HU226896B1 - Microcapsules, method of making and their use - Google Patents

Microcapsules, method of making and their use Download PDF

Info

Publication number
HU226896B1
HU226896B1 HU9601996A HU9601996A HU226896B1 HU 226896 B1 HU226896 B1 HU 226896B1 HU 9601996 A HU9601996 A HU 9601996A HU 9601996 A HU9601996 A HU 9601996A HU 226896 B1 HU226896 B1 HU 226896B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
microcapsule
microcapsules
acid
biodegradable
microcapsule according
Prior art date
Application number
HU9601996A
Other languages
English (en)
Other versions
HU9601996D0 (en
HUT74912A (en
Inventor
Philippe Bussat
Michel Schneider
Original Assignee
Bracco Research Sa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bracco Research Sa filed Critical Bracco Research Sa
Publication of HU9601996D0 publication Critical patent/HU9601996D0/hu
Publication of HUT74912A publication Critical patent/HUT74912A/hu
Publication of HU226896B1 publication Critical patent/HU226896B1/hu

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0053Mouth and digestive tract, i.e. intraoral and peroral administration
    • A61K9/0065Forms with gastric retention, e.g. floating on gastric juice, adhering to gastric mucosa, expanding to prevent passage through the pylorus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • A61K49/22Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations
    • A61K49/222Echographic preparations; Ultrasound imaging preparations ; Optoacoustic imaging preparations characterised by a special physical form, e.g. emulsions, liposomes
    • A61K49/223Microbubbles, hollow microspheres, free gas bubbles, gas microspheres
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/48Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
    • A61K9/50Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
    • A61K9/5005Wall or coating material
    • A61K9/5015Organic compounds, e.g. fats, sugars

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Acoustics & Sound (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Radiology & Medical Imaging (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

