WO2016018074A1 - 효소처리 인삼유래 면역기능 증강용 다당분획물 및 이의 제조방법 - Google Patents

효소처리 인삼유래 면역기능 증강용 다당분획물 및 이의 제조방법 Download PDF

Info

Publication number
WO2016018074A1
WO2016018074A1 PCT/KR2015/007938 KR2015007938W WO2016018074A1 WO 2016018074 A1 WO2016018074 A1 WO 2016018074A1 KR 2015007938 W KR2015007938 W KR 2015007938W WO 2016018074 A1 WO2016018074 A1 WO 2016018074A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
ginseng
polysaccharide
treated
enzyme
present
Prior art date
Application number
PCT/KR2015/007938
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2016018074A8 (ko
Inventor
홍희도
이영철
조장원
이영경
김경탁
최상윤
성수경
김희정
Original Assignee
한국식품연구원
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 한국식품연구원 filed Critical 한국식품연구원
Priority to CN201580051570.6A priority Critical patent/CN107205461A/zh
Publication of WO2016018074A1 publication Critical patent/WO2016018074A1/ko
Publication of WO2016018074A8 publication Critical patent/WO2016018074A8/ko

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A23L33/105—Plant extracts, their artificial duplicates or their derivatives
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L29/00—Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof
    • A23L29/06—Enzymes
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L5/00—Preparation or treatment of foods or foodstuffs, in general; Food or foodstuffs obtained thereby; Materials therefor
    • A23L5/20—Removal of unwanted matter, e.g. deodorisation or detoxification
    • A23L5/25—Removal of unwanted matter, e.g. deodorisation or detoxification using enzymes
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K36/00—Medicinal preparations of undetermined constitution containing material from algae, lichens, fungi or plants, or derivatives thereof, e.g. traditional herbal medicines
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K36/00—Medicinal preparations of undetermined constitution containing material from algae, lichens, fungi or plants, or derivatives thereof, e.g. traditional herbal medicines
    • A61K36/18—Magnoliophyta (angiosperms)
    • A61K36/185—Magnoliopsida (dicotyledons)
    • A61K36/25—Araliaceae (Ginseng family), e.g. ivy, aralia, schefflera or tetrapanax
    • A61K36/258—Panax (ginseng)
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23V—INDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
    • A23V2200/00—Function of food ingredients
    • A23V2200/30—Foods, ingredients or supplements having a functional effect on health
    • A23V2200/324—Foods, ingredients or supplements having a functional effect on health having an effect on the immune system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23V—INDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
    • A23V2250/00—Food ingredients
    • A23V2250/20—Natural extracts
    • A23V2250/21—Plant extracts
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23V—INDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
    • A23V2250/00—Food ingredients
    • A23V2250/20—Natural extracts
    • A23V2250/21—Plant extracts
    • A23V2250/2124—Ginseng

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing an enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide fraction with enhanced immune enhancing effect and to a polysaccharide fraction prepared by the method, and more specifically to adding two or more enzymes including amylase and cellulase to ginseng.
  • Enzymatic treatment relates to a method of producing ginseng-derived polysaccharide fraction for immune activity enhancement and polysaccharide fraction prepared by the production method comprising the step of obtaining a polysaccharide fraction of molecular weight lOkDa or more from the enzyme-treated ginseng hydrolyzate.
  • Immunity refers to the ability of the immune system to involve and recognize them as antigens and to produce antibodies by producing specific antibodies when other substances, such as microorganism-like tissues that invade from the outside, invade from the outside.
  • the cells involved in the immune response include lymphocytes, macrophage, NK cel l and dendritic cells.
  • immunotherapy which promotes cytokine release from immune cells of living organisms and thereby necroses cancer cells. Since immunotherapy kills cancer cells by regulating the defense ability of the living body through induction and suppression of immune response, a greater effect can be expected than anticancer therapy with conventional drugs. Therefore, many attempts have been made to search for natural products having enhanced efficacy of immune activity from natural safety reported.
  • Ginseng (Panax ginseng C. A. Meyer) is a perennial herb belonging to the genus Ogalpiaceae, which is native to Korea and eastern Siberia, China.
  • the major physiologically active components of ginseng are saponins, polyacetylenes, phenols, essential oils, peptides, and polysaccharides. These pharmacological activities include saponins, central nervous inhibitors, antidiabetic, antistress, and anti-fatigue effects.
  • Plant-derived polysaccharides are well known as immune enhancing substances, and among them, polysaccharides isolated from ginseng have been reported to have anti-diabetic, hypoglycemic, promoting insulin secretion, immune enhancing activity such as lymphoid cell proliferation stimulation and anti-complementary activity.
  • an object of the present invention is to sequentially process the amylase and celase in ginseng; It is to provide a method for producing ginseng-derived polysaccharide fraction having an immune function enhancing activity comprising the step of obtaining a polysaccharide fraction of molecular weight lOkDa or more from the enzyme-treated ginseng hydrolyzate.
  • Another object of the present invention is to provide a ginseng-derived polysaccharide fraction having an immune function enhancing activity, which is prepared by the above method. Another object of the present invention to provide a food composition for enhancing immune function comprising the polysaccharide fraction as an active ingredient. Another object of the present invention to provide a pharmaceutical composition for enhancing immune function comprising the polysaccharide fraction as an active ingredient.
  • the present invention comprises the steps of sequentially treating amylase and celase to ginseng; It provides a method for producing a ginseng-derived polysaccharide fraction having an immune function enhancing activity comprising the step of obtaining a polysaccharide fraction of molecular weight lOkDa or more from the enzyme-treated ginseng hydrolyzate.
  • the present invention provides a ginseng-derived polysaccharide fraction having an immune function enhancing activity, which is prepared by the above method.
  • the present invention provides a food composition for enhancing immune function comprising the polysaccharide fraction as an active ingredient.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for enhancing immune function comprising the polysaccharide fraction as an active ingredient.
  • the present invention comprises the steps of sequentially treating the amylase and cellulase in ginseng; (B) provides a method for producing ginseng-derived polysaccharide fraction having an immune function enhancing activity comprising the step of obtaining a polysaccharide fraction of molecular weight lOkDa or more from the enzyme-treated ginseng hydrolyzate.
  • the manufacturing method of the present invention will be described by step.
  • step (a) ginseng is enzymatically treated.
  • the enzyme treatment step of the present invention is characterized in that the amylase and the cellulase treatment sequentially.
  • Ginseng (Panax ginseng CA Meyer) is a perennial herb belonging to the genus Ogalpiaceae, which is native to Korea and eastern Siberia in China.
  • the major physiologically active components of ginseng are saponins, polyacetylenes, phenols, essential oils, peptides, and polysaccharides. These pharmacological activities include saponin's central nervous system inhibition, antidiabetic, antistress, and anti-fatigue effects.
  • Freshly harvested ginseng is called ginseng, and steamed roots dried with steam are called heungsam.
  • Dried ginseng refers to dried ginseng, peeled and dried white ginseng, dried skin non-woven ginseng belongs to dried ginseng.
  • the ginseng of the present invention includes all Panax ginseng regardless of its pre-processed form.
  • the ginseng of the present invention may be ginseng or white ginseng. More preferably, it may be a ginseng powder or white ginseng powder in a processed form.
  • Amylase (amyl ase) refers to an enzyme that hydrolyzes starch.
  • amylase examples include a -amylase (a -l, 4-glucan-4-glucano hydrolase), ⁇ -amylase (a -1, 4-glucan mal to hydrolase), and ⁇ -amylase (amy log lucos idase), Amylase of the present invention is not particularly limited in kind, but may preferably be ⁇ -amylase.
  • Cellases are enzymes that hydrolyze cellulose.
  • Amylase and sallase are widely distributed in nature, such as higher plants, animals, microorganisms, amylase and cellulase of the present invention is not particularly limited in its origin, the amylase and cellulase derived from microorganisms are preferred.
  • the hydrolytic enzymes of the present invention can be purchased directly or isolated directly from higher plants, animals or microorganisms or sold commercially.
  • the amylase of the present invention may be SPEZYME XTRA derived from Baci l lus l i cheni formi s, and the celllase may be R0HAMENTCL from Tr choderma reesei.
  • enzyme treatment of the present invention two enzymes can be treated simultaneously or sequentially, but since cellulase and amylase have different temperatures at which they show activity, it is preferable to treat them sequentially.
  • Reaction conditions such as enzyme dosage, treatment temperature, time, pH, etc. may vary depending on the amount of ginseng extract to be treated, the type of salase or amylase administered, and the purity, and are not particularly limited as long as they exhibit the desired hydrolytic effect.
  • the enzyme treatment of the present invention is preferably by enzymatic treatment for 12 hours to 24 hours by adding salase, and then by enzymatic treatment for 6 hours to 24 hours by adding amylase.
  • the ginseng of the present invention can be used by cutting or powdering for the efficiency of the enzyme reaction, it can be enzymatic treatment by adding a suitable solvent such as distilled water.
  • step (b) a fraction of molecular weight lOkDa or more is obtained from the enzyme-treated ginseng hydrolysate.
  • step (b) a fraction of molecular weight lOkDa or more is obtained from the enzyme-treated ginseng hydrolysate.
  • (b3) may further comprise the step of separating and obtaining a fraction of molecular weight lOkDa or more from the crude polysaccharide.
  • step (bl) the residue is removed from the enzymatically treated ginseng hydrolyzate.
  • the residue removal method may be based on a method of removing solids from known mixtures such as centrifugation and f i ltrat ion. Preferably it can be by filtration.
  • the step (bl) of the present invention may be performed by a method of inactivating an enzyme contained in the enzyme-treated ginseng hydrolyzate, removing the residue by centrifugation, and separating the supernatant. have.
  • the deactivation treatment method is preferably by heat treatment, the hydrolyzate is 10 to 10 to a temperature of locrc to 120 ° c.
  • the method can be maintained for 30 minutes.
  • an organic solvent is added to the ginseng hydrolyzate from which the residue is removed to obtain precipitated crude polysaccharide.
  • the organic solvent may be ethanol.
  • Ethanol precipitation may be by a known ethanol precipitation method, and ethanol used for precipitation of ethane is preferably ethanol having a concentration of 60% to 953 ⁇ 4) (v / v) in combination with water. More preferably 70% to 953 ⁇ 4) (v / v).
  • step (b3) a fraction having a molecular weight of lOkDa or more is obtained from the crude polysaccharide obtained in step (b2).
  • the method for obtaining the fraction may be by a known method for separating the substance according to the molecular weight, for example, it may be carried out dialysis, electrophoresis and various column chromatography.
  • the chromatography is ion exchange chromatography, gel-infiltration chromatography Techniques such as chromatography, HPLC, reverse phase-HPLC, affinity column chromatography, and ultrafiltration can be removed alone or in combination.
  • the method for obtaining a fraction of the present invention may be a method of removing a substance having a target molecular weight or less from the crude polysaccharide by a dialysis method using a dialysis membrane.
  • the obtained fraction is a fraction having a molecular weight of lOkDa, preferably a fraction having a molecular weight of 10 kD or more and 500 kDa or less. More preferably, the fraction may have a molecular weight of 50 kDa or more and 400 kDa or less.
  • neutral polysaccharides relative to the total of the obtained fraction may be 70 to 80% by weight
  • uronic acid uronic acid
  • the uronic acid may be composed of galacturonic acid and glucuroni c acid
  • the neutral polysaccharide of the polysaccharide fraction may be rhamnose, fucose, arabinose, xylose, mannose, It may consist of galactose and glucose.
  • Neutral polysaccharide of the polysaccharide fraction is 2 to 10 mole%, rhamnose 10 to 25 mole%, galactose 15 to 45 mole%, glucose is 40 to 40% relative to the total neutral polysaccharide constituting the ginseng-derived polysaccharide fraction It can consist of 70 mole of polysaccharides, and can contain trace amounts of neutral polysaccharides such as fucose, xylose and mannose. According to the production method of the present invention it is possible to produce a polysaccharide fraction excellent in immune function enhancement effect.
  • the present invention provides a ginseng-derived polysaccharide fraction having an immune function enhancing activity, which is prepared by the method of the present invention.
  • the polysaccharide fraction of the present invention is characterized in that it is prepared by the method of the present invention, the immune function enhancement effect is compared to the ginseng-derived polysaccharide prepared by the conventional simple hydrothermal extraction method or enzyme alone treatment method great.
  • Immune function is the function of protecting life from diseases by detecting and killing pathogens and tumor cells in living organisms.
  • Immune function is innate immune and adaptive immune function, and innate immunity is an immune function that acts immediately when microorganisms and toxins enter the body successfully.
  • Lurkung immunity refers to stronger immune reactions, including immunological memory, which is a function of remembering the markers of antigens. It is specific to antigens and requires recognition of nonmagnetic antigens through an ant igen presentat ion process. Do it.
  • the polysaccharide fraction of the present invention has the effect of promoting the production of NO, TNF- ⁇ and IL-16, IL-12 of macrophages to enhance both innate immune and adaptive immune.
  • the polysaccharide fraction of the present invention does not have cytotoxicity and is easy to use in food or medicine.
  • Such effects of the present invention are well shown in one embodiment of the present invention.
  • amylase or celllase-treated group had superior immune function-enhancing activity as compared to the simple hydrothermal extract, protease, or pectinase-treated group, which is generally used in the preparation of polysaccharide fraction.
  • the amylase or celllase-treated group had superior immune function-enhancing activity as compared to the simple hydrothermal extract, protease, or pectinase-treated group, which is generally used in the preparation of polysaccharide fraction.
  • to prepare a polysaccharide fraction treated with amylase and sallase in parallel, and to enhance the immune function of the polysaccharide fraction treated with amylase or cellulase and the polysaccharide fraction treated with amylase and celllase Compared.
  • the polysaccharide fraction of the present invention was treated with macrophages and tested for cytotoxicity by measuring cell viability. As a result, it was confirmed that the polysaccharide fraction of the present invention is not cytotoxic. In another embodiment of the present invention, the polysaccharide fraction of the present invention was treated on macrophages to determine the effect on nitric oxide (NO) production.
  • NO nitric oxide
  • nitric oxide (NO) production amount of macrophages increased.
  • NO nitric oxide
  • the effect of the polysaccharide fraction of the present invention on the production of immune-related cytokine by treating macrophages As a result, when the polysaccharide fraction of the present invention was treated, it was confirmed that the amount of cytokine production such as TNF- ⁇ , IL-6, and IL-12 was greatly increased.
  • the present invention provides a food composition for enhancing immune function, comprising the polysaccharide fraction of the present invention as an active ingredient.
  • the food composition of the present invention is a functional food (funct ional food), nutritional supplements
  • Food compositions of this type can be prepared in various forms according to conventional methods known in the art.
  • the ginseng-derived polysaccharide fraction itself of the present invention may be prepared in the form of tea, juice, and drink for drinking, or granulated, encapsulated, and powdered.
  • the ginseng-derived polysaccharide fraction of the present invention may be prepared in the form of a composition by mixing with a known substance or active ingredient known to have an effect of enhancing immune function.
  • functional foods include beverages (including alcoholic beverages), fruits and processed foods (e.g.
  • ginseng-derived polysaccharide fraction of the present invention can be prepared by adding the ginseng-derived polysaccharide fraction of the present invention to proteins, retort foods, frozen foods, various seasonings (eg, miso, soy sauce, sauce, etc.).
  • the preferred content of the ginseng-derived polysaccharide fraction of the present invention in the food composition of the present invention is not limited thereto, but is preferably 0.01 to 50% by weight in the finally prepared food.
  • the ginseng-derived polysaccharide fraction of the present invention in the form of a food additive, it may be prepared and used in the form of a powder or a concentrate.
  • the composition of the present invention is effective in the prevention and improvement of diseases caused by reduced immune function, the diseases caused by reduced immune function include infectious diseases such as colds and inflammatory diseases, allergic diseases such as atopic dermatitis, chronic fatigue, and It is preferably one selected from the group consisting of cancer, but is not limited thereto, and any disease caused by the self functioning function known to those skilled in the art is included in the present invention.
  • the present invention provides a use for the preparation of an agent for enhancing immune function of the ginseng-derived polysaccharide fraction.
  • the present invention provides an immune function enhancing method comprising administering the ginseng-derived polysaccharide fraction to an individual in need thereof in an effective amount.
  • the term 'effective amount' refers to an amount that exhibits an effect of improving immune function, treating and preventing diseases caused by cancer and lowering of immunity.
  • the term 'subj ect' refers to an animal, preferably a mammal. It may be an animal, especially an animal including a human, or may be a cell, tissue, organ, etc. derived from the animal. The subject may be a patient in need of treatment.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for enhancing immune function comprising the polysaccharide fraction of the present invention as an active ingredient.
  • the pharmaceutical composition according to the present invention may contain the polysaccharide fraction of the present invention or a pharmaceutically acceptable salt thereof alone or may further contain one or more pharmaceutically acceptable carriers, excipients or diluents.
  • Pharmaceutically acceptable carriers may further include, for example, carriers for oral administration or carriers for parenteral administration.
  • Carriers for oral administration include lactose, starch and cellulose oil. Conductors, magnesium stearate, stearic acid, and the like.
  • carriers for parenteral administration may include water, suitable oils, saline, aqueous glucose and glycols, and the like, and may further include stabilizers and preservatives. Suitable stabilizers include antioxidants such as sodium bisulfite, sodium sulfite or ascorbic acid.
  • Suitable preservatives include benzalkonium chloride, methyl- or propyl-parabens and chlorobutane.
  • Other pharmaceutically acceptable carriers may be referred to those described in the following literature (Remingt's Pharmaceutical Sciences, 19th ed., Mack Publ i shing Company, East on, PA, 1995).
  • the pharmaceutical composition for enhancing immune function of the present invention can be administered to any mammal, including humans. For example, it can be administered orally or parenterally.
  • Parenteral administration methods include, but are not limited to, intravenous, intramuscular, intraarterial, intramedullary, intradural, intracardiac, transdermal, subcutaneous, intraperitoneal, intranasal, intestinal, topical, sublingual or rectal administration.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may be administered transdermally.
  • transdermal administration refers to administering the pharmaceutical composition of the present invention to cells or skin so that the active ingredient contained in the composition of the present invention is delivered into the skin.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may be prepared in an injectable formulation and administered by lightly prying the skin with a 30-gauge thin needle or by directly applying it to the skin. have.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may be formulated into a preparation for oral or parenteral administration according to the route of administration as described above.
  • compositions of the present invention are formulated using powders, granules, tablets, pills, sugar tablets, capsules, solutions, gels, syrups, slurries, suspensions, etc. using methods known in the art.
  • oral formulations can be obtained by tablets or dragees by combining the active ingredient with a solid brother and then grinding it, adding suitable auxiliaries and processing it into a granular mixture.
  • suitable excipients include sugars, corn starch, wheat starch, rice starch and potato starch, including lactose, dextrose, sucrose, solbi, mantle, xili, erysri and malty.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may further include an anticoagulant, a lubricant, a humectant, a perfume, an emulsifier, and a preservative.
  • Formulations for parenteral administration may be formulated by methods known in the art in the form of injections, creams, lotions, external ointments, oils, humectants, gels, aerosols and nasal inhalants. These formulations are statements that are commonly known prescriptions for all pharmaceutical chemistries.
  • the total effective amount of the polysaccharide fraction of the present invention may be administered to a patient in a single dose, and may be administered by a fraction ionated treatment protocol administered for a long time in a multiple iple dose. Can be.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may vary the content of the active ingredient depending on the extent of the disease.
  • the preferred total dose of glycoprotein fraction of the present invention may be from about 0.01 to 1,000 mg, most preferably 0.1 ug to 100 mg per kg of patient body weight per day.
  • the dosage of the polysaccharide fraction of the present invention may be determined by considering various factors such as the age, weight, health condition, sex, severity of the disease, diet and excretion rate, as well as the route of administration and the number of treatments of the pharmaceutical composition. Since the effective dosage is determined, one of ordinary skill in the art will be able to determine the appropriate effective dosage for the particular use of the polysaccharide fraction of the present invention as an immune enhancing agent.
  • the pharmaceutical composition according to the present invention is not particularly limited to its formulation, route of administration and method of administration as long as the effect of the present invention is shown.
  • the composition of the present invention is effective in the prevention and treatment of diseases caused by reduced immune function
  • the diseases caused by reduced immune function include infectious diseases such as cold and allergic diseases such as inflammatory diseases, atopy, chronic fatigue, and It is preferably any one selected from the group consisting of cancer, but is not limited thereto, and all diseases caused by reduced immune function known to those skilled in the art are included in the present invention.
  • the present invention includes the steps of sequentially enzymatically treating two or more enzymes including amylase and sallase to ginseng and obtaining a polysaccharide fraction of molecular weight lOkDa or more from the enzyme-treated ginseng hydrolysate. It provides a method for producing ginseng-derived polysaccharide fraction having an immune function enhancing activity and a polysaccharide fraction prepared by the method.
  • the production method of the present invention can economically prepare a polysaccharide fraction excellent in the effect of increasing the immune activity through a complex enzyme treatment process comprising amylase and cellase, and the polysaccharide fraction of the present invention can be prepared in conventional ginseng-derived polysaccharide. Compared with the immune boosting effect, it is effective in producing foods for immune boosting.
  • Figure 2 is a ginseng-derived polysaccharide fraction manufacturing process by the parallel enzyme treatment of the present invention.
  • FIG. 3 is a graph showing the results of cytotoxicity test measuring the change in the proliferation rate of mouse peritoneal macrophage by enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide sample (Con: non-treated group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide-treated group; FGW0: enzyme-free polysaccharide extract treatment group; FGEzl: pectinase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz2: cell lyase treatment polysaccharide fraction treatment group; FGEz3: amylase treatment polysaccharide fraction treatment group; FGEz4: endoprotease treatment polysaccharide fraction treatment group ;)
  • Fig. 4 is a graph showing changes in cytokine IL-6 production capacity of mouse peritoneal macrophages by enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide samples (Con: untreated group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide-treated group; FGW0: enzyme Untreated polysaccharide extract treated group; FGEzl: pectinase treated polysaccharide fraction treated group; FGEz2: sallase treated polysaccharide fraction treated group; FGEz3: amylase treated polysaccharide fraction treated group; FGEz4: endoprotease treated polysaccharide fraction treated group; a, b, c, d, ab, be: Characters that are significant and those that do not have the same character are statistically significant).
  • Fig. 5 is a graph showing the results of measuring changes in cytokine IL-12 production capacity of mouse peritoneal macrophages by enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide samples (Con: untreated group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide-treated group; FGW0: Enzyme-free polysaccharide extract treatment group; FGEzl: pectinase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz2: cellulase treatment polysaccharide fraction treatment group; FGEz3: amylase treatment polysaccharide fraction treatment group; FGEz4: endoprotease treatment polysaccharide fraction treatment group; a, b, c, ab: Characters of significance, having the same characters Results are not statistically significant.
  • Fig. 6 is a graph showing the results of measuring changes in the production capacity of cytokine IL-6 in Raw 264.7 cells by enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide sample (Con: untreated group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide-treated group; FGW0: Enzyme-free polysaccharide extract treatment group; FGEzl: pectinase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz2: cellulase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz3: amylase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz4: endoprotease treatment polysaccharide fraction treatment group; a, b, c, ab: results that do not have the same character as a character that indicates the significance is that the i significant statistically).
  • FIG. 7 is a graph showing the results of measuring changes in the production capacity of cytokine IL-12 in Raw 264.7 cells by enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide samples (Con: untreated group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide-treated group; FGTO: Enzyme-free polysaccharide extract treatment group; FGEzl: pectinase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz2: cellellase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz3: amylase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz4: endoprotease treatment polysaccharide fraction treatment group; a , b, c, d, ab: Results that do not have the same letter as a letter indicating significance are statistically significant).
  • FIG. 8 is a result of measuring molecular weight distribution of enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide sample by HPLC experiment (STD: result of measuring standard material used in experiment; A: FGTO (enzyme-free polysaccharide extract treatment group). B: Result of measuring FGEz2 (salase treated polysaccharide fraction); C: Result of measuring FGEz3 (amylase treated polysaccharide fraction).
  • FIG. 9 is a graph showing the results of comparison of changes in the production capacity of cytokine IL-6 in mouse peritoneal macrophages by enzyme-treated and concurrently treated ginseng-derived polysaccharide samples (Con: non-treated group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide treatment) Group; FGEz2: Cellulase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz3: Amylase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz2 + 3: Polysaccharide fraction treatment group treated with both cellase and amylase; a, b, c, d: Results that do not have the same letter as letters are statistically significant).
  • FIG. 10 is a graph showing the results of comparison of changes in cytokine IL-12 production capacity of mouse peritoneal macrophages by enzyme-treated and concurrently treated ginseng-derived polysaccharide samples (Con: untreated group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide treatment) Group; FGEz2: Cellulase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz3: Amylase-treated polysaccharide fraction treatment group; FGEz2 + 3: Polysaccharide fraction treatment group in parallel treatment with celasase and amylase; a, b, c: Character showing significance Results that do not have the same letter are statistically significant).
  • Figure 11 Raw 264.7 by ginseng-derived polysaccharide sample treated with enzyme alone and in parallel The result of comparative measurement of cytokine IL-6 production capacity of cells (Con: no treatment group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide treatment group; FGEz2: cellulase treatment polysaccharide fraction treatment group; FGEz3: amylase treatment polysaccharide fraction treatment) Group; FGEz2 + 3: polysaccharide fraction treatment group with parallel treatment of celase and amylase; a, b, c, ab: results that do not have the same letter as a letter indicating significance are statistically significant).
  • Fig. 12 is a graph showing the results of comparison of changes in the production capacity of cytokine IL-12 of Raw 264.7 cells by enzyme-treated and concurrently treated ginseng-derived polysaccharide samples (Con: no treatment group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide treatment group).
  • FGEz2 Cellulase-treated polysaccharide fraction treated group;
  • FGEz3 Amylase-treated polysaccharide fraction treated group;
  • FGEz2 + 3 Cellulase and amylase treated polysaccharide fraction treated group; a, b, c, ab: Results that do not have the same letter are statistically significant).
  • FIG. 13 is a graph showing the results of comparing changes in the production capacity of cytokine IL-10 in Raw 264.7 cells by enzyme-treated and concurrently treated ginseng-derived polysaccharide samples (Con: no treatment group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide treatment group)
  • FGEz2 Cellulase-treated polysaccharide fraction treated group
  • FGEz3 Amylase-treated polysaccharide fraction treated group
  • FGEz2 + 3 Cellulase and amylase treated polysaccharide fraction treated group
  • a, b, c, ab Results that do not have the same letter are statistically significant).
  • Fig. 14 is a graph showing the results of comparison of changes in the production capacity of cytokine TNF- ⁇ in Raw 264.7 cells by enzyme-treated and concurrently treated ginseng-derived polysaccharide samples (Con: no treatment group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide treatment group).
  • FGEz2 Cellulase-treated polysaccharide fraction treatment group;
  • FGEz3 Amylase-treated polysaccharide fraction treatment group;
  • FGEz2 + 3 Cellulase and amylase treatment polysaccharide fraction treatment group; a, b, c, ab, be: Results that do not have the same letter as a letter are statistically significant).
  • 15 is a process chart of ginseng-derived polysaccharide fraction by the parallel enzyme treatment of the present invention.
  • Fig. 16 is a measurement result comparing the molecular weight distribution of ginseng-derived polysaccharide sample by enzyme parallel treatment by HPLC experiment (STD: result of measuring standard material used in experiment; A: FGW0 (enzyme-free polysaccharide extract treatment) B): FGEzO (a polysaccharide fraction treatment group treated with celases and amylases)).
  • Fig. 17 is a graph showing the results of cytotoxicity test for measuring the change in proliferation rate of Raw 264.7 cells by the enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide sample (Con: untreated group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide-treated group; FGW0: enzyme-free polysaccharide extract) Treatment group; FGEzO: Cell Polysaccharide fraction treatment group in parallel treatment of lerase and amylase).
  • Fig. 18 is a graph showing changes in cytokine IL-6 production capacity of Raw 264.7 cells by enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide samples (Con: untreated group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide-treated group; FGW0: enzyme free) Treated polysaccharide extract treated group; FGEzO: treated polysaccharide fraction treated with cell lase and amylase).
  • Fig. 19 is a graph showing the results of measuring changes in cytokine TNF- ⁇ production capacity of Raw 264.7 cells by enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide sample (Con: untreated group; LPS: endotoxin Lipopolysaccharide-treated group; FGW0: enzyme Untreated polysaccharide extract treatment group; FGEzO: polysaccharide fraction treatment group treated with cell larase and amylase).
  • the ginseng (raw ginseng) used in this experiment was purchased for 4 years old ginseng produced in 2013 and used for the experiment.
  • a simple hot water extraction method to separate polysaccharides is as follows. 100 g of fresh ginseng was triturated by adding distilled water 3 times (w / v), extracted at 100 ° C, and then centrifuged at 4 ° C (Mega 17R, Hanil Science Industrial Co. Ltd., Inchun, Korea). Centrifugation was performed at 6,500Xg for 20 minutes.
  • Hydrolytic enzymes used in enzyme treatment include RAPIDASE C80MAX (Pectinase, from Aspergillus niger; Ezl), ROHAMENTCL (Cel lulase, from Tr choderma reesei; Ez2), SPEZYME XTRA (a -amylase, from Bacillus 1 icheni formis; Ez3 ) And 4 species of PROTEX 6L (Endo-Protease, from Bacillus 1 icheni formis; Ez4) were purchased from Bision biochem (Bision corporation, Gyeonggi-do). Polysaccharide fractions using the enzyme treatment was prepared as follows.
  • 100 g of fresh ginseng was triturated by adding distilled water 3 times (w / v), and heated at 101 ° C for 20 minutes, and then hydrolyzed four kinds (Ezl, Ez2, Ez3, Ez4) under the conditions of [Table 1]. Each or two or more were treated in parallel. Thereafter, heat treatment was performed at 90 to 100 ° C for 20 minutes to inactivate the remaining hydrolase, followed by centrifugation at 6,500Xg for 20 minutes to remove the residue. It was added and left overnight to precipitate polysaccharides.
  • the produced precipitate was dissolved in a small amount of distilled water, and the low molecular weight material was removed using a dialysis membrane (Membrane Fi Iteration Products, INC., Seguin Texas, USA; ⁇ CO 6,000 to 8,000), followed by freeze drying to obtain an enzymatically treated polysaccharide fraction. ([FIG. 2]).
  • a dialysis membrane Membrane Fi Iteration Products, INC., Seguin Texas, USA; ⁇ CO 6,000 to 8,000
  • mice peritoneal macrophage cells used in this experiment were injected with 1 mL of 5% thioglycollate medium into the abdominal cavity of BALB / c mice, and the macrophage induced within 72-96 hours was recovered using PBS. After washing 2-3 times with RPMI 1640 medium and the number of cells was adjusted to 2.5X10 6 cells / mL and incubated in 96 well piate (NUNC Co., Roskilde, Denmark). As a medium, 10% (v / v) FBS and 1% ( ⁇ / ⁇ ) penicillin-streptomycin were mixed with RPMI 1640. Then, samples diluted to various concentrations were added and maintained under constant conditions in 37t :, 5% CO 2 incubator.
  • the toxicity of the sample to each cell was determined by MTT assay (Hansen MB, Nielsen SE, Berg K. Re-examination and further development of a precise and rapid dye method for measuring cell growth cell kill.Journal of Immunological Methods, 1989, 119: 203-210.). After removing the supernatant of the 96 well plate, 0.5 mg / mL MTT solution was added to incubate for 4 hours to form a formazan. Then, the supernatant was removed, DMS0 was added to each well to dissolve formazan, and the absorbance was measured at 540 nm using an ELISA reader (Infinite M200 Pro, TECAN, M, Switzerland).
  • the polysaccharide extract samples FGW0 and FGEzl ⁇ 4 in cultured cells were treated with cells at concentrations of 1, 10 and 100 ug / mL, respectively, and then cultured. As shown. All of the mouse peritoneal macrophage cells, except the FGEz4 100 ug / mL treatment group, showed over 80% survival rate, which did not significantly affect cytotoxicity within the concentration range of 1-100 ug / mL. FGEz4 also did not significantly affect cell survival within the margin of error with a 78% survival rate at 100 ug / mL.
  • Samples grafted with medium were treated to cells at different concentrations, incubated for 24 hours in a 37 ° C, 5% C0 2 incubator, and the cytokine and amounts in the supernatant induced and secreted by macrophage were measured using the ELISA kit. Measured according to. That is, the anti-cytokine capture antibody was diluted in a coating buf fer (0.2 M Sodium Phosphate, pH 6.5), put into a 96 well plate, and left overnight at 4 ° C. Plates were washed three times with PBS / Tween solution in which Tween 20 was added 0.05% (v / v) in PBS.
  • a coating buf fer 0.2 M Sodium Phosphate, pH 6.5
  • Assay diluent PBS with 10% FBS
  • PBS with 10% FBS Assay diluent
  • the culture supernatant was put in each well and allowed to stand at room temperature for 2 hours.
  • the biotinylated antibody as a detection antibody and the st ret avi din-horseradish peroxidase conjugate as an enzyme reagent were diluted in assay diluent (PBS with 10% FBS) and placed on a plate for 1 hour at room temperature. .
  • the substrate solution was added and left in the dark for 30 minutes. 2 N sulfuric acid solution as a stop solution was added to stop the reaction, and the absorbance was measured at 450 nm using an ELISA reader.
  • Macrophage is distributed in almost all tissues in the body and plays a role in detecting and removing foreign substances and wastes. During this process, macrophage secretes various cytokine and responds to the immune response. It is known to regulate. Cytokine is a protein mediator produced by immune cells and mediates the cooperation between several immune cells against foreign antigens. Therefore, their production and secretion are known to be important for the regulation of immune responses. IL-1, IL-6, IL-10, IL-12, TNF- ⁇ are known as representative immune response cytokines secreted by macrophage (Wang H, Actor JK, Indrigo J, 01 sen M, Dasgupta A. 2003.
  • Asian and Siberian ginseng as a potential modulator of immune function An in vitro cytokine study using mouse macrophage. Clin Chim Acta 327: 123-128). Measurement of cytokine production of mouse peritoneal macrophage by stimulation of fresh ginseng-derived polysaccharide by ELISA method promoted IL-6 and IL-12 production, all of which increased concentration-dependent activity. IL-6 all samples were higher than the control group, enzyme treatment group (FGEzl ⁇ 4) showed a higher activity than FGW0 (Fig. 4). Among them, it was confirmed that FGEz2 and FGEz3 showed about 2.2 times higher activity than FGW0 at the concentration of 100 ug / mL. In particular, FGEz2 showed a big difference in the 10 ug / mL norm, and it was confirmed that IL-6 activity was shown to be large at a relatively low concentration.
  • the activity of the enzyme treatment sample group was higher than that of the control group (Con) and FGTO ([FIG. 5]).
  • FGEz2 was 434 pg / mL
  • FGEz3 was 180 pg / mL
  • FGEz4 was 177 pg compared to FGTO, which showed 87 pg / mL at a relatively low concentration of 10 ug / mL.
  • the value of / mL was shown, showing high values in turn.
  • FGEz2 showed high activity at low concentrations and high immune activity in low amounts.
  • Raw 264.7 cell line KTCC No. 40071 was used by the Korea Cell Line Bank (KTCC, Seoul). Cells were cultured at 2.0 ⁇ 10 5 cells / mL and cultured in DMEM medium with 10% (v / v) FBS and 1% (v / v) penici 11 in— streptomycin. Since the samples were added to various concentrations were incubated in 37 ° C, 5% C0 2 incubator.
  • IL-6 enzyme treatment compared to FGTO sample group (FGEzl ⁇ 4) It was confirmed that this showed high activity, among which FGW0 and In comparison, FGEz2 and FGEz3 showed significant differences in IL-6.
  • FGEz2 IL-6 was increased by about 5 to 10 times at 100 and 150 ug / mL concentrations
  • FGEz3 was increased by about 9 to 11 times at 100 and 150 ug / raL concentrations.
  • IL-12 also showed a similar pattern as IL-6.
  • FGEz4 and FGEz3 showed a significant difference in activity at all concentrations, except that FGEz4 showed slightly higher activity at 150 ug / mL (FIG. 7). It was confirmed that the activity of the group (FGEzl ⁇ 4) is increased, and in particular, the activities of FGEz2 and FGEz3 were generally high. Therefore, it was judged that it is necessary to check whether the sample obtained through the parallel treatment of the two enzymes shows the difference in activity compared to the single enzyme treatment.
  • the molecular weight of the purified polysaccharide was measured by comparing Pul lulan Standard with a standard curve obtained using Fluka products (molecular size; 10K, 48.8K, 366K) as a standard.
  • FGW0 hydrothermally extracted polysaccharide extract
  • the polymer fraction having a molecular weight of 10 K or more was divided into three, and two and one polymer fractions having 10 K or more were subjected to cel lulase (Ez2) enzyme treatment.
  • the molecular weight distribution was similar to that of the low molecular weight fractions.
  • Ez3 enzymatically treated with a _amylase
  • FGEz2 + 3 an enzyme-treated sample, showed 2033 pg / mL at the concentration of 100 ug / mL, which was 1.8 times higher than FGEz2 and 1. 1 times higher than FGEz3.
  • Parallel treatment (FGEz2 + 3) was found to increase the activity compared to the single enzyme treatment (FGEz2, FGEz3).
  • IL-12 also showed higher activity in enzyme-treated sample groups FGEz2, FGEz3, and FGEz2 + 3 than FGW0.
  • FGEz2 + 3 an enzyme-treated sample, showed a value of 683 pg / mL at a concentration of 100 ug / mL, which was 1.5 times higher than FGEz2 and 1.2 times higher than FGEz3, showing the highest activity. It was confirmed that the treated samples increased the activity of IL-12 compared to the single enzyme treated samples.
  • cytokine production of raw 264.7 cells by stimulation of polysaccharide-treated ginseng-derived polysaccharide was found to increase IL-6 and IL-12 levels in a dose-dependent manner.
  • IL-6 was higher in all samples than in the control group, and it was confirmed that the enzyme-treated samples FGEz2, FGEz3, and FGEz2 + 3 showed higher activity than FGW0.
  • FGEz2 + 3 a parallel enzyme treatment sample, exhibited 646 pg / mL at the concentration of 150 ug / mL, which was 1.3 times higher than FGEz2 and 1.2 times higher than FGEz3, showing the highest activity. Treatment was found to increase activity compared to monoenzyme treatment.
  • IL-12 also showed higher activity in enzyme-treated sample groups FGEz2, FGEz3, and FGEz2 + 3 than FGW0.
  • FGEz2 + 3 a parallel enzyme treatment sample, showed 563 pg / mL at the concentration of 100 ug / mL, which is 1.45 times (45%) than FGEz2 (389 g / mL) and FGEz3 (483 pg / mL), respectively.
  • the FGEz2 + 3 showed 659 pg / mL, which was 1.6 times higher than the FGEz2 (412 pg / mL). 644 pg / mL).
  • the results showed that FGEz2 + 3 showed the greatest activity, which increased the activity compared to the single enzyme treatment.
  • IL-10 showed a concentration-dependent increase except for FGTO, and showed higher activity of FGEz2, FGEz3, and FGEz2 + 3 than FGW0 at concentrations of 100 ug / mL or higher.
  • FGEz2 and FGEz2 + 3 have significant values Although the FGEz2 + 3 value was slightly higher, it was confirmed that the cytokine activity was increased to a certain level or higher when the concurrent enzyme treatment was performed.
  • TNF- ⁇ was not significantly different between FGTO, FGEz2, and FGEz3, respectively, but it was confirmed that the activity increased in parallel with enzyme treatment with FGEz2 + 3. This seems to reflect the fact that the increase in immune activity that could not be achieved by mono-enzyme treatment could be achieved by parallel enzyme treatment.
  • FGEz2 + 3 sample obtained through parallel enzyme treatment showed changes in activity in most cytokine that surpassed the activities of FGEz2 and FGEz3 obtained by single enzyme treatment, and did not affect cell death. It is considered that it can be developed as an effective immunologically active material.
  • the manufacturing process of the new immuno-promoting polysaccharide material (FGEzO) derived from enzyme-treated ginseng with high immune activity is the same as in [Fig. FGEzO) was prepared.
  • Polysaccharide fractions having a molecular weight of 10K or more were obtained and dried by a method such as lyophilization (or spray drying) to obtain a fresh ginseng polysaccharide fraction (FGEzO) having enhanced immunity enhancing activity.
  • FGEzO fresh ginseng polysaccharide fraction
  • the physicochemical component characteristics of the enzyme-treated polysaccharide fraction (FGEzO) prepared according to the above-described process and the molecular weight distribution by HPLC were compared with the hydrothermal extract (FGW0).
  • the results of examining the characteristics of these physicochemical components were shown in [Table 2].
  • Neutral sugar content of FGW0 is 67.7% acidic sugar 30.4%, protein 1.4%, KD0 0.4 3 ⁇ 4.
  • Neutral sugar was 73.8% in the case of enzyme-treated fraction (FGEzO), which is higher than FGW0.
  • the acidic sugar content was 24.8% and the protein content was 0.8%, while the KD0 content was not changed to 0.5%.
  • the cytokine production capacity of Raw 264.7 cells of the novel polysaccharide material prepared by the enzymatic concomitant treatment was measured by ELISA method as in ⁇ Example 2-3>. As a result, it was confirmed that the secretion of IL-6, TNF- ⁇ increases in a concentration-dependent manner. As shown in FIG. 18, IL-6 was higher in all samples than in the control group, and the new polysaccharide FGEzO showed higher activity at all concentrations than in FGW0.
  • the new polysaccharide FGEzO showed the values of 169, 363 and 1051 pg / mL, respectively, at concentrations of 50, 100 and 150 ug / mL, which showed a two-fold increase in activity in all concentration ranges than FGW0.
  • the statistical results showed that all showed a significant difference, indicating that the immune activity of the new polysaccharide material obtained through parallel treatment with enzyme was more effective than the simple heat extract (FGTO).
  • TNF-a also confirmed that the new polysaccharide FGEzO showed high activity at all concentrations compared to FGW0.
  • the new polysaccharide FGEzO showed 3340, 3674 and 4332 pg / mL at the concentrations of 50, 100 and 150 ug / mL, respectively, which was more than doubled in all concentration ranges than FGW0.
  • the activity increased more than four-fold.
  • the increase in the value was relatively small, indicating that the activity of the sample was comparable to that of the positive control group, LPS. Seems to be.
  • polysaccharides can stimulate immune function that is considered beneficial to the human body.
  • the polysaccharide was isolated by treating the ginseng in parallel with the enzyme, it was confirmed that an excellent immunoactive polysaccharide can be obtained compared to the simple hydrothermal extraction method.
  • the present invention comprises the steps of sequentially processing the amylase and cellulase in ginseng, and obtaining a polysaccharide fraction of molecular weight lOkDa or more from the enzyme-treated ginseng hydrolysate, enzyme-treated ginseng-derived polysaccharide having an immune function enhancing activity It provides a fraction production method and a polysaccharide fraction produced by the production method.
  • the production method of the present invention can economically prepare a polysaccharide fraction having excellent effect of increasing immune activity through a complex enzyme treatment process including amylase and cellase, and the polysaccharide fraction of the present invention is higher than that of a conventional ginseng-derived polysaccharide. It is effective in the preparation of foods for immune boosting because of its excellent immune boosting effect, and thus has high industrial applicability.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Natural Medicines & Medicinal Plants (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Alternative & Traditional Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)

Abstract

본 발명은 면역증강효과가 강화된 효소처리 인삼 유래 다당 분획물 제조 방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 다당분획물에 관한 것으로 보다 구체적으로는 인삼에 아밀라제 및 셀룰라제를 포함하는 2종 이상의 효소를 순차적으로 부가하여 효소처리하는 단계; 및 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물로부터 분자량 10kDa 이상의 다당 분획물을 수득하는 단계를 포함하는 면역기능 증강 활성을 가진 인삼유래 다당분획물 제조방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 다당분획물에 관한 것이다. 본 발명의 제조방법은 아밀라제 및 셀룰라제를 포함하는 복합효소 처리 공정을 통하여, 면역활성 증가 효과가 우수한 다당분획물을 경제적으로 제조할 수 있으며, 본 발명의 다당분획물은 기존의 인삼 유래 다당에 비하여 면역증강 효과가 우수하므로 면역증강용 식품 제조에 효과적이다.

Description

【명세서】
【발명의 명칭】
효소처리 인삼유래 면역기능 증강용 다당분획물 및 이의 제조방법 【기술분야】
본 출원은 2014년 7월 29일에 출원된 대한민국 특허출원 제 10-2014-0096693 호 (출원번호)를 우선권으로 주장하고， 상기 명세서 전체는 본 출원의 참고문헌이 다. 본 발명은 면역증강효과가 강화된 효소처리 인삼유래 다당 분획물 제조 방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 다당 분획물에 관한 것으로 보다 구체적으로는 인 삼에 아밀라제 및 셀를라제를 포함하는 2종 이상의 효소를 부가하여 효소처리하는 단계; 및 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물로부터 분자량 lOkDa 이상의 다당 분획 물을 수득하는 단계를 포함하는 면역활성 증강용 인삼유래 다당분획물 제조방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 다당분획물에 관한 것이다.
【배경기술】
면역이란 인체 내에서 외부로부터 침입하는 미생물 동종의 조직 등의 다른 물질, 특이 세포가 발생하면 면역계가 관여하여 이들을 항원으로 인식하여 특이하 게 반응하여 항체를 생산하는 능력을 나타냄으로서 개체의 항상성을 유지하려는 현 상을 말하며， 면역 반응에 관여하는 세포는 임파구， macrophage , NK cel l , 수지상 세포 등이 있다. 최근 생체의 면역세포로부터 cytokine 방출을 촉진시켜 암세포를 괴사시키는 면역요법이 주목받고 있다. 면역요법은 면역반웅의 증강 및 억제 유도 를 통해 생체의 방어능력을 조절함으로써 암세포를 사멸하기 때문에 기존의 약물에 의한 항암치료법보다 더 큰 효과를 기대할 수 있다. 따라서 안전성이 보고된 천연 물로부터 면역활성 증진 효능을 갖는 천연물을 탐색하고자 하는 시도가 많이 이루 어지고 있다.
인삼 (Panax ginseng C . A. Meyer )은 오갈피나무과에 속하는 다년생 초본으로 한국, 중국 시베리아 동부에서 자생하는 식물이다. 인삼의 주요 생리활성 성분으로 는 사포닌， 폴리아세틸렌， 페놀성분， 정유성분， 펩타이드， 다당체 성분 등이 있으 며， 이들의 약리활성으로 사포닌의 중추신경억제， 항당뇨, 항스트레스, 항피로 효 과와 폴리아세틸렌의 항암활성， 페놀성분의 항산화， 항암, 미백， 혈당강하 활성이 알려져 있다. 식물체 유래 다당체는 면역증강 물질로 잘 알려져 있으며, 그중에서 도 인삼에서 분리한 다당체는 항당뇨, 혈당저하， 인슐린 분비 촉진과 함께 림프계 세포 증식 자극, 항보체 활성과 같은 면역 증강 활성이 보고되어 있다.
홍삼유래 산성다당체의 면역증진 효능에 대해서는 많이 알려져 있으나， 흥삼 을 포함한 인삼 유래 다당체의 생산기술에 관한 연구가 활발히 진행되지 아니하여， 일반적인 식물유래 다당체 분리 공정에 따라 생산되고 있는 실정이다. 따라서 효소 공학적 기술， 당쇄구조의 변형 등의 부가기술을 적용하여 기능성 다당체의 대량생 산과 함께 식품의 가공공정상 품질을 개선하는 방법의 개발이 필요한 실정이다.
【발명의 상세한 설명】
【기술적 과제】
본 발명자들은 면역증강 활성이 강화된 다당분획물을 경제적으로 제조할 수 있는 방법에 관하여 연구하던 중 인삼 추출물을 아밀라제 및 샐를라제로 병행 효 소 처리하여 다당분획물을 제조하는 경우 고가의 분리 정제 공정이 없이도， 면역증 강 활성이 강화된 다당분획물을 제조할 수 있다는 것을 밝혀내어 본 발명을 완성하 였다. 따라서 본 발명의 목적은 인삼에 아밀라제 및 셀를라제를 순차적으로 처리하 는 단계; 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물로부터 분자량 lOkDa 이상의 다당 분획 물을 수득하는 단계를 포함하는 면역기능 증강 활성을 가진 인삼유래 다당분획물 제조방법을 제공하는 것이다. 본 발명의 다른 목적은 상기 방법에 의해 제조되는 것을 특징으로 하는 면역 기능 증강 활성을 가진 인삼유래 다당분획물을 제공하는 것이다. 본 발명의 다른 목적은 상기 다당분획물을 유효성분으로 포함하는 면역기능 증강용 식품 조성물을 제공하는 것이다. 본 발명의 다른 목적은 상기 다당분획물을 유효성분으로 포함하는 면역기능 증강용 약학적 조성물을 제공하는 것이다.
【기술적 해결방법】 상기의 목적을 달성하기 위해 본 발명은 인삼에 아밀라제 및 셀를라제를 순 차적으로 처리하는 단계; 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물로부터 분자량 lOkDa 이상의 다당 분획물을 수득하는 단계를 포함하는 면역기능 증강 활성을 가진 인삼 유래 다당분획물 제조방법을 제공한다. 본 발명의 다른 목적을 달성하기 위해 본 발명은 상기 방법에 의해 제조되는 것을 특징으로 하는 면역기능 증강 활성을 가진 인삼유래 다당분획물을 제공한다. 본 발명의 다른 목적을 달성하기 위해 본 발명은 상기 다당분획물을 유효성 분으로 포함하는 면역기능 증강용 식품 조성물을 제공한다. 본 발명의 다른 목적을 달성하기 위해 본 발명은 상기 다당분획물을 유효성 분으로 포함하는 면역기능 증강용 약학적 조성물을 제공한다. 이하 본 발명을 상세히 설명한다. 본 발명은 (a) 인삼에 아밀라제 및 셀를라제를 순차적으로 처리하는 단계; (b) 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물로부터 분자량 lOkDa 이상의 다당 분획물을 수득하는 단계를 포함하는 면역기능 증강 활성을 가진 인삼유래 다당분획물 제조방 법을 제공한다. 이하 본 발명의 제조방법을 단계에 따라 설명한다.
(a) 인삼에 아밀라제 및 샐를라제를 순차적으로 처리하는 단계;
(a) 단계에서는 인삼에 효소처리를 한다. 본 발명의 효소처리단계는 아밀라 제 및 셀를라제를 순차적으로 처리하는 것을 특징으로 한다.
인삼 (Panax ginseng C. A. Meyer )은 오갈피나무과에 속하는 다년생 초본으로 한국， 중국 시베리아 동부에서 자생하는 식물이다. 인삼의 주요 생리활성 성분으로 는 사포닌， 폴리아세틸렌， 페놀성분， 정유성분， 펩타이드, 다당체 성분 등이 있으 며， 이들의 약리활성으로 사포닌의 중추신경억제， 항당뇨, 항스트레스， 항피로 효 과와 폴리아세틸렌의 항암활성, 페놀성분의 항산화， 항암， 미백， 혈당강하 활성이 알려져 있다. 인삼은 그 가공 형태에 따라 다양한 이름으로 불린다. 갓 수확한 인 삼은 수삼이라 하며， 뿌리를 껍질째 수증기로 찌서 말린 것을 흥삼이라 한다. 건삼 은 수삼을 말린 것을 말하며, 껍질을 벗겨 말린 백삼， 껍질을 벗기지 않고 말린 피 부직삼이 건삼에 속한다. 본 발명의 인삼은 그 사전 가공 형태에 상관없이 모든 인 삼 (Panax ginseng)을 모두 포함하며， 바람직하게는 본 발명의 인삼은 수삼 또는 백 삼일 수 있다. 더욱 바람직하게는 가공형태인 수삼분말 또는 백삼분말일 수 있다. 아밀라제 (amyl ase)는 전분 (starch)을 가수분해하는 효소를 말한다. 아밀라제 의 종류에는 a -amylase( a -l , 4-glucan-4-glucano hydrolase) , ^ -amylase( a -1 , 4- glucan mal to hydrolase) , γ -amylase (amy log lucos idase)가 있으며 , 본 발명의 아 밀라제는 그 종류가 특별히 한정되지 아니하나， 바람직하게는 α -amylase일 수 있 다.
샐를라제 (cel lulase)는 셀를로오스를 가수분해하는 효소를 말한다.
아밀라제 및 샐를라제는 고등식물， 동물， 미생물 등 자연계에 널리 분포하고 있으며， 본 발명의 아밀라제 및 셀를라제는 그 기원에 있어 특별히 제한되지 아니 하나， 미생물 유래의 아밀라제 및 셀를라제가 바람직하다. 본 발명의 가수분해 효 소는 고등식물, 동물 또는 미생물로부터 직접 분리하거나 상업적으로 판매하는 것 올 구매하여 사용할 수 있다. 가장 바람직하게는 본 발명의 아밀라제는 Baci l lus l i cheni formi s 유래의 SPEZYME XTRA일 수 있으며， 셀를라제는 Tr i choderma reesei 유래의 R0HAMENTCL일 수 있다.
본 발명의 효소처리는 두 효소를 동시에 처리하거나， 순차적으로 처리할 수 있으나， 셀를라제 및 아밀라제는 활성을 보이는 온도가 상이하므로 각각 순차적으 로 처리하는 것이 바람직하다. 효소투여량 및 처리온도， 시간， pH 등 반웅 조건은 처리대상인 인삼 추출물의 양, 투여되는 샐를라제 또는 아밀라제의 종류， 순도에 따라 달라질 수 있으며， 목적하는 가수분해 효과를 나타내는 한 특별히 제한되지 아니한다. 본 발명의 효소처리는 바람직하게는 샐를라제를 부가하여 12시간 내지 24시간 동안 효소처리 한 후， 아밀라제를 부가하여 6시간 내지 24시간 동안 효소처 리하는 방법에 의할 수 있다.
또한 본 발명의 인삼은 효소 반응의 효율성을 위하여 세절하거나 분말화하여 사용할 수 있으며， 증류수 등 적절한 용매를 가하여 효소처리를 할 수 있다.
(b) 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물로부터 분자량 lOkDa 이상의 다당 분 획물을 수득하는 단계 ;
(b) 단계에서는 효소 처리된 인삼 가수분해물로부터 분자량 lOkDa 이상의 분 획물을 수득한다. 바람직하게는 상기 (b)단계는
(bl) 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물에서 잔사를 제거하는 단계;
(b2) 상기 잔사가 제거된 인삼 가수분해물에 유기용매를 넣어 침전된 조다당 을 수득하는 단계； 및
(b3) 상기 조다당으로부터 분자량 lOkDa 이상의 분획물을 분리 수득 하는 단 계를 추가로 포함할 수 있다.
(bl) 단계에서는 효소 처리된 인삼 가수분해물에서 잔사를 제거한다. 잔사 제거 방법은 원심분리， f i ltrat ion 등 공지의 흔합물로부터 고형분을 제거하는 방 법에 의할 수 있다. 바람직하게는 여과에 의할 수 있다. 바람직하게는 본 발명의 (bl) 단계는 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물에 포함된 효소를 불활성화 처리를 하고, 원심분리 방법에 의해 잔사를 제거하고 상등 액을 분리하여 수득하는 방법에 의할 수 있다. 상기 불활성화 처리 방법은 바람직 하게는 열처리에 의한 것으로, 가수분해물을 locrc 내지 120 °c의 온도로 10 내지
30분간 유지하는 방법에 의할 수 있다.
(b2) 단계에서는 잔사가 제거된 인삼 가수분해물에 유기용매를 넣어 침전된 조다당을 수득한다. 상기 유기용매는 에탄올일 수 있다. 에탄올 침전은 공지의 에 탄올 침전법에 의할 수 있으며, 상기 에탄을 침전에 사용되는 에탄올은 물과 흔합 하여 60% 내지 95¾)(v/v)의 농도를 가지는 에탄올이 바람직하다. 더욱 바람직하게는 70%내지 95¾)(v/v) 일 수 있다.
(b3) 단계에서는 상기 (b2) 단계에서 수득한 조다당에서 분자량 lOkDa 이상 의 분획물을 수득한다.
상기 분획물 수득 방법은 물질을 분자량에 따라 분리하는 공지의 방법에 의 할 수 있으며， 예를 들어 투석， 전기영동 및 각종 컬럼 크로마토그래피 등을 수행 할 수 있다. 상기 크로마토그래피로는 이온교환 크로마토그래피， 겔 -침투 크로마토 그래피， HPLC , 역상 -HPLC , 친화성 컬럼 크로마토그래피 및 한외여과 등의 기법을 단독 또는 조합으로 적용시켜 제거할 수 있다. 바람직하게는 본 발명의 분획물 수 득 방법은 투석막올 이용한 투석 방법에 의해 조다당으로부터 목적 분자량 이하의 물질을 제거하는 방법 일 수 있다.
상기 수득되는 분획물은 lOkDa의 분자량을 가지는 분획이며， 바람직하게는 10 kD 이상 500 kDa 이하의 분자량을 가지는 분획물이다. 더욱 바람직하게는 50 kDa 이상 400 kDa 이하의 분자량을 가지는 분획물일 수 있다.
또한， 상기 수득되는 분획물의 전체 대비 중성 다당 (neutral sugar )은 70 내 지 80 중량 %， 우론산 (uronic acid)은 20 내지 30 증량 ¾ 일 수 있다. 상기 우론산은 갈락투로닉산 (galacturonic acid) 및 글루쿠로닉산 (glucuroni c acid)으로 구성될 수 있으며， 상기 다당 분획물의 중성 다당은 람노오스, 퓨코오스, 아라비노오스， 자일로스， 만노오스， 갈락토오스 및 글루코오스로 구성될 수 있다.
상기 다당 분획물의 중성 다당은 상기 인삼유래 다당 분획물을 구성하는 전 체 중성 다당 대비 람노오스는 2 내지 10 mole%, 아라비노스는 10 내지 25 mole%, 갈락토오스는 15 내지 45 mole%, 글루코오스는 40 내지 70 mole 인 다당으로 구성 될 수 있으며， 퓨코오스， 자일로스 및 만노오스와 같은 잔량의 중성 다당을 미량 함유 할 수 있다. 본 발명의 제조방법에 의하면 면역기능 증강 효과가 우수한 다당분획물을 제 조할 수 있다.
따라서 본 발명은 상기 본 발명의 방법에 의해 제조되는 것을 특징으로 하는 면역기능 증강활성을 가진 인삼유래 다당분획물을 제공한다.
본 발명의 다당분획물은 본 발명의 방법에 의해 제조된 것을 특징으로 하며， 면역기능 증강 효능이 기존의 단순 열수 추출 방법 또는 효소 단독처리 방법에 의 해 제조된 인삼 유래 다당체에 비하여 면역기능 증강 효능이 우수하다. 면역기능이란 생물체 내에서 병원체와 종양 세포 등을 탐지한 다음 죽임으로 써 질병으로부터 생명체를 보호하는 기능을 말한다.
면역기능은 내재면역 ( Innate immune)과 적웅면역 (adapt ive immune) ,기능이 있으며， 내재면역은 미생물들과 독소들이 체내로 진입하는 데 성공하였을 때 곧바 로 작용하는 면역 기능으로 패턴 인식 수용체가 미생물들 사이에 널리 보존되어 있 는 부분을 인지하여 외부의 미생물을 감지하는 방식으로 작용하거나， 손상된 세포 들이 방출하는 경고성 신호를 같은 종류의 수용체가 이를 인지하여 미생물의 존재 사실을 감지하는 방식으로 작용한다.
적웅면역은 항원의 표식을 기억하는 기능을 의미하는 면역기억 ( immunological memory)을 비롯한 보다 강력한 면역 반웅을 말하며 항원에 특이적 이며 항원제시 (ant igen presentat ion) 과정을 통한 비자기항원의 인지를 필요로 한 다.
본 발명의 다당분획물은 대식세포의 NO, TNF- α 및 IL-16 , IL-12의 생성을 촉진시켜 내재면역 ( Innate immune)과 적웅면역 (adapt ive immune)을 모두 증진시키 는 효능이 있다. 또한 본 발명의 다당분획물은 세포독성이 없어 식품 또는 의약품에 활용이 용이하다. 이와 같은 본 발명의 효과는 본 발명의 일실시예에 잘 나타나 있다. 본 발명의 일실시예에서는 인삼을 열수 추출하여 효소처리를 하지 않은 다당 분획물 및 인삼 분말을 아밀라제, 샐를라제, 펙티나제 및 프로테아제로 각각 단독 으로 처리한 다당분획물을 제조하여 면역기능 증강 활성을 측정하였다. 그 결과 대 조군인 단순 열수추출물， 프로테아제 또는 일반적으로 다당분획물 제조시 사용하는 펙티나제 처리군에 비하여 아밀라제 또는 셀를라제를 처리한 군의 면역기능 증강 활성이 우수한 것을 확인하였다. 본 발명의 다른 일실시예에서는 아밀라제 및 샐를라제를 병행처리한 다당분 획물을 제조하고， 아밀라제 또는 셀를라제를 처리한 다당분획물과 아밀라제 및 셀 를라제를 병행처리한 다당분획물의 면역기능 증강 활성을 비교하였다. 그 결과 아 밀라제 또는 셀를라제를 단독으로 처리한 다당분획물에 비하여 아밀라제 및 샐를라 제를 병행처리한 다당분획물의 면역기능 증강 활성이 월등히 우수한 것을 확인하였 다. 본 발명의 일실시예에서는 본 발명의 다당분획물을 대식세포에 처리하여 세 포 생존율을 측정하는 방법으로 세포독성이 있는지 시험하였다. 그 결과 본 발명의 다당분획물은 세포독성이 없는 것을 확인하였다. 본 발명의 다른 일실시예에서는 본 발명의 다당분획물을 대식세포에 처리하 여 산화질소 (NO) 생성에 미치는 영향을 측정하였다. 그 결과 본 발명의 다당분획물 을 처리하는 경우 대식세포의 산화질소 (NO) 생성량이 증가하는 것을 확인하였다. 본 발명의 다른 일실시예에서는 본 발명의 다당분획물을 대식세포에 처리하 여 면역관련 cytokine의 생성에 미치는 영향을 실험하였다. 그 결과 본 발명의 다 당분획물을 처리하는 경우 TNF- α , IL-6 및 IL-12등의 Cytokine의 생성량이 매우 증가하는 것을 확인하였다.
이로서 본 발명의 다당분획물은 면역 기능 증강 활성이 매우 뛰어난 것을 확 인하였다. 따라서 본 발명은 본 발명의 다당분획물을 유효성분으로 포함하는 면역기능 증강용 식품 조성물을 제공한다. 본 발명의 식품 조성물은 기능성 식품 ( funct ional food) , 영양 보조제
(nutr i t ional supplement ) , 건강식품 (heal th food) 및 식품 첨가제 ( food addi t ives) 등의 모든 형태를 포함한다. 상기 유형의 식품 조성물은 당 업계에 공 지된 통상적인 방법에 따라 다양한 형태로 제조할 수 있다. 예를 들면， 건강식품으로는 본 발명의 인삼유래 다당분획물 자체를 차， 쥬스 및 드링크의 형태로 제조하여 음용하도록 하거나， 과립화， 캡슐화 및 분말화하여 섭취할 수 있다. 또한， 본 발명의 인삼유래 다당분획물과 면역기능 증강의 효과가 있다고 알려진 공지의 물질 또는 활성 성분과 함께 흔합하여 조성물의 형태로 제조 할 수 있다. 또한， 기능성 식품으로는 음료 (알콜성 음료 포함) , 과실 및 그의 가공식품( 예: 과일통조림, 병조림， 잼, 마아말레이드 등)， 어류， 육류 및 그 가공식품 (예: 햄， 소시지콘비이프 등) , 빵류 및 면류 (예: 우동， 메밀국수, 라면， 스파게티， 마카 로니 등)， 과즙， 각종 드링크， 쿠키， 엿， 유제품 (예: 버터, 치이즈 등)， 식용식물 유지, 마아가린， 식물성 단백질， 레토르트 식품， 냉동식품, 각종 조미료 (예: 된장, 간장， 소스 등) 등에 본 발명의 인삼유래 다당분획물을 첨가하여 제조할 수 있다. 본 발명의 식품 조성물 중 상기 본 발명의 인삼유래 다당분획물의 바람직한 함유량으로는 이에 한정되지 않지만 바람직하게는 최종적으로 제조된 식품 중 0.01 내지 50 중량%이다.
또한, 본 발명의 인삼유래 다당분획물을 식품 첨가제의 형태로 사용하기 위 해서는 분말또는 농축액 형태로 제조하여 사용할 수 있다. 본 발명의 조성물은 면역기능 저하로 기인되는 질환의 예방 및 개선에 효과 가 있으며， 상기 면역기능 저하로 기인되는 질환으로는 감기 등의 감염성 질환 및 염증성 질환， 아토피 등의 알레르기 질환， 만성피로， 및 암으로 이루어진 군으로부 터 선택되는 어느 하나인 것이 바람직하나 이에 한정되는 것은 아니며， 당업자에 알려진 면역기능 자하로 기인되는 질환은 모두 본 발명에 포함된다. 본 발명은 상기 인삼유래 다당분획물의 면역기능 증강용 제제 제조를 위한 용도를 제공한다. 본 발명은 상기 인삼유래 다당분획물을 이를 필요로 하는 개체에 유효량으로 투여하는 단계를 포함하는 면역기능 증강 방법을 제공한다. 상기에서 '유효량' 이란 개체에게 투여하였을 때， 면역기능 증진， 암 및 면 역력 저하로 인한 질환의 치료 및 예방 효과를 나타내는 양을 말하며， 상기 '개체 (subj ect )' 란 동물, 바람직하게는 포유동물， 특히 인간을 포함하는 동물일 수 있 으며， 동물에서 유래한 세포， 조직， 기관 등일 수도 있다. 상기 개체는 치료가 필 요한 환자 (pat ient )일 수 있다. 또한 본 발명은 본 발명의 다당분획물을 유효성분으로 포함하는 면역기능 증 강용 약학적 조성물을 제공한다.
본 발명에 따른 약학적 조성물은 본 발명의 다당분획물 또는 이들의 약학적 으로 허용 가능한 염을 단독으로 함유하거나 또는 하나 이상의 약학적으로 허용되 는 담체， 부형제 또는 희석제를 추가로 함유할 수 있다. 약학적으로 허용되는 담체로는 예컨대， 경구 투여용 담체 또는 비경구 투여 용 담체를 추가로 포함할 수 있다. 경구 투여용 담체는 락토스， 전분， 셀를로스 유 도체， 마그네슘 스테아레이트， 스테아르산 등을 포함할 수 있다. 또한， 비경구 투 여용 담체는 물, 적합한 오일， 식염수, 수성 글루코스 및 글리콜 등을 포함할 수 있으며， 안정화제 및 보존제를 추가로 포함할 수 있다. 적합한 안정화제로는 아황 산수소나트륨, 아황산나트륨 또는 아스코르브산과 같은 항산화제가 있다. 적합한 보존제로는 벤즈알코늄 클로라이드， 메틸- 또는 프로필-파라벤 및 클로로부탄을이 있다. 그 밖의 약학적으로 허용되는 담체로는 다음의 문헌에 기재되어 있는 것올 참고로 할 수 있다 (RemingtMi' s Pharmaceut ical Sciences , 19th ed. , Mack Publ i shing Company, East on, PA, 1995) . 본 발명의 면역기능 증강용 약학적 조성물은 인간을 비롯한 포유동물에 어떠 한 방법으로도 투여할 수 있다. 예를 들면, 경구 또는 비경구적으로 투여할 수 있 다. 비경구적인 투여방법으로는 이에 한정되지는 않으나, 정맥내， 근육내， 동맥내， 골수내， 경막내， 심장내， 경피， 피하, 복강내， 비강내， 장관, 국소， 설하 또는 직 장내 투여일 수 있다. 바람직하게는 본 발명의 약학적 조성물은 경피 투여될 수 있 다. 상기에서 경피 투여'란 본 발명의 약학적 조성물을 세포 또는 피부에 투여하여 본 발명 조성물에 함유된 활성성분이 피부 내로 전달되도록 하는 것을 말하다. 예 컨대， 본 발명의 약학적 조성물을 주사형 제형으로 제조하여 이를 30 게이지의 가 는 주사 바늘로 피부를 가볍게 단자 (pr i ck)하는 방법， 또는 피부에 직접적으로 도 포하는 방법으로 투여될 수 있다. 본 발명의 약학적 조성물은 상술한 바와 같은 투여 경로에 따라 경구 투여용 또는 비경구 투여용 제제로 제형화 할 수 있다. 경구 투여용 제제의 경우에 본 발명의 조성물은 분말， 과립， 정제， 환제， 당 의정제， 캡슐제， 액제, 겔제, 시럽제， 슬러리제, 현탁액 등으로 당업계에 공지된 방법을 이용하여 제형화될 수 있다. 예를 들어， 경구용 제제는 활성성분을 고체 부 형제와 배합한 다음 이를 분쇄하고 적합한 보조제를 첨가한 후 과립 흔합물로 가공 함으로써 정제 또는 당의정제를 수득할 수 있다. 적합한 부형제의 예로는 락토즈， 덱스트로즈， 수크로즈， 솔비를， 만니틀， 자일리를， 에리스리를 및 말티를 등을 포 함하는 당류와 옥수수 전분, 밀 전분， 쌀 전분 및 감자 전분 등을 포함하는 전분 류, 셀를로즈， 메틸 셀를로즈， 나트륨 카르복시메틸셀를로오즈 및 하이드록시프로 필메틸—셀를로즈 등을 포함하는 셀를로즈류， 젤라틴， 폴리비닐피롤리돈 등과 같은 층전제가 포함될 수 있다. 또한， 경우에 따라 가교결합 폴리비닐피를리돈， 한천, 알긴산、또는 나트륨 알기네이트 등을 붕해제로 첨가할 수 있다. 나아가， 본 발명의 약학적 조성물은 항웅집제, 윤활제， 습윤제， 향료, 유화제 및 방부제 등을 추가로 포함할 수 있다. 비경구 투여용 제제의 경우에는 주사제， 크림계， 로션제， 외용연고제, 오일 제, 보습제， 겔제, 에어로졸 및 비강 흡입제의 형태로 당업계에 공지된 방법으로 제형화할 수 있다. 이들 제형은 모든 제약 화학에 일반적으로 공지된 처방서인 문
¾ (Remington ' s Pharmaceut ical Science , 15th Edi t ion, 1975. Mack Publ ishing Company, East on, Pennsylvania 18042 , Chapter 87： Blaug, Seymour)에 기재되어 있다. 본 발명의 다당분획물의 총 유효량은 단일 투여량 (single dose)으로 환자에 게 투여될 수 있으며， 다중 투여량 (mult iple dose)으로 장기간 투여되는 분할 치료 방법 (fract ionated treatment protocol )에 의해 투여될 수 있다. 본 발명의 약학적 조성물은 질환의 정도에 따라 유효성분의 함량을 달리할 수 있다. 바람직하게는 본 발명의 당단백 분획의 바람직한 전체 용량은 1일당 환자 체중 1 kg 당 약 O .Olug 내지 1 ,000 mg, 가장 바람직하게는 0.1 ug 내지 100 mg 일 수 있다. 그러나 상기 본 발명의 다당분획물의 용량은 약학적 조성물의 투여 경로 및 치료 횟수뿐만 아니 라 환자의 연령， 체중， 건강 상태， 성별， 질환의 중증도， 식이 및 배설율 등 다양 한 요인들을 고려하여 환자에 대한 유효 투여량이 결정되는 것이므로, 이러한 점을 고려할 때 당 분야의 통상적인 지식을 가진 자라면 상기 본 발명의 다당분획물을 면역기능 증강제로서의 특정한 용도에 따른 적절한 유효 투여량을 결정할 수 있을 것이다. 본 발명에 따른 약학적 조성물은 본 발명의 효과를 보이는 한 그 제형， 투 여 경로 및 투여 방법에 특별히 제한되지 아니한다.
본 발명의 조성물은 면역기능 저하로 기인되는 질환의 예방 및 치료에 효과 가 있으며， 상기 면역기능 저하로 기인되는 질환으로는 감기 등의 감염성 질환 및 염증성 질환， 아토피 등의 알레르기 질환, 만성피로， 및 암으로 이루어진 군으로부 터 선택되는 어느 하나인 것이 바람직하나 이에 한정되는 것은 아니며, 당업자에 알려진 면역기능 저하로 기인되는 질환은 모두 본 발명에 포함된다.
【유리한 효과】 이상 살펴본 바와 같이， 본 발명은 인삼에 아밀라제 및 샐를라제를 포함하는 2종 이상의 효소를 순차적으로 부가하여 효소처리하는 단계 및 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물로부터 분자량 lOkDa 이상의 다당 분획물을 수득하는 단계를 포함 하는 면역기능 증강 활성을 가진 인삼유래 다당분획물 제조방법 및 상기 제조방법 에 의해 제조된 다당분획물을 제공한다. 본 발명의 제조방법은 아밀라제 및 셀를라 제를 포함하는 복합효소 처리 공정을 통하여， 면역활성 증가 효과가 우수한 다당분 획물을 경제적으로 제조할 수 있으며， 본 발명의 다당분획물은 기존의 인삼 유래 다당에 비하여 면역증강 효과가 우수하므로 면역증강용 식품 제조에 효과적이다.
【도면의 간단한 설명】
도 1은 인삼의 열수추출에 의한 조다당 제조.공정도 이다.
도 2는 본 발명의 병행효소 처리에 의한 인삼 유래 다당분획물 제조 공정도 이다.
도 3은 효소 단독처리 인삼유래 다당시료에 의한 마우스 복막 대식세포 (mouse peritoneal macrophage)의 증식률 변화를 측정한 세포독성 시험 결과 그래 프이다 (Con ： 무처리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGW0 ： 효소 무처리 다당추출물 처리군; FGEzl ： 펙티나제 처리 다당분획물 처리군; FGEz2 ： 셀 를라제 처리 다당분획물 처리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당분획물 처리군; FGEz4 ： 엔도 프로테아제 처리 다당분획물 처리군；) .
도 4는 효소 단독처리 인삼유래 다당시료에 의한 마우스 복막 대식세포의 사 이토카인 IL-6 생산능 변화를 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무처리군; LPS ： 내독 소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGW0 ： 효소 무처리 다당추출물 처리군; FGEzl ： 펙티나제 처리 다당분획물 처리군; FGEz2 ： 샐를라제 처리 다당분획물 처리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당분획물 처리군; FGEz4 ： 엔도 프로테아제 처리 다당분 획물 처리군; a, b, c , d , ab , be ： 유의성을 나타내는 문자로 동일한 문자를 가지 지 않은 결과는 통계학적으로 유의성이 있음) .
도 5는 효소 단독처리 인삼유래 다당시료에 의한 마우스 복막 대식세포의 사 이토카인 IL-12 생산능 변화를 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무처리군; LPS ： 내 독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGW0 ： 효소 무처리 다당추출물 처리군; FGEzl ： 펙티나제 처리 다당분획물 처리군; FGEz2 ： 셀를라제 처리 다당분획물 처 리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당분획물 처리군; FGEz4 ： 엔도 프로테아제 처리 다당분획물 처리군; a, b, c , ab ： 유의성을 나타내는 문자로 동일한 문자를 가지 지 않은 결과는 통계학적으로 유의성이 있음) .
도 6은 효소 단독처리 인삼유래 다당시료에 의한 Raw 264.7세포의 사이토카 인 IL-6의 생산능 변화를 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무처리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGW0 ： 효소 무처리 다당추출물 처리군; FGEzl ： 펙 티나제 처리 다당분획물 처리군; FGEz2 ： 셀를라제 처리 다당분획물 처리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당분획물 처리군; FGEz4 ： 엔도 프로테아제 처리 다당분획물 처 리군; a, b, c , ab ： 유의성을 나타내는 문자로 동일한 문자를 가지지 않은 결과는 통계학적으로 유의성이ᅵ있음) .
도 7은 효소 단독처리 인삼유래 다당시료에 의한 Raw 264.7세포의 사이토카 인 IL-12의 생산능 변화를 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무처리군; LPS ： 내독소 인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGTO ： 효소 무처리 다당추출물 처리군; FGEzl ： 펙티나제 처리 다당분획물 처리군; FGEz2 ： 셀를라제 처리 다당분획물 처리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당분획물 처리군; FGEz4 ： 엔도 프로테아제 처리 다당분 획물 처리군; a, b, c , d, ab ： 유의성을 나타내는 문자로 동일한 문자를 가지지 않은 결과는 통계학적으로 유의성이 있음) .
도 8은 HPLC 실험에 의한 효소 단독처리 인삼유래 다당시료의 분자량 분포 측정 결과이다 (STD ： 실험에 사용된 표준물질을 측정한 결과; A ： FGTO (효소 무처 리 다당추출물 처리군)을 측정한 결과; B ： FGEz2(샐를라제 처리 다당분획물 처리 군)를 측정한 결과; C ： FGEz3(아밀라제 처리 다당분획물 처리군)을 측정한 결과) . 도 9는 효소 단독 처리 및 병행처리 인삼유래 다당시료에 의한 마우스 복막 대식세포의 사이토카인 IL— 6의 생산능 변화를 비교 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무처리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGEz2 ： 셀를라제 처리 다 당분획물 처리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당분획물 처리군; FGEz2+3 ： 셀를라제 및 아밀라제를 병행 처리한 다당 분획물 처리군; a, b, c , d ： 유의성을 나타내는 문자로 동일한 문자를 가지지 않은 결과는 통계학적으로 유의성이 있음) .
도 10은 효소 단독 처리 및 병행처리 인삼유래 다당시료에 의한 마우스 복막 대식세포의 사이토카인 IL-12의 생산능 변화를 비교 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무처리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGEz2 ： 셀를라제 처리 다 당 분획물 처리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당 분획물 처리군; FGEz2+3 ： 셀를라 제 및 아밀라제를 병행 처리한 다당 분획물 처리군; a, b, c ： 유의성을 나타내는 문자로 동일한 문자를 가지지 않은 결과는 통계학적으로 유의성이 있음) .
도 11는 효소 단독 처리 및 병행처리 인삼유래 다당시료에 의한 Raw 264.7 세포의 사이토카인 IL-6의 생산능 변화를 비교 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무처 리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGEz2 ： 셀를라제 처리 다당 분획물 처리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당 분획물 처리군; FGEz2+3 ： 셀를라제 및 아밀라제를 병행 처리한 다당 분획물 처리군; a, b, c , ab ： 유의성을 나타내는 문자로 동일한 문자를 가지지 않은 결과는 통계학적으로 유의성이 있음) .
도 12는 효소 단독 처리 및 병행처리 인삼유래 다당시료에 의한 Raw 264.7 세포의 사이토카인 IL-12의 생산능 변화를 비교 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무 처리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGEz2 ： 셀를라제 처리 다당 분획물 처리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당 분획물 처리군; FGEz2+3 ： 셀를라제 및 아밀라제를 병행 처리한 다당 분획물 처리군; a, b, c , ab ： 유의성을 나타내는 문자로 동일한 문자를 가지지 않은 결과는 통계학적으로 유의성이 있음) .
도 13은 효소 단독 처리 및 병행처리 인삼유래 다당시료에 의한 Raw 264.7 세포의 사이토카인 IL-10의 생산능 변화를 비교 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무 처리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGEz2 ： 셀를라제 처리 다당 분획물 처리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당 분획물 처리군; FGEz2+3 ： 셀를라제 및 아밀라제를 병행 처리한 다당 분획물 처리군; a, b, c , ab ： 유의성을 나타내는 문자로 동일한 문자를 가지지 않은 결과는 통계학적으로 유의성이 있음) .
도 14는 효소 단독 처리 및 병행처리 인삼유래 다당시료에 의한 Raw 264.7 세포의 사이토카인 TNF- α의 생산능 변화를 비교 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무 처리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGEz2 ： 셀를라제 처리 다당 분획물 처리군; FGEz3 ： 아밀라제 처리 다당 분획물 처리군; FGEz2+3 ： 셀를라제 및 아밀라제를 병행 처리한 다당 분획물 처리군; a, b, c , ab, be ： 유의성을 나타 내는 문자로 동일한 문자를 가지지 않은 결과는 통계학적으로 유의성이 있음) . 도 15는 본 발명의 병행효소 처리에 의한 인삼 유래 다당 분획물 제조 공정 도 이다.
도 16은 HPLC 실험에 의한 효소 병행처리에 의한 인삼유래 다당시료의 분자 량 분포를 비교한 측정 결과이다 (STD ： 실험에 사용된 표준물질을 측정한 결과; A ： FGW0 (효소 무처리 다당 추출물 처리군)을 측정한 결과; B ： FGEzO (셀를라제 및 아밀라제를 병행 처리한 다당 분획물 처리군)을 측정한 결과) .
도 17은 효소 병행처리 인삼유래 다당시료에 의한 Raw 264.7세포의 증식률 변화를 측정한 세포독성 시험 결과 그래프이다 (Con ： 무처리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGW0 ： 효소 무처리 다당 추출물 처리군; FGEzO ： 셀 를라제 및 아밀라제를 병행 처리한 다당 분획물 처리군).
도 18은 효소 병행처리 인삼유래 다당시료에 의한 Raw 264.7세포의 사이토카인 IL- 6 생산능 변화를 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무처리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGW0 ： 효소 무처리 다당 추출물 처리군; FGEzO ： 셀 를라제 및 아밀라제를 병행 처리한 다당 분획물 처리군).
도 19는 효소 병행처리 인삼유래 다당시료에 의한 Raw 264.7세포의 사이토카 인 TNF-α 생산능 변화를 측정한 결과 그래프이다 (Con ： 무처리군; LPS ： 내독소인 Lipopolysaccharide 처리 군; FGW0 ： 효소 무처리 다당 추출물 처리군; FGEzO ： 셀 를라제 및 아밀라제를 병행 처리한 다당 분획물 처리군).
【발명의 실시를 위한 형태】
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실 시예에 한정되는 것은 아니다.
<실시예 1>
조다당 추출물 제조
<1-1> 열수추출에 의한조다당 추출물 제조
본 실험에 사용된 인삼 (raw ginseng)은 2013년에 생산된 4년근 수삼을 구입 하여 실험에 사용하였다. 다당을 분리하기 위한 단순 열수추출 방법은 다음과 같다. 수삼 100 g에 증 류수 3배 (w/v)를 가하여 분쇄한 다음 100°C에서 추출한 후 4°C로 조절된 원심분리 기 (Mega 17R, Hanil Science Industrial Co. Ltd. , Inchun, Korea)로 6,500Xg 에 서 20분간 원심분리 하였다. 분리한 상등액은 최종농도가 80¾가 되도록 냉에탄을을 첨가하여 하룻밤 방치한 후 생성된 침전물을 회수하여 소량의 증류수에 용해한 다 음 투석막 (Membrane Fi Iteration Products, INC. , Seguin Texas , USA; MWCO 6，000~8,000)을 이용하여 2~3일간 투석을 행하고 동결건조 (Tokoyo Rikakikai Co. Ltd. , FD-1000, Tokyo, Japan)하여 열수추출 조다당 추출물 (FGWO, 수율 3.2%)을 조 제하였다 ([도 1]). <l-2>효소처리에 의한 다당 분획물 제조
효소처리에 사용되는 가수분해효소로는 RAPIDASE C80MAX(Pectinase, from Aspergillus niger ； Ezl) , ROHAMENTCL(Cel lulase, from Tr i choderma reesei ； Ez2), SPEZYME XTRA( a -amylase, from Bacillus 1 icheni formis ； Ez3), PROTEX 6L (Endo-Protease, from Bacillus 1 icheni formis ； Ez4) 등 종 4종을 Bision biochem(Bision corporation, 경기도)으로부터 구입하여 사용하였다. 효소처리를 이용한 다당 분획물은 다음과 같이 조제하였다. 수삼 100 g에 증 류수 3배 (w/v)를 가하여 분쇄한 후 101°C로 20분간 가열한 다음 4종류 (Ezl, Ez2, Ez3, Ez4)의 가수분해효소를 [표 1]의 조건으로 각각 또는 2종 이상을 병행 처리하 였다. 그 후 90~100°C, 20분간 가열처리하여 잔존 가수분해효소를 불활성화 시킨 다음 6,500Xg 에서 20분간 원심분리하여 잔사를 제거하고， 분리한 상등액은 최종 농도가 80%가 되도록 넁에탄을을 첨가하여 하룻밤 방치하여 다당을 침전시켰다. 생 성된 침전물을 소량의 증류수에 용해시켜 투석막 (Membrane Fi Iteration Products, INC., Seguin Texas, USA; 爵 CO 6,000~8，000)을 이용하여 저분자 물질을 제거한 후 동결 건조하여 효소처리 다당 분획물을 얻었다 ([도 2]). 이 때 가수분해 효소들을 (4종; Ezl~4) 각각 처리하여 조제한 효소처리 다당 분획물인 FGEzl, FGEz2, FGEz3, FGEz4의 수율은 1.5， 2.7， 1.5, 3.8%였다.
【표 1】
효소 처리 조건
Figure imgf000019_0001
<실시예 2>
면역활성 평가 본 연구에 사용한 실험동물은 생후 5~6주령의 웅성 BALB/c를 3일간 적웅을 거친 후 실험에 사용하였다. Mouse는 사육 조에 2마리씩 넣어 일정한 온도， 습도로 유지되는 사육장에서 사육하였으며 물과사료는 자유 급식 형태로 유지하였다.
본 실험에 사용한 mouse peritoneal macrophage 세포는 BALB/c mouse의 복강 에 5% thioglycollate medium을 lmL 주입하고, 72~96 시간 내에 유도된 macrophage 를 PBS를 이용하여 회수하였다. 그 후 RPMI 1640 medium으로 2~3회 세척하고 세포 수를 2.5X106 cells/mL로 조정하여 96 well pi ate (NUNC Co., Roskilde, Denmark)에 배양하였다. 배지는 RPMI 1640에 10%(v/v) FBS와 1%(ν/ν) penicillin-streptomycin 을 흔합해 사용하였다. 이후 다양한 농도로 희석된 시료를 첨가하여 37t：， 5% C02 incubator에서 일정한 조건으로 유지하며 배양하였다.
<2一1> Mouse peritoneal macrophage 세포에 대한 독성 측정
각 세포에 대한 시료의 독성 여부는 MTT assay(Hansen MB, Nielsen SE, Berg K. Re-examination and further development of a precise and rapid dye method for measuring cell growth cell kill. Journal of Immunological Methods, 1989, 119： 203-210.) 방법으로 측정하였다. 96 well plate의 상등 액을 제거한 후， 0.5 mg/mL MTT 용액을 첨가하여 4시간 동안 배양하여 formazan을 형성시켰다. 그 후， 상등 액을 제거하고 DMS0를 각 well에 첨가하여 formazan을 녹인 후 ELISA 판독기 (Infinite M200 Pro, TECAN, M, Switzerland)를 사용하여 540 nm에서 흡광도를 측 정하였다. 일정한 세포수로 조정하여 배양 세포에 다당 추출물 시료 FGW0 및 FGEzl~4를 각각 1， 10， 100 ug/mL의 농도로 세포에 처리하여 배양한 후 세포의 생존 여부를 확인한 결과는 [도 3]에 나타난 바와 같다. Mouse peritoneal macrophage 세포의 경우 FGEz4 100 ug/mL를 처리한 군을 제외하고 모두 80% 이상의 생존율을 보여 1-100 ug/mL의 농도범위 내에서 세포 독성에 큰 영향을 미치지 않는 다는 것을 알 수 있었다. FGEz4 또한 100 ug/mL에서 78%의 생존율로 오차범위 내에서 세포의 생 존에 크게 영향을 미치지 않는 것으로 사료된다.
<2— 2> Mouse peritoneal macrophage 세포의 Cytokine 생산량 측정
배지로 회석시킨 시료를 농도 별로 세포에 처리하여 37°C, 5% C02 incubator 에서 24시간 배양한 후， macrophage에 의해 유도, 분비된 상등 액 중 cytokine와 양을 ELISA kit을 이용하여 제조사의 지침에 따라 측정하였다. 즉， Anti-cytokine capture antibody를 coating buf fer(0.2 M Sodium Phosphate, pH 6.5)에 희석하여 96 well plate에 넣은 후， 4°C에서 하룻밤 방치하였다. Tween 20을 PBS에 0.05% (v/v)가 되도록 가한 PBS/Tween 용액으로 plate를 3회 세척하였다. Assay diluent (PBS with 10% FBS)를 plate에 넣은 후 상온에서 1시간 방치하였다. PBS/Tween로 3회 세척 후， 배양 상등 액을 각 well에 넣어준 뒤 2시간 상온에서 방 치하였다. PBS/Tween로 5회 세척 후， detection antibody인 biotinylated antibody 와 enzyme reagent인 st ret avi din-horseradish peroxidase conjugate를 assay diluent (PBS with 10% FBS)에 희석하여 plate에 넣은 후 상온에서 1시간 방치하였 다. PBS/Tween로 7회 세척 후， substrate solution을 넣고 암소에서 30분 방치하였 다. Stop solution인 2 N 황산용액을 넣어 반응을 중지시키고 ELISA 판독기를 이용 하여 450 nm에서 흡광도를 측정하였다.
Macrophage는 체내 거의 모든 조직에 분포하며 이물질이나 노폐물을 탐식， 제거하는 역할을 하는데， 이 과정에서 여러 가지 cytokine을 분비하여 면역 반응을 조절한다고 알려져 있다. Cytokine은 면역세포에서 생성되는 단백질 중재자로 외부 항원에 대한 여러 면역 세포간의 협력을 중재하므로, 이들의 생성과 분비는 면역반 응 조절에 있어 매우 중요하다고 알려져 있다. Macrophage가 분비하는 대표적인 면 역반웅 유도 cytokine으로는 IL-l, IL-6, IL-10, IL-12, TNF- α 등이 밝혀져 있다 (Wang H, Actor JK, Indrigo J, 01 sen M, Dasgupta A. 2003. Asian and Siberian ginseng as a potential modulator of immune function: An in vitro cytokine study using mouse macrophage . Clin Chim Acta 327:123-128). 수삼 유래 다당의 자극에 의한 mouse peritoneal macrophage의 cytokine 생산을 ELISA 방법으로 측정 한 결과 IL-6, IL-12의 생산을 촉진하였으며， 모두 농도 의존적으로 활성이 증가하 는 것으로 나타났다. IL-6는 모든 시료가 대조군에 비해 높았으며， 효소처리 시료 군 (FGEzl~4)이 FGW0에 비해 높은 활성을 보였다 ([도 4]). 그 중에서도 100 ug/mL의 농도에서 FGW0에 비해 FGEz2와 FGEz3는 약 2.2배 정도 높은 활성을 나타낸 것을 확 인할 수 있었다. 특히 FGEz2의 경우 10 ug/mL의 놈도에서 큰 차이를 보였으며 유의 미한 값을 가져 비교적 낮은 농도에서부터 IL-6의 활성이 크게 나타나는 것으로 확 인되었다.
IL-12의 경우에도 대조군 (Con)과 FGTO에 비해 효소처리 시료군 (FGEzl~4)의 활성이 높은 것을 확인할 수 있었다 ([도 5]). 효소들 간에 유의적인 차이는 나타나 지 않았으나, 상대적으로 낮은 농도인 10 ug/mL에서 87 pg/mL의 수치를 보인 FGTO 에 비해 FGEz2는 434 pg/mL, FGEz3은 180 pg/mL, FGEz4는 177 pg/mL의 수치를 나타 내 차례로 높은 값을 나타냈다. 특히 FGEz2는 낮은 농도에서부터 큰 활성을 보여 적은 양으로도 높은 면역 활성을 보이는 것으로 추측할 수 있었다.
<2-3> Raw 264.7 세포 자극에 의한 cytokine 생산량 측정
Raw 264.7 cell line KTCC No. 40071)은 한국 세포주은행 (KTCC, Seoul)에서 분양받아 사용하였다. 세포 수를 2.0X105 cells/mL로 조정하여 배양하였으며， 배지 는 DMEM 배지에 10% (v/v) FBS와 1% (v/v) penici 11 in— streptomycin을 흔합해 사용 하였다. 이후 다양한 농도로 회석한 시료를 첨가하여 37°C, 5% C02 incubator에서 배양하였다.
Raw 264.7 세포에서도 같은 시료를 이용해 10~150 ug/mL의 농도 범위에서 cytokine을 측정한 결과， [도 6]에서 보는 바와 같이， IL-6는 FGTO에 비해 효소처 리 시료군 (FGEzl~4)이 높은 활성을 보인 것을 확인할 수 있었으며， 그 중 FGW0와 비교하였을 때 FGEz2와 FGEz3는 IL— 6에서 유의적인 차이를 보였다. FGEz2의 경우 100, 150 ug/mL 농도에서 약 5~10배 이상 IL-6의 증가하였고, FGEz3는 100， 150 ug/raL 농도에서 약 9~11배 이상 증가한 것으로 나타났다.
IL-12도 IL-6와 같이 유사한 양상을 보이는 것으로 나타났다. FGEz4가 150 ug/mL에서 다소 높은 활성을 보인 것 이외에는 FGEz2와 FGEz3가 FGW0에 비해 모든 농도에서 유의적인 활성의 차이를 보였다 ( [도 7] ) · 이상의 cytokine 생성능의 결과를 통해 FGW0보다 효소처리 시료군 (FGEzl~4) 의 활성이 높아지는 것을 확인할 수 있었으며， 특히 FGEz2와 FGEz3의 활성이 대체 로 높은 것을 확인하였다. 따라서 두 효소의 병행처리를 통해 얻은 시료가 단일 효 소 처리와 비교하여 활성의 차이를 나타내는지 확인하는 작업이 필요하다고 판단하 였다.
<실시예 3>
분자량 분포 측정 효소처리 된 4종류의 다당 분획물 시료 (FGEzl~4)에 따른 면역실험에 따른 결 과 열수추출 다당추출물 (FGW0)보다 cel lulase(Ez2) 및 a -amylase (Ez3)를 이용하여 처리하였을 때 수삼의 면역 활성을 높아지는데 가장 효과적인 것으로 판단되었다. 따라서 HPLC를 이용하여 분자량 분포를 열수추출 다당추출물 (FGTO) 및 효소처리 다 당 분획물 (FGEz2, FGEz3) 등과 비교하여 살펴보았다.
분자량 측정을 하기 위하여 표준물질과 열수 및 가수분해 효소로 처리된 다 당 각각의 시료 20mg을 0.2M NaCl 1ml에 녹인 후， 막여과지로 여과하여 HPLCCIasco Co. , Japan) 분석에 사용하였다. 사용된 Column은 GS520(7.5mmX 300mmL , Showa Denko Co. , Toyko , J a an ) +GS320 ( 8.0mm 300mmL , Showa Denko Co . , Toyko , Japan) 올 사용하였으며， 이동상으로는 0.2M NaCl를 용매를 사용하였으며, 시료 주입량은 20ul , 유속은 0.4ml/min로 하였으며， refract ive index detector(Jasco Co. , Toyko, Japan)로 검출하였다. 정제다당의 분자량은 Pul lulan Standard는 Fluka 제 품 (molecular size; 10K, 48.8K, 366K)를 표준물질로 하여 얻어진 표준곡선과 비교 하여 측정하였다. 그 결과， [도 8]에서 보는 바와 같이, 열수 추출된 다당추출물 (FGW0)의 경우 분자량이 10K 이상인 고분자 분획이 3개로 나누어졌고 cel lulase(Ez2) 효소처리시 에는 10K 이상인 고분자 분획 2개와 1개 이상의 저분자 분획들로 와 비슷하게 분자량이 분포되었음을 알 수 있었다. 반면 a _amylase(Ez3)를 이용하여 효소처리 하였을 때는 10K 이상인 2개의 고분자 분획과 10K이하인 3~4개 이상의 저분자 분획 들로 나누어짐을 알 수 있었다.
<실시예 4>
효소 병행처리에 의한 수삼 유래 신규 면역증진 다당분획물 조제 수삼 분말 100 g에 증류수 5~20배 (w/v)를 가하여 현탁시킨 후 2종류 (Ez2, Ez3)의 가수분해효소를 순차적으로 처리한다. 즉, 초기 현탁액의 온도와 pH를 50-60 °C , 4.5-6.0으로 조정한 후 Ez2의 효소를 첨가하여 하루 동안 반웅을 시킨 다 음 반웅물의 온도를 85~90°C로 조정한 후 Ez3의 효소를 첨가하여 9~12시간 반응시 킨 후 최종반웅물을 lore , 20분간 처리하여 효소의 불활성화를 유도한 다음 6,500 xg 에서 20분간 원심분리하여 잔사를 제거하고， 분리한 상등액은 최종농도가 80% 가 되도록 넁에탄올을 첨가하여 하룻밤 방치한 후 다당을 침전시켰다. 생성된 침전 물을 소량의 증류수에 용해시켜 투석막 (Membrane Fi Iterat ion Products , INC. , Seguin Texas , USA; 匿 CO 6, 000-8， 000)을 이용하여 저분자 물질을 제거한 후 동결 건조하여 효소처리 다당 분획물을 얻었다.
<실시예 5>
효소 병행처리 시료의 macrophage 자극에 의한 cytokine 생산 활성
<실시예 2-2> 및 <실시예 2-3〉에서와 동일한 방법으로 효소 병행처리 시료의 cytokine 생산활성을 측정하였다.
<5-1> Mouse peritoneal macrophage 세포 자극에 의한 cytokine 생산능 효소 병행처리 한 수삼 유래 다당의 자극에 의한 mouse peritoneal macrophage의 cytokine 생산올 ELISA 방법으로 측정한 결과， IL-6, IL— 12의 분비를 농도 의존적으로 증가시키는 것으로 확인되었다. [도 9]에서 IL-6의 양은 모든 시 료가 대조군에 비해 높았으며 , FGW0에 비해 효소처리 시료군 FGEz2 , FGEz3 , FGEz2+3가 높은 활성을 보인 것을 확인했다. 특히 효소 병행처리 시료인 FGEz2+3이 100 ug/mL의 농도에서 2033 pg/mL의 수치를 보였는데 아는 FGEz2 보다 1.8배， FGEz3보다 1. 1배 높은 값으로 유의적으로 가장 큰 활성을 보여 효소 병행 처리 (FGEz2+3)가 단일효소처리 (FGEz2 , FGEz3)에 비해 활성을 높이는 것을 확인할 수 있 었다. IL-12도 [도 10]에서 보는 바와 같이， FGW0에 비해 효소처리 시료군 FGEz2 , FGEz3 , FGEz2+3에서 높은 활성을 보인 것을 확인하였다. 특히 효소 병행 처리 시료 인 FGEz2+3가 100 ug/mL의 농도에서 683 pg/mL의 수치를 보였는데 이는 FGEz2보다 1.5배， FGEz3보다 1.2배 정도 높은 값으로 유의적으로 가장 큰 활성을 보여 효소 병행 처리 시료가 단일효소처리 시료들에 비해 IL-12의 활성을 높이는 것을 확인하 였다.
<5-2> Raw 264.7 세포 자극에 의한 cytokine 생산능
병행 효소 처리한 수삼 유래 다당의 자극에 의한 Raw 264.7 세포의 cytokine 생산을 ELISA 방법으로 측정한 결과， IL-6 , IL-12의 분비를 농도 의존적으로 증가 시키는 것으로 확인되었다.
[도 11]에서 보는 바와 같이， IL-6는 모든 시료가 대조군에 비해 높았으며， FGW0에 비해 효소처리 시료군 FGEz2 , FGEz3 , FGEz2+3가 높은 활성을 보인 것을 확 인했다. 특히 병행 효소 처리 시료인 FGEz2+3가 150 ug/mL의 농도에서 646 pg/mL의 수치를 보였는데 이는 FGEz2보다 1.3배， FGEz3보다 1.2배 정도 높은 값으로 유의적 으로 가장 큰 활성을 보여 병행 효소 처리가 단일효소처리에 비해 활성을 높이는 것으로 나타났다.
[도 12]에서 보는 바와 같이， IL-12도 FGW0에 비해 효소처리 시료군 FGEz2 , FGEz3 , FGEz2+3가 높은 활성을 보인 것을 확인했다. 특히 병행 효소 처리 시료인 FGEz2+3가 100 ug/mL의 농도에서 563 pg/mL의 수치를 보였는데 이는 FGEz2 (389 g/mL) 와 FGEz3 (483 pg/mL)보다 각각 1.45배 (45%) , 1. 16(16)배 정도 높은 값이었 으며 150 ug/mL의 농도에서도 FGEz2+3의 경우 659 pg/mL의 수치를 보였는데 이는 FGEz2(412 pg/mL) 보다 1.6배 높은 값이었으며 FGEz3 (644 pg/mL)보다도 다소높았 다. 이상의 결과로 보아 FGEz2+3가 유의적으로 가장 큰 활성을 보여 병행 효소 처 리 단일효소처리에 비해 활성을 높이는 것이 확인되었다.
[도 13]에서 보는 바와 같이, IL-10은 FGTO을 제외하고 농도 의존적으로 증 가하는 양상올 나타내었으며， 100 ug/mL이상의 농도에서 FGW0에 비해 FGEz2 , FGEz3 , FGEz2+3이 높은 활성을 나타내었다. 특히 FGEz2와 FGEz2+3은 유의미한 값의 변화를 보였지만, FGEz2+3의 값이 다소 높은 것으로 볼 때 병행 효소 처리 시 cytokine의 활성을 일정수준 이상으로 증가시킨다는 것을 확인할 수 있었다.
[도 14]에서 보는 바와 같이 , TNF- α는 FGTO와 FGEz2 , FGEz3 각각 효소처리 를 한 결과 간에는 차이가 없었지만 FGEz2+3로 병행 효소 처리 시 활성이 증가한 것을 확인할 수 있었다. 이는 단일효소 처리를 통해서는 얻을 수 없었던 면역 활성 의 증가를 병행 효소 처리를 통해 얻을 수 있었다는 사실을 반영하는 결과로 보인 다.
따라서 병행 효소 처리를 통해 얻은 시료 FGEz2+3은 단순 열수추출물인 FGW0 외에도 단일효소처리를 통해 얻은 FGEz2 , FGEz3의 활성을 능가하는 활성의 변화를 대부분의 cytokine에서 나타내었으며, 세포의 사멸에도 영향을 미치지 않아 유효한 면역 활성 소재로 개발이 가능한 것으로 사료된다.
<실시예 6>
효소 병행 처리에 의한 수삼 유래 면역증진 다당소채 제조 및 분석
<6-1> 효소 병행 처리에 의한 수삼 유래 면역증진 다당 소재 제조
이상의 모든 연구결과를 종합하여 면역 활성이 높은 효소 병행 처리 수삼 유 래 신규 면역증진 다당소재 (FGEzO)의 제조공정은 [도 15]와 같고， 이에 따라 효소 병행 처리에 의한수삼 유래 면역증진 다당소재 (FGEzO)를 제조하였다.
시료 분말 100 g에 증류수 5~20배 (w/v)를 가하여 현탁시킨 후 2종류 (Ez2 , Ez3)의 가수분해효소를 순차적으로 처리한다. 즉， 초기 현탁액의 온도와 pH를 50-60 °C , 4.5-6.0으로 조정한 후 Ez2의 효소를 첨가하여 하루 동안 반웅을 시킨 다 음 반응물의 온도를 85~90°C로 조정한 후 Ez3의 효소를 첨가하여 9~12시간 반웅시 킨 후 최종반응물을 lore , 20분간 처리하여 효소의 불활성화를 유도한 다음 6,500 g 에서 20분간 원심분리하여 잔사를 제거하고, 분리한 상등액은 IF 처리하여 분 자량 10K 이상의 다당분획을 얻고 이를 동결건조 (또는 분무 건조)등의 방법으로 건 조하여 면역력 증진 활성이 강화된 수삼 다당분획물 (FGEzO)올 얻었다.
<6-2> 이화학적 분석
앞서 제시한 공정에 따라 조제한 효소 병행 처리 다당분획물 (FGEzO)의 이화 학적 성분 특성 및 HPLC를 통한 분자량 분포 등올 열수 추출물 (FGW0)과 비교하여 살펴보았다. 이들의 이화학적 성분 특성을 살펴본 결과는 [표 2]와 같았다. FGW0의 중성 당 함량은 67.7% 산성당 30.4%, 단백질 1 .4% , KD0 0. ¾로 구성되어 있으며， 효소 병행 처리 분획물 (FGEzO)의 경우 중성당은 73.8%로 FGW0와 비교하였을 때 높은 함 량을 나타내었으며， 산성당은 24.8%， 단백질 함량은 0.8%로 낮아진 반면， KD0 함량 은 0.5%로 변화가 없었다.
【표 2】
효소 병행 처리에 의해 제조된 시료의 성분분석 결과
Figure imgf000026_0001
<6-3>분자량 분석
최적 공정에 따라 조제한 효소 병행 처리 다당분획물의 분자량 분포를 <실시 예 3>에서와 동일한 방법으로 분석하였다.
그 결과， [도 16]에서 보는 바와 같이， 열수 추출물 다당추출물 (FGTO)의 경 우 분자량이 10K 이상인 고분자 분획이 3개로 400K이하의 다당체의 경우 비교적 넓 은 범위의 분자량을 가지는 것으로 보이는 반면， 효소 병행 처리 후 丽 CO 50K casset te를 이용하여 UF 처리하였을 경우 (B)에는 10K 이상인 고분자 분획이 2개였 으며, 10K 이하의 저분자 분획이 약간 제거됨을 확인 할 수 있었다.
<6-4> Raw 264.7 세포의 세포독성 및 ni tr ic oxide 생산능
효소 병행 처리를 이용해 만든 신규 다당 소재의 Raw 264.7 세포에 대한 독 성 여부를 확인하기 위하여 <실시예 2-1>에서와 동일한 방법으로 ΜΊΤ assay를 실시 하였다.
그 결과 [도 1기에서 보는 바와 같이, 수삼 다당 시료 FGW0와 FGEzO를 50， 100， 150 ug/mL의 농도로 세포에 처리했을 때 , 모든 농도에서 80¾» 이상의 생존율을 보여 50~150 ug/mL의 농도범위 안에서 세포 독성에 큰 영향을 미치지 않았다. 오히 려 모든 농도에서 100% 이상의 생존율을 보여 세포 성장에 도움을 주는 인자가 존 재할 가능성을 추측할 수 었다.
<6-5> Raw 264.7 세포 자극에 의한 cytokine 생산능
효소 병행 처리를 이용해 만든 신규 다당 소재의 Raw 264.7 세포에 대한 cytokine 생산능을 <실시예 2-3>에서와 같이 ELISA 방법으로 측정하였다. 그 결과， IL-6 , TNF- α의 분비를 농도 의존적으로 증가시키는 것으로 확인되 었다. [도 18]에서 보는 바와 같이， IL-6는 모든 시료가 대조군에 비해 높았으며， FGW0에 비해 신규 다당 소재 FGEzO가 모든 농도에서 높은 활성을 보인 것을 확인했 다. 특히 신규 다당 소재 FGEzO가 50， 100， 150 ug/mL의 농도에서 각각 169， 363 , 1051 pg/mL의 수치를 보였는데 이는 FGW0보다 모든 농도범위에서 2배 이상의 활성 증가를 보였다. 또한 통계처리 결과 모두 유의미한 차이를 보이는 것으로 나타나 효소 병행처리를 통해 얻은 신규 다당소재의 면역 활성이 단순 열추출물 (FGTO)에 비해 효과적임을 확인할 수 있었다.
[도 19]에서 보는 바와 같이， TNF- a도 FGW0에 비해 신규 다당 소재 FGEzO가 모든 농도에서 높은 활성을 보인 것올 확인했다. 특히 신규 다당 소재 FGEzO가 50， 100 , 150 ug/mL의 농도에서 각각 3340 , 3674, 4332 pg/mL의 수치를 보였는데 이는 FGW0보다 모든 농도범위에서 2배 이상의 활성 증가를 보였다. 특히 저 농도에서는 4배 이상의 활성 증가가 나타났는데， 고농도인 150 ug/mL에서 값의 증가가 상대적 으로 미약한 것은 시료의 활성이 양성대조군인 LPS에 준하는 수준으로 나타나 활성 의 최대 한계수준까지 검출되었기 때문인 것으로 보인다. 저 농도에서 더욱 큰 활 성의 증가를 가져온 것은 적은 양의 시료로도 큰 효과를 얻을 수 있는 것으로 판단 되며， 이는 산업화하여 소재를 활용할 경우 경제적으로도 긍정적인 평가를 받을 수 있을 것으로 기대된다. 결론적으로 수심 ^래 다당은 인체에 유익하다고 여겨지는 면역기능을 자극하 는 효과가 있으며， 수삼에 효소의 병행처리를 하여 다당을 분리할 경우， 단순 열수 추출 방식에 비해 우수한 면역활성다당을 얻을 수 있음을 확인할 수 있었다.
【산업상 이용가능성】
따라서， 본 발명은 인삼에 아밀라제 및 셀를라제를 순차적으로 처리하는 단 계 및 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물로부터 분자량 lOkDa 이상의 다당 분획물 을 수득하는 단계를 포함하는 면역기능 증강 활성을 가진 효소처리 인삼유래 다당 분획물 제조방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 다당분획물을 제공한다. 본 발명 의 제조방법은 아밀라제 및 셀를라제를 포함하는 복합효소 처리 공정을 통하여， 면 역활성 증가 효과가 우수한 다당분획물을 경제적으로 제조할 수 있으며， 본 발명의 다당분획물은 기존의 인삼 유래 다당에 비하여 면역증강 효과가 우수하므로 면역증 강용 식품 제조에 효과적이어서 산업상 이용가능성이 높다.

Claims

【청구의 범위】
【청구항 1]
(a) 인삼에 아밀라제 및 셀를라제를 순차적으로 처리하는 단계; 및
(b) 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물로부터 분자량 lOkDa 이상의 다당 분 획물을 수득하는 단계를 포함하는 면역기능 증강 활성을 가진 인삼유래 다당분획물 제조방법.
【청구항 2]
제 1항에 있어서， 상기 (a) 단계는 셀를라제를 12시간 내지 24시간 동안 효소 처리 한 후， 아밀라제를 6시간 내지 24시간 동안 효소처리 하는 것을 특징으로 하 는 제조방법 .
【청구항 3】
제 1항에 있어서, 상기 (b) 단계의 다당분획물은 분자량 10 kDa 이상 500 kDa 이하인 것을 특징으로 하는 제조방법.
【청구항 4】
제 1항에 있어서， 상기 (b) 단계는
(bl) 상기 효소 처리된 인삼 가수분해물에서 잔사를 제거하는 단계;
(b2) 상기 잔사가 제거된 인삼 가수분해물에 유기용매를 넣어 침전된 조다당 을 수득하는 단계 ; 및
(b3) 상기 조다당으로부터 분자량 lOkDa 이상의 분획물을 분리 수득 하는 단 계를 포함하는 것을 특징으로 하는 제조방법.
【청구항 5]
계 1항에 있어서， 상기 인삼은 수삼또는 백삼으로 이루어진 군에서 선택되는 것을 특징으로 하는 제조방법.
【청구항 6】
제 1항 내지 제 5항 중 어느 한 항의 방법에 의해 제조되는 것을 특징으로 하 는 면역기능 증강 활성을 가진 인삼유래 다당분획물. 【청구항 7】
제 6항의 다당분획물을 유효성분으로포함하는 면역기능 증강용 식품 조성물. 【청구항 8]
제 6항의 다당분획물을 유효성분으로 포함하는 면역기능 증강용 약학적 조성 물.
PCT/KR2015/007938 2014-07-29 2015-07-29 효소처리 인삼유래 면역기능 증강용 다당분획물 및 이의 제조방법 WO2016018074A1 (ko)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201580051570.6A CN107205461A (zh) 2014-07-29 2015-07-29 用于提高免疫机能的经酵素处理的人参源多糖组分及制备

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020140096693A KR101774564B1 (ko) 2014-07-29 2014-07-29 효소처리 인삼유래 면역기능 증강용 다당분획물 및 이의 제조방법
KR10-2014-0096693 2014-07-29

Publications (2)

Publication Number Publication Date
WO2016018074A1 true WO2016018074A1 (ko) 2016-02-04
WO2016018074A8 WO2016018074A8 (ko) 2017-02-16

Family

ID=55217862

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/KR2015/007938 WO2016018074A1 (ko) 2014-07-29 2015-07-29 효소처리 인삼유래 면역기능 증강용 다당분획물 및 이의 제조방법

Country Status (3)

Country Link
KR (1) KR101774564B1 (ko)
CN (1) CN107205461A (ko)
WO (1) WO2016018074A1 (ko)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113913409A (zh) * 2021-10-25 2022-01-11 抚松县安东参业有限公司 一种人参素提取用复合蛋白酶、制备方法及其应用工艺
CN114276469A (zh) * 2021-12-21 2022-04-05 中国药科大学 一种红参均一多糖及其在制备心肌缺血损伤保护药物中的应用
CN114874352A (zh) * 2022-05-31 2022-08-09 天津中医药大学 一种红参hg型果胶的制备方法和结构表征方法

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110128563A (zh) * 2019-06-06 2019-08-16 森田药妆股份有限公司 一种酵素水解滑菇多糖及其制备方法和应用
KR20210013482A (ko) 2019-07-26 2021-02-04 주식회사 코시스바이오 식물성 생약의 유효성분 추출방법 및 이에 의해 제조되는 대식세포 활성 증진효과를 가진 조성물
KR102682753B1 (ko) * 2019-09-19 2024-07-12 (주)아모레퍼시픽 인삼 유래 저분자량 펩티드, 이의 제조방법, 및 이를 함유하는 화장료 조성물
CN111154008A (zh) * 2020-03-11 2020-05-15 通化市赫思恩科技有限公司 从人参工业生产残渣中提取具有免疫活性多糖的方法
CN113281443A (zh) * 2021-06-07 2021-08-20 广州广电计量检测股份有限公司 一种多糖的检测方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH1014523A (ja) * 1996-07-08 1998-01-20 Nagaoka Jitsugyo Kk 高麗人参加工食品およびその製造方法
KR100594353B1 (ko) * 2002-05-28 2006-07-03 주식회사 엠디바이오알파 신규한 인삼잎 및 줄기 다당체, 그 제조방법 및 그를활성성분으로 함유하는 항암제 및 항암보조제 조성물
KR101208584B1 (ko) * 2010-09-20 2012-12-06 김월수 발효 인삼 추출액을 함유한 기능성 배 주스의 제조방법

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR0144130B1 (ko) * 1993-12-17 1998-07-15 신재인 면역증강 효과가 있는 인삼다당체("진산")
CN1524869A (zh) * 2003-02-24 2004-09-01 上海民信生物医学工程有限公司 从猫人参中提取具有抗癌作用的多糖复合物avds的方法及药物用途
CN1241947C (zh) * 2004-01-05 2006-02-15 吉林威威药业股份有限公司 一种人参多糖制备方法
CN100457119C (zh) * 2006-03-30 2009-02-04 汤玉生 注射用人参多糖冻干粉针及其制备工艺
CN101497906A (zh) * 2008-07-01 2009-08-05 南昌大学 一种茶多糖的分离纯化制备方法及降血糖活性
CN101323873B (zh) * 2008-07-16 2011-08-10 珠海市星远科技有限公司 一种人参多糖提取工艺
CN101724667A (zh) * 2008-10-24 2010-06-09 蒋来高 运用生物工程酶技术提取石斛多糖的工艺及其制品和应用
CN101747446B (zh) * 2008-12-04 2011-08-24 东北师范大学 一种抗疲劳人参酸性多糖的提取方法
CN101744770B (zh) * 2008-12-12 2013-07-03 珠海市星远科技有限公司 人参多糖注射剂及其制备方法
CN101475648B (zh) * 2009-01-16 2011-03-16 海南耶肽生物工程有限公司 山苦茶多糖的制备方法
KR101373263B1 (ko) * 2011-12-19 2014-03-13 한국식품연구원 면역기능 증진 활성이 있는 감잎 유래 다당 분획물 및 이의 제조 방법
KR20130102177A (ko) * 2012-03-07 2013-09-17 아마존바이오 주식회사 헬리코박터 파이로리의 세포결합 저해활성을 갖는 인삼 다당체 가수분해물과 이를 함유하는 위장질환 예방 및 치료용 조성물

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH1014523A (ja) * 1996-07-08 1998-01-20 Nagaoka Jitsugyo Kk 高麗人参加工食品およびその製造方法
KR100594353B1 (ko) * 2002-05-28 2006-07-03 주식회사 엠디바이오알파 신규한 인삼잎 및 줄기 다당체, 그 제조방법 및 그를활성성분으로 함유하는 항암제 및 항암보조제 조성물
KR101208584B1 (ko) * 2010-09-20 2012-12-06 김월수 발효 인삼 추출액을 함유한 기능성 배 주스의 제조방법

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LEE, JONG WON ET AL.: "Extraction Condition of Acidic Polysaccharide from Korean Red Ginseng Marc''.", J. GINSENG RES., vol. 20, no. 4, December 2002 (2002-12-01), pages 202 - 205, XP053008173 *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113913409A (zh) * 2021-10-25 2022-01-11 抚松县安东参业有限公司 一种人参素提取用复合蛋白酶、制备方法及其应用工艺
CN114276469A (zh) * 2021-12-21 2022-04-05 中国药科大学 一种红参均一多糖及其在制备心肌缺血损伤保护药物中的应用
CN114276469B (zh) * 2021-12-21 2022-11-29 中国药科大学 一种红参均一多糖及其在制备心肌缺血损伤保护药物中的应用
CN114874352A (zh) * 2022-05-31 2022-08-09 天津中医药大学 一种红参hg型果胶的制备方法和结构表征方法
CN114874352B (zh) * 2022-05-31 2023-01-24 天津中医药大学 一种红参hg型果胶的制备方法和结构表征方法

Also Published As

Publication number Publication date
KR20160014445A (ko) 2016-02-11
KR101774564B1 (ko) 2017-09-04
CN107205461A (zh) 2017-09-26
WO2016018074A8 (ko) 2017-02-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2016018074A1 (ko) 효소처리 인삼유래 면역기능 증강용 다당분획물 및 이의 제조방법
KR101168381B1 (ko) 녹차 가수분해물의 면역기능 증강 및 식품 조성물 제조 방법
KR102091084B1 (ko) 몰로키아 잎 추출물을 유효성분으로 포함하는 면역증강용 조성물
KR101718323B1 (ko) 발효옻 추출물을 포함하는 위염, 위궤양, 십이지장 궤양, 위암 및 위점막 손상 예방 및 치료용 약학적 조성물
WO2013094903A1 (ko) 면역기능 증진 활성이 있는 감잎 유래 다당 분획물 및 이의 제조 방법
WO2014163286A1 (ko) 면역 증강 활성 및 항종양 활성이 있는 감잎 유래 다당 분획물 및 이의 제조 방법
KR101182824B1 (ko) 초피 열매 추출물 또는 이로부터 분리된 당단백질을 함유하는 항알레르기성 조성물
Khatua et al. Auricularia spp.: from Farm to Pharmacy
KR20200053016A (ko) 붓기 제거에 효과가 있는 식물성 천연물의 혼합 추출물을 포함하는 당뇨병의 예방 또는 치료용 약학적 조성물 및 건강 기능 식품
KR100466735B1 (ko) 한국산 가시오갈피에서 추출한 한국산 가시오갈피추출물, 단백질추출물, 조단백다당류추출물을 유효성분으로 하는 면역증강용 조성물 및 상기 면역증강용 조성물을 함유한 식품 또는 식품첨가제
KR102046878B1 (ko) 메밀 추출물을 유효성분으로 포함하는 면역증강용 조성물
KR100729213B1 (ko) 면역 증강 활성을 갖는 잎새 버섯의 액체배양물로부터분리한 세포외 생체고분자
KR20150051174A (ko) 느릅나무 수피의 알코올 추출물을 유효성분으로 포함하는 면역증강용 조성물
KR20200069077A (ko) 셀러리 가수분해물을 유효성분으로 함유하는 아토피 피부염의 예방, 개선 또는 치료용 조성물
KR102218600B1 (ko) 발효 인삼잎 유래 다당을 포함하는 면역증강 및 항암 조성물의 제조 방법
KR20160014446A (ko) 면역기능 증진 활성이 있는 참취 유래 다당 분획물 및 이의 제조 방법
KR100841453B1 (ko) 겨우살이 성분의 발효물을 함유하는 조성물의 제조방법 및 그 조성물
KR101987821B1 (ko) 육계와 누에의 혼합 추출물을 유효성분으로 포함하는 면역증강용 조성물
KR101894657B1 (ko) 맥문동과 누에의 혼합 추출물을 유효성분으로 포함하는 면역증강용 조성물
KR20180040912A (ko) 와송 물 추출물을 이용한 면역 증강용 조성물
KR100657423B1 (ko) 한국산 가시오갈피에서 추출한 한국산 가시오갈피추출물의 단백질추출물, 조단백다당류추출물을 유효성분으로 하는 면역증강용 약제
KR101895158B1 (ko) 두충과 누에의 혼합 추출물을 유효성분으로 포함하는 면역증강용 조성물
KR102128625B1 (ko) 표고버섯 수확 후의 배지 추출물을 유효성분으로 함유하는 혈전증의 예방 또는 치료용 약학적 조성물 및 건강 기능 식품
KR20050100718A (ko) 상황버섯 자실체로부터 수득한 베타글루칸 및 이를유효성분으로 함유하는 항암용 약학 조성물
KR100848211B1 (ko) 펠리누스린테우스 균사체에서 추출한 다당류 및 테아닌의 혼합 조성물

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 15825780

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 15825780

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1