JP6710732B2 - 多重特異性多価抗体の生成方法 - Google Patents
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Description
本願は、2010年8月16日に出願された米国仮出願第61/374,159号、2011年2月15日に出願された米国仮出願第61/443,008号、2011年7月19日に出願された米国仮出願第61/509,260号の恩典を主張するものであり、各々の内容は、参照によりその全体が本明細書に組み入れられる。
本発明は、免疫グロブリン分子の各結合部位について異なる特異性を保持している新規の二重特異性モノクローナル抗体の生成に関する。本発明の抗体は、1種の重鎖と2種の異なる軽鎖とから構成され、軽鎖の一方はκ定常ドメインを含有しており、他方はλ定常ドメインを含有している。本発明は、特に、異なる特異性を有するが共通の重鎖を有している抗体の単離に関する。本発明は、さらに、単一特異性抗体および二重特異性抗体の構築をもたらす、2種の軽鎖および1種の重鎖の制御された同時発現に関する。本発明は、配列が未改変であって、リンカーまたはその他の非ヒト配列の使用を含んでいない完全ヒト二重特異性二価抗体、および2種の単一特異性抗体と1種の二重特異性抗体との抗体混合物を作製する手段を提供する。本発明は、二重特異性抗体を効率的に精製する手段も提供する。
抗体は、4本のポリペプチド(2本の重鎖および2本の軽鎖)から構成される。抗体の抗原結合部分は、軽鎖可変ドメイン(VL)および重鎖可変ドメイン(VH)により形成される。これらのドメインの一端で、6個のループが抗原結合部位を形成し、それらは相補性決定領域(CDR)とも呼ばれる。3個のCDRがVHドメインに位置し(H1、H2、およびH3)、他の3個はVLドメインにある(L1、L2、およびL3)。B細胞の発達の間、V(D)J組換えとして公知の体細胞組換えにより、独特の免疫グロブリン領域が形成される。免疫グロブリンの重鎖または軽鎖の可変領域は、異なる遺伝子セグメントによりコードされる。重鎖は、可変(V)セグメント、多様性(D)セグメント、および連結(J)セグメントと呼ばれる3つのセグメントによりコードされ、軽鎖可変は、2つのセグメントVおよびJのみの組換えにより形成される。ゲノムに存在するVセグメント、Dセグメント、およびJセグメントについての複数コピーのうちの1つにおける組換えにより、極めて多数の抗体パラトープが生成され得る。VセグメントはCDR1およびCDR2をコードし、CDR3は組換えイベントにより生成される。免疫応答の間に、体細胞突然変異(SHM)と呼ばれる過程により、さらなる多様性が抗原結合部位へ導入される。この過程においては、重鎖および軽鎖の可変遺伝子、特に、CDRをコードする領域へ点変異が導入される。この付加的な可変性は、同族抗原に対する改良された親和性を有する抗体バリアントを発現しているB細胞の選択および拡大を可能にする。
−異なる特異性を有し、同一の重鎖可変ドメインを有しているが、異なる軽鎖可変ドメインを有している2種の抗体を単離する。この工程は、固定の重鎖を有する抗体ライブラリーまたは1種のVH遺伝子を含有しているトランスジェニック動物の使用により促進される。
−重鎖可変ドメインを重鎖定常領域と融合させ、一方の軽鎖可変ドメインをκ定常ドメインと融合させ、他方の軽鎖可変ドメインをλ定常ドメインと融合させる。好ましくは、κ定常ドメインと融合させられる軽鎖可変ドメインはκ型であり、λ定常ドメインと融合させられる軽鎖可変ドメインはλ型である。しかしながら、本発明は、ハイブリッド軽鎖の生成も可能にするため、同一の型の2種の軽鎖可変ドメインが、本発明の二重特異性抗体を生成するために使用されてもよい。
−3種の鎖を、哺乳動物細胞において同時発現させ、3種の抗体(2種の単一特異性抗体および2種の異なる軽鎖を保持している1種の二重特異性抗体)の構築、ならびにそれらの混合物の上清への分泌をもたらす。異なる抗体の比率は、鎖の相対的な発現およびそれらのIgGへの構築に依る。本発明は、これらの比率を調整し、二重特異性抗体の産生を最大にする方法を提供する。
−抗体混合物を、抗体精製のために使用される標準的なクロマトグラフィ技術を使用して精製する。抗体混合物は、多重標的化剤として特徴決定され使用され得る。
−ヒトκ定常領域およびヒトλ定常領域と特異的に結合するアフィニティクロマトグラフィ媒体を連続的に使用して、二重特異性抗体を精製する。この精製過程は、軽鎖可変ドメインの配列とは無関係であり、従って、本発明の全ての二重特異性抗体について一般的である。
−κ定常ドメインを含有している軽鎖およびλ定常ドメインを含有している軽鎖を保持している単離された二重特異性抗体を、種々の生化学的方法および免疫学的方法を使用して特徴決定する。
−本発明の二重特異性抗体は、治療的介入のため、または研究用もしくは診断用の試薬として使用され得る。
[本発明1001]
各結合部位において異なる特異性を保持し、かつ1種の重鎖ポリペプチドの2コピー、第1の軽鎖、および第1の軽鎖とは異なる第2の軽鎖からなる、単離されたモノクローナル抗体。
[本発明1002]
第1の軽鎖の少なくとも一部がκ型であり、かつ第2の軽鎖の少なくとも一部がλ型である、本発明1001の単離されたモノクローナル抗体。
[本発明1003]
第1の軽鎖がκ定常領域を少なくとも含む、本発明1002の単離されたモノクローナル抗体。
[本発明1004]
第1の軽鎖がκ可変領域をさらに含む、本発明1003の単離されたモノクローナル抗体。
[本発明1005]
第1の軽鎖がλ可変領域をさらに含む、本発明1003の単離されたモノクローナル抗体。
[本発明1006]
第2の軽鎖がλ定常領域を少なくとも含む、本発明1002の単離されたモノクローナル抗体。
[本発明1007]
第2の軽鎖がλ可変領域をさらに含む、本発明1006の単離されたモノクローナル抗体。
[本発明1008]
第2の軽鎖がκ可変領域をさらに含む、本発明1006の単離されたモノクローナル抗体。
[本発明1009]
第1の軽鎖がκ定常領域およびκ可変領域を含み、かつ第2の軽鎖がλ定常領域およびλ可変領域を含む、本発明1002の単離されたモノクローナル抗体。
[本発明1010]
定常領域および可変フレームワーク領域の配列がヒトのものである、前記本発明のいずれかの単離されたモノクローナル抗体。
[本発明1011]
以下の工程を含む、本発明1001の二重特異性抗体を生成する方法:
(a)第1の軽鎖可変ドメインと組み合わされた重鎖可変ドメインにより決定される特異性を有する抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(b)第2の軽鎖可変ドメインと組み合わされた、工程(a)の抗体と同一の重鎖可変ドメインにより決定される異なる特異性を有する抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(c)以下のものを一つの細胞において同時に発現させる工程:
i. 免疫グロブリン重鎖定常領域と融合した共通の重鎖可変ドメイン;
ii. κ型の軽鎖定常ドメインまたはλ型の軽鎖定常ドメインのいずれかと融合した第1の軽鎖可変ドメイン;および
iii. 第1の軽鎖の定常ドメインとは異なる型の軽鎖定常ドメインと融合した第2の軽鎖可変ドメイン。
[本発明1012]
κ軽鎖可変ドメインをκ型の定常領域と融合させる、本発明1011の方法。
[本発明1013]
κ軽鎖可変ドメインをλ型の定常領域と融合させる、本発明1011の方法。
[本発明1014]
λ軽鎖可変ドメインをκ型の定常領域と融合させる、本発明1011の方法。
[本発明1015]
λ軽鎖可変ドメインをλ型の定常領域と融合させる、本発明1011の方法。
[本発明1016]
(d)工程(c)において産生された二重特異性抗体を、工程(c)において産生された単一特異性抗体に対して精製する工程をさらに含む、本発明1011〜1015のいずれかの方法。
[本発明1017]
工程(d)がアフィニティクロマトグラフィ精製工程である、本発明1016の方法。
[本発明1018]
精製工程が、κ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体、λ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体、またはκ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体およびλ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体の両方を使用して実施される、本発明1017の方法。
[本発明1019]
工程(a)および(b)が、共通の重鎖と、軽鎖可変ドメインに限局した多様性とを有する抗体ライブラリーの使用により促進される、本発明1011〜1018のいずれかの方法。
[本発明1020]
抗体ライブラリーが、糸状バクテリオファージ、酵母、細菌、もしくは哺乳動物細胞の表面にディスプレイされるか、またはリボソームディスプレイもしくはその他の型のインビトロディスプレイのために使用される、本発明1019の方法。
[本発明1021]
以下の工程を含む、第1の抗原、および第1の抗原とは異なる第2の抗原と特異的に結合する二重特異性抗体を調製する方法:
(a)免疫グロブリン定常領域に結合されている、第1の抗原と結合する免疫グロブリンポリペプチドまたはその断片の重鎖可変領域を含む第1のポリペプチドをコードする第1の核酸分子を準備する工程;
(b)第1のκ型またはλ型の軽鎖定常領域に結合されている、第1の抗原と結合する免疫グロブリンポリペプチドまたはその断片の軽鎖可変領域を含む第2のポリペプチドをコードする第2の核酸分子を準備する工程;
(c)第2のκ型またはλ型の軽鎖定常領域に結合されている、工程(a)の免疫グロブリンポリペプチドまたはその断片と同一の重鎖可変領域を有しかつ第2の抗原と結合する免疫グロブリンポリペプチドまたはその断片の軽鎖可変領域を含む第3のポリペプチドをコードする第3の核酸分子を準備する工程であって、第1の軽鎖定常ドメインと第2の軽鎖定常ドメインとが異なる型である、工程;ならびに
(d)第1のポリペプチド、第2のポリペプチド、および第3のポリペプチドの発現を可能にする条件の下で、第1の核酸分子、第2の核酸分子、および第3の核酸分子を含む宿主細胞を培養する工程。
[本発明1022]
(e)二重特異性抗体を回収する工程をさらに含む、本発明1021の方法。
[本発明1023]
第2の核酸がκ型軽鎖可変ドメインをコードする、本発明1021の方法。
[本発明1024]
第2の核酸がκ型定常領域をコードする、本発明1023の方法。
[本発明1025]
第2の核酸がλ型定常領域をコードする、本発明1023の方法。
[本発明1026]
第2の核酸がλ型軽鎖可変ドメインをコードする、本発明1021の方法。
[本発明1027]
第2の核酸がκ型定常領域をコードする、本発明1026の方法。
[本発明1028]
第2の核酸がλ型定常領域をコードする、本発明1026の方法。
[本発明1029]
第3の核酸がκ型軽鎖可変ドメインをコードする、本発明1021の方法。
[本発明1030]
第3の核酸がκ型定常領域をコードする、本発明1029の方法。
[本発明1031]
第3の核酸がλ型定常領域をコードする、本発明1029の方法。
[本発明1032]
第3の核酸がλ型軽鎖可変ドメインをコードする、本発明1021の方法。
[本発明1033]
第3の核酸がκ型定常領域をコードする、本発明1032の方法。
[本発明1034]
第3の核酸がλ型定常領域をコードする、本発明1032の方法。
[本発明1035]
二重特異性抗体が、工程(e)において、アフィニティクロマトグラフィ精製工程を用いて回収される、本発明1021〜1034のいずれかの方法。
[本発明1036]
精製工程が、κ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体、λ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体、またはκ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体およびλ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体の両方を使用して実施される、本発明1035の方法。
[本発明1037]
全てが共通の重鎖を有する2種の単一特異性抗体と1種の二重特異性抗体とを含む、抗体混合物。
[本発明1038]
以下の工程を含む、本発明1037の抗体混合物を生成する方法:
(a)第1の軽鎖可変ドメインと組み合わされた重鎖可変ドメインにより決定される特異性を有する抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(b)第2の軽鎖可変ドメインと組み合わされた、工程(a)の抗体と同一の重鎖可変ドメインにより決定される異なる特異性を有する抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(c)以下のものを一つの細胞において同時に発現させる工程:
i. 免疫グロブリン重鎖定常領域と融合した共通の重鎖可変ドメイン;
ii. κ型の軽鎖定常ドメインまたはλ型の軽鎖定常ドメインのいずれかと融合した第1の軽鎖可変ドメイン;および
iii. κ型の軽鎖定常ドメインまたはλ型の軽鎖定常ドメインのいずれかと融合した第2の軽鎖可変ドメイン。
[本発明1039]
(d)工程(c)において産生された抗体混合物を細胞培養上清から精製する工程をさらに含む、本発明1038の方法。
[本発明1040]
全てが共通の重鎖を有する3種以上の単一特異性抗体と3種以上の二重特異性抗体とを含む、抗体混合物。
[本発明1041]
以下の工程を含む、本発明1040の抗体混合物を生成する方法:
(a)第1の軽鎖可変ドメインと組み合わされた重鎖可変ドメインにより決定される特異性を有する抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(b)異なる軽鎖可変ドメインと組み合わされた、工程(a)の抗体と同一の重鎖可変ドメインにより決定される異なる特異性を有する数種の抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(c)以下のものを一つの細胞において同時に発現させる工程:
i. 免疫グロブリン重鎖定常領域と融合した共通の重鎖可変ドメイン;
ii. κ型の軽鎖定常ドメインまたはλ型の軽鎖定常ドメインのいずれかと融合した工程(a)および(b)において単離された抗体の軽鎖全て。
[本発明1042]
(d)工程(c)において産生された抗体混合物を細胞培養上清から精製する工程をさらに含む、本発明1041の方法。
1種の抗原のみを標的化することができるモノクローナル一価抗体治療薬の制限を克服するため、または一価抗体治療薬の組み合わせの制限を克服するため、二重特異性抗体フォーマットを使用して、複数の抗原を標的化することを目標として、精力的な努力がなされている。複数の特異性を保持しているそのような抗体は、バイオテクノロジーにおいて興味深く、新規の治療アプローチを可能にする治療剤として大きな可能性を有する(Fischer and Leger,Pathobiology 2007;74:3-14;Morrison SL Nature Biotechnol 2007;25:1233-1234)。二重特異性抗体は、多重標的化を可能にし、治療的可能性を増加させ、生物学的系の重複に取り組み、リターゲティングおよび/または特異性増強のような能力を通して新規の作用機序を提供するため、有利である。バリデートされた単一治療標的は、ますます使い尽くされてきているため、二重特異性抗体により可能となる組み合わせは、治療剤および適用のための標的の新たな拡張的な分野を提供する。
2種の標的の同時の阻害。定義により、二重特異性抗体は、2種の特異性を保持し、従って、複数の標的を阻害することができる。これらの標的は、可溶性因子であってもよいし、または細胞の表面に位置していてもよい。複数のサイトカインを標的化する多数のフォーマットが成功裡に生成されている(Wu C et al.,Nat Biotechnol 2007 25:1290-7)。
現在の二重特異性抗体フォーマットの重要な特徴は、表Iに要約される。ヒトドメインに基づくものを除く全てのフォーマットが、ヒト起源でない配列を含有しているか、または異なるタンパク質ドメインの融合により生成された非ヒトタンパク質配列を含有している。リンカーを使用するフォーマットの大部分が、ドメイン凝集による、可能性のある製造上の問題をもたらす。外来配列の存在および不都合な安定性特徴は、免疫原性のリスクを有意に増大させる可能性がある。フォーマット間の重要な違いは、リターゲティングまたはアビディティにより媒介される選択的結合を媒介する能力に直接関係している、結合部位の価数である。従って、全てのフォーマットが、全ての作用様式を可能にすることはできない。特に、完全ヒト免疫グロブリンと識別不可能な唯一のフォーマットは、リターゲティング活性または選択性増加活性を媒介することができない。従って、治療薬の開発のための好都合の特性を有する、即ち、完全ヒト免疫グロブリン分子と識別不可能であり、良好な製造可能性特性を有し、かつ可能な作用様式の完全なスペクトルを可能にする、新規の二重特異性抗体を生成する必要がある。
本発明は、ヒト免疫グロブリンと構造が同一の二重特異性抗体を生成する方法を提供する。この型の分子は、独特の重鎖ポリペプチドの2コピーと、定常κドメインと融合した第1の軽鎖可変領域と、定常λドメインと融合した第2の軽鎖可変領域とから構成される。各結合部位は、重鎖および軽鎖の両方が寄与する異なる抗原特異性を示す。軽鎖可変領域は、λファミリーまたはκファミリーのものであり得、それぞれ、好ましくは、λ定常ドメインおよびκ定常ドメインと融合される。これは、非天然のポリペプチド連結部の生成を回避するために好ましい。しかしながら、第1の特異性のため、κ軽鎖可変ドメインを定常λドメインと融合させ、第2の特異性のため、λ軽鎖可変ドメインを定常κドメインと融合させることにより、本発明の二重特異性抗体を得ることも可能である(図3)。本明細書に記載された二重特異性抗体は、IgGκλ抗体または「κλボディ」(新たな完全ヒト二重特異性IgGフォーマット)とも呼ばれる。このκλボディフォーマットは、標準的なモノクローナル抗体と識別不可能であって、従って、以前のフォーマットと比較して好都合である特徴を有する、標準的なIgG分子と識別不可能な二重特異性抗体のアフィニティ精製を可能にする。
重鎖可変ドメインが全てのライブラリーメンバーについて同一の抗体ライブラリーを、以下のように生成した。まず、定義されたCDR3 AKSYGAFDY(SEQ ID NO:1)(CDR命名法はIMGTによる)および定義されたFR4配列を含有している重鎖可変VH3-23ドメインを、SfiIおよびXhoIの制限部位を使用して、pNDSベクターへクローニングし、ファージミドベクターpNDS_VHfixedを得た。VK FR4のアミノ酸配列は、生殖系列J遺伝子JK1によりコードされるFR4領域に相当する。VλFR4のアミノ酸配列は、生殖系列J遺伝子JL2およびJL3によりコードされるFR4領域に相当する。106位に単一アミノ酸置換(アルギニンまたはグリシン)を有するVk FR4配列の2種のバリアントを生成した。各々、参照によりその全体が本明細書に組み入れられる、2010年5月20日に出願され、WO2010/135558として公開された同時係属中の出願PCT/US2010/035619に記載された方法およびRavn et al.(2010)Nucl Acid Res 38(21):e193に記載された方法に従って、合成または天然起源の多様性がクローニングされ得、高い多様性のライブラリーが生成され得る、17種のアクセプターベクターを生成するため、CDR3コーディング配列の代わりにスタッファー断片を含有している全部で6種のκ可変ドメイン遺伝子(VK1-33、VK1-39、VK3-11、VK3-15、VK3-20、VK4-1)および5種のλ可変ドメイン遺伝子(Vλ1-44、Vλ1-51、Vλ6-57、Vλ2-14、Vλ1-40)を、pNDS_VHfixedへクローニングした。この過程は、全部で6.9×109種のバリアントを含有し、全てが共通のVH3-23ドメインを有し、軽鎖可変相補性決定領域3(CDRL3領域)において多様化されたVκドメインまたはVλドメインを有する、17種のライブラリーの生成をもたらした(図5A)。180の無作為に選ばれた形質転換体の配列決定は、インフレームであって、従って、機能性である可能性のあるCDRL3配列が、クローンの>90%に組み込まれたことを示した。
以下に簡単に要約される標準的なファージディスプレイ手法に従い、各ライブラリーを独立にレスキューした。ライブラリーの理論上の多様性の少なくとも10倍をカバーするのに十分な量の凍結ライブラリーアリコートからの細胞を、2×TYAG(100μg/mlアンピシリン;2%グルコース)500mlに添加し、0.3〜0.5のOD600に到達するまで、撹拌しながら(240rpm)37℃で増殖させた。次いで、培養物にMK13KO7ヘルパーファージを重感染させ、37℃で1時間インキュベートした(150rpm)。次いで、細胞を2000rpmで10分間遠心分離し、培地を除去し、2×TY-AK(100μg/mlアンピシリン;50μg/mlカナマイシン)500mlにペレットを再懸濁させることにより、培地を交換した。次いで、培養物を、30℃で一夜増殖させた(240rpm)。細胞をペレット化するため、培養物を4000rpmで20分間遠心分離した。上清を収集し、混合物を氷上で1時間インキュベートすることにより、ファージ粒子を沈殿させるため、30%(vol/vol)のPEG8000(20%)/2.5M NaClを添加した。ファージ粒子を10,000rpmでの30分間の遠心分離により収集し、TE緩衝液(10mMトリス-HCl pH8.0;1mM EDTA)10mlに再懸濁させた。再懸濁した溶液を、細菌片を除去するために10,000rpmで遠心分離し、沈降手法を繰り返した。最後の再懸濁の後、大腸菌(E.coli)の感染および260nmでの吸収により、ファージを滴定した。ファージの表面におけるscFvのディスプレイレベルも、抗c-mycモノクローナル抗体を使用したウェスタンブロット分析により評価した。異なるライブラリーから精製されたファージを、15%(w/v)の最終濃度でグリセロールを添加した後、-80℃で凍結保管した。
ビオチン化hCXCL10-NusA融合タンパク質(hCXCL10-NusA)およびビオチン化hIL6受容体複合体(hIL6RC)に対する液相選択:VH-VκファージライブラリーおよびVH-Vλファージライブラリー(1011〜1012Pfu)のアリコートを、別々に維持し、ロータリーミキサー上で室温で1時間3%(w/v)スキムミルクを含有しているPBSによりブロッキングした。次いで、ブロッキングされたファージを、ロータリーミキサー上で室温で1時間ストレプトアビジン磁性ビーズ(Dynal M-280)上でデセレクト(deselected)した。次いで、デセレクトされたファージを、ロータリーミキサー上で室温で2時間、インビボでビオチン化されたhCXCL10-NusAまたはhIL6RC(100nM)と共にインキュベートした。ビーズを標的に添加し、磁気スタンドを使用して捕獲した後、PBS/0.1%トゥイーン20により4回、PBSにより3回洗浄した。次いで、ビーズを、指数関数的に増殖中のTG1細胞10mlに直接添加し、低速で振とうしながら(100rpm)37℃で1時間インキュベートした。選択アウトプットを滴定するため、感染TG1のアリコートを段階希釈した。残りの感染TG1を、3000rpmで15分間スピンし、2×TYAG(100μg/mlアンピシリンおよび2%グルコースを含有している2×TY培地)0.5mlに再懸濁させ、2×TYAG寒天Bioassayプレート上に播種した。30℃での一夜のインキュベーションの後、2×TYAG 10mlをプレートに添加し、細胞を表面から剥離させ、50mlポリプロピレンチューブに移した。17%グリセロールの最終濃度を得るため、50%グリセロールを含有している2×TYAGを、細胞懸濁物に添加した。選択ラウンドのアリコートを-80℃で維持した。
を使用したDNA配列決定のために使用した。
天然に再編成された軽鎖レパートリーを捕獲し、実施例1に記載された単一VHドメインの環境でそれらをクローニングすることによっても、抗体ライブラリーを生成した。この場合、ヒト再編成可変領域の5'領域および3'領域に対応するプライマーを使用して、ヒトcDNAから軽鎖可変遺伝子領域全体を増幅し、実施例1に記載されたpNDS_VHfixedベクターへクローニングした。実施例1に記載されたようにして、ただし、異なるCDRH3配列ARGDDVS(SEQ ID NO:3)を含有している固定のVH3-23ドメインを使用して、もう1セットのライブラリーを生成した。上記のライブラリーは、図5に模式的に表される。これらの固定VHライブラリーを、実施例2および3に記載された選択およびスクリーニングの方法論を使用して、標的タンパク質のパネルに対して使用した。選択は以下の標的を使用して実施された:hCXCL10-NusA、IL-6RC、CD47、CD16、CD8、およびhIFNγ。それらの標的に特異的であることが同定され示された候補は、表IIにリストされる。これらの結果は、異なる標的と結合し共通の重鎖を有する抗体が生成され得ること、そして軽鎖に制限された多様性が抗原特異性を付与するのに十分であることを証明している。異なるCDRH3配列を有するVH3-23ドメインを含有しているか、または異なる戦略を使用して多様化されたVLレパートリーを有するライブラリーから、候補を生成することが可能であった。従って、結果は、特定のVH配列または特定の軽鎖可変ドメイン多様化戦略に、アプローチが制限されないことを証明している。
スクリーニングの後、scFv候補を、IgGへリフォーマットし、PEAK細胞への一過性トランスフェクションにより発現させた。共通の重鎖を有し、それぞれ、IFNγおよびIL6RCに特異的であり、異なる軽鎖配列を有するいくつかのIgGλ(n=5)およびIgGκ(n=9)を、以下のように生成した。選択されたscFvのVH配列およびVL配列を、特異的なオリゴヌクレオチドにより増幅し、重鎖および軽鎖の定常領域を含有している発現ベクターへクローニングし、構築を配列決定により確証した。発現ベクターを、Fugene 6 Transfection Reagent(Roche,Basel,Switzerland)を使用して、哺乳動物細胞へトランスフェクトした。簡単に説明すると、Peak細胞を、ウシ胎仔血清を含有している培養培地2mlにおいて、1ウェル当たり6×105細胞の濃度で、6穴プレートにおいて培養した。候補のVH配列およびVL配列をコードする発現ベクターを、製造業者の説明に従い、Fugene 6 Transfection Reagentを使用して、細胞へコトランスフェクトした。トランスフェクションの1日後、培養培地を吸引し、新鮮な無血清培地3mlを細胞へ添加し、37℃で3日間培養した。3日間の培養期間の後、上清を採集し、製造業者の説明に従い、protein G-Sepharose 4B fast flowカラム(Sigma,St.Louis,MO)でIgGを精製した。簡単に説明すると、トランスフェクトされた細胞からの上清を、ImmunoPure(G)IgG結合緩衝液(Pierce,Rockford IL)と共に4℃で一夜インキュベートした。次いで、試料を、Protein G-Sepharose 4B fast flowカラムに通過させ、従って、溶出緩衝液を使用してIgGを精製した。次いで、溶出したIgG画分を、PBSに対して透析し、280nmにおける吸収によりIgG含量を定量化した。純度およびIgG完全性をSDS-PAGEにより確証した。次いで、ELISAにより、IFNγ、および本明細書中IL6RCと呼ばれるIL-6/IL-6R受容体複合体との結合について、IgGを試験した。ビオチン化されたIFNγおよびIL6RCを、ストレプトアビジンでコーティングされたマイクロプレート(Streptawell,Roche)に固定化し、次いで、2%BSAが補足されたPBSにより室温で1時間プレートをブロッキングした。プレートを、PBS 0.05%トゥイーン20により3回洗浄した後、いずれかの標的によりコーティングされたウェルに、精製された抗INFγ IgGλまたは抗IL6RC IgGκを添加した。室温での1時間のインキュベーションおよびプレートの洗浄の後、結合した抗体を、西洋ワサビペルオキシダーゼに結合されている抗ヒトCκ抗体または抗ヒトCλ抗体により検出した。次いで、TMB(Sigma)50μlを添加することにより、ELISAを可視化し、反応を中止するため、2N H2SO4 50μlを添加した。吸収強度を450nmにおいて読み取った。結果は、固定VHライブラリーから単離されたscFvの結合特異性が、IgGフォーマットにおいて維持されることを示し、同一の重鎖を有し異なる軽鎖を有する2種のIgGが、別個の標的に対して特異的であり得ることを証明した(図6)。
同一の細胞における1種の重鎖および2種の軽鎖の同時の発現は、3種の異なる抗体の構築をもたらすことができる(図8A)。同時の発現は、同時発現される鎖のうちの1種を発現する複数のベクターのトランスフェクション、または多重遺伝子発現を駆動するベクターの使用のような、異なる方式で達成され得る。1種の重鎖、1種のκ軽鎖、および1種のλ軽鎖の同時発現を可能にするため、ベクターpNoviκHλを設計した(図7A)。3種の遺伝子の発現はヒトサイトメガロウイルスプロモーター(hCMV)により駆動され、ベクターは、安定細胞株の選択および樹立を可能にするグルタミン合成酵素遺伝子(GS)も含有している。λ軽鎖の後にκ軽鎖の第2のコピーが挿入されており、その発現が細胞内リボソーム侵入部位(IRES)により駆動される、別のベクターpNoviκHλκも構築した。この2シストロン設計を使用すると、κ軽鎖の相対的な発現を増強させることができる。2種のベクターは、図7に模式的に表される。
抗INFγ IgGλまたは抗IL6RC IgGκのVH遺伝子およびVL遺伝子を、哺乳動物細胞における一過性発現のため、実施例5に記載されたベクターpNoviκHλへクローニングした。Peak細胞を、ウシ胎仔血清を含有している培養培地2mlにおいて、1ウェル当たり6×105細胞の濃度で、6穴プレートにおいて培養した。プラスミドDNA 2μgを、製造業者の説明に従ってTransIT-LT1トランスフェクション試薬(Mirus)を使用して、細胞へトランスフェクトした。トランスフェクションの1日後、培養培地を吸引し、新鮮な無血清培地3mlを細胞へ添加し、37℃で5日間培養した。5日間の培養期間の後、上清を採集し、4000rpmで遠心分離し、製造業者の説明に従ってMabSelect Sure PA樹脂(GE Healthcare)に適用した。全IgGを酸性条件下で溶出させた後、中和およびPBSへの緩衝液交換を行った。IgG含量を、280nmにおける吸収により定量化し、SDS-PAGEにより分析した。2種の軽鎖に対応する2本のバンド、および重鎖に対応する1本のバンドの存在は、同一の細胞において3種の鎖を同時に発現させることが可能であることを示した(図8B)。
同一の細胞における、1種の重鎖および2種の軽鎖の同時発現は、3種の異なる抗体(両方のアームに同一の軽鎖を保持している2種の単一特異性抗体、および各アームに重鎖と会合した異なる軽鎖を保持している二重特異性抗体)の構築をもたらすことができる。単一特異性抗体と二重特異性抗体との異なる生化学的特性を利用するクロマトグラフィ技術により、後者は、単一特異性抗体から単離され得る。全ての二重特異性抗体の生成に適用可能な一般的な精製アプローチを開発するため、本発明者らは、図8Aに模式的に図示されたアフィニティクロマトグラフィアプローチを使用した。トランスフェクトされた細胞からの培養上清を、実施例7に記載されるように、MabSelect Sure PA樹脂(GE Healthcare)カラムに適用し、全IgGを精製した。次いで、全IgGを、10倍容量のPBSにより平衡化されたCaptureSelect Fab Kappaアフィニティマトリックス(BAC BV,Holland)を含有しているカラムに適用した。次いで、カラムを5〜10倍カラム体積のPBSにより洗浄した。5倍カラム体積の0.1MグリシンpH2.0を適用することにより、κ軽鎖を保持している免疫グロブリン分子をカラムから溶出させ、画分を収集し、中和した。抗体を含有している画分をプールした後、PBSにより平衡化されたPD10脱塩カラム(Amersham)で緩衝液交換を行った。次いで、10倍容量のPBSにより平衡化されたCaptureSelect Fab Lambdaアフィニティマトリックスを含有している第2のカラムに、抗体を適用した。次いで、カラムを5〜10倍カラム体積のPBSにより洗浄した。κ軽鎖のみを保持している免疫グロブリン分子は、カラムに結合せず、フロースルー中に見出された。5倍カラム体積の0.1MグリシンpH3.0を適用することにより、λ軽鎖を保持している抗体をカラムから溶出させ、画分を収集した。二重特異性抗体を含有している画分をプールした後、PBSにより平衡化されたPD10脱塩カラム(Amersham)で緩衝液交換を行った。5倍カラム体積の0.1MグリシンpH2.0を適用することにより、κ軽鎖を保持している免疫グロブリン分子をカラムから溶出させ、画分を収集し、中和した。抗体を含有している画分をプールした後、PBSにより平衡化されたPD10脱塩カラム(Amersham)で緩衝液交換を行った。次いで、抗体を、10倍容量のPBSにより平衡化されたCaptureSelect Fab Lambdaアフィニティマトリックスを含有している第2のカラムに適用した。次いで、カラムを5〜10倍カラム体積のPBSにより洗浄した。κ軽鎖のみを保持している免疫グロブリン分子は、カラムに結合せず、フロースルー中に見出された。5カラム体積の0.1MグリシンpH3.0を適用することにより、λ軽鎖を保持している抗体を、カラムから溶出させ、画分を収集した。二重特異性抗体を含有している画分をプールした後、PBSにより平衡化されたPD10脱塩カラム(Amersham)で緩衝液交換を行った。各精製工程のフロースルーおよび溶出画分をSDS-PAGEにより分析したところ、λ軽鎖を保持している抗体は、CaptureSelect Fab Kappaアフィニティマトリックスのフロースルーの中に見出され、反対に、κ軽鎖を保持している抗体は、CaptureSelect Fab Lambdaアフィニティマトリックスのフロースルーの中に見出されることが示された(図8B)。予想通り、最終的な溶出画分において、2種の軽鎖に対応するバンドの強度は、等しい。このように、この3工程アプローチは、κ軽鎖およびλ軽鎖の両方を保持している二重特異性抗体の精製を可能にする。κ軽鎖およびλ軽鎖を保持している二重特異性抗体の最終的な回収率は、異なる実験においておよそ10〜21%であった。プロテインA溶出画分は、λ軽鎖の方がκ軽鎖より多く、精製されたIgGへと集合することも示し、このことから、κ軽鎖の発現の増強が、二重特異性抗体の構築および回収率を増大させ得ることが示唆された。
κ軽鎖の発現を増強させるため、共通のVH遺伝子と、抗INFγ抗体のVλ遺伝子と、抗IL6RCのVκの2コピーとを、実施例6に記載されたベクターpNoviκHλκへクローニングした。Vκ軽鎖の第2のコピーの発現は、IRESにより駆動される。異なるレベルのVκ軽鎖発現を達成するため、異なるIRES要素を試験した。これは、5種の独立のベクターpNoviκHλκ1〜5の構築をもたらした。これらのベクターを、実施例7に記載されたような、哺乳動物細胞における一過性トランスフェクションのために使用し、プロテインAアフィニティ精製を使用して、上清から全IgGを精製した。SDS-PAGE分析は、異なるpNoviκHλκベクターが、pNoviκHλベクターを使用した発現と比較して、κ軽鎖の発現およびIgGへの集合を増強させたことを示す(図9)。これらの構築物の各々についてプロテインA精製の後に得られた全IgG画分を、実施例8に記載されるようなCaptureSelect Fab KappaおよびCaptureSelect Fab Lambdaを使用した連続的な2工程で精製した。二重特異性抗体の収率は、pNoviκHλについては20%、pNoviκHλκ構築物については33〜41%の範囲であり、このことから、κ軽鎖発現の増強が、二重特異性抗体の構築を増強させることが示された。これらの所見をさらに確認するため、pNoviκHλおよび単一特異性抗IL6RC IgGκを発現するベクターを使用したコトランスフェクションを実施した。それにより、κ軽鎖の相対的なレベルも、二重特異性抗体の収率も増大し、このことから、相対的な軽鎖発現を調整するため、いくつかのアプローチを採用し得ることが示された。
上記実施例に記載されるようにして単離された、精製された二重特異性抗体を、異なる技術を使用して特徴決定した。
IgGκλ二重特異性抗体の発現を、モノクローナル抗体の製造のために広範に使用されているチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞においても実施した。本明細書に提示された実施例において、トランスフェクトされたCHO細胞の半安定プールおよび安定細胞CHO株の両方が、IgGκλ二重特異性抗体の生成のために生成された。本明細書に提示された研究において、安定CHO株は、既知組成動物成分不含(CDACF)製造過程を使用して、生成され増殖させられた。全過程が図13に示される。
上記実施例に記載されたようにして、IgGκλ二重特異性抗体のその他の例を単離し、発現させ、精製した。これらには、抗NusA/抗INFγ IgGκλ二重特異性抗体、および両方の結合部位がIL6RCと結合するが、κ軽鎖およびλ軽鎖を保持している抗IL6RC/抗IL6RC IgGκλ二重特異性抗体が含まれた。これらの精製された二重特異性抗体を、それぞれの単一特異性カウンターパートと共にIEFにより分析した(図18)。結果は、二重特異性抗体のpIは、常に、単一特異性抗体のpIの中間にあるが、その差は、軽鎖可変ドメインの配列に依って有意に変動し得ることを示している。これは、2種の軽鎖が類似した生化学的特性を有する場合、電荷の差に基づく二重特異性抗体の精製は困難であり得ることを例証しており、本発明のアフィニティ精製アプローチの利点を強調する。
二重特異性抗体は、同一の型(λまたはκ)の2種の可変ドメインを使用しても生成され得る。アフィニティ精製工程は、軽鎖の定常κドメインおよび定常λドメインの存在を必要とするため、原理的には、任意の軽鎖可変ドメインを、図3に示されるようなハイブリッド軽鎖を生成するため、これらの定常ドメインと融合させることができる。これは、実施例1に記載された固定VH抗体ライブラリーから単離されたINFγおよびIL6RCに対する2種の抗体を使用することにより証明された。この場合、両方の抗体が、同一のVHを有し、λ軽鎖可変ドメインを有する。抗INFγ抗体のVλドメインをλ定常ドメインと組み合わせ、抗IL6RC抗体のVλドメインをκ定常ドメインと組み合わせた。後者について、VλドメインとCκドメインとの間の異なる融合点を含む、3種の異なる構築物が生成された。1種の構築物(ハイブリッド1)において、融合点は、Vλドメインのフレームワーク4(FR4)領域の末端にあり、定常κドメイン全体を含む(図19A)。もう1種の構築物(ハイブリッド2)においては、λFR4領域がκFR4領域に交換された(図19B)。第3の構築物(ハイブリッド3)においては、定常κドメインの最初の4アミノ酸が、定常λドメインの4アミノ酸に置換された(図19C)。これらの異なるハイブリッドλ軽鎖-κ軽鎖を、共通の重鎖およびλ軽鎖と共にpNoviκHλベクターへクローニングした。上記実施例に記載されるようにして、哺乳動物細胞トランスフェクション、タンパク質発現、およびIgGκλの3工程アフィニティ精製を実施した。溶出画分の分析は、ハイブリッド3の軽鎖が、Kappaselect樹脂と結合せず、従って、効率的な二重特異性抗体精製を可能にしないことを示した。ハイブリッド1およびハイブリッド2は、効率的なIgGκλ二重特異性精製を可能にした。Protein 80チップ(Agilent Technologies)を使用したAgilent Bionalyzer 2100で分析された、ハイブリッド軽鎖を保持しているこれらの精製されたIgGκλ、および軽鎖に対応する電気泳動図上のピークは、等しいことが示された(図20)。結果は、共通の重鎖と、同一の型(κまたはλ)の可変ドメインを有する2種の軽鎖とを有する2種の抗体を使用して、本発明の二重特異性抗体が、生成され得ることを示す。
共通のVHの抗原結合への寄与を試験するため、実施例1および4において選択された共通のVHを保持しているscFvの異なる軽鎖を、最初の共通のVHとは異なる2種の異なるVHと組み合わせた。実施例3に記載されたようにして、異なるscFvを発現させ、精製し、それらが選択された標的に対する結合について試験した。図21に示される例は、INFγに特異的なscFvおよびIL6RCに対して特異的なscFvが、それらが最初に選択されたVHドメインと組み合わされた時にのみ、それぞれの標的と結合することができ、発現および精製を可能にする2種の他のVHドメインと組み合わされた時には、結合が観察されないことを示している。結果は、多様性がVLドメインに制限されているという事実にも関わらず、共通のVHおよびVLの両方が、抗原結合に寄与することを示す。
IgGκλ二重特異性抗体を定量化するためのサンドイッチELISAを開発した。96穴Maxisorp(Nunc)プレートを、10ug/mlマウス抗ヒトλ抗体(Southern Biotech)によりコーティングし、4℃で一夜インキュベートした。洗浄(0.05%PBSトゥイーン20、3回)の後、PBS-BSA 3%(Sigma)により室温で2時間プレートをブロッキングした。試料定量化のための良好な直線範囲を得るため、精製されたIgGκλ標準物を、PBS-BSA 1%により500ng/ml〜1ng/mlの間に段階希釈した。起源に依って、以下のような定量化範囲に入るよう試料を希釈した:粗CHO上清1/1500;プロテインA精製1/15000。次いで、試料を1:2に段階希釈した。プレートの洗浄後、調製された各希釈物50ulをデュプリケートで添加し、室温で1時間インキュベートした。プレートを再び洗浄し、1:2000抗ヒトκ抗体(Southern Biotech)50ulと共に室温で1時間インキュベートした。最後の洗浄(PBST 0.05%、5回)の後、反応をTMB基質(Sigma)50ulにより可視化し、15分後、H2SO4(水酸化ナトリウム2N)50ulを添加することにより中止した。450nmにおける吸収を、精密マイクロプレートリーダー(Epoch,Witec)を使用して記録した。単一特異性抗体が、コーティングされた捕獲抗体と結合することによりアッセイに影響を与える可能性があるため、増加する量の単一特異性IgGκ抗体および単一特異性IgGλ抗体をIgGκλ二重特異性標準物に添加することにより、スパイキング実験を実施した。異なる比率を試験した:(50%IgGκλ二重特異性、25%単一特異性IgGκ、25%単一特異性IgGλ);(67%IgGκλ二重特異性;33%単一特異性IgGλ);(50%IgGκλ二重特異性、50%単一特異性IgGλ);(25%IgGκλ二重特異性、75%単一特異性IgGλ);(50%IgGκλ二重特異性、50%単一特異性IgGκ)。
本発明を、その詳細な説明と共に記載したが、上記の記載は、本発明を例示するためのものであり、添付の特許請求の範囲により定義される本発明の範囲を制限するものではない。その他の局面、利点、および修飾は、以下の特許請求の範囲の範囲内である。
Claims (42)
- 各結合部位において異なる特異性を保持し、かつ1種の重鎖ポリペプチドの2コピー、第1の軽鎖、および第1の軽鎖とは異なる第2の軽鎖からなる、単離されたモノクローナル抗体。
- 第1の軽鎖の少なくとも一部がκ型であり、かつ第2の軽鎖の少なくとも一部がλ型である、請求項1記載の単離されたモノクローナル抗体。
- 第1の軽鎖がκ定常領域を少なくとも含む、請求項2記載の単離されたモノクローナル抗体。
- 第1の軽鎖がκ可変領域をさらに含む、請求項3記載の単離されたモノクローナル抗体。
- 第1の軽鎖がλ可変領域をさらに含む、請求項3記載の単離されたモノクローナル抗体。
- 第2の軽鎖がλ定常領域を少なくとも含む、請求項2記載の単離されたモノクローナル抗体。
- 第2の軽鎖がλ可変領域をさらに含む、請求項6記載の単離されたモノクローナル抗体。
- 第2の軽鎖がκ可変領域をさらに含む、請求項6記載の単離されたモノクローナル抗体。
- 第1の軽鎖がκ定常領域およびκ可変領域を含み、かつ第2の軽鎖がλ定常領域およびλ可変領域を含む、請求項2記載の単離されたモノクローナル抗体。
- 定常領域および可変フレームワーク領域の配列がヒトのものである、請求項1〜9のいずれか一項記載の単離されたモノクローナル抗体。
- 以下の工程を含む、請求項1記載の二重特異性抗体を生成する方法:
(a)第1の軽鎖可変ドメインと組み合わされた重鎖可変ドメインにより決定される特異性を有する、抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(b)第2の軽鎖可変ドメインと組み合わされた、工程(a)の抗体と同一の重鎖可変ドメインにより決定される異なる特異性を有する、抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(c)以下のものを一つの細胞において同時に発現させる工程:
i. 免疫グロブリン重鎖定常領域と融合した共通の重鎖可変ドメイン;
ii. κ型の軽鎖定常ドメインまたはλ型の軽鎖定常ドメインのいずれかと融合した第1の軽鎖可変ドメイン;および
iii. 第1の軽鎖の定常ドメインとは異なる型の軽鎖定常ドメインと融合した第2の軽鎖可変ドメイン。 - κ軽鎖可変ドメインをκ型の定常領域と融合させる、請求項11記載の方法。
- κ軽鎖可変ドメインをλ型の定常領域と融合させる、請求項11記載の方法。
- λ軽鎖可変ドメインをκ型の定常領域と融合させる、請求項11記載の方法。
- λ軽鎖可変ドメインをλ型の定常領域と融合させる、請求項11記載の方法。
- (d)工程(c)において産生された二重特異性抗体を、工程(c)において産生された単一特異性抗体に対して精製する工程をさらに含む、請求項11〜15のいずれか一項記載の方法。
- 工程(d)がアフィニティクロマトグラフィ精製工程である、請求項16記載の方法。
- 精製工程が、κ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体、λ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体、またはκ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体およびλ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体の両方を使用して実施される、請求項17記載の方法。
- 工程(a)および(b)が、共通の重鎖と、軽鎖可変ドメインに限局した多様性とを有する抗体ライブラリーの使用により促進される、請求項11〜18のいずれか一項記載の方法。
- 抗体ライブラリーが、糸状バクテリオファージ、酵母、細菌、もしくは哺乳動物細胞の表面にディスプレイされるか、またはリボソームディスプレイもしくはその他の型のインビトロディスプレイのために使用される、請求項19記載の方法。
- 以下の工程を含む、第1の抗原、および第1の抗原とは異なる第2の抗原と特異的に結合する二重特異性抗体を調製する方法:
(a)免疫グロブリン重鎖定常領域に結合されている、第1の抗原と結合する免疫グロブリンポリペプチドまたはその断片の重鎖可変領域を含む第1のポリペプチドをコードする第1の核酸分子を準備する工程;
(b)第1のκ型またはλ型の軽鎖定常領域に結合されている、第1の抗原と結合する免疫グロブリンポリペプチドまたはその断片の軽鎖可変領域を含む第2のポリペプチドをコードする第2の核酸分子を準備する工程;
(c)第2のκ型またはλ型の軽鎖定常領域に結合されている、工程(a)の免疫グロブリンポリペプチドまたはその断片と同一の重鎖可変領域を有しかつ第2の抗原と結合する免疫グロブリンポリペプチドまたはその断片の軽鎖可変領域を含む第3のポリペプチドをコードする第3の核酸分子を準備する工程であって、第1の軽鎖定常ドメインと第2の軽鎖定常ドメインとが異なる型である、工程;ならびに
(d)第1のポリペプチド、第2のポリペプチド、および第3のポリペプチドの発現を可能にする条件の下で、第1の核酸分子、第2の核酸分子、および第3の核酸分子を含む宿主細胞を培養する工程。 - (e)二重特異性抗体を回収する工程をさらに含む、請求項21記載の方法。
- 第2の核酸がκ型軽鎖可変ドメインをコードする、請求項21記載の方法。
- 第2の核酸がκ型定常領域をコードする、請求項23記載の方法。
- 第2の核酸がλ型定常領域をコードする、請求項23記載の方法。
- 第2の核酸がλ型軽鎖可変ドメインをコードする、請求項21記載の方法。
- 第2の核酸がκ型定常領域をコードする、請求項26記載の方法。
- 第2の核酸がλ型定常領域をコードする、請求項26記載の方法。
- 第3の核酸がκ型軽鎖可変ドメインをコードする、請求項21記載の方法。
- 第3の核酸がκ型定常領域をコードする、請求項29記載の方法。
- 第3の核酸がλ型定常領域をコードする、請求項29記載の方法。
- 第3の核酸がλ型軽鎖可変ドメインをコードする、請求項21記載の方法。
- 第3の核酸がκ型定常領域をコードする、請求項32記載の方法。
- 第3の核酸がλ型定常領域をコードする、請求項32記載の方法。
- 二重特異性抗体が、工程(e)において、アフィニティクロマトグラフィ精製工程を用いて回収される、請求項21〜34のいずれか一項記載の方法。
- 精製工程が、κ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体、λ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体、またはκ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体およびλ定常ドメイン特異的アフィニティクロマトグラフィ媒体の両方を使用して実施される、請求項35記載の方法。
- 全てが共通の重鎖を有する2種の単一特異性抗体と1種の二重特異性抗体とを含む、抗体混合物:
ここで、該二重特異性抗体は、第1の軽鎖、および第1の軽鎖とは異なる第2の軽鎖を含み、および
該二重特異性抗体の、該2つの異なる軽鎖のそれぞれは、該2種の単一特異性抗体のそれぞれの軽鎖である。 - 以下の工程を含む、請求項37記載の抗体混合物を生成する方法:
(a)第1の軽鎖可変ドメインと組み合わされた重鎖可変ドメインにより決定される特異性を有する、抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(b)第2の軽鎖可変ドメインと組み合わされた、工程(a)の抗体と同一の重鎖可変ドメインにより決定される異なる特異性を有する、抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(c)以下のものを一つの細胞において同時に発現させる工程:
i. 免疫グロブリン重鎖定常領域と融合した共通の重鎖可変ドメイン;
ii. κ型の軽鎖定常ドメインまたはλ型の軽鎖定常ドメインのいずれかと融合した第1の軽鎖可変ドメイン;および
iii. κ型の軽鎖定常ドメインまたはλ型の軽鎖定常ドメインのいずれかと融合した第2の軽鎖可変ドメイン。 - (d)工程(c)において産生された抗体混合物を細胞培養上清から精製する工程をさらに含む、請求項38記載の方法。
- 全てが共通の重鎖を有する3種以上の単一特異性抗体と3種以上の二重特異性抗体とを含む、抗体混合物:
ここで、該3種以上の二重特異性抗体のそれぞれは、第1の軽鎖、および第1の軽鎖とは異なる第2の軽鎖を含み、および
該3種以上の二重特異性抗体のそれぞれの、該2つの異なる軽鎖のそれぞれは、該3種以上の単一特異性抗体のいずれか2種の単一特異性抗体のそれぞれの軽鎖である。 - 以下の工程を含む、請求項40記載の抗体混合物を生成する方法:
(a)第1の軽鎖可変ドメインと組み合わされた重鎖可変ドメインにより決定される特異性を有する、抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(b)異なる軽鎖可変ドメインと組み合わされた、工程(a)の抗体と同一の重鎖可変ドメインにより決定される異なる特異性を有する、数種の抗体または抗体断片の領域を単離する工程;
(c)以下のものを一つの細胞において同時に発現させる工程:
i. 免疫グロブリン重鎖定常領域と融合した共通の重鎖可変ドメイン;
ii. κ型の軽鎖定常ドメインまたはλ型の軽鎖定常ドメインのいずれかと融合した工程(a)および(b)において単離された抗体の軽鎖可変ドメイン全て。 - (d)工程(c)において産生された抗体混合物を細胞培養上清から精製する工程をさらに含む、請求項41記載の方法。
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