A találmány tárgya mikrokapszulák, eljárás előállításukra és alkalmazásuk. A találmány olyan mikrokapszulákra vonatkozik, amelyek átlagos mérete 0,1 pm és 1000 pm közötti, és amelyek egy biodegradálható membránt tartalmaznak, amelyben levegővel vagy gázzal töltött mag van. Az ismertetett mikrokapszula lehetőleg nem koaleszcens, száraz és azonnal diszpergálható. A találmány vonatkozik a mikrokapszula előállítására szolgáló eljárásra és felhasználására gyógyászatilag és/vagy diagnosztikai szempontból aktív anyagok leadására. Ha a mikrokapszula fiziológiailag elfogadható vivőanyagban szuszpenzió formájában van, akkor gyógyhatású anyagok leadásához vivőanyagként és/vagy emberi vagy állati test szerveinek ultrahangos leképzéséhez kontrasztanyagként használhatók. A találmány vonatkozik az ultrahang-kontrasztanyagok előállítására szolgáló eljárásra is a mikrokapszulák felhasználásával.
Amikor felismerték, hogy gyógyhatású és diagnosztikus hatóanyagok célhoz juttatása és/vagy szabályozott hatóanyag-leadása milyen előnyökkel jár, akkor széles körű kutatás kezdődött különféle vivőanyagrendszerek kifejlesztésére. Ezek magukban foglalták az általános célú szabályozott vagy nyújtott leadású rendszereket, és azokat a rendszereket, amelyek egy bizonyos alkalmazáshoz speciálisan megfeleltek. Számos rendszert fejlesztettek ki antibiotikumok, vitaminok, fehérjék és hasonlók leadására a megfelelő hatóanyag típusának és tulajdonságainak függvényében. A hatóanyagok kapszulázására jelenleg rendkívül sokféle vivőanyag ismert, például alginátok, agargyöngyök, foszfolipidbevonatok és liposzómák, de rendkívül bonyolult polimer anyagok is. Ezek közül az ismert rendszerek közül azonban számos rendszer túl specifikus, vagyis egy bizonyos hatóanyaghoz vagy legfeljebb csak egy hatóanyagcsoporthoz alkalmazható, ezért ha attól eltérő hatóanyagról van szó, akkor nem használható. Mivel egy bizonyos hatóanyag számára választották, a legtöbb ismert leadórendszer nem elég rugalmas a leadójellemzők vagy a biodegradálhatóság szempontjából. Ha változtatjuk a vivőanyagot és/vagy a hatóanyag és inaktív komponens arányt, akkor elkerülhetetlen, hogy további kísérleteket végezzünk.
Ezenkívül az eddig ismert rendszerek nem alkalmasak lebegő mikrorészecskék vagy lebegőtabletták előállítására, amelyek különböző hatóanyagokat tartalmazhatnak. Az ismert rendszerek a különböző funkciók összekapcsolásával nem rendelkeznek, nem teszik lehetővé egyazon mikrokapszulán belül több hatóanyag alkalmazását, például azt, hogy egy gyógyhatású anyagot alkalmazzunk a külső kapszulázómembránban és egy diagnosztikai hatóanyagot a magban. Ugyancsak nem ismert olyan azonnal felhasználható biodegradálható mikrokapszula, amely tetszés szerint tölthető meg megfelelő mennyiségű, megfelelő gyógyhatású anyaggal.
Az EP-A-0 458 745 számú dokumentum (Sintetica) olyan levegővel vagy gázzal töltött mikrogömböcskéket ismertet, amelyek egymáshoz egy a határfelületen deponált biodegradálható membránnal kapcsolódnak. Az ilyen mikrogömböcskék nagyon hatékony hangvisszaverőként használhatók testüregek és a véráram ultrahangos leképzésénél. A mikrogömböcskéket úgy állítják elő, hogy egy filmogén polimert feloldanak illékony szerves oldószerek keverékében és a kapott szerves oldatot összekeverik egy vizes hordozófázissal, és így egy „olaj a vízben” emulziót állítanak elő. Az emulziót azután kezelik, például lepárolják vagy oldhatatlanná teszik, oly módon, hogy a polimer kicsapódik és lerakódik, a vízcsepp/oldat kapcsolódási helyén membránt alkot. A mikrogömbben lévő szerves oldószert adott esetben elpárologtatják és a szuszpenzió liofilizálásával a mikrogömböcskében lévő oldószert levegővel vagy gázzal helyettesítik. A mikrogömböcskék hidrofób tulajdonságai növelése érdekében a biodegradálható polimerekből készült mikrogömböcskék tartalmazhatnak legfeljebb 20% zsírt, viaszt vagy nagy molekulatömegű szénhidrogént.
Az US-A-4,684,479 számú szabadalmi leírásban (D’Arrigo) olyan stabilizált buborékszuszpenziókat ismertetnek, amelyek ultrahangos mérésekre használhatók különböző felhasználási területeken, például szív ultrahangos vizsgálatánál. A szuszpenziót úgy állítjuk elő, hogy levegő (habképző) jelenlétében felületaktív anyag keverékeket erőteljesen összeráznak vízzel vagy ásványi olajjal. A felületaktív anyag keverékek tartalmaznak (a) zsírsav-monoglicerideket, (b) aromás savak, például benzoesav, fenil-ecetsav, ftálsav, szalicilsav és hasonlók, szterinekkel, például koleszterinnel, ergoszterinnel, lanoszterinnel, fitoszterinnel és hasonlókkal alkotott észtereit, (c) a szterinekből, terpénekből, epesavakból és epesav alkálifémsóiból álló csoportból valamely komponenst, és adott esetben (d) alifás savak szterin-észtereit, és (e) egy anyagot a következő csoportból: glicerin és di- vagy trigliceridek (például dilaurin, trilaurin, dipalmitin, tripalmitin, disztearin, trisztearin, dimirisztin, trimirisztin és hasonlók).
A WO-A-93/02712 számú szabadalmi leírás (Danbiosyst) szilárd mikrogömböket vagy üreges (gázzal vagy gőzzel töltött) amilo-dextrén mikrokapszulákat ismertet, amelyeket úgy állítanak elő, hogy valamely vízoldható keményítőszármazékból héjat képeznek egy szilárd vagy folyékony mag körül, majd a magot eltávolítják. A mag lehet illékony olaj, például perfluor-hexán. A mikrokapszula előállítható „olaj a vízben” az olajban” kettős emulzióból, amelyet kémiai úton vagy hő hatására keményítenek. A mikrokapszulák szív ultrahangos vizsgálatához használhatók.
Az EP 467 031 számú szabadalmi leírásban felületaktív anyag keverékkel stabilizált mikrobuborékokat ismertetnek. Ezeket speciális szűrőn történő átbocsátással sterilizálják. Szilárd mikrokapszulákról nem tesznek említést.
Az EP 535 387 számú szabadalmi leírásban különféle anyagokból, például lipidekből és 8-20 szénatomos zsírsavakból porlasztva szárításos eljárással echogén részecskéket állítanak elő. A mikrokapszulák előállításához biodegradálható polimert alkalmaznak.
A találmány tárgya röviden összefoglalva szilárd mikrokapszula, amelynek átlagos mérete 0,1 pm és
HU 226 896 Β1
1000 μιτι (1 mm) közötti, amely rendelkezik egy biodegradálható lipidmembránnal, amely egy levegővagy gázmagot foglal magában. A membrán egy vagy több biodegradálható, vízben oldhatatlan, szobahőmérsékleten szilárd lipidet vagy biodegradálható, vízben oldhatatlan lipidkeveréket tartalmaz, amely lehet mono-, di- vagy triglicerid, legalább 12 szénatomos zsírsav, zsírsav-észter, szterin, viasz vagy ezek keveréke. Különösen jól használhatók a mono-, di-, trimirisztin, -palmitin vagy a -sztearin, különösen előnyös a tripalmitin és a trisztearin. A mikrokapszulák, amelyek nem koaleszcensek, szárazak és azonnal diszpergálhatók, fiziológiailag alkalmazható vivőanyagban szuszpendálva jól használhatók gyógyhatású anyagok leadásához vivőanyagként és/vagy ultrahang-kontrasztanyagként. Adott esetben a lipid tartalmazhat legfeljebb 75 tömeg% biodegradálható polimert is.
A találmány vonatkozik az olyan injektálható készítményekre is, amelyek egy hatékony mennyiségű találmány szerinti mikrokapszulát valamely gyógyszerészetileg elfogadható folyékony vivőanyagban szuszpendálva tartalmazzák, szokásos adalékokkal és stabilizátorokkal együtt, amelyek gyógyászati és/vagy kontrasztanyagként használhatók.
A találmány szerinti mikrokapszulákat úgy állítjuk elő, hogy „olaj a vízben” típusú emulziót készítünk egy szerves oldatból, amely egy mono-, di- vagy trigliceridet vagy ezek keverékét tartalmazza oldva, és egy vizes oldatból, amely adott esetben egy felületaktív anyagot is tartalmaz; adott esetben az oldószer egy részét elpárologtatjuk, egy újradiszpergálást elősegítő szert adagolunk és a kapott keveréket megfagyasztjuk. A fagyasztott elegyet azután liofilizáljuk, és így egy kvázi gömb alakú vagy gömb alakú mikrokapszulát állítunk elő.
A találmány tárgya továbbá eljárás ultrahangos leképzéshez való kontrasztanyag előállítására oly módon, hogy a mikrokapszulákat (mikrogömböcskéket) egy fiziológiailag alkalmazható vivőanyagfázisban szuszpendáljuk.
A következőkben röviden ismertetjük a rajzokat.
Az 1. ábrán a találmány szerinti tripalmitinből készített mikrokapszula SEM fényképét mutatjuk be.
A 2. ábrán a tripalmitinlerakódás fényképét mutatjuk, amelyet a szerves oldószer elpárologtatósával kaptunk.
A 3. ábrán grafikusan ábrázoljuk a mikrokapszulák ekogén voltának változásának a falvastagság függvényében.
A 4. ábrán az ultrahangos jel gyengülés változását ábrázoljuk a mikrokapszula falvastagsága és koncentrációja függvényében.
A találmány azon a meglepő felismerésen alapul, hogy rendkívül jól használható szilárd mikrokapszula állítható elő, amelynek átlagos mérete 0,1 pm és 1000 pm közötti, ha egy vagy több biodegradálható, vízben oldhatatlan, szobahőmérsékleten szilárd lipidet alkalmazunk egy olyan mag kapszulázására, amely levegőt vagy gázt tartalmaz. A használható biodegradálható lipidek közül megemlítjük a szilárd, vízben oldhatatlan mono-, di- vagy triglicerideket, a zsírsavakat, zsírsav-észtereket, szterineket, például a koleszterint, viaszokat és ezek keverékét. A mono-, di- és trigliceridek közül elsősorban a mono-, di- és trilaurinvegyületeket, valamint a megfelelő -mirisztin-, -palmitin-, -sztearin-, -arachidin- és -behenin-származékokat említjük. Különösen jól használhatók a mono-, di- és trimirisztin, -palmitin, -sztearinszármazékok és kevert trigliceridek, például a dipalmitoil-monooleil-glicerid; a legelőnyösebbek a tripalmitin és a trisztearin. Amikor ezeket zsírsavakból vagy zsírsav keverékekből állítjuk elő gliceridekkel és/vagy szterinekkel, akkor zsírsavként minden olyan szobahőmérsékleten szilárd (előnyösen telített) zsírsav használható, amely legalább 12 szénatomot tartalmaz. Ezek közül a zsírsavak közül példaként a következőket említjük: laurinsav, arachidinsav, behisav, palmitinsav, sztearinsav, szebacinsav, mirisztinsav, cerotinsav, melisszinsav és erukasav. A zsírsavakat és észtereiket előnyösen egyéb gliceridekkel keverve használjuk.
A szterineket előnyösen a többi gliceriddel és/vagy zsírsavval keverve használjuk, közülük megemlítjük a koleszterint, a fitoszterint, lanoszterint, ergoszterint és hasonlókat, valamint a szterinek és a fent említett zsírsavak észtereit. Előnyös a koleszterin.
A legjobb eredményeket a mikrokapszulakitermelés és általános tulajdonságai szempontjából trigliceridekkel, például tripalmitinnel, trisztearinnal vagy a fent említett trigliceridek keverékével kaptuk. Ha diglicerideket használunk, akkor alacsonyabb kitermelést kapunk és olyan mikrokapszulákat, amelyek enyhén hajlamosak az agglomerációra. A legalacsonyabb mikrokapszulakitermelést monogliceridekkel kapjuk. Az ilyen viselkedés pontos magyarázatát nem ismerjük, feltételezzük azonban, hogy a hidrofóbicitási fok lehet az az ok, amely megmagyarázhatja azt a tényt, hogy a legjobb mikrokapszulákat vagy mikrogömböcskéket az erősen hidrofób anyagokból kapjuk, és ahogy a hidrofóbicitás csökken vagy a felületaktivitás nő, a kapott mikrokapszulák minősége romlik és mennyisége csökken. Ez az oka valószínűleg annak, hogy a kísérletekben, amelyeket mono-, di- és triglicerid keverékekkel (például mono-, di- és tripalmitinnel) végzünk a kitermelés fokozatosan nő, ahogy a trigliceridmennyiség növekszik. Minél nagyobb részben használjuk az erősebben hidrofób trigliceridet (lipidet), annál jobb a mikrogömbkitermelés és annál könnyebb kivitelezni a gyártási eljárást.
