DE2045160A1 - Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine gegen die infektiöse Bursitis der Huhner - Google Patents

Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine gegen die infektiöse Bursitis der Huhner

Info

Publication number
DE2045160A1
DE2045160A1 DE19702045160 DE2045160A DE2045160A1 DE 2045160 A1 DE2045160 A1 DE 2045160A1 DE 19702045160 DE19702045160 DE 19702045160 DE 2045160 A DE2045160 A DE 2045160A DE 2045160 A1 DE2045160 A1 DE 2045160A1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
virus
baby
chickens
infectious bursitis
mouse
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
DE19702045160
Other languages
English (en)
Other versions
DE2045160B2 (de
DE2045160C3 (de
Inventor
Hans-Joachim Dr 3550 Marbach Bengelsdorff
Original Assignee
Behnngwerke AG, 3550 Marburg
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Behnngwerke AG, 3550 Marburg filed Critical Behnngwerke AG, 3550 Marburg
Priority to DE2045160A priority Critical patent/DE2045160C3/de
Priority to NL717112237A priority patent/NL150684B/xx
Priority to ES394860A priority patent/ES394860A1/es
Priority to CH1324571A priority patent/CH560760A5/xx
Priority to IL3768271A priority patent/IL37682A/xx
Priority to US00179539A priority patent/US3769400A/en
Priority to AT790471A priority patent/AT308967B/de
Priority to BE772448A priority patent/BE772448A/xx
Priority to DK446371A priority patent/DK129590B/da
Priority to FR7132926A priority patent/FR2106482B1/fr
Priority to GB4255271A priority patent/GB1327870A/en
Publication of DE2045160A1 publication Critical patent/DE2045160A1/de
Publication of DE2045160B2 publication Critical patent/DE2045160B2/de
Application granted granted Critical
Publication of DE2045160C3 publication Critical patent/DE2045160C3/de
Expired legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12—Viral antigens
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525—Virus
    • A61K2039/5254—Virus avirulent or attenuated
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/54—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the route of administration
    • A61K2039/541—Mucosal route
    • A61K2039/542—Mucosal route oral/gastrointestinal
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/55—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
    • A61K2039/552—Veterinary vaccine
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2720/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsRNA viruses
    • C12N2720/00011—Details
    • C12N2720/10011—Birnaviridae
    • C12N2720/10034—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

BEiIRINGWERKE AKTIENGESELLSCHAFT, Marburg / Lahn '
Aktenzeichen: P ! O HS 4GO: Q HOE ?ö/BGO5 ' Ma 12? Datum: 20. August 1970 Dr. Tg/stX ■
Verfahren zur Herstellung einer Lebeiidvaccine gegen die Infektiöse Bursitis der Hühner
Gegenstand der Anmeldung ist ein Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine gegen die Infektiöse Bursitis der Hühner (Gumborö-Disöase). .
Die Infektiöse Bursitis ist eine auf der ganzen Welt verbreitete Huhnerkrankheit, die vor allem junge Tiere in der 2. bis 6. Lebenswoche befällt. Die Tiere leiden an Dui-chfallen, zeigen Blutungen in der Muskulatur und blutignekrotisierende Entzündungen der Bursa fabricii, eines Anhangorgans des Enddarmes. Sie gehen entweder ein oder weisen verzögertes Wachstum und' ungenügende Futterverwertung auf. Der wirtschaftliche Schaden ist vor allen) bei dem kurzlebigen Mastgeflügel groß.
Es ist schon versucht worden, eine Vaccine gegen die Infektiöse Bursitis durch Passagen in embryonierten Hühnereiern herzustellen. Dies erwies sich jedoch als schwierig, da das Bursitis-Virus häufig nach 3 ~ 'f Passagen in der Eikultur nicht mehr vermehrt werden kann. Gelingt in Einzelfällen die Passierung, so ist der Virusgehalt niedrig und die Virussuspension für die Herstellung einer Vaccine schlecht geeignet.
Gegenstand der Erfindung ist nun ein Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine gegen die Infektiöse Bursitis der Hühner, daß dadurch gekennzeichnet ist, daß man das Infektiöse
2098U/1643
BAD ORIGINAL
~ 2 —
Bursitis-Virus unter Verwendung von Imiriunsuppressiva darch ca. 18 - 25 Serienpassagen an Babymäuse adaptiert und gleichzeitig attenuiert, das attenuierte Virus daraus extrahiert und auf bekannte Veise zu einer Vaccine aufarbeitet.
Vorzugsweise verwendet man 1-3 Tage alte Babymiiuse der weißen Maus oder der Mastoinys natalensis und tötet die infizierten Babymäuse für die Extraktion in moribundem Zustand bzw, arbeitet sie unmittelbar nach dem Verenden auf.
Das Infektiöse Bursitis-Virus wird zweckmäßig aus der Bursa
»fabricii bursitiskranker Hühner isoliert, indem man die Bursa homogenisiert und das Homogenat zentrifugiert. Die dadurch gewonnene virushaltige Suspension wird Babyrnäusen intraperitoneal injiziert. Es können auch eine oder mehrere Ir.ipassagen dazwischengeschaltet werden. Die ein bis drei Tage alten Babymäuse erhalten ,jeweils eine Applikationsdosis von etwa 0,05 ml" der Virussuspension, deren Viruskonzentration mindestens 10 Ei-IDj, /ml beträgt. Eine Ei-ID- ist dabei definiert als diejenige Viruskonzentration, die 50 $> der infi zierten Hühnerembryonen zum Absterben bringt oder virusspezifisch verändert. Eine Mäuse-ID,,« wird entsprechend definiert.
Nach der Infizierung erhalten die Babymäuse ein Iinmunsuppressivum subcutan injiziert. Dadurch werden die Abwehrkraft der Tiere erniedrigt und die klinischen Erscheinungen der Infektion begünstigt. Geeignete Immunsuppressiva sind z.B. Corticosteroide wie Cortison, Hydrocortison, Prednison, . —■ Prednisolon, 6-Methylprednisolon, Dexamethason und Paramethason sowie deren therapeutisch verwendete Ester ferner Antirnetaboliten wie 6-Mercaptopurin, alkylierende Agenzien wie Cyclophosphainid und schließlich Antilymphozytenserum und Antilymphozytenglobulin. Die Dosierung beträgt je nach der verwendeten Substanz 50 - 500^pro Babymaus; bei Corticostero iden . ·· wendet man z.B. 100 - 200^/ilaus an.
BAD ORiGfNAL
2098U/1643
20451
Nach einigen Tagen, zeigen sich bei den infizierton Tieren Lähmungen, In dieser Phase werden die Tiere getötet und init physiologischerKochsalzlösung zu einem 10- bis 20 $igen .....
Extrakt homogenisiert.. Uni Begleitproteine auszufällen, wird der Extrakt mit einem geeigneten Fällungsmittel, beispielsweise Halogenwasserstoff en. wie Chloroform etwa 1 Stunde lang ge-schüttelt und etwa 18 - 2.H Stunden bei etwa +k C gelagert.
Danach werden die gefällten Begleitproteine durch Zentrifugation entfernt. Der virushaltige Überstand wird für die folgende Mäusepassage verwendet.
Die Zeit zwischen der Infizierung und dem Auftreten der
Lähmungen verkürzt sich mit steigender Passagenzahl von ' "
anfangs etwa 8 bis auf 4 - 6 Tage. Wenn eine weitere Verkürzung auch durch Fortsetzung der Passagen nicht mehr erreicht werden kann, ist das Virus vollständig an Babymäuse adaptiert. Nach etwa 18 - 25 Mäusepassagen ist das Infektiöse Bursitis-Virus für Hühner jeden Alters attenuiert.
Das Iramunsuppressivum-Präparat wird den Tieren bis etwa zur 10..- 12. Mäusepassage injiziert. Danach ist eine Applikation von Immunsuppressiva nicht mehr notwendig.
Für·' die Herstellung der Vaccine wird der von Begleitproteinen befreite Mäuseextrakt mit einem Schutzkolloid versetzt, ä
z.B. mit entrahmter Milch oder der im Handel unter dein Warenzeichen Haemaccel ' gemäß DBP 1 118 792
hergestellten Infusionslösung, die ein Gelatinederivat _;
enthält. Die Konzentration des SchutzkoU oids ist je nach ■der verwendeten Substanz verschieden und liegt vorzugsweise bei 1,0 - 5»0 f'. Die das Schutzkolloid enthaltende Virussuspension wird anschließend lyophilisiert. Die Trocken-■vaccine enthält pro Impfdosis 10 V bis 10 Mäuse-ID^Q Infektiöses Bursitis-Virus und wird für die Immunisierung der Hühner im Trinkwasser aufgelöst. Um eine schnellere Trinkwasserauf nähme zu erreiche:», läßt nian die Hühner vor der Vaccination zweckmäßigerweise ein bis zwei Stunden dursten.
' 2098U/1643
BAD ORIGINAL ·
Dei spiel 1
Aus der Bursa fabricii bursitisspezifisch eiicrankter Hühner wurde ein Ilomogenat hergestellt und embryoniertc Hühnereier damit inokuliert. Ein Hühnerei, dessen Embryo am k. Tag nach der Infektion gestorben war, wurde geöffnet und der Embryo mit der ihn umgebenden Allantoamnionflüssigkeit entnommen, homogenisiert und mit physiologischer Kochsalzlösung extrahiert. Der Extrakt wurde eine Stunde mit. 10 Vol-f; Chloroform geschüttelt und anschließend 5 Minuten bei 3000 13/Min. zentrifugiert. Der virus-haltige Extraktionsüberstand wurde in Dosen von 0,05 ml intraperitoneal auf zwei Tage alte Babymäuse verimpft (1. Babymauspassage), Der Virusgehalt
2 5
pro 0,05 ml betrug 10'' Ei-IDj,. Nach der Virusinfektion erhielten die Babymäuse je 100 / Prednisolonheinisuccinat (Na-SaIz) subcutan injiziert. Acht Tage nach der Infektion der Tiere traten erste deutliche Lähmungssymptome sowie Gleichgewichtsstörungen auf. Die Babymäuse wurden daraufhin für die 2. Babymauspassage getötet und mit physiologischer Kochsalzlösung zu einem 10 ^igen Extrakt homogenisiert. Der Extrakt wurde eine Stunde mit 10 Vol··^ Chloroform geschüttelt und 5 Minuten bei 3OOO U/Min. zentrifugiert. Eür die zweite Babymauspassage wurden 1 Tag alte Babymause verwendet, die nach der Infektion ebenfalls subcutnn mit je 100 j/Prednisolonhemisuccinat (Na-SalZ) behände] t wurden. Nach dem Auftreten deutlicher Lähmungperscheinungen wurden die Babymäuse abermals getötet und das Virus daraus - wie bei der ersten Babymauspassage beschreiben - für die dritte Eabyrnaiispassage extraliiert. Die Passagen wurden fortgesetzt bis zur 12. Babymauspassage, Die I3. Babymauspassage wurde erstmals ohne nachfolgende Corticosteroid-Injektion auf 1 Tag alten Babymausen durchgeführt. Die ersten spezifischen Krankheitserscheinungeii traten hierbei am '( . Tag nach der Infektion axif. Die Aufbereitung der getöteten Babymäuse, die Virusextralc I i on und die Vox t ei r führung der Mnuscpassagen erfolgten in der beschriebenen Koise.
2 0 9814/1643 BAD ORiQhMAL
■■'.-■■ - 5 - ■ ■-■ ■'■■■■
. 1O zwei Τείβ-β alte Babymause iiurdeii mit- je 0,05 ml der 20. Babymauspassage des Infektiösen Bursitis-Virus intraperitojieal infiziert, nach 5 Tagen, auf dem Höhepunkt der Lähmungsphase, getötet und mit physiologischer Kochsalzlösung· zu einem 20 ^,igen Extrakt homogenisiert. Der Extrakt wurde eine Stunde mit 10 VoI-^o Chloz"oform geschüttelt und nach 18-stündiger Lagerung bei- +Ί- C fünf Minuten lang bei 3°00 U/Min. · zentrifugiert. 100 ml des virushaltigen TJb e-r st and es wrden mit 50 ml Haemaccel^ ' gemischt, in Portionen- zu 5 ml abgefüllt und lyophilisiert. Der Virusgehalt der Trockenvaccine betrug nach Resuspension und Verdünnung auf das Orig'inalvolumen
7 1
1.0 ' Babymaus-IDp /ml.
Beispiel Z
Die Unschädlichkeit und Wirksamkeit der erfindungsgemäß durch Bnbymäuscpassagen gewonnenen Infektiösen Bursitis-Vaccine vitrde in zivei Versuchen mit 8 und 12 Tage alten Küken nachgowio.sen. Die Küken waren frei von spezifischen hühnerpathogonen Erregern so^vie deren Antikörper (SPF-Küken) .
Im ersten Versuch wurden 75 SPF-Küken im Alter von 8 Tagen mit
5 6
je 10'.' Babymaus-ID- l.'.ursitis-Virus der 20. Babymauspassage über das Trinkwasser immunisiert. Klinisch erkennbare Impfreaktionen traten nicht in Erscheinung. Zwei Wochen nach der Immunisierung betrug der durch Virusneutralisationsteste ermittelte mittlere Schiatzindex im 1 : 10 verdünnten Impflingsseruin 10'.
Bei dem Virusneutralisationstest wird die Antikörperkonzentration im Serum bestimmt, indem die Antikörper im Serum mit fallenden Viruskonzentrationen neutralisiert werden und danach auf nicht-neutralisiertes Virus an der Babymaus geprüft wird. Der 50 ^-Endpunkt wird nach herkömmlichen statistischen Berechrmngfiverfahreri ermittelt. Der Serum-Schutzindex ist der Quotient aus Virustiter der Versuchskontrolle und Virustiter
2 0 9 8 H / 1 6 4 3 bad original
des Virus-Antiserumgemisches, z.B.
o . , . , 10*" '-Vo, 05 ml in2,1 Serum-Schutzindex = j—j1— J— — = 10 '
j—j1— J— —
10 ' /0,05 ml
Bis zur 8, Voche nach der .Impfung stieg der Serum-Schutzindex
3 2
auf 10" ' an und fiel d£inn bis zur 16. Voche nach der Impfung
2 0
wieder auf 10 ' ab. Da SPF-Küken vor einer Impfung einen Serura-Schutzindex gegen Bursitis-Virus von nahezu 10 haben, war für mindestens 16 Wochen nach der Impfung eine ho] 1.0 Antikörperentwicklung nachweisbar, die einen guten Infektionsschutz anzeigte.
Im zweiten Versuch wurden 80 SPF-Küken im Alter von 12 Tagen
Cj Q
mit je 10 ' Babymaus-ID Bursitis-Virus der 25. Babymauspassage über das Trinkwasser immunisiert. Klinische Impfreaktionen traten auch bei diesen Impflingen nicht auf. Der Serum-Schutzindex der geimpfton Küken (1 : 10 verdünntes Serum)
3, h beti-ug zwei Wochen nach der Immunisierung im Mittel 10 , h Wochen nach der Impfung lag der Wert bei 10 ' . Beide Serum-Schutzindex-Bestimmungen wiesen auf eine gute Antikörperentwicklung und somit auf einen ausreichenden Infektionsschutz hin.
Die beiden Untersuchungen zeigen, daß die erfindungsgemäß hergestellten Vaccinen wirksam und unschädlich sind.
Beispiel 3
Ausgehend von der 63. Eipassage eines nach herkömmlichen
Verfahren erhaltenen Infektiösen Bursitis-Virus wurde der Virusgehalt der 67. - 73· Eipassage mit dem Virusgehalt der 16. - 22. Babymauspassage verglichen. Die Eipassagen wurden durch Beimpfung- der Allantoishöhle von 6 Tage vorbebrüteten Hühnereiern durchgeführt. Die am 3. - 6. Tag nach Beimpfung abgestorbenen Embryonen wurden mit der sie umgebenden AllantoisfIwssigkeit homogenisiert. Der Embryonalextrakt wurde
2098U/1643
BAD ORiGIMAL
3 Minuton" :to-ei 300Ό IT/Min» zentrifugiert* der virushaltlge ExtraktiorLsüberstand diente jeweils als Infektionsmaterial ilix die folgende Passage.. Der Virusgehalt wurde durch. Verdünnung des Extraktionsüberstandes in Zehnerpotenjzen und Beimpfung von 6 Tage vorbebrüteten llühnex-eiern "bestimmt. Die Beimpfuii£'s~ dosis pro Ei betrug 0,1 ml. Die zwischen dem 2. und dem 12, Tag nach der Infektion abgestorbenen sowie alle überlebenden, aber virusspezifische Veränderungen aufweisenden Embryonen wurden nach einem statistischen Berechnungsverfahr&n für die Bestimmung des Virustiters ausgewertet.
Die Babymauspassagen wurden nach, der im Beispiel T erläuterten. Methode ohne Verwendung eines Corticosteroids ausgeführt. Tür die Virustitrationen wurden, die Virusverdünnungen 1 - 2 Tage alten Babymäusen intraperitoneal injiziert. Die innerhalb von 21 Tagen nach der Infektion unter Lähmungserscheinungen erkraräten Jungmäuse wurden als virusinfiziert gewertet.
In der folgenden Tabelle sind die Virustiter pro ml des unverdünnten Einbryonalextraktes und des 20 ^igen Babymaus-Bxtraktes "einander gegenübergestellt:
Eipassage Virus t'it er/ml Mäusepassage Virustiter/ml un\rerd.Embryonal-Extrakt 20^iger Baby-
rnaus-Extrakt ,
ίο"6'9 ΙΟ"5'8
ίο"6'1
το"6'5
— 7 1 ΙΟ7'
το"6'8 10-7,5
Diese Zahlen zeigen, daß die auf 20 <?ο verdünnten Babymausextrakte ein bis zwei Zehnerpotenzen mehr Virus enthalten als cid e unverdünnten Hühnerenibryonalextrakt e .
20981471643 ' BAD OR.QINAL ·
67.
68. 		lo^·5 16.
17.
69.
70.. 		το"5'0 18.
19.
71 .
72. 		ΙΟ"5'5 . 20.
21 .
73 TO"5'3 22.

Claims (5)

Patentansprüche
1. Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine gegen die Infektiöse Bursitis der Hühner, dadurch gekennzeichnet, daß man das Infektiöse Bursitis-Virus unter Verwendung von Immunsuppressiva durch Serienpassagen an Babymäuse adaptiert und gleichzeitig attenuiert, das attenuiei'te Virus daraus extrahiert und auf bekannte Veise zu einer Vaccine a\if arbeitet.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man 1-3 Tage alte Babymäuse der weißen Maus oder Mastomys natalensis verwendet.
3· Verfahren nach Ansprüchen 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß man die infizierten Babymäuse für die Extraktion in moribundom Zustand tötet oder unmittelbar nach dem Verenden extrahiert.
h. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man als Immunsuppressiva Corticosteroide verwendet.
5. Verfahren gemäß Anspruch 1 und h, dadurch gekennzeichnet, daß man als Imtnunsuppressivum Prednisolon bzw. dessen medizinisch gebräuchliche Ester verwendet.
BAD ORIGINAL 2098U/1643
DE2045160A 1970-09-12 1970-09-12 Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine gegen die infektiöse Bursitis der Hühner Expired DE2045160C3 (de)

Priority Applications (11)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2045160A DE2045160C3 (de) 1970-09-12 1970-09-12 Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine gegen die infektiöse Bursitis der Hühner
NL717112237A NL150684B (nl) 1970-09-12 1971-09-06 Werkwijze voor het bereiden van een levend vaccin tegen infectieuze bursitis van kippen, alsmede houder met levend vaccin.
ES394860A ES394860A1 (es) 1970-09-12 1971-09-07 Procedimiento para la produccion de una vacuna viva contra la bursitis infecciosa de las gallinas.
CH1324571A CH560760A5 (de) 1970-09-12 1971-09-09
US00179539A US3769400A (en) 1970-09-12 1971-09-10 Process for the manufacture of a live vaccine against the infectious bursitis of chickens
AT790471A AT308967B (de) 1970-09-12 1971-09-10 Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine
IL3768271A IL37682A (en) 1970-09-12 1971-09-10 Process for the manufacture of a live vaccine against the infectious bursitis of chickens
BE772448A BE772448A (fr) 1970-09-12 1971-09-10 Procede de preparation d'un vaccin vivant contre la bursite infectieusedes poules
DK446371A DK129590B (da) 1970-09-12 1971-09-10 Fremgangsmåde til fremstilling af levende vaccine mod infektiøs bursitis hos høns.
FR7132926A FR2106482B1 (de) 1970-09-12 1971-09-13
GB4255271A GB1327870A (en) 1970-09-12 1971-09-13 Process for the manufacture of a vaccine against infectious bursitis of chickens

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2045160A DE2045160C3 (de) 1970-09-12 1970-09-12 Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine gegen die infektiöse Bursitis der Hühner

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DE2045160A1 true DE2045160A1 (de) 1972-03-30
DE2045160B2 DE2045160B2 (de) 1974-08-22
DE2045160C3 DE2045160C3 (de) 1975-04-10

Family

ID=5782254

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE2045160A Expired DE2045160C3 (de) 1970-09-12 1970-09-12 Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine gegen die infektiöse Bursitis der Hühner

Country Status (11)

Country Link
US (1) US3769400A (de)
AT (1) AT308967B (de)
BE (1) BE772448A (de)
CH (1) CH560760A5 (de)
DE (1) DE2045160C3 (de)
DK (1) DK129590B (de)
ES (1) ES394860A1 (de)
FR (1) FR2106482B1 (de)
GB (1) GB1327870A (de)
IL (1) IL37682A (de)
NL (1) NL150684B (de)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4530831A (en) * 1982-11-02 1985-07-23 Akzo N.V. Infectious Bursal Disease vaccine
EP0198828A4 (de) * 1983-12-13 1986-11-04 Commw Scient Ind Res Org Impfstoff gegen die viren der infektiösen bursal-krankheit.
HU197846B (en) * 1984-07-02 1989-06-28 Laszlo Csatary Process for producing therapeutic composition suitable for treating virus infections
US4824668A (en) * 1987-03-09 1989-04-25 Sterwin Laboratories Inc. Attenuated infectious bursal disease virus strain and vaccine therefrom
US5192539A (en) * 1988-07-21 1993-03-09 Akzo N.V. Infectious bursal disease virus production in continuous cell lines

Also Published As

Publication number Publication date
ES394860A1 (es) 1975-01-01
AT308967B (de) 1973-07-25
US3769400A (en) 1973-10-30
CH560760A5 (de) 1975-04-15
BE772448A (fr) 1972-03-10
DK129590C (de) 1975-03-24
FR2106482A1 (de) 1972-05-05
DE2045160B2 (de) 1974-08-22
GB1327870A (en) 1973-08-22
IL37682A0 (en) 1971-11-29
FR2106482B1 (de) 1974-10-18
DE2045160C3 (de) 1975-04-10
NL7112237A (de) 1972-03-14
NL150684B (nl) 1976-09-15
DK129590B (da) 1974-10-28
IL37682A (en) 1974-06-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE2542792A1 (de) Verfahren zur erhoehung der antikoerpermenge in der milch von milchabsondernden rindern
DE2616407C3 (de) Verfahren zur Herstellung eines Tollwut-Impfstoffs
DE2423129A1 (de) Verfahren zur herstellung temperaturempfindlicher, nicht pathogener mutantenstaemme von rinder-adeno-virusstaemmen und diese virusstaemme enthaltende lebendvakzine
DE2445819A1 (de) Verfahren zur herstellung stabiler, gegen seruminhibitoren resistenter h tief 3 n tief 2 -influenzavirusstaemme und diese virusstaemme enthaltende vakzinen
DE2045160A1 (de) Verfahren zur Herstellung einer Lebendvaccine gegen die infektiöse Bursitis der Huhner
DE2553998C2 (de) Mumpsvaccin und Verfahren zu seiner Herstellung
DE1198489B (de) Verfahren zur Herstellung eines Impfstoffes gegen Panleucopenie
DE2444299A1 (de) Impfstoffe gegen katzen-leukaemie
DE2456636A1 (de) Influenza-vakzine und verfahren zu ihrer herstellung
DE3122669A1 (de) &#34;verfahren zur herstellung von neuen mutanten von herpes simplex-viren typ 1 und typ 2&#34;
DE2415353C2 (de)
DE2520310A1 (de) Verfahren zur herstellung von immunisierender milch und/oder kolostrum
DE2225548C3 (de) Intravenös verträglicher Impfstoff gegen Staupe- und Hepatite contagiosa canis
DE2126957B2 (de) Verfahren zur herstellung von impfstoffen gegen gaensehepatitis
DE2165401C3 (de) Inaktivierter Kombinationsimpfstoff zum Immunisieren von Geflügel gegen Infektion der Atmungsorgane
Braune et al. Avian encephalomyelitis virus. II. Pathogenesis in chickens
DE2728806A1 (de) Auf oralem wege einzunehmender antiparasitaerer impfstoff, verfahren zu dessen herstellung und anwendungsmethode des impfstoffs bei saeugetieren
DE2057544A1 (de) Verfahren zur Herstellung einer Virusvakzine gegen das Kaelberdiarrhoevirus
DE1235505B (de) Verfahren zur Herstellung einer Vaccine gegen Staupe
AT234902B (de) Verfahren zur Herstellung einer Vaccine gegen Staupe
DE3009064A1 (de) Verfahren zur herstellung eines tollwutimpfstoffes und danach erhaltener impfstoff
DE1617288C (de) Verfahren zur Herstellung eines Grippe virusimpfstoffs
DE1021128B (de) Verfahren zur Herstellung eines Impfstoffes gegen die Rhinotracheitis der Rinder
DE2425678A1 (de) Verfahren zur herstellung eines impfstoffs gegen infektioese pferdeanaemie
DE1179670B (de) Verfahren zur Herstellung von Impfstoff gegen die Newcastle-Krankheit

Legal Events

Date Code Title Description
C3 Grant after two publication steps (3rd publication)
E77 Valid patent as to the heymanns-index 1977
EHJ Ceased/non-payment of the annual fee