JP2013507952A - ウイルスレスキューのための改善された逆遺伝学 - Google Patents

Abstract

【要約書】
逆遺伝学によってウイルスをレスキューするための方法が提供され、ここで細胞は、トランスフェクション後に添加される。一実施形態において、本発明のウイルスを調製するための方法は、（ｉ）宿主細胞の培養物をウイルスＲＮＡ分子をコードする少なくとも１個の発現構築物でトランスフェクトする工程；（ｉｉ）細胞を、（ｉ）のトランスフェクトされた該宿主細胞に添加して、細胞の混合物を提供する工程；および（ｉｉｉ）ウイルスを生成するために、該細胞の混合物を培養する工程を包含する。

Description

この出願は、２００９年１０月２０日に出願された米国仮出願第６１／２７９，４８７号（この完全な内容は、参考として本明細書に援用される）の利益を主張する。

（技術分野）
本発明は、逆遺伝学の分野にある。さらに、種々のウイルスに対して防御するためのワクチンを製造することに関する。

（背景技術）
逆遺伝学は、細胞培養物においてＲＮＡウイルスの組換え発現および操作を可能にする。逆遺伝学は、ウイルス学およびワクチン製造において強力なツールである。なぜなら、逆遺伝学は、組換えウイルス（リアソータントを含む）の迅速な生成および／もしくはそれらの変異を可能にするからである。上記方法は、宿主細胞を、ウイルスゲノムをコードする１個以上の発現構築物でトランスフェクトする工程および上記ウイルスを上記細胞から単離する工程を包含する。

逆遺伝学によるウイルスレスキュー（ｖｉｒｕｓ ｒｅｓｃｕｅ）の１つの欠点は、そのプロセスが非効率的であり、頻繁に、結果として得られるウイルス収量が十分ではないことである。従って、代替のより効率的な逆遺伝学法を提供することが当該分野には未だに必要である。

（好ましい実施形態の要旨）
本発明者らは、ここで、逆遺伝学法の不十分な効率が、細胞を上記逆遺伝学構築物でトランスフェクトする工程およびその後、より多くの細胞を上記トランスフェクトした細胞に添加する工程によって、顕著に改善され得ることを驚くべきことに発見した。本発明者らは、観察された効率の増大が、上記細胞に対してトランスフェクションが有害であるという事実に起因すると推量する。従って、レスキューされる任意のウイルスは、疾患細胞において拡大するか、もしくは上記ウイルスが健康な細胞に移入されるまで待つことが必要である。このことは、生存可能なウイルスの喪失を生じる。上記トランスフェクトされた宿主細胞への細胞の添加は、上記ウイルス収量を顕著に増大させる健康な細胞基質上で、上記レスキューされたウイルスが繁殖することを可能にする。

一実施形態において、本発明は、ウイルスを調製するための方法を提供し、上記方法は、（ｉ）宿主細胞の培養物を、ウイルスＲＮＡ分子をコードする少なくとも１個の発現構築物でトランスフェクトする工程；（ｉｉ）細胞を、上記（ｉ）のトランスフェクトされた宿主細胞に添加して、細胞の混合物を提供する工程；および（ｉｉｉ）ウイルスを生成するために、上記細胞の混合物を培養する工程を包含する。

さらなる実施形態において、本発明は、ワクチン製造のためにウイルスを調製する方法を提供し、上記方法は、（ｉ）宿主細胞の培養物を、ウイルスＲＮＡ分子をコードする少なくとも１個の発現構築物でトランスフェクトする工程；（ｉｉ）細胞を、上記（１）のトランスフェクトされた宿主細胞に添加して、細胞の混合物を提供する工程；（ｉｉｉ）ウイルスを生成するために、上記細胞の混合物を培養する工程；（ｉｖ）上記工程（ｉｉｉ）において得られたウイルスを精製する工程および必要に応じて（ｖ）上記ウイルスをワクチンへと処方する工程を包含する。

（逆遺伝学）
逆遺伝学は、広く種々のＲＮＡウイルス（プラス鎖ＲＮＡウイルス［１、２］、マイナス鎖ＲＮＡウイルス［３、４］および二本鎖ＲＮＡウイルス［５］を含む）の生成のために使用され得る。従って、本発明は、組換えウイルスを生成するための方法を提供し、ここで上記ウイルスは、本発明の逆遺伝学法を使用して得られる。

既知の逆遺伝学システムは、ｐｏｌ Ｉプロモーター、細菌ＲＮＡポリメラーゼプロモーター、バクテリオファージポリメラーゼプロモーターなどから、所望のウイルスＲＮＡ（ｖＲＮＡ）分子をコードするＤＮＡ分子を発現する工程を包含する。さらに、ウイルスが、感染性ウイルスを形成するために特定のタンパク質を必要とする場合、上記システムはまた、これらタンパク質を提供し、例えば、上記システムは、ウイルスタンパク質をコードするＤＮＡ分子をさらに含み、その結果、ＤＮＡの両方のタイプの発現が、完全な感染性ウイルスの構築をもたらす。

逆遺伝学が、ｖＲＮＡの発現のために使用される場合、互いに対する配列エレメントの正確な間隔が、複製を開始するための上記ポリメラーゼの中枢であることは、当業者に明らかである。従って、上記ウイルスＲＮＡをコードするＤＮＡ分子が、上記ｐｏｌ Ｉプロモーターと終結配列との間に正確に配置されることは重要であるが、この配置は、逆遺伝学システムを取り扱う者の能力の十分範囲内である。

一般に、逆遺伝学は、ウイルスの生活環の間にゲノムＲＮＡの生成を必要とすることが公知の任意のウイルスの発現に適している。このようなウイルスとしては、プラス鎖ＲＮＡウイルスおよびマイナス鎖ＲＮＡウイルス（例えば、以下に記載されるもの）が挙げられるが、これらに限定されない。好ましくは、上記ウイルスは、オルソミクソウイルス（例えば、インフルエンザウイルス）である。本発明の方法は、さらに、非セグメント化ウイルスおよびセグメント化ウイルスにも適している。

上記ウイルスがプラス鎖ＲＮＡウイルスである場合、上記ウイルスゲノムを含む発現構築物で細胞をトランスフェクトすることはしばしば十分である。例えば、ポリオウイルスゲノムを含むプラスミドのトランスフェクションは、感染性ポリオウイルスの回収をもたらした［１、２］。マイナス鎖ＲＮＡウイルスの逆遺伝学は、より大きな難題を呈した。なぜなら、上記アンチセンスウイルスＲＮＡは、通常は、非感染性であり、その生活環を完了するのにＲＮＡポリメラーゼを必要とするからである。従って、上記ウイルスポリメラーゼは、タンパク質としてか、もしくはインサイチュでのタンパク質発現のための遺伝子としてかのいずれかで、供給されなければならない。

上記ウイルスが感染性のためにタンパク質を必要とする場合、二方向性発現構築物（ｂｉ−ｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔ）を使用することは一般に好ましい。なぜなら、これは、上記宿主細胞が必要とする発現構築物の総数を減らすからである。従って、本発明の方法は、少なくとも１個の二方向性発現構築物を利用し得る。ここで遺伝子もしくはｃＤＮＡは、上流のｐｏｌ ＩＩプロモーターと下流の非内因性ｐｏｌ Ｉプロモーターとの間に位置する。上記ｐｏｌ ＩＩプロモーターからの上記遺伝子もしくはｃＤＮＡの転写は、キャップされたプラス−センスウイルスｍＲＮＡを生成し、これはタンパク質へと翻訳され得る一方で、上記非内因性ｐｏｌ Ｉプロモーターからの転写は、マイナス−センスｖＲＮＡを生成する。上記二方向性発現構築物は、二方向性発現ベクターであり得る。

組換えウイルスを生成するために、細胞は、ビリオンを構築するために必要なウイルスゲノムのすべてのセグメントを発現しなければならない。本発明の発現構築物へとクローニングされたＤＮＡは、好ましくは、上記ウイルスＲＮＡおよびタンパク質のすべてを提供する。しかし、上記ＲＮＡおよびタンパク質のうちのいくらかを提供するためにヘルパーウイルスを使用することも考えられ得るものの、ヘルパーウイルスを使用しないシステムが好ましい。上記ウイルスが非セグメント化ウイルスである場合、これは、１個より多くの発現構築物を使用して非セグメント化ウイルスのウイルスゲノムを発現することは、本発明の範囲内にあるとしても、通常は、本発明の方法において単一の発現構築物を利用することによって達成され得る。上記ウイルスがセグメント化ウイルスである場合、上記ウイルスゲノムは、通常は、本発明の方法において１個より多くの発現構築物を使用して発現される。しかし、単一の発現構築物の上で上記ウイルスゲノムのうちの１個より多くのセグメントもしくはさらにはすべてのセグメントを合わせることもまた、想定される。

本発明の方法は、リアソータントウイルス株の生成に特に適している。その技術は、プラスミドのインビトロでの操作を使用して、ウイルスセグメントの組み合わせを生成し、上記ウイルスセグメントにおけるコード配列もしくは非コード配列の操作を容易にし、変異などを導入し得る。リアソータントウイルス株の生成のための上記発現系の使用は、好ましい。なぜなら、これは、ワクチンの迅速な生成が流行に対抗するために必要とされる状況において特に有益であるリアソータント種ウイルスを得るために必要とされる時間を顕著に減少させ得るからである。従って、本発明のこの局面の方法は、少なくとも２つの異なる野生型株に由来するかもしくはこれらから得られるウイルス遺伝子を発現する１個以上の発現構築物を使用することが好ましい。

