PL204305B1 - Sposób wytwarzania ¹⁸F-znakowanego wskaźnika, związki stosowane w sposobie, radiofarmaceutyczny zestaw do wytwarzania ¹⁸F-znakowanego wskaźnika i nabój do zestawu radiofarmaceutycznego - Google Patents

Sposób wytwarzania ¹⁸F-znakowanego wskaźnika, związki stosowane w sposobie, radiofarmaceutyczny zestaw do wytwarzania ¹⁸F-znakowanego wskaźnika i nabój do zestawu radiofarmaceutycznego

Info

Publication number
PL204305B1
PL204305B1 PL367772A PL36777202A PL204305B1 PL 204305 B1 PL204305 B1 PL 204305B1 PL 367772 A PL367772 A PL 367772A PL 36777202 A PL36777202 A PL 36777202A PL 204305 B1 PL204305 B1 PL 204305B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
formula
precursor
labeled
indicator
excess
Prior art date
Application number
PL367772A
Other languages
English (en)
Other versions
PL367772A1 (pl
Inventor
Sajinder Kaur Luthra
Frank Brady
Harry John Wadsworth
Alexander Mark Gibson
Matthias Eberhard Glaser
Original Assignee
Ge Healthcare Ltd
Hammersmith Imanet Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ge Healthcare Ltd, Hammersmith Imanet Ltd filed Critical Ge Healthcare Ltd
Publication of PL367772A1 publication Critical patent/PL367772A1/pl
Publication of PL204305B1 publication Critical patent/PL204305B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C25/00Compounds containing at least one halogen atom bound to a six-membered aromatic ring
    • C07C25/02Monocyclic aromatic halogenated hydrocarbons
    • C07C25/13Monocyclic aromatic halogenated hydrocarbons containing fluorine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K51/00Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
    • A61K51/02Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
    • A61K51/04Organic compounds
    • A61K51/0491Sugars, nucleosides, nucleotides, oligonucleotides, nucleic acids, e.g. DNA, RNA, nucleic acid aptamers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07BGENERAL METHODS OF ORGANIC CHEMISTRY; APPARATUS THEREFOR
    • C07B59/00Introduction of isotopes of elements into organic compounds ; Labelled organic compounds per se
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C255/00Carboxylic acid nitriles
    • C07C255/01Carboxylic acid nitriles having cyano groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C255/32Carboxylic acid nitriles having cyano groups bound to acyclic carbon atoms having cyano groups bound to acyclic carbon atoms of a carbon skeleton containing at least one six-membered aromatic ring
    • C07C255/42Carboxylic acid nitriles having cyano groups bound to acyclic carbon atoms having cyano groups bound to acyclic carbon atoms of a carbon skeleton containing at least one six-membered aromatic ring the carbon skeleton being further substituted by singly-bound nitrogen atoms, not being further bound to other hetero atoms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C309/00Sulfonic acids; Halides, esters, or anhydrides thereof
    • C07C309/63Esters of sulfonic acids
    • C07C309/64Esters of sulfonic acids having sulfur atoms of esterified sulfo groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C309/65Esters of sulfonic acids having sulfur atoms of esterified sulfo groups bound to acyclic carbon atoms of a saturated carbon skeleton
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H5/00Compounds containing saccharide radicals in which the hetero bonds to oxygen have been replaced by the same number of hetero bonds to halogen, nitrogen, sulfur, selenium, or tellurium
    • C07H5/02Compounds containing saccharide radicals in which the hetero bonds to oxygen have been replaced by the same number of hetero bonds to halogen, nitrogen, sulfur, selenium, or tellurium to halogen
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07BGENERAL METHODS OF ORGANIC CHEMISTRY; APPARATUS THEREFOR
    • C07B2200/00Indexing scheme relating to specific properties of organic compounds
    • C07B2200/11Compounds covalently bound to a solid support

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Nuclear Medicine (AREA)

Description

Opis wynalazku
Niniejszy wynalazek dotyczy nowych sposobów wytwarzania radioznakowanych wskaźników, w szczególnoś ci wytwarzania 18F-znakowanych związków, które mogą być odpowiednie do zastosowania jako radiowskaźniki w Emisyjnej Tomografii Pozytronowej (PET). Niniejszy wynalazek obejmuje również zestawy radiofarmaceutyczne wykorzystujące te nowe sposoby.
Preferowany radioizotop do użytku w PET, 18F, ma względnie krótki okres półtrwania wynoszący 110 minut. 18F-znakowane wskaźniki do użytku w PET winny być zatem syntetyzowane i oczyszczane tak szybko jak to tylko możliwe, najlepiej w ciągu godziny przed klinicznym zastosowaniem. Standardowe metody syntezy dla wprowadzenia fluoru-18 są względnie powolne i wymagają poreakcyjnego etapu oczyszczania (na przykład za pomocą HPLC), co oznacza, że trudno otrzymać z dobrą wydajnością 18F-znakowany wskaźnik do użytku klinicznego. Istnieje również potrzeba automatyzacji by chronić operatora od wystawienia na działanie promieniowania. Wiele sposobów radiofluorowania to skomplikowane procedury i istnieje potrzeba ich uproszczenia oraz ułatwienia ich automatyzacji.
Publikacja S.A. Toorongnian at. al.: “Routine production of 2-deoksy-2-[18F]fluoro-D-glucose by direct nucleophilic exchange on a quaternary 4-aminopyridinium resin”, International Journal Of Radiation Applications And Instrumentation Part B: Nuclear Medicine And Biology, Elsevier Science Publishers, New York, NY, US (1990), Vol. 17, no. 3, pages 273-279. Publikacja ta ujawnia 18F- związany na żywicy (na stałym nośniku) i jego zastosowanie do wytwarzania [18F]FDG. W publikacji przedstawiono sposób unieruchamiania [18F]fluorku przez zwykłe połączenie jonowe tak, że wskaźnik18 prekursor, grupa opuszczająca i [18F]fluorowany wskaźnik po reakcji znajdują się w fazie roztworu. W przeciwień stwie do tego rozwią zania obecny wynalazek przedstawia sposób syntezy [18F]fluorowanych wskaźników, gdzie unieruchomienie wskaźnika-prekursora na stałym nośniku zachodzi poprzez wiązanie kowalencyjne. W trakcie reakcji fluorowania [18F]fluorowany wskaźnik uwalniany jest do roztworu i może być łatwo oddzielony od fazy stałej, natomiast nieprzereagowany prekursor pozostaje kowalencyjnie związany na stałym nośniku i może być odszczepiony poprzez specyficzne względem miejsca reakcje chemiczne. Oznacza to, że obecny sposób pozwala na otrzymanie czystszego [18F]znakowanego wskaźnika, zawierającego mniej organicznych produktów ubocznych.
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania 18F-znakowanego wskaźnika, charakteryzujący się tym, że obejmuje obróbkę związanego na żywicy prekursora opisanego wzorem (I)
STAŁE PODŁOŻE - ŁĄCZNIK - X - WSKAŹNIK PREKURSOR (I) w którym X oznacza grupę sprzyjającą substytucji nukleofilowej na określonych centrach przyłączonego WSKAŹNIKA PREKURSORA, z 18F-, wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (II) 18F-WSKAŹNIK (II)
Sposób korzystnie obejmuje obróbkę związanego na żywicy prekursora opisanego wzorem (la) STAŁE PODŁOŻE - ŁĄCZNIK - SO2-O-WSKAŹNIK PREKURSOR (la) z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaźnika opisanego wzorem (II) 18F-WSKAŹNIK (II) po czym ewentualnie można przeprowadzić (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie dowolnych grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (II) w postaci wodnego roztworu.
W sposobie korzystnie otrzymywanie 2-18F-fluoro-2-deoksy-D-glukozy (18F-FDG) obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Ib)
PL 204 305 B1 w którym P1b, P2b, P3b oraz P4b oznaczają każ dy niezależnie atom wodoru lub grupę chronią cą; z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IIb)
w którym P1b, P2b, P3b oraz P4b oznaczają każ dy niezależnie atom wodoru lub grupę zabezpieczającą; po czym ewentualnie przeprowadza się (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (Ilb) w postaci wodnego roztworu.
W sposobie korzystnie wytwarzanie wodnego roztworu 3'-deoksy-3'-18F-fluorotymidyny (18F-FLT) obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Ic):
w którym P1c oraz P2c oznaczają niezależ nie atom wodoru lub grupę zabezpieczającą, z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IIc)
w którym P1c oraz P2c oznaczają każdy niezależnie atom wodoru lub grupą zabezpieczającą; po czym ewentualnie przeprowadza się (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (Ilc) w postaci wodnego roztworu.
Korzystnie w sposobie wytwarzanie 2-(1,1-dicyjanopropen-2-ylo)-6-(2-fluoroetylo)-(metylamino)naftalenu (FDDNP), obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Ih):
PL 204 305 B1 z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IIh)
po czym ewentualnie przeprowadza się (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iii) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (IIh) w postaci wodnego roztworu.
Korzystnie w sposobie wytwarzanie 18F-znakowanego wskaźnika obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Id)
STAŁE PODŁOŻE - ŁĄCZNIK - I+ - WSKAŹNIK PREKURSOR (Id) YY- oznacza anion, najkorzystniej anion trifluorometylosulfonianowy (triflatowy), z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IId) 18F-WSKAŹNIK (IId) po czym ewentualnie przeprowadza się (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie dowolnych grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (lId) w postaci wodnego roztworu.
W sposobie korzystnie wytwarzanie 6-L-18F-fluorodopy (18F-FDOPA) obejmuje obróbkę zwią zanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Ie):
w którym P1e, P2e, P3e, oraz P4e oznaczają niezależnie atom wodoru lub grupę zabezpieczającą a Y- jest anionem, najkorzystniej trifluorometylosulfonowym (triflatem), z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IIe)
PL 204 305 B1 w którym P1e, P2e, P3e, oraz P4e oznaczają, każdy niezależnie, atom wodoru lub grupę zabezpieczającą; po czym ewentualnie przeprowadza się (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie dowolnych grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (Ile) w postaci wodnego roztworu. Sposób korzystnie charakteryzuje się tym, że wytwarza się 18F-znakowany wskaźnik opisany wzorem (II), do użytku w PET.
Przedmiotem wynalazku jest także związek opisany wzorem (Ib)
w którym P1b, P2b, P3b, oraz P4b oznaczają, każdy niezależnie, atom wodoru lub grupę zabezpieczającą. Przedmiotem wynalazku jest również związek opisany wzorem (Ic):
1c 2c w którym P1c oraz P2c oznaczają , każ dy niezależ nie, atom wodoru lub grupę zabezpieczają c ą . Wynalazek również obejmuje związek opisany wzorem (Ih):
Przedmiotem wynalazku jest także związek opisany wzorem (Ie):
PL 204 305 B1 w którym P1e, P2e, P3e, oraz P4e oznaczają , każ dy niezależ nie, atom wodoru lub grupę zabezpieczającą a Y- jest anionem takim jak triflat.
Przedmiotem wynalazku jest również radiofarmaceutyczny zestaw do wytwarzania 18F-znakowanego wskaźnika do zastosowania w PET, który obejmuje:
(v) naczynie zawierające związek opisany wzorem (I) lub (la), (Ib), (Ic), (Id), (Ie), lub (Ih), jak zdefiniowano w którymkolwiek z zastrzeżeń 1 do 7 ; oraz;
(ii) środki wymywania naczynia ze źródłem 18F-;
(vi) nabój jonowymienny do usuwania nadmiaru 18F-, oraz ewentualnie (vii) nabój do deprotekcji w fazie stałej powstałego produktu opisanego wzorem (II) lub (Ilb), (lIc), (lId), (IIe) lub (IIh), jak zdefiniowano w którymkolwiek z zastrzeżeń 1 do 7.
Przedmiotem wynalazku jest także nabój do zestawu radiofarmaceutycznego do wytwarzania 18F-znakowanego wskaźnika do zastosowania w PET, charakteryzujący się tym, że obejmuje:
(i) naczynie zawierające związek opisany wzorem (I) lub (la), (Ib), (Ic), (Id), (Ie), lub (Ih), jak zdefiniowano w którymkolwiek z zastrzeżeń 1 do 7; oraz (ii) środki do wymywania naczynia ze źródłem 18F-.
Przedmiotem niniejszego wynalazku są więc sposoby wytwarzania 18F-znakowanych wskaźników w fazie stałej w sposób szybki i o wysokiej promieniotwórczej aktywności, właściwej unikając przy tym czasochłonnych etapów oczyszczania, w ten sposób, że otrzymany 18F-znakowany wskaźnik jest gotowy do użytku w PET. Sposoby prowadzone w fazie stałej pozwalają również na automatyzację procesu, co jest zaletą ułatwiającą produkcję i zwiększającą wydajność. Niniejszy wynalazek obejmuje również zestawy radiofarmaceutyczne, w których stosowane są takie sposoby, dostarczając tym samym radiofarmaceucie bądź personelowi medycznemu dogodne środki do przygotowania 18F-znakowanego wskaźnika.
W ogólnym ujęciu, niniejszy wynalazek dostarcza sposób wytwarzania 18F-znakowanego wskaźnika, który obejmuje obróbkę związanego na żywicy prekursora opisanego wzorem (I)
STAŁE PODŁOŻE - ŁĄCZNIK - X - WSKAŹNIK PREKURSOR (I) z 18F, z wytworzeniem znakowanego wskaźnika opisanego wzorem (II) 18F - WSKAŹNIK (II)
Gdy 18F-znakowany wskaźnik o wzorze (II) jest usuwany z fazy stałej do roztworu, nieprzereagowany prekursor pozostaje związany na żywicy i może być oddzielony przez prostą filtrację, co zapobiega potrzebie przeprowadzania skomplikowanego oczyszczania, na przykład za pomocą HPLC. 18F-znakowany wskaźnik opisany wzorem (II) może być oczyszczony poprzez usunięcie nadmiaru F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej i/lub poprzez usunięcie organicznego rozpuszczalnika. Otrzymany 18F-znakowany wskaźnik opisany wzorem (II) może być następnie doprowadzony do postaci wodnego roztworu gotowego do klinicznego zastosowania.
Przykłady wskaźników, które mogą być 18F-znakowane w sposób opisany w niniejszym wynalazku obejmują 2-fluoro-2-deoksy-D-glukozę (FDG), 6-fluoro-L-DOPA (FDOPA), 3'-deoksy-3'-fluorotymidynę (FLT), 2-(1,1-dicyjanopropen-2-ylo)-6-(2-fluoroetylo)-metyloaminonaftalen (FDDNP), 2-, 5i 6-fluoro-(2(S)-(azetynylometoksy)-pirydynę , N-sukcynoimidylo-4-[18F]fluorobenzoesan ([18F]-SFB) i peptydy. W korzystnych aspektach niniejszego wynalazku wytwarzany wskaź nik jest wybrany spośród FDG, FDOPA, FLT, oraz FDDNP, a najkorzystniej, gdy jest nim FDG lub FDOPA.
W związkach opisanych wzorem (I), X jest grupą inicjującą nukleofilową substytucję w specyficznym położeniu na przyłączanym WSKAŹNIKU. Przykładowe X obejmują grupę -SO2O- jak opisano we wzorze (la) poniżej, jon I+ jak opisano we wzorze (Id) poniżej, grupę lub -N(C1-6alkilo)2+- jak opisano we wzorze (If) poniżej.
W dalszym aspekcie, przedmiotem niniejszego wynalazku jest sposób wytwarzania 18F-znakowanego wskaźnika, który obejmuje obróbkę związanego na żywicy prekursora opisanego wzorem (la):
STAŁE PODŁOŻE - ŁĄCZNIK- SO2O- WSKAŹNIK PREKURSOR (la) z 18F-, prowadzącą do wytwarzania znakowanego wskaźnika opisanego wzorem (II):
18F-WSKAŹNIK (II) po czym ewentualnie można przeprowadzić (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub
PL 204 305 B1 (ii) usuwanie wszelkich grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (II) w postaci wodnego roztworu.
