JP2021527702A - ネクチン−4に対して特異的な二環式ペプチドリガンド - Google Patents
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Abstract
Description
CiP[1Nal][dD]CiiM[HArg]DWSTP[HyP]WCiii(配列番号1);
(式中、1NaIは1−ナフチルアラニンを表し、HArgはホモアルギニンを表し、HyPはヒドロキシプロリンを表し、Ci、CiiおよびCiiiは、それぞれ第1、第2および第3のシステイン残基を表す)を含むペプチドリガンドまたはこれらの薬学的に許容される塩が提供される。
[B−Ala][Sar10]−(配列番号1)(以下BCY8234と称する);
Ac−[B−Ala][Sar5]−(配列番号1)(以下BCY8122と称する);
Ac−(配列番号1)(以下BCY8126と称する);
(配列番号1)(以下BCY8116と称する);
フルオロセイン−(配列番号1)(以下BCY8205と称する);および
[PYA][B−Ala][Sar10]−(配列番号1)(以下BCY8846と称する)
から選択されるアミノ酸配列を含む。
[B−Ala][Sar10]−(配列番号1)(以下BCY8234と称する);
Ac−[B−Ala][Sar5]−(配列番号1)(以下BCY8122と称する);
Ac−(配列番号1)(以下BCY8126と称する);
(配列番号1)(以下BCY8116と称する);および
フルオロセイン−(配列番号1)(以下BCY8205と称する)
から選択されるアミノ酸配列を含む。
Ac−[B−Ala][Sar5]−(配列番号1)(以下BCY8122と称する);
Ac−(配列番号1)(以下BCY8126と称する);および
(配列番号1)(以下BCY8116と称する)
から選択されるアミノ酸配列を含む。
Ac−[B−Ala][Sar5]−(配列番号1)(以下BCY8122と称する);および
Ac−(配列番号1)(以下BCY8126と称する)
から選択されるアミノ酸配列を含む。
[B−Ala][Sar10]−(配列番号1)(以下BCY8234と称する)
から選択されるアミノ酸配列を含む。
番号付け
本発明のペプチド内のアミノ酸残基の位置について言及する場合、システイン残基(Ci、CiiおよびCiii)は、不変であるために番号付けから除外し、その結果、本発明のペプチド内のアミノ酸残基の番号付けは、
Ci−P1−[1Nal]2−[dD]3−Cii−M4−[HArg]5−D6−W7−S8−T9−P10−[HyP]11−W12−Ciii(配列番号1)
のようにみなす。
二環コア配列へのNまたはC末端の伸長は、配列の左または右側に追加され、ハイフンによって分離される。例えば、N末端βAla−Sar10−Ala尾部は、
βAla−Sar10−A−(配列番号X)
として示されることになる。
Nair et al(2003)J Immunol 170(3)、1362−1373における開示を考慮すると、本明細書において開示されるペプチド配列は、そのレトロインベルソ形態においても有用性が見出されるであろうことが想定される。例えば、配列が反転されると(すなわちN末端がC−末端になり、逆もまた同様である)、その立体化学も同様に逆転される(すなわちD−アミノ酸がL−アミノ酸になり、逆もまた同様である)。
本明細書において言及するペプチドリガンドは、分子スキャフォールドに共有結合しているペプチドを指す。典型的には、そのようなペプチドは、スキャフォールドに対して共有結合を形成することができる2つ以上の反応性基(すなわちシステイン残基)、およびペプチドがスキャフォールドに対して結合した場合にループを形成するためのループ配列と称する前記反応性基間で定められる配列を含む。この場合において、ペプチドは、少なくとも3つのシステイン残基(本明細書においてCi、CiiおよびCiiiと称する)を含み、スキャフォールド上に少なくとも2つのループを形成する。
本発明のある特定の二環式ペプチドは、それらが注射、吸入、経鼻、眼、経口または局所投与のための好適な薬物様分子とみなされることを可能にするいくつかの有利な特性を有する。そのような有利な特性としては、以下が挙げられる:
− 種交差反応性。これは、臨床前の薬力学および薬物動態評価のための典型的な必須要件である;
− プロテアーゼ安定性。二環式ペプチドリガンドは、血漿プロテアーゼ、上皮(「膜アンカー」)プロテアーゼ、胃腸管プロテアーゼ、肺表面プロテアーゼ、細胞内プロテアーゼなどに対する安定性を理想的には実証されるべきである。プロテアーゼ安定性は、二環リード候補が動物モデルにおいて開発され、確信を持ってヒトに投与できるように異なる種間で維持するべきである;
− 望ましい溶解度プロファイル。これは、荷電および親水性対疎水性残基の比率と、分子内/間H結合との関数であり、これは製剤化および吸収目的のために重要である;
− 循環における最適な血漿半減期。臨床適用および処置レジメンに応じて、急性の病気の管理環境における短期曝露のための二環式ペプチドを開発するか、または循環において保持が強化された二環式ペプチドを開発することが必要な場合があり、したがって、慢性病態の管理により最適である。望ましい血漿半減期を推進する他の要因は、最大限の治療効率のための持続的な曝露の要件と薬剤の持続的な曝露に起因する付随する毒物学とを比較することである;および
− 選択性。本発明のある特定のペプチドリガンドは、他のネクチンよりも良好な選択性を実証する。
塩形態は本発明の範囲内であり、ペプチドリガンドに対する言及が前記リガンドの塩形態を含むことは理解されるであろう。
本明細書に記載のペプチドリガンドの改変誘導体は本発明の範囲内であることは理解されるであろう。そのような好適な改変誘導体の例は、N末端および/またはC末端修飾;1つまたは複数のアミノ酸残基の1つまたは複数の非天然アミノ酸残基による置換(例えば、1つまたは複数の極性アミノ酸残基の1つまたは複数の等配電子または等電子アミノ酸による置換;1つまたは複数の非極性アミノ酸残基の他の非天然等配電子または等電子アミノ酸による置換);スペーサー基の追加;1つまたは複数の酸化感受性アミノ酸残基の1つまたは複数の酸化耐性アミノ酸残基による置換;1つまたは複数のアミノ酸残基のアラニンによる置換、1つまたは複数のL−アミノ酸残基の1つまたは複数のD−アミノ酸残基による置換;二環式ペプチドリガンド内の1つまたは複数のアミド結合のN−アルキル化;1つまたは複数のペプチド結合の代理結合による置換;ペプチド骨格長の改変;1つまたは複数のアミノ酸残基のアルファ−炭素上の水素の別の化学基との置換、アミノ酸、例えばシステイン、リシン、グルタミン酸/アスパルテートおよびチロシンの好適なアミン、チオール、カルボン酸およびフェノール−反応性試薬を用いた前記アミノ酸を官能化するための改変、官能基化するのに好適な直交反応性を導入するアミノ酸、例えば、アルキンまたはアジド含有部分を用いた官能基化を可能にするアジドまたはアルキン基を有するアミノ酸の導入または置換えからそれぞれ選択される1つまたは複数の改変を含む。
− 高い親和性が達成されるように、疎水性効果を利用し、低い解離速度(off rates)をもたらす疎水性部分を組み込むこと;
− 長期のイオン性相互作用を利用し、速度を高め、高い親和性をもたらす荷電基を組み込むこと(例えば、Schreiber et al,Rapid,electrostatically assisted association of proteins(1996),Nature Struct.Biol.3,427−31を参照のこと);および
− エントロピーの損失が、標的が結合する際に最小であるように、例えばアミノ酸の側鎖を正確に拘束することによってペプチド中に追加の拘束を組み込み、エントロピーの損失が、標的が結合する際に最小であるように、骨格のねじれ角を拘束し、同じ理由で分子に追加の環化を導入すること(レビューに関しては、Gentilucci et al,Curr.Pharmaceutical Design,(2010),16,3185−203、およびNestor et al,Curr.Medicinal Chem(2009),16,4399−418を参照のこと);
のメカニズムを介して達成してもよい。
本発明は、本発明の全ての薬学的に許容される(放射性)同位体標識ペプチドリガンドを含み、1つまたは複数の原子が、同じ原子番号であるが、自然界で通常認められる原子質量または質量数と異なる原子質量または質量数を有する原子によって置き換えられており、金属キレート化基が結合している本発明のペプチドリガンド(「エフェクター」と称する)は、適切な(放射性)同位体および本発明のペプチドリガンドを保持していてもよく、ある特定の官能基は、適切な(放射性)同位体または同位体標識された官能基で共有結合的に置き換えられている。
1つの実施形態において、分子スキャフォールドは非芳香族分子スキャフォールドを含む。本明細書における「非芳香族分子スキャフォールド」への言及は、芳香族(すなわち不飽和)炭素環式または複素環式環系を含まない本明細書に記載の任意の分子スキャフォールドを指す。
本発明の更なる態様によれば、1つもしくは複数のエフェクターおよび/または官能基にコンジュゲートされた本明細書に記載のペプチドリガンドを含む薬物コンジュゲートが提供される。
本発明のペプチドは、標準的な技術と、それに続くインビトロでの分子スキャフォールドとの反応によって合成的に製造してもよい。これを行う場合、標準的な化学を使用してよい。これによって、更なる下流実感または検証のための溶解性の材料の迅速で大規模な規模な調製が可能になる。そのような方法は、従来の化学、例えばTimmermanら(上記を参照のこと)で開示されるものを使用して達成してもよい。
本発明の更なる態様によれば、ペプチドリガンドを含む医薬組成物または本明細書に記載の薬物コンジュゲートが、1つまたは複数の薬学的に許容される賦形剤と組み合わせて提供される。
処置されることになる特定の状態、または疾患に応じて、その状態を処置するために通常投与される追加の治療剤も、本発明の組成物に存在していてもよい。したがって、1つの実施形態において、医薬組成物は、1つまたは複数の治療剤を更に含む。特定の疾患または状態を処置するために通常投与される本明細書において使用する追加の治療剤は、「疾患、または状態、処置のために適切である」として公知である。
いくつかの実施形態において、1つまたは複数の他の治療剤は、ポリADPリボースポリメラーゼ(PARP)阻害剤である、いくつかの実施形態において、PARP阻害剤は、オラパリブ(Lynparza(登録商標)、AstraZeneca);ルカパリブ(Rubraca(登録商標)、Clovis Oncology);ニラパリブ(Zejula(登録商標)、Tesaro);ラゾパリブ(MDV3800/BMN 673/LT00673、Medivation/Pfizer/Biomarin);ベリパリブ(ABT−888、AbbVie);およびBGB−290(BeiGene,Inc.)から選択される。
いくつかの実施形態において、1つまたは複数の他の治療剤は免疫腫瘍学的薬剤である。本明細書において使用する「免疫腫瘍学的薬剤」という用語は、対象における免疫応答を強化する、刺激する、および/または上方制御するために効果的である薬剤を指す。いくつかの実施形態において、免疫腫瘍学的薬剤の本発明の化合物との投与は、がんの処置において相乗効果を有する。
いくつかの実施形態において、免疫腫瘍学的薬剤は、本明細書に記載の免疫チェックポイント阻害剤である。
本発明の二環式ペプチドは、ネクチン−4結合剤として特定の有用性を有する。
1,2,4−TriAz 3−(1,2,4−トリアゾール−1−イル)−アラニン
1Nal 1−ナフチルアラニン
2FuAla 2−フリルアラニン
2MePhe 2−メチル−フェニルアラニン
2Nal 2−ナフチルアラニン
2Pal 2−ピリジルアラニン
3,3−DPA 3,3−ジフェニルアラニン
3MePhe 3−メチル−フェニルアラニン
3Pal 3−ピリジルアラニン
4,4−BPA 4,4−ビフェニルアラニン
4,4−DFP 4,4−ジフルオロプロリン
4MePhe 4−メチル−フェニルアラニン
4Pal 4−ピリジルアラニン
4ThiAz ベータ−(4−チアゾリル)−アラニン
5FTrp 5−フルオロ−L−トリプトファン
Agb 2−アミノ−4−グアニジノ酪酸
Aib アミノイソ酪酸
AzaTrp アザトリプトファン
Aze アゼチジン
C5A シクロペンチルグリシン
Cha 3−シクロヘキシル−アラニン
Cpa シクロプロピルアラニン
Cya システイン酸
DOPA 3,4−ジヒドロキシ−フェニルアラニン
HArg ホモアルギニン
HGln ホモグルタミン
Hleu ホモロイシン
Hphe ホモフェニルアラニン
Hse(me) ホモセリン(Me)
HSer ホモセリン
HyP ヒドロキシプロリン
Lys(Ac) リシン(アセチル)
Met(O2) メチオニンスルホン
Nle ノルロイシン
Oic オクタヒドロインドールカルボン酸
Oxa オキサゾリジン−4−カルボン酸
pCoPhe パラ−カルボキシ−フェニルアラニン
PheOPhe 4−フェノキシ−フェニルアラニン
Phg フェニルグリシン
Pip ピペコリン酸
Pro(4NH) 4−アミノ−プロリン
tBuAla t−ブチル−アラニン
TetraZ テトラゾールアラニン
Thi チエニル−アラニン
THP(O) テトラヒドロピラン−4−プロパン酸
THP(SO2) ジオキソ−4−テトラヒドロチオピラニル酢酸
Trp(Me) メチルトリプトファン
ペプチド合成
ペプチド合成は、Peptide Instruments製のSymphonyペプチドシンセサイザーおよびMultiSynTech製のSyro IIシンセサイザーを使用したFmoc化学をベースにした。適切な側鎖保護基を有する標準的なFmoc−アミノ酸(Sigma、Merck)を用い、適用可能な標準的なカップリング条件をその都度使用し、続いて標準的な方法論を使用して脱保護した。
BCY8549の調製
分離条件:A相:H2O中の0.075%TFA、B相:MeCN
分離方法:18〜48〜55分、RT=53.5分
分離カラム:Luna 200×25mm 10μm、C18、110AおよびGemin150×30mm、C18、5μm、110A、接続部、50℃
溶解方法:DMF
分離純度:95%
BCY8234を固相合成によって合成した。
ペプチドを標準的なFmoc化学を使用して合成した。
1)DCMを、CTC樹脂(5mmol、4.3g、1.17mmol/g)およびFmoc−Cit−OH(2.0g、5mmol、1.0当量)を含む容器にN2バブリングしながら添加する。
2)DIEA(4.0当量)を滴加し、2時間混合する。
3)MeOH(5mL)を添加し、30分間混合する。
4)廃液し、DMFで5回洗浄する。
5)20%ピペリジン/DMFを添加し、30分間反応させる。
6)廃液し、DMFで5回洗浄する。
7)Fmoc−アミノ酸溶液を添加し、30秒混合し、次いで活性化緩衝液を添加し、約1時間N2バブリングする。
8)上記ステップ4から7を繰り返して以下のアミノ酸をカップリングする。
1)切断緩衝液(20%TFIP/80%DCM)を側鎖が保護されたペプチドを含むフラスコに室温で添加し、1時間2回撹拌する。
2)ろ過し、ろ液を収集する。
3)濃縮して溶媒を除去する。
4)粗製ペプチドを凍結乾燥して最終製品を得た(1.4g、収率85.0%)。
DCM(30mL)およびMeOH(15mL)中の化合物2(1.65g、5.01mmol、1.0当量)の溶液へ、EEDQ(2.48g、10.02mmol、2.0当量)および(4−アミノフェニル)メタノール(740.37mg、6.01mmol、1.2当量)を添加した。混合物を15℃で16時間撹拌した。LC−MSによって、化合物2が完全に消費され、所望のm/zを有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。TLCによって、化合物2が完全に消費され、多数の新規のスポットが形成されたことが示された。反応混合物を減圧下で濃縮し、溶媒を除去し、残渣を得た。残基を、フラッシュシリカゲルクロマトグラフィー(ISCO(登録商標);80 SepaFlash(登録商標)シリカフラッシュカラム、60mL/分で0〜15DCM/MeOH勾配の溶離剤)によって精製した。化合物3(1.3g、2.99mmol、収率59.72%)を黄色固形物として得た。
DMF(10mL)中の化合物3(1.3g、2.99mmol、1.0当量)の溶液へ、DIEA(2.32g、17.95mmol、3.13mL、6.0当量)およびビス(4−ニトロフェニル)炭酸塩(3.64g、11.97mmol、4.0当量)を添加した。混合物を15℃で1時間撹拌した。LC−MSによって、化合物3が完全に消費され、所望のm/zを有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。残渣をprep−HPLC(中性条件)によって精製した。化合物4(1.0g、1.67mmol、55.74%収率)を黄色固形物として得た。
DMF(5mL)中の化合物5(250.53mg、417.84μmol、1.5当量)の溶液へ、HOBt(56.46mg、417.84μmol、1.5当量)およびDIEA(108.01mg、835.68μmol、145.56μL、3.0当量)、MMAE(0.200g、278.56μmol、1.0当量)を添加した。混合物を35℃で12時間撹拌した。LC−MSによって、MMAEが完全に消費され、所望のm/zを有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。反応物は、prep−HPLC(中性条件)によって直接精製した。化合物5(0.180g、152.74μmol、54.83%収率)を黄色固形物として得た。
THF(5mL)およびH2O(5mL)中の、化合物5(0.170g、144.26μmol、1.0当量)の溶液へ、LiOH.H2O(12.11mg、288.51μmol、2.0当量)を添加した。混合物を15℃で1時間撹拌した。LC−MSによって、化合物5が完全に消費され、所望のm/zを有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。AcOHを使用してPH=7に調整し、THFを減圧下で除去し、残渣を得た。残渣をprep−HPLC(中性条件)によって精製した。化合物6(0.185g、粗製物)を黄色固形物として得た。
DMA(4mL)中の化合物6(0.100g、86.93μmol、1.0当量)の溶液へ、HOSu(10.00mg、86.93μmol、1.0当量)およびEDCI(16.66mg、86.93μmol、1.0当量)を添加した。NHSエステルが形成された後、β−Ala−BCY8234(525.98mg、173.85μmol、2.0当量)およびDIEA(33.70mg、260.78μmol、45.42μL、3.0当量)を添加した。混合物を15℃で4時間撹拌した。LC−MSによって、化合物6が完全に消費され、所望のm/zを有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。prep−HPLC(TFA条件)によって反応物を直接精製した。化合物BCY8549(0.0528g、12.15μmol、収率13.98%、95.70%純度)を白色固形物として得た。保持時間=11.48分。質量実測値=1386.4(M/3+H)
分離条件:A相:H2O中の0.075%TFA、B相:MeCN
分離方法:18〜48〜55分、RT=53.5分
分離カラム:Luna 200×25mm 10um、C18、110AおよびGemin150×30mm、C18、5um、110A、接続部、50℃
溶解方法:DMF
分離純度:95%
BCY8245の反応スキームを以下に示す:
化合物3を固相方法によって合成した。
DCM(10mL)およびMeOH(5mL)中の、化合物3(1.3g、3.23mmol、1.0当量)の溶液へ、EEDQ(1.60g、6.46mmol、2.0当量)および(4−アミノフェニル)メタノール(517.16mg、4.20mmol、1.3当量)を添加した。混合物を20℃で16時間撹拌した。LC−MSによって、化合物3が完全に消費され、所望のm/zを有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。溶媒を減圧下で除去した。残渣をフラッシュシリカゲルクロマトグラフィー(ISCO(登録商標);40g SepaFlash(登録商標)シリカフラッシュカラム、40mL/分で0〜15%DCM/MeOH勾配の溶離剤)によって精製した。化合物4(0.950g、1.87mmol、収率57.94%)を黄色固形物として得た。
DMF(5mL)中の化合物4(0.950g、1.87mmol、1.0当量)の溶液へ、DIEA(1.21g、9.36mmol、1.63mL、5.0当量)およびビス(4−ニトロフェニル)炭酸塩(2.28g、7.49mmol、4.0当量)を添加した。混合物を20℃で1時間撹拌した。LC−MSによって、化合物4が完全に消費され、所望のm/zを有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。反応物は、prep−HPLC(中性条件)によって直接精製した。化合物5(0.400g、594.64μmol、31.77%収率)を白色固形物として得た。
DMF(5mL)中の化合物5(0.200g、297.32μmol、1.0当量)の溶液へ、HOBt(52.23mg、386.51μmol、1.3当量)およびDIEA(115.28mg、891.95μmol、155.36μL、3.0当量)、MMAE(192.12mg、267.59μmol、0.9当量)を添加した。混合物を20℃で16時間撹拌した。LC−MSによって、化合物5が完全に消費され、所望のm/zを有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。反応物は、prep−HPLC(中性条件)によって直接精製した。化合物6(0.160g、127.84μmol、43.00%収率)を白色固形物として得た。
THF(3mL)およびH2O(3mL)中の、化合物6(0.160g、127.84μmol、1.0当量)の溶液へ、LiOH.H2O(26.82mg、639.21μmol、5.0当量)を添加した。混合物を20℃で1時間撹拌した。LC−MSによって、化合物6が完全に消費され、所望のm/zを有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。THFを減圧下で除去し、AcOHによってpH=7に調整し、混合物を凍結乾燥した。化合物7(0.130g、105.05μmol、82.17%収率)を白色固形物として得た。
DMA(6mL)およびDCM(2mL)中の、化合物7(36.27mg、315.15μmol、3.0当量)の溶液へ、EDCI(60.41mg、315.15μmol、3.0当量)を添加した。混合物を15℃で3時間撹拌した。LC−MSによって、化合物7が完全に消費され、所望のm/zを有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。DCMを減圧下で除去した。反応物は、prep−HPLC(中性条件)によって直接精製した。化合物8(0.095g、71.18μmol、67.76%収率)を白色固形物として得た。
DMA(4mL)中のBCY8234(66.41mg、22.48μmol、1.0当量)の溶液へ、DIEA(8.72mg、67.44μmol、11.75μL、3.0当量)および化合物8(0.030g、22.48μmol、1.0当量)を添加した。混合物を20℃で16時間撹拌した。LC−MSによって、BCY8234が完全に消費され、所望のm/zまたは所望の質量を有する1つの主要ピークが検出されたことが示された。prep−HPLC(TFA条件)によって反応物を直接精製した。化合物BCY8245(0.0427g、10.16μmol、45.19%収率、99.30%純度)を白色固形物として得た。保持時間=11,.7分。質量実測値=1043.9(M/4+H)
ネクチン−4直接結合アッセイ
ヒトネクチン−4に対する本発明のペプチド親和性(Ki)を、国際公開第2016/067035号で開示される方法に従って蛍光偏光アッセイを使用して判定した。蛍光タグ(フルオロセイン、SIGMAまたはAlexa Fluor488(商標)、Fisher Scientificのいずれか)を有する本発明のペプチドを、0.01%tween20を含むPBS中で、または100mM NaClおよび0.01%tween pH7.4を含む50mM HEPES中で(両方ともアッセイ緩衝液と称する)2.5nMに希釈した。これをペプチドと同じアッセイ緩衝液中でタンパク質滴定と組み合わせ、壁および底部が黒い低結合低体積384ウェルプレート中で、総体積が25μLの、典型的には、アッセイ緩衝液5μL、タンパク質10μL、そして蛍光ペプチド10μLの1nMのペプチドを得た。2倍段階希釈(One in two serial dilutions)を使用して、公知の高親和性バインダーに関する500nMから低親和性バインダーに関する10μMまでの範囲の、最高濃度を含む12段階の異なる濃度を得て選択アッセイを行った。測定は、485nmで励起し、520nmで平行および垂直発光を検出する「FP 485 520520」光学モジュールを備えたBMG PHERAstar FSで行った。PHERAstar FSを、25℃、1ウェル当たり200フラッシュ、0.1秒の位置決め遅延で設定し、各ウェルを5から10分間隔で60分間測定した。ウェル中にタンパク質が存在しない場合は、分析のために使用した増加を60分の終わりに各トレーサーに関して判定した。データをSystat Sigmaplot バージョン 12.0を使用して分析した。mP値をユーザ定義される二次方程式にフィットさせ、Kd値:f=ymin+(ymax−ymin)/Lig×((x+Lig+Kd)/2−sqrt((((x+Lig+Kd)/2)^2)−(Lig×x)))を生成した。「Lig」は、使用したトレーサーの濃度の定義値であった。
蛍光タグを有さないペプチドは、ACPFGCHTDWSWPIWCA−Sar6−K(Fl)(配列番号2)および(Kd=5nM−上記のプロトコールを使用して判定した)と競合させて試験を行った。ペプチドを、直接結合アッセイに記載されているように最大5%のDMSOを用いてアッセイ緩衝液中で適切な濃度に希釈し、次いで2倍に連続希釈した。希釈したペプチド5μLをプレートに添加し、続いてヒトネクチン−4 10μL、次いで蛍光ペプチド10μLを添加した。測定は、直接結合アッセイと同様に行ったが、増加を判定してから第1の測定を行った。データ分析は、mP値がユーザ定義の3次方程式にフィットした場合にSystat Sigmaplot バージョン12.0で行い、Ki値:
f=ymin+(ymax−ymin)/Lig*((Lig*((2*((Klig+Kcomp+Lig+Comp−Prot*c)^2−3*(Kcomp*(Lig−Prot*c)+Klig*(Comp−Prot*c)+Klig*Kcomp))^0.5*COS(ARCCOS((−2*(Klig+Kcomp+Lig+Comp−Prot*c)^3+9*(Klig+Kcomp+Lig+Comp−Prot*c)*(Kcomp*(Lig−Prot*c)+Klig*(Comp−Prot*c)+Klig*Kcomp)−27*(−1*Klig*Kcomp*Prot*c))/(2*((((Klig+Kcomp+Lig+Comp−Prot*c)^2−3*(Kcomp*(Lig−Prot*c)+Klig*(Comp−Prot*c)+Klig*Kcomp))^3)^0.5)))/3))−(Klig+Kcomp+Lig+Comp−Prot*c)))/((3*Klig)+((2*((Klig+Kcomp+Lig+Comp−Prot*c)^2−3*(Kcomp*(Lig−Prot*c)+Klig*(Comp−Prot*c)+Klig*Kcomp))^0.5*COS(ARCCOS((−2*(Klig+Kcomp+Lig+Comp−Prot*c)^3+9*(Klig+Kcomp+Lig+Comp−Prot*c)*(Kcomp*(Lig−Prot*c)+Klig*(Comp−Prot*c)+Klig*Kcomp)−27*(−1*Klig*Kcomp*Prot*c))/(2*((((Klig+Kcomp+Lig+Comp−Prot*c)^2−3*(Kcomp*(Lig−Prot*c)+Klig*(Comp−Prot*c)+Klig*Kcomp))^3)^0.5)))/3))−(Klig+Kcomp+Lig+Comp−Prot*c))))
を生成した。「Lig」、「KLig」および「Prot」は全て、蛍光ペプチド濃度、蛍光ペプチドのKdおよびネクチン濃度にそれぞれ関連する定義値であった。
Biacore実験を行い、ヒトネクチン−4タンパク質(Charles Riverから入手した)に結合する単量体ペプチドのka(M−1s−1)、kd(s−1)、KD(nM)値を判定した。
実施例1から5および9において、以下の方法論を各研究に用いた:
試験および陽性対照の物品
(i)観察
研究における動物の取り扱い、世話および処置と関連する全ての手順は、Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care(AAALAC)のガイドラインに従い、WuXi AppTecのInstitutional Animal Care and Use Committee(IACUC)に承認されたガイドラインに従って行った。所定のモニタリングの時点で、動物を、正常行動、例えば運動、餌および水の消費(見た目のみによる)、体重増加/減少、眼/毛髪のつやの消失に対する腫瘍成長および処置の任意の影響、ならびにプロトコールにおいて規定されるようなその他の異常な影響に関して毎日チェックした。死滅および観察された臨床的徴候を、各サブセット内の動物の数に基づいて記録した。
主要なエンドポイントは、腫瘍の成長を遅らせることができるかどうかまたはマウスを治癒させることができるかどうかを確認することであった。腫瘍体積を、キャリパーを使用して2次元で週に3回測定し、体積は、式:V=0.5a×b2(式中、aとbはそれぞれ腫瘍の長径と短径である)を使用してmm3で示した。次いで、腫瘍サイズを使用してT/C値を算出した。T/C値(パーセント)は、抗腫瘍有効性の指標であり;TおよびCはそれぞれ、所与の日における処置群および対照群の平均体積である。TGIを、式:TGI(%)=[1−(Ti−T0)/(Vi−V0)]×100を使用して各群に関して計算し;Tiは、所与の日における処置群の平均腫瘍体積であり、T0は、処置開始日における処置群の平均腫瘍体積であり、Viは、Tiと同じ日におけるビヒクル対照群の平均腫瘍体積であり、V0は、処置開始日におけるビヒクル群の平均腫瘍体積であった。
平均および平均標準誤差(SEM)を含む要約統計量を、各時点における各基の腫瘍体積に関して提供する。
<Balb/cヌードマウスのNCI−H292異種移植(非小細胞肺がん(NSCLC)モデル)の処置におけるBCY8245のインビボ有効性試験>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのNCI−H292異種移植モデルの処置におけるBCY8245のインビボ抗腫瘍有効性を評価することであった。
3.1動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ(Mus Musculus)
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:BCY8245に関してはマウス18匹+スペア
動物供給業者:Shanghai LC Laboratory Animal Co.,LTD
マウスは、各ケージに3匹の動物を入れ、一定の温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
3.2試験および陽性対照の物品
4.1 細胞培養物
NCI−H292腫瘍細胞は、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加した培地中、5%CO2雰囲気中37℃で維持することになる。腫瘍細胞は、週に2回定期的に継代培養されることになる。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種することになる。
各マウスの右腹部に、PBS0.2ml中のNCI−H292腫瘍細胞(10×106)を皮下接種し、腫瘍を発生させることになる。平均腫瘍体積がおよそ158〜406mm3に達した場合に動物を無作為化することになり、処置を開始することになる。被検物品の投与および各群における動物数を以下の実験デザインの表に示す。
研究の終わりに、血漿を、最後に投薬してから5分、15分、30分、60分および120分後に採取した。
5.1 腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図1および2に示す。
NCI−H292異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を、以下の表に示す。
14日目のNCI−H292異種移植モデルにおけるBCY8245に関する腫瘍成長阻害率を、腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、NCI−H292異種移植モデルにおけるBCY8245の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を、図1および2ならびに表4から7に示す。
<CB17−SCIDマウスのHT−1376異種移植(膀胱がんモデル)におけるBCY7825、BCY8245、BCY8253、BCY8254およびBCY8255のインビボ有効性試験>
1.研究の目的
研究の目的は、CB17−SCIDマウスのHT−1376異種移植の処置における被検物品のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1 動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:CB17−SCID
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:21〜41のマウス+スペア
動物供給業者:Shanghai LC Laboratory Animal Co.,LTD。
マウスは、各ケージに3または5匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1 細胞培養物
HT−1376腫瘍細胞を、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加したEMEM培地中、5%CO2雰囲気中37℃で単層培養物としてインビトロで維持した。腫瘍細胞を、トリプシン−EDTA処置によって週に2回定期的に継代培養した。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種した。
各マウスの右腹部に、PBS0.2ml中のHT−1376腫瘍細胞(5×106)をマトリゲル(1:1)と共に皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が153〜164mm3に達した場合に動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
研究の終わりに、2群の血漿を、最後に投薬してから5分、15分、30分、60分および120分後に採取した。6群の血漿を、最後に投薬してから5分、15分、30分、60分および120分後に採取した。6群の腫瘍を、最後に投薬してから2時間後に採取した。4および5群の腫瘍は、最後に投薬してから2時間後に採取した。
5.1 腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図3および4に示す。
HT−1376異種移植片を有する雌CB17−SCIDマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表8および9に示す。
HT−1376異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後21日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
1および2群
本研究において、HT−1376異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を、図3および表8および10に示す。
本研究において、HT−1376異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図4および表9および11に示す。
<Balb/cヌードマウスのPanc2.13異種移植(膵臓がんモデル)の処置におけるBCY8245のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのPanc2.13異種移植の処置における被検物品のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1動物および室内条件
3.1.1動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:41匹のマウス+スペア
動物供給業者:Shanghai LC Laboratory Animal Co.,LTD。
マウスは、各ケージに3または5匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1 細胞培養物
Panc2.13腫瘍細胞は、15%熱不活性化ウシ胎仔血清および10単位/mlヒト組換えインスリンを添加したRMPI1640培地中、5%CO2雰囲気中37℃で維持されることになる。腫瘍細胞は、週に2回定期的に継代培養されることになる。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種することになる。
各マウスの右腹部に、Panc2.13腫瘍細胞(5×106)をPBS0.2ml中のマトリゲル(1:1)と共に皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が149mm3に達した場合に41匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
研究の終わりに、全ての群の腫瘍を、最後に投薬してから2時間後に採取した。
5.1 腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図5に示す。
Panc2.13異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表12に示す。
Panc2.13異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後14日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、Panc2.13異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を、図5および表12および13に示す。
<Balb/cヌードマウスのMDA−MB−468異種移植(乳がんモデル)の処置におけるBCY8245のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのMDA−MB−468異種移植の処置におけるBCY8245のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1動物および室内条件
3.1.1動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:41匹のマウス+スペア
動物供給業者:Shanghai LC Laboratory Animal Co.,LTD。
マウスは、各ケージに3または5匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1 細胞培養物
腫瘍細胞を、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加したライボビッツL−15培地中、5%CO2雰囲気中37℃で維持した。腫瘍細胞を週に2回定期的に継代培養した。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種した。
各マウスの右腹部に、50%マトリゲルを添加したPBS0.2ml中のMDA−MB−468腫瘍細胞(10×106)を皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が196mm3に達した場合に41匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
研究の21日目に、2群の血漿を、最後に投薬してから5分、15分、30分、60分および120分後に採取した。1および3群の腫瘍を、最後に投薬してから2時間後に採取した。4群の動物は一切投薬せずに更に21日間の実行を維持し、これらの群の腫瘍を42日目に採取した。
5.1 腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図6に示す。
MDA−MB−468異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表14および15に示す。
MDA−MB−468異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後21日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、MDA−MB−468異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図6および表14から16に示す。
<Balb/cヌードマウスのNCI−H292異種移植(非小細胞肺がん(NSCLC)モデル)の処置におけるBCY8549のインビボ有効性試験>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのNCI−H292異種移植の処置におけるBCY8549のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:43匹のマウス+スペア
動物供給業者:Shanghai Lingchang Biotechnology Experimental Animal Co.Ltd
3.1.2.室内条件
マウスは、各ケージに3または4匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1 細胞培養物
NCI−H292腫瘍細胞を、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加したRPMI−1640培地中、5%CO2雰囲気中37℃で単層培養物としてインビトロで維持した。腫瘍細胞を、トリプシン−EDTA処置によって週に2回継代培養した。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種した。
各マウスの右腹部に、PBS0.2ml中のNCI−H292腫瘍細胞(10×106)を皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が168mm3に達した場合に43匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
研究の終わりに、2群のマウスの血漿を、最後に投薬してから5分、15分、30分、1時間および2時間後に採取した。
5.1 腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図7に示す。
NCI−H292異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表17に示す。
NCI−H292異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後14日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、NCI−H292異種移植モデルにおけるBCYの治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図7および表17および18に示す。
<複数の腫瘍タイプからのネクチン−4に関するコピー数変化(CNV)と遺伝子発現との間の関連性の調査>
<方法>
1.cBioPortal(http://www.cbioportal.org/)において全ての研究を選択し、ネクチン4に関して探索する。
(a)暫定研究を除去する。
(b)重複サンプルを含む研究の選択を解除し、サンプルの偏りを阻止する(cBioPortalの警告に基づいて)−これが任意である場合、PanCancer研究を常に維持する。
(c)研究を選択し、分析を行う(表19)。
3.CNVがネクチン−4に関するmRNA発現における変化と統計的に有意に関連しているかどうかを試験する(log2は適用しない)。
(a)GraphPad Prism(7.04)およびR/Rstudioでノンパラメトリッククラスカル−ウォリス検定を実行する(有意性に関する閾値:p<0.01)。
(i)GraphPad Prism:列テーブルを設定し、マッチングまたはペアリングなしでノンパラメトリック検定を実行し、ガウス分布は仮定しない。
(ii)Rにおいて使用するパッケージ:
1.XLConnect
2.dplyr
3.Kruskal−Wallis Rank Sum Test:Kruskal.test
4.ダン検定を使用してR/Rstudioで(例え群内でn=1であっても全ての可能な比較を含む)多重比較のために調整する(有意性に関する閾値:p<0.025)。
(a)多重比較方法を含むダン検定=「ボンフェローニ」
結果を以下の表20に示す。ネクチン−4に関する腫瘍CNVとmRNA遺伝子発現データの両方を報告する41の公的に利用可能なTCGAデータセットにわたって、ネクチン−4のコピー数の増加(2〜3コピー)または増幅(>3コピー)のいずれかで症例が報告されている場合、多くの指標が存在する。更に、別の症例では、浅い欠損(<2コピー)を有することが立証されており、1コピー超の損失または2対立遺伝子のネクチン−4損失と一致する深い欠損を含む腫瘍の稀な報告を伴う。増幅が最も頻繁に検出された指標は、乳がん(10〜22%)、膀胱がん(20%)、肺がん(5〜7%)および肝細胞がん腫(8%)であった。コピー数の損失が最も多い指標は、腎臓嫌色素体(77%)、腎明細胞がん腫(RCC)(6.5%)、肉腫(10%)、結腸がん(10%)、頭頚部がん(7%)および肺扁平上皮がんであった。これらのデータは、腫瘍の指標内におよびそれにわたってさまざまなCNVが存在し、異なる適応症にわたってコピー数パターンに多様性があることを示す。
a)深い欠失;
b)浅い欠失;
c)2倍体;
d)増加;または
e)増幅
次いで、クラスカル−ウォリス検定を行い、1クラス当たりのmRNA発現値の分布がクラス間で異なる(P<0.01)かどうかを検出した。P<0.01のこれらのTCGAデータセットに関して、どのクラスが互いに異なっていたかを同定するために、算出された調整済みP値を有するZ統計値を算出することによって事後検定を行った(ボンフェローニ)。説明を簡単にするために、ペアワイズ比較対2倍体を指標ごとにレビューした(ただし全てのペアワイズP値を算出した)。18/41TCGA研究は、増加対2倍体および/または増幅対2倍体の比較に関してクラスカル−ウォリスP<0.01およびボンフェローニP<0.025を満たし、ネクチン−4mRNA発現の増加とネクチン−4コピー数の増加との関連を示す。これらの18の研究は、14の独立した腫瘍組織構造:乳房、子宮、膀胱、肺腺がん、肺扁平上皮、頸部、頭頚部、膵臓、甲状腺、直腸結腸、胸腺腫、肉腫、腎明細胞がん腫(RCC)および胃を表す。
<6つの細胞株におけるネクチン−4の発現分析>
1.研究の目的
研究の目的は、フローサイトメトリーによって、2つの乳がん(T−47D、MDA−MB−468)、3つの肺がん(NCI−H292、NCI−H322、NCI−H526)および1つの線維肉腫(HT−1080)細胞株を含む6つの細胞株におけるネクチン−4の発現を評価することであった。
3.1.サンプル
細胞株リスト
フローサイトメトリー分析のための抗体およびキット
Eppendorf遠心分離機5810R
BD FACS Cantoフローサイトメーター(BD)
4.1.サンプル採取
指数増殖期において成長している細胞株を回収する。トリパンブルー染色を用いた血球計算器によって細胞を計数する。細胞を400×g、4℃で5分間遠心分離し、細胞を染色緩衝液で2回洗浄し、染色緩衝液中で細胞を懸濁し、1×107/mLにする。
1)96ウェルVプレートの各ウェルに細胞懸濁液100μLを分注した。
2)アイソタイプ対照または抗体を懸濁細胞に添加し、暗室中4℃で30分間インキュベートした。
3)400×g、4℃で5分間遠心分離することによって細胞を2回洗浄し、上清を廃棄した。
4)固定緩衝液100μLを用いて細胞を再懸濁し、暗室中、4℃で30分間インキュベートした。
5)300×g、4℃で5分間細胞を遠心分離することによって2回洗浄し、上清を除去した。
6)細胞染色緩衝液400μL中に細胞を再懸濁した。
7)FlowJo V10ソフトウェアを使用してFACSデータを分析した。
全てのFACSデータを、Flowjo V10ソフトウェアおよびGraphPad PrismまたはExcelソフトウェアによって分析した。
5.1.パネルに関するゲート戦略
ネクチン−4に関するゲーティング戦略を図8〜11に示す。
5.2.1.細胞株の生存率
細胞株の生存率は以下の通りであった。
6つの細胞株におけるネクチン−4の陽性発現およびMFIは、リストの通りであった。
乳がんT−47D(99.0%)、MDA−MB−468(99.0%)および肺がんNCI−H292(97.9%)、NCI−H322(99.1%)においてネクチン−4の高発現が認められた。NCI−H526およびHT−1080では、ネクチン−4の発現は認められなかった。
<フローサイトメトリーによる9つのCDX細胞株におけるネクチン−4の発現分析>
1.研究の目的
プロジェクトの目的は、1つの乳がん(MDA−MB−468)、4つの肺がん(NCI−H292、NCI−H358、NCI−H526、A549)、1つの膵臓がん(Panc02.13)、2つの直腸結腸がん(HCT−116、HT−29)および1つの膀胱がん(HT1376)細胞株を含む9つの細胞株において、ネクチン−4(PVRL−4)の表面発現を評価することである。
9つの細胞株におけるFCMのためのパネル
3.1サンプル
細胞株リスト
1)DPBS(Corning、21−031−CV)
2)0.25%トリプシン(invitrogen−25200072)
3)染色緩衝液(eBioscience、00−4222)
4)固定緩衝液(BD、554655)
5)抗体
Eppendorf遠心分離機5810R
BD FACS Cantoフローサイトメーター(BD)
4.1細胞培養物
細胞の解凍
1)凍結バイアルを70%アルコールで洗浄し、37℃の水浴中でバイアルを素早く解凍した。
2)細胞懸濁液をおよそ1000rpmで5分間遠心分離し、上清を除去し、予め加温した培地をフラスコに添加した。
3)培養フラスコを、37℃の5%CO2インキュベーターでインキュベートした。
1)37℃の水浴中で培地およびトリプシンを加温した。
2)培養培地を除去し、細胞層をDPBSですすいだ。
3)0.25%トリプシン溶液5mLをフラスコに添加し、トリプシンを培地5mLで希釈した。
4)細胞懸濁液を1000rpmで5分間遠心分離した。
5)新鮮な培地15mLを添加し、細胞を穏やかにピペッティングすることによって再懸濁した。
6)適切な細胞懸濁液を新規の培養フラスコに添加した。
7)培養フラスコを37℃の5%CO2インキュベーターでインキュベートした。
指数増殖期において成長している細胞株を採取した。トリパンブルー染色を用いて細胞を計数した。細胞を400×g、4℃で5分間遠心分離し、細胞を染色緩衝液で2回洗浄し、細胞を染色緩衝液中で5×106/mLに懸濁した。
96ウェルVプレートの各ウェルに細胞懸濁液100μLを分注した。アイソタイプ対照または抗体を懸濁細胞に添加し、暗室中4℃で30分間インキュベートした。細胞を、400×g、4℃で5分間遠心分離することによって2回洗浄し、上清を廃棄した。細胞を染色緩衝液300μL中に再懸濁した。Flow Jo V10ソフトウェアを使用してFACSデータを分析した。
全てのFACSデータを、Flow Jo V10ソフトウェアおよびGraphPad PrismまたはExcelソフトウェアによって分析した。
5.1.パネルに関するゲート戦略
ネクチン−4に関するゲーティング戦略を図12〜16に示す。
9つの細胞株におけるネクチン−4の陽性発現およびMFIはリストの通りであった。
膀胱がんHT−1376(92.4%)、乳がんMDA−MB−468(97.1%)および肺がんNCI−H358(90.1%)においてネクチン−4の高発現が認められた。ネクチン−4の中程度の発現が、HT−29(40.0%)、NCI−H292(71.1%)およびPanc02.13(51.9%)において認められた。HCT−116、A549およびNCI−526においてネクチン−4の発現は認められなかった。このデータは、有効性研究のためのモデル選択をガイドするために使用されるであろう。
インビボ有効性研究
[実施例9.1]
<Balb/cヌードマウスのA549異種移植の処置における被検物品のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのA549異種移植の処置における被検物品のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:41匹のマウス+スペア
マウスは、各ケージに3または5匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1.細胞培養物
A549腫瘍細胞を、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加したF−12K培地中、5%CO2雰囲気中37℃で単層培養物としてインビトロで維持した。腫瘍細胞を、トリプシン−EDTA処置によって週に2回定期的に継代培養した。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種した。
各マウスの右腹部に、PBS0.2ml中のA549腫瘍細胞(5×106)を皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が158mm3に達した場合に41匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
4.3.被検物品製剤の調製
研究の終わりに、全ての群の腫瘍を、最後に投薬してから2時間後に採取した。
5.1.腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図17に示す。
5.2.腫瘍体積トレース
A549異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表21に示す。
A549異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後14日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、A549異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図17および表21および22に示す。
<Balb/cヌードマウスのHCT116異種移植の処置における被検物品のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのHCT116異種移植の処置における被検物品のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1.動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:41匹のマウス+スペア
マウスは、各ケージに3または5匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1.細胞培養物
HCT116細胞を、ウシ胎仔血清を添加した10%熱不活性化培地中、5%CO2雰囲気中37℃で維持した。腫瘍細胞を、週に2回定期的に継代培養した。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種した。
各マウスの右腹部に、PBS0.2ml中のHCT116腫瘍細胞(5.0×106)を皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が166mm3に達した場合に41匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
14日目の研究の終わりに、1および2群からの腫瘍をFFPEのために採取した。4群に関しては、血漿を投薬してから5分、15分、30分、60分および120分後に採取した。腫瘍も採取し、−80℃で保管した。
5.1.腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図18に示す。
HCT116異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表23に示す。
HCT116異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後14日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、HCT116異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図18および表23および24に示す。
<CB17−SCIDマウスのHT−1376異種移植の処置における被検物品のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、CB17−SCIDマウスのHT−1376異種移植の処置における被検物品のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:CB17−SCID
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:41匹のマウス+スペア
マウスは、各ケージに3または5匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1細胞培養物
HT−1376腫瘍細胞は、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加したEMEM培地中、5%CO2雰囲気中37℃で維持されることになる。腫瘍細胞は、週に2回定期的に継代培養されることになる。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種することになる。
各マウスの右腹部に、PBS0.2ml中のHT−1376腫瘍細胞(5×106)をマトリゲル(1:1)と共に皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が153mm3に達した場合に41匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
研究の終わりに、4群の血漿を、最後に投薬してから5分、15分、30分、60分および120分後に採取した。4群の腫瘍を最後に投薬してから2時間後に採取した。1、2および3群の腫瘍は、最後に投薬してから2時間後に採取した。
5.1.腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図19に示す。
HT−1376異種移植片を有する雌CB17−SCIDマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表25に示す。
HT−1376異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後14日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、HT−1376異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図19および表25および26に示す。
<Balb/cヌードマウスのMDA−MB−468異種移植の処置における被検物品のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのMDA−MB−468異種移植の処置における被検物品のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1.動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:41匹のマウス+スペア
マウスは、各ケージに3または5匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1.細胞培養物
腫瘍細胞を、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加したライボビッツL−15培地中、5%CO2雰囲気中37℃で維持した。腫瘍細胞を週に2回定期的に継代培養した。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種した。
各マウスの右腹部に、50%マトリゲルを添加した、PBS0.2ml中のMDA−MB−468腫瘍細胞(10×106)を皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が196mm3に達した場合に41匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
研究の21日目に、2群の血漿を、最後に投薬してから5分、15分、30分、60分および120分後に採取した。1および3群の腫瘍を、最後に投薬してから2時間後に採取した。4群の動物は、一切投薬せずに更に21日間の実行を維持し、これらの群の腫瘍を42日目に採取した。
5.1.腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図20に示す。
MDA−MB−468異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表27および28に示す。
MDA−MB−468異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後21日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、MDA−MB−468異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図20および表27から29に示す。
<Balb/cヌードマウスのNCI−H292異種移植の処置における被検物品のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのNCI−H292異種移植の処置における被検物品のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1.動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:41匹のマウス+スペア
マウスは、各ケージに3または5匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1.細胞培養物
NCI−H292腫瘍細胞を、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加したRPMI−1640培地中、5%CO2雰囲気中37℃で、単層培養物としてインビトロで維持した。腫瘍細胞を、トリプシン−EDTA処置によって週に2回定期的に継代培養した。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種した。
各マウスの右腹部に、PBS0.2ml中のNCI−H292腫瘍細胞(10×106)を皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が162mm3に達した場合に41匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
研究の終わりに、全ての群の腫瘍を、最後に投薬してから2時間後に採取した。
5.1.腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図21に示す。
NCI−H292異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表30に示す。
NCI−H292異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後14日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、NCI−H292異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図21および表30および31に示す。
<Balb/cヌードマウスのNCI−H526異種移植の処置における被検物品のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのNCI−H526異種移植の処置における被検物品のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1.動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:21匹のマウス+スペア
マウスは、各ケージに3匹の動物を入れ、一定の温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1.細胞培養物
NCI−H526細胞を、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加した培地中、5%CO2雰囲気中37℃で維持した。腫瘍細胞を週に2回定期的に継代培養した。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種した。
各マウスの右腹部に、PBS0.2ml中のNCI−H526腫瘍細胞(5.0×106)を皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が181mm3に達した場合に21匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
14日目の研究の終わりに、全ての腫瘍をFFPEのために採取した。
5.1.腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図22に示す。
NCI−H526異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表32に示す。
NCI−H526異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後14日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、NCI−H526異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図22および表32および33に示す。
<ヌードマウスのPanc2.13異種移植Balb/cの処置における被検物品のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのPanc2.13異種移植の処置における被検物品のインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1.動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:41匹のマウス+スペア
マウスは、各ケージに3または5匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1.細胞培養物
Panc2.13腫瘍細胞は、15%熱不活性化ウシ胎仔血清および10単位/mlヒト組換えインスリンを添加したRMPI1640培地中、5%CO2雰囲気中37℃で維持されることになる。腫瘍細胞は、週に2回定期的に継代培養されることになる。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種することになる。
各マウスの右腹部に、PBS0.2ml中のPanc2.13腫瘍細胞(5×106)をマトリゲル(1:1)と共に皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が149mm3に達した場合に41匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
研究の終わりに、全ての群の腫瘍を、最後に投薬してから2時間後に採取した。
5.1.腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図23に示す。
Panc2.13異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表34に示す。
Panc2.13異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後14日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、Panc2.13異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図23および表34および35に示す。
<Balb/cヌードマウスのMDA−MB−468異種移植の処置における被検物品のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのMDA−MB−468異種移植の処置におけるBCY8245およびBCY8245とBCY8234との組合せのインビボ抗腫瘍有効性を評価し、標的結合が最適な有効性を果たすことになる役割を判定することである。
3.1.動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:36匹のマウス+スペア
マウスは、各ケージに4匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1.細胞培養物
腫瘍細胞を、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加したライボビッツL−15培地中、空気中の0%CO2雰囲気中37℃で維持した。腫瘍細胞を週に2回定期的に継代培養した。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種した。
各マウスの右腹部に、50%マトリゲルを添加した、PBS0.2ml中のMDA−MB−468腫瘍細胞(10×106)を皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が186mm3に達した場合に36匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
研究の21日目に、5および6群の腫瘍をFFPEのために採取した。研究の終わりに、3群の腫瘍をFFPEのために採取した。
5.1.腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図24に示す。
MDA−MB−468異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表36から38に示す。
MDA−MB−468異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後21日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、MDA−MB−468異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図24および表36から39に示す。
<Balb/cヌードマウスのMDA−MB−468異種移植の処置における被検物品のインビボ有効性研究>
1.研究の目的
研究の目的は、Balb/cヌードマウスのMDA−MB−468異種移植の処置における、BCY8245単独またはBCY8234との組合せのインビボ抗腫瘍有効性を評価することである。
3.1動物および室内条件
3.1.1.動物
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18〜22g
動物数:20匹のマウス+スペア
マウスは、各ケージに5匹の動物を入れ、一定な温度および湿度で個々の換気ケージ中で維持した。
・温度:20〜26℃
・湿度40〜70%
ケージ:ポリカーボネート製。サイズは、300mm×180mm×150mmである。床敷材料はトウモロコシの穂軸であり、これは週に2回交換する。
飼料:動物は、研究期間全体を通して、照射滅菌された乾燥顆粒餌を自由に摂取できた。
水:動物は滅菌飲料水を自由に摂取できた。
ケージの同定:各ケージに関する同定ラベルには、動物数、性別、系統、受入日、処置、研究番号、群番号および処置開始日の情報が含まれていた。
動物の同定:動物は耳にコードを付けることによってマークした。
4.1細胞培養物
腫瘍細胞を、10%熱不活性化ウシ胎仔血清を添加したライボビッツL−15培地中、空気中の0%CO2雰囲気中37℃で維持した。腫瘍細胞を週に2回定期的に継代培養した。指数増殖期に増殖している細胞を採取し、計数し、腫瘍を接種した。
各マウスの右腹部に、50%マトリゲルを添加した、PBS0.2ml中のMDA−MB−468腫瘍細胞(10×106)を皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が464mm3に達した場合に20匹の動物を無作為化した。被検物品の投与および各群における動物数を実験デザインの表に示した。
研究の終わりに、3群の腫瘍をFFPEのために採取した。
5.1.腫瘍成長曲線
腫瘍成長曲線を図25に示す。
MDA−MB−468異種移植片を有する雌Balb/cヌードマウスにおける経時的な平均腫瘍体積を表40から42に示す。
MDA−MB−468異種移植モデルにおける被検物品に関する腫瘍成長阻害率を、処置開始後28日目に腫瘍体積測定に基づいて算出した。
本研究において、MDA−MB−468異種移植モデルにおける被検物品の治療的有効性を評価した。さまざまな時点における全ての処置群の測定された腫瘍体積を図25および表40から43に示す。
MDA−MB−468異種移植動物に、3mg/kgのBCY8245(BT8009)を注射した。さまざまな時点において動物を安楽死させ、血漿および腫瘍を採取し、急速冷凍した。サンプルをMMAEに関して分析した。BT8009(BCY8245)の血漿レベルは、過去のPK研究からのものであった。血漿におけるMMAE濃度、腫瘍におけるMMAE、および血漿におけるBT8009を図33に示す。MMAEは、血漿よりも腫瘍において長く保持され、全身性の曝露は腫瘍の曝露よりも有意に低いという仮説を支持した。
HCSアッセイを、ネクチン−4BDC結合研究において使用した。細胞を被検薬剤とインキュベートし、次いで洗浄した。検出は、MMAEに対する蛍光性抗体によるものであった。MDA−MB−468細胞は、中程度のネクチン−4発現を示し、20000個の細胞の良好な画像が得られる。NCI−H292細胞は、このアッセイにおいて低発現を示し、MMAEの検出は20000個の細胞でさえ不十分であった。MDA−MB−468細胞株に対するHCSデータを図34および表44に示す。
<肺がんの2つのPDXモデルにおけるBCY8245のインビボ有効性>
目的
扁平上皮非小細胞がんおよび腺がん(両方とも非小細胞がん腫)のPDXモデルにおけるBCY8245の有効性を評価することである。
種:ハツカネズミ
系統:Balb/cヌード
年齢:6〜8週
性別:雌
体重:18−22
BCY8245およびネクチン−4ADCまたはBCY8781
各マウスの右腹部に、LU−01−0007またはLU−01−0412腫瘍断片(約30mm3)を皮下接種し、腫瘍を発生させた。平均腫瘍体積が161mm3(LU−01−0007)または147mm3(LU−01−0412)に達した場合に動物を無作為化した。
動物を、正常行動、例えば運動、餌および水の消費(見た目のみによる)、体重増加/減少、眼/毛髪のつやの消失に対する腫瘍成長および処置の任意の影響、ならびにプロトコールにおいて規定されるようなその他の異常効果に関して毎日確認した。死滅および観察された臨床的徴候を、各サブセット内の動物の数に基づいて記録した。
<免疫減弱状態のマウスでのヒト乳房、食道および膀胱がんの低継代PDXモデルにおけるBCY8245のインビボ評価>
目的
免疫減弱状態マウスでのヒト乳房、食道、および膀胱がんの低継代Champions TumorGraftモデルにおいて二環薬剤の抗腫瘍活性を評価すること。
種:マウス
系統:無胸腺ヌード−Foxn1nu(免疫減弱されている)
原料:Envigo:Indianapolis、Indiana
性別:雌
投薬開始時の標的年齢:少なくとも6〜8週齢
投薬開始時の標的体重:少なくとも18グラム
順化期間:3日
研究前動物:家畜動物の腫瘍が1.0〜1.5cm3に十分に到達した場合に採取し、研究前動物に再移植した。研究前動物は、家畜動物から採取された腫瘍断片を左側腹部に一側性に移植されることになる。各動物は、特定の継代ロットから移植され、記録される。
BCY8245およびネクチン−4抗体薬物コンジュゲートをビヒクル対照と比較する。標準治療薬剤のドセタキセルが含まれていてもよい。静脈内経路によって週に1回投薬されることになる全ての薬剤、用量をグラフに示す。
有効腫瘍体積:腫瘍体積は週に2回得ることになる。最終的な腫瘍体積は、研究がエンドポイントに達した日に得られることになる。可能であれば、最終的な腫瘍体積は、動物が瀕死状態である場合に得られることになる。
薬剤毒性:0日目から始め、動物は毎日観察し、デジタルスケールを使用して週に2回秤量することになり;個々のおよび平均グラム体重(平均体重±SEM)を含むデータ、0日目に対する平均パーセント体重変化(%vD0)を各群に関して記録し、研究の完了時に%vD0をプロットすることになる。動物の死滅を毎日記録し、体重減少および肉眼による観察に基づいて薬物関連(D)、技術(T)、腫瘍関連(B)、または未知(U)として示すことになり;20%を超える平均%vD0および/または10%を超える死亡率が報告された単一の薬剤または組合せの群が、評価されたレジメンにおいてその処置の最大耐量(MTD)を超えているとみなされることになる。各処置群に関する最大平均%vD0(最低の体重)が研究の完了時に報告される。
腫瘍成長阻害−0日目から始め、腫瘍寸法をデジタルキャリパーによって週に2回測定し、個々のおよび平均の推定腫瘍体積(平均TV±SEM)を含むデータを各群に関して記録し;腫瘍体積を、式(1):TV=幅2×長さ×0.52を使用して算出する。研究の完了時に、式(2):%TGI=1−(Tf−Ti)/(Cf−Ci)によって、初期の(i)および最終的な(f)腫瘍の測定値を使用し、各処置群(T)対対照(C)に関するパーセント腫瘍成長阻害(%TGI)値を算出し、報告することになる。2つの連続的な測定に関して0日目の測定値の30%以下の腫瘍体積を報告した個々のマウスは、部分反応例(responders)(PR)とみなすことになる。触診可能の腫瘍がない(2つの連続的な測定に関して0.00mm3)個々のマウスは、完全反応例(CR)として分類することになり;研究の完了まで持続するCRは、腫瘍のない生存例(TFS)とみなすことになる。腫瘍倍加時間(DT)は、式DT=(Df−Di)×log2/(logTVf−logTVi)(式中、D=日数およびTV=腫瘍体積)を使用してビヒクル処置群に関して判定されることになる。本研究において収集した全てのデータは、電子的に管理し、冗長サーバシステムに保管する。
Claims (19)
- ネクチン−4に対して特異的なペプチドリガンドであって、少なくとも2つのループ配列によって隔てられた少なくとも3つのシステイン残基を含むポリペプチド、および少なくとも2つのポリペプチドループが分子スキャフォールド上に形成されるように前記ポリペプチドの前記システイン残基と共有結合を形成する分子スキャフォールドを含み、アミノ酸配列:
CiP[1Nal][dD]CiiM[HArg]DWSTP[HyP]WCiii(配列番号1)
(式中、1NaIは1−ナフチルアラニンを表し、HArgはホモアルギニンを表し、HyPはヒドロキシプロリンを表し、Ci、CiiおよびCiiiは、それぞれ第1、第2および第3のシステイン残基を表す)
を含むペプチドリガンドまたはこれらの薬学的に許容される塩。 - [B−Ala][Sar10]−(配列番号1)(以下BCY8234と称する);
Ac−[B−Ala][Sar5]−(配列番号1)(以下BCY8122と称する);
Ac−(配列番号1)(以下BCY8126と称する);
(配列番号1)(以下BCY8116と称する);
フルオロセイン−(配列番号1)(以下BCY8205と称する);および
[PYA][B−Ala][Sar10]−(配列番号1)(以下BCY8846と称する)
から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のペプチドリガンド。 - [B−Ala][Sar10]−(配列番号1)(以下BCY8234と称する);
Ac−[B−Ala][Sar5]−(配列番号1)(以下BCY8122と称する);
Ac−(配列番号1)(以下BCY8126と称する);
(配列番号1)(以下BCY8116と称する);および
フルオロセイン−(配列番号1)(以下BCY8205と称する)
から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1または2に記載のペプチドリガンド。 - Ac−[B−Ala][Sar5]−(配列番号1)(以下BCY8122と称する);
Ac−(配列番号1)(以下BCY8126と称する);および
(配列番号1)(以下BCY8116と称する)
から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1〜3のいずれか1項に記載のペプチドリガンド。 - Ac−[B−Ala][Sar5]−(配列番号1)(以下BCY8122と称する);および
Ac−(配列番号1)(以下BCY8126と称する)
から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1〜4のいずれか1項に記載のペプチドリガンド。 - [B−Ala][Sar10]−(配列番号1)(以下BCY8234と称する)
から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1〜3のいずれか1項に記載のペプチドリガンド。 - 前記分子スキャフォールドが、1,1’,1’’−(1,3,5−トリアジナン−1,3,5−トリイル)トリプロパ−2−エン−1−オン(TATA)から選択される、請求項1〜6のいずれか1項に記載のペプチドリガンド。
- 前記薬学的に許容される塩が、遊離酸、またはナトリウム、カリウム、カルシウム、アンモニウム塩から選択される、請求項1〜7のいずれか1項に記載のペプチドリガンド。
- 前記ネクチン−4がヒトネクチン−4である、請求項1〜8のいずれか1項に記載のペプチドリガンド。
- 1つもしくは複数のエフェクターおよび/または官能基にコンジュゲートされた、請求項1〜9のいずれか1項に記載のペプチドリガンドを含む薬物コンジュゲート。
- 1つまたは複数の細胞毒性剤にコンジュゲートされた、請求項10に記載の薬物コンジュゲート。
- 前記細胞毒性剤が、MMAEまたはDM1から選択され、特にMMAEである、請求項11に記載の薬物コンジュゲート。
- 前記細胞毒性剤がMMAEであり、前記コンジュゲートが、−PABC−Cit−Val−グルタリル−または−PABC−シクロブチル−Ala−Cit−βAla−、例えば−PABC−Cit−Val−グルタリル−(式中、PABCは、p−アミノベンジルカルバメートを表す)から選択されるリンカーを更に含む、請求項12に記載の薬物コンジュゲート。
- 前記細胞毒性剤がDM1であり、前記コンジュゲートが、−SPDB−(SO3H)−(式中、SPDBは、N−スクシンイミジル3−(2−ピリジルジチオ)プロピオネートを表す)であるリンカーを更に含む、請求項13に記載の薬物コンジュゲート。
- BCY8245またはBCY8549から選択され、特にBCY8245である、請求項10〜14のいずれか1項に記載の薬物コンジュゲート。
- 請求項1〜9のいずれか1項に記載のペプチドリガンドまたは請求項10〜15のいずれか1項に記載の薬物コンジュゲートを、1つまたは複数の薬学的に許容される賦形剤と組み合わせて含む、医薬組成物。
- 1つまたは複数の治療剤を更に含む、請求項16に記載の医薬組成物。
- ネクチン−4が介在する疾患または障害の阻止、抑制または処置において使用するための、請求項10〜15のいずれか1項に記載の薬物コンジュゲート。
- がんを阻止、抑制または処置する方法であって、請求項10〜15のいずれか1項に記載の薬物コンジュゲートを、それを必要とする患者に投与することを含み、前記患者が、ネクチン−4のコピー数変化(CNV)が増加しているとして同定されている、方法。
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