上記宿主細胞においてアクセサリタンパク質の発現をもたらす発現構築物もまた、使用され得る。例えば、非ウイルス性セリンプロテアーゼ（例えば、トリプシン）を逆遺伝学システムの一部として発現することもまた、有利であり得る。

（発現構築物）
本発明における使用のために上記ウイルスＲＮＡ分子をコードする発現構築物は、ウイルスをレスキューするために当該分野で一般に使用される任意の発現構築物であり得る。

上記使用される発現構築物は、一方向性発現構築物であってもよいし、二方向性発現構築物であってもよい。宿主細胞は１つより多い導入遺伝子を発現する場合（同じ発現構築物においてであろうと、異なる発現構築物においてであろうと）、一方向性および／もしくは二方向性の発現を使用することは可能である。

二方向性発現構築物は、同じ構築物から異なる方向（すなわち、５’→３’および３’→５’の両方）において発現を駆動する少なくとも２個のプロモーターを含む。上記２個のプロモーターは、同じ二本鎖ＤＮＡの異なる鎖に作動可能に連結され得る。好ましくは、上記プロモーターのうちの一方は、ｐｏｌ Ｉプロモーターであり他方のプロモーターのうちの少なくとも１つは、ｐｏｌ ＩＩプロモーターである。このことは、上記ｐｏｌ Ｉプロモーターが、キャップされていないｃＲＮＡを発現するために使用され得る一方で、上記ｐｏｌ ＩＩプロモーターが、タンパク質へと後に翻訳され得るｍＲＮＡを転写するために使用され得、よって同じ構築物からＲＮＡおよびタンパク質の同時の発現を可能にするので有用である。

上記発現構築物（一方向性であろうと二方向性であろうと）は、代表的には、ＲＮＡ転写終結配列を含む。上記終結配列は、内因性終結配列であってもよいし、上記宿主細胞に対して内因性ではない終結配列であってもよい。適切な終結配列は、当業者に明らかであり、ＲＮＡポリメラーゼＩ転写終結配列、ＲＮＡポリメラーゼＩＩ転写終結配列、およびリボザイムが挙げられるが、これらに限定されない。さらに、上記発現構築物は、ｍＲＮＡについて、特に発現がｐｏｌ ＩＩプロモーターによって制御される遺伝子の末端において、１個以上のポリアデニル化シグナルを含み得る。

上記発現構築物において使用される上記ｐｏｌ Ｉプロモーターおよびｐｏｌ ＩＩプロモーターは、上記発現構築物が発現される宿主細胞と分類学上同じ目にある生物に由来し得る。あるいは、上記プロモーターは、上記宿主細胞とは異なる分類学上の目にある生物に由来し得る。用語「目」とは、従来の分類学上の順位をいい、目の例は、霊長目、齧歯目、食肉目、有袋目、クジラ目などである。ヒトおよびチンパンジーは、分類学上同じ目（霊長目）にあるが、ヒトおよびイヌは、異なる目にある（霊長類 対 食肉目）。

本発明の方法において、宿主細胞は、少なくとも２個、少なくとも３個、少なくとも４個、少なくとも５個、少なくとも６個、少なくとも７個、少なくとも８個、少なくとも９個、少なくとも１０個、少なくとも１１個、もしくは少なくとも１２個の発現構築物でトランスフェクトされ得る。

発現構築物は、ベクター（例えば、プラスミドもしくは他のエピソーム構築物）であり得る。このようなベクターは、代表的には、少なくとも１個の細菌複製起点および／もしくは真核生物複製起点を含む。さらに、上記ベクターは、原核生物細胞および／もしくは真核生物細胞における選択を可能にする選択マーカーを含み得る。このような選択マーカーの例は、抗生物質（例えば、アンピシリンもしくはカナマイシン）に対する耐性を付与する遺伝子である。上記ベクターは、ＤＮＡ配列のクローニングを促進するために、１個以上の、マルチクローニング部位をさらに含み得る。

代わりとして、発現構築物は、線形の発現構築物であり得る。このような線形の発現構築物は、代表的には、任意の増幅配列および／もしくは選択配列を含まない。しかし、このような増幅配列および／もしくは選択配列を含む線形の構築物はまた、本発明の範囲内である。インフルエンザウイルスの発現のために、このような線形の発現構築物を使用する方法の例は、参考文献６に記載される。

本発明の発現構築物は、当該分野で公知の方法を使用して、生成され得る。このような方法は、例えば、参考文献７に記載された。上記発現構築物が線形の発現構築物である場合、単一の制限酵素部位を利用して上記宿主細胞に導入する前に、発現構築物を線形にすることは可能である。あるいは、少なくとも２個の制限酵素部位を使用して、上記発現構築物をベクターから切り出すことは可能である。さらに、核酸増幅技術を使用して（例えば、ＰＣＲによって）増幅することによって、線形の発現構築物を得ることもまた、可能である。

上記発現宿主がイヌ細胞（例えば、ＭＤＣＫ細胞株）である場合、タンパク質コード領域は、例えば、野生型イヌ遺伝子に由来するかもしくはイヌウイルスに由来するプロモーターを使用して、そして／またはヒト細胞よりイヌ細胞に適したコドン使用頻度を有して、イヌの発現に最適化され得る。例えば、ヒト遺伝子がＰｈｅのコドンとしてわずかにＵＵＣを好む（５４％）のに対して、イヌ細胞では、優先度はより強い（５９％）。同様に、ヒト細胞においてＩｌｅコドンに大きな優先度はないのに対して、イヌのコドンのうちの５３％は、Ｉｌｅに関してＡＵＣを使用する。イヌウイルス（例えば、イヌパルボウイルス（ｓｓＤＮＡウイルス））はまた、コドン最適化についてガイダンスを提供し得る（例えば、イヌパルボウイルス配列におけるＰｈｅコドンのうちの９５％は、ＵＵＵであり（イヌゲノムにおける４１％に対して）、Ｉｌｅコドンのうちの６８％は、ＡＵＵであり（３２％に対して）、Ｖａｌコドンのうちの４６％は、ＧＵＵであり（１４％に対して）、Ｐｒｏコドンのうちの７２％は、ＣＣＡであり（２５％に対して）、Ｔｙｒコドンのうちの８７％は、ＵＡＵであり（４０％に対して）、Ｈｉｓコドンのうちの８７％は、ＣＡＵであり（３９％に対して）、Ｇｌｎコドンのうちの９２％は、ＣＡＡであり（２５％に対して）、Ｇｌｕコドンのうちの８１％は、ＧＡＡであり（４０％に対して）、Ｃｙｓコドンのうちの９４％は、ＵＧＵであり（４２％に対して）、Ｓｅｒコドンのうちの１％のみがＵＣＵであり（２４％に対して）、ＣＣＣは、Ｐｈｅについては決して使用されず、ＵＡＧは、終止コドンとして決して使用されない。従って、タンパク質コード遺伝子は、性質がイヌ細胞における発現のためにすでに最適化され、発現を促進したより類似の遺伝子にされ得る。

（トランスフェクション）
「トランスフェクション」とは、細胞へのＤＮＡの導入をいう。上記発現構築物は、当業者に公知の任意の技術を使用して、宿主細胞へと導入され得る。例えば、それらは、エレクトロポレーション、ＤＥＡＥ−デキストラン、リン酸カルシウム沈殿、リポソーム、マイクロインジェクション、もしくは微粒子銃（ｍｉｃｒｏｐａｒｔｉｃｌｅ−ｂｏｍｂａｒｄｍｅｎｔ）を使用することによって、宿主細胞へと導入され得る。逆遺伝学は、一般に、リポソーム法を使用して、例えば、トランスフェクション試薬Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ^ＴＭを使用して実施される。本発明の方法は、リポソームでのトランスフェクションに限定されないが、他のトランスフェクション法で等しく十分に機能すると予測される。

上記細胞は、トランスフェクション後最大７２時間までのいずれかのときに、上記トランスフェクトされた宿主細胞に添加され得る。例えば、上記細胞は、トランスフェクション直後、トランスフェクションの５分後、１０分後、２０分後、３０分後、１時間後、２時間後、３時間後、６時間後、１２時間後、２４時間後、３６時間後、４８時間後、６０時間後、もしくは７２時間後に、添加され得る。一般に、トランスフェクション後に細胞が添加される最大時間は、上記トランスフェクトされた細胞が生存し得る最大時間と適合する。

期間「トランスフェクション後」とは、いったん上記ＤＮＡが上記培養物内で宿主細胞に添加されたら始まる。上記ＤＮＡが導入された時点は、種々の因子（例えば、使用される細胞株、トランスフェクション法、もしくはトランスフェクションが行われる温度）とともに変動する。上記時間は、標準的な方法を使用して、当業者によって容易に決定され得る。例えば、いくつかの実験を並行して行い得、そこで上記細胞は、トランスフェクションが異なる時点で停止されることを除いて同一な条件下で、逆遺伝学構築物でトランスフェクトされる。上記ＤＮＡが上記宿主細胞に導入された場合、少なくとも１個のウイルスが、形成されたはずである。従って、当業者は、例えば、標準的なアッセイを使用してプラーク形成単位の数を決定することによって、ウイルスの存在についてアッセイし得る。少なくとも１プラーク形成単位（ＰＦＵ）が検出可能である後の最初の時点は、上記宿主細胞へと上記ＤＮＡが導入された時点である。