W związku opisanym wzorem (la), WSKAŹNIKIEM PREKURSOREM jest odpowiednio FDG, FLT, FDDNP lub prekursor któregoś z wymienionych, z jedną lub więcej niż jedną, zabezpieczoną grupą funkcyjną, lub aktywowany prekursor FDOPA. Najkorzystniej, gdy WSKAŹNIKIEM PREKURSOREM we wzorze (la) jest FDG lub jego prekursor.
Jak pokazano na Schemacie 1, związek opisany wzorem (la) może być odpowiednio przygotowany z dostępnej na rynku żywicy zawierającej grupy funkcyjne kwasu sulfonowego, takiej jak Merrifield Resin, Novasyn® TG Bromo Resin, (bromometylo)fenoksymetylowy polistyren, albo Wang Resin, która może być poddana reakcji z czynnikiem chlorującym do otrzymania odpowiedniej żywicy chlorku sulfonylu. Może to być przeprowadzone przez potraktowanie żywicy na przykład pentachlorkiem fosforu, trichlorkiem fosforu, chlorkiem oksalilu lub chlorkiem tionylu, w odpowiednim, obojętnym rozpuszczalniku, takim jak dichlorometan, chloroform, lub acetonitryl, i ogrzewanie w podwyższonej temperaturze przez określony czas. Nadmiar reagentów może być usuwany z żywicy poprzez przemywanie kolejnymi porcjami obojętnego rozpuszczalnika. Żywica chlorku sulfonylu może być następnie poddana reakcji z alkoholową pochodną wskaźnika do wytworzenia związanego z żywicą prekursora opisanego wzorem (la). Może to być przeprowadzone przez potraktowanie żywicy roztworem alkoholu w obojętnym rozpuszczalniku, takim jak chloroform, dichlorometan, acetonitryl lub tetrahydrofuran, zawierającym nie-nukleofilową rozpuszczalną zasadę, taką jak wodorek sodu lub trialkiloamina, na przykład trimetyloamina czy diizopropyloetyloamina. Reakcja może być przeprowadzana w temperaturze pomiędzy 10 do 80°C, optymalnie w temperaturze otoczenia w okresie od około 1 do 24 godzin. Nadmiar alkoholu i zasady można usunąć ze STAŁEGO PODŁOŻA przez wymywanie kolejnymi porcjami obojętnego rozpuszczalnika, takiego jak chloroform, dichlorometan, czy tetrahydrofuran.
Schemat 1
W zwią zkach opisanych wzorami (I) oraz (la) i w nastę pują cych bardziej specyficznych aspektach wynalazku „STAŁYM PODŁOŻEM” może być jakiekolwiek STAŁE PODŁOŻE w fazie stałej, które jest nierozpuszczalne w żadnym z rozpuszczalników używanych w procesie, z którym może być kowalencyjnie związany ŁĄCZNIK i/lub WSKAŹNIK PREKURSOR. Przykłady odpowiednich STAŁYCH PODŁOŻY obejmują polimery takie jak polistyren (który może być blokowo szczepiony, na przykład z glikolem polietylenowym), poliakryloamid, lub polipropylen albo szkło bądź silikon powleczone takim polimerem. STAŁE PODŁOŻE może być w postaci małych nieciągłych cząstek takich jak małe granulki czy igiełki, lub w postaci powłoki na wewnętrznej powierzchni naboju lub wyrobionego w skali mikro naczynia.
W związkach opisanych wzorami (I) oraz (la) i w następujących bardziej szczegółowych aspektach niniejszego wynalazku, „ŁĄCZNIKIEM” może być jakakolwiek odpowiednia grupa organiczna, która służy umieszczeniu centra aktywnego w odpowiedniej odległości od struktury STAŁEGO PODŁOŻA tak, by zmaksymalizować jego reaktywność. Odpowiednio, ŁĄCZNIK zawiera od zera do czterech grup arylowych (korzystnie fenylowych) i/lub C1-6 alkilowych lub C1-6 halogenoalkilowych (korzystnie C1-6 fluoroalkilowych), oraz opcjonalnie jedną do czterech dodatkowych grup funkcyjnych takich, jak grupy amidowe lub sulfonamidowe. Przykłady takich łączników są dobrze znane specjalistom z dziedziny chemii ciała stałego, a obejmują:
PL 204 305 B1
w którym każ de n oznacza liczbę cał kowitą od 0 do 3.
Będzie to oczywiste dla specjalisty się w tej dziedzinie, iż ochrona grup funkcyjnych może być konieczna we WSKAŹNIKU PREKURSORZE w celu uniknięcia niepożądanych reakcji podczas procesu promieniotwórczego znakowania. Taka ochrona może być osiągnięta poprzez zastosowanie standardowych metod z chemii grup zabezpieczających. Po zakończeniu promieniotwórczego znakowania, jakiekolwiek grupy zabezpieczające mogą zostać usunięte przy użyciu prostych procedur, które są również standardowe w tej dziedzinie. Najkorzystniejsze metody zabezpieczania i deprotekcji mogą być znalezione, na przykład, w „Protecting Groups in Organic Synthesis”, Theodory W. Greene i Peter'a G. M. Wuts, wydawnictwa John Wiley & Sons Inc.
Potraktowanie związku opisanego wzorem (I) lub (la) 18F- może być przeprowadzone poprzez potraktowanie związku jakimkolwiek odpowiednim źródłem 18F- takim, jak Na18F, K18F, Cs18F, fluorek 18F tetraalkiloamoniowy, lub fluorek 18F tetraalkilofosfoniowy. Do zwiększenia reaktywności fluorku można dodać katalizator przeniesienia fazowego taki, jak 4,7,13,16,21,24-heksaoksa-1,10-diPL 204 305 B1 azabicyklo[8,8,8]heksakozan i reakcja powinna być przeprowadzona w aprotonowym rozpuszczalniku. Warunki te dostarczają reaktywnych jonów fluorkowych. Potraktowanie za pomocą 18F- jest dogodnie przeprowadzane w obecności odpowiedniego rozpuszczalnika organicznego takiego, jak acetonitryl, dimetyloformamid, dimetylosulfotlenek, tetrahydrofuran, dioksan, 1,2-dimetoksyetan, sulfolan, N-metylopirolidynon, w nieekstremalnej temperaturze, na przykład, od 15°C do 180°C, korzystniej w podwyższonej temperaturze. Na zakończenie reakcji 18F-znakowany wskaźnik opisany wzorem (II) jest rozpuszczony w rozpuszczalniku jest dogodnie oddzielany od fazy stałej przez filtrację. Te same techniki fluorowania mogą być wykorzystane w kolejnych bardziej specyficznych aspektach niniejszego wynalazku.
Jakikolwiek nadmiar 18F- może być usunięty z roztworu 18F-wskaźnika poprzez zastosowanie jakichkolwiek odpowiednich środków, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej albo za pomocą stałych absorbentów. Odpowiednie żywice jonowymienne obejmują BIO-RAD AG 1-X8 czy Waters QMA oraz odpowiednie stałe absorbenty obejmują tlenek glinu. Nadmiar 18F- może być usunięty poprzez zastosowanie takich faz stałych w temperaturze pokojowej w aprotycznych rozpuszczalnikach.
Jakikolwiek rozpuszczalnik organiczny może być usunięty za pomocą jakiejkolwiek standardowej metody, jak na przykład odparowanie w podwyższonej temperaturze w próżni lub przepuszczenie strumienia obojętnego gazu, takiego jak azot lub argon nad roztworem.
Przed użyciem 18F-znakowanego wskaźnika może być koniecznym jego spreparowanie, na przykład w postaci wodnego roztworu poprzez rozpuszczenie 18F-znakowanego wskaźnika w sterylnym, izotonicznym roztworze soli zawierającym do 10% odpowiedniego rozpuszczalnika organicznego takiego, jak etanol, lub odpowiedniego roztworu buforowego takiego jak bufor fosforanowy. Inne dodatki takie jak kwas askorbinowy mogą być dodane do zmniejszania radiolizy.
Niniejszy wynalazek dostarcza, w jego kolejnym aspekcie, sposób wytwarzania 2-18F-fluoro-2-deoksy-D-glukozy (18F-FDG), który obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Ib):
H OH OH 4H w którym P1b, P2b, P3b, oraz P4b oznaczają niezależ nie atom wodoru lub grup ę zabezpieczają c ą ; z 18F- z wytworzeniem znakowanego wskaźnika opisanego wzorem (IIb)
H OH OH 4H w którym P1b, P2b, P3b, oraz P4b oznaczają niezależ nie atom wodoru lub grup ę zabezpieczają c ą ;
po czym ewentualnie można przeprowadzić (i) usunięcie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie wszelkich grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (IIb) w postaci wodnego roztworu.
W związku opisanym wzorem (Ib) ŁĄCZNIKIEM jest korzystnie
PL 204 305 B1
w którym n wynosi 0 do 3, i jest bardziej korzystnie
i STAŁ YM PODŁ O Ż EM jest odpowiednia ż ywica polistyrenowa.
Usunięcie jakichkolwiek grup zabezpieczających ze związku opisanego wzorem (IIb) może być przeprowadzone za pomocą standardowych metod, do których odniesiono się powyżej. W korzystnym wykonaniu, w tym aspekcie niniejszego wynalazku hydroksylowe grupy cukru są chronione jako estry, odpowiednio C1-6 alkanowe estry, korzystniej w postaci estrów octanowych, lub eterów, najkorzystniej C1-6 eterów alkoksymetylowych, lub acetali. Ester, acetal, czy inna grupa ochraniająca może być dogodnie usunięta przez hydrolizę, na przykład w obecności kwasu bądź zasady. Taka deprotekcja może być przeprowadzona przy użyciu stałych katalizatorów kwasowych lub zasadowych, które czynią neutralizację po deprotekcji zbędną.
Przedmiotem niniejszego wynalazku w dalszym aspekcie jest sposób wytwarzania 3'-deoksy-3'-18F-fluorotymidyny (18F-FLT), który obejmuje obróbkę związanego na stałym podłożu prekursora opisanego wzorem (Ic):
PL 204 305 B1 w którym P1c oraz P2c oznaczają niezależnie atom wodoru lub grupę zabezpieczającą; z 18F- z wytwarzaniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IIc):
w którym P1c oraz P2c oznaczają niezależnie atom wodoru lub grupę zabezpieczającą;
po czym ewentualnie można przeprowadzić (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie wszelkich grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (IIc) w postaci wodnego roztworu.
W tym aspekcie niniejszego wynalazku, aminowe i hydroksylowe grupy funkcyjne w prekursorze tymidynowym są odpowiednio zabezpieczane przy użyciu standardowych metod, do których odniesiono się powyżej. Odpowiednio, aminowe i hydroksylowe grupy są ochraniane w postaci estrów, odpowiednio estrów C1-6 alkilowych, korzystniej estrów acylowych. Estrowe grupy zabezpieczające mogą być dogodnie usuwane na drodze hydrolizy w obecności kwasu lub zasady. Taka deprotekcja może być przeprowadzona przy użyciu stałego kwasowego lub zasadowego katalizatora, który czyni neutralizację po deprotekcji zbędną.
W związku opisanym wzorem (Ic), ŁĄCZNIKIEM jest korzystnie:
w którym n wynosi 0 do 3.
W dalszym aspekcie niniejszego wynalazku, WSKA Ź NIKIEM PREKURSOREM w związku opisanym wzorem (la) może być peptyd lub białko takie, jak peptyd zawierający od 2 do 1000 aminokwasów.
W kolejnym aspekcie niniejszego wynalazku, dostarczony jest sposób wytwarzania 6-L-18F-fluorodopa (18F-FDOPA), który obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Ig):
w którym P1g, P3g, oraz P4g oznaczają niezależ nie atom wodoru lub grupę zabezpieczają c ą taką jak t-butoksykarbonylowa;
PL 204 305 B1 z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IIg)
w którym P1g, P3g, oraz P4g oznaczają każ dy niezależnie atom wodoru lub grupę zabezpieczając ą taką jak grupa t-butoksykarbonylowa;
po czym ewentualnie można przeprowadzić (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) konwersję grupy -C(O)CF3 na grupę hydroksylową; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego FDOPA w postaci wodnego roztworu.
W tym aspekcie wynalazku, hydroksylowe grupy funkcyjne wyjściowego materiału DOPA są dogodnie zabezpieczane w postaci estrów, korzystnie w postaci estrów C1-6 kwasów karboksylowych, a najkorzystniej estrów octowych, lub w postaci estrów wę glanowych takich jak estry t-butoksykarbonylowe. Kwasowe grupy funkcyjne mogą być zabezpieczane w postaci estrów C1-6 alkilowych, korzystnie jako ester etylowy a aminowe grupy funkcyjne mogą być zabezpieczane jako amidy, korzystnie formylowe, lub w postaci uretanu, a najkorzystniej jako uretan t-butoksykarbonylowy. Ester formylowy i uretan, jako grupy zabezpieczające mogą być łatwo usuwane na drodze hydrolizy, na przykład w obecności kwasu lub zasady. Taka deprotekcja może być osiągnięta przy zastosowaniu kwasowych lub zasadowych katalizatorów stałych, które czynią zbędnym zobojętnianie po deprotekcji. Konwersję grupy -C(O)CF3 na grupę hydroksylową można dokonać poprzez potraktowanie czynnikiem utleniającym takim jak kwas metachloronadbenzoesowy, a następnie przeprowadzenie łagodnej hydrolizy w środowisku kwaśnym. W tym aspekcie wynalazku, szczególnie dogodnym ŁĄCZNIKIEM jest
a stałym podłożem żywica polistyrenowa.
Niniejszy wynalazek w dalszym aspekcie dostarcza sposób wytwarzania 2-(1,1-dicyjanopropen-2-ylo)-6-(2-fluoroetylo)-(metyloamino)-naftalenu (FDDNP), który obejmuje obróbkę związanego na stałym podłożu prekursora opisanego wzorem (Ih):
PL 204 305 B1 z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaźnika opisanego wzorem (IIh):
po czym ewentualnie można przeprowadzić (i) usuwanie nieprzereagowanych 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej;
i/lub (ii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iii) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (IIh) w postaci wodnego roztworu.
W dalszym aspekcie niniejszy wynalazek dostarcza sposób wytwarzania 18F-znakowanego wskaźnika, który obejmuje obróbkę związanego na stałym podłożu prekursora opisanego wzorem (Id)
STAŁE PODŁOŻE - ŁĄCZNIK - I+ - WSKAŹNIK PREKURSOR (Id)
Yz 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaźnika opisanego wzorem (IId):
18F-WSKAŹNIK (IId) po czym ewentualnie można przeprowadzić (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie wszelkich grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (IId) w postaci wodnego roztworu.
W związku opisanym wzorem (Id), wskaźnik jest najdogodniej związkiem obejmującym grupę arylową, taką jak związek z grupą fenylową, a korzystnie z podstawionym pierścieniem fenylowym. Mając na względzie powyższe jako wskaźnik przygotowano FDOPA.
Związek opisany wzorem (Id) może być łatwo wytworzony z dostępnej na rynku żywicy zawierającej odpowiednie grupy funkcyjne, takiej jak Merrifield Resin czy Wang Resin. Korzystnie jest, gdy grupa ŁĄCZNIKOWA zawierająca grupę hydroksyjodoarylową (taką jak grupa jodofenylowa) traktowana jest nieorganiczną zasadą, taką jak węglan cezu, a następnie jest dodawana do uprzednio spęcznionej w obojętnym, takim jak N,N-dimetyloformamid, rozpuszczalniku żywicy, i pozostawienia do przereagowania w podwyższonej temperaturze, np. 30 do 80°C. Nadmiar odczynników może być usunięty poprzez dalsze przemywanie żywicy obojętnym rozpuszczalnikiem. Otrzymana żywica z jodofenolowymi grupami funkcyjnymi może być następnie potraktowana ź ródłem anionów octanowych (takim jak kwas octowy, bezwodnik octowy lub chlorek acetylu) w obecności czynnika utleniającego, takiego jak nadtlenek wodoru, by otrzymać odpowiednią żywicę z diacetoksyjodofenylowymi grupami funkcyjnymi. Żywica z diacetoksyjodofenylowymi grupami funkcyjnymi może być następnie mieszana w obojętnym rozpuszczalniku, takim jak dichlorometan w obecności kwasu, takiego jak kwas chlorowodorowy, kwas trifluorometanosulfonowy lub kwas octowy, w niskiej temperaturze, korzystnie -40°C do 10°C przed dodaniem wskaźnika, korzystnie z grupami funkcyjnymi z kwasu borowego lub ołowiowej trialkilowej pochodnej, która może być sprzężona z żywicą w nienajwyższej temperaturze. Tak jak w poprzednich etapach pożądany związek opisany wzorem (Id) może być oddzielony poprzez przesączenie i wymywanie obojętnym rozpuszczalnikiem.
W związku opisanym wzorem (Id), ŁĄCZNIKIEM jest jak opisano powyż ej związek zawierający grupę arylową (korzystnie fenylową) przylegającą do I+. Korzystne przykłady obejmują
PL 204 305 B1
W związku opisanym wzorem (Id), Y- jest anionem, korzystnie anionem trifluorometylosulfonianowym (triflatem).
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest w dalszym aspekcie sposób otrzymywania 6-L-18F18
-fluorodopy (18F-FDOPA) co obejmuje obróbkę związanego na stałym podłożu prekursora opisanego wzorem (Ie):
w którym P1e, P2e, P3e, oraz P4e oznaczają niezależnie wodór lub grupę zabezpieczając ą, a Y- to anion jak np. triflat;
z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (Ile)
w którym P1e, P2e, P3e, oraz P4e oznaczają niezależnie wodór lub grupę zabezpieczającą ;
po czym ewentualnie można przeprowadzić 18 (i) usuwanie nadmiaru 18F-, np. za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie wszelkich grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie rozpuszczalnika organicznego; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (Ile) w postaci wodnego roztworu.
W tym aspekcie wynalazku, hydroksylowe, aminowe i kwasowe grupy funkcyjne wyjś ciowego materiału DOPA są odpowiednio chronione w postaci estrów, korzystnie estrów C1-6 alkilowych, a dogodniej estrów acylowych jak np. t-butoksykarbonylowych lub w postaci eterów, najkorzystniej eterów C1-6 alkilowych, bądź w postaci amidów. Omawiane grupy zabezpieczające mogą być łatwo
PL 204 305 B1 usuwane na drodze hydrolizy, np. w obecności kwasu lub zasady. Taką deprotekcję można osiągnąć stosując kwasowe lub zasadowe katalizatory naniesione na ciało stałe, które czynią zbędnym późniejsze zobojętnianie.
W związkach opisanych wzorem (Ie), korzystne grupy ŁĄCZNIKOWE są takie jak opisane dla związków o wzorze (Id), a stałe podłoże jest odpowiednio żywicą polistyrenową.
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest w kolejnym aspekcie sposób otrzymywania 2-, 5- lub 6-fluoro-3-(2(s)-azetydynylometoksy)pirydyn, który obejmuje obróbkę związanego na stałym podłożu prekursora opisanego wzorem (If):
w którym grupy Rf niezależnie oznaczają łańcuchy alkilowe wybrane z C1-6; z 18F- z wytworzeniem znakowanego wskaźnika opisanego wzorem (IIf)
po czym ewentualnie można przeprowadzić (i) usuwanie nadmiaru 18F-, np. za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie rozpuszczalnika organicznego; i/lub (iii) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (IIf) w postaci wodnego roztworu.
Niektóre ze związków opisanych wzorem (I) są nowe i w związku z tym stanowią kolejny aspekt niniejszego wynalazku. W związku z powyższym, na przykład, związki opisane wzorem (la), a w szczególności te opisane wzorami (Ib), (Ic), (Ig) i (Ih), oraz te opisane wzorem (Id), w szczególności te o wzorze (Ie) wszystkie jak opisano powyżej, stanowią odrębne aspekty niniejszego wynalazku.
Jak opisano powyżej, zalety przedstawionych sposobów w fazie stałej użytych do otrzymania 18F-znakowanych wskaźników dotyczą również względnej szybkości przebiegu procesów, uproszczonych metod oczyszczania oraz ułatwień w automatyzacji - wszystko to sprawia, że omawiane procesy są odpowiednie do otrzymywania znakowanych wskaźników 18F używanych w PET. Odpowiednio, wynalazek niniejszy umożliwia wykorzystanie sposobu do wytwarzania znakowanego wskaźnika 18F opisanego wzorem (II) lub (Ilb do IIh) do zastosowania w PET.
Dogodnie, związany ze stałym podłożem prekursor opisany wzorem (I) może stanowić część zestawu do radiofarmacji. Zestaw może zawierać nabój, który może być włączony do odpowiednio zaadaptowanego zautomatyzowanego syntezatora. Nabój może zawierać oprócz związanego na stałym podłożu prekursora, kolumnę do usuwania zbędnego jonu fluorkowego, oraz odpowiednie naczynie połączone tak by mieszanina reakcyjna mogła być odparowana oraz tak by można było uformować produkt według wymagań. Reagenty i rozpuszczalniki, oraz inne odczynniki pożądane w syntezie mogą być dołączone wraz z płytą kompaktową zawierającą oprogramowanie pozwalające operować syntezatorem w sposób odpowiadający wymogom klienta dotyczącym stężenia radioaktywnego, objętości, czasu dostarczania etc.
PL 204 305 B1
Dogodnie, żeby zminimalizować możliwość skażenia pomiędzy seriami, wszystkie elementy zestawu są jednorazowego użytku i mogą one być również sterylne a ich jakość zagwarantowana.
Niniejszy wynalazek w dalszym aspekcie dostarcza radiofarmaceutyczny zestaw do wytwarzania znakowanego wskaźnika 18F do zastosowania w PET, składający się z:
(i) naczynia zawierającego związek opisany wzorem (I) lub (la do Ih); oraz (ii) środków wymywania naczynia ze źródłem 18F-;
(iii) naboju jonowymiennego do usuwania nadmiaru 18F-, oraz ewentualnie (iv) naboju do deprotekcji w fazie stałej powstałego produktu opisanego wzorem (II) lub (IIb do IIh).
Niniejszy wynalazek dostarcza również nabój do zestawu radiofarmaceutycznego do wytwarzania znakowanego wskaźnika 18F do zastosowania w PET, który obejmuje:
(i) naczynie zawierające związek opisany wzorem (I) lub (la do Ih); oraz (ii) środki do wymywania naczynia z źródłem 18F-.
Niniejszy wynalazek zostanie zilustrowany poprzez następujące Przykłady.
W przedstawionych przykładach używane będą następujące skróty:
DMF : N,N-dimetyloformamid w/v : masa/objętość h : godzina(y) tlc : chromatografia cienkowarstwowa
THF : tetrahydrofuran eq. : równoważniki
Przykłady
Przykład 1. Synteza 2 [18F]-fluoro-2-deoksy-D-glukozy (FDG)
Półprodukt 1
Przygotowanie metylo-4,6-O-benzylideno-3-etoksymetylo-a-D-mannopiranozydu.
Etap 1 Synteza metylo-4,6-O-benzylideno-a-D-glukopiranozydu.
Etap 1 Synteza metylo-4,6-O-benzylideno-a-D-glukopiranozydu.
Postępując według literatury Evans, M. E. Carbohydrate Research (1972), 21(3), 473-5, metyloα-D-glukopiranozyd (Aldrich, 257 mmoli) w DMF potraktowano α,α-dimetoksytoluenem (39,0 g, 257 mmoli) oraz jednowodnym kwasem toluenosulfonowym 100 mg w okrągłodennej kolbie o pojemności 1 l. Dołączono ją do Buchi, wytworzono próżnię i wirowano. Kolbę zanurzono w łaźni wodnej o temperaturze 65°C pozwalając DMF łagodnie przechodzić w stan pary do chłodnicy zwrotnej ale tak by nie wydestylował. Temperaturę łaźni wodnej podniesiono do 100°C a DMF oddestylowano z układu reakcyjnego. Kiedy zakończono destylację, schłodzono mieszaninę reakcyjną i potraktowano roztworem wodorowęglanu sodu (5 g) w wodzie (750 ml) i alkoholu etylowym (250 ml). Mieszaninę reakcyjną ogrzano do 95°C w łaźni wodnej oraz mieszano aż produkt był drobno zdyspergowany. Następnie mieszaninę reakcyjną schłodzono do 4°C i produkt odsączono, przemyto wodą i suszono w próżni. Temp. top. 207-208,5
Etap 2. Wytwarzanie metylo-4,6-O-benzylideno-3-etoksymetylo-a-D-glukopiranozydu
PL 204 305 B1
Metylo-4,6-O-benzylideno-a-D-glukopiranozyd, (19.2 g, 68 mmoli), chlorek etoksymetylowy (9.7 g, 81.6 mmoli) oraz wodorotlenek tetrabutyloamoniowy (5 ml 40% w/v roztworu) w dichlorometanie (150 ml) energicznie mieszano z 10% roztworem wodorotlenku sodu (200 ml) w temperaturze pokojowej. Po 5 godzinach fazę wodną zastąpiono świeżym 10% roztworem wodorotlenku sodu (200 ml), do którego dodano wodorotlenku tetrabutyloamoniowego (5 ml 40% w/v roztworu) i mieszano dalej energicznie całą noc. Następnie oddzielono fazę organiczną, osuszono ją nad siarczanem sodu i odparowano w próżni. Chromatografia cienkowarstwowa pozostałości (40-60 heksany-octan etylu 2:1) na żelu krzemionkowym rozwinięta przez spryskanie cerowym molibdenianem amonu (patrz wyżej) wskazuje na obecność trzech nowych alkilowanych produktów. Chromatografia na żelu krzemionkowym (1 kg suchej masy) przy gradiencie 40-60 heksany-octan etylu 2:1 do 1:1 dała trzy frakcje, które za pomocą NMR określono jako:
Frakcja 1: Metylo-2,3-dietoksymetylo-4,6-O-benzylideno-a-D-glukopiranozyd
Frakcja 2: Metylo-2-etoksymetylo-4,6-O-benzylideno-a-D-glukopiranozyd
Frakcja 3: Metylo-3-etoksymetylo-4,6-O-benzylideno-a-D-glukopiranozyd
Etap 3 Wytwarzanie metylo-2-keto-3-etoksymetylo 4,6-O-benzylideno-a-D-glukopiranozydu
Metylo-4,6-O-benzylideno-3-etoksymetylo-a-D-glukopiranozyd (3 g, 8,0 mmoli) traktowano sulfotlenkiem metylowym (50 ml) oraz bezwodnikiem octowym (25 ml) w temperaturze pokojowej przez 24 h do zakończenia reakcji, której koniec określono w oparciu o TLC (eter benzynowy/octan etylu 1:1) rozwijanej cerowym molibdenianem amonu. Roztwór rozcieńczono eterem dietylowym (200 ml) i przemywano 10% wodnym roztworem węglanu potasu do hydrolizy nadmiarowego bezwodnika octowego. Warstwę eterową oddzielono i przemywano wodą (100 ml). Warstwę eterową oddzielono, osuszono nad siarczanem sodu i zatężono w próżni do otrzymania krystalicznego ciała stałego. Po rekrystalizacji z eteru/benzyny otrzymano 1,5 g metylo-2-keto-3-etoksymetylo-4,6-O-benzylideno-a-D-glukopiranozydu.
Etap 4 Wytwarzanie metylo-4,6-O-benzylideno-3-etoksymetylo-a-D-mannopiranozydu.
Metylo-2-keto-3-etoksymetylo-4,6-O-benzylideno-a-D-glukopiranozyd (0,5 g; 1,3 mmoli) w metanolu (50 ml) i THF (10 ml) potraktowano borowodorkiem sodu (200 mg; 5,3 mmoli) w pokojowej temperaturze z ciągłym mieszaniem. Mieszanina reakcyjna została zatężono pod próżnią do żywicy i produkt rozdzielony pomiędzy octanem etylu (50 ml) i 10% roztworem wodnym węglanu potasu (50 ml). Roztwór octanu etylu oddzielono, osuszono na siarczanem sodu i zatężono pod próżnią z wytworzeniem metylo-3-etoksymetylo-4,6-O-benzylideno-a-D-mannopiranozydu.
P r z y k ł a d 1(i) Wytwarzanie chlorku perfluorobutano-1,4-bis-sulfonylu.
(Według metody Weiming Qiu i Donald J. Burton Journal of fluorine chemistry, 60 (1993) 93-100.)
PL 204 305 B1
Mieszaninę 1,4-dijodoperfluorobutanu (I(CF2)4I) (24,14 g; 53,2 mmoli), ditionianu sodu Na2S2O4 (24 g; 117,2 mmoli) oraz wodorowęglanu sodu (12,8 g; 152,4 mmoli) w wodzie H2O (36 ml)/acetonitrylu CH3CN (36 ml) mieszano w temperaturze pokojowej przez 2 godziny. Przesączono ją, a przesącz zatężono pod zmniejszonym ciśnieniem by usunąć acetonitryl. Do pozostałości dodano H2O (100 ml). Tak otrzymany roztwór energicznie mieszano i potraktowano gazowym chlorem Cl2 w temperaturze 0°C dopóki nie znikła barwa I2. Dodano dichlorometan CH2Cl2 (100 ml) i mieszaninę energicznie wstrząsano. Oddzielono fazę organiczną, a fazę wodną ekstrahowano z CH2Cl2. Połączone fazy organiczne przemywano wodą H2O, solanką i suszono siarczanem sodu Na2SO4 oraz zatężono do otrzymania woskowatego, żółtego, krystalicznego ciała stałego. Po rekrystalizacji z heksanu otrzymano igiełki chlorku perfluorobutano-1,4-bis-sulfonylu, o barwie zbliżonej do białej.
19F NMR (CDCl3, CFCI3 wzorzec) δ: -104.4, -119.1.
P r z y k ł a d 1(ii) Wytwarzanie soli perfluorobutano-1,4-bis-sulfonianu dipotasu.
Do roztworu wodorotlenku potasu KOH (9,8 g; 5eq) w wodzie H2O (19 ml) dodawano stopniowo chlorku perfluorobutano-1,4-bis-sulfonylu (14 g; 35 mmol) w temperaturze 85°C - 90°C mieszając. Po tym dodaniu, mieszaninę reakcyjną pozostawiono na 4 godziny w tej samej temperaturze, następnie chłodzono ją przez noc. Mieszaninę reakcyjną przesączono, osad przemyto niewielką ilością schłodzonej wody i suszono w próżni do uzyskania dipotasowej soli perfluorobutano-1,4-bis-sulfonianowej.
19F NMR (CDCl3, CFCI3 wzorzec) δ: -114, 00, -120.11.
P r z y k ł a d 1(iii) Wytwarzanie kwasu perfluorobutano-1,4-bis-sulfonowego.
(Według metody opisanej w opisie patentu US Nr 4329,478, Fred E. Behr.)
w gorącej wodzie (100 ml). Roztwór naniesiono na kolumnę jonowymienną z żywicą Amberlyst 15, (40 x 40 cm), którą uprzednio przemyto nadmiarem 6N HCl i przemyto wodą destylowaną. Następnie, kolumnę powoli wymywano wodą destylowaną i zebrano pierwsze 300 ml wodnego roztworu. Roztwór zagęszczono pod próżnią a pozostałość osuszono pod obniżonym ciśnieniem w temperaturze 80°C z wytworzeniem kwasu perfluorobutano-1,4-bis-sulfonowego. (11,0 g; 30 mmoli; 88%).
1H NMR (CDCI3) δ: 8.00 18F NMR (CDCI3, CFCI3 wzorzec) δ: -114.7; -121.3.
P r z y k ł a d 1(iv) Wytworzenie bezwodnika kwasu perfluorobutano-1,4-bis-sulfonowego.
(Według metody opisanej w zgłoszeniu patentowym US 4329, 478, Fred E. Behr.)
Kwas perfluorobutano-1,4-bis-sulfonowy (11,0 g; ~30 mmoli) zmieszano z P2O5 (40 g; ~10 eq) i piaskiem. Mieszaninę ogrzano do 140-180°C i destylowano pod obniżonym ciśnieniem z suchym
PL 204 305 B1 lodem jako czynnikiem chłodzącym z wytworzeniem surowego produktu (5,12 g). Po redestylacji otrzymano czysty perfluorobutano-1,4-bis-sulfonowy bezwodnik kwasowy.
18F NMR (CDCI3, CFCI3 wzorzec) δ: -105.7, -121.8.
P r z y k ł a d 1 (v) Synteza kwasu PS-4-(benzylo-etylo-sulfonamido)-oktafluoro-butano-1-sulfonowego.
Do porcji żywicy polistyrenowej (żywica Novabiochem, Novasyn) (202 mg), którą napęczniono w dichlorometanie (2 ml) a następnie zawieszano w dalszych porcjach dichlorometanu (2 ml) dodając bezwodnika perfluorobutylo-1,4-cyklo-sulfonowego (116 mg, 5eq). Następnie dodano diizopropyloetyloaminę (0,174 ml), zawiesinę mieszano przez noc w temperaturze pokojowej. Rozpuszczalnik usunięto przez sączenie, osad przemywano kolejno dodając i sącząc z dichlorometanu (5 ml), metanolu (5 ml), DMF (5 ml), wody (5 ml), metanolu (5 ml), oraz dichlorometanu (5 ml). Otrzymaną żywicę potraktowano NaOH (1M) w THF/woda (2x2 ml) zanim przemyto kolejno porcjami metanolu (5 ml), dichlorometanu (5 ml) i ponownie metanolu (5 ml). Żywicę następnie osuszono w wysokiej próżni.
Faza żelowa 19F NMR (z odniesieniem do CFCl3, 300K) δ: -121.0, -114.8, -113.4.
P r z y k ł a d l(vi) Synteza chlorku PS-4-(benzylo-etylo-sulfonamido)-oktafluoro-butano-1-sulfonylu.
Porcję żywicy przygotowaną tak jak w Przykładzie 1(v) powyżej spęczniono dichlorometanem (2 ml), następnie przemywano ją kolejno HCl (1M) w THF/woda (10 x 5 ml) otrzymując wolny kwas sulfonowy. Żywicę przemywano kolejno dichlorometanem, metanolem oraz THF przed suszeniem w wysokiej próżni.
Następnie żywicę zawieszono w dichlorometanie, dodano w nadmiarze ogólnodostępnego czynnika chlorującego takiego jak pentachlorku fosforu, trichlorku fosforu lub chlorku tionylu. Zawiesinę mieszano przez 2 godziny przed sączeniem, następnie przemywano dichlorometanem i potem THF.
P r z y k ł a d 1(vii) Synteza zabezpieczonej żywicy mannopiranozowej.
PL 204 305 B1
Roztwór związku Pośredniego 1 w THF dodano do porcji żywicy przygotowanej jak opisano w Przykładzie l(vi) powyżej, którą uprzednio spęczniono w THF. Do tego dodano roztwór t-butoksydu potasu w tetrahydrofuranie, zawiesinę mieszano przez noc. Po przesączeniu żywicę przemywano kolejno dichlorometanem oraz THF przed suszeniem w wysokiej próżni.
P r z y k ł a d 1(viii) Radiofluorowanie do wytwarzania [18F]-FDG
Do porcji żywicy przygotowanej jak opisano w Przykładzie 1(vii) przechowywanej w naboju, dodano roztworu kryptofixu w suchym acetonitrylu, węglanu potasu oraz [18F]-fluorku. Zawiesinę ogrzewano do 85°C przez 10 minut i potem odsączono roztwór. Roztwór następnie przeniesiono na nabój będący ekstraktorem fazy stałej C18 i przemywano wodą aby usunąć acetonitryl, kryptofix oraz węglan potasu. Dodatek większej ilości acetonitrylu wymywa radiofluorowany produkt naboju do roztworu 0,1M HCl. Roztwór ten jest ogrzewany przez 5 minut przed neutralizacją i analizą.
P r z y k ł a d 2 Synteza 2-(1,1-dicyjanopropen-2-ylo)-6-(2-[18F]-fluoroetylo)-(metyloamino)naftalenu (FDDNP)
P r z y k ł a d 2(i) Synteza chlorku PS-4-(benzylo-etylo-sulfonamido)-butano-1-sulfonylu
Do zawiesiny żywicy napęcznionej w dichlorometanie (5 ml) dodano nadmiar chlorku 1,4-butano-disulfonylu w dichlorometanie wraz z nadmiarem trietyloaminy. Zawiesinę mieszano w temperaturze pokojowej przez noc. Po odsączeniu żywicę przemywano kolejno dichlorometanem, metanolem, THF, wodą, metanolem oraz kolejną porcją dichlorometanu. Po ostatnim przemyciu żywicę suszono w próżni.
P r z y k ł a d 2(ii) Synteza żywicy 2-(1,1-dicyjanopropen-2-ylo)-6-(2-etylo-(metyloamino)naftalenowej
Do zawiesiny powyżej omówionej żywicy, którą napęczniono w dichlorometanie (2 ml), dodano nadmiaru 2-(1,1-dicyjanopropen-2-ylo)-6-(2-hydroksyetylo)-(metyloamino)-naftalenu w dichlorometanie wraz z nadmiarem trietyloaminy. Zawiesinę mieszano w temperaturze pokojowej przez noc. Po przesączeniu żywicę przemywano kolejno dichlorometanem oraz THF. Po ostatnim przemyciu żywicę suszono w próżni.
P r z y k ł a d 2(iii) Radiofluorowanie do wytwarzania [18F]-FDDNP
Do porcji żywicy umieszczonej w naboju dodano roztworu kryptofixu w suchym acetonitrylu, węglanu potasu oraz fluorku [18F]. Zawiesinę ogrzewano do 85°C przez 10 minut a następnie odsączono roztwór. Żywicę przemywano acetonitrylem (1 ml) i zebrano razem wszystkie przesącze zanim odparowano rozpuszczalnik i uzyskano preparat.
P r z y k ł a d 3 Synteza [18F]-fluorobenzenu
PL 204 305 B1
P r z y k ł a d 3(i) Synteza eteru PS jodo-fenylowo benzylowego.
Do zawiesiny żywicy Wang wstępnie spęcznionej w DMF (2 ml) dodano roztworu węglanu cezu i jodofenolu w DMF. Mieszaninę mieszano przez 3 h w temperaturze 60°C a następnie pozostawiono na noc w temperaturze pokojowej. Po przesączeniu żywicę przemywano kolejno metanolem, dichlorometanem, DMF oraz THF przed dokładnym osuszeniem w wysokiej próżni.
P r z y k ł a d 3(ii) Synteza eteru PS diacetoksy-jodo-fenylowo benzylowego
Zawiesinę powyżej przedstawionej żywicy potraktowano bezwodnikiem octowym i nadtlenkiem wodoru (patrz metoda S. Ficht, Tetrahedron, 57 (2001) 4863) w stosunku 4:1 w temperaturze 40°C przez noc. Żywicę następnie przesączono i przemyto dokładnie metanolem, a potem suszono w wysokiej próżni do sucha.
P r z y k ł a d 3(iii) Synteza triflatu PS (4-fenylo benzylo etero) (fenylo) jodoniowego.
Do zawiesiny przedstawionej powyżej żywicy w dichlorometanie dodawano kroplami kwasu trifluorometanosulfonowego w temperaturze -30°C przez 15 minut. Mieszaninę następnie ogrzano do 0°C przez kolejne 15 minut przed mieszaniem w pokojowej temperaturze przez noc. Zawiesinę następnie schłodzono do -30°C i dodano kwasu fenyloborowego, zawiesinę mieszano przez 1 h przed ogrzaniem do temperatury pokojowej, potem mieszano przez noc. Mieszaninę przesączono i przemyto dokładnie dichlorometanem oraz eterem dietylowym przed suszeniem w próżni.
P r z y k ł a d 3(iv) Radioflurowanie do wytwarzania [ F]fluorobenzenu.
Do porcji żywicy umieszczonej w naboju dodano roztwór kryptofixu, węglanu potasu i fluorku
[18F] w suchym acetonitrylu. Zawiesinę ogrzewano do 85°C przez 10 minut, a następnie odsączono roztwór. Żywicę przemywano acetonitrylem (1 ml), zebrano razem przesącze zanim odparowano rozpuszczalnik i uzyskano preparat.

Claims (12)

1. Sposób wytwarzania 18F-znakowanego wskaźnika, znamienny tym, że obejmuje obróbkę związanego na żywicy prekursora opisanego wzorem (I)
STAŁE PODŁOŻE - ŁĄCZNIK - X - WSKAŹNIK PREKURSOR (I) w którym X oznacza grupę sprzyjającą substytucji nukleofilowej na określonych centrach przyłączonego WSKAŹNIKA PREKURSORA, z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (II) 18F-WSKAŹNIK (II)
2. Sposób wytwarzania 18F-znakowanego wskaźnika według zastrzeżenia 1, który obejmuje obróbkę związanego na żywicy prekursora opisanego wzorem (la)
STAŁE PODŁOŻE - ŁĄCZNIK - SO2-O-WSKAŹNIK PREKURSOR (la) z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (II) 18F-WSKAŹNIK (II) po czym ewentualnie można przeprowadzić (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie dowolnych grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (II) w postaci wodnego roztworu.
3. Sposób według zastrzeżenia 1 albo 2, znamienny tym, że otrzymywanie 2-18F-fluoro-2-deoksy-D-glukozy (18F-FDG) obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Ib)
1 H OH ΟΗ zlH w którym P1b, P2b, P3b oraz P4b oznaczają każ dy niezależ nie atom wodoru lub grupę chronią c ą ; z 18F, z wytworzeniem znakowanego wskaźnika opisanego wzorem (IIb):
1 H OH OH zlH w którym P1b, P2b, P3b oraz P4b oznaczają każdy niezależnie atom wodoru lub grupę zabezpieczającą; po czym ewentualnie przeprowadza się (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (Ilb) w postaci wodnego roztworu.
4. Sposób według zastrzeżenia 1 albo 2, znamienny tym, że wytwarzanie wodnego roztworu
3'-deoksy-3'-18F-fluorotymidyny (18F-FLT) obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Ic):
PL 204 305 B1 w którym P1c oraz P2c oznaczają niezależ nie atom wodoru lub grupę zabezpieczają c ą , z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IIc) w którym P1c oraz P2c oznaczają każdy niezależnie atom wodoru lub grupą zabezpieczającą; po czym ewentualnie przeprowadza się (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (lIc) w postaci wodnego roztworu.
5. Sposób według zastrzeżenia 1 albo 2, znamienny tym, że wytwarzanie 2-(1,1-dicyjanopropen-2-ylo)-6-(2-fluoroetylo)-(metylamino)-naftalenu (FDDNP), obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Ih):
z 18F- z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IIh) po czym ewentualnie przeprowadza się
PL 204 305 B1 (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iii) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (IIh) w postaci wodnego roztworu.
6. Sposób według zastrzeżenia 1 lub 2, znamienny tym, że wytwarzanie 18F-znakowanego wskaźnika obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Id)
STAŁE PODŁOŻE - ŁĄCZNIK - I+ - WSKAŹNIK PREKURSOR (Id)
Y-
Y- oznacza anion, najkorzystniej anion trifluorometylosulfonianowy (triflatowy), z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IId) 18F-WSKAŹNIK (IId) po czym ewentualnie przeprowadza się (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie dowolnych grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (lId) w postaci wodnego roztworu.
7. Sposób według zastrzeżenia 1 albo 6, znamienny tym, że wytwarzanie 6-L-18F-fluorodopy (18F-FDOPA) obejmuje obróbkę związanego na STAŁYM PODŁOŻU prekursora opisanego wzorem (Ie):
w którym P1e, P2e, P3e, oraz P4e oznaczają niezależnie atom wodoru lub grupę zabezpieczającą a Y- jest anionem, najkorzystniej trifluorometylosulfonowym (triflatem);
z 18F-, z wytworzeniem znakowanego wskaź nika opisanego wzorem (IIe) w którym P1e, P2e, P3e, oraz P4e oznaczają, każdy niezależnie, atom wodoru lub grupę zabezpieczającą; po czym ewentualnie przeprowadza się (i) usuwanie nadmiaru 18F-, na przykład za pomocą chromatografii jonowymiennej; i/lub (ii) usuwanie dowolnych grup zabezpieczających; i/lub (iii) usuwanie organicznego rozpuszczalnika; i/lub (iv) wytwarzanie powstałego związku opisanego wzorem (Ile) w postaci wodnego roztworu.
8. Sposób według jakiegokolwiek z zastrzeżeń od 1 do 7, znamienny tym, że wytwarza się 18F-znakowany wskaźnik opisany wzorem (II), do użytku w Emulsyjnej Tomografii Pozytronowej (PET).
PL 204 305 B1
9. Związek opisany wzorem (Ib)
1H OH OH Ah w którym P1b, P2b, P3b, oraz P4b oznaczają, każdy niezależnie, atom wodoru lub grupę zabezpieczającą.
10. Związek opisany wzorem (Ic):
w którym P1c oraz P2c oznaczają, każdy niezależ nie, atom wodoru lub grupę zabezpieczającą. 11. Związek opisany wzorem (Ih):
w którym P1e, P2e, P3e, oraz P4e oznaczają, każdy niezależnie, atom wodoru lub grupę zabezpieczającą a Y- jest anionem takim jak triflat.
13. Radiofarmaceutyczny zestaw do wytwarzania 18F-znakowanego wskaźnika do zastosowania w PET, który obejmuje:
PL 204 305 B1 (i) naczynie zawierające związek opisany wzorem (I) lub (la), (Ib), (Ic), (Id), (Ie), lub (Ih), jak zdefiniowano w którymkolwiek z zastrzeżeń 1 do 7; oraz;
(ii) środki wymywania naczynia ze źródłem 18F-;
(iii) nabój jonowymienny do usuwania nadmiaru 18F-, oraz ewentualnie (iv) nabój do deprotekcji w fazie stałej powstałego produktu opisanego wzorem (II) lub (Ilb), (lIc), (lId), (Ile) lub (IIh), jak zdefiniowano w którymkolwiek z zastrzeżeń 1 do 7.
14. Nabój do zestawu radiofarmaceutycznego do wytwarzania 18F-znakowanego wskaźnika do zastosowania w PET, znamienny tym, że obejmuje:
(i) naczynie zawierające związek opisany wzorem (I) lub (la), (Ib), (Ic), (Id), (Ie), lub (Ih), jak zdefiniowano w którymkolwiek z zastrzeżeń 1 do 7; oraz (ii) środki do wymywania naczynia ze źródłem 18F-.
PL367772A 2001-06-29 2002-06-18 Sposób wytwarzania ¹⁸F-znakowanego wskaźnika, związki stosowane w sposobie, radiofarmaceutyczny zestaw do wytwarzania ¹⁸F-znakowanego wskaźnika i nabój do zestawu radiofarmaceutycznego PL204305B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB0115927.6A GB0115927D0 (en) 2001-06-29 2001-06-29 Solid-phase nucleophilic fluorination
PCT/GB2002/002505 WO2003002157A1 (en) 2001-06-29 2002-06-18 Solid-phase nucleophilic fluorination

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL367772A1 PL367772A1 (pl) 2005-03-07
PL204305B1 true PL204305B1 (pl) 2009-12-31

Family

ID=9917609

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL367772A PL204305B1 (pl) 2001-06-29 2002-06-18 Sposób wytwarzania ¹⁸F-znakowanego wskaźnika, związki stosowane w sposobie, radiofarmaceutyczny zestaw do wytwarzania ¹⁸F-znakowanego wskaźnika i nabój do zestawu radiofarmaceutycznego

Country Status (27)

Country Link
US (1) US20040236085A1 (pl)
EP (1) EP1418950B1 (pl)
JP (1) JP4370162B2 (pl)
KR (1) KR100893461B1 (pl)
CN (1) CN1246041C (pl)
AR (1) AR036120A1 (pl)
AT (1) ATE387221T1 (pl)
AU (1) AU2002314298B2 (pl)
BG (1) BG108497A (pl)
BR (1) BR0210713A (pl)
CA (1) CA2450637C (pl)
CZ (1) CZ20033464A3 (pl)
DE (1) DE60225299T2 (pl)
EE (1) EE200400008A (pl)
ES (1) ES2301653T3 (pl)
GB (1) GB0115927D0 (pl)
HK (1) HK1065945A1 (pl)
HU (1) HU228974B1 (pl)
IL (2) IL159260A0 (pl)
MX (1) MXPA03011743A (pl)
NO (1) NO330809B1 (pl)
NZ (1) NZ530159A (pl)
PL (1) PL204305B1 (pl)
RU (1) RU2315769C9 (pl)
SK (1) SK15772003A3 (pl)
WO (1) WO2003002157A1 (pl)
ZA (1) ZA200309558B (pl)

Families Citing this family (65)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB0115929D0 (en) * 2001-06-29 2001-08-22 Nycomed Amersham Plc Solid-phase electrophilic fluorination
GB0115927D0 (en) * 2001-06-29 2001-08-22 Nycomed Amersham Plc Solid-phase nucleophilic fluorination
US7344702B2 (en) 2004-02-13 2008-03-18 Bristol-Myers Squibb Pharma Company Contrast agents for myocardial perfusion imaging
GB0206117D0 (en) 2002-03-15 2002-04-24 Imaging Res Solutions Ltd Use of microfabricated devices
BR0215913A (pt) * 2002-11-05 2005-08-09 Ion Beam Applic Sa Composição de radiofármacos rotulados com 18-f e processo para obtê-los
GB0229695D0 (en) * 2002-12-20 2003-01-29 Amersham Plc Solid-phase preparation of 18F-labelled amino acids
GB0229686D0 (en) * 2002-12-20 2003-01-29 Amersham Plc Solid-phase fluorination of benzothiazoles
GB0229683D0 (en) 2002-12-20 2003-01-29 Imaging Res Solutions Ltd Preparation of radiopharmaceuticals
GB0229688D0 (en) 2002-12-20 2003-01-29 Imaging Res Solutions Ltd Solid-phase preparation of [18F] Fluorohaloalkanes
GB0317920D0 (en) * 2003-07-31 2003-09-03 Amersham Plc Solid-phase synthesis
US20050049487A1 (en) * 2003-08-26 2005-03-03 Johnson Bruce Fletcher Compounds and kits for preparing imaging agents and methods of imaging
DE10346228B4 (de) * 2003-09-25 2009-04-09 Eberhard-Karls-Universität Tübingen Universitätsklinikum Herstellung von [18F]fluormarkierten aromatischen L-Aminosäuren
US20070036258A1 (en) * 2003-09-30 2007-02-15 Osamu Ito Process for producing radioactive fluorine compound
GB0329812D0 (en) * 2003-12-23 2004-01-28 Amersham Plc Romp polymer synthesis
GB0329716D0 (en) * 2003-12-23 2004-01-28 Amersham Plc Radical trap
US20050175534A1 (en) * 2004-02-06 2005-08-11 Adam Michael J. Method of synthesizing compounds having a phosphorus-fluorine-18 bond
GB0407952D0 (en) * 2004-04-08 2004-05-12 Amersham Plc Fluoridation method
US7485283B2 (en) 2004-04-28 2009-02-03 Lantheus Medical Imaging Contrast agents for myocardial perfusion imaging
JP4730760B2 (ja) * 2004-05-25 2011-07-20 住友重機械工業株式会社 Ri標識化合物合成システム
GB0425501D0 (en) * 2004-11-19 2004-12-22 Amersham Plc Fluoridation process
KR100789847B1 (ko) * 2004-12-15 2007-12-28 (주)퓨쳐켐 알코올 용매하에서 유기플루오로 화합물의 제조방법
GB0428012D0 (en) * 2004-12-22 2005-01-26 Hammersmith Imanet Ltd Radiolabelling methods
JP2007031647A (ja) * 2005-07-29 2007-02-08 Japan Health Science Foundation 固相合成を利用した超短半減期核種を含む化合物の製造方法およびそれに用いる化合物
US7824659B2 (en) 2005-08-10 2010-11-02 Lantheus Medical Imaging, Inc. Methods of making radiolabeled tracers and precursors thereof
GB0524851D0 (en) * 2005-12-06 2006-01-11 Ge Healthcare Ltd Radiolabelling method using polymers
GB0524987D0 (en) 2005-12-08 2006-01-18 Ge Healthcare Ltd Novel imaging agents for fibrosis
CN100563812C (zh) * 2006-03-22 2009-12-02 上海化工研究院 一种可制备多种氟标试剂的化学合成装置
US7641860B2 (en) 2006-06-01 2010-01-05 Nanotek, Llc Modular and reconfigurable multi-stage microreactor cartridge apparatus
US7998418B1 (en) 2006-06-01 2011-08-16 Nanotek, Llc Evaporator and concentrator in reactor and loading system
US7854902B2 (en) 2006-08-23 2010-12-21 Nanotek, Llc Modular and reconfigurable multi-stage high temperature microreactor cartridge apparatus and system for using same
WO2008028688A2 (en) * 2006-09-08 2008-03-13 Bayer Schering Pharma Aktiengesellschaft Compounds and methods for 18f labeled agents
EP1985624A3 (en) * 2007-04-23 2008-12-24 Bayer Schering Pharma Aktiengesellschaft Single step method of radiofluorination of biologically active compounds or biomolecules
GB0625523D0 (en) 2006-12-21 2007-01-31 Ge Healthcare Ltd In vivo imaging agents
TWI402079B (zh) 2006-12-27 2013-07-21 Nihon Mediphysics Co Ltd A method for producing a precursor compound of a radioactive halogen-labeled organic compound
US7797988B2 (en) 2007-03-23 2010-09-21 Advion Biosystems, Inc. Liquid chromatography-mass spectrometry
GB0709561D0 (en) * 2007-05-18 2007-06-27 Siemens Medical Solutions Assessment of vascular compartment volume PET modeling
CA2710799C (en) 2008-01-03 2015-11-24 Ge Healthcare Limited Fluoride processing method
PT2257315T (pt) 2008-02-29 2020-01-27 Lantheus Medical Imaging Inc Agentes de contraste para aplicações incluindo imagiologia de perfusão
KR100973724B1 (ko) * 2008-03-14 2010-08-04 류현욱 신발창용 쿠션부재
EP2110367A1 (en) * 2008-04-14 2009-10-21 Bayer Schering Pharma Aktiengesellschaft Purification strategy for direct nucleophilic procedures
US20110184159A1 (en) * 2008-07-07 2011-07-28 Bayer Schering Pharma Aktiengesellschaft Process for production of radiopharmaceuticals
US9302990B2 (en) 2008-10-21 2016-04-05 Nutech Ventures Fluorination of aromatic ring systems
EP3284736B1 (en) 2008-10-21 2021-03-03 NUtech Ventures Fluorination of aromatic ring systems
EP2365974B1 (en) * 2008-11-06 2013-12-25 SNU R&DB Foundation Fluorinated benzothiazole derivatives, preparation method thereof and imaging agent for diagnosing altzheimer's disease using the same
GB0904715D0 (en) 2009-03-19 2009-05-06 Ge Healthcare Ltd Aryloxyanilide derivataives
GB0905328D0 (en) 2009-03-27 2009-05-13 Ge Healthcare Ltd Indole derivatives
GB0905438D0 (en) * 2009-03-30 2009-05-13 Ge Healthcare Ltd Radiolabelling reagents and methods
PT2419096T (pt) 2009-04-15 2020-02-19 Lantheus Medical Imaging Inc Estabilização de composições radiofarmacêuticas utilizando ácido ascórbico
JP5237880B2 (ja) * 2009-04-30 2013-07-17 Jfeテクノス株式会社 マイクロチップを用いたpet用標識化合物の製造方法及び装置
KR20120051641A (ko) 2009-07-11 2012-05-22 바이엘 파마 악티엔게젤샤프트 비-극성 및 극성 이탈기
US8377704B2 (en) 2009-10-20 2013-02-19 Nutech Ventures Detection and quantification of anions
GB0921967D0 (en) 2009-12-17 2010-02-03 Ge Healthcare Ltd Novel Aryloxyanilide Derivatives
US8546578B2 (en) 2010-02-04 2013-10-01 Nutech Ventures Iodonium Cyclophanes for SECURE arene functionalization
PT2534136T (pt) 2010-02-08 2017-12-15 Lantheus Medical Imaging Inc Métodos para sintetizar agentes de imagiologia, e seus intermediários
US9073802B2 (en) 2010-02-12 2015-07-07 Tokyo Institute Of Technology Method for producing 18F-labeled compound and high molecular compound to be used in the method
US10639608B2 (en) 2010-04-08 2020-05-05 Siemens Medical Solutions Usa, Inc. System, device and method for preparing tracers and transferring materials during radiosynthesis
WO2011127345A1 (en) 2010-04-08 2011-10-13 Siemens Medical Solutions Usa, Inc. Synthesis of 18f-labeled tracers in hydrous organic solvents
GB201016038D0 (en) 2010-09-24 2010-11-10 Ge Healthcare Ltd In vivo imaging method
GB201016411D0 (en) 2010-09-30 2010-11-10 Ge Healthcare Ltd In vivo imaging method for cancer
CN103347909B (zh) * 2010-12-14 2016-08-10 未来化学株式会社 用以制备18f放射性药物的固体载体上所连接的前体化合物及其制备方法与应用
US9550704B2 (en) 2012-05-24 2017-01-24 Futurechem Co., Ltd. Method for synthesizing radiopharmaceuticals using a cartridge
AU2013203000B9 (en) 2012-08-10 2017-02-02 Lantheus Medical Imaging, Inc. Compositions, methods, and systems for the synthesis and use of imaging agents
CN103755679A (zh) * 2014-02-14 2014-04-30 宁德新能源科技有限公司 一种亚烷基二磺酸酐的制备方法
CN109988085B (zh) * 2017-12-29 2021-11-09 张家港市国泰华荣化工新材料有限公司 金属离子含量低的1,3-丙二烷基磺酸的制备方法
US20220072163A1 (en) * 2018-07-03 2022-03-10 The Regents Of The University Of California Mild and site-selective 18f-labeling of small molecules and/or biomolecules via a thiol-reactive synthon

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5510522A (en) * 1995-02-22 1996-04-23 Regents Of The University Of California Synthesis of N-formyl-3,4-di-t-butoxycarbonyloxy-6-(trimethylstannyl)-L-phenylalanine ethyl ester and its regioselective radiofluorodestannylation to 6- 18 F!fluoro-1-dopa
EP1027365B1 (en) * 1997-10-30 2005-01-19 THE GOVERNMENT OF THE UNITED STATES OF AMERICA, as represented by THE SECRETARY, DEPARTMENT OF HEALTH AND HUMAN SERVICES Antitumour uridine analogues
CA2340394A1 (en) * 1998-08-20 2000-03-02 Jorge R. Barrio Methods for labeling .beta.-amyloid plaques and neurofibrillary tangles
GB0115929D0 (en) * 2001-06-29 2001-08-22 Nycomed Amersham Plc Solid-phase electrophilic fluorination
GB0115927D0 (en) * 2001-06-29 2001-08-22 Nycomed Amersham Plc Solid-phase nucleophilic fluorination
GB0229686D0 (en) * 2002-12-20 2003-01-29 Amersham Plc Solid-phase fluorination of benzothiazoles
GB0229683D0 (en) * 2002-12-20 2003-01-29 Imaging Res Solutions Ltd Preparation of radiopharmaceuticals
GB0229688D0 (en) * 2002-12-20 2003-01-29 Imaging Res Solutions Ltd Solid-phase preparation of [18F] Fluorohaloalkanes

Also Published As

Publication number Publication date
CN1246041C (zh) 2006-03-22
WO2003002157A1 (en) 2003-01-09
ZA200309558B (en) 2004-09-27
ES2301653T3 (es) 2008-07-01
HUP0400253A3 (en) 2005-11-28
GB0115927D0 (en) 2001-08-22
HUP0400253A2 (hu) 2004-08-30
RU2003137589A (ru) 2005-05-20
JP4370162B2 (ja) 2009-11-25
KR100893461B1 (ko) 2009-04-17
CZ20033464A3 (cs) 2004-12-15
CN1520315A (zh) 2004-08-11
PL367772A1 (pl) 2005-03-07
AR036120A1 (es) 2004-08-11
MXPA03011743A (es) 2004-07-01
RU2315769C2 (ru) 2008-01-27
SK15772003A3 (sk) 2005-01-03
EP1418950A1 (en) 2004-05-19
EE200400008A (et) 2004-02-16
CA2450637C (en) 2010-08-17
RU2315769C9 (ru) 2008-05-27
US20040236085A1 (en) 2004-11-25
CA2450637A1 (en) 2003-01-09
NO330809B1 (no) 2011-07-25
IL159260A0 (en) 2004-06-01
IL159260A (en) 2009-09-22
ATE387221T1 (de) 2008-03-15
BG108497A (en) 2005-03-31
DE60225299T2 (de) 2009-03-12
NO20035545D0 (no) 2003-12-12
EP1418950B1 (en) 2008-02-27
JP2005512952A (ja) 2005-05-12
NZ530159A (en) 2005-08-26
HU228974B1 (en) 2013-07-29
AU2002314298B2 (en) 2005-07-07
DE60225299D1 (de) 2008-04-10
BR0210713A (pt) 2004-07-20
HK1065945A1 (en) 2005-03-11
KR20040022434A (ko) 2004-03-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL204305B1 (pl) Sposób wytwarzania ¹⁸F-znakowanego wskaźnika, związki stosowane w sposobie, radiofarmaceutyczny zestaw do wytwarzania ¹⁸F-znakowanego wskaźnika i nabój do zestawu radiofarmaceutycznego
AU2002314298A1 (en) Solid-phase nucleophilic fluorination
EP1572601B1 (en) Solid-phase preparation of 18 f-labelled amino acids
US7824659B2 (en) Methods of making radiolabeled tracers and precursors thereof
US20130089501A1 (en) Solid-phase fluorination of benzothiazoles
JP2006510707A (ja) ウラシル及びシトシンの固相フッ素化
US7999139B2 (en) Solid-phase preparation of [18F]fluorohaloalkanes
US20130005972A1 (en) Application of Staudinger Ligation in PET Imaging

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20140618