位の突然変異誘発、又はランダム突然変
異誘発、たとえば当業界において知られているような、
化学的な突然変異誘発物質又は放射線への暴露により、
遺伝子的に突然変異誘発され得る。
RSウィルスの遺伝子修飾は、野生型ウィルスが効果的
に複製する鳥又は哺乳類において、ウィルスの複製を効
果的に無能にし、又は効果的に複製するその能力を低め
る。もう1つの態様においては、本発明の遺伝子的に修
飾された北米PRRSウィルスは、それらにより感染さ
れた鳥又は哺乳類において効果的に複製し続け得る。
“効果的複製”とは、感染された動物において増殖し、
そして子孫ウィルス(ビリオン)を生成する能力、すな
わち動物を“生産的に感染する”能力を意味する。
Sを生成することができない遺伝子的に修飾された北米
PRRSウィルスをコードする感染性RNA分子をコー
ドするDNA配列を含んで成る単離されたポリヌクレオ
チド分子を提供し、ここで前記DNA配列は配列番号1
又はそれに対して相同の配列であるが、但しそれはPR
RSを生成するその能力において、コードされたPRR
Sウィルスを遺伝子的に無能にする1又は複数の突然変
異を含む。“遺伝子的に無能にされた”とは、PRRS
ウィルスがそれにより感染されたブタ動物においてPR
RSを生成することができないことを意味する。
すその能力を無能にされた、遺伝子的に修飾された北米
PRRSウィルスは、ブタ動物においてPRRSウィル
スによる感染に対して効果的な免疫保護応答を誘発する
ことができる。従って、本発明はまた、ブタ動物を感染
する場合、a)動物においてPRRSを生成することが
できず、そしてb)動物においてPRRSウィルスによ
る感染に対して効果的な免疫保護応答を誘発できるよう
遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルスをコードす
る感染性RNA分子をコードするDNA配列を含んで成
る単離されたポリヌクレオチド分子を提供し、ここで前
記北米PRRSをコードするDNA配列は配列番号1又
はそれに対して相同の配列であるが、但しPRRSを生
成するその能力において、コードされたPRRSウィル
スを遺伝子的に無能にする1又は複数の突然変異を含
む。
トープ又は複数の特定の抗原性エピトープに対して向け
られるか又はその分解又は阻害を助ける抗体及び/又は
細胞(たとえばTリンパ球)の生成を意味する。本発明
に関し、用語“効果的な免疫保護応答”、“免疫保
護”、及び同様の用語は、ワクチン接種された動物にお
いて病原体による感染に対して保護するために病原体の
1又は複数の抗原性エピトープに対して向けられる免疫
応答を意味する。
する保護は、感染の絶対的な阻止のみならず、また病原
体による感染の程度又は速度のいづれかの検出できる低
下、又はワクチン接種されていない感染された動物に比
較して、ワクチン接種された動物における病原体による
感染に起因する疾病、又はいづれかの症状又は状態の重
症度のいづれかの検出できる低下を包含する。効果的な
免疫保護応答は、病原体によりこれまで感染されたこと
がない動物及び/又はワクチン接種の時点で病原体によ
り感染されていない動物において誘発され得る。効果的
な免疫応答はまた、ワクチン接種の時点で病原体により
すでに感染されている動物においても誘発され得る。
ない限り、特定の動物又は種において免疫応答を誘発で
きる分子である。抗原性エピトープは、タンパク質性分
子、すなわち非タンパク質基、たとえば炭水化物成分及
び/又は脂質成分を任意に含んで成るポリアミノ酸配列
である。本明細書において使用される用語“病原的に感
染する”とは、動物を感染し、そして動物に疾病を引き
起こす病原体の能力を意味する。例として、PRRSウ
ィルスは、それがブタにおいてPRRSを引き起こすこ
とができるので、ブタ動物を病原的に感染することがで
きる。しかしながら、PRRSウィルスは鳥又は他の哺
乳類、たとえばヒトを、生産的に又は非生産的に感染す
ることができるが、それはブタ動物以外の動物において
いづれの疾病も引き起こさないので、ブタ動物以外のい
づれの動物も病原的に感染しない。
りコードされる遺伝子的に修飾された北米PRRSウィ
ルスは、1つの態様においてPRRSウィルスによる感
染に対して効果的な免疫保護応答を誘発することができ
る。そのような遺伝子的に修飾された北米PRRSウィ
ルスは好ましくは、欧州株及び北米株の両者を包含する
PRRSウィルスのいづれかの株に対して効果的な免疫
保護応答を誘発することができる。
れた北米PRRSウィルスをコードする単離されたポリ
ヌクレオチド分子における突然変異は、非−サイレント
であり、そして北米PRRSウィルスをコードするヌク
レオチド配列の1又は複数のオープンリーディングフレ
ームにおいて生じ;すなわち前記突然変異は配列番号1
のORF1a,1b,2,3,4,5,6、又は7と同
じか又は相同である、北米PRRSウィルスをコードす
るヌクレオチド配列内の1又は複数の配列において生じ
る。もう1つの態様においては、突然変異は、北米PR
RSウィルスゲノムの1又は複数の非コード領域におい
て、たとえば北米PRRSウィルスゲノムのリーダー配
列において生じ;すなわち突然変異は配列番号1のヌク
レオチド1〜191の配列と同じか又は相同である配列
内に生じる。同じ単離されたポリヌクレオチド分子にお
いては、突然変異はコード及び非コード領域において生
じることができる。
RRSウィルスをコードするヌクレオチド配列の“非コ
ード領域”は、特にことわらない限り、タンパク質に翻
訳されないそれらのRNA配列、及びそのようなRNA
配列をコードするそれらのcDNA配列を意味する。コ
ード領域は、北米PRRSウィルスタンパク質が発現さ
れるそれらのRNA配列を意味し、そしてまた、そのよ
うなRNA配列をコードするcDNAも意味する。同様
に、“ORF”は、北米PRRSウィルスタンパク質を
コードするRNA配列、及びそのようなRNA配列をコ
ードするcDNA配列の両者を言及する。
Sウィルスによる感染に対して効果的な免疫保護応答を
誘発できるよう、遺伝子的に無能につれた北米PRRS
ウィルスをコードするであろう突然変異についての適切
な位置の決定は、本明細書に提供される配列番号1に基
づいて行なわれ得る。当業者は、本発明により提供され
る北米PRRSウィルスの感染性cDNAクローンの配
列を言及し、突然変異をもたらすであろう配列の変更を
実施し、そしてブタにおいてPRRSを生成し、そして
PRRSウィルスによる感染に対して効果的な免疫保護
応答を誘発するそれらの能力について、それらによりコ
ードされるウィルスを試験することができる。そのよう
にすることで、当業者は、当業界において知られている
技法、及びまた、本明細書に記載され、そして/又は例
示されるそれらの技法を言及することができる。
する感染性RNA分子をコードする配列のORFが、突
然変異誘発され得、そしてその得られる遺伝子的に修飾
された北米PRRSウィルスがPRRSを引き起こすそ
の能力について試験される。北米PRRSウィルスのO
RFは、次のようなタンパク質をコードする:ORF1
aはプロテアーゼ機能を含んで成るポリタンパク質をコ
ードし;ORF1bはレプリカーゼ(RNAポリメラー
ゼ)及びヘリカーゼ機能を含んで成るポリタンパク質を
コードし;ORF2,3及び4は小メンバー糖タンパク
質をコードし;ORF5は主要エンベロープ糖タンパク
質をコードし;ORF6はグリコシル化されていない膜
内在性タンパク質をコードし;そしてORF7はヌクレ
オキャプシドタンパク質をコードする。1又は複数のそ
れらのORFの遺伝子突然変異が、下記に記載される遺
伝子的に修飾された北米PRRSウィルスの調製に使用
され得る。
ピトープを含んで成るように遺伝子的に修飾された北米
PRRSウィルスをコードする感染性RNA分子をコー
ドするDNA配列を含んで成る単離されたポリヌクレオ
チド分子を提供し、ここで前記北米PRRSウィルスを
コードするRNA分子をコードするDNA配列は、配列
番号1又はそれに対して相同の配列であり、そしてさら
に、異種抗原性エピトープをそれぞれコードする1又は
複数の追加のヌクレオチド配列を含んで成り、そして前
記個々の異種抗原性エピトープは哺乳類又は鳥において
特定の病原体に対して効果的な免疫保護応答を誘発する
ことができる。
の手段により誘発され得る病原体は、哺乳類又は鳥にお
いて疾病を引き起こすことができるいづれかの病原体、
たとえばウィルス、細菌、菌類又は原生動物であり、こ
の病原体は哺乳類又は鳥において病原体に対して効果的
な免疫保護応答を誘発するために使用され得る1又は複
数の抗原性エピトープを含んで成り、又はそれと関連し
ている。
プ”とは、野生型北米PRRSウィルスに通常見出され
ない、上記で定義されたような抗原性エピトープを意味
する。異種抗原性エピトープをコードするヌクレオチド
配列は、既知の組換え技法を用いて、北米PRRSウィ
ルスゲノム中に挿入され得る。本発明のための異種抗原
性エピトープとして有用な抗原性エピトープは、追加の
北米PRRSウィルス抗原性エピトープ、欧州PRRS
ウィルスからの抗原性エピトープ、PRRSウィルス以
外のブタ病原体からのエピトープ、又は鳥もしくはブタ
以外の哺乳類、たとえばヒトを病原的に感染する病原体
からの抗原性エピトープを包含する。
配列は、当業界において知られており、又は本明細書に
提供される。たとえば、本明細書に記載される北米PR
RSORF5によりコードされる、第2北米PRRSウ
ィルスエンベロープタンパク質は、本発明の北米PRR
SウィルスをコードするRNA分子をコードするDNA
配列中に挿入され、異種抗原性エピトープとして追加の
エンベロープタンパク質を含んで成る遺伝子的に修飾さ
れた北米PRRSウィルスが生成される。そのような遺
伝子的に修飾された北米PRRSウィルスは、それらに
よりワクチン接種されたブタ動物においてPRRSウィ
ルスに対してより効果的な免疫保護応答を誘発するため
に使用され得る。
らの抗原性エピトープの例は次のものを包含するが、但
しそれらだけには限定されない:欧州PRRS、ブタパ
ルボウィルス、ブタシルコウィルス(circovirus)、ブ
タロタウィルス、ブタインフルエンザ、仮性狂犬病ウィ
ルス、感染性胃腸炎ウィルス、ブタ呼吸コロナウィル
ス、従来のブタ発熱ウィルス、フフリキャンブタ発熱ウ
ィルス、脳心筋炎ウィルス、ブタパラミクソウィルス、
アクチノバチルスフレウロプネウモニ(Actinobacillus
pleuropneumoni)、バチルスアントラシ(Bacillus ant
hraci)、ボルデテラブロンキセプチカ(Bordetella bro
nchiseptica)、クロストリジウムハエモリチカム(Clot
ridium haemolyticum)、クロストリジウムペルフリンゲ
ンス(Clostridium perfringens)、クロストリジウムテ
タニ(Clostridiumtetani)、エシュリシアコリ(Escher
ichia coli) 、エリシペロトリクスルシオパチアエ(Er
ysipelothrix rhusiopathiae) 、ハエモフィラスパラス
イス(Haemophilus parasuis) 、レプトスピラspp.
(Leptospira spp.)、マイコプラズマヒオペネウモニア
エ(Mycoplasma hyopneumoniae) 、マイコプラズマヒロ
リニス(Mycoplasma hyorhinis) 、パステウレラハエモ
リチカ(Pasteurella haemolytica)、パステウレラムル
トシダ(Pasteurella multocida)、サルモネラコレラエ
スイス(Salmonella choleraesuis)、サルモネラチピム
リウム(Salmonella typhimurium) 、ストレプトコーカ
スエクイスミリス(Streptococcus equismillis)及びス
トレプトコーカススイス(Streptococcus suis) から成
る群から選択されたブタ病原体からの抗原性エピトー
プ。前記ブタ病原体からの抗原性エピトープをコードす
るヌクレオチド配列は、当業界において知られており、
そして公開された遺伝子データベース、たとえばNCB
Iにより提供されるGenBank (http://www.ncbi.nim.ni
h.gov/Web/Genbank/index.html) から入手できる。
ブタ病原体からの抗原性エピトープである場合、単離さ
れたポリヌクレオチド分子はさらに、PRRSを生成す
るその能力において、コードされたPRRSウィルスを
遺伝子的に無能にする1又は複数の突然変異を含むこと
ができる。そのような単離されたポリヌクレオチド分子
及びそれらがコードするウィルスは、異種抗原性エピト
ープが由来するブタ病原体に対してブタを保護するため
のワクチンを調製するために有用である。
された北米PRRSは、ブタ動物においてPRRSウィ
ルスによる感染に対して効果的な免疫保護応答を誘発す
ることができる。そのような単離されたポリヌクレオチ
ド分子及びそれらがコードするウィルスは、北米PRR
Sウィルス、及び異種抗原性エピトープが由来するブタ
病原体の両者による感染に対してブタを保護するための
二重機能ワクチンを調製するために有用である。もう1
つの好ましい態様においては、二重機能ワクチンにおい
て有用な、遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルス
が遺伝子的に無能にされる。
オチド配列を含んで成る本発明の単離されたポリヌクレ
オチド分子は、分子生物学において知られている技法を
用いて、本明細書に記載される北米PRRSウィルスを
コードする配列に基づいて、上記のようにして調製され
得る。
の遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルスの異種抗
原性エピトープは、検出できる抗原性エピトープであ
る。そのような単離されたポリヌクレオチド分子及びそ
れらがコードする北米PRRSウィルスは中でも、ブタ
におけるPRRS感染を研究し、都合良くワクチン接種
されたブタを決定し、そして/又は野生型PRRSウィ
ルスにより感染されたブタとワクチン接種されたブタと
を区別するために有用である。好ましくは、そのような
単離されたポリヌクレオチド分子はさらに、PRRSを
生成するその能力において、コードされたPRRSウィ
ルスを遺伝子的に無能にする1又は複数の突然変異を含
み、そしてより好ましくは、PRRSウィルスによる感
染に対してブタ動物において効果的な免疫保護応答を誘
発することができる。
れらをコードする配列はまた、当業界において知られて
いる。そのような抗原性エピトープを検出するための技
法はまた、当業界において知られており、そしてたとえ
ばウェスターンブロット、ELISA、又は異種抗原性
エピトープに対して特異的な抗体に結合することができ
る螢光ラベルされた抗体による、異種抗原性エピトープ
に対して特異的な抗体の血清学的検出を包含する。本発
明の実施において有用な血清学的検出のための技法は、
当業界において認識されるテキスト、たとえば引用によ
り本明細書中に組込まれる、Coligan, J.E.,など. (ed
s), 1998, Current Protocols in Immunology, John Wi
lley & Sons, Inc., に見出され得る。他方では、異種
抗原性エピトープ自体はたとえば、抗原性エピトープを
実質的に含んで成るサンプルと、抗原性エピトープを特
異的に結合する螢光ラベルされた抗体又は放射性ラベル
された抗体とを接触せしめることによって検出され得
る。
原性エピトープを検出可能に欠いている遺伝子的に修飾
された北米PRRSウィルスをコードする感染性RNA
分子をコードするDNA配列を含んで成る単離されたポ
リヌクレオチド分子を提供し、ここで前記北米PRRS
ウィルスをコードするRNA分子をコードするDNA配
列は、配列番号1又はそれに対して相同の配列である
が、但し、それは検出できる北米PRRSウィルス抗原
性エピトープをコードする1又は複数のヌクレオチド配
列を欠いている。そのよな単離されたポリヌクレオチド
分子は、本発明の組換え北米PRRSウィルスにより感
染されたブタと、野生型PRRSウィルスにより感染さ
れたブタとの間を区別するために有用である。
レオチド分子によりコードされた、殺された、生存の又
は弱毒化された北米PRRSウィルスによりワクチン接
種された動物は、欠けた抗原性エピトープに対して特異
的な抗体の不存在に基づいて、又は抗原性エピトープ自
体の不存在に基づいて、野生型PRRSウィルスにより
感染された動物から区別され得る。欠けた抗原エピトー
プに対して特異的な抗体、又は抗原性エピトープ自体が
動物において検出される場合、動物は野生型PRRSウ
ィルスに暴露され、又はそれにより感染された。
な抗体を検出するための手段は、上記で論ぜられたよう
に、当業界において知られている。好ましくは、そのよ
うな単離されたポリヌクレオチド分子はさらに、PRR
Sを生成するその能力において、コードされたPRRS
ウィルスを遺伝子的に無能にする1又は複数の突然変異
を含む。より好ましくは、そのコードされたウィルス
は、PRRSウィルスによる感染に対して効果的な免疫
保護応答を誘発できるまま存続する。
修飾された北米PRRSウィルスをコードするプラスミ
ド:本発明はまた、上記単離されたポリヌクレオチド分
子のいづれかを、それによりコードされる北米PRRS
ウィルスを発現することができるプラスミドの形で提供
する。
を調製するために有用な本発明の北米PRRSウィルス
を生成するために、生存生物の外部に、コードされた北
米PRRSウィルスを発現することができる。1つの態
様においては、生存生物の外部に北米PRRSウィルス
を発現することができる本発明のプラスミドは、それか
らのウィルスRNAの転写がインビトロ(細胞外的に)
で生じるプラスミドであり;その得られるウィルスRN
A分子は、トランスフェクションの既知機構、たとえば
エレクトロポレーション、リポフェクション(多くの場
合、市販の試薬、たとえばLipofectinTM(Life Technol
ogies Inc., Rockville, Maryland, USA) を用いる)、
又はDEAEデキストラン介在性トランスフェクション
を用いて、適切な宿主細胞中にトランスフェクトされ
る。
において知られており、そして本発明において使用され
得る。北米PRRSウィルスRNAのインビトロ転写の
ためのそのようなプラスミドの例は、プラスミドpT7P12
9A(ATCC受託番号203488) である。インビトロ転写のた
めに有用ないづれかのプロモーターが、本発明のそのよ
うなプラスミドに使用され得る。T7は1つのそのよう
なプロモーターであるが、しかし他のプロモーター、た
とえばSP6プロモーター又はT3プロモーターが使用
され得る。そのようなプロモーターの配列は、市販のプ
ラスミドから人工的に合成され、又はクローン化され得
る。
きるそのようなプラスミドを調製するための適切なプラ
スミドは、一般的な目的のクローニングベクタープラス
ミド、たとえばpCR2.1(Invitrogen, Carlsbad, Califo
rnia, USA),pBR322及びpUC18を包含する
が、但しそれらだけには限定されない。北米PRRSウ
ィルスをコードする本発明のヌクレオチド配列は、既知
の組換え技法を用いて、それらのプラスミドのいづれか
中に挿入され得る。本発明のポリヌクレオチド分子が挿
入され得る他のプラスミドは、当業者により認識される
であろう。
RNA分子をコードするDNA配列を含んで成る上記組
換えプラスミドのいづれかからのウィルスRNAのイン
ビトロ転写のための適切な条件は、プラスミドの型、た
とえばその特定のプロモーターに依存し、そして当業者
により確かめられ得る。たとえば、本発明のプラスミド
がT7プロモーターを含んで成るpCR2.1プロモーターに
基づかれている場合、インヒトロ転写のための適切な条
件の例は、プラスミドとT7 RNAポリメラーゼ及び
リボヌクレオチドとを、標準の緩衝液において反応せし
め、そしてその反応を37℃で約30分間インキュベー
トすることを包含する。
ミドからRNAを転写するために利用でき、そしてその
ようなキットが本発明において使用され得る。転写に続
いて、反応混合物は、精製を伴わないで、適切な宿主細
胞中に直接的にトランスフェクトされ得、又は転写され
た北米PRRSウィルスRNAは既知のRNA精製技
法、たとえば有機物(たとえばフェノール)抽出及びア
ルコール(たとえば、エタノール又はイソプロパノー
ル)沈澱により、トランスフェクションの前、精製され
得る。
物は、第1回目の北米PRRSウィルスを生成するため
に、上記のようにして得られた北米PRRSウィルスR
NAによりトランスフェクトされ得る。それらの容易な
利用性及び容易な使用性のために特に有用であることが
見出されている細胞の例は、BHK(子供ハムスター腎
臓)細胞である。しかしながら、北米PRRSビリオン
の生成を維持できる細胞培養物を生成することが所望さ
れる場合、ブタ肺胞マクロファージ細胞又はMARC-145細
胞(Kim, H.S.,など.,前記)が、それらの細胞はPRR
Sウィルス感染に続いて、高レベルの新規世代のPRR
Sビリオンを排出するので、好ましい。MA-104細胞系に
由来する他の細胞系はまた、本発明の北米PRRSビリ
オンの維持された生成のためにも使用され得る。一次ブ
タ肺胞マクロファージ細胞は、ブタからの肺洗浄により
得られ、そしてMARC-145サル腎細胞系はNVSLとして
も知られているNational veterinary Services Laborat
ories (Ames, Iowa, USA)から得られる。
部で本発明の北米PRRSウィルスを発現することがで
きるプラスミドは、たとえば、エレクトロポレーション
又はリポフェクション、感染性RNA分子の転写、及び
トランスフェクトされた宿主細胞内に生じる、それから
の北米PRRSウィルスの発現により、適切な宿主細胞
中にトランスフェクトされるプラスミドである。従っ
て、トランスフェクトされた宿主細胞が北米PRRSビ
リオンを生成する。そのような完全な細胞的方法は、ニ
ドビラレス目内のいづれのウィルスについても、これま
で開示されたことも又は提案されたこともない。
に存在する可能性ある隠れたスプライシング及び終結配
列のために、ニドビラレスウィルスを発現する完全な細
胞性方法は見込みのないように思われた。隠れた配列
は、RNA転写体の不適切なスプライシングを引き起こ
すRNAスプライスドナー及びスプライス受容体配列、
及び細胞RNAポリメラーゼIIによる早熟終結を引き起
こすポリアデニル化配列を包含する。しかしながら、本
発明は、ニドウィルスのcDNAクローンを含んで成る
プラスミドにおけるそのような配列の存在が、プラスミ
ドが適切な宿主細胞中に直接的にトランスフェクトされ
る場合、ニドウィルスを発現するプラスミドの能力を妨
げないことを示す。
ルスを発現するためのプラスミド及び完全な細胞的方法
を提供し、ここで前記プラスミドは、a)ニドビラレス
ウィルスをコードする感染性RNA分子をコードするD
NA配列;及びb)細胞において前記コード配列を転写
することができるプロモーターを含んで成り、そして前
記プロモーターは感染性RNA分子をコードするDNA
配列と作用可能に関連して存在する。前記方法は、その
ようなプラスミドにより適切な宿主細胞をトランスフェ
クトし、そのトランスフェクトされた宿主細胞を、そこ
にトランスフェクトされた遺伝子配列の発現のために適
切な条件にゆだね、そしてそれから、発現されたニドビ
ラレスウィルスを集めることを含んで成る。
の完全な細胞性発現のために適切なプラスミドの例は、
プラスミドpCMV-S-P129 (ATCC受託番号203489) であ
る。好ましい態様においては、そのようなプラスミドの
プロモーターは、CMVプロモーターである。好ましい
態様においては、ニドビラレスウィルスを発現する完全
な細胞性方法のために適切な本発明のプラスミドは、ニ
ドビラレスウィルスをコードするヌクレオチド配列のす
ぐ上流に及びそれに隣接して真核プロモーター、たとえ
ばCMVプロモーターを含んで成る。好ましい態様にお
いては、ニドビラレスウィルスをコードするヌクレオチ
ド配列は、欧州又は北米PRRSウィルスをコードす
る。
ニドビラレスウィルスの他の例は、他のアルテリビルセ
ス(Arterviruses)、たとえばウマ動脈炎ウィルス、乳
酸デヒドロゲナーゼ−上昇ウィルス及びサル出血性発熱
ウィルス;コロナビリダエ(Coronaviridae)属のメンバ
ーであるウィルス、たとえばネコ感染性ペリチニチスウ
ィルス、ネコ腸コロナウィルス、イヌコロナウィルス、
ウシコロナウィルス、ブタ呼吸コロナウィルス、七面鳥
コロナウィルス、ブタ伝染性胃腸炎ウィルス、ヒトコロ
ナウィルス、ネズミ肝炎ウィルス、及び鳥類感染性気管
支炎ウィルス(但し、それらだけには限定されない);
及びトロビリダエ(Toroviridae)属のメンバー、たとえ
ばベルン(Berne)ウィルス、ブレダ(Breda)ウィルス及
びヒトトロビウィルス(但し、それらだけには限定され
ない)を包含する。従って、それらのウィルスの1つを
コードするヌクレオチド配列を含んで成る完全な細胞性
発現のために適切なプラスミドがまた、本発明により包
含される。
ウィルスの生存生物の外部で完全な細胞性発現のための
本発明の組換えプラスミドを調製するために使用され得
る適切なプラスミドは、真核細胞におけるトランスフェ
クション及び発現のために有用ないづれかのプラスミド
を包含する。ニドビラレスウィルスの完全な細胞性発現
のための本発明の組換えプラスミドを調製するために適
切なプラスミドの例は、プラスミドpCMVbeta(Clontec
h, Palo Alto, California, USA) である。
され得る。真核細胞において遺伝子をトランスフェクト
し、そして発現することができる他のプラスミドは、pc
DNA3.1、pRc/RSV 、及びpZeoSV2 (すべて、Invitrogen
からである);並びにpCMV-Sprot3 及びpSV-Sport1(両
者ともLife Technologies Inc.からである)を包含する
が、但しそれらだけには限定されない。しかしながら、
ほとんどいづれの真核発現ベクターでも、本発明のため
に作用するであろう。コスミドに基づく構造体がまた、
ニドビラレスウィルスの完全な細胞性エクスビボ発現の
ために使用され得る。
細胞性方法のための適切な宿主細胞は、上記ブタ肺胞マ
クロファージ及びMARC-145細胞を包含する。プラスミド
によりそれらの細胞をトランスフェクトするための方法
は、上記ウィルスDNAにより細胞をトランスフェクト
するためのそれらの方法と基本的に同じである。そのよ
うな方法は、エレクトロポレーション、リポフェクショ
ン、DEAEデキストラン介在性トランスフェクショ
ン、及びリン酸カルシウム同時沈澱を包含するが、但し
それらだけには限定されない。
ジ細胞又はMARC-145細胞がウィルスRNAにより、又は
ウィルスをコードするヌクレオチド配列を含んで成るプ
ラスミドにより、本発明に従ってトランスフェクトされ
るとすぐに、それらの細胞は数年間までの貯蔵のために
約−80℃又はそれ以下で凍結され得る。より長い期
間、すなわち10年間の貯蔵のためには、液体窒素によ
る貯蔵が好ましい。コードされたウィルスの比較的頻繁
な使用が想定される場合、ウィルスを収容する細胞はま
た、短期間、既知の技法を用いて、培養物において維持
され得る(凍結されないで)。
ウィルス粒子は、ウィルス源として、約−80℃又はそ
れ以下で凍結貯蔵され得る。ウィルスをコードするポリ
ヌクレオチド分子によるそのような細胞系のトランスフ
ェクションは、所望により、たとえば免疫螢光抗体試験
を用いて、PRRSウィルス抗原について前記細胞系に
より排泄される消耗された培地を試験することによって
確かめられ得る。PRRSウィルス抗原に対して特異的
である抗体は当業界において知られている(たとえば、
Collins, E.J.,など., WO93/03760 (March 4, 1993) を
参照のこと)。
ィルスをコードするヌクレオチド配列を含んで成る本発
明のプラスミドは、北米PRRSウィルスのインビボ発
現すなわち生存生物における発現のために適切である。
北米PRRSウィルスのインビボ発現のための組換えプ
ラスミドを調製するために使用され得るプラスミドは、
上記真核細胞をトランスフェクトすることができるプラ
スミド、たとえばpCMVbetaを包含するが、但しこれだけ
には限定されない。
トされ得る動物は、哺乳類及び鳥類を包含する。動物が
ブタ動物以外、たとえばマガモである場合、プラスミド
は動物を病原的に感染することができる病原体からの追
加の抗原性エピトープを含んで成る北米PRRSウィル
スをコードするヌクレオチド配列を含んで成り;そのよ
うな場合、プラスミドは、動物中にエピトープを輸送す
るためのベクターとして作用する北米PRRSウィルス
をコードするであろう。動物がブタ動物である場合、プ
ラスミドは通常、本明細書に記載される北米PRRSウ
ィルスのいづれか、たとえば本明細書に記載される遺伝
子的に修飾された北米PRRSウィルスをコードするこ
とができる。
ィルスベクター、たとえば遺伝子的に修飾された北米P
RRSウィルスをコードするウィルスベクター:本発明
はまた、本明細書に記載される北米PRRSウィルスの
いづれか、たとえば本明細書に記載される遺伝子的に修
飾された北米PRRSウィルスをコードする感染性RN
A分子をコードするDNA配列を含んで成るウィルスベ
クターを提供する。そのようなウィルスベクターは、生
存生物の外部で本発明のPRRSウィルスの生成のため
に真核細胞をトランスフェクトするために、又は本明細
書における北米PRRSウィルスのインビボ発現のため
に、北米PRRSをコードする配列により、ブタ、又は
他の哺乳類、又は鳥類をトランスフェクトするために有
用である。
のベクターとして使用され得るウィルスのいくつかのサ
ンプルは、ブタウィルス、たとえばブタポックスウィル
ス、仮性狂犬病ウィルス、又はアフリキャンブタ発熱ウ
ィルスを包含するが、但しそれらだけには限定されな
い。そのようなブタウィルスは、The National Veterin
ary Services Laboratories (Ames, Iowa, USA) of the
United States Department of Agriculture ; America
n Type Culture Collection (ATCC) (Manassas,Virgini
a, USA) ;及び他の既知の源から得られる。適切なブタ
ウィルス、たとえば前記ブタウィルスに基づく組換えウ
ィルスベクターは、本発明の北米PRRSウィルスをコ
ードするヌクレオチド配列によりブタ動物をトランスフ
ェクトするために有用である。
発明の北米PRRSウィルスをコードする感染性RNA
分子をコードするDNA配列を含んで成るウィルスベク
ターは、テキスト、たとえば本明細書において前に引用
された文献に記載される既知の組換え技法を用いて調製
され得る。
ィルスをコードするトランスフェクトされた宿主細胞:
本発明はまた、本明細書に記載される北米PRRSウィ
ルスのいづれか、たとえば本明細書に記載される遺伝子
的に修飾された北米PRRSウィルスをコードする感染
性RNA分子をコードするDNA配列を含んで成る、そ
の北米PRRSウィルスを発現することができるトラン
スフェクトされた宿主細胞を提供する。そのようなトラ
ンスフェクトされた宿主細胞は、本発明の北米PRRS
ウィルスを生成するために有用である。本発明のトラン
スフェクトされた宿主細胞の例は、トランスフェクトさ
れたブタ肺胞マクロファージ細胞及びトランスフェクト
されたMARC-145細胞を包含する。
は、次の細胞を包含するが、但しそれらだけには限定さ
れない:トランスフェクトされたMA-104細胞及びトラン
スフェクトされるMA-104細胞の他の誘導体;トランスフ
ェクトされた子供ハムスター腎臓(BHK)細胞;トラ
ンスフェクトされたチャイニーズハムスター卵巣(CH
O)細胞;及びMA-104細胞又はMARC-145細胞以外のアフ
リキャンミドリザル腎臓細胞、たとえばVERO細胞。
ィルスを包含する北米PRRSウィルス:本発明はま
た、上記単離されたポリヌクレオチド分子、RNA分
子、プラスミド、ウィルスベクター又はトランスフェク
トされた宿主細胞のいづれかにより発現され、そして/
又はコードされる、本明細書に記載されるような遺伝子
的に修飾された北米PRRSウィルスを包含する、本明
細書に記載されるような北米PRRSウィルスを提供す
る。
ィルスがブタのためのワクチンに使用され、そして北米
PRRSウィルスが、PRRSを引き起こすことができ
ないように、上記のようにして遺伝子的に修飾されてい
ない場合、北米PRRSウィルスを、たとえば、それが
投与されるブタにおいてPRRSを引き起こすことがで
きないように、それを不活性化し、又は弱毒化すること
によって処理することが所望される。既知の方法は、動
物においてPRRSを引き起こさないように、本発明の
北米PRRSウィルスを不活性化するために使用され得
る。そのような方法の例は、ホルムアルデヒド、BEI
(二元エチレンイシン)又はBPL(β−プロピオラク
トン)による処理を包含するが、但しそれだけには限定
されない。弱毒化の方法はまた当業界において知られて
おり、そしてそのような方法は本発明の北米PRRSウ
ィルスを弱毒化するために使用され得る。たとえば、本
発明の北米PRRSウィルスは、細胞培養における一連
の継代により弱毒化され得る。
以外の動物において使用される場合、又はそれがブタ動
物においてPRRSを生成できないように、本明細書に
記載されるよう遺伝子的に修飾されている場合、それを
ワクチンに使用する前、前述のようにウィルスを処理す
る必要はない。
た、本明細書に記載されるようなブタ動物においてPR
RSを生成するそれらの能力において無能にされた遺伝
子的に修飾された北米PRRSウィルスを包含する、北
米PRRSウィルス;本明細書に記載されるようなその
ような北米PRRSウィルスをコードする感染性RNA
分子及びプラスミド;又は本明細書に記載されるような
そのような北米PRRSウィルス及び単離されたRNA
分子をコードするウィルスベクターを含んで成るワクチ
ンを提供する。本発明はまた、そのようなワクチンによ
るワクチン接種を含んで成る、感染から動物を保護する
ための方法も提供する。
細書に記載されるような1又は複数の異種抗原性エピト
ープを含んで成る遺伝子的に修飾された北米PRRSウ
ィルス、そのような遺伝子的に修飾された北米PRRS
ウィルスをコードする感染性RNA分子、又はそのよう
な遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルスをコード
する本明細書に記載されるようなプラスミドを、前記異
種抗原性エピトープが由来する病原体による感染に対し
て免疫保護応答を誘発するのに効果的な量で、及び医薬
的又は獣医学的使用のために許容できるキャリヤーを含
んで成るワクチンを提供する。
ープが由来する病原体により病原的に感染され得る哺乳
類又は鳥類を感染から保護するために使用され得る。従
って、本発明はまた、病原体による感染に対しての哺乳
類又は鳥における免疫保護応答を誘発するのに効果的な
量の前記ワクチンにより哺乳類又は鳥をワクチン接種す
ることを含んで成る、病原体による感染から哺乳類又は
鳥を保護するための方法を提供する。
は、遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルス、又は
北米PRRSウィルス以外のブタ病原体からの1又は複
数の異種抗原性エピトープを含んで成るか又はそれをコ
ードする、そのような遺伝子的に修飾されたPRRSウ
ィルスをコードする感染性RNA分子又はプラスミドを
含んで成る。それらのワクチンは、異種抗原性エピトー
プが由来するブタ病原体による感染からブタを保護する
ために有用である。そのようなワクチンが遺伝子的に修
飾された北米PRRSウィルスを含んで成る場合、その
北米PRRSウィルスの遺伝子修飾がブタにおける前記
ウィルスによるPRRSの誘発を無能にする。
チンにおける遺伝子的に修飾された北米PRRSウィル
スはPRRSウィルスによる感染に対する免疫保護応答
を誘発することができ、従って、ブタに二重−ワクチン
を供給し、異種抗原性エピトープが由来するブタ病原体
による感染から、及びPRRSウィルスによる感染から
ブタを保護する。ワクチンがもう1つのブタ病原体から
の1又は複数の異種抗原性エピトープを含んで成る遺伝
子的に修飾された北米PRRSウィルスをコードする感
染性RNA分子又はプラスミドを含んで成る場合、その
遺伝子的に修飾されたPRRSウィルスをコードする感
染性RNA分子をコードする配列は好ましくは、PRR
Sを引き起こすことができないよう、そのコードされた
北米PRRSウィルスを遺伝子的に無能にする1又は複
数の追加の突然変異を含んで成る。
ドされた遺伝子的に修飾され、無能にされた北米PRR
Sウィルスは、ブタ動物においてPRRS感染に対して
免疫保護応答を誘発することができ、従って、ブタに二
重−ワクチンを供給し、異種抗原性エピトープが由来す
るブタ病原体による感染から、及びPRRSウィルスに
よる感染からブタを保護することができる。すべてのそ
れらのワクチンはまた、さらに、獣医学的使用のために
許容できるキャリヤーを含んで成る。
外のブタ病原体による感染からブタ動物を保護し、そし
て任意には、PRRSウィルスによる感染からブタ動物
を同時に保護するための方法を提供し、ここで前記方法
は、ブタ病原体及び任意には、PRRSウィルスによる
感染に対してブタ動物における免疫保護応答を誘発する
のに有効な量の前記ワクチンにより動物をワクチン接種
することを含んで成る。
って、動物、たとえばヒト(適用できるなら)のための
許容できるキャリヤー、たとえば標準の緩衝液、安定
剤、希釈剤、保存剤、及び/又は溶解剤を含むよう配合
され得、そしてまた、持効性を促進するよう配合され得
る。希釈剤は、水、塩溶液、デキストロース、エタノー
ル、グリセロール及び同様のものを包含する。等張性の
ための添加剤は、中でも、塩化ナトリウム、デキストロ
ース、マンニトール、ソルビトール及びラクトースを包
含する。溶解剤は中でも、アルブミンを包含する。他の
適切なワクチン用ビークル及び添加剤、たとえば修飾さ
れた生存ワクチンの配合において特に有用であるもの
は、知られており、又は当業者に明らかであろう。たと
えば、引用により本明細書に組込まれる、Rennington's
Pharmacentical Science, 18th ed.,1990, Mack Publi
shingを参照のこと。
追加の免疫調節成分、たとえば中でも、アジュバント又
はサイトカインを含むことができる。本発明のワクチン
に使用され得るアジュバントの非制限的例は、次のもの
を包含する:RIBIアジュバントシステム(Ribi In
c., Hamilton, MT)、みょうばん、鉱物ゲル、たとえば
水酸化アルミニウムゲル、水中油エマルジョン、油中水
エマルジョン、たとえばフロイント完全及び不完全アジ
ュバント、ブロックコポリマー(CytRx, AtlantaGA),Q
S-21 (Cambridge Biotech Inc., Cambridye MA)、SAF-M
(Chiron, Emeryville CA) 、AMPHIGEN登録商標アジュ
バント、サポニン、QuilA 又は他のサポニン画分、モノ
ホスホリル脂質A及びAvridine−脂質−アミン
アジュバント。
マルジョンの非制限的な例は、変性されたSEAM62及びSE
AM1/2 配合物を包含する。変性されたSEAM62は、5%
(v/v)のスクアレン(Sigma),1%(v/v)のSP
AN登録商標85界面活性剤(ICI Surfactants),0.7
%(v/v)のTween 登録商標80界面活性剤(ICI Su
rfactants),2.5%(v/v)のエタノール、200
μg/mlのQuilA ,100μg/mlのコレステロール、
及び0.5%(v/v)のレシチンを含む水中油エマル
ジョンである。変性されたSEAM12は、5%(v/v)の
スクアレン、1%(v/v)のSPAN登録商標85界
面活性剤、0.7%(v/v)のTween80界面活性剤、
2.5%(v/v)のエタノール、100μg/mlのQu
ilA 及び50μg/mlのコレステロールを含む水中油エ
マルジョンである。ワクチンに含まれ得る他の免疫調節
剤は、たとえば1又は複数のインターロイキン、インタ
ーフェロン、又は他の既知のサイトカインを包含する。
ィルス、感染性RNA、プラスミド又はウィルスベクタ
ーの持効性のために配合され得る。そのような持効性配
合物の例は、ウィルス、感染性RNA分子、プラスミ
ド、又はウィルスベクター、及び生物適合性ポリマーの
複合材料、たとえば乳酸のポリマー、乳酸−グリコール
酸のコポリマー、メチルセルロース、ヒアルロン酸、コ
ラーゲン及び同様のものを包含する。薬物供給ビークル
における分解性ポリマーの構造、選択及び使用は、いく
つかの出版物、たとえば引用により本明細書に組込まれ
る、A. Domb など., 1992, Polymers for Advanced Tec
hnologies 3 : 279-292 に再考されている。
における追加の案内は、当業界において知られているテ
キスト、たとえば引用により本明細書に組込まれる、M.
Chasin and R. Langer (eds), 1990,“Biodeyradable
Polymers as Drug DeliverySystems ”in Drugs and th
e Pharmaceutical Science, Vol. 45, M. Dekker, NY
に見出され得る。他方では、又はさらに、ウィルス、プ
ラスミド、又はウィルスベクターは、投与及び効能を改
良するためにマイクロカプセル封入され得る。抗原をマ
イクロカプセル封入するための方法は、当業界において
知られており、そしてアメリカ特許第 3,137,631号;第
3,959,457号;第 4,205,060号;第 4,606,940号;第
4,744,933号;第 5,132,117号;及び国際特許出願WO95/
28227(それらは引用により本明細書中に組込まれる)
に記載される技法を包含する。
又はウィルスベクターの持効性を付与するために使用さ
れ得る。リポソーム配合物をいかにして製造し、そして
使用するかに関しての詳細は、中でも、アメリカ特許第
4,016,100号;第 4,452,747号;第 4,921,706号;第
4,927,637号;第 4,944,948号;第 5,008,050号;及び
第 5,009,956号(それらは引用により本明細書中に組込
まれる)に見出され得る。
用量のウィルス、プラスミド又はウィルスベクターによ
り開始し、そして次に、効果をモニターしながら、その
用量を高める従来の手段により決定され得る。有効量
は、ワクチンの一回の投与の後、又はワクチンの複数回
の投与の後、得られる。動物当たりの最適な用量を決定
する場合、既知の要因が考慮され得る。それらは、動物
の種、サイズ、年齢及び一般的な状態、動物における他
の薬物の存在、及び同様のものを包含する。実際の投与
量は好ましくは、他の動物研究からの結果の考慮の後、
選択される。
定するための1つの方法は、ワクチン接種の後、動物に
おける血清転換及び抗体力価を決定することである。ワ
クチン接種のタイミング及び追加免疫の数は好ましく
は、すべての相当する要因(それらのいくつかは、上記
に記載されている)の分析に基づいて、医者又は獣医に
より決定されるであろう。
ラスミド、又はウィルスベクターの効果的用量は、当業
者により決定され得る要因、たとえばワクチン接種され
るべき動物の重量を考慮して、既知の技法を用いて決定
され得る。本発明のワクチンにおける本発明のウィルス
の用量は、好ましくは、約101 〜約109 pfu (プラ
ーク形成単位)、より好ましくは約102 〜約108 pf
u 、及び最とも好ましくは、約103 〜約107 pfu の
範囲である。本発明のワクチンにおける本発明のプラス
ミドの用量は、約0.1μg〜約100mg、より好まし
くは約1μg〜約10mg、さらにより好ましくは約10
μg〜約1mgの範囲である。
RNA分子の用量は、好ましくは約0.1μg〜約10
0mg、より好ましくは約1μg〜約10mg、さらにより
好ましくは約10μg〜約1mgの範囲である。本発明の
ワクチンにおける本発明のウィルスベクターの用量は、
好ましくは約101 〜109 pfu 、より好ましくは約1
02 〜約108 pfu 、及びさらにより好ましくは約10
3 〜約107 pfu の範囲である。適切な投与量サイズ
は、約0.5μl〜約10ml、及びより好ましくは約1
ml〜約5mlの範囲である。
米PRRSウィルス、感染性RNA分子、プラスミド、
又はウィルスベクターを含んで成るワクチンの調製方法
を提供し、ここで前記方法は、有効量の本発明の北米P
RRSウィルス、感染性RNA分子、プラスミド又はウ
ィルスベクターと、医薬的又は獣医学的使用のために許
容できるキャリヤーとを組合すことを含んで成る。用語
“本発明の北米PRRSウィルス”及び同様の用語は、
特にことわらない限り、本明細書に記載される遺伝子的
に修飾された北米PRRSウィルスのいづれか、及び配
列番号1又はそれに対して相同の配列によりコードされ
る修飾されていない北米PRRSウィルスを包含するこ
とが理解されるべきである。
ドする単離されたポリヌクレオチド分子及びトランスフ
ェクトされた宿主細胞、及び機能的北米PRRSビリオ
ンの製造方法:本発明はまた、北米PRRSウィルスに
よりコードされるペプチドをコードする1又は複数のヌ
クレオチド配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチ
ド分子を提供し、ここで前記北米PRRSウィルスのゲ
ノム配列は、配列番号1に対応するRNA分子と同じで
あるか又それに対して相同である。本明細書において使
用される場合、用語“北米PRRSウィルスペプチド”
とは、北米PRRSウィルスにより発現されるペプチド
を意味する。そのようなペプチドは、北米PRRSウィ
ルスに対して特異的であるが、しかし必ずしも必要では
ない。
ィルスペプチドをコードする本発明の単離されたポリヌ
クレオチド分子は、配列番号2,3,4,5,6,7,
8,9、及び前記配列のいづれかに対して相同の配列か
ら独立して選択された配列を含んで成る。そのような単
離されたポリヌクレオチド分子は、プラスミドにおい
て、及び北米PRRSウィルスによりコードされるペプ
チドをコードする1又は複数のヌクレオチド配列を含ん
で成る“ヘルパー”細胞を創造するために適切な宿主細
胞をトランスフェクトするためのウィルスベクターを調
製するために有用であり、ここで前記北米PRRSウィ
ルスのゲノム配列は配列番号1に対応するRNA配列と
同じであるか又はそれに対して相同であり、前記ヘルパ
ー細胞は本発明の遺伝子的に修飾された北米PRRSウ
ィルスの機能的ビリオンの調製において有用であり、前
記ウィルスは、それらがヘルパー細胞によりコードされ
るペプチドをコードする配列をそれらのRNAゲノムか
らミッシングするよう、上記のようにして遺伝子的に修
飾されている。
ルスによりコードされるペプチドをコードする1又は複
数のヌクレオチド配列を含んで成るプラスミド及びウィ
ルスベクターを包含し、ここで前記北米PRRSウィル
スのゲノム配列は配列番号1に対応するRNA配列と同
じであるか、又はそれに対して相同である。本発明のそ
のようなプラスミドは、北米PRRSウィルスをコード
するヌクレオチド配列を含んで成るプラスミドの調製の
ために有用な上記のそれらのプラスミドに基づかれてい
る。本発明のそのようなウィルスベクターは、たとえば
レトロウィルスベクター又はアデノ−関連ウィルスベク
ターに基づかれ得る。それらのプラスミド及びウィルス
ベクターは、前記ヘルパー細胞の調製のために有用であ
る。
なわち北米PRRSウィルスによりコードされるペプチ
ドをコードする1又は複数のヌクレオチド配列を含んで
成るトランスフェクトされた宿主細胞を提供し、ここで
前記北米PRRSウィルスのゲノム配列は配列番号1に
対応するRNA配列と同じであるか又はそれに対して相
同である。好ましい態様においては、そのトランスフェ
クトされた宿主細胞は配列番号2,3,4,5,6,
7,8,9、及び前記配列のいづれかに対して相同の配
列から独立して選択されたヌクレオチド配列を含んで成
る。それらのヘルパー細胞は、遺伝子的に修飾された北
米PRRSウィルスの機能的ビリオンが細胞により生成
され得るように、ヘルパー細胞によりコードされるペプ
チドをコードする配列に欠失する感染性RNA分子を完
全にするためのペプチドを供給するために有用である。
北米PRRSウィルスを発現するために適切である上記
細胞、たとえばブタ肺胞マクロファージ細胞及びMAR
C−145細胞を包含する。しかしながら、実質的にい
づれの哺乳類又は鳥類細胞でも使用され得る。上記で論
ぜられたように、PRRSビリオンによる再感染でき、
そして従って遺伝子的に修飾された機能的北米PRRS
ビリオンの複数世代を生成できるトランスフェクトされ
た宿主細胞を得ることが所望される場合、ブタ肺胞マク
ロファージ細胞及びMARC-145細胞が好ましい。
プチドコード配列を無能にする1又は複数の突然変異を
含んで成る、配列番号1又はそれに対して相同の配列に
対応するRNA配列によりコードされる遺伝子的に修飾
された北米PRRSウィルスの機能的ビリオンを生成す
るための方法を提供し、ここで前記方法は、遺伝子的修
飾された北米PRRSウィルスをコードする、感染性分
子、プラスミド又はウィルスベクターにより前記ヘルパ
ー細胞をトランスフェクトすることを含んで成り、ここ
で前記ヘルパー細胞は遺伝子的に修飾された北米PRR
Sウィルスの無能化されたペプチドコード配列の北米P
RRSウィルスペプチドをコードするヌクレオチド配列
を含んで成る。
ード配列に1又は複数の突然変異を含んで成る、配列番
号1又はそれに対して相同の配列に対応するRNA配列
によりコードされる遺伝子的に修飾された北米PRRS
ウィルスの機能的ビリオンを生成するための方法を提供
し、ここで前記方法は、遺伝子的に修飾された北米PR
RSウィルスをコードする、感染性RNA分子、プラス
ミド又はウィルスベクター、及び修飾された北米PRR
Sウィルスの突然変異誘発されたペプチドコード配列の
北米PRRSウィルスペプチドを細胞において発現する
ヘルパーウィルスの両者により適切な細胞をトランスフ
ェクトし、そしてヘルパーウィルスから遺伝子的に修飾
された北米PRRSビリオンを分離することを含んで成
る。
り、そして発現された北米PRRSウィルスが殺されな
い一定の条件下でヘルパーウィルスを区別する(殺す)
条件的致死ヘルパーウィルスの使用を包含する。他の既
知の分離方法は、ヘルパービリオン及び北米PRRSビ
リオンの両者の発現に続いての物理的分離方法、たとえ
ば密度グラジェント遠心分離を包含する。本発明のこの
方法のための適切な細胞は、PRRSウィルスにより感
染することができる細胞、たとえばブタ肺胞マクロファ
ージ細胞及びMARC-145細胞を包含する。PRRSウィル
スにより感染され得他の細胞は、本明細書において前で
記載されており、たとえばMA-104細胞系、又はそれに由
来する他の細胞系を包含する。ヘルパーウィルスの例
は、PRRSウィルス、好ましくは北米PRRSウィル
ス単離物、たとえばP129である。PRRSペプチド
を発現する、野生型、単離された又は組換えのいづれか
のウィルスがヘルパーウィルスとして使用され得る。
スの機能的ビリオンを生成するための上記方法のいづれ
かにおいて有用な遺伝子的に修飾された北米PRRSウ
ィルスをコードする、感染性RNA分子、プラスミド及
びウィルスベクターは、本明細書に記載されるそれらの
感染性RNA分子、プラスミド及びウィルスベクターで
ある。
ビラレスウィルス及びそれらを含んで成るワクチン:本
発明はさらに、遺伝子的に修飾されたニドビラレスウィ
ルスによりワクチン接種された哺乳類又は鳥において免
疫保護を誘発することができるそれらの遺伝子的に修飾
されたニドビラレスウィルスを提供し、ここで前記遺伝
子的に修飾されたニドビラレスウィルスは、野生型ニド
ビラレスウィルスをコードする感染性RNA分子をコー
ドするDNA配列を含んで成る単離されたポリヌクレオ
チド分子を得、哺乳類又は鳥において野生型ニドビラレ
スによる感染に対して効果的な免疫保護応答を誘発する
ことができる遺伝子的に修飾されたニドビラレスウィル
スをコードする感染性RNA分子をコードするDNA配
列を含んで成る単離されたポリヌクレオチド分子を得る
ために野生型ニドビラレスウィルスをコードする感染性
RNA分子をコードするDNA配列を遺伝子的に突然変
異誘発し、そしてそのようにして得られた、単離された
ポリヌクレオチド分子から前記遺伝子的に修飾されたニ
ドビラレスウィルスを発現することによって調製され
る。
ドビラレスウィルスによりワクチン接種された哺乳類又
は鳥において免疫保護を誘発することができるそれらの
遺伝子的に修飾されたニドビラレスウィルスを調製する
ための方法を提供し、ここで前記方法は野生型ニドビラ
レスウィルスをコードする感染性RNA分子をコードす
るDNA配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチド
分子を得、哺乳類又は鳥において野生型ニドビラレスに
よる感染に対して効果的な免疫保護応答を誘発すること
ができる遺伝子的に修飾されたニドビラレスウィルスを
コードする感染性RNA分子をコードするDNA配列を
含んで成る単離されたポリヌクレオチド分子を得るため
に野生型ニドビラレスウィルスをコードする感染性RN
A分子をコードするDNA配列を遺伝子的に突然変異誘
発し、そしてそのようにして得られた、単離されたポリ
ヌクレオチド分子から前記遺伝子的に修飾されたニドビ
ラレスウィルスを発現することを含んで成る。
RNA分子をコードするDNA配列は、北米PRRSウ
ィルスをコードする、本明細書に記載される配列番号1
と同じか又はそれに対して相同であるDNA配列を包含
する。北米PRRSウィルス以外のニドビラレスウィル
スをコードする感染性RNA分子をコードするDNA配
列は、当業界において知られており、そして既知源、た
とえば上記遺伝子データベースから得られる。
スをコードする感染性RNA分子をコードするいくつか
のDNA配列の他の例は、Meulenberg, J.J.M., など.,
1993 、前記に記載される、欧州PRRSウィルスをコ
ードするDNA配列;van Dinten, L.D., など., 1997,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 94 (3) : 991-6 に記載
される、ウマ動脈炎ウィルスをコードするDNA配列;
及びden Boon, J.A.,など., 1991, J. Virol. 65 (6) :
2910-20 に記載される、ウマ動脈炎ウィルスをコード
するDNA配列を包含する(前記文献は引用により本明
細書中に組込まれる)。本発明の手段により遺伝子的に
修飾され得るニドビラレスウィルスは、コードDNA配
列が得られるいづれかのニドビラレスウィルスであり得
る。ニドビラレスウィルスのいくつかの例は、本明細書
の前のセクションに記載されている。
RNA分子をコードするDNA配列が得られると、ニド
ビラレスウィルスをコードする感染性RNA分子をコー
ドするDNA配列を含んで成る単離されたポリヌクレオ
チド分子、たとえばプラスミドが、上記組換え技法を用
いて合成され得る。
RNA分子をコードする配列は、遺伝子修飾、たとえば
それらにより感染された動物において疾病を引き起こす
無能性、動物において免疫保護応答を誘発することがで
きる異種抗原性エピトープの包含、検出できる異種抗原
性エピトープの包含、及び検出できる抗原性エピトープ
の欠失を含んで成るニドビラレスを得るために、北米P
RRSウィルスについて記載されるようにして遺伝子的
に突然変異誘発され得る。そのような遺伝子修飾は上記
に記載される。遺伝子的に修飾されたニドビラレスウィ
ルスをコードするための遺伝子突然変異は、ニドビラレ
スウィルスをコードする感染性RNA分子をコードする
DNA配列のコード及び/又は非コード領域において生
じ得る。1つの態様においては、1又は複数の遺伝子突
然変異が、ニドビラレスウィルスのウィルスペプチドを
コードするORFにおいて生じる。
明細書において使用される場合、そのゲノムが意図的
に、遺伝子突然変異誘発されていないニドビラレスウィ
ルス、たとえば天然において存在するニドビラレスウィ
ルス及びその単離物を意味する。本発明はさらに、ニド
ビラレスウィルスによる感染から哺乳類又は鳥を保護す
るためのワクチンを提供し、ここで前記ワクチンは、上
記の遺伝子的に修飾されたニドビラレスウィルスを、そ
れによりワクチン接種された哺乳類又は鳥において野生
型ニドビラレスウィルスに対して効果的な免疫保護応答
を誘発するのに効果的な量で、医薬的に又は獣医学的使
用のために許容できるキャリヤーを含んで成る。本発明
のそれらのワクチンは、上記ワクチンを配合するための
技法を用いて配合され得る。次の例は本発明の観点を例
示するに過ぎない。それらは本明細書に記載される本発
明を制限するものではない。
cDNAクローンの調製 PRRSウィルス及びMARC-145細胞の源 :P129と称する
北米PRRSウィルス単離物を、Drs. Gregory W. Stev
enson, William G. Van Alstine,及びCharles L. Kanit
z of Purdne University's Animal Disease Diagnostic
Laboratory in West Lafayette, Indianaから得た。P1
29ウィルスを、重度のPRRS大発生を経験した南イン
ディアナにおけるブタ集団から1995年、秋に最初に
単離した。この農場は、PRRS問題又はPRRSワク
チン接種のこれまでの歴史を有さなかった。
り重度で且つより一貫した呼吸疾患を生成することにお
いて、同じ時期及び地理学的領域からのいくつかの他の
フィールド単離物よりも毒性であった。このウィルスを
最初に、一次ブタ肺胞マクロファージ(天然の宿主細
胞)に基づいて単離し、そして続いて、MARC-145細胞
(Kim, H.S. など., 1993, Arch. Virol. 133 : 477-48
3)に基づいて継代した。P129の構造タンパク質をコード
する遺伝子は、対応する既知の北米PRRS遺伝子配列
に対して相同であることが見出された。
れたMARC-145細胞系は、MA-104 Rhesus Macaqne Monkey
Kidney 細胞系のクローンである。MARC-145細胞をUSDA
のNational Veterinary Servlces Laboratories (NVSL,
Ames, Iowa)から得た。それらの細胞は試験され、そし
てマイコプラズマ及び通常のブタ異質剤に対して陰性で
あることが見出されている。MARC-145細胞を、2%のウ
シ胎児血清及び抗体を含むOpti MEM(Life Technologie
s Inc.) において37℃で通常通りに増殖する。
ストックからプラーク精製し、そしてそれらを P129A〜
P129E と命名した。プラーク精製を、P129ウィルスによ
りMARC-145細胞の単層を感染せしめ、1.25%のSeaP
laque アガロース(FMC BioProducts)、2%ウシ胎児血
清、及び抗生物質を含むOptiMEM のオーバーレイを添加
することによって実施した。5つの十分に単離されたプ
ラークが取られ、そして新鮮なMARC-145単層上で継代さ
れる場合、7日間のインキュベーション後、透明になっ
た。細胞障害効果(ウィルス誘発された細胞の死)が明
らかになったなら、それらの培養物の個々からの子孫ウ
ィルスをプラーク精製にゆだねた。5つのクローンの個
々からの1つの十分に単離されたプラークを取り、そし
て拡張し、大きなストックを生成した。
ンスについて、それぞれ(クローンA及びE)、又は組
合して(クローンB−D又はクローンA−E)、試験し
た。すべての場合、プラーク精製されたウィルスは、ブ
タにおいて十分に複製し、そして臨床学的疾病を引き起
こした。臨床学的徴候の重症度は、すべての5つのクロ
ーンが一緒に使用される場合でさえ、クローン化されて
いないP129ウィルスにより引き起こされるその重症度よ
りも低かった。P129A を配列決定のために選択し、そし
て続く分子操作に使用した。
されたウィルスP129A を、ブタからの10連続的継代
(2つのプラーク精製及び1つの続く継代を包含する)
の後、配列決定のために使用した。配列番号1は、P129
A RNAゲノムに対応するcDNA配列を示す。ゲノム
は、ATGACGTAで開始し、そしてCCGCAATTで終結する、長
さ15,395のヌクレオチドである(ポリアデノシン末端を
除外する)。55個の残基の典型的なポリアデノシン末
端はまた、配列番号1に提供される。
A の構造遺伝子(ORF2〜7)のために、種々のPC
Rプライマーを、公開されたDNA配列データベースGe
nBank から入手できる他の北米PRRSウィルス単離物
(たとえばPRU00153) のいくつかの部分DNA配列に基
づいて選択した。精製されたウィルスRNAを、逆転写
酵素及びランダムヘキサマープライマーを用いてcDN
A中に逆転写した。次に、このcDNAを、遺伝子−特
異的プライマーと共にPCRに使用した。PCR生成物
をゲルから切り出し、そしてT/AをプラスミドpCR2.1
(Invitrogen)中にクローン化した。
スミド(独立したPCR反応からの)を、DNA配列決
定した。配列を、Lasergene パッケージ(DNASTAR, In
c.)からのSeqmanプログラムを用いてアセンブリーし
た。これは、P129A ゲノムの位置11,992〜15,347の配列
の完結を可能にした。また、GenBank データベースにお
いては、PRRSウィルスのいくつかの単離物のORF1b
遺伝子の一部を含んで成る一連の短い配列(合計約21
8個のヌクレオチド)が存在する。それらの1つ(PPSS
EQB)を用いて、次のPCRプライマーを企画した:位置
9063−9080に対応する前方向5'-ACAGTTTGGTGATCTATG-3'
(配列番号10);位置9252−9268に対応する逆方向5'
-CAGATTCAGATGTTCAA-3' (配列番号11)。
配列の171個のヌクレオチドを含み、位置9081〜9251
に対応する206個のヌクレオチドフラグメントを増幅
した。新規前方向プライマーをこの領域内で企画し(5'
-ACCTCGTGCTGTATGCCGAATCTC-3'(配列番号12)、位置
9201−9224)、そして適合するプライマーをORF2のすぐ
上流のORF1b 内で企画した(5'-TCAGGCCTAAAGTTGGTTCAA
TGA-3'(配列番号13)、位置12,027−12,050)。それ
らのプライマーを、P129A ゲノムの位置9201−12,050に
対応する、ORF1b の2850個のヌクレオチドフラグメ
ントを増幅するためにRT-PCRに使用した。
ルド単離物のORF5のRT-PCR増幅の間、予測されるサイズ
よりも小さなマイナーなバンドが見られた。これを配列
決定し、そしてLelystadウィルスのORF1a と限定された
相同性(誤ったプライミングに起因する)を有すること
を見出した。この領域内の次の新規プライマーを選択
し、P129A を増幅した(位置1587−1610に対応する前方
向5'-GATGACTGGGCTACTGACGAGGAT-3'(配列番号14);
位置1877−1897に対応する逆方向5'-AGAGCGGCTGGGATGAC
ACTG-3' (配列番号15)。311個のヌクレオチドの
生成物(位置1611−1876に対応するプライマー間の新規
P129A 配列の266個のヌクレオチド)の他に、701
個のヌクレオチドの大きなマイマーPCR生成物をクロ
ーン化し、そして配列決定した(位置1611−2264に対応
するプライマー間の新規P129A 配列の656個のヌクレ
オチド)。より大きなバンドは、位置2265−2269での逆
方向プライマーの誤ったプライミングに起因する。
ット(Life Technologies Inc.) を用いて、5'RACE(c
DNA末端の急速な増幅)により決定した。次の2種の
逆方向プライマーを、既知のORF1の配列内から選択
した:“RACE2 ”5'-CCGGGGAAGCCAGACGATTGAA-3'(配列
番号16)、位置1917−1938;及び“RACE3 ”5'-AGGGG
GAGCAAAGAAGGGGTCATC-3'(配列番号17)、位置1733−
1756)。RACE2 を用いて、cDNA合成をプライムし、
そしてRACE3 をPCRに使用した。その得られるPCR
生成物をクローン化し、そして配列決定した。2種の最
長生成物は、正確に同じ塩基(配列番号1における位置
1)で終結した。
大きなギャップは、長いRT-PCRを用いて架橋された。次
の2種の新規プライマーを用いた:前方向5'-AGCACGCTC
TGGTGCAACTG-3'(配列番号18)、位置1361−1380;逆
方向5'-GCCGCGGCGTAGTATTCAG-3' (配列番号19)、位
置9420−9438)。得られる8078のヌクレオチドRT-PCR生
成物をクローン化し、そして配列決定した。
RNAの3’及び5’末端を一緒に連結し、そして連結
フラグメントを増幅するためにRT-PCRを用いることによ
って決定した。得られる連結フラグメントをクローン化
し、そして配列決定した。手短に言及すると、ペレット
化されたビリオンから抽出されたRNAを、タバコ酸ピ
ロホスファターゼにより処理し(5’キャップ構造体を
除去するために)、次にT4 RNAリガーゼにより自
己連結せしめた(両者ともEpicentre Technologiesから
である)。使用されるプライマーは次のものであった:
5'-CGCGTCACAGCATCACCCTCAG-3'(配列番号20)(前方
向、位置15,218−15,239)、及び5'-CGGTAGGTTGGTTAACA
CATGAGTT-3' (配列番号21)(逆方向、位置656−
680)又は5'-TGGCTCTTCGGGCCTATAAAATA-3' (配列番
号22)(逆方向、位置337−359)のいづれか。
末端で切断した(最とも完全なものは、5’RACEに
より示されるように、実際の5’末端の57個のヌクレ
オチド内に達する)。しかしながら、2種のそれらのク
ローンは、ポリアデノシン末端(長さ42及び55のア
デノシン残基)を包含するゲノムの完全な3’末端を含
んだ。これは、配列番号1に示されるように、ポリA末
端を包含する、PRRS単離物P129A のcDNA 15,4
50個の塩基のゲノムの配列決定を完結した。
ーンの創造:pT7P129Aと称する、P129A の十分な長さの
感染性cDNAクローンを、4種のオーバーラップする
クローン化されたRT-PCR生成物からアセンブルした。4
種のRT-PCR生成物をまず、プラスミドpCR2.1中にT/A
クローン化し、そしてE.コリ株DH5-α中にトランスフ
ェクトした。細菌コロニーをスクリーンし、そして“T
7→M13”配向において予測されるサイズの挿入体を
含むそれらを、配列決定及び追加の操作のために選択し
た。
物は、1又は複数の非サイレント突然変異(コードされ
たORFのアミノ酸配列の変化をもたらす配列番号1の
P129A のためのコンセンサスヌクレオチド配列からの偏
差)を含んだ。それらの非サイレント突然変異(ORF
2における位置12,622で1つを除いて)を、他のクロー
ン化されRT-PCR生成物からのフラグメントをサブクロー
ニングすることによって修復した。それらの4種の修復
されたサブゲノムクローンを、段階的に、利用できる制
限部位を用いて、十分な長さのクローン中にアセンブル
した(図1を参照のこと)。pT7P129AにおけるP129A ゲ
ノムに対応するcDNAの5’及び3’末端を、T7プ
ロモーター及び適切な制限エンドヌクレアーゼ部位の付
加により修飾した。pT7P129Aの構成は、次に、より詳細
に記載されている。
してpCR2.1中にクローン化されるゲノム(位置1−175
6)の5’末端を、P129A ゲノムに対応するcDNAの
すぐ上流のT7プロモーター、及び後でのクローニング
のためのPacI部位を含むよう修飾した。3−手段連
結を、このプラスミドの1216bpのDsuI−BseR1 フラグメ
ント(P129A の塩基27−1242を含む)、同じプラスミ
ドの4407bpの BseRI−XbaIフラグメント(P129A の塩基
1243−1756、及びXbaI部位までの全プラスミドベクター
を含む)、及び次の合成二本鎖アダプター(配列番号2
3及び24)を用いて実施した:
は、ウィルスゲノムの最初の“A”のすぐ上流のプロモ
ーターからの単一の“G”残基を含む。位置1230で非サ
イレント突然変異(A→G)を、906bp の AatII−SacI
I フラグメント(塩基 740−1645)を、もう1つのクロ
ーンの同じフラグメントにより置換することによって修
飾した。このプラスミドを、“pT7R3A-Z”として命名し
た。
を用いて、P129A ゲノムの塩基1361−9438をカバーし
た。58bpの欠失(位置2535−2592)、及び7つの非サ
イレント点突然変異を、他のクローン化されたRT-PCR生
成物からのフラグメントをサブクローニングすることに
より訂正し、プラスミド”pGAP10B-4 ”を生成した。こ
のプラスミドからの7837bpのBsu361−SpeIフラグメント
を、pT7R3A-2からの5482bpのBsu361-SpeI フラグメント
に連結した。その得られるプラスミド“pT7RG ”は、T
7プロモーターの後ろに、P129A ゲノムの最初の9438個
の塩基を含む。
メント(ゲノム位置9201−12,050)を訂正し、非サイレ
ント突然変異を修飾し、そして“p1B3A-2 ”として命名
した。このプラスミドの2682bpのNdeI−SpeIフラグメン
トを、pT7RG の13,249bpのNdeI−SpeIフラグメントに連
結し、P129A ゲノムの最初の12,050個の塩基を含むプラ
スミド“pT71A1B ”を生成した。
は、3’非翻訳領域及びポリA末端の一部を含む、OR
F2〜7のRT-PCRにより誘導された。前方向プライマー
は、5'-ACTCAGTCTAAGTGCTGGAAAGTTATG-3' (配列番号2
5)(位置11,504−11,530)であり、そして逆方向プラ
イマーは、5'-GGGATTTAAATATGCATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTT
AATTGCGGCCGCATGGTTCTCG-3' (配列番号26)であっ
た。逆方向プライマーは、P129A ゲノムの最後の22個
の塩基(位置15,374−15,395)、21個の塩基のポリA
末端、NsiI部位(ATGCAT) 及びSwaI部位(ATTTAAAT) を
含む。非サイレント点突然変異及び単一の塩基欠失は、
他のクローンからのフラグメントをサブクローニングす
ることによって修飾された。位置12,622での追加の非サ
イレント点突然変異(A→G)を、この段階で、非意図
的に導入した。
くでグルタミンからアルギニンへの変化をもたらす(オ
ーバーラップするORF3に影響を及ぼさない、ORF
2における256個のアミノ酸のアミノ酸残基18
9)。この突然変異は、細胞培養物において又はブタに
おいて、ウィルス増殖に対して明白な影響を有さず、そ
して修飾されなかった。この突然変異は、cDNAクロ
ーンに由来するウィルスと、親P129A 又は他のPRRS
ウィルスによる可能性ある汚染とを区別するための遺伝
子マーカーとして作用した。このプラスミドは、“p2-7
D-4 ”として命名された。P129A の構造遺伝子を、pT71
A1B の16,635bpのEco47III−SpeIフラグメントに、p2-7
D-4 の3678bpのEco47III−SpeIフラグメントを連結する
ことによって、ゲノムの残りに付加した。
SwaI)間のpCR2.1ベクター中にクローン化された、T7
プロモーターの後のP129A の全ゲノム(しかしながら、
55個の塩基のポリA末端と対照的にわずか21個の塩
基のポリA末端を有する)に対してほとんど同一的に対
応するcDNAを含んで成る最終構造体“pT7P129A”を
生成する。pT7P129Aの合計の長さは、19,313bpであり、
そしてそれはE.コリ株DH5-αにおいて安定する。
りコードされるような)よりもむしろORF2の位置1
89でのアルギニンをもたらす位置12,622でのA→G非
サイレント点突然変異、及び位置1559でのサイレン
トC→T突然変異を含む。それらの突然変異のいづれ
も、細胞培養物及びブタの両者において試験された条件
下でのウィルス増殖に影響を及ぼさなかった。たとえ
ば、pT7P129Aは、インビトロ転写のために使用され、そ
してその得られるRNA転写体は、MARC-145細胞中にト
ランスフェクトされる場合、生存北米PRRSウィルス
を生成し、従って、この十分な長さのクローンが感染性
であることを示す。
スフェクション:プラスミドpT7P129Aにおいては、ウィ
ルスゲノムの上流にタンデムに2種のT7プロモーター
が存在する。それらの1つは、ウィルスゲノムのすぐ上
流に位置し、そして上記のようにしてPCRプライマー
中に構築された。他の1つは、pCR2.1クローニン
グベクターに存在し、そして複数のクローニング部位の
外側に位置する(ウィルスゲノムの44塩基上流で転写
を開始する)。
それらのT7プロモーター間を切断し、真のウィルスR
NAにより接近した転写体を生成した(遠位T7プロモ
ーターからの44個の特別な塩基に対立するものとし
て、ウィルスゲノムのすぐ上流の単一の特別な塩基)。
さらに、pT7P129Aを、インビトロ転写の前、SwaIに
より切断した。その得られる転写体は、21個の塩基の
長さのポリA末端及び9個の非−PRRSヌクレオチ
ド、たとえばNsiI部位(その部位はまた、ウィルスゲノ
ムにおいて1度、生じているので、プラスミドを線状化
するために使用されなかった)を包含する。消化された
プラスミドを、使用の前、フェノール抽出及びエタノー
ル沈殿により精製した。
r Mannheim) を、インビトロ転写のために使用した。約
0.6μgのPacI/SwaI消化されたpT7P129Aを含む上記
からのDNAペレットを、20μlのT7 Cap-Scribe 緩
衝液/T7ポリメラーゼに再懸濁し、そして37℃で3
0分間インキュベートした。反応の一部を、アガロース
ゲル電気泳動により分析し、そして15,445bp及び3868bp
の予測されるDNAバンドの他に、十分な長さのRNA
転写体を含むことを示した。このインビトロ転写反応
は、精製しないで、インキュベーションに続いてすぐに
新たに使用された。
清を含まない)により1度洗浄し、そして500μg/
mlのDEAEデキストラン(約500,000 の分子量、Phar
macia Biotech)を含むOptiMEM (血清を含まない)1ml
(35mmのウェル当たり)により被覆した。インビトロ
転写反応物(15ml)をすぐに添加した。37℃で1時
間後、トランスフェクション混合物を除去し、単層細胞
をPBSにより1度、洗浄し、そして2%ウシ胎児血清
及び抗生物質を含むOptiMEM 中1.25%のSeaPlaque
アガロース(FMC Corporation)により被覆した。37℃
で5日後、単一のプラークが認識できた。このウィルス
を“rP129A-1”として命名し、そしてMARC-145細胞上で
拡張し、そして細胞培養物及びブタにおいて特徴づけ
た。DEAEデキストラン及びエレクトロポレーション
の両者を用いての、pT7P129Aからのインビトロ転写され
たRNAの続くトランスフェクションは、多くの追加の
プラークを生成した。
NA−由来の組換えウィルスrP129A-1とその非組換え親
P129A との間で、増殖運動学、収率又はプラーク形態学
における明らかな差異は存在しない。上記で論ぜられた
ように、pT7P129Aのコード配列とP129A のコンセンサス
配列(配列番号1に示される)との間でヌクレオチド配
列における2つの差異が存在する。最初に、位置1559
で、pT7P129AはTを含み、そしてP129A はCを含む(こ
れはサイレント突然変異である)。
み、そしてP129A はAを含む(これは、上記ORF2に
おけるグルタミンからアルギニンへの変化である)。rP
129A-1が実際、非組換えPRRSウィルス汚染物である
可能性を除外するために、RT-PCR及び配列決定を、それ
らの2つの差異を取り囲む領域に対して実施した。両遺
伝子マーカーの場合、rP129A-1は、プラスミドpT7P129A
と同一であり、そして親ウィルスP129A とは異なってお
り、従って、rP129A-1が感染性cDNAクローンに由来
することを確かめた。
性決定:cDNA−由来のウィルスrP129A-1を、若いブ
タにおいて臨床学的疾病を引き起こすその能力につい
て、その非組換え親P129A と比較した。PRRS−陰性
群からのそれぞれ10匹のブタの3つのグループを、生
後4週目で、P129A 又はrP129A-1により感染せしめ、又
は細胞培養培地により凝似−感染せしめた。臨床学的徴
候、腸温度及び体重をモニターした。血液を、血清ウィ
ルス血症(MARC-145細胞に対するプラークアッセイ、図
2)及び血清抗体(IDEXX からのHerdChek PRRS を用い
てのELISA による、図3)の決定のために、感染後、
0,2,6,10、及び13日で採血した。肺の全体の
及び顕微鏡的病変が検死に基づいて観察された。2種の
ウィルス感染されたグループ間で有意な差異は存在せ
ず、このことは、rP129A-1がブタにおいて複製し、そし
てその非組換え親ウィルスに定量的及び定性的に類似す
る臨床学的疾病を引き起こすことを示す。
(ヌクレオカプシド遺伝子)の欠失;負に標識された複
製−欠失ワクチンのそれによる調製 ウィルスヌクレオカプシド遺伝子(ORF7)を、本発明の
PRRSウィルスの感染性cDNAから部分的に欠失せ
しめた。その得られる修飾された組換えPRRSウィルス
は、ブタにおいて複製−欠失することが予測される。こ
の修飾された組換えPRRSウィルスは、臨床学的疾
病、ワクチン接種されていない動物への広がり、又は弱
毒化された生存ワクチンに関連する毒性への転換の危険
性を伴わないで、他のPRRSウィルスタンパク質に対
する免疫応答を誘発するためのワクチンとして使用され
得る。
ンウィルスはまた、ワクチンウィルスに対する抗体の存
在においてさえ、PRRSウィルスのフィールド単離物
への暴露の血清学的決定を可能にする点において、“負
に標識される”。ORF7タンパク質に対する抗体は通常、
PRRSウィルス感染されたブタの血清に見出される
が、ところがORF7−欠失されたPRRSV によりワクチン接
種されたブタはORF7タンパク質に対する抗体を欠いてい
る。
ようにして達成された:プラスミドp2-7D-4 (図1を参
照のこと)を、ORF7の上流及び下流の5’及び3’フラ
ンキング領域を増幅するためにPCRにおいて鋳型とし
て使用した。前記上流フランキング前方向プライマー
(5'-ATTAGATCTTGCCACCATGGTGGGGAAATGCTTGAC-3'(配列
番号27)(ORF5の開始近くのゲノム位置13,776−13,7
91に結合し、そして現クローニングに無関係である追加
の反応部位を含む)、及び上流フランキング逆方向プラ
イマー5'-CTTTACGCGTTTGCTTAAGTTATTTGGCGTATTTGACAAGG
TTTAC-3'(配列番号28)(ORF6及び7の連結部でゲノ
ム位置14,857−14,902に結合する)は、1147bpのフラグ
メントを増幅した。逆方向プライマーは、MluI及びAflI
I 部位及び位置14,874での単一の塩基変化を導入し、こ
の変化は、オーバーラップするORF6にコードされる
チロシンを変更しないでORF7のためのATG開始コドン
を破壊する。
イマー5'-CAACACGCGTCAGCAAAAGAAAAAGAAGGGG-3' (配列
番号29)(MluI部位を導入された、ORF7の5’末端近
くの位置14,884−14,914)及び逆方向プライマー5'-GCG
CGTTGGCCGATTCATTA-3'(配列番号30)(pCR2.1プラス
ミドにおけるウィルスゲノムの下流)は、462bpのフ
ラグメントを増幅した。3−手段連結を、上流フランキ
ングPCR生成物の611bpのBstEII−MluIフラグメン
ト、下流フランキングPCR生成物の575bpのMluI−
SpeIフラグメント、及びプラスミドp2-7D delta7+7023
からの6653bpのBstEII−SpeIフラグメントを用いて実施
した(すべてのフラグメントは、消化に続いて、ゲル精
製された)。得られるプラスミドp2-7D delta7+7023
は、ORF7の始めの7個のアミノ酸を欠失され、そして機
能的ATG開始コドンを欠く。ウィルスゲノム及びプラ
スミド主鎖において不在である2つの新規制限部位AflI
I 及びMluIが、ORF7の5’末端によりこれまで支配され
ていた空間中への外来性遺伝子の直接的なクローニング
を促進するために挿入されている。
化が、p2-7D delta7+7023 の3683bpのEco47III−SpeIフ
ラグメントとpCMV-S-p129 の15,214bpのEco47III−SpeI
フラグメントとを連結することによって、十分な長さの
ゲノムクローン中に組込まれた。その得られるプラスミ
ドpCMV-S-p129delta7+7023が、細胞をトランスフェクト
するために使用された。
必須であるので、ORF7−欠失PRRSウィルスの生成及
び複製を可能にするために、このタンパク質を供給する
ことが必要である。これは、たとえばヘルパーウィルス
又は相補的細胞系を用いて達成され得る。ORF7−発現MA
RC-145細胞系は、P129A からのORF7遺伝子及びネオマイ
シン耐性遺伝子の両者を含むプラスミドにより細胞を安
定してトランスフェクトすることによって創造され得
た。抗生物質G418を用いてネオマイシン耐性について選
択した後、単一細胞コロニーを拡張し、そして特徴づけ
た。免疫螢光及びRT-PCRの両者によるORF7発現のために
陽性であるクローンMARC-145−由来の細胞系を、ORF7−
欠失P129A ウィルスを生成するために、pT7P129delta7
からのRNAによりトランスフェクトした。
(ORF 2,3,4,5又は6)を欠いているか、又は非
構造遺伝子1a及び1bのすべて又は一部を欠いている
PRRSウィルスを生成することができる。さらに、複
数の欠失を単一のPRRSウィルス中に構築し、そして
それらを、すべての必要な機能を提供する相補的細胞に
おいて増殖することができる。そのような遺伝子−欠失
PRRSウィルスはたぶん、ブタにおいて、部分的に又
は完全に弱毒化され、PRRSに対するワクチンとして
それを有用にする。それらはまた、上記で論ぜられたよ
うに、及び/又は他のブタ病原体のエピトープにより動
物にワクチン接種するためのワクチンとして、ワクチン
接種された動物と野生型PRRSウィルスにより感染さ
れた動物とを区別するために使用され得る(下記例III
を参照のこと)。
の異種遺伝子の挿入;ベクターとしてのPRRSウィル
スの使用、及び正しく標識された北米PRRSウィルス 上記例IIにおいては、AflII 及びMluI制限酵素部位が、
ORF7の5’末端によりこれまで支配されている領域中に
挿入された。それらの部位は、P129A ゲノムにおいて、
及びpCR2.1及びpCMVプラスミドにおいて不在であり、そ
して発現のためにウィルスゲノム中への外来性(異種)
遺伝子の直接的なクローニングに使用され得る。位置1
4,744−14,749(ATAACC) 及び14,858−14,863(TAAACC)
でのORF7サブゲノムRNAの転写のための可能性ある
リーダー連結部位は、ORF7コード肺胞の欠失により影響
されず、そして外来性遺伝子の転写において機能するこ
とができる。
ィルス単離物又は遺伝子型からの遺伝子、及び/又は他
の非PRRS病原体、すなわちブタを感染する病原体又
はブタ以外の哺乳類又は鳥を感染する病原体のいづれか
からの遺伝子を含むことができる。さらに、それらの外
来性遺伝子(又はその一部)は、ブタにおいて通常、見
出されない抗原性エピトープを供給することができる。
そのようなエピトープは、ワクチンを“陽性標識する”
ために使用され得、その結果、好結果のワクチン接種
が、PRRSウィルスのフィールド又は従来のワクチン
株に対する抗体の存在下でさえ、血清学的にモニターさ
れ得る。正のマーカーは、別の発現カセットを必要とし
ない。抗原性エピトープは、PRRSウィルスの構造遺
伝子に融合され得る。たとえば、上記例Iに記載される
上流フランキング逆方向プライマーは、ORF6膜タン
パク質への非PRRSウィルス抗原エピトープのカルボ
キシル−末端融合を付加するような手段で拡張され得
る。ブタにおいてのこのエピトープに対する抗体の存在
は、好結果のワクチン接種を示す。
スフェクションによるPRRSウィルスの細胞性発現 真核発現ベクターpCMV-MC1(配列番号31)は、NotI,
EcoRV, AvrII, BglII,ClaI, KpnI, PacI, NheI, SwaI,
SmaI, SpeI 及びNotI部位を含むリンカーにより、2つ
のNotI部位間のLacZコード配列を置換することによっ
て、市販のプラスミドpCMVbeta (Clontech) から誘導さ
れた。ヒトCMV即時初期プロモーターの修飾を、SacI
とpCMV-MC1の第2NotI部位との間の配列を合成リンカー
(下記に示される)により置換することによって達成し
た。
cIのための半分の部位、及びNotIのための半分の部
位を含む。2本の一本鎖オリゴヌクレオチドのアニーリ
ングの後、リンカーを、SacIとNotI部位との間のpCMV-M
C1中にクローン化し、そして選択されたクローンをpCMV
-S1 として命名した。pCMV-S1 のSpeI部位は、たぶん、
オリゴ配列における誤りのために、切断されなかった。
従って、pCMV-S1 におけるPacIとHindIII との間のフラ
グメントを、pCMV-MC1からのPacI(位置877での)−
HindIII (位置1162での)フラグメントにより置換し
た。従って、SpeI部位が再び得られた。この最終構造体
(pCMV-S) を用いて、十分な長さのP129ゲノムをクロー
ン化した。
修飾し、適切なスペーシング及び便利な制限酵素部位
(PacI)を含むようにした。これは、pT7P129 からの増
幅のための適切なPCRプライマー(配列番号34及び
35)を消化することによって行なわれた。PacI及びAa
tII による消化の後、このPCRフラグメントを、pT7R
G のPacI及びAatII 部位中にサブクローン化した(図
1)。得られるプラスミドをpT7RG-deltaT7 と命名し
た。
ltaT7 からのウィルス配列をpT7P129 中にサブクローニ
ングし、pT7P129-deltaT7 を創造することによって完結
した。十分な長さのP129ゲノムをPacI及びSpeIでpT7P12
9-deltaT7 から消化し、そしてPacI及びSpeI部位で、pC
MV-S中にトランスファーした。この構造体を、pCMV-S-P
129 と命名した。pCMV-S-P129 におけるCMVプロモー
ターTATAボックスとP129配列の5’末端との間の修飾の
領域の配列は、配列番号36で示され、そして下記に図
的に示される:
するためのCMVプロモーターの使用を試験するため
に、pCMV-S-P129 プラスミドDNA(0.5又は1.0
μg)を、 LipofectamineTM(Life Technologies In
c.) を用いて、リポフェクションによりMARC-145細胞中
にトランスフェクトした。PRRSウィルス特異的細胞
障害効果を、トランスフェクションの後に観察し、そし
てPRRSウィルス抗原の存在を免疫螢光抗体試験によ
り決定した。
的に生成し、そしてその子孫ウィルスを、MARC-145細胞
上で継代した。これは、PRRSウィルス感染が、イン
ビトロ転写段階を伴わないで、PRRSウィルスをコー
ドするプラスミドcDNAから直接的に開始され得るこ
とを示す。さらに、pCMV-S-P129 は、pCMVプロモーター
の3’末端が北米PRRSウィルスをコードする配列の
開始の直前に存在しないプラスミドに比較して、多量の
子孫ウィルスを生成した。
欠失;それによる複製−欠失ワクチンの調製 膜糖タンパク質をコードする、ORF4のための遺伝子の一
部を、本発明のPRRSウィルスの感染性cDNAクロ
ーンから欠失せしめた。その得られる修飾された組換え
PRRSウィルスは、ブタにおいて複製−欠失性であ
り、そして臨床学的疾病、ワクチン接種されていない動
物への広がり、又は弱毒化された生存ワクチンに関連す
る毒性への転換の危険性を伴わないで、他のPRRSウ
ィルスタンパク質に対する免疫応答を誘発することが予
測される。
ようにして達成された:プラスミドp2-7D-4 (図1を参
照のこと)を、ORF4の上流及び下流の5’及び3’フラ
ンキング領域を増幅するためにPCRにおいて鋳型とし
て使用した。前記上流フランキング前方向プライマー
は、AGGTCGACGGCGGCAATTGGTTTCACCTAGAGTGGCTGCGTCCCTT
CT-3' (配列番号37)であった。このプライマーは、
ORF4の開始近くの位置 13194−13241 でゲノムに結合
し、そしてORF3のオーバーラップするアミノ酸配列を変
更しないで、ORF4のATG開始コドンを破壊する突然変
異を位置13225 で導入する。
は、5'-TCTTAAGCATTGGCTGTGATGGTGATATAC-3'(配列番号
38)であった。このプライマーは、ORF3の下流のORF4
コード領域内の位置 13455−13477 でゲノムに結合し、
そしてAflII 部位を導入する。下流フランキング領域に
関しては、前方向プライマーは、5'-CTTCTTAAGTCCACGCG
TTTTCTTCTTGCCTTTTCTATGCTTCT-3'(配列番号39)であ
った。このプライマーは、ORF4の中間において位置 135
20−13545 でゲノムに結合し、そして外来性遺伝子の直
接的なクローニングのためのAflII 及びMluI部位を導入
する。逆方向プライマーは、5'-TGCCCGGTCCCTTGCCTCT3'
(配列番号40)であった。このプライマーは、ORF
7コード配列において位置 14981−14999 でゲノムに結
合する。
生成物のSalI−AflII フラグメント、下流フランキング
PCR生成物の AflII−BstEIIフラグメント、及びプラ
スミドp2-7D-4 からのSalI−BstEIIフラグメントを用い
て実施した。その得られるp2-7D-4delta4Nは、欠失され
たORF4の中央部分の42個の塩基を有し、そして15個
の人工的クローニング部位により置換した。前記クロー
ニング部位は、ウィルスゲノム及びプラスミド主鎖の両
者を欠いている2つの制限部位(AflII 及びMluI)を含
む。それらは、ORF4によりこれまで支配されていた空間
中への外来性遺伝子の直接的なクローニングを促進する
ために使用され得る。クローニング部位はまた、ORF4と
オープンリーディングフレームを整合して存在し、そし
て機能的ORF4タンパク質が生成されないことを確実にす
る停止コドン(TAA)を含む。
のORF5エンベロープ遺伝子の発現を妨げないで行なわれ
得ることが見出された。この場合、より短い下流のフラ
ンキング領域が、同じ鋳型及び逆方向プライマー、及び
逆方向プライマー5'-GTTTACGCGTCGCTCCTTGGTGGTCG-3'
(配列番号41)を用いて、PCRにより増幅した。こ
のプライマーは、ORF4の3’末端近くの位置 13654−13
669 でゲノムに結合し、そしてAflII 部位を含む。下流
フランキングPCR生成物の AflII−BstEIIフラグメン
トとプラスミドp2-7D-4delta4Nからの AflII−BstEIIフ
ラグメントとの間の2−手段連結は、新規プラスミドp2
-7D-4delta4NS を生成した。このプラスミドは、欠失さ
れ、そして15個の塩基のクローニング部位により置換
されたORF4クローニング配列の176個の塩基を有す
る。
て行なわれた変化は、p2-7D-4delta4N及びp2-7D-4delta
4NS からの修飾された BsrGI−SpeIフラグメントによ
り、pCMV-S-P129 からの BsrGI−SpeIフラグメントを置
換することによって、十分な長さのゲノムクローン中に
組込まれた。その得られるプラスミドpCMV-S-P129delta
4N及びpCMV-S-P129delta4NS は、細胞をトランスフェク
トするために使用された。
-S-P129delta4N又はpCMV-S-P129delta4NS によるMARC-1
45細胞の感染はウィルスプラーク又は螢光集中をもたら
さなかった。個々のトランスフェクトされた細胞は、OR
F7ヌクレオカプシドタンパク質を生成することが見出さ
れており、このことは、ORF4生成物がウィルス遺伝子の
RNA複製又は発現のために必要とされないが、しかし
感染性子孫ウィルスの開放のためには必須であることを
示唆する。ORF4の欠失はウィルス複製に対して致死的で
あるので、このタンパク質を供給する必要はない。これ
は、相補的細胞系を用いることによって達成され得る。
伝子の両者を含むプラスミドにより細胞を安定してトラ
ンスフェクトすることによって、ORF4−発現MARC-145細
胞系を創造した。抗生物質G418を用いてのネオマイシン
耐性に対する選択の後、単一の細胞コロニーを拡張し、
そして特徴づけた。pCMV-S-P129delta4NS による感染の
後、3種のORF4−発現細胞クローンは、それらの細胞に
おいて増殖するが、しかしMARC-145細胞においては増殖
しない生存ウィルスを生成した。それらの1つであるMA
RC400E9 をさらに特徴づけた。プラスミドpCMV-S-P129d
elta4NS によりトランスフェクトされたMARC400E9 細胞
におけるウィルスヌクレオカプシドについての免疫螢光
染色は、陽性であった。
ーとしての遺伝子−欠失されたPRRSウィルスの使用 異種遺伝子が遺伝子−欠失されたPRRSウィルスから
発現され得るかどうかを決定するために、本発明者は、
プラスミドpCMV-S-P129delta4NにおけるORF4欠失の部位
中に緑色螢光タンパク質(GFP)のコピーを挿入し
た。GFP遺伝子を、前記遺伝子の5’末端でAflII 部
位及び前記遺伝子の3’末端でMluI部位を導入されたP
CRプライマーを用いて、市販のプラスミドから増幅し
た。得られるプラスミドpCMV-S-P129delta4N-GFPを用い
て、MARC-145及びMARC400E9 細胞をトランスフェクトし
た。
欠失ウィルスの複製を支持しなかった。一次トランスフ
ェクションに起因する単一緑色細胞をUV範囲下で観察
し、GFPが発現されたが、しかしウィルスは隣接する
細胞には広がらず、そしてCPEは観察されなかったこ
とが示された。対照的に、高い緑色集中が、トランスフ
ェクトされたMARC400E9 細胞に観察された。単層細胞を
破壊する目に見えるプラークが形成し、そして出現し
た。それらの結果は、外来性遺伝子がORF4−欠失PRR
Sウィルスから発現され、そして692個の塩基(4.
5%)によるウィルスゲノムのサイズの上昇が感染性粒
子中へのウィルスRNAのパッケージングを妨げないこ
とを示す。
ターとしての遺伝子−コンピテントPRRSウィルスの
使用 異種遺伝子が複製−コンピテントPRRSウィルスから
発現され得るかどうかを決定するために、本発明者は、
ORF1b とORF2との間の領域中にGFPのコピーを挿入し
た。ORF2のためのリーダー/連結(L/J)配列はORF1
b 内に存在するので、このL/J配列を用いて、GFP
遺伝子の発現を駆動し、そしてORF6 L/J配列のコピー
を、ORF2の発現を駆動するためにGFPから下流に挿入
した。
を、挿入部位の上流及び下流の5’及び3’フランキン
グ領域を増幅するためにPCRにおいて鋳型として使用
した。上流のフランキング前方向プライマーは、5'-AAC
AGAAGAGTTGTCGGGTCCAC-3' (配列番号42)であった。
このプライマーは、ORF1b において位置 11699−11721
でゲノムに結合する。上流のフランキング逆方向プライ
マーは、5'-GCTTTGACGCGTCCCCACTTAAGTTCAATTCAGGCCTAA
AGTTGGTTCA-3' (配列番号43)であった。このプライ
マーは、ORF1b において位置 12031−12055 でゲノムに
結合し、そしてORF1b とORF2との間に、外来性遺伝子の
直接的なクローニングのためのAflII 及びMluI部位を付
加する。
5'-GCGACGCGTGTTCCGTGGCAACCCCTTTAACCAGAGTTTCAGCGGAA
CAATGAAATGGGGTCTATACAAAGCCTCTTCGACA-3'(配列番号4
4)であった。このプライマーは、ORF2において位置 1
2056−12089 でゲノムに結合し、そしてMluI部位、続い
て、ORF6の開始の先に存在する40個の塩基(ORF6 L/J
配列を含む)を含む。下流のフランキング逆方向プライ
マーは、5'-AACAGAACGGCACGATACACCACAAA-3'(配列番号
45)であった。このプライマーは、ORF5における
位置 13819−13844 でのゲノムに結合する。
R生成物のEco47III−MluIフラグメント、下流のフラン
キングPCR生成物からのMluI−BsrGI フラグメント、
及びpCMV-S-P129 からのEco47III−BsrGI フラグメント
を用いて実施した。その得られるプラスミドpCMV-S-P12
9-1bMCS2は、クローニング部位、及びORF1b とORF2との
間の追加のL/J部位と共に完全なP129ゲノムを含む。
このプラスミドは、MARC-145細胞中にトランスフェクト
される場合、機能的に正常なウィルスを生成する。
前記遺伝子の5’末端にAflII 部位を、3’末端にMluI
部位を付加するプライマーを用いてPCR増幅した。Af
lII及びMluIによるPCRフラグメント及びPCMV-SP129-
1bMCS2 の消化の後、その挿入体をベクター中に連結
し、プラスミドpCMV-SP129-1bMCS2 を生成した。このプ
ラスミドは、MARC-145細胞中にトランスフェクトされる
場合、緑色プラークを生成した。得られるウィルスをMA
RC-145細胞上で継代し、そしてUV範囲下で観察される
場合、緑色プラークを生成し続けた。従って、外来性遺
伝子は、複製−コンピテントPRRSウィルスベクター
から発現され得る。P129-1bGFP2 ウィルスは、そのP129
親のゲノムよりも774塩基(5%)長いが、まだ通常
通りパッケージされるゲノムを含む。
University Blvd., Manassas, Virginia, 20110−2209
にあるAmerican Type Culture Collection (ATCC) に寄
託され、そして次の受託番号が割り当てられた:プラスミド 受託番号 プラスミドpT7P129A 203488 プラスミドpCMV-S-P129 203489 上記に引用されたすべての特許、特許出願及び出版物
は、引用により本明細書中に組込まれる。本発明は、本
発明の個々の観点の単一の例示として意図される、本明
細書に記載される特定の態様により発明の範囲を限定さ
れず、そして機能的に同等の方法及び成分は、本発明の
範囲内にある。実際、本明細書に示され、そして記載さ
れている修飾の他に、本発明の種々の修飾は当業者に明
らかである。そのような修飾は、本発明の範囲内にあ
る。
感染性cDNAクローン、pT7P129Aの構成のためのクロ
ーニング手段を示す。矢じりはT7プロモーター配列を
示す。
rP129A-1による感染に続く血清性ウィルス血症を示す。
MARC-145細胞に対するプラークアッセイにより決定され
た。検出の下限は、5 pfu/ml(又は対数尺度に基づい
て0.7)である。
のP129A-1 による感染に続いての抗−PRRSウィルス
血清抗体を示す。これは、HerdChek PRRS ELISA アッセ
イ(IDEXX (Westbrook, Maine, USA))により決定され
た。
Claims (17)
- 【請求項1】 ブタ動物に感染した場合に、その動物に
おいてPRRSを生成することができないように遺伝子
的に修飾されている北米PRRSウィルスをコードする
感染性RNA分子をコードする、配列番号1又はそれに
対して相同であるが、但しPRRSを生成するその能力
において前記コードされたPRRSウィルスを遺伝子的
に無能にする1又は複数の突然変異を含むDNA配列を
含んで成る、単離されたポリヌクレオチド分子。 - 【請求項2】 ブタ動物に感染した場合に、その動物に
おいてPRRSを生成することができないように遺伝子
的に修飾されている北米PRRSウィルスをコードする
感染性RNA分子をコードする、配列番号1又はそれに
対して相同であるが、但しPRRSを生成するその能力
において前記コードされたPRRSウィルスを遺伝子的
に無能にする1又は複数の突然変異を含むDNA配列を
含んで成る、前記コードされた遺伝子的に修飾された北
米PRRSウィルスを発現することができるトランスフ
ェクトされた宿主細胞。 - 【請求項3】 PRRSウィルスによる感染からブタ動
物を保護するためのワクチンであって、請求項1記載の
ポリヌクレオチド分子によりコードされる感染性RNA
分子によりコードされる遺伝子的に修飾された北米PR
RSウィルス、又は前記感染性RNA分子、又はプラス
ミドの形での前記ポリヌクレオチド分子、又はPRRS
ウィルスによる感染に対する効果的な免疫保護応答を誘
発することができる北米PRRSウィルスをコードする
請求項1記載のヌクレオチド配列を含んで成るウィルス
ベクターを、PRRSウィルスによる感染に対して免疫
保護を生成するのに効果的な量で、及び獣医学的使用の
ために許容できるキャリヤーを含んで成るワクチン。 - 【請求項4】 哺乳類又は鳥における特定の病原体に対
しての効果的な免疫保護応答を誘発できる1又は複数の
異種抗原性エピトープを含むように遺伝子的に修飾され
ている北米PRRSウィルスをコードする感染性RNA
分子をコードする、配列番号1又はそれに対して相同の
配列であるが、但し異種抗原性エピトープをそれぞれコ
ードする1又は複数の追加のヌクレオチド配列を含んで
成るDNA配列を含んで成る単離されたポリヌクレオチ
ド分子。 - 【請求項5】 プラスミドの形での請求項4記載の単離
されたポリヌクレオチド分子。 - 【請求項6】 哺乳類又は鳥における特定の病原体に対
しての効果的な免疫保護応答を誘発できる1又は複数の
異種抗原性エピトープを含むように遺伝子的に修飾され
ている北米PRRSウィルスをコードする感染性RNA
分子をコードする、配列番号1又はそれに対して相同の
配列であるが、但し異種抗原性エピトープをそれぞれコ
ードする1又は複数の追加のヌクレオチド配列を含んで
成るDNA配列を含んで成るトランスフェクトされた宿
主細胞。 - 【請求項7】 病原体による感染から哺乳類又は鳥を保
護するためのワクチンであって、請求項4記載のポリヌ
クレオチド分子によりコードされる感染性RNA分子に
よりコードされる遺伝子的に修飾された北米PRRSウ
ィルス、又は前記感染性RNA分子、又は請求項5記載
のプラスミドを、1又は複数の異種抗原性エピトープを
提供するか又はそれらによりコードされる病原体による
感染に対して免疫保護を生成するのに効果的な量で;及
び医薬又は獣医学的使用のために許容できるキャリヤー
を含んで成るワクチン。 - 【請求項8】 前記遺伝子的に修飾された北米PRRS
ウィルスをコードする感染性RNA分子をコードするD
NA配列が、ブタ動物においてPRRSを生成するその
能力において前記コードされた遺伝子的に修飾された北
米PRRSウィルスを無能にする1又は複数の追加の突
然変異を含んで成る請求項4記載の単離されたポリヌク
レオチド分子。 - 【請求項9】 プラスミドの形での請求項8記載の単離
されたポリヌクレオチド分子。 - 【請求項10】 PRRSウィルスによる感染から、及
び北米PRRSウィルス以外のブタ病原体による感染か
らブタ動物を保護するためのワクチンであって、請求項
8記載のポリヌクレオチド分子によりコードされる感染
性RNA分子によりコードされる遺伝子的に修飾された
北米PRRSウィルス、又は前記感染性RNA分子、又
は請求項9記載のプラスミドを、PRRSウィルスによ
る感染に対して、及び異種抗原性エピトープ、又はそれ
らのもしくはそれらによりコードされるエピトープが由
来する病原体による感染に対して免疫保護を生成するの
に効果的な量で;並びに獣医学的使用のために許容でき
るキャリヤーを含んで成るワクチン。 - 【請求項11】 1又は複数の検出できる異種抗原性エ
ピトープを含むよう遺伝子的に修飾されている北米PR
RSウィルスをコードする感染性RNA分子をコードす
る、配列番号1の配列に対して同じかもしくは相同であ
り、又はそれに対して相同であるが、但し検出できる異
種抗原性エピトープをそれぞれコードする1又は複数の
追加のヌクレオチド配列を含んで成るDNA配列を含ん
で成る単離されたポリヌクレオチド分子。 - 【請求項12】 PRRSウィルスによる感染からブタ
動物を保護するためのワクチンであって、ブタ動物にお
いてPRRSを生成することができないが、まだそのブ
タ動物においてPRRSウィルスに対する効果的な免疫
保護応答を誘発することができるよう処理されているか
又は遺伝子的に修飾されている、1又は複数の検出でき
る異種抗原性エピトープを含んで成る、請求項11記載
のポリヌクレオチド分子によりコードされる感染性RN
A分子によりコードされる遺伝子的に修飾された北米P
RRSウィルス;又は前記感染性RNA分子(ここで1
又は複数の検出できる異種抗原性エピトープを含んで成
る、前記感染性RNA分子によりコードされる遺伝子的
に修飾された北米PRRSウィルスが、PRRSを生成
することができないが、まだ、PRRSウィルスに対す
る効果的な免疫保護応答を誘発することができるよう追
加の遺伝子修飾を含んで成る);又はプラスミドの形で
の請求項11記載の単離されたポリヌクレオチド分子
(1又は複数の検出できる異種抗原性エピトープを含ん
で成る、前記ポリヌクレオチド分子によりコードされる
遺伝子的に修飾された北米PRRSウィルスが、PRR
Sを生成することがでないが、なおPRRSウィルスに
対する効果的な免疫保護応答を誘発することができるよ
う追加の遺伝子修飾を含んで成る);又はPRRSを生
成することができないが、まだPRRSウィルスに対し
て効果的な免疫保護応答を誘発することができるよう追
加の遺伝子修飾を含んで成る、1又は複数の検出できる
異種抗原性エピトープを含んで成る遺伝子的に修飾され
た北米PRRSウィルスをコードする感染性RNA分子
をコードするヌクレオチド配列をコードするウィルスベ
クターを、PRRSウィルスによる感染に対して免疫保
護を生成するのに効果的な量で;並びに獣医学的使用の
ために許容できるキャリヤーを含んで成るワクチン。 - 【請求項13】 検出できる抗原性エピトープを欠失す
るよう遺伝子的に修飾されている北米PRRSウィルス
をコードする感染性RNA分子をコードする、配列番号
1又はそれに対して相同の配列であるが、但し検出でき
る抗原性エピトープをコードする1又は複数のDNA配
列を欠いているDNA配列を含んで成る、単離されたポ
リヌクレオチド分子。 - 【請求項14】 PRRSウィルスによる感染からブタ
動物を保護するためのワクチンであって、ブタ動物にお
いてPRRSを生成することができないが、まだそのブ
タ動物においてPRRSウィルスに対する効果的な免疫
保護応答を誘発することができるよう処理されているか
又は遺伝子的に修飾されている、1又は複数の検出可能
な抗原性エピトープを欠いている、請求項13記載のポ
リヌクレオチド分子によりコードされる感染性RNA分
子によりコードされる遺伝子的に修飾された北米PRR
Sウィルス;又は前記感染性RNA分子(1又は複数の
検出できる抗原性エピトープを欠いている、前記感染性
RNA分子によりコードされる遺伝子的に修飾された北
米PRRSウィルスが、PRRSを生成することができ
ないが、まだ、PRRSウィルスに対する効果的な免疫
保護応答を誘発することができるよう追加の遺伝子修飾
を含んで成る);又はプラスミドの形での請求項13記
載の単離されたポリヌクレオチド分子(1又は複数の検
出できる抗原性エピトープを欠いている、前記ポリヌク
レオチド分子によりコードされる遺伝子的に修飾された
北米PRRSウィルスが、PRRSを生成することがで
ないが、まだ、PRRSウィルスに対する効果的な免疫
保護応答を誘発することができるよう追加の遺伝子修飾
を含んで成る);又はPRRSを生成することができな
いが、まだPRRSウィルスに対して効果的な免疫保護
応答を誘発することができるよう追加の遺伝子修飾を含
んで成る、1又は複数の検出できる抗原性エピトープを
欠いているそのような遺伝子的に修飾された北米PRR
Sウィルスをコードする感染性RNA分子をコードする
ヌクレオチド配列をコードするウィルスベクターを、P
RRSウィルスによる感染に対して免疫保護を生成する
のに効果的な量で;並びに獣医学的使用のために許容で
きるキャリヤーを含んで成るワクチン。 - 【請求項15】 野生型ニドビラレスウィルスをコード
する感染性RNA分子をコードするDNA配列を含んで
成る単離されたポリヌクレオチド分子を得ることによ
り、哺乳類又は鳥において野生型ニドビラレスウィルス
による感染に対して効果的な免疫保護応答を誘発できる
まま存続する遺伝子的に修飾されたニドビラレスウィル
スをコードする感染性RNA分子をコードするDNA配
列を含んで成る単離されたポリヌクレオチド分子を得る
ために、前記野生型ニドビラレスウィルスをコードする
感染性RNA分子をコードするDNA配列を遺伝子的に
突然変異誘発し、そしてそのようにして得られた、単離
されたポリヌクレオチド分子から遺伝子的に修飾された
ニドビラレスウィルスを発現することによって調製され
る、遺伝子的に修飾されたニドビラレスウィルスにより
ワクチン接種された哺乳類又は鳥において免疫保護応答
を誘発することができる遺伝子的に修飾されたニドビラ
レスウィルス。 - 【請求項16】 遺伝子的に修飾されたニドビラレスウ
ィルスによりワクチン接種された哺乳類又は鳥において
免疫保護応答を誘発できる遺伝子的に修飾されたニドビ
ラレスウィルスを調製するための方法であって、野生型
ニドビラレスウィルスをコードする感染性DNA分子を
コードするDNA配列を含んで成る単離されたポリヌク
レオチド分子を得ることにより、哺乳類又は鳥において
野生型ニドビラレスウィルスによる感染に対して効果的
な免疫保護応答を誘発できるまま存続する遺伝子的に修
飾されたニドビラレスウィルスをコードする感染性RN
A分子をコードするDNA配列を含んで成る単離された
ポリヌクレオチド分子を得るために、野生型ニドビラレ
スウィルスをコードする感染性RNA分子をコードする
DNA配列を遺伝子的に突然誘発し、そしてそのように
して得られた、単離されたポリヌクレオチド分子から遺
伝子的に修飾されたニドビラレスウィルスを発現する、
ことを含んで成る方法。 - 【請求項17】 請求項15記載の遺伝子的に修飾され
たニドビラレスウィルスを、それらによりワクチン接種
された哺乳類又は鳥において野生型ニドビラレスウィル
スに対して効果的な免疫保護応答を誘発するのに有効な
量で、及び医薬又は獣医学的使用のために許容できるキ
ャリヤーを含んで成る、ニドビラレスウィルスによる感
染から哺乳類又は鳥を保護するためのワクチン。
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