あるいは、細胞が上記トランスフェクトされた細胞に添加された後の期間は、上記トランスフェクションの始まりから決定され得る。トランスフェクションの開始は、上記ウイルス分子をコードする発現構築物が上記宿主細胞の培養物と接触させられた時点である。従って、上記細胞は、トランスフェクション開始の最大９６時間までのいずれかのとき（例えば、１２時間、２４時間、３６時間、４８時間、６０時間、７２時間、８４時間もしくは９６時間）に、上記トランスフェクトされた細胞に添加され得る。「トランスフェクション後」の時点および「トランスフェクションの開始から」の時点は、異なる出発点に対して測定される一方で、上記細胞が上記感染した細胞に添加される絶対時間は、同じである。例えば、上記ＤＮＡが培養物中で上記宿主細胞に導入されるのに１時間かかり、上記細胞が、上記ＤＮＡが導入された３０分後に添加された場合、上記細胞は、トランスフェクションの開始から９０分もしくはトランスフェクションの３０分後で添加されている。

トランスフェクション後に添加される細胞の数は、一般に、トランスフェクションのための宿主細胞として使用される細胞の数、および同様にトランスフェクションのために使用される上記細胞培養容器のサイズに依存して変動する。本発明の方法において使用され得る細胞の数は、当業者によって容易に決定され得る。例えば、本発明の方法は、添加される細胞の数が異なることを除いて、いくつかの並行した実験において同一の条件下で行われ得る。最高のウイルス収量を与える細胞の数は、さらなる実験において使用され得る。例えば、約６×１０^５細胞が、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ^ＴＭでのトランスフェクションのために出発培養物として使用される場合、約４×１０^５細胞が添加され得る。

トランスフェクション後に添加される上記細胞は、上記レスキューされるウイルスが複製するための基質を提供する。従って、上記細胞は、感染していない細胞であってもよく、これは、上記細胞が本発明の方法において使用される前に、上記特定の細胞が特定の時間（例えば、４８時間）内でウイルスに感染もせず、ウイルスＲＮＡをコードする発現構築物でトランスフェクトもされなかったことを意味する。細胞を不死化させるためにウイルス（例えば、エプスタイン−バー・ウイルス）に感染した細胞は、本発明における使用に適している。同様に、トランスフェクトされた細胞は、本発明の方法において使用され得るが、ただし、トランスフェクションは、上記細胞が本発明の方法において使用される直前に（すなわち、４８時間以内に）は行われない。

上記レスキューされたウイルスが、感染性のためにプロテアーゼの存在を必要とする場合、トランスフェクション後に上記細胞と一緒に上記プロテアーゼを添加することは有利である。例えば、上記インフルエンザウイルスは、感染のためにセリンプロテアーゼ（トリプシンのような）の活性を必要とする。従って、本発明の方法が、インフルエンザウイルスをレスキューするために使用される場合、上記セリンプロテアーゼは、トランスフェクション後に上記細胞と同時に添加され得る。あるいは、上記プロテアーゼは、上記細胞が上記トランスフェクトされた細胞に添加される前もしくは添加された後に、添加され得る。

（細胞）
本発明は、上記目的のウイルスを生成し得る任意の真核生物細胞で実施され得る。本発明は、代表的には、細胞株を使用するが、例えば、初代細胞は、代替手段として使用され得る。上記細胞は、代表的には、哺乳動物のものである。適切な哺乳動物細胞としては、ハムスター、ウシ、霊長類（ヒトおよびサルを含む）およびイヌの細胞が挙げられるが、これらに限定されない。種々の細胞タイプが使用され得る（例えば、腎臓細胞、線維芽細胞、網膜細胞、肺細胞など）。適切なハムスター細胞の例は、名称ＢＨＫ２１もしくはＨＫＣＣを有する細胞株である。適切なサル細胞は、例えば、アフリカミドリザル細胞（例えば、Ｖｅｒｏ細胞株のような腎臓細胞である［８〜１０］。適切なイヌ細胞は、例えば、ＣＬＤＫおよびＭＤＣＫ細胞株のような腎臓細胞である。

さらなる適切な細胞としては、ＣＨＯ；２９３Ｔ；ＢＨＫ；ＭＲＣ ５；ＰＥＲ．Ｃ６［１１］；ＦＲｈＬ２；ＷＩ−３８などが挙げられるが、これらに限定されない。適切な細胞は、広く入手可能である（例えば、アメリカンタイプセルカルチャー（ＡＴＣＣ）コレクションから［１２］、Ｃｏｒｉｅｌｌ Ｃｅｌｌ Ｒｅｐｏｓｉｔｏｒｉｅｓ［１３］から、もしくはＥｕｒｏｐｅａｎ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅｓ（ＥＣＡＣＣ）から）。例えば、上記ＡＴＣＣは、カタログ番号ＣＣＬ ８１、ＣＣＬ ８１．２、ＣＲＬ １５８６およびＣＲＬ−１５８７の下で種々の異なるＶｅｒｏ細胞を供給し、カタログ番号ＣＣＬ ３４の下でＭＤＣＫ細胞を供給する。ＰＥＲ．Ｃ６は、寄託番号９６０２２９４０の下でＥＣＡＣＣから入手可能である。ＭＤＣＫ細胞、Ｖｅｒｏ細胞およびＰＥＲ．Ｃ６細胞は、ウイルスの生成のために一般に使用され、従って、これら細胞株の各々は、本発明の方法とともに使用するのに特に適している。

本発明において使用するための好ましい細胞（特にインフルエンザウイルスを増殖させるため）は、メイディン・ダービー・イヌ腎臓に由来するＭＤＣＫ細胞［１４〜１６］である。元々のＭＤＣＫ細胞は、ＣＣＬ ３４としてＡＴＣＣから入手可能である。これら細胞の派生物もしくは他のＭＤＣＫ細胞の派生物が使用されることは、好ましい。ＭＤＣＫ細胞の派生物は、例えば、懸濁培養における増殖に適合されたＭＤＣＫ細胞（ＤＳＭ ＡＣＣ ２２１９として寄託された「ＭＤＣＫ ３３０１６」もしくは「３３０１６−ＰＦ」；参考文献１４もまた参照のこと）を開示する参考文献１４において記載された。さらに、参考文献１７は、無血清培養において懸濁物中で増殖するＭＤＣＫ由来細胞（ＦＥＲＭ ＢＰ−７４４９として寄託された「Ｂ−７０２」）を開示する。上記使用されるＭＤＣＫ細胞株は、腫瘍形成性であり得る。非腫瘍形成性ＭＤＣＫ細胞を使用することもまた、想定される。例えば、参考文献１８は、非腫瘍形成性ＭＤＣＫ細胞（「ＭＤＣＫ−Ｓ」（ＡＴＣＣ ＰＴＡ−６５００）、「ＭＤＣＫ−ＳＦ１０１」（ＡＴＣＣ ＰＴＡ−６５０１）、「ＭＤＣＫ−ＳＦ１０２」（ＡＴＣＣ ＰＴＡ−６５０２）および「ＭＤＣＫ−ＳＦ１０３」（ＡＴＣＣ ＰＴＡ−６５０３）が挙げられる）を開示する。参考文献１９は、感染に対して高い感受性を有するＭＤＣＫ細胞（「ＭＤＣＫ．５Ｆ１」細胞（ＡＴＣＣ ＣＲＬ １２０４２）が挙げられる）を開示する。

上記トランスフェクションのために使用される細胞および上記トランスフェクション後に添加される細胞は、同じ細胞タイプもしくは異なる細胞タイプのものであり得る。例えば、上記発現構築物は、ＭＤＣＫ細胞へとトランスフェクトされ得、上記添加される細胞は、Ｖｅｒｏ細胞であり得、その逆もまた同様である。別の例は、上記発現構築物がＭＤＣＫ細胞の１つの株へトランスフェクトされ、上記添加される細胞は異なるＭＤＣＫ株のものである方法であり得る。このアプローチは、上記レスキューされるウイルスが、容易にトランスフェクトされ得ない細胞株において最良に増殖する場合に有利である。この局面において、上記ウイルスは、より容易にトランスフェクションすることが可能な細胞へトランスフェクトされ得るが、ウイルス複製によりよく適した細胞株においてその後増殖させられ得る。しかし、一般に、トランスフェクションおよびその後の細胞の添加の両方のために宿主細胞と同じ細胞株（例えば、ＭＤＣＫ ３３０１６細胞）を使用することは好ましい。なぜなら、これは、例えば、競合する培養選択圧もしくは異なる細胞培養条件が、避けられ得るという利点を有するからである。トランスフェクションおよび／もしくはトランスフェクション後の添加のための宿主細胞として１種より多い細胞タイプの混合物を使用することもまた、可能である。

好ましくは、上記細胞は、夾雑物の共通する供給源を回避するために、血清の非存在下で培養される。真核生物細胞培養物のための種々の無血清培地は、当業者に公知である（例えば、Ｉｓｃｏｖｅ培地、ウルトラＣＨＯ培地（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ）、ＥＸ−ＣＥＬＬ（ＪＲＨ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ））。さらに、無タンパク質培地が使用され得る（例えば、ＰＦ−ＣＨＯ（ＪＲＨ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ））。さもなければ、上記複製のための細胞はまた、習慣的な血清含有培地（例えば、０．５％〜１０％のウシ胎仔血清を含む、ＭＥＭ培地もしくはＤＭＥＭ培地）中で培養され得る。

上記宿主細胞および上記添加され得る細胞は、接着培養物中もしくは懸濁培養物中に存在し得る。例えば、上記トランスフェクションのために使用される細胞は、接着性の細胞であり得、上記トランスフェクション後に添加される細胞もまた、接着性の細胞であり得る。上記トランスフェクション後に添加される細胞が接着性の細胞である場合、上記細胞は、上記細胞が上記トランスフェクトされた細胞に添加される前にそれらが増殖させられる培養容器から除去される必要があることは明らかである。このことは、例えば、トリプシンのようなセリンプロテアーゼの助けを借りて達成され得る。トランスフェクションのために宿主細胞として懸濁細胞を、そしてトランスフェクション後の添加のために接着性細胞を使用することも可能であり、その逆もまた同様である。

本発明の方法は、通常、使用される具体的なトランスフェクション法のために、当該分野で一般に使用されている温度で実施される。例えば、トランスフェクションのためにリポソームが使用される場合、上記トランスフェクション反応は、最初に、上記ＤＮＡ／リポソーム複合体が最初に添加される（例えば、約３０分間にわたって）場合に室温でインキュベートされ、続いて、約３７℃で特定された期間（例えば、約２４時間）にわたってインキュベートされる。本発明の方法は、当該分野で公知の任意のトランスフェクション法で実施され得、従って、トランスフェクションが行われるはずである温度は、当業者に公知である。あるいは、トランスフェクションの間の上記インキュベーション温度が変動することを除いて、同一な条件下で並行していくつかのトランスフェクション実験を行うことによって、適切なインキュベーション温度を見いだすこともまた、可能である。レスキューされるウイルスの数は、トランスフェクションの効率を示し、上記のように、生じるＰＦＵの数に関してアッセイすることによって決定され得る。最大数のＰＦＵを生じる温度は、トランスフェクションのために使用され得る。

上記細胞が上記トランスフェクトされた細胞に添加される温度および得られた細胞の混合物がインキュベートされる温度は、トランスフェクションの間に使用される温度と比較して、同じであってもよいし、異なっていてもよい。上記温度は、上記トランスフェクション後の添加のために使用される細胞株に依存し得、本発明の方法を使用してレスキューされる上記ウイルスに伴っても変動し得る。個々の細胞株を増殖させるか、もしくは特定のウイルスをレスキューするための適切な温度は、当該分野で公知であるが、それ故、当業者は、適切な温度を容易に同定し得る。例えば、Ｖｅｒｏ細胞株、Ｐｅｒ．Ｃ６細胞株およびＭＤＣＫ細胞株のような哺乳動物細胞株は、通常、３６℃〜３８℃の間の温度、もしくは約３７℃で増殖させられる。この温度はまた、たとえいくつかのウイルス（インフルエンザのような）が、約３３℃の温度でレスキューされ得るとしても、多くのウイルスのレスキューのために選択される。なぜなら、これは、得られるウイルスのよりよい抗原性を生じ得るからである［２０］。適切な温度はまた、上記トランスフェクション後のインキュベーション温度が変動することを除いて、同一条件下で並行していくつかのトランスフェクション実験を行うことによって同定され得る。最大数のＰＦＵを生じる温度は、トランスフェクション後に使用され得る。ＰＦＵについてアッセイするために適した方法は、トランスフェクションの間に使用され得る温度を同定するためのアッセイに関して既に上記に記載されている。

（ウイルス調製）
さらなる局面において、本発明は、ワクチン製造のためにウイルスを調製する方法を提供し、上記方法は、（ｉ）宿主細胞の培養物を、ウイルスＲＮＡ分子をコードする少なくとも１個の発現構築物でトランスフェクトする工程；（ｉｉ）上記（ｉ）のトランスフェクトされた宿主細胞に細胞を添加して、細胞の混合物を提供する工程；（ｉｉｉ）ウイルスを生成するために、上記細胞の混合物を培養する工程；および（ｉｖ）上記工程（ｉｉｉ）で得られたウイルスを精製する工程、ならびに必要に応じて、（ｖ）上記ウイルスをワクチンへと処方する工程を包含する。

細胞が、本発明のこの局面において培養宿主として使用される場合、細胞培養条件（例えば、温度、細胞密度、ｐＨ値など）が、使用される上記細胞株および上記ウイルスを仮定した広い範囲にわたって変動性であり、本願の要件に適合され得ることは公知である。従って、以下の情報は、ガイドラインを表すに過ぎない。

上記のように、細胞は、好ましくは、無血清培地もしくは無タンパク質培地中で培養される。

上記細胞の増殖は、当業者に公知の方法に従って行われ得る。例えば、上記細胞は、遠心分離もしくは濾過のような通常の補助的方法を使用する灌流システムにおいて培養され得る。さらに、上記細胞は、感染前に、流加システム（ｆｅｄ−ｂａｔｃｈ ｓｙｓｔｅｍ）で、本発明に従って増殖させられ得る。本発明の状況において、培養システムは、上記細胞が最初にバッチシステムで培養され、培地中の栄養分（もしくは栄養分の一部）の枯渇が、濃縮された栄養分の制御された供給によって補償される流加システムに関して言及される。感染前の細胞の増殖の間に上記培地のｐＨ値を、ｐＨ６．６〜ｐＨ７．８の値に、および特に、ｐＨ７．２〜ｐＨ７．３の間の値に調節することは、有利であり得る。細胞の培養は、好ましくは、３０℃〜４０℃の間の温度で行われる。工程（ｉｉｉ）において、上記細胞は、好ましくは、３０℃〜３６℃の間の温度もしくは３２℃〜３４℃の間の温度、または約３３℃で培養される。これは、本発明の方法がインフルエンザウイルスを生成するために使用される場合に特に好ましい。なぜなら、この温度範囲での感染細胞のインキュベーションが、ワクチンへと処方される場合に改善された効率を生じるウイルスの生成を生じることが示されたからである［２０］。

酸素分圧は、感染前の培養の間に、好ましくは、２５％〜９５％の間の値において、および特には、３５％〜６０％の間の値において調節され得る。本発明の状況において示される酸素分圧の値は、空気の飽和に基づく。細胞の感染は、バッチシステムにおいては、好ましくは、約８〜２５×１０^５細胞／ｍＬの細胞密度で、もしくは灌流システムにおいては、好ましくは、約５〜２０×１０^６細胞／ｍＬの細胞密度で行われる。上記細胞は、１０^−８〜１０の間、好ましくは、０．０００１〜０．５の間のウイルス用量（ＭＯＩ値（「感染多重度」；感染時の細胞あたりのウイルス単位の数に対応する）で感染させられ得る。

ウイルスは、接着培養もしくは懸濁物中で、細胞において増殖させられ得る。マイクロキャリア培養が使用され得る。マイクロキャリア培養は、接着培養とみなされる。上記細胞はまた、懸濁物中での増殖に適合され得る。

本発明に従う方法はまた、ウイルスの採取および単離、またはウイルスによって生成されるタンパク質の採取および単離を含む。ウイルスもしくはタンパク質の単離の間に、上記細胞は、分離、濾過もしくは限外濾過のような標準的な方法によって培養培地から分離される。次いで、上記ウイルスもしくは上記タンパク質は、勾配遠心分離、濾過、沈殿、クロマトグラフィーなどの当業者に十分公知の方法に従って濃縮され、次いで、精製される。また、上記ウイルスが精製の間もしくは精製後に不活性化されることは、本発明によれば好ましい。ウイルス不活性化は、上記精製プロセス内のいずれかの時点で、例えば、β−プロピオラクトンもしくはホルムアルデヒドによって行われ得る。

本発明に従って単離される上記ウイルスはまた、工程（ｉｉｉ）において卵において増殖させられ得る。ワクチンのためのインフルエンザウイルス増殖の現在標準的な方法は、胚含有ＳＰＦ鶏卵を使用し、ウイルスは、卵内容物（尿膜腔液）から精製される。卵を介してウイルスを継代し、その後、細胞培養においてウイルスを増殖させることもまた、可能である。

（ウイルス）
本発明の方法は、細胞において逆遺伝学によって発現され得る任意のウイルスで実施され得る。このようなウイルスは、セグメント化ウイルスもしくは非セグメント化ウイルスであり得る。さらに、上記ウイルスは、プラス鎖ＲＮＡウイルスもしくはマイナス鎖ＲＮＡウイルスであり得る。上記ウイルスはまた、二本鎖ＲＮＡウイルスであり得る。