Adott esetben a biodegradálható, vízben oldhatatlan lipidet legfeljebb 75 tömeg%-ban biodegradálható polimerekkel keverhetjük. A biodegradálható polimerek mennyisége 75 tömeg% lehet maximum, mivel meglepő módon azt tapasztaltuk, hogy a glicerid/polimer keverékek biodegradálhatósága nem lineárisan függ az összetételtől, vagyis a biodegradálhatóság nem egyenes arányban nő vagy csökken a keverékben jelen lévő polimer mennyiségének függvényében, hanem nagyobb mértékben határozza meg a gliceridek biodegradálhatósága, mint a polimereké. Ez addig igaz, amíg a gliceridek mennyisége >25 tömeg%, mivel a
HU 226 896 Β1 tömeg% vagy annál több gliceridet tartalmazó keverékek biodegradálhatósága közelebb van a lipidekéhez, mint a polimerekéhez. Azoknak a keverékeknek a biodegradálhatósága azonban, amelyekben 75 tömeg% vagy annál több polimer van, közelebb van a tiszta polimerekéhez. Ez azt jelenti, hogy azok a keverékek, amelyek 25 tömeg%-nál kevesebb gliceridet tartalmaznak, biodegradálhatóság szempontjából csaknem úgy viselkednek, mint a tiszta polimerek. Amikor azonban a lipidek mennyisége megközelíti a 25 tömeg%-ot, a keverék jellege megváltozik, és a lipid mennyiség további növekedése nagymértékben befolyásolja a keverék biodegradálhatóságát, a lipidek biodegradálhatósága jobban érvényesül, mint a polimereké, vagyis a keverék nagyobb mértékben biodegradálhatóvá válik, mint amit a jelen lévő polimer mennyisége alapján várni lehet vagy lehetne. Ez világosan mutatja hogy a keverék biodegradálhatósága nem az egyedi biodegradálhatóságok egyszerű összege, hanem azt a feleslegben lévő komponens határozza meg, bár olyan módon, hogy a gliceridek hatása a domináns. Az olyan készítmények esetén, amelyek több, mint 75 tömeg% polimert tartalmaznak, a biodegradálhatóság gyorsan megközelíti a tiszta polimerét.
A találmány szerinti eljárással a 0,1 pm és 1000 pm közötti átlagos méretű gliceridtartalmú üreges mikrokapszulákat úgy állítjuk elő, hogy egy vizes hordozófázisban diszpergáljuk egy vagy több mikrokapszulabevonatot alkotó szilárd komponens szerves oldószerrel készített oldatát, és így egy „olaj a vízben” emulziót állítunk elő. Az emulzió vízfázisa tartalmazhat hatékony mennyiségű felületaktív anyagot, amelyet az emulzió stabilizálása érdekében alkalmazunk. A felületaktív anyagok közül előnyösek a következők: poli(vinil-alkohol) (PVA), polietoxi-polipropoxi blokk-kopolimerek, foszfolipidek, például a foszfatidinsav, foszfatidil-kolin, foszfatidil-etanol-amin, foszfatidil-szerin, foszfatidil-glicerin, foszfatidil-inozit vagy ezek keveréke, a szorbitánéterek, szorbitán-észterek, polietoxi-szorbitán-észterek, etoxilezett telített gliceridek, és részleges zsírsavgliceridek vagy poligliceridek, különösen előnyösek a polietoxi-polipropoxi blokk-kopolimerek (például a Pluronic® vagy Synperonic® néven forgalmazott termékek), valamint a foszfolipidek. A felületaktív anyagok jelenléte csak akkor elengedhetetlen, ha a végtermék mérete vagy részecskeméret-eloszlása fontos. Ha a mikrokapszulákat orális adagolásra alkalmas készítményben kívánjuk felhasználni, akkor nem szükséges felületaktív anyagot (stabilizátort) használni, mivel a végső részecskeméret gyakorlatilag nem meghatározó. Amikor azonban a készítményt parenterális adagolással kívánjuk alkalmazni, akkor fontos, hogy legyen felületaktív anyag a vízfázisban. A -30 °C alatti hőmérsékleten történő fagyasztás előtt bizonyos mennyiségű újradiszpergálást elősegítő szert adagolunk a szerves oldat kis cseppjeinek a vízfázisban alkotott emulziójához. A megfagyott emulziót azután csökkentett nyomásnak tesszük ki, és így liofilizáljuk, vagyis a cseppecskékből a szerves oldószert, a hordozófázisból pedig a vizet szublimálással eltávolítjuk. Feltételezzük, hogy ezalatt a viszonylag lassú oldószer-eltávolítás alatt a membrán alkotórészei a cseppecskék perifériája felé migrálnak, mindaddig, amíg elérik a megfagyott vízkötést, ahol a további mozgásuk egy molekulárisán szervezett sűrű lerakódás képződését okozzák az oldószer/jég határfelületen, amely félkristályos szerkezetet vehet fel az oldószer és a jég közötti területen, vagyis az oldószer és a jég határfelületén. Ily módon a membrán alkotórészei legalább részben nem amorf, jelentős szilárdságú és csökkentett porozitású sűrű szerkezetté alakulnak, ami megmagyarázza a találmány szerinti mikrokapszulák szokatlanul előnyös tulajdonságait.
Bármely alkalmas újradiszpergálást elősegítő szert használhatunk, előnyösek a következők: albumin, zselatin, poli(vinil-pirrolidon) (PVP), poli(vinil-alkohol) (PVA), polietilénglikol (PEG) és polietoxi-polipropoxi blokk-kopolimer (például Pluronic® vagy Synperonic®). Az újradiszpergálást elősegítő szerek, amelyeket azért adagolunk, hogy megakadályozzuk a részecskeagglomerációt, különösen szükségesek, amikor a mikrokapszulák nem koaleszcens, száraz és azonnal diszpergálható por formájúak. Amikor hosszú tárolásra szánjuk vagy hidrofób trigliceridekből, például tripalmitinből vagy trisztearinból állítjuk elő, akkor a találmány szerinti mikrokapszulakészítmények tartalmaznak egy vagy több újradiszpergálást elősegítő szert is.
A találmány szerint előállított üreges mikrokapszulák porozitása általában nagyon alacsony és bizonyos esetekben a mikrokapszulák egyáltalán nem tartalmaznak pórusokat. Úgy tűnik, hogy a porozitás a mikrokapszula lipidkoncentrációjától vagy falvastagságától függ. Abban az esetben, amikor a találmány szerinti mikrokapszula porózus, a pórusmérete 20 és 2000 nm közötti.
Amint már említettük, amikor a találmány szerinti mikrokapszulákat egy vagy több biodegradálható vízben oldhatatlan lipid és biodegradálható polimerek keverékéből állítjuk elő, akkor legfeljebb 75 tömeg% polimert használhatunk. A biodegradálható lipidekből előállított mikrokapszulák adagolás után a testben kb. 1 órától néhány óráig terjedő időtartamig maradnak meg, míg a biodegradálható polimerek néhány napig vagy néhány hétig is tarthatnak. Ezért az adagolás után szabályozott félidejű mikrokapszulákat úgy állíthatjuk elő, hogy szabályozzuk a gyártás során a lipidek és a biodegradálható polimerek egymáshoz viszonyított arányát. A polimer pontos mennyisége az adagolás módjától függ és közvetlenül kapcsolódik a kívánt biodegradál hatósági fokhoz. Például bizonyos nyújtott hatóanyag-leadású alkalmazások esetén a biodegradálható polimer mennyisége valahol 30 és 60 tömeg% közötti lehet, más esetekben legfeljebb 75 tömeg%. Azonban ha a találmány szerinti mikrokapszulákat szervek és szövetek ultrahangos leképzésére használjuk, akkor a testből való kiürülés kívánt sebességének függvényében a biodegradálható polimer mennyisége 1 és 50 tömeg% közötti, előnyösen 0,5 és 10 tömeg% közötti lehet, de lehet 0,1 tömeg% is. Nyilvánvaló, hogy bizonyos alkalmazási területek esetén, például máj vagy
HU 226 896 Β1 lép vagy szív ultrahangos vizsgálata esetén a leképzés olyan vizes mikrokapszula (mikrogömböcske) szuszpenzióval végezhető, amely a tiszta gliceridekből, például tiszta trisztearinból vagy tiszta tripalmitinből vagy tiszta vegyes trigliceridekből, például dipalmitoil-monooleil-gliceridből, vagy glicerid/zsírsav/szterin keverékekből készített mikrokapszulákat tartalmazzák.
Az ultrahangos vizsgálatokhoz használt viszonylag vékonyfalú, például 50-500 nm vastag falú mikrokapszulák különösen előnyösek, mivel biodegradálhatóságuk nagyon gyors, ugyanis a lipidbevonat testből való kiürülése viszonylag rövid idő alatt, például legfeljebb 24 óra alatt megtörténik. Az ismert mikrogömböcskékhez képest ez nagyon gyors, tehát a szervezet reakciója szempontjából a találmány szerinti ultrahang-kontrasztanyagok összemérhetők az olyan kontrasztanyagokkal, amelyek vizes gázmikrogömb-szuszpenziókból állnak, amelyekben a mikrogömböcskék egy folyadék/gáz határfelülettel kapcsolódnak egymáshoz, vagyis nem rendelkeznek tapintható anyagból álló bevonattal. Az ilyen szuszpenziókban a gáz-folyadék határfelületet felületaktív anyagok stabilizálják, rendszerint foszfolipidek, amelyek a folyékony vivőanyagban vannak diszpergálva. Ebből az következik, hogy a találmány szerinti mikrokapszulák sajátságos kontrasztanyagok, amelyek megfelelő és szabályozható „életciklussal” rendelkező mikrogömböcskékből állnak. A kontrasztanyagban a mikrogömböcskék rendelkeznek a kívánt helyekhez való eljuttatáshoz megfelelő stabilitással és elegendő biodegradálhatósággal, így az ultrahangos leképzés után a testből való eliminációjuk gyors.
Amikor a mikrokapszulákat egy vagy több vízben oldhatatlan lipid és valamely biodegradálható polimer keverékéből állítjuk elő, akkor az alkalmazott polimer egy a következők közül választott polimer lehet: részlegesen észteresített poliaminosavak, politejsav és poliglikolsav és kopolimerjeik, laktidek és laktonok kopolimerjei, polipeptidek, poli(orto)-észterek, poliglutámsav, poliaszpartámsav és kopolimerjeik, ροΐί-β-amino-ketonok, polifoszfazének, polianhidridek, polihidroxi-butirát, poliamidok, polidioxanon, poli-(DL-laktid-co-ő-kaprolakton), poli-(DL-laktid-co-5-valerolakton) és polialkil-(ciano)-akrilátok, előnyösek a polilaktidok és poliglikolidok és ezek kopolimerjei. Ha kívánt készítménynek bizonyos meghatározott polimer tulajdonságot kívánunk biztosítani, például biotapadást, akkor egyéb nem biodegradálható polimereket, például etilén-vinil-acetátot, poliakrilsavat és hasonlókat is használhatunk egyedül vagy a fent említett biodegradálható polimerekkel keverve.
A találmány szerinti mikrokapszulák felhasználhatók gyógyhatású anyagok leadásához, ebben az esetben a gyógyhatású anyagot a membránba építhetjük be vagy a magba adagolhatjuk. A lipofil hatóanyagoknál előnyösen a hatóanyagot a lipid vagy lipid/polimer membránba építjük be. A membránba beépített lipofil hatóanyag mennyisége függ az anyagtól és annak molekulatömegétől, nagyon nagy hatóanyag/lipid arányt tudunk elérni olyan lipofil hatóanyagokkal, mint például az E-vitamin, a prednizolon, a klór-alfenikol-palmitát és a szalbutamol. Gyakorlatilag bármely biológiai hatóanyagot használhatunk a találmány szerinti mikrokapszulával. A használható hatóanyagok közül példaként, de nem kizárólag a következőket említjük: baktériumellenes vegyületek, például gentamicin, vírusellenes vegyületek, például rifampacin, gombaellenes vegyületek, például amfotericin B, parazitaellenes vegyületek, például antimonszármazékok, daganatellenes vegyületek, például mitomicin C, doxorubicin és ciszplatin, fogamzásgátlók, például norgesztrel, szteroidok, például sprirololakton, ösztradiol, glükokortikoidok, például prednizolon, fluoreszcens vegyületek, például karboxifluoreszceid, gyulladásgátlók, például szalicilsav és ibuprofen, érzéstelenítők, például bupivakain, lidokain és hasonlók. Különösen jó eredmények érhetők el, ha a mikrokapszulákat antibakteriális, daganatellenes vegyületek adagolására használjuk.
