CN1875108A - 产生琥珀酸的方法 - Google Patents
产生琥珀酸的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN1875108A CN1875108A CNA200480032024XA CN200480032024A CN1875108A CN 1875108 A CN1875108 A CN 1875108A CN A200480032024X A CNA200480032024X A CN A200480032024XA CN 200480032024 A CN200480032024 A CN 200480032024A CN 1875108 A CN1875108 A CN 1875108A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- ala
- leu
- gly
- val
- arg
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/40—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
- C12P7/44—Polycarboxylic acids
- C12P7/46—Dicarboxylic acids having four or less carbon atoms, e.g. fumaric acid, maleic acid
Landscapes
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
Abstract
通过使经过修饰以增加延胡索酸还原酶活性的细菌或其处理物与有机原料在含有碳酸根离子、碳酸氢根离子和二氧化碳气中的反应溶液中进行反应以生成琥珀酸来产生琥珀酸。更优选地，通过使经过修饰以增加延胡索酸还原酶和丙酮酸羧化酶活性并降低乳酸脱氢酶活性的细菌或其处理物与有机原料在含有碳酸根离子、碳酸氢根离子和二氧化碳气中的反应溶液中进行反应以生成琥珀酸来产生琥珀酸。琥珀酸通过收集所产生的琥珀酸来获得。
Description
技术领域
本发明涉及应用细菌，如棒状细菌来产生琥珀酸。
背景技术
为了通过发酵产生包括琥珀酸的非氨基-有机酸，通常应用包括属于厌氧螺菌属(Anaerobiospirillum)或放线杆菌属(Actinobacillus)的那些厌氧细菌(美国专利5,142,834和美国专利5,504,004，和International Journal of SystematicBacteriology(1999)，49，207-216)。虽然通过应用上述厌氧细菌的产品产量高，但它们的增殖需要许多营养物，而由此必需将大量的有机氮源，如玉米浆(cornsteep liquor)(CSL)加入培养基。大量有机氮源的加入不仅导致培养成本的增加而且导致用于分离产品的纯化成本的增加，因而上述方法是不经济的。
此外，本领域已知在好氧条件下培养好氧细菌，如棒状杆菌的细菌以增殖细菌细胞，然后收获和洗涤细菌细胞以允许它们作为静息细菌在无需通气的条件下来产生非氨基有机酸而方法(JP11-113588A和JP11-196888A)。这些方法是经济的，因为细菌能在含有少量有机氮的简单培养基中充分地生长以增殖细菌细胞。然而，仍然有根据所需有机酸的产生量、其浓度和在每个细菌细胞的产生速率以及产生过程的简化等等进行改善的需要。而且，已经报道应用具有增加的磷酸烯醇丙酮酸羧化酶活性的细菌以发酵产生非氨基有机酸(例如，JP11-196887A)。然而，关于应用具有增加的延胡索酸还原酶活性的细菌来产生非氨基有机酸还没有报道。
发明内容
本发明的一个目的在于提供以更高的生产效率产生琥珀酸的方法
本发明的发明者已经为解决上述问题进行了广泛的研究，并发现通过使经过修饰以增加延胡索酸还原酶活性的细菌或其细胞处理物与有机原料在含有碳酸根或碳酸氢根离子或二氧化碳气的反应溶液中进行反应，可实现有机原料的消耗速率、琥珀酸的产生速率或其产量的增加，并由此完成了本发明。
即，根据本发明，提供了如下描述的发明。
(1)产生琥珀酸的方法，其包括使经过修饰以增加延胡索酸还原酶活性的细菌或其细胞处理物与有机原料在含有碳酸根离子、碳酸氢根离子或二氧化碳气中反应溶液中进行反应以生成琥珀酸；和收集所述的琥珀酸。
(2)(1)的方法，其中所述的细菌选自棒状细菌(coryneform bacterium)、芽孢杆菌属(Bacillus)细菌或根瘤菌属(Rhizobium)细菌。
(3)(1)或(2)的方法，其中所述细菌是经过修饰以通过应用来自棒状细菌的琥珀酸脱氢酶基因增加延胡索酸还原酶活性的细菌。
(4)(1)或(2)的方法，其中所述细菌是经过修饰以通过应用来自大肠杆菌的延胡索酸还原酶基因增加延胡索酸还原酶活性的细菌。
(5)(1)至(4)中任一项的方法，其中所述细菌被进一步修饰以将乳酸脱氢酶活性与未修饰的菌株相比减少到10％或更低。
(6)(1)至(5)中任一项的方法，其中所述细菌被进一步修饰以增加丙酮酸羧化酶活性。
(7)(1)至(6)中任一项的方法，其中所述细菌或其细胞处理物与所述有机原料在厌氧条件下进行反应。
(8)(1)至(7)中任一项的方法，其中所述有机原料为葡萄糖。
(9)产生含有琥珀酸的聚合物的方法，其包括通过(1)至(8)中任一项的方法产生琥珀酸，和将得到的琥珀酸进行聚合。
附图说明
图1显示构建质粒pKMB 1的步骤及其限制性内切酶图谱。
图2显示构建质粒pKMB1/ΔLDH的步骤。
图3显示构建质粒pTZ4的步骤。
图4显示构建质粒pMJPC1的步骤。
图5显示构建质粒pFRPC1.1的步骤。
图6显示构建质粒pVKSDH的步骤。
图7显示构建质粒pHSGSDH的步骤。
图8显示构建质粒pSDHPC的步骤。
优选的具体实施方式
在下文中，将详细描述本发明的实施方案。
能用于本发明的产生方法的细菌是经过修饰以增加延胡索酸还原酶活性的那些。本文中，术语“延胡索酸还原酶活性”指催化反应的活性，在所述反应中延胡索酸通过还原反应转化为琥珀酸，而术语“延胡索酸还原酶活性增加”指与野生型或延胡索酸还原酶-未修饰的菌株相比延胡索酸还原酶活性增加。所述的延胡索酸还原酶活性可通过后面描述的测量K3Fe(CN)6水平下降的方法进行测定。大肠杆菌的延胡索酸还原酶是负责琥珀酸脱氢酶的逆反应的酶，所述的琥珀酸脱氢酶在TCA循环的顺时针方向旋转中起作用，而且所述的延胡索酸还原酶涉及在好氧条件下的延胡索酸呼吸。有报道所述基因的表达在好氧条件下在转录水平受到抑制(Jones，H.M.，Gunsalus，R.P.，J.Bacteriol.，1985，Vol.164，p1100-1109)。因此可以认为，当所述延胡索酸还原酶活性过量地增加时，细菌细胞的生长会变差。为此，在本发明中，优选在不发生细菌细胞的显著的生长抑制的范围内增加延胡索酸还原酶活性。
增加延胡索酸还原酶活性可通过修饰所述细菌的亲代菌株，例如应用延胡索酸还原酶基因通过基因重组技术来实施。此外，编码琥珀酸脱氢酶的基因可为编码蛋白的基因，所述的蛋白具有延胡索酸还原酶活性及琥珀酸脱氢酶活性。因此，可增加编码蛋白的基因的表达，所述蛋白具有延胡索酸还原酶活性和琥珀酸脱氢酶活性。例如，棒状细菌的琥珀酸脱氢酶能够催化由延胡索酸产生琥珀酸的反应，其为琥珀酸脱氢酶的逆反应。所述琥珀酸脱氢酶活性可通过Arkell B.A.C等的方法(Meth Enzymol，53，466-483)进行测定。
用于本发明的细菌的亲代菌株无具体的限制，只要它具有产生琥珀酸的能力。其中，棒状细菌、芽孢杆菌细菌或根瘤菌细菌是优选的，而且棒状细菌是更优选的。棒状细菌的实例包括属于棒状杆菌属(Corynebacterium)的微生物、属于短杆菌属(Brevibacterium)的微生物和属于节杆菌属(Arthrobacter)的微生物。当然，优选属于棒状杆菌属或短杆菌属的细菌。更优选属于谷氨酸棒状杆菌(Corynebacterium glutamicum)、黄色短杆菌(Brevibacterium flavum)、产氨短杆菌(Brevibacterium ammoniagenes)或乳发酵短杆菌(Brevibacteriumlactofermentum)的细菌。
所述细菌的优选的亲代菌株的具体实例包括黄色短杆菌MJ-233(FERMBP-1497)、黄色短杆菌MJ-233 AB-41(FERM BP-1498)、产氨短杆菌ATCC6872、谷氨酸棒状杆菌ATCC31831和乳发酵短杆菌ATCC13869。黄色短杆菌目前被归类于谷氨酸棒状杆菌(Lielbl，W.，Ehrmann，M.，Ludwig，W.和Schleifer，K.H.，International Journal of Systematic Bacteriology，1991，vol.41，p255-260)。因此，在本发明中，黄色短杆菌MJ-233菌株及其突变体MJ-233AB-41菌株定义为分别与谷氨酸棒状杆菌MJ-233菌株和谷氨酸棒状杆菌MJ-233 AB-41菌株同样的菌株。
黄色短杆菌MJ-233已经以登录号(accession number)FERM P-3068于1975年4月28日保藏在国立生命科学和人体技术研究所(National Institute ofBioscience and Human Technology)，Agency of Industrial Science and Technology，Ministry of International Trade and Industry(currently International PatentOrganism Depositary，National Institute of Advanced Industrial Science和Technology at Tsukuba Central 6，1-1，Higashi 1-chome，Tsukuba-shi，Ibaraki-ken305-8566，Japan)，而且然后在1981年5月1日根据布达佩斯条约(BudapestTreaty)转为国际保藏(international deposit)并具有登录号FERM BP-1497。
在本发明的方法中用作亲代菌株的上述细菌可为任意菌株，其包括通过用于突变的常规处理，如UV辐射和NTG处理得到的变体菌株，和通过遗传方法(genetic procedure)，如细胞融合和基因重组技术衍生的重组菌株，以及野生型菌株。此外，基因重组菌株的宿主可为相对于亲代菌株归于同一属和种的那些或归于不同属和种的那些，只要它是可转化的微生物，但优选所述宿主可为如上所述的好氧细菌。
在当进行所述的修饰以通过延胡索酸还原酶(FRD)基因增加延胡索酸还原酶活性的情况下，可以应用的基因无具体的限制，只要它编码具有延胡索酸还原酶活性的蛋白，而其实例包括大肠杆菌的基因，其具有SEQ ID NO：19中显示的核苷酸序列。这些基因形成操纵子，其包含基因(SEQ ID NO：19的核苷酸编号440-2245、2241-2975、2986-3381和3392-3751)，其每个编码构成延胡索酸还原酶的四个亚基(frdA、frddB、frdC和frdD；SEQ ID NOs：20-23)。可将整个操纵子基因引入所述细菌，或者每个亚基基因可以分别地引入。只要每个亚基基因编码能够形成具有FRD活性的复合物的亚基蛋白，它可为与具有上述核苷酸序列的DNA在严紧性条件下杂交的DNA，或同源物如相对于具有上述核苷酸序列的DNA具有不低于90％同源性、优选不低于95％、更优选不低于99％的同源性的DNA。本文中，所述的严紧性条件包括允许在这样的盐浓度下进行杂交的条件，该盐浓度对应于常规Southern杂交的洗涤条件，60℃、1×SSC、0.1％SDS，优选60℃、0.1×SSC、0.1％SDS。另外，在这些FRD基因同源物中，优选编码这样的蛋白的基因，在所述蛋白中对应于FRD的B亚基(frdB)(SEQ ID NO：21)中第17个氨基酸的氨基酸是赖氨酸。具有SEQ ID NO：19中显示的核苷酸序列的基因或其同源物可通过PCR方法或杂交方法来获得。
如果需要，将对应于frdB的第17个氨基酸的氨基酸变为赖氨酸的突变也可通过已知方法导入。
此外，可应用编码蛋白的基因，所述蛋白具有琥珀酸脱氢酶和延胡索酸还原酶的活性。其实例包括棒状细菌的sdh基因，其具有SEQ ID NO：28中显示的核苷酸序列。此基因是操纵子基因，其包含基因(SEQ ID NO：28的核苷酸编号1153-3171、3174-3920和363-1133)，其分别编码构成琥珀酸脱氢酶的三个亚基(sdhA、sdhB和sdhC)。谷氨酸棒状杆菌的sdh操纵子在GeneBankAccession NOS.NCg10359(sdhC)、NCg10360(sdhA)和NCg10361(sdhB)中显示。
可将整个操纵子基因导入所述细菌，或可将每个亚基基因分别导入。只要每个亚基基因编码能够形成具有FRD活性的复合物的亚基蛋白，它可为与具有上述核苷酸序列的DNA在严紧性条件下杂交的DNA，或同源物如相对于具有上述核苷酸序列的DNA具有不低于90％同源性、优选不低于95％、更优选不低于99％的同源性的DNA。本文中，所述的严紧性条件包括允许在这样的盐浓度下进行杂交的条件，该盐浓度对应于常规Southern杂交的洗涤条件，60℃、1×SSC、0.1％SDS，优选60℃、0.1×SSC、0.1％SDS。
此外，它可为编码蛋白的基因，所述蛋白具有SEQ ID NOs：20-23和29-31中显示的那些序列中的任意氨基酸序列，其中包括取代、缺失、插入或添加一个或几个氨基酸，只要该蛋白具有延胡索酸还原酶活性。本文中，例如，术语“几个”指2至20，优选2至10，更优选2至5。
也可应用由除大肠杆菌或棒状细菌之外的任何细菌，或由其他微生物、动物和植物获得的FRD基因。例如，由任何微生物、动物或植物获得的FRD基因可为核苷酸序列已知的基因或基于同源性由细菌、动物或植物的染色体中分离编码蛋白的基因之后测定其核苷酸序列的基因，所述蛋白具有FRD活性。此外，测定所述核苷酸序列之后，也可以应用根据该序列合成的基因。这些基因可通过以杂交或PCR来扩增包含启动子和ORF的区域获得。
当应用棒状细菌时，例如，在棒状细菌中能够增加FRD基因表达的重组质粒，可通过将含有FRD基因的DNA片段插入合适的质粒，如含有至少负责棒状细菌中的质粒复制的基因的质粒载体来得到。能够将所述FRD基因导入棒状杆菌的细菌的质粒载体无具体的限制，只要它含有至少负责在棒状细菌中复制和扩增的基因。其具体实例包括：JP03-210184A中描述的质粒pCRY30；JP02-72876A和美国专利No.5,185,262中描述的质粒pCRY21、pCRY2KE、pCRY2KX、pCRY31、pCRY3KE和pCRY3KX；JP01-191686A中描述的质粒pCRY2和pCRY3；JP58-67679A中描述的pAM330；JP58-77895A中描述的pHM1519；JP58-192900A中描述的pAJ655、pAJ611和pAJ1844；JP57-134500A中描述的pCG1；JP58-35197A中描述的pCG2；JP57-183799A中描述的pCG4和pCG11和JP10-215883A中描述的pVK7。
如上所述，延胡索酸还原酶活性的过量增加可削弱细菌细胞的生长。因此，优选将所述FRD基因的表达水平通过选择适当的质粒拷贝数调节到细菌细胞的生长不被抑制的程度。而且，增加FRD活性可通过用常规的同源重组导入、取代或扩增染色体上的FRD基因来实施。
除了如上描述的方法之外，当所述FRD基因具有操纵子结构时，也可以通过在调控其表达的启动子区域导入突变来实现增加，如WO00/18935中所述。
在将上述并入重组质粒或染色体的过程中，FRD基因表达的启动子可为任何启动子，只要它在棒状细菌中发挥作用。可替换地，它可为所述FRD基因自身的启动子。可合适地选择所述启动子以调节FRD基因的表达水平。
到目前为止，描述了应用棒状细菌的实例。然而，同样方法可应用于其他细菌以实现FRD活性的增加。
另外，在本发明的反应中，更有效地应用细菌菌株，其被修饰除了增加延胡索酸还原酶活性外，还降低乳酸脱氢酶活性。本文中，术语“乳酸脱氢酶活性降低”是指与未修饰乳酸脱氢酶的菌株相比，乳酸脱氢酶活性降低。所述每个细菌细胞的乳酸脱氢酶活性与未修饰的菌株的乳酸脱氢酶相比，优选降低到10％或更低。此外，所述乳酸脱氢酶活性可完全消除。乳酸脱氢酶活性的降低可通过用已知的方法测定乳酸脱氢酶活性来确认(L.Kanarek和R.L.Hill，J.Biol.Chem.239，4202(1964))。作为制备乳酸脱氢酶活性降低的棒状细菌的突变体菌株的特异性方法，例如，可应用如JP 11-206385 A中所述的染色体上的同源重组方法或本说明书的实施例中所描述的采用SacB基因的方法(Schafer，A.等，Gene 145(1994)69-73)。例如，通过制备具有破坏的LDH基因的细菌并用含有FRD基因的重组载体转化该细菌，如下面实施例2中所述，可以获得本发明的棒状细菌，其具有增加的FRD基因表达和降低的乳酸脱氢酶活性。然而，用于降低LDH活性的修饰和用于增加FRD活性的修饰中的任何一种都可以首先实施。
此外，经过修饰以使除延胡索酸还原酶活性增加之外丙酮酸羧化酶活性增加的细菌可用于本发明的反应。术语“丙酮酸羧化酶活性增加”指与未修饰的菌株如野生型或亲代菌株相比，丙酮酸羧化酶活性增加。所述丙酮酸羧化酶活性可以，例如，通过测量如后面所述的NADH减少的方法进行测定。具有增加的延胡索酸还原酶和丙酮酸羧化酶表达的棒状细菌可以通过在棒状细菌中以与JP11-196888A中所述相似的方式高水平表达延胡索酸还原酶(FRD)基因和丙酮酸羧化酶(PC)基因来制备。
用于本发明的方法的PC基因可为其核苷酸序列已知的基因。可替换地，可应用通过从微生物、动物、植物等的染色体通过如下所述的方法分离编码具有PC活性的蛋白的DNA片段，并测定其核苷酸序列而得到的基因。而且，测定该核苷酸序列之后，也可以应用基于该序列合成的基因。
含有PC基因的DNA片段存在于来自微生物、动物和植物的染色体上。由这些供体微生物、动物和植物制备PC基因的基本方法可通过参考源自其序列已知的棒状细菌的基因来举例说明。
所述的PC基因存在于谷氨酸棒状杆菌菌株ATCC13032，一种棒状细菌的染色体上(Peters-Wendisch，P.G et al.，Microbiology，vol.144(1998)p915-927)，而且其核苷酸序列在本领域中是已知的(GenBank DatabaseAccession No.AP005276)(SEQ ID NO：15)，因此可以通过PCR分离并获得所述基因。
例如，大约3.7kb的PC基因可通过应用具有SEQ ID NOs：13和14中显示的核苷酸序列的寡核苷酸作为引物，并应用谷氨酸棒状杆菌的染色体作为模板实施PCR来进行扩增。在此情况中，可将适当的限制性内切酶识别位点添加到用于PCR的引物的5′-末端，以允许将所述基因插入如下所述的载体的合适的区域，而且所得的重组载体可用于将基因转移到棒状细菌中。
此外，即使未鉴定核苷酸序列，可根据PC活性纯化蛋白，然后根据该蛋白的N-末端氨基酸序列或部分-消化的片段的序列合成探针以通过常规的杂交方法分离基因片段。可替换地，可根据PC蛋白的保守区域中的氨基酸序列来合成探针或引物以通过杂交或PCR获得片段。所得片段的核苷酸序列可通过常规方法进行测定。
在本说明书中，可计算所消化的DNA片段和质粒的大小；当应用琼脂糖凝胶电泳时，基于相同琼脂糖凝胶上由具有已知分子量的DNA片段的迁移距离绘出的参考线，所述DNA片段是通过用限制性内切酶HindIII消化大肠杆菌λ噬菌体而得到的；或当应用聚丙烯酰胺凝胶电泳时，基于相同聚丙烯酰胺凝胶上由具有已知分子量的DNA片段的迁移距离绘出的参考线，所述DNA片段是通过用限制性内切酶HaeIII消化大肠杆菌X174噬菌体而得到的。为了测定每个DNA片段的大小，对于大小为1kb或更大的片段而言，应用1％琼脂糖凝胶电泳，而对于大小大约0.1kb或更大但小于1kb的片段而言，应用4％聚丙烯酰胺凝胶电泳。
在本发明中，含有上述用于增加PC活性的PC基因的DNA片段不仅从谷氨酸棒状杆菌的染色体DNA分离，而且应用通常应用的DNA合成设备，例如由Applied Biosystems Inc制造的394 DNA/RNA合成仪来合成。此外，作为由如前所述的棒状细菌的染色体DNA中得到的PC基因，在SEQ ID NO：15的核酸序列中一些核苷酸可被其他核苷酸取代，缺失，或插入附加的核苷酸，只要由该基因编码的PC的功能，即，二氧化碳固定(carbon dioxide fixation)的性质没有基本的缺损。此外，一些核苷酸序列可以倒位(inverted)。任何那些衍生物可用于本发明。也可以优选地应用在严紧性条件下与具有SEQ IDNO：15的核酸序列的DNA，或者与SEQ ID NO：15的核苷酸序列具有不低于90％，优选不低于95％，或更优选不低于99％同源性的DNA杂交的DNA，和编码具有PC活性的蛋白的DNA。本文中，所述的严紧性条件包括允许在这样的盐浓度下进行杂交的条件，该盐浓度对应于常规Southern杂交的洗涤条件，60℃、1×SSC、0.1％SDS，优选0.1×SSC、0.1％SDS。
也可以应用由除谷氨酸棒状杆菌外的任何细菌，或从任何微生物、动物和植物得到的PC基因。具体地，来自所述微生物、动物和植物的PC基因的核酸序列，如下面所述的那些，是已知的(参考文献在下面指示)。因此，可以用如前所述的相同方式通过杂交或PCR扩增ORF获得PC基因。
人类(Homo sapiens)[Biochem.Biophys.Res.Comm.，202，1009-1014，(1994)]
小鼠(Mus musculus)[Proc.Natl.Acad.Sci.USA.，90，1766-1779，(1993)]
大鼠[GENE，165，331-332，(1995)]
酵母；酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)[Mol.Gen.Genet.，229，307-315，(1991)]
粟酒裂殖酵母(Schizosaccharomyces pombe)[DDBJ Accession No.；D78170]
嗜热脂肪芽胞杆菌(Bacillus stearothermophilus)[GENE，191，47-50，(1997)]
Rhizobium etli[J.Bacteriol.，178，5960-5970，(1996)]
含有所述PC基因的DNA片段可以通过将所述DNA片段插入合适的表达质粒，如pUC118(由Takara Shuzo Co.，Ltd.制造)，然后通过导入合适的宿主微生物，如大肠杆菌JM109(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)来表达。表达的PC基因产物丙酮酸羧化酶(SEQ ID NO：16)，可以通过以Magasanik的方法[J.Bacteriol.，158，55-62，(1984)]应用由所述转化体制备的粗酶溶液直接测定PC活性，然后将该PC活性与由非-转化体制备的粗酶溶液的PC活性相比较来确认。将含有PC基因的DNA片段插入合适的质粒，如质粒载体，其至少含有负责在棒状杆菌的细菌中复制和扩增该质粒的基因，并由此获得能够在棒状杆菌的细菌中高表达PC的重组质粒。在重组质粒中，表达PC基因的启动子可源自棒状细菌。然而，不限于所述的启动子，并可应用任何启动子只要它是能启动PC基因转录的核苷酸序列。例如，可应用如在实施例3中描述的TZ4启动子。
其中可导入PC基因的质粒载体无具体的限制，只要它至少包含负责在棒状杆菌的细菌中复制的基因。所述具体实施例包括：JP03-210184A中描述的质粒pCRY30；JP02-72876A和美国专利No.5,185,262中描述的质粒pCRY21、pCRY2KE、pCRY2KX、pCRY31、pCRY3KE和pCRY3KX；JP01-191686A中描述的质粒pCRY2和pCRY3；JP58-67679A中描述的pAM330；JP58-77895A中描述的pHM1519；JP58-192900A中描述的pAJ655、pAJ611和pAJ1844；JP57-134500A中描述的pCG1；JP58-35197A中描述的pCG2；和JP57-183799A中描述的pCG4和pCG11。
那些之中，包含在棒状细菌中负责复制的基因和负责稳定所述质粒的基因的质粒优选用作棒状细菌中宿主-载体系统的质粒载体。例如，可优选应用质粒pCRY30、pCRY21、pCRY2KE、pCRY2KX、pCRY31、pCRY3KE和pCRY3KX。
具有增加的PC基因表达以用于本发明的棒状细菌可通过用重组载体转化棒状杆菌的细菌，例如黄色短杆菌MJ-233(FERM BP-1497)来获得，所述重组载体通过将所述的PC基因插入质粒载体的适合位点来制备，所述质粒载体如上所述可在好氧的棒状杆菌的细菌中复制。此外，PC活性的增加也可以通过常规的同源重组导入、取代或扩增所述基因以在染色体上使PC基因高表达化。用含有所述FRD基因的重组载体来转化所得的细菌以获得具有增加的PC和FRD基因表达的棒状细菌。FRD和PC基因中的任一个可以首先导入。所述的转化可通过，例如，电脉冲方法(Res.Microbiol.，Vol.144，p.181-185，1993)来进行。
此外，在本发明中，经过修饰以增加延胡索酸还原酶和丙酮酸羧化酶的活性并降低乳酸脱氢酶活性的细菌特别优选地用于产生琥珀酸。上述细菌可通过用分别含有PC基因和FRD基因的重组载体转化具有破坏的LDH基因的棒状细菌而得到。任何应用这些基因的修饰步骤可首先实施。
当上述细菌用于产生琥珀酸的反应时，可直接应用在固体培养基，如琼脂培养基上经过斜面培养的细菌。并优选在应用前上述的细菌可在液体培养基中预-培养(种子培养(seed culture))。可能通过将由种子-培养的细菌与有机物质进行反应，同时在含有有机原料的培养基中生长所述的细菌来产生琥珀酸。另外，琥珀酸可以通过将增殖的细菌细胞与有机原料在含有所述有机原料的反应溶液中进行反应来产生。当好氧的棒状细菌用于本发明的方法时，优选应用在正常的好氧条件下培养之后的细菌。用于培养的培养基可为任何通常用于微生物培养的那些培养基。例如，可以应用常规培养基，其通过将天然营养源，如肉膏、酵母提取物或蛋白胨加入由无机盐如硫酸铵、磷酸钾和硫酸镁组成的组合物来制备。培养之后通过离心、膜分离等收集所述细菌细胞，然后用于反应。
在本发明中，也可以应用细菌的细胞处理物。例如，所述细菌细胞处理物包括：在丙烯酰胺、鹿角菜胶(carageenan)等上固定的细菌细胞；裂解的细菌细胞，其离心上清，或通过用硫酸铵处理等部分纯化所述上清而得到的级分。
用于本发明的产生方法的有机原料是没有局限的，只要它是所述微生物能同化以产生琥珀酸的碳源。通常，可发酵的糖类物质如半乳糖、乳糖、葡萄糖、果糖、甘油(glycerin)、蔗糖(sucrose)、蔗糖(saccharose)、淀粉和纤维素；或多元醇如甘油、甘露醇、木糖醇和核醣醇可用作碳源。其中，葡萄糖、果糖和甘油是优选的，而且葡萄糖是特别优选的。
此外，也可以应用糖化的淀粉溶液、糖蜜(molasses)等，其包含上述可发酵的糖类物质。那些可发酵的碳水化合物可以单独地或组合地应用。上述有机原料的浓度无具体的限制，但是，在产生琥珀酸不受抑制的范围内尽可能高地增加浓度是有利的。所述有机原料的浓度通常在5至30％(w/v)的范围内，优选10至20％(w/v)的范围内。此外，随着反应进行，当上述有机原料减少时也可补加所述的有机原料。
含有所述有机原料的反应溶液无具体的限制，而且例如，可为细菌培养的任何培养基或包括磷酸盐缓冲液的任何缓冲液。该反应溶液优选含有氮源、无机盐等的水溶液。本文中，所述氮源无具体限制，只要它被所述微生物同化以产生琥珀酸。具体地，所述氮源包括各种有机的和无机的氮化合物，如铵盐、硝酸盐、脲(urea)、大豆水解物、酪蛋白水解物、蛋白胨、酵母提取物、肉膏(meat extract)和玉米浆(corn steep liquor)。所述的无机盐包括各种类型的磷酸盐、硫酸盐和金属盐类(metal salts)如镁盐、钾盐、锰盐、铁盐、锌盐等。此外，如果需要，可以加入促进细菌细胞生长的任何组分，其包括维生素如生物素(biotin)、泛酸(pantothenic acid)、肌醇(inositol)和烟酸(nicotinicacid)、核苷酸和氨基酸。此外，优选将最佳量的商业上可得到的消泡剂(anti-foaming agent)加入所述的培养基以在反应的时候抑制发泡。
所述反应溶液的pH可通过加入碳酸钠、碳酸氢钠、碳酸钾、碳酸氢钾、碳酸镁、氢氧化钠、氢氧化钙、氢氧化镁等来调节。所述反应的pH通常为5至10的pH，优选6至9.5的pH，并由此，如果需要的话，在所述反应过程中该反应溶液的pH可用碱性物质、碳酸盐、脲等在上述范围内调节。
用于本发明的反应溶液可为水、缓冲液、培养基等，但优选培养基。例如，将碳酸盐或碳酸氢根离子，或二氧化碳气以及上述的有机原料加入所述培养基，然后在厌氧条件下进行反应。所述碳酸盐或碳酸氢根离子可由碳酸镁、碳酸钠、碳酸氢钠、碳酸钾或碳酸氢钾供给，上述物质也可用作中和剂。然而，如果需要的话，所述碳酸盐或碳酸氢根离子可由碳酸或重碳酸或其盐或二氧化碳气供给。碳酸盐或碳酸氢盐的具体实例包括碳酸镁、碳酸铵、碳酸钠、碳酸钾、碳酸氢铵、碳酸氢钠和碳酸氢钾。此外，将碳酸根离子或碳酸氢根离子以0.001至5M的浓度加入，优选0.1至3M，更优选1至2M。当加入二氧化碳气时，所述溶液中二氧化碳气的量为50mg/l至25g/l，优选100mg/l至15g/l，更优选150mg/l至10g/l。
用于本反应的细菌的生长的最适温度通常在25至35℃的范围内。所述反应的温度通常在25至40℃的范围内，优选在30至37℃的范围内。用于本反应的细菌细胞的量为，但不限于1至700g/L，优选10至500g/L，更优选20至400g/L。反应时间优选1至168小时，更优选3至72小时。
为了培养所述细菌，需要通过通气和搅拌供给氧气。在另一方面，琥珀酸可以通气和搅拌产生，或也可以在无通气或氧气供应的厌氧气氛下产生。本文中应用的术语“厌氧条件”(anaerobic condition)指在将溶液中的溶氧保持在低水平的同时进行反应。在此情况中，优选在0至2ppm的溶氧水平进行反应，优选0至1ppm，更优选0至0.5ppm。为了那个目的，可以在无通气的密封容器进行反应；可在供给惰性气体如氮气的同时进行反应；或供给含有二氧化碳气的惰性气体的同时进行反应。
在反应溶液(培养基)中累积的琥珀酸可根据常规方法来收集并从该反应溶液中纯化。具体地，通过离心、过滤等除去固体组分如细菌细胞等，并用离子-交换树脂等将得到的溶液脱盐，然后通过结晶或柱色谱(columnchromatography)来收集并从所述溶液中纯化琥珀酸。
在本发明中，通过本发明如前所述的方法产生琥珀酸之后，应用得到的琥珀酸作为原料可进行聚合反应以产生含有琥珀酸的聚合物。近年来，环境-友好的工业产品的数量增加，而且由植物来源的原料制备的聚合物引起注意。本发明中产生的琥珀酸可以加工成聚合物，如聚酯(polyester)和聚酰胺(polyamide)。此外，由本发明的产生方法得到的琥珀酸或含有所述琥珀酸的组合物可用于食物添加剂、药剂、化妆品等。
实施例
在下文中，参考实施例对本发明进行更详细地描述。然而，本发明并不局限于这些实施例。
实施例1
构建基因破坏载体
(A)提取枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)基因组DNA
在10mL的LB培养基[组成：10g胰蛋白胨(tryptone)，5g酵母提取物和5g NaCl溶于1L蒸馏水]中培养枯草芽孢杆菌ISW1214，直到对数生长后期(late logarithmic growth phase)，并收集所述的细菌细胞。得到的细菌细胞在0.15mL含有10mg/mL溶菌酶的10mM NaCl/20mM Tris缓冲液(pH 8.0)/1mM EDTA·2Na中重悬。
然后，将蛋白酶K以100μg/mL的终浓度加入所述悬浮液，并在37℃保持1个小时。然后，又将十二烷基硫酸钠溶液以0.5％的终浓度加入，并在50℃保持6小时用于裂解。向此裂解物中，加入等量的酚/氯仿溶液，并在室温慢慢振荡10分钟。然后，将总的悬浮液进行离心(5,000×g，20分钟，10至12℃)，并取出上清级分。将乙酸钠溶液以0.3M的浓度加入所述的上清级分，然后加入两倍量的乙醇并混合。通过离心(15,000×g，2分钟)除去沉淀物，然后用70％乙醇洗涤并风干。将5mL的10mM Tris缓冲液(pH 7.5)/1mMEDTA·2Na加入得到的DNA。将所得的溶液在4℃静置过夜，并用作PCR的模板DNA。
(B)通过PCR扩增和克隆SacB基因
通过应用前面(A)部分中制备的DNA作为模板；并应用基于报道的所述基因的核苷酸序列(GenBank Database登记号X02730)设计而合成的DNA(SEQ ID NOs：1和2)实施PCR来获得枯草芽孢杆菌SacB基因。
所述反应溶液的组成如下。将1μL的模板DNA、0.2μL的PfxDNA聚合酶(可从Invitrogen得到)、1-倍浓度的提供的缓冲液、0.3μM相应的引物，1mM MgSO4和0.25μM dNTPs混合，并将所述反应溶液的总体积调节至20μL。
反应温度条件如下：应用由MJ Research Co.，Ltd.制造的DNA热循环仪(Thermal Cycler)PTC-2000，并将94℃、20秒和68℃、2分钟的循环重复35次。对于第一个循环，在94℃保温(heat-retention)进行1分20秒。对于最后的循环，在68℃保温进行5分钟。
扩增的产物通过在0.75％琼脂糖(SeaKem GTG琼脂糖，可从FMCBioProducts得到)凝胶电泳中分离并用溴化乙锭染色显现来分析，以由此检测大约2kb的片段。应用QIAQuick凝胶Extraction Kit(可由QIAGEN得到)从所述的凝胶中回收目标DNA片段。
回收的DNA片段的5′-末端用T4多核苷酸激酶(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)磷酸化并通过应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)插入大肠杆菌载体(pBluescript II：可由STRATEGENE得到)的EcoRV位点，并应用得到的质粒DNA以转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将所得到的重组大肠杆菌铺在含有50μg/mL氨苄青霉素(ampicillin)和50μg/mL X-Gal的LB琼脂培养基上(10g胰蛋白胨、5g酵母提取物、5g NaCl和15g琼脂溶于1L蒸馏水)。
将此培养基上每个形成白色菌落的克隆转移到含有50μg/mL氨苄青霉素和10％蔗糖的LB琼脂培养基，并在37℃培养24小时。这些克隆中，将在含有蔗糖的培养基上不能生长的克隆通过常规方法进行液体培养，然后分离所述的质粒DNA。SacB基因被功能性表达的大肠杆菌菌株必不能在含有蔗糖的培养基中生长。得到的质粒DNA用限制性内切酶Sal I和Pst I进行消化。确认所述质粒DNA具有大约2kb的插入片段并将该质粒命名为pBS/SacB。
(C)构建氯霉素-抗性的SacB载体
500ng大肠杆菌质粒载体pHSG396(氯霉素抗性标记，可由Takara ShuzoCo.，Ltd.得到)与10单位的限制性内切酶PshBI在37℃反应1小时，并通过酚/氯仿提取和乙醇沉淀回收。将得到的DNA的两个末端每个用Klenow片段(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)平末端化，并将MluI接头(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)通过应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)连接于其上以形成环状质粒，并且应用得到的质粒以转化所述的大肠杆菌(DH5α菌株)。将得到的重组大肠杆菌铺在含有34μg/mL氯霉素的LB琼脂培养基上。通过常规方法将质粒DNA从所得到的克隆中分离。选择具有限制性内切酶MluI的切割位点的克隆并命名为pHSG396Mlu。
同时，在前面(B)部分构建的pBS/SacB用限制性内切酶SalI和PstI消化，并将得到的DNA的两个末端每个用Klenow片段平末端化。将MluI接头通过应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)连接于其上。然后，含有SacB基因大约2.0kb的DNA片段在0.75％琼脂糖凝胶电泳中分离并回收。将此SacB基因片段连接于通过用限制性内切酶MluI消化pHSG396Mlu而得到的片段上，并用小牛小肠碱性磷酸酶(Alkaline Phosphatase Calfintestine)(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)脱磷酸，通过应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)，所得到的DNA用于转化所述大肠杆菌(DH5α菌株)。将所得的重组大肠杆菌铺于含有34μg/mL氯霉素的LB琼脂培养基上。
将得到的菌落转移到含有34μg/mL氯霉素和10％蔗糖的LB琼脂培养基上，并在37℃培养24小时。这些克隆中，从在含有蔗糖的培养基上不能生长的克隆中通过常规方法分离质粒DNA。将得到的质粒DNA进行MluI消化和分析。结果，确认所述质粒DNA具有大约2kb的插入片段并命名为pCMB1。
(D)获得卡那霉素-抗性基因
应用大肠杆菌质粒载体pHSG299(卡那霉素抗性标记，Takara Shuzo Co.，Ltd.)的DNA作为模板，并应用合成的DNA(在SEQ ID NOs：3和4中显示)作为引物，通过实施PCR获得卡那霉素-抗性基因。反应溶液的组成如下：1ng模板DNA、0.1μL的Pyrobest DNA聚合酶(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)、1-倍浓度的提供的缓冲液、0.5μM相应的引物和0.25μM dNTPs混合，并将所述反应溶液的总体积调节至20μL。
反应温度条件如下：应用由MJ Research Co.，Ltd.制造的DNA热循环仪PTC-2000，并将94℃、20秒，62℃、15秒和72℃、1分20秒的循环重复20次。对于第一个循环，在94℃保温进行1分20秒。对于最后的循环，在72℃保温进行5分钟。
扩增的产物通过在0.75％琼脂糖(SeaKem GTG琼脂糖，可从FMCBioProducts得到)凝胶电泳中分离并用溴化乙锭染色显现来分析，以由此检测大约1.1kb的片段。应用QIAQuick凝胶Extraction Kit(可由QIAGEN得到)从所述的凝胶中回收目标DNA片段。回收的DNA片段的5′-末端用T4多核苷酸激酶(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)磷酸化。
(E)构建卡那霉素-抗性的SacB载体
通过用限制性内切酶Van91I和ScaI消化在前面(C)部分中构建的pCMB1而获得的大约3.5kb的DNA片段，在0.75％琼脂糖凝胶电泳中分离并回收。将得到的DNA与前面(D)部分中制备的卡那霉素抗性基因混合，并通过应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)连接于其上，而且所得的质粒DNA用于转化所述大肠杆菌(DH5α菌株)。将所得的重组大肠杆菌铺在含有50μg/mL卡那霉素的LB琼脂培养基上。
确认在含有卡那霉素的培养基上生长的菌株不能在含有蔗糖的培养基上生长。此外，由相同菌株制备的质粒DNA通过限制性内切酶HindIII消化显示354、473、1,807和1,997bp的片段。因此断定，所述质粒具有图1所示的结构，并将所述质粒命名为pKMB1。
实施例2
构建LDH基因-破坏的菌株
(A)从黄色短杆菌MJ233-ES菌株中提取基因组DNA
在10mLA培养基(2g脲、7g(NH4)2SO4、0.5g KH2PO4、0.5g K2HPO4、0.5g MgSO4·7H2O、6mg FeSO4·7H2O、6mg MnSO4·4-5H2O、200μg生物素、100μg硫胺素、1g酵母提取物、1g酪蛋白氨基酸(casamino aid)和20g葡萄糖溶于1L蒸馏水)中培养黄色短杆菌MJ-233菌株直到对数生长后期。所得的细菌细胞用于通过在实施例1的(A)部分中描述的方法制备基因组DNA。
(B)克隆乳酸脱氢酶基因
通过应用在前面(A)部分中制备的DNA作为模板；并应用基于JP11-206385A中描述的基因的核酸序列设计而合成的DNA((SEQ ID NOs：5和6)实施PCR获得MJ233菌株的乳酸脱氢酶基因。所述反应溶液的组成如下：将1μL模板DNA、0.2μL TaqDNA聚合酶(可从Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)、1-倍浓度的提供的缓冲液、0.2μM相应的引物和0.25μM dNTPs混合，并将所述反应溶液的总体积调节至20μL。
反应温度条件如下：应用由MJ Research Co.，Ltd.制造的DNA热循环仪PTC-2000，并将94℃、20秒，55℃、15秒和72℃、1分钟的循环重复30次。对于第一个循环，在94℃保温进行1分20秒。对于最后的循环，在72℃保温进行5分钟。
扩增的产物通过在0.75％琼脂糖(SeaKem GTG琼脂糖，可从FMCBioProducts得到)凝胶电泳中分离并用溴化乙锭染色显现来分析，以由此检测大约0.95kb的片段。应用QIAQuick凝胶Extraction Kit(可由QIAGEN得到)从所述的凝胶中回收目标DNA片段。
将回收的DNA片段与PCR产物-克隆载体pGEM-T Easy(可由PromegaCorporation得到)混合，并应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)连接于其上，而且得到的质粒DNA用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将所得的重组大肠杆菌铺在含有50μg/mL氨苄青霉素和50μg/mL X-Gal的LB琼脂培养基上。
将此培养基上每个形成白色菌落的克隆通过常规方法进行液体培养，然后纯化所述的质粒DNA。将得到的质粒DNA用限制性内切酶SacI和SphI切割。确认所述质粒DNA具有大约1.0kb的插入并命名为pGEMT/CgLDH。
(C)破坏乳酸脱氢酶基因质粒的构建
在前面(B)部分制备的pGEMT/CgLDH用限制性内切酶EcoRV和XbaI消化以去除乳酸脱氢酶大约0.25kb的编码区。残留的大约3.7kb的DNA片段的每个末端通过Klenow片段平末端化并通过应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)自身环化，而且所得的质粒用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将所得的重组大肠杆菌铺在含有50μg/mL氨苄青霉素的LB琼脂培养基上。
在此培养基上生长的菌株通过常规方法进行液体培养，然后分离所述的质粒DNA。将得到的质粒DNA用限制性内切酶SacI和SphI消化。选择具有大约0.75kb插入的克隆并命名为pGEMT/ΔLDH。
接着，通过用限制性内切酶SacI和SphI消化pGEMT/ΔLDH而得到的大约0.75kb的DNA片段在0.75％琼脂糖凝胶电泳中分离并回收，以制备乳酸脱氢酶基因片段，其中其区域的一部分缺失。将此DNA片段与用限制性内切酶SacI和SphI消化的实施例1中构建的pKMB1混合，并应用Ligation Kitver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)连接于其上，而得到的质粒DNA用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将得到的重组大肠杆菌铺在含有50μg/mL卡那霉素和50μg/mL X-Gal的LB琼脂培养基上。
将此培养基上每个形成白色菌落的克隆通过常规方法进行液体培养，然后分离所述的质粒DNA。将得到的质粒DNA用限制性内切酶SacI和SphI消化。选择具有大约0.75kb插入片段的克隆并命名为pKMB1/ΔLDH(图2)。
(D)构建源自黄色短杆菌MJ233-ES菌株的乳酸脱氢酶基因-破坏的菌株
用于转化黄色短杆菌MJ-233菌株的质粒DNA从通过氯化钙方法以pKMB1/ΔLDH转化的大肠杆菌JM110菌株中(Journal of Molecular Biology，53，159，1970)来分离。
从黄色短杆菌MJ233菌株(FERM BP-1497)(消除(curing))根据常规步骤(WolfH等，J.Bacteriol.1983，156(3)1165-1170，Kumsu Y等，Agric Biol Chem.1990，54(2)443-7)去除内源质粒，然后，得到的质粒-消除(plasmid-cured)菌株黄色短杆菌MJ233-ES用于后续的转化。
转化黄色短杆菌MJ233-ES菌株通过电脉冲方法(Res.Microbiolo.，Vol.144，p.181-185，1993)进行，并将得到的转化体铺于含有50μg/mL卡那霉素的LBG琼脂培养基(10g胰蛋白胨、5g酵母提取物、5g NaCl、20g葡萄糖和15g琼脂溶于1L蒸馏水)。
因为pKMB1/ΔLDH是在黄色短杆菌MJ233-ES菌株中不能复制的质粒，在此培养基上生长的菌株必须具有源自其基因组上的质粒的SacB基因和卡那霉素-抗性基因，这是所述质粒上的乳酸脱氢酶基因和黄色短杆菌MJ-233菌株的基因组上的相同基因之间同源重组的结果。
接着，通过同源重组得到的菌株在含50μg/mL卡那霉素的LBG培养基上进行液体培养。将假定包含大约1,000,000个细菌细胞的培养溶液铺在含10％蔗糖的LBG培养基上。结果，得到大约10个蔗糖-不敏感的菌株，其中所述的SacB基因通过第二次同源重组去除。
所得到的菌株包括：乳酸脱氢酶基因被源自pKMB1/ΔLDH的缺失型替代的菌株；和乳酸脱氢酶基因回复(revert)为野生型的菌株。该乳酸脱氢酶基因是变异型还是野生型可通过将由在LBG培养基中液体培养得到的细菌菌株进行直接PCR并检测所述的乳酸脱氢酶基因来容易地确认。通过应用PCR扩增的引物(SEQ ID NOs：7和8)分析乳酸脱氢酶基因得到野生型720bp的DNA片段和具有缺失的变异型471bp的DNA片段。
作为通过上述方法分析蔗糖-不敏感菌株的结果，选择只具有变异型基因的菌株并命名为黄色短杆菌MJ233/ΔLDH。
(E)测定乳酸脱氢酶活性
将由上述(D)制备的黄色短杆菌MJ233/ΔLDH菌株接种到培养基A中，然后在30℃好氧地振荡培养15小时。将得到的培养物离心(3,000×g，4℃，20分钟)，并收集细菌细胞，然后用钠-磷酸(sodium-phosphate)缓冲液(50mM磷酸钠缓冲液(pH 7.3))洗涤。
随后，将0.5g(湿重)洗涤的细菌细胞悬于2ml上述磷酸钠缓冲液，然后用超声仪(由Branson，Ltd.制造)在冰上处理以得到细菌细胞的裂解产物。将该裂解产物离心(10,000×g，4℃，30分钟)，并得到所述上清作为粗酶溶液(crudeenzyme solution)。类似地，制备黄色短杆菌MJ233-ES菌株的粗酶溶液作为对照，然后进行如下的活性测定。
对于两个粗酶溶液，通过测定辅酶NADH到NAD+的氧化作为340nm吸光度的变化，连同由作为底物的丙酮酸产生乳酸来测定乳酸脱氢酶活性(L.Kanarek和R.L.Hill，J.Biol.Chem.239，4202(1964))。该反应在37℃、存在10mM丙酮酸和0.4mM NADH的条件下，在50mM磷酸钾缓冲液(pH 7.2)中进行。因此，由黄色短杆菌MJ233/ΔLDH菌株制备的粗酶溶液的乳酸脱氢酶活性为由黄色短杆菌MJ233-ES菌株制备的粗酶溶液的乳酸脱氢酶活性的十分之一或更少。
实施例3
构建棒状杆菌的细菌的表达载体
(A)制备棒状杆菌的细菌的启动子片段
应用显示于JP07-95891A中的SEQ ID NO：4并报道为在棒状杆菌的细菌中具有高启动子活性的DNA片段(在下文中，称为TZ4启动子)。通过应用实施例2的(A)部分中制备的黄色短杆菌MJ233基因组DNA作为模板；并应用基于JP07-95891A中SEQ ID NO：4描述的序列设计而合成的DNAs(SEQ IDNOs：9和10)作为引物，实施PCR可得到所述的启动子片段。
所述反应溶液的组成如下：将1μL模板DNA、0.2μL PfxDNA聚合酶(可由Invitrogen Japan K.K.得到)、1-倍浓度的提供的缓冲液、0.3μM相应的引物、1mM MgSO4和0.25μM dNTPs混合，并将所述反应溶液的总体积调节至20μL。
反应温度条件如下：应用由MJ Research Co.，Ltd.制造的DNA热循环仪PTC-2000，并将94℃、20秒，60℃、20秒和72℃、30秒的循环重复35次。对于第一个循环，在94℃保温进行1分20秒。对于最后的循环，在72℃保温进行2分钟。
扩增的产物通过在2.0％琼脂糖(SeaKem GTG琼脂糖，可从FMCBioProducts得到)凝胶电泳中分离并用溴化乙锭染色显现来分析，以由此检测大约0.25kb的片段。应用QIAQuick凝胶Extraction Kit(可由QIAGEN得到)从所述的凝胶中回收目标DNA片段。
回收的DNA片段的5′-末端用T4多核苷酸激酶(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)磷酸化并通过应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)连接到大肠杆菌载体pUC19(Takara Shuzo Co.，Ltd.)的SmaI位点，而且得到的质粒DNA用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将所得到的重组大肠杆菌铺在含有50μg/mL氨苄青霉素和50μg/mL X-Gal的LB琼脂培养基上。
将此培养基上形成白色菌落的六个克隆通过常规方法进行液体培养，然后分离所述的质粒DNA，并测定核苷酸序列。从中选择TZ4启动子以具有相对于pUC19上的lac启动子反方向的转录活性的方式插入的克隆并命名为pUC/TZ4。
接着，将由合成的DNAs(SEQ ID NOs：11和12)组成的DNA接头添加到通过用限制性内切酶BamHI和PstI消化pUC/TZ4制备的DNA片段并通过应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)相互连接，所述合成的DNAs每个具有磷酸化的5′-末端并具有对应于BamHI和PstI每个的粘性末端，所得的质粒DNA用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。此DNA接头包括核糖体结合序列(AGGAGG)和所述核糖体结合序列下游排列的克隆位点(从上游PacI、NotI和ApaI的顺序)。
将此培养基上形成白色菌落的克隆通过常规方法进行液体培养，然后分离所述的质粒DNA。在得到的质粒DNA中，选择能用限制性内切酶NotI切割的质粒DNA并命名为pUC/TZ4-SD。
通过用限制性内切酶PstI消化pUC/TZ4-SD，用Klenow片段使其末端平末端化和用限制性内切酶KpnI切割所得DNA得到大约0.3kb的启动子片段，并在2.0％琼脂糖凝胶电泳中分离和回收。
(B)构建棒状杆菌的细菌的表达载体
JP 12-93183A中描述的pHSG298par-rep用作在棒状杆菌的细菌中能稳定且自主复制的质粒。此质粒包括来自停滞短杆菌(Brevibacterium stationis)IFO12144菌株的天然质粒pBYS03的复制区(replicating region)和稳定功能的区域，源自大肠杆菌载体pHSG298(Takara Shuzo Co.，Ltd.)的卡那霉素抗性基因和大肠杆菌的复制区。通过用限制性内切酶SseI消化pHSG298par-rep，用Klenow片段使其末端平末端化，并用限制性内切酶KpnI消化所得的DNA来制备DNA，并且将该DNA与前面(A)部分中制备的TZ4启动子片段混合并应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)连接于其上，而且所得的质粒DNA用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将得到的重组大肠杆菌铺于含有50μg/mL卡那霉素的LB琼脂培养基上。
将此培养基上生长的菌株通过常规方法进行液体培养，然后纯化所述的质粒DNA。在得到的质粒DNA中，选择能用限制性内切酶NotI消化的质粒DNA并命名为pTZ4(图3显示构建步骤)。
实施例4
构建丙酮酸羧化酶活性-增加的菌株
(A)获取丙酮酸羧化酶基因
源自黄色短杆菌MJ233菌株的丙酮酸羧化酶基因通过应用实施例2的(A)部分中制备的DNA作为模板；并应用基于其全部基因组序列已报道的(GenBank Database登记号AP005276)谷氨酸棒状杆菌ATCC13032菌株的丙酮酸羧化酶基因序列设计而合成的DNAs(SEQ ID NOs：13和14)作为引物，实施PCR而得到。所述反应溶液的组成如下：将1μL模板DNA、0.2μL PfxDNA聚合酶(可由Invitrogen Japan K.K.得到)、1-倍浓度的提供的缓冲液、0.3μM相应的引物、1mM MgSO4和0.25μM dNTPs混合，并将所述反应液的总体积调节至20μL。
反应温度条件如下：应用由MJ Research Co.，Ltd.制造的DNA热循环仪PTC-2000，并将94℃、20秒和68℃、4分钟的循环重复35次。对于第一个循环，在94℃保温进行1分20秒。对于最后的循环，在68℃保温进行10分钟。完成PCR之后，加入0.1M的Takara Ex Taq(Takara Shuzo Co.，Ltd.)并在72℃保持30分钟。
扩增的产物通过在0.75％琼脂糖(SeaKem GTG琼脂糖，可从FMCBioProducts得到)凝胶电泳中分离并用溴化乙锭染色显现来分析，以由此检测大约3.7kb的片段。应用QIAQuick凝胶提取试剂盒(可由QIAGEN得到)从所述的凝胶中回收目标DNA片段。
将回收的DNA片段与PCR产物-克隆载体pGEM-TEasy(可由PromegaCorporation得到)混合，并通过应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)连接于其上，而且得到的质粒DNA用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将所得到的重组大肠杆菌铺在含有50μg/mL氨苄青霉素和50μg/mL X-Gal的LB琼脂培养基上。
将此培养基上每个形成白色菌落的克隆通过常规方法进行液体培养，然后分离所述的质粒DNA。将得到的质粒DNA用限制性内切酶PacI和ApaI消化，确认所述的质粒DNA具有大约3.7kb的插入片段并命名为pGEM/MJPC。
通过应用核苷酸测序设备(model 377XL，由Applied Biosystems制造)和BigDye Terminator Cycle Sequencing Kit ver.3(由Applied Biosystems制造)测定pGEM/MJPC中插入片段的核苷酸序列。SEQ ID NO：15显示测定的核苷酸序列和预测的氨基酸序列。所述氨基酸序列与源自谷氨酸棒状杆菌ATCC13032菌株的序列非常高度地同源(99.4％)，可断定所述的pGEM/MJPC插入片段是源自黄色短杆菌MJ233菌株的丙酮酸羧化酶基因。
(B)增加丙酮酸羧化酶活性的质粒构建
接着，前面(A)部分中通过用限制性内切酶PacI和ApaI消化pGEM/MJPC得到的大约3.7kb的丙酮酸羧化酶基因片段在0.75％琼脂糖凝胶电泳中分离并回收。
将此DNA片段与实施例3中用限制性内切酶PacI和ApaI消化的pTZ4混合并应用Ligation Kit ver.2(可由Takara Shuzo Co.，Ltd.得到)连接于其上，而且得到的质粒DNA用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将所得的重组大肠杆菌铺于含有50μg/mL卡那霉素的LB琼脂培养基上。
将此培养基上生长的菌株通过常规方法进行液体培养，然后纯化所述的质粒DNA。将得到的质粒DNA用限制性内切酶PacI和ApaI消化，选择具有大约3.7kb的插入片段的克隆并命名为pMJPC1(图4)。
(C)转化黄色短杆菌MJ233/ΔLDH菌株
从前面(B)部分中转化的大肠杆菌(DH5α菌株)中分离能在黄色短杆菌MJ233菌株中复制的质粒DNA pMJPC1。
转化黄色短杆菌MJ233/ΔLDH菌株通过电脉冲方法进行(Res.Microbiolo.，Vol.144，p.181-185，1993)，并将得到的转化体铺于含有50μg/mL卡那霉素的LBG琼脂培养基(10g胰蛋白胨，5g酵母提取物，5g NaCl，20g葡萄糖和15g琼脂溶于1L蒸馏水)。
将此培养基上生长的菌株通过常规方法进行液体培养，然后提取所述的质粒DNA并以限制性内切酶消化来分析。此结果证实所述菌株保留pMJPC1，并将该菌株命名为黄色短杆菌MJ233/PC/ΔLDH菌株。
(D)丙酮酸羧化酶活性
将上面(C)部分中得到的转化体菌株黄色短杆菌MJ233/PC/ΔLDH在含有2％葡萄糖和25mg/l卡那霉素的100ml培养基A中过夜培养。收获所得的细菌细胞然后用50ml 50mM磷酸钾缓冲液(pH 7.5)洗涤，然后在20ml具有如上述同样的组成的缓冲液中重悬。将上述悬浮液用SONIFIER 350(由Branson制造)进行超声处理，然后提供离心的上清作为无-细胞提取物。应用得到的无-细胞提取物测定丙酮酸羧化酶活性。通过使所述的酶在25℃在含有100mMTris/HCl缓冲液(pH 7.5)、0.1mg/10ml生物素、5mM氯化镁、50mM碳酸氢钠、50mM丙酮酸钠、5mM三磷酸腺苷二钠(adenosine triphosphate disodium)、0.32mM NADH、20单位/1.5ml苹果酸脱氢酶(由WAKO制造，来源于酵母)和酶的反应溶液中进行反应来测量酶活性。一单位(1U)定义为每分钟催化减少1μmol NADH的酶量。用丙酮酸羧化酶基因转化的菌株的无-细胞提取物中的比活性为0.2U/mg蛋白。在另一方面，在通过相似地应用培养基A培育亲代MJ233/ΔLDH菌株制备的细菌细胞中，通过所述活性测定方法没有检测到丙酮酸羧化酶活性。
实施例5
克隆大肠杆菌延胡索酸还原酶基因
(A)提取大肠杆菌DNA
在10ml LB培养基中培育大肠杆菌JM109菌株直到对数生长末期，然后将得到的细菌细胞经过实施例1的(A)部分中描述的方法制备基因组DNA。
(B)克隆大肠杆菌延胡索酸还原酶基因
所述的大肠杆菌延胡索酸还原酶基因通过应用前面(A)部分中制备的DNA作为模板，和基于其全部基因组序列已报道的(GenBank Database登记号U00096)大肠杆菌K12-MG1655菌株的基因序列设计而合成的DNAs(SEQID NOs：17和18)，进行PCR而得到。
所述反应溶液的组成如下：将1μL模板DNA、0.2μL PfxDNA聚合酶(可由Invitrogen Co.，Ltd.得到)、1-倍浓度的提供的缓冲液、0.3μM各自的引物、1mM MgSO4和0.25μM dNTPs混合，并将总体积调节到20μL。
反应温度条件如下：应用由MJ Research Co.，Ltd.制造的DNA热循环仪PTC-2000，并将94℃、20秒和68℃、4分钟的循环重复35次。对于第一个循环，在94℃保温进行1分20秒。对于最后的循环，在68℃保温进行10分钟。完成PCR之后，加入0.1μl的Takara Ex Taq(Takara Shuzo Co.，Ltd.)并在72℃保持30分钟。
扩增的产物通过在0.75％琼脂糖(SeaKem GTG琼脂糖，可从FMCBioProducts得到)凝胶电泳中分离然后用溴化乙锭染色显现来分析，以由此检测大约3.8kb的片段。应用QIAQuick凝胶提取试剂盒(由QIAGEN制造)从所述的凝胶中回收目标DNA片段。
将回收的DNA片段与PCR产物-克隆载体pT7 Blue T-载体(由Novagen制造)混合，并通过应用Ligation Kit ver.2(由Takara Shuzo Co.，Ltd.制造)连接于其上，而且得到的质粒DNA用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将所得到的重组大肠杆菌铺在含有50μg/mL氨苄青霉素和50μg/mL X-Gal的LB琼脂培养基上。
将此培养基上形成白色菌落的克隆根据常规方法在液体培养物中进行培育，然后纯化所述的质粒DNA。将得到的质粒DNA用限制性内切酶HindIII和KpnI消化，由此确认大约3.9kb的插入片段，并命名为pFRD6.0。
pFRD6.0的插入片段的核苷酸序列应用由Applied Biosystems，Inc.制造的核苷酸测序设备(377XL型)和BigDye Terminator Cycle Sequencing Kit ver.3进行测定。得到的核苷酸序列和预测的氨基酸序列在SEQ ID NOs：19和20-23中描述。
实施例6
构建丙酮酸羧化酶/延胡索酸还原酶活性增加的菌株
(A)修饰pMJPC1的限制性内切酶识别位点
将实施例3中构建的pMJPC1用限制性内切酶KpnI完全消化，而且其5′-末端通过与小牛小肠(Calfintestine)碱性磷酸酶(Takara Shuzo Co.，Ltd.)反应脱磷酸。由具有磷酸化的5′-末端的合成的DNAs(SEQ ID NOs：24和25)组成的DNA接头与得到的片段混合，并应用Ligation Kit ver.2(可由TakaraShuzo Co.，Ltd.得到)连接与其上，而且所得的质粒DNA用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将得到的重组大肠杆菌铺于含有50μg/mL卡那霉素的LB琼脂培养基。
将此培养基上生长的菌株通过常规方法进行液体培养，然后分离所述的质粒DNA。在得到的质粒DNA中，选择能用限制性内切酶NdeI消化的质粒DNA，并命名为pMJPC1.1。
(B)增加丙酮酸羧化酶和延胡索酸还原酶活性的质粒构建
通过用限制性内切酶HindIII消化实施例5中制备的pFRD6.0，用Klenow片段使其末端平末端化，并用限制性内切酶KpnI消化得到大约3.9kb的DNA片段。该DNA片段在0.75％琼脂糖凝胶电泳中分离并回收。将含有大肠杆菌延胡索酸还原酶基因的制备的片段混合并应用Ligation Kit ver.2(可由TakaraShuzo Co.，Ltd.得到)连接到DNA，所述DNA用限制性内切酶NdeI消化上述(A)部分中制备的pMJPC1.1，用Klenow片段使其末端平末端化，然后用限制性内切酶KpnI消化得到。所得的质粒DNA用于转化大肠杆菌(DH5α菌株)。将得到的重组大肠杆菌铺于含有50μg/mL卡那霉素的LB琼脂培养基。
将此培养基上生长的菌株通过常规方法进行液体培养，然后分离所述的质粒DNA。在限制性内切酶HindIII消化之后，所得的质粒DNA显示505、2,132、2,675、3,775和4,193bp。因此，可断定所述的DNA具有图5所示的结构，并将此质粒命名为pFRPC1.1.
(B)转化黄色短杆菌MJ233/ΔLDH菌株
用pFRPC1.1转化黄色短杆菌MJ233/ΔLDH菌株通过实施例4的(C)部分中描述的方法来进行，以由此得到具有质粒pFRPC1.1的菌株。将此菌株命名为黄色短杆菌MJ233/FRD/PC/ΔLDH菌株。
(C)FRD酶活性测定
将由上面(B)部分制备的转化体，黄色短杆菌MJ233/FRD/PC/ΔLDH菌株，在100ml含有2％葡萄糖和25mg/L卡那霉素的培养基A中过夜培养。收集所得的细菌细胞并用50ml 50mM磷酸钾缓冲液(pH 7.5)来洗涤，然后在20ml具有如上述同样的组成的缓冲液中重悬。将上述悬浮液用SONIFIER 350(由Branson制造)进行超声处理，并将离心的上清用作无-细胞提取物。应用上述无-细胞提取物测定延胡索酸还原酶活性。通过使所述的提取物在25℃在含有33mM Tris/HCl缓冲液(pH 7.5)、0.1mM EDTA、20mM琥珀酸钠、2mMK3Fe(CN)6和酶的反应溶液中进行反应来测量酶活性。一单位(1U)定义为每分钟催化减少2μmol K3Fe(CN)6的酶量。表达所述质粒pFRRC1.1的菌株的无-细胞提取物中延胡索酸还原酶的比活性为0.02U/mg-蛋白。在另一方面，通过在培养基A中相似地培养亲代MJ233/ΔLDH菌株制备的细菌细胞中，所述比活性为0.01U/mg-蛋白。
实施例7
克隆棒状细菌的琥珀酸脱氢酶基因
黄色短杆菌MJ233菌株的琥珀酸脱氢酶(SDH)基因(在下文中，称作sdhC、sdhA和sdhB)应用基于谷氨酸棒状杆菌ATCC13032的基因的核苷酸序列(GenBank Database Accession NO.NC_003450)设计而合成的DNA作为引物通过PCR来获得。具体地，含有形成包含sdhC-sdhA-sdhB的操纵子所述基因的DNA片段(SEQ ID NO：28)应用具有SEQ ID NOs：26和27的合成的DNA作为引物并应用黄色短杆菌MJ233的染色体DNA作为模板通过PCR获得。所述的PCR应用KOD-PLUS-(由TOYOBO Co.，Ltd.制造)根据如下条件来实施，一步在94℃进行保温5分钟，然后将在94℃变性15秒，在56℃退火30秒，和在72℃延伸4分钟的循环重复25次。所得的PCR产物通过常规方法纯化然后用SmaI消化。将所述DNA片段混合并应用Ligation Kit ver.2(由Takara Bio Inc.制造)连接到通过用SalI消化pVK7(JP10-215883A)然后用DNA-Blunting Kit(由Takara Bio Inc.制造)平末端化而制备的DNA片段。此质粒用于转化大肠杆菌JM109的感受态细胞(由Takara Bio Inc.制造)，然后将所述的转化体铺于含有25μg/ml卡那霉素(在下文中，简称为Km)的LB培养基上，然后过夜培养。随后，挑取形成的菌落并分离单菌落，并由此得到转化体。从该转化体提取质粒，并将其中插入PCR产物的该质粒命名为pVKSDH。构建pVKSDH的步骤显示于图6。
实施例8
增加丙酮酸羧化酶和琥珀酸脱氢酶活性的质粒的构建
将通过用XbaI和Sse837I消化实施例7中构建的pVKSDH得到的含有三个基因sdhC、sdhA和sdhB的DNA片段混合并通过DNALigation Kit ver.2(由Takara Bio Inc.制造)连接于通过用XbaI和Sse8387I消化pHSG399(由TakaraBio Inc.制造)制备的片段。此DNA用于转化大肠杆菌JM109的感受态细胞(由Takara Bio Inc.制造)，然后将所述转化体铺于含有25μg/ml氯霉素(在下文中，简称为Cm)、50μg/ml X-Gal和1mM IPTG的LB培养基，然后过夜培养。随后，挑取呈现白色的菌落并分离单菌落，由此得到转化体。从该转化体中提取质粒，并将其中插入含有sdhC、sdhA和sdhB的DNA片段的质粒命名为pHSGSDH(图7)。
在另一方面，通过用KpnI和NdeI消化携带实施例6中描述的大肠杆菌的延胡索酸还原酶基因和来自黄色短杆菌的pyc基因的质粒pFRPC1.1，能回收含有除去来自大肠杆菌的延胡索酸还原酶基因之外的残留区域的片段。因此，用KpnI和NdeI消化pFRPC1.1和末端平末端化，和除去延胡索酸还原酶(furmarate reductase)基因，并回收残余的DNA片段。将通过用XbaI和Sse8387I消化pHSGSDH得到的含有sdhC、sdhA和sdhB的DNA片段进行末端-平末端化，然后连接于回收的DNA片段。此DNA用于转化大肠杆菌JM109的感受态细胞(由Takara Bio Inc.制造)，并将该转化体铺于含有25μg/mlKm的LB培养基上，然后过夜培养。随后，挑取呈现白色的菌落并分离单菌落，由此得到转化体。从该转化体中提取质粒，并将其中插入含有sdhC、sdhA和sdhB同时去除frdA、frdB、frdC和frdD基因的DNA片段的质粒命名为pSDHPC(图8)。
实施例9
构建其中丙酮酸羧化酶和琥珀酸脱氢酶增加的菌株
实施例7和实施例8中分别得到的pVKSDH和pSDHPC都能在棒状细菌的细胞中自主复制。因此，每个所述质粒用于转化棒状细菌，并由此得到转化体。用pVKSDH和pSDHPC中的每个通过电脉冲的方法转化实施例2中构建的MJ233/ΔLDH菌株，然后铺于含有25-μg/ml卡那霉素的CM-Dex培养基(5g/L葡萄糖、10g/L多蛋白胨(polypeptone)、10g/L酵母提取物、1g/LKH2PO4、0.4g/L MgSO4·7H2O、0.01g/L FeSO4·7H2O、0.01g/L MnSO4·7H2O、3g/L脲、1.2g/L大豆水解物(soybean hydrolysate)、pH 7.5(KOH)和15g/L琼脂)，然后在31.5℃培养大约24小时。
在此培养基上生长的菌株是其中导入所述质粒的菌株。所得的转化体分别命名为MJ233/SDH/ΔLDH和MJ233/SDH/PC/ΔLDH。此外，为了制备对照菌株，将实施例4中构造的质粒pVK7和质粒pMJPC1通过上面的方法导入MJ233/ΔLDH菌株。所得的转化体分别命名为MJ233/ΔLDH/pVK7和MJ233/PC/ΔLDH。
实施例10
细菌细胞反应(碳酸铵中和，半-好氧反应)
将100ml培养基(其中包含4g脲、14g硫酸铵、0.5g磷酸二氢钾、0.5g磷酸氢二钾、0.5g七水合硫酸镁(magnesium sulfate 7hydrate)、20mg七水合硫酸亚铁、20mg水合硫酸锰、200μg D-生物素、200μg盐酸硫胺素、1g酵母提取物、1g酪蛋白氨基酸和1000ml的蒸馏水)倾倒入500-mL锥形瓶，然后在120℃热-灭菌20分钟。将其冷却到室温，然后加入4mL预先灭菌的50％葡萄糖水溶液和50μL已经通过过滤除菌的5％卡那霉素溶液，并用于实施例6(B)中制备的黄色短杆菌MJ233/FRD/PC/ΔLDH菌株在30℃进行24小时种子培养。将含有12g脲、42g硫酸铵、1.5g磷酸二氢钾、1.5g磷酸氢二钾、1.5g七水合硫酸镁、60mg七水合硫酸亚铁、60mg水合硫酸锰、600μgD-生物素、600μg盐酸硫胺素、3g酵母提取物、3g酪蛋白氨基酸、1ml消泡剂(Adecanol LG294：由Asahi Denka Kogyo K.K.制造)和2,500ml蒸馏水的培养基倾倒入5-L发酵罐，然后在120℃热-灭菌20分钟。将其冷却到室温，然后加入500mL预先灭菌的12％葡萄糖水性(aqueous)溶液，然后将所述种子培养物的总量加入该培养基并在30℃培养。在500mL每分钟的通气速率和500rpm的搅拌速率的条件下进行主要的培养。12小时后，葡萄糖几乎全部被消耗。
将含有0.2g七水合硫酸镁、8mg七水合硫酸亚铁、8mg水合硫酸锰、80μg D-生物素、80μg盐酸硫胺素、1mL消泡剂(Adecanol LG294：由AsahiDenka Kogyo K.K.制造)和200mL蒸馏水的培养基倾倒入500-mL锥形瓶，然后在120℃热-灭菌20分钟。所述培养基冷却到室温后，将其加入从如上所述通过主要培养得到的培养溶液中通过在8,000rpm离心5分钟收获的细菌细胞，以使所述细菌细胞以60的O.D.(660nm)重悬。在1-L发酵罐中，加入200mL悬浮液和200mL预先-灭菌的20％葡萄糖溶液，并保温在35℃。用2M碳酸铵将pH保持在7.6，并在100mL每分钟的通气速率和400rpm的搅拌速率的条件下进行所述反应。
在所述反应开始后大约20小时，葡萄糖几乎全部被消耗。所述葡萄糖消耗速率为5.00g/L/h，所述琥珀酸产生速率为2.66g/L/h且其收率为70.1％。相比之下，当实施例4(C)中制备的黄色短杆菌MJ233/PC/ΔLDH菌株以如上所述同样的方式进行反应时，所述葡萄糖消耗速率为4.74g/L/h，所述琥珀酸产生速率为2.13g/L/h且其收率为58.7％。
实施例11
细菌细胞反应(碳酸铵中和，厌氧反应)
以如前面实施例10所述同样的方式制备反应悬浮液，并用2M碳酸铵将所述pH保持在7.6，在200rpm搅拌无通气的条件下进行反应。所述反应开始后大约40小时，葡萄糖几乎全部被消耗。所述葡萄糖消耗速率为2.50g/L/h，所述琥珀酸产生速率为1.35g/L/h且其收率为78.4％。相比之下，当实施例4(c)中制备的黄色短杆菌MJ233/PC/ΔLDH菌株以如上所述同样的方式进行反应时，所述葡萄糖消耗速率为2.38g/L/h，所述琥珀酸产生速率为1.21g/L/h且其收率为74.4％。
实施例12
细菌细胞反应(碳酸钠中和，半-好氧反应)
以如前面实施例10所述同样的方式制备反应悬浮液，并用2M碳酸钠将所述pH保持在7.6，并类似地实施反应。所述反应开始后大约28小时，葡萄糖几乎全部被消耗。所述葡萄糖消耗速率为3.60g/L/h，所述琥珀酸产生速率为2.27g/L/h且其收率为82.8％。相比之下，当实施例4(C)中制备的黄色短杆菌MJ233/PC/ΔLDH菌株以如上所述同样的方式进行反应时，所述葡萄糖消耗速率为2.97g/L/h，所述琥珀酸产生速率为1.97g/L/h且其收率为88.0％。
实施例13
细菌细胞反应(碳酸钠中和，厌氧反应)
以如前面实施例10所述同样的方式制备反应悬浮液，并用2M碳酸钠将所述pH保持在7.6，在200rpm搅拌无通气的条件下进行反应。所述反应开始后大约32小时，葡萄糖几乎全部被消耗。所述葡萄糖消耗速率为3.13g/L/h，所述琥珀酸产生速率为1.80g/L/h且其收率为97.1％。相比之下，当实施例4(c)中制备的黄色短杆菌MJ233/PC/ΔLDH菌株以如上所述同样的方式进行反应时，所述葡萄糖消耗速率为2.70g/L/h，所述琥珀酸产生速率为1.57g/L/h且其收率为88.6％。
表1
| 反应条件 | 分析项目 | MJ233/PC/ΔLDH | MJ233/FRD/PC/ΔLDH |
| 实施例10：碳酸铵中和，半-好氧(aerobic)反应 | Glc消耗速率(g/L/hr) | 4.7 | 5.0 |
| 琥珀酸产生速率(g/L/hr) | 2.1 | 2.7 | |
| 苹果酸积累(g/L) | 7.9 | 2.4 | |
| 琥珀酸收率(％) | 58.7 | 70.1 | |
| 实施例11：碳酸铵中和，厌氧反应 | Glc消耗速率 | 2.4 | 2.5 |
| 相对琥珀酸产生速率 | 1.2 | 1.4 | |
| 苹果酸积累 | 2.9 | 0.6 | |
| 琥珀酸收率 | 74.4 | 78.4 | |
| 实施例12：碳酸钠中和，半-好氧反应 | Glc消耗速率 | 3.0 | 3.6 |
| 相对琥珀酸产生速率 | 2.0 | 2.3 | |
| 苹果酸积累 | 0.0 | 0.0 | |
| 琥珀酸收率 | 88.0 | 82.8 | |
| 实施例13：碳酸钠中和，厌氧反应 | Glc消耗速率 | 2.7 | 3.1 |
| 相对琥珀酸产生速率 | 1.6 | 1.8 | |
| 苹果酸积累 | 0.5 | 0.0 | |
| 琥珀酸收率 | 88.6 | 97.1 |
实施例14
细菌细胞反应(碳酸镁中和，厌氧培养)
如下培养黄色短杆菌MJ233/ΔLDH/pVK7菌株和MJ233/SDH/PC/ΔLDH菌株由于产生琥珀酸。将在CM-Dex平板(含有25μg/ml卡那霉素)上培养的MJ233/ΔLDH/pVK7菌株和MJ233/SDH/PC/ΔLDH菌株的细菌细胞接种到3ml种子培养基(10g/L葡萄糖、2.5g/L(NH4)2SO4、0.5g/L KH2PO4、0.25g/LMgSO4·7H2O、2g/L脲、0.01g/L FeSO4·7H2O、0.01g/L MnSO4·7H2O、50μg/L生物素、100μg/L VB1·HCl、15mg/L原儿茶酸(protocatechuic acid)、0.02mg/LCuSO4和10mg/L CaCl2及pH 7.0(KOH))。在好氧条件下，将这些菌株在31.5℃振荡培养大约15小时。
然后，加入3ml的主要培养基(100g/L葡萄糖、5g/L(NH4)2SO4、2g/LKH2PO4、3g/L脲、0.01g/L FeSO4·7H2O、0.01g/L MnSO4·7H2O、200μg/L生物素、200μg/L VB1·HCl和71.4g/L MgCO3，每个浓度是加入后的终浓度，pH 6.8(NaOH))，并进行琥珀酸产生培养，同时将所述的管用硅盖子密封以防止通气。所述培育在31.5℃进行大约48小时，并在所述培养基中糖消失之前终止。
所述培养完成后，在将所述培养基合适地稀释之后通过液相色谱分析琥珀酸和副产物乙酸在培养基中的累积量。两个Shim-packSCR-102H(Simadzu)柱子串联连接并用作柱子，并用5mM对-甲苯磺酸(p-toluene sulfonic acid)在40℃洗脱样品。所述洗脱物应用含有5mM对-甲苯磺酸和100μM EDTA的20mM Bis-Tris水溶液来中和。所述琥珀酸和乙酸通过用CDD-10AD(Simadzu)测定电导率来测量。所述结果显示于表2中。
发现与通过将载体质粒导入相同宿主得到的MJ233/ALDH/pVK7菌株琥珀酸相比，MJ233/SDH/ΔLDH菌株的收率增加大约4％。此外，苹果酸的积累减少3.6g/L且延胡索酸的积累减少0.5g/L。
表2
由SDH-扩增的菌株产生琥珀酸、苹果酸和延胡索酸
| 菌株 | OD620(×51稀释) | 糖消耗(g/L) | 琥珀酸收率(％) | 苹果酸(g/L) | 延胡索酸(g/L) |
| MJ233/ΔLDH/pVK7 | 0.258 | 66.1 | 55.8 | 6.4 | 1.6 |
| MJ233/SDH/ΔLDH | 0.370 | 82.1 | 60.2 | 2.8 | 1.1 |
(B)SDH和PC同时扩增的菌株的培养评价
如下培养黄色短杆菌MJ233/PC/ΔLDH菌株和MJ233/SDH/PC/ΔLDH菌株用于琥珀酸生产。在CM-Dex平板上培养的MJ233/PC/ΔLDH菌株和MJ233/SDH/PC/ΔLDH菌株的细菌细胞接种于3ml的培养基A(20g/L葡萄糖、14g/L(NH4)2SO4、0.5g/L KH2PO4、0.5g/L KH2PO4、0.5g/L MgSO4·7H2O、4g/L脲、0.02g/L FeSO4·7H2O、0.02g/L MnSO4·7H2O、200μg/L生物素、200μg/LVB1·HCl，1g/L酪蛋白氨基酸和1g/L酵母提取物)中。在好氧条件下，这些菌株在管中振荡的同时在31.5℃培育大约15小时。
其后，加入3ml主要溶液(200g/L葡萄糖、30g/L亚硫酸钠和142.8g/LMgCO3)，并进行琥珀酸产生培养，同时将所述的管用硅盖子密封以防止通气。所述培育在31.5℃进行大约48小时，并在所述培养基中糖消失之前终止。
所述培养完成后，在将所述培养基合适地稀释之后通过液相色谱分析琥珀酸和副产物乙酸在培养基中的累积量。两个Shim-packSCR-102H(Simadzu)柱子串联连接并用作柱子，并用5mM对-甲苯磺酸在40℃洗脱样品。所述洗脱物应用含有5mM对-甲苯磺酸和100μM EDTA的20mM Bis-Tris水溶液来中和。所述琥珀酸和副产物乙酸通过用CDD-10AD(Simadzu)测定电导率来测量。所述结果显示于表3中。
[表3]
通过SDH和PC的组合扩增的菌株产生琥珀酸、苹果酸和延胡索酸
| 菌株 | OD620(×51稀释) | 糖消耗(g/L) | 琥珀酸收率(％) | 苹果酸(g/L) | 延胡索酸(g/L) |
| MJ233/PC/ΔLDH | 0.521 | 94.3 | 60.6 | 6.5 | 0.8 |
| MJ233/SDH/PC/ΔLDH | 0.451 | 89.8 | 63.4 | 3.6 | 0.6 |
在MJ233/SDH/PC/ΔLDH菌株中，与其中只有PC增加的MJ233/PC/ΔLDH菌株相比，琥珀酸的收率增加大约3％，同时苹果酸的积累减少3.2g/L而延胡索酸的积累减少0.2g/L。
考虑到这些结果和上面(A)部分的结果，发现扩增SDH基因可有效地增加琥珀酸的收率又降低作为产生琥珀酸的副产物的苹果酸和延胡索酸的量。
工业实用性
根据本发明的产生方法，能高效快速地产生琥珀酸。产生的琥珀酸可用作食物添加剂、药物、化妆品等。此外，可应用所产生琥珀酸作为原料通过实施聚合反应来产生含有琥珀酸的聚合物。
序列表
<110>三菱化学株式会社(Mitsubishi Chemical Corporation)
味之素株式会社(Ajinomoto Co.，Inc.)
<120>产生琥珀酸的方法
<130>A4050
<150>JP2003-304443
<151>2003-08-28
<160>31
<170>PatentIn version 3.1
<210>1
<211>34
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>1
cctttttaac ccatcacata tacctgccgt tcac 34
<210>2
<211>32
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>2
aaaggttagg aatacggtta gccatttgcc tg 32
<210>3
<211>21
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>3
gaggtctgcc tcgtgaagaa g 21
<210>4
<211>27
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>4
ctcattagaa aaactcatcg agcatca 27
<210>5
<211>20
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>5
cgatgaaaga aaccgtcggc 20
<210>6
<211>20
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>6
cgtcagaaga actgcttctg 20
<210>7
<211>23
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>7
agttgcatac gcatacgcac tga 23
<210>8
<211>23
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>8
gagactggga ctgcaacgtc ttg 23
<210>9
<211>24
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>9
gatctttcag ctgctcacac gtga 24
<210>10
<211>27
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>10
gatcttaggt cactaaaact aattcag 27
<210>11
<211>39
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>11
gatccaggag gcattaatta agcggccgcg ggccctgca 39
<210>12
<211>31
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>12
gggcccgcgg ccgcttaatt aatgcctcct g 31
<210>13
<211>43
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>13
accttaatta atgtcgactc acacatcttc aacgcttcca gca 43
<210>14
<211>44
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>14
gttgggccca ggtttaggaa acgacgacga tcaagtcgcc acct 44
<210>15
<211>3423
<212>DNA
<213>黄色短杆菌(Brevibacterium flavum)
<220>
<221>CDS
<222>(1)..(3420)
<223>
<400>15
atg tcg act cac aca tct tca acg ctt cca gca ttc aaa aag atc ttg 48
Met Ser Thr His Thr Ser Ser Thr Leu Pro Ala Phe Lys Lys Ile Leu
1 5 10 15
gta gca aac cgc ggc gaa atc gcg gtc cgt gct ttc cgt gca gca ctc 96
Val Ala Asn Arg Gly Glu Ile Ala Val Arg Ala Phe Arg Ala Ala Leu
20 25 30
gaa acc ggt gca gcc acg gta gct att tac ccc cgt gaa gat cgg gga 144
Glu Thr Gly Ala Ala Thr Val Ala Ile Tyr Pro Arg Glu Asp Arg Gly
35 40 45
tca ttc cac cgc tct ttt gct tct gaa gct gtc cgc att ggt act gaa 192
Ser Phe His Arg Ser Phe Ala Ser Glu Ala Val Arg Ile Gly Thr Glu
50 55 60
ggc tca cca gtc aag gcg tac ctg gac atc gat gaa att atc ggt gca 240
Gly Ser Pro Val Lys Ala Tyr Leu Asp Ile Asp Glu Ile Ile Gly Ala
65 70 75 80
gct aaa aaa gtt aaa gca gat gct att tac ccg gga tat ggc ttc ctg 288
Ala Lys Lys Val Lys Ala Asp Ala Ile Tyr Pro Gly Tyr Gly Phe Leu
85 90 95
tct gaa aat gcc cag ctt gcc cgc gag tgc gcg gaa aac ggc att act 336
Ser Glu Asn Ala Gln Leu Ala Arg Glu Cys Ala Glu Asn Gly Ile Thr
100 105 110
ttt att ggc cca acc cca gag gtt ctt gat ctc acc ggt gat aag tct 384
Phe Ile Gly Pro Thr Pro Glu Val Leu Asp Leu Thr Gly Asp Lys Ser
115 120 125
cgt gcg gta acc gcc gcg aag aag gct ggt ctg cca gtt ttg gcg gaa 432
Arg Ala Val Thr Ala Ala Lys Lys Ala Gly Leu Pro Val Leu Ala Glu
130 135 140
tcc acc ccg agc aaa aac atc gat gac atc gtt aaa agc gct gaa ggc 480
Ser Thr Pro Ser Lys Asn Ile Asp Asp Ile Val Lys Ser Ala Glu Gly
145 150 155 160
cag act tac ccc atc ttt gta aag gca gtt gcc ggt ggt ggc gga cgc 528
Gln Thr Tyr Pro Ile Phe Val Lys Ala Val Ala Gly Gly Gly Gly Arg
165 170 175
ggt atg cgc ttt gtt tct tca cct gat gag ctt cgc aaa ttg gca aca 576
Gly Met Arg Phe Val Ser Ser Pro Asp Glu Leu Arg Lys Leu Ala Thr
180 185 190
gaa gca tct cgt gaa gct gaa gcg gca ttc ggc gac ggt tcg gta tat 624
Glu Ala Ser Arg Glu Ala Glu Ala Ala Phe Gly Asp Gly Ser Val Tyr
195 200 205
gtc gag cgt gct gtg att aac ccc cag cac att gaa gtg cag atc ctt 672
Val Glu Arg Ala Val Ile Asn Pro Gln His Ile Glu Val Gln Ile Leu
210 215 220
ggc gat cgc act gga gaa gtt gta cac ctt tat gaa cgt gac tgc tca 720
Gly Asp Arg Thr Gly Glu Val Val His Leu Tyr Glu Arg Asp Cys Ser
225 230 235 240
ctg cag cgt cgt cac caa aaa gtt gtc gaa att gcg cca gca cag cat 768
Leu Gln Arg Arg His Gln Lys Val Val Glu Ile Ala Pro Ala Gln His
245 250 255
ttg gat cca gaa ctg cgt gat cgc att tgt gcg gat gca gta aag ttc 816
Leu Asp Pro Glu Leu Arg Asp Arg Ile Cys Ala Asp Ala Val Lys Phe
260 265 270
tgc cgc tcc att ggt tac cag ggc gcg gga act gtg gaa ttc ttg gtc 864
Cys Arg Ser Ile Gly Tyr Gln Gly Ala Gly Thr Val Glu Phe Leu Val
275 280 285
gat gaa aag ggc aac cac gtt ttc atc gaa atg aac cca cgt atc cag 912
Asp Glu Lys Gly Asn His Val Phe Ile Glu Met Asn Pro Arg Ile Gln
290 295 300
gtt gag cac acc gtg act gaa gaa gtc acc gag gtg gac ctg gtg aag 960
Val Glu His Thr Val Thr Glu Glu Val Thr Glu Val Asp Leu Val Lys
305 310 315 320
gcg cag atg cgc ttg gct gct ggt gca acc ttg aag gaa ttg ggt ctg 1008
Ala Gln Met Arg Leu Ala Ala Gly Ala Thr Leu Lys Glu Leu Gly Leu
325 330 335
acc caa gat aag atc aag acc cac ggt gcg gca ctg cag tgc cgc atc 1056
Thr Gln Asp Lys Ile Lys Thr His Gly Ala Ala Leu Gln Cys Arg Ile
340 345 350
acc acg gaa gat cca aac aac ggc ttc cgc cca gat acc gga act atc 1104
Thr Thr Glu Asp Pro Asn Asn Gly Phe Arg Pro Asp Thr Gly Thr Ile
355 360 365
acc gcg tac cgc tca cca ggc gga gct ggc gtt cgt ctt gac ggt gca 1152
Thr Ala Tyr Arg Ser Pro Gly Gly Ala Gly Val Arg Leu Asp Gly Ala
370 375 380
gct cag ctc ggt ggc gaa atc acc gca cac ttt gac tcc atg ctg gtg 1200
Ala Gln Leu Gly Gly Glu Ile Thr Ala His Phe Asp Ser Met Leu Val
385 390 395 400
aaa atg acc tgc cgt ggt tcc gat ttt gaa act gct gtt gct cgt gca 1248
Lys Met Thr Cys Arg Gly Ser Asp Phe Glu Thr Ala Val Ala Arg Ala
405 410 415
cag cgc gcg ttg gct gag ttc acc gtg tct ggt gtt gca acc aac att 1296
Gln Arg Ala Leu Ala Glu Phe Thr Val Ser Gly Val Ala Thr Asn Ile
420 425 430
ggt ttc ttg cgt gcg ttg ctg cgt gaa gag gac ttt act tcc aag cgc 1344
Gly Phe Leu Arg Ala Leu Leu Arg Glu Glu Asp Phe Thr Ser Lys Arg
435 440 445
atc gcc acc gga ttt atc ggc gat cac cca cac ctc ctt cag gct cca 1392
Ile Ala Thr Gly Phe Ile Gly Asp His Pro His Leu Leu Gln Ala Pro
450 455 460
cct gcg gat gat gag cag gga cgc atc ctg gat tac ttg gca gat gtc 1440
Pro Ala Asp Asp Glu Gln Gly Arg Ile Leu Asp Tyr Leu Ala Asp Val
465 470 475 480
acc gtg aac aag cct cat ggt gtg cgt cca aag gat gtt gca gca cca 1488
Thr Val Asn Lys Pro His Gly Val Arg Pro Lys Asp Val Ala Ala Pro
485 490 495
atc gat aag ctg ccc aac atc aag gat ctg cca ctg cca cgc ggt tcc 1536
Ile Asp Lys Leu Pro Asn Ile Lys Asp Leu Pro Leu Pro Arg Gly Ser
500 505 510
cgt gac cgc ctg aag cag ctt gga cca gca gcg ttt gcc cgc gat ctc 1584
Arg Asp Arg Leu Lys Gln Leu Gly Pro Ala Ala Phe Ala Arg Asp Leu
515 520 525
cgt gag cag gac gca ctg gca gtt act gat acc acc ttc cgc gat gca 1632
Arg Glu Gln Asp Ala Leu Ala Val Thr Asp Thr Thr Phe Arg Asp Ala
530 535 540
cac cag tct ttg ctt gcg acc cga gtc cgc tca ttc gca ctg aag cct 1680
His Gln Ser Leu Leu Ala Thr Arg Val Arg Ser Phe Ala Leu Lys Pro
545 550 555 560
gcg gca gag gcc gtc gca aag ctg act cct gag ctt ttg tcc gtg gag 1728
Ala Ala Glu Ala Val Ala Lys Leu Thr Pro Glu Leu Leu Ser Val Glu
565 570 575
gcc tgg ggc ggt gcg acc tac gat gtg gcg atg cgt ttc ctc ttt gag 1776
Ala Trp Gly Gly Ala Thr Tyr Asp Val Ala Met Arg Phe Leu Phe Glu
580 585 590
gat ccg tgg gac agg ctc gac gag ctg cgc gag gcg atg ccg aat gtg 1824
Asp Pro Trp Asp Arg Leu Asp Glu Leu Arg Glu Ala Met Pro Asn Val
595 600 605
aac att cag atg ctg ctt cgc ggc cgc aac acc gtg gga tac acc cca 1872
Asn Ile Gln Met Leu Leu Arg Gly Arg Asn Thr Val Gly Tyr Thr Pro
610 615 620
tac cca gac tcc gtc tgt cgc gcg ttt gtt aag gaa gct gcc acc tcc 1920
Tyr Pro Asp Ser Val Cys Arg Ala Phe Val Lys Glu Ala Ala Thr Ser
625 630 635 640
ggc gtg gac atc ttc cgc atc ttc gac gcg ctt aac gac gtc tcc cag 1968
Gly Val Asp Ile Phe Arg Ile Phe Asp Ala Leu Asn Asp Val Ser Gln
645 650 655
atg cgt cca gca atc gac gca gtc ctg gag acc aac acc gcg gtc gct 2016
Met Arg Pro Ala Ile Asp Ala Val Leu Glu Thr Asn Thr Ala Val Ala
660 665 670
gaa gtg gct atg gct tat tct ggt gat ctt tcc gat ccg aat gaa aag 2064
Glu Val Ala Met Ala Tyr Ser Gly Asp Leu Ser Asp Pro Asn Glu Lys
675 680 685
ctc tac acc ctg gat tac tac ctg aag atg gca gag gag atc gtc aag 2112
Leu Tyr Thr Leu Asp Tyr Tyr Leu Lys Met Ala Glu Glu Ile Val Lys
690 695 700
tct ggc gct cac att ctg gct att aag gat atg gct ggt ctg ctt cgc 2160
Ser Gly Ala His Ile Leu Ala Ile Lys Asp Met Ala Gly Leu Leu Arg
705 710 715 720
cca gct gca gcc acc aag ctg gtc acc gca ctg cgc cgt gaa ttt gat 2208
Pro Ala Ala Ala Thr Lys Leu Val Thr Ala Leu Arg Arg Glu Phe Asp
725 730 735
ctg cca gtg cac gtg cac acc cac gac act gcg ggt ggc cag ctg gca 2256
Leu Pro Val His Val His Thr His Asp Thr Ala Gly Gly Gln Leu Ala
740 745 750
acc tac ttt gct gca gct caa gct ggt gca gat gct gtt gac ggt gct 2304
Thr Tyr Phe Ala Ala Ala Gln Ala Gly Ala Asp Ala Val Asp Gly Ala
755 760 765
tcc gca cca ctg tct ggc acc acc tcc cag cca tcc ctg tct gcc att 2352
Ser Ala Pro Leu Ser Gly Thr Thr Ser Gln Pro Ser Leu Ser Ala Ile
770 775 780
gtt gct gca ttc gcg cac acc cgt cgc gat acc ggt ttg agc ctc gag 2400
Val Ala Ala Phe Ala His Thr Arg Arg Asp Thr Gly Leu Ser Leu Glu
785 790 795 800
gct gtt tct gac ctc gag cca tac tgg gaa gca gtg cgc gga ctg tac 2448
Ala Val Ser Asp Leu Glu Pro Tyr Trp Glu Ala Val Arg Gly Leu Tyr
805 810 815
ctg cca ttt gag tct gga acc cca ggc cca acc ggt cgc gtc tac cgc 2496
Leu Pro Phe Glu Ser Gly Thr Pro Gly Pro Thr Gly Arg Val Tyr Arg
820 825 830
cac gaa atc cca ggc gga cag ctg tcc aac ctg cgt gca cag gcc acc 2544
His Glu Ile Pro Gly Gly Gln Leu Ser Asn Leu Arg Ala Gln Ala Thr
835 840 845
gca ctg ggc ctt gcg gat cgt ttc gaa ctc atc gaa gac aac tac gcg 2592
Ala Leu Gly Leu Ala Asp Arg Phe Glu Leu Ile Glu Asp Asn Tyr Ala
850 855 860
gca gtt aat gag atg ctg gga cgc cca acc aag gtc acc cca tcc tcc 2640
Ala Val Asn Glu Met Leu Gly Arg Pro Thr Lys Val Thr Pro Ser Ser
865 870 875 880
aag gtt gtt ggc gac ctc gca ctc cac ctc gtt ggt gcg ggt gtg gat 2688
Lys Val Val Gly Asp Leu Ala Leu His Leu Val Gly Ala Gly Val Asp
885 890 895
cca gca gac ttt gct gca gat cca caa aag tac gac atc cca gac tct 2736
Pro Ala Asp Phe Ala Ala Asp Pro Gln Lys Tyr Asp Ile Pro Asp Ser
900 905 910
gtc atc gcg ttc ctg cgc ggc gag ctt ggt aac cct cca ggt ggc tgg 2784
Val Ile Ala Phe Leu Arg Gly Glu Leu Gly Asn Pro Pro Gly Gly Trp
915 920 925
cca gag cca ctg cgc acc cgc gca ctg gaa ggc cgc tcc gaa ggc aag 2832
Pro Glu Pro Leu Arg Thr Arg Ala Leu Glu Gly Arg Ser Glu Gly Lys
930 935 940
gca cct ctg acg gaa gtt cct gag gaa gag cag gcg cac ctc gac gct 2880
Ala Pro Leu Thr Glu Val Pro Glu Glu Glu Gln Ala His Leu Asp Ala
945 950 955 960
gat gat tcc aag gaa cgt cgc aac agc ctc aac cgc ctg ctg ttc ccg 2928
Asp Asp Ser Lys Glu Arg Arg Asn Ser Leu Asn Arg Leu Leu Phe Pro
965 970 975
aag cca acc gaa gag ttc ctc gag cac cgt cgc cgc ttc ggc aac acc 2976
Lys Pro Thr Glu Glu Phe Leu Glu His Arg Arg Arg Phe Gly Asn Thr
980 985 990
tct gcg ctg gat gat cgt gaa ttc ttc tac ggc ctg gtc gaa ggc cgc 3024
Ser Ala Leu Asp Asp Arg Glu Phe Phe Tyr Gly Leu Val Glu Gly Arg
995 1000 1005
gag act ttg atc cgc ctg cca gat gtg cgc acc cca ctg ctt gtt 3069
Glu Thr Leu Ile Arg Leu Pro Asp Val Arg Thr Pro Leu Leu Val
1010 1015 1020
cgc ctg gat gcg atc tcc gag cca gac gat aag ggt atg cgc aat 3114
Arg Leu Asp Ala Ile Ser Glu Pro Asp Asp Lys Gly Met Arg Asn
1025 1030 1035
gtt gtg gcc aac gtc aac ggc cag atc cgc cca atg cgt gtg cgt 3159
Val Val Ala Asn Val Asn Gly Gln Ile Arg Pro Met Arg Val Arg
1040 1045 1050
gac cgc tcc gtt gag tct gtc acc gca acc gca gaa aag gca gat 3204
Asp Arg Ser Val Glu Ser Val Thr Ala Thr Ala Glu Lys Ala Asp
1055 1060 1065
tcc tcc aac aag ggc cat gtt gct gca cca ttc gct ggt gtt gtc 3249
Ser Ser Asn Lys Gly His Val Ala Ala Pro Phe Ala Gly Val Val
1070 1075 1080
act gtg act gtt gct gaa ggt gat gag gtc aag gct gga gat gca 3294
Thr Val Thr Val Ala Glu Gly Asp Glu Val Lys Ala Gly Asp Ala
1085 1090 1095
gtc gca atc atc gag gct atg aag atg gaa gca aca atc act gct 3339
Val Ala Ile Ile Glu Ala Met Lys Met Glu Ala Thr Ile Thr Ala
1100 1105 1110
tct gtt gac ggc aaa atc gat cgc gtt gtg gtt cct gct gca acg 3384
Ser Val Asp Gly Lys Ile Asp Arg Val Val Val Pro Ala Ala Thr
1115 1120 1125
aag gtg gaa ggt ggc gac ttg atc gtc gtc gtt tcc taa 3423
Lys Val Glu Gly Gly Asp Leu Ile Val Val Val Ser
1130 1135 1140
<210>16
<211>1140
<212>PRT
<213>黄色短杆菌(Brevibacterium flavum)
<400>16
Met Ser Thr His Thr Ser Ser Thr Leu Pro Ala Phe Lys Lys Ile Leu
1 5 10 15
Val Ala Asn Arg Gly Glu Ile Ala Val Arg Ala Phe Arg Ala Ala Leu
20 25 30
Glu Thr Gly Ala Ala Thr Val Ala Ile Tyr Pro Arg Glu Asp Arg Gly
35 40 45
Ser Phe His Arg Ser Phe Ala Ser Glu Ala Val Arg Ile Gly Thr Glu
50 55 60
Gly Ser Pro Val Lys Ala Tyr Leu Asp Ile Asp Glu Ile Ile Gly Ala
65 70 75 80
Ala Lys Lys Val Lys Ala Asp Ala Ile Tyr Pro Gly Tyr Gly Phe Leu
85 90 95
Ser Glu Asn Ala Gln Leu Ala Arg Glu Cys Ala Glu Asn Gly Ile Thr
100 105 110
Phe Ile Gly Pro Thr Pro Glu Val Leu Asp Leu Thr Gly Asp Lys Ser
115 120 125
Arg Ala Val Thr Ala Ala Lys Lys Ala Gly Leu Pro Val Leu Ala Glu
130 135 140
Ser Thr Pro Ser Lys Asn Ile Asp Asp Ile Val Lys Ser Ala Glu Gly
145 150 155 160
Gln Thr Tyr Pro Ile Phe Val Lys Ala Val Ala Gly Gly Gly Gly Arg
165 170 175
Gly Met Arg Phe Val Ser Ser Pro Asp Glu Leu Arg Lys Leu Ala Thr
180 185 190
Glu Ala Ser Arg Glu Ala Glu Ala Ala Phe Gly Asp Gly Ser Val Tyr
195 200 205
Val Glu Arg Ala Val Ile Asn Pro Gln His Ile Glu Val Gln Ile Leu
210 215 220
Gly Asp Arg Thr Gly Glu Val Val His Leu Tyr Glu Arg Asp Cys Ser
225 230 235 240
Leu Gln Arg Arg His Gln Lys Val Val Glu Ile Ala Pro Ala Gln His
245 250 255
Leu Asp Pro Glu Leu Arg Asp Arg Ile Cys Ala Asp Ala Val Lys Phe
260 265 270
Cys Arg Ser Ile Gly Tyr Gln Gly Ala Gly Thr Val Glu Phe Leu Val
275 280 285
Asp Glu Lys Gly Asn His Val Phe Ile Glu Met Asn Pro Arg Ile Gln
290 295 300
Val Glu His Thr Val Thr Glu Glu Val Thr Glu Val Asp Leu Val Lys
305 310 315 320
Ala Gln Met Arg Leu Ala Ala Gly Ala Thr Leu Lys Glu Leu Gly Leu
325 330 335
Thr Gln Asp Lys Ile Lys Thr His Gly Ala Ala Leu Gln Cys Arg Ile
340 345 350
Thr Thr Glu Asp Pro Asn Asn Gly Phe Arg Pro Asp Thr Gly Thr Ile
355 360 365
Thr Ala Tyr Arg Ser Pro Gly Gly Ala Gly Val Arg Leu Asp Gly Ala
370 375 380
Ala Gln Leu Gly Gly Glu Ile Thr Ala His Phe Asp Ser Met Leu Val
385 390 395 400
Lys Met Thr Cys Arg Gly Ser Asp Phe Glu Thr Ala Val Ala Arg Ala
405 410 415
Gln Arg Ala Leu Ala Glu Phe Thr Val Ser Gly Val Ala Thr Asn Ile
420 425 430
Gly Phe Leu Arg Ala Leu Leu Arg Glu Glu Asp Phe Thr Ser Lys Arg
435 440 445
Ile Ala Thr Gly Phe Ile Gly Asp His Pro His Leu Leu Gln Ala Pro
450 455 460
Pro Ala Asp Asp Glu Gln Gly Arg Ile Leu Asp Tyr Leu Ala Asp Val
465 470 475 480
Thr Val Asn Lys Pro His Gly Val Arg Pro Lys Asp Val Ala Ala Pro
485 490 495
Ile Asp Lys Leu Pro Asn Ile Lys Asp Leu Pro Leu Pro Arg Gly Ser
500 505 510
Arg Asp Arg Leu Lys Gln Leu Gly Pro Ala Ala Phe Ala Arg Asp Leu
515 520 525
Arg Glu Gln Asp Ala Leu Ala Val Thr Asp Thr Thr Phe Arg Asp Ala
530 535 540
His Gln Ser Leu Leu Ala Thr Arg Val Arg Ser Phe Ala Leu Lys Pro
545 550 555 560
Ala Ala Glu Ala Val Ala Lys Leu Thr Pro Glu Leu Leu Ser Val Glu
565 570 575
Ala Trp Gly Gly Ala Thr Tyr Asp Val Ala Met Arg Phe Leu Phe Glu
580 585 590
Asp Pro Trp Asp Arg Leu Asp Glu Leu Arg Glu Ala Met Pro Asn Val
595 600 605
Asn Ile Gln Met Leu Leu Arg Gly Arg Asn Thr Val Gly Tyr Thr Pro
610 615 620
Tyr Pro Asp Ser Val Cys Arg Ala Phe Val Lys Glu Ala Ala Thr Ser
625 630 635 640
Gly Val Asp Ile Phe Arg Ile Phe Asp Ala Leu Asn Asp Val Ser Gln
645 650 655
Met Arg Pro Ala Ile Asp Ala Val Leu Glu Thr Asn Thr Ala Val Ala
660 665 670
Glu Val Ala Met Ala Tyr Ser Gly Asp Leu Ser Asp Pro Asn Glu Lys
675 680 685
Leu Tyr Thr Leu Asp Tyr Tyr Leu Lys Met Ala Glu Glu Ile Val Lys
690 695 700
Ser Gly Ala His Ile Leu Ala Ile Lys Asp Met Ala Gly Leu Leu Arg
705 710 715 720
Pro Ala Ala Ala Thr Lys Leu Val Thr Ala Leu Arg Arg Glu Phe Asp
725 730 735
Leu Pro Val His Val His Thr His Asp Thr Ala Gly Gly Gln Leu Ala
740 745 750
Thr Tyr Phe Ala Ala Ala Gln Ala Gly Ala Asp Ala Val Asp Gly Ala
755 760 765
Ser Ala Pro Leu Ser Gly Thr Thr Ser Gln Pro Ser Leu Ser Ala Ile
770 775 780
Val Ala Ala Phe Ala His Thr Arg Arg Asp Thr Gly Leu Ser Leu Glu
785 790 795 800
Ala Val Ser Asp Leu Glu Pro Tyr Trp Glu Ala Val Arg Gly Leu Tyr
805 810 815
Leu Pro Phe Glu Ser Gly Thr Pro Gly Pro Thr Gly Arg Val Tyr Arg
820 825 830
His Glu Ile Pro Gly Gly Gln Leu Ser Asn Leu Arg Ala Gln Ala Thr
835 840 845
Ala Leu Gly Leu Ala Asp Arg Phe Glu Leu Ile Glu Asp Asn Tyr Ala
850 855 860
Ala Val Asn Glu Met Leu Gly Arg Pro Thr Lys Val Thr Pro Ser Ser
865 870 875 880
Lys Val Val Gly Asp Leu Ala Leu His Leu Val Gly Ala Gly Val Asp
885 890 895
Pro Ala Asp Phe Ala Ala Asp Pro Gln Lys Tyr Asp Ile Pro Asp Ser
900 905 910
Val Ile Ala Phe Leu Arg Gly Glu Leu Gly Asn Pro Pro Gly Gly Trp
915 920 925
Pro Glu Pro Leu Arg Thr Arg Ala Leu Glu Gly Arg Ser Glu Gly Lys
930 935 940
Ala Pro Leu Thr Glu Val Pro Glu Glu Glu Gln Ala His Leu Asp Ala
945 950 955 960
Asp Asp Ser Lys Glu Arg Arg Asn Ser Leu Asn Arg Leu Leu Phe Pro
965 970 975
Lys Pro Thr Glu Glu Phe Leu Glu His Arg Arg Arg Phe Gly Asn Thr
980 985 990
Ser Ala Leu Asp Asp Arg Glu Phe Phe Tyr Gly Leu Val Glu Gly Arg
995 1000 1005
Glu Thr Leu Ile Arg Leu Pro Asp Val Arg Thr Pro Leu Leu Val
1010 1015 1020
Arg Leu Asp Ala Ile Ser Glu Pro Asp Asp Lys Gly Met Arg Asn
1025 1030 1035
Val Val Ala Asn Val Asn Gly Gln Ile Arg Pro Met Arg Val Arg
1040 1045 1050
Asp Arg Ser Val Glu Ser Val Thr Ala Thr Ala Glu Lys Ala Asp
1055 1060 1065
Ser Ser Asn Lys Gly His Val Ala Ala Pro Phe Ala Gly Val Val
1070 1075 1080
Thr Val Thr Val Ala Glu Gly Asp Glu Val Lys Ala Gly Asp Ala
1085 1090 1095
Val Ala Ile Ile Glu Ala Met Lys Met Glu Ala Thr Ile Thr Ala
1100 1105 1110
Ser Val Asp Gly Lys Ile Asp Arg Val Val Val Pro Ala Ala Thr
1115 1120 1125
Lys Val Glu Gly Gly Asp Leu Ile Val Val Val Ser
1130 1135 1140
<210>17
<211>35
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>17
ccacctgcag gactccacga tcggcaaaga aacga 35
<210>18
<211>39
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>18
ggtatttaaa aaggcgcaga gcgtcgtttt gaacatagg 39
<210>19
<211>3847
<212>DNA
<213>大肠杆菌(Escherichia coli)
<220>
<221>CDS
<222>(440)..(2239)
<223>
<220>
<221>CDS
<222>(2241)..(2975)
<223>
<220>
<221>CDS
<222>(2986)..(3381)
<223>
<220>
<221>CDS
<222>(3392)..(3751)
<223>
<400>19
ccacctgcag gactccacga tcggcaaaga aacgacggat ctccgccata atcgccgcgc 60
gttttaataa gttaggaatg gatgcgctcg gctgccagga tgccgtttcg ctcatagtta 120
aatctccagt ttttgacaag ggcacgaagt ctactcgcaa cgcgacggcg agacaaattt 180
tacgcaggaa tcaaacagcg gtgggcagtg actaaaaaaa gcacgatctg atggtttagt 240
aattaaatta atcatcttca gtgataattt agccctcttg cgcactaaaa aaatcgatct 300
cgtcaaattt cagacttatc catcagacta tactgttgta cctataaagg agcagtggaa 360
tagcgttcgc agaccgtaac tttcaggtac ttaccctgaa gtacgtggct gtgggataaa 420
aacaatctgg aggaatgtc gtg caa acc ttt caa gcc gat ctt gcc att gta 472
Val Gln Thr Phe Gln Ala Asp Leu Ala Ile Val
1 5 10
ggc gcc ggt ggc gcg gga tta cgt gct gca att gct gcc gcg cag gca 520
Gly Ala Gly Gly Ala Gly Leu Arg Ala Ala Ile Ala Ala Ala Gln Ala
15 20 25
aat ccg aat gca aaa atc gca cta atc tca aaa gta tac ccg atg cgt 568
Asn Pro Asn Ala Lys Ile Ala Leu Ile Ser Lys Val Tyr Pro Met Arg
30 35 40
agc cat acc gtt gct gca gaa ggg ggc tcc gcc gct gtc gcg cag gat 616
Ser His Thr Val Ala Ala Glu Gly Gly Ser Ala Ala Val Ala Gln Asp
45 50 55
cat gac agc ttc gaa tat cac ttt cac gat aca gta gcg ggt ggc gac 664
His Asp Ser Phe Glu Tyr His Phe His Asp Thr Val Ala Gly Gly Asp
60 65 70 75
tgg ttg tgt gag cag gat gtc gtg gat tat ttc gtc cac cac tgc cca 712
Trp Leu Cys Glu Gln Asp Val Val Asp Tyr Phe Val His His Cys Pro
80 85 90
acc gaa atg acc caa ctg gaa ctg tgg gga tgc cca tgg agc cgt cgc 760
Thr Glu Met Thr Gln Leu Glu Leu Trp Gly Cys Pro Trp Ser Arg Arg
95 100 105
ccg gat ggt agc gtc aac gta cgt cgc ttc ggc ggc atg aaa atc gag 808
Pro Asp Gly Ser Val Asn Val Arg Arg Phe Gly Gly Met Lys Ile Glu
110 115 120
cgc acc tgg ttc gcc gcc gat aag acc ggc ttc cat atg ctg cac acg 856
Arg Thr Trp Phe Ala Ala Asp Lys Thr Gly Phe His Met Leu His Thr
125 130 135
ctg ttc cag acc tct ctg caa ttc ccg cag atc cag cgt ttt gac gaa 904
Leu Phe Gln Thr Ser Leu Gln Phe Pro Gln Ile Gln Arg Phe Asp Glu
140 145 150 155
cat ttc gtg ctg gat att ctg gtt gat gat ggt cat gtt cgc ggc ctg 952
His Phe Val Leu Asp Ile Leu Val Asp Asp Gly His Val Arg Gly Leu
160 165 170
gta gca atg aac atg atg gaa ggc acg ctg gtg cag atc cgt gct aac 1000
Val Ala Met Asn Met Met Glu Gly Thr Leu Val Gln Ile Arg Ala Asn
175 180 185
gcg gtc gtt atg gct act ggc ggt gcg ggt cgc gtt tat cgt tac aac 1048
Ala Val Val Met Ala Thr Gly Gly Ala Gly Arg Val Tyr Arg Tyr Asn
190 195 200
acc aac ggc ggc atc gtt acc ggt gac ggt atg ggt atg gcg cta agc 1096
Thr Asn Gly Gly Ile Val Thr Gly Asp Gly Met Gly Met Ala Leu Ser
205 210 215
cac ggc gtt ccg ctg cgt gac atg gaa ttc gtt cag tat cac cca acc 1144
His Gly Val Pro Leu Arg Asp Met Glu Phe Val Gln Tyr His Pro Thr
220 225 230 235
ggt ctg cca ggt tcc ggt atc ctg atg acc gaa ggt tgc cgc ggt gaa 1192
Gly Leu Pro Gly Ser Gly Ile Leu Met Thr Glu Gly Cys Arg Gly Glu
240 245 250
ggc ggt att ctg gtc aac aaa aat ggc tac cgt tat ctg caa gat tac 1240
Gly Gly Ile Leu Val Asn Lys Asn Gly Tyr Arg Tyr Leu Gln Asp Tyr
255 260 265
ggc atg ggc ccg gaa act ccg ctg ggc gag ccg aaa aac aaa tat atg 1288
Gly Met Gly Pro Glu Thr Pro Leu Gly Glu Pro Lys Asn Lys Tyr Met
270 275 280
gaa ctg ggt cca cgc gac aaa gtc tct cag gcc ttc tgg cac gaa tgg 1336
Glu Leu Gly Pro Arg Asp Lys Val Ser Gln Ala Phe Trp His Glu Trp
285 290 295
cgt aaa ggc aac acc atc tcc acg ccg cgt ggc gat gtg gtt tat ctc 1384
Arg Lys Gly Asn Thr Ile Ser Thr Pro Arg Gly Asp Val Val Tyr Leu
300 305 310 315
gac ttg cgt cac ctc ggc gag aaa aaa ctg cat gaa cgt ctg ccg ttc 1432
Asp Leu Arg His Leu Gly Glu Lys Lys Leu His Glu Arg Leu Pro Phe
320 325 330
atc tgc gaa ctg gcg aaa gcg tac gtt ggc gtc gat ccg gtt aaa gaa 1480
Ile Cys Glu Leu Ala Lys Ala Tyr Val Gly Val Asp Pro Val Lys Glu
335 340 345
ccg att ccg gta cgt ccg acc gca cac tac acc atg ggc ggt atc gaa 1528
Pro Ile Pro Val Arg Pro Thr Ala His Tyr Thr Met Gly Gly Ile Glu
350 355 360
acc gat cag aac tgt gaa acc cgc att aaa ggt ctg ttc gcc gtg ggt 1576
Thr Asp Gln Asn Cys Glu Thr Arg Ile Lys Gly Leu Phe Ala Val Gly
365 370 375
gaa tgt tcc tct gtt ggt ctg cac ggt gca aac cgt ctg ggt tct aac 1624
Glu Cys Ser Ser Val Gly Leu His Gly Ala Asn Arg Leu Gly Ser Asn
380 385 390 395
tcc ctg gcg gaa ctg gtg gtc ttc ggc cgt ctg gcc ggt gaa caa gcg 1672
Ser Leu Ala Glu Leu Val Val Phe Gly Arg Leu Ala Gly Glu Gln Ala
400 405 410
aca gag cgt gca gca act gcc ggt aat ggc aac gaa gcg gca att gaa 1720
Thr Glu Arg Ala Ala Thr Ala Gly Asn Gly Asn Glu Ala Ala Ile Glu
415 420 425
gcg cag gca gct ggc gtt gaa caa cgt ctg aaa gat ctg gtt aac cag 1768
Ala Gln Ala Ala Gly Val Glu Gln Arg Leu Lys Asp Leu Val Asn Gln
430 435 440
gat ggc ggc gaa aac tgg gcg aag atc cgc gac gaa atg ggc ctg gct 1816
Asp Gly Gly Glu Asn Trp Ala Lys Ile Arg Asp Glu Met Gly Leu Ala
445 450 455
atg gaa gaa ggc tgc ggt atc tac cgt acg ccg gaa ctg atg cag aaa 1864
Met Glu Glu Gly Cys Gly Ile Tyr Arg Thr Pro Glu Leu Met Gln Lys
460 465 470 475
acc atc gac aag ctg gca gag ctg cag gaa cgc ttc aag cgc gtg cgc 1912
Thr Ile Asp Lys Leu Ala Glu Leu Gln Glu Arg Phe Lys Arg Val Arg
480 485 490
atc acc gac act tcc agc gtg ttc aac acc gac ctg ctc tac acc att 1960
Ile Thr Asp Thr Ser Ser Val Phe Asn Thr Asp Leu Leu Tyr Thr Ile
495 500 505
gaa ctg ggc cac ggt ctg aac gtt gct gaa tgt atg gcg cac tcc gca 2008
Glu Leu Gly His Gly Leu Asn Val Ala Glu Cys Met Ala His Ser Ala
510 515 520
atg gca cgt aaa gag tcc cgc ggc gcg cac cag cgt ctg gac gaa ggt 2056
Met Ala Arg Lys Glu Ser Arg Gly Ala His Gln Arg Leu Asp Glu Gly
525 530 535
tgc acc gag cgt gac gac gtc aac ttc ctc aaa cac acc ctc gcc ttc 2104
Cys Thr Glu Arg Asp Asp Val Asn Phe Leu Lys His Thr Leu Ala Phe
540 545 550 555
cgc gat gct gat ggc acg act cgc ctg gag tac agc gac gtg aag att 2152
Arg Asp Ala Asp Gly Thr Thr Arg Leu Glu Tyr Ser Asp Val Lys Ile
560 565 570
act acg ctg ccg cca gct aaa cgc gtt tac ggt ggc gaa gcg gat gca 2200
Thr Thr Leu Pro Pro Ala Lys Arg Val Tyr Gly Gly Glu Ala Asp Ala
575 580 585
gcc gat aag gcg gaa gca gcc aat aag aag gag aag gcg a atg gct gag 2249
Ala Asp Lys Ala Glu Ala Ala Asn Lys Lys Glu Lys Ala Met Ala Glu
590 595 600
atg aaa aac ctg aaa att gag gtg gtg cgc tat aac ccg aaa gtc gat 2297
Met Lys Asn Leu Lys Ile Glu Val Val Arg Tyr Asn Pro Lys Val Asp
605 610 615
acc gca ccg cat agc gca ttc tat gaa gtg cct tat gac gca act acc 2345
Thr Ala Pro His Ser Ala Phe Tyr Glu Val Pro Tyr Asp Ala Thr Thr
620 625 630 635
tca tta ctg gat gcg ctg ggc tac atc aaa gac aac ctg gca ccg gac 2393
Ser Leu Leu Asp Ala Leu Gly Tyr Ile Lys Asp Asn Leu Ala Pro Asp
640 645 650
ctg agc tac cgc tgg tcc tgc cgt atg gcg att tgt ggt tcc tgc ggc 2441
Leu Ser Tyr Arg Trp Ser Cys Arg Met Ala Ile Cys Gly Ser Cys Gly
655 660 665
atg atg gtt aac aac gtg cca aaa ctg gca tgt aaa acc ttc ctg cgt 2489
Met Met Val Asn Asn Val Pro Lys Leu Ala Cys Lys Thr Phe Leu Arg
670 675 680
gat tac acc gac ggt atg aag gtt gaa gcg tta gct aac ttc ccg att 2537
Asp Tyr Thr Asp Gly Met Lys Val Glu Ala Leu Ala Asn Phe Pro Ile
685 690 695
gaa cgc gat ctg gtg gtc gat atg acc cac ttc atc gaa agt ctg gaa 2585
Glu Arg Asp Leu Val Val Asp Met Thr His Phe Ile Glu Ser Leu Glu
700 705 710 715
gcg atc aaa ccg tac atc atc ggc aac tcc cgc acc gcg gat cag ggt 2633
Ala Ile Lys Pro Tyr Ile Ile Gly Asn Ser Arg Thr Ala Asp Gln Gly
720 725 730
act aac atc cag acc ccg gcg cag atg gcg aag tat cac cag ttc tcc 2681
Thr Asn Ile Gln Thr Pro Ala Gln Met Ala Lys Tyr His Gln Phe Ser
735 740 745
ggt tgc atc aac tgt ggt ttg tgc tac gcc gcg tgc ccg cag ttt ggc 2729
Gly Cys Ile Asn Cys Gly Leu Cys Tyr Ala Ala Cys Pro Gln Phe Gly
750 755 760
ctg aac cca gag ttc atc ggt ccg gct gcc att acg ctg gcg cat cgt 2777
Leu Asn Pro Glu Phe Ile Gly Pro Ala Ala Ile Thr Leu Ala His Arg
765 770 775
tat aac gaa gat agc cgc gac cac ggt aag aag gag cgt atg gcg cag 2825
Tyr Asn Glu Asp Ser Arg Asp His Gly Lys Lys Glu Arg Met Ala Gln
780 785 790 795
ttg aac agc cag aac ggc gta tgg agc tgt act ttc gtg ggc tac tgc 2873
Leu Asn Ser Gln Asn Gly Val Trp Ser Cys Thr Phe Val Gly Tyr Cys
800 805 810
tcc gaa gtc tgc ccg aaa cac gtc gat ccg gct gcg gcc att cag cag 2921
Ser Glu Val Cys Pro Lys His Val Asp Pro Ala Ala Ala Ile Gln Gln
815 820 825
ggc aaa gta gaa agt tcg aaa gac ttt ctt atc gcg acc ctg aaa cca 2969
Gly Lys Val Glu Ser Ser Lys Asp Phe Leu Ile Ala Thr Leu Lys Pro
830 835 840
cgc taa ggagtgcaac atg acg act aaa cgt aaa ccg tat gta cgg cca 3018
Arg Met Thr Thr Lys Arg Lys Pro Tyr Val Arg Pro
845 850 855
atg acg tcc acc tgg tgg aaa aaa ttg ccg ttt tat cgc ttt tac atg 3066
Met Thr Ser Thr Trp Trp Lys Lys Leu Pro Phe Tyr Arg Phe Tyr Met
860 865 870
ctg cgc gaa ggc acg gcg gtt ccg gct gtg tgg ttc agc att gaa ctg 3114
Leu Arg Glu Gly Thr Ala Val Pro Ala Val Trp Phe Ser Ile Glu Leu
875 880 885
att ttc ggg ctg ttt gcc ctg aaa aat ggc ccg gaa gcc tgg gcg gga 3162
Ile Phe Gly Leu Phe Ala Leu Lys Asn Gly Pro Glu Ala Trp Ala Gly
890 895 900
ttc gtc gac ttt tta caa aac ccg gtt atc gtg atc att aac ctg atc 3210
Phe Val Asp Phe Leu Gln Asn Pro Val Ile Val Ile Ile Asn Leu Ile
905 910 915
act ctg gcg gca gct ctg ctg cac acc aaa acc tgg ttt gaa ctg gca 3258
Thr Leu Ala Ala Ala Leu Leu His Thr Lys Thr Trp Phe Glu Leu Ala
920 925 930 935
ccg aaa gcg gcc aat atc att gta aaa gac gaa aaa atg gga cca gag 3306
Pro Lys Ala Ala Asn Ile Ile Val Lys Asp Glu Lys Met Gly Pro Glu
940 945 950
cca att atc aaa agt ctc tgg gcg gta act gtg gtt gcc acc atc gta 3354
Pro Ile Ile Lys Ser Leu Trp Ala Val Thr Val Val Ala Thr Ile Val
955 960 965
atc ctg ttt gtt gcc ctg tac tgg taa ggagcctgag atg att aat cca 3403
Ile Leu Phe Val Ala Leu Tyr Trp Met Ile Asn Pro
970 975
aat cca aag cgt tct gac gaa ccg gta ttc tgg ggc ctc ttc ggg gcc 3451
Asn Pro Lys Arg Ser Asp Glu Pro Val Phe Trp Gly Leu Phe Gly Ala
980 985 990 995
ggt ggt atg tgg agc gcc atc att gcg ccg gtg atg atc ctg ctg 3496
Gly Gly Met Trp Ser Ala Ile Ile Ala Pro Val Met Ile Leu Leu
1000 1005 1010
gtg ggt att ctg ctg cca ctg ggg ttg ttt ccg ggt gat gcg ctg 3541
Val Gly Ile Leu Leu Pro Leu Gly Leu Phe Pro Gly Asp Ala Leu
1015 1020 1025
agc tac gag cgc gtt ctg gcg ttc gcg cag agc ttc att ggt cgc 3586
Ser Tyr Glu Arg Val Leu Ala Phe Ala Gln Ser Phe Ile Gly Arg
1030 1035 1040
gta ttc ctg ttc ctg atg atc gtt ctg ccg ctg tgg tgt ggt tta 3631
Val Phe Leu Phe Leu Met Ile Val Leu Pro Leu Trp Cys Gly Leu
1045 1050 1055
cac cgt atg cac cac gcg atg cac gat ctg aaa atc cac gta cct 3676
His Arg Met His His Ala Met His Asp Leu Lys Ile His Val Pro
1060 1065 1070
gcg ggc aaa tgg gtt ttc tac ggt ctg gct gct atc ctg aca gtt 3721
Ala Gly Lys Trp Val Phe Tyr Gly Leu Ala Ala Ile Leu Thr Val
1075 1080 1085
gtc acg ctg att ggt gtc gtt aca atc taa cgcatcgcca atgtaaatcc 3771
Val Thr Leu Ile Gly Val Val Thr Ile
1090
ggcccgccta tggcgggccg ttttgtatgg aaaccagacc ctatgttcaa aacgacgctc 3831
tgcgcctttt aatacc 3847
<210>20
<211>600
<212>PRT
<213>大肠杆菌(Escherichia coli)
<400>20
Val Gln Thr Phe Gln Ala Asp Leu Ala Ile Val Gly Ala Gly Gly Ala
1 5 10 15
Gly Leu Arg Ala Ala Ile Ala Ala Ala Gln Ala Asn Pro Asn Ala Lys
20 25 30
Ile Ala Leu Ile Ser Lys Val Tyr Pro Met Arg Ser His Thr Val Ala
35 40 45
Ala Glu Gly Gly Ser Ala Ala Val Ala Gln Asp His Asp Ser Phe Glu
50 55 60
Tyr His Phe His Asp Thr Val Ala Gly Gly Asp Trp Leu Cys Glu Gln
65 70 75 80
Asp Val Val Asp Tyr Phe Val His His Cys Pro Thr Glu Met Thr Gln
85 90 95
Leu Glu Leu Trp Gly Cys Pro Trp Ser Arg Arg Pro Asp Gly Ser Val
100 105 110
Asn Val Arg Arg Phe Gly Gly Met Lys Ile Glu Arg Thr Trp Phe Ala
115 120 125
Ala Asp Lys Thr Gly Phe His Met Leu His Thr Leu Phe Gln Thr Ser
130 135 140
Leu Gln Phe Pro Gln Ile Gln Arg Phe Asp Glu His Phe Val Leu Asp
145 150 155 160
Ile Leu Val Asp Asp Gly His Val Arg Gly Leu Val Ala Met Asn Met
165 170 175
Met Glu Gly Thr Leu Val Gln Ile Arg Ala Asn Ala Val Val Met Ala
180 185 190
Thr Gly Gly Ala Gly Arg Val Tyr Arg Tyr Asn Thr Asn Gly Gly Ile
195 200 205
Val Thr Gly Asp Gly Met Gly Met Ala Leu Ser His Gly Val Pro Leu
210 215 220
Arg Asp Met Glu Phe Val Gln Tyr His Pro Thr Gly Leu Pro Gly Ser
225 230 235 240
Gly Ile Leu Met Thr Glu Gly Cys Arg Gly Glu Gly Gly Ile Leu Val
245 250 255
Asn Lys Asn Gly Tyr Arg Tyr Leu Gln Asp Tyr Gly Met Gly Pro Glu
260 265 270
Thr Pro Leu Gly Glu Pro Lys Asn Lys Tyr Met Glu Leu Gly Pro Arg
275 280 285
Asp Lys Val Ser Gln Ala Phe Trp His Glu Trp Arg Lys Gly Asn Thr
290 295 300
Ile Ser Thr Pro Arg Gly Asp Val Val Tyr Leu Asp Leu Arg His Leu
305 310 315 320
Gly Glu Lys Lys Leu His Glu Arg Leu Pro Phe Ile Cys Glu Leu Ala
325 330 335
Lys Ala Tyr Val Gly Val Asp Pro Val Lys Glu Pro Ile Pro Val Arg
340 345 350
Pro Thr Ala His Tyr Thr Met Gly Gly Ile Glu Thr Asp Gln Asn Cys
355 360 365
Glu Thr Arg Ile Lys Gly Leu Phe Ala Val Gly Glu Cys Ser Ser Val
370 375 380
Gly Leu His Gly Ala Asn Arg Leu Gly Ser Asn Ser Leu Ala Glu Leu
385 390 395 400
Val Val Phe Gly Arg Leu Ala Gly Glu Gln Ala Thr Glu Arg Ala Ala
405 410 415
Thr Ala Gly Asn Gly Asn Glu Ala Ala Ile Glu Ala Gln Ala Ala Gly
420 425 430
Val Glu Gln Arg Leu Lys Asp Leu Val Asn Gln Asp Gly Gly Glu Asn
435 440 445
Trp Ala Lys Ile Arg Asp Glu Met Gly Leu Ala Met Glu Glu Gly Cys
450 455 460
Gly Ile Tyr Arg Thr Pro Glu Leu Met Gln Lys Thr Ile Asp Lys Leu
465 470 475 480
Ala Glu Leu Gln Glu Arg Phe Lys Arg Val Arg Ile Thr Asp Thr Ser
485 490 495
Ser Val Phe Asn Thr Asp Leu Leu Tyr Thr Ile Glu Leu Gly His Gly
500 505 510
Leu Asn Val Ala Glu Cys Met Ala His Ser Ala Met Ala Arg Lys Glu
515 520 525
Ser Arg Gly Ala His Gln Arg Leu Asp Glu Gly Cys Thr Glu Arg Asp
530 535 540
Asp Val Asn Phe Leu Lys His Thr Leu Ala Phe Arg Asp Ala Asp Gly
545 550 555 560
Thr Thr Arg Leu Glu Tyr Ser Asp Val Lys Ile Thr Thr Leu Pro Pro
565 570 575
Ala Lys Arg Val Tyr Gly Gly Glu Ala Asp Ala Ala Asp Lys Ala Glu
580 585 590
Ala Ala Asn Lys Lys Glu Lys Ala
595 600
<210>21
<211>244
<212>PRT
<213>大肠杆菌(Escherichia coli)
<400>21
Met Ala Glu Met Lys Asn Leu Lys Ile Glu Val Val Arg Tyr Asn Pro
1 5 10 15
Lys Val Asp Thr Ala Pro His Ser Ala Phe Tyr Glu Val Pro Tyr Asp
20 25 30
Ala Thr Thr Ser Leu Leu Asp Ala Leu Gly Tyr Ile Lys Asp Asn Leu
35 40 45
Ala Pro Asp Leu Ser Tyr Arg Trp Ser Cys Arg Met Ala Ile Cys Gly
50 55 60
Ser Cys Gly Met Met Val Asn Asn Val Pro Lys Leu Ala Cys Lys Thr
65 70 75 80
Phe Leu Arg Asp Tyr Thr Asp Gly Met Lys Val Glu Ala Leu Ala Asn
85 90 95
Phe Pro Ile Glu Arg Asp Leu Val Val Asp Met Thr His Phe Ile Glu
100 105 110
Ser Leu Glu Ala Ile Lys Pro Tyr Ile Ile Gly Asn Ser Arg Thr Ala
115 120 125
Asp Gln Gly Thr Asn Ile Gln Thr Pro Ala Gln Met Ala Lys Tyr His
130 135 140
Gln Phe Ser Gly Cys Ile Asn Cys Gly Leu Cys Tyr Ala Ala Cys Pro
145 150 155 160
Gln Phe Gly Leu Asn Pro Glu Phe Ile Gly Pro Ala Ala Ile Thr Leu
165 170 175
Ala His Arg Tyr Asn Glu Asp Ser Arg Asp His Gly Lys Lys Glu Arg
180 185 190
Met Ala Gln Leu Asn Ser Gln Asn Gly Val Trp Ser Cys Thr Phe Val
195 200 205
Gly Tyr Cys Ser Glu Val Cys Pro Lys His Val Asp Pro Ala Ala Ala
210 215 220
Ile Gln Gln Gly Lys Val Glu Ser Ser Lys Asp Phe Leu Ile Ala Thr
225 230 235 240
Leu Lys Pro Arg
<210>22
<211>131
<212>PRT
<213>大肠杆菌(Escherichia coli)
<400>22
Met Thr Thr Lys Arg Lys Pro Tyr Val Arg Pro Met Thr Ser Thr Trp
1 5 10 15
Trp Lys Lys Leu Pro Phe Tyr Arg Phe Tyr Met Leu Arg Glu Gly Thr
20 25 30
Ala Val Pro Ala Val Trp Phe Ser Ile Glu Leu Ile Phe Gly Leu Phe
35 40 45
Ala Leu Lys Asn Gly Pro Glu Ala Trp Ala Gly Phe Val Asp Phe Leu
50 55 60
Gln Asn Pro Val Ile Val Ile Ile Asn Leu Ile Thr Leu Ala Ala Ala
65 70 75 80
Leu Leu His Thr Lys Thr Trp Phe Glu Leu Ala Pro Lys Ala Ala Asn
85 90 95
Ile Ile Val Lys Asp Glu Lys Met Gly Pro Glu Pro Ile Ile Lys Ser
100 105 110
Leu Trp Ala Val Thr Val Val Ala Thr Ile Val Ile Leu Phe Val Ala
115 120 125
Leu Tyr Trp
130
<210>23
<211>119
<212>PRT
<213>大肠杆菌(Escherichia coli)
<400>23
Met Ile Asn Pro Asn Pro Lys Arg Ser Asp Glu Pro Val Phe Trp Gly
1 5 10 15
Leu Phe Gly Ala Gly Gly Met Trp Ser Ala Ile Ile Ala Pro Val Met
20 25 30
Ile Leu Leu Val Gly Ile Leu Leu Pro Leu Gly Leu Phe Pro Gly Asp
35 40 45
Ala Leu Ser Tyr Glu Arg Val Leu Ala Phe Ala Gln Ser Phe Ile Gly
50 55 60
Arg Val Phe Leu Phe Leu Met Ile Val Leu Pro Leu Trp Cys Gly Leu
65 70 75 80
His Arg Met His His Ala Met His Asp Leu Lys Ile His Val Pro Ala
85 90 95
Gly Lys Trp Val Phe Tyr Gly Leu Ala Ala Ile Leu Thr Val Val Thr
100 105 110
Leu Ile Gly Val Val Thr Ile
115
<210>24
<211>16
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>24
atatgaaacc cggtac 16
<210>25
<211>16
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>25
cgggtttcat atgtac 16
<210>26
<211>33
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>26
ggttcccggg gaggaggaat cccatgccca acc 33
<210>27
<211>32
<212>DNA
<213>人工的
<220>
<223>引物
<400>27
ggttcccggg ggcacctacg gtgcaacagt tg 32
<210>28
<211>4123
<212>DNA
<213>黄色短杆菌(Brevibacterium flavum)
<220>
<221>CDS
<222>(363)..(1133)
<223>
<220>
<221>CDS
<222>(1153)..(3171)
<223>
<220>
<221>CDS
<222>(3174)..(3920)
<223>
<400>28
ggttcccggg ggcacctacg gtgcaacagt tgcgaaaatt gtgtcacctg cgcaaagcct 60
tgcttcgatt cggggaattc gggtgtctaa actttttgat tgataccaaa cggggttaga 120
aactgttcgg atcggtatcc tgtgaggaag ctcaccttgg ttttagaatg ttgaaaaagc 180
ctcaggtttc cgcaggtaga gcacactcaa ttaaatgagc gtcaaacgac aataaagtaa 240
ggctacccta ataagtgggg ttttatgcct ctaaatagcc agttgggggc ggtaggggag 300
cgtcccatga ctggttaatg cctcgatctg ggacgtacag taacaacgac actggaggtg 360
cc atg act gtt aga aat ccc gac cgt gag gca atc cgt cac gga aaa 407
Met Thr Val Arg Asn Pro Asp Arg Glu Ala Ile Arg His Gly Lys
1 5 10 15
att acg acg gag gcg ctg cgt gag cgt ccc gca tac ccg acc tgg gca 455
Ile Thr Thr Glu Ala Leu Arg Glu Arg Pro Ala Tyr Pro Thr Trp Ala
20 25 30
atg aag ctg acc atg gcc atc act ggc cta atc ttc ggt ggc ttc gtt 503
Met Lys Leu Thr Met Ala Ile Thr Gly Leu Ile Phe Gly Gly Phe Val
35 40 45
ctt gtt cac atg atc gga aac ctg aaa atc ttc atg ccg gac tac gca 551
Leu Val His Met Ile Gly Asn Leu Lys Ile Phe Met Pro Asp Tyr Ala
50 55 60
gcc gat tct gcg cat ccg ggt gaa gca caa gta gat gtc tac ggc gag 599
Ala Asp Ser Ala His Pro Gly Glu Ala Gln Val Asp Val Tyr Gly Glu
65 70 75
ttc ctg cgc gag atc gga tcc ccg atc ctc cca cac ggc tca gtc ctc 647
Phe Leu Arg Glu Ile Gly Ser Pro Ile Leu Pro His Gly Ser Val Leu
80 85 90 95
tgg atc cta cgt att atc ctg ctg gtc gca ttg gtt ctg cac atc tac 695
Trp Ile Leu Arg Ile Ile Leu Leu Val Ala Leu Val Leu His Ile Tyr
100 105 110
tgt gca ttc gca ttg acc ggc cgt tct cac cag tct cgc gga aag ttc 743
Cys Ala Phe Ala Leu Thr Gly Arg Ser His Gln Ser Arg Gly Lys Phe
115 120 125
cgc cgt acc aac ctc gtt ggc ggc ttc aac tcc ttc gcg acc cgc tcc 791
Arg Arg Thr Asn Leu Val Gly Gly Phe Asn Ser Phe Ala Thr Arg Ser
130 135 140
atg ctg gtg acc gga atc gtt ctc ctt gcg ttc att atc ttc cac atc 839
Met Leu Val Thr Gly Ile Val Leu Leu Ala Phe Ile Ile Phe His Ile
145 150 155
ctc gac ctg acc atg ggt gtt gct cca gca gcc cca acc tca ttc gag 887
Leu Asp Leu Thr Met Gly Val Ala Pro Ala Ala Pro Thr Ser Phe Glu
160 165 170 175
cac ggc gaa gta tac gca aac atg gtg gct tcc ttt agc cgc tgg cct 935
His Gly Glu Val Tyr Ala Asn Met Val Ala Ser Phe Ser Arg Trp Pro
180 185 190
gta gca att tgg tac atc att gcc aac ctg gtc ctg ttc gtc cac ctg 983
Val Ala Ile Trp Tyr Ile Ile Ala Asn Leu Val Leu Phe Val His Leu
195 200 205
tct cac ggc atc tgg ctt gca gtc tct gac ctg gga atc acc gga cgt 1031
Ser His Gly Ile Trp Leu Ala Val Ser Asp Leu Gly Ile Thr Gly Arg
210 215 220
cgc tgg agg gca atc ctc ctc gca gtt gcg tac atc gtt cct gca ctg 1079
Arg Trp Arg Ala Ile Leu Leu Ala Val Ala Tyr Ile Val Pro Ala Leu
225 230 235
gtc ctg atc ggc aac atc acc att ccg ttc gcc atc gct gtt ggc tgg 1127
Val Leu Ile Gly Asn Ile Thr Ile Pro Phe Ala Ile Ala Val Gly Trp
240 245 250 255
att gcg taaaggttag gaagaattt atg agc act cac tct gaa acc acc cgc 1179
Ile Ala Met Ser Thr His Ser Glu Thr Thr Arg
260 265
cca gag ttc atc cac cca gtc tcc gtc ctc cca gag gtc tca gct ggt 1227
Pro Glu Phe Ile His Pro Val Ser Val Leu Pro Glu Val Ser Ala Gly
270 275 280
acg gtc ctt gac gct gca gag cca gct ggt gtt ccc acc aaa gac atg 1275
Thr Val Leu Asp Ala Ala Glu Pro Ala Gly Val Pro Thr Lys Asp Met
285 290 295
tgg gaa tac caa aaa gac cac atg aac ctg gtc tcc cca ctg aac cga 1323
Trp Glu Tyr Gln Lys Asp His Met Asn Leu Val Ser Pro Leu Asn Arg
300 305 310
cgc aag ttc cgc gtc ctc gtc gtc ggc acc ggc ctg tcc ggt ggc gct 1371
Arg Lys Phe Arg Val Leu Val Val Gly Thr Gly Leu Ser Gly Gly Ala
315 320 325 330
gca gca gca gcc ctc ggc gaa ctc gga tac gac gtc aag gcg ttc acc 1419
Ala Ala Ala Ala Leu Gly Glu Leu Gly Tyr Asp Val Lys Ala Phe Thr
335 340 345
tac cac gac gca cct cgc cgt gcg cac tcc att gct gcg cag ggt ggc 1467
Tyr His Asp Ala Pro Arg Arg Ala His Ser Ile Ala Ala Gln Gly Gly
350 355 360
gtt aac tcc gcc cgc ggc aag aag gta gac aac gac ggc gca tac cgc 1515
Val Asn Ser Ala Arg Gly Lys Lys Val Asp Asn Asp Gly Ala Tyr Arg
365 370 375
cac gtc aag gac acc gtc aag ggc ggc gac tac cgt ggc cgc gag tcc 1563
His Val Lys Asp Thr Val Lys Gly Gly Asp Tyr Arg Gly Arg Glu Ser
380 385 390
gac tgc tgg cgt ctc gcc gtc gag tcc gtc cgc gtc atc gac cac atg 1611
Asp Cys Trp Arg Leu Ala Val Glu Ser Val Arg Val Ile Asp His Met
395 400 405 410
aat gcc atc ggt gcg cca ttc gcc cgc gaa tac ggt ggc gcc ttg gca 1659
Asn Ala Ile Gly Ala Pro Phe Ala Arg Glu Tyr Gly Gly Ala Leu Ala
415 420 425
acc cgt tcc ttc ggt ggt gtg cag gtc tcc cgt acc tac tac acc cgt 1707
Thr Arg Ser Phe Gly Gly Val Gln Val Ser Arg Thr Tyr Tyr Thr Arg
430 435 440
gga caa acc gga cag cag ctg cag ctc tcc acc gca tcc gca cta cag 1755
Gly Gln Thr Gly Gln Gln Leu Gln Leu Ser Thr Ala Ser Ala Leu Gln
445 450 455
cgc cag atc cac ctc ggc tcc gta gag atc ttc acc cac aac gaa atg 1803
Arg Gln Ile His Leu Gly Ser Val Glu Ile Phe Thr His Asn Glu Met
460 465 470
gtt gac gtc att gtc acc gaa cgt aat ggt gaa aag cgc tgc gaa ggc 1851
Val Asp Val Ile Val Thr Glu Arg Asn Gly Glu Lys Arg Cys Glu Gly
475 480 485 490
ctg atc atg cgc aac ctg atc acc ggc gag ctc acc gca cac acc ggc 1899
Leu Ile Met Arg Asn Leu Ile Thr Gly Glu Leu Thr Ala His Thr Gly
495 500 505
cat gcc gtt atc ctg gca acc ggt ggt tac ggc aac gtg tac cac atg 1947
His Ala Val Ile Leu Ala Thr Gly Gly Tyr Gly Asn Val Tyr His Met
510 515 520
tcc acc ctg gcg aag aac tcc aac gcc tcg gcc atc atg cgt gca tac 1995
Ser Thr Leu Ala Lys Asn Ser Asn Ala Ser Ala Ile Met Arg Ala Tyr
525 530 535
gaa gcc ggc gca tac ttc gcg tcc cca tcg ttc atc cag ttc cac cca 2043
Glu Ala Gly Ala Tyr Phe Ala Ser Pro Ser Phe Ile Gln Phe His Pro
540 545 550
acc ggc ctg cct gtg aac tcc acc tgg cag tcc aag acc att ctg atg 2091
Thr Gly Leu Pro Val Asn Ser Thr Trp Gln Ser Lys Thr Ile Leu Met
555 560 565 570
tcc gag tcg ctg cgt aac gac ggc cgc atc tgg tcc cct aag gaa ccg 2139
Ser Glu Ser Leu Arg Asn Asp Gly Arg Ile Trp Ser Pro Lys Glu Pro
575 580 585
aac gat aac cgc gat cca aac acc atc cct gag gat gag cgc gac tac 2187
Asn Asp Asn Arg Asp Pro Asn Thr Ile Pro Glu Asp Glu Arg Asp Tyr
590 595 600
ttc ctg gag cgc cgc tac cca gca ttc ggt aac ctc gtc cca cgt gac 2235
Phe Leu Glu Arg Arg Tyr Pro Ala Phe Gly Asn Leu Val Pro Arg Asp
605 610 615
gtt gct tcc cgt gcg atc tcc cag cag atc aac gct ggt ctc ggt gtt 2283
Val Ala Ser Arg Ala Ile Ser Gln Gln Ile Asn Ala Gly Leu Gly Val
620 625 630
gga cct ctg aac aac gct gca tac ctg gac ttc cgc gac gcc acc gag 2331
Gly Pro Leu Asn Asn Ala Ala Tyr Leu Asp Phe Arg Asp Ala Thr Glu
635 640 645 650
cgt ctc gga cag gac acc atc cgc gag cgt tac tcc aac ctc ttc acc 2379
Arg Leu Gly Gln Asp Thr Ile Arg Glu Arg Tyr Ser Asn Leu Phe Thr
655 660 665
atg tac gaa gag gcc att ggc gag gac cca tac tcc agc cca atg cgt 2427
Met Tyr Glu Glu Ala Ile Gly Glu Asp Pro Tyr Ser Ser Pro Met Arg
670 675 680
att gca ccg acc tgc cac ttc acc atg ggt ggc ctc tgg act gac ttc 2475
Ile Ala Pro Thr Cys His Phe Thr Met Gly Gly Leu Trp Thr Asp Phe
685 690 695
aac gaa atg acg tca ctc cca ggt ctg ttc tgt gca ggc gaa gca tcc 2523
Asn Glu Met Thr Ser Leu Pro Gly Leu Phe Cys Ala Gly Glu Ala Ser
700 705 710
tgg acc tac cac ggt gca aac cgt ctg ggc gca aac tcc ctg ctc tcc 2571
Trp Thr Tyr His Gly Ala Asn Arg Leu Gly Ala Asn Ser Leu Leu Ser
715 720 725 730
gct tcc gtc gat ggc tgg ttc acc ctg cca ttc acc gtc cct aac tac 2619
Ala Ser Val Asp Gly Trp Phe Thr Leu Pro Phe Thr Val Pro Asn Tyr
735 740 745
ctc ggc cca ttg ctt ggc gcc gag cgt ctg gca gag gac gca cca gaa 2667
Leu Gly Pro Leu Leu Gly Ala Glu Arg Leu Ala Glu Asp Ala Pro Glu
750 755 760
gcg cag gcg gcg att gag cgt gca cag gct cgc atc gac cgc ctc atg 2715
Ala Gln Ala Ala Ile Glu Arg Ala Gln Ala Arg Ile Asp Arg Leu Met
765 770 775
ggc aac cgc cca gag tgg atc ggc gac aac cca cac ggc cct gag tac 2763
Gly Asn Arg Pro Glu Trp Ile Gly Asp Asn Pro His Gly Pro Glu Tyr
780 785 790
tac cac cgc cag ctt ggc gat atc ctg tac ttc tcc tgt ggc gtt tct 2811
Tyr His Arg Gln Leu Gly Asp Ile Leu Tyr Phe Ser Cys Gly Val Ser
795 800 805 810
cga aac gta aag gac ctc cag gac ggt atc gac aag atc cgt gcg ctc 2859
Arg Asn Val Lys Asp Leu Gln Asp Gly Ile Asp Lys Ile Arg Ala Leu
815 820 825
cgc gag gac ttc tgg aag aac atg cgc atc acc ggc agc acc gat gag 2907
Arg Glu Asp Phe Trp Lys Asn Met Arg Ile Thr Gly Ser Thr Asp Glu
830 835 840
atg aac cag gtt ctc gaa tac gca gca cgc gtt gct gat tac atc gac 2955
Met Asn Gln Val Leu Glu Tyr Ala Ala Arg Val Ala Asp Tyr Ile Asp
845 850 855
ctc ggc gaa ctc atg tgc gtc gac gcc ctc gac cgc gac gag tcc tgt 3003
Leu Gly Glu Leu Met Cys Val Asp Ala Leu Asp Arg Asp Glu Ser Cys
860 865 870
ggc gcc cac ttc cgt gac gac cac ctc tcc gaa gac ggc gaa gca gaa 3051
Gly Ala His Phe Arg Asp Asp His Leu Ser Glu Asp Gly Glu Ala Glu
875 880 885 890
cgt gac gac gaa aac tgg tgc ttc gtc tcc gca tgg gaa cca ggc aag 3099
Arg Asp Asp Glu Asn Trp Cys Phe Val Ser Ala Trp Glu Pro Gly Lys
895 900 905
aac gga acc ttc gtc cgc cac gca gaa cca ctg ttc ttc gaa tcc gtc 3147
Asn Gly Thr Phe Val Arg His Ala Glu Pro Leu Phe Phe Glu Ser Val
910 915 920
cca ctg cag aca agg aac tac aag ta atg aaa ctt aca ctt gag atc 3194
Pro Leu Gln Thr Arg Asn Tyr Lys Met Lys Leu Thr Leu Glu Ile
925 930 935
tgg cgt cag gca ggc cca act gca gaa ggc aag ttc gaa acc gta cgg 3242
Trp Arg Gln Ala Gly Pro Thr Ala Glu Gly Lys Phe Glu Thr Val Arg
940 945 950
gtt gac gac gcc gtc gcg cag atg tct atc ctg gaa ctg cta gac cac 3290
Val Asp Asp Ala Val Ala Gln Met Ser Ile Leu Glu Leu Leu Asp His
955 960 965
gta aac aac aag ttc atc gaa gaa ggc aag gaa cca ttc gcg ttc gcc 3338
Val Asn Asn Lys Phe Ile Glu Glu Gly Lys Glu Pro Phe Ala Phe Ala
970 975 980 985
tct gac tgc cgc gaa ggc atc tgt ggt acc tgt ggt ctc ctc gtg aac 3386
Ser Asp Cys Arg Glu Gly Ile Cys Gly Thr Cys Gly Leu Leu Val Asn
990 995 1000
ggt cgc cct cac ggc gcc gac cag aac aag cct gcc tgt gcg cag 3431
Gly Arg Pro His Gly Ala Asp Gln Asn Lys Pro Ala Cys Ala Gln
1005 1010 1015
cgc ctg gtc agc tac aag gaa ggc gac acc ctt aag att gag cca 3476
Arg Leu Val Ser Tyr Lys Glu Gly Asp Thr Leu Lys Ile Glu Pro
1020 1025 1030
ctg cgc tcc gcc gca tac cca gtg atc aag gac atg gtc gtc gac 3521
Leu Arg Ser Ala Ala Tyr Pro Val Ile Lys Asp Met Val Val Asp
1035 1040 1045
cgc tcc gca ctg gac cgc gtc atg gaa cag ggt ggc tac gtg acc 3566
Arg Ser Ala Leu Asp Arg Val Met Glu Gln Gly Gly Tyr Val Thr
1050 1055 1060
atc aac gca ggt acc gca cct gac gct gat acc ctc cac gtc aac 3611
Ile Asn Ala Gly Thr Ala Pro Asp Ala Asp Thr Leu His Val Asn
1065 1070 1075
cac gaa acc gca gaa ctc gca ctt gac cac gca gcc tgc atc ggc 3656
His Glu Thr Ala Glu Leu Ala Leu Asp His Ala Ala Cys Ile Gly
1080 1085 1090
tgt ggt gca tgt gtc gct gcc tgc cct aac ggc gca gca cac ctg 3701
Cys Gly Ala Cys Val Ala Ala Cys Pro Asn Gly Ala Ala His Leu
1095 1100 1105
ttc acc ggc gca aag ctt gtt cac ctc tcc ctc ctc cca cta ggt 3746
Phe Thr Gly Ala Lys Leu Val His Leu Ser Leu Leu Pro Leu Gly
1110 1115 1120
aag gaa gag cgc gga ctg cgt gca cgt aag atg gtt gat gaa atg 3791
Lys Glu Glu Arg Gly Leu Arg Ala Arg Lys Met Val Asp Glu Met
1125 1130 1135
gaa acc aac ttc gga cac tgc tcc ctc tac ggc gag tgc gca gac 3836
Glu Thr Asn Phe Gly His Cys Ser Leu Tyr Gly Glu Cys Ala Asp
1140 1145 1150
gtt tgc ccc gca ggc atc cca ctg acc gct gtg gca gct gtc acc 3881
Val Cys Pro Ala Gly Ile Pro Leu Thr Ala Val Ala Ala Val Thr
1155 1160 1165
aaa gaa cgt gcg cgt gca gct ttc cga ggc aaa gac gac tagtctttaa 3930
Lys Glu Arg Ala Arg Ala Ala Phe Arg Gly Lys Asp Asp
1170 1175
tccaagtaag taccggttca gacagttaaa ccagaaagac gagtgaacac catgtcctcc 3990
gcgaaaaaga aacccgcacc ggagcgtatg cactacatca agggctatgt acctgtggcg 4050
tatagctctc cacactcatc cctcgagcgc agcgcaacct ggttgggcat gggattcctc 4110
ctccccggga acc 4123
<210>29
<211>257
<212>PRT
<213>黄色短杆菌(Brevibacterium flavum)
<400>29
Met Thr Val Arg Asn Pro Asp Arg Glu Ala Ile Arg His Gly Lys Ile
1 5 10 15
Thr Thr Glu Ala Leu Arg Glu Arg Pro Ala Tyr Pro Thr Trp Ala Met
20 25 30
Lys Leu Thr Met Ala Ile Thr Gly Leu Ile Phe Gly Gly Phe Val Leu
35 40 45
Val His Met Ile Gly Asn Leu Lys Ile Phe Met Pro Asp Tyr Ala Ala
50 55 60
Asp Ser Ala His Pro Gly Glu Ala Gln Val Asp Val Tyr Gly Glu Phe
65 70 75 80
Leu Arg Glu Ile Gly Ser Pro Ile Leu Pro His Gly Ser Val Leu Trp
85 90 95
Ile Leu Arg Ile Ile Leu Leu Val Ala Leu Val Leu His Ile Tyr Cys
100 105 110
Ala Phe Ala Leu Thr Gly Arg Ser His Gln Ser Arg Gly Lys Phe Arg
115 120 125
Arg Thr Asn Leu Val Gly Gly Phe Asn Ser Phe Ala Thr Arg Ser Met
130 135 140
Leu Val Thr Gly Ile Val Leu Leu Ala Phe Ile Ile Phe His Ile Leu
145 150 155 160
Asp Leu Thr Met Gly Val Ala Pro Ala Ala Pro Thr Ser Phe Glu His
165 170 175
Gly Glu Val Tyr Ala Asn Met Val Ala Ser Phe Ser Arg Trp Pro Val
180 185 190
Ala Ile Trp Tyr Ile Ile Ala Asn Leu Val Leu Phe Val His Leu Ser
195 200 205
His Gly Ile Trp Leu Ala Val Ser Asp Leu Gly Ile Thr Gly Arg Arg
210 215 220
Trp Arg Ala Ile Leu Leu Ala Val Ala Tyr Ile Val Pro Ala Leu Val
225 230 235 240
Leu Ile Gly Asn Ile Thr Ile Pro Phe Ala Ile Ala Val Gly Trp Ile
245 250 255
Ala
<210>30
<211>673
<212>PRT
<213>黄色短杆菌(Brevibacterium flavum)
<400>30
Met Ser Thr His Ser Glu Thr Thr Arg Pro Glu Phe Ile His Pro Val
1 5 10 15
Ser Val Leu Pro Glu Val Ser Ala Gly Thr Val Leu Asp Ala Ala Glu
20 25 30
Pro Ala Gly Val Pro Thr Lys Asp Met Trp Glu Tyr Gln Lys Asp His
35 40 45
Met Asn Leu Val Ser Pro Leu Asn Arg Arg Lys Phe Arg Val Leu Val
50 55 60
Val Gly Thr Gly Leu Ser Gly Gly Ala Ala Ala Ala Ala Leu Gly Glu
65 70 75 80
Leu Gly Tyr Asp Val Lys Ala Phe Thr Tyr His Asp Ala Pro Arg Arg
85 90 95
Ala His Ser Ile Ala Ala Gln Gly Gly Val Asn Ser Ala Arg Gly Lys
100 105 110
Lys Val Asp Asn Asp Gly Ala Tyr Arg His Val Lys Asp Thr Val Lys
115 120 125
Gly Gly Asp Tyr Arg Gly Arg Glu Ser Asp Cys Trp Arg Leu Ala Val
130 135 140
Glu Ser Val Arg Val Ile Asp His Met Asn Ala Ile Gly Ala Pro Phe
145 150 155 160
Ala Arg Glu Tyr Gly Gly Ala Leu Ala Thr Arg Ser Phe Gly Gly Val
165 170 175
Gln Val Ser Arg Thr Tyr Tyr Thr Arg Gly Gln Thr Gly Gln Gln Leu
180 185 190
Gln Leu Ser Thr Ala Ser Ala Leu Gln Arg Gln Ile His Leu Gly Ser
195 200 205
Val Glu Ile Phe Thr His Asn Glu Met Val Asp Val Ile Val Thr Glu
210 215 220
Arg Asn Gly Glu Lys Arg Cys Glu Gly Leu Ile Met Arg Asn Leu Ile
225 230 235 240
Thr Gly Glu Leu Thr Ala His Thr Gly His Ala Val Ile Leu Ala Thr
245 250 255
Gly Gly Tyr Gly Asn Val Tyr His Met Ser Thr Leu Ala Lys Asn Ser
260 265 270
Asn Ala Ser Ala Ile Met Arg Ala Tyr Glu Ala Gly Ala Tyr Phe Ala
275 280 285
Ser Pro Ser Phe Ile Gln Phe His Pro Thr Gly Leu Pro Val Asn Ser
290 295 300
Thr Trp Gln Ser Lys Thr Ile Leu Met Ser Glu Ser Leu Arg Asn Asp
305 310 315 320
Gly Arg Ile Trp Ser Pro Lys Glu Pro Asn Asp Asn Arg Asp Pro Asn
325 330 335
Thr Ile Pro Glu Asp Glu Arg Asp Tyr Phe Leu Glu Arg Arg Tyr Pro
340 345 350
Ala Phe Gly Asn Leu Val Pro Arg Asp Val Ala Ser Arg Ala Ile Ser
355 360 365
Gln Gln Ile Asn Ala Gly Leu Gly Val Gly Pro Leu Asn Asn Ala Ala
370 375 380
Tyr Leu Asp Phe Arg Asp Ala Thr Glu Arg Leu Gly Gln Asp Thr Ile
385 390 395 400
Arg Glu Arg Tyr Ser Asn Leu Phe Thr Met Tyr Glu Glu Ala Ile Gly
405 410 415
Glu Asp Pro Tyr Ser Ser Pro Met Arg Ile Ala Pro Thr Cys His Phe
420 425 430
Thr Met Gly Gly Leu Trp Thr Asp Phe Asn Glu Met Thr Ser Leu Pro
435 440 445
Gly Leu Phe Cys Ala Gly Glu Ala Ser Trp Thr Tyr His Gly Ala Asn
450 455 460
Arg Leu Gly Ala Asn Ser Leu Leu Ser Ala Ser Val Asp Gly Trp Phe
465 470 475 480
Thr Leu Pro Phe Thr Val Pro Asn Tyr Leu Gly Pro Leu Leu Gly Ala
485 490 495
Glu Arg Leu Ala Glu Asp Ala Pro Glu Ala Gln Ala Ala Ile Glu Arg
500 505 510
Ala Gln Ala Arg Ile Asp Arg Leu Met Gly Asn Arg Pro Glu Trp Ile
515 520 525
Gly Asp Asn Pro His Gly Pro Glu Tyr Tyr His Arg Gln Leu Gly Asp
530 535 540
Ile Leu Tyr Phe Ser Cys Gly Val Ser Arg Asn Val Lys Asp Leu Gln
545 550 555 560
Asp Gly Ile Asp Lys Ile Arg Ala Leu Arg Glu Asp Phe Trp Lys Asn
565 570 575
Met Arg Ile Thr Gly Ser Thr Asp Glu Met Asn Gln Val Leu Glu Tyr
580 585 590
Ala Ala Arg Val Ala Asp Tyr Ile Asp Leu Gly Glu Leu Met Cys Val
595 600 605
Asp Ala Leu Asp Arg Asp Glu Ser Cys Gly Ala His Phe Arg Asp Asp
610 615 620
His Leu Ser Glu Asp Gly Glu Ala Glu Arg Asp Asp Glu Asn Trp Cys
625 630 635 640
Phe Val Ser Ala Trp Glu Pro Gly Lys Asn Gly Thr Phe Val Arg His
645 650 655
Ala Glu Pro Leu Phe Phe Glu Ser Val Pro Leu Gln Thr Arg Asn Tyr
660 665 670
Lys
<210>31
<211>249
<212>PRT
<213>黄色短杆菌(Brevibacterium flavum)
<400>31
Met Lys Leu Thr Leu Glu Ile Trp Arg Gln Ala Gly Pro Thr Ala Glu
1 5 10 15
Gly Lys Phe Glu Thr Val Arg Val Asp Asp Ala Val Ala Gln Met Ser
20 25 30
Ile Leu Glu Leu Leu Asp His Val Asn Asn Lys Phe Ile Glu Glu Gly
35 40 45
Lys Glu Pro Phe Ala Phe Ala Ser Asp Cys Arg Glu Gly Ile Cys Gly
50 55 60
Thr Cys Gly Leu Leu Val Asn Gly Arg Pro His Gly Ala Asp Gln Asn
65 70 75 80
Lys Pro Ala Cys Ala Gln Arg Leu Val Ser Tyr Lys Glu Gly Asp Thr
85 90 95
Leu Lys Ile Glu Pro Leu Arg Ser Ala Ala Tyr Pro Val Ile Lys Asp
100 105 110
Met Val Val Asp Arg Ser Ala Leu Asp Arg Val Met Glu Gln Gly Gly
115 120 125
Tyr Val Thr Ile Asn Ala Gly Thr Ala Pro Asp Ala Asp Thr Leu His
130 135 140
Val Asn His Glu Thr Ala Glu Leu Ala Leu Asp His Ala Ala Cys Ile
145 150 155 160
Gly Cys Gly Ala Cys Val Ala Ala Cys Pro Asn Gly Ala Ala His Leu
165 170 175
Phe Thr Gly Ala Lys Leu Val His Leu Ser Leu Leu Pro Leu Gly Lys
180 185 190
Glu Glu Arg Gly Leu Arg Ala Arg Lys Met Val Asp Glu Met Glu Thr
195 200 205
Asn Phe Gly His Cys Ser Leu Tyr Gly Glu Cys Ala Asp Val Cys Pro
210 215 220
Ala Gly Ile Pro Leu Thr Ala Val Ala Ala Val Thr Lys Glu Arg Ala
225 230 235 240
Arg Ala Ala Phe Arg Gly Lys Asp Asp
245
Claims (9)
1.产生琥珀酸的方法，其包括使经过修饰以增加延胡索酸还原酶活性的细菌或其细胞处理物与有机原料在含有碳酸根离子、碳酸氢根离子或二氧化碳气中的反应溶液中进行反应以生成琥珀酸；和收集所述的琥珀酸。
2.权利要求1的方法，其中所述的细菌选自棒状细菌、芽孢杆菌属细菌或根瘤菌属细菌。
3.权利要求1或2的方法，其中所述细菌是经过修饰以通过应用来自棒状细菌的琥珀酸脱氢酶基因增加延胡索酸还原酶活性的细菌。
4.权利要求1或2的方法，其中所述细菌是经过修饰以通过应用来自大肠杆菌的延胡索酸还原酶基因增加延胡索酸还原酶活性的细菌。
5.权利要求1至4中任一项的方法，其中所述细菌被进一步修饰以将乳酸脱氢酶活性与未修饰的菌株相比减少到10％或更低。
6.权利要求1至5中任一项的方法，其中所述细菌被进一步修饰以增加丙酮酸羧化酶活性。
7.权利要求1至6中任一项的方法，其中所述细菌或其细胞处理物与所述有机原料在厌氧条件下进行反应。
8.权利要求1至7中任一项的方法，其中所述有机原料为葡萄糖。
9.产生含有琥珀酸的聚合物的方法，其包括通过权利要求1至8中任一项的方法产生琥珀酸，和将得到的琥珀酸进行聚合。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP304443/2003 | 2003-08-28 | ||
| JP2003304443 | 2003-08-28 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN1875108A true CN1875108A (zh) | 2006-12-06 |
| CN100575496C CN100575496C (zh) | 2009-12-30 |
Family
ID=34269270
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN200480032024A Expired - Fee Related CN100575496C (zh) | 2003-08-28 | 2004-08-27 | 产生琥珀酸的方法 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US7763447B2 (zh) |
| EP (1) | EP1672077B1 (zh) |
| CN (1) | CN100575496C (zh) |
| BR (1) | BRPI0413403A (zh) |
| WO (1) | WO2005021770A1 (zh) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101720357A (zh) * | 2007-04-20 | 2010-06-02 | 器官平衡有限责任公司 | 用于生产琥珀酸的微生物 |
| CN102812127A (zh) * | 2010-03-09 | 2012-12-05 | 三菱化学株式会社 | 琥珀酸的制造方法 |
| CN105754963A (zh) * | 2016-05-19 | 2016-07-13 | 江南大学 | 一种提高延胡索酸产量的方法 |
| CN112867790A (zh) * | 2018-10-19 | 2021-05-28 | 中国科学院天津工业生物技术研究所 | 提高苹果酸产量的新突变蛋白 |
| CN113046283A (zh) * | 2021-03-01 | 2021-06-29 | 江南大学 | 一株通过还原tca途径生产己二酸的工程菌株及其构建方法 |
Families Citing this family (32)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP4469568B2 (ja) | 2003-07-09 | 2010-05-26 | 三菱化学株式会社 | 有機酸の製造方法 |
| CN100575496C (zh) | 2003-08-28 | 2009-12-30 | 三菱化学株式会社 | 产生琥珀酸的方法 |
| CN1852978A (zh) | 2003-09-17 | 2006-10-25 | 三菱化学株式会社 | 制备无－氨基有机酸的方法 |
| WO2005030973A1 (ja) * | 2003-09-30 | 2005-04-07 | Ajinomoto Co., Inc. | 発酵液からのコハク酸の精製方法 |
| JP5572279B2 (ja) * | 2004-05-20 | 2014-08-13 | 味の素株式会社 | コハク酸生産菌及びコハク酸の製造方法 |
| WO2005113744A1 (ja) | 2004-05-20 | 2005-12-01 | Ajinomoto Co., Inc. | コハク酸生産菌及びコハク酸の製造方法 |
| WO2006115226A1 (ja) | 2005-04-22 | 2006-11-02 | Mitsubishi Chemical Corporation | バイオマス資源由来ポリエステル及びその製造方法 |
| JP4760121B2 (ja) * | 2005-05-17 | 2011-08-31 | 三菱化学株式会社 | コハク酸の製造方法 |
| BRPI0617491B1 (pt) * | 2005-10-18 | 2021-04-27 | Ajinomoto Co., Inc | Processo para produção de ácido succínico |
| WO2007099867A1 (ja) | 2006-02-24 | 2007-09-07 | Mitsubishi Chemical Corporation | 有機酸生産菌及び有機酸の製造法 |
| JP2010041920A (ja) | 2006-12-19 | 2010-02-25 | Ajinomoto Co Inc | Ｌ−アミノ酸の製造法 |
| EP2149607B1 (en) * | 2007-04-10 | 2017-12-20 | Ajinomoto Co., Inc. | Method for production of succinic acid |
| EP2149608A4 (en) | 2007-04-16 | 2013-02-20 | Ajinomoto Kk | PROCESS FOR PRODUCING AN ORGANIC ACID |
| JP5218400B2 (ja) | 2007-04-17 | 2013-06-26 | 味の素株式会社 | カルボキシル基を有する酸性物質の製造法 |
| EP2157185B1 (en) | 2007-05-18 | 2014-05-14 | Ajinomoto Co., Inc. | Process for production of succinic acid, and process for production of ammonium succinate solution |
| CN101821399A (zh) * | 2007-08-23 | 2010-09-01 | 三菱化学株式会社 | 琥珀酸的制备方法 |
| DE102007047206B4 (de) * | 2007-10-02 | 2016-08-11 | Insilico Biotechnology Ag | Biotechnologische Fixierung von Kohlenstoffdioxid |
| CN101978063B (zh) * | 2007-11-20 | 2018-10-16 | 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 | 在真核细胞中生产琥珀酸 |
| CN101896606B (zh) | 2007-11-20 | 2016-12-21 | 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 | 在重组酵母中生产二羧酸 |
| JP5644108B2 (ja) | 2007-12-06 | 2014-12-24 | 味の素株式会社 | 有機酸の製造方法 |
| CN102781900A (zh) | 2009-12-31 | 2012-11-14 | 麦兰特公司 | 从含有琥珀酸铵的发酵液纯化琥珀酸 |
| US20130130339A1 (en) | 2010-07-31 | 2013-05-23 | Myriant Corporation | Fermentation process for the production of organic acids |
| CN102249889B (zh) * | 2010-12-13 | 2014-07-23 | 日照金禾博源生化有限公司 | 一种从柠檬酸母液中提取丁二酸的方法 |
| EP2687591B1 (en) | 2011-03-18 | 2021-01-06 | Mitsubishi Chemical Corporation | Method for producing polymer, method for producing organic acid, and organic acid-producing microorganism |
| EP2778227A4 (en) * | 2011-11-11 | 2014-12-17 | Mitsubishi Chem Corp | PROCESS FOR PRODUCING SUCCINIC ACID |
| EP2778228B1 (en) | 2011-11-11 | 2017-05-17 | Ajinomoto Co., Inc. | Method for producing 2-ketoglutaric acid and derivatives thereof by using a bacterium from the genus pantoea or the genus corynebacterium |
| KR20140066553A (ko) | 2012-11-23 | 2014-06-02 | 삼성전자주식회사 | 코리네박테리움 속 균주의 신규 프로모터 |
| JP2014150748A (ja) * | 2013-02-06 | 2014-08-25 | Sekisui Chem Co Ltd | 変異微生物、並びに、コハク酸の生産方法 |
| JP2016165225A (ja) | 2013-07-09 | 2016-09-15 | 味の素株式会社 | 有用物質の製造方法 |
| KR20150112575A (ko) | 2014-03-28 | 2015-10-07 | 삼성전자주식회사 | GlnD 또는 GlnK의 활성이 증가되도록 유전적으로 조작된 박테리아 세포 및 그를 이용하여 유기산을 생산하는 방법 |
| CN104975050B (zh) * | 2014-04-10 | 2019-01-01 | 中国石化扬子石油化工有限公司 | 一种富马酸的制备方法 |
| JP2017216881A (ja) | 2014-12-26 | 2017-12-14 | 味の素株式会社 | ジカルボン酸の製造方法 |
Family Cites Families (78)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6696561B1 (en) * | 1909-07-09 | 2004-02-24 | Basf Aktiengesellschaft | Corynebacterium glutamicum genes encoding proteins involved in membrane synthesis and membrane transport |
| JPS57134500A (en) | 1981-02-12 | 1982-08-19 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | Plasmid pcg1 |
| JPS57183799A (en) | 1981-04-17 | 1982-11-12 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | Novel plasmid |
| JPS5835197A (ja) | 1981-08-26 | 1983-03-01 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | プラスミドｐｃｇ２ |
| ZA816779B (en) | 1981-09-30 | 1982-09-29 | American Cyanamid Co | Process for trimerizing isocyanic acid to make cyanuric acid |
| JPS5867679A (ja) | 1981-09-30 | 1983-04-22 | アメリカン・サイアナミド・カンパニ− | イソシアン酸を三量化してシアヌル酸をつくる方法 |
| JPS5877895A (ja) | 1981-11-02 | 1983-05-11 | Ajinomoto Co Inc | プラスミドｐｈｍ１５１９ |
| JPS58192900A (ja) | 1982-05-04 | 1983-11-10 | Ajinomoto Co Inc | 複合プラスミド |
| JPS61209596A (ja) | 1985-03-12 | 1986-09-17 | Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd | 固定化微生物による有機酸の製法 |
| JPH0636746B2 (ja) | 1985-08-24 | 1994-05-18 | 味の素株式会社 | Ｌ―グルタミン酸の製造方法 |
| JPH0796522B2 (ja) | 1986-04-08 | 1995-10-18 | 軽質留分新用途開発技術研究組合 | カルボン酸アンモニウム水溶液からのカルボン酸の製造法 |
| JPS62238232A (ja) | 1986-04-09 | 1987-10-19 | Res Assoc Util Of Light Oil | カルボン酸アンモニウム水溶液からのカルボン酸の製造法 |
| US5143834A (en) | 1986-06-11 | 1992-09-01 | Glassner David A | Process for the production and purification of succinic acid |
| US5168055A (en) * | 1986-06-11 | 1992-12-01 | Rathin Datta | Fermentation and purification process for succinic acid |
| EP0249773B1 (en) * | 1986-06-11 | 1992-12-16 | Michigan Biotechnology Institute | A process for the production of succinic acid by anaerobic fermentation |
| JPH01191686A (ja) | 1988-01-26 | 1989-08-01 | Mitsubishi Petrochem Co Ltd | 複合プラスミド |
| JP2678995B2 (ja) | 1988-09-08 | 1997-11-19 | 三菱化学株式会社 | トリプトフアンシンターゼの製造法 |
| US5185262A (en) | 1988-07-27 | 1993-02-09 | Mitsubishi Petrochemical Co., Ltd. | DNA fragment containing gene which encodes the function of stabilizing plasmid in host microorganism |
| US5034105A (en) | 1989-07-27 | 1991-07-23 | Michigan Biotechnology Institute | Carboxylic acid purification and crystallization process |
| JP2820279B2 (ja) | 1989-08-11 | 1998-11-05 | 日本合成化学工業株式会社 | ソルビン酸の製造方法 |
| JP2973446B2 (ja) | 1990-01-11 | 1999-11-08 | 三菱化学株式会社 | 新規プラスミドベクター |
| US5142834A (en) | 1990-07-12 | 1992-09-01 | Donnelly Corporation | Vehicle trim assembly and fastener therefor |
| US5132456A (en) * | 1991-05-07 | 1992-07-21 | The Regents Of The University Of California | Sorption of carboxylic acid from carboxylic salt solutions at PHS close to or above the pKa of the acid, with regeneration with an aqueous solution of ammonia or low-molecular-weight alkylamine |
| JP2526836B2 (ja) | 1991-08-23 | 1996-08-21 | 味の素株式会社 | 酢酸資化性遺伝子 |
| JP3151884B2 (ja) | 1991-12-03 | 2001-04-03 | 大日本インキ化学工業株式会社 | ポリウレタンポリ尿素粒子 |
| US5363179A (en) * | 1993-04-02 | 1994-11-08 | Rexham Graphics Inc. | Electrographic imaging process |
| CA2126365C (en) * | 1993-07-06 | 1999-08-24 | Steven W. Felman | Recovery of citric acid from impure process streams by addition of strong acids and salts thereof |
| JP2844511B2 (ja) | 1993-09-02 | 1999-01-06 | 味の素株式会社 | 酢酸資化性遺伝子及びその利用 |
| JP3394593B2 (ja) | 1994-05-11 | 2003-04-07 | 昭和高分子株式会社 | 生分解性脂肪族ポリエステルの製造方法 |
| ES2160167T3 (es) | 1994-06-14 | 2001-11-01 | Ajinomoto Kk | Gen de alfa-cetoglutarato-deshidrogenasa. |
| JP3210184B2 (ja) | 1994-08-12 | 2001-09-17 | 明健株式会社 | 火山灰の精製方法および火山灰用分級装置 |
| US5504004A (en) | 1994-12-20 | 1996-04-02 | Michigan Biotechnology Institute | Process for making succinic acid, microorganisms for use in the process and methods of obtaining the microorganisms |
| US5770435A (en) * | 1995-11-02 | 1998-06-23 | University Of Chicago | Mutant E. coli strain with increased succinic acid production |
| US5869301A (en) * | 1995-11-02 | 1999-02-09 | Lockhead Martin Energy Research Corporation | Method for the production of dicarboxylic acids |
| JP3072891B2 (ja) | 1996-08-14 | 2000-08-07 | 川崎製鉄株式会社 | 熱間圧延巻取装置における抜取異常処置方法 |
| JP4168463B2 (ja) | 1996-12-05 | 2008-10-22 | 味の素株式会社 | Ｌ−リジンの製造法 |
| KR19990013007A (ko) * | 1997-07-31 | 1999-02-25 | 박원훈 | 형질전환된 대장균 ｓｓ373(ｋｃｔｃ 8818ｐ)과 이를 이용한숙신산의 생산방법 |
| US5958744A (en) * | 1997-08-18 | 1999-09-28 | Applied Carbochemicals | Succinic acid production and purification |
| JP4197754B2 (ja) | 1997-10-09 | 2008-12-17 | 三菱化学株式会社 | 乳酸又はコハク酸の製造方法 |
| JP3480274B2 (ja) | 1997-10-29 | 2003-12-15 | 三菱化学株式会社 | 脂肪族ポリエステル共重合体の製造方法 |
| JPH11196887A (ja) | 1998-01-16 | 1999-07-27 | Mitsubishi Chemical Corp | ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子組み換え菌体による有機酸の製造法 |
| JP3967812B2 (ja) | 1998-01-16 | 2007-08-29 | 三菱化学株式会社 | ピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子組み換え菌体による有機酸の製造法 |
| JP4074365B2 (ja) | 1998-01-28 | 2008-04-09 | 三菱化学株式会社 | ラクテートデヒドロゲナーゼ遺伝子及び該遺伝子破壊株 |
| DK2194122T3 (en) * | 1998-04-13 | 2016-02-15 | Univ Georgia | Overexpression of pyruvate carboxylase increased the production of biochemicals derived from oxaloacetate, in microbial cells |
| US20030087381A1 (en) * | 1998-04-13 | 2003-05-08 | University Of Georgia Research Foundation, Inc. | Metabolically engineered organisms for enhanced production of oxaloacetate-derived biochemicals |
| JP4132253B2 (ja) | 1998-07-24 | 2008-08-13 | 株式会社武蔵野化学研究所 | アンモニア耐性ｌ（＋）−乳酸産生能菌およびｌ（＋）−乳酸の生産方法 |
| DE19951975A1 (de) * | 1999-10-28 | 2001-05-03 | Degussa | Neue für das poxB-Gen codierende Nuleotidsequenzen |
| DE19959650A1 (de) * | 1999-12-10 | 2001-06-13 | Degussa | Neue für die Gene sdhA, sdhB und sdhC codierende Nukleotidsequenzen |
| JP4623825B2 (ja) | 1999-12-16 | 2011-02-02 | 協和発酵バイオ株式会社 | 新規ポリヌクレオチド |
| US6670505B1 (en) | 2000-03-07 | 2003-12-30 | Eastman Chemical Company | Process for the recovery of organic acids from aqueous solutions |
| DE10044681A1 (de) * | 2000-09-09 | 2002-03-21 | Degussa | Neue für das lldD2-Gen kodierende Nukleotidsequenzen |
| US6911329B2 (en) * | 2000-09-23 | 2005-06-28 | Degussa Ag | Process for the fermentative preparation of D-pantothenic acid using coryneform bacteria |
| EP1320586B1 (en) | 2000-09-30 | 2004-08-25 | Degussa AG | Process for the fermentative preparation of d-pantothenic acid using coryneform bacteria |
| WO2002036797A2 (en) | 2000-11-04 | 2002-05-10 | Degussa Ag | Process for the fermentative preparation of l-amino acids using strains of the enterobacteriaceae family |
| DE10112102A1 (de) | 2001-03-14 | 2002-09-19 | Degussa | Verfahren zur fermentativen Herstellung von D-Pantothensäure und/oder deren Salzen |
| JP2002291477A (ja) * | 2001-03-30 | 2002-10-08 | Mitsubishi Chemicals Corp | フマラーゼをコードするｄｎａ及びその利用 |
| US6743610B2 (en) * | 2001-03-30 | 2004-06-01 | The University Of Chicago | Method to produce succinic acid from raw hydrolysates |
| US7026379B2 (en) * | 2001-09-26 | 2006-04-11 | Kabushiki Kaisha Toshiba | Copolymer resin composition and production process thereof |
| JP3754014B2 (ja) | 2001-09-26 | 2006-03-08 | 株式会社東芝 | 共重合体樹脂組成物およびその製造方法 |
| DE10154175A1 (de) | 2001-11-05 | 2003-05-15 | Basf Ag | Gene die für Homeostase-und Adaptions-Proteine codieren |
| JP2003199522A (ja) | 2002-01-09 | 2003-07-15 | Inobakkusu Kk | 食用調味料 |
| JP4032765B2 (ja) * | 2002-02-13 | 2008-01-16 | 三菱化学株式会社 | 有機酸の製造方法 |
| JP2003235592A (ja) * | 2002-02-13 | 2003-08-26 | Mitsubishi Chemicals Corp | 有機酸の製造方法 |
| JP4469568B2 (ja) | 2003-07-09 | 2010-05-26 | 三菱化学株式会社 | 有機酸の製造方法 |
| JP4451393B2 (ja) * | 2003-07-29 | 2010-04-14 | 財団法人地球環境産業技術研究機構 | コリネ型細菌形質転換体及びそれを用いるジカルボン酸の製造方法 |
| JP4575086B2 (ja) | 2003-08-28 | 2010-11-04 | 三菱化学株式会社 | コハク酸の製造方法 |
| CN100575496C (zh) | 2003-08-28 | 2009-12-30 | 三菱化学株式会社 | 产生琥珀酸的方法 |
| CN1852978A (zh) * | 2003-09-17 | 2006-10-25 | 三菱化学株式会社 | 制备无－氨基有机酸的方法 |
| WO2005030973A1 (ja) | 2003-09-30 | 2005-04-07 | Ajinomoto Co., Inc. | 発酵液からのコハク酸の精製方法 |
| JP5572279B2 (ja) * | 2004-05-20 | 2014-08-13 | 味の素株式会社 | コハク酸生産菌及びコハク酸の製造方法 |
| WO2005113744A1 (ja) | 2004-05-20 | 2005-12-01 | Ajinomoto Co., Inc. | コハク酸生産菌及びコハク酸の製造方法 |
| WO2006020663A2 (en) | 2004-08-09 | 2006-02-23 | Rice University | Aerobic succinate production in bacteria |
| EP1781797B1 (en) * | 2004-08-27 | 2016-10-19 | Rice University | Mutant e. coli strain with increased succinic acid production |
| WO2006069174A2 (en) | 2004-12-22 | 2006-06-29 | Rice University | Simultaneous anaerobic production of isoamyl acetate and succinic acid |
| JP2006238843A (ja) | 2005-03-07 | 2006-09-14 | Mitsubishi Heavy Ind Ltd | コハク酸の製造方法、コハク酸、生分解性プラスチックの製造方法および生分解性プラスチック |
| JP4760121B2 (ja) | 2005-05-17 | 2011-08-31 | 三菱化学株式会社 | コハク酸の製造方法 |
| BRPI0617491B1 (pt) | 2005-10-18 | 2021-04-27 | Ajinomoto Co., Inc | Processo para produção de ácido succínico |
| WO2007099867A1 (ja) | 2006-02-24 | 2007-09-07 | Mitsubishi Chemical Corporation | 有機酸生産菌及び有機酸の製造法 |
-
2004
- 2004-08-27 CN CN200480032024A patent/CN100575496C/zh not_active Expired - Fee Related
- 2004-08-27 BR BRPI0413403-6A patent/BRPI0413403A/pt not_active IP Right Cessation
- 2004-08-27 WO PCT/JP2004/012404 patent/WO2005021770A1/ja active Application Filing
- 2004-08-27 EP EP04772360.6A patent/EP1672077B1/en active Active
-
2006
- 2006-02-28 US US11/362,931 patent/US7763447B2/en active Active
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101720357A (zh) * | 2007-04-20 | 2010-06-02 | 器官平衡有限责任公司 | 用于生产琥珀酸的微生物 |
| CN102812127A (zh) * | 2010-03-09 | 2012-12-05 | 三菱化学株式会社 | 琥珀酸的制造方法 |
| CN102812127B (zh) * | 2010-03-09 | 2014-12-03 | 三菱化学株式会社 | 琥珀酸的制造方法 |
| CN105754963A (zh) * | 2016-05-19 | 2016-07-13 | 江南大学 | 一种提高延胡索酸产量的方法 |
| CN112867790A (zh) * | 2018-10-19 | 2021-05-28 | 中国科学院天津工业生物技术研究所 | 提高苹果酸产量的新突变蛋白 |
| CN112867790B (zh) * | 2018-10-19 | 2022-09-27 | 中国科学院天津工业生物技术研究所 | 提高苹果酸产量的新突变蛋白 |
| CN113046283A (zh) * | 2021-03-01 | 2021-06-29 | 江南大学 | 一株通过还原tca途径生产己二酸的工程菌株及其构建方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP1672077B1 (en) | 2015-01-21 |
| WO2005021770A1 (ja) | 2005-03-10 |
| US20060205048A1 (en) | 2006-09-14 |
| EP1672077A1 (en) | 2006-06-21 |
| EP1672077A4 (en) | 2011-10-12 |
| CN100575496C (zh) | 2009-12-30 |
| US7763447B2 (en) | 2010-07-27 |
| BRPI0413403A (pt) | 2006-10-17 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN1875108A (zh) | 产生琥珀酸的方法 | |
| CN1852978A (zh) | 制备无－氨基有机酸的方法 | |
| CN1210396C (zh) | L－氨基酸生产菌以及用于生产l－氨基酸的方法 | |
| CN1177926C (zh) | 产l-谷氨酸棒状细菌及生产l-谷氨酸的方法 | |
| CN1161470C (zh) | 用于产生l-赖氨酸的方法 | |
| CN1170938C (zh) | 构建产生氨基酸的细菌的方法及通过发酵该经构建的产生氨基酸的细菌以制备氨基酸的方法 | |
| CN1159443C (zh) | 用于产生l-赖氨酸的方法 | |
| CN1117152C (zh) | 生产l－赖氨酸的方法 | |
| CN1198919C (zh) | 经过发酵生产l－丝氨酸的方法 | |
| CN1125176C (zh) | 通过发酵生产l－赖氨酸的方法 | |
| CN1211399C (zh) | L－亮氨酸的生产方法及有关dna和微生物 | |
| CN101065484A (zh) | 产生l－氨基酸的细菌和产生l－氨基酸的方法 | |
| CN1934132A (zh) | 能耐受氰化物的腈水合酶 | |
| CN1626667A (zh) | 生产l－谷氨酸的细菌和生产l－谷氨酸的方法 | |
| CN1628168A (zh) | 用于在假丝酵母细胞中生产有机产物的方法和物质 | |
| CN1530438A (zh) | 使用利用甲醇的细菌生产l-赖氨酸的方法 | |
| CN1230525C (zh) | 生产l－氨基酸的方法和新型基因 | |
| CN1993377A (zh) | 丙氨酸2,3氨基变位酶 | |
| CN1179045C (zh) | 通过发酵生产l-谷氨酸的方法 | |
| CN1550546A (zh) | 通过发酵生产l—精氨酸或l—赖氨酸的方法 | |
| CN1161059A (zh) | 通过发酵生产l-赖氨酸及l-谷氨酸的方法 | |
| CN1729288A (zh) | 新型腈水合酶 | |
| CN1806048A (zh) | 生产l－谷氨酸的方法 | |
| CN1502689A (zh) | 生产l-谷氨酰胺的方法和生产l-谷氨酰胺的细菌 | |
| CN1664106A (zh) | 产l－谷氨酸细菌和生产l－谷氨酸的方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| C14 | Grant of patent or utility model | ||
| GR01 | Patent grant | ||
| CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20091230 Termination date: 20160827 |
|
| CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |