WO2016204276A1 - リパーゼ活性測定用基質溶液並びに試料中のリパーゼ活性の測定方法及び測定試薬 - Google Patents

リパーゼ活性測定用基質溶液並びに試料中のリパーゼ活性の測定方法及び測定試薬 Download PDF

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直美 飯塚
篤 引地
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Definitions

  • the present invention relates to a substrate solution for measurement of lipase activity in a sample, and relates to a substrate solution for lipase activity measurement having excellent storage stability.
  • the present invention relates to a reagent for measuring lipase activity in a sample, and relates to a reagent for measuring lipase activity having excellent storage stability.
  • the present invention also relates to a method for measuring lipase activity in a sample, and relates to a method for measuring lipase activity in a sample that can obtain an accurate measurement value for a long period of time.
  • the present invention also relates to an emulsion solution comprising micelle particles made of 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester, etc., and its storage stability Relates to an emulsion solution composed of the micelle particles excellent.
  • the present invention also relates to a method for stabilizing a substrate solution for measuring lipase activity, and a method for improving the storage stability of a substrate solution for measuring lipase activity.
  • the present invention also provides a method for stabilizing an emulsion solution comprising micelle particles comprising 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester, etc.
  • the present invention relates to a method for improving the storage stability of an emulsion solution comprising the micelle particles.
  • the present invention is useful in life science fields such as clinical tests and chemical fields such as analytical chemistry.
  • lipase activity in serum or plasma increases in pancreatic diseases such as acute pancreatitis, chronic pancreatitis or pancreatic cancer, it is useful as a marker for these pancreatitis and the like.
  • This lipase hydrolyzes the ester bond at the ⁇ -position (position 1 and position 3) of triglyceride (TG), in which three molecules of long-chain fatty acids are ester-bonded to glycerol, to thereby yield two molecules of fatty acid and one molecule of ⁇ -.
  • TG triglyceride
  • This molecule of ⁇ -monoglyceride is isomerized into ⁇ -form, which is hydrolyzed to glycerol and fatty acid by the action of lipase.
  • Non-Patent Document 1 and Non-Patent Document 2 The following methods have been known as methods for measuring lipase activity in serum or plasma (see Non-Patent Document 1 and Non-Patent Document 2).
  • an olive oil emulsion is used as a lipase substrate, this olive oil emulsion is brought into contact with a serum sample and the like, reacted at 37 ° C. for 24 hours, and then the fatty acid produced by the hydrolysis reaction with lipase is titrated with alkali. Crandall's method was known. However, this method is a method in which the reaction time is long and the inactivation of the lipase to be measured and the reaction inhibition are remarkable.
  • the emulsion of triolein or olive oil is used as a lipase substrate, and the emulsion of triolein or olive oil is brought into contact with a serum sample and reacted to cause turbidity of the reaction solution caused by the hydrolysis reaction of the emulsion micelle by lipase.
  • the Vogel-Zieve method for measuring lipase activity from a decrease in degree and this variant were known. However, these methods are disadvantageous in that it is difficult to produce a uniform and stable emulsion due to inhibition by serum proteins and interference of aggregates due to rheumatoid factors, and poor reproducibility.
  • BALB 2,3-dimercapto-1-propanol tributyric acid
  • BALB is used as a lipase substrate, and this BALB is brought into contact with a serum sample or the like and reacted to produce BAL (2,3 produced by a hydrolysis reaction with lipase).
  • a method for measuring lipase activity by reacting -dimercapto-1-propanol) with DTNB (5,5'-dithiobis-2-nitrobenzoic acid) and measuring the yellow color of the resulting TNB anion at 412 nm. It was known.
  • this method is subject to interference in the presence of a high concentration of liver esterase, it is affected by the liver esterase mixed in from the measurement reagent of other measurement items via the reaction cell or nozzle (probe).
  • This method has a disadvantage that an error occurs in the measured value.
  • 1,2-dilinoleoylglycerol which is a natural substrate, is used as a lipase substrate, and this 1,2-dilinoleoylglycerol is brought into contact with a serum sample and reacted to produce a lipase hydrolysis reaction.
  • Linoleic acid is a cofactor of acyl-CoA synthetase, acyl-CoA oxidase, enoyl-CoA hydratase-3-hydroxyacyl-CoA dehydrogenase-3-ketoacyl-CoA thiolase complex enzyme in the presence of coenzyme A, NAD + and ATP
  • a method for measuring lipase activity by measuring the rate of formation of NADH that occurs upon undergoing ⁇ -oxidation by action.
  • this method is also subject to interference in the presence of a high concentration of liver esterase, and is therefore affected by liver esterase mixed from the measurement reagent of other measurement items via the reaction cell or nozzle (probe).
  • This method has a disadvantage that an error occurs in the measured value.
  • 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [hereinafter sometimes referred to as “DGGMR”] was added to lipase
  • DGGMR 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester
  • the catalyzed hydrolysis reaction produces 1,2-o-dilauryl-rac-glycerol and glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester.
  • This glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester is unstable and readily hydrolyzes to yield 6′-methylresorufin ( ⁇ max: 580 nm).
  • the increase in 6′-methylresorufin produced is measured by measuring the absorbance at a wavelength of 580 nm or in the vicinity thereof, and the activity value of lipase contained in the sample can be determined.
  • This method of measuring lipase activity using DGGMR as a lipase substrate is a simple method in which the measurement proceeds in a series of reactions, and the influence of esterase mixed in from other measurement reagents via a reaction cell or nozzle (probe) is considered. This method has the advantage of being difficult to receive.
  • lipase contained in serum or plasma acts most efficiently at the water / oil interface of the emulsified triglyceride substrate, and the reaction rate of this lipase is related to the surface area of the dispersed substrate.
  • Preparation of a substrate composed of stable and uniform micelle particles is considered to be important for activity measurement (see Non-Patent Document 2). Therefore, conventionally, when producing a substrate solution for use in measuring lipase activity (substrate solution for measuring lipase activity), it becomes an emulsified (emulsified) substrate solution composed of stable and uniform micelle particles.
  • the substrate is mixed with an aqueous solution containing a surfactant, the substrate is mixed with a solution containing an organic solvent such as alcohol, or the substrate-containing solution is dropped dropwise. It is cumbersome or skillful, such as mixing into a solution, spraying and injecting a substrate-containing solution into the solution, stirring the substrate solution at a high speed with a powerful mixer, or applying ultrasonic waves to the substrate solution. Special treatment such as, or the like, or a special device or instrument.
  • a solution containing a substrate for measuring lipase activity is generally unstable and has a problem in its storage stability. For this reason, various attempts have been made for the purpose of improving the storage stability of a solution containing a substrate for measuring lipase activity.
  • a non-water-soluble substance such as triglyceride as a lipase substrate
  • a non-ionic surfactant heat it with stirring, and once raise it to a temperature higher than the cloud point of the non-ionic surfactant.
  • a method for producing a transparent solubilized aqueous solution of a water-insoluble substance, which is cooled to below the cloud point while continuing to stir, enables the solubilization of a water-insoluble substance, which has been difficult in the past, and is obtained.
  • the solubilized aqueous solution was disclosed as having the effect of being extremely stable (see Patent Document 2).
  • a diglyceride solution for measuring lipase activity comprising a low-concentration pH buffer solution and a nonionic surfactant such as a polyoxyethylene alkylphenyl ether-based nonionic surfactant has long-term storage stability. It was disclosed as having an effect that it is possible to provide an aqueous solution of diglyceride having excellent properties (see Patent Document 3).
  • compositions for measuring plant-derived and / or microorganism-derived lipase activity comprising using, as a substrate, diglyceride dissolved in at least a nonionic surfactant such as a polyoxyethylene alkylphenyl ether-based nonionic surfactant
  • a nonionic surfactant such as a polyoxyethylene alkylphenyl ether-based nonionic surfactant
  • a lipase substrate solution for enzyme activity measurement, etc. solubilized with 1,2-diphthalanoyl-sn-glycero-3-phosphocholine, a novel lipase substrate solubilizing agent, with respect to the lipase substrate composed of the above DGGMR, It was disclosed that the storage stability is large and that the high transparency of the solution can be maintained over a long period of time (see Patent Document 5).
  • Patent Document 5 contains 1,2-diphthalanoyl-sn-glycero-3-phosphocholine, which is a novel lipase substrate solubilizing agent, when DGGMR is used as a lipase activity measurement substrate. It has been described that the lipase substrate solution for enzyme activity measurement has a high storage stability, but this 1,2-diphthalanoyl-sn-glycero-3-phosphocholine is expensive and the raw material cost of the substrate solution is high. Has the disadvantage of becoming expensive.
  • the subject of the present invention is a lipase activity measurement substrate solution containing DGGMR having various advantages as a lipase activity measurement substrate when used as a lipase activity measurement substrate, as described above, It is to provide a substrate solution for lipase activity measurement having excellent storage stability.
  • Another object of the present invention is to provide a lipase activity measuring reagent comprising a lipase activity measuring substrate solution containing DGGMR as a lipase activity measuring substrate, and having excellent storage stability. That is.
  • Another object of the present invention is a method for measuring lipase activity in a sample using a substrate solution for measuring lipase activity containing DGGMR as a substrate for measuring lipase activity, and a sample capable of obtaining an accurate measurement value for a long period of time. It is to provide a method for measuring the lipase activity in the medium. Another object of the present invention is to provide an emulsion solution comprising micelle particles made of DGGMR or the like, and having an excellent storage stability. Another object of the present invention is to provide a method for stabilizing a substrate solution for measuring lipase activity, which improves the storage stability of the substrate solution for measuring lipase activity. Another object of the present invention is to provide a method for stabilizing an emulsion solution composed of micelle particles made of DGGMR or the like, which improves the storage stability of the emulsion solution composed of the micelle particles.
  • the present inventors examined a method for improving the storage stability of a lipase activity measurement substrate solution containing DGGMR as a lipase activity measurement substrate, a method for stabilizing an emulsion solution composed of micelle particles made of DGGMR, and the like. As a result, it has been found that the above-mentioned problems can be solved by including a side chain type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil together with DGGMR, and the present invention has been completed.
  • the gist of the present invention is as follows. [1] Consists of 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester and a non-reactive polyether-modified type modified silicone oil of a side chain type A substrate solution for measuring lipase activity, comprising an emulsion solution comprising micelle particles.
  • a reagent for measuring lipase activity comprising a substrate solution for measuring lipase activity comprising an emulsion solution composed of micelle particles.
  • Consists of 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester and side chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil A method for measuring lipase activity in a sample, wherein the lipase activity in the sample is measured using a substrate solution for measuring lipase activity comprising an emulsion solution comprising micelle particles.
  • Consists of 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester and side chain type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil An emulsion solution consisting of micelle particles.
  • [5] Contains 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester, side-chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil Of a substrate solution for lipase activity measurement using 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester as a lipase activity measurement substrate, characterized in that Method.
  • the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention is a substrate solution for measuring lipase activity, which has excellent storage stability.
  • the reagent for measuring lipase activity of the present invention is a reagent for measuring lipase activity with excellent storage stability.
  • the method for measuring lipase activity in a sample of the present invention is a method capable of obtaining an accurate measurement value for a long period of time.
  • an emulsion solution composed of micelle particles made of DGGMR or the like of the present invention is an emulsion solution having excellent storage stability.
  • the method for stabilizing a substrate solution for measuring lipase activity of the present invention is a method that can improve the storage stability of a substrate solution for measuring lipase activity.
  • the method for stabilizing an emulsion solution comprising micelle particles made of DGGMR or the like of the present invention is a method that can improve the storage stability of the emulsion solution.
  • the lipase activity measurement substrate solution of the present invention As described above, the lipase activity measurement substrate solution of the present invention, the lipase activity measurement reagent, the emulsion solution, and the lipase activity measurement substrate solution containing DGGMR as the lipase activity measurement substrate according to each method of the present invention, Since the lipase activity measuring reagent including the substrate solution for lipase activity measurement and the emulsion solution composed of micelle particles made of DGGMR, etc. can be used stably for a long period of time, it is convenient for users of these products. It is also a great advantage in terms of cost.
  • the lipase activity measurement substrate solution, the lipase activity measurement reagent, the emulsion solution, and the lipase activity measurement substrate solution containing DGGMR as the lipase activity measurement substrate according to each method of the present invention Since the lipase activity measuring reagent containing the substrate solution for lipase activity measurement and the emulsion solution composed of micelle particles made of DGGMR, etc. can be used stably for a long period of time, accurate measurement results (measurement for a long period of time) A medical institution or the like can obtain a lipase activity measurement substrate solution and a lipase activity measurement reagent containing the same. And the accurate measurement result (measurement value) of the lipase activity in a sample became acquirable for a long time in a medical institution etc.
  • Substrate solution for measuring lipase activity of the present invention General 1.
  • Substrate solution for measuring lipase activity comprises 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR] and a side. It is characterized by comprising an emulsion solution comprising micelle particles made of a chain-type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil.
  • the substrate solution for measuring lipase activity according to the present invention has excellent storage stability due to the above-described configuration.
  • the lipase is not particularly limited as long as it has an activity as a lipase, that is, a lipase activity.
  • the lipase for example, two molecules of fatty acid are obtained by hydrolyzing the ester bond at the ⁇ -position (position 1 and position 3) of triglyceride (TG) in which three molecules of long-chain fatty acid are ester-bonded to glycerol.
  • pancreatic lipase [EC 3.1.1.3], which catalyzes a reaction for producing one molecule of ⁇ -monoglyceride.
  • the present invention is suitable for measuring the activity of lipase present in body fluid, organ or tissue, more suitable for measuring the activity of lipase present in body fluid, and more suitable for measuring the activity of lipase present in blood, serum or plasma. And is particularly suitable for measuring the activity of lipase present in serum or plasma.
  • the present invention is also suitable for measuring pancreatic lipase activity.
  • the sample for measuring the activity of lipase is not particularly limited as long as it is a sample that may contain the lipase, and may contain the lipase.
  • the sample include a sample derived from a human, an animal, or a plant.
  • the sample derived from a human or animal is not particularly limited, for example, body fluid such as blood, serum, plasma, urine, semen, spinal fluid, saliva, sweat, tears, ascites, or amniotic fluid of human or animal; Excrements such as: organs such as pancreas, liver or stomach; tissues such as hair, skin, nails, muscles or nerves; or cells.
  • body fluid such as blood, serum, plasma, urine, semen, spinal fluid, saliva, sweat, tears, ascites, or amniotic fluid of human or animal
  • Excrements such as: organs such as pancreas, liver or stomach; tissues such as hair, skin, nails, muscles or nerves; or cells.
  • the present invention is suitable when a sample derived from a human or an animal is used as a sample, and particularly suitable when a sample derived from a human is used as a sample.
  • the present invention is suitable when a body fluid, organ or tissue is used as a sample, more preferably when a body fluid is used as a sample, and more preferable when blood, serum or plasma is used as a sample. This is particularly suitable when plasma is used as a sample.
  • the sample since it is suitable when it is a liquid, if the sample is not a liquid, pretreatment such as extraction or solubilization may be performed according to a known method to obtain a liquid sample. Good. Further, the sample may be diluted or concentrated as necessary.
  • the substrate solution for measuring lipase activity comprises 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester and a non-side chain type It comprises an emulsion solution comprising micelle particles made of reactive polyether-modified type modified silicone oil.
  • the 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester and side chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil in the present invention The emulsion solution consisting of the micelle particles will be described below.
  • Emulsion solution of the present invention [ie, 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester, and side chain type non-reactive polyether]
  • Emulsion solution comprising micelle particles made of modified type modified silicone oil]
  • 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester and Other than the side chain type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil, it may contain.
  • a lipase substrate for use in measuring the activity of lipase contained in a sample that is, a substrate for measuring lipase activity is 1,2-o-dilauryl-rac- Glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR].
  • DGGMR which is a substrate for measuring lipase activity
  • DGGMR which is a substrate for measuring lipase activity
  • 1,2-o-dilauryl-- is obtained from DGGMR by a hydrolysis reaction catalyzed by the lipase.
  • rac-glycerol and glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester are formed.
  • This glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester is unstable and readily hydrolyzes to yield 6′-methylresorufin ( ⁇ max: 580 nm).
  • the increase in 6′-methylresorufin produced can be measured by measuring the absorbance at a wavelength of 580 nm or in the vicinity thereof, and the activity value of lipase contained in the sample can be determined.
  • DGGMR is commercially available from Roche Diagnostics Inc. [Japan] or Sigma Aldrich Japan LLC [Japan].
  • Concentration of substrate for measuring lipase activity This is the concentration of DGGMR in the emulsion solution of the present invention.
  • concentration of DGGMR in the emulsion solution of the present invention is 0.05 mM or more from stable and uniform micelle particles. It is preferable to make an emulsion solution.
  • the concentration of DGGMR in the emulsion solution of the present invention is more preferably 0.1 mM or more, particularly preferably 0.2 mM or more, for the purpose described above.
  • the concentration of DGGMR contained in the emulsion solution of the present invention is preferably 2 mM or less for the above purpose.
  • the concentration of DGGMR in the emulsion solution of the present invention is more preferably 1 mM or less, and particularly preferably 0.8 mM or less, for the purpose described above.
  • the lipase activity measurement substrate solution of the present invention is based on DGGMR as a lipase activity measurement substrate and side chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil. It consists of the emulsion solution which consists of the following micelle particle.
  • the emulsion solution of the present invention contains DGGMR and side chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil.
  • the silicone compound is a polymer compound in which a siloxane bond [—Si—O—Si—] is a main chain and an organic group such as a methyl group [CH 3 —] is bonded to a silicon atom as a side chain.
  • the linear silicone compound is silicone oil.
  • the modified silicone oil is composed of a part of silicon atoms of a linear dimethyl silicone compound [Si (CH 3 ) 3 —O— [Si (CH 3 ) 2 —O—] m—Si (CH 3 ) 3 ]. It is a compound in which an organic group is introduced.
  • This modified silicone oil includes various kinds of organic compounds on a part of polysiloxane side chain, one end of polysiloxane, both ends of polysiloxane, or part of polysiloxane side chain and both ends. There are silicone oils with introduced groups.
  • a silicone oil in which various organic groups are introduced into a part of the side chain of polysiloxane is a side chain type modified silicone oil [Si (CH 3 ) 3 —O— [Si (CH 3 ) 2 —O—. ] M- [Si (CH 3 ) (organic group) -O-] n-Si (CH 3 ) 3 ].
  • the modified silicone oil is classified into a reactive silicone oil and a non-reactive silicone oil depending on the nature of the organic group to be introduced.
  • non-reactive modified silicone oil polyether modified type, aralkyl modified type, fluoroalkyl modified type, long chain alkyl modified type, higher fatty acid ester modified type, higher fatty acid amide modified type, depending on the introduced organic group
  • polyether / long-chain alkyl / aralkyl-modified type, long-chain alkyl / aralkyl-modified type, and phenyl-modified type as non-reactive modified silicone oil, polyether modified type, aralkyl modified type, fluoroalkyl modified type, long chain alkyl modified type, higher fatty acid ester modified type, higher fatty acid amide modified type, depending on the introduced organic group
  • polyether / long-chain alkyl / aralkyl-modified type, long-chain alkyl / aralkyl-modified type, and phenyl-modified type as non-reactive modified silicone oil.
  • a side-chain non-reactive modified silicone oil [Si (CH 3 ) 3 —O— [Si (CH 3 ) 2 —O—] m- [Si (CH 3 ) (organic group) —O—] n-Si (CH 3 ) 3 ] is, for example, a polyether-modified type [organic group: —R (C 2 H 4 O) a (C 3 H 6 O) b R ′] , Polyether, long chain alkyl, aralkyl-modified type [organic group: —R (C 2 H 4 O) a (C 3 H 6 O) b R ′, —C a H 2a + 1 , —CH 2 —CH ( CH 3 ) —C 6 H 5 ], aralkyl-modified type [organic group: —CH 2 —CH (CH 3 ) —C 6 H 5 ], fluoroalkyl-modified type [organic group: —CH 2 CH
  • this side-chain non-reactive polyether-modified type modified silicone oil [Si (CH 3 ) 3 —O— [Si (CH 3 ) 2 —O—] m- [Si (CH 3 ) (Organic group) -O-] n-Si (CH 3 ) 3 ] [organic group: —R (C 2 H 4 O) a (C 3 H 6 O) b R ′] is used.
  • Concentration of the modified silicone oil This is the concentration of the modified silicone oil in the emulsion solution of the present invention.
  • the concentration of the modified silicone oil in the emulsion solution of the present invention is 0.01% (w / v) or more. It is preferable to provide an emulsion solution composed of stable and uniform micelle particles.
  • the concentration of the modified silicone oil in the emulsion solution of the present invention is more preferably 0.05% (w / v) or more, particularly preferably 0.1% (w / v) for the above purpose. v) Above.
  • the concentration of the modified silicone oil to be contained in the emulsion solution of the present invention is preferably 20% (w / v) or less for the above purpose.
  • the concentration of the modified silicone oil in the emulsion solution of the present invention is more preferably 10% (w / v) or less, and particularly preferably 5% (w / v) or less, for the above purpose. is there.
  • Lipase activator (1) Lipase activator The emulsion solution of the present invention may contain a lipase activator.
  • the lipase activator is not particularly limited as long as it is a substance capable of activating lipase, and examples thereof include bile acids or salts thereof.
  • bile acids examples include deoxycholic acid, taurodeoxycholic acid, glycodeoxycholic acid, cholic acid, lithocholic acid, glycocholic acid, taurocholic acid, chenodeoxycholic acid, ursodeoxycholic acid, 7-oxolithocholic acid, 12 -Oxolithocholic acid, 12-oxochenodeoxycholic acid, 7-oxodeoxycholic acid, hyocholic acid, hyodeoxycholic acid, dehydrocholic acid, or cholic acid derivatives.
  • Examples of the bile acid salt include salts of bile acids and alkali metals or alkaline earth metals, ammonium salts, and the like.
  • Examples of the alkali metal include potassium, sodium, and lithium, and examples of the alkaline earth metal include magnesium and calcium.
  • bile acid or a salt thereof is preferable from the viewpoint of the ability to activate the lipase, the ability to form an interface composed of a substrate for measuring lipase activity, water solubility, and cost.
  • taurodeoxycholic acid is preferable in that DGGMR as a lipase activity measurement substrate can be dissolved in a stable acidic region, and deoxycholic acid is preferable from the viewpoint of cost.
  • this bile acid taurodeoxycholic acid is particularly preferable.
  • the bile acid salt is preferably a bile acid and alkali metal salt, more preferably a bile acid potassium salt or sodium salt, and particularly preferably a bile acid sodium salt.
  • the salt of bile acid is preferably a salt of an alkali metal (such as potassium or sodium) of deoxycholic acid or taurodeoxycholic acid, more preferably a salt of an alkali metal (such as potassium or sodium) of taurodeoxycholic acid,
  • an alkali metal such as potassium or sodium
  • taurodeoxycholic acid is particularly preferred.
  • the lipase activator preferably has a concentration of 0.2% (w / v) or more.
  • the preferred concentration of the lipase activator is more preferably 0.4% (w / v) or more, and particularly preferably 1% (w / v) or more.
  • the concentration of the lipase activator is preferably 20% (w / v) or less in the emulsion solution of the present invention.
  • the preferred concentration of the lipase activator is more preferably 10% (w / v) or less, and particularly preferably 5% (w / v) or less.
  • Lipase activator (1) Lipase activator The emulsion solution of the present invention may contain a lipase activator.
  • the lipase activator is not particularly limited as long as it is a substance capable of activating lipase, and examples thereof include alkaline earth metal ions or salts thereof.
  • alkaline earth metal ion or salt thereof examples include beryllium ion or beryllium salt, magnesium ion or magnesium salt, or calcium ion or calcium salt.
  • Examples of the calcium salt include a water-soluble calcium salt, and more specifically, a salt made of a monovalent or divalent anion and calcium ion and water-soluble. Can be mentioned.
  • anion examples include halogen ions, acid groups made of organic compounds, and acid groups made of other inorganic compounds.
  • halogen ion a fluorine ion, a chlorine ion, etc. can be mentioned, for example.
  • Examples of the acid group made of an organic compound include acetate ion, citrate ion, or gluconate ion.
  • Examples of acid groups made of other inorganic compounds include sulfate ions, phosphate ions, or carbonate ions.
  • the lipase activator is preferably an alkaline earth metal ion or a salt thereof.
  • a calcium ion or a calcium salt is preferable from the point of following (i) and (ii).
  • Fatty acid liberated from the lipase activity measurement substrate by being catalyzed by lipase breaks the interface comprising the lipase activity measurement substrate, but calcium ions or calcium salts capture the liberated fatty acid, and the interface Can be prevented from breaking.
  • the salt which consists of an anion and calcium ion and is water-soluble is preferable.
  • the acid group which consists of a halogen ion or an organic compound is preferable. More specifically, chlorine ion or acetate ion is particularly preferable.
  • the calcium salt a calcium salt of a halogen ion or an acid group consisting of an organic compound is preferable, and more specifically, calcium chloride or calcium acetate is particularly preferable.
  • the lipase activator preferably has a concentration of 0.1 mM or more.
  • the preferred concentration of the lipase activator is more preferably 1 mM or more, and particularly preferably 5 mM or more.
  • the concentration of the lipase activator is preferably 100 mM or less in the emulsion solution of the present invention.
  • the preferred concentration of this lipase activator is more preferably 50 mM or less, and particularly preferably 25 mM or less.
  • Colipase (1) Colipase The emulsion solution of the present invention may contain colipase.
  • the colipase is not particularly limited as long as it has the action, function, or activity of colipase.
  • human or a mammal-derived colipase such as pig or genetic engineering is used.
  • colipase prepared, modified or modified.
  • a colipase derived from a mammal such as a pig is preferable, and a colipase derived from a pancreas of a mammal such as a pig is more preferable.
  • the activity value of the colipase is preferably 15 K units / L (15K Unit / L) or more.
  • the preferable activity value of this colipase is more preferably 150 K units / L or more, and particularly preferably 750 K units / L or more.
  • the activity value of this colipase is preferably 7,500 K units / L or less in the emulsion solution of the present invention.
  • the preferred activity value of this colipase is more preferably 3,750 K units / L or less, and particularly preferably 2,250 K units / L or less.
  • Colipase is commercially available from Roche Diagnostics Inc. [Japan] or Sigma Aldrich Japan LLC [Japan].
  • the emulsion solution of the present invention may contain water. That is, the emulsion solution of the present invention may be an aqueous solution.
  • the water to be contained in the emulsion solution of the present invention is not particularly limited, and examples thereof include pure water, distilled water, and purified water.
  • pH DGGMR as a substrate for measuring lipase activity in the present invention is stable at pH 4 or in the vicinity thereof. Therefore, in the emulsion solution of the present invention, the pH is preferably within a certain range centered on pH 4.
  • the emulsion solution of the present invention is preferably in the range of pH 2 to pH 7, more preferably in the range of pH 3 to pH 5, from the viewpoint of DGGMR stability, and pH 3.5 It is particularly preferably within the range of ⁇ pH 4.5. (The above pH values are all values at 20 ° C.)
  • Buffer (1) Buffer The emulsion solution of the present invention may contain a buffer.
  • the buffer solution having a buffer capacity in the pH range of 7 may be appropriately contained in the emulsion solution of the present invention. Good.
  • the buffer that can be contained in the emulsion solution of the present invention is not particularly limited.
  • organic acids such as tartaric acid, succinic acid, malonic acid, or citric acid, glycine, phosphoric acid, or these A salt etc. can be mentioned.
  • concentration of the buffering agent contained in the emulsion solution of the present invention is not particularly limited as long as the buffering ability can be exhibited in the set pH range. Good.
  • the concentration of this buffer is preferably 5 mM or more, more preferably 10 mM or more, and particularly preferably 30 mM or more.
  • the concentration of the buffer is preferably 500 mM or less, more preferably 100 mM or less, and particularly preferably 50 mM or less in the emulsion solution of the present invention.
  • Emulsion micelle size of the emulsion solution of the present invention As described above, lipase works most efficiently at the water-oil interface of the emulsified triglyceride substrate, and the reaction rate of this lipase is dependent on the surface area of the dispersed substrate. Therefore, it is said that the preparation of a substrate composed of stable and uniform micelle particles is important for measuring the activity of lipase (see Non-Patent Document 2).
  • the emulsion solution containing the lipase activity measurement substrate [DGGMR] has a high reaction rate with the lipase when the micelle diameter (micelle particle diameter) of the emulsion is in the range of 60 to 1,500 nm. Moreover, since this emulsion is stable and this emulsion solution of this invention can be preserve
  • the emulsion solution of the present invention preferably has a micelle diameter (micelle particle diameter) in the range of 70 to 1,000 nm, more preferably in the range of 80 to 600 nm, and A range of 100 to 200 nm is particularly preferable.
  • the method for producing the emulsion solution of the present invention is not limited as long as it is a method capable of producing the emulsion solution of the present invention having the above-mentioned configuration “consisting of micelle particles comprising DGGMR and the modified silicone oil”. There is no particular limitation.
  • the method etc. which consist of the process of following (a) and (b) can be mentioned, for example.
  • the “method comprising the following steps (a) and (b)” means “including a method comprising the following steps (a) and (b)”. is there.
  • the method comprising the steps (a) and (b) produces the emulsion solution of the present invention without the need for special treatment such as complicated or requiring skill, or special equipment or equipment. This is preferable.
  • (B) A step of mixing all or part of the mixture of (a) with water or an aqueous solution.
  • step (a) in 1 above that is, the “step of preparing a mixture by mixing DGGMR and the present modified silicone oil” will be described in detail below. .
  • one type of the modified silicone oil may be mixed with DGGMR, or a plurality of types may be mixed with DGGMR.
  • This DGGMR is the above-mentioned “DGGMR and modified silicone oil of the modified silicone oil” in the step (b) of “mixing all or part of the mixture of DGGMR and modified silicone oil with water or an aqueous solution”.
  • Stable and uniform micelles having a concentration of 0.05 mM or more after mixing (all or part of the mixture) with the “water or aqueous solution” (hereinafter sometimes referred to as “second mixing”) This is preferable for the purpose of producing an emulsion solution composed of particles.
  • concentration of this DGGMR is more preferably 0.1 mM or more from the said objective, Especially preferably, it is 0.2 mM or more.
  • the concentration of DGGMR is preferably 2 mM or less after the second mixing for the above purpose.
  • concentration of this DGGMR after the 2nd mixing is 1 mM or less more preferably from the said objective, Especially preferably, it is 0.8 mM or less.
  • the preferred concentration of DGGMR after the second mixing is as described above.
  • the mixing of the DGGMR and the modified silicone oil in the “step of mixing the DGGMR and the modified silicone oil to prepare a mixture” in the above 1 (a) (hereinafter sometimes referred to as “first mixing”). ),
  • the mixing amount of each of the DGGMR and the present modified silicone oil may be determined in consideration so that the concentration of DGGMR is as described above after the second mixing. It is preferable from the viewpoint of the production procedure.
  • the mixing amount of the lipase activity measurement substrate to be mixed during the first mixing is Ws [unit: grams].
  • Vf volume after mixing water or an aqueous solution at the time of mixing
  • MWs molecular weight of the lipase activity measurement substrate
  • the mixing amount Ws [unit: grams] of the lipase activity measurement substrate (DGGMR) to be mixed during the first mixing in this case can be expressed as follows.
  • the mixing amount of the lipase activity measurement substrate mixed at the first mixing is Ws [unit: grams]
  • the final volume after mixing water or aqueous solution at the time of 2 mixing (volume after volume-up, etc.) is Vf [unit: mL]
  • the molecular weight of the lipase activity measurement substrate is MWs
  • the concentration Cs [unit: mM] of the lipase activity measurement substrate after the second mixing can be expressed by the following formula.
  • the mixing amount Ws [unit: grams] of the lipase activity measurement substrate to be mixed in the first mixing in this case can be expressed as follows.
  • the modified silicone oil preferably has a concentration of 0.01% (w / v) or more after the second mixing for the purpose of producing an emulsion solution composed of stable and uniform micelle particles. .
  • the preferable concentration of the present modified silicone oil is more preferably 0.05% (w / v) or more, and particularly preferably for the above purpose. It is 0.1% (w / v) or more.
  • the concentration of the modified silicone oil is preferably 20% (w / v) or less after the second mixing for the above purpose.
  • the preferable concentration of the modified silicone oil is more preferably 10% (w / v) or less, and particularly preferably 5% (w / v) or less, for the above-mentioned purpose. is there.
  • the preferred concentration of the modified silicone oil after the second mixing is as described above.
  • the mixing amounts of the DGGMR and the modified silicone oil during the first mixing may be determined in consideration of the concentration of the modified silicone oil as described above after the second mixing. It is preferable in view of the manufacturing procedure.
  • the mixing amount of the present modified silicone oil to be mixed at the first mixing is Wp [unit: grams]
  • the second mixing When the final volume after mixing water or an aqueous solution (volume after volume up, etc.) is Vf [unit: mL], the concentration Cp [unit:% (w / V)] can be expressed by the following equation.
  • the mixing amount Wp [unit: grams] of the present modified silicone oil to be mixed during the first mixing in this case can be expressed as follows.
  • the mixing amount Wp (unit: gram) of the present modified silicone oil to be mixed during the first mixing in this case can be expressed as follows.
  • any method for mixing this DGGMR and the present modified silicone oil can be used as long as this DGGMR and the present modified silicone oil are mixed. There is no particular limitation.
  • DGGMR is mixed with a solution containing an organic solvent such as alcohol and the present modified silicone oil, or a liquid containing DGGMR is dropped dropwise and mixed with a solution containing the present modified silicone oil.
  • a solution containing DGGMR into a solution containing the modified silicone oil, stirring a solution containing DGGMR and the modified silicone oil at a high speed with a powerful mixer, or containing the DGGMR and the modified silicone oil
  • special treatments or special equipment such as applying ultrasonic waves to the solution to be mixed, requiring special skills, etc., and stirring with a general mixer, etc. In this way, a mixture of DGGMR and the modified silicone oil can be prepared.
  • the temperature at which this DGGMR and the present modified silicone oil are mixed is not particularly limited. It is preferable for the purpose of producing an emulsion solution composed of stable and uniform micelle particles to perform this step at a temperature near the cloud point or a temperature not higher than the temperature near the cloud point.
  • the cloud point is a temperature at which micelles such as a surfactant cannot be formed when the temperature of an aqueous solution such as a nonionic surfactant is raised, and the aqueous solution becomes cloudy, It is different for each surfactant.
  • the temperature near the cloud point of the modified silicone oil means a range of plus or minus ( ⁇ ) 25 ° C. of the cloud point temperature of the modified silicone oil.
  • the temperature in the vicinity of the cloud point of this modified silicone oil is preferably in the range of plus or minus ( ⁇ ) 15 ° C., more preferably in the range of plus or minus ( ⁇ ) 10 ° C.
  • a range of plus or minus ( ⁇ ) 5 ° C. is particularly preferable.
  • the modified silicone oil KF-351A has a cloud point of 52 ° C. (self-measured value)
  • KF-355A has a cloud point of 67 ° C. (self-measured value)
  • KF-6011 The cloud point of 64F (self-measured value) is KF-354L.
  • the cloud point was not reached even at 77 ° C, the upper limit of the set temperature of the constant temperature water tank used for cloud point measurement. The point is above 77 ° C.
  • the step of mixing the DGGMR and the modified silicone oil to prepare a mixture is performed for the purpose described above, in the range of plus or minus 25 ° C. of the cloud point temperature of the modified silicone oil to be used, or below this range. It is preferable to carry out at a temperature in the range of plus or minus 15 ° C. of the cloud point of the modified silicone oil used, or more preferably at a temperature below this range, and the cloud point of the modified silicone oil used It is more preferable to carry out at a temperature in the range of plus or minus 10 ° C. of the temperature of the present invention, or a temperature in the range of plus or minus 5 ° C. of the cloud point of the modified silicone oil to be used. It is particularly preferable to carry out at a temperature not higher than this temperature.
  • this is the temperature at which this DGGMR and the present modified silicone oil are mixed. It is preferable for the purpose of producing an emulsion solution composed of stable and uniform micelle particles to perform at a temperature equal to or higher than the melting point of each oil.
  • the step of mixing the DGGMR and the modified silicone oil to prepare a mixture is more preferably performed at 2 ° C. or higher, more preferably at 5 ° C. or higher, for the above purpose, more preferably at 10 ° C. or higher. It is particularly preferred to do this.
  • this DGGMR is mixed with this modified silicone oil.
  • This DGGMR and this modified silicone oil are mixed homogeneously. There is no particular limitation as long as it is performed. Usually, for the purpose of producing an emulsion solution composed of stable and uniform micelle particles, it is preferable to perform this mixing for 5 minutes or longer. In general, 5 minutes is sufficient.
  • the mixing time of the DGGMR and the modified silicone oil is not particularly limited. For example, it may be mixed for several hours, but from the viewpoint that the time is also cost, it may be performed carefully. Usually, it may be within 10 minutes.
  • Step (b) in 1 above that is, “the step of mixing DGGMR and the present modified silicone oil to prepare a mixture”
  • the step of mixing all or a part with water or an aqueous solution ” will be described in detail below.
  • step (b) of 1 that is, “the step of mixing all or part of the mixture prepared in the step (a) of 1 with water or an aqueous solution”, There is no particular limitation on the aqueous solution.
  • the water is not particularly limited, and examples thereof include pure water, distilled water, and purified water.
  • the aqueous solution is not particularly limited as long as water is used as a solvent.
  • a lipase activator for example, at least one selected from the group consisting of a lipase activator, a lipase activator, a colipase, and a buffer.
  • examples thereof include aqueous solutions containing the like.
  • the lipase activator that can be contained in the aqueous solution is not particularly limited as long as it is a substance capable of activating lipase.
  • bile An acid or its salt can be mentioned.
  • the bile acid or salt thereof as the lipase activator is as described in the section “(1) Lipase activator” of II-3 above.
  • concentration of this lipase activator is 0.2% (w / v) or more after 2nd mixing.
  • the preferable concentration of the lipase activator is more preferably 0.4% (w / v) or more, and particularly preferably 1% (w / v) or more.
  • the concentration of the lipase activator is preferably 20% (w / v) or less after the second mixing.
  • the preferable concentration of the lipase activator is more preferably 10% (w / v) or less, and particularly preferably 5% (w / v) or less.
  • the preferred concentration of the lipase activator after the second mixing is as described above.
  • the lipase activation is applied to the aqueous solution. It is preferable to contain the agent in an appropriate concentration.
  • the lipase activator that can be contained in the aqueous solution is not particularly limited as long as it is a substance capable of activating lipase. Examples include earth metal ions or salts thereof.
  • the alkaline earth metal ion or salt thereof as the lipase activator is as described in the section “(1) Lipase activator” in 4 of II above.
  • the lipase activator preferably has a concentration of 0.1 mM or more after the second mixing.
  • the preferable concentration of this lipase activator after the second mixing is more preferably 1 mM or more, and particularly preferably 5 mM or more.
  • the concentration of the lipase activator is preferably 100 mM or less after the second mixing.
  • the preferred concentration of the lipase activator is more preferably 50 mM or less, and particularly preferably 25 mM or less.
  • the preferable concentration of the lipase activator after the second mixing is as described above.
  • the aqueous solution has lipase activity. It is preferable to contain the agent in an appropriate concentration.
  • the colipase that can be contained in the aqueous solution is not particularly limited as long as it has the action, function, or activity of colipase.
  • This colipase is as described in the section of “(1) colipase” in 5 of II above.
  • the activity value of this colipase is 15K unit / L (15K Unit / L) or more after the second mixing.
  • the preferable activity value of this colipase after the second mixing is more preferably 150 K units / L or more, and particularly preferably 750 K units / L or more.
  • the activity value of this colipase is preferably 7,500 K units / L or less after the second mixing.
  • the preferable activity value of this colipase after the second mixing is more preferably 3,750 K units / L or less, and particularly preferably 2,250 K units / L or less.
  • the preferable activity value of the colipase after the second mixing is as described above.
  • the colipase is appropriately added to the aqueous solution. It is preferable to make it contain with an active value.
  • DGGMR used as a substrate for measuring lipase activity is stable at pH 4 or in the vicinity thereof. Therefore, after the second mixing, the pH is preferably within a certain range centered on pH 4.
  • the pH after the second mixing is preferably in the range of pH 2 to pH 7, more preferably in the range of pH 3 to pH 5, from the viewpoint of the stability of DGGMR, and pH 3.
  • a range of 5 to 4.5 is particularly preferable. (The above pH values are all values at 20 ° C.)
  • the pH after the second mixing is as described above. It is preferable to adjust the pH of the aqueous solution to an appropriate pH so that the pH after the second mixing becomes the above pH.
  • This buffering agent is as described in the section “(1) Buffering agent” in 8 of II above.
  • the concentration of the buffering agent in the aqueous solution containing this buffering agent is not particularly limited as long as the buffering ability can be exhibited in the set pH range.
  • the concentration of the buffer is preferably 5 mM or more, more preferably 10 mM or more, and particularly preferably 30 mM or more.
  • this buffering agent is preferably 500 mM or less, more preferably 100 mM or less, and particularly preferably 50 mM or less after the second mixing.
  • the preferable concentration of the buffering agent after the second mixing is as described above. It is preferable to contain the buffering agent at an appropriate concentration in the aqueous solution so that the concentration of the buffering agent after the second mixing becomes the above-mentioned concentration.
  • the mixing ratio of the “mixture of DGGMR and the present modified silicone oil” and the “water or aqueous solution” is not particularly limited and may be appropriately determined.
  • the preferable concentration of DGGMR is preferably 0 for the above purpose. 0.05 mM or more, more preferably 0.1 mM or more, and particularly preferably 0.2 mM or more. Also, as described in detail in the section “(2) DGGMR mixing amount” in 2 above, the preferable concentration of DGGMR after the second mixing is preferably 2 mM or less for the above purpose. It is preferably 1 mM or less, and particularly preferably 0.8 mM or less.
  • the relationship between the preferable concentration of DGGMR and the final volume after mixing water or an aqueous solution during the second mixing can be considered as, for example, the following (a) or (b).
  • the mixing amount of the lipase activity measurement substrate to be mixed during the first mixing is Ws [unit: grams].
  • Vf volume after mixing water or an aqueous solution at the time of mixing
  • MWs molecular weight of the lipase activity measurement substrate
  • the final volume Vf [unit: mL] after mixing water or an aqueous solution in the second mixing in this case can be expressed as follows.
  • Vf (Ws ⁇ 10 6 ) ⁇ (Cs ⁇ MWs)
  • Vf (Ws ⁇ 10 6 ) ⁇ (Cs ⁇ 752.05)
  • the lipase activity measurement substrate having the desired lipase activity measurement substrate (DGGMR) concentration is obtained.
  • a solution can be obtained.
  • the mixing amount of the lipase activity measurement substrate mixed at the first mixing is Ws [unit: grams]
  • the final volume after mixing water or aqueous solution at the time of 2 mixing (volume after volume-up, etc.) is Vf [unit: mL]
  • the molecular weight of the lipase activity measurement substrate is MWs
  • the concentration Cs [unit: mM] of the lipase activity measurement substrate after the second mixing can be expressed by the following formula.
  • the final volume Vf [unit: mL] after mixing water or an aqueous solution in the second mixing in this case can be expressed as follows.
  • Vf (Ws ⁇ A ⁇ 10 4 ) ⁇ (Cs ⁇ MWs)
  • Vf (Ws ⁇ A ⁇ 10 4 ) ⁇ (Cs ⁇ 752.05)
  • the lipase activity measurement substrate having the desired lipase activity measurement substrate (DGGMR) concentration is obtained.
  • a solution can be obtained.
  • the preferable concentration of the modified silicone oil is For the purpose of the above, preferably it is 0.01% (w / v) or more, more preferably 0.05% (w / v) or more, and particularly preferably 0.1% (w / v). ) That's it.
  • the preferable concentration of the modified silicone oil after the second mixing is preferably from the above-mentioned purpose. It is 20% (w / v) or less, more preferably 10% (w / v) or less, and particularly preferably 5% (w / v) or less.
  • the relationship between the preferred concentration of the modified silicone oil and the final volume after mixing water or an aqueous solution at the time of the second mixing is considered as follows, for example, (a) or (b) Can do.
  • the mixing amount of the present modified silicone oil to be mixed at the first mixing is Wp [unit: grams]
  • the second mixing When the final volume after mixing water or an aqueous solution (volume after volume up, etc.) is Vf [unit: mL], the concentration Cp [unit:% (w / V)] can be expressed by the following equation.
  • the final volume Vf [unit: mL] after mixing water or an aqueous solution in the second mixing in this case can be expressed as follows.
  • Vf (Wp ⁇ 100) ⁇ Cp
  • the final volume Vf [unit: mL] after mixing water or an aqueous solution in the second mixing in this case can be expressed as follows.
  • Vf (Wp ⁇ A) ⁇ Cp
  • steps The process of mixing all or part of the mixture prepared by mixing DGGMR as the lipase activity measurement substrate and the modified silicone oil with water or an aqueous solution is performed in a plurality of stages (steps). You may go. In this way, it is preferable to carry out this step in a plurality of steps for the purpose of producing an emulsion solution composed of stable and uniform micelle particles.
  • this method is a method of performing a plurality of steps, this is not particularly limited as long as the step is performed by a plurality of steps. For example, it is performed by the following steps [A] and [B]. The thing etc. can be mentioned.
  • Step of mixing all or part of a mixture prepared by mixing DGGMR and the present modified silicone oil with a certain amount of water or an aqueous solution [B] The mixture (DGGMR and the present modification in the step [A]) Step of further mixing a certain amount of water or aqueous solution into the mixed solution of the mixture of silicone oil) and water or aqueous solution.
  • the volume (constant amount) of “water or aqueous solution” to be mixed with “all or part of the mixture prepared by mixing DGGMR and the modified silicone oil” in the step [A] is Va [units]. : ML], and the final volume after mixing “more fixed amount of water or aqueous solution” with the mixture in the step [B] [that is, after mixing water or aqueous solution in the second mixing described above]
  • the final volume] (volume after volume up) is Vf [unit: mL]
  • the ratio value (Vf / Va) obtained by dividing Vf by Va is an emulsion composed of stable and uniform micelle particles. From the viewpoint of producing a solution, it is preferably in the range of 1 to 500.
  • the ratio value (Vf / Va) obtained by dividing Vf by Va is more preferably in the range of 2 to 200, and particularly in the range of 5 to 100. preferable.
  • the values of Va and Vf (capacities) may be selected so that the ratio value (Vf / Va) obtained by dividing Vf by Va is in the range of 2 to 200. More preferably, the values (capacities) of Va and Vf are particularly preferably selected so as to be in the range of 5 to 100.
  • the above-mentioned [A] is a step of mixing all or part of a mixture prepared by mixing DGGMR and the present modified silicone oil with a certain amount of water or an aqueous solution, but there is no particular limitation.
  • a certain amount of water or an aqueous solution is further mixed into the mixed solution after mixing the mixture (mixture of DGGMR and the present modified silicone oil) and water or an aqueous solution in the step [A] of [B].
  • the “water or aqueous solution” may be added to and mixed, or a certain amount of “water or aqueous solution” may be added to the “mixture of DGGMR and the modified silicone oil” and water in the step [A].
  • it may be added to and mixed with the “mixed solution after mixing with an aqueous solution”, or may be in another mode.
  • the lipase activity measurement substrate is mixed with a solution containing an organic solvent such as alcohol, the lipase activity measurement substrate-containing solution is dropped and mixed with the solution, or the lipase activity measurement Complicated or skillful, such as spray injection of the substrate-containing solution into the solution, stirring the lipase activity measurement substrate solution at high speed with a powerful mixer, or applying ultrasonic waves to the lipase activity measurement substrate solution
  • No special treatment or special equipment is required, such as stirring at a general speed using a general mixer, and mixing may be performed by a normal method, thereby making it a substrate for measuring lipase activity.
  • All or part of the mixture of DGGMR and the modified silicone oil can be mixed with water or an aqueous solution.
  • the process which mixes all or one part of the mixture prepared by mixing this DGGMR and this modified silicone oil with water or aqueous solution is 10 degreeC from the cloud point of this modified silicone oil to be used for the said objective. It is more preferable to carry out at a low temperature or lower, and it is particularly preferable to carry out at 25 ° C. or lower.
  • all or part of the mixture prepared by mixing the DGGMR and the modified silicone oil with water or an aqueous solution all or part of the mixture of the DGGMR and the modified silicone oil is mixed with water or It is the temperature at which the aqueous solution is mixed, but this step is performed at a temperature equal to or higher than the melting points of DGGMR and the present modified silicone oil to be used for the purpose of producing an emulsion solution composed of stable and uniform micelle particles. Preferred from above.
  • the step of mixing all or part of the mixture prepared by mixing DGGMR and the present modified silicone oil with water or an aqueous solution is more preferably performed at 10 ° C. or more for the above purpose. It is particularly preferable to carry out at a temperature of 0 ° C.
  • this mixing is preferably performed for 5 minutes or more for the purpose of producing an emulsified lipase activity measuring substrate solution composed of stable and uniform micelle particles. In general, 5 minutes is sufficient.
  • the time for mixing the mixture of DGGMR and the modified silicone oil with water or an aqueous solution is not particularly limited. For example, it may be mixed for several hours, but it is considered from the viewpoint that time is also cost. Even if it is done carefully, it usually takes 10 minutes or less.
  • the reagent for measuring lipase activity of the present invention comprises 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR], and a non-reactive side chain type It comprises a substrate solution for lipase activity measurement comprising an emulsion solution comprising micelle particles comprising a polyether-modified type modified silicone oil. (The details of the emulsion solution and the lipase activity measurement substrate solution are as described in the above section “[1] Substrate solution for lipase activity measurement of the present invention”).
  • the lipase activity measurement reagent of the present invention has excellent storage stability due to the above-described configuration.
  • the lipase activity measuring reagent of the present invention may consist only of the lipase activity measuring substrate solution of the present invention, or the lipase activity measuring substrate solution of the present invention and other constituent reagents. (Reagent kit) consisting of
  • the lipase activity measuring reagent of the present invention is preferably a reagent kit comprising the lipase activity measuring substrate solution of the present invention and other constituent reagents.
  • the substrate for measuring lipase activity [DGGMR] in the present invention is stable at pH 4 or a pH around it, whereas lipase has an optimum activity at pH 8 or a pH near it, and each has a suitable pH. The area is different.
  • a reagent kit comprising the lipase activity measurement substrate solution of the present invention and other constituent reagents is preferred.
  • the pH of the reagent containing the lipase activity measurement substrate [DGGMR] in the present invention is pH 4 or its vicinity.
  • the pH of at least one of the other constituent reagents combined with this is preferably pH 8 or higher, and the lipase activity measurement substrate [DGGMR], colipase, and lipase activation in the present invention It is preferable that bile acid or a salt thereof as an agent does not coexist in one reagent.
  • the lipase activity measurement reagent of the present invention is preferably a two-reagent reagent kit comprising the lipase activity measurement substrate solution of the present invention and one other component reagent.
  • the other component reagent is the first reagent and the lipase activity measurement substrate solution of the present invention is used as the second reagent.
  • the pH of the other constituent reagent is preferably pH 8 or higher, and the pH of the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention is more preferably pH 4 or the vicinity thereof.
  • the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention does not contain both “colipase” and “bile acid or a salt thereof as a lipase activator”, but “colipase” and “lipase activation”. More preferably, at least one of the bile acid or its salt as an agent is contained in the other constituent reagent.
  • the reagent for measuring lipase activity of the present invention may be one measured by the end point method (end point method), or one measured by the reaction rate method (rate method), and may be appropriately selected.
  • the reaction rate method (rate method) is preferred.
  • 1,2-o-dilauryl is obtained by a hydrolysis reaction catalyzed by the lipase by bringing the sample into contact with the lipase activity measuring substrate [DGGMR] of the present invention and reacting it.
  • DGGMR lipase activity measuring substrate
  • -Rac-glycerol and glutaric acid- (6'-methylresorufin) -ester are produced, but this glutaric acid- (6'-methylresorufin) -ester is unstable and readily hydrolyzes naturally To produce 6′-methylresorufin ( ⁇ max: 580 nm).
  • the increase in 6'-methylresorufin produced may be measured by measuring absorbance at a wavelength of 580 nm or in the vicinity thereof, and the activity value of lipase contained in the sample may be obtained.
  • a single wavelength method or a dual wavelength method may be used.
  • the temperature during the measurement reaction is a range in which the measurement reaction such as 30 ° C. or 37 ° C. proceeds and the reaction components such as enzymes involved in the measurement reaction are not inactivated, denatured or altered by heat.
  • the temperature inside may be set.
  • the method for starting the measurement reaction is any method such as a method performed by adding a lipase activity measurement substrate [DGGMR] or the like in the present invention, or a method performed by adding a sample. It may be.
  • the measurement may be performed by a method, or may be performed using an apparatus such as an automatic analyzer.
  • all or part of the constituent reagents may be a liquid reagent.
  • the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention can be sold alone or used for measuring lipase activity in a sample.
  • the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention can be sold in combination with the above-mentioned other constituent reagents or other reagents or used for measuring lipase activity in a sample.
  • the other constituent reagents or other reagents include, for example, a buffer solution, a sample diluent, a reagent diluent, a reagent containing a substance for performing calibration (calibration), or for performing quality control.
  • examples include reagents containing substances.
  • Example 1 (A) First Reagent [Aqueous solution containing the following reagent components at the indicated concentrations; pH 8.3 (20 ° C.)] Sodium deoxycholate [Lipase activator] 2% (w / v) Calcium chloride [Lipase activator] 5 mM Colipase (derived from porcine pancreas; Roche Diagnostics Inc. [Japan]) 375K units / L (5mg / L) Bicine [Buffer] 40 mM
  • Second reagent (substrate solution for measuring lipase activity of the present invention) [Aqueous solution containing the following reagent components at the respective concentrations; pH 4.0 (20 ° C.)] 1,2-o-Dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR] (Roche Diagnostics Inc. [Japan]) [Lipase activity measurement substrate ] 0.3 mM Side chain type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil 0.3% (w / v) L-tartaric acid [buffer] 40 mM
  • Example 2 (A) First Reagent [Aqueous solution containing the following reagent components at the indicated concentrations; pH 8.4 (20 ° C.)] Sodium taurodeoxycholate [lipase activator] 2% (w / v) Sodium deoxycholate [Lipase activator] 0.2% (w / v) Calcium chloride [Lipase activator] 5 mM Colipase (derived from porcine pancreas; Roche Diagnostics Inc. [Japan]) 150K units / L (2mg / L) Tris (hydroxymethyl) aminomethane [Tris] [Buffer] 40 mM
  • Second reagent (substrate solution for lipase activity measurement of the present invention) [Aqueous solution containing the following reagent components at the indicated concentrations] 1,2-o-Dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR] (Roche Diagnostics Inc. [Japan]) [Lipase activity measurement substrate ] 0.6 mM Side chain type non-reactive polyether-modified type modified silicone oil 0.3% (w / v) Sodium taurodeoxycholate [lipase activator] 2% (w / v)
  • the method for measuring the lipase activity in the samples of the present invention comprises 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR], and side chain type
  • a lipase activity in a sample is measured using a substrate solution for lipase activity measurement comprising an emulsion solution comprising micelle particles made of non-reactive polyether-modified type modified silicone oil.
  • a substrate solution for lipase activity measurement comprising an emulsion solution comprising micelle particles made of non-reactive polyether-modified type modified silicone oil.
  • the measuring method of the lipase activity in the sample of this invention is a method which can obtain an accurate measured value for a long period of time by said structure.
  • Method for measuring lipase activity When measuring lipase activity in a sample by the method for measuring lipase activity in a sample of the present invention, the measurement is performed by the end point method (end point method). Alternatively, the measurement may be performed by a reaction rate method (rate method) and may be appropriately selected, but the reaction rate method (rate method) is preferable.
  • end point method end point method
  • rate method reaction rate method
  • the measurement is performed by a one-step method performed in one step, or in two or more multi-steps. Measurement may be performed by appropriately selecting a multi-step method performed by steps.
  • the lipase activity measuring reagent used for measuring the lipase activity in the sample is composed of the first reagent, the second reagent, and another reagent (one or more reagents), that is, from three or more reagents.
  • the measurement reaction is performed through the number of steps necessary to perform the measurement using these reagents (two steps or three steps or more if necessary), and the lipase activity in the sample is measured. Just do it.
  • the lipase activity-measuring substrate [DGGMR] in the present invention is brought into contact with the sample and reacted to cause 1,2 by a hydrolysis reaction catalyzed by the lipase.
  • -O-dilauryl-rac-glycerol and glutaric acid- (6'-methylresorufin) -ester are produced, but this glutaric acid- (6'-methylresorufin) -ester is unstable and easily It is naturally hydrolyzed to produce 6′-methylresorufin ( ⁇ max: 580 nm).
  • the increase in 6'-methylresorufin produced may be measured by measuring absorbance at a wavelength of 580 nm or in the vicinity thereof, and the activity value of lipase contained in the sample may be obtained.
  • a single wavelength method or a dual wavelength method may be used.
  • calculating the activity value of lipase contained in a sample from the measured absorbance (or transmittance) or the amount of change in absorbance (or transmittance) is the molar extinction coefficient of 6′-methylresorufin.
  • a method of calculating from the absorbance (or transmittance) measured based on the standard, or a method of calculating by comparing with the absorbance (or transmittance) of a standard substance (standard solution, standard serum, etc.) whose lipase activity value is known A method may be selected as appropriate.
  • the activity value of lipase contained in the sample by subtracting the reagent blind test (reagent blank) from the absorbance (or transmittance) obtained by measuring the sample.
  • the temperature at the time of the measurement reaction is such that the measurement reaction such as 30 ° C. or 37 ° C. proceeds and the reaction components such as enzymes involved in the measurement reaction are deactivated by heat, What is necessary is just to set the temperature within the range which does not denature or denature.
  • the method for starting the measurement reaction is any of the method performed by adding the lipase activity measuring substrate in the present invention, the method performed by adding the sample, etc. The method may be used.
  • the measurement may be carried out by a method, or may be carried out using an apparatus such as an automatic analyzer.
  • the amounts of the sample and the first reagent to be mixed may be appropriately determined according to the amount of the second reagent, the activity value of the lipase contained in the sample, and other conditions.
  • the amount of the sample is preferably 0.5 to 100 ⁇ L
  • the amount of the first reagent is preferably in the range of 20 to 1,000 ⁇ L.
  • the incubation time is not particularly limited, but is usually preferably within 20 minutes, more preferably within 10 minutes, and particularly preferably within 5 minutes.
  • the temperature at the time of incubation should just be the temperature above the temperature which the said liquid mixture freezes. In general, the higher the temperature during the measurement reaction, the higher the reaction rate. However, if the temperature is too high, components such as enzymes involved in the measurement reaction will be denatured and inactivated, so the temperature during incubation is below the temperature at which the components such as enzymes involved in the measurement reaction are denatured and deactivated. It is necessary to.
  • the incubation temperature is usually 2 to 70 ° C., preferably 20 to 37 ° C., more preferably 30 to 37 ° C.
  • the component such as an enzyme involved in the measurement reaction is a heat-resistant component such as a heat-resistant enzyme, the temperature may be higher.
  • the lipase contained in the sample comes into contact with the reagent components contained in the first reagent, and activation or activation of the lipase by these components is performed. Done.
  • the amount of the second reagent to be mixed may be appropriately determined according to the amount of the sample, the amount of the first reagent, the activity value of the lipase contained in the sample, the specifications of the analyzer to be used, and other conditions.
  • the amount of the second reagent is preferably in the range of 10 to 1,000 ⁇ L.
  • the incubation time is not particularly limited, but is usually preferably within 20 minutes, more preferably within 10 minutes, and particularly preferably within 5 minutes.
  • the temperature at the time of incubation should just be the temperature above the temperature which freezes the said last reaction liquid. In general, the higher the temperature during the measurement reaction, the higher the reaction rate. However, if the temperature is too high, components such as enzymes involved in the measurement reaction will be denatured and inactivated, so the temperature during incubation is below the temperature at which the components such as enzymes involved in the measurement reaction are denatured and deactivated. It is necessary to.
  • the incubation temperature is usually 2 to 70 ° C., preferably 20 to 37 ° C., more preferably 30 to 37 ° C.
  • the component such as an enzyme involved in the measurement reaction is a heat-resistant component such as a heat-resistant enzyme, the temperature may be higher.
  • the measurement reaction in the second stage is started following the activation and activation of the lipase in the first stage, and the activity measurement reaction of the lipase contained in the sample is started. It is advanced.
  • the second reagent (substrate solution for measuring lipase activity according to the present invention), which is an emulsified substrate solution composed of stable and uniform micelle particles according to the present invention, is contained in the sample in this second stage.
  • 1,2-o-dilauryl-rac-glycerol and glutaric acid- (6′-methylresorufin) from the substrate for measuring lipase activity [DGGMR] of the present invention by a hydrolysis reaction catalyzed by lipase -Esters are formed. Since this glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester is unstable, it is easily hydrolyzed naturally to produce 6′-methylresorufin ( ⁇ max: 580 nm).
  • the absorbance (or transmittance) of the final reaction solution derived from this 6′-methylresorufin is 580 nm or near it. It is measured by measuring the absorbance (or transmittance) at the wavelength of.
  • the activity value of the lipase contained in the sample is calculated from the measured absorbance (or transmittance) or the amount of change in absorbance (or transmittance).
  • This is a method of calculating from the absorbance (or transmittance) measured based on the molar extinction coefficient of 6′-methylresorufin, or a standard substance (standard solution, standard serum, etc.) whose lipase activity value is known.
  • a method such as a method of calculating by comparing with the absorbance (or transmittance) of is suitably selected.
  • the activity value of the lipase contained in the above sample was calculated by subtracting the reagent blindness (reagent blank) from the absorbance (or transmittance) of the final reaction solution obtained by measuring the sample. ( ⁇ Abs.) Is preferably used.
  • Emulsion Solution of the Present Invention comprises 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester [DGGMR], and side chain type These are micelle particles made of a non-reactive polyether-modified type modified silicone oil. (The details of the emulsion solution and the lipase activity measurement substrate solution are as described in the above section [1] Substrate solution for lipase activity measurement of the present invention].
  • the emulsion solution of the present invention has excellent storage stability due to the above-described configuration.
  • a method for stabilizing a lipase activity measurement substrate solution used as a lipase activity measurement substrate comprises 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester and side chain
  • a non-reactive polyether-modified type modified silicone oil is included.
  • the method for stabilizing a substrate solution for measuring lipase activity according to the present invention is a method that can improve the storage stability of a substrate solution for measuring lipase activity by the above-described configuration.
  • Emulsion Solution stabilization method comprises a 1,2-o-dilauryl-rac-glycero-3-glutaric acid- (6′-methylresorufin) -ester and a side chain non-reactive polyether modified type The modified silicone oil is contained.
  • the stabilization method of the emulsion solution of the present invention is a method capable of improving the storage stability of the emulsion solution by the above-mentioned constitution.
  • Example 1 (Confirmation of effect of substrate solution for measuring lipase activity of the present invention-1) The effect of storage stability in the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention was confirmed.
  • a substrate solution for measuring lipase activity of the present invention (a substrate solution for measuring lipase activity characterized by comprising the emulsion solution of the present invention) was prepared. Moreover, the substrate solution for lipase activity measurement of a control example was prepared. Furthermore, a buffer solution was prepared.
  • KF-351A distributed: Shin-Etsu Chemical Co., Ltd. [Japan]
  • a non-reactive modified silicone oil polyether-modified type of a side chain type.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • a “lipase activity measurement substrate solution (lipase activity measurement substrate: DGGMR, this modified silicone oil: KF-351A)”, which is a substrate solution for lipase activity measurement of the present invention, was prepared.
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] is 0.6 mM
  • the concentration of the modified silicone oil (KF-351A) is 2.0% (w / v). is there. Further, it was visually confirmed that this lipase activity measurement substrate solution was homogeneously mixed without any concentration gradient or strong turbidity.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • a “lipase activity measurement substrate solution (lipase activity measurement substrate: DGGMR, surfactant: NIKKOL BT-7)” which is a lipase activity measurement substrate solution of a control example was prepared.
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] is 0.6 mM
  • the concentration of the surfactant is 0.5% (w / v). Further, it was visually confirmed that this lipase activity measurement substrate solution was homogeneously mixed without any concentration gradient or strong turbidity.
  • the present invention was prepared by storing the buffer solution on the day of preparation prepared in [3] in 1 above as the first reagent and storing it at 25 ° C. (dark place) in 2 (1) for 30 days.
  • the lipase activity measurement substrate solution was used as the second reagent.
  • the second reagent in (1) above was measured from the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention, and the lipase activity of a control example was stored in 25 (2) at 25 ° C. (dark place) in the above (2).
  • the procedure is as described in (1) and (2) except that the substrate solution for measurement of lipase activity in the control example in (2) above is used as the second reagent.
  • the absorption curve of the mixture was measured.
  • FIG. 1 shows the absorption curve of the mixed solution when the lipase activity measurement substrate solution of the present invention of (2) above was used as the second reagent measured in 3.
  • FIG. 2 shows an absorption curve of the mixed solution when the lipase activity measurement substrate solution of the control example (2) is used as the second reagent measured in the step 3.
  • the horizontal axis represents “wavelength” (unit: nm), and the vertical axis represents “absorbance” (unit: Abs).
  • this 6′-methylresorufin has an absorption maximum at 580 nm. Therefore, in the respective absorption curves of FIGS. 1 and 2, the amount of 6′-methylresorufin produced, that is, the amount of decomposition of DGGMR, from the height (increase) of the peak at 580 nm indicating the production of 6′-methylresorufin. (Hydrolysis amount) was determined.
  • the degradation amount of DGGMR during storage of the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention is only 54% of the degradation amount of DGGMR during storage of the substrate solution for measuring lipase activity of the control example. I understand that.
  • the present invention can effectively suppress the decomposition of DGGMR, has excellent storage stability, and can obtain an accurate measurement value for a long period of time. .
  • Example 2 (Confirmation of effect of substrate solution for measuring lipase activity of the present invention-2) The effect of storage stability in the lipase activity measurement substrate solution of the present invention was confirmed again.
  • a substrate solution for measuring lipase activity of the present invention (a substrate solution for measuring lipase activity characterized by comprising the emulsion solution of the present invention) was prepared.
  • a substrate solution for measuring lipase activity characterized by comprising the emulsion solution of the present invention was prepared.
  • a commercially available reagent substrate solution was used.
  • a buffer solution was prepared.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • a “lipase activity measurement substrate solution (lipase activity measurement substrate: DGGMR, the present modified silicone oil: KF-355A)” which is a lipase activity measurement substrate solution of the present invention was prepared.
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] is 0.3 mM
  • the concentration of the modified silicone oil (KF-355A) is 0.3% (w / v). is there. Further, it was visually confirmed that this lipase activity measurement substrate solution was homogeneously mixed without any concentration gradient or strong turbidity.
  • Control commercially available reagent “Liquitec Lipase Color II” (distributor: Roche Diagnostics Inc. [Japan]), which is a commercially available lipase activity measuring reagent (lipase activity measuring reagent kit), was used as a control.
  • This “Liquitech Lipase Color II” (hereinafter sometimes referred to as “control commercial reagent”) is a “buffer solution” as a first reagent and a “substrate solution” (DGGMR as a lipase activity measurement). As a substrate for use at a concentration of 0.27 mM).
  • the “substrate solution” of this “control commercial reagent” was used in the study in this example.
  • the lipase of the present invention stored at 30 ° C. (dark place) in (1) above, using the buffer on the day of preparation prepared in [3] in 1 above as the first reagent. The following measurement was performed using the substrate solution for activity measurement as the second reagent. In addition, this measurement is performed on the respective days of the start date of storage (day 0), 7 days after storage, 15 days after storage, 21 days after storage, and 35 days after storage of the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention. Each of the stored substrate solutions for measuring lipase activity of the present invention was used. First, 960 ⁇ L of the second reagent was added to 1,600 ⁇ L of the first reagent and mixed to obtain a mixed solution.
  • the second reagent in the above (1) is a substrate solution of a commercially available control reagent which is stored for 35 days at 30 ° C. (dark place) in the above (2) from the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention.
  • concentration of DGGMR (0.3 mM) in the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention in (6) above is changed from the concentration of DGGMR (0. 27 mg) except that the substrate solution of the control commercially available reagent of (2) above is used as the second reagent.
  • the ratio of the concentration of 6′-methylresorufin produced per unit [unit:%] was calculated. That is, “the ratio of DGGMR decomposed during storage of the reagent per 1 mM DGGMR concentration in the reagent” (decomposition rate of DGGMR) [unit:%] was calculated.
  • the horizontal axis represents “reagent storage period” (unit: day), and the vertical axis represents the value of “DGGMR degradation rate” (unit:%).
  • the “DGGMR degradation rate” in the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention is 0.4%, whereas the substrate solution of the control commercial reagent It can be seen from Table 1 and FIG. 3 that the value of “DGGMR decomposition rate” is 3.3%. That is, the “DGGMR degradation rate” in the lipase activity measurement substrate solution of the present invention is only 12% of the “DGGMR degradation rate” in the control commercially available substrate solution. (3) Therefore, also from the examination result of this example, the present invention can effectively suppress the degradation of DGGMR, has excellent storage stability, and can obtain an accurate measurement value for a long period of time. It was confirmed that.
  • Example 3 (Confirmation of effect of substrate solution for measuring lipase activity of the present invention-3) The effect of storage stability in the lipase activity measurement substrate solution of the present invention was confirmed again.
  • Reagents A total of four types of substrate solutions for measuring lipase activity of the present invention (substrate solutions for measuring lipase activity characterized by comprising the emulsion solution of the present invention) were prepared. As a control, a commercially available reagent substrate solution was used. In addition, a buffer solution was prepared.
  • KF-351A (Seller: Shin-Etsu Chemical Co., Ltd. [Japan])
  • B KF-354A (Seller: Shin-Etsu Chemical Co., Ltd. [Japan])
  • C KF-355A (Seller: Shin-Etsu Chemical Co., Ltd. [Japan])
  • D KF-6011 (Seller: Shin-Etsu Chemical Co., Ltd. [Japan])
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the following four types of substrate solutions for measuring lipase activity of the present invention (A) to (D) were prepared.
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] was 0.6 mM
  • the concentration of the modified silicone oil was 2.0% (w / V).
  • no concentration gradient or strong turbidity was observed, and it was visually confirmed that they were uniformly mixed.
  • Control commercially available reagent “Liquitec Lipase Color II” (distributor: Roche Diagnostics Inc. [Japan]), which is a commercially available lipase activity measuring reagent (lipase activity measuring reagent kit), was used as a control.
  • This “Liquitech Lipase Color II” (hereinafter sometimes referred to as “control commercial reagent”) is a “buffer solution” as a first reagent and a “substrate solution” (DGGMR as a lipase activity measurement). As a substrate for use at a concentration of 0.27 mM).
  • the “substrate solution” of this “control commercial reagent” was used in the study in this example.
  • the buffer solution on the day of preparation prepared in [3] of 1 above was used as the first reagent, and stored at 25 ° C. (dark place) in (1) of “(A)”
  • the following measurement was performed using the substrate solution for measuring lipase activity-A ”as the second reagent.
  • the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention was stored for the relevant period on each day of the storage start date (day 0), 5 days after storage, 23 days after storage, and 31 days after storage.
  • A) Substrate solution for measuring lipase activity-A First, 960 ⁇ L of the second reagent was added to 1,600 ⁇ L of the first reagent and mixed to obtain a mixed solution.
  • the second reagent in the above (1) was stored from “(A) Substrate solution for lipase activity measurement-A” in the above (2) (1) at 25 ° C. (dark place) for 31 days “(B) Except for changing to lipase activity measurement substrate solution-B, the operation is performed as described in the above (1) to (6), and “(B) lipase activity measurement” in (2) above as the second reagent.
  • the ratio [unit:%] of the concentration of the produced 6′-methylresorufin per 1 mM DGGMR concentration when using the “substrate solution for preparation-B” was calculated. That is, “the ratio of DGGMR decomposed during storage of the reagent per 1 mM DGGMR concentration in the reagent” (decomposition rate of DGGMR) [unit:%] was calculated.
  • the second reagent in the above (1) was stored from “(A) Substrate solution for measuring lipase activity-A” in the above (2) (1) at 25 ° C. (dark place) for 31 days “(C) Except for replacing the substrate solution for lipase activity measurement-C ”, the operation is performed as described in the above (1) to (6), and the“ (C) lipase activity measurement ”in the above (1) is used as the second reagent.
  • the ratio [unit:%] of the concentration of the produced 6′-methylresorufin per 1 mM DGGMR concentration when using the “substrate solution for preparation-C” was calculated. That is, “the ratio of DGGMR decomposed during storage of the reagent per 1 mM DGGMR concentration in the reagent” (decomposition rate of DGGMR) [unit:%] was calculated.
  • the second reagent in the above (1) was stored from “(A) Substrate solution for lipase activity measurement-A” in the above (2) (1) at 25 ° C. (dark place) for 31 days “(D) Except for changing to lipase activity measurement substrate solution-D, the procedure is performed as described in the above (1) to (6), and “(D) lipase activity measurement” in (2) above as the second reagent.
  • the ratio [unit:%] of the concentration of the produced 6′-methylresorufin per 1 mM DGGMR concentration when using the “substrate solution for preparation-D” was calculated. That is, “the ratio of DGGMR decomposed during storage of the reagent per 1 mM DGGMR concentration in the reagent” (decomposition rate of DGGMR) [unit:%] was calculated.
  • the second reagent in (1) above is obtained from “(A) Substrate solution for measuring lipase activity-A” and stored in the control (2) in (2) at 25 ° C. (dark place) for 32 days. Change to the reagent substrate solution, and the date of measurement in (1) above is the day of storage start (day 0), 8 days after storage, 15 days after storage, 21 days after storage, 29 days after storage, and 32 days after storage And the concentration of DGGMR (0.6 mM) in “(A) Substrate Solution for Lipase Activity Measurement-A” in (6) above is changed to the DGGMR concentration in the substrate solution of the control commercial reagent in [1] above.
  • the horizontal axis represents “reagent storage period” (unit: day), and the vertical axis represents the value of “DGGMR degradation rate” (unit:%).
  • the value of “DGGMR degradation rate” in “(A) Substrate solution for lipase activity measurement-A” which is the lipase activity measurement substrate solution of the present invention is indicated by “*”, and “(B ) The value of “DGGMR degradation rate” in the lipase activity measurement substrate solution-B is indicated by “ ⁇ ”, and the value of “(C) DGGMR degradation rate in the lipase activity measurement substrate solution-C” is “ ⁇ ", The value of “DGGMR degradation rate” in “(D) Substrate solution for measuring lipase activity—D” is indicated by “ ⁇ ”, and the value of “DGGMR degradation rate” in the substrate solution of the control commercial reagent is indicated by “ ⁇ ”. It shows with.
  • the “DGGMR degradation rate” is the “DGGMR degradation rate” in the substrate solution of the control commercial reagent. It can be seen that it is significantly lower than
  • the present invention can effectively suppress the decomposition of DGGMR, has excellent storage stability, and can obtain an accurate measurement value for a long time. It was confirmed that.
  • a substrate solution for measuring lipase activity of the present invention (a substrate solution for measuring lipase activity characterized by comprising the emulsion solution of the present invention) was prepared.
  • a substrate solution for measuring lipase activity characterized by comprising the emulsion solution of the present invention was prepared.
  • a commercially available reagent substrate solution was used.
  • a buffer solution was prepared.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • a “lipase activity measurement substrate solution (lipase activity measurement substrate: DGGMR, the present modified silicone oil: KF-355A)” which is a lipase activity measurement substrate solution of the present invention was prepared.
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] is 0.3 mM
  • the concentration of the modified silicone oil (KF-355A) is 0.3% (w / v). is there. Further, it was visually confirmed that this lipase activity measurement substrate solution was homogeneously mixed without any concentration gradient or strong turbidity.
  • Control commercially available reagent “Liquitec Lipase Color II” (distributor: Roche Diagnostics Inc. [Japan]), which is a commercially available lipase activity measuring reagent (lipase activity measuring reagent kit), was used as a control.
  • This “Liquitech Lipase Color II” (hereinafter sometimes referred to as “control commercial reagent”) is a “buffer solution” as a first reagent and a “substrate solution” (DGGMR as a lipase activity measurement). As a substrate for use at a concentration of 0.27 mM).
  • the “substrate solution” of this “control commercial reagent” was used in the study in this example.
  • the lipase of the present invention stored at 30 ° C. (dark place) in (1) above, using the buffer on the day of preparation prepared in [3] in 1 above as the first reagent. The following measurement was performed using the substrate solution for activity measurement as the second reagent. In addition, this measurement is performed on the respective days of the start date of storage (day 0), 7 days after storage, 15 days after storage, 21 days after storage, and 35 days after storage of the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention. Each of the stored substrate solutions for measuring lipase activity of the present invention was used. First, 960 ⁇ L of the second reagent was added to 1,600 ⁇ L of the first reagent and mixed to obtain a mixed solution.
  • the second reagent in the above (1) is a substrate solution of a commercially available control reagent which is stored for 35 days at 30 ° C. (dark place) in the above (2) from the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention.
  • Changing the measurement date in the above (1) to the start date of storage (day 0), 7 days after storage, 15 days after storage, 21 days after storage, and 35 days after storage, and (6 ) Except that the DGGMR concentration (0.3 mM) in the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention is changed to the DGGMR concentration (0.27 mM) in the substrate solution of the control commercial reagent of [1] above,
  • the substrate solution of the control commercial reagent of the above (2) is used as the second reagent, the operation is performed as described in the above (1) to (6), and the produced 6′-methylresodium per 1 mM DGGMR concentration Of the concentration of ruffin Were calculated: rate [percent]. That is, “the ratio of DGGMR
  • the horizontal axis represents “reagent storage period” (unit: day), and the vertical axis represents the value of “DGGMR decomposition rate” (unit:%).
  • the “DGGMR degradation rate” of the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention is significantly lower than the “DGGMR degradation rate” of the substrate solution of the control commercial reagent. (2) Therefore, also from the examination result of this example, the present invention can effectively suppress the degradation of DGGMR, has excellent storage stability, and can obtain an accurate measurement value for a long period of time. It was confirmed that.
  • Example 5 (Confirmation of effect of substrate solution for measuring lipase activity of the present invention-5) The effect of storage stability in the lipase activity measurement substrate solution of the present invention was confirmed again.
  • a substrate solution for measuring lipase activity of the present invention (a substrate solution for measuring lipase activity characterized by comprising the emulsion solution of the present invention) was prepared.
  • a substrate solution for measuring lipase activity characterized by comprising the emulsion solution of the present invention was prepared.
  • a commercially available reagent substrate solution was used.
  • a buffer solution was prepared.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • a “lipase activity measurement substrate solution (lipase activity measurement substrate: DGGMR, the present modified silicone oil: KF-355A)” which is a lipase activity measurement substrate solution of the present invention was prepared.
  • the concentration of the lipase activity measurement substrate [DGGMR] is 0.3 mM
  • the concentration of the modified silicone oil (KF-355A) is 0.3% (w / v). is there. Further, it was visually confirmed that this lipase activity measurement substrate solution was homogeneously mixed without any concentration gradient or strong turbidity.
  • Control commercially available reagent “Liquitec Lipase Color II” (distributor: Roche Diagnostics Inc. [Japan]), which is a commercially available lipase activity measuring reagent (lipase activity measuring reagent kit), was used as a control.
  • This “Liquitech Lipase Color II” (hereinafter sometimes referred to as “control commercial reagent”) is a “buffer solution” as a first reagent and a “substrate solution” (DGGMR as a lipase activity measurement). As a substrate for use at a concentration of 0.27 mM).
  • the “substrate solution” of this “control commercial reagent” was used in the study in this example.
  • the lipase of the present invention stored at 10 ° C. (dark place) in the above (2) (1) using the buffer on the day of preparation prepared in [1] above as the first reagent.
  • the following measurement was performed using the substrate solution for activity measurement as the second reagent.
  • this measurement is carried out for each day of the storage start date (day 0), 90 days after storage, 180 days after storage, 270 days after storage, 360 days after storage, and 390 days after storage of the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention.
  • the lipase activity measurement substrate solution of the present invention stored for the period was used for each. First, 960 ⁇ L of the second reagent was added to 1,600 ⁇ L of the first reagent and mixed to obtain a mixed solution.
  • the second reagent in the above (1) is a substrate solution of a commercially available control reagent stored from the lipase activity measurement substrate solution of the present invention for 300 days at 5 ° C. (dark place) in the above (2).
  • the concentration of the produced 6′-methylresorufin per 1 mM DGGMR concentration Ratio [simple :%] was calculated. That is, “the ratio of DGGMR decomposed during storage of the reagent per 1 mM DGGMR concentration in the reagent” (decomposition rate of DGGMR) [unit:%] was calculated.
  • the horizontal axis indicates “reagent storage period” (unit: days), and the vertical axis indicates the value of “DGGMR degradation rate” (unit:%).
  • the “DGGMR degradation rate” of the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention is significantly lower than the “DGGMR degradation rate” of the substrate solution of the control commercial reagent. (2) Therefore, also from the examination result at the time of refrigerated storage in this example, the present invention can effectively suppress the degradation of DGGMR, has excellent storage stability, and obtains accurate measurement values for a long period of time. It was confirmed that it was possible.
  • Example 6 (Confirmation of effect of substrate solution for measuring lipase activity of the present invention-6) The effect of storage stability in the lipase activity measurement substrate solution of the present invention was confirmed again.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • a “lipase activity measurement substrate solution (lipase activity measurement substrate: DGGMR, the present modified silicone oil: KF-355A)” which is a lipase activity measurement substrate solution of the present invention was prepared. This was the first lot.
  • the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention which is the “lipase activity measuring substrate solution (lipase activity measuring)”, is further performed twice as described in the above (1) to (6).
  • Substrate for use: DGGMR, this modified silicone oil: KF-355A) ” was prepared twice separately. These were designated as the second lot and the third lot.
  • the lipase activity measurement substrate [ The concentration of DGGMR] is 0.3 mM, and the concentration of the modified silicone oil (KF-355A) is 0.3% (w / v). In any of these lipase activity measurement substrate solutions, no concentration gradient or strong turbidity was observed, and it was visually confirmed that they were homogeneously mixed.
  • this measurement is carried out at the start of storage (day 0) of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention described above, and at each time after storage for 16 months, the lipase activity measurement substrate solution of the present invention stored for that period. Each was used.
  • an optical probe optical fiber of a dynamic light scattering particle size distribution measuring device (model: Nanotrac UPA-EX250, distributor: Nikkiso Co., Ltd. [Japan]) is placed inside these plastic cells. Then, the micelle diameter (particle diameter) of each emulsion of the first lot, the second lot, and the third lot of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention in each plastic cell was measured. This measurement was performed at room temperature (25 ° C.).
  • FIG. 7 shows the distribution of the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion of the first lot of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention measured in the above 3, and the second lot of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention.
  • FIG. 8 shows the distribution of the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion
  • FIG. 9 shows the distribution of the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion of the third lot of the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention.
  • the value of the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion of the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention in FIGS. 7, 8 and 9 is an average value.
  • the horizontal axis represents the micelle diameter (particle diameter) [average value] (unit: ⁇ m) of the emulsion, and the vertical axis represents the frequency (unit:%).
  • the measurement result at the start of storage (day 0) is indicated by a broken line, and the measurement result when stored for 16 months is indicated by a straight line.
  • the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion in any of the first lot, the second lot, and the third lot of the lipase activity measurement substrate solution of the present invention is substantially the same at the start of storage (day 0) and at the time of storage for 16 months.
  • the lipase activity measurement substrate solution of the present invention has a high reaction rate with lipase, the emulsion is stable, and the lipase activity measurement substrate solution can be stored and used for a long time at 80 nm. It is confirmed that the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion is in the range of ⁇ 600 nm, and in fact, the distribution of the micelle diameter (particle diameter) of the emulsion is kept stable for a long period (16 months). It was.
  • Example 7 (Confirmation of effect of lipase activity measuring reagent of the present invention) The effect of storage stability in the lipase activity measurement reagent of the present invention (characterized by including the substrate solution for lipase activity measurement of the present invention) was confirmed.
  • Reagent activity measuring reagent of the present invention The first reagent and the second reagent of the lipase activity measuring reagent of the present invention were prepared.
  • First Reagent of the lipase activity measuring reagent of the present invention is prepared by dissolving the following reagent components in pure water so as to have the respective concentrations described above and adjusting the pH to pH 8.4 (20 ° C.). Was prepared.
  • this 1st reagent was prepared 3 times in total separately, and these were made into the 1st lot, the 2nd lot, and the 3rd lot of the 1st reagent of the lipase activity measuring reagent of this invention, respectively.
  • Second reagent A total of three lots of the second reagent of the lipase activity measuring reagent of the present invention were prepared.
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • the beaker is placed on a multi-stirrer (model: M-3, distributor: As One Co., Ltd. [Japan]), and the rotor in the beaker is marked with a scale “3” of the multi-stirrer. This was done by rotating at
  • a “lipase activity measurement substrate solution (lipase activity measurement substrate: DGGMR, the present modified silicone oil: KF-355A)” which is a lipase activity measurement substrate solution of the present invention was prepared. This was designated as the first lot of the second reagent of the lipase activity measuring reagent of the present invention.
  • the substrate solution for measuring lipase activity of the present invention which is the “lipase activity measuring substrate solution (lipase activity measuring)”, is further performed twice as described in the above (1) to (6).
  • Substrate for use: DGGMR, this modified silicone oil: KF-355A) ” was prepared twice separately. These were designated as the second lot and the third lot of the second reagent of the lipase activity measuring reagent of the present invention, respectively.
  • the lipase activity measurement substrate [ The concentration of DGGMR] is 0.3 mM, and the concentration of the modified silicone oil (KF-355A) is 0.3% (w / v). In any of these lipase activity measurement substrate solutions, no concentration gradient or strong turbidity was observed, and it was visually confirmed that they were homogeneously mixed.
  • Control serum-1 “Aalto Control IM” (seller: Sinotest Co., Ltd. [Japan]), which is a commercially available quality control serum, and “Aalto Control II,” a prototype (Sinotest, Japan) [Country Serum-1] were mixed in equal amounts.
  • Control serum-2 “Prototype” (Sinotest Co., Ltd. [Japan]) of “Aalto Control II”, which is a control serum for quality control, was used as “control serum-2”.
  • Control serum-3 “QAP Troll 2X” [manufacturing number: QL-215] (distributor: Sysmex Corporation [Japan]), which is a commercially available control serum for quality control, was used as “control serum-3”.
  • each of the three samples (“(1) Controlled Serum-1”, “(2) Controlled Serum-2”, and “(3) Controlled Serum-3” ), 160 ⁇ L of the first lot of the “first reagent” stored in (1) of 2 above was added to 2.6 ⁇ L of these samples as the first reagent, and reacted at 37 ° C.
  • the physiological saline was used for the measurement of a reagent blind test (reagent blank). Except for using this physiological saline as a sample, the procedure described in the above (1) to (3) was performed, and the amount of change in absorbance when the physiological saline was measured was measured. (Measurement of absorbance change in reagent blind test)
  • the first reagent in the above (1) is changed from the first lot of the “first reagent” stored in the above (1) to the second lot, and the second reagent in the above (2) is changed. Except for changing from the first lot of the “second reagent” stored in (2) above to the second lot, the operation is performed as described in the above (1) to (6), and the first reagent is used as the first reagent. When two lots were used and the second lot was used as the second reagent, the lipase activity value of each of the three samples was determined.
  • the first reagent in (1) is changed from the first lot of the “first reagent” stored in (2) above to the third lot, and the second reagent in (2) is changed to Except for changing from the first lot to the third lot of the “second reagent” stored in (2) of 2 above, the operation is performed as described in (1) to (6) above, and the first reagent is used as the first reagent.
  • the lipase activity value of each of the three samples was determined.
  • the unit of the measured value (lipase activity value of each sample) shown in Table 5 is “unit / L (Unit / L)”.
  • the values in parentheses are values obtained by dividing each measured value (lipase activity value) by the measured value (lipase activity value) of each sample at the start of storage (day 0). It is expressed as a percentage.
  • the lipase activity value of each of the three samples obtained by measuring using the third lot as the first reagent and using the third lot as the second reagent is shown in FIG.
  • the horizontal axis represents “reagent storage period” [unit: month]
  • the vertical axis represents “measured value (lipase activity value of each sample)” [ Unit: Unit / L (Unit / L)].
  • any of the first lot, the second lot, and the third lot of the first reagent and the second reagent of the lipase activity measuring reagent of the present invention may be almost the same as the measured value (lipase activity value) at the start of storage (day 0). I understand.
  • the performance of the lipase activity measuring reagent of the present invention is stable for a long period (13 months).
  • the present invention has excellent storage stability and can obtain an accurate measurement value for a long period of time.

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Abstract

【課題】保存安定性が優れたリパーゼ活性測定用基質溶液、リパーゼ活性測定試薬、及びエマルジョン溶液を提供する。 また、長期間正確な測定値を得ることができる試料中のリパーゼ活性の測定方法を提供する。 更に、リパーゼ活性測定用基質溶液及びエマルジョン溶液の保存安定性を改善する方法を提供する。 【解決手段】1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6'-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなるリパーゼ活性測定用基質溶液を使用する。

Description

リパーゼ活性測定用基質溶液並びに試料中のリパーゼ活性の測定方法及び測定試薬
 本発明は、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液であって、その保存安定性が優れたリパーゼ活性測定用基質溶液に関するものである。
 また、本発明は、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するための試薬であって、その保存安定性が優れたリパーゼ活性の測定試薬に関するものである。
 また、本発明は、試料中のリパーゼ活性の測定のための方法であって、長期間正確な測定値を得ることができる試料中のリパーゼ活性の測定方法に関するものである。
 また、本発明は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル等よりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液であって、その保存安定性が優れた当該ミセル粒子からなるエマルジョン溶液に関するものである。
 また、本発明は、リパーゼ活性測定用基質溶液の安定化方法であって、リパーゼ活性測定用基質溶液の保存安定性を改善する方法に関するものである。
 また、本発明は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル等よりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液の安定化方法であって、当該ミセル粒子からなるエマルジョン溶液の保存安定性を改善する方法に関するものである。
 本発明は、臨床検査などの生命科学分野、及び分析化学などの化学分野等において有用なものである。
 血清又は血漿中のリパーゼ活性は、急性膵炎、慢性膵炎又は膵臓癌等の膵疾患において上昇することから、これらの膵炎等のマーカーとして有用なものである。
 このリパーゼは、長鎖脂肪酸の3分子がそれぞれグリセロールにエステル結合したトリグリセライド(TG)のα位(1位、3位)のエステル結合を加水分解して、2分子の脂肪酸及び1分子のβ-モノグリセライドを生成する反応を触媒する酵素である。
 この1分子のβ-モノグリセライドは、α型に異性化され、これがリパーゼの作用を受けて加水分解されてグリセロールと脂肪酸とになる。
 血清又は血漿中のリパーゼ活性の測定方法としては、次のような方法が知られていた(非特許文献1及び非特許文献2参照。)。
 例えば、オリーブ油のエマルジョンをリパーゼの基質として用い、このオリーブ油のエマルジョンを血清試料等と接触させ、37℃で24時間反応させた後、リパーゼによる加水分解反応により生成した脂肪酸をアルカリで滴定するCherry-Crandallの方法が知られていた。
 しかし、この方法は反応時間が長く、測定しようとするリパーゼの不活性化や反応阻害が著しい方法であった。
 また、トリオレイン又はオリーブ油のエマルジョンをリパーゼの基質として用い、このトリオレイン又はオリーブ油のエマルジョンを血清試料等と接触させ、反応させて、リパーゼによる乳化ミセルの加水分解反応にともなって起こる反応液の濁度の減少からリパーゼ活性を測定するVogel-Zieve法及びこの変法が知られていた。
 しかし、これらの方法は、血清蛋白による阻害やリウマチ因子による凝集塊の干渉を受け、均一かつ安定なエマルジョンを作るのが難しく、再現性に乏しいという短所を有する方法であった。
 また、BALB(2,3-ジメルカプト-1-プロパノール 三酪酸)をリパーゼの基質として用い、このBALBを血清試料等と接触させ、反応させて、リパーゼによる加水分解反応により生成したBAL(2,3-ジメルカプト-1-プロパノール)をDTNB(5,5’-ジチオビス-2-ニトロ安息香酸)と反応させて、生じたTNBアニオンの黄色の発色を412nmで測定することによってリパーゼ活性を測定する方法が知られていた。
 しかし、この方法は、高濃度の肝エステラーゼの存在下でその干渉を受けてしまうため、他の測定項目の測定試薬から反応セル又はノズル(プローブ)を介して混入する肝エステラーゼの影響を受けて測定値に誤差が生じるという短所を有する方法であった。
 また、天然型基質である1,2-ジリノレオイルグリセロールをリパーゼの基質として用い、この1,2-ジリノレオイルグリセロールを血清試料等と接触させ、反応させて、リパーゼによる加水分解反応により生成したリノール酸が、コエンザイムA、NAD及びATPの存在下で、アシル-CoAシンセターゼ、アシル-CoAオキシダーゼ、エノイル-CoAヒドラターゼ-3-ヒドロキシアシル-CoAデヒドロゲナーゼ-3-ケトアシル-CoAチオラーゼ複合酵素の共同作用によってβ-酸化を受ける際に起こるNADHの生成速度を測定することによってリパーゼ活性を測定する方法が知られていた。
 しかし、この方法も、高濃度の肝エステラーゼの存在下でその干渉を受けてしまうため、他の測定項目の測定試薬から反応セル又はノズル(プローブ)を介して混入する肝エステラーゼの影響を受けて測定値に誤差が生じるという短所を有する方法であった。
 前記の各測定方法に加えて、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル[以下、「DGGMR」ということがある]をリパーゼの基質として用いる血清又は血漿中のリパーゼ活性の測定方法が開発された(特許文献1及び非特許文献2参照。)。
 この方法では、この1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル[DGGMR]を血清試料等と接触させ、反応させることにより、リパーゼが触媒する加水分解反応によって、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロール及びグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルが生成する。
 このグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルは不安定であって、容易に自然に加水分解されて6’-メチルレゾルフィン(λmax:580nm)を生成する。
 この生成する6’-メチルレゾルフィンの増加を580nm又はその近辺の波長の吸光度を測ることによって測定し、試料中に含まれていたリパーゼの活性値を求めることができる。
 このDGGMRをリパーゼの基質として用いるリパーゼ活性の測定方法は、測定が一連の反応で進むシンプルなものであり、かつ他の測定試薬から反応セル又はノズル(プローブ)を介して混入するエステラーゼの影響を受けにくいという長所を有する方法である。
 また、血清又は血漿等に含まれるリパーゼは、エマルジョン化したトリグリセライド基質の水と油との界面で最も効率よく作用し、このリパーゼの反応速度は分散した基質の表面積に関係するので、このリパーゼの活性測定には安定で均一なミセル粒子からなる基質の調製が重要であるとされている(非特許文献2参照。)。
 このため、従来、リパーゼ活性の測定に使用するための基質溶液(リパーゼ活性測定用基質溶液)を製造するに当っては、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化(乳化)した基質溶液となるよう、種々の方法が考えられてきたが、基質を界面活性剤を含む水溶液に混合したり、基質をアルコールなどの有機溶媒を含む溶液に混合したり、基質含有液を滴々と滴下して溶液に混合したり、基質含有液を溶液に噴射注入したり、基質溶液を強力なミキサーで高速に撹拌したり、又は基質溶液に超音波を掛ける処理を行ったり等の煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理が必要であったり、又は特別な装置若しくは器具などの物等が必要であった。
 ところで、リパーゼ活性測定用基質を含有する溶液は一般に不安定であり、その保存安定性に問題があった。
 このため、リパーゼ活性測定用基質を含有する溶液の保存安定性の改善を目的として種々の試みが行われた。
 例えば、リパーゼの基質となるトリグリセライド等の非水溶性物質を非イオン性界面活性剤を含む水溶液に加え、撹拌しながら加熱し、一度非イオン性界面活性剤の曇点より高い温度に上げ、更に撹拌を続けながら曇点以下に冷却することを特徴とする、非水溶性物質の透明な可溶化水溶液の製造方法が、従来困難であった非水溶性物質の可溶化を可能にし、しかも得られる可溶化水溶液は極めて安定であるとの効果を奏するものとして開示された(特許文献2参照。)。
 また、低濃度のpH緩衝液、及びポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル系非イオン性界面活性剤等の非イオン性界面活性剤を含有することを特徴とするリパーゼ活性測定用ジグリセリド溶液が、長期保存安定性に優れたジグリセリドの水溶液を提供すること等が可能であるとの効果を奏するものとして開示された(特許文献3参照。)。
 また、少なくともポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル系非イオン性界面活性剤等の非イオン性界面活性剤に溶解したジグリセリドを基質として用いることを特徴とする植物由来及び/又は微生物由来リパーゼ活性測定用組成物が、長期保存安定性に優れたジグリセリドの水溶液を含有するキット、組成物の提供が可能になる等の効果を奏するものとして開示された(特許文献4参照。)。
 また、前記のDGGMRよりなるリパーゼ基質等に対して、新規なリパーゼ基質可溶化剤である1,2-ジフタノイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリンにより可溶化した酵素活性測定用リパーゼ基質溶液等が、保存安定性が大きく、溶液の高い透明度を長期間にわたって保持することも可能であるとの効果を奏するものとして開示された(特許文献5参照。)。
特開昭61-254197号公報 特開昭58-156330号公報 国際公開第06/054681号パンフレット 特開2007-306821号公報 特開平11-318494号公報
臨床検査法提要,第30版,第670頁~第674頁,金井正光編著,金原出版,1993年8月20日発行 臨床検査法提要,第33版,第545頁~第547頁,金井正光監修,金原出版,2010年4月1日発行
 前記の通り、特許文献5には、リパーゼ活性測定用基質としてDGGMRを使用する場合に、新規なリパーゼ基質可溶化剤である1,2-ジフタノイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリンを共に含有させた酵素活性測定用リパーゼ基質溶液においては、その保存安定性が大きいということが記載されていたが、この1,2-ジフタノイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリンは高価であり、当該基質溶液の原料費が高くなってしまうという欠点があった。
 これに対して、本発明の課題は、前記の通りリパーゼ活性測定用基質として使用する場合に種々の長所を有するDGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含有するリパーゼ活性測定用基質溶液であって、その保存安定性が優れたリパーゼ活性測定用基質溶液を提供することである。
 また、本発明の課題は、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含有するリパーゼ活性測定用基質溶液を含むリパーゼ活性の測定試薬であって、その保存安定性が優れたリパーゼ活性の測定試薬を提供することである。
 また、本発明の課題は、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含有するリパーゼ活性測定用基質溶液を用いる試料中のリパーゼ活性の測定方法であって、長期間正確な測定値を得ることができる試料中のリパーゼ活性の測定方法を提供することである。
 また、本発明の課題は、DGGMR等よりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液であって、その保存安定性が優れた当該ミセル粒子からなるエマルジョン溶液を提供することである。
 また、本発明の課題は、リパーゼ活性測定用基質溶液の安定化方法であって、リパーゼ活性測定用基質溶液の保存安定性を改善する方法を提供することである。
 また、本発明の課題は、DGGMR等よりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液の安定化方法であって、当該ミセル粒子からなるエマルジョン溶液の保存安定性を改善する方法を提供することである。
 本発明者らは、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含有するリパーゼ活性測定用基質溶液の保存安定性を改善する方法、及びDGGMRよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液を安定化する方法等について検討を重ねたところ、DGGMRと共に、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを含有させることにより、上記課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。
 本発明の要旨は以下の通りである。
[1] 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなることを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液。
[2] 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなるリパーゼ活性測定用基質溶液を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定試薬。
[3] 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなるリパーゼ活性測定用基質溶液を使用して、試料中のリパーゼ活性を測定することを特徴とする、試料中のリパーゼ活性の測定方法。
[4] 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液。
[5] 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルと共に、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを含有させることを特徴とする、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として用いるリパーゼ活性測定用基質溶液の安定化方法。
[6] 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルと共に、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを含有させることを特徴とする、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液の安定化方法。
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液は、その保存安定性が優れたリパーゼ活性測定用基質溶液である。
 また、本発明のリパーゼ活性の測定試薬は、その保存安定性が優れたリパーゼ活性の測定試薬である。
 また、本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法は、長期間正確な測定値を得ることができる方法である。
 また、本発明のDGGMR等よりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液は、その保存安定性が優れたエマルジョン溶液である。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の安定化方法は、リパーゼ活性測定用基質溶液の保存安定性を改善することができる方法である。
 また、本発明のDGGMR等よりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液の安定化方法は、当該エマルジョン溶液の保存安定性を改善することができる方法である。
 上記の通り、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液、リパーゼ活性の測定試薬、及びエマルジョン溶液、並びに本発明の各方法により、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含有するリパーゼ活性測定用基質溶液、当該リパーゼ活性測定用基質溶液を含むリパーゼ活性測定試薬、及びDGGMR等よりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液を、それぞれ長期間安定に使用することが可能になったため、これらの物の使用者にとっては至便なものであり、また、コスト的にもメリットが大きいものである。
 また、上記の通り、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液、リパーゼ活性の測定試薬、及びエマルジョン溶液、並びに本発明の各方法により、DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として含有するリパーゼ活性測定用基質溶液、当該リパーゼ活性測定用基質溶液を含むリパーゼ活性測定試薬、及びDGGMR等よりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液を、それぞれ長期間安定に使用することが可能になったため、長期間正確な測定結果(測定値)を提供するリパーゼ活性測定用基質溶液及びこれを含むリパーゼ活性測定試薬等を医療機関等が入手可能となった。そして、試料中のリパーゼ活性の正確な測定結果(測定値)を、医療機関等において長期間取得可能となった。
保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を用いた混合液の吸収曲線を示した図である。
保存した対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液を用いた混合液の吸収曲線を示した図である。
本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液及び対照市販試薬の基質液それぞれにおける保存時に分解したDGGMRの比率を示した図である。
本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液及び対照市販試薬の基質液それぞれにおける保存時に分解したDGGMRの比率を示した図である。
本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液及び対照市販試薬の基質液それぞれにおける保存時に分解したDGGMRの比率を示した図である。
本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液及び対照市販試薬の基質液それぞれにおける保存時に分解したDGGMRの比率を示した図である。
保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の分布を示した図である。
保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の分布を示した図である。
保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の分布を示した図である。
保存した本発明のリパーゼ活性測定試薬により試料中のリパーゼ活性の測定を行った結果を示した図である。
保存した本発明のリパーゼ活性測定試薬により試料中のリパーゼ活性の測定を行った結果を示した図である。
保存した本発明のリパーゼ活性測定試薬により試料中のリパーゼ活性の測定を行った結果を示した図である。
〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液
I.総論
1.リパーゼ活性測定用基質溶液
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル[DGGMR]、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなることを特徴とするものである。
 そして、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液は、上記の構成により、その保存安定性が優れたものである。
2.リパーゼ
 本発明において、リパーゼは、リパーゼとしての活性、すなわちリパーゼ活性を有するものであればよく、このリパーゼ活性を有するものであれば特に限定はない。
 本発明において、リパーゼとしては、例えば、長鎖脂肪酸の3分子がそれぞれグリセロールにエステル結合したトリグリセライド(TG)のα位(1位、3位)のエステル結合を加水分解して、2分子の脂肪酸及び1分子のβ-モノグリセライドを生成する反応を触媒する膵リパーゼ[EC 3.1.1.3]等を挙げることができる。
 本発明は、体液、臓器又は組織に存在するリパーゼの活性測定にとって好適であり、体液に存在するリパーゼの活性測定にとってより好適であり、血液、血清又は血漿に存在するリパーゼの活性測定にとって更に好適であり、血清又は血漿に存在するリパーゼの活性測定にとって特に好適である。
 また、本発明は、膵リパーゼの活性測定にとって好適である。
3.試料
 本発明において、リパーゼの活性を測定する試料は、前記のリパーゼを含む可能性がある試料であればよく、前記のリパーゼを含む可能性があるものであれば特に限定されない。
 この試料としては、例えば、ヒト若しくは動物又は植物に由来する試料等を挙げることができる。
 ヒト若しくは動物に由来する試料としては、特に限定されず、例えば、ヒト或いは動物の、血液、血清、血漿、尿、精液、髄液、唾液、汗、涙、腹水、若しくは羊水などの体液;大便などの排泄物;膵臓、肝臓、若しくは胃などの臓器;毛髪、皮膚、爪、筋肉、若しくは神経などの組織;又は細胞等を挙げることができる。
 本発明は、ヒト又は動物に由来する試料を試料とする場合に好適であり、ヒトに由来する試料を試料とする場合に特に好適である。
 また、本発明は、体液、臓器又は組織を試料とする場合に好適であり、体液を試料とする場合により好適であり、血液、血清又は血漿を試料とする場合に更に好適であり、血清又は血漿を試料とする場合に特に好適である。
 なお、本発明において、試料は、液体である場合に好適であるので、もし試料が液体でない場合には、抽出処理又は可溶化処理等の前処理を既知の方法に従って行い、液体試料とすればよい。
 また、試料は、必要に応じて、希釈又は濃縮処理等を行ってもよい。
II.本発明のエマルジョン溶液
1.総論
 前記の通り、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなることを特徴とするものである。
 本発明における、この1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液について、以下説明する。
 なお、この本発明のエマルジョン溶液[すなわち、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液]は、後述の通り、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル以外の物を含んでよいものである。
2.リパーゼ活性測定用基質
(1)総論
 本発明において、試料中に含まれるリパーゼの活性の測定に使用するためのリパーゼの基質、すなわちリパーゼ活性測定用基質は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル[DGGMR]である。
 本発明においては、リパーゼ活性測定用基質であるDGGMRを試料と接触させ、試料中に含まれるリパーゼと反応させることにより、リパーゼが触媒する加水分解反応によって、DGGMRより1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロール及びグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルが生成する。
 このグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルは不安定であって、容易に自然に加水分解されて6’-メチルレゾルフィン(λmax:580nm)を生成する。
 本発明においては、この生成する6’-メチルレゾルフィンの増加を580nm又はその近辺の波長の吸光度を測ることによって測定し、試料中に含まれていたリパーゼの活性値を求めることができる。
 なお、DGGMRは、ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]、又はシグマ アルドリッチ ジャパン合同会社[日本国]等より市販されている。
(2)リパーゼ活性測定用基質の濃度
 本発明のエマルジョン溶液におけるDGGMRの濃度であるが、この本発明のエマルジョン溶液におけるDGGMRの濃度が0.05mM以上であることが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液とする上で好ましい。
 なお、この本発明のエマルジョン溶液におけるDGGMRの濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは0.1mM以上であり、特に好ましくは0.2mM以上である。
 また、この本発明のエマルジョン溶液に含有させるDGGMRの濃度であるが、前記の目的の上から、2mM以下であることが好ましい。
 なお、この本発明のエマルジョン溶液におけるDGGMRの濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは1mM以下であり、特に好ましくは0.8mM以下である。
2.本変性シリコーンオイル
(1)総論
 前記の通り、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液は、リパーゼ活性測定用基質としてのDGGMR、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなることを特徴とするものである。
 すなわち、本発明のエマルジョン溶液は、DGGMRと共に、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを含有させたものである。
(2)側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル
 本発明において用いる、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル[以下、「本変性シリコーンオイル」ということがある]について、以下説明する。
 シリコーン化合物は、シロキサン結合〔-Si-O-Si-〕が主鎖であって、側鎖としてメチル基〔CH-〕等の有機基がケイ素原子に結合した重合体化合物である。
 そして、直鎖状のシリコーン化合物がシリコーンオイルである。
 なお、変性シリコーンオイルは、直鎖状のジメチルシリコーン化合物〔Si(CH-O-[Si(CH-O-]m-Si(CH〕の一部のケイ素原子に有機基を導入した化合物である。
 この変性シリコーンオイルとしては、ポリシロキサンの側鎖の一部、ポリシロキサンのどちらか片方の末端、ポリシロキサンの両方の末端、又はポリシロキサンの側鎖の一部と両方の末端に、各種の有機基を導入したシリコーンオイルが存在する。
 この内、ポリシロキサンの側鎖の一部に各種の有機基を導入したシリコーンオイルが、側鎖型の変性シリコーンオイル〔Si(CH-O-[Si(CH-O-]m-[Si(CH)(有機基)-O-]n-Si(CH〕である。
 なお、この導入する有機基の性質によって、変性シリコーンオイルは、反応性シリコーンオイルと非反応性シリコーンオイルに分類される。
 この内、非反応性の変性シリコーンオイルとしては、その導入有機基により、ポリエーテル変性タイプ、アラルキル変性タイプ、フロロアルキル変性タイプ、長鎖アルキル変性タイプ、高級脂肪酸エステル変性タイプ、高級脂肪酸アミド変性タイプ、ポリエーテル・長鎖アルキル・アラルキル変性タイプ、長鎖アルキル・アラルキル変性タイプ、又はフェニル変性タイプ等を挙げることができる。
 そして、側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル〔Si(CH-O-[Si(CH-O-]m-[Si(CH)(有機基)-O-]n-Si(CH〕としては、その変性タイプが、例えば、ポリエーテル変性タイプのもの〔有機基:-R(CO)(CO)R’〕、ポリエーテル・長鎖アルキル・アラルキル変性タイプのもの〔有機基:-R(CO)(CO)R’、-C2a+1、-CH-CH(CH)-C〕、アラルキル変性タイプのもの〔有機基:-CH-CH(CH)-C〕、フロロアルキル変性タイプのもの〔有機基:-CHCHCF〕、長鎖アルキル変性タイプのもの〔有機基:-C2a+1〕、長鎖アルキル・アラルキル変性タイプのもの〔有機基:-C2a+1、-CH-CH(CH)-C〕、高級脂肪酸エステル変性タイプのもの〔有機基:-OCOR〕、高級脂肪酸アミド変性タイプのもの〔有機基:-RNHCOR’〕、又はフェニル変性タイプのもの〔有機基:-C〕等を挙げることができる。
 本発明においては、この側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル〔Si(CH-O-[Si(CH-O-]m-[Si(CH)(有機基)-O-]n-Si(CH〕[有機基:-R(CO)(CO)R’]を用いる。
 この側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルとしては、例えば、「KF-351A」、「KF-354L」、「KF-355A」、又は「KF-6011」[販売元はいずれの製品も信越化学工業株式会社(日本国)]等が市販されている。
(3)本変性シリコーンオイルの濃度
 本発明のエマルジョン溶液における本変性シリコーンオイルの濃度であるが、この本発明のエマルジョン溶液における本変性シリコーンオイルの濃度が0.01%(w/v)以上であることが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液とする上で好ましい。
 なお、この本発明のエマルジョン溶液における本変性シリコーンオイルの濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは0.05%(w/v)以上であり、特に好ましくは0.1%(w/v)以上である。
 また、この本発明のエマルジョン溶液に含有させる本変性シリコーンオイルの濃度であるが、前記の目的の上から、20%(w/v)以下であることが好ましい。
 なお、この本発明のエマルジョン溶液における本変性シリコーンオイルの濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは10%(w/v)以下であり、特に好ましくは5%(w/v)以下である。
3.リパーゼ賦活化剤
(1)リパーゼ賦活化剤
 本発明のエマルジョン溶液には、リパーゼ賦活化剤を含有させてもよい。
 本発明において、リパーゼ賦活化剤としては、リパーゼを賦活化することができる物質であればよく、特に限定はないが、例えば、胆汁酸又はその塩等を挙げることができる。
 この胆汁酸としては、例えば、デオキシコール酸、タウロデオキシコール酸、グリコデオキシコール酸、コール酸、リトコール酸、グリココール酸、タウロコール酸、ケノデオキシコール酸、ウルソデオキシコール酸、7-オキソリトコール酸、12-オキソリトコール酸、12-オキソケノデオキシコール酸、7-オキソデオキシコール酸、ヒオコール酸、ヒオデオキシコール酸、デヒドロコール酸、又はコール酸誘導体等を挙げることができる。
 また、この胆汁酸の塩としては、例えば、胆汁酸とアルカリ金属若しくはアルカリ土類金属との塩又はアンモニウム塩等を挙げることができる。
 このアルカリ金属としては、例えば、カリウム、ナトリウム又はリチウム等を挙げることができ、また、このアルカリ土類金属としては、例えば、マグネシウム又はカルシウム等を挙げることができる。
 リパーゼ賦活化剤としては、そのリパーゼ賦活化能、リパーゼ活性測定用基質よりなる界面の形成能力、水溶性、及びコストの点から、胆汁酸又はその塩が好ましい。
 そして、胆汁酸としては、リパーゼ活性測定用基質としてのDGGMRが安定な酸性域において溶解可能な点でタウロデオキシコール酸が好ましく、また、コストの点からデオキシコール酸が好ましい。
 この胆汁酸としては、タウロデオキシコール酸が特に好ましい。
 そして、胆汁酸の塩としては、胆汁酸とアルカリ金属の塩が好ましく、胆汁酸のカリウム塩又はナトリウム塩がより好ましく、胆汁酸のナトリウム塩が特に好ましい。
 よって、胆汁酸の塩としては、デオキシコール酸又はタウロデオキシコール酸のアルカリ金属(カリウム若しくはナトリウム等)の塩が好ましく、タウロデオキシコール酸のアルカリ金属(カリウム又はナトリウム等)の塩がより好ましく、タウロデオキシコール酸のナトリウム塩が特に好ましい。
(2)リパーゼ賦活化剤の濃度
 本発明のエマルジョン溶液において、リパーゼ賦活化剤は、その濃度が0.2%(w/v)以上の濃度であることが好ましい。
 なお、本発明のエマルジョン溶液において、このリパーゼ賦活化剤の好ましい濃度は、より好ましくは0.4%(w/v)以上であり、特に好ましくは1%(w/v)以上である。
 また、このリパーゼ賦活化剤の濃度であるが、本発明のエマルジョン溶液において、20%(w/v)以下であることが好ましい。
 なお、本発明のエマルジョン溶液において、このリパーゼ賦活化剤の好ましい濃度は、より好ましくは10%(w/v)以下であり、特に好ましくは5%(w/v)以下である。
4.リパーゼ活性化剤
(1)リパーゼ活性化剤
 本発明のエマルジョン溶液には、リパーゼ活性化剤を含有させてもよい。
 本発明において、リパーゼ活性化剤としては、リパーゼを活性化することができる物質であればよく、特に限定はないが、例えば、アルカリ土類金属イオン又はその塩等を挙げることができる。
 このアルカリ土類金属イオン又はその塩としては、例えば、ベリリウムイオン若しくはベリリウム塩、マグネシウムイオン若しくはマグネシウム塩、又はカルシウムイオン若しくはカルシウム塩等を挙げることができる。
 このカルシウム塩としては、例えば、水溶性のカルシウム塩等を挙げることができ、より具体的には、1価又は2価以上の陰イオンとカルシウムイオンよりなる塩であって水溶性であるもの等を挙げることができる。
 なお、この陰イオンとしては、例えば、ハロゲンイオン、有機化合物よりなる酸基、又はその他の無機化合物よりなる酸基等を挙げることができる。
 そして、ハロゲンイオンとしては、例えば、フッ素イオン、又は塩素イオン等を挙げることができる。
 有機化合物よりなる酸基としては、例えば、酢酸イオン、クエン酸イオン、又はグルコン酸イオン等を挙げることができる。
 その他の無機化合物よりなる酸基としては、例えば、硫酸イオン、リン酸イオン、又は炭酸イオン等を挙げることができる。
 このリパーゼ活性化剤としては、アルカリ土類金属イオン又はその塩が好ましい。
 なお、アルカリ土類金属イオン又はその塩としては、次の(i)及び(ii)の点から、カルシウムイオン又はカルシウム塩が好ましい。
 (i) リパーゼの活性化能。
 (ii) リパーゼの触媒作用を受けることによりリパーゼ活性測定用基質から遊離した脂肪酸は、リパーゼ活性測定用基質よりなる界面を壊すが、カルシウムイオン又はカルシウム塩はこの遊離した脂肪酸を捕捉し、当該界面が壊れるのを抑制することができる。
 そして、このカルシウム塩としては、陰イオンとカルシウムイオンよりなる塩であって水溶性であるものが好ましい。
 そして、この陰イオンとしては、ハロゲンイオン又は有機化合物よりなる酸基が好ましい。より具体的には、塩素イオン又は酢酸イオンが特に好ましい。
 よって、カルシウム塩としては、ハロゲンイオンのカルシウム塩又は有機化合物よりなる酸基のカルシウム塩が好ましく、より具体的には、塩化カルシウム又は酢酸カルシウムが特に好ましい。
(2)リパーゼ活性化剤の濃度
 本発明のエマルジョン溶液において、リパーゼ活性化剤は、その濃度が0.1mM以上の濃度であることが好ましい。
 なお、本発明のエマルジョン溶液において、このリパーゼ活性化剤の好ましい濃度は、より好ましくは1mM以上であり、特に好ましくは5mM以上である。
 また、このリパーゼ活性化剤の濃度であるが、本発明のエマルジョン溶液において、100mM以下であることが好ましい。
 なお、本発明のエマルジョン溶液において、このリパーゼ活性化剤の好ましい濃度は、より好ましくは50mM以下であり、特に好ましくは25mM以下である。
5.コリパーゼ
(1)コリパーゼ
 本発明のエマルジョン溶液には、コリパーゼを含有させてもよい。
 本発明において、コリパーゼとしては、コリパーゼの作用、機能又は活性を有しているものであればよく、特に限定はないが、例えば、ヒト、若しくはブタなどの哺乳類由来のコリパーゼ又は遺伝子工学等を用いて調製、修飾若しくは改変されたコリパーゼ等を挙げることができる。
 このコリパーゼとしては、ブタなどの哺乳類由来のコリパーゼが好ましく、ブタなどの哺乳類の膵臓由来のコリパーゼがより好ましい。
(2)コリパーゼの活性値
 本発明のエマルジョン溶液において、コリパーゼは、その活性値が15K単位/L(15K Unit/L)以上であることが好ましい。
 なお、本発明のエマルジョン溶液において、このコリパーゼの好ましい活性値は、より好ましくは150K単位/L以上であり、特に好ましくは750K単位/L以上である。
 また、このコリパーゼの活性値であるが、本発明のエマルジョン溶液において、7,500K単位/L以下であることが好ましい。
 なお、本発明のエマルジョン溶液において、このコリパーゼの好ましい活性値は、より好ましくは3,750K単位/L以下であり、特に好ましくは2,250K単位/L以下である。
 なお、本明細書及び図面におけるコリパーゼの各活性値(単位/L)は、ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]のブタ膵臓由来のコリパーゼの活性値の表示に基づくものである。[1mg/L=75K単位/L]
 なお、コリパーゼは、ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]、又はシグマ アルドリッチ ジャパン合同会社[日本国]等より市販されている。
6.水
 本発明のエマルジョン溶液には、水を含有させてもよい。
 すなわち、本発明のエマルジョン溶液は、水溶液であってよい。
 この本発明のエマルジョン溶液に含有させる水は、特に限定はないが、例えば、純水、蒸留水又は精製水等を挙げることができる。
7.pH
 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質としてのDGGMRは、pH4又はその付近のpHにおいて安定である。
 よって、本発明のエマルジョン溶液において、そのpHはpH4を中心とする一定の範囲内のものであることが好ましい。
 具体的には、本発明のエマルジョン溶液は、DGGMRの安定性の点から、pH2~pH7の範囲内にあることが好ましく、pH3~pH5の範囲内にあることがより好ましく、そして、pH3.5~pH4.5の範囲内にあることが特に好ましい。(前記のpH値はいずれも20℃での値である。)
8.緩衝剤
(1)緩衝剤
 本発明のエマルジョン溶液には、緩衝剤を含有させてもよい。
 本発明においては、本発明のエマルジョン溶液のpHを、前記7に記載のpH範囲に保つため、前記7記載のpH範囲に緩衝能を有する緩衝剤を本発明のエマルジョン溶液に適宜含有させてもよい。
 本発明のエマルジョン溶液に含有させることができる緩衝剤としては、特に限定はないが、例えば、酒石酸、コハク酸、マロン酸、若しくはクエン酸などの有機酸、又はグリシン、若しくはリン酸、或いはこれらの塩等を挙げることができる。
(2)緩衝剤の濃度
 本発明において、緩衝剤を本発明のエマルジョン溶液に含有させる場合の濃度は、特に限定はなく、設定するpHの範囲において緩衝能を発揮することができる濃度であればよい。
 例えば、本発明のエマルジョン溶液において、この緩衝剤の濃度は、好ましくは5mM以上であり、より好ましくは10mM以上であり、特に好ましくは30mM以上である。
 また、この緩衝剤の濃度は、本発明のエマルジョン溶液において、好ましくは500mM以下であり、より好ましくは100mM以下であり、特に好ましくは50mM以下である。
9.本発明のエマルジョン溶液のエマルジョンのミセル径
 先に記載した通り、リパーゼは、エマルジョン化したトリグリセライド基質の水と油との界面で最も効率よく作用し、このリパーゼの反応速度は分散した基質の表面積に関係するので、このリパーゼの活性測定には安定で均一なミセル粒子からなる基質の調製が重要であるとされている(非特許文献2参照。)。
 本発明において、リパーゼ活性測定用基質[DGGMR]を含有するエマルジョン溶液は、そのエマルジョンのミセル径(ミセル粒子径)が60~1,500nmの範囲にあると、リパーゼとの反応の速度が高く、また、このエマルジョンが安定であり、この本発明のエマルジョン溶液を長期間保存・使用できるので好ましい。
 この理由により、本発明のエマルジョン溶液は、そのエマルジョンのミセル径(ミセル粒子径)が70~1,000nmの範囲にあることがより好ましく、80~600nmの範囲にあることが更に好ましく、そして、100~200nmの範囲にあることが特に好ましい。
III.本発明のエマルジョン溶液の製造方法
1.総論
 本発明のエマルジョン溶液を製造する方法であるが、上記の「DGGMR、及び本変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなる」という構成の本発明のエマルジョン溶液を製造することができる方法であればよく、特に限定はない。
 なお、本発明のエマルジョン溶液を製造する方法としては、例えば、次の(a)及び(b)の工程よりなる方法等を挙げることができる。なお、本発明において、この「次の(a)及び(b)の工程よりなる方法」は、「次の(a)及び(b)の工程を含む方法」をも含むことを意味するものである。
 この(a)及び(b)の工程よりなる方法は、煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理、又は特別な装置若しくは器具などの物等を必要とせずに、本発明のエマルジョン溶液を製造することができるので、好ましい。
 (a) DGGMRと、本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程
 (b) 前記(a)の混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程
2.DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程
 前記1における(a)の工程、すなわち、「DGGMRと、本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程」について、以下、詳細に説明する。
(1)DGGMRと本変性シリコーンオイルの混合
 前記1の(a)の工程、すなわち、「DGGMRと、本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程」においては、リパーゼ活性測定用基質であるDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合する。
 すなわち、DGGMRと本変性シリコーンオイルとを直接混合する。
 なお、本変性シリコーンオイルは、1種類のものをDGGMRと混合してもよく、又は複数種類のものをDGGMRと混合してもよい。
(2)DGGMRの混合量
 リパーゼ活性測定用基質としてのDGGMRと、本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程において、このDGGMRを混合する量は、特に限定されない。
 なお、このDGGMRは、前記1の(b)の工程である「DGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程」における当該「DGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物の全部又は一部」と当該「水又は水溶液」との混合(以下、「第2混合」ということがある)の後に、その濃度が0.05mM以上であることが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液を製造する目的の上から好ましい。
 なお、この第2混合の後(第2混合後)、このDGGMRの好ましい濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは0.1mM以上であり、特に好ましくは0.2mM以上である。
 また、このDGGMRの濃度であるが、第2混合後、前記の目的の上から、2mM以下であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このDGGMRの好ましい濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは1mM以下であり、特に好ましくは0.8mM以下である。
 第2混合後のDGGMRの好ましい濃度は、以上述べた通りである。
 なお、前記1の(a)の「DGGMRと、本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程」における当該DGGMRと当該本変性シリコーンオイルとの混合(以下、「第1混合」ということがある)の時の当該DGGMR及び当該本変性シリコーンオイルそれぞれの混合量を、第2混合後にDGGMRの濃度が上記の通りになるように、考慮の上決めてもよく、このようにすることが、その製造手順の上から好ましい。
 なお、このDGGMRの混合量及び濃度であるが、例えば、次の(a)又は(b)などのように考えることができる。
(a)リパーゼ活性測定用基質と本変性シリコーンオイルの混合物の全部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量をWs[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、そしてリパーゼ活性測定用基質の分子量をMWsとした場合、第2混合後のリパーゼ活性測定用基質の濃度Cs[単位:mM]は次の式で表すことができる。
  Cs=(Ws×10)÷(Vf×MWs)
 なお、リパーゼ活性測定用基質であるDGGMRの分子量MWsは752.05であるので、上記の式は次のようになる。
  Cs=(Ws×10)÷(Vf×752.05)
 よって、この場合の第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質(DGGMR)の混合量Ws[単位:グラム]は次のように表すことができる。
  Ws=(Cs×Vf×MWs)÷10
  すなわち、Ws=(Cs×Vf×752.05)÷10
(b)リパーゼ活性測定用基質と本変性シリコーンオイルの混合物の一部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量をWs[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、リパーゼ活性測定用基質の分子量をMWsとし、そして第1混合時の混合物のA%(重量又は容量)を第2混合時に水又は水溶液と混合した場合、第2混合後のリパーゼ活性測定用基質の濃度Cs[単位:mM]は次の式で表すことができる。
  Cs=(Ws×10)×(A÷100)÷(Vf×MWs)=(Ws×A×10)÷(Vf×MWs)
 なお、リパーゼ活性測定用基質であるDGGMRの分子量MWsは752.05であるので、上記の式は次のようになる。
  Cs=(Ws×A×10)÷(Vf×752.05)
 よって、この場合の第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量Ws[単位:グラム]は次のように表すことができる。
  Ws=(Cs×Vf×MWs)÷(A×10
  すなわち、Ws=(Cs×Vf×752.05)÷(A×10
(3)本変性シリコーンオイルの混合量
 リパーゼ活性測定用基質としてのDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程において、この本変性シリコーンオイルを混合する量は、特に限定されない。
 なお、本変性シリコーンオイルは、第2混合の後に、その濃度が0.01%(w/v)以上であることが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液を製造する目的の上から好ましい。
 なお、第2混合の後(第2混合後)、この本変性シリコーンオイルの好ましい濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは0.05%(w/v)以上であり、特に好ましくは0.1%(w/v)以上である。
 また、この本変性シリコーンオイルの濃度であるが、第2混合後、前記の目的の上から、20%(w/v)以下であることが好ましい。
 なお、第2混合後、この本変性シリコーンオイルの好ましい濃度は、前記の目的の上から、より好ましくは10%(w/v)以下であり、特に好ましくは5%(w/v)以下である。
 第2混合後の本変性シリコーンオイルの好ましい濃度は、以上述べた通りである。
 なお、第1混合時の当該DGGMR及び当該本変性シリコーンオイルそれぞれの混合量を、第2混合後に本変性シリコーンオイルの濃度が上記の通りになるように、考慮の上決めてもよく、このようにすることが、その製造手順の上から好ましい。
 なお、この本変性シリコーンオイルの混合量及び濃度であるが、例えば、次の(a)又は(b)などのように考えることができる。
(a)リパーゼ活性測定用基質と本変性シリコーンオイルの混合物の全部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させる本変性シリコーンオイルの混合量をWp[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とした場合、第2混合後の本変性シリコーンオイルの濃度Cp[単位:%(w/v)]は次の式で表すことができる。
  Cp=(Wp×100)÷Vf
 よって、この場合の第1混合時に混合させる本変性シリコーンオイルの混合量Wp[単位:グラム]は次のように表すことができる。
  Wp=(Cp×Vf)÷100
(b)リパーゼ活性測定用基質と本変性シリコーンオイルの混合物の一部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させる本変性シリコーンオイルの混合量をWp[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、そして第1混合時の混合物のA%(重量又は容量)を第2混合時に水又は水溶液と混合した場合、第2混合後の本変性シリコーンオイルの濃度Cp[単位:%(w/v)]は次の式で表すことができる。
  Cp=(Wp×100)×(A÷100)÷Vf=(Wp×A)÷Vf
 よって、この場合の第1混合時に混合させる本変性シリコーンオイルの混合量Wp(単位:グラム)は次のように表すことができる。
  Wp=(Cp×Vf)÷A
(4)混合の方法
 DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程において、このDGGMRと本変性シリコーンオイルとを混合する方法は、このDGGMRと本変性シリコーンオイルが混合するのであればいずれの方法でもよく、特に限定はない。
 なお、当該混合においては、DGGMRをアルコールなどの有機溶媒及び本変性シリコーンオイルを含む溶液に混合したり、DGGMRを含有する液を滴々と滴下して本変性シリコーンオイルを含む溶液に混合したり、DGGMRを含有する液を本変性シリコーンオイルを含む溶液に噴射注入したり、DGGMR及び本変性シリコーンオイルを含有する溶液を強力なミキサーで高速に撹拌したり、又はDGGMR及び本変性シリコーンオイルを含有する溶液に超音波を掛ける処理を行ったり等の煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理や特別な装置等は必要なく、一般的なミキサーを用いて一般的な速度で撹拌する等、通常の方法で混合すればよく、これによりDGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物を調製することができる。
(5)混合時の温度
 DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程において、このDGGMRと本変性シリコーンオイルとを混合する時の温度は、特に限定されないが、用いる本変性シリコーンオイルの曇点付近の温度又はこの曇点付近の温度以下の温度においてこの工程を行うことが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液を製造する目的の上から好ましい。
 なお、曇点は、非イオン性の界面活性剤等の水溶液の温度を上げていった場合にその界面活性剤等のミセルが形成できなくなる温度であり、その水溶液が白濁する温度であって、その界面活性剤等毎に異なるものである。
 また、本発明において、本変性シリコーンオイルの曇点付近の温度としては、その本変性シリコーンオイルの曇点の温度のプラスマイナス(±)25℃の範囲を意味する。
 この本変性シリコーンオイルの曇点付近の温度としては、その本変性シリコーンオイルの曇点の温度のプラスマイナス(±)15℃の範囲が好ましく、プラスマイナス(±)10℃の範囲がより好ましく、プラスマイナス(±)5℃の範囲が特に好ましい。
 そして、本発明においては、上記の本変性シリコーンオイルの曇点付近の温度以下の温度において、DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程を行うことも好ましい。
 なお、例えば、本変性シリコーンオイルである、KF-351Aの曇点は52℃(自己実測値)であり、KF-355Aの曇点は67℃(自己実測値)であり、そして、KF-6011の曇点は64℃(自己実測値)である
 なお、KF-354Lは、曇点の測定に使用した恒温水槽の設定温度の上限の77℃においても曇点に至らなかったので、これの曇点は77℃超である。
 前記のDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程は、前記の目的の上から、用いる本変性シリコーンオイルの曇点の温度のプラスマイナス25℃の範囲の温度若しくはこの範囲の温度以下の温度で行うことが好ましく、用いる本変性シリコーンオイルの曇点の温度のプラスマイナス15℃の範囲の温度若しくはこの範囲の温度以下の温度で行うことがより好ましく、用いる本変性シリコーンオイルの曇点の温度のプラスマイナス10℃の範囲の温度若しくはこの範囲の温度以下の温度で行うことが更に好ましく、そして、用いる本変性シリコーンオイルの曇点の温度のプラスマイナス5℃の範囲の温度若しくはこの範囲の温度以下の温度で行うことが特に好ましい。
 また、本発明におけるDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程において、このDGGMRと本変性シリコーンオイルとを混合する時の温度であるが、この工程を、DGGMR、及び用いる本変性シリコーンオイルそれぞれの融点以上の温度において行うことが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液を製造する目的の上から好ましい。
 そして、このDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程は、前記の目的の上から、2℃以上で行うことがより好ましく、5℃以上で行うことが更に好ましく、10℃以上で行うことが特に好ましい。
(6)混合の時間
 DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程において、このDGGMRと本変性シリコーンオイルとを混合する時間であるが、このDGGMRと本変性シリコーンオイルとが均質に混合されればよく、特に限定されない。
 通常は、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液を製造する目的の上から、この混合を5分間又はそれ以上行うことが好ましい。なお、一般的には、5分間で十分である。
 また、このDGGMRと本変性シリコーンオイルとを混合する時間は、特に上限はなく、例えば数時間混合しても構わないのであるが、時間もコストであるという観点から考えると、念入りに行うとしても通常は10分間以内でよい。
3.DGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物を水又は水溶液と混合する工程
 前記1における(b)の工程、すなわち、『「DGGMRと、本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程」において調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程』について、以下、詳細に説明する。
(1)水又は水溶液
 前記1の(b)の工程、すなわち、「前記1の(a)の工程において調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程」において、この水又は水溶液については、特に限定はない。
 この水としては、特に限定はないが、例えば、純水、蒸留水又は精製水等を挙げることができる。
 また、この水溶液としては、水を溶媒とするものであればよく、特に限定はないが、例えば、リパーゼ賦活化剤、リパーゼ活性化剤、コリパーゼ、及び緩衝剤からなる群から選ばれる少なくとも一つのもの等を含有する水溶液等を挙げることができる。
(a)リパーゼ賦活化剤
 本発明において、前記の水溶液に含有させることができるリパーゼ賦活化剤としては、リパーゼを賦活化することができる物質であればよく、特に限定はないが、例えば、胆汁酸又はその塩等を挙げることができる。
 このリパーゼ賦活化剤としての胆汁酸又はその塩については、前記IIの3の「(1)リパーゼ賦活化剤」の項に記載した通りである。
 なお、このリパーゼ賦活化剤は、第2混合後、その濃度が0.2%(w/v)以上であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このリパーゼ賦活化剤の好ましい濃度は、より好ましくは0.4%(w/v)以上であり、特に好ましくは1%(w/v)以上である。
 また、このリパーゼ賦活化剤の濃度であるが、第2混合後、20%(w/v)以下であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このリパーゼ賦活化剤の好ましい濃度は、より好ましくは10%(w/v)以下であり、特に好ましくは5%(w/v)以下である。
 この第2混合後のリパーゼ賦活化剤の好ましい濃度は、以上述べた通りである。
 第2混合後のリパーゼ賦活化剤の濃度が上記の濃度となるよう、前記の「DGGMR及び本変性シリコーンオイルの混合物」と前記水溶液との混合比率等を勘案した上で、当該水溶液にリパーゼ賦活化剤を適当な濃度で含有させることが好ましい。
(b)リパーゼ活性化剤
 本発明において、前記の水溶液に含有させることができるリパーゼ活性化剤としては、リパーゼを活性化することができる物質であればよく、特に限定はないが、例えば、アルカリ土類金属イオン又はその塩等を挙げることができる。
 このリパーゼ活性化剤としてのアルカリ土類金属イオン又はその塩については、前記IIの4の「(1)リパーゼ活性化剤」の項に記載した通りである。
 なお、このリパーゼ活性化剤は、第2混合後、その濃度が0.1mM以上であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このリパーゼ活性化剤の好ましい濃度は、より好ましくは1mM以上であり、特に好ましくは5mM以上である。
 また、このリパーゼ活性化剤の濃度であるが、第2混合後、100mM以下であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このリパーゼ活性化剤の好ましい濃度は、より好ましくは50mM以下であり、特に好ましくは25mM以下である。
 この第2混合後のリパーゼ活性化剤の好ましい濃度は、以上述べた通りである。
 第2混合後のリパーゼ活性化剤の濃度が上記の濃度となるよう、前記の「DGGMR及び本変性シリコーンオイルの混合物」と前記水溶液との混合比率等を勘案した上で、当該水溶液にリパーゼ活性化剤を適当な濃度で含有させることが好ましい。
(c)コリパーゼ
 本発明において、水溶液に含有させることができるコリパーゼとしては、コリパーゼの作用、機能又は活性を有しているものであればよく、特に限定はない。
 このコリパーゼについては、前記IIの5の「(1)コリパーゼ」の項に記載した通りである。
 なお、このコリパーゼは、第2混合後、その活性値が15K単位/L(15K Unit/L)以上であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このコリパーゼの好ましい活性値は、より好ましくは150K単位/L以上であり、特に好ましくは750K単位/L以上である。
 また、このコリパーゼの活性値であるが、第2混合後、7,500K単位/L以下であることが好ましい。
 なお、第2混合後、このコリパーゼの好ましい活性値は、より好ましくは3,750K単位/L以下であり、特に好ましくは2,250K単位/L以下である。
 この第2混合後のコリパーゼの好ましい活性値は、以上述べた通りである。
 第2混合後のコリパーゼの活性値が上記の活性値となるよう、前記の「DGGMR及び本変性シリコーンオイルの混合物」と前記水溶液との混合比率等を勘案した上で、当該水溶液にコリパーゼを適当な活性値で含有させることが好ましい。
(d)pH
 本発明においてリパーゼ活性測定用基質として用いるDGGMRは、pH4又はその付近のpHにおいて安定である。
 よって、第2混合後、そのpHはpH4を中心とする一定の範囲内のものであることが好ましい。
 具体的には、第2混合後のpHは、DGGMRの安定性の点から、pH2~pH7の範囲内にあることが好ましく、pH3~pH5の範囲内にあることがより好ましく、そして、pH3.5~pH4.5の範囲内にあることが特に好ましい。(前記のpH値はいずれも20℃での値である。)
 この第2混合後のpHは、以上述べた通りである。
 第2混合後のpHが上記のpHとなるよう、前記水溶液のpHを適当なpHにすることが好ましい。
(e)緩衝剤
 本発明においては、第2混合後のpHを、前記(d)に記載のpH範囲に保つため、前記のpH範囲に緩衝能を有する緩衝剤を前記水溶液に適宜含有させてもよい。
 この緩衝剤については、前記IIの8の「(1)緩衝剤」の項に記載した通りである。
 この緩衝剤を含有する水溶液(すなわち、緩衝液)における緩衝剤の濃度は、特に限定はなく、設定するpHの範囲において緩衝能を発揮することができる濃度であればよい。
 例えば、第2混合後、この緩衝剤の濃度は、好ましくは5mM以上であり、より好ましくは10mM以上であり、特に好ましくは30mM以上である。
 また、この緩衝剤の濃度は、第2混合後、好ましくは500mM以下であり、より好ましくは100mM以下であり、特に好ましくは50mM以下である。
 この第2混合後の緩衝剤の好ましい濃度は、以上述べた通りである。
 第2混合後の緩衝剤の濃度が上記の濃度となるよう、前記の水溶液に緩衝剤を適当な濃度で含有させることが好ましい。
(2)DGGMR及び本変性シリコーンオイルの混合物の水又は水溶液との混合
 前記1における(b)の工程、すなわち、『「DGGMRと、本変性シリコーンオイルを混合し混合物を調製する工程」において調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程』においては、当該「DGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物」の全部又は一部を、当該「水又は水溶液」と混合する。
 ところで、リパーゼ活性測定用基質としてのDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程であるが、特に限定はなく、例えば、「DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」の全部又は一部を「水又は水溶液」へ添加し、混合するという態様でもよく、又は「水又は水溶液」を「DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」の全部又は一部へ添加し、混合するという態様でもよく、或いはその他の態様でもよい。
 なお、前記の「DGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物」と、前記の「水又は水溶液」との混合の比率は、特に限定はなく適宜定めればよい。
 なお、この「DGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物」と「水又は水溶液」との混合については、例えば、次の(i)及び(ii)のように考えることができる。
(i)DGGMRの濃度の面から
 前記2の「(2)DGGMRの混合量」の項に詳述した通り、第2混合後、DGGMRの好ましい濃度は、前記の目的の上から、好ましくは0.05mM以上であり、より好ましくは0.1mM以上であり、そして、特に好ましくは0.2mM以上である。
 また、これも前記2の「(2)DGGMRの混合量」の項に詳述した通り、第2混合後、DGGMRの好ましい濃度は、前記の目的の上から、好ましくは2mM以下であり、より好ましくは1mM以下であり、そして、特に好ましくは0.8mM以下である。
 そして、このDGGMRの好ましい濃度と、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量との関係は、例えば、次の(a)又は(b)などのように考えることができる。
(a)リパーゼ活性測定用基質と本変性シリコーンオイルの混合物の全部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量をWs[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、そしてリパーゼ活性測定用基質の分子量をMWsとした場合、第2混合後のリパーゼ活性測定用基質の濃度Cs[単位:mM]は次の式で表すことができる。
  Cs=(Ws×10)÷(Vf×MWs)
 なお、リパーゼ活性測定用基質であるDGGMRの分子量MWsは752.05であるので、上記の式は次のようになる。
  Cs=(Ws×10)÷(Vf×752.05)
 よって、この場合の第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量Vf[単位:mL]は、次のように表すことができる。
  Vf=(Ws×10)÷(Cs×MWs)
  すなわち、Vf=(Ws×10)÷(Cs×752.05)
 従って、上記の式により求めた容量Vf[単位:mL]になるよう、第2混合時に水又は水溶液を混合することにより、希望するリパーゼ活性測定用基質(DGGMR)の濃度のリパーゼ活性測定用基質溶液を得ることができる。
(b)リパーゼ活性測定用基質と本変性シリコーンオイルの混合物の一部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させるリパーゼ活性測定用基質の混合量をWs[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、リパーゼ活性測定用基質の分子量をMWsとし、そして第1混合時の混合物のA%(重量又は容量)を第2混合時に水又は水溶液と混合した場合、第2混合後のリパーゼ活性測定用基質の濃度Cs[単位:mM]は次の式で表すことができる。
  Cs=(Ws×10)×(A÷100)÷(Vf×MWs)=(Ws×A×10)÷(Vf×MWs)
 なお、リパーゼ活性測定用基質であるDGGMRの分子量MWsは752.05であるので、上記の式は次のようになる。
  Cs=(Ws×A×10)÷(Vf×752.05)
 よって、この場合の第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量Vf[単位:mL]は、次のように表すことができる。
  Vf=(Ws×A×10)÷(Cs×MWs)
  すなわち、Vf=(Ws×A×10)÷(Cs×752.05)
 従って、上記の式により求めた容量Vf[単位:mL]になるよう、第2混合時に水又は水溶液を混合することにより、希望するリパーゼ活性測定用基質(DGGMR)の濃度のリパーゼ活性測定用基質溶液を得ることができる。
(ii)本変性シリコーンオイルの濃度の面から
 前記2の「(3)本変性シリコーンオイルの混合量」の項に詳述した通り、第2混合後、本変性シリコーンオイルの好ましい濃度は、前記の目的の上から、好ましくは0.01%(w/v)以上であり、より好ましくは0.05%(w/v)以上であり、そして、特に好ましくは0.1%(w/v)以上である。
 また、これも前記2の「(3)本変性シリコーンオイルの混合量」の項に詳述した通り、第2混合後、本変性シリコーンオイルの好ましい濃度は、前記の目的の上から、好ましくは20%(w/v)以下であり、より好ましくは10%(w/v)以下であり、そして、特に好ましくは5%(w/v)以下である。
 そして、この本変性シリコーンオイルの好ましい濃度と、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量との関係は、例えば、次の(a)又は(b)などのように考えることができる。
(a)リパーゼ活性測定用基質と本変性シリコーンオイルの混合物の全部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させる本変性シリコーンオイルの混合量をWp[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とした場合、第2混合後の本変性シリコーンオイルの濃度Cp[単位:%(w/v)]は次の式で表すことができる。
  Cp=(Wp×100)÷Vf
 よって、この場合の第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量Vf[単位:mL]は、次のように表すことができる。
  Vf=(Wp×100)÷Cp
 従って、上記の式により求めた容量Vf[単位:mL]になるよう、第2混合時に水又は水溶液を混合することにより、希望する本変性シリコーンオイルの濃度のリパーゼ活性測定用基質溶液を得ることができる。
(b)リパーゼ活性測定用基質と本変性シリコーンオイルの混合物の一部を水又は水溶液と混合する場合
 第1混合時に混合させる本変性シリコーンオイルの混合量をWp[単位:グラム]とし、第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量(メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]とし、そして第1混合時の混合物のA%(重量又は容量)を第2混合時に水又は水溶液と混合した場合、第2混合後の本変性シリコーンオイルの濃度Cp[単位:%(w/v)]は次の式で表すことができる。
  Cp=(Wp×100)×(A÷100)÷Vf=(Wp×A)÷Vf
 よって、この場合の第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量Vf[単位:mL]は、次のように表すことができる。
  Vf=(Wp×A)÷Cp
 従って、上記の式により求めた容量Vf[単位:mL]になるよう、第2混合時に水又は水溶液を混合することにより、希望する本変性シリコーンオイルの濃度のリパーゼ活性測定用基質溶液を得ることができる。
 なお、このリパーゼ活性測定用基質としてのDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程は、二段階以上の複数の段階(ステップ)によって行ってもよい。
 なお、このように、この工程を複数の段階(ステップ)によって行うことが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液を製造する目的の上から好ましい。
 この工程を複数の段階によって行う方法であるが、これは当該工程を複数の段階によって行うものであればよく、特に限定はないが、例えば、次の[A]及び[B]の段階によって行うもの等を挙げることができる。
[A] DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部を、一定量の水又は水溶液と混合する段階
[B] 前記[A]の段階における当該混合物(DGGMRと本変性シリコーンオイルとの混合物)と水又は水溶液との混合後の混合液に、更に一定量の水又は水溶液を混合する段階
 なお、この場合、前記[A]の段階において「DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部」と混合する「水又は水溶液」の容量(一定量)をVa[単位:mL]とし、前記[B]の段階において当該混合液に「更に一定量の水又は水溶液」を混合した後の最終的な容量[すなわち、前記の第2混合時に水又は水溶液を混合した後の最終的な容量](メスアップ後の容量等)をVf[単位:mL]としたとき、VaによりVfを除した比の値(Vf/Va)は、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液を製造する目的の上から、1~500の範囲にあることが好ましい。
 すなわち、VaによりVfを除した比の値(Vf/Va)が1~500の範囲内になるように、前記のVa及びVfの値(容量)を選択することが、前記の目的の上から好ましい。
 なお、同様に、前記の目的の上から、VaによりVfを除した比の値(Vf/Va)は、2~200の範囲にあることがより好ましく、5~100の範囲にあることが特に好ましい。
 すなわち、前記の目的の上から、VaによりVfを除した比の値(Vf/Va)が、2~200の範囲内になるように前記のVa及びVfの値(容量)を選択することがより好ましく、5~100の範囲内になるように前記のVa及びVfの値(容量)を選択することが特に好ましい。
 なお、前記[A]の「DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部を、一定量の水又は水溶液と混合する段階」であるが、特に限定はなく、例えば、「DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」の全部又は一部を一定量の「水又は水溶液」へ添加し、混合するという態様でもよく、又は一定量の「水又は水溶液」を「DGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」の全部又は一部へ添加し、混合するという態様でもよく、或いはその他の態様でもよい。
 また、前記[B]の「前記[A]の段階における当該混合物(DGGMRと本変性シリコーンオイルとの混合物)と水又は水溶液との混合後の混合液に、更に一定量の水又は水溶液を混合する段階」であるが、特に限定はなく、例えば、「前記[A]の段階における当該混合物(DGGMRと本変性シリコーンオイルとの混合物)と水又は水溶液との混合後の混合液」を一定量の「水又は水溶液」へ添加し、混合するという態様でもよく、又は一定量の「水又は水溶液」を「前記[A]の段階における当該混合物(DGGMRと本変性シリコーンオイルとの混合物)と水又は水溶液との混合後の混合液」へ添加し、混合するという態様でもよく、或いはその他の態様でもよい。
(3)混合の方法
 リパーゼ活性測定用基質としてのDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程において、当該混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する方法は、当該混合物と、当該水又は水溶液が混合するのであればいずれの方法でもよく、特に限定はない。
 なお、当該混合においては、リパーゼ活性測定用基質をアルコールなどの有機溶媒を含む溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を滴々と滴下して溶液に混合したり、リパーゼ活性測定用基質含有液を溶液に噴射注入したり、リパーゼ活性測定用基質溶液を強力なミキサーで高速に撹拌したり、又はリパーゼ活性測定用基質溶液に超音波を掛ける処理を行ったり等の煩雑な若しくは熟練を要する等の特別な処理や特別な装置等は必要なく、一般的なミキサーを用いて一般的な速度で撹拌する等、通常の方法で混合すればよく、これにより、リパーゼ活性測定用基質としてのDGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合することができる。
(4)混合時の温度
 リパーゼ活性測定用基質としてのDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程において、当該混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する時の温度は、特に限定されないが、用いる本変性シリコーンオイルの曇点以下の温度においてこの工程を行うことが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液を製造する目的の上から好ましい。
 そして、このDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程は、前記の目的の上から、用いる本変性シリコーンオイルの曇点より10℃低い温度以下で行うことがより好ましく、25℃以下で行うことが特に好ましい。
 また、このDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程において、このDGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物の全部又は一部を、水又は水溶液とを混合する時の温度であるが、この工程を、DGGMR、及び用いる本変性シリコーンオイルそれぞれの融点以上の温度において行うことが、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン溶液を製造する目的の上から好ましい。
 そして、このDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程は、前記の目的の上から、10℃以上で行うことがより好ましく、15℃以上で行うことが特に好ましい。
(5)混合の時間
 リパーゼ活性測定用基質としてのDGGMRと本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する工程において、当該混合物の全部又は一部を、水又は水溶液と混合する時間であるが、このDGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物と、この水又は水溶液とが、均質に混合されればよく、特に限定されない。
 通常は、安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化したリパーゼ活性測定用基質の溶液を製造する目的の上から、この混合を5分間又はそれ以上行うことが好ましい。なお、一般的には、5分間で十分である。
 また、このDGGMRと本変性シリコーンオイルの混合物と、水又は水溶液とを混合する時間は、特に上限はなく、例えば数時間混合しても構わないのであるが、時間もコストであるという観点から考えると、念入りに行うとしても通常は10分間以内でよい。
〔2〕本発明のリパーゼ活性測定試薬
I.総論
 本発明のリパーゼ活性測定試薬は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル[DGGMR]、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなるリパーゼ活性測定用基質溶液を含むことを特徴とするものである。(なお、エマルジョン溶液及びリパーゼ活性測定用基質溶液の詳細については、前記の「〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液」の項に記載した通りである。)
 そして、本発明のリパーゼ活性測定試薬は、上記の構成により、その保存安定性が優れたものである。
II.リパーゼ活性測定試薬
1.リパーゼ活性測定試薬の構成等
 本発明のリパーゼ活性測定試薬は、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液のみからなるものであってもよく、又は本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液と他の構成試薬からなるもの(試薬キット)であってもよい。
 なお、次の(a)及び(b)の理由から、本発明のリパーゼ活性測定試薬としては、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液と他の構成試薬からなる試薬キットであることが好ましい。
(a) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質[DGGMR]はpH4又はその付近のpHにおいて安定であるのに対して、リパーゼはpH8又はその付近のpHにおいてその活性は至適であり、それぞれ適するpH域が異なっている。
(b) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質[DGGMR]、コリパーゼ、及びリパーゼ賦活化剤としての胆汁酸又はその塩を、一つの試薬に共存させると、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質[DGGMR]の安定性が良くなくなる。
 よって、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液と他の構成試薬からなる試薬キットであることが好ましく、この場合、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質[DGGMR]を含む試薬のpHはpH4又はその付近のpHとし、これと組み合わせる他の構成試薬のうち少なくとも一つの試薬のpHはpH8又はそれ以上とすることが好ましく、また、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質[DGGMR]、コリパーゼ、及びリパーゼ賦活化剤としての胆汁酸又はその塩を、一つの試薬に共存させないことが好ましい。
 この本発明のリパーゼ活性測定試薬としては、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液と一つの他の構成試薬からなる2試薬系の試薬キットであることが好ましい。
 この場合、当該他の構成試薬を第1試薬とし、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を第2試薬として用いるものであることがより好ましい。
 そして、この場合に、当該他の構成試薬のpHはpH8又はそれ以上とし、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液のpHはpH4又はその付近のpHとすることが更に好ましい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液に、「コリパーゼ」、及び「リパーゼ賦活化剤としての胆汁酸又はその塩」の両方を含有させることはせず、「コリパーゼ」、及び「リパーゼ賦活化剤としての胆汁酸又はその塩」の少なくとも一方は当該他の構成試薬に含有させることが更に好ましい。
 本発明のリパーゼ活性測定試薬は、終点法(エンドポイント法)により測定を行うものであってもよく、又は反応速度法(レート法)により測定を行うものであってもよく、適宜選択すればよいが、反応速度法(レート法)によるものが好ましい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定試薬においては、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質[DGGMR]と試料を接触させ、反応させることにより、リパーゼが触媒する加水分解反応によって、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロール及びグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルが生成するが、このグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルは不安定であって、容易に自然に加水分解されて6’-メチルレゾルフィン(λmax:580nm)を生成する。
 よって、この生成する6’-メチルレゾルフィンの増加を580nm又はその近辺の波長の吸光度等を測ることによって測定し、試料中に含まれていたリパーゼの活性値を求めればよい。なお、この場合、一波長法でもよく、又は二波長法でもよい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定試薬において、測定反応時の温度は、30℃又は37℃等測定反応が進行しかつ測定反応に係わる酵素等の反応成分が熱により失活、変性又は変質しない範囲内の温度を設定すればよい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定試薬において、測定反応の開始方法は、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質[DGGMR]等を加えることにより行う方法、又は試料を加えることにより行う方法等のいずれの方法のものでもよい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定試薬において、その測定は、用手法により行うものであってもよく、又は自動分析装置等の装置を用いて行うものであってもよい。
 また、本発明のリパーゼ活性測定試薬は、その構成試薬の全て又は一部が液状試薬であってよい。
 なお、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液は、そのもの単独にて、販売し、又は試料中のリパーゼ活性の測定に使用することができる。
 また、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液は、前記の他の構成試薬又はそれ以外の試薬と組み合わせて、販売し、又は試料中のリパーゼ活性の測定に使用することもできる。
 前記の他の構成試薬、又はそれ以外の試薬としては、例えば、緩衝液、試料希釈液、試薬希釈液、校正(キャリブレーション)を行うための物質を含有する試薬、又は精度管理を行うための物質を含有する試薬等を挙げることができる。
2.本発明のリパーゼ活性の測定試薬の具体例
 本発明のリパーゼ活性測定試薬の具体例を以下挙げる。
(1)例1
(a)第1試薬 [下記の試薬成分をそれぞれ記載の濃度で含む水溶液;pH8.3(20℃)]
 デオキシコール酸ナトリウム [リパーゼ賦活化剤] 2%(w/v)
 塩化カルシウム [リパーゼ活性化剤] 5mM
 コリパーゼ (ブタ膵臓由来;ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]) 375K単位/L(5mg/L)
 Bicine [緩衝剤] 40mM
(b)第2試薬(本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液) [下記の試薬成分をそれぞれ記載の濃度で含む水溶液;pH4.0(20℃)]
 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕 (ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]) [リパーゼ活性測定用基質] 0.3mM
 側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル 0.3%(w/v)
 L-酒石酸 [緩衝剤] 40mM
(2)例2
(a)第1試薬 [下記の試薬成分をそれぞれ記載の濃度で含む水溶液;pH8.4(20℃)]
 タウロデオキシコール酸ナトリウム [リパーゼ賦活化剤] 2%(w/v)
 デオキシコール酸ナトリウム [リパーゼ賦活化剤] 0.2%(w/v)
 塩化カルシウム [リパーゼ活性化剤] 5mM
 コリパーゼ (ブタ膵臓由来;ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]) 150K単位/L(2mg/L)
 トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン 〔Tris〕 [緩衝剤] 40mM
(b)第2試薬(本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液) [下記の試薬成分をそれぞれ記載の濃度で含む水溶液]
 1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕 (ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]) [リパーゼ活性測定用基質] 0.6mM
 側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイル 0.3%(w/v)
 タウロデオキシコール酸ナトリウム [リパーゼ賦活化剤] 2%(w/v)
〔3〕本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法
I.総論
 本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル[DGGMR]、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなるリパーゼ活性測定用基質溶液を使用して、試料中のリパーゼ活性を測定することを特徴とするものである。(なお、エマルジョン溶液及びリパーゼ活性測定用基質溶液の詳細については、前記の「〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液」の項に記載した通りである。また、リパーゼ活性測定試薬の詳細については、前記の「〔2〕本発明のリパーゼ活性測定試薬」の項に記載した通りである。)
 そして、本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法は、上記の構成により、長期間正確な測定値を得ることができる方法である。
II.リパーゼ活性測定方法
1.試料中のリパーゼ活性の測定の方法
 本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法により、試料中のリパーゼ活性の測定を行う場合、その測定は終点法(エンドポイント法)により測定を行うものであってもよく、又は反応速度法(レート法)により測定を行うものであってもよく、適宜選択すればよいが、反応速度法(レート法)によるものが好ましい。
 また、本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法により、試料中のリパーゼ活性の測定を行う場合、その測定は、一段階のステップにより行う1ステップ法、又は二段階若しくはそれ以上の多段階のステップにより行う多ステップ法を適宜選択して測定を行えばよい。
 なお、試料中のリパーゼ活性の測定に使用するリパーゼ活性測定試薬が、第1試薬、第2試薬、及び他の試薬(一つ又は二つ以上の試薬)よりなる場合、すなわち3以上の試薬よりなる場合は、これらの試薬を使用して測定を行うのに必要な数の段階(必要に応じ二段階又は三段階以上の段階)を経て測定反応を行わせ、試料中のリパーゼ活性の測定を行えばよい。
 また、本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法においては、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質[DGGMR]と試料を接触させ、反応させることにより、リパーゼが触媒する加水分解反応によって、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロール及びグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルが生成するが、このグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルは不安定であって、容易に自然に加水分解されて6’-メチルレゾルフィン(λmax:580nm)を生成する。
 よって、この生成する6’-メチルレゾルフィンの増加を580nm又はその近辺の波長の吸光度等を測ることによって測定し、試料中に含まれていたリパーゼの活性値を求めればよい。なお、この場合、一波長法でもよく、又は二波長法でもよい。
 なお、測定した吸光度(若しくは透過率)、又は吸光度(若しくは透過率)の変化量より、試料に含まれていたリパーゼの活性値を算出することは、6’-メチルレゾルフィンのモル吸光係数を基に測定した吸光度(若しくは透過率)より算出する方法、又はリパーゼ活性値が分かっている標準物質(標準液、若しくは標準血清等)の吸光度(若しくは透過率)と対比して算出する方法等の方法を適宜選択して行えばよい。
 また、試料を測定して得た吸光度(若しくは透過率)より試薬盲検(試薬ブランク)を差し引いて、試料に含まれていたリパーゼの活性値を算出することが好ましい。
 また、本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法において、その測定反応時の温度は、30℃又は37℃等測定反応が進行しかつ測定反応に係わる酵素等の反応成分が熱により失活、変性又は変質しない範囲内の温度を設定すればよい。
 また、本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法において、その測定反応の開始方法は、本発明におけるリパーゼ活性測定用基質等を加えることにより行う方法、又は試料を加えることにより行う方法等のいずれの方法のものでもよい。
 また、本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法において、その測定は、用手法により行うものであってもよく、又は自動分析装置等の装置を用いて行うものであってもよい。
2.試料中のリパーゼ活性の測定方法の具体例
 本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法の具体例を以下挙げる。
(1)リパーゼ活性測定試薬
(a)第1試薬
 前記の〔2〕のIIの2の(1)の(a)の第1試薬を、この測定方法の具体例における第1試薬として用いた。
(b)第2試薬
 前記の〔2〕のIIの2の(1)の(b)の第2試薬を、この測定方法の具体例における第2試薬として用いた。
(2)試料
 ヒトの血清を試料として用いた。
(3)測定
(a)第1段階
 前記(2)の試料と前記(1)の(a)の第1試薬を混合して、混合液を調製する。
 この混合する試料及び第1試薬それぞれの量は、第2試薬の量、試料に含まれるリパーゼの活性値、及び他の条件に応じて適宜決めればよい。
 なお、一般的には、例えば、試料の量は0.5~100μL、第1試薬の量は20~1,000μLの範囲のもの等とすることが好ましい。
 この混合液の調製後、インキュベートを行う。
 このインキュベートの時間は、特に制限はないのであるが、通常は20分以内であることが好ましく、10分以内であることがより好ましく、5分以内であることが特に好ましい。
 また、インキュベートする際の温度は、前記の混合液が凍結する温度より上の温度であればよい。
 なお、一般的に測定反応時の温度は、高い程、反応速度が高くなるので好ましい。
 しかし、温度が高すぎると測定反応に係わる酵素等の成分が変性、失活してしまうので、インキュベートする際の温度は、測定反応に係わる酵素等の成分が変性、失活する温度未満の温度とする必要がある。
 このインキュベートする際の温度は、通常は2~70℃であるが、20~37℃が好ましく、30~37℃がより好ましい。
 なお、測定反応に係わる酵素等の成分が耐熱性酵素など耐熱性の成分であれば更に高温でもよい。
 この試料と第1試薬の混合液の調製及びインキュベートにより、試料に含まれていたリパーゼと、第1試薬に含まれる試薬成分とが接触し、これらの成分によるリパーゼの賦活化や活性化等が行われる。
(b)第2段階
 前記の第1段階で調製した「試料と第1試薬の混合液」に、前記(1)の(b)の第2試薬を混合する。これを最終反応液とする。
 この混合する第2試薬の量は、試料の量、第1試薬の量、試料に含まれるリパーゼの活性値、使用する分析装置の仕様等、及び他の条件に応じて適宜決めればよい。
 なお、一般的には、例えば、第2試薬の量は10~1,000μLの範囲のもの等とすることが好ましい。
 この最終反応液の調製後、インキュベートを行う。
 このインキュベートの時間は、特に制限はないのであるが、通常は20分以内であることが好ましく、10分以内であることがより好ましく、5分以内であることが特に好ましい。
 また、インキュベートする際の温度は、前記の最終反応液が凍結する温度より上の温度であればよい。
 なお、一般的に測定反応時の温度は、高い程、反応速度が高くなるので好ましい。
 しかし、温度が高すぎると測定反応に係わる酵素等の成分が変性、失活してしまうので、インキュベートする際の温度は、測定反応に係わる酵素等の成分が変性、失活する温度未満の温度とする必要がある。
 このインキュベートする際の温度は、通常は2~70℃であるが、20~37℃が好ましく、30~37℃がより好ましい。
 なお、測定反応に係わる酵素等の成分が耐熱性酵素など耐熱性の成分であれば更に高温でもよい。
 この最終反応液の調製及びインキュベートにより、前記の第1段階におけるリパーゼの賦活化や活性化等に引き続き、この第2段階における測定反応が開始し、試料に含まれていたリパーゼの活性測定反応が進められる。
 すなわち、本発明により安定で均一なミセル粒子からなるエマルジョン化した基質溶液となっている第2試薬(本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液)が、この第2段階において試料に含まれていたリパーゼと接触することにより、リパーゼが触媒する加水分解反応によって、本発明のリパーゼ活性測定用基質[DGGMR]より1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロール及びグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルが生成する。
 そして、このグルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルは不安定であるので、容易に自然に加水分解されて、6’-メチルレゾルフィン(λmax:580nm)を生成する。
 この生成した6’-メチルレゾルフィンは、その極大吸収波長(λmax)が580nmであるので、この6’-メチルレゾルフィンに由来する最終反応液の吸光度(又は透過率)を、580nm又はその近辺の波長の吸光度(又は透過率)を測ることによって測定する。
 次に、測定した吸光度(若しくは透過率)、又は吸光度(若しくは透過率)の変化量より、試料に含まれていたリパーゼの活性値を算出する。
 なお、これは、6’-メチルレゾルフィンのモル吸光係数を基に測定した吸光度(若しくは透過率)より算出する方法、又はリパーゼ活性値が分かっている標準物質(標準液、若しくは標準血清等)の吸光度(若しくは透過率)と対比して算出する方法等の方法を適宜選択して行う。
 なお、上記の試料に含まれていたリパーゼの活性値の算出は、試料を測定して得た最終反応液の吸光度(若しくは透過率)より試薬盲検(試薬ブランク)を差し引いて求めた吸光度差(ΔAbs.)を用いて行うことが好ましい。
〔4〕本発明のエマルジョン溶液
 本発明のエマルジョン溶液は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル[DGGMR]、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるものである。(なお、このエマルジョン溶液及びリパーゼ活性測定用基質溶液の詳細については、前記の「〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液」の項に記載した通りである。また、リパーゼ活性測定試薬の詳細については、前記の「〔2〕本発明のリパーゼ活性測定試薬」の項に記載した通りである。また、試料中のリパーゼ活性の測定方法の詳細については、前記の「〔3〕本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法」の項に記載した通りである。)
 そして、本発明のエマルジョン溶液は、上記の構成により、その保存安定性が優れたものである。
〔5〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の安定化方法
 本発明の1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル[DGGMR]をリパーゼ活性測定用基質として用いるリパーゼ活性測定用基質溶液の安定化方法は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルと共に、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを含有させることを特徴とするものである。(なお、エマルジョン溶液及びリパーゼ活性測定用基質溶液の詳細については、前記の「〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液」の項に記載した通りである。また、リパーゼ活性測定試薬の詳細については、前記の「〔2〕本発明のリパーゼ活性測定試薬」の項に記載した通りである。また、試料中のリパーゼ活性の測定方法の詳細については、前記の「〔3〕本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法」の項に記載した通りである。)
 そして、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の安定化方法は、上記の構成により、リパーゼ活性測定用基質溶液の保存安定性を改善することができる方法である。
〔6〕本発明のエマルジョン溶液の安定化方法
 本発明の1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル[DGGMR]よりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液の安定化方法は、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルと共に、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを含有させることを特徴とするものである。(なお、エマルジョン溶液及びリパーゼ活性測定用基質溶液の詳細については、前記の「〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液」の項に記載した通りである。また、リパーゼ活性測定試薬の詳細については、前記の「〔2〕本発明のリパーゼ活性測定試薬」の項に記載した通りである。また、試料中のリパーゼ活性の測定方法の詳細については、前記の「〔3〕本発明の試料中のリパーゼ活性の測定方法」の項に記載した通りである。)
 そして、本発明のエマルジョン溶液の安定化方法は、上記の構成により、当該エマルジョン溶液の保存安定性を改善することができる方法である。
 以下、実施例により本発明をより具体的に詳述するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
〔実施例1〕(本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の効果の確認-1)
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における保存安定性の効果を確認した。
1.試薬の調製
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液(本発明のエマルジョン溶液よりなることを特徴とするリパーゼ活性測定用基質溶液)を調製した。
 また、対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液を調製した。
 更に、緩衝液を調製した。
〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の調製
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])の0.09グラム[g]を、ビーカー(容量:10mL)に量り取った。
(2) 次に、側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)である、KF-351A(販売元:信越化学工業株式会社[日本国])の4.0グラム[g]を量り取り、これを前記(1)のビーカーに添加した。
(3) 前記(2)の添加後、このビーカーを室温(25℃)において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルであるKF-351Aとを混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の2%(w/v)の濃度のタウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の2%(w/v)のタウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物)と一定量の2%(w/v)タウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液との混合後の混合液」に、更に一定量の2%(w/v)タウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液である「リパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-351A)」を調製した。
 なお、このリパーゼ活性測定用基質溶液において、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.6mMであり、本変性シリコーンオイル(KF-351A)の濃度は2.0%(w/v)である。
 また、このリパーゼ活性測定用基質溶液に、濃度勾配や強い濁り等は見られず、均質に混合されていることを目視にて確認した。
〔2〕対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液の調製
(1) リパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])の0.09グラム[g]を、ビーカー(容量:10mL)に量り取った。
(2) 次に、非イオン性界面活性剤であるNIKKOL BT-7 [ポリオキシエチレン(7)2級アルキルエーテル] (販売元:日光ケミカルズ株式会社[日本国])の1.0グラム[g]を量り取り、これを前記(1)のビーカーに添加した。
(3) 前記(2)の添加後、このビーカーを室温(25℃)において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と前記の界面活性剤を混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤の混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤の混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の2%(w/v)の濃度のタウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤を混合して
調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の2%(w/v)のタウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と界面活性剤の混合物)と一定量の2%(w/v)タウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液との混合後の混合液」に、更に一定量の2%(w/v)タウロデオキシコール酸ナトリウム水溶液を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液である「リパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、界面活性剤:NIKKOL BT-7)」を調製した。
 なお、この対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液において、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.6mMであり、界面活性剤の濃度は0.5%(w/v)である。
 また、このリパーゼ活性測定用基質溶液に、濃度勾配や強い濁り等は見られず、均質に混合されていることを目視にて確認した。
〔3〕緩衝液の調製
 下記の試薬成分を記載の濃度になるように純水に溶解し、pHをpH8.4(20℃)に調整して、緩衝液を調製した。
 Bicine [緩衝剤] 40mM
2.試薬の保存
(1) 前記1の〔1〕において調製した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を、25℃で暗所に30日間保存した。
(2) 前記1の〔2〕において調製した対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液を、25℃で暗所に30日間保存した。
3.基質の分解量の測定
(1) 前記1の〔3〕において調製した調製当日の緩衝液を第1試薬とし、前記2の(1)において25℃(暗所)にて30日間保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を第2試薬とした。
 この第1試薬の1,600μLに、この第2試薬の960μLを添加し、混合して、混合液とした。
(2) 次に、前記(1)において得た混合液の吸収曲線を測定した。
 なお、この吸収曲線の測定は、DU7500型分光光度計(販売元:ベックマンコールター株式会社[日本国])を使用して行った。
(3) また、前記(1)における第2試薬を本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液から、前記2の(2)において25℃(暗所)にて30日間保存した対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液に替えること以外は、前記(1)~(2)の記載の通りに操作を行い、第2試薬として前記2の(2)の対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液を用いた場合の混合液の吸収曲線を測定した。
4.測定結果
 前記3において測定した第2試薬として前記2の(1)の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を用いた場合の混合液の吸収曲線を図1に示した。
 また、前記3において測定した第2試薬として前記2の(2)の対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液を用いた場合の混合液の吸収曲線を図2に示した。
 なお、この図1及び図2それぞれにおいて、横軸は「波長」(単位:nm)を示し、そして縦軸は「吸光度」(単位:Abs)を示す。
5.考察
(1) DGGMRよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液、及びDGGMRをリパーゼ活性測定用基質として用いるリパーゼ活性測定用基質溶液においては、その保存中DGGMRは徐々に加水分解される。
 そして、このDGGMRの分解により、6’-メチルレゾルフィンが最終的に生成する。
 ところで、この6’-メチルレゾルフィンは580nmに吸収極大を有する。
 そこで、図1及び図2それぞれの吸収曲線において、6’-メチルレゾルフィンの生成を示す580nmのピークの高さ(増加度)より、6’-メチルレゾルフィンの生成量、すなわちDGGMRの分解量(加水分解量)を求めた。
(2) その結果、図1、すなわち本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を25℃(暗所)にて30日間保存した場合のDGGMRの分解量は4.8%であった。
 これに対して、図2、すなわち対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液を25℃(暗所)にて30日間保存した場合のDGGMRの分解量は8.9%であった。
(3) つまり、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の前記保存時におけるDGGMRの分解量は、対照例のリパーゼ活性測定用基質溶液の前記保存時におけるDGGMRの分解量の54%にしかすぎないことが分かる。
(4) このことより、本発明は、DGGMRの分解を効果的に抑制することができ、保存安定性が優れ、そして長期間正確な測定値を得ることができるものであることが確かめられた。
〔実施例2〕(本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の効果の確認-2)
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における保存安定性の効果を再度確認した。
1.試薬
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液(本発明のエマルジョン溶液よりなることを特徴とするリパーゼ活性測定用基質溶液)を調製した。
 そして、対照として、市販試薬の基質液を用いた。
 また、緩衝液を調製した。
〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の調製
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])の0.045グラム[g]を、ビーカー(容量:10mL)に量り取った。
(2) 次に、側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)である、KF-355A(販売元:信越化学工業株式会社[日本国])の0.6グラム[g]を量り取り、これを前記(1)のビーカーに添加した。
(3) 前記(2)の添加後、このビーカーを67℃において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルであるKF-355Aとを混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物)と一定量の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]との混合後の混合液」に、更に一定量の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液である「リパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-355A)」を調製した。
 なお、このリパーゼ活性測定用基質溶液において、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.3mMであり、本変性シリコーンオイル(KF-355A)の濃度は0.3%(w/v)である。
 また、このリパーゼ活性測定用基質溶液に、濃度勾配や強い濁り等は見られず、均質に混合されていることを目視にて確認した。
〔2〕対照市販試薬
 市販のリパーゼ活性測定試薬(リパーゼ活性測定試薬キット)である「リキテック リパーゼ カラー II」(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、対照として用いた。
 なお、この「リキテック リパーゼ カラー II」[以下、「対照市販試薬」ということがある]は、第1試薬である「緩衝液」、及び第2試薬である「基質液」(DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として0.27mMの濃度で含む)よりなるものである。
 この「対照市販試薬」の「基質液」を本実施例における検討に用いた。
〔3〕緩衝液の調製
 下記の試薬成分を記載の濃度になるように純水に溶解し、pHをpH8.4(20℃)に調整して、緩衝液を調製した。
 Bicine [緩衝剤] 40mM
2.試薬の保存
(1) 前記1の〔1〕において調製した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を、30℃で暗所に35日間保存した。
(2) 前記1の〔2〕の対照市販試薬の基質液を、30℃で暗所に35日間保存した。
3.基質の分解量の測定
(1) 前記1の〔3〕において調製した調製当日の緩衝液を第1試薬とし、前記2の(1)において30℃(暗所)にて保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を第2試薬として、以下の測定を行った。
 なお、この測定は、この本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の保存開始日(0日目)、保存7日後、保存15日後、保存21日後、及び保存35日後の各々の日に、当該期間保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液をそれぞれ使用して行った。
 まず、この第1試薬の1,600μLに、この第2試薬の960μLを添加し、混合して、混合液とした。
(2) 次に、前記(1)において得た混合液の波長580nmにおける吸光度を、DU7500型分光光度計(販売元:ベックマンコールター株式会社[日本国])を使用して測定した。
(3) 次に、前記1の〔3〕において調製した調製当日の緩衝液の波長580nmにおける吸光度を盲検(ブランク)として、DU7500型分光光度計(販売元:ベックマンコールター株式会社[日本国])を使用して測定した。
(4) 次に、前記(2)において測定した吸光度値から前記(3)において測定した吸光度値[盲検(ブランク)]を差し引いて、吸光度差の値を得た。
(5) 次に、前記(4)で得た吸光度差の値を、6’-メチルレゾルフィンの580nmにおけるモル吸光係数(60.65[単位:cm×μmol-1])で除して、保存時のDGGMRの分解により生成した6’-メチルレゾルフィンの濃度[単位:mM]を算出した。
(6) 次に、前記1の〔1〕の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液におけるDGGMRの濃度(0.3mM)で、前記(5)で得た保存時の分解により生成した6’-メチルレゾルフィンの濃度[単位:mM]を除して、DGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
(7) また、前記(1)における第2試薬を本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液から、前記2の(2)において30℃(暗所)にて35日間保存した対照市販試薬の基質液に替えること、及び前記(6)における本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液におけるDGGMRの濃度(0.3mM)を、前記1の〔2〕の対照市販試薬の基質液におけるDGGMRの濃度(0.27mM)に替えること以外は、前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行い、第2試薬として前記2の(2)の対照市販試薬の基質液を用いた場合のDGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
4.測定結果
 前記3において測定した、第2試薬として前記2の(1)の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を用いた場合の、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を表1及び図3に示した。
 また、前記3において測定した、第2試薬として前記2の(2)の対照市販試薬の基質液を用いた場合の、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]も表1及び図3に示した。
 なお、この表1及び図3の各々においては、保存開始日(0日目)の「DGGMRの分解率」の値を「0(ゼロ)」として、この保存開始日(0日目)からの「DGGMRの分解率」の値を示した。
 なお、この図3において、横軸は「試薬の保存期間」(単位:日)を示し、そして縦軸は「DGGMRの分解率」の値(単位:%)を示す。
 また、この図3において、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における「DGGMRの分解率」の値を「■」で示し、そして、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の値を「▲」で示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
5.考察
(1) 30℃で15日間保存した場合、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における「DGGMRの分解率」の値が0.2%であるのに対して、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の値は1.4%であることが、表1及び図3より分かる。
 すなわち、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における「DGGMRの分解率」は、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の14%にしかすぎないことが分かる。
(2) また、30℃で35日間保存した場合、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における「DGGMRの分解率」の値が0.4%であるのに対して、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の値は3.3%であることが、表1及び図3より分かる。
 すなわち、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における「DGGMRの分解率」は、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の12%にしかすぎないことが分かる。
(3) 従って、本実施例の検討結果からも、本発明は、DGGMRの分解を効果的に抑制することができ、保存安定性が優れ、そして長期間正確な測定値を得ることができるものであることが確かめられた。
〔実施例3〕(本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の効果の確認-3)
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における保存安定性の効果を再度確認した。
1.試薬
 計4種類の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液(本発明のエマルジョン溶液よりなることを特徴とするリパーゼ活性測定用基質溶液)を調製した。
 そして、対照として、市販試薬の基質液を用いた。
 また、緩衝液を調製した。
〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の調製
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、4個のビーカー(容量:10mL)のそれぞれに、0.09グラム[g]ずつ量り取った。
(2) 次に、下記の(a)~(d)の4種類の側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)をそれぞれ4.0グラム[g]ずつ量り取り、これを1種類ごとにそれぞれ異なる前記(1)のビーカーに添加した。
 (a) KF-351A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (b) KF-354A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (c) KF-355A (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
 (d) KF-6011 (販売元:信越化学工業株式会社[日本国])
(3) 前記(2)の添加後、各々のビーカーを67℃において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕とそれぞれの本変性シリコーンオイルとを混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の純水」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の純水」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物)と一定量の純水との混合後の混合液」に、更に一定量の純水を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、下記の(A)~(D)の計4種類の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を調製した。
 なお、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計4種類)において、いずれも、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.6mMであり、本変性シリコーンオイルの濃度は2.0%(w/v)である。
 また、これらのリパーゼ活性測定用基質溶液(計4種類)のいずれにも、濃度勾配や強い濁り等は見られず、それぞれ均質に混合されていることを目視にて確認した。
 (A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-351A)
 (B) リパーゼ活性測定用基質溶液-B(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-354A)
 (C) リパーゼ活性測定用基質溶液-C(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-355A)
 (D) リパーゼ活性測定用基質溶液-D(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-6011)
〔2〕対照市販試薬
 市販のリパーゼ活性測定試薬(リパーゼ活性測定試薬キット)である「リキテック リパーゼ カラー II」(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、対照として用いた。
 なお、この「リキテック リパーゼ カラー II」[以下、「対照市販試薬」ということがある]は、第1試薬である「緩衝液」、及び第2試薬である「基質液」(DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として0.27mMの濃度で含む)よりなるものである。
 この「対照市販試薬」の「基質液」を本実施例における検討に用いた。
〔3〕緩衝液の調製
 下記の試薬成分を記載の濃度になるように純水に溶解し、pHをpH8.4(20℃)に調整して、緩衝液を調製した。
 Bicine [緩衝剤] 40mM
2.試薬の保存
(1) 前記1の〔1〕の(6)の(A)~(D)の4種類の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液のそれぞれを、25℃で暗所に31日間保存した。
(2) 前記1の〔2〕の対照市販試薬の基質液を、25℃で暗所に32日間保存した。
3.基質の分解量の測定
(1) 前記1の〔3〕において調製した調製当日の緩衝液を第1試薬とし、前記2の(1)において25℃(暗所)にて保存した「(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A」を第2試薬として、以下の測定を行った。
 なお、この測定は、この本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の保存開始日(0日目)、保存5日後、保存23日後、及び保存31日後の各々の日に、当該期間保存した「(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A」をそれぞれ使用して行った。
 まず、この第1試薬の1,600μLに、この第2試薬の960μLを添加し、混合して、混合液とした。
(2) 次に、前記(1)において得た混合液の波長580nmにおける吸光度を、DU7500型分光光度計(販売元:ベックマンコールター株式会社[日本国])を使用して測定した。
(3) 次に、前記1の〔3〕において調製した調製当日の緩衝液の波長580nmにおける吸光度を盲検(ブランク)として、DU7500型分光光度計(販売元:ベックマンコールター株式会社[日本国])を使用して測定した。
(4) 次に、前記(2)において測定した吸光度値から前記(3)において測定した吸光度値[盲検(ブランク)]を差し引いて、吸光度差の値を得た。
(5) 次に、前記(4)で得た吸光度差の値を、6’-メチルレゾルフィンの580nmにおけるモル吸光係数(60.65[単位:cm×μmol-1])で除して、保存時のDGGMRの分解により生成した6’-メチルレゾルフィンの濃度[単位:mM]を算出した。
(6) 次に、前記1の〔1〕の(6)の「(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A」におけるDGGMRの濃度(0.6mM)で、前記(5)で得た保存時の分解により生成した6’-メチルレゾルフィンの濃度[単位:mM]を除して、DGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
(7) 前記(1)における第2試薬を「(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A」から、前記2の(1)において25℃(暗所)にて31日間保存した「(B) リパーゼ活性測定用基質溶液-B」に替えること以外は、前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行い、第2試薬として前記2の(1)の「(B) リパーゼ活性測定用基質溶液-B」を用いた場合のDGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
(8) 前記(1)における第2試薬を「(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A」から、前記2の(1)において25℃(暗所)にて31日間保存した「(C) リパーゼ活性測定用基質溶液-C」に替えること以外は、前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行い、第2試薬として前記2の(1)の「(C) リパーゼ活性測定用基質溶液-C」を用いた場合のDGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
(9) 前記(1)における第2試薬を「(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A」から、前記2の(1)において25℃(暗所)にて31日間保存した「(D) リパーゼ活性測定用基質溶液-D」に替えること以外は、前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行い、第2試薬として前記2の(1)の「(D) リパーゼ活性測定用基質溶液-D」を用いた場合のDGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
(10) また、前記(1)における第2試薬を「(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A」から、前記2の(2)において25℃(暗所)にて32日間保存した対照市販試薬の基質液に替えること、前記(1)における測定の日を保存開始日(0日目)、保存8日後、保存15日後、保存21日後、保存29日後、及び保存32日後の各々の日に替えること、並びに前記(6)における「(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A」におけるDGGMRの濃度(0.6mM)を、前記1の〔2〕の対照市販試薬の基質液におけるDGGMRの濃度(0.27mM)に替えること以外は、前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行い、第2試薬として前記2の(2)の対照市販試薬の基質液を用いた場合のDGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
4.測定結果
 前記3において測定した、第2試薬として前記2の(1)の4種類の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液[(A)~(D)]を用いた場合の、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を表2及び図4に示した。
 また、前記3において測定した、第2試薬として前記2の(2)の対照市販試薬の基質液を用いた場合の、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]も表2及び図4に示した。
 なお、この表2及び図4の各々においては、保存開始日(0日目)の「DGGMRの分解率」の値を「0(ゼロ)」として、この保存開始日(0日目)からの「DGGMRの分解率」の値を示した。
 なお、この図4において、横軸は「試薬の保存期間」(単位:日)を示し、そして縦軸は「DGGMRの分解率」の値(単位:%)を示す。
 また、この図4において、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液である「(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A」における「DGGMRの分解率」の値を「*」で示し、「(B) リパーゼ活性測定用基質溶液-B」における「DGGMRの分解率」の値を「◆」で示し、「(C) リパーゼ活性測定用基質溶液-C」における「DGGMRの分解率」の値を「■」で示し、
「(D) リパーゼ活性測定用基質溶液-D」における「DGGMRの分解率」の値を「●」で示し、そして、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の値を「▲」で示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
5.考察
(1) 表2及び図4より、25℃で31日間保存した場合、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液である「(A) リパーゼ活性測定用基質溶液-A」における「DGGMRの分解率」の値は0.3%であり、「(B) リパーゼ活性測定用基質溶液-B」における「DGGMRの分解率」の値は0.4%であり、「(C) リパーゼ活性測定用基質溶液-C」における「DGGMRの分解率」の値は0.8%であり、そして「(D) リパーゼ活性測定用基質溶液-D」における「DGGMRの分解率」の値は0.5%であることが分かる。
 また、表2及び図4より、25℃で32日間保存した場合、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の値は1.4%であることが分かる。
 すなわち、4種類の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液[(A)~(D)]のいずれにおいても、その「DGGMRの分解率」は、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」に比べ大幅に低いことが分かる。
(2) よって、本実施例の検討結果からも、本発明は、DGGMRの分解を効果的に抑制することができ、保存安定性が優れ、そして長期間正確な測定値を得ることができるものであることが確かめられた。
〔実施例4〕(本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の効果の確認-4)
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における保存安定性の効果を再度確認した。
1.試薬
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液(本発明のエマルジョン溶液よりなることを特徴とするリパーゼ活性測定用基質溶液)を調製した。
 そして、対照として、市販試薬の基質液を用いた。
 また、緩衝液を調製した。
〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の調製
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])の0.045グラム[g]を、ビーカー(容量:10mL)に量り取った。
(2) 次に、側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)である、KF-355A(販売元:信越化学工業株式会社[日本国])の0.6グラム[g]を量り取り、これを前記(1)のビーカーに添加した。
(3) 前記(2)の添加後、このビーカーを67℃において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルであるKF-355Aとを混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物)と一定量の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]との混合後の混合液」に、更に一定量の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液である「リパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-355A)」を調製した。
 なお、このリパーゼ活性測定用基質溶液において、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.3mMであり、本変性シリコーンオイル(KF-355A)の濃度は0.3%(w/v)である。
 また、このリパーゼ活性測定用基質溶液に、濃度勾配や強い濁り等は見られず、均質に混合されていることを目視にて確認した。
〔2〕対照市販試薬
 市販のリパーゼ活性測定試薬(リパーゼ活性測定試薬キット)である「リキテック リパーゼ カラー II」(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、対照として用いた。
 なお、この「リキテック リパーゼ カラー II」[以下、「対照市販試薬」ということがある]は、第1試薬である「緩衝液」、及び第2試薬である「基質液」(DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として0.27mMの濃度で含む)よりなるものである。
 この「対照市販試薬」の「基質液」を本実施例における検討に用いた。
〔3〕緩衝液の調製
 下記の試薬成分を記載の濃度になるように純水に溶解し、pHをpH8.4(20℃)に調整して、緩衝液を調製した。
 Bicine [緩衝剤] 40mM
2.試薬の保存
(1) 前記1の〔1〕において調製した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を、30℃で暗所に35日間保存した。
(2) 前記1の〔2〕の対照市販試薬の基質液を、30℃で暗所に35日間保存した。
3.基質の分解量の測定
(1) 前記1の〔3〕において調製した調製当日の緩衝液を第1試薬とし、前記2の(1)において30℃(暗所)にて保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を第2試薬として、以下の測定を行った。
 なお、この測定は、この本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の保存開始日(0日目)、保存7日後、保存15日後、保存21日後、及び保存35日後の各々の日に、当該期間保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液をそれぞれ使用して行った。
 まず、この第1試薬の1,600μLに、この第2試薬の960μLを添加し、混合して、混合液とした。
(2) 次に、前記(1)において得た混合液の波長580nmにおける吸光度を、DU7500型分光光度計(販売元:ベックマンコールター株式会社[日本国])を使用して測定した。
(3) 次に、前記1の〔3〕において調製した調製当日の緩衝液の波長580nmにおける吸光度を盲検(ブランク)として、DU7500型分光光度計(販売元:ベックマンコールター株式会社[日本国])を使用して測定した。
(4) 次に、前記(2)において測定した吸光度値から前記(3)において測定した吸光度値[盲検(ブランク)]を差し引いて、吸光度差の値を得た。
(5) 次に、前記(4)で得た吸光度差の値を、6’-メチルレゾルフィンの580nmにおけるモル吸光係数(60.65[単位:cm×μmol-1])で除して、保存時のDGGMRの分解により生成した6’-メチルレゾルフィンの濃度[単位:mM]を算出した。
(6) 次に、前記1の〔1〕の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液におけるDGGMRの濃度(0.3mM)で、前記(5)で得た保存時の分解により生成した6’-メチルレゾルフィンの濃度[単位:mM]を除して、DGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
(7) また、前記(1)における第2試薬を本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液から、前記2の(2)において30℃(暗所)にて35日間保存した対照市販試薬の基質液に替えること、前記(1)における測定の日を保存開始日(0日目)、保存7日後、保存15日後、保存21日後、及び保存35日後の各々の日に替えること、並びに前記(6)における本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液におけるDGGMRの濃度(0.3mM)を、前記1の〔2〕の対照市販試薬の基質液におけるDGGMRの濃度(0.27mM)に替えること以外は、前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行い、第2試薬として前記2の(2)の対照市販試薬の基質液を用いた場合のDGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
4.測定結果
 前記3において測定した、第2試薬として前記2の(1)の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を用いた場合の、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を表3及び図5に示した。
 また、前記3において測定した、第2試薬として前記2の(2)の対照市販試薬の基質液を用いた場合の、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]も表3及び図5に示した。
 なお、この表3及び図5の各々においては、保存開始日(0日目)の「DGGMRの分解率」の値を「0(ゼロ)」として、この保存開始日(0日目)からの「DGGMRの分解率」の値を示した。
 なお、この図5において、横軸は「試薬の保存期間」(単位:日)を示し、そして縦軸は「DGGMRの分解率」の値(単位:%)を示す。
 また、この図5において、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における「DGGMRの分解率」の値を「■」で示し、そして、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の値を「▲」で示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
5.考察
(1) 表3及び図5より、30℃で35日間保存した場合、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における「DGGMRの分解率」の値は0.4%であることが分かる。
 また、表3及び図5より、30℃で35日間保存した場合、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の値は3.3%であることが分かる。
 すなわち、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の「DGGMRの分解率」は、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」に比べ大幅に低いことが分かる。
(2) よって、本実施例の検討結果からも、本発明は、DGGMRの分解を効果的に抑制することができ、保存安定性が優れ、そして長期間正確な測定値を得ることができるものであることが確かめられた。
〔実施例5〕(本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の効果の確認-5)
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における保存安定性の効果を再度確認した。
1.試薬
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液(本発明のエマルジョン溶液よりなることを特徴とするリパーゼ活性測定用基質溶液)を調製した。
 そして、対照として、市販試薬の基質液を用いた。
 また、緩衝液を調製した。
〔1〕本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の調製
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])の0.045グラム[g]を、ビーカー(容量:10mL)に量り取った。
(2) 次に、側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)である、KF-355A(販売元:信越化学工業株式会社[日本国])の0.6グラム[g]を量り取り、これを前記(1)のビーカーに添加した。
(3) 前記(2)の添加後、このビーカーを67℃において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルであるKF-355Aとを混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物)と一定量の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]との混合後の混合液」に、更に一定量の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液である「リパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-355A)」を調製した。
 なお、このリパーゼ活性測定用基質溶液において、リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.3mMであり、本変性シリコーンオイル(KF-355A)の濃度は0.3%(w/v)である。
 また、このリパーゼ活性測定用基質溶液に、濃度勾配や強い濁り等は見られず、均質に混合されていることを目視にて確認した。
〔2〕対照市販試薬
 市販のリパーゼ活性測定試薬(リパーゼ活性測定試薬キット)である「リキテック リパーゼ カラー II」(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を、対照として用いた。
 なお、この「リキテック リパーゼ カラー II」[以下、「対照市販試薬」ということがある]は、第1試薬である「緩衝液」、及び第2試薬である「基質液」(DGGMRをリパーゼ活性測定用基質として0.27mMの濃度で含む)よりなるものである。
 この「対照市販試薬」の「基質液」を本実施例における検討に用いた。
〔3〕緩衝液の調製
 下記の試薬成分を記載の濃度になるように純水に溶解し、pHをpH8.4(20℃)に調整して、緩衝液を調製した。
 Bicine [緩衝剤] 40mM
2.試薬の保存
(1) 前記1の〔1〕において調製した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を、10℃で暗所に390日間保存した。
(2) 前記1の〔2〕の対照市販試薬の基質液を、5℃で暗所に300日間保存した。
3.基質の分解量の測定
(1) 前記1の〔3〕において調製した調製当日の緩衝液を第1試薬とし、前記2の(1)において10℃(暗所)にて保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を第2試薬として、以下の測定を行った。
 なお、この測定は、この本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の保存開始日(0日目)、保存90日後、保存180日後、保存270日後、保存360日後、及び保存390日後の各々の日に、当該期間保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液をそれぞれ使用して行った。
 まず、この第1試薬の1,600μLに、この第2試薬の960μLを添加し、混合して、混合液とした。
(2) 次に、前記(1)において得た混合液の波長580nmにおける吸光度を、DU7500型分光光度計(販売元:ベックマンコールター株式会社[日本国])を使用して測定した。
(3) 次に、前記1の〔3〕において調製した調製当日の緩衝液の波長580nmにおける吸光度を盲検(ブランク)として、DU7500型分光光度計(販売元:ベックマンコールター株式会社[日本国])を使用して測定した。
(4) 次に、前記(2)において測定した吸光度値から前記(3)において測定した吸光度値[盲検(ブランク)]を差し引いて、吸光度差の値を得た。
(5) 次に、前記(4)で得た吸光度差の値を、6’-メチルレゾルフィンの580nmにおけるモル吸光係数(60.65[単位:cm×μmol-1])で除して、保存時のDGGMRの分解により生成した6’-メチルレゾルフィンの濃度[単位:mM]を算出した。
(6) 次に、前記1の〔1〕の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液におけるDGGMRの濃度(0.3mM)で、前記(5)で得た保存時の分解により生成した6’-メチルレゾルフィンの濃度[単位:mM]を除して、DGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
(7) また、前記(1)における第2試薬を本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液から、前記2の(2)において5℃(暗所)にて300日間保存した対照市販試薬の基質液に替えること、前記(1)における測定の日を保存開始日(0日目)、保存90日後、保存150日後、及び保存300日後の各々の日に替えること、並びに前記(6)における本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液におけるDGGMRの濃度(0.3mM)を、前記1の〔2〕の対照市販試薬の基質液におけるDGGMRの濃度(0.27mM)に替えること以外は、前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行い、第2試薬として前記2の(2)の対照市販試薬の基質液を用いた場合のDGGMR濃度1mM当りの生成6’-メチルレゾルフィンの濃度の比率[単位:%]を算出した。
 すなわち、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を算出した。
4.測定結果
 前記3において測定した、第2試薬として前記2の(1)の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を用いた場合の、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]を表4及び図6に示した。
 また、前記3において測定した、第2試薬として前記2の(2)の対照市販試薬の基質液を用いた場合の、「試薬中のDGGMR濃度1mM当りの、試薬保存時に分解したDGGMRの比率」(DGGMRの分解率)[単位:%]も表4及び図6に示した。
 なお、この表4及び図6の各々においては、保存開始日(0日目)の「DGGMRの分解率」の値を「0(ゼロ)」として、この保存開始日(0日目)からの「DGGMRの分解率」の値を示した。
 なお、この図6において、横軸は「試薬の保存期間」(単位:日)を示し、そして縦軸は「DGGMRの分解率」の値(単位:%)を示す。
 また、この図6において、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における「DGGMRの分解率」の値を「■」で示し、そして、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の値を「▲」で示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
5.考察
(1) 表4及び図6より、10℃で390日間保存した場合、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における「DGGMRの分解率」の値は0.6%であることが分かる。
 また、表4及び図6より、5℃で300日間保存した場合、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」の値は2.1%であることが分かる。
 すなわち、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の「DGGMRの分解率」は、対照市販試薬の基質液における「DGGMRの分解率」に比べ大幅に低いことが分かる。
(2) よって、本実施例における冷蔵保存時の検討結果からも、本発明は、DGGMRの分解を効果的に抑制することができ、保存安定性が優れ、そして長期間正確な測定値を得ることができるものであることが確かめられた。
〔実施例6〕(本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の効果の確認-6)
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液における保存安定性の効果を再度確認した。
1.試薬
 本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液(本発明のエマルジョン溶液よりなることを特徴とするリパーゼ活性測定用基質溶液)を計3ロット調製した。
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])の0.045グラム[g]を、ビーカー(容量:10mL)に量り取った。
(2) 次に、側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)である、KF-355A(販売元:信越化学工業株式会社[日本国])の0.6グラム[g]を量り取り、これを前記(1)のビーカーに添加した。
(3) 前記(2)の添加後、このビーカーを67℃において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルであるKF-355Aとを混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物)と一定量の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]との混合後の混合液」に、更に一定量の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液である「リパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-355A)」を調製した。
 これを第1ロットとした。
(7) また、更に2回ずつ前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行うことにより、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液である「リパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-355A)」を個別に2回調製した。
 これらを第2ロット及び第3ロットとした。
(8) なお、前記(1)~(7)において調製した、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットそれぞれにおいて、いずれもリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.3mMであり、本変性シリコーンオイル(KF-355A)の濃度は0.3%(w/v)である。
 また、これらのいずれのリパーゼ活性測定用基質溶液においても、濃度勾配や強い濁り等は見られず、均質に混合されていることを目視にて確認した。
2.試薬の保存
 前記1において調製した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットのそれぞれを、10℃で暗所に16ヶ月間保存した。
3.本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径の測定
 前記2において保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットについて、それぞれのエマルジョンのミセル径を測定した。
 なお、この測定は、前記の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の保存開始時(0日目)、及び保存16ヶ月後の各々の時に、当該期間保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液をそれぞれ使用して行った。
(1) 前記2において10℃(暗所)にて16ヶ月間保存した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットのそれぞれの2mLを各々別個のプラスチックセルに入れた。
(2) 次に、これらのプラスチックセルについて順に動的光散乱式粒子径分布測定装置(型式:Nanotrac UPA-EX250、販売元:日機装株式会社[日本国])の光学プローブ(光ファイバー)を中に入れ、各々のプラスチックセル中の本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットそれぞれのエマルジョンのミセル径(粒子径)の測定を行った。なお、この測定は室温(25℃)にて行った。
4.測定結果
 前記3において測定した本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第1ロットのエマルジョンのミセル径(粒子径)の分布を図7に示し、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第2ロットのエマルジョンのミセル径(粒子径)の分布を図8に示し、そして、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第3ロットのエマルジョンのミセル径(粒子径)の分布を図9に示した。
 なお、これらの図7、図8及び図9における本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液のエマルジョンのミセル径(粒子径)の値は平均値の値を示す。
 また、これらの図7、図8及び図9において、横軸はエマルジョンのミセル径(粒子径)[平均値](単位:μm)を示し、そして縦軸は頻度(単位:%)を示す。
 そして、これらの図7、図8及び図9において、保存開始時(0日目)の測定結果を破線で示し、そして、16ヶ月間保存した時の測定結果を直線で示す。
5.考察
 これらの図7、図8及び図9より、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットのいずれにおいても、保存開始時(0日目)の測定結果及び16ヶ月間保存時の測定結果の両方において、そのエマルジョンのミセル径(粒子径)の分布が100nm~200nm(0.1μm~0.2μm)の範囲及びその近辺にあることが分かる。
 また、これらの図7、図8及び図9より、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットのいずれにおいても、そのエマルジョンのミセル径(粒子径)の分布が、保存開始時(0日目)と16ヶ月間保存時とでほぼ同様なものであることが分かる。
 従って、これらのことより、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液は、リパーゼとの反応の速度が高く、エマルジョンが安定であり、リパーゼ活性測定用基質溶液を長期間保存・使用できる効果の高い80nm~600nmの範囲にそのエマルジョンのミセル径(粒子径)があり、そして実際に、そのエマルジョンのミセル径(粒子径)の分布が長期間(16ヶ月間)安定に保たれていることが確かめられた。
〔実施例7〕(本発明のリパーゼ活性測定試薬の効果の確認)
 本発明のリパーゼ活性測定試薬(本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液を含むことを特徴とする)における保存安定性の効果を確認した。
1.本発明のリパーゼ活性測定試薬
 本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬及び第2試薬をそれぞれ調製した。
〔1〕第1試薬
 下記の試薬成分をそれぞれ記載の濃度になるように純水に溶解し、pHをpH8.4(20℃)に調整して、本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬を調製した。
 デオキシコール酸ナトリウム [リパーゼ賦活化剤] 2%(w/v)
 塩化カルシウム [リパーゼ活性化剤] 20mM
 コリパーゼ (ブタ膵臓由来、販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国]) 750K単位/L(10mg/L)
 Bicine [緩衝剤] 80mM
 なお、この第1試薬を個別に計3回調製し、これらをそれぞれ本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬の第1ロット、第2ロット及び第3ロットとした。
〔2〕第2試薬
 本発明のリパーゼ活性測定試薬の第2試薬を計3ロット調製した。
(1) 本発明におけるリパーゼ活性測定用基質である、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル 〔DGGMR〕(販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])の0.045グラム[g]を、ビーカー(容量:10mL)に量り取った。
(2) 次に、側鎖型の非反応性の変性シリコーンオイル(ポリエーテル変性タイプ)である、KF-355A(販売元:信越化学工業株式会社[日本国])の0.6グラム[g]を量り取り、これを前記(1)のビーカーに添加した。
(3) 前記(2)の添加後、このビーカーを67℃において撹拌して、ビーカー内のリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルであるKF-355Aとを混合した。
 この混合(撹拌)を5分間行い、「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」を調製した。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(4) 次に、前記(3)のビーカー内の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物」(全部)に、撹拌しながら「一定量(4.0mL)の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]」を室温(25℃)においてマイクロピペットより添加した。
 そして、当該添加後、この撹拌を室温(25℃)にて5分間継続して行うことにより、前記の「リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルを混合して調製した混合物」(全部)と、前記の「一定量(4.0mL)の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]」との混合を行った。
 なお、当該撹拌は、前記のビーカーをマルチスターラー(型式:M-3、販売元:アズワン株式会社[日本国])の上に載せ、このビーカー内の回転子をこのマルチスターラーの目盛り「3」で回転させることにより行った。
(5) 次に、前記(4)の「当該混合物(リパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕と本変性シリコーンオイルの混合物)と一定量の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]との混合後の混合液」に、更に一定量の40mMのL-酒石酸ナトリウム緩衝液[pH4.0(20℃)]を混合して、最終的な容量を200mLとした。
(6) 以上の操作により、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液である「リパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-355A)」を調製した。
 これを本発明のリパーゼ活性測定試薬の第2試薬の第1ロットとした。
(7) また、更に2回ずつ前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行うことにより、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液である「リパーゼ活性測定用基質溶液(リパーゼ活性測定用基質:DGGMR、本変性シリコーンオイル:KF-355A)」を個別に2回調製した。
 これらをそれぞれ本発明のリパーゼ活性測定試薬の第2試薬の第2ロット及び第3ロットとした。
(8) なお、前記(1)~(7)において調製した、本発明のリパーゼ活性測定用基質溶液の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットそれぞれにおいて、いずれもリパーゼ活性測定用基質〔DGGMR〕の濃度は0.3mMであり、本変性シリコーンオイル(KF-355A)の濃度は0.3%(w/v)である。
 また、これらのいずれのリパーゼ活性測定用基質溶液においても、濃度勾配や強い濁り等は見られず、均質に混合されていることを目視にて確認した。
2.試薬の保存
(1) 前記1の〔1〕において調製した本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットのそれぞれを、10℃で暗所に13ヶ月間保存した。
(2) 前記1の〔2〕において調製した本発明のリパーゼ活性測定試薬の第2試薬の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットのそれぞれを、10℃で暗所に13ヶ月間保存した。
3.試料
 下の「(1)管理血清-1」、「(2)管理血清-2」、及び「(3)管理血清-3」をそれぞれ試料として用いた。
(1)管理血清-1
 市販の精度管理用管理血清である「Aalto Control IM」(販売元:株式会社シノテスト[日本国])と精度管理用管理血清である「Aalto Control II」の「試作品」(株式会社シノテスト[日本国])を等量ずつ混合したものを、「管理血清-1」として用いた。
(2)管理血清-2
 精度管理用管理血清である「Aalto Control II」の「試作品」(株式会社シノテスト[日本国])を、「管理血清-2」として用いた。
(3)管理血清-3
 市販の精度管理用管理血清である「QAPトロール 2X」〔製造番号:QL-215〕(販売元:シスメックス株式会社[日本国])を、「管理血清-3」として用いた。
4.試料中のリパーゼ活性の測定
 前記2において10℃(暗所)にて13ヶ月間保存した本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬及び第2試薬を使用して、7180形汎用自動分析装置(販売元:株式会社日立ハイテクノロジーズ[日本国])により、前記3の各試料のリパーゼ活性の測定を行った。
 なお、この測定は、この本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬及び第2試薬の保存開始時(0日目)、保存3ヶ月後、保存6ヶ月後、保存9ヶ月後、保存12ヶ月後、及び保存13ヶ月後の各々の時に、当該期間保存した本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬及び第2試薬をそれぞれ使用して行った。
(1) 前記の7180形汎用自動分析装置において、前記3のそれぞれの試料(「(1)管理血清-1」、「(2)管理血清-2」、及び「(3)管理血清-3」)について、これらの試料の2.6μLに、それぞれ前記2の(1)で保存した「第1試薬」の第1ロットの160μLを第1試薬として添加し、37℃で反応させた。
(2) 次に、16ポイント(第1試薬添加後270.093秒)から17ポイント(第1試薬添加後286.977秒)の間に、前記2の(2)で保存した「第2試薬」の第1ロットの96μLを第2試薬として添加し、37℃で反応させた。
(3) 次に、20ポイント(第1試薬添加後340.510秒)から24ポイント(第1試薬添加後411.887秒)に掛けての吸光度変化量を主波長570nm、副波長700nmにて測定した。(試料中に含まれていたリパーゼの活性値に応じて生成する6’-メチルレゾルフィンの濃度増加に基づく吸光度変化量の測定)
(4) なお、較正(キャリブレーション)のための較正物質(キャリブレーター)として、「自動分析用キャリブレーターII(C.f.a.s.II)」(製造番号:167255-01、販売元:ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社[日本国])を用いた。
 この「自動分析用キャリブレーターII(C.f.a.s.II)」を試料とすること以外は、前記(1)~(3)の記載の通りに操作を行い、較正物質である「自動分析用キャリブレーターII(C.f.a.s.II)」を測定したときの吸光度変化量を測定した。(当該較正物質に含まれているリパーゼの活性値[既知値]に応じて生成する6’-メチルレゾルフィンの濃度増加に基づく吸光度変化量の測定)
(5) また、試薬盲検(試薬ブランク)の測定のため、生理食塩水を用いた。
 この生理食塩水を試料とすること以外は、前記(1)~(3)の記載の通りに操作を行い、生理食塩水を測定したときの吸光度変化量を測定した。(試薬盲検の吸光度変化量の測定)
(6) 次に、前記(3)において求めた前記3のそれぞれの試料についての当該ポイント間の吸光度変化量から、前記(5)において求めた当該ポイント間の試薬盲検の吸光度変化量を差し引いて、「試料の吸光度変化量差の値」を求めた。
 また、前記(4)において求めた較正物質(リパーゼ活性値が既知)についての当該ポイント間の吸光度変化量から、前記(5)において求めた当該ポイント間の試薬盲検の吸光度変化量を差し引いて、「較正物質の吸光度変化量差の値」を求めた。
 次に、前記の「試料の吸光度変化量差の値」と、「較正物質の吸光度変化量差の値」と、既知である「較正物質のリパーゼ活性値」とを対比し、比例計算を行うことにより、前記3の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(7) また、前記(1)における第1試薬を前記2の(1)で保存した「第1試薬」の第1ロットから第2ロットに替えること、及び前記(2)における第2試薬を前記2の(2)で保存した「第2試薬」の第1ロットから第2ロットに替えること以外は、前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行い、第1試薬として第2ロットを用い、かつ第2試薬として第2ロットを用いた場合の前記3の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
(8) また、前記(1)における第1試薬を前記2の(1)で保存した「第1試薬」の第1ロットから第3ロットに替えること、及び前記(2)における第2試薬を前記2の(2)で保存した「第2試薬」の第1ロットから第3ロットに替えること以外は、前記(1)~(6)の記載の通りに操作を行い、第1試薬として第3ロットを用い、かつ第2試薬として第3ロットを用いた場合の前記3の各試料のリパーゼ活性値を求めた。
5.測定結果
 前記4において測定し、求めた前記3の各試料のリパーゼ活性値を表5に示した。
 なお、この表5において示した測定値(各試料のリパーゼ活性値)の単位は、「単位/L(Unit/L)」である。
 また、この表5において、(カッコ)の中の数値は、各測定値(リパーゼ活性値)を、保存開始時(0日目)の各試料の測定値(リパーゼ活性値)で除した値をパーセント表示で表したものである。
 なお、前記4において、第1試薬として第1ロットを用い、かつ第2試薬として第1ロットを用いて測定し、求めた前記3の各試料のリパーゼ活性値を図10に示した。
 また、前記4において、第1試薬として第2ロットを用い、かつ第2試薬として第2ロットを用いて測定し、求めた前記3の各試料のリパーゼ活性値を図11に示した。
 また、前記4において、第1試薬として第3ロットを用い、かつ第2試薬として第3ロットを用いて測定し、求めた前記3の各試料のリパーゼ活性値を図12に示した。
 なお、これらの図10、図11及び図12のそれぞれにおいて、横軸は「試薬の保存期間」[単位:月]を示し、そして縦軸は「測定値(各試料のリパーゼ活性値)」[単位:単位/L(Unit/L)]を示す。
 また、これらの図10、図11及び図12のそれぞれにおいて、試料が「(1)管理血清-1」である場合の測定値を「●」で示し、試料が「(2)管理血清-2」である場合の測定値を「▲」で示し、そして、試料が「(3)管理血清-3」である場合の測定値を「■」で示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
6.考察
(1) これらの表5及び図10より、本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬及び第2試薬としてそれぞれの第1ロットを使用したとき、保存開始時(0日目)の測定値(リパーゼ活性値)に対する試薬保存中の測定値は、「(1)管理血清-1」においては98%~100%であり、「(2)管理血清-2」においては100%~101%であり、そして、「(3)管理血清-3」においては98%~101%であることが分かる。
(2) また、これらの表5及び図11より、本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬及び第2試薬としてそれぞれの第2ロットを使用したとき、保存開始時(0日目)の測定値(リパーゼ活性値)に対する試薬保存中の測定値は、「(1)管理血清-1」においては98%~101%であり、「(2)管理血清-2」においては100%~101%であり、そして、「(3)管理血清-3」においては97%~104%であることが分かる。
(3) 更に、これらの表5及び図12より、本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬及び第2試薬としてそれぞれの第3ロットを使用したとき、保存開始時(0日目)の測定値(リパーゼ活性値)に対する試薬保存中の測定値は、「(1)管理血清-1」においては98%~101%であり、「(2)管理血清-2」においては100%~101%であり、そして、「(3)管理血清-3」においては99%~104%であることが分かる。
(4) すなわち、これらの表5、図10、図11及び図12より、本発明のリパーゼ活性測定試薬の第1試薬及び第2試薬の第1ロット、第2ロット、及び第3ロットのいずれにおいても、10℃(暗所)にて13ヶ月間保存したときの測定値(リパーゼ活性値)は、保存開始時(0日目)の測定値(リパーゼ活性値)とほぼ同一であることが分かる。
 つまり、本発明のリパーゼ活性測定試薬においては、その性能が長期間(13ヶ月間)安定に保たれていることが分かる。
(5) よって、本実施例の検討結果からも、本発明は、保存安定性が優れ、そして長期間正確な測定値を得ることができるものであることが確かめられた。

Claims (6)

  1.  1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなることを特徴とする、リパーゼ活性測定用基質溶液。
  2.  1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなるリパーゼ活性測定用基質溶液を含むことを特徴とする、リパーゼ活性測定試薬。
  3.  1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液よりなるリパーゼ活性測定用基質溶液を使用して、試料中のリパーゼ活性を測定することを特徴とする、試料中のリパーゼ活性の測定方法。
  4.  1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステル、及び側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液。
  5.  1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルと共に、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを含有させることを特徴とする、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルをリパーゼ活性測定用基質として用いるリパーゼ活性測定用基質溶液の安定化方法。
  6.  1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルと共に、側鎖型の非反応性のポリエーテル変性タイプの変性シリコーンオイルを含有させることを特徴とする、1,2-o-ジラウリル-rac-グリセロ-3-グルタル酸-(6’-メチルレゾルフィン)-エステルよりなるミセル粒子からなるエマルジョン溶液の安定化方法。
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