A kísérletek azt mutatják, hogy amikor a találmány szerinti mikrokapszulákat leadó vivőanyagként használjuk hatóanyagok számára, akkor különböző hatásokat érhetünk el, ha a lipidkoncentrációt vagy a lipid/polimer keverék arány változtatjuk a kiindulási anyagban. Megállapítottuk, hogy olyan mikrokapszulákkal, amelyek viszonylag vékony falúak és nagy a hatóanyag:lipid vagy lipid:polimer arány, vagyis nagy a hatóanyag koncentrációja, a környező szövetben sokkszerű kezelést eredményez. A találmány szerinti mikrokapszulák különös előnye abból a tényből adódik, hogy a sokkkezelést változtathatjuk, ha változtatjuk a tömegarányt vagy a falvastagságot, és közben állandó értéken tartjuk a hatóanyag-koncentrációt, ezáltal bizonyos nyújtott hatóanyag-leadású rendszerhez jutunk. Ez a rendszer tökéletesen adaptálható az alkalmazott hatóanyaghoz, a kívánt kezeléshez, sőt a beteg fiziológiai állapotához is. Szakember számára ebből nyilvánvaló, hogy a találmány szerinti rendszer által nyújtott szabadság korábban nem ismert mértékű.
A találmány szerinti mikrokapszula további előnyét mutatja az úgynevezett lebegőkapszulák előállításának lehetősége és egyszerűsége. A lebegőkapszulák, amelyek nemrégen ismertek, hatóanyagok orális adagolására alkalmasak úgy, hogy a hatóanyagot a kapszula előnyösen akkor adja le, amikor a gyomornedvekben lebeg. Az ilyen kapszulákat általában akkor alkalmazzák, amikor előnyös az orális alkalmazás. Mivel a találmány szerinti mikrokapszulák olyan maggal rendelkeznek, amely gázzal van töltve, ezáltal az ilyen mikrokapszulák ideálisan alkalmazhatók olyan rendszerek előállítására, amikor a hatóanyag adagolása „lebegő-körülményeket igényel. A találmány szerinti mikrokapszulák alkalmasak lebegőhatás kiváltására akár porként csomagolva nagyméretű polimer kapszulákban, akár megfelelően tablettákká feldolgozva.
A találmány vonatkozik az olyan injektálható készítményekre is, amelyek egy hatékony mennyiségű mikrokapszula gyógyszerészetileg alkalmazható folyékony vivőanyagban (amely a szokásos adalékokat és stabilizátorokat is tartalmazza) való szuszpenziójából állnak.
HU 226 896 Β1
A találmány tárgya továbbá eljárás szilárd mikrokapszulák előállítására oly módon, hogy egy vagy több biodegradálható, vízben oldhatatlan, szobahőmérsékleten szilárd lipidet és adott esetben egy biodegradálható polimert feloldunk egy szerves oldószerben vagy oldószer elegyben, az oldatot elkeverjük egy vizes fázissal, az elegyet emulgeáljuk, és így egy „olaj a vízben” emulziót állítunk elő, hozzáadunk egy újradiszpergálást elősegítő szert, az elegyet megfagyasztjuk, majd levegő vagy gáz jelenlétében liofilizáljuk, és így egy levegővel vagy gázzal töltött félgömb vagy gömb alakú mikrokapszulát kapunk. A kapott port vizes vivőanyagban diszpergáljuk, a levegőt vagy gázt tartalmazó mikrokapszulákat dekantálással elválasztjuk a törmeléktől és a kapott mikrokapszulákat megszárítjuk.
A membrán pontos összetételének függvényében, például amikor biodegradálható polimer keveréket használunk, a fenti eljárást úgy módosíthatjuk, hogy a szerves oldószer egy további elpárologtatását is beépítjük. Ilyenkor ezt az elpárologtatást az „olaj a vízben” emulzió kialakítása után végezhetjük. Amikor a mikrokapszula zsíroldható, fiziológiailag aktív anyagot tartalmaz, ezt az anyagot a membránt alkotó anyag szerves oldatához adjuk hozzá, mielőtt azt a vizes fázissal elkeverjük.
A lipidoldatok előállításához használt szerves oldószerek lehetnek tiszta oldószerek vagy oldószerkeverékek. Az oldószerkeverékek esetében a biodegradálható polimer fajtájától és mennyiségétől függően a keverék tartalmazhat vízben oldható és vízben oldhatatlan szerves oldószereket. A vízben oldhatatlan szerves oldószerek lehetnek alkánok, cikloalkánok, aromás szénhidrogének, éterek vagy halogénezett szénhidrogének. Közelebbről az oldószer lehet toluol, xilol, ciklooktán, ciklohexán, kloroform, tetraklór-metán, difluortetraklór-etán, dibutil-éter, diizopropil-éter, izubutil-metil-keton vagy ezek elegye.
Bármely vízoldható oldószert használhatunk, előnyös a tetrahidrofurán (THF). Az eljárást könnyen végezhetjük akkor, ha a vizes fázist tetrahidrofuránnal telítjük, mielőtt azt a szerves oldattal elkeverjük. Nyilvánvaló, hogy a vizes fázis tartalmazhat továbbá különböző mennyiségben ionos vagy nemionos felületaktív anyagokat is, amelyek az emulziót stabilizálják. Ha az „olaj a vízben” emulziót képződése után gyorsan megfagyasztjuk, akkor dolgozhatunk felületaktív anyag nélkül is. Bármely ismert felületaktív anyag használható, előnyösek azonban a polietoxi-polipropoxi blokk-kopolimerek és a foszfolipidek.
A találmány szerinti mikrokapszulák egyidejűleg több hatóanyagot is tartalmazhatnak. Amint már említettük, a kapszula tartalmazhatja a fiziológiailag aktív komponenst a membránban, de tartalmazhatja a hatóanyagot magában a magban is. A magban alkalmazott hatóanyagok közül a következő vegyületeket említjük meg: inzulin, peptidek, polipeptidek, immunmodulátorok, hormonok, enzimek és enziminhibitorok, heparin, vérfehérjék, nukleotidok, szacharidok, morfin, proxifillin, ionos és nemionos jódozott kontrasztanyagok, például iopamidol, iomeprol és hasonlók, MRI kontrasztanyagok, például gadoliniumkomplexek, különböző kelátképző szerekkel, például Gd-BOPTA, Gd-DTPA, Gd-EDTA és hasonlók, előnyösek az inzulin és az iomeprol. Amikor a mag levegővel vagy gázzal van töltve és a membrán tiszta lipidből vagy legfeljebb 75 tömeg0! biodegradálható polimert tartalmazó lipidkeverékből készül, akkor a találmány szerinti mikrokapszulák alkalmasak emberi vagy állati test szerveinek ultrahangos leképzésére. Magától értetődik, hogy ebben az esetben a mikrokapszula pontos összetétele attól függ, hogy milyennek kívánjuk a mikrokapszula testből való kiürülését. Ultrahangos leképzés alkalmas kontrasztanyagot könnyen előállíthatunk, ha a találmány szerinti mikrokapszulát megfelelő fiziológiailag alkalmazható vizes hordozóanyagban, például puffereit vagy nem puffereit fiziológiai sóoldatban (0,9% vizes NaCI; puffer 10 mmol Trisz-HCI) vagy 5%-os vizes dextróz- vagy mannitoldatban vagy 2,6%-os vizes glicerinoldatban szuszpendáljuk. Amikor olyan injektálható gyógyászatilag hatékony készítményt kívánunk előállítani, amely a találmány szerinti mikrokapszulát tartalmazza, akkor a hatóanyagot tartalmazó mikrokapszulát a szokásosan alkalmazott, a szokásos adalékokat és stabilizátorokat tartalmazó fiziológiailag alkalmazható vivőanyagban szuszpendáljuk.
A következőkben a találmány néhány példával illusztráljuk.
1. példa
Különböző mennyiségű tripalmitint (lásd az 1. táblázatot) feloldunk 0,6 ml szén-tetrakloridban és a kapott oldatot 40 ml desztillált vízben, amely 0,1% Synperonic F108-at (ICI termék) tartalmaz, Polytron homogenizátor segítségével (10 000 ford./perc, 1 percig) emulgeáljuk. A kapott cseppecskék átlagos átmérője fotonkorrelációs spektrométerrel (Malvern Master Sizer) meghatározva 4 pm.
Az emulziót 500 ml-es üvegedénybe adjuk, amely 250 mg szarvasmarha-szérumalbumint (Sigma termék) 10 ml desztillált vízben oldva tartalmaz. Keverés után a kapott oldatot gyorsan lehűtjük -40 °C-ra és liofilizáljuk (CHRIST). Liofilizálás után a kapott lepényt 12 ml desztillált vízben újraszuszpendáljuk. A levegőt tartalmazó mikrokapszulák a felületre emelkednek, a törmelék, törött héjak és hasonlók oldatban maradnak vagy az edény aljára ülepednek. A lebegőkapszulákat kinyerjük, 0,9%-os NaCI-ban újraszuszpendáljuk és a mikrokapszulákban aliquot mennyiségeket pásztázó elektronmikroszkóppal (SEM) megelemezzük. Átlagosan 4 μΐτι-es gömb alakú mikrokapszulákat figyelünk meg, amelyek bizonyos esetekben látható pórusokkal rendelkeznek (lásd az 1. ábrát). A porózus mikrokapszulák gyakrabban tapasztalhatók kb. 50 mg vagy annál alacsonyabb tripalmitinkoncentrációnál. Magasabb tripalmitinkoncentrációk esetén, vagyis 50 mg-on felül, tripalmitinpelyhek figyelhetők meg a mikrokapszulák felületén. Az átlagos falvastagság meghatározásához bizonyos számú mikrokapszulát két üveglemez közé helyezünk és eltörünk. Ezután a vastagságot SEM eljárással becsüljük meg.
HU 226 896 Β1
1. táblázat
Hozzáadott tripalmitin mg-ban Közelítő falvastagság nm-ben Összes keletkezett mikrokapszula (107/ml-ben)
10 0,1
30 70 6,0
50 70-100 26
75 160 48
100 300 89
200 300-500 80
A táblázatból látható, hogy a tripalmitin mennyiségének növekedésével növekszik a mikrokapszulák falvastagsága és ezzel együtt szintén növekszik az érintetlen (vagyis lebegő) mikrokapszula hozama is.
Ha a fenti példát megismételjük azzal az eltéréssel, hogy liofilizálás helyett a kapott emulziót rotációs elpárologtatókészülékbe helyezzük és a szerves oldószert lassan lepároljuk, akkor a kapott lepény szilárd tripalmitinrészecskékből álló kristályszerű lerakódás formájú lesz (lásd a 2. ábrát).
2. példa
Az 1. példában leírtak szerint járunk el, azzal az eltéréssel, hogy más biodegradálható lipideket és/vagy oldószereket használunk. Lebegő mikrokapszulákat állítunk elő trigliceridekkel (triarachin, trisztearin, tripalmitin, trimirisztin, trilaurin), vegyes trigliceridekkel (disztearoil-monooleil-glicerid), digliceridekkel (dipalmitin), zsírsavakkal (palmitinsav, sztearinsav), koleszterin-észterekkel (koleszterin-palmitát) és viaszokkal (például mirisztil-palmitát). Kereskedelmi forgalomban kapható lipidkészítmények, például hidrogénezett növényi olaj (Lutrilab) vagy telített poliglikolizált gliceridek (Gelucire, Gattefossé, FR) szintén használhatók. A következőkben felsorolt vízben oldhatatlan oldószerekkel kaptunk kielégítő eredményeket: toluol, xilol, ciklooktán, ciklohexán, difluor-tetraklór-etán, dibutil-éter, diizopropil-éter, kloroform, izobutil-metil-keton. Újradiszpergáló szerként különösen hatékony a szarvasmarhaszérumalbumin, a poli(vinil-alkohol), a polietilénglikol, valamint a polietoxi-polipropoxi blokk-kopolimerek (poloxamerek, Pluronic vagy Synperonic kereskedelmi néven kapható termékek).
3. példa
Az 1. példában leírtak szerint járunk el, azzal az eltéréssel, hogy szén-tetraklorid helyett vízben oldható és vízben oldhatatlan oldószerek keverékét, például 0,6 ml ciklooktán és 30 ml tetrahldrofurán keverékét használjuk. Ilyen körülmények között mechanikai keverés (1000 ford./perc) elegendő stabil emulzió előállításához, nincs szükség homogenizátorra. A liofilizálás előtt a tetrahldrofurán legnagyobb részét rotációs evaporátorban 15 °C-on 30 percig 15 Hgmm nyomáson lepárlással eltávolítjuk. Lebegő mikrokapszulákat állítunk elő dipalmitin, trisztearin, tripalmitin, palmitinsav és sztearinsav felhasználásával.
A lipidek keverékével szintén jó hozammal állítunk elő lebegő mikrokapszulákat, például tripalmitint és 5-40 tömeg% egy vagy több következő lipidet keverünk össze: triundekanin, koleszterin, palmitinsav, szebacinsav, monopalmitin és dipalmitin.
4. példa
A 3. példában ismertetett eljárással lipidek és biodegradálható polimerek keverékéből állítunk elő mikrokapszulákat. Például politejsav-koglikolsav (Boehringer-lngelheim, DE, ResomerR207 nevű terméke), polifoszfazén, poliglutámsav-észterek. Biodegradálhatósági méréseket végzünk a tiszta gliceridekkel készített mikrokapszulákkal, és azt tapasztaljuk, hogy a polimert nem tartalmazó mikrokapszulák teljesen megemésztődnek 24 óra alatt. Habár a különböző gliceridek (dipalmitin, tripalmitin és trisztearin) között biodegradálhatóság szempontjából különbséget találtunk, a különbség kicsi, a gliceridek és biodegradálható polimerek keveréke esetén kapott eredményekhez képest.
Mikrokapszulákat állítunk elő a 3. példában leírtak szerint különböző arányú tripalmitin és poliglutámsavészter keverékből. A felhasznált polimert izoamil-alkohollal észteresítjük (észteresítési fok: 65%), majd nyomnyi mennyiségű 14C-etanollal (Du Pont-NEN) jelezzük. A tiszta tripalmitinből készített kapszulákat 14Ctripalmitinnel (Amersham) jelezzük. A mikrokapszulák átlagos átmérője 3,5 és 4,5 pm közötti. A mikrokapszulákat sóoldatban szuszpendáljuk és intravénásán injektáljuk egerekbe (6*109 mikrokapszulát kg-onként). Három egérből álló csoportokat három nap (72 óra), 28 nap (672 óra) és 90 nap (2160 óra) elteltével leölünk. Mivel a mikrokapszulákat elsődlegesen a máj veszi fel, a mikrokapszulák biodegradálhatóságát a máj összes rádióaktivitása mérésével határozzuk meg. Az eredményeket a 2. táblázatban tüntetjük fel.
2. táblázat
Tripalmi- tin/poli- glutámsav tömeg%- ban Az injektált dózis százaléka a májban
1 óra 72 óra 672 óra 2160 óra
elteltével
100/0* 38 2 0 0
87,5/12,5 52 18 3 0
75/25 67 70 11 1
50/50 76 76 31 4
25/75 71 73 57 18
0/100 73 75 65 18
* A kapszulákat 14C-tripalmitinnel jeleztük. A többi esetben a polimert jeleztük.
A táblázatból látható, hogy valamennyi esetben három nap után nagy a radioaktivitás a májban. A 100%ban tripalmitinből álló kapszulák esetében 3 nap elteltével a kapszulák már megemésztődtek és a bomlástermékek eltávoztak. Másrészről a polimert tartalmazó
HU 226 896 Β1 kapszulák lassabban degradálódnak. 75 vagy 50% tripalmitintartalommal a kapszulák 28 nap elteltével nagyrészt megemésztődtek, míg a 25% tripalmitint tartalmazó kapszulák csaknem úgy viselkednek, mint a tiszta polimer mikrokapszulák. Hasonló eredményeket kapunk trisztearin/politejsav-koglikolsav mikrokapszulákkal is.
Az eredmények vizsgálatából látható, hogy a biodegradálhatóság nem lineárisan függ az összetételtől, vagyis a biodegradálhatóság nem egyenes arányban növekszik vagy csökken a kevésbé biodegradálható komponens (a polimer mennyiségének függvényében), hanem a készítmény biodegradálhatóságát főként vagy jobban meghatározza a gliceridek biodegradálhatósága, mint a polimereké. Ez különösen így van a 100%-tól 25% glicerid vagy a 0-75% (tömeg%) biodegradálható polimer tartományban.
Ez azt jelenti, hogy ha a gliceridből több, mint 25% mennyiség van jelen, akkor ennek nagyobb a hatása a keverék biodegradálhatóságára, mint amit a polimerek okozhatnak, és így a keverék jobban biodegradálható, mint amit az egyedi jelen lévő mennyiségek alapján várni lehet. Ez világosan mutatja, hogy a keverék biodegradálhatósága nem az egyedi biodegradálhatóságok egyszerű összege, hanem a feleslegben lévő komponens határozza azt meg, bár oly módon, hogy a gliceridek biodegradálhatóságának nagyobb a hatása. Az olyan készítmények esetén, amelyek több, mint 75 tömeg% polimert tartalmaznak, a biodegradálhatóság gyorsan megközelíti a tiszta polimerét.
5. példa
Diazepamot (7-klór-1,3-dihidro-1 -metil-5-feniI-2H1,4-benzo-diazepin-2-on, Valium®, Roche) tartalmazó mikrokapszulákat állítunk elő az 1. példában leírtak szerint, 15 mg diazepam és 85 mg tripalmitin felhasználásával. Az emulziót mechanikai keveréssel állítjuk elő, 0,1% poli(vinil-alkohol)-t (PVA) tartalmazó vizes közegben, majd a kapott készítményt -40 °C-ra lehűtjük és liofilizáljuk. A kapott lepényt vízben újraszuszpendáljuk annak érdekében, hogy csak a lebegőkapszulákat nyerjük ki. A lebegő- (levegővel töltött) kapszulákat összegyűjtjük és megszárítjuk. A diazepamban kifejezett hozam 42%. A kapszulák mérete széles határok között változik, 5 pm és >100 pm között. In vitro a „lebegőkapszulák” fokozatosan és egyenletesen adják le a hatóanyagot a vizes közegbe 12 óra alatt. Ezen eredmények alapján várható, hogy a találmány szerinti hatóanyagot tartalmazó lebegő mikrokapszulák orálisa adagolás után hosszabb ideig (például 9 órán keresztül) a gyomorban maradnak és ott lassan és folyamatosan adják le a bezárt hatóanyagot. Összehasonlításul egy szokásos, nemlebegő tabletta, amely a szabad hatóanyagot tartalmazza, azonnal feloldódik, ebben az esetben a hatóanyagot „túladagolva” adja le. Ha pedig az oldódását lassítjuk, akkor eltávozik a gyomorból a szokásos áthaladási időn belül, vagyis legfeljebb az adagolás után 2 órán belül. A találmány szerinti mikrokapszulák tehát előnyösebbek, mint a szokásos vagy nemlebegő mikrokapszulák vagy részecskék.
6. példa
Mikrokapszulákat készítünk az 1. példában leírtak szerint, egyrészt 5 mg tetrakain (bázisos forma, Sigma) és 30 mg trisztearin, másrészt 5 mg tetrakain és 50 mg trisztearin felhasználásával. A két készítményből hasonló átlagos méretű, 4,5 pm átmérőjű, de különböző falvastagságú mikrokapszulákat kapunk. A 30 mg trisztearint tartalmazó készítményből „vékony falú” (60-70 nm) mikrokapszulákat, az 50 mg trisztearint tartalmazó készítményből „vastag falú” (80-100 nm) mikrokapszulákat kapunk. A tetrakain beépülési hozama 30%, illetve 50%. Összehasonlítottuk a vékony falú és a vastag falú mikrokapszulák hatóanyag-leadási tulajdonságait. Azonos mennyiségű vékony falú és vastag falú mikrokapszulát szuszpendáltunk 10 ml 0,9%-os nátrium-klorid-oldatban. A mintákat azután dialíziszsacskókba tettük (molekulatömeg-határ 15 000), majd a zacskókat 40 ml 0,9%-os nátrium-kloridban szuszpendáltuk. A dializátumból 100 pl-es aliquot mennyiségeket összegyűjtünk, 1 ml 60%-os vizes tetrahidrofuránnal elkeverjük és meghatározzuk a tetrakainleadást az idő függvényében 307 nm-es ultraibolya spektrofotometriás eljárással. Azt tapasztaljuk, hogy a vékony falú mikrokapszulák esetén a leadás nagyon gyors, mivel a beépült hatóanyag 75%-a 8 óra alatt felszabadul, míg a vastag falú mikrokapszulák esetében 8 óra alatt a hatóanyagnak csak 53%-a szabadul fel. Ha figyelembe vesszük, hogy a hatóanyag-leadásban a különbség (vagy lassulás) 22%, a fent említett rendkívül kis falvastagság-különbség esetén, feltételezhető, hogy a mikrokapszulák faivastagságának további szabályozásával nagyon tág határok közt változtatható a hatóanyag leadása. Tehát a falvastagság szabályozásával lehetővé válik a hatóanyag leadásának valamely kívánt értékre történő beállítása.
7. példa
Az 1. példában leírtak szerint járunk el úgy, hogy különböző hatóanyagokat adunk a biodegradálható lipidhez. Különösen jó eredményeket kapunk E-vitaminnal, prednizolonnal, klór-amfenikol-palmitáttal, norgesztrellel és szalbutanollal.
8. példa
Az 1. példában előállított mikrokapszulák alkalmazhatóságát vizsgáljuk ultrahangos leképzéshez való kontrasztanyagként, oly módon, hogy mérjük ml-enként 7-105 mikrokapszulát tartalmazó szuszpenziók visszaszórási koefficiensét 7 MHz-en. Az eredményeket a 3. táblázatban tüntetjük fel.
3. táblázat
Hozzáadott tripalmitin mg-ban Visszaszórási koefficiens (cnríxsr1)
40 0,013
75 0,009
100 0,0041
200 0,0033
HU 226 896 Β1
Amint az a 3. táblázatból és a 3. ábrán látható, minél vékonyabb falú a mikrokapszula (vagyis minél kevesebb tripalmitinnal készítjük a mikrokapszulát), annál jobban alkalmas a készítmény ultrahangos leképzéshez. Amikor a falvastagságot például 60 nm-ről (a
3. ábrán C40) 160 nm-re (a 3. ábrán C75), majd tovább 300 nm-re (a 3. ábrán C100, vagyis 100 mg tripalmitinnel készült), vagy még tovább (a 3. ábrán C200) növeljük, akkor az ultrahangos leképzéshez való alkalmazhatóság csökken. Amikor a koncentráció eléri a 100 mg-ot és a falvastagság kb. 90 nm, ez az alkalmasság nagyon alacsony már, ami azt jelzi, hogy a mikrokapszula fala túl merevvé válik ahhoz, hogy az ultrahangvibrációk által kiváltott nyomásváltozásokra hatékonyan és ténylegesen reagáljon. Ez különösen jól látható, amikor az ultrahangos jel csökkenését a mikrokapszula falvastagságának és a mikrokapszula szuszpenzióban való koncentrációjának a függvényében rajzoljuk fel (lásd a 4. ábrát). A görbéből látható, hogy a jel gyengülése egyenes arányban változik a falvastagsággal és ha a mikrokapszula falvastagságát 50%-kal csökkentjük, akkor az ultrahangos jel gyengülése kétszeresre növekszik.
9. példa
100 mg szárított mikrokapszulát készítünk az 1. példa szerinti eljárással 50 nm és 100 nm közötti falvastagsággal. 3 mg ilyen kapszulát 2 ml fiziológiai sóoldatban diszpergálunk. A szuszpenzió erős ultrahangos jelet ad a veseveröérben 2 órán keresztül pulzáló és tüzes Doppler-módban, nyúlnak történő intravénás injektálás után.
A kísérletet megismételjük a 3. példa szerint előállított mikrokapszulákkal 30, 50 és 75% politejsav-koglikolsav-glikolsav keveréket használva. A mikrokapszulákat vizes sóoldatban szuszpendáljuk és intravénásán injektáljuk nyulakba. A három mintával kapott ultrahangos válasz egyaránt hatékony.
10. példa
Vékony falú mikrokapszulákat állítunk elő az 1. példában leírt eljárással 50 mg tripalmitinból. A kb. 4 pm-es mikrokapszulákat liofilizálás után kinyerjük, sóoldatban dekantáljuk (5 ml, ml-enként 6-108 mikrokapszula), majd 50%-os vizes iomeprololdatba (ami egy nemionos jódozott kontrasztanyag, a Bracco cég, Olaszország, terméke) visszük nyomásálló edénybe. Az üres mikrokapszulákat megtöltjük a vizes kontrasztanyagoldattal, oly módon, hogy egy percig 2-4 bar nyomást alkalmazunk, miközben a mikrokapszulák lesüllyednek. A töltött mikrokapszulákat azután lassú centrifugálással kinyerjük, újraszuszpendáljuk kevés desztillált vízben, amely 10 mg/ml albumint tartalmaz, majd megszárítjuk. A kapott port desztillált vízben újraszuszpendáljuk és a lebegő mikrokapszulákat kinyerjük. Ezt a műveletet néhányszor megismételjük, mindaddig, amíg a kapszulába nem zárt iomeprolt eltávolítjuk. A beépített iomeprol elemzését úgy végezzük, hogy a készítményből aliquot mennyiségeket nagy nyomás (általában 4 bar) alá helyezünk, majd egy órán keresztül szobahőmérsékleten inkubáljuk, majd ultraibolya spektrofotometriás eljárással megmérjük a leadott iomeprolt. Az eredmények azt mutatják, hogy egy mg szárított mikrokapszulába 0,5-2 mg iomeprolt kapszuláztunk. 40 mg (száraz tömeg) iomeprollal töltött mikrokapszulát tartalmazó 0,9%-os nátrium-klorid-oldatot intravénásán patkányba injektálunk, majd komputertomográfiás eljárással megvizsgáljuk a májat. A májkontraszt jelentősen javul. Hasonló módon inzulinnal töltött mikrokapszulákat is előállítunk és az előbbinél még nagyobb mennyiséget tudunk bekapszulázni.
A példákból látható, hogy a találmány szerinti mikrokapszulákat hidrofil vegyületekkel meg lehet tölteni.

Claims (30)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Szilárd mikrokapszula, amelynek átlagos mérete 0,1 pm és 1000 pm közötti, amely rendelkezik egy biodegradálható membránnal, amely egy levegő- vagy gázmagot foglal magában, azzal jellemezve, hogy a membrán tartalmaz legalább 25 tömeg% egy vagy több biodegradálható, vízben oldhatatlan, szobahőmérsékleten szilárd lipidet, amelyet a mono-, di- vagy trigliceridek, a legalább 12 szénatomos zsírsavak, zsírsav-észterek, szterinek, viaszok és ezek keverékei közül választunk.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a glicerid mono-, di- vagy trimirisztin, -palmitin vagy -sztearin vagy ezek keveréke, előnyösen tripalmitin vagy trisztearin.
  3. 3. Az 1. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a zsírsav arachidinsav, behénsav, palmitinsav, sztearinsav, szebacinsav, mirisztinsav vagy erukasav, előnyösen sztearin-, palmitin-, szebacinvagy mirisztinsav.
  4. 4. Az 1. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a szterin koleszterin, fitoszterin, lanoszterin, ergoszterin vagy szterin és valamely 3. igénypontban felsorolt zsírsav észtere, előnyösen koleszterin.
  5. 5. Az 1. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a membrán legalább részben kristályos vagy félkristályos.
  6. 6. Az 1. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a membrán legfeljebb 75 tömeg% biodegradálható polimert is tartalmaz.
  7. 7. A 6. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a membrán legfeljebb 50 tömeg%, előnyösen legfeljebb 20 tömeg%, különösen előnyösen legfeljebb 10 tömeg% biodegradálható polimert tartalmaz.
  8. 8. Az 1., 2. vagy 3. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a mikrokapszula átlagos részecskeméret-eloszlása 0,1 pm és 100 pm közötti.
  9. 9. Az 1., 2. vagy 3. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a mikrokapszula porózus, porozitása 20-2000 nm.
  10. 10. Az 1. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a mikrokapszula nem koaleszcens, száraz és azonnal diszpergálható folyékony vivőanyagban.
    HU 226 896 Β1
  11. 11. A 10. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy tartalmaz egy újradiszpergálást elősegítő szert is.
  12. 12. A 11. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy az újradiszpergálást elősegítő szer albumin, poli(vinil-alkohol) vagy polietilénglikol.
  13. 13. A 6. vagy 7. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a biodegradálható polimer valamely poliaminosav, polilaktid vagy poliglikolid, vagy ezek kopolimerje, laktidek és laktonok kopolimerje, polipeptid, poli(orto)-észter, polidioxanon, ροΐί-β-aminoketon, polifoszfazén, polianhidrid, polihidroxi-butirát vagy polialkil-(ciano)-akrilát.
  14. 14. Az 1-13. igénypontok bármelyike szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy tartalmaz egy felületaktív anyagot is, amely polietoxi-polipropoxi blokk-kopolimer vagy foszfolipid.
  15. 15. Az 1-14. igénypontok bármelyike szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a membránba be van építve egy lipofil hatóanyag.
  16. 16. A 15. igénypont szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a lipofil hatóanyag E-vitamin, prednizolon, klór-amfenikol-palmitát vagy szalbutamol.
  17. 17. Az 1-15. igénypontok bármelyike szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a mag tartalmaz egy nemionos jódozott kontrasztanyagot vagy egy MRI kontrasztanyagot.
  18. 18. Az 1-15. igénypontok bármelyike szerinti mikrokapszula, azzal jellemezve, hogy a mag inzulint tartalmaz.
  19. 19. Eljárás kontrasztanyag előállítására, azzal jellemezve, hogy a 17. igénypont szerinti mikrokapszulát egy fiziológiailag alkalmazható vivőanyagfázisban szuszpendáljuk.
  20. 20. Injektálható készítmény, amely tartalmazza hatékony mennyiségű 1-18. igénypontok bármelyike szerinti mikrokapszula valamely gyógyászatilag alkalmazható, szokásos adalékokat és stabilizátorokat tartalmazó folyékony vivőanyagban készített szuszpenzióját.
  21. 21. Eljárás az 1-16. igénypontok bármelyike szerinti szilárd mikrokapszula előállítására, azzal jellemezve, hogy a következő lépéseket végezzük:
    a) egy biodegradálható lipidet és adott esetben egy biodegradálható polimert feloldunk egy szerves oldószerben vagy oldószer elegyben;
    b) a kapott oldatot összekeverjük egy vizes fázissal;
    c) a keveréket emulgeáljuk, és így „olaj a vízben” emulziót állítunk elő;
    d) az emulzióhoz egy újradiszpergálást elősegítő szert adunk;
    e) a kapott készítményt megfagyasztjuk;
    f) az előző lépésben kapott készítményt liofilizáljuk, és így egy félgömb vagy gömb alakú mikrokapszulákat tartalmazó port kapunk;
    g) a kapott port vizes hordozóanyagban diszpergáljuk;
    h) a levegőt vagy gázt tartalmazó mikrokapszulákat dekantálással elválasztjuk a törmeléktől; és
    i) a kinyert mikrokapszulákat megszárítjuk.
  22. 22. A 21. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az „olaj a vízben” emulzió kialakítása után a szerves oldószer egy részét elpárologtatjuk.
  23. 23. A 21. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az oldószer elegy vízoldható és vízben oldhatatlan szerves oldószer keveréke.
  24. 24. A 23. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a vízben oldhatatlan szerves oldószer alkán, cikloalkán, aromás szénhidrogén, éter vagy halogénezett szénhidrogén.
  25. 25. A 24. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az oldószer toluol, xilol, ciklooktán, ciklohexán, kloroform, tetraklór-metán, difluor-tetraklór-etán, dibutil-éter, diizopropil-éter, izobutil-metil-keton vagy ezek keveréke.
  26. 26. A 21. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a mikrokapszula tartalmaz egy felületaktív anyagot is, amely polietoxi-polipropoxi blokk-kopolimer vagy foszfolipid.
  27. 27. A 21. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy egy lipofil hatóanyagot is adunk a lipid oldathoz, mielőtt azt a vizes fázissal elkeverjük.
  28. 28. Az 1-14. igénypontok bármelyike szerinti mikrokapszula emberi vagy állati test szerveinek ultrahangos leképzésében történő felhasználásra.
  29. 29. Az 1-18. igénypontok bármelyike szerinti mikrokapszula alkalmazása injektálható, gyógyhatású készítmények előállítására.
  30. 30. Az 1-14. igénypontok bármelyike szerinti mikrokapszula alkalmazása ultrahangos leképezőszerek előállítására.
HU9601996A 1994-11-22 1995-11-21 Microcapsules, method of making and their use HU226896B1 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP94810660 1994-11-22
PCT/IB1995/001029 WO1996015815A1 (en) 1994-11-22 1995-11-21 Microcapsules, method of making and their use

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HU9601996D0 HU9601996D0 (en) 1996-09-30
HUT74912A HUT74912A (en) 1997-03-28
HU226896B1 true HU226896B1 (en) 2010-01-28

Family

ID=8218339

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9601996A HU226896B1 (en) 1994-11-22 1995-11-21 Microcapsules, method of making and their use

Country Status (20)

Country Link
US (2) US6333021B1 (hu)
EP (1) EP0755270B1 (hu)
JP (1) JP4202414B2 (hu)
KR (1) KR100416163B1 (hu)
CN (1) CN1066964C (hu)
AT (1) ATE337795T1 (hu)
AU (1) AU709240B2 (hu)
CA (1) CA2178602C (hu)
CZ (1) CZ291178B6 (hu)
DE (1) DE69535203T2 (hu)
ES (1) ES2271947T3 (hu)
FI (1) FI120081B (hu)
HU (1) HU226896B1 (hu)
IL (1) IL116081A (hu)
MX (1) MX9602697A (hu)
NO (1) NO315692B1 (hu)
PL (1) PL182989B1 (hu)
RU (1) RU2139046C1 (hu)
WO (1) WO1996015815A1 (hu)
ZA (1) ZA959941B (hu)

Families Citing this family (114)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5820850A (en) * 1995-06-07 1998-10-13 Molecular Biosystems, Inc. Gas-filled amino acid block co-polymer microspheres useful as ultrasound contrast agents
US6582392B1 (en) 1998-05-01 2003-06-24 Ekos Corporation Ultrasound assembly for use with a catheter
US6045777A (en) * 1997-06-30 2000-04-04 Acusphere, Inc. Method for enhancing the echogenicity and decreasing the attenuation of microencapsulated gases
CZ300725B6 (cs) * 1997-09-30 2009-07-29 Eli Lilly And Company 2-Methylthienbenzodiazepinová formulace
US6423345B2 (en) 1998-04-30 2002-07-23 Acusphere, Inc. Matrices formed of polymer and hydrophobic compounds for use in drug delivery
CA2369594A1 (en) * 1999-05-07 2000-11-16 Pharmasol Gmbh Lipid particles on the basis of mixtures of liquid and solid lipids and method for producing same
US6310014B1 (en) * 1999-10-05 2001-10-30 Phyzz Inc. Personal and household care compositions
JP5078212B2 (ja) 2000-06-02 2012-11-21 ブラッコ・スイス・ソシエテ・アノニム 内皮細胞を標的とするための化合物、それを含む組成物およびその使用方法
AU2002253454A1 (en) 2001-04-06 2002-10-21 Bracco Research S.A. Method for improved measurement of local physical parameters in afluid-filled cavity
JP2004532252A (ja) * 2001-05-31 2004-10-21 スカイファーマ インコーポレーテッド リポソームおよびミクロスフェア中のナノ懸濁物のカプセル化
MXPA03011049A (es) * 2001-06-01 2004-06-25 Yamanouchi Europ Bv Composiciones de conjugados de lipido-polimero.
CN1278675C (zh) 2001-07-10 2006-10-11 佳能株式会社 含聚羟基烷醇酸酯的粒状体及其制备方法
AU2002335077B2 (en) * 2001-10-19 2006-09-07 Idexx Laboratories, Inc. Injectable compositions for the controlled delivery of pharmacologically active compound
US6946137B2 (en) 2001-10-19 2005-09-20 Idexx Laboratories, Inc. Methods for the controlled delivery of pharmacologically active compounds
US6808715B2 (en) * 2001-11-09 2004-10-26 Or-Le-Or Ltd. Wrinkle cream
US20070196415A1 (en) * 2002-11-14 2007-08-23 Guohua Chen Depot compositions with multiple drug release rate controls and uses thereof
NZ533436A (en) * 2001-11-14 2007-10-26 Alza Corp Catheter injectable depot compositons and uses thereof
EP1446100B1 (en) * 2001-11-14 2011-05-04 Durect Corporation Injectable depot compositions and uses thereof
ATE319378T1 (de) 2001-12-03 2006-03-15 Ekos Corp Katheter mit mehreren ultraschall-abstrahlenden teilen
ES2506142T3 (es) 2002-03-01 2014-10-13 Dyax Corp. Péptidos de unión a KDR y a VEGF/KDR y su uso en diagnóstico
US7261876B2 (en) 2002-03-01 2007-08-28 Bracco International Bv Multivalent constructs for therapeutic and diagnostic applications
AU2003278807A1 (en) 2002-03-01 2004-08-13 Bracco International B.V. Kdr and vegf/kdr binding peptides and their use in diagnosis and therapy
US7794693B2 (en) 2002-03-01 2010-09-14 Bracco International B.V. Targeting vector-phospholipid conjugates
US8623822B2 (en) 2002-03-01 2014-01-07 Bracco Suisse Sa KDR and VEGF/KDR binding peptides and their use in diagnosis and therapy
DE60321325D1 (de) * 2002-03-20 2008-07-10 Innovativebio Biz Kowloon Mikrokapseln mit kontrollierter durchlässigkeit die ein nukleinsäureamplifizierungsreaktionsgemisch enthalten und deren benutzung als reaktionsgefäss für parallele reaktionen
US8226629B1 (en) 2002-04-01 2012-07-24 Ekos Corporation Ultrasonic catheter power control
US8245708B2 (en) * 2002-05-07 2012-08-21 The Research Foundation Of State University Of New York Methods, devices and formulations for targeted endobronchial therapy
US7607436B2 (en) * 2002-05-06 2009-10-27 The Research Foundation Of State University Of New York Methods, devices and formulations for targeted endobronchial therapy
EP2647400A1 (en) 2002-05-07 2013-10-09 The State University of New York at Stony Brook Devices for targeted endobronchial therapy
US6919068B2 (en) * 2002-05-17 2005-07-19 Point Biomedical Corporation Method of preparing gas-filled polymer matrix microparticles useful for echographic imaging
US20030215394A1 (en) * 2002-05-17 2003-11-20 Short Robert E. Microparticles having a matrix interior useful for ultrasound triggered delivery of drugs into the bloodstream
US20030225448A1 (en) 2002-05-28 2003-12-04 Scimed Life Systems, Inc. Polar radiopaque marker for stent
US20040001889A1 (en) * 2002-06-25 2004-01-01 Guohua Chen Short duration depot formulations
GB2399084B (en) * 2002-07-30 2007-01-31 Univ Liverpool Porous beads and method of production thereof
DK1539101T3 (da) * 2002-07-31 2009-04-27 Alza Corp Injicerbare, multi-modale polymere depotsammens tninger og anvendelser deraf
KR20050038008A (ko) * 2002-07-31 2005-04-25 알자 코포레이션 주사용 저장형 조성물 및 이의 용도
CN100381463C (zh) * 2002-09-18 2008-04-16 中国人民解放军免疫学研究所 用于生产治疗用乙型肝炎疫苗或药物的免疫原及其制备方法和用途
MXPA05007730A (es) * 2003-02-04 2006-01-31 Bracco Int Bv Agentes de contraste para ultrasonido y proceso para la preparacion de los mismos.
US20070128117A1 (en) * 2003-02-04 2007-06-07 Bracco International B.V. Ultrasound contrast agents and process for the preparation thereof
HUE039154T2 (hu) 2003-03-03 2018-12-28 Dyax Corp HGF receptort (cMet) specifikusan kötõ peptidek és alkalmazásaik
US20040185108A1 (en) * 2003-03-18 2004-09-23 Short Robert E. Method of preparing gas-filled polymer matrix microparticles useful for delivering drug
ITFI20030077A1 (it) * 2003-03-26 2004-09-27 Actis Active Sensors S R L Metodo per l'indagine ecografica tramite mezzi di contrasto
US7439268B2 (en) * 2003-07-18 2008-10-21 Idexx Laboratories Compositions containing prodrugs of florfenicol and methods of use
US20050049210A1 (en) * 2003-08-27 2005-03-03 Idexx Laboratories, Inc. Methods for the controlled delivery of pharmacologically active compounds
JP2007509989A (ja) 2003-10-31 2007-04-19 ポイント バイオメディカル コーポレイション 超音波造影剤として有用な再構成可能なミクロスフィア組成物
US9750821B2 (en) * 2003-12-22 2017-09-05 Bracco Suisse S.A. Gas-filled microvesicle assembly for contrast imaging
CN1897978B (zh) * 2003-12-22 2011-11-23 博莱科瑞士股份有限公司 具有用于反差成像的活性组分的充气微囊组件
GB0401950D0 (en) * 2004-01-28 2004-03-03 Unilever Plc Porous bodies and method of production thereof
US7341569B2 (en) 2004-01-30 2008-03-11 Ekos Corporation Treatment of vascular occlusions using ultrasonic energy and microbubbles
US10335757B2 (en) * 2004-03-05 2019-07-02 Specialty Earth Sciences Process for making environmental reactant(s)
US7431849B1 (en) * 2004-03-05 2008-10-07 Specialty Earth Sciences Llc Encapsulated reactant and process
US8012457B2 (en) 2004-06-04 2011-09-06 Acusphere, Inc. Ultrasound contrast agent dosage formulation
GB2417080B (en) 2004-08-13 2008-05-21 Stichting Tech Wetenschapp Intravascular ultrasound techniques
WO2006018433A1 (en) * 2004-08-18 2006-02-23 Bracco Research Sa Gas-filled microvesicles composition for contrast imaging
US7282487B2 (en) * 2004-10-28 2007-10-16 Idexx Laboratories Method for treating bacterial infections in horses or pigs with tilmicosin
US20060142234A1 (en) * 2004-12-23 2006-06-29 Guohua Chen Injectable non-aqueous suspension
ATE511512T1 (de) 2005-01-05 2011-06-15 Lilly Co Eli Olanzapinpamoat-dihydrat
EP1714642A1 (en) * 2005-04-18 2006-10-25 Bracco Research S.A. Pharmaceutical composition comprising gas-filled microcapsules for ultrasound mediated delivery
JP4680012B2 (ja) * 2005-09-05 2011-05-11 株式会社松風 半球状中空マイクロカプセル
EP1797919A1 (en) * 2005-12-16 2007-06-20 Bracco Research S.A. Liquid transfer device for medical dispensing containers
WO2007127176A2 (en) 2006-04-24 2007-11-08 Ekos Corporation Ultrasound therapy system
JP5154554B2 (ja) 2006-08-01 2013-02-27 ボストン サイエンティフィック サイムド,インコーポレイテッド 非線形イメージングのためのパルスインバージョンシーケンス
EP2089010A1 (en) * 2006-10-24 2009-08-19 The John Hopkins University Rapid release mini-tablets provide analgesia in laboratory animals
JP2008120780A (ja) * 2006-11-13 2008-05-29 Kazutoyo Kawasaki 胃部検診用造影剤
US20080305175A1 (en) * 2006-11-30 2008-12-11 Agency For Science, Technology And Research Micro-Container
EP2117603A2 (en) * 2006-12-19 2009-11-18 Bracco International B.V. Targeting and therapeutic compounds and gas-filled microvesicles comprising said compounds
US10182833B2 (en) 2007-01-08 2019-01-22 Ekos Corporation Power parameters for ultrasonic catheter
JP2008199905A (ja) * 2007-02-16 2008-09-04 Snow Brand Milk Prod Co Ltd 乳酸菌生残性向上剤
FR2917291B1 (fr) * 2007-06-14 2009-09-18 Cooperative Bretonne D Insemin Microcapsules contenant des spermatozoides de mammiferes, dose d'insemination les contenant et un porcede pour leur obtention
PL2170181T3 (pl) 2007-06-22 2014-08-29 Ekos Corp Sposób i aparat do leczenia wylewów wewnątrzczaszkowych
EP2476703A1 (en) 2011-01-14 2012-07-18 Bracco Imaging S.p.A Human antibodies cross-reacting with a bacterial and a self antigen from atherosclerotic plaques
US7550625B2 (en) * 2007-10-19 2009-06-23 Idexx Laboratories Esters of florfenicol
EP2090322A1 (en) 2008-02-18 2009-08-19 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Use of fsh receptor ligands for diagnosis and therapy of cancer
GB0811856D0 (en) * 2008-06-27 2008-07-30 Ucl Business Plc Magnetic microbubbles, methods of preparing them and their uses
CN104274866B (zh) * 2008-07-14 2016-08-24 波利皮得有限公司 持续释放药物载体组合物
EP2147684A1 (en) 2008-07-22 2010-01-27 Bracco Imaging S.p.A Diagnostic Agents Selective Against Metalloproteases
EP2346532B1 (en) * 2008-10-07 2020-10-07 Bracco Suisse SA Targeting construct comprising anti-polymer antibody and microvesicles binding to the same
US20110045095A1 (en) * 2008-10-08 2011-02-24 The Regents Of The University Of California Polymer-phospholipid shelled microbubbles
WO2010069943A1 (en) 2008-12-16 2010-06-24 Bracco Research Sa Device for bolus administration of contrast agent
AU2010272167B2 (en) 2009-07-14 2016-11-17 Polypid Ltd. Sustained-release drug carrier composition
EP2488160B1 (en) * 2009-10-16 2020-07-01 Lifecare Innovations Pvt. Ltd. Liposomal amphotericin formulation comprising cholesterol for treating fungal infections
JP5860409B2 (ja) 2010-01-19 2016-02-16 ポリピッド リミテッド 徐放性核酸マトリックス組成物
US8888736B2 (en) 2010-04-30 2014-11-18 H R D Corporation High shear application in medical therapy
MX354124B (es) 2010-04-30 2018-02-14 Hrd Corp Aplicacion de alto cizallamiento en terapia medica.
JP2013530961A (ja) * 2010-06-07 2013-08-01 ダウ アグロサイエンシィズ エルエルシー 高レベルの農業活性成分を含むマイクロカプセル懸濁剤
HUE052894T2 (hu) 2010-08-09 2021-05-28 Bracco Suisse Sa Célbajuttató konstrukció gázzal töltött mikrovezikulákhoz
US9770411B2 (en) 2010-12-24 2017-09-26 Bracco Suisse S.A. Methods of using gas-filled microvesicles covalently bound to an antigen
EP2474327A1 (en) 2011-01-07 2012-07-11 RWTH Aachen Microdosing of ultrasound contrast agents
WO2012095516A1 (en) 2011-01-14 2012-07-19 Bracco Imaging Spa Human antibodies cross-reacting with a bacterial and a self antigen from atherosclerotic plaques
EP2545908A1 (en) 2011-07-11 2013-01-16 RWTH Aachen Medium for microbubbles or microparticles and preparation thereof
WO2013151682A1 (en) 2012-04-06 2013-10-10 Children's Medical Center Corporation Process for forming microbubbles with high oxygen content and uses thereof
RU2502510C1 (ru) * 2012-04-24 2013-12-27 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Курская государственная сельскохозяйственная академия имени профессора И.И. Иванова Министерства сельского хозяйства Российской Федерации Способ получения микрокапсул лекарственных препаратов группы цефалоспоринов в конжаковой камеди в четыреххлористом углероде
RU2525158C2 (ru) * 2012-05-18 2014-08-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Курская государственная сельскохозяйственная академия имени профессора И.И. Иванова Министерства сельского хозяйства Российской Федерации Способ получения микрокапсул лекарственных препаратов группы цефалоспоринов в конжаковой камеди в толуоле
RU2514056C2 (ru) * 2012-08-21 2014-04-27 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Курская государственная сельскохозяйственная академия имени профессора И.И. Иванова Министерства сельского хозяйства Российской Федерации Способ инкапсуляции фенбендазола
EP2968163A4 (en) * 2013-03-15 2017-01-25 Children's Medical Center Corporation Hollow particles encapsulating a biological gas and methods of use
US10577554B2 (en) 2013-03-15 2020-03-03 Children's Medical Center Corporation Gas-filled stabilized particles and methods of use
EP2972387A1 (en) 2013-03-15 2016-01-20 Westfälische Wilhelms-Universität Münster Detection of acute renal allograft rejection
CN103349948B (zh) * 2013-06-21 2015-05-27 江南大学 一种植物甾烷醇微胶囊化方法
CA2917095C (en) 2013-07-03 2021-11-02 Bracco Suisse S.A. Devices and methods for the ultrasound treatment of ischemic stroke
US20160303242A1 (en) 2013-12-09 2016-10-20 Durect Corporation Pharmaceutically Active Agent Complexes, Polymer Complexes, and Compositions and Methods Involving the Same
RU2557950C2 (ru) * 2013-12-17 2015-07-27 Александр Александрович Кролевец Способ получения микрокапсул антиоксидантов
RU2564890C1 (ru) * 2014-05-20 2015-10-10 Александр Александрович Кролевец Способ получения нанокапсул антибиотиков в конжаковой камеди
RU2577298C1 (ru) * 2014-10-01 2016-03-10 Общество с ограниченной ответственностью "МедКонтрастСинтез" (ООО "МедКонтрастСинтез") Гепатотропное магнитно-резонансное средство
RU2596485C1 (ru) * 2015-02-24 2016-09-10 Александр Александрович Кролевец Способ получения нанокапсул креатина в геллановой камеди
RU2591800C1 (ru) * 2015-04-08 2016-07-20 Александр Александрович Кролевец Способ получения нанокапсул экстракта зеленого чая
RU2591802C1 (ru) * 2015-04-27 2016-07-20 Александр Александрович Кролевец Способ получения нанокапсул экстракта зеленого чая
RU2599843C1 (ru) * 2015-05-19 2016-10-20 Александр Александрович Кролевец Способ получения нанокапсул экстракта зеленого чая в пектине
WO2016201136A1 (en) 2015-06-10 2016-12-15 Ekos Corporation Ultrasound catheter
WO2017097853A1 (en) 2015-12-09 2017-06-15 Koninklijke Philips N.V. Interleaved beam pattern for sonothrombolysis and other vascular acoustic resonator mediated therapies
JP6991148B2 (ja) 2016-02-09 2022-01-12 ブラッコ・スイス・ソシエテ・アノニム セレクチン標的化のための組み換えキメラタンパク質
US10647045B1 (en) 2016-11-03 2020-05-12 Specialty Earth Sciences, Llc Shaped or sized encapsulated reactant and method of making
WO2018160752A1 (en) 2017-02-28 2018-09-07 Children's Medical Center Corporation Stimuli-responsive particles encapsulating a gas and methods of use
CA3167217A1 (en) 2020-01-13 2021-07-22 Durect Corporation Sustained release drug delivery systems with reduced impurities and related methods
WO2023137224A2 (en) * 2022-01-17 2023-07-20 Isp Investments Llc Biodegradable microcapsules with improved storage stability, process for preparing the same and method of use thereof

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5542935A (en) * 1989-12-22 1996-08-06 Imarx Pharmaceutical Corp. Therapeutic delivery systems related applications
AU636481B2 (en) 1990-05-18 1993-04-29 Bracco International B.V. Polymeric gas or air filled microballoons usable as suspensions in liquid carriers for ultrasonic echography
US5215680A (en) * 1990-07-10 1993-06-01 Cavitation-Control Technology, Inc. Method for the production of medical-grade lipid-coated microbubbles, paramagnetic labeling of such microbubbles and therapeutic uses of microbubbles
NZ244147A (en) 1991-09-03 1994-09-27 Hoechst Ag Echogenic particles which comprise a gas and at least one shaping substance, and their use as diagnostic agents
DE4232755A1 (de) * 1992-09-26 1994-03-31 Schering Ag Mikropartikelpräparationen aus biologisch abbaubaren Mischpolymeren
ES2127835T3 (es) * 1992-10-26 1999-05-01 Sanol Arznei Schwarz Gmbh Procedimiento para la preparacion de microcapsulas.
EP0693924B2 (en) * 1993-02-22 2008-04-09 Abraxis BioScience, Inc. Methods for (in vivo) delivery of biologics and compositions useful therefor

Also Published As

Publication number Publication date
PL182989B1 (pl) 2002-05-31
CZ291178B6 (cs) 2003-01-15
IL116081A (en) 2003-04-10
JP4202414B2 (ja) 2008-12-24
DE69535203T2 (de) 2007-07-19
US6403057B1 (en) 2002-06-11
EP0755270A1 (en) 1997-01-29
NO962843D0 (no) 1996-07-05
IL116081A0 (en) 1996-01-31
EP0755270B1 (en) 2006-08-30
CZ214096A3 (en) 1996-10-16
US6333021B1 (en) 2001-12-25
AU709240B2 (en) 1999-08-26
NO962843L (no) 1996-07-05
CN1066964C (zh) 2001-06-13
CN1139386A (zh) 1997-01-01
ES2271947T3 (es) 2007-04-16
CA2178602A1 (en) 1996-05-30
FI962917A0 (fi) 1996-07-19
KR100416163B1 (ko) 2004-03-19
JPH09511762A (ja) 1997-11-25
AU3814495A (en) 1996-06-17
RU2139046C1 (ru) 1999-10-10
PL315585A1 (en) 1996-11-12
ZA959941B (en) 1996-06-10
NO315692B1 (no) 2003-10-13
ATE337795T1 (de) 2006-09-15
CA2178602C (en) 2004-03-30
HU9601996D0 (en) 1996-09-30
MX9602697A (es) 1998-06-28
FI120081B (fi) 2009-06-30
HUT74912A (en) 1997-03-28
DE69535203D1 (de) 2006-10-12
FI962917A (fi) 1996-07-19
WO1996015815A1 (en) 1996-05-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU226896B1 (en) Microcapsules, method of making and their use
KR100703051B1 (ko) 약제 전달체로 사용되는 중합체 및 소수성 화합물로이루어진 매트릭스
JP2007533634A (ja) 注射、経口、または局所用の徐放性医薬製剤
US6033646A (en) Method of preparing fluorinated gas microspheres
AU676279B2 (en) Solid lipid particles, particles of bioactive agents and methods for the manufacture and use thereof
JP2006520375A (ja) 乾燥ポリマーと脂質の組成物
NO318460B1 (no) Fremgangsmate for fremstilling av mikropartikler for diagonistisk billeddannelse, sammensetning derav samt fremgangsmate for a oke hydrofobisiteten til mikropartikler.
JP2003501376A (ja) 疎水性薬物の持続性放出のための油コア組成物
JP2004532252A (ja) リポソームおよびミクロスフェア中のナノ懸濁物のカプセル化
JP2911732B2 (ja) 徐放性多核マイクロスフェア製剤およびその製法
CA2431890C (en) Lipid microparticles by cryogenic micronization
NZ286779A (en) Solid microcapsules with a gaseous core encapsulated in a biodegradable membrane (made from water insoluble, solid lipids); use as ultrasonic contrast agents
MXPA96002697A (en) Microcapsules, manufacturing method and its

Legal Events

Date Code Title Description
GB9A Succession in title

Owner name: BRACCO SUISSE S.A., CH

Free format text: FORMER OWNER(S): BRACCO RESEARCH S.A., CH

MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees