JPH032192A - Ll―e33288抗腫瘍抗生物質のn―アシル誘導体 - Google Patents
Ll―e33288抗腫瘍抗生物質のn―アシル誘導体Info
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Abstract
め要約のデータは記録されません。
Description
アシルカチオンの同等体または酸塩化物と反応させるこ
とによって調製された、LL−E33288の抗生物質
複合体のα−′、β mrγ a+ α、1、β11
γ11およびδ1′成分のN−アシル誘導体およびσ、
l・、β1B・ γ l r a 2+1β1′、γ
l′およびδ1′のN−アシル−ジヒドロ誘導体を記載
する。
3288複合体として集合的に知られている抗バクテリ
ア剤および抗腫瘍剤の族のN−アシルおよびN−アシル
−ジヒドロの類似体である。
、抗生物質および抗腫瘍剤の族は、同時係属米国特許出
願第009.321号、1987年1月30日発行、に
記載されそして特許請求されており、そして本発明のN
−アシル誘導体の調製に使用される。
なわち、LL−E33288α By、LL−E332
88 C2” LL−E33288α、ト、LL−
E 33288 C4”、LL−E33288β、l’
、 LL、−E 33288β2″′、LL−E33
28812′、LL−E33288 σ1′、LL−E
33288σ1、LL−E33288a3’、L、L−
E33288βl′、LL−E33288β21、LL
−E 33288γ、′およびLL−E33288δl
′、およびミクロモノスポラ・エキノスポラ(M ic
romonospora echinospora)
ssp力リチすンシス(calichensis)の新
規な菌株またはその自然または誘導された突然変異体を
利用する好気的発酵によりそれらを調製する方法を記載
している。上に列挙した成分のいくつかの構造式は、米
国特許出願第009.321号に開示されており、そし
て下表Iに再生する。
ように、LL−E33288複合体のa2″′、β B
r γ B+ α、I、β、1、γI′およびδ1
′成分の各々は、置換した4−アミノペプトース単位の
部分である第ニアミノ基を含有する。今回、上の成分を
非置換もしくは置換の、飽和もしくは不飽和のアルキル
またはアリール酸無水物、酸塩化物またはアシルカチオ
ン同等体は、下(7)反応の概要lに示すように、第二
アミノ基土にアシル部分を導入することが発見された。
合しt;置換基であり、Rは水素まt;は直鎖状もしく
は分校鎖状のアルキル(CI CIo)またはアルキ
レン(CI−CI。)基、アリールまたはへテロアリー
ル基、またはアリール−アルキル(CI−CS)または
ヘテロアリール−アルキル(CI−C5)基であり、す
べての基は1または2以上のヒドロキシ、アミノ、カル
ボキシ、ハロ、ニトロ、低級(C,−CI)アルコキシ
、または低級(CI Cs)チオアルコキシ基で置換
されていてもよい。
ロ誘導体、すなわち、米国特許出願第009.321号
のジヒドロ−LL−E 33288a !a +、ジヒ
ドロ−LL−E 33288β B+ ジヒドロ−L
L−E33288γ1″′、ジヒドロ−LL E33
288cIz’、ジヒドロ−LL−E33288β11
、ジヒドロ−LL−E 33288γ、′およびジヒド
ロ−LL−E33288δ、′から調製される。
タノール中で反応させると、N−アセチル−LL−E3
3288γ11が生成するが、LL−E3328881
′を酢酸およびギ酸の混合無水物と反応させると、N−
ホルミル−LL−E33288δl′が生成し、両者は
新規な抗腫瘍抗バクテリア剤である。ジヒドロ−LL−
E 33288γ、′を醜態水物とメタノール中で反応
させると、N−アセチル−ジヒドロ−LL−E3328
8γl′が生成する。N−アセチル−ジヒドロ−LL−
E33288γ□1は、また、N〜ルアセチルLL−E
33288γl′をホウ水素化ナトリウムと米国特許出
!I第004.154号に記載されている条件下に反応
させると得られる。LL−E 33288のN−アシル
誘導体およびジヒドロ−LL−E33288抗生物質の
化学的構造式いくつかを、下表IIに示す。
シル−ジヒドロ LL−E33288 a z ’ N−アシルLL−E33288α2′HN−アシルージ
セドロ LL−E33288βl’ R2H−アシル
LL−E33288β1′R1Jb C,H。
Hs OHHIN−アシルLL−E33288
γr’ R3CzHs :OIN−アシル
−ジヒドロ LL−E332羽δ% lh CHs
OHHIN〜アシルLL−E33288δl’
Rs CHa =OIN−アシル−ジ
ヒドロ LL433288 a z ” ’ HC2
H5OHHBrN−アシルLL−E33288 (1!
” HC2H5=OBrN−アシル−ジヒドロ LL−E33288β♂’ Rs (C
Hs)zcHOHHBrN−アシルLL−E33288
β、” R,(CH,)2CH□OBrN−アシル−ジ
ヒドロ LL−E33288γl” Rs Cz
Hs OHHBrN−アシルLL−E3328
8γ、”R,C,H,;OBrR−水素または直鎖状も
しくは分枝鎖状のアルキル(CI CIM)またはア
ルキレン(CI−Cta)基、アリールまたはへテロア
リール基、またはアルキル(CI−Cs)またはヘテa
アリール−アリール基、すべては1または2以上の水素
、アミノ、ハロ、低級(CI−03)アルコキシ、また
は (at cs)チオアルキル基で置換されていてもよ
い。
ル誘導体、すなわち、N−アセチル−LL−E3328
8δ1′、N−ホルミル−LL−E33288δ、1、
N−アセチル−LL−E33288γ1およびN−アシ
ル−ジヒドロ−LL−E33288γl′の物理化学的
特性を後述する。
により決定して1395の分子量、 b)高い分解能(7) F A B −M S 1mよ
りC、、H,4N so xx I S aKについて
1434.2329であると決定された、M+Kについ
ての正確な質量をもつCI@H74N so xx I
S aの分子式、C)第1図に示すプロトン磁気共鳴
スペクトル(300M Hz −CD C] s)。
Sにより決定して1381の分子量、 b)高い分解能のFAB−MSによりcsIIH72N
、○zzls4Kについて1420.2172であると
決定された、M+Kについての正確な質量をもつC□H
7,N !O□、I S4の分子式、C)第2図に示す
プロトン磁気共鳴スペクトル(300MHz、CDCI
、)。
Sにより決定して1409の分子量、 b)高い分解能のFAB−MSによりC5y)lyeN
so 221 S 4Kについて1410.2954
であると決定されtこ、M+Kについての正確な質量を
もつC5r)11・N 302! E S番の分子式・
C)第3図に示す紫外線吸収スペクトル(メタノール)
、 d)第4図に示す赤外線吸収スペクトル(KBrディス
ク)。
すプロトン磁気共鳴スペクトル(300MHz、CDC
13)、およびf)下に列挙する有意のピークをもつ、
第6図に示す炭素−13磁気共鳴スペクトル(75,4
3MHz、CDCl 3) : 14.0q 17.6q 17.7q 19.0
q 22.4q 22.8q25.4q 36.
7t 36.9t 39.2t 47.6t
5l−6d52.4q 53.b 57.Oq
57.2q 58.8t 60.9q61.7q
64.4d 67、Od 68.ld 68.
4d 69.0d69、ld 70.5d 71
.ld 71.7s 71.9d 72.4d7
7.6d 80.8d 83.2s 87.Os
93.5s 97.9d98.1s 99.7
d 180.9s lol、3d 102.6d
123.2d124.5d 127.1d 1
30.2s 133.4s 136.5s 14
2.9s143、Os 150.6s 151..
5s 155.Os 172.3s 191.9
s192.1s N−アセチル−ジヒドロ−LL−E 33288y、1 a)第7図に示す紫外線吸収スペクトル(メタノール)
、 b)第8図に示すプロトン磁気共鳴スペクトル(300
MHz、 CDCl j)、およびLL−E33288
抗腫瘍剤のN−アシル誘導体は、高性能液体クロマトグ
ラフィー(HPLC)および薄層クロマトグラフィー(
TLC)により最も便利に特性決定される。
のあるものの特性についての好ましい分析用HPLC系
を、下に示す: カラム: アナリティケム・セプライテ(Analytichem
Sepralyte) CIas 5 ps 4.6m
mX 25cm移動相: 0.2モルの水性酢酸アンモニウム、pH6,0ニアセ
トニトリル、50 : 50 流速: 1.5mff/分 検出二 UV□4□およびU V z a。、。
体のあるものの概算の保持時間を、表■I!に記載する
: 表lll N−アシル−LL− E33288の抗腫 保持時間瘍抗生物質
(分)N−アセチル−LL− E33288γ、’ 6.6N−
ホルミル−LL− E33288γ、’ 6.2N−
アセチル−LL− E33288δ、’ 4.5N
−ホルミル−LL− E33288δ、’ 4.2LL
−E33288γ、’ 8.0LL−E
33288δ、’ 6.0LL−E33
288抗腫瘍抗生物質のN−アシル誘導体のあるものの
特性についての好ましいTLC系を、下に示す: 吸着: ワットマン(Whatman)高性能TLC(HPTL
C)板、LHP−KF型、 検出: 短い波長のUVランプ(254nm)下のクエンチング
効果により可視化、 溶媒合成: 0.1モルの水性リン酸塩緩衝液p H7,0で飽和し
た酢酸エチル。
3288γ、’ 0.25LL−E332
88 δl′ 0.14LL−E 3328
8抗腫瘍抗生物質のN−アシル誘導体は、抗バクテリア
剤として活性である。
ル−LL−E 33288γ、′およびN−アセチル−
LL−E33288γ、′の生体外の抗バクテリア活性
は、標準の寒天希釈法により、ダラム陽性およびダラム
陰性のバクテリアに対して決定することができる。2倍
の減少する濃度の抗体を含有するムエラーーヒントン寒
天を、ペトリ皿中に注ぐ。寒天表面に、スティーアーズ
(5teers)複製装置により、1〜5XlO’コロ
ニ一形成単位のバクテリアを接種する。はぼ35°Cに
おいて約18時間のインキュベーション後、バクテリア
菌株の増殖を阻止するN−アシル−LL−E33288
抗腫瘍抗生物質の最低濃度を、その菌株についての最小
阻止濃度(MIC)として記録する。
MP) 〉2 Staphylococcus aureusATCC
259230,250,120,06Staphylo
coccus epidermidisATCC122
280,0150,030,12Streptococ
cus faecalisATCC292120,06
0,060,12Streptococcus fae
calislo 83−28 0.
5 0.12 0.12t、t、−33
288抗@瘍抗生物質のN−アシル誘導体は、また、バ
イオケミカル・インダクションーアッセイ(B ioc
hemical I nduction A 5s
ay(BIA)、すなわち、DNAの損傷を直接または
間接に開始する因子の能力を特異的に測定するバクテリ
アのアッセイ系、において決定して、抗腫瘍として活性
である。この試験のための開始有機体は、E 、 co
lialamdaリソゲンであり、コレはDNA損傷の
事象が酵素β−ガラクトシダーゼのための遺伝子を発現
するように遺伝子的に構成されている。この酵素は、D
NAの損傷が起こったことの指示として、生化学的アッ
セイにより定性的または定量的に決定することができる
エレスグル(E 1espuru) 、R、およびヤル
モリンスキー(Yarmolinsky) 、M、 、
エンバイロメンタル・ムタゲンシス(E nviro
mental M utagensis) 、上、6
5(1979)に開示されている定量的液体BIAの変
法を使用して、これらの化合物を評価した。
ル・キャンサー・インスチチュート(National
Cancer I n5titute)により、
抗新生細胞剤としての試験化合物の適当性を決定するた
めに、試験化合物について開発された。これらは、「癌
の化学療法の報告(Cancer Chemothe
rapyReports) J 、部III、Vol、
3、No、 2(1972)、ゲラン(G eran
)ら、に報告された。これらのプロトコールは標準化さ
れたスクリーニング試験を確立し、そしてこれらの試験
は抗腫瘍剤を試験する分野において一般に用いられてい
る。これらの系のうちで、リンパ性白血病P388、黒
皮症の色素細胞種816、L1210である。これらの
新生細胞腫のすべてはマウス中および結腸26腺癌は、
本発明に対してとくに意味がある。これらの有機体はマ
ウスにおいて移植可能な腫瘍として試験するために利用
した。一般に、処置した動物(T)/対照(C)動物の
平均の生存時間の増加百分率によって、これらのプロト
コールにおいて示されt;、有意の抗腫瘍活性は、ヒト
白血病および充実腫瘍における同様な結果を指示する。
は1つの性であり、最小17 gであり、そしてすべて
は3gの体重の範囲内である。5または6マウス/試験
群が存在する。lXl0’細胞のリンパ性白血病P38
8を含有する希釈した腹水の0.5mlの腹腔内注射に
よって、II!!瘍の移植を実施した。試験化合物は第
1日、第5日および第9日(腫瘍の接種に関して)に腹
腔内に、示した投与量で、生理的食塩水中の0.2%の
クルーセル(K 1ucel)のQ 、5 mQの体積
で投与した。マウスを秤量しそして正規の基準で生存数
を30日間記録した。メジアン生存時間および処置(T
)動物/対照(C)動物の比を計算した。親杭#!1瘍
抗生物質のLL−332887,′を陽性のプロトコル
として使用した。
ミル−LL−E33288γ11およびN−アセチル−
LL−E 33288γ11の試験結果を表VIに要約
する。T/CX100(%)が125より大きいか、あ
るいはそれに等しい場合、試験化合物は有意の抗腫瘍活
性を有すると考える。
.05 0.025 0.0125 0.006 13.0 118 29.5 268 26.0 236 20.0 182 20.0 182 N−アセチル−LL−E33288δ、+ 0.10
.05 11.5 105 30.0 273 0.025 25.0 2270.0125
23.0 2090.006 19.5
177N−ホルミル−LL−E33288δ、’
0.10.05 0.025 0.0125 0.006 12.5 27.0 22.5 21.0 20.5 LL−E33288γl′ 0、Ol O,005 0,0025 0,00125 13,0 25,0 30,0 26,5 生理的食塩水 11、O N−アセチル−LL−E33288γ、+ 0.08
0.04 0.02 0.005 0.0025 0.00125 29.5 28、O 17,5 14、O 13,5 LL−E33288γ、1 o、oi O,005 0,0025 0,00125 0,0006 22,5 26,0 24,5 21、O 19,0 黒皮症の色素細胞腫B16試験 使用した動物はBDF lマウスであり、それらのすべ
では1つの性であり、最小17gであり、そしてすべて
は3gの体重の範囲内である。通常6マウス/試験群が
存在する。黒皮症の色素細胞腫B16腫瘍のIgの部分
をlom(2の冷たい釣り合った塩溶液中に均質化し、
そしてこのホモジネートの0.5 mQのアリコートを
試験マウスの各々に腹腔内移植する。試験化合物は第1
日〜第9日(腫瘍の接種に関して)に腹腔内に種々の投
与量で投与する。60日間、動物を秤量しそして正規の
基準で生存数を記録した。メジアン生存時間および処置
(T)動物/対照(C)動物の比を計算する。親の抗腫
瘍抗生物質のLL−33288γl′を陽性の対照とし
て使用した。
セチル−LL−E33288γl′の試験結果を表Vl
li:要約する。T/CX100(%)が125より大
きいか、あるいはそれに等しい場合、試験化合物は有意
の抗腫瘍活性を有すると考える。
288γ11 生理食塩水 N−アセチル−LL−E33288γ110.025 0.0125 0.006 0.003 0.0015 35.5 27.5 26.0 25.0 21.5 0.0025 0.00125 o、oooa O,0003 0,00015 39,0 39,0 35,0 29,5 24,5 21,0 0,025 0,0125 0,006 0,003 0,0015 0,0007 0,00035 0,00017 26,0 38,0 39,0 33,5 26,5 26,0 24,5 23,5 LL−E33288γ− 0,0058,038 0,002527,0129 0,0012541,5198 0,000645,0214 0,000335,5169 0,0001535,0167 0,0000734,5164 0,0000331148 結腸26腺癌の試験 使用した動物はcD、F、の雌のマウスであり、最小1
7gであり、そしてすべては3gの体重の範囲内である
。5または6マウス/試験群が存在する。抗バクテリア
剤を含有するイーグルMEM培地中で2%の結腸26腫
瘍のブライの腹腔内により、腫瘍を移植した。試験化合
物は第1日、第5日および第9日(腫瘍の接種に関して
)に腹腔内に投与した。マウスを秤量しそして正規の基
準で生存数を30日間記録した。メジアン生存時間およ
び処It (T)動物/対照(C)動物の比を計算した
。親杭腫瘍抗生物質のLL−3328871′を陽性の
プロトコルとして使用した。
表VIIIに要約する。T/CX100(%)が130
より大きいか、あるいはそれに等しい場合、試験化合物
は有意の抗腫瘍活性を有すると考える。
288γ、′ 投与量 メジアン T/CX100 (■/ゆ)生存(日) (%) 0.05 0.025 0.0125 0.006 0.003 0.0015 0.0007 0.01 0.005 0.0025 0.00125 0.0006 0.0003 o、ooots 16.0 22.5 40.0 21.0 2’1.1− 19.0 19.0 19.0 14.0 35.0 21.5 24、O 19,5 is、。
精製 酢酸無水物(2mα)を、氷水浴中で冷却した部分的に
精製したLL−E 33288δ、’ (608m g
s 57%の純度、60m(2)撹拌したメタノール性
溶液に滴々添加した。反応混合物を0℃において撹拌し
、次いで室温にゆっくり加温し、そして反応混合物をさ
らに3時間撹拌した。次いで、反応混合物を真空濃縮し
、そして残留物を各60mαのジクロロメタンおよび水
中に取った。
ら酢酸の大部分を除去した。有機相を分離し、無水硫酸
ナトリウムで乾燥し、小さい体積に濃縮し、モしてヘキ
サンの添加により沈澱させて、604mgのN−アセチ
ル−LL−E33288δ11を得た。
8mQのアセトニトリル=0.2モルの酢酸アンモニウ
ム、pH6,0(35: 65)中に溶解し、そして4
つのバッチでセプラリテ(S epralyte) C
、、カラム(1,5X21cm)でクロマトグラフィー
にかけた。このカラムをlomQZ分においてまずアセ
トニトリル:0.2モルの酢酸アンモニウム、pH6,
0(35: 65)で30分間、次いでアセトニトリル
:0.2モルの酢酸アンモニウム、pH6,0(40:
60)への直線の勾配で60分かけて溶離した。クロ
マトグラフィーを通じて、カラムの溶離液をU V !
s、、、において監視し、そして分画を2,5分毎に集
めた。
の分析により純粋なN−アセチル−LL−E33288
δ、′を含有するものをプールし、そして真空濃縮して
アセトニトリルを除去した。水性混合物中に存在するN
−アセチル−LL−E33288δl′を酢酸エチルで
抽出し、そして酢酸エチル相を無水硫酸マグネシウムで
乾燥し、小さい体積に濃縮し、モしてヘキサンの添加に
より沈澱させると、161mgの準純粋なN−アセチル
LL−E33288δl′が得られた。
2□予備被覆したアルミニウムシート、0゜2mm、0
.1モルのリン酸二水素カリウムで飽和した3%のイソ
プロパツール、寒天の生化学的誘導アッセイを使用する
バイオオートグラフィーにより検出lは、上からの準精
製したN−アセチル−LL−E3328881′試料が
微量の未反応のL L −E 33288δを含有する
ことを示した。
160mg)を1m12の酢酸エチル中に溶解し、そし
て充填しかつ酢酸エチルで平衡化したパイオーシル(B
io−5il) A (20〜44 /J、パイオーラ
ド・ラボラトリ−(Bio−Rad Laborat
ories)カラム(1,5cmX90cm)中に溶解
した。カラムをまず酢酸エチルで3.6mm1分の流速
で3.5時間溶離し、18mQの分画を集めた。溶離液
を0.1モルのリン酸二水素カリウムで飽和した酢酸エ
チル中の3%のイソプロパツールに変え、そして溶離を
さらに3.5時間続けた。分画を前のように分析し、純
粋なN−アセチル−LL−E33288δ11を含有す
る分画(分画58〜64)をプールし、真空濃縮し、少
量の酢酸エチル中に溶解し、モしてヘキサンの添加によ
り沈澱させると、118mgの検出可能な非アンル化親
抗踵瘍抗生物質を含有しない、分析的に純粋なN−アセ
チル−LL−E33288δ1が得られた。プロトン磁
気共鳴スペクトルを第1図に示す。
び精製 酢酸およびギ酸の混合無水物を、氷水浴中で冷却した4
00μ2の酢酸無水物に200μにのギ酸を滴々添加し
て新しく調製した。次いで、反応混合物50℃に5分間
加温して無水物の交換を完結し、次いで0°Cに保持し
た。上で調製した酢酸およびギ酸の混合無水物(100
μβ)を、氷水浴中で冷却した部分的に精製したLL−
E33288δr’ (92mg145%の純度、30
mQ)の撹拌したメタノール性溶液に滴々添加した。反
応混合物を0℃において45分間撹拌し、ヘキサン(2
0mα)を反応混合物に添加し、そして反応混合物を中
程度に真空濃縮乾固した。残留物を酢酸エチル中に再溶
解し、モしてヘキサンの添加により沈澱させると、塊の
入った、粘性の沈澱が得られ、これを遠心により集めた
。沈澱を少量の酢酸エチル中に再溶解し、モしてヘキサ
ンの添加により沈澱させると、粗製のN−ホルミル−L
L−E33288δ、′が得られた。
′を、シリカゲル[アナルテク・シリカ・ゲル(Ana
ltech 5ilica Ge1) GF予備被
覆した板、2.000/7,20X20cm)の調製用
TCLにより部分的に精製し、リン酸塩緩衝液、pH7
,0、で飽和し、た酢酸エチルで溶離した。
レン:メタノール(80:20)で洗浄してN−ホルミ
ル−LL−E33288δI′を回収し、仕上げると、
l l Omgの部分的に精製したN−ホルミル−LL
−E33288δ、′が得られtこ 。
288δ11を1m4のアセトニトリル:酢酸アンモニ
ウム、pH6,0(35: 65)中に溶解し、そして
セプラリテ(S epralyte) Claカラム(
1,5X21cm)でクロマトグラフィーにかけた。こ
のカラムを8mQ/分においてアセトニトリル=0.2
モルの酢酸アンモニウム、pH6,0(35: 65)
で1.75時間溶離し、UVzs+s−ごおいて監視し
、そして20m(lの分画を集めた。ピークの分画をH
PLCにより分析し、モしてHPLCの分析に従い純粋
なN−ホルミル−LL−E33288δ11を含有する
ものをプールし、そして真空濃縮してアセトニトリルを
除去した。N−ホルミル−LL−E 33288δl′
を含有する、くもった水性混合物を酢酸エチルで溶離し
、そして酢酸エチル相を濃縮乾固した。
シウムで乾燥し、濃縮し、そしてヘキサンの添加により
沈澱させると、36.5mgの準精製されたN−ホルミ
ル−LL−E33288δ。
254予備被覆したアルミニウムシート、0.2mm、
0.1モルのリン酸二水素カリウムで飽和した3%のイ
ソプロパツール、寒天の生化学的誘導アツ、セイにより
検出]は、上からの準精製したN−ホルミル−LL−E
33288δl′試料が微量の未反応のLL−E332
88δ11およびγ、′を含有することを示した。準精
製したN−ホルミル−LL−E33288δ+’(36
,5mg)を1rrlの酢酸エチル中に溶解し、そして
充填しかつ酢酸エチルで平衡化したバイオ−シル(Bi
。
リ−(B to −Rad L aboratori
es)カラム(1,5cmx23cm)中に溶解した。
時間溶離し、6mQの分画を集めた。溶離液を酢酸エチ
ル:メタノール(97: 3)に変え、そして溶離をさ
らに2時間続けた。分画をTLC分析[E、メルク(M
erk)シリカゲル60F254予備被覆したアルミニ
ウムシート、0.2mm。
ンプロパツール、8%の水性リン酸中の3%の酢酸鋼の
溶液の噴霧により検出]により分析し、純粋なN−ホル
ミル−LL−E33288δ−を含有する分画(分画3
5〜38)をプールし、真空濃縮した。残留物を少量の
酢酸エチル中“に溶解し、モしてヘキサンの添加により
沈澱させると、N−ホルミル−LL−E33288δ1
′が得られ、これはなお微量の未反応のLL−E 33
28811′で汚染されていた。この試料を充填されか
つ酢酸エチルで平衡化したパイオーシル(Bio−3目
)A (0,8x20 cm)のクロマトグラフィーに
再びかけた。カラムを酢酸エチルで1゜2m127分の
流速で4時間溶離し、6mffの分画を集めI;。分画
を前のようにTLCにより分析し、そして純粋なN−ホ
ルミル−L L −E 33288δ I(分画14〜
33)をプールし、そして前のように仕上げると、12
.2mgの検出可能な量の非アシル化抗生物質を含有し
ない、分析的に純粋なN−ホルミル−LL−E3328
8δ、Iが得られた。プロトン磁気共鳴スペクトルを第
2図に示す。
び精製 実施例2におけるようにして調製した、酢酸およびギ酸
の混合無水物(750μりを、氷水浴中で冷却した部分
的に精製したLL−E33288δl’ (689mg
、 70%の純度、150m12)の撹拌したメタノー
ル性溶液に嫡々添加した。反応混合物を0℃において1
時間撹拌し、次いで過剰のヘキサンを反応混合物に添加
し、そしてこの混合物を約75mQに真空濃縮乾固した
。この溶液に酢酸エチル(約200mQ)を添加し、そ
してこの混合物を約50mQに濃縮し、そして300m
12のヘキサンの添加により沈澱させると、粗製のN−
ホルミル−LL−E33288δ1′(676mg)が
得られた。
の酢酸エチル中に溶解し、そして充填しかつ酢酸エチル
で平衡化したバイオ−シル(Bi。
95cm)中に溶解した。このカラムをlOmQ/分に
おいて酢酸エチルで溶離して、黄色バンドをカラムから
溶離した(1.75時間)。次いで、それを5m12/
分において0.1モルのリン酸二水素カリウムで飽和し
た酢酸エチルでさらに5時間溶離した。クロマトグラフ
ィーにより、20mαの分画を集めた。TLC分析[E
、メルク(Merk)シリカゲル60F254予備被覆
したアルミニウムシート、0.2mm、0.1モルのリ
ン酸二水素カリウムで飽和した3%のインプロパツール
、寒天の生化学的誘導アッセイにより検出]により分析
し、そして主要なN−ホルミル−LL−E33288δ
1′含有分画(92〜98)をプールし、そして濃縮お
よび沈澱により仕上げると、294mgの部分的に精製
されたN−ホルミル−LL−E3328881′が得ら
れた。この試料のTLC分析(寒天寒天の生化学的誘導
アッセイを使用するバイオオートグラフィーにより検出
)は、それが未反応のLL−E33288δ11を含有
しないことを示した。
l′を4mQのアセトニトリル:酢酸アンモニウム、p
H6,0(35: 65)中に溶解し、そして2つのバ
ッグ−でアセトニトリル:酢酸アンモニウム、pH6,
0(35: 65)と平衡化したセプラリテ(S ep
ralyte) Clsカラム(1,5X21cm)で
クロマトグラフィーにかけた。このカラムを8m12/
分において同一溶媒で3時間溶離し、UV、、、、つに
おいて監視し、そして20mQの分画を集めた。ピーク
の分画をHPLCにより分析し、モしてHPLCの分析
に従い純粋なN−ホルミル−LL−E33288δ1「
を含有するものをプールし、そして真空濃縮してアセト
ニトリルを除去した。水性混合物中に存在するN−ホル
ミル−LL−E33288δl′を酢酸エチル中に溶離
し、そして濃縮および沈澱により仕上げると、161m
gの純粋なN−ホルミル−LL−E33288δ1′が
得られた。プロトン磁気共鳴スペクトルを第2図に示す
。
水物(4m(1)を、氷水浴中で冷却した部分的に精製
したLL−E 33288γ、’(1゜25g、85%
の純度、loom(2のメタノール)の撹拌したメタノ
ール溶液に嫡々添加した。反応混合物を0℃において撹
拌し、次いで室温にゆっくり加温し、そして反応をさら
に2時間続けた。
00m+2のジクロロメタンおよび水の混合物中に取っ
た。水性相を希求性水酸化ナトリウムで中和して、有機
相から酢酸の大部分を除去した。
さい体積に濃縮し、そして生成物をヘキサンの添加によ
り沈澱させると、1.18gの80%の純粋なN−アセ
チル−LL−E3328871′が得られ、これは実施
例1に記載されている手順に従い精製して、純粋なN−
アセチル−LL−E33288γ、′を得ることができ
る。紫外線、赤外線、プロトンおよび炭素−13磁気共
鳴スペクトルを第3図〜第6図に示す。
2に記載されているように新しく調製した、酢酸および
ギ酸の混合無水物(100μl)を、氷水浴中で冷却し
た分析的に純粋なLL−E33288γt’(49,6
mg550mf2のメタノール)の撹拌したメタノール
性溶液に嫡々添加した。反応混合物を0°Cにおいて1
時間撹拌し、次いで室温において一夜撹拌しI;。次い
で、それを濃縮乾固し、小さい体積の酢酸エチル中に再
溶解し、そして生成物をヘキサンの添加により沈澱させ
た。乾燥した沈澱を1Onlのメタノール中に再溶解し
、そして再び酢酸およびギ酸の混合無水物(400μl
)で処理した。反応混合物を室温において2時間撹拌し
、そして前述したように濃縮および沈澱により仕上げる
と、粗製のN−ホルミル−LL−E3328811′が
灰色の固体とじてか得られた。粗製のN−ホルミル−L
L−E3328811′を調製用TLC(2つの20c
mX20cmのアナルテクのティバードシリカゲルGF
板)により精製し、0.1モルのリン酸二水素カリウム
で飽和した酢酸エチル中の3%のインプロパツールで溶
離すると、準精製されたN−ホルミル−LL−E332
8811′が得られた。
ール中の25mgのN−アセチル−LL−E33288
1.1(実施例4に記載されているように調製した)の
溶液に添加し、そして混合物を氷水浴中で冷却した。こ
れに2つの等しい部分でホウ水素化ナトリウムの0.4
モルのエタノール性溶液の1m<+に添加した。反応が
完結したとき(ホウ水素化ナトリウム溶液の第2部分の
添加後10分)、ホウ酸塩複合体を400μ2の4モル
の酢酸エタノール性溶液の添加により分解した。
が得られ、これを10m12の酢酸エチル中に再溶解し
、lOmaのジクロロメタンで希釈し、そして再び濃縮
乾固した。この残留物を酢酸エチル中に再溶解し、不溶
性ホウ酸塩を濾過し、そして溶液を濃縮乾固すると、灰
色の固体が得られ、これを4mQの水中に懸濁し、そし
てポンド・エルト(Bond E Iut’) C1
mカートリッジに通過させた。カートリッジを順次に各
4mαの水、メタノール:水(1: l)およびメタノ
ールで溶離した。N−アシル−ジヒドロ−LL−E33
288γl′の大部分を含有するメタノール溶離液を濃
縮すると、灰色の固体が得られ、これをさらに調製用T
LC(アナリテク・シリカ・ゲルGF、20X20cm
% 1000μの層厚さ、酢酸エチル:メタノール、9
7:3)により精製すると、分析的に純粋なN−アシル
−ジヒドロ−LL−E33288γ、′が得られた。プ
ロトン磁気共鳴スペクトルを第8図に示す。
の調製 コハク酸のモノメチルエステルの無水物(55mg)を
、3つの部分で、メタノール(2mQ)中のLL−E3
3288γ+’(12,3mg)の溶液に添加し、そし
て室温に3日間保持した。反応混合物を濃縮乾固し、そ
して残留物を小さい体積のi[エチル中に再溶解し、そ
してヘキサンの添加により沈澱させた。ガム状沈澱をエ
チルエーテルとともによく粉砕し、次いで小さい体積の
酢酸エチル中に再溶解し、モしてジエチルエーテルおよ
びヘキサンの添加により沈澱させると、粗製のN−モノ
メチルスクシニル−LL−E33288γl′が得られ
I;。
キル(C+ Cto)またはアルキレン(ci−Ct
o)基、アリールまたはへテロアリール基、またはアリ
ール−アルキル(C+−Cs)またはヘテロアリール−
アルキル(C+ CS)基であり、すべての基は1ま
たは2以上のヒドロキシ、アミノ、カルボキシ、ハロ、
ニトロ、低級(ci−cs)アルコキシ、または低級(
CI−C6)チオアルコキシ基で置換されていてもよく
、R1はHまたは であり、R2はCH,、C,H,またはCH(CH3)
2であり、R,がHであるときR2はOHであるか、あ
るいはR4およびR,は−緒になってカルボニルであり
、モしてXはヨウ素または臭素である、 の化合物。
881′であり、式 式中、Wは前に定義したとおりであり、RはCH3であ
り、R1は であり、R2はCH,であり、R4およびR6は一緒に
なってカルボニルであり、そしてXはヨウ素である、 を有し、そして a)第1図に示すプロトン磁気共鳴スペクトル、b)F
ABMSにより決定して1395の分子量、 C)高い分解能のFAB−MSによりC1H7゜N、O
□、Is、Kについて1434.2329であると決定
された、M+Kについての正確な質量をもつC1H、、
N 、0□21S4の分子式、d)アセトニトリルでl
:lとし、1.5mL/分の流速を有する、0.2モル
の水性酢酸アンモニウムpH6,0の移動相を使用して
、254nmおよび280nmの紫外線検出で、アナリ
ティケム・セプライテ(A nalytichem
S epralyLe)C13,5μ、4.6mmX2
5cmのカラムを使用するHPLCによる、4.5分の
保持時間、および e)0.1モルの水性リン酸塩緩衝液pH7,0で飽和
した酢酸エチルを使用して、254nmの紫外線ランプ
で可視化して、ワットマン(Whatman)高性能T
LC()(PTLC)板、L)IP−KF型、上で0.
25のRf。
8δ、′であり、式 式中、Wは前に定義したとおりであり、RはCH,であ
り、R8は であり、R7はCH,であり、R,およびR6は一緒に
なってカルボニルであり、モしてXはヨウ素である、 を有し、そして a)第2図に示すプロトン磁気共鳴スペクトル、b)F
AB−MSにより決定して1381の分子量、 C)高い分解能のFAB−MSによりCs、H、。
72であると決定された、M十Kについての正確な質量
をもつC1H7□N30゜Is、の分子式、d)アセト
ニトリルでl:lとし、1.5m(+/分の流速を有す
る、0.2モルの水性酢酸アンモニウムpH6,0の移
動相を使用して、254nmおよび280nmの紫外線
検出で、アナリティケム費セプライテ(A nalyt
ichem S epralyte)C,、,5μ、
4.6mmX25cmのカラムを使用するHPLCによ
る、4.2分の保持時間、および e)0.1モルの水性リン酸塩緩衝液pH7,0で飽和
した酢酸エチルを使用して、254nmの紫外線ランプ
で可視化して、ワットマン(Whatman)高性能T
LC(HPTLC)板、LHP−KF型、上で0.31
のRf。
8γI′であり、式 %式% 式中、Wは前に定義したとおりであり、RはCH,であ
り、R1は であり、R,はCオH,であり、R4およびR5は一緒
になってカルボ ニルであり、モしてXはヨウ素である、を有し、そして a)第3図に示す紫外線スペクトル、 b)第4図に示す赤外線吸収スペクトル、C)第5図に
示すプロトン磁気共鳴スペクトル、および d)下に列挙する有意のピークをもつ、第6図に示す炭
素−13磁気共鳴スペクトル:14、Oq 17.6
q 17.7q 19.0q 22.4q 2
2.8q25.4q 36.7t 36.9t
39.2t 47.6t 51.6d52.4q
53.b 57.Oq 57.2q 58.8
t 60.9q61.7q 64.4d 67、
Od 68.ld 68.4d 69.0d69
、ld 70.5d 71.ld 71.7s
71.9d 72.4d77.6d 80.8d
83.2s 87.Os 93.5s 97
.9d98.1s 99.7d 100.9s
101.3d 102.6d 123.2d124
.5d 127.1d 130.2s 133.
4s 136.5s 142.9s143、Os
150.6s 151.5s 155.Os
172.3s 191.9s192、Is e)FAB−MSにより決定して1409の分子量、 f)高イ分解能17) F A B −M S J:よ
りC、、H、。
と決定された、M+Kについての正確な質量をもツCS
7HtaN 10 zz I S aの分子式、g)ア
セトニトリルで1:1とし、1.5m12/分の流速を
有する、0.2モルの水性酢酸アンモニウムpH6,0
の移動相を使用して、254nmおよび280nmの紫
外線検出で、アナリティヶム・セプライテ(A nal
ytiche+n S epralyte)c、、、
5p、4.6mmX25cmのカラムを使用するHPL
Cによる、6.6分の保持時間、および h)0.1モルの水性リン酸塩緩衝液pH7,0で飽和
した酢酸エチルを使用して、254nmの紫外線ランプ
で可視化して、ワットマン(Whatman)高性能T
LC(HPTLC)板、LHP−KF型、上で0.53
のRf。
E33288γ、1であり、式%式% : 式中、Wは前に定義したとおりであり、RはCH、であ
り、R1は であり、R2はC,H,であり、R6はOHであり、R
5はHであり、モしてXはヨウ素である、を有し、そし
て a)第7図に示す紫外線吸収スペクトル、b)第8図に
示すプロトン磁気共鳴スペクトル、および c)0.1モルの水性リン酸塩緩衝液pH7,0で飽和
した酢酸エチルを使用して、254nmの紫外線ランプ
で可視化して、ワットマン(Whatman)高性能T
LC(HPTLC)板、LHP−KF型、上で0.38
のRf。
キル(Co Coo)またはアルキレン(C+C+。
ル−アルキル(Co Cs)またはヘテロアリール−
アルキル(C□−CS)基であり、すべての基は1また
は2以上のヒドロキシ、アミノ、カルボキシ、ハロ、ニ
トロ、低級(c、−c、)アルコキシ、または低級(C
o−〇、)チオアルコキシ基で置換されていてもよく、
R9はHまたは であり、R3はCH3、C,H,またはCH(CH3)
2であり、R,がHであるときR4はOHであるか、あ
るいはR4おシびRsは一緒になってカルボニルであり
、そしてXはヨウ素または臭素である、 のN−アシル誘導体およびそれらのジヒドロ相手を、式 を有し、そして抗生物質LL−E 33288、a 、
a r、β11゛、γ1″′、a!′、β、′、γ、′
、δ1と表示される化合物から調製する方法であって、
抗生物質 −N−W を、酢酸およびギ酸の適当に置換された無水物、酸塩化
物、混合無水物またはコハク酸のモノメチルエステルの
無水物と、メチルアルコール中で、−5℃〜約+5℃の
温度において、1時間および周囲温度においてl〜24
時間反応させ、酢酸エチルからヘキサンで沈澱させ、 クロマトグラフィーにより精製するか、あるいはジヒド
ロ相手を調製するため、 上のものから式 %式% のN−アシル誘導体を、ヨウ化メチル、アルコール溶液
中で一5°C〜約+5°Cの温度において、ホウ水素化
ナトリウムのアルコール性溶液と5分〜5時間反応させ
、 ホウ酸塩複合体をエタノール性酢酸で分解し、そして 所望のジヒドロ生成物をクロマトグラフィーにより精製
する、 ことからなる前記方法。
)2である、 の化合物を、酢酸無水物または酢酸およびギ酸の混合無
水物と、メタノール中で一5℃〜+5°Cの温度におい
て約1時間反応させることによって、式 式中、RはCH,またはHであり、そしてR1はCH,
、CH,CH2またはCH(CH,)、である、 の化合物を調製する、上記第6項記載の方法。
、CH,CH,またはCH(CH3)!である、 の化合物を、ホウ水素化ナトリウムと、アルコール性溶
液中で一り℃〜約+5℃の温度において約5分〜5時間
反応させることによって、式式中、RはCH,またはH
であり、そしてR2はCH,、CH,CH2またはCH
(CHs) xである、 の化合物を調製する、上記第6項記載の方法。
は p。
キル(C+C+。)またはアルキレン(C+ (:+
o)基、アリールまたはへテロアリール基、またはアリ
ール−アルキル(at−cs)またはヘテロアリール−
アルキル(ct cs)基であり、すべての基は1ま
たは2以上のヒドロキシ、アミノ、カルボキシ、ハロ、
ニトロ、低級(c 1− C3)アルコキシ、または低
級(C+CS)チオアルコキシ基で置換されていてもよ
く、R1はHまたは −N−W ■ を有し、そして抗生物質LL−E33288、α2′、
β1″ γ I r a 、 I、β1′、11′
、δ。
動物においてバクテリアの感染を処置する方法。
ニルであり、そしてXはヨウ素または臭素である、 の化合物およびそれらのジヒドロ相手を投与することか
らなり、前記化合物およびそれらのジヒドロ相手は、式 式中、Wは p。
キル(CI Coo)またはアルキレン(CI C
oo)基、アリールまたはへテロアリール基、またはア
リール−アルキル(CI Cs)またはヘテロアリー
ル−アルキル(CI−Cs)基であり、すべての基は1
または2以上のヒドロキシ、アミノ、カルボキシ、IX
口、ニトロ、低級(CI Cs”)アルコキシ、また
は低級(CI−C6)チオアルコキシ基で置換されてい
てもよく、R1はHまたは であり、R2はCH3、C,H,またはCH(CHl)
、であり、R5がHであるときR4はOHであるか、あ
るいはR4およびR5は一緒になってカルボニルであり
、モしてXはヨウ素まI;は臭素である、 の化合物およびそれらのジヒドロ相手を投与することか
らなり、前記化合物およびそれらのジヒドロ相手は、式 を有し、そして抗生物質LL−E33288、α2at
β m+ 7 、Br α21、β11、γ1
′、δ。
動物において腫瘍の増殖を抑制する方法。
′のプロトン磁気共鳴スペクトルである。 第2図は、N−ホルミル−LL−E3328881′の
プロトン磁気共鳴スペクトルである。 第3図は、N−アセチル−LL−E33288γ11の
紫外線吸収スペクトルである。 第4図は、N−アセチル−LL−E3328811′の
赤外線吸収スペクトルある。 第5図は、N−アセチル−LL−E3328811′の
プロトン磁気共鳴スペクトルである。 第6図は、N−アセチル−L L −E 332881
1′の炭素−13磁気共鳴スペクトルである。 第7図は、N−アシル−ジヒドロ−LL−E33288
11′の紫外線吸収スペクトルである。 第8図は、N−アシル−ジヒドロ−LL−E33288
γl′のプロトン磁気共鳴スペクトルである。 手続補正書 平成2年6月22日 特許庁長官 吉 1)文 毅 殿 1、事件の表示 平成2年特許願第95244号 2、発明の名称 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 名称 アメリカン・サイアナミド・カンパニー4、代理
人 〒107 (1)明細書の「発明の詳細な説明」の欄の第35頁1
1行の「酢酸の大部分を」とある゛を「出来る限り多く
の酢酸を」と訂正する。 (2)同第48頁3行のrGF板)により精製し、」と
あるをrGF板を使用し」と訂正する。 (3)同第48頁5行の「溶離すると、」とあるを「溶
離)により精製すると、」と訂正する。 (4)同第49頁17〜18行の「プロトン磁気共鳴ス
ペクトルを第8図に示す。」とあるをr紫外線スペクト
ルおよびプロトン磁気共鳴スペクトルを第7図および第
8図に示す。」と訂正する。 以上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、式 ▲数式、化学式、表等があります▼ 式中、Wは ▲数式、化学式、表等があります▼ であり、Rは水素または直鎖状もしくは分枝鎖状のアル
キル(C_1−C_1_0)またはアルキレン(C_1
−C_1_0)基、アリールまたはヘテロアリール基、
またはアリール−アルキル(C_1−C_5)またはヘ
テロアリール−アルキル(C_1−C_5)基であり、
すべての基は1または2以上のヒドロキシ、アミノ、カ
ルボキシ、ハロ、ニトロ、低級(C_1−C_3)アル
コキシ、または低級(C_1−C_5)チオアルコキシ
基で置換されていてもよく、R_1はHまたは ▲数式、化学式、表等があります▼ であり、R_2はCH_3、C_2H_5またはCH(
CH_3)_2であり、R_5がHであるときR_4は
OHであるか、あるいはR_4およびR_5は一緒にな
ってカルボニルであり、そしてXはヨウ素または臭素で
ある、 の化合物。 2、式 ▲数式、化学式、表等があります▼ 式中、Wは ▲数式、化学式、表等があります▼ であり、Rは水素または直鎖状もしくは分枝鎖状のアル
キル(C_1−C_1_0)またはアルキレン(C_1
−C_1_0)基、アリールまたはヘテロアリール基、
またはアリール−アルキル(C_1−C_5)またはヘ
テロアリール−アルキル(C_1−C_5)基であり、
すべての基は1または2以上のヒドロキシ、アミノ、カ
ルボキシ、ハロ、ニトロ、低級(C_1−C_3)アル
コキシ、または低級(C_1−C_5)チオアルコキシ
基で置換されていてもよく、R_1はHまたは ▲数式、化学式、表等があります▼ であり、R_2はCH_3、C_2H_5またはCH(
CH_3)_2であり、R_5がHであるときR_4は
OHであるか、あるいはR_4およびR_5は一緒にな
ってカルボニルであり、そしてXはヨウ素または臭素で
ある、 のN−アシル誘導体およびそれらのジヒドロ相手を、式 ▲数式、化学式、表等があります▼ を有し、そして抗生物質LL−E33288、α_2^
■^r、β_1^■^r、γ_1^■^r、α_2^I
、β_1^I、γ_1^I、δ_1^Iと表示される化
合物から調製する方法であって、抗生物質 ▲数式、化学式、表等があります▼ を、酢酸およびギ酸の適当に置換された無水物、酸塩化
物、混合無水物またはコハク酸のモノメチルエステルの
無水物と、メチルアルコール中で、−5℃〜約+5℃の
温度において、1時間および周囲温度において1〜24
時間反応させ、 酢酸エチルからヘキサンで沈澱させ、 クロマトグラフィーにより精製するか、あるいはジヒド
ロ相手を調製するため、 上のものから式 ▲数式、化学式、表等があります▼ のN−アシル誘導体を、ヨウ化メチル、アルコール溶液
中で−5℃〜約+5℃の温度において、ホウ水素化ナト
リウムのアルコール性溶液と5分〜5時間反応させ、 ホウ酸塩複合体をエタノール性酢酸で分解し、そして 所望のジヒドロ生成物をクロマトグラフィーにより精製
する、 ことからなる前記方法。 3、温血動物に、抗バクテリア的に有効量の式▲数式、
化学式、表等があります▼ 式中、Wは ▲数式、化学式、表等があります▼ であり、Rは水素または直鎖状もしくは分枝鎖状のアル
キル(C_1−C_1_0)またはアルキレン(C_1
−C_1_0)基、アリールまたはヘテロアリール基、
またはアリール−アルキル(C_1−C_5)またはヘ
テロアリール−アルキル(C_1−C_5)基であり、
すべての基は1または2以上のヒドロキシ、アミノ、カ
ルボキシ、ハロ、ニトロ、低級(C_1−C_3)アル
コキシ、または低級(C_1−C_5)チオアルコキシ
基で置換されていてもよく、R_1はHまたは ▲数式、化学式、表等があります▼ であり、R_2はCH_3、C_2H_5またはCH(
CH_3)_2であり、R_5がHであるときR_4は
OHであるか、あるいはR_4およびR_5は一緒にな
ってカルボニルであり、そしてXはヨウ素または臭素で
ある、 の化合物およびそれらのジヒドロ相手を投与することか
らなり、前記化合物およびそれらのジヒドロ相手は、式 ▲数式、化学式、表等があります▼ を有し、そして抗生物質LL−E33288、α_2^
■^r、β_1^■^r、γ_1^■^r、α_2^I
、β_1^I、γ_1^I、δ_1^Iと表示される化
合物から調製されたたものである、温血動物においてバ
クテリアの感染を処置する方法。 4、温血動物に、腫瘍崩壊量の式 ▲数式、化学式、表等があります▼ 式中、Wは ▲数式、化学式、表等があります▼ であり、Rは水素または直鎖状もしくは分枝鎖状のアル
キル(C_1−C_1_6)またはアルキレン(C_1
−C_1_8)基、アリールまたはヘテロアリール基、
またはアリール−アルキル(C_1−C_5)またはヘ
テロアリール−アルキル(C_1−C_5)基であり、
すべての基は1または2以上のヒドロキシ、アミノ、カ
ルボキシ、ハロ、ニトロ、低級(C_1−C_3)アル
コキシ、または低級(C_1−C_5)チオアルコキシ
基で置換されていてもよく、R_1はHまたは ▲数式、化学式、表等があります▼ であり、R_2はCH_3、C_2H_5またはCH(
CH_3)_2であり、R_5がHであるときR_4は
OHであるか、あるいはR_4およびR_5は一緒にな
ってカルボニルであり、そしてXはヨウ素または臭素で
ある、 の化合物およびそれらのジヒドロ相手を投与することか
らなり、前記化合物およびそれらのジヒドロ相手は、式 ▲数式、化学式、表等があります▼ を有し、そして抗生物質LL−E33288、α_2^
■^r、β_1^■^r、γ_1^■^r、α_2^I
、β_1^I、γ_1^I、δ_1^Iと表示される化
合物から調製されたたものである、温血動物において腫
瘍の増殖を抑制する方法。
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