JP2020150961A - 細胞の再プログラム - Google Patents

細胞の再プログラム Download PDF

Info

Publication number
JP2020150961A
JP2020150961A JP2020111151A JP2020111151A JP2020150961A JP 2020150961 A JP2020150961 A JP 2020150961A JP 2020111151 A JP2020111151 A JP 2020111151A JP 2020111151 A JP2020111151 A JP 2020111151A JP 2020150961 A JP2020150961 A JP 2020150961A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cells
inhibitor
pluripotent
cell
pdk1
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2020111151A
Other languages
English (en)
Inventor
サイヨン ズー
Saiyong Zhu
サイヨン ズー
シェン ディン
Sheng Ding
シェン ディン
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Scripps Research Institute
Original Assignee
Scripps Research Institute
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Scripps Research Institute filed Critical Scripps Research Institute
Publication of JP2020150961A publication Critical patent/JP2020150961A/ja
Priority to JP2023094611A priority Critical patent/JP2023105203A/ja
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0696—Artificially induced pluripotent stem cells, e.g. iPS
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/065—Modulators of histone acetylation
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10—Growth factors
    • C12N2501/15—Transforming growth factor beta (TGF-β)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/40—Regulators of development
    • C12N2501/41—Hedgehog proteins; Cyclopamine (inhibitor)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/60—Transcription factors
    • C12N2501/602—Sox-2
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/60—Transcription factors
    • C12N2501/603—Oct-3/4
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/60—Transcription factors
    • C12N2501/604—Klf-4
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/60—Transcription factors
    • C12N2501/606—Transcription factors c-Myc
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/70—Enzymes
    • C12N2501/72—Transferases [EC 2.]
    • C12N2501/727—Kinases (EC 2.7.)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/70—Enzymes
    • C12N2501/73—Hydrolases (EC 3.)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2506/00—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells
    • C12N2506/03—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from non-embryonic pluripotent stem cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2506/00—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells
    • C12N2506/09—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from epidermal cells, from skin cells, from oral mucosa cells
    • C12N2506/094—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from epidermal cells, from skin cells, from oral mucosa cells from keratinocytes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2506/00—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells
    • C12N2506/28—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from vascular endothelial cells

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

【課題】非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する方法の提供。【解決手段】3'-ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1（PDK1）活性化剤又は解糖代謝を促進する化合物と、その他の低分子とを使用して、非多能性哺乳動物細胞から誘導多能性幹細胞を作製する方法、組成物及びキット。ＰＤＫ１活性化剤がアロステリックＰＤＫ１活性化剤である方法。ＰＤＫ１活性化剤が、（Ｚ）−５−（４−クロロフェニル）−３−フェニルペンタ−２−エン酸（「ＰＳ４８」）、（Ｚ）−５−（４−ブロモ−２−フルオロフェニル）−３−フェニルペンタ−２−エン酸（「ＰＳ０８」）、２−（３−（４−クロロフェニル）−３−オキソ−１−フェニルプロピルチオ）酢酸、（Ｚ）−５−（ナフタレン−２−イル）−３−フェニルペンタ−２−エン酸（「１２Ｚ」）又は（Ｚ）−５−（１Ｈ−インドール−３−イル）−３−フェニルペンタ−２−エン酸（「１３Ｚ」）である、方法【選択図】図１

Description

関連出願の相互参照
本願は、2010年3月31日出願の米国仮出願第61/319,494号、2010年10月15日出願の米国仮出願第61/393,724号、および2010年10月26日出願の米国仮出願第61/406,892号に基づく優先権の恩典を主張するものであり、それらの内容は、各々、参照によりその全体が組み入れられる。
発明の背景
誘導多能性幹細胞（iPSC）テクノロジー、即ち、定義された因子の導入による、胚性幹細胞（ESC）に厳密に類似している多能性細胞への体細胞の再プログラムは、生物医学研究および再生医学における大きな可能性を保持している（Takahashi, K., and Yamanaka, S., Cell 126,663-676(2006)；Takahashi et al., Cell 131,861-872(2007)；Yu et al., Science 318 1917-1920(2007)；Zhou et al., Cell Stem Cell 4,381-384(2009)；Kim et al., Cell Stem Cell 4,472-476(2009)；Maherali, N., and Hochedlinger, K., Cell Stem Cell 3,595-605(2009a)；Daley et al., Cell Stem Cell 4,200-201(2009)）。iPSCの適用にとっての主要なハードルを表す、外因的な遺伝子操作がより少ないかまたは全く含まれないiPSCの生成のため、様々な戦略が開発されている（Yamanaka et al.,2009；Saha, K., Jaenisch, R., Cell Stem Cell 5,584-595(2009)）。遺伝子操作または製造／使用がより困難な生物学より、著しく有利であろう、定義された低分子カクテルによるiPSCの生成という究極の目標に向かって、外因性再プログラム転写因子（TF）に機能的に取って代わることができ、かつ／または再プログラムの効率および動力学を増強することができる化学的化合物を同定すべく、相当の努力がなされてきた（Shi et al., Cell Stem Cell 2,525-528(2008a)；Shi et al., Cell Stem Cell 3,568-574(2008b)；Huangfu et al., Nat Biotechnol 26,795-797(2008a)；Huangfu et al., Nat Biotechnol 26,1269-1275(2008b)；Silva et al., Plos Bio 6,e253.doi:10.1371/journal.pbio.0060253(2008)；Lyssiotis et al., PNAS 106,8912-8917(2009)；Ichida et al., Cell Stem Cell 5,491-503(2009)；Maherali, N., Hochedlinger, K., Curr Biol 19,1718-1723(2009b)；Esteban et al., Cell Stem Cell 6,71-79(2010)；Feng et al., Cell Stem Cell 4,301-312(2009)）。しかしながら、（1）再プログラムを可能にするかまたは増強する条件（例えば、特定の細胞型の活用または低分子の使用）の大部分は、環境依存性であり、即ち、そのような特定の条件（例えば、再プログラム低分子）は、典型的には、異なる外因性因子を含む異なる細胞型においては、はるかに低い効果を有するかまたは有害ですらあって、異なるウィンドウの処理において使用されるため；そして（2）より少ない外因性TFが使用されたために、再プログラムの効率およびスピードが指数関数的にさらに減少する時、ハイスループットスクリーニングは技術的に困難であるため、外因性TFの数をさらに低下させることは、極めて困難である。現在までに、Sox2およびcMycを内因的に高レベルに発現する神経幹細胞（NSC）のみが、Oct4のみの外因的な発現によって、iPSCへ再プログラムされることが示された（Kim et al., Cell 136,411-419(2009a)；Kim et al., Nature 461,643-649(2009b)）。しかしながら、ヒト胎児NSCは稀少であり、実際には入手するのが困難である（Nunes et al., Nat Med 9,439-447(2003)）。従って、より利用可能性が高く、より豊富な他の体細胞に適用可能な化学的再プログラム条件を開発することは、有益であろう。
発明の概要
本発明は、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する方法を提供する。いくつかの態様において、方法は、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞を3'-ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1（PDK1）活性化剤と接触させる工程を含む。いくつかの態様において、PDK1活性化剤は、アロステリックPDK1活性化剤、例えば、(Z)-5-(4-クロロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS48」）、(Z)-5-(4-ブロモ-2-フルオロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS08」）、2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸、(Z)-5-(ナフタレン-2-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「12Z」）、または(Z)-5-(1H-インドール-3-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「13Z」）である。
いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、例えば、A-83-01と接触させる工程をさらに含む。いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、MEK阻害剤、例えば、PD0325901と接触させる工程をさらに含む。いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、例えば、酪酸ナトリウム（NaB）またはバルプロ酸（VPA）と接触させる工程をさらに含む。
いくつかの態様において、方法は、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞を3'-ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1（PDK1）活性化剤と接触させる工程を含む。いくつかの態様において、条件は、少なくとも1種の外因性転写因子を非多能性細胞へ導入することを含む。いくつかの態様において、外因性転写因子はポリペプチドを含む。いくつかの態様において、外因性転写因子はOctポリペプチドを含む。いくつかの態様において、外因性転写因子は、OctポリペプチドおよびKlfポリペプチドからなる群より選択されるタンパク質を含む。いくつかの態様において、外因性転写因子は、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択されるタンパク質を含む。いくつかの態様において、条件は、各々、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される異なるタンパク質を含む、少なくとも2種、3種、または4種の外因性転写因子を非多能性細胞へ導入することを含む。いくつかの態様において、外因性転写因子をコードするポリヌクレオチドを非多能性細胞へ導入し、それにより、転写因子を非多能性細胞において発現させることにより、外因性転写因子が導入される。いくつかの態様において、外因性転写因子を非多能性細胞と接触させることにより、外因性転写因子が導入される。いくつかの態様において、外因性転写因子は、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む。
いくつかの態様において、非多能性細胞はヒト細胞である。いくつかの態様において、、非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への変換を誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への誘導の効率を少なくとも10％改良するのに十分な濃度で、PDK1活性化剤が存在する。
いくつかの態様において、方法は、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞を3'-ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1（PDK1）活性化剤と接触させる工程を含む。いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、MEK阻害剤の非存在下で、PDK1活性化剤と接触させ、続いて、非多能性細胞を、PDK1活性化剤およびMEK阻害剤と接触させる工程を含む。いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、MEK阻害剤の非存在下で、PDK1活性化剤、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、およびヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤と接触させ、続いて、非多能性細胞を、PDK1活性化剤、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、およびMEK阻害剤と接触させる工程を含む。
いくつかの態様において、方法は、多能性細胞の均質な集団を生成するため、多能性細胞を精製する工程をさらに含む。いくつかの態様において、複数種の多能性幹細胞が誘導される場合、方法は、多能性幹細胞の均質な集団を生成するため、多能性幹細胞を精製する工程をさらに含む。
もう一つの局面において、本発明は、哺乳動物細胞と、PDK1活性化剤と、（1）TGFβ受容体／ALK5阻害剤；（2）MEK阻害剤；（3）ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または（4）Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の外因性転写因子：のうちの一つまたは複数と：を含む混合物を提供する。
いくつかの態様において、混合物中の細胞の少なくとも99％が非多能性細胞である。いくつかの態様において、本質的に全ての細胞が非多能性細胞である。いくつかの態様において、細胞はヒト細胞である。いくつかの態様において、PDK1活性化剤は、アロステリックPDK1活性化剤、例えば、(Z)-5-(4-クロロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS48」）、(Z)-5-(4-ブロモ-2-フルオロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS08」）、2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸、(Z)-5-(ナフタレン-2-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「12Z」）、または(Z)-5-(1H-インドール-3-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「13Z」）である。いくつかの態様において、混合物は、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、例えば、A-83-01をさらに含む。いくつかの態様において、混合物は、MEK阻害剤、例えば、PD0325901をさらに含む。いくつかの態様において、混合物は、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、例えば、酪酸ナトリウム（NaB）またはバルプロ酸（VPA）をさらに含む。
いくつかの態様において、混合物は、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドより選択される外因性転写因子をさらに含む。いくつかの態様において、外因性転写因子は、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、細胞の誘導多能性幹細胞への変換を誘導するのに十分な条件の下で、混合物中の非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への誘導の効率を少なくとも10％改良するのに十分な濃度で、混合物中のPDK1活性化剤が存在する。
さらにもう一つの局面において、本発明は、PDK1活性化剤と、（1）TGFβ受容体／ALK5阻害剤；（2）MEK阻害剤；（3）ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または（4）Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の転写因子：のうちの一つまたは複数と：を含む、非多能性哺乳動物細胞において多能性を誘導するためのキットを提供する。いくつかの態様において、PDK1活性化剤は、アロステリックPDK1活性化剤、例えば、(Z)-5-(4-クロロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS48」）、(Z)-5-(4-ブロモ-2-フルオロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS08」）、2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸、(Z)-5-(ナフタレン-2-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「12Z」）、または(Z)-5-(1H-インドール-3-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「13Z」）である。いくつかの態様において、キットは、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、例えば、A-83-01をさらに含む。いくつかの態様において、キットは、MEK阻害剤、例えば、PD0325901をさらに含む。いくつかの態様において、キットは、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、例えば、酪酸ナトリウム（NaB）またはバルプロ酸（VPA）をさらに含む。
いくつかの態様において、キットは、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドより選択される外因性転写因子をさらに含む。いくつかの態様において、外因性転写因子は、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む。
さらにもう一つの局面において、本発明は、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する方法を提供する。いくつかの態様において、方法は、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞を、解糖代謝を促進する化合物と接触させ、それにより、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する工程を含む。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、PDK1活性化剤である。いくつかの態様において、PDK1活性化剤は、アロステリックPDK1活性化剤、例えば、PS48、PS08、12Z、または13Zである。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖活性化剤、例えば、フルクトース2,6-二リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖の基質、例えば、フルクトース6-リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖中間体またはその代謝前駆物質、例えば、ニコチン酸、NADH、またはフルクトース6-リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、グルコース取り込み輸送体活性化剤である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、ミトコンドリア呼吸モジュレーターである。いくつかの態様において、ミトコンドリア呼吸モジュレーターは、酸化的リン酸化阻害剤、例えば、2,4-ジニトロフェノールまたは2-ヒドロキシグルタル酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、低酸素誘導因子活性化剤、例えば、N-オキサロイルグリシンまたはケルセチンである。いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、例えば、A-83-01と接触させる工程をさらに含む。いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、MEK阻害剤、例えば、PD0325901と接触させる工程をさらに含む。いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、例えば、酪酸ナトリウム（NaB）またはバルプロ酸（VPA）と接触させる工程をさらに含む。
いくつかの態様において、方法は、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞を、解糖代謝を促進する化合物と接触させる工程を含む。いくつかの態様において、条件は、少なくとも1種の外因性転写因子を非多能性細胞へ導入することを含む。いくつかの態様において、外因性転写因子はポリペプチドを含む。いくつかの態様において、外因性転写因子はOctポリペプチドを含む。いくつかの態様において、外因性転写因子は、OctポリペプチドおよびKlfポリペプチドからなる群より選択されるタンパク質を含む。いくつかの態様において、外因性転写因子は、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択されるタンパク質を含む。いくつかの態様において、条件は、各々、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される異なるタンパク質を含む、少なくとも2種、3種、または4種の外因性転写因子を非多能性細胞へ導入することを含む。いくつかの態様において、外因性転写因子をコードするポリヌクレオチドを非多能性細胞へ導入し、それにより、転写因子を非多能性細胞において発現させることにより、外因性転写因子が導入される。いくつかの態様において、外因性転写因子を非多能性細胞と接触させることにより、外因性転写因子が導入される。いくつかの態様において、外因性転写因子は、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む。
いくつかの態様において、非多能性細胞はヒト細胞である。いくつかの態様において、非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への変換を誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への誘導の効率を少なくとも10％改良するのに十分な濃度で、解糖代謝を促進する化合物が存在する。
いくつかの態様において、方法は、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞を、解糖代謝を促進する化合物と接触させる工程を含む。いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、解糖代謝を促進する化合物およびMEK阻害剤と接触させる工程を含む。いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、MEK阻害剤の非存在下で、解糖代謝を促進する化合物と接触させ、続いて、非多能性細胞を、解糖代謝を促進する化合物およびMEK阻害剤と接触させる工程を含む。いくつかの態様において、方法は、非多能性細胞を、MEK阻害剤の非存在下で、解糖代謝を促進する化合物、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、およびヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤と接触させ、続いて、非多能性細胞を、解糖代謝を促進する化合物、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、およびMEK阻害剤と接触させる工程を含む。
いくつかの態様において、方法は、多能性細胞の均質な集団を生成するため、多能性細胞を精製する工程をさらに含む。いくつかの態様において、複数種の多能性幹細胞が誘導される場合、方法は、多能性幹細胞の均質な集団を生成するため、多能性幹細胞を精製する工程をさらに含む。
さらにもう一つの局面において、本発明は、哺乳動物細胞と、解糖代謝を促進する化合物と、（1）TGFβ受容体／ALK5阻害剤；（2）MEK阻害剤；（3）ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または（4）Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の外因性ポリペプチドのうちの一つまたは複数と：を含む混合物を提供する。いくつかの態様において、混合物中の細胞の少なくとも99％が最初は非多能性細胞である。いくつかの態様において、細胞の本質的に全てが最初は非多能性細胞である。いくつかの態様において、細胞はヒト細胞である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、PDK1活性化剤である。いくつかの態様において、PDK1活性化剤は、アロステリックPDK1活性化剤、例えば、PS48、PS08、12Z、または13Zである。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖活性化剤、例えば、フルクトース2,6-二リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖の基質、例えば、フルクトース6-リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖中間体またはその代謝前駆物質、例えば、ニコチン酸、NADH、またはフルクトース6-リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、グルコース取り込み輸送体活性化剤である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、ミトコンドリア呼吸モジュレーターである。いくつかの態様において、ミトコンドリア呼吸モジュレーターは、酸化的リン酸化阻害剤、例えば、2,4-ジニトロフェノールまたは2-ヒドロキシグルタル酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、低酸素誘導因子活性化剤、例えば、N-オキサロイルグリシンまたはケルセチンである。いくつかの態様において、混合物は、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、例えば、A-83-01をさらに含む。いくつかの態様において、混合物は、MEK阻害剤、例えば、PD0325901をさらに含む。いくつかの態様において、混合物は、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、例えば、酪酸ナトリウム（NaB）またはバルプロ酸（VPA）をさらに含む。
いくつかの態様において、外因性転写因子は、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、細胞の誘導多能性幹細胞への変換を誘導するのに十分な条件の下で、混合物中の非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への誘導の効率を少なくとも10％改良するのに十分な濃度で、混合物中の解糖代謝を促進する化合物が存在する。
さらにもう一つの局面において、本発明は、解糖代謝を促進する化合物と、（1）TGFβ受容体／ALK5阻害剤；（2）MEK阻害剤；（3）ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または（4）Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の転写因子；またはOctポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドより選択される転写因子をコードするポリヌクレオチドのうちの一つまたは複数と：を含む、非多能性哺乳動物細胞において多能性を誘導するためのキットを提供する。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、PDK1活性化剤である。いくつかの態様において、PDK1活性化剤は、アロステリックPDK1活性化剤、例えば、PS48、PS08、12Z、または13Zである。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖活性化剤、例えば、フルクトース2,6-二リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖の基質、例えば、フルクトース6-リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖中間体またはその代謝前駆物質、例えば、ニコチン酸、NADH、またはフルクトース6-リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、グルコース取り込み輸送体活性化剤である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、ミトコンドリア呼吸モジュレーターである。いくつかの態様において、ミトコンドリア呼吸モジュレーターは、酸化的リン酸化阻害剤、例えば、2,4-ジニトロフェノールまたは2-ヒドロキシグルタル酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、低酸素誘導因子活性化剤、例えば、N-オキサロイルグリシンまたはケルセチンである。いくつかの態様において、キットは、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、例えば、A-83-01をさらに含む。いくつかの態様において、キットは、MEK阻害剤、例えば、PD0325901をさらに含む。いくつかの態様において、キットは、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、例えば、酪酸ナトリウム（NaB）またはバルプロ酸（VPA）をさらに含む。いくつかの態様において、外因性転写因子は、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む。
定義
「Octポリペプチド」とは、オクタマー転写因子ファミリーの天然に存在するメンバー、または転写因子活性、例えば、最も近縁の天然に存在するファミリーメンバーと比較して少なくとも50％、80％、もしくは90％の活性を維持しているその異型、または天然に存在するファミリーメンバーのDNA結合ドメインを少なくとも含み、転写活性化ドメインをさらに含んでいてもよいポリペプチドのいずれかをさす。例示的なOctポリペプチドには、Oct-1、Oct-2、Oct-3/4、Oct-6、Oct-7、Oct-8、Oct-9、およびOct-11が含まれる。例えば、（本明細書中、「Oct4」と呼ばれる）Oct3/4は、Pit-1、Oct-1、Oct-2、およびuric-86の間で保存された150アミノ酸配列POUドメインを含有している。Ryan,A.K.& Rosenfeld,M.G.Genes Dev.11,1207-1225(1997)を参照のこと。いくつかの態様において、異型は、上にリストされたもののような、またはGenbankアクセッション番号NP_002692.2（ヒトOct4）もしくはNP_038661.1（マウスOct4）にリストされたような、天然に存在するOctポリペプチドファミリーメンバーと比較して、配列全体で、少なくとも85％、90％、または95％のアミノ酸配列同一性を有する。Octポリペプチド（例えば、Oct3/4）は、ヒト、マウス、ラット、ウシ、ブタ、またはその他の動物に由来し得る。一般に、操作されている細胞の種と同一の種のタンパク質が使用されるであろう。
「Klfポリペプチド」とは、ショウジョウバエ胚パターン調節因子クルッペルのものに類似したアミノ酸配列を含有しているジンクフィンガータンパク質であるクルッペル様因子（Klf）ファミリーの天然に存在するメンバー、または最も近縁の天然に存在するファミリーメンバーと類似した転写因子活性、例えば、最も近縁の天然に存在するファミリーメンバーと比較して、少なくとも50％、80％、もしくは90％の活性を維持している天然に存在するメンバーの異型、または天然に存在するファミリーメンバーのDNA結合ドメインを少なくとも含み、転写活性化ドメインをさらに含んでいてもよいポリペプチドのいずれかをさす。Dang,D.T.,Pevsner,J.& Yang,V.W.Cell Biol.32,1103-1121(2000)を参照のこと。例示的なKlfファミリーメンバーには、Klf1、Klf2、Klf3、Klf4、Klf5、Klf6、Klf7、Klf8、Klf9、Klf10、Klf11、Klf12、Klf13、Klf14、Klf15、Klf16、およびKlf17が含まれる。Klf2およびKlf-4は、マウスにおいてiPS細胞を生成することができる因子であることが見出され、関連遺伝子Klf1およびKlf5も同様であったが、効率は低かった。Nakagawa,et al.,Nature Biotechnology 26:101-106(2007)を参照のこと。いくつかの態様において、異型は、上にリストされたもののような、またはGenbankアクセッション番号CAX16088（マウスKlf4）もしくはCAX14962（ヒトKlf4）にリストされたような、天然に存在するKlfポリペプチドファミリーメンバーと比較して、配列全体で、少なくとも85％、90％、または95％のアミノ酸配列同一性を有する。Klfポリペプチド（例えば、Klf1、Klf4、およびKlf5）は、ヒト、マウス、ラット、ウシ、ブタ、またはその他の動物に由来し得る。一般に、操作されている細胞の種と同一の種のタンパク質が使用されるであろう。Klfポリペプチドが本明細書に記載される程度に、それは、エストロゲン関連受容体β（Essrb）ポリペプチドと交換可能である。従って、本明細書に記載された各Klfポリペプチド態様について、Klf4ポリペプチドの代わりにEssrbを使用する対応する態様が、等しく記載されているものとする。
「Mycポリペプチド」とは、Mycファミリーの天然に存在するメンバー（例えば、Adhikary,S.& Eilers,M.Nat.Rev.Mol.Cell Biol.6:635-645(2005)を参照のこと）、または転写因子活性、例えば、最も近縁の天然に存在するファミリーメンバーと比較して少なくとも50％、80％、もしくは90％の活性を維持しているその異型、または天然に存在するファミリーメンバーのDNA結合ドメインを少なくとも含み、転写活性化ドメインをさらに含んでいてもよいポリペプチドのいずれかをさす。例示的なMycポリペプチドには、例えば、c-Myc、N-Myc、およびL-Mycが含まれる。いくつかの態様において、異型は、上にリストされたもののような、またはGenbankアクセッション番号CAA25015（ヒトMyc）にリストされたような、天然に存在するMycポリペプチドファミリーメンバーと比較して、配列全体で、少なくとも85％、90％、または95％のアミノ酸配列同一性を有する。Mycポリペプチド（例えば、c-Myc）は、ヒト、マウス、ラット、ウシ、ブタ、またはその他の動物に由来し得る。一般に、操作されている細胞の種と同一の種のタンパク質が使用されるであろう。Mycポリペプチドが本明細書に記載される程度に、それは、Wntポリペプチド、例えば、Wnt3A（例えば、NP_149122.1）、またはWntシグナル伝達経路を刺激する薬剤、例えば、グリコーゲン合成酵素キナーゼαもしくはβ阻害剤と交換可能である。従って、本明細書に記載された各Mycポリペプチド態様について、Mycポリペプチドの代わりにWntポリペプチドまたはWntシグナル伝達経路を刺激する薬剤を使用する対応する態様が、等しく記載されているものとする。
「Soxポリペプチド」とは、高移動度群（HMG）ドメインの存在を特徴とするSRY関連HMGボックス（Sox）転写因子の天然に存在するメンバー、または転写因子活性、例えば、最も近縁の天然に存在するファミリーメンバーと比較して少なくとも50％、80％、もしくは90％の活性を維持しているその異型、または天然に存在するファミリーメンバーのDNA結合ドメインを少なくとも含み、転写活性化ドメインをさらに含んでいてもよいポリペプチドのいずれかをさす。例えば、Dang,D.T.,et al.,Int.J.Biochem.Cell Biol.32:1103-1121(2000)を参照のこと。例示的なSoxポリペプチドには、例えば、Sox1、Sox2、Sox3、Sox4、Sox5、Sox6、Sox7、Sox8、Sox9、Sox10、Sox11、Sox12、Sox13、Sox14、Sox15、Sox17、Sox18、Sox-21、およびSox30が含まれる。Sox1は、Sox2と類似した効率でiPS細胞を与えることが示されており、遺伝子Sox3、Sox15、およびSox18も、iPS細胞を生成することが示されているが、効率はSox2より多少低い。Nakagawa,et al.,Nature Biotechnology 26:101-106(2007)を参照のこと。いくつかの態様において、異型は、上にリストされたもののような、またはGenbankアクセッション番号CAA83435（ヒトSox2）にリストされたような、天然に存在するSoxポリペプチドファミリーメンバーと比較して、配列全体で、少なくとも85％、90％、または95％のアミノ酸配列同一性を有する。Soxポリペプチド（例えば、Sox1、Sox2、Sox3、Sox15、またはSox18）は、ヒト、マウス、ラット、ウシ、ブタ、またはその他の動物に由来し得る。一般に、操作されている細胞の種と同一の種のタンパク質が使用されるであろう。
「外因性転写因子」とは、本明細書において使用されるように、関心対象の細胞において天然に（即ち、内因的に）発現されない転写因子をさす。従って、外因性転写因子は、（例えば、ネイティブ転写因子プロモーター以外のプロモーターの制御下で）導入された発現カセットから発現されてもよいし、または細胞外からタンパク質として導入されてもよい。いくつかの態様において、外因性転写因子には、Octポリペプチド（例えば、Oct4）、Klfポリペプチド（例えば、Klf4）、Mycポリペプチド（例えば、c-Myc）、またはSoxポリペプチド（例えば、Sox2）が含まれる。
「H3K9」とは、ヒストンH3リジン9をさす。遺伝子活性に関連したH3K9修飾には、H3K9アセチル化が含まれ、ヘテロクロマチンに関連したH3K9修飾には、H3K9ジメチル化またはトリメチル化が含まれる。例えば、Kubicek,et al.,Mol.Cell 473-481(2007)を参照のこと。「H3K4」とはヒストンH3リジン4をさす。例えば、Ruthenburg et al.,Mol.Cell 25:15-30(2007)を参照のこと。
「多能性の」または「多能性」という用語は、三つの胚葉（内胚葉、中胚葉、および外胚葉）の全てからの細胞系統に関連した特徴を集合的に示す細胞型へ、適切な条件の下で、分化することができる子孫を与える能力を有する細胞をさす。多能性幹細胞は、出生前、出生後、または成体の動物の多くのまたは全ての組織に寄与することができる。8〜12週齢SCIDマウスにおいて奇形腫を形成する能力のような、標準的な当技術分野において認められている試験を、細胞集団の多能性を確立するために使用することができるが、様々な多能性幹細胞特徴の同定が、多能性細胞を検出するために使用されてもよい。
「多能性幹細胞特徴」とは、多能性幹細胞をその他の細胞から区別する、細胞の特徴をさす。三つの胚葉（内胚葉、中胚葉、および外胚葉）の全てからの細胞系統に関連した特徴を集合的に示す細胞型へ、適切な条件の下で、分化することができる子孫を与える能力は、多能性幹細胞特徴である。分子マーカーのある種の組み合わせの発現または無発現も、多能性幹細胞特徴である。例えば、ヒト多能性幹細胞は、以下の非限定的なリストからのマーカーのうちの少なくとも1種、2種、または3種を発現し、任意で、全てを発現する：SSEA-3、SSEA-4、TRA-1-60、TRA-1-81、TRA-2-49/6E、ALP、Sox2、E-カドヘリン、UTF-1、Oct4、Rex1、およびNanog。多能性幹細胞に関連した細胞形態学も、多能性幹細胞特徴である。
「組換え」ポリヌクレオチドとは、そのネイティブの状態にないポリヌクレオチドであり、例えば、ポリヌクレオチドが、自然界には見出さないヌクレオチド配列を含むか、またはポリヌクレオチドが、それが天然に見出されるのとは異なる情況にあり、例えば、自然界において典型的に近接しているヌクレオチド配列から分離されているか、もしくは典型的に近接していないヌクレオチド配列に隣接している（もしくは連続している）。例えば、対象の配列が、ベクターへクローニングされていてもよいし、またはその他の様式で一つもしくは複数の付加的な核酸と組換えられていてもよい。
「発現カセット」とは、タンパク質をコードする配列に機能的に連結されたプロモーターまたはその他の調節配列を含むポリヌクレオチドをさす。
「プロモーター」および「発現制御配列」という用語は、核酸の転写を指図する核酸制御配列のアレイをさすために本明細書において使用される。本明細書において使用されるように、プロモーターは、ポリメラーゼII型プロモーターの場合のTATA要素のような、必要な核酸配列を転写開始部位の近くに含む。プロモーターは、転写開始部位から数千塩基対も離れて位置していてもよい、遠位のエンハンサー要素またはリプレッサー要素も任意で含む。プロモーターには、構成性プロモーターおよび誘導可能プロモーターが含まれる。「構成性」プロモーターとは、大部分の環境条件および発達条件の下で活性を有するプロモーターである。「誘導可能」プロモーターとは、環境的または発達的な調節の下で活性を有するプロモーターである。「機能的に連結された」という用語は、発現制御配列が、第二の配列に相当する核酸の転写を指図するような、（プロモーター、または転写因子結合部位のアレイのような）核酸発現制御配列と、第二の核酸配列との間の機能的な連結をさす。
「異種配列」または「異種核酸」とは、本明細書において使用されるように、特定の宿主細胞とは異種の起源に起因するか、または、同一の起源に起因する場合には、その元の形態から修飾されているものである。従って、細胞内の異種発現カセットとは、例えば、染色体DNAではなく発現ベクターに由来するヌクレオチド配列との連結、異種プロモーターとの連結、レポーター遺伝子との連結等により、特定の宿主細胞にとって内因性でない発現カセットである。
「核酸」および「ポリヌクレオチド」という用語は、一本鎖または二本鎖のいずれかの形態の、デオキシリボヌクレオチドまたはリボヌクレオチドおよびそれらのポリマーをさすため、本明細書において交換可能に使用される。その用語には、参照核酸と類似した結合特性を有し、かつ参照ヌクレオチドと類似した様式で代謝される、合成物であってもよいし、天然に存在するものであってもよいし、天然には存在しないものであってもよい、既知のヌクレオチド類似体または修飾された骨格残基もしくは連結を含有している核酸が包含される。そのような類似体の例には、非限定的に、ホスホロチオエート、ホスホロアミデート、メチルホスホネート、キラルメチルホスホネート、2-O-メチルリボヌクレオチド、ペプチド核酸（PNA）が含まれる。
他に示されない限り、特定の核酸配列には、明示された配列のみならず、その保存的に修飾された異型（例えば、縮重コドン置換）および相補配列も包含される。具体的には、縮重コドン置換は、1個または複数個の選択された（または全ての）コドンの3番目の位置が、混合塩基および／またはデオキシイノシン残基に置換された配列を生成することにより、達成され得る（Batzer et al.,Nucleic Acid Res.19:5081(1991)；Ohtsuka et al,,J.Biol.Chem.260:2605-2608(1985)；Rossolini et al.,Mol.Cell.Probes 8:91-98(1994)）。
発現または活性の「阻害剤」、「活性化剤」、および「モジュレーター」とは、それぞれ、記載された標的タンパク質の発現または活性についてのインビトロアッセイおよびインビボアッセイを使用して同定される、阻害性の分子、活性化する分子、またはモジュレートする分子、例えば、リガンド、アゴニスト、アンタゴニスト、ならびにそれらの相同体および模倣体をさすために使用される。「モジュレーター」という用語には、阻害剤および活性化剤が含まれる。阻害剤とは、例えば、記載された標的タンパク質の発現を阻害するかまたはそれに結合するか、その刺激またはプロテアーゼ阻害活性を部分的にまたは完全に阻止するか、その活性化を減少させるか、防止するか、遅延させるか、その活性を不活化するか、脱感作するか、またはダウンレギュレートする薬剤、例えば、アンタゴニストである。活性化剤とは、例えば、記載された標的タンパク質の発現を誘導するかまたは活性化するか、記載された標的タンパク質（またはコードするポリヌクレオチド）に結合するか、その活性化またはプロテアーゼ阻害活性を刺激するか、増加させるか、開始させるか、活性化するか、容易にするか、増強するか、その活性を感作するかまたはアップレギュレートする薬剤、例えば、アゴニストである。モジュレーターには、天然に存在するものであってもよいし、合成物であってもよい、リガンド、アンタゴニスト、およびアゴニスト（例えば、アゴニストまたはアンタゴニストのいずれかとして機能する小さな化学的分子、抗体等）が含まれる。阻害剤および活性化剤についてのそのようなアッセイには、例えば、上記のように、記載された標的タンパク質を発現している細胞に推定モジュレーター化合物を適用し、次いで、記載された標的タンパク質の活性に対する機能的効果を決定するものが含まれる。可能性のある活性化剤、阻害剤、またはモジュレーターにより処理された記載された標的タンパク質を含む試料またはアッセイは、効果の程度を調査するため、阻害剤、活性化剤、またはモジュレーターを含まない対照試料と比較される。（モジュレーターにより処理されていない）対照試料には、100％という相対活性値が割り当てられる。対照に対して相対的な活性値が、約80％、任意で、50％、または25％、10％、5％、または1％である時、記載された標的タンパク質の阻害が達成されている。対照に対して相対的な活性値が、110％、任意で、150％、任意で、200％、300％、400％、500％、または1000〜3000％、またはそれ以上である時、記載された標的タンパク質の活性化が達成されている。
「アロステリック」という用語は、酵素上の異なる位置の異なる部位（調節部位）に分子が結合することにより、（活性部位のような）酵素のある部分の活性に影響を与える効果をさすために使用される。アロステリック部位への非基質分子の結合は、基質結合（活性）部位の結合動力学に影響を与える。「アロステリック結合部位」は、多くの酵素および受容体に含有されている。アロステリック結合部位への結合の結果として、正常なリガンドとの相互作用が増強されるかまたは低下する。例えば、3'-ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1（PDK1）のアロステリック結合部位は、ヘリックスCとヘリックスBと-4シートと-5シートとの間に位置するPDK1相互作用断片（PIF）結合ポケットである（Pearl et al.,Curr.Opin.Struct.Biol.12,761-767(2002)；Biondi et al.,Biochem.J.372,1-13(2003)；Newton et al.,Chem.Rev.101,2353-2364(2001)）。
本明細書において使用されるように、「促進する」もしくは「増加する」または「促進」もしくは「増加」とは、本明細書において交換可能に使用される。これらの用語は、未処理の細胞（組織または対象）と比較した、処理された細胞（組織または対象）における、測定されたパラメーター（例えば、活性、発現、解糖、解糖代謝、グルコース取り込み、解糖の下流の生合成）の増加ををさす。同一の細胞または組織または対象を、処理の前後で比較することもできる。増加は、検出可能であるのに十分なものである。いくつかの態様において、処理された細胞における増加は、未処理の細胞と比較して、少なくとも約10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、1倍、2倍、3倍、4倍、またはそれ以上である。
本明細書において使用されるように、「阻害する」、「防止する」、もしくは「低下させる」、または「阻害」、「防止」、もしくは「低下」とは、本明細書において交換可能に使用される。これらの用語は、未処理の細胞（組織または対象）と比較した、処理された細胞（組織または対象）における、測定されたパラメーター（例えば、活性、発現、ミトコンドリア呼吸、ミトコンドリア酸化、酸化的リン酸化）の減少をさす。同一の細胞または組織または対象を、処理の前後で比較することもできる。減少は、検出可能であるのに十分なものである。いくつかの態様において、処理された細胞における減少は、未処理の細胞と比較して、少なくとも約10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、または完全に阻害される。いくつかの態様において、測定されたパラメーターは、未処理の細胞と比較して、処理された細胞において検出不可能である（即ち、完全に阻害される）。
[本発明1001]
細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞を3'-ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1（PDK1）活性化剤と接触させる工程であって、それにより、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する、工程を含む、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する方法。
[本発明1002]
PDK1活性化剤がアロステリックPDK1活性化剤である、本発明1001の方法。
[本発明1003]
PDK1活性化剤が、(Z)-5-(4-クロロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS48」）、(Z)-5-(4-ブロモ-2-フルオロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS08」）、2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸、(Z)-5-(ナフタレン-2-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「12Z」）、または(Z)-5-(1H-インドール-3-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「13Z」）である、本発明1002の方法。
[本発明1004]
PDK1活性化剤がPS48である、本発明1003の方法。
[本発明1005]
非多能性細胞をTGFβ受容体／ALK5阻害剤と接触させる工程をさらに含む、本発明1001〜1004のいずれかの方法。
[本発明1006]
TGFβ受容体／ALK5阻害剤がA-83-01である、本発明1005の方法。
[本発明1007]
非多能性細胞をMEK阻害剤と接触させる工程をさらに含む、本発明1001〜1006のいずれかの方法。
[本発明1008]
MEK阻害剤がPD0325901である、本発明1007の方法。
[本発明1009]
非多能性細胞をヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤と接触させる工程をさらに含む、本発明1001〜1008のいずれかの方法。
[本発明1010]
HDAC阻害剤が酪酸ナトリウム（NaB）である、本発明1009の方法。
[本発明1011]
HDAC阻害剤がバルプロ酸（VPA）である、本発明1009の方法。
[本発明1012]
条件が、少なくとも1種の外因性転写因子を非多能性細胞へ導入することを含む、本発明1001〜1011のいずれかの方法。
[本発明1013]
外因性転写因子がポリペプチドを含む、本発明1012の方法。
[本発明1014]
外因性転写因子がOctポリペプチドを含む、本発明1012または1013の方法。
[本発明1015]
外因性転写因子が、OctポリペプチドおよびKlfポリペプチドからなる群より選択されるポリペプチドを含む、本発明1012または1013の方法。
[本発明1016]
外因性転写因子が、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択されるポリペプチドを含む、本発明1012または1013の方法。
[本発明1017]
各々、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される異なるポリペプチドを含む、少なくとも2種、3種、または4種の外因性転写因子を、非多能性細胞へ導入する工程を含む、本発明1012または1013の方法。
[本発明1018]
外因性転写因子をコードするポリヌクレオチドを非多能性細胞へ導入し、それにより、転写因子を非多能性細胞において発現させることにより、外因性転写因子が導入される、本発明1012〜1017のいずれかの方法。
[本発明1019]
外因性転写因子を非多能性細胞と接触させることにより、外因性転写因子が導入される、本発明1012〜1017のいずれかの方法。
[本発明1020]
外因性転写因子が、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む、本発明1019の方法。
[本発明1021]
非多能性細胞がヒト細胞である、本発明1001〜1020のいずれかの方法。
[本発明1022]
非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への変換を誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への誘導の効率を少なくとも10％改良するのに十分な濃度で、PDK1活性化剤が存在する、本発明1001〜1021のいずれかの方法。
[本発明1023]
接触させる工程が、非多能性細胞を、MEK阻害剤の非存在下で、PDK1活性化剤と接触させ、続いて、非多能性細胞を、PDK1活性化剤およびMEK阻害剤と接触させることを含む、本発明1001の方法。
[本発明1024]
接触させる工程が、非多能性細胞を、MEK阻害剤の非存在下で、PDK1活性化剤、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、およびヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤と接触させ、続いて、非多能性細胞を、PDK1活性化剤、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、およびMEK阻害剤と接触させることを含む、本発明1023の方法。
[本発明1025]
複数種の多能性幹細胞が誘導される方法であって、多能性幹細胞の均質な集団を生成するため、多能性幹細胞を精製する工程をさらに含む、本発明1001〜1024のいずれかの方法。
[本発明1026]
哺乳動物細胞と、PDK1活性化剤と、
TGFβ受容体／ALK5阻害剤；
MEK阻害剤；
ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または
Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の外因性転写因子
のうちの一つまたは複数と
を含む、混合物。
[本発明1027]
細胞の少なくとも99％が非多能性細胞である、本発明1026の混合物。
[本発明1028]
本質的に全ての細胞が非多能性細胞である、本発明1026〜1027のいずれかの混合物。
[本発明1029]
細胞がヒト細胞である、本発明1026〜1028のいずれかの混合物。
[本発明1030]
PDK1活性化剤がアロステリックPDK1活性化剤である、本発明1026〜1029のいずれかの混合物。
[本発明1031]
PDK1活性化剤が、(Z)-5-(4-クロロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS48」）、(Z)-5-(4-ブロモ-2-フルオロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS08」）、2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸、(Z)-5-(ナフタレン-2-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「12Z」）、または(Z)-5-(1H-インドール-3-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「13Z」）である、本発明1030の混合物。
[本発明1032]
PDK1活性化剤がPS48である、本発明1031の混合物。
[本発明1033]
TGFβ受容体／ALK5阻害剤をさらに含む、本発明1026〜1032のいずれかの混合物。
[本発明1034]
TGFβ受容体／ALK5阻害剤がA-83-01である、本発明1033の混合物。
[本発明1035]
MEK阻害剤をさらに含む、本発明1026〜1034のいずれかの混合物。
[本発明1036]
MEK阻害剤がPD0325901である、本発明1035の混合物。
[本発明1037]
ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤をさらに含む、本発明1026〜1036のいずれかの混合物。
[本発明1038]
HDAC阻害剤が酪酸ナトリウム（NaB）である、本発明1037の混合物。
[本発明1039]
HDAC阻害剤がバルプロ酸（VPA）である、本発明1037の混合物。
[本発明1040]
Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドから選択される外因性転写因子をさらに含む、本発明1026〜1039のいずれかの混合物。
[本発明1041]
外因性転写因子が、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む、本発明1040の混合物。
[本発明1042]
細胞の誘導多能性幹細胞への変換を誘導するのに十分な条件の下で、混合物中の非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への誘導の効率を少なくとも10％改良するのに十分な濃度で、PDK1活性化剤が存在する、本発明1026〜1041のいずれかの混合物。
[本発明1043]
PDK1活性化剤と、
TGFβ受容体／ALK5阻害剤；
MEK阻害剤；
ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または
Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の転写因子
のうちの一つまたは複数と
を含む、非多能性哺乳動物細胞において多能性を誘導するためのキット。
[本発明1044]
PDK1活性化剤がアロステリックPDK1活性化剤である、本発明1043のキット。
[本発明1045]
PDK1活性化剤が、(Z)-5-(4-クロロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS48」）、(Z)-5-(4-ブロモ-2-フルオロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS08」）、2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸、(Z)-5-(ナフタレン-2-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「12Z」）、または(Z)-5-(1H-インドール-3-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「13Z」）である、本発明1044のキット。
[本発明1046]
PDK1活性化剤がPS48である、本発明1045のキット。
[本発明1047]
TGFβ受容体／ALK5阻害剤をさらに含む、本発明1043〜1046のいずれかのキット。
[本発明1048]
TGFβ受容体／ALK5阻害剤がA-83-01である、本発明1047のキット。
[本発明1049]
MEK阻害剤をさらに含む、本発明1043〜1048のいずれかのキット。
[本発明1050]
MEK阻害剤がPD0325901である、本発明1049のキット。
[本発明1051]
ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤をさらに含む、本発明1043〜1050のいずれかのキット。
[本発明1052]
HDAC阻害剤が酪酸ナトリウム（NaB）である、本発明1051のキット。
[本発明1053]
HDAC阻害剤がバルプロ酸（VPA）である、本発明1051のキット。
[本発明1054]
Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドから選択される転写因子をさらに含む、本発明1043〜1053のいずれかのキット。
[本発明1055]
転写因子が、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む、本発明1054のキット。
[本発明1056]
細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞を、解糖代謝を促進する化合物と接触させる工程であって、それにより、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する、工程を含む、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する方法。
[本発明1057]
解糖代謝を促進する化合物が、解糖活性化剤、解糖の基質、グリコール中間体またはその代謝前駆物質、グルコース取り込み輸送体活性化剤、ミトコンドリア呼吸モジュレーター、酸化的リン酸化阻害剤、または低酸素誘導因子活性化剤である、本発明1056の方法。
[本発明1058]
哺乳動物細胞と、解糖代謝を促進する化合物と、
TGFβ受容体／ALK5阻害剤；
MEK阻害剤；
ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または
Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の外因性転写因子
のうちの一つまたは複数と
を含む、混合物。
[本発明1059]
解糖代謝を促進する化合物が、解糖活性化剤、解糖の基質、グリコール中間体またはその代謝前駆物質、グルコース取り込み輸送体活性化剤、ミトコンドリア呼吸モジュレーター、酸化的リン酸化阻害剤、または低酸素誘導因子活性化剤である、本発明1058の混合物。
[本発明1060]
解糖代謝を促進する化合物と、
TGFβ受容体／ALK5阻害剤；
MEK阻害剤；
ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または
Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の転写因子
のうちの一つまたは複数と
を含む、非多能性哺乳動物細胞において多能性を誘導するためのキット。
[本発明1061]
解糖代謝を促進する化合物が、解糖活性化剤、解糖の基質、グリコール中間体またはその代謝前駆物質、グルコース取り込み輸送体活性化剤、ミトコンドリア呼吸モジュレーター、酸化的リン酸化阻害剤、または低酸素誘導因子活性化剤である、本発明1060のキット。
単一遺伝子OCT4および低分子による、初代ケラチノサイトからのヒト誘導多能性幹細胞の生成。（a）0.5μM PD0325901（PD）および0.5μM A-83-01（A83）による処理は、4TF（4F、OKSM）または3TF（3F、OKS）のいずれかにより形質導入された初代ヒトケラチノサイトからのiPSCの生成を有意に改良した。10cmディッシュ1枚当たり100,000個の形質導入細胞の密度で、NHEKを播種した。（b）さらなるケミカルスクリーニングは、2TF（OK）により形質導入された初代ヒトケラチノサイトの再プログラムを実質的に増強することができる、PS48、NaB、およびそれらの組み合わせを同定した。10cmディッシュ1枚当たり100,000個の形質導入細胞の密度で、NHEKを播種した。（c）単一再プログラム遺伝子OCT4により形質導入された初代ヒトケラチノサイトからのヒトiPSCの生成のための実験スキーム。KCM、ケラチノサイト培養培地；hESCM、ヒトESC培養培地。（d）コロニーのピックアップ前の、2TF/OKまたは1TF/OCT4により形質導入された初代ヒトケラチノサイトから生成されたiPSCコロニーのTRA-1-81による生免疫染色。（e）確立されたヒトiPSC-OK細胞およびヒトiPSC-O細胞は、ALP（アルカリホスファターゼ）、OCT4、SOX2、NANOG、SSEA-4、およびTRA-1-81を含む、典型的な多能性マーカーを発現している。核をDAPI染色した。 ヒトiPSC-OK細胞およびヒトiPSC-O細胞の徹底的な特徴決定。（a）内因性多能性遺伝子、ならびに外因性のOCT4およびKLF4のRT-PCRによる発現分析。GAPDHをインプット対照として使用した。（b）重亜硫酸塩ゲノム配列決定によるOCT4プロモーターおよびNANOGプロモーターのメチル化分析。白丸および黒丸は、それぞれ、プロモーター領域内の非メチル化CpGおよびメチル化CpGを示す。（c）iPSC-O細胞とNHEKおよびhESCとの間の全般的遺伝子発現パターンを比較するスキャッタープロット。多能性遺伝子OCT4、NANOG、およびSOX2の位置は、矢印により示される。黒線は、試料間の遺伝子発現の線形等価（linear equivalent）変化および2倍変化を示す。（d）ヒトiPSC-OKおよびヒトiPSC-Oは、EB法を使用して、神経外胚葉細胞（βIIIチューブリン＋）、中胚葉細胞（SMA＋）、および内胚葉細胞（AFP＋）を含む三つの胚葉の細胞へ、インビトロで効果的に分化することができた。（e）EB法を使用して分化したヒトiPSCからの三つの胚葉のマーカーの定量的PCR試験：外胚葉（PAX6、βIIIチューブリン）、中胚葉（FOXF1、HAND1）、および内胚葉（AFP、GATA6）。データは、未分化親ヒトiPSCと比べた、GAPDHによりノーマライズされた変化倍率を示す。（f）ヒトiPSC-OKおよびヒトiPSC-Oは、SCIDマウスにおいて、三つの胚葉に分化細胞を含有している完全な奇形腫を効果的に生ずることができた。 単一遺伝子OCT4および低分子による、ヒト臍静脈内皮細胞からのヒト誘導多能性幹細胞の生成および特徴決定。（a）OCT4により形質導入されたHUVECからのヒトiPSCの生成のための実験スキーム。HCM、HUVEC培養培地；hESCM、ヒトESC培養培地。（b）HUVECから確立されたhiPSC-Oは、NANOGおよびSSEA-4を含む、典型的な多能性マーカーを発現している。核をDAPI染色した。（c）内因性多能性遺伝子のRT-PCRによる発現分析。GAPDHをインプット対照として使用した。（d）重亜硫酸塩ゲノム配列決定によるOCT4プロモーターおよびNANOGプロモーターのメチル化分析。白丸および黒丸は、それぞれ、プロモーター領域内の非メチル化CpGおよびメチル化CpGを示す。（e）HUVECからのhiPSC-O細胞は、EB法を使用して、神経外胚葉細胞（βIIIチューブリン＋）、中胚葉細胞（SMA＋）、および内胚葉細胞（AFP＋）を含む三つの胚葉の細胞へ、インビトロで効果的に分化することができた。（f）hiPSC-O細胞は、SCIDマウスにおいて、三つの胚葉に分化細胞を含有している完全な奇形腫を効果的に生ずることができた。 AHEKからのヒトiPSC-O細胞の特徴決定。（a）成体ケラチノサイトから確立されたhiPSC-O細胞は、NANOG、SOX2、およびSSEA-4を含む、典型的な多能性マーカーを発現している。核をDAPI染色した。（b）これらのhiPSC-O細胞は、EB法を使用して、神経外胚葉細胞（βIIIチューブリン＋）、中胚葉細胞（SMA＋）、および内胚葉細胞（AFP＋）を含む三つの胚葉の細胞へ、インビトロで効果的に分化することができた。 AFDCからのヒトiPSC-O細胞の特徴決定。（a）羊水由来細胞から確立されたhiPSC-O細胞は、NANOG、SOX2、およびSSEA-4を含む、典型的な多能性マーカーを発現している。核をDAPI染色した。（b）これらのhiPSC-O細胞は、EB法を使用して、神経外胚葉細胞（βIIIチューブリン＋）、中胚葉細胞（SMA＋）、および内胚葉細胞（AFP＋）を含む三つの胚葉の細胞へ、インビトロで効果的に分化することができた。 付加的なhiPSC細胞株は、典型的な多能性マーカーを発現している。他の確立されたhiPSC-O細胞は、NANOGおよびSSEA-4を含む、典型的な多能性マーカーを発現している。核をDAPI染色した。 hiPSC細胞株のフィーダーフリー培養。hiPSCを、以前に報告されたような、化学的に定義されたhESC培地で、マトリゲル／ECMコーティングプレートへ分離した。これらのhiPSCは、フィーダーフリー環境で維持し、拡大させることが可能であった。ICCは、多能性マーカーOCT4およびSSEA4の発現を示した。核をDAPI染色した。 hiPSCの遺伝子型決定。ゲノムDNAを使用したRT-PCR分析は、OCT4トランスジーンのみが、hiPSC-O株（hiPSC-O#1、hiPSC-O#3、hiPSC-O#21、hiPSC-O#26、およびhiPSC-O#31）のゲノムに組み込まれていることを示す。NHEK（a）およびHUVEC（b）を陰性対照として使用し、ベクターを陽性対照として使用した。 hiPSCにおけるOCT4トランスジーンの組み込み。ゲノムDNA（10μg）をEcoRIにより消化し、OCT4 cDNAプローブ（pSin-EF2-OCT4-PurのEcoRI/SpeI断片）とハイブリダイズさせた。複数のトランスジーン組み込みが検出された。 hiPSC細胞株についての核型分析。hiPSC-O#1（a）およびhiPSC-O#21（b）の中期スプレッドは、15回目の継代の後、正常な核型を示す。 PS48は解糖への代謝スイッチを容易にすることにより再プログラム過程を増強する。（a）PS48処理はPDK1活性を活性化した。PS48（5μM）またはUCN-01（20nM）による処理の後のAkt（Thr-308）のリン酸化のウエスタンブロッティング分析。（b）PS48はNHEKの再プログラムを増強し、UCN-01（PDK1阻害剤）または2-デオキシ-D-グルコース（10mM）（2-DG、解糖阻害剤）は再プログラム過程を阻害した。3因子（Klf、Sox、およびOct）により形質導入されたNHEKを、1ウェル当たり100,000個の形質導入細胞の密度で播種し、4週間、化合物により処理し、次いで、TRA-1-81陽性コロニーを計数した。（c）PS48処理は、解糖への代謝スイッチを容易にし／活性化し、UCN-01または2-DGの処理は、解糖を阻害した。NHEKを、PS48、PS48およびUCN-01、またはPS48および2-DGのいずれかにより8日間処理し、次いで、解糖の典型的な指標として、培地中の乳酸生成を、Lactate Assay Kit（BioVision,Mountain View,CA,USA）を使用することにより測定した。（d）PS48処理は、GLUT1、HK2、PFK1、およびLDHAを含む、数種のキー解糖遺伝子の発現をアップレギュレートした。（e）ミトコンドリア呼吸、解糖代謝、またはHIF活性化をモジュレートするために広く使用されている公知の低分子も、再プログラムに対して対応する一貫した効果を示した。4因子（Klf、Sox、Myc、およびOct）により形質導入されたHUVECを、1ウェル当たり20,000個の形質導入細胞の密度で播種し、代謝をモジュレートする化合物により3週間処理し、TRA-1-81陽性コロニーを計数した。F2,6P、10mMフルクトース2,6-二リン酸；F6P、10mMフルクトース6-リン酸；6-AN、10μM 6-アミノニコチンアミド；OA、10μMシュウ酸；DNP、1μM 2,4-ジニトロフェノール；NOG、1μM N-オキサロイルグリシン；QC、1μMケルセチン；2-HA、10μM 2-ヒドロキシグルタル酸；NA、10μMニコチン酸；DMSOを対照として使用した。
発明の詳細な説明
I.序論
本発明は、3'-ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1（PDK1）活性化剤が、非多能性哺乳動物細胞における多能性の誘導の効率を大幅に改良するという驚くべき発見に基づく。従って、本発明は、非多能性細胞をPDK1活性化剤と接触させる工程を含む、非多能性哺乳動物細胞において多能性を誘導する方法を提供する。
本発明は、本明細書に記載されるような解糖代謝を促進する化合物が、非多能性哺乳動物細胞における多能性の誘導の効率を大幅に改良するという驚くべき発見にも基づく。解糖代謝を促進する化合物が、（主として成体体細胞により使用される）ミトコンドリア酸化から（主として胚性幹細胞（ESC）により使用される）解糖への代謝再プログラムを容易にし、それにより、非多能性哺乳動物細胞において多能性を誘導することが、本発明において発見された。従って、解糖を促進する化合物、またはミトコンドリア呼吸／酸化を阻害するかもしくは妨害する化合物は、非多能性哺乳動物細胞における多能性の誘導において有用である。さらに、解糖の上流（例えば、PDK1経路、低酸素誘導因子経路、グルコース取り込み輸送体経路）または下流（例えば、脂肪酸合成、脂質合成、ヌクレオチド合成、およびアミノ酸合成）のいずれかの過程を促進する化合物が、非多能性哺乳動物細胞における多能性の誘導において有用であることが発見された。従って、本発明は、非多能性細胞を、本明細書に記載されるような1種または複数種の解糖代謝を促進する化合物と接触させる工程を含む、非多能性哺乳動物細胞において多能性を誘導する方法を提供する。
現在までに、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞（iPSC）へ誘導するため、多数の異なる方法およびプロトコルが確立されている。本明細書に記載された薬剤は、iPSCを生成するための本質的に任意のプロトコルと組み合わせて使用可能であり、それにより、プロトコルの効率を改良すると考えられる。従って、本発明は、iPSCを生成するための任意のプロトコルと組み合わせられた、アロステリックPDK1活性化剤を含むが、これに限定されない、少なくとも1種のPDK1活性化剤との非多能性細胞のインキュベーションを提供する。その他の態様において、本発明は、iPSCを生成するための任意のプロトコルと組み合わせられた、少なくとも1種の解糖代謝を促進する化合物との非多能性細胞のインキュベーションを提供する。
本明細書において使用されるように、非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への誘導に関して、「誘導の効率」とは、多能性幹細胞を誘導するのに十分な条件の下で、定義された時間枠内にiPSCへ変換することができる非多能性細胞の数、または定義された数の非多能性細胞をiPSCへ変換するためにかかる時間の量をさす。iPSC生成プロトコルの効率の改良は、プロトコル、および本発明のどの薬剤が使用されるかに依るであろう。いくつかの態様において、効率は、本発明の薬剤（例えば、PDK1活性化剤、例えば、アロステリックPDK1活性化剤、または解糖代謝を促進する化合物、例えば、PDK1活性化剤、解糖活性化剤、解糖の基質、解糖中間体およびその代謝前駆物質、グルコース取り込み輸送体活性化剤、酸化的リン酸化阻害剤のようなミトコンドリア呼吸モジュレーター、ならびに低酸素誘導因子活性化剤）を含まない同一プロトコルと比較して、少なくとも10％、20％、50％、75％、100％、150％、200％、300％、またはそれ以上、改良される。いくつかの態様において、効率は、（例えば、1種または複数種の本発明の薬剤の導入を含む条件の下で、定義された時間枠内に非多能性細胞から生成されるiPSCの数を、1種または複数種の本発明の薬剤の導入を含まない条件の下で、定義された時間枠内に非多能性細胞から生成されるiPSCの数と比較することにより）特定の時間枠内に生成されるiPSCの数の改良に関して測定される。いくつかの態様において、効率は、（例えば、1種または複数種の本発明の薬剤の導入を含む条件の下で、定義された数のiPSCを非多能性細胞から生成するためにかかる時間の長さを、1種または複数種の本発明の薬剤の導入を含まない条件の下で、定義された数のiPSCを非多能性細胞から生成するためにかかる時点の長さと比較することにより）iPSCが生成されるスピードの改良に関して測定される。いくつかの態様において、誘導の効率は、下記実施例セクションに記載されるように、非多能性細胞（例えば、正常ヒト上皮ケラチノサイト）をOct4およびKlf4により形質導入し、次いで、形質導入細胞を、1種または複数種の本発明の薬剤（例えば、PDK1活性化剤）の非存在下または存在下で培養することを含む条件の下で測定される。非多能性細胞からのiPSCの誘導は、（例えば、多能性マーカーTra-1-81および／またはOCT4を使用した）マーカー分析を含むが、これに限定されない、当技術分野において公知の任意の方法に従って測定可能である。
本発明の方法によると、特定の情況依存性の処理計画が、再プログラム効率を改良することができる。ある種の処理計画の有効性は、いくつかの態様において、細胞型、細胞継代数、および使用される外因性転写因子に依る。例えば、いくつかの態様において、4種の外因性転写因子による形質導入またはそれらとの接触による細胞の再プログラムと比較して、4種より少ない外因性転写因子、即ち、1種、2種、または3種の外因性転写因子による形質導入またはそれらとの接触により細胞を再プログラムする時、特定の処理計画による再プログラム効率のより有意な改良が観察され得る。
一般に、ヒト細胞の再プログラムは、マウス細胞（例えば、約2週間）より相当長くかかる（例えば、6〜8週間）。特定の処理計画の効果は、いくつかの態様において、マウス細胞と比較して、ヒト細胞を再プログラムする時、より強調され得る。従って、比較的長い期間（例えば、少なくとも3週間、4週間、5週間、6週間、またはそれ以上）が、再プログラムにおいて使用される時、処理計画、例えば、エピジェネティック修飾剤を使用するものが、再プログラム効率を改良するために使用され得る。
本発明者らは、エピジェネティック修飾剤が、再プログラム効率を改良し得ることを見出した。本明細書において定義されるように、「エピジェネティック修飾剤」という用語は、メチル化修飾剤（即ち、DNAもしくはヒストンへメチル化変化を誘導する薬剤）および／またはアセチル化修飾剤（即ち、DNAもしくはヒストンへアセチル化変化を誘導する薬剤）をさす。いくつかの態様において、メチル化修飾剤は、DNAメチル化阻害剤（例えば、RG108のようなDNAメチルトランスフェラーゼ（DNMT）阻害剤）、ヒストンメチル化阻害剤、および／またはヒストン脱メチル阻害剤である。いくつかの態様において、アセチル化修飾剤は、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤（例えば、バルプロ酸（VPA）、酪酸ナトリウム（NaB）、トリコスタチンA（TSA）、またはスベロイルアニリドヒドロキサム酸（SAHA））、ヒストンアセチルトランスフェラーゼ（HAT）阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ、およびヒストンアセチルトランスフェラーゼである。いくつかの態様において、エピジェネティック修飾剤は、メチルトランスフェラーゼもしくはデメチラーゼ（demethylase）を阻害する薬剤、またはメチルトランスフェラーゼもしくはデメチラーゼを活性化する薬剤である。いくつかの態様において、エピジェネティック修飾剤は、ヒストンH3K9メチル化を阻害するか、またはH3K9脱メチルを促進する薬剤、例えば、BIX01294のようなG9aヒストンメチルトランスフェラーゼである。
しかしながら、いくつかのエピジェネティック修飾剤は、細胞分化も誘導する可能性がある。従って、本発明のいくつかの態様において、エピジェネティック修飾剤は、処理の初期段階、例えば、処理期間の最初の1週間、2週間、3週間、または4週間、前半、最初の1/3、最初の1/4、または最初の1/5においてのみ使用される。処理の後期段階、例えば、処理期間の最後の1週間、2週間、3週間、または4週間、後半、最後の1/3、最後の1/4、または最後の1/5において、エピジェネティック修飾剤を省くことにより、これらのエピジェネティック修飾剤による細胞分化誘導の副作用を、少なくとも部分的に、回避することができる。
あるいは、分化を誘導しないか、または最小限にしか分化を誘導しないエピジェネティック修飾剤を使用することができる。例えば、HDAC阻害剤が処理計画において使用される時、分化を誘導しないか、または最小限にしか分化を誘導しないHDAC阻害剤、例えば、酪酸ナトリウムが使用される。
MEK阻害剤を使用する処理計画が、再プログラム効率を改良し得ることが、本発明においてさらに発見される。MEK阻害剤は、誘導多能性細胞の細胞自己再生も支持する。しかしながら、いくつかのMEK阻害剤は、細胞増殖を阻害する可能性がある。従って、本発明のいくつかの態様において、MEK阻害剤は、処理の後期段階、例えば、処理期間の最後の1週間、2週間、3週間、または4週間、後半、最後の1/3、最後の1/4、または最後の1/5においてのみ使用される。処理の初期段階、例えば、処理期間の最初の1週間、2週間、3週間、または4週間、前半、最初の1/3、最初の1/4、または最初の1/5において、MEK阻害剤を省くことにより、初期段階において細胞増殖が阻害されない。例えば、初期段階においては、非多能性の細胞を、MEK阻害剤の非存在下で、PDK1活性化剤または解糖代謝を促進する化合物（例えば、PDK1活性化剤）と接触させ、続いて、後期段階においては、非多能性細胞を、PDK1活性化剤または解糖代謝を促進する化合物（例えば、PDK1活性化剤）およびMEK阻害剤と接触させることにより、多能性を誘導することができる。いくつかの態様において、多能性を誘導する方法は、初期段階においては、非多能性細胞を、PDK1活性化剤または解糖代謝を促進する化合物（例えば、PDK1活性化剤）、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、およびヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤と接触させ、続いて、後期段階においては、非多能性細胞を、PDK1活性化剤または解糖代謝を促進する化合物（例えば、PDK1活性化剤）、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、およびMEK阻害剤と接触させる工程を含む。
II.PDK1活性化剤
3'-ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1または「PDK1」は、AKT/PKB、およびPKC、S6K、SGKを含むその他の多くのAGCキナーゼの活性化に関連したマスターキナーゼである。PDK1についての重要な役割は、インスリンシグナル伝達を含む、数種の増殖因子およびホルモンにより活性化されるシグナル伝達経路にある。PDK1の構造は、2個のドメイン；キナーゼドメインまたは触媒ドメインと、PHドメインとに分割され得る。PHドメインは、AKTを含む、いくつかの膜関連PDK1基質の局在および活性化において重要な、PDK1のホスファチジルイノシトール(3,4)-二リン酸およびホスファチジルイノシトール(3,4,5)-三リン酸との相互作用において主として機能する。キナーゼドメインは、3個のリガンド結合部位；基質結合部位、ATP結合部位、およびPIF結合ポケットを有する。S6KおよびプロテインキナーゼCを含む、数種のPDK1基質は、このPIF結合ポケットにおける結合を必要とする。PDK1の低分子アロステリック活性化剤は、ドッキング部位相互作用を必要とする基質の活性化を選択的に阻害することが示された。これらの化合物は、活性部位には結合せず、ドッキング部位相互作用を必要としないその他の基質をPDK1が活性化することを可能にする。PDK1は構成性に活性を有し、現在、PDK1のための公知の阻害タンパク質は存在しない。PDK1の主要なエフェクターAKTの活性化は、膜におけるPDK1のキナーゼドメインおよびPHドメインならびにAKTの適切な方向性を必要とすると考えられている。ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1は、SGK、PRKACA、ナトリウム水素交換輸送体調節因子2、PRKCD、プロテインキナーゼMζ（PKMζ）、PKN2、PRKCI、プロテインキナーゼN1、YWHAH、およびAKT1と相互作用することが示されている。
例示的なPDK1活性化剤には、スフィンゴシンが含まれる（King et al.,Journal of Biological Chemistry,275:18108-18113,2000）。PDK1の例示的なアロステリック活性化剤には、PS48（(Z)-5-(4-クロロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸）、PS08（(Z)-5-(4-ブロモ-2-フルオロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸）（Hindie et al.,Nature Chemical Biology,5:758-764,2009；Huse & Kuriyan,Cell 109:275-282,2002；Johnson & Lewis,Chem.Rev.101:2209-2242,2001）、および化合物1（2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸）（Engel et al.,EMBO J.25:5469-5480,2006）；化合物12Zおよび化合物13Z（12Z：2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸、(Z)-5-(ナフタレン-2-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸；13Z：(Z)-5-(1H-インドール-3-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸）のような3,5-ジフェニルペンタ-2-エン酸が含まれる（Stroba et al.,J.Med.Chem.52,4683-4693(2009)）。PS48は以下の式を有する：
Figure 2020150961
実施例に示されるように、細胞再プログラムへのPDK1活性化剤の包含は、単独で使用された時でも、効率を大幅に増加させることができ、HDAC阻害剤と組み合わせて使用された時には、さらなる効率の増加をもたらす。実施例に示されるように、特に、再プログラムにおいて4種（Oct4、Klf、Sox2、およびc-Myc）より少ない転写因子が細胞へ導入される場合には、ALK5阻害剤および／またはMek阻害剤を含むが、これらに限定されない、付加的な阻害剤も、再プログラムに含めることができる。
III.解糖代謝を促進する化合物
本明細書において定義されるように、代謝をモジュレートする化合物とは、炭水化物またはその他の分子の代謝をモジュレートする（例えば、促進するかまたは阻害する）化合物をさす。代謝をモジュレートする化合物には、解糖代謝を促進する化合物が含まれる。本明細書において定義されるように、解糖代謝を促進する化合物とは、（主として成体体細胞により使用される）ミトコンドリア酸化から（主としてESCにより使用される）解糖への細胞代謝再プログラムを容易にする化合物をさす。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖を促進する化合物、または解糖の上流の過程（例えば、PDK1経路、低酸素誘導因子経路、グルコース取り込み輸送体経路）を促進する化合物である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、ミトコンドリア呼吸を阻害するかまたは妨害する化合物である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖の下流の過程（例えば、脂肪酸合成、脂質合成、ヌクレオチド合成、およびアミノ酸合成）を促進する化合物である。解糖代謝を促進する化合物の例には、PDK1活性化剤、解糖活性化剤、解糖の基質、解糖中間体およびその代謝前駆物質、グルコース取り込み輸送体活性化剤、酸化的リン酸化阻害剤のようなミトコンドリア呼吸モジュレーター、ならびに低酸素誘導因子活性化剤が含まれる。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、単糖（例えば、細胞培養培地において一般的に使用される単糖）ではない。単糖の例には、D-グルコース、D-マンノース、およびD-ガラクトースのようなアルドース、ならびにD-フルクトースのようなケトースが含まれる。
1.解糖活性化剤
解糖活性化剤（例えば、解糖経路の活性化剤）は、当技術分野において公知である。解糖経路に関連した酵素は、当技術分野において公知であり、ヘキソキナーゼ、グルコキナーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、ホスホフクルトキナーゼ、アルドラーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、グリセルアルデヒド3-リン酸デヒドロゲナーゼ、ホスホグリセリン酸キナーゼ、ホスホグリセロムターゼ、エノラーゼ、ピルビン酸キナーゼ、および乳酸デヒドロゲナーゼを含む。いくつかの態様において、解糖活性化剤（例えば、解糖経路の活性化剤）は、解糖経路に関連した酵素の活性化剤である。いくつかの態様において、解糖活性化剤は、解糖経路に独特に関連した3種の特定の酵素：ヘキソキナーゼ、ホスホフクルトキナーゼ、およびピルビン酸キナーゼのうちの1種の活性化剤である。
ヘキソキナーゼ活性化剤の例には、リン酸、クエン酸、D-リンゴ酸、3-ホスホグリセリン酸、カテコールアミン、およびカテコールアミン誘導体が含まれる。いくつかの態様において、ヘキソキナーゼ活性化剤はアロステリック活性化剤である。いくつかの態様において、ヘキソキナーゼ活性化剤には、リン酸またはクエン酸が含まれない。
グルコキナーゼ活性化剤の例には、GKA1（6-[(3-イソブトキシ-5-イソプロポキシベンゾイル)アミノ]ニコチン酸；Brocklehurst et al.,Diabetes 53:535-541,2004）、GKA2（5-({3-イソプロポキシ-5-[2-(3-チエニル)エトキシ]ベンゾイル}アミノ)-1,3,4-チアジアゾール-2-カルボン酸；Brocklehurst et al.,Diabetes 53:535-541,2004）、RO-28-1675（Grimsby et al.,Science 301:370-373,2003）、および化合物A（N-チアゾール-2-イル-2-アミノ-4-フルオロ-5-(1-メチルイミダゾール-2-イル)チオベンズアミド；Kamata et al.,Structure 12,429-438,2004)、LY2121260（2-(S)-シクロヘキシル-1-(R)-(4-メタンスルホニルフェニル)-シクロプロパンカルボン酸チアゾール-2-イルアミド；Efanov et al.,Endocrinology,146:3696-3701,2005）が含まれる。いくつかの態様において、グルコキナーゼ活性化剤はアロステリック活性化剤である。付加的なグルコキナーゼ活性化剤は、WO00/058293、WO01/44216、WO01/83465、WO01/83478、WO01/85706、WO01/85707およびWO02/08209、WO07/075847、WO07/061923、WO07/053345、WO07/104034、WO07/089512、WO08/079787、WO08/111473、WO09/106203、WO09/140624、WO09/140624、WO08/079787、WO02/046173、WO07/006814、WO07/006760、WO06/058923、WO02/048106、WO07/125103、WO07/125105、WO08/012227、WO08/074694、WO08/078674、WO08/084043、WO08/084044、WO09/127544、WO09/127546、WO07/125103、WO07/125105、WO02/014312、WO04/063179、WO07/006761、WO07/031739、WO08/091770、WO08/116107、WO08/118718、WO09/083553、WO04/052869、WO05/123132、WO04/072066、WO07/117381、WO07/115967、WO08/005964、WO08/154563、WO09/022179、WO09/046784、WO08/005964、WO/10/080333、WO/03/095438、WO/06/016194、WO/05/066145、WO/07/115968、WO/07/143434、WO/08/005914、WO/08/149382、WO/09/018065、WO/09/047798、WO/09/046802、WO/10/029461、WO/08/005914、WO/08/149382、WO/07/143434、WO/10/103438、WO/03/047626、WO/05/095418、WO/08/104994、WO/09/082152、WO/09/082152、WO/05/049019、WO/07/048717、WO/09/042435、およびWO/09/042435に開示されている。
ホスホフクルトキナーゼ（またはフルクトース-6-Pキナーゼ）活性化剤の例には、フルクトース2,6-二リン酸が含まれる。
ピルビン酸キナーゼ活性化剤の例には、キシルロース5-P、セラミド、N-6-シクロペンチルアデノシンのようなA1アデノシン受容体のアゴニストが含まれる。付加的なピルビン酸キナーゼ活性化剤は、WO10/042867、WO10/042867、WO99/048490、およびWO09/025781に開示されている。
ホスホグルコイソメラーゼ活性化剤、アルドラーゼ活性化剤、グリセルアルデヒド3Pデヒドロゲナーゼ活性化剤、トリオースリン酸イソメラーゼ活性化剤、ホスホグリセリン酸キナーゼ、エノラーゼ、ホスホグリセリン酸ムターゼ、および乳酸デヒドロゲナーゼの例は、当技術分野において公知である。
2.解糖の基質
解糖の基質の例には、グルコース6-リン酸、フルクトース6-リン酸、フルクトース1,6-二リン酸、グリセルアルデヒド3-リン酸、1,3-ビスホスホグリセリン酸、3-ホスホグリセリン酸、2-ホスホグリセリン酸、およびホスホエノールピルビル酸が含まれる。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、単糖（例えば、グルコース）ではない。
3.解糖中間体およびその代謝前駆物質
解糖中間体は、脂肪酸、脂質、ヌクレオチド、およびアミノ酸のような、他の重要な分子の生合成のため、全て、様々に利用されている。従って、本明細書において定義されるように、解糖代謝を促進する化合物には、解糖の下流の過程（例えば、脂肪酸合成、脂質合成、ヌクレオチド合成、およびアミノ酸合成）を促進する化合物が含まれる。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物には、解糖中間体、例えば、これらの下流の生合成経路において利用された解糖中間体が含まれる。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物には、解糖中間体の代謝前駆物質が含まれる。本明細書において定義されるように、「代謝前駆物質」という用語は、例えば、細胞、組織、またはヒト身体において、解糖中間体が代謝的に変換される元の化合物をさす。
解糖中間体の例には、グルコース6-リン酸、フルクトース6-リン酸、フルクトース1,6-二リン酸、ジヒドロキシアセトンリン酸、グリセルアルデヒド3-リン酸、1,3-ビスホスホグリセリン酸、3-ホスホグリセリン酸、2-ホスホグリセリン酸、ホスホエノールピルビル酸、オキサロ酢酸、ピルビン酸、およびそれらの代謝前駆物質が含まれる。いくつかの態様において、解糖中間体は、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（NADH）である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、NADHの代謝前駆物質である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、ニコチン酸またはニコチンアミドである。
4.グルコース取り込み輸送体活性化剤
本明細書において定義されるように、「グルコース取り込み輸送体活性化剤」という用語は、グルコース取り込み輸送体の発現または活性を刺激するかまたはその他の様式で促進する化合物をさす。本明細書において定義されるように、「グルコース輸送体」という用語は、化合物（グルコースであってもよいし、グルコース類似体であってもよいし、フルクトースもしくはイノシトールのようなその他の糖であってもよいし、またはアスコルビン酸のような非糖であってもよい）を細胞膜輸送するタンパク質であって、かつ構造的類似性（例えば、他のグルコース輸送タンパク質との相同性）に基づき、グルコース輸送体「ファミリー」のメンバーであるタンパク質をさす。本明細書において定義されるように、グルコース輸送体には、グルコース以外の主要基質を有する輸送体タンパク質も含まれる。例えば、グルコース輸送体GLUTは、主としてフルクトースの輸送体であって、グルコース自体は低い親和性で輸送することが報告されている。同様に、グルコース輸送体HMITの主要基質は、ミオイノシトール（糖アルコール）である。本明細書において使用されるように、「グルコース輸送体」という用語には、特記しない限り、フルクトースおよびイノシトールの輸送体が含まれる。グルコース取り込み輸送体の例には、GLUT1〜12輸送体、HMIT輸送体、およびSGLT1〜6輸送体の群より選択されるグルコース輸送体が含まれる。
グルコース取り込み輸送体活性化剤の例には、インスリン、ピニトール（例えば、WO/2000/071111を参照のこと）、8-ブロモ-サイクリックAMP（例えば、Ogura et al.,Journal of Endocrinology,164:171-178,2000を参照のこと）、アラキドン酸（Fong et al.,Cellular Signalling,8:179-183,1996）、12-O-テトラ-デカノイル-ホルボール13-アセテートのようなホルボールエステル（例えば、Molecular Brain Research,15:221-226,1992を参照のこと）が含まれる。
5.ミトコンドリア呼吸モジュレーター（酸化的リン酸化阻害剤）
本明細書において定義されるように、「ミトコンドリア呼吸」または「ミトコンドリア酸化」という用語は、ミトコンドリア内の基質分子（例えば、糖、有機酸、ピルビン酸等）の酸化をさす。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、ミトコンドリア呼吸モジュレーターである。ミトコンドリア呼吸／酸化の程度に影響を与えることができる化合物は、一般に、「ミトコンドリア呼吸モジュレーター」またはその他の類似の用語で本明細書において呼ばれる。いくつかの態様において、本発明の方法のために有用なミトコンドリア呼吸モジュレーターは、ミトコンドリア呼吸またはミトコンドリア酸化を阻害するかまたは妨害する化合物である。いくつかの態様において、本発明の方法のために有用なミトコンドリア呼吸モジュレーターは、酸化的リン酸化阻害剤である。
本発明の酸化的リン酸化阻害剤は、酸化的リン酸化の1種もしくは複数種の酵素の阻害剤、または酸化的リン酸化脱共役剤であり得る。酸化的リン酸化酵素は、当技術分野において公知であり、酵素複合体I（NADH補酵素Qレダクターゼ）、II（コハク酸-補酵素Qレダクターゼ）、III（補酵素QシトクロムCレダクターゼ）、IV（シトクロムオキシダーゼ）、およびV（F0-F1,ATP合成酵素）を含む。
酵素複合体Iの阻害剤は、当技術分野において公知の任意のものであり、トリチルチオアラニン、カルミノマイシン、およびピペラジンジオン、ロテノン（rotenone）、アミタール、1-メチル4-フェニルピリジニウム（MPP+）、パラコート、メチレンブルー、およびフェリシアン化物（後者二つは電子受容体である）のいずれかを含み得るが、これらに限定されない。酵素複合体IIの阻害剤は、当技術分野において公知の任意のものである。補酵素Qの阻害剤は、当技術分野において公知の任意のものである。酵素複合体IIIの阻害剤は、当技術分野において公知の任意のものであり、ミキソチアゾール、アンチマイシンA、ユビセミキノン、シトクロムC、4,6-ジアミノトリアジン誘導体、メトトレキサート、またはフェナジンメトスルフェートおよび2,6-ジクロロフェノール-インドフェノールのような電子受容体を含み得るが、これらに限定されない。酵素複合体IVの阻害剤は、当技術分野において公知の任意のものであり、シアン化物、硫化水素、アジ化物、ギ酸、ホスフィン、一酸化炭素、および電子受容体フェリシアン化物を含み得るが、これらに限定されない。酵素複合体Vの阻害剤は、当技術分野において公知の任意のものであり、2-ヒドロキシグルタル酸、VM-26（4'-デメチル-エピポドフィロトキシンテニリデングルコシド）、トリチルチオアラニン、カルミノマイシン、ピペラジンジオン、ジニトロフェノール、ジニトロクレゾール、2-ヒドロキシ-3-アルキル-1,4-ナフトキノン、アポトリジン（apoptolidin）アグリコン、オリゴマイシン、オサマイシン（ossamycin）、シトバリシン（cytovaricin）、ナフトキノン誘導体（例えば、ジクロロアリル-ローソン（lawsone）およびラパコール）、ローダミン、ローダミン123、ローダミン6G、カルボニルシアニドp-トリフルオロメトキシフェニルヒドラゾン、ロテノン（rothenone）、サフラニンO、シヘキサチン、DDT、クロルデコン、ヒ酸、ペンタクロロフェノール、ベンゾニトリル、チアジアゾール除草剤、サリチル酸、陽イオン性両親媒性薬（アミオダロン、ペルヘキシリン）、グラミシジン、カルシマイシン、ペンタクロロブタジエニル-システイン（PCBD-cys）、ならびにトリフルオロカルボニルシアニドフェニルヒドラゾン（FCCP）を含み得るが、これらに限定されない。酸化的リン酸化のその他の阻害剤には、アトラクチロシド、DDT、遊離脂肪酸、リゾリン脂質、n-エチルマレイミド、マーサニル（mersanyl）、およびp-ベンゾキノンが含まれ得る。
酸化的リン酸化脱共役剤とは、電子伝達からの酸化的リン酸化の脱共役剤として機能する化合物をさす。酸化的リン酸化脱共役剤の例には、DNP、5-クロロ-3-tert-ブチル-2'-クロロ-4'-ニトロサリチルアニリド（S-13）、ナトリウム2,3,4,5,6-ペンタクロロフェノラート（PCP）、4,5,6,7-テトラクロロ-2-(トリフルオロメチル)-1H-ベンゾイミダゾール（TTFB）、フルフェナム酸（2-[3-(トリフルオロメチル)アニリノ]安息香酸）、3,5-ジ-tert-ブチル-4-ヒドロキシ-ベンジリデンマロノニトリル（SF6847）、カルボニルシアニドm-クロロフェニルヒドラゾン（CCCP）、カルボニルシアニドp-[トリフルオロメトキシ]-フェニル-ヒドラゾン（FCCP）、およびα-(フェニルヒドラゾノ)フェニルアセトニトリル誘導体；ならびに弱酸性フェノール、ベンゾイミダゾール、N-フェニルアントラニル酸、サリチルアニリド、フェニルヒドラゾン、サリチル酸、アシルジ-チオカルバジド酸、クマリン（cumarines）、および芳香族アミンを含む弱酸が含まれるが、これらに限定されない。
6.低酸素誘導因子活性化剤
低酸素誘導因子経路の活性化剤は、当技術分野において公知であり、アルカロイドおよびその他のアミノ酸誘導体、HIFアスパラギニルヒドロキシラーゼ（HIF阻害因子またはFIH）およびHIFプロリルヒドロキシラーゼ（HPHまたはPHD）の阻害剤、グリコーゲン合成酵素キナーゼ3β（GSK3β）の阻害剤、一酸化窒素（NO）ドナー、微小管脱重合剤（MDA）、フェノール化合物、テルペン／ステロイド、ならびにプロスタグランジンE2（PGE2）を含む。アルカロイドおよびその他のアミノ酸誘導体の例には、デフェロキサミンおよびデスフェリ-エキソケリンDFE 722 SM、シクロピロクスオラミン［Loprox（登録商標）、6-シクロヘキシル-1-ヒドロキシ-4-メチル-2(1H)-ピリドン2-アミノエタノール］、ならびに8-メチル-ピリドキサチンが含まれる。グリコーゲン合成酵素キナーゼ3β（GSK3β）の阻害剤の例には、インジルビン、5-ヨードインジルビン-3'-オキシムおよび5-メチルインジルビン-3'-オキシムのようなインジルビンの誘導体が含まれる。一酸化窒素（NO）ドナーの例には、S-ニトロソ-N-アセチル-D,L-ペニリシラミン（SNAP）、3-(ヒドロキシ-1-(1-メチルエチル)-2-ニトロソヒドラジノ)-1-プロパンアミン（NOC5）、ジアゼン-1-イウム-1,2-ジオレート（NOC-18）、S-ニトロソグルタチオン（GSNO）、スペルミンNONOエート（NOと天然生成物スペルミンとの複合体）、ジエチルアミンNONOエート、およびジエチルトリアミンNONOエートが含まれる。微小管脱重合剤（MDA）の例には、植物アルカロイドビンブラスチン、コルヒチン、およびノコダゾールのような合成MDAが含まれる。フェノール化合物の例には、ジベンゾイルメタン（DBM）、フラボノイドケルセチン（3,3',4',5,7-ペンタヒドロキシフラボン）、(-)-エピカテキン-3-ガレート（ECG）、および(-)-エピガロカテキン-3-ガレート（EGCG）が含まれる。テルペンおよびステロイドの例には、セスキテルペン-トロポロン（例えば、ピクニジオン、エポロンA、およびエポロンB）、4-ヒドロキシエストラジオール（4-OHE2）、ジヒドロテストステロン、メチルトリエノロン（R1881）、ならびにジテルペンエステルホルボール12-O-ミリステート13-アセテート（PMA、12-O-テトラデカノイルホルボール13-アセテートまたはTPAとしても公知）が含まれる。
HIFアスパラギニルヒドロキシラーゼ（HIF阻害因子またはFIH）およびHIFプロリルヒドロキシラーゼ（HPHまたはPHD）の阻害剤の例には、N-オキサロイルグリシン（5,NOG）のような2-オキソグルタル酸（2OG）、NOGのエステル誘導体（例えば、DMOG（ジメチル-オキサリルグリシン））、N-((3-ヒドロキシ-6-クロロキノリン-2-イル)カルボニル)-グリシン、3-ヒドロキシピリジン-2-カルボニル-グリシン、3,4-ジヒドロキシベンゾエート、ピリジン-2,5-ジカルボキシレート、ピリジン-2,4-ジカルボキシレート、N-オキサリル-2S-アラニン、Mole et al.,Bioorg Med Chem Lett.13:2677-80,2003に記載されたような2OGの付加的な誘導体、アラホプシンおよびデアラニルアラホプシン、デアラニルアラホプシンアナログ3-カルボキシメチレンN-ヒドロキシスクシニミド、3-カルボキシ-N-ヒドロキシピロリドン、l-ミモシン（L-Mim）、エチル3,4-ジヒドロキシベンゾエート（3,4-DHB）、ならびに6-クロロ-3-ヒドロキシキノリン（hydroxychinolin）-2-カルボン酸-N-カルボキシメチルアミド（S956711）が含まれる。付加的なHIFアスパラギニルヒドロキシラーゼおよびHIFプロリルヒドロキシラーゼの阻害剤は、例えば、 Ivan et al.,Proc Natl Acad Sci USA 99:13459-13464,2002、WO03/049686、WO03/080566、およびWO06/084210、WO10/056767に記載されている。
HIF経路のその他の活性化剤には、鉄キレート剤（例えば、デフェロキサミン、2,2'-ピリジル1,10-フェナントロリン、Ca2+キレート剤BAPTA（1,2-ビス(2-アミノフェノキシ)エタン-N,N,N',N'-四酢酸）、遷移金属（例えば、コバルト、ニッケル、クロミウム(VI)、および銅）、有機水銀化合物マーサリル、ならびにFG-0041（1,10-フェナントロリンと構造的に関連している化合物）が含まれる。
HIF経路の付加的な活性化剤には、HIF-1翻訳をアップレギュレートするタンパク質が含まれる。プロテインキナーゼC（PKC）は、ホスファチジルイノシトール3-キナーゼ（PI3K）経路のHIF-1α転写の速度を増加させ、PI3K経路と協同して機能し、そのことによってHIF-1α翻訳も増強する。PKC経路は、HIF-1αのようなmRNA転写物を特異的に認識するS6リボソームタンパク質の発現を活性化する。正常酸素圧条件におけるS6タンパク質のリン酸化を介して、HIF-1α mRNA翻訳の速度は、大幅に増加し、このサブユニットのプロテアソーム分解の効果に効果的に対抗し、細胞内のHIF-1複合体のレベルを増加させることができる。PI3K経路は、リポ多糖のような様々なメディエーターが、血管平滑筋細胞およびマクロファージにおけるHIF-1αの活性化に影響を与えるための、主要な手段として同定された（Dery et al.,Int J Biochem Cell Bio.37:535-540,2004；Page et al.,J Biol Chem.277:48403-48409,2002）。
マクロファージ由来ペプチドPR39は、HIF-1αの分解を減少させることによりHIF-1αを安定化し、インビトロにおける血管構造の形成の加速、およびマウスにおける心筋血管系の増加をもたらすことが示されている（Li et al.,Nat Med 6:49-55.2000）。HIF-1の直接誘導は、VHLにより媒介される分解を阻止するODDDポリペプチドのN末端またはC末端を使用することにより達成された（Maranchie et al.,Cancer Cell 1:247-255,2002）。
HIF経路活性化剤には、さらに、増殖因子、サイトカイン、およびホルモンのような、その他の非低酸素生理学的刺激が含まれる。HIF経路を活性化する増殖因子の例には、インスリン様増殖因子（IGF）-1およびIGF-2、IGF結合タンパク質（IGFBP）-2およびIGFBP-3、EGF、塩基性繊維芽細胞増殖因子（bFGF）、ならびにヘレグリンが含まれる。HIF経路を活性化するサイトカインの例には、腫瘍壊死因子α（TNFα）、インターロイキン-1β（IL-1β）、およびIL-1が含まれる。HIF経路を活性化するホルモンの例には、血管ホルモンアンジオテンシンIIおよびトロンビン、甲状腺ホルモン、ならびに卵胞刺激ホルモンが含まれる。酸化還元タンパク質チオレドキシン-1（Trx-1）および酸化低密度リポタンパク質（oxLDL）のようなその他の生理学的因子も、HIF-1αタンパク質を誘導し、HIF-1を活性化することができる。
7.PDK1活性化剤
いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物はPDK1活性化剤である。例示的なPDK1活性化剤は、本明細書中の前記セクションIIに記載されている。
IV.HDAC阻害剤
例示的なHDAC阻害剤には、HDACと結合する抗体、HDACのドミナントネガティブ異型、ならびにHDACを標的とするsiRNAおよびアンチセンス核酸が含まれ得る。HDAC阻害剤には、TSA（トリコスタチンA）（例えば、Adcock,British Journal of Pharmacology 150:829-831(2007)を参照のこと）、VPA（バルプロ酸）（例えば、Munster et al.,Journal of Clinical Oncology 25:18S(2007):1065を参照のこと）、酪酸ナトリウム（NaBu）（例えば、Han et al.,Immunology Letters 108:143-150(2007)を参照のこと）、SAHA（スベロイルアニリドヒドロキサム酸またはボリノスタット）（例えば、Kelly et al.,Nature Clinical Practice Oncology 2:150-157(2005)を参照のこと）、ナトリウムフェニルブチレート（例えば、Gore et al.,Cancer Research 66:6361-6369(2006)を参照のこと）、デプシペプチド（FR901228、FK228）（例えば、Zhu et al.,Current Medicinal Chemistry 3(3):187-199(2003)を参照のこと）、トラポキシン（TPX）（例えば、Furumai et al.,PNAS 98(1):87-92(2001)を参照のこと）、環式ヒドロキサム酸含有ペプチド1（CHAP1）（Furumai（前記）を参照のこと）、MS-275（例えば、参照により本明細書に組み入れられるCarninciらのWO2008/126932を参照のこと）、LBH589（例えば、参照により本明細書に組み入れられるGohらのWO2008/108741を参照のこと）、およびPXD101（Goh（前記）を参照のこと）が含まれるが、これらに限定されない。一般に、全般的なレベルで、多能性細胞はより多いヒストンアセチル化を有し、分化細胞はより少ないヒストンアセチル化を有する。ヒストンアセチル化は、ヒストンおよびDNAのメチル化の調節にも関与している。いくつかの態様において、HDAC阻害剤は、サイレンシングを受けた多能性遺伝子の活性化を容易にする。
V.ALK5阻害剤
TGFβ受容体（例えば、ALK5）阻害剤には、TGFβ受容体（例えば、ALK5）に対する抗体、TGFβ受容体（例えば、ALK5）のドミナントネガティブ異型、およびTGFβ受容体（例えば、ALK5）の発現を抑制するアンチセンス核酸が含まれ得る。例示的なTGFβ受容体／ALK5阻害剤には、SB431542（例えば、Inman,et al.,Molecular Pharmacology 62(1):65-74(2002)を参照のこと）、3-(6-メチル-2-ピリジニル)-N-フェニル-4-(4-キノリニル)-1H-ピラゾール-1-カルボチオアミドとしても公知のA-83-01（例えば、Tojo et al.,Cancer Science 96(11):791-800(2005)を参照のこと、例えば、Toicris Bioscienceから市販されている）；2-(3-(6-メチルピリジン-2-イル)-1H-ピラゾール-4-イル)-1,5-ナフチリジン、Wnt3a/BIO（例えば、参照により本明細書に組み入れられるDaltonらのWO2008/094597を参照のこと）、BMP4（Dalton（前記）を参照のこと）、GW788388（-{4-[3-(ピリジン-2-イル)-1H-ピラゾール-4-イル]ピリジン-2-イル}-N-(テトラヒドロ-2H-ピラン-4-イル）ベンズアミド）（例えば、Gellibert et al.,Journal of Medicinal Chemistry 49(7):2210-2221(2006)を参照のこと）、SM16（例えば、Suzuki et al.,Cancer Research 67(5):2351-2359(2007)を参照のこと）、IN-1130（3-((5-(6-メチルピリジン-2-イル)-4-(キノキサリン-6-イル)-1H-イミダゾール-2-イル)メチル)ベンズアミド）（例えば、Kim et al.,Xenobiotica 38(3):325-339(2008)を参照のこと）、GW6604（2-フェニル-4-(3-ピリジン-2-イル-1H-ピラゾール-4-イル)ピリジン）（例えば、de Gouville et al.,Drug News Perspective 19(2):85-90(2006)を参照のこと）、SB-505124（2-(5-ベンゾ[1,3]ジオキソール-5-イル-2-tert-ブチル-3H-イミダゾール-4-イル)-6-メチルピリジン塩酸塩）（例えば、DaCosta et al.,Molecular Pharmacology 65(3):744-752(2004)を参照のこと）、およびピリミジン誘導体（例えば、参照により本明細書に組み入れられるStieflらのWO2008/006583にリストされたものを参照のこと）、SU5416；2-(5-ベンゾ[1,3]ジオキソール-5-イル-2-tert-ブチル-3H-イミダゾール-4-イル)-6-メチルピリジン塩酸塩（SB-505124）；レルデリムマブ（lerdelimumb）（CAT-152）；メテリムマブ（metelimumab）（CAT-192）；GC-1008；ID11；AP-12009；AP-11014；LY550410；LY580276；LY364947；LY2109761；SB-505124；SB-431542；SD-208；SM16；NPC-30345；Ki26894；SB-203580；SD-093；グリーベック（Gleevec）；3,5,7,2',4'-ペンタヒドロキシフラボン（モリン）；アクチビン-M108A；P144；ならびに可溶性TBR2-Fc（例えば、Wrzesinski et al.,Clinical Cancer Research 13(18):5262-5270(2007)；Kaminska et al.,Acta Biochimica Polonica 52(2):329-337(2005)；およびChang et al.,Frontiers in Bioscience 12:4393-4401(2007)を参照のこと）が含まれるが、これらに限定されない。さらに、「ALK5阻害剤」は非特異的キナーゼ阻害剤を包含するものではないが、「ALK5阻害剤」は、例えば、SB-431542（例えば、Inman et al.,J Mol.Phamacol.62(1):65-74(2002）を参照のこと）のような、ALK5に加えてALK4および／またはALK7を阻害する阻害剤を包含するものと理解されるべきである。本発明の範囲を制限するためではないが、ALK5阻害剤は間葉系上皮変換／移行（MET）過程に影響を与えると考えられている。TGFβ／アクチビン経路は、上皮間葉系移行（EMT）のための駆動因子である。従って、TGFβ／アクチビン経路の阻害によって、MET（即ち、再プログラム）過程を容易にすることができる。
ALK5阻害の効果を示す本明細書中のデータを考慮すると、TGFβ／アクチビン経路の阻害は類似した効果を有するであろうと考えられる。従って、TGFβ／アクチビン経路の（例えば、上流または下流の）任意の阻害剤が、本明細書中の各パラグラフに記載されたようなALK5阻害剤と組み合わせて、またはその代わりに、使用可能である。例示的なTGFβ／アクチビン経路阻害剤には、TGFβ受容体阻害剤、SMAD2/3リン酸化の阻害剤、SMAD2/3およびSMAD4の相互作用の阻害剤、ならびにSMAD6およびSMAD7の活性化剤／アゴニストが含まれるが、これらに限定されない。さらに、下記分類は、組織的な目的のためのものに過ぎず、化合物が経路内の一つまたは複数の点に影響を与える場合があり、従って、化合物が定義されたカテゴリのうちの複数において機能する場合があることを、当業者は承知しているであろう。
SMAD2/3リン酸化の阻害剤には、SMAD2またはSMAD3に対する抗体、SMAD2またはSMAD3のドミナントネガティブ異型、およびSMAD2またはSMAD3を標的とするアンチセンス核酸が含まれ得る。阻害剤の具体例には、PD169316；SB203580；SB-431542；LY364947；A77-01；および3,5,7,2',4'-ペンタヒドロキシフラボン（モリン）が含まれる。例えば、各々、参照により内容が本明細書に組み入れられる、Wrzesinski（前記)；Kaminska（前記）；Shimanuki,et al.,Oncogene 26:3311-3320(2007)；およびKataokaらのEP1992360を参照のこと。
SMAD2/3およびSMAD4の相互作用の阻害剤には、SMAD2、SMAD3、および／またはSMAD4に対する抗体、SMAD2、SMAD3、および／またはSMAD4のドミナントネガティブ異型、ならびにSMAD2、SMAD3、および／またはSMAD4を標的とするアンチセンス核酸が含まれ得る。SMAD2/3およびSMAD4の相互作用の阻害剤の具体例には、Trx-SARA、Trx-xFoxH1b、およびTrx-Lef1が含まれるが、これらに限定されない（例えば、Cui et al.,Oncogene 24:3864-3874(2005)およびZhao et al.,Molecular Biology of the Cell,17:3819-3831(2006)を参照のこと）。
SMAD6およびSMAD7の活性化剤／アゴニストには、SMAD6またはSMAD7に対する抗体、SMAD6またはSMAD7のドミナントネガティブ異型、およびSMAD6またはSMAD7を標的とするアンチセンス核酸が含まれるが、これらに限定されない。阻害剤の具体例には、smad7-as PTO-オリゴヌクレオチドが含まれるが、これに限定されない。例えば、両方とも参照により本明細書に組み入れられる、MiyazonoらのUS6534476、およびSteinbrecherらのUS2005119203を参照のこと。
VI.MEK阻害剤
MEKの阻害剤には、MEKに対する抗体、MEKのドミナントネガティブ異型、ならびにMEKの発現を抑制するsiRNAおよびアンチセンス核酸が含まれ得る。MEK阻害剤の具体例には、PD0325901（例えば、Rinehart,et al.,Journal of Clinical Oncology 22:4456-4462(2004) を参照のこと）、PD98059（例えば、Cell Signaling Technologyから入手可能）、U0126（例えば、Cell Signaling Technologyから入手可能）、SL327（例えば、Sigma-Aldrichから入手可能）、ARRY-162（例えば、Array Biopharmaから入手可能）、PD184161（例えば、Klein et al.,Neoplasia 8:1-8(2006)を参照のこと）、PD184352（CI-1040）（例えば、Mattingly et al.,The Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics 316:456-465(2006)を参照のこと）、スニチニブ（例えば、参照により本明細書に組み入れられるVossらのUS2008004287を参照のこと）、ソラフェニブ（Voss（前記）を参照のこと）、バンデタニブ（Voss（前記）を参照のこと）、パゾパニブ（Voss（前記）を参照のこと）、アキシチニブ（Voss（前記）を参照のこと）、およびPTK787（Voss（前記）を参照のこと）が含まれるが、これらに限定されない。
現在、数種のMEK阻害剤が臨床試験評価を受けている。CI-1040は、癌のため第I相および第II相臨床試験において評価されている（例えば、Rinehart et al.,Journal of Clinical Oncology 22(22):4456-4462(2004)を参照のこと）。臨床試験において評価されているその他のMEK阻害剤には、PD184352（例えば、English et al.,Trends in Pharmaceutical Sciences 23(1):40-45(2002)を参照のこと）、BAY43-9006（例えば、Chow et al.,Cytometry(Communications in Clinical Cytometry)46:72-78(2001)を参照のこと）、PD-325901（PD0325901）、GSK1120212、ARRY-438162、RDEA119、AZD6244（ARRY-142886またはARRY-886）、RO5126766、XL518、およびAZD8330（ARRY-704）が含まれる。例えば、ワールドワイドウェブ上のclinicaltrials.govに位置するNational Institutes of Healthからの情報、およびワールドワイドウェブ上のcancer.gov/clinicaltrialsに位置するNational Cancer Instituteからの情報も参照のこと。
VII.再プログラム
現在までに、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞（iPSC）へ誘導するため、多数の異なる方法およびプロトコルが確立された。iPSCは、奇形腫形成およびキメラ寄与により判断される、形態学、増殖、および多能性に関して、ESCに類似している。任意で、HDAC阻害剤と組み合わせられ、任意で、ALK5阻害剤と組み合わせられ、任意で、Mek阻害剤と組み合わせられる、PDK1活性化剤または解糖代謝を促進する化合物（例えば、PDK1活性化剤）は、iPSC生成のための再プログラムプロトコルを本質的に改良するであろうと考えられる。改良され得る再プログラムプロトコルには、Octポリペプチド（Oct3/4を含むが、これに限定されない）、Soxポリペプチド（Sox2を含むが、これに限定されない）、Klfポリペプチド（Klf4を含むが、これに限定されない）、および／またはMycポリペプチド（c-Mycを含むが、これに限定されない）より選択される1種または複数種の再プログラム転写因子の導入を含むものが含まれると考えられる。従って、いくつかの態様において、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件には、Octポリペプチド（Oct3/4を含むが、これに限定されない）、Soxポリペプチド（Sox2を含むが、これに限定されない）、Klfポリペプチド（Klf4を含むが、これに限定されない）、および／またはMycポリペプチド（c-Mycを含むが、これに限定されない）より選択される1種または複数種の再プログラム転写因子が細胞へ導入される条件が含まれる。実施例に述べられるように、PDK1活性化剤は、わずか1種の再プログラム転写因子（例えば、Oct4単独）による再プログラムを改良することが示された。従って、いくつかの態様において、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件には、1種の再プログラム転写因子（例えば、Oct4単独）が細胞へ導入される条件が含まれる。
いくつかの態様において、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件には、例えば、標的細胞へ導入された組換え発現カセットから発現させることにより、または、ポリペプチドが細胞に入るよう、外因性再プログラム転写因子ポリペプチドの存在下で細胞をインキュベートすることにより、再プログラム因子を細胞へ導入することが含まれる。
ESCに高発現している4種の転写因子（Oct-3/4、Sox2、KLF4、およびc-Myc）によるマウス繊維芽細胞のレトロウイルス形質導入が、誘導多能性幹（iPS）細胞を生成することが、研究によって示されている。Takahashi,K.& Yamanaka,S.Cell 126,663-676(2006)；Okita,K.,Ichisaka,T.& Yamanaka,S.Nature 448,313-317(2007)；Wernig,M.et al.Nature 448,318-324(2007)；Maherali,N.et al.Cell Stem Cell 1,55-70(2007)；Meissner,A.,Wernig,M.& Jaenisch,R.Nature Biotechnol.25,1177-1181(2007)；Takahashi,K.et al.Cell 131,861-872(2007)；Yu,J.et al.Science 318,1917-1920(2007)；Nakagawa,M.et al.Nature Biotechnol.26,101-106(2007)；Wernig,M.,Meissner,A.,Cassady,J.P.& Jaenisch,R.Cell Stem Cell.2,10-12(2008)を参照のこと。ESCに高発現している転写因子によるヒト体細胞の再プログラムも、研究によって証明されている：Hockemeyer et al.Cell Stem Cell.11;3(3):346-53(2008)；Lowry et al.Proc Natl Acad Sci USA.105(8):2883-8(2008)；Park et al.Nature.10;451(7175):141-6(2008)；Nakagawa et al.Nat Biotechnol.Jan;26(1):101-6(2008)；Takahashi et al.Cell.131(5):861-72(2007)；およびYu et al.Science.318(5858):1917-20(2007)。そのような方法は、PDK1活性化剤または1種または複数種の解糖代謝を促進する化合物（例えば、PDK1活性化剤）を含め、任意で、本明細書に記載されるようなその他の薬剤も含めることにより、改良されると考えられる。
組み込まれた外因性配列を保持している標的細胞ゲノムから発生する安全性の問題を解決するため、多数の修飾された遺伝学的プロトコルがさらに開発されており、本発明によって使用可能である。これらのプロトコルは、潜在的に低下したリスクを有するiPS細胞を作製し、再プログラム遺伝子を送達するための非組み込み型（non-integrating）アデノウイルス（Stadtfeld,M.,et al.(2008)Science 322,945-949）、再プログラムプラスミドの一過性トランスフェクション（Okita,K.,et al.(2008)Science 322,949-953）、piggyBac転位系（Woltjen,K.,et al.(2009).Nature 458,766-770、Yusa et al.(2009)Nat.Methods 6:363-369、Kaji,K.,et al.(2009)Nature 458,771-775）、Cre切除可能ウイルス（Soldner,F.,et al.(2009)Cell 136,964-977）、およびoriP/EBNA1に基づくエピソーム発現系（Yu,J.,et al.(2009)Science DOI:10.1126）（各々、参照によりその内容全体が本明細書に組み入れられる）を含む。従って、いくつかの態様において、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件には、上記プロトコルのうちのいずれかに従い、非組み込み型アデノウイルス、再プログラムプラスミドの一過性トランスフェクション、piggyBac転位系、re切除可能ウイルス（Soldner,F.,et al.(2009)Cell 136,964-977）、および／またはoriP/EBNA1に基づくエピソーム発現系により、再プログラム因子が送達される条件が含まれる。いくつかの態様において、上記プロトコルのうちのいずれかにおいて、PDK1活性化剤、または1種もしくは複数種の解糖代謝を促進する化合物（例えば、PDK1活性化剤）が細胞と共にインキュベートされ、任意で、本明細書に記載されるようなその他の薬剤も細胞と共にインキュベートされる。
上述のように、再プログラムは、細胞へのタンパク質の導入を可能にする条件の下で、1種または複数種のタンパク質の存在下で、標的細胞を培養することを含み得る。例えば、Zhou H et al.,Cell Stem Cell.2009 May 8;4(5):381-4；WO/2009/117439を参照のこと。ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドの導入を含まない、多数の異なる方法により、外因性ポリペプチド（即ち、細胞の外部から供給され、かつ／または細胞により産生されないタンパク質）を細胞へ導入することが可能である。いくつかの態様において、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件には、転写因子の細胞（およびいくつかの態様において細胞核）へ入る能力を増強するポリペプチドに連結された（例えば、融合タンパク質として、またはその他の様式で共有結合的にもしくは非共有結合的に連結された）関心対象の転写因子ポリペプチドを各々含む、1種または複数種の外因性タンパク質を細胞へ導入することが含まれる。
膜輸送を増強するポリペプチド配列の例には、ショウジョウバエホメオタンパク質アンテナペディア（antennapedia）転写タンパク質（AntHD）（Joliot et al.,New Biol.3:1121-34,1991；Joliot et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,88:1864-8,1991；Le Roux et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,90:9120-4,1993）、ヘルペス単純ウイルス構造タンパク質VP22（Elliott and O'Hare,Cell 88:223-33,1997）；HIV-1転写活性化剤TATタンパク質（Green and Loewenstein,Cell 55:1179-1188,1988；Frankel and Pabo,Cell 55:1 289-1193,1988）；カポジFGFシグナル配列（kFGF）；タンパク質形質導入ドメイン-4（PTD4）；ペネトラチン、M918、トランスポータン（Transportan）-10；核移行配列、PEP-Iペプチド；両親媒性ペプチド（例えば、MPGペプチド)；米国特許第6,730,293号に記載されような、送達を増強する輸送体（少なくとも5〜25個以上の連続するアルギニンを含むペプチド配列、または30、40、もしくは50個のアミノ酸の連続するセットの中の5〜25個以上のアルギニンを含むが、これらに限定されない；十分な、例えば、少なくとも5個のグアニジノモエティまたはアミジノモエティを有するペプチドを含むが、これらに限定されない）；および市販されているPenetratin（商標）1ペプチド、およびDaitos S.A.（Paris,France）から入手可能なVectocell（登録商標）プラットフォームのDiatos Peptide Vector（「DPV」）が含まれるが、これらに限定されない。WO/2005/084158およびWO/2007/123667、ならびにそれらに記載された付加的な輸送体も参照のこと。これらのタンパク質は、原形質膜を通過することができるのみならず、本明細書に記載された転写因子のような他のタンパク質の付着は、これらの複合体の細胞取り込みを刺激するのに十分である。会合した分子の細胞への導入を媒介することができる多数のポリペプチドが、以前に記載されており、本発明に適合し得る。例えば、Langel(2002）Cell Penetrating Peptides CRC Press,Pharmacology and Toxicology Seriesを参照のこと。
膜輸送を増強する例示的なポリペプチド配列には、以下のものが含まれる：
Figure 2020150961
いくつかの態様において、膜輸送を増強するポリペプチドは、少なくとも5個以上の連続するかまたは連続しないアルギニンを含むペプチド配列（例えば、8アルギニンペプチド）である。いくつかの態様において、膜輸送を増強するポリペプチドは、少なくとも7個以上の連続するかまたは連続しないアルギニンを含むペプチド配列である。例えば、膜輸送を増強するポリペプチドは、11個の連続するアルギニンを含むペプチド配列、例えば、
Figure 2020150961
である。上述のように、輸送を増強する配列の中のアルギニンは全て連続している必要はない。いくつかの態様において、ポリアルギニン（例えば、連続するかまたは連続しない）領域は、少なくとも5、8、10、12、15、20アミノ酸長、またはそれ以上であり、少なくとも、例えば、40％、50％、60％、70％、80％、90％、またはそれ以上のアルギニンを有する。
いくつかの態様において、細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件には、1種もしくは複数種の外因性ポリペプチド、例えば、Octポリペプチド（Oct3/4を含むが、これに限定されない）、Soxポリペプチド（Sox2を含むが、これに限定されない）、Klfポリペプチド（Klf4を含むが、これに限定されない）、および／またはMycポリペプチド（c-Mycを含むが、これに限定されない）が、リポフェクション、電気穿孔、リン酸カルシウム沈殿、粒子銃、および／もしくは微量注入のような伝統的な方法によって細胞へ導入されるか、またはタンパク質送達剤によって細胞へ導入されてもよい条件が含まれる。例えば、共有結合または非共有結合で接着した脂質、例えば、共有結合で接着したミリストイル基によって、外因性ポリペプチドを細胞へ導入することができる。いくつかの態様において、リポフェクションのために使用される脂質は、任意で、細胞送達モジュールから排除される。いくつかの態様において、本明細書に記載された転写因子ポリペプチドは、リポソームまたは（市販されているFugene6およびLipofectamineのような）脂質カクテルの一部分として外因的に導入される。もう一つの別法において、転写因子タンパク質は、標的細胞へ微量注射されるかまたはその他の様式で直接導入されてもよい。いくつかの態様において、転写因子ポリペプチドは、Profectタンパク質送達試薬、例えば、Profect-P1およびProfect-P2（Targeting Systems,El Cajon,CA）を使用して、またはProject（登録商標）トランスフェクション試薬（Pierce,Rockford IL,USA）を使用して、細胞へ送達される。いくつかの態様において、転写因子ポリペプチドは、単層ナノチューブ（SWNT）を使用して、細胞へ送達される。
WO/2009/117439の実施例に論じられるように、本発明の転写因子ポリペプチドと共に、長期間、細胞をインキュベートすることは、細胞にとって毒性であり得る。従って、本発明のいくつかの態様において、非多能性哺乳動物細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件には、PDK1活性化剤または1種もしくは複数種の解糖代謝を促進する化合物（例えば、PDK1活性化剤）をインキュベートし、任意で、HDAC阻害剤、ALK5阻害剤、および／またはMek阻害剤もインキュベートし、1種もしくは複数種の以下のポリペプチドの非存在下で細胞をインキュベートする期間を介在させて、断続的に、非多能性哺乳動物細胞を、Octポリペプチド（Oct3/4を含むが、これに限定されない）、Soxポリペプチド（Sox2を含むが、これに限定されない）、Klfポリペプチド（Klf4を含むが、これに限定されない）、および／またはMycポリペプチド（c-Mycを含むが、これに限定されない）の1種もしくは複数種と共にインキュベートすることが含まれる。いくつかの態様において、ポリペプチドとのインキュベーションおよびポリペプチドなしのインキュベーションのサイクルは、2回、3回、4回、5回、6回、またはそれ以上、繰り返されてもよく、多能性細胞の発達を達成するために十分な長さの時間、実施される（即ち、タンパク質とのインキュベーションおよびタンパク質なしのインキュベーション）。
様々な薬剤（例えば、PDK1活性化剤または解糖代謝を促進する化合物、HDAC阻害剤、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、MEK/ERK経路阻害剤、および／またはRho GTPase/ROCK阻害剤等）は、（例えば、発現カセットを介して、またはタンパク質として送達される）プログラム転写因子の送達の前に、それと同時に、またはその後に、非多能性細胞と接触させられ得る。便宜のため、再プログラム因子が送達される日を「1日目」と指定する。いくつかの態様において、阻害剤は、約3〜7日目に、凝集物中で（即ち、「カクテル」として）細胞と接触させられ、7〜14日間継続される。あるいは、いくつかの態様において、カクテルは、0日目（即ち、再プログラム因子の1日前）に細胞と接触させられ、約14〜30日間インキュベートされる。
関心対象のタンパク質が導入される細胞は、哺乳動物細胞であり得る。細胞は、ヒトであってもよいし、または非ヒト（例えば、霊長類、ラット、マウス、ウサギ、ウシ、イヌ、ネコ、ブタ等）であってもよい。細胞は、例えば、培養物、または組織、液体等の中にあってよく、かつ／または生物に由来してもよいしもしくは生物の中にあってもよい。多能性へと誘導可能な細胞には、ケラチノサイト細胞、毛包細胞、HUVEC（ヒト臍静脈内皮細胞）、臍帯血細胞、神経前駆細胞、および繊維芽細胞が含まれるが、これらに限定されない。
いくつかの態様において、低分子は、多能性細胞（例えば、iPS細胞）の生成の過程の効率を改良することができる。例えば、改良された効率は、そのような多能性細胞を生成するための時間を加速することにより（例えば、多能性細胞の発達までの時間を、低分子を含まない類似または同一の過程と比較して、少なくとも1日、短縮することにより）顕在化し得る。あるいは、またはそれと組み合わせて、低分子は、特定の過程により生成される多能性細胞の数を増加させることができる（例えば、所定の期間内の数を、低分子を含まない類似または同一の過程と比較して、少なくとも10％、30％、50％、100％、200％、500％等、増加させる）。
任意で、または付加的に、低分子は、多能性細胞をもたらすため、これらのタンパク質のうちの1種の必要な発現として一般に理解されるものを「補完する」かまたはそれに取って代わることができる。転写因子のうちの1種に機能的に取って代わる薬剤と、細胞を接触させることにより、その薬剤によって取って代わられたかまたは補完された転写因子を除く、上にリストされた転写因子の全てによって、多能性細胞を生成することが可能である。
VIII.形質転換
本発明は、組換え遺伝学の領域のルーチンの技術を利用する。本発明において有用な一般的な方法を開示している基本的な参考書には、Sambrook et al.,Molecular Cloning,A Laboratory Manual(3rd ed.2001)；Kriegler,Gene Transfer and Expression:A Laboratory Manual(1990)；およびCurrent Protocols in Molecular Biology(Ausubel et al.,eds.,1994)が含まれる。いくつかの態様において、1種または複数種の再プログラム転写因子の発現のための発現カセットが、細胞へ導入される。
いくつかの態様において、細胞の種と、発現させるタンパク質の種は、同一である。例えば、マウス細胞が使用される場合には、マウスオルソログが細胞へ導入される。ヒト細胞が使用される場合には、ヒトオルソログが細胞へ導入される。
2種以上のタンパク質を細胞において発現させる場合、1種または複数種の発現カセットが使用され得ることが認識されるであろう。例えば、1種の発現カセットが複数種のポリペプチドを発現する場合には、ポリシストロン性発現カセットが使用され得る。
本発明の発現カセットを細胞へ導入するため、任意の型のベクターを使用することができる。例示的なベクターには、プラスミドおよびウイルスベクターが含まれるが、これらに限定されない。例示的なウイルスベクターには、例えば、アデノウイルスベクター、AAVベクター、およびレトロウイルス（例えば、レンチウイルス）ベクターが含まれる。
本発明において使用するための、細胞、組織、または生物の形質転換のための、核酸送達のための適当な方法には、本明細書に記載されるか、または当業者に公知であろう、細胞、組織、または生物へ核酸（例えば、DNA）を導入することができる事実上任意の方法が含まれると考えられる（例えば、Stadtfeld and Hochedlinger,Nature Methods 6(5):329-330(2009)；Yusa et al.,Nat.Methods 6:363-369(2009)；Woltjen,et al.,Nature 458,766-770(9 April 2009)）。そのような方法には、任意で、Fugene6（Roche）またはLipofectamine（Invitrogen）による、エクスビボトランスフェクション（Wilson et al.,Science,244:1344-1346,1989、Nabel and Baltimore,Nature 326:711-713,1987）、微量注入（参照により本明細書に組み入れられるHarland and Weintraub,J.Cell Biol.,101:1094-1099,1985；米国特許第5,789,215号）を含む、注射（各々参照により本明細書に組み入れられる、米国特許第5,994,624号、第5,981,274号、第5,945,100号、第5,780,448号、第5,736,524号、第5,702,932号、第5,656,610号、第5,589,466号、および第5,580,859号）；電気穿孔（参照により本明細書に組み入れられる米国特許第5,384,253号；Tur-Kaspa et al.,Mol.Cell Biol.,6:716-718,1986；Potter et al.,Proc.Nat'l Acad.Sci.USA,81:7161-7165,1984）；リン酸カルシウム沈殿（Graham and Van Der Eb,Virology,52:456-467,1973；Chen and Okayama,Mol.Cell Biol.,7(8):2745-2752,1987；Rippe et al.,Mol.Cell Biol.,10:689-695,1990）；DEAEデキストラン、それに続く、ポリエチレングリコールの使用（Gopal,Mol.Cell Biol,5:1188-1190,1985）；直接音波負荷（direct sonic loading）（Fechheimer et al.,Proc.Nat'l Acad.Sci.USA,84:8463-8467,1987）；リポソームにより媒介されるトランスフェクション（Nicolau and Sene,Biochim.Biophys.Acta,721:185-190,1982；Fraley et al.,Proc.Nat'l Acad.Sci.USA,76:3348-3352,1979；Nicolau et al.,Methods Enzymol,149:157-176,1987；Wong et al.,Gene,10:87-94,1980；Kaneda et al.,Science,243:375-378,1989；Kato et al.,J Biol.Chem.,266:3361-3364,1991）および受容体により媒介されるトランスフェクション（Wu and Wu,Biochemistry,27:887-892,1988；Wu and Wu,J.Biol.Chem.,262:4429-4432,1987）；ならびにそのような方法の任意の組み合わせ（各々参照により本明細書に組み入れられる）によるもののようなDNAの直接送達が含まれるが、これらに限定されない。
IX.混合物
本明細書に論じられるように、本発明は、PDK1活性化剤または解糖代謝を促進する化合物と、（a）TGFβ受容体／ALK5阻害剤；（b）MEK阻害剤；（c）ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または（d）Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドより選択される外因性ポリペプチドのうちの一つまたは複数とを含む混合物の中の哺乳動物細胞を提供する。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、PDK1活性化剤である。いくつかの態様において、PDK1活性化剤は、アロステリックPDK1活性化剤、例えば、PS48である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖活性化剤、例えば、フルクトース2,6-二リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖の基質、例えば、フルクトース6-リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖中間体またはその代謝前駆物質、例えば、ニコチン酸、NADH、またはフルクトース6-リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、グルコース取り込み輸送体活性化剤である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、ミトコンドリア呼吸モジュレーターである。いくつかの態様において、ミトコンドリア呼吸モジュレーターは、酸化的リン酸化阻害剤、例えば、2,4-ジニトロフェノールまたは2-ヒドロキシグルタル酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、低酸素誘導因子活性化剤、例えば、N-オキサロイルグリシンまたはケルセチンである。
いくつかの態様において、混合物は、TGFβ受容体／ALK5阻害剤をさらに含む。TGFβ受容体／ALK5阻害剤には、A-83-01が含まれるが、これに限定されない。いくつかの態様において、混合物は、MEK阻害剤をさらに含む。MEK阻害剤には、PD0325901が含まれるが、これに限定されない。いくつかの態様において、混合物はヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤をさらに含む。HDAC阻害剤には、酪酸ナトリウム（NaB）およびバルプロ酸（VPA）が含まれるが、これらに限定されない。いくつかの態様において、混合物は、外因性転写因子、例えば、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドより選択される外因性転写因子をさらに含む。いくつかの態様において、外因性転写因子は、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む。
いくつかの態様において、化合物（例えば、PDK1活性化剤、または解糖代謝を促進する化合物）は、多能性を誘導するかまたは多能性の誘導の効率を改良するのに十分な濃度で混合物中に存在する。例えば、いくつかの態様において、化合物は、少なくとも0.1nM、例えば、少なくとも1nM、10nM、100nM、1000nM、10000nM、または100000nM、例えば、0.1nM〜100000nM、例えば、1nM〜10000nM、例えば、10nM〜10000nMの濃度で存在する。いくつかの態様において、混合物は、合成容器（例えば、試験管、ペトリ皿等）内に存在する。従って、いくつかの態様において、細胞は、単離された細胞である（動物の一部分ではない）。いくつかの態様において、細胞は、動物（ヒトまたは非ヒト）から単離され、容器に置かれ、本明細書に記載されるような1種または複数種の化合物と接触させられる。細胞は、その後、培養され、任意で、特定の細胞型または系統になるよう刺激された後、任意で、同一のまたは異なる動物に戻し挿入されてもよい。いくつかの態様において、阻害剤の濃度は、混合物が細胞の誘導多能性幹細胞への変換を誘導するのに十分な条件に供された時、混合物中の非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への誘導の効率を、少なくとも10％、20％、50％、75％、100％、150％、200％、300％、またはそれ以上、改良するのに十分なものである。
本明細書において説明されるように、いくつかの態様において、細胞は、Octポリペプチド、Mycポリペプチド、Soxポリペプチド、およびKlfポリペプチドのうちの少なくとも1種または複数種の異種発現のための発現カセットを含む。いくつかの態様において、細胞は、Octポリペプチド、Mycポリペプチド、Soxポリペプチド、またはKlfポリペプチドのうちの1種または複数種を発現するための発現カセットを含まない（いくつかの態様において、全く含まない）。
本発明に係る細胞は、ヒトであってもよいし、または非ヒト（例えば、霊長類、ラット、マウス、ウサギ、ウシ、イヌ、ネコ、ブタ等）であってもよい。非多能性細胞の例には、骨髄、皮膚、骨格筋、脂肪組織、および末梢血より選択される組織に由来する細胞を含むが、これらに限定されない、本明細書に記載されたものが含まれる。例示的な細胞型には、繊維芽細胞、肝細胞、筋芽細胞、ニューロン、骨芽細胞、破骨細胞、T細胞、ケラチノサイト細胞、毛包細胞、ヒト臍静脈内皮細胞（HUVEC）、臍帯血細胞、および神経前駆細胞が含まれるが、これらに限定されない。いくつかの態様において、混合物中の細胞の少なくとも99％が、最初は非多能性細胞である。いくつかの態様において、混合物中の細胞の本質的に全てが、最初は非多能性細胞である。
いくつかの態様において、混合物中の細胞の少なくとも0.001％、少なくとも0.002％、少なくとも0.005％、少なくとも0.01％、少なくとも0.05％、少なくとも0.1％、少なくとも0.5％、少なくとも1％、少なくとも2％、少なくとも3％、少なくとも4％、少なくとも5％、少なくとも6％、少なくとも7％、少なくとも8％、少なくとも9％、少なくとも10％、少なくとも15％、少なくとも20％、少なくとも30％、少なくとも40％、少なくとも50％、少なくとも60％、少なくとも70％、少なくとも80％、または少なくとも90％が、多能性細胞へ誘導される。いくつかの態様において、混合物中の細胞の少なくとも99％が、多能性細胞へ誘導される。いくつかの態様において、本質的に全ての細胞が非多能性細胞へ誘導される。
X.キット
本発明は、PDK1活性化剤または解糖代謝を促進する化合物と、（a）TGFβ受容体／ALK5阻害剤；（b）MEK阻害剤；（c）ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または（d）Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドより選択される外因性ポリペプチドのうちの一つまたは複数とを含む、非多能性哺乳動物細胞において多能性を誘導するためのキットを提供する。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、PDK1活性化剤である。いくつかの態様において、PDK1活性化剤は、アロステリックPDK1活性化剤、例えば、PS48である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖活性化剤、例えば、フルクトース2,6-二リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖の基質、例えば、フルクトース6-リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、解糖中間体またはその代謝前駆物質、例えば、ニコチン酸、NADH、またはフルクトース6-リン酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、グルコース取り込み輸送体活性化剤である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、ミトコンドリア呼吸モジュレーターである。いくつかの態様において、ミトコンドリア呼吸モジュレーターは、酸化的リン酸化阻害剤、例えば、2,4-ジニトロフェノールまたは2-ヒドロキシグルタル酸である。いくつかの態様において、解糖代謝を促進する化合物は、低酸素誘導因子活性化剤、例えば、N-オキサロイルグリシンまたはケルセチンである。
いくつかの態様において、キットは、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、例えば、A-83-01をさらに含む。いくつかの態様において、キットは、MEK阻害剤、例えば、PD0325901をさらに含む。いくつかの態様において、キットは、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、例えば、酪酸ナトリウム（NaB）またはバルプロ酸（VPA）をさらに含む。いくつかの態様において、キットは、外因性転写因子、例えば、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドより選択される外因性転写因子をさらに含む。いくつかの態様において、外因性転写因子は、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む。
いくつかの態様において、キットは、非多能性細胞をさらに含む。非多能性細胞の例には、骨髄、皮膚、骨格筋、脂肪組織、および末梢血より選択される組織に由来する細胞を含むが、これらに限定されない、本明細書に記載されたものが含まれる。例示的な細胞型には、繊維芽細胞、肝細胞、筋芽細胞、ニューロン、骨芽細胞、破骨細胞、T細胞、ケラチノサイト細胞、毛包細胞、ヒト臍静脈内皮細胞（HUVEC）、臍帯血細胞、および神経前駆細胞が含まれるが、これらに限定されない。
以下の実施例は、特許請求の範囲に記載された本発明を、限定するためではなく、例示するために提示されるものである。
実施例1：OCT4および化学的化合物によるヒト初代体細胞の再プログラム
ここで、本発明者らは、OCT4のみの外因性発現による、ヒト初代体細胞のiPSCへの再プログラムを可能にする新規低分子カクテルを報告する。
結果
いくつかの容易に入手可能な初代ヒト体細胞型の中で、ヒトの皮膚または毛包から容易に単離可能なケラチノサイトは、KLF4およびcMYCを内因的に発現しており、従来の4TFまたは（MYCを含まない）3TFを使用してより効率的に再プログラムされることが報告されたため、再プログラムのための魅力的な細胞起源を表す（Aasen,T.et al.,Nat Biotechnol 26:1276-1284(2008)；Maherali,N.et al.,Cell Stem Cell 3,340-345(2008)）。さらに最近、本発明者らは、低分子（即ち、それぞれ、SB431542およびPD0325901）を使用したTGFβ経路およびMAPK/ERK経路の二重阻害が、4種の外因性TF（即ち、Oct4、Sox2、Klf4、およびc-Myc TF、または「OSKM」）によるヒト繊維芽細胞の再プログラムのための強烈に増強された条件を提供することを報告した（Lin,T.et al.,Nat Methods 6:805-808(2009)）。さらに、本発明者らは、2種の低分子パルネート（Parnate）（リジン特異的デメチラーゼ1の阻害剤）およびCHIR99021（GSK3阻害剤）による、そのような二重経路阻害が、2種の外因性TF（即ち、Oct4およびKlf4、または「OK」）によるヒトケラチノサイトの再プログラムも増強し得ることを示した（Li,W.et al.,Stem Cells 27:2992-3000(2009)）。しかしながら、そのような2TF再プログラム過程は、極めて非効率的であり、複雑であり（例えば、2種の外因性TFおよび4種の化学物質を含む）、1種でも少ないTFによる再プログラムは、極めて困難なようであった。OCT4のみによる再プログラムに向けて、本発明者らは、再プログラム条件を洗練し、新たな再プログラム化学的エンティティを同定するための段階的な戦略を開発した。
本発明者らは、第一に、以前に報告されたiPSC特徴決定法（Lin,T.et al.,Nat Methods 6:805-808(2009)）を使用して、異なる濃度で、TGFβ経路およびMAPK経路の様々な阻害剤を試験することにより、新生児ヒト上皮ケラチノサイト（NHEK）における4TFまたは3TF（即ち、OSKMまたはOSK）条件下での再プログラム過程をさらに最適化することを試みた。本発明者らは、0.5μM PD0325901および0.5μM A-83-01（より強力かつ選択的なTGFβ受容体阻害剤）の組み合わせが、OSKMまたはOSKにより形質導入されたヒトケラチノサイトの再プログラムの増強においてより有効であることを見出した（図1a）。注目すべきことに、ウイルス形質導入を2因子／OKのみへとさらに低下させた時、0.5μM PD0325901および0.5μM A-83-01により処理すると、低い効率ではあったが、やはりNHEKからiPSCを生成することが可能であった。次いで、本発明者らは、以前に報告されたように、様々な濃度で、公知の生理活性化合物のコレクションからの付加的な低分子のスクリーニングを開始した。現在までに試験された多数の化合物の中で、再プログラムにおいて報告されたことがないPDK1（3'-ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1）の低分子活性化剤PS48（5μM）が、再プログラム効率を有意に約15倍増強し得ることを、驚くべきことに、本発明者らは見出した。興味深いことに、本発明者らは、0.25mM酪酸ナトリウム（NaB、ヒストンデアセチラーゼ阻害剤）が、OK条件下でのiPSCの生成について、以前に報告された0.5mM VPAよりはるかに信頼性がありかつ効率的であることが判明したことを見出した（図1b）。その後の追跡研究は、5μM PS48および0.25mM NaBの組み合わせが、25倍を超えて、再プログラム効率をさらに増強し得ることを証明した（図1bおよび表3）。
わずか2種のTFによるNHEKの再プログラムの、そのような先例がない効率により、本発明者らは、異なる処理ウィンドウにおいて、それらの低分子の組み合わせを洗練することにより、OCT4単独によるiPSC生成の可能性をさらに探求した。初代NHEKをOCT4により形質導入し、化学物質により処理した（図1c）。様々な条件の中で、0.25mM NaB、5μM PS48、および0.5μM A-83-01により最初の4週間処理され、続いて、0.25mM NaB、5μM PS48、0.5μM A-83-01、および0.5μM PD0325901によりさらに4週間処理されたOCT4感染NHEKにおいて、hESCに類似している小さなiPSCコロニー（播種された細胞1,000,000個から4〜6個のコロニー）が出現した（図1c）。そのようなTRA-1-81陽性iPSCコロニー（図1d）は、従来のhESC培養培地でより大きく成長し、連続継代されて、安定したiPSCクローンを与えることができた。それらのiPSCクローンをさらに特徴決定した（図1eおよび2）。さらに、（OK条件下でのNHEKの再プログラムを改良することが示された）2μMパルネートおよび3μM CHIR99021を、この化学物質カクテルへ添加することにより、ヒト成体ケラチノサイトからも、OCT4のみによりiPSCを生成することができた。OCT4および低分子による初代ケラチノサイトのiPSCへの信頼性のある再プログラムの後、本発明者らは、さらに、HUVEC（分化中胚葉細胞）およびAFDC（羊水由来細胞）を含む、他のヒト初代細胞型へその条件を適用した。同様に、化学物質により処理されたOCT4感染HUVECおよびOCT4感染AFDCにおいて、TRA-1-81陽性iPSCコロニーが出現した。注目すべきことに、OCT4および低分子の条件下で、HUVECおよびAFDCの再プログラムは、NHEKの再プログラムより効率的でかつより迅速であるようであった（表3）。各細胞型からのiPSCの2個のクローンを、従来のhESC培養条件の下で20代を超えて長期に拡大させ、さらに特徴決定した（表4）。
これらの安定的に拡大したhiPSC-OK細胞およびhiPSC-O細胞は、hESCと形態学的に識別不可能であって、フィーダーフリーの化学的に定義された条件の下で、ECMコーティング表面において培養可能であった（図1eおよび図6）。それらはアルカリホスファターゼ（ALP）染色が陽性であって、免疫細胞化学／ICCにより検出された、OCT4、SOX2、NANOG、TRA-1-81、およびSSEA4を含む、典型的な多能性マーカーを発現していた（図1e、3b、図4〜5）。さらに、RT-PCR分析は、内因性のヒトのOCT4遺伝子、SOX2遺伝子、NANOG遺伝子、REX1遺伝子、UTF1遺伝子、TDGF2遺伝子、FGF4遺伝子の発現、ならびに外因性のOCT4およびKLF4のサイレンシングを確認した（図2aおよび3c）。さらに、重亜硫酸塩配列決定分析は、hiPSC-OK細胞およびhiPSC-O細胞のOCT4プロモーターおよびNANOGプロモーターが概して脱メチルされていることを明らかにした（図2bおよび3d）。この結果は、hiPSC-OK細胞およびhiPSC-O細胞における多能性転写プログラムの再活性化のさらなる証拠を提供する。hiPSC-O細胞、NHEK、およびhESCの全般的遺伝子発現分析は、hiPSC-O細胞が、NHEKと異なり（ピアソン相関値：0.87）、hESCに最も類似している（ピアソン相関値：0.98）ことを示した（図2c）。遺伝子型決定分析は、hiPSC-O細胞が、トランスジーンKLF4またはSOX2の混入なしに、OCT4トランスジーンのみを含有していることを示した（図8）。サザンブロット分析は、OCT4トランスジーンの複数の異なる組み込み部位が、異なるクローンに存在することを示した（図9）。さらに、核型決定結果は、再プログラムおよび拡大の過程の全体において、hiPSC-Oが正常な核型を維持することを証明した（図10）。さらに、DNAフィンガープリント試験は、これらのhiPSCが、実験室におけるhESC汚染から発生した可能性を排除した（表5）。
これらのhiPSC-O細胞の発達可能性を調査するため、それらを、標準的な胚様体（EB）分化法によりインビトロで分化させた。ICC分析は、それらが、βIII-チューブリン＋の特徴的なニューロン細胞（外胚葉）、SMA＋中胚葉細胞、およびAFP＋内胚葉細胞へ効果的に分化し得ることを証明した（図2dおよび3e）。定量的PCR分析は、さらに、外胚葉細胞（βIIIチューブリンおよびネスチン）、中胚葉細胞（MSX1およびMLC2a）、ならびに内胚葉細胞（FOXA2およびAFP）を含む、これらおよび付加的な系統特異的マーカー遺伝子の発現を確認した（図2e）。EBプロトコルの後、これらのhiPSC-OK細胞およびhiPSC-O細胞は、規則的に拍動する心筋細胞も与えることができた。インビボ多能性を試験するため、それらをSCIDマウスへ移植した。4〜6週間後、これらのhiPSC-O細胞は、三つ全ての胚葉の派生物を含有している典型的な奇形腫を効果的に生成した（図2fおよび3f）。総合すると、これらのインビトロおよびインビボの特徴決定は、定義された低分子カクテルと組み合わせられた単一転写因子OCT4が、数種のヒト初代体細胞を、形態学的、分子的、かつ機能的に多能性hESCに類似したiPSCへ再プログラムするのに十分であることを証明した。
考察
上に提示された研究は、多数の重要な意義を有する：第一に、胎児NSCは、OCT4単独の異所発現によりiPSCへ再プログラムされることが示されたが、SOX2（再プログラムにおける2種のマスター多能性遺伝子のうちの1種）を内因的に発現せず、より遅い発達段階（例えば、初期胚／胎児に対して生後／成体）にあり、かつ個体への著しい危害なしに入手することが可能な、他のより実用的なヒト体細胞を再プログラムするのにも、単独の外因性OCT4遺伝子が十分であるかは、非常に懐疑的であった。本発明者らの知る限り、本発明者らの研究は、単一の外因性再プログラム遺伝子OCT4により形質導入された、容易に入手可能な初代ヒト体細胞（例えば、ケラチノサイト）から、iPSCが実際に派生し得ることの最初の証明である。脳由来の神経幹細胞とは対照的に、ケラチノサイトは、より利用可能性が高く、より侵襲性の低い手法によって、生後の個体から容易に入手することが可能である。これは、より安全なアプローチおよび／またはより高い品質を有するiPSC生成のため、様々な実際に利用可能性が高いヒト体細胞を活用する戦略をさらに強化する。従って、この新たな方法およびそのさらなる開発は、様々な適用のための患者特異的な多能性幹細胞の作製を著しく容易にするであろう。
第二に、1種または2種のみの再プログラムTFに取って代わる低分子およびそれらの組み合わせが同定されたが、より多くの外因性再プログラムTFが共に省かれる時、iPSCの生成は指数関数的に困難となる。OCT4単独によるiPSCの生成を可能にするための、3種のマスター転写因子（即ち、SOX2、KLF4、およびMYC）の全てに機能的に取って代わる、この新たな低分子カクテルの同定は、低分子のみによる究極の再プログラムに向けての大きな前進を表し、iPSCの化学的アプローチをさらに立証し、強化した。
第三に、この証明された単一遺伝子条件は、タンパク質誘導多能性幹細胞（piPSC）テクノロジーにとっても大きな意義を有する。piPSCテクノロジーのための実際の課題は、各々、製造において異なる挙動（例えば、発現、折り畳み、安定性等）を示す4種の形質導入可能再プログラムタンパク質の大規模かつ信頼性のある作製である。明らかに、この低分子カクテルを、単一の形質導入可能タンパク質と組み合わせることは、piPSCテクノロジーを著しく単純化し、その適用を容易にするであろう。
第四に、本発明者らは、再プログラムの増強における新たな標的／機序と共に、新たな低分子PS48を同定した。PS48は、PDK1のアロステリック低分子活性化剤である（Hindie,V.et al.,Nat Chem Biol 4:758-764(2009)）。PS48が再プログラムを増強する一つの機序は、（ワールブルク効果としても公知である）主として成体体細胞により使用されるミトコンドリア酸化から、主としてESCにより使用される解糖への代謝再プログラムを容易にすることのようである（Manning,B.D.and Cantley,Cell 129:1261-1274(2007)；Kondoh,H.et al.,Antioxid Redox Signal 9:293-299(2007)；Heiden,M.G.V.et al.,Science 324:1029-1033(2009)）。そのように多能性幹細胞がミトコンドリア呼吸より解糖代謝をディファレンシャルに使用することは、より少ない酸化ストレスにより増殖／細胞周期移行を促進することにより、多能性にとって好都合であろう。高度に増殖中の細胞にとって、酸化的リン酸化は、細胞複製のための高分子前駆物質の供給という需要を満たすことができないのみならず、過度の酸化的傷害を誘導し得る相当量の活性酸素種をミトコンドリア内に生成する。他方、解糖代謝は、非必須アミノ酸のための解糖中間体および脂肪酸のためのアセチル-CoAのような高分子前駆物質をより効果的に生成することができ、増殖中の細胞の必要性を満たすために十分なエネルギーを供給する（Kondoh,H.et al.,Antioxid Redox Signal 9:293-299(2007)；Heiden,M.G.V.et al.,Science 324:1029-1033(2009)）。興味深いことに、低酸素条件およびそのエフェクターHIF-1α活性化は、解糖代謝の促進に密接に関連しているのみならず、マウスおよびヒトの両方の再プログラムを増強することも示された（Yoshida,Y.et al.,Cell Stem Cell 5:237-241(2009)）。機構的に、増殖因子シグナル伝達経路、低酸素条件／HIF-1α、および再プログラム因子Mycは、GLUT1、HK2、およびPFK1のようなグルコース輸送体および解糖代謝酵素のアップレギュレーションを含む、細胞代謝の補足的な局面を調節するようである（Gordan,J.D.et al.,Cancer Cell 12:108-113(2007)；DeBerardinis,R.J.et al.,Cell Metabolism 7:11-20(2008)）。これらの研究は、再プログラムの増強における、Myc、低酸素条件／HIF-1α、および増殖因子／Akt経路活性化の、一つの可能性のある保存された機序が、解糖代謝の調節における本質的な役割に集中することを示唆している。この概念を支持して、本発明者らは、PS48による処理が、下流のAkt/PKBを活性化し（図11a）、数種のキー解糖遺伝子の発現をアップレギュレートし（図11d）、解糖への代謝スイッチを容易にすることを見出した（図11c）。反対に、本発明者らは、UCN-01（PDK1阻害剤）によるPDK1活性の不活化、または2-デオキシ-D-グルコース（解糖阻害剤）による解糖の阻害が、解糖を減弱させるのみならず（図11c）、再プログラム過程も阻止することを見出した（図11b）。さらに、ミトコンドリア呼吸（2,4-ジニトロフェノール）、解糖代謝（フルクトース2,6-二リン酸およびシュウ酸）、または、より特異的に、HIF経路活性化（N-オキサロイルグリシンおよびケルセチン）をモジュレートするために広く使用されている数種の公知の低分子も、再プログラムに対して対応する一貫した効果を示した。即ち、（2,4-ジニトロフェノールおよびN-オキサロイルグリシンのような）解糖代謝を容易にする化合物は再プログラムを増強し、（シュウ酸のような）解糖代謝を阻止する化合物は再プログラムを阻害する（図11e）（Hewitson,K.S.and Schofield,C.J.,Drug Discov Today 9:704-711(2004)；Pelicano,H.et al.,Oncogene 25:4633-4646(2006)）。結論として、これらの結果は、嫌気的解糖への代謝スイッチが、体細胞の多能性幹細胞への再プログラムにとって重大であり、それを容易にすることを示した。
最後に、再プログラムのための、この新規の強力な低分子カクテルは、究極の化学物質のみにより誘導される多能性幹細胞に向けた作製アプローチとして、本明細書に提示された段階的な化学物質の最適化およびスクリーニングの戦略をバリデートした。さらに、本発明者らは、A-83-01およびNaBの、ヒトケラチノサイトにおけるより優れた再プログラム増強活性に例示されるように、同一の標的／機序をモジュレートする異なる低分子が、異なる情況においては、有意に異なる効果を再プログラムに対して及ぼすことを見出した。このことは、特定の再プログラム情況のため、異なる計画により「個別化された」最適化および処理が重要であることを示唆している。
方法
細胞培養
正常ヒト上皮ケラチノサイト（Lonza）は、ケラチノサイト培養培地（KCM、Lonza）において維持された。ヒト臍静脈内皮細胞（HUVEC、Millipore）は、EndoGRO-VEGF完全培地（HCM、CHEMICON）において維持された。ヒトESCおよびhiPSCは、従来のヒトESC培養培地（hESCM：DMEM/F12、15％ノックアウト血清代替物、1％グルタマックス（Glutamax）、1％非必須アミノ酸、1％ペニシリン／ストレプトマイシン、0.1mM β-メルカプトエタノール、および10ng/ml bFGF）において、MEFフィーダー細胞上で培養された。言及されない場合、全ての細胞培養製品が、Invitrogen/Gibco BRL製であった。
レンチウイルス作製
レンチウイルス上清は、以前に記載されたようにして（Yu,J.et al.,,Science 318:1917-1920(2007)）、作製され採集された。レンチウイルス作製のために使用されたプラスミドには、pSin-EF2-Puro-hOCT4、pSin2-EF2-Puro-hSOX2、pLove-mKlf4、pLove-mMyc、パッケージングプラスミドpsPAX2、およびエンベロープをコードするプラスミドpMD2.Gが含まれる（Yu,J.et al.,Science 318:1917-1920(2007)およびLi,W.et al.,Stem Cells 27:2992-3000(2009)）。
NHEKの再プログラム
NHEKを、100mm組織培養ディッシュにおいて培養し、新鮮に作製されたレンチウイルス上清により3回形質導入した（各形質導入3〜4時間）。1,000,000個の形質導入NHEKを、100mmディッシュ内のX線照射不活化CF1 MEFフィーダー細胞上に播種し、KCMにおいて培養し、5μM PS48、0.25mM NaB（Stemgent）、および0.5μM A-83-01（Stemgent）により2週間処理し、続いて、さらに2週間、培地の半量をhESCMに変更し、5μM PS48、0.25mM NaB、および0.5μM A-83-01を補足した。次いで、細胞培養培地をhESCMに変更し、さらに4週間、5μM PS48、0.25mM NaB、0.5μM A-83-01、および0.5μM PD0325901（Stemgent）を補足した。化学物質を含まない培地において培養された、同一のOCT4感染ケラチノサイトを、対照として使用した。培養物をAccutase（Millipore）により分離し、分離後初日に1μMチアゾビビン（Stemgent）により処理した。Alexa Fluor 555マウス抗ヒトTRA-1-81抗体（BD Pharmingen）による染色が陽性のiPSCコロニーを、hESCMにおけるフィーダー細胞上での拡大のためピックアップし、ルーチンに培養した。
HUVECの再プログラム
HUVECを、100mm組織培養ディッシュにおいて培養し、新鮮に作製されたレンチウイルス上清により2回形質導入した（各形質導入4〜6時間）。200,000個の形質導入HUVECを、ゼラチンコーティング100mmディッシュに播種し、HCMにおいて培養し、5μM PS48、0.25mM NaB、および0.5μM A-83-01により2週間処理し、続いて、さらに2週間、培地の半量をhESCMに変更し、5μM PS48、0.25mM NaB、および0.5μM A-83-01を補足した。次いで、細胞培養培地をhESCMに変更し、さらに1〜2週間、5μM PS48、0.25mM NaB、0.5μM A-83-01、および0.5μM PD0325901を補足した。Alexa Fluor 555マウス抗ヒトTRA-1-81抗体による染色が陽性のiPSCコロニーを、hESCMにおけるフィーダー細胞上での拡大のためピックアップし、ルーチンに培養した。培養物をAccutaseにより分離し、分離後初日に1μMチアゾビビンにより処理した。
代謝をモジュレートする様々な化合物を使用したHUVECの再プログラム
HUVECを、100mm組織培養ディッシュにおいて培養し、4種の再プログラム因子（Klf、Sox、Myc、およびOct）を含有している、新鮮に作製されたレンチウイルス上清により、2回形質導入した（各形質導入4〜6時間）。約20,000個の形質導入HUVECを、ゼラチンコーティング6穴プレートに播種し、HCMにおいて培養し、2週間、代謝をモジュレートする化合物により処理した。次いで、細胞培養培地をhESCMに変更し、さらに1〜2週間、代謝をモジュレートする化合物を補足した。Alexa Fluor 555マウス抗ヒトTRA-1-81抗体による染色が陽性のiPSCコロニーの数を計数した。10mMフルクトース2,6-二リン酸（F2,6P）、10mMフルクトース6-リン酸（F6P）、10μM 6-アミノニコチンアミド（6-AN）、10μMシュウ酸（OA）、1μM 2,4-ジニトロフェノール（DNP）、1μM N-オキサロイルグリシン（NOG）、1μMケルセチン（QC）、10μM 2-ヒドロキシグルタル酸（2-HA）、または10μMニコチン酸（NA）を含む、代謝をモジュレートする様々な化合物を試験した。
インビトロ分化
hiPSCのインビトロ分化は、標準的な胚様体（EB）法により実施された。簡単に説明すると、hiPSCをAccutase（Millipore）により解離させ、8日間、超低接着（ultra-low attachment）6穴プレートにおいて培養し、次いで、分化培地でマトリゲルコーティング6穴プレートに移した。8日後、細胞を、免疫細胞化学的分析のため固定するか、またはRT-PCR試験のため採集した。分化培地：DMEM/F12、10％FBS、1％グルタマックス、1％非必須アミノ酸、1％ペニシリン／ストレプトマイシン、0.1mM β-メルカプトエタノール。
アルカリホスファターゼ染色および免疫細胞化学アッセイ
アルカリホスファターゼ染色は、アルカリホスファターゼ検出キット（Stemgent）を使用して、製造業者のプロトコルに従って実施された。標準的な免疫細胞化学アッセイが、以前に報告されたように（Li,W.et al.,Stem Cells 27:2992-3000(2009)）実施された。使用された一次抗体は、表2に見出され得る。二次抗体は、Alexa Fluor 488ロバ抗マウスまたは抗ウサギIgG（1:1000）（Invitrogen）であった。核はDAPI（Sigma-Aldrich）染色により可視化された。画像はNikon Eclipse TE2000-U顕微鏡を使用して捕獲された。
RT-PCRおよびqRT-PCRによる遺伝子発現分析
RT-PCR分析およびqRT-PCR分析のため、QIAshredder（Qiagen）と組み合わせられたRNeasy Plus Mini Kitを使用して、ヒトiPSCから全RNAが抽出された。第一鎖逆転写は、iScript（商標）cDNA合成キット（BioRad）を使用して、2μg RNAにより実施された。多能性マーカーの発現は、Platinum PCR SuperMix（Invitrogen）を使用したRT-PCRにより分析された。分化後の系統特異的マーカーの発現は、iQ SYBR Green Supermix（Bio-Rad）を使用したqRT-PCRにより分析された。プライマーは表1に見出され得る。
マイクロアレイ分析
NHEK、hiPSC細胞、およびhES細胞の全般的遺伝子発現を調査するため、ヒトRef-8_v3 expression Beadchip（Illumina,CA,USA）をマイクロアレイハイブリダイゼーションのために使用した。ビオチン-16-UTP標識cRNAを、Illumina TotalPrep RNA増幅キット（Ambion AMIL1791,Foster City,CA,USA）により、500ngの全RNAから合成した。標識された増幅されたcRNAを750ng含有しているハイブリダイゼーション混合物を、供給された試薬およびGE Healthcareストレプトアビジン-Cy3染色溶液を使用して、Illumina BeadStation 500X System Manual（Illumina,San Diego,CA,USA）に従って調製した。Illumina Human Ref-8_v3 expression Beadchipへのハイブリダイゼーションは、BeadChip Hyb Wheel上で55℃で18時間行われた。アレイはIllumina BeadArray Readerを使用してスキャンされた。全ての試料が、二つの生物学的複製物として調製された。マイクロアレイデータの加工および分析は、Illumina BeadStudioソフトウェアにより実施された。データは、バックグラウンドを差し引かれ、ランク不変（rank invariant）オプションを使用して規格化された。
重亜硫酸塩ゲノム配列決定
ゲノムDNAを、Non Organic DNA Isolation Kit（Millipore）を使用して単離し、次いで、EZ DNA Methylation-Gold Kit（Zymo Research Corp.,Orange,CA）により処理した。次いで、処理されたDNAを、関心対象の配列を増幅するための鋳型として使用した。OCT4プロモーターおよびNANOGプロモーターの断片の増幅のために使用されたプライマーは、表1に示される。得られた断片を、配列決定用のTOPO TAクローニングキット（Invitrogen）を使用してクローニングし、配列決定した。
hiPSCの遺伝子型決定
hiPSC株の遺伝子型決定は、特異的なプライマー（表1；Yu,J.et al.,Science 318:1917-1920(2007)およびLi,W.et al.,Stem Cells 27:2992-3000(2009)）によるゲノムDNAのRT-PCRを使用して実施された。
奇形腫形成
0.05％トリプシン-EDTAを使用することによりhiPSC株を採集した。500万個の細胞をSCIDマウス（n＝3）の腎被膜下に注射した。4〜6週間後、よく発達した奇形腫を採集し、固定し、次いで、TSRIヒストロジーコアファシリティ（histology core facility）で組織学的に分析した。
（表１）使用されたプライマー
Figure 2020150961
（表２）適用された一次抗体
Figure 2020150961
（表３）再プログラム実験の要約
Figure 2020150961
NHEK、新生児ヒト上皮ケラチノサイト；HUVEC、ヒト臍静脈内皮細胞；AHEK、成体ヒト上皮ケラチノサイト；AFDC、羊水由来細胞。使用された化学物質濃度：PD、0.5μM PD0325901；A83、0.5μM A-83-01；PS48、5μM PS48；VPA、0.5mMバルプロ酸；NaB、0.25mM酪酸ナトリウム；Par、2μMパルネート；CHIR、3μM CHIR99021。4因子または3因子による誘導再プログラムについては、NHEKが、10cmディッシュ1枚当たり100,000個の形質導入細胞の密度で播種され、4週間後に陽性コロニーが計数された；2因子誘導再プログラムについては、NHEKが、10cmディッシュ1枚当たり100,000個の形質導入細胞の密度で播種され、6週間後に陽性コロニーが計数された；1因子誘導再プログラムについては、NHEKおよびAHEKが、10cmディッシュ1枚当たり1,000,000個の形質導入細胞の密度で播種され、8週間後に陽性コロニーが計数された。HUVECおよびAFDCは、10cmディッシュ1枚当たり200,000個の形質導入細胞の密度で播種され、6週間後に陽性コロニーが計数された。
（表４）確立されたヒトiPSC細胞株の特徴決定
Figure 2020150961
特徴決定された細胞株は、従来のhESC培養条件の下で、20代を超えて長期に拡大させられ、さらにマーカー発現および多能性について特徴決定された；確立されたその他の細胞株は、5代目または6代目で保管された。空欄は「未決定」を示す。
（表５）Oct4誘導iPSCおよび親細胞株に対するDNAフィンガープリント分析
Figure 2020150961
15の多形ショートタンデムリピート（STR）DNA遺伝子座および性染色体マーカーアメロゲニンが調査された。
実施例2：ヒト臍静脈内皮細胞の再プログラム
本発明者らは、再プログラムの動力学および効率に対する効果について、Oct4単独によりレンチウイルス形質導入されたHUVECに対する、HDAC阻害剤、PDK1活性化剤、TGFβ受容体阻害剤、およびMEK阻害剤の組み合わせの効果を試験した。
方法
ヒト臍静脈内皮細胞（HUVEC、Millipore）を、EndoGRO-VEGF完全培地（HCM、CHEMICON）において維持した。HUVECを、100mm組織培養ディッシュにおいて培養し、新鮮に作製されたレンチウイルス上清により2回形質導入した（各回4〜6時間）。次いで、200,000個の形質導入HUVECを、ゼラチンコーティング100mmディッシュに播種し、HCMにおいて培養し、PDK1活性化剤PS48（5μM）、HDAC阻害剤NaB（0.25mM）、およびTGFβ受容体阻害剤A-83-01（0.5μM）により2週間処理し、続いて、さらに2週間、培地の半量をhESCMへ変更し、PDK1活性化剤PS48（5μM）、HDAC阻害剤NaB（0.25mM）、およびTGFβ受容体阻害剤A-83-01（0.5μM）を補足した。次いで、細胞培養培地をhESCMへ変更し、さらに2週間、PDK1活性化剤PS48（5μM）、HDAC阻害剤NaB（0.25mM）、およびTGFβ受容体阻害剤A-83-01（0.5μM）、およびMEK阻害剤PD0325901（0.5μM）を補足した。iPSCコロニーは、Alexa Fluor 555マウス抗ヒトTRA-1-81抗体（BD Pharmingen）による染色が陽性であった。hESCM：DMEM/F12、15％ノックアウト血清代替物、1％グルタマックス、1％非必須アミノ酸、1％ペニシリン／ストレプトマイシン、0.1mM β-メルカプトエタノール、および10ng/ml bFGF。
結果
Oct4単独により形質導入されたHUVECについて、本発明者らは、再プログラム効率に対するHDAC阻害剤、PDK1活性化剤、TGFβ受容体阻害剤、MEK阻害剤の組み合わせの効果を試験した。本発明者らは、5μM PS48、0.25mM NaB、0.5μM A-83-01、および0.5μM PD0325901の組み合わせによる処理が、およそ0.0015％の再プログラム効率をもたらすことを見出した。
上記実施例は、本発明の範囲を制限するためではなく、本発明を例示するために提供されている。本発明のその他の別態様は、当業者には容易に明らかであり、添付の特許請求の範囲に包含される。本明細書中に引用された刊行物、データベース、Genbank配列、特許、および特許出願は、全て、参照により本明細書に組み入れられる。

Claims (61)

  1. 細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞を3'-ホスホイノシチド依存性キナーゼ-1（PDK1）活性化剤と接触させる工程であって、それにより、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する、工程を含む、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する方法。
  2. PDK1活性化剤がアロステリックPDK1活性化剤である、請求項1記載の方法。
  3. PDK1活性化剤が、(Z)-5-(4-クロロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS48」）、(Z)-5-(4-ブロモ-2-フルオロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS08」）、2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸、(Z)-5-(ナフタレン-2-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「12Z」）、または(Z)-5-(1H-インドール-3-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「13Z」）である、請求項2記載の方法。
  4. PDK1活性化剤がPS48である、請求項3記載の方法。
  5. 非多能性細胞をTGFβ受容体／ALK5阻害剤と接触させる工程をさらに含む、請求項1〜4のいずれか一項記載の方法。
  6. TGFβ受容体／ALK5阻害剤がA-83-01である、請求項5記載の方法。
  7. 非多能性細胞をMEK阻害剤と接触させる工程をさらに含む、請求項1〜6のいずれか一項記載の方法。
  8. MEK阻害剤がPD0325901である、請求項7記載の方法。
  9. 非多能性細胞をヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤と接触させる工程をさらに含む、請求項1〜8のいずれか一項記載の方法。
  10. HDAC阻害剤が酪酸ナトリウム（NaB）である、請求項9記載の方法。
  11. HDAC阻害剤がバルプロ酸（VPA）である、請求項9記載の方法。
  12. 条件が、少なくとも1種の外因性転写因子を非多能性細胞へ導入することを含む、請求項1〜11のいずれか一項記載の方法。
  13. 外因性転写因子がポリペプチドを含む、請求項12記載の方法。
  14. 外因性転写因子がOctポリペプチドを含む、請求項12または13記載の方法。
  15. 外因性転写因子が、OctポリペプチドおよびKlfポリペプチドからなる群より選択されるポリペプチドを含む、請求項12または13記載の方法。
  16. 外因性転写因子が、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択されるポリペプチドを含む、請求項12または13記載の方法。
  17. 各々、Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される異なるポリペプチドを含む、少なくとも2種、3種、または4種の外因性転写因子を、非多能性細胞へ導入する工程を含む、請求項12または13記載の方法。
  18. 外因性転写因子をコードするポリヌクレオチドを非多能性細胞へ導入し、それにより、転写因子を非多能性細胞において発現させることにより、外因性転写因子が導入される、請求項12〜17のいずれか一項記載の方法。
  19. 外因性転写因子を非多能性細胞と接触させることにより、外因性転写因子が導入される、請求項12〜17のいずれか一項記載の方法。
  20. 外因性転写因子が、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む、請求項19記載の方法。
  21. 非多能性細胞がヒト細胞である、請求項1〜20のいずれか一項記載の方法。
  22. 非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への変換を誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への誘導の効率を少なくとも10％改良するのに十分な濃度で、PDK1活性化剤が存在する、請求項1〜21のいずれか一項記載の方法。
  23. 接触させる工程が、非多能性細胞を、MEK阻害剤の非存在下で、PDK1活性化剤と接触させ、続いて、非多能性細胞を、PDK1活性化剤およびMEK阻害剤と接触させることを含む、請求項1記載の方法。
  24. 接触させる工程が、非多能性細胞を、MEK阻害剤の非存在下で、PDK1活性化剤、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、およびヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤と接触させ、続いて、非多能性細胞を、PDK1活性化剤、TGFβ受容体／ALK5阻害剤、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤、およびMEK阻害剤と接触させることを含む、請求項23記載の方法。
  25. 複数種の多能性幹細胞が誘導される方法であって、多能性幹細胞の均質な集団を生成するため、多能性幹細胞を精製する工程をさらに含む、請求項1〜24のいずれか一項記載の方法。
  26. 哺乳動物細胞と、PDK1活性化剤と、
    TGFβ受容体／ALK5阻害剤；
    MEK阻害剤；
    ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または
    Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の外因性転写因子
    のうちの一つまたは複数と
    を含む、混合物。
  27. 細胞の少なくとも99％が非多能性細胞である、請求項26記載の混合物。
  28. 本質的に全ての細胞が非多能性細胞である、請求項26〜27のいずれか記載の混合物。
  29. 細胞がヒト細胞である、請求項26〜28のいずれか一項記載の混合物。
  30. PDK1活性化剤がアロステリックPDK1活性化剤である、請求項26〜29のいずれか一項記載の混合物。
  31. PDK1活性化剤が、(Z)-5-(4-クロロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS48」）、(Z)-5-(4-ブロモ-2-フルオロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS08」）、2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸、(Z)-5-(ナフタレン-2-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「12Z」）、または(Z)-5-(1H-インドール-3-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「13Z」）である、請求項30記載の混合物。
  32. PDK1活性化剤がPS48である、請求項31記載の混合物。
  33. TGFβ受容体／ALK5阻害剤をさらに含む、請求項26〜32のいずれか一項記載の混合物。
  34. TGFβ受容体／ALK5阻害剤がA-83-01である、請求項33記載の混合物。
  35. MEK阻害剤をさらに含む、請求項26〜34のいずれか一項記載の混合物。
  36. MEK阻害剤がPD0325901である、請求項35記載の混合物。
  37. ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤をさらに含む、請求項26〜36のいずれか一項記載の混合物。
  38. HDAC阻害剤が酪酸ナトリウム（NaB）である、請求項37記載の混合物。
  39. HDAC阻害剤がバルプロ酸（VPA）である、請求項37記載の混合物。
  40. Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドから選択される外因性転写因子をさらに含む、請求項26〜39のいずれか一項記載の混合物。
  41. 外因性転写因子が、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む、請求項40記載の混合物。
  42. 細胞の誘導多能性幹細胞への変換を誘導するのに十分な条件の下で、混合物中の非多能性細胞の誘導多能性幹細胞への誘導の効率を少なくとも10％改良するのに十分な濃度で、PDK1活性化剤が存在する、請求項26〜41のいずれか一項記載の混合物。
  43. PDK1活性化剤と、
    TGFβ受容体／ALK5阻害剤；
    MEK阻害剤；
    ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または
    Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の転写因子
    のうちの一つまたは複数と
    を含む、非多能性哺乳動物細胞において多能性を誘導するためのキット。
  44. PDK1活性化剤がアロステリックPDK1活性化剤である、請求項43記載のキット。
  45. PDK1活性化剤が、(Z)-5-(4-クロロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS48」）、(Z)-5-(4-ブロモ-2-フルオロフェニル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「PS08」）、2-(3-(4-クロロフェニル)-3-オキソ-1-フェニルプロピルチオ)酢酸、(Z)-5-(ナフタレン-2-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「12Z」）、または(Z)-5-(1H-インドール-3-イル)-3-フェニルペンタ-2-エン酸（「13Z」）である、請求項44記載のキット。
  46. PDK1活性化剤がPS48である、請求項45記載のキット。
  47. TGFβ受容体／ALK5阻害剤をさらに含む、請求項43〜46のいずれか一項記載のキット。
  48. TGFβ受容体／ALK5阻害剤がA-83-01である、請求項47記載のキット。
  49. MEK阻害剤をさらに含む、請求項43〜48のいずれか一項記載のキット。
  50. MEK阻害剤がPD0325901である、請求項49記載のキット。
  51. ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤をさらに含む、請求項43〜50のいずれか一項記載のキット。
  52. HDAC阻害剤が酪酸ナトリウム（NaB）である、請求項51記載のキット。
  53. HDAC阻害剤がバルプロ酸（VPA）である、請求項51記載のキット。
  54. Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドから選択される転写因子をさらに含む、請求項43〜53のいずれか一項記載のキット。
  55. 転写因子が、細胞膜輸送を増強するアミノ酸配列を含む、請求項54記載のキット。
  56. 細胞が多能性幹細胞になるよう誘導するのに十分な条件の下で、非多能性細胞を、解糖代謝を促進する化合物と接触させる工程であって、それにより、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する、工程を含む、非多能性哺乳動物細胞を誘導多能性幹細胞へ誘導する方法。
  57. 解糖代謝を促進する化合物が、解糖活性化剤、解糖の基質、グリコール中間体またはその代謝前駆物質、グルコース取り込み輸送体活性化剤、ミトコンドリア呼吸モジュレーター、酸化的リン酸化阻害剤、または低酸素誘導因子活性化剤である、請求項56記載の方法。
  58. 哺乳動物細胞と、解糖代謝を促進する化合物と、
    TGFβ受容体／ALK5阻害剤；
    MEK阻害剤；
    ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または
    Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の外因性転写因子
    のうちの一つまたは複数と
    を含む、混合物。
  59. 解糖代謝を促進する化合物が、解糖活性化剤、解糖の基質、グリコール中間体またはその代謝前駆物質、グルコース取り込み輸送体活性化剤、ミトコンドリア呼吸モジュレーター、酸化的リン酸化阻害剤、または低酸素誘導因子活性化剤である、請求項58記載の混合物。
  60. 解糖代謝を促進する化合物と、
    TGFβ受容体／ALK5阻害剤；
    MEK阻害剤；
    ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤；または
    Octポリペプチド、Klfポリペプチド、Mycポリペプチド、およびSoxポリペプチドからなる群より選択される1種もしくは複数種の転写因子
    のうちの一つまたは複数と
    を含む、非多能性哺乳動物細胞において多能性を誘導するためのキット。
  61. 解糖代謝を促進する化合物が、解糖活性化剤、解糖の基質、グリコール中間体またはその代謝前駆物質、グルコース取り込み輸送体活性化剤、ミトコンドリア呼吸モジュレーター、酸化的リン酸化阻害剤、または低酸素誘導因子活性化剤である、請求項60記載のキット。
JP2020111151A 2010-03-31 2020-06-29 細胞の再プログラム Pending JP2020150961A (ja)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2023094611A JP2023105203A (ja) 2010-03-31 2023-06-08 細胞の再プログラム

Applications Claiming Priority (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US31949410P 2010-03-31 2010-03-31
US61/319,494 2010-03-31
US39372410P 2010-10-15 2010-10-15
US61/393,724 2010-10-15
US40689210P 2010-10-26 2010-10-26
US61/406,892 2010-10-26

Related Parent Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2018187026A Division JP6726719B2 (ja) 2010-03-31 2018-10-02 細胞の再プログラム

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2023094611A Division JP2023105203A (ja) 2010-03-31 2023-06-08 細胞の再プログラム

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2020150961A true JP2020150961A (ja) 2020-09-24

Family

ID=44712617

Family Applications (5)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2013502817A Active JP5909482B2 (ja) 2010-03-31 2011-03-30 細胞の再プログラム
JP2016063770A Active JP6415470B2 (ja) 2010-03-31 2016-03-28 細胞の再プログラム
JP2018187026A Active JP6726719B2 (ja) 2010-03-31 2018-10-02 細胞の再プログラム
JP2020111151A Pending JP2020150961A (ja) 2010-03-31 2020-06-29 細胞の再プログラム
JP2023094611A Pending JP2023105203A (ja) 2010-03-31 2023-06-08 細胞の再プログラム

Family Applications Before (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2013502817A Active JP5909482B2 (ja) 2010-03-31 2011-03-30 細胞の再プログラム
JP2016063770A Active JP6415470B2 (ja) 2010-03-31 2016-03-28 細胞の再プログラム
JP2018187026A Active JP6726719B2 (ja) 2010-03-31 2018-10-02 細胞の再プログラム

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2023094611A Pending JP2023105203A (ja) 2010-03-31 2023-06-08 細胞の再プログラム

Country Status (9)

Country Link
US (5) US9315779B2 (ja)
EP (3) EP2553086B1 (ja)
JP (5) JP5909482B2 (ja)
CN (2) CN102959076B (ja)
AU (1) AU2011235212B2 (ja)
CA (1) CA2800498C (ja)
ES (2) ES2893699T3 (ja)
HK (1) HK1214626A1 (ja)
WO (1) WO2011123572A1 (ja)

Families Citing this family (61)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9080145B2 (en) 2007-07-01 2015-07-14 Lifescan Corporation Single pluripotent stem cell culture
KR101617243B1 (ko) 2007-07-31 2016-05-02 라이프스캔, 인코포레이티드 인간 배아 줄기 세포의 분화
EP2229434B1 (en) 2007-11-27 2011-09-07 Lifescan, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells
CN102046779A (zh) 2008-02-21 2011-05-04 森托科尔奥索生物科技公司 用于细胞粘附、培养和分离的方法、表面改性培养板和组合物
KR101679082B1 (ko) 2008-03-17 2016-11-23 더 스크립스 리서치 인스티튜트 유도 만능 줄기 세포 생성을 위한 화학적 및 유전적 조합 접근법
PL2310492T3 (pl) 2008-06-30 2015-12-31 Janssen Biotech Inc Różnocowanie pluripotencjalnych komórek macierzystych
KR102025158B1 (ko) 2008-10-31 2019-09-25 얀센 바이오테크 인코포레이티드 인간 배아 줄기 세포의 췌장 내분비 계통으로의 분화
AU2009308967C1 (en) 2008-10-31 2017-04-20 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells to the pancreatic endocrine lineage
MX356756B (es) 2008-11-20 2018-06-11 Centocor Ortho Biotech Inc Células madre pluripotentes en microportadores.
AU2009316583B2 (en) 2008-11-20 2016-04-21 Janssen Biotech, Inc. Methods and compositions for cell attachment and cultivation on planar substrates
CN102317442B (zh) 2008-12-17 2014-08-13 斯克里普斯研究所 干细胞的产生和保持
EP2456862A4 (en) 2009-07-20 2013-02-27 Janssen Biotech Inc DIFFERENTIATION OF HUMAN EMBRYONIC STEM CELLS
CN113621576A (zh) 2009-10-16 2021-11-09 斯克里普斯研究所 多能细胞的诱导
CN102741395B (zh) 2009-12-23 2016-03-16 詹森生物科技公司 人胚胎干细胞的分化
RU2702198C2 (ru) 2010-03-01 2019-10-04 Янссен Байотек, Инк. Способы очистки клеток, производных от плюрипотентных стволовых клеток
JP5909482B2 (ja) 2010-03-31 2016-04-26 ザ スクリプス リサーチ インスティテュート 細胞の再プログラム
RU2587634C2 (ru) 2010-05-12 2016-06-20 Янссен Байотек, Инк. Дифференцирование эмбриональных стволовых клеток человека
EP4438734A2 (en) 2010-06-14 2024-10-02 The Scripps Research Institute Reprogramming of cells to a new fate
WO2012030539A2 (en) 2010-08-31 2012-03-08 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells
KR101851956B1 (ko) 2010-08-31 2018-04-25 얀센 바이오테크 인코포레이티드 인간 배아 줄기 세포의 분화
JP6182456B2 (ja) 2010-12-22 2017-08-23 フェイト セラピューティクス，インコーポレイテッド 単細胞選別のための細胞培養プラットホームおよびｉＰＳＣの再プログラミングの増強
WO2013013105A2 (en) * 2011-07-19 2013-01-24 Vivoscript,Inc. Compositions and methods for re-programming cells without genetic modification for repairing cartilage damage
KR102203056B1 (ko) 2011-12-22 2021-01-14 얀센 바이오테크 인코포레이티드 인간 배아 줄기 세포의 단일 인슐린 호르몬 양성 세포로의 분화
SG11201405052RA (en) 2012-03-07 2014-10-30 Janssen Biotech Inc Defined media for expansion and maintenance of pluripotent stem cells
CN108034633B (zh) 2012-06-08 2022-08-02 詹森生物科技公司 人胚胎干细胞向胰腺内分泌细胞的分化
EP2900808B1 (en) 2012-09-28 2019-04-03 Scripps Health Methods of differentiating stem cells into chondrocytes
JP6324395B2 (ja) * 2012-10-29 2018-05-16 スクリップス ヘルス 軟骨細胞を移植する方法
US9914911B2 (en) 2012-10-29 2018-03-13 Scripps Health Methods of reprogramming chondrocytes
WO2014058080A1 (ja) * 2012-11-30 2014-04-17 独立行政法人理化学研究所 体細胞のリプログラミングを亢進させる方法、及び細胞作製キット
EP2938724B1 (en) 2012-12-31 2020-10-28 Janssen Biotech, Inc. Culturing of human embryonic stem cells at the air-liquid interface for differentiation into pancreatic endocrine cells
BR112015015714A2 (pt) 2012-12-31 2017-07-11 Janssen Biotech Inc suspensão e aglomeração de células pluripotentes humanas para diferenciação em célu-las endócrinas pancreáticas
US10370644B2 (en) 2012-12-31 2019-08-06 Janssen Biotech, Inc. Method for making human pluripotent suspension cultures and cells derived therefrom
MX2015017103A (es) 2013-06-11 2016-11-07 Harvard College Celulas beta derivadas de células madre ( sc-beta ) y composiciones y métodos para generarlas.
KR101655383B1 (ko) * 2013-07-27 2016-09-08 고려대학교 산학협력단 소분자 화합물을 포함하는 만능성 줄기세포의 염색체 안정성 유지용 조성물
KR20240091064A (ko) 2014-03-04 2024-06-21 페이트 세러퓨틱스, 인코포레이티드 개선된 재프로그래밍 방법 및 세포 배양 플랫폼
EP3143127B1 (en) 2014-05-16 2021-07-14 Janssen Biotech, Inc. Use of small molecules to enhance mafa expression in pancreatic endocrine cells
WO2015196139A1 (en) * 2014-06-20 2015-12-23 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Mitochondrial inhibitors for use in culturing pluripotent stem cells
EP3177709B1 (en) 2014-08-07 2022-05-18 The J. David Gladstone Institutes, A Testamentary Trust Established under The Will of J. David Gladstone Reversible stencils for fabricating micro-tissues
CN107073042A (zh) 2014-09-03 2017-08-18 布里格海姆妇女医院公司 用于产生内耳毛细胞来治疗听力损失的组合物、系统和方法
WO2016100930A1 (en) 2014-12-18 2016-06-23 President And Fellows Of Harvard College Methods for generating stem cell-derived b cells and methods of use thereof
EP3234110B1 (en) 2014-12-18 2024-02-28 President and Fellows of Harvard College METHODS FOR GENERATING STEM CELL-DERIVED ß CELLS AND USES THEREOF
WO2016100898A1 (en) 2014-12-18 2016-06-23 President And Fellows Of Harvard College Serum-free in vitro directed differentiation protocol for generating stem cell-derived b cells and uses thereof
WO2016117139A1 (ja) * 2015-01-20 2016-07-28 タカラバイオ株式会社 神経系細胞の製造方法
CN117737124A (zh) 2015-10-16 2024-03-22 菲特治疗公司 用于诱导和维护基态多能性的平台
JP2019506153A (ja) * 2016-01-08 2019-03-07 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー 分化した腸内分泌細胞およびインスリン産生細胞の作製
MA45479A (fr) 2016-04-14 2019-02-20 Janssen Biotech Inc Différenciation de cellules souches pluripotentes en cellules de l'endoderme de l'intestin moyen
WO2017206837A1 (zh) * 2016-06-03 2017-12-07 中国人民解放军军事医学科学院野战输血研究所 将消化道来源上皮细胞重编程为内胚层干/祖细胞的小分子化合物组合、重编程方法及应用
IL305391B2 (en) 2017-11-15 2024-09-01 Vertex Pharma Preparations for the production of islet cells and methods of use
WO2019151386A1 (ja) 2018-01-31 2019-08-08 富士フイルム株式会社 細胞の製造方法
US11268070B2 (en) * 2018-04-16 2022-03-08 Cellular Engineering Technologies, Inc. Methods for creating integration-free, virus-free, exogenous oncogene-free IPS cells and compositions for use in such methods
EP3833365A4 (en) 2018-08-10 2022-05-11 Vertex Pharmaceuticals Incorporated ISLE DIFFERENTIATION DERIVED FROM STEM CELLS
EP3837351A1 (en) 2018-08-17 2021-06-23 Frequency Therapeutics, Inc. Compositions and methods for generating hair cells by downregulating foxo
WO2020077357A1 (en) * 2018-10-12 2020-04-16 Poseida Therapeutics, Inc. Compositions and methods for increasing transposition frequency
CN111534481A (zh) * 2020-05-18 2020-08-14 扬州大学 一种提高鸡胚成纤维细胞体外诱导重编程为iPS细胞效率的方法
WO2023067090A1 (en) * 2021-10-20 2023-04-27 Roslin Technologies Limited Ipsc induction and progeny derivation
EP4170018A1 (en) * 2021-10-20 2023-04-26 Roslin Technologies Limited Ipsc induction and progeny derivation
WO2023240248A2 (en) 2022-06-09 2023-12-14 Umoja Biopharma, Inc. Compositions and methods for nk cell differentiation
WO2024026391A1 (en) 2022-07-27 2024-02-01 Umoja Biopharma, Inc. Differentiation of stem cells in suspension culture
CN115354026B (zh) * 2022-08-16 2023-08-18 中国人民解放军军事科学院军事医学研究院 获得造血干/祖细胞的培养基及培养方法和用途
WO2024078118A1 (en) * 2022-10-12 2024-04-18 Peking University Chemical reprogramming and pluripotent stem cells
CN117448270B (zh) * 2023-12-22 2024-07-26 上海元戊医学技术有限公司 一种高效诱导多能干细胞分化为中脑多巴胺能神经前体细胞的方法

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2009057831A1 (ja) * 2007-10-31 2009-05-07 Kyoto University 核初期化方法
WO2009096049A1 (ja) * 2008-02-01 2009-08-06 Kyoto University 人工多能性幹細胞由来分化細胞
WO2009133971A1 (en) * 2008-05-02 2009-11-05 Kyoto University Method of nuclear reprogramming
WO2009157593A1 (en) * 2008-06-27 2009-12-30 Kyoto University Method of efficiently establishing induced pluripotent stem cells
WO2010004989A1 (ja) * 2008-07-07 2010-01-14 タカラバイオ株式会社 多能性幹細胞の製造方法

Family Cites Families (148)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5703055A (en) 1989-03-21 1997-12-30 Wisconsin Alumni Research Foundation Generation of antibodies through lipid mediated DNA delivery
US5384253A (en) 1990-12-28 1995-01-24 Dekalb Genetics Corporation Genetic transformation of maize cells by electroporation of cells pretreated with pectin degrading enzymes
WO1993004169A1 (en) 1991-08-20 1993-03-04 Genpharm International, Inc. Gene targeting in animal cells using isogenic dna constructs
US5702932A (en) 1992-07-20 1997-12-30 University Of Florida Microinjection methods to transform arthropods with exogenous DNA
CA2167580A1 (en) 1993-07-22 1995-02-02 Howard Y. Chen Expression of human interleukin-1.beta. in a transgenic animal
US5656610A (en) 1994-06-21 1997-08-12 University Of Southern California Producing a protein in a mammal by injection of a DNA-sequence into the tongue
US5736524A (en) 1994-11-14 1998-04-07 Merck & Co.,. Inc. Polynucleotide tuberculosis vaccine
US5843780A (en) 1995-01-20 1998-12-01 Wisconsin Alumni Research Foundation Primate embryonic stem cells
US5780448A (en) 1995-11-07 1998-07-14 Ottawa Civic Hospital Loeb Research DNA-based vaccination of fish
GB9807935D0 (en) 1998-04-14 1998-06-10 Univ Edinburgh Lineage specific cells and progenitor cells
US5945100A (en) 1996-07-31 1999-08-31 Fbp Corporation Tumor delivery vehicles
US5981274A (en) 1996-09-18 1999-11-09 Tyrrell; D. Lorne J. Recombinant hepatitis virus vectors
AU749465B2 (en) 1997-06-13 2002-06-27 Japanese Foundation For Cancer Research Smad6 and uses thereof
US5994624A (en) 1997-10-20 1999-11-30 Cotton Incorporated In planta method for the production of transgenic plants
US6214879B1 (en) 1998-03-24 2001-04-10 Virginia Commonwealth University Allosteric inhibitors of pyruvate kinase
US20060263382A1 (en) 1998-06-20 2006-11-23 Richard Hotchkiss Membrane-permeant peptide complexes for treatment of sepsis
US6800790B2 (en) 1998-07-24 2004-10-05 Carnegie Institution Of Washington Method for maintenance and propagation of germline stem cells using members of the TFG-β family of growth factors
AU767830B2 (en) 1999-03-29 2003-11-27 F. Hoffmann-La Roche Ag Glucokinase activators
AU5277000A (en) 1999-05-20 2000-12-12 Humanetics Corporation Stimulating transport of glucose into animal tissue by the administration of pinitol
US6730293B1 (en) 1999-08-24 2004-05-04 Cellgate, Inc. Compositions and methods for treating inflammatory diseases of the skin
US6353111B1 (en) 1999-12-15 2002-03-05 Hoffmann-La Roche Inc. Trans olefinic glucokinase activators
US20020142457A1 (en) 1999-12-28 2002-10-03 Akihiro Umezawa Cell having the potentiality of differentiation into cardiomyocytes
ATE304011T1 (de) 2000-05-03 2005-09-15 Hoffmann La Roche Hydantoin-enthaltende glucokinase aktivatoren
ES2233660T3 (es) 2000-05-03 2005-06-16 F. Hoffmann-La Roche Ag Activadores de glucokinasa alquinil fenil heteroaromaticos.
ES2230309T3 (es) 2000-05-08 2005-05-01 F. Hoffmann-La Roche Ag Fenilacetamidas sustituidas y su empleo con ativadores de qucokinasa.
DK1283830T3 (da) 2000-05-08 2008-08-25 Hoffmann La Roche Para-amin-substituerede phenylamidglucokinase-aktivatorer
EP1305301B1 (en) 2000-07-20 2005-06-15 F. Hoffmann-La Roche Ag Alpha-acyl and alpha-heteroatom-substituted benzene acetamide glucokinase activators
US6369232B1 (en) 2000-08-15 2002-04-09 Hoffmann-La Roche Inc. Tetrazolyl-phenyl acetamide glucokinase activators
DE60117059T2 (de) 2000-12-06 2006-10-26 F. Hoffmann-La Roche Ag Kondensierte heteroaromatische glucokinaseaktivatoren
US6482951B2 (en) 2000-12-13 2002-11-19 Hoffmann-La Roche Inc. Isoindolin-1-one glucokinase activators
WO2008108741A1 (en) 2007-03-07 2008-09-12 S*Bio Pte Ltd Combination of benzimidazole anti-cancer agent and a second anti-cancer agent
US7700572B2 (en) 2001-11-02 2010-04-20 Giuliani International, Ltd. SMAD7 inhibitors for the treatment of CNS diseases
JP2005526702A (ja) 2001-12-03 2005-09-08 ノボ　ノルディスク　アクティーゼルスカブ グルカゴンアンタゴニストとの組み合わせにおける２型糖尿病治療のためのグルコキナーゼ活性化剤の使用
CN1602360A (zh) 2001-12-06 2005-03-30 法布罗根股份有限公司 提高内源性红细胞生成素(epo)的方法
GB0206711D0 (en) 2002-03-21 2002-05-01 Isis Innovation HIF Inhibitor
BR0309546A (pt) 2002-04-26 2005-02-15 Hoffmann La Roche Composto, composição farmacêutica que compreende o mesmo, processo para a sua preparação e utilização e método para tratamento profilático ou terapêutico de diabetes do tipo ii
GB0210539D0 (en) 2002-05-08 2002-06-19 Univ Edinburgh Control of es cell self renewal and lineage specification, and medium therefor
PE20040801A1 (es) 2002-12-12 2004-11-25 Hoffmann La Roche Derivados de pirazina y piridina 5-sustituidos como activadores de glucoquinasa
JP4716734B2 (ja) 2003-01-06 2011-07-06 イーライ リリー アンド カンパニー グルコキナーゼ活性化物質としての置換されたアリールシクロプロピルアセトアミド
MXPA05008309A (es) 2003-02-10 2005-09-20 Amgen Inc Ligandos de receptor vaniloide y su uso en tratamientos.
WO2004072066A1 (en) 2003-02-11 2004-08-26 Prosidion Limited Tri(cyclo) substituted amide glucokinase activator compounds
AU2003901099A0 (en) 2003-03-11 2003-03-27 Es Cell International Pte Ltd. Methods of inducing differentiation of stem cells
US20070010008A1 (en) 2005-06-29 2007-01-11 Tissuetech, Inc. Ex vivo expansion of primary animal cells
EP1732581A4 (en) 2003-06-20 2008-06-04 Univ California San Diego POLYPEPTIDE TRANSDUCTION AND FUSOGENIC PEPTIDES
RU2392315C2 (ru) 2003-10-03 2010-06-20 Кейити ФУКУДА Способ индукции дифференциации стволовых клеток в миокардиальные
AU2004281309A1 (en) 2003-10-16 2005-04-28 The University Court Of The University Of Edinburgh Control of ES cell self-renewal and lineage specification, and medium therefor
AU2004291559B2 (en) 2003-11-19 2008-10-16 Australian Stem Cell Centre Limited Methods for producing blood products from pluripotent cells in cell culture
EP1532980A1 (en) 2003-11-24 2005-05-25 Novo Nordisk A/S N-heteroaryl indole carboxamides and analogues thereof, for use as glucokinase activators in the treatment of diabetes
US20070269412A1 (en) 2003-12-02 2007-11-22 Celavie Biosciences, Llc Pluripotent cells
BRPI0506662B8 (pt) 2004-01-06 2021-05-25 Novo Nordisk As compostos ativadores de glucoquinase
BRPI0509573A (pt) 2004-04-02 2007-09-25 Novartis Ag derivados de sulfonamida-tiazolpiridina como ativadores de glicocinase úteis para o tratamento de diabetes do tipo 2
US20080026987A1 (en) 2004-06-17 2008-01-31 Novo Nordisk A/S Use of Liver-Selective Glucokinase Activators
KR20080105180A (ko) 2004-08-12 2008-12-03 프로시디온 리미티드 치환된 페닐아세트아미드 및 글루코키나제 활성화제로서의 그의 용도
WO2006020919A2 (en) 2004-08-13 2006-02-23 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Compositions and methods for self-renewal and differentiation in human embryonic stem cells
US20080268533A1 (en) * 2004-08-25 2008-10-30 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Methods and Compositions Utilizing Myc and Gsk3Beta to Manipulate the Pluripotency of Embryonic Stem Cells
BRPI0518798A2 (pt) 2004-12-03 2008-12-09 Transtech Pharma Inc composto, composiÇço farmacÊutica, e, mÉtodos para tratar diabete tipo ii e para tratar uma condiÇço ou distérbio
US20080213404A1 (en) 2005-02-04 2008-09-04 Johnson Randall S Hif Modulating Compounds and Methods of Use Thereof
WO2006088867A2 (en) 2005-02-15 2006-08-24 Medistem Laboratories, Incorporated Method for expansion of stem cells
KR20080024211A (ko) 2005-07-08 2008-03-17 노보 노르디스크 에이/에스 디시클로알킬 우레아 글루코키나제 활성제
ES2382815T3 (es) 2005-07-08 2012-06-13 Novo Nordisk A/S Dicicloalquilcarbamoil ureas como activadores de glucoquinasa
MX2008000255A (es) 2005-07-14 2008-04-02 Novo Nordisk As Activadores de urea glucocinasa.
CN101313065A (zh) 2005-08-01 2008-11-26 纽珀滕索有限公司 具有恢复的潜能的重编程序细胞的生产
WO2007030693A2 (en) 2005-09-08 2007-03-15 The Government Of The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services Methods for promoting stem cell proliferation and survival
WO2007031739A1 (en) 2005-09-16 2007-03-22 Astrazeneca Ab Heterobicyclic compounds as glucokinase activators
JP2009512724A (ja) 2005-10-24 2009-03-26 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲー Ｆａｖｏｒｓｋｉｉ転位による環状ケタール化ケトンの製造およびグルコキナーゼ活性化剤：７０を製造するためのその使用
JP5137207B2 (ja) 2005-11-01 2013-02-06 アレイ バイオファーマ、インコーポレイテッド グルコキナーゼ活性化因子
WO2007061923A2 (en) 2005-11-18 2007-05-31 Takeda San Diego, Inc. Glucokinase activators
US20090227032A1 (en) * 2005-12-13 2009-09-10 Kyoto University Nuclear reprogramming factor and induced pluripotent stem cells
EP3418297B1 (en) * 2005-12-13 2023-04-05 Kyoto University Nuclear reprogramming factor
CA2633584A1 (en) 2005-12-20 2007-07-05 Takeda Pharmaceutical Company Limited Glucokinase activators
ES2378704T3 (es) 2006-01-27 2012-04-17 Array Biopharma, Inc. Activadores de la glucocinasa
WO2007088651A1 (ja) 2006-02-01 2007-08-09 The University Of Tokyo ＴＧＦ－βシグナル阻害剤と抗腫瘍剤の組み合せ使用
US7541186B2 (en) 2006-02-22 2009-06-02 University Of Washington Method of generating human retinal progenitors from embryonic stem cells
EP2001875A2 (en) 2006-03-08 2008-12-17 Takeda San Diego, Inc. Glucokinase activators
MY148985A (en) 2006-03-24 2013-06-28 Array Biopharma Inc 2-aminopyridine analogs as glucokinase activators
GB0615327D0 (en) 2006-03-30 2006-09-13 Univ Edinburgh Culture medium containing kinase inhibitors and uses thereof
WO2007113505A2 (en) 2006-03-30 2007-10-11 The University Court Of The University Of Edinburgh Culture medium containing kinase inhibitors. and uses thereof
WO2007115968A2 (en) 2006-04-12 2007-10-18 F. Hoffmann-La Roche Ag Process for the preparation of a glucokinase activator
WO2007115967A1 (en) 2006-04-12 2007-10-18 F. Hoffmann-La Roche Ag Crystalline isopropanol solvate of glucokinase activator
US7880012B2 (en) 2006-04-28 2011-02-01 Transtech Pharma, Inc. Benzamide glucokinase activators
JP2009535319A (ja) 2006-04-28 2009-10-01 トランステック ファーマ，インコーポレイティド ベンズアミドグルコキナーゼ活性化剤
US8741643B2 (en) 2006-04-28 2014-06-03 Lifescan, Inc. Differentiation of pluripotent stem cells to definitive endoderm lineage
US20070259423A1 (en) 2006-05-02 2007-11-08 Jon Odorico Method of differentiating stem cells into cells of the endoderm and pancreatic lineage
ATE522518T1 (de) 2006-05-31 2011-09-15 Takeda San Diego Inc Indazol- und isoindolderivate als glucokinaseaktivierende stoffe
KR20090042779A (ko) 2006-06-30 2009-04-30 쉐링 코포레이션 Ｐ53 활성을 증가시키는 치환된 피페리딘 및 이의 사용
US7910747B2 (en) 2006-07-06 2011-03-22 Bristol-Myers Squibb Company Phosphonate and phosphinate pyrazolylamide glucokinase activators
US7888504B2 (en) 2006-07-06 2011-02-15 Bristol-Myers Squibb Company Glucokinase activators and methods of using same
AR061974A1 (es) 2006-07-14 2008-08-10 Novartis Ag Derivados de pirimidina como inhibidores de alk, composiciones farmaceuticas y procesos de obtencion
CN101553245A (zh) * 2006-07-19 2009-10-07 佛罗里达大学研究基金会有限公司 用于细胞重编程的组合物及其用途
AU2007278261A1 (en) 2006-07-24 2008-01-31 F. Hoffmann-La Roche Ag Pyrazoles as glucokinase activators
GB0622395D0 (en) 2006-11-09 2006-12-20 Univ Cambridge Tech Methods relating to pluripotent cells
WO2008079787A2 (en) 2006-12-20 2008-07-03 Takeda San Diego, Inc. Glucokinase activators
WO2008074694A1 (en) 2006-12-20 2008-06-26 F. Hoffmann-La Roche Ag Crystallization of glucokinase activators
TW200831081A (en) 2006-12-25 2008-08-01 Kyorin Seiyaku Kk Glucokinase activator
JP2010515701A (ja) 2007-01-09 2010-05-13 ノボ・ノルデイスク・エー／エス ウレアグルコキナーゼアクチベーター
US8318778B2 (en) 2007-01-11 2012-11-27 Novo Nordisk A/S Urea glucokinase activators
WO2008089351A1 (en) 2007-01-17 2008-07-24 Wisconsin Alumni Research Foundation Improved culture of stem cells
US20100172883A1 (en) 2007-01-19 2010-07-08 Bruneau Benoit Gaetan Methods of generating cardiomyocytes
US8431713B2 (en) 2007-01-24 2013-04-30 Array Biopharma, Inc. 2-aminopyridine derivatives as glucokinase activators
WO2008094597A2 (en) 2007-01-30 2008-08-07 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Early mesoderm cells, a stable population of mesendoderm cells that has utility for generation of endoderm and mesoderm lineages and multipotent migratory cells (mmc)
AU2008218998A1 (en) * 2007-02-23 2008-08-28 Advanced Cell Technology, Inc. Highly efficient methods for reprogramming differentiated cells and for generating animals and embryonic stem cells from reprogrammed cells
EP2132225A4 (en) 2007-02-27 2010-06-09 Procell Therapeutics Inc COMBINED USE OF NANOG AND OCT4 PERMEABLE TO CELLS TO INCREASE SELF-RENEWAL AND DELETE DIFFERENTIATION OF STEM CELLS
JP5491871B2 (ja) 2007-02-28 2014-05-14 アドビナス セラピュティックス プライベート リミテッド グルコキナーゼ活性化因子としての２，２，２−三置換アセトアミド誘導体、その方法及び薬学的応用
MX2009009525A (es) 2007-03-07 2009-09-16 Kyorin Seiyaku Kk Activador de glucocinasa.
US8173645B2 (en) 2007-03-21 2012-05-08 Takeda San Diego, Inc. Glucokinase activators
JP5450108B2 (ja) 2007-03-23 2014-03-26 アレイ バイオファーマ、インコーポレイテッド グルコキナーゼ活性化剤としての２−アミノピリジン類似体
WO2008126932A2 (en) 2007-04-09 2008-10-23 Riken Epigenetical regulation of brain plasticity
US8648069B2 (en) 2007-06-08 2014-02-11 Abbvie Inc. 5-substituted indazoles as kinase inhibitors
US8299115B2 (en) 2007-06-08 2012-10-30 Debnath Bhuniya Pyrrole-2-carboxamide derivatives as glucokinase activators, their process and pharmaceutical application
WO2008154563A1 (en) 2007-06-11 2008-12-18 Bristol-Myers Squibb Company 1, 3 - dihydroxy substituted phenylamide glucokinase activators
JP2008307007A (ja) 2007-06-15 2008-12-25 Bayer Schering Pharma Ag 出生後のヒト組織由来未分化幹細胞から誘導したヒト多能性幹細胞
JP5991796B2 (ja) 2007-06-29 2016-09-14 セルラー ダイナミクス インターナショナル， インコーポレイテッド 胚性幹細胞培養のための自動化された方法および装置
CN101808995A (zh) 2007-07-27 2010-08-18 百时美施贵宝公司 新颖的葡糖激酶激活剂及其使用方法
US20120282229A1 (en) 2007-08-01 2012-11-08 Christian Kannemeier Non-viral delivery of transcription factors that reprogram human somatic cells into a stem cell-like state
WO2009022179A2 (en) 2007-08-14 2009-02-19 Astrazeneca Ab Glucokinase activators in the treatment of osteoarthritis
US8552050B2 (en) 2007-08-16 2013-10-08 Beth Israel Deaconess Medical Center Activators of pyruvate kinase M2 and methods of treating disease
ES2589122T3 (es) 2007-08-31 2016-11-10 Whitehead Institute For Biomedical Research Estimulación de la ruta de la Wnt en la reprogramación de células somáticas
CA2699718C (en) 2007-09-21 2014-05-27 Array Biopharma Inc. Pyridin-2-yl-amino-1, 2, 4-thiadiazole derivatives as glucokinase activators for the treatment of diabetes mellitus
BRPI0818501A2 (pt) 2007-10-08 2015-04-22 Advinus Therapeutics Private Ltd Derivados de acetamida como ativadores de glicoquinase, seu processo e aplicações medicinais
PL2195312T3 (pl) 2007-10-09 2013-04-30 Merck Patent Gmbh Pochodne pirydynowe użyteczne jako aktywatory glukokinazowe
KR20100066580A (ko) 2007-10-09 2010-06-17 메르크 파텐트 게엠베하 글루코키나아제 활성인자로서의 ｎ-(피라졸-3-일)-벤즈아미드 유도체
JP4604076B2 (ja) 2007-11-07 2010-12-22 国立大学法人静岡大学 燃料電池用電解質膜
WO2009073523A2 (en) 2007-11-29 2009-06-11 Children's Hospital Of Orange County De-differentiation of human cells
EP2227241A1 (en) 2007-11-30 2010-09-15 Cytomatrix PTY LTD Methods of inducing pluripotency involving sox2 protein
AU2008329563A1 (en) 2007-11-30 2009-06-04 Cytomatrix Pty Ltd Methods of inducing pluripotency involving Oct4 protein
JP5364103B2 (ja) 2007-12-20 2013-12-11 エルジー・ライフ・サイエンシーズ・リミテッド グルコキナーゼ活性化剤およびそれを活性成分として含有する医薬組成物
WO2009083553A1 (en) 2007-12-31 2009-07-09 Rheoscience A/S Azine compounds as glucokinase activators
JP5559702B2 (ja) 2008-02-25 2014-07-23 メルク パテント ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツング グルコキナーゼ活性化剤
KR101679082B1 (ko) 2008-03-17 2016-11-23 더 스크립스 리서치 인스티튜트 유도 만능 줄기 세포 생성을 위한 화학적 및 유전적 조합 접근법
US8258134B2 (en) 2008-04-16 2012-09-04 Hoffmann-La Roche Inc. Pyridazinone glucokinase activators
US7741327B2 (en) 2008-04-16 2010-06-22 Hoffmann-La Roche Inc. Pyrrolidinone glucokinase activators
AU2009246167B2 (en) 2008-05-16 2013-08-22 Takeda California, Inc. Glucokinase activators
JP2011522540A (ja) 2008-06-04 2011-08-04 セルラー ダイナミクス インターナショナル， インコーポレイテッド 非ウイルスアプローチを用いたｉＰＳ細胞の産生のための方法
US20090317850A1 (en) 2008-06-20 2009-12-24 Tomoko Sunami Crystal Structure of Human 70KD Ribosomal Protein S6 Kinase 1 Kinase Domain
US8298825B1 (en) 2008-08-25 2012-10-30 The General Hospital Corporation TGF-beta receptor inhibitors to enhance direct reprogramming
NZ591366A (en) 2008-09-11 2012-05-25 Pfizer Heteroaryls amide derivatives and their use as glucokinase activators
SG160248A1 (en) * 2008-09-18 2010-04-29 Agency Science Tech & Res Use of novel monoclonal antibodies targeting human embryonic stem cells to characterize and kill induced pluripotent stem cells
EP3173415B1 (en) 2008-10-09 2019-06-05 The U.S.A. as represented by the Secretary, Department of Health and Human Services Activators of human pyruvate kinase
JP5649584B2 (ja) 2008-11-14 2015-01-07 フィブロジェン インコーポレイテッド Ｈｉｆヒドロキシラーゼ阻害剤としてのチオクロメン誘導体
CN102317442B (zh) 2008-12-17 2014-08-13 斯克里普斯研究所 干细胞的产生和保持
UA104742C2 (uk) 2008-12-19 2014-03-11 Эли Лилли Энд Компани Похідні арилциклопропілацетаміду, застосовні як активатори глюкокінази
US20120122212A1 (en) 2009-03-06 2012-05-17 Marica Grskovic Tgf-beta pathway inhibitors for enhancement of cellular reprogramming of human cells
EP2406230A1 (en) 2009-03-11 2012-01-18 Pfizer Inc. Substituted indazole amides and their use as glucokinase activators
JP5777113B2 (ja) 2009-05-29 2015-09-09 学校法人慶應義塾 人工多能性幹細胞のクローンの選択方法
WO2011016588A1 (en) 2009-08-07 2011-02-10 Kyoto University Method of efficiently establishing induced pluripotent stem cells
CN113621576A (zh) 2009-10-16 2021-11-09 斯克里普斯研究所 多能细胞的诱导
CA2791901C (en) 2010-03-05 2018-01-02 Texas Heart Institute Ets2 and mesp1 generate cardiac progenitors from fibroblasts
JP5909482B2 (ja) * 2010-03-31 2016-04-26 ザ スクリプス リサーチ インスティテュート 細胞の再プログラム

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2009057831A1 (ja) * 2007-10-31 2009-05-07 Kyoto University 核初期化方法
WO2009096049A1 (ja) * 2008-02-01 2009-08-06 Kyoto University 人工多能性幹細胞由来分化細胞
WO2009133971A1 (en) * 2008-05-02 2009-11-05 Kyoto University Method of nuclear reprogramming
WO2009157593A1 (en) * 2008-06-27 2009-12-30 Kyoto University Method of efficiently establishing induced pluripotent stem cells
WO2010004989A1 (ja) * 2008-07-07 2010-01-14 タカラバイオ株式会社 多能性幹細胞の製造方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
NATURE BIOTECHNOLOGY, 2008, VOL.26, PP.1269-1275, JPN6023004975, ISSN: 0004985138 *
NATURE BIOTECHNOLOGY, 2008, VOL.26, PP.795-797, JPN6023004978, ISSN: 0004985137 *
NATURE, 2008, VOL.454, PP.646-650, JPN6023004980, ISSN: 0004985135 *
STEM CELLS, 2009, VOL.27, PP.2992-3000, JPN6023004981, ISSN: 0004985136 *

Also Published As

Publication number Publication date
JP2016171798A (ja) 2016-09-29
JP5909482B2 (ja) 2016-04-26
CN105176930B (zh) 2021-05-04
EP2553086B1 (en) 2017-04-19
US9657274B2 (en) 2017-05-23
US10214729B2 (en) 2019-02-26
ES2893699T3 (es) 2022-02-09
US20210095257A1 (en) 2021-04-01
CN102959076A (zh) 2013-03-06
CA2800498C (en) 2021-11-16
EP3199623A1 (en) 2017-08-02
JP6726719B2 (ja) 2020-07-22
EP2553086A1 (en) 2013-02-06
EP2553086A4 (en) 2013-10-02
EP3936608A1 (en) 2022-01-12
JP6415470B2 (ja) 2018-10-31
ES2624780T3 (es) 2017-07-17
US20160257938A1 (en) 2016-09-08
US10738281B2 (en) 2020-08-11
CA2800498A1 (en) 2011-10-06
JP2023105203A (ja) 2023-07-28
HK1214626A1 (zh) 2016-07-29
JP2018198628A (ja) 2018-12-20
JP2013523134A (ja) 2013-06-17
AU2011235212A1 (en) 2012-11-01
CN105176930A (zh) 2015-12-23
US20130323833A1 (en) 2013-12-05
US9315779B2 (en) 2016-04-19
WO2011123572A1 (en) 2011-10-06
US20170283776A1 (en) 2017-10-05
US20190203182A1 (en) 2019-07-04
CN102959076B (zh) 2015-09-16
AU2011235212B2 (en) 2014-07-31
EP3199623B1 (en) 2021-07-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6726719B2 (ja) 細胞の再プログラム
JP7286710B2 (ja) 人工多能性幹細胞を作製するための化学的手法と遺伝的手法の組み合わせ法
JP6189384B2 (ja) 多能性細胞の誘導法
AU2017201158B2 (en) Reprogramming cells

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20200728

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20200728

RD04 Notification of resignation of power of attorney

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7424

Effective date: 20210119

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20210818

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20211111

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20220218

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20220516

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20220812

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20221115

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20221104

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20230208

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20230608

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20230719

A911 Transfer to examiner for re-examination before appeal (zenchi)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A911

Effective date: 20230719

A912 Re-examination (zenchi) completed and case transferred to appeal board

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A912

Effective date: 20230908