上記ウイルスがマイナス鎖ＲＮＡウイルスである場合、上記ウイルスは、パラミクソウイルス科、ニューモウイルス亜科（Ｐｎｅｕｍｏｖｉｒｉｎａｅ）、ラブドウイルス科、フィロウイルス科、ボルナウイルス科（Ｂｏｒｎａｖｉｒｉｄａｅ）、オルソミクソウイルス科、ブンヤウイルス科、もしくはアレナウイルス科からなる群より選択される科に由来し得る。さらに、上記ウイルスは、パラミクソウイルス、オルソミクソウイルス、レスピロウイルス、モルビリウイルス、ルブラウイルス、ヘニパウイルス、アブラウイルス、ニューモウイルス、メタニューモウイルス、ベシクロウイルス、リッサウイルス、エフェメロウイルス、サイトラブドウイルス、ヌクレオラブドウイルス、ノビラブドウイルス、マールブルグウイルス、エボラウイルス、ボルナウイルス、インフルエンザウイルスＡ、インフルエンザウイルスＢ、インフルエンザウイルスＣ、トゴトウイルス、イサウイルス、オルソブンヤウイルス、ハンタウイルス、ナイロウイルス、フレボウイルス、トスポウイルス、アレナウイルス、オフィオウイルス、テヌイウイルス、もしくはデルタウイルスからなる群より選択される属に由来するウイルスであり得る。具体的実施形態において、上記マイナス鎖ＲＮＡウイルスは、センダイウイルス、麻疹ウイルス、ムンプスウイルス、ヘンドラウイルス、ニューキャッスル病ウイルス、ヒトＲＳウイルス、トリニューモウイルス、水疱性口内炎インディアナウイルス（Ｖｅｓｉｃｕｌａｒ ｓｔｏｍａｔｉｔｉｓ Ｉｎｄｉａｎａ ｖｉｒｕｓ）、狂犬病ウイルス、ウシ流行熱ウイルス、レタス壊死性黄変病ウイルス（Ｌｅｔｔｕｃｅ ｎｅｃｒｏｔｉｃ ｙｅｌｌｏｗｓ ｖｉｒｕｓ）、ジャガイモ黄萎病ウイルス（Ｐｏｔａｔｏ ｙｅｌｌｏｗ ｄｗａｒｆ ｖｉｒｕｓ）、伝染性造血器壊死症ウイルス（Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ ｎｅｃｒｏｓｉｓ ｖｉｒｕｓ）、ビクトリア湖マールブルグウイルス、ザイールエボラウイルス、ボルナ病ウイルス、インフルエンザウイルス、トゴトウイルス、伝染性サケ貧血ウイルス（Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ ｓａｌｍｏｎ ａｎｅｍｉａ ｖｉｒｕｓ）、ブニヤムウェラーウイルス（Ｂｕｎｙａｍｗｅｒａ ｖｉｒｕｓ）、ハンタンウイルス、ジュグベウイルス（Ｄｕｇｂｅ ｖｉｒｕｓ）、リフトバレー熱ウイルス、トマト黄化え疽ウイルス（Ｔｏｍａｔｏ ｓｐｏｔｔｅｄ ｗｉｌｔ ｖｉｒｕｓ）、リンパ球性脈絡髄膜炎ウイルス（Ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｉｃ ｃｈｏｒｉｏｍｅｎｉｎｇｉｔｉｓ ｖｉｒｕｓ）、カンキツソローシスウイルス（Ｃｉｔｒｕｓ ｐｓｏｒｏｓｉｓ ｖｉｒｕｓ）、イネ縞葉枯ウイルス（Ｒｉｃｅ ｓｔｒｉｐｅ ｖｉｒｕｓ）、およびデルタ型肝炎ウイルスからなる群より選択される。好ましい実施形態において、上記ウイルスは、インフルエンザウイルスである（以下を参照のこと）。

上記ウイルスがプラス鎖ＲＮＡウイルスである場合、上記ウイルスは、アルテリウイルス科、コロナウイルス科、ピコルナウイルス科およびロニウイルス科からなる群より選択される科に由来し得る。さらに、上記ウイルスは、アルテリウイルス、コロナウイルス、エンテロウイルス、トロウイルス、オカウイルス（Ｏｋａｖｉｒｕｓ）、ライノウイルス、ヘパトウイルス、カルジオウイルス、アフトウイルス、パレコウイルス、エルボウイルス、コブウイルスおよびテッショウウイルスからなる群より選択される属に由来するウイルスであり得る。具体的実施形態において、上記ウイルスは、重症急性呼吸器症候群（ＳＡＲＳ）ウイルス、ポリオウイルス、ヒトエンテロウイルスＡ（ＨＥＶ−Ａ）、ヒトエンテロウイルスＢ（ＨＥＶ−Ｂ）、ヒトエンテロウイルスＣ、ヒトエンテロウイルスＤ、Ａ型肝炎ウイルス、ならびにヒトライノウイルスＡおよびＢからなる群より選択される。

上記ウイルスが二本鎖ＲＮＡウイルスである場合、上記ウイルスは、ビルナウイルス科、シストウイルス科、ハイポウイルス科、パルティティウイルス科、レオウイルス科およびトティウイルス科からなる群より選択される科に由来し得る。さらに、上記ウイルスは、アクアビルナウイルス、トリビルナウイルス、エントモビルナウイルス、シストウイルス、パルティティウイルス、アルファクリプトウイルス、ベータクリプトウイルス、アクアレオウイルス、コルティウイルス、サポウイルス、フィジウイルス、イドノレオウイルス（Ｉｄｎｏｒｅｏｖｉｒｕｓ）、マイコレオウイルス、オルビウイルス、オルトレオウイルス、オリザウイルス、フィトレオウイルス、ロタウイルスおよびセドルナウイルス（Ｓｅａｄｏｒｎａｖｉｒｕｓ）からなる群より選択される属に由来するウイルスであり得る。

本発明とともに使用するのに好ましいウイルスは、ロタウイルスである。これらウイルスでの逆遺伝学は、上記ウイルスレスキューの不十分な効率に起因して現在は困難であり、従って、本発明の方法は、このウイルスのレスキューを容易にし得る。

本発明はまた、迅速な変異を受け、組換えアプローチがウイルスのより迅速な単離を可能にし、次いで、適切なワクチンを得るためにさらに増殖させられ得るウイルスに特に適している。従って、別の好ましい実施形態において、上記ウイルスはインフルエンザである。

（インフルエンザウイルス）
インフルエンザウイルスは、本発明の方法における使用に特に適している（特に、インフルエンザＡウイルスおよびインフルエンザＢウイルス）。なぜなら、このウイルスについての逆遺伝学は、既に十分に特徴付けられているからである。インフルエンザウイルスは、セグメント化されたマイナス鎖ＲＮＡウイルスである。インフルエンザＡウイルスおよびインフルエンザＢウイルスは、８個のセグメントを有するのに対して、インフルエンザＣウイルスは、７個のセグメントを有する。上記ウイルスは、複製および転写を開始するために、少なくとも４個のウイルスタンパク質（ＰＢ１、ＰＢ２、ＰＡおよびヌクレオプロテイン）を必要とする。

インフルエンザＡウイルスおよびインフルエンザＢウイルスについての逆遺伝学は、上記４個の必要とされるタンパク質および８個すべてのゲノムセグメントを発現するために、１２個のプラスミドで実施され得る。しかし、構築物の数を減らすために、複数のＲＮＡポリメラーゼＩ転写カセット（ウイルスＲＮＡ合成のため）が、単一のプラスミドに含まれ得（例えば、１個、２個、３個、４個、５個、６個、７個もしくは全８個のインフルエンザｖＲＮＡセグメントをコードする配列）、ＲＮＡポリメラーゼＩＩプロモーターを有する複数のタンパク質コード領域（例えば、１個、２個、３個、４個、５個、６個、７個もしくは８個のインフルエンザｍＲＮＡ転写物をコードする配列）が別のプラスミドに含まれ得る［２１］。１個以上のインフルエンザｖＲＮＡセグメントをｐｏｌ Ｉプロモーターの制御下で、および同じプラスミド上に１個以上のインフルエンザタンパク質コード領域を別のプロモーター（特に、ｐｏｌ ＩＩプロモーター）の制御下で含むこともまた、可能である。上記のように、これは、好ましくは、二方向性プラスミドを使用して行われる。参考文献２１の方法の好ましい局面は、（ａ）単一のプラスミド上のＰＢ１、ＰＢ２およびＰＡのｍＲＮＡコード領域；および（ｂ）単一のプラスミド上の全８個のｖＲＮＡコードセグメントを含む。一方のプラスミド上にノイラミニダーゼ（ＮＡ）およびヘマグルチニン（ＨＡ）のセグメント、およびもう一方のプラスミド上に６個のほかのセグメントを含むことは、特に好ましい。なぜなら、新たに出現するインフルエンザウイルス株は、通常、上記ＮＡセグメントおよび／もしくはＨＡセグメントに変異を有するからである。従って、この実施形態において、上記ＨＡ配列およびＮＡ配列を含むベクターのみが、置換される必要がある。

インフルエンザＡウイルスの好ましい発現系は、複数の異なる野生型株に由来するゲノムセグメントをコードする。上記系は、ＰＲ／８／３４株（Ａ／Ｐｕｅｒｔｏ Ｒｉｃｏ／８／３４）に由来する１個以上の（例えば、１個、２個、３個、４個、５個もしくは６個の）ゲノムセグメントをコードし得るが、通常、これ／これらは、上記ＰＲ／８／３４ ＨＡセグメントを含まず、通常、上記ＰＲ／８／３４ ＮＡセグメントを含まない。よって、上記系は、ＰＲ／８／３４に由来するセグメントＮＰ、Ｍ、ＮＳ、ＰＡ、ＰＢ１および／もしくはＰＢ２（おそらく６個すべて）のうちの少なくとも１個をコードし得る。

インフルエンザＡウイルスの他の有用な発現系は、ＡＡ／６／６０ インフルエンザウイルス（Ａ／Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ／６／６０）に由来する１個以上の（例えば、１個、２個、３個、４個、５個もしくは６個の）ゲノムセグメントをコードし得るが、通常は、これ／これらは、上記ＡＡ／６／６０ ＨＡセグメントを含まず、通常、上記ＡＡ／６／６０ ＮＡセグメントを含まない。よって上記系は、ＡＡ／６／６０に由来するセグメントＮＰ、Ｍ、ＮＳ、ＰＡ、ＰＢ１および／もしくはＰＢ２（おそらく６個すべて）のうちの少なくとも１個をコードし得る。

上記系は、Ａ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／４／０９株に由来する１個以上のゲノムセグメント（例えば、上記ＨＡセグメントおよび／もしくは上記ＮＡセグメント）をコードし得る。従って、例えば、上記ＨＡ遺伝子セグメントは、配列番号２より配列番号１に密接に関連する（すなわち、同じアルゴリズムおよびパラメーターを使用して、配列番号１と比較した場合、配列番号２より高い程度の配列同一性を有する）Ｈ１ヘマグルチニンをコードし得る。配列番号１および配列番号２は、８０％同一である。同様に、上記ＮＡ遺伝子は、配列番号４より配列番号３に密接に関連しているＮ１ノイラミニダーゼをコードし得る。配列番号３および４は、８２％同一である。

インフルエンザＢウイルスの発現系は、複数の異なる野生型株に由来するゲノムセグメントをコードし得る。上記系は、ＡＡ／１／６６ インフルエンザウイルス（Ｂ／Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ／１／６６）に由来する１個以上の（例えば、１個、２個、３個、４個、５個もしくは６個の）ゲノムセグメントをコードし得るが、通常は、これ／これらは、上記ＡＡ／１／６６ ＨＡセグメントを含まず、通常は、上記ＡＡ／１／６６ ＮＡセグメントを含まない。従って、上記系は、ＡＡ／１／６６に由来するセグメントＮＰ、Ｍ、ＮＳ、ＰＡ、ＰＢ１および／もしくはＰＢ２のうちの少なくとも１個をコードし得る。

Ａ／ＰＲ／８／３４株、ＡＡ／６／６０株、ＡＡ／１／６６株、Ａ／Ｃｈｉｌｅ／１／８３株およびＡ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／０４／０９株に由来するウイルスセグメントおよび配列は、広く利用可能である。それらの配列は、公のデータベースで利用可能である（例えば、ＧＩ：８９７７９３３７、ＧＩ：８９７７９３３４、ＧＩ：８９７７９３３２、ＧＩ：８９７７９３２０， ＧＩ：８９７７９３２７、ＧＩ：８９７７９３２５、ＧＩ：８９７７９３２２、ＧＩ：８９７７９３２９）。

インフルエンザウイルスの逆遺伝学システムは、上記宿主細胞においてアクセサリタンパク質の発現をもたらす発現構築物を含み得る。例えば、非ウイルス性セリンプロテアーゼ（例えば、トリプシン）を発現することは有利であり得る。

（ワクチン）
一局面において、本発明は、本発明の方法に従って生成されるウイルスを利用して、ワクチンを生成する。

ワクチン（特に、インフルエンザウイルスのための）は、一般に、生のウイルスもしくは不活性化ウイルスのいずれかに基づく。不活性化ワクチンは、完全ビリオン、「スプリット」ビリオン、もしくは精製表面抗原に基づき得る。抗原はまた、ビロソームの形態で提示され得る。本発明は、これらタイプのワクチンのうちのいずれかを製造するために使用され得る。

不活性化ウイルスが使用される場合、上記ワクチンは、完全ビリオン、スプリットビリオン、もしくは精製表面抗原（インフルエンザについては、ヘマグルチニンを含み、通常はまた、ノイラミニダーゼを含む）を含み得る。ウイルスを不活性化するための化学的手段としては、以下の薬剤のうちの１つ以上の有効量での処置が挙げられる：洗剤、ホルムアルデヒド、β−プロピオラクトン、メチレンブルー、ソラレン、カルボキシフラーレン（Ｃ６０）、バイナリーエチルアミン、アセチルエチレンイミン、もしくはこれらの組み合わせ。ウイルス不活性化の非化学的方法は、当該分野で公知である（例えば、ＵＶ光もしくはγ線照射）。

ビリオンは、ウイルス含有流体（例えば、尿膜腔液もしくは細胞培養上清）から、種々の方法によって採取され得る。例えば、精製プロセスは、上記ビリオンを破壊するために洗剤を含む線形スクロース勾配溶液を使用するゾーン遠心分離を含み得る。次いで、抗原は、ダイアフィルトレーションによって、必要に応じた希釈の後に精製され得る。

スプリットビリオンは、精製されたビリオンを洗剤（例えば、エチルエーテル、ポリソルベート ８０、デオキシコレート、トリ−Ｎ−ブチルホスフェート、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、Ｔｒｉｔｏｎ Ｎ１０１、セチルトリメチルアンモニウムブロミド、Ｔｅｒｇｉｔｏｌ ＮＰ９など）で処理して、サブビリオン調製物を生成する（「Ｔｗｅｅｎ−エーテル」スプリットプロセスを含む）ことによって得られる。インフルエンザウイルスをスプリットするための方法は、例えば、当該分野で周知である（例えば、参考文献２２〜２７などを参照のこと）。上記ウイルスのスプリットは、代表的には、感染性であろうと非感染性であろうと、破壊濃度のスプリット薬剤で完全ウイルスを破壊するかもしくはフラグメント化することによって行われる。上記破壊は、上記ウイルスタンパク質の完全なもしくは部分的な可溶化を生じ、上記ウイルスの完全性を変化させる。好ましいスプリット薬剤は、非イオン性界面活性剤およびイオン性（例えば、カチオン性）界面活性剤（例えば、アルキルグリコシド、アルキルチオグリコシド、アシル糖、スルホベタイン、ベタイン、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、Ｎ，Ｎ−ジアルキル−グルカミド、Ｈｅｃａｍｅｇ、アルキルフェノキシ−ポリエトキシエタノール、ＮＰ９、４級アンモニウム化合物、サルコシル、ＣＴＡＢ（セチルトリメチルアンモニウムブロミド）、トリ−Ｎ−ブチルホスフェート、Ｃｅｔａｖｌｏｎ、ミリスチルトリメチルアンモニウム塩、リポフェクチン、リポフェクタミン、およびＤＯＴ−ＭＡ）、オクチル−もしくはノニルフェノキシポリオキシエタノール（例えば、Ｔｒｉｔｏｎ界面活性剤（例えば、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００もしくはＴｒｉｔｏｎ Ｎ１０１））、ポリオキシエチレンソルビタンエステル（Ｔｗｅｅｎ界面活性剤）、ポリオキシエチレンエーテル、ポリオキシエチレンエステル（ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｌｅｎｅ ｅｓｔｅｒ）などである。１つの有用なスプリット手順は、デオキシコール酸ナトリウムおよびホルムアルデヒドの連続的効果を使用し、スプリットは、最初のビリオン精製の間に起こり得る（例えば、スクロース密度勾配溶液において）。よって、スプリットプロセスは、上記ビリオン含有材料の清澄化（非ビリオン材料を除去するために）、上記採取したビリオンの濃縮（例えば、吸着法（例えば、ＣａＨＰＯ_４吸着）を使用して）、非ビリオン材料からの完全ビリオンの分離、密度勾配遠心分離工程においてスプリット薬剤を使用する（例えば、デオキシコール酸ナトリウムのようなスプリット薬剤を含むスクロース勾配を使用する）ビリオンのスプリット、次いで、望ましくない物質を除去するための濾過（例えば、限外濾過）を含み得る。スプリットビリオンは、有用には、リン酸ナトリウム緩衝化等張性塩化ナトリウム溶液中で再懸濁され得る。スプリットインフルエンザワクチンの例は、ＢＥＧＲＩＶＡＣ^ＴＭ、ＦＬＵＡＲＩＸ^ＴＭ、ＦＬＵＺＯＮＥ^ＴＭおよびＦＬＵＳＨＩＥＬＤ^ＴＭ製品である。

本発明の方法はまた、生ワクチンを生成するために使用され得る。このようなワクチンは、通常は、ビリオン含有流体からビリオンを精製することによって調製される。例えば、上記流体は、遠心分離によって清澄にされ得、緩衝液（例えば、スクロース、リン酸カリウム、およびグルタミン酸一ナトリウムを含む）で安定化され得る。インフルエンザウイルスワクチンの種々の形態が、現在利用可能である（例えば、参考文献２８の第１７章および第１８章を参照のこと）。生のウイルスは、ＭｅｄＩｍｍｕｎｅのＦＬＵＭＩＳＴ^ＴＭ製品（三価の生のウイルス）を含む。

精製されたインフルエンザウイルス表面抗原ワクチンは、表面抗原であるヘマグルチニン、および代表的には、同様にノイラミニダーゼを含む。精製形態でこれらタンパク質を調製するためのプロセスは、当該分野で周知である。上記ＦＬＵＶＩＲＩＮ^ＴＭ、ＡＧＲＩＰＰＡＬ^ＴＭおよびＩＮＦＬＵＶＡＣ^ＴＭ製品は、インフルエンザサブユニットワクチンである。

別の形態の不活性化抗原は、ビロソーム［２９］（核酸を含まないウイルス様リポソーム粒子）である。ビロソームは、洗剤でのウイルスの可溶化、続いて、ヌクレオキャプシドの除去およびウイルス糖タンパク質を含む膜の再構成によって、調製され得る。ビロソームを調製するための代替法は、ウイルス膜糖タンパク質を過剰量のリン脂質に添加して、それらの膜中においてリポソームにウイルスタンパク質を与えることを含む。

上記ウイルスは、弱毒化され得る。上記ウイルスは、温度感受性であり得る。上記ウイルスは、低温適合（ｃｏｌｄ−ａｄａｐｔｅｄ）され得る。これら３つの特徴は、生のウイルスを抗原として使用する場合に特に有用である。

ＨＡは、現在の不活性化インフルエンザワクチンにおける主要な免疫原であり、ワクチン用量は、ＨＡレベルを参照することによって標準化されている（代表的には、ＳＲＩＤによって測定される）。既存のワクチンは、代表的には、１株あたり約１５μｇのＨＡを含むが、より低用量が、使用され得る（例えば、小児に関して、もしくは汎流行的状況において、またはアジュバントを使用する場合）。分割用量（例えば、１／２（すなわち、７．５μｇ ＨＡ／株）、１／４および１／８）が使用されてきたことと同様に、より高い用量も使用されてきた（例えば、３×もしくは９×用量［３０、３１］）。従って、ワクチンは、０．１〜１５０μｇの間のＨＡ／インフルエンザ株、好ましくは、０．１〜５０μｇの間（例えば、０．１〜２０μｇ、０．１〜１５μｇ、０．１〜１０μｇ、０．１〜７．５μｇ、０．５〜５μｇなど）を含み得る。特定の用量としては、１株あたり、例えば、約４５、約３０、約１５、約１０、約７．５、約５、約３．８、約３．７５、約１．９、約１．５などが挙げられる。

生ワクチンに関して、投与は、ＨＡ含有量よりむしろ、５０％組織培養感染量（ｍｅｄｉａｎ ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ ｄｏｓｅ）（ＴＣＩＤ_５０）によって測定され、１株あたり１０^６〜１０^８の間の（好ましくは、１０^６．５〜１０^７．５の間の）ＴＣＩＤ_５０が、代表的である。

本発明とともに使用されるインフルエンザ株は、野生型ウイルスにおいて見いだされるような天然のＨＡ、もしくは改変されたＨＡを有し得る。例えば、ＨＡを改変して、トリ種においてウイルスの病原性を高くする決定因子（例えば、上記ＨＡ１／ＨＡ２切断部位の周りの超塩基性領域）を除去することは、公知である。逆遺伝学の使用は、このような改変を促進する。

ワクチンにおける使用のためのインフルエンザウイルス株は、流行期ごとに変化する。汎流行期間の間には、ワクチンは、代表的には、２つのインフルエンザＡ株（Ｈ１Ｎ１およびＨ３Ｎ２）および１つのインフルエンザＢ株を含み、三価ワクチンが代表的である。本発明はまた、汎流行性ウイルス株（すなわち、上記ワクチンレシピエントおよび一般的なヒト集団が免疫学的に経験したことがない株（特にインフルエンザＡウイルスの）（例えば、Ｈ２、Ｈ５、Ｈ７もしくはＨ９サブタイプ株））を使用し得、汎流行性株のインフルエンザワクチンは、１価であってもよいし、汎流行性株が補充された通常の三価ワクチンに基づいていてもよい。しかし、流行期および上記ワクチン中に含まれる抗原の性質に依存して、本発明は、ＨＡサブタイプであるＨ１、Ｈ２、Ｈ３、Ｈ４、Ｈ５、Ｈ６、Ｈ７、Ｈ８、Ｈ９、Ｈ１０、Ｈ１１、Ｈ１２、Ｈ１３、Ｈ１４、Ｈ１５もしくはＨ１６のうちの１つ以上に対して防御し得る。本発明は、インフルエンザＡウイルス ＮＡサブタイプＮ１、Ｎ２、Ｎ３、Ｎ４、Ｎ５、Ｎ６、Ｎ７、Ｎ８もしくはＮ９のうちの１つ以上に対して防御し得る。

汎流行期間の株に対して免疫化するために適しているのに加えて、本発明の組成物は、汎流行性もしくは潜在的に汎流行性の株に対して免疫化するために特に有用である。汎流行のアウトブレイクを引き起こす可能性を与えるインフルエンザ株の特徴は、以下である：（ａ）現在広まっているヒト株のヘマグルチニンと比較して、新たなヘマグルチニンを含む（すなわち、１０年間を超えてヒト集団において顕性でなかったもの（例えば、Ｈ２）、または上記ヒト集団において以前に全く認められなかったもの（例えば、一般に、トリ集団においてのみ見いだされてきたＨ５、Ｈ６もしくはＨ９）。その結果、上記ヒト集団は、上記株のヘマグルチニンに対して免疫学的に経験したことがない；（ｂ）上記ヒト集団において水平伝播し得る；および（ｃ）ヒトに対して病原性である。Ｈ５ヘマグルチニンタイプを有するウイルスは、汎流行性インフルエンザ（例えば、Ｈ５Ｎ１株）に対して免疫化するのに好ましい。他の考えられる株としては、Ｈ５Ｎ３、Ｈ９Ｎ２、Ｈ２Ｎ２、Ｈ７Ｎ１およびＨ７Ｎ７、ならびに任意の他の潜在的に出現する汎流行性株が挙げられる。本発明は、非ヒト動物集団からヒトへと拡がり得るかもしくは拡がってしまった潜在的汎流行性株（例えば、ブタ起源のＨ１Ｎ１インフルエンザ株）に対して防御するのに特に適している。次いで、本発明は、ヒトおよび非ヒト動物にワクチン接種するのに適している。

抗原が上記組成物中に有用に含まれ得る他の株は、抗ウイルス治療に抵抗性である（例えば、オセルタミビル［３２］および／もしくはザナミビルに抵抗性である）株である（耐性汎流行性株を含む［３３］）。

本発明の組成物は、１つ以上の（例えば、１つ、２つ、３つ、４つもしくはこれ以上の）インフルエンザウイルス株（インフルエンザＡウイルスおよび／もしくはインフルエンザＢウイルスを含む）に由来する抗原を含み得る。ワクチンが１より多くのインフルエンザ株を含む場合、異なる株は、代表的には、別個に増殖させられ、上記ウイルスが採取された後に混合され、抗原が調製されてきた。従って、本発明のプロセスは、１より多くのインフルエンザ株に由来する抗原を混合する工程を包含し得る。三価ワクチンは、代表的である（２つのインフルエンザＡウイルス株および１つのインフルエンザＢウイルス株に由来する抗原を含む）。四価ワクチンもまた有用である［３４］（２つのインフルエンザＡウイルス株および２つのインフルエンザＢウイルス株に由来する抗原を含むか、または３つのインフルエンザＡウイルス株および１つのインフルエンザＢウイルス株に由来する抗原を含む）。

（薬学的組成物）
本発明に従って製造されるワクチン組成物は、薬学的に受容可能である。それらは、通常、上記抗原に加えて、成分を含む。例えば、それらは、代表的には、１種以上の薬学的キャリアおよび／もしくは賦形剤を含む。以下に記載されるように、アジュバントもまた含まれ得る。このような成分の詳細な議論は、参考文献３５で入手される。

ワクチン組成物は、一般に、水性形態にある。しかし、いくつかのワクチンは、乾燥形態、例えば、注射可能な固体、またはパッチ上の、乾燥したかもしくは重合した調製物の形態にあり得る。

ワクチン組成物は、チオメルサールもしくは２−フェノキシエタノールのような保存剤を含み得る。しかし、上記ワクチンは、実質的に水銀物質を実質的に含まないべきである（すなわち、５μｇ／ｍｌ未満）ことが好ましい（例えば、チオメルサールを含まない［２６、３６］）。水銀を含まないワクチンは、より好ましい。α−トコフェロールスクシネートは、水銀化合物の代替として含まれ得る［２６］。保存剤非含有ワクチンは、特に好ましい。

張度を制御するために、組成物は、生理学的塩（例えば、ナトリウム塩）を含み得ることは好ましい。塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）が好ましく、塩化ナトリウムは、１〜２０ｍｇ／ｍｌの間で存在し得る。存在し得る他の塩としては、塩化カリウム、リン酸二水素カリウム、無水リン酸二ナトリウム（ｄｉｓｏｄｉｕｍ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｄｅｈｙｄｒａｔｅ）、塩化マグネシウム、塩化カルシウムなどが挙げられる。

ワクチン組成物は、一般に、２００ｍＯｓｍ／ｋｇ〜４００ｍＯｓｍ／ｋｇの間（好ましくは、２４０〜３６０ｍＯｓｍ／ｋｇの間）の重量オスモル濃度を有し、より好ましくは、２９０〜３１０ｍＯｓｍ／ｋｇの範囲内に入る。ワクチン接種によって引き起こされる疼痛に対して影響を有さない重量オスモル濃度が以前に報告されている［３７］が、この範囲において重量オスモル濃度を維持することは好ましい。

ワクチン組成物は、１種以上の緩衝剤を含み得る。代表的な緩衝剤としては、以下が挙げられる：リン酸塩緩衝剤；Ｔｒｉｓ緩衝剤；ホウ酸塩緩衝剤；コハク酸塩緩衝剤；ヒスチジン緩衝剤（特に、水酸化アルミニウムアジュバントで）；またはクエン酸塩緩衝剤。緩衝剤は、代表的には、５〜２０ｍＭ範囲で含まれる。

ワクチン組成物のｐＨは、一般に、一般に、５．０〜８．１の間、より代表的には、６．０〜８．０の間（例えば、６．５〜７．５の間、または７．０〜７．８の間）である。本発明のプロセスは、従って、バルクワクチンのｐＨを、パッケージ前に調節する工程を包含し得る。

上記ワクチン組成物は、好ましくは、無菌である。上記ワクチン組成物は、好ましくは、非発熱性である（例えば、１用量あたり＜１ ＥＵ（エンドトキシン単位、標準尺度）、好ましくは、＜０．１ ＥＵ／用量を含む）。上記ワクチン組成物は、好ましくは、グルテン非含有である。

本発明のワクチン組成物は、洗剤（例えば、ポリオキシエチレンソルビタンエステル界面活性剤（「Ｔｗｅｅｎｓ」として公知）、オクトキシノール（例えば、オクトキシノール−９（Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００）もしくはｔ−オクチルフェノキシポリエトキシエタノール）、セチルトリメチルアンモニウムブロミド（「ＣＴＡＢ」）、またはデオキシコール酸ナトリウム（特に、スプリットワクチンもしくは表面抗原ワクチンのために））を含み得る。上記洗剤は、微量においてのみ存在し得る。従って、上記ワクチンは、オクトキシノール−１０およびポリソルベート８０の各々について１ｍｇ／ｍｌ未満で含み得る。他の残りの微量の成分は、抗生物質（例えば、ネオマイシン、カナマイシン、ポリミキシンＢ）であり得る。

ワクチン組成物は、１回の免疫化のための物質を含んでいてもよいし、複数回の免疫化のための物質を含んでいてもよい（すなわち、「複数用量」キット）。保存剤を含めることは、複数用量の準備において好ましい。複数用量組成物中に保存剤を含める代替として（もしくはそれに加えて）、上記組成物は、物質の取り出しのための無菌アダプタを有する容器中に含まれ得る。

インフルエンザワクチンは、代表的には、約０．５ｍｌの投与体積で投与されるが、半用量（すなわち、約０．２５ｍｌ）が、小児に投与され得る。

組成物およびキットは、好ましくは、２℃〜８℃の間で貯蔵される。それらは、凍結されるべきではない。それらは、理想的には、遮光して保持されるべきである。

（宿主細胞ＤＮＡ）
ウイルスが単離され、そして／または細胞株上で増殖させられた場合、最終ワクチン中に残っている細胞株ＤＮＡのいかなる腫瘍形成活性をも最小限にするために、上記ＤＮＡの量を最小限にすることは、標準的な実務である。

従って、本発明に従って調製されるワクチン組成物は、好ましくは、１用量あたり１０ｎｇ（好ましくは、１ｎｇ未満、より好ましくは、１００ｐｇ未満）の残留宿主細胞ＤＮＡを含むが、微量の宿主細胞ＤＮＡが存在し得る。

任意の残留宿主細胞ＤＮＡの平均長が５００ｂｐ未満（例えば、４００ｂｐ未満、３００ｂｐ未満、２００ｂｐ未満、１００ｂｐ未満など）であることは、好ましい。

夾雑するＤＮＡは、標準的精製手順（例えば、クロマトグラフィーなど）を使用するワクチン調製の間に除去され得る。残留宿主細胞ＤＮＡの除去は、ヌクレアーゼ処理によって（例えば、ＤＮａｓｅを使用することによって）増強され得る。宿主細胞ＤＮＡ夾雑物を減らすための便利な方法は、２工程処理（第１は、ＤＮａｓｅ（例えば、Ｂｅｎｚｏｎａｓｅ）（これは、ウイルス増殖の間に使用され得る）を、次いで、カチオン性洗剤（例えば、ＣＴＡＢ）（これは、ビリオン破壊の間に使用され得る）使用する）を含む参考文献３８および３９において開示される。アルキル化剤（例えば、β−プロピオラクトン）での処理はまた、宿主細胞ＤＮＡを除去するために使用され得、有利なことには、ビリオンを不活性化するためにも使用され得る［４０］。

（アジュバント）
本発明の組成物は、有利には、アジュバントを含み得る。これは、上記組成物を受ける被験体において誘発される免疫応答（液性および／もしくは細胞性）を高めるように機能し得る。好ましいアジュバントは、水中油型エマルジョンを含む。種々のこのようなアジュバントは公知であり、それらは、代表的には、少なくとも１種の油および少なくとも１種の界面活性剤を含み、上記油および界面活性剤は、生体分解性（代謝可能）かつ生体適合性である。上記エマルジョン中の油滴は、一般に、直径５μｍ未満であり、理想的には、サブミクロンの直径を有し、これら小さなサイズは、マイクロフルイダイザー（ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｓｅｒ）で達成されて、安定なエマルジョンを提供する。２２０ｎｍ未満のサイズを有する液滴は、濾過滅菌に供され得るので、好ましい。

前記エマルジョンは、動物（例えば魚類）供給源または植物供給源からのものなどの油を含むことができる。植物油の供給源としては、堅果、種子および穀粒が挙げられる。ラッカセイ油、ダイズ油、ヤシ油およびオリーブ油が、最も一般的に利用できる堅果油の例である。例えばホホバ豆から得られる、ホホバ油を使用することができる。種子油としては、紅花油、綿実油、ヒマワリ種子油、ゴマ種子油およびこれらに類するものが挙げられる。穀粒の群の中で、トウモロコシ油が最も容易に入手できるが、他の穀物粒、例えばコムギ、オートムギ、ライムギ、イネ、テフ、ライコムギおよびこれらに類するものの油も使用することができる。グリセロールおよび１，２−プロパンジオールの６〜１０炭素脂肪酸エステルは、種子油中に天然に存在しないが、堅果油および種子油から出発して適切な材料の加水分解、分離およびエステル化によって調製することができる。哺乳動物の乳からの脂肪および油は代謝性であり、従って、本発明の実施の際に使用することができる。動物供給源から純粋な油を得るために必要な分離、精製、鹸化および他の手段についての手順は、当該技術分野において周知である。殆どの魚類は、容易に回収できる代謝性の油を含有する。例えば、タラ肝油、サメ肝油、および鯨油、例えば鯨ろうが、ここで使用することができる魚油のいくつかの例である。多数の分岐鎖油が５炭素イソプレン単位で生化学的に合成されており、一般にテルペノイドと呼ばれる。サメ肝油は、スクアレン、２，６，１０，１５，１９，２３−ヘキサメチル−２，６，１０，１４，１８，２２−テトラコサヘキサン、として公知の、分岐した不飽和テルペノイドを含有し、これは、ここで特に好ましい。スクワラン、スクアレンの飽和類似体、も好ましい油である。スクアレンおよびスクワランを含む、魚油は、商業的供給源から容易に入手することができ、または当該技術分野において公知の方法によって得ることができる。別の好ましい油は、α―トコフェロール（下記参照）である。油の混合物を使用することができる。

界面活性剤をそれらの「ＨＬＢ」（親水親油バランス）によって分類することができる。本発明の好ましい界面活性剤は、少なくとも１０、好ましくは少なくとも１５、およびさらに好ましくは少なくとも１６のＨＬＢを有する。本発明は、ポリオキシエチレンソルビタンエステル界面活性剤（一般にＴｗｅｅｎと呼ばれる）、特にポリソルベート２０およびポリソルベート８０；商品名ＤＯＷＦＡＸ^ＴＭで販売されている、エチレンオキシド（ＥＯ）、プロピレンオキシド（ＰＯ）および／またはブチレンオキシド（ＢＯ）のコポリマー、例えば、線状ＥＯ／ＰＯブロックコポリマー；反復エトキシ（オキシ−１，２−エタンジイル）基の数が様々であり得るオクトキシノール、オクトキシノール−９（Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、すなわちｔ−オクチルフェノキシポリエトキシエタノール）が特に興味深い；（オクチルフェノキシ）ポリエトキシエタノール（ＩＧＥＰＡＬ ＣＡ−６３０／ＮＰ−４０）；リン脂質、例えばホスファチジルコリン（レシチン）；ノニルフェノールエトキシレート、例えばＴｅｒｇｉｔｏｌ^ＴＭＮＰシリーズ；ラウリル、セチル、ステアリルおよびオレイルアルコールから誘導されたポリオキシエチレン脂肪エーテル（Ｂｒｉｊ界面活性剤として公知）、例えばトリエチレングリコールモノラウリルエーテル（Ｂｒｉｊ ３０）；ならびにソルビタンエステル（一般にＳＰＡＮとして公知）、例えばソルビタントリオレエート（Ｓｐａｎ ８５）およびソルビタンモノラウレートを含む（しかしこれらに限定されない）界面活性剤と共に用いることができる。非イオン性界面活性剤が好ましい。前記エマルジョンに含めるために好ましい界面活性剤は、Ｔｗｅｅｎ ８０（ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート）、Ｓｐａｎ ８５（ソルビタントリオレエート）、レシチンおよびＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００である。

界面活性剤の混合物、例えばＴｗｅｅｎ ８０／Ｓｐａｎ ８５混合物、を使用することができる。ポリオキシエチレンソルビタンエステル、例えばポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート（Ｔｗｅｅｎ ８０）、およびオクトキシノール、例えばｔ−オクチルフェノキシポリエトキシエタノール（Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００）、の組み合わせも適する。別の有用な組み合わせは、ラウレス９とポリオキシエチレンソルビタンエステルおよび／またはオクトキシノールを含む。

界面活性剤の好ましい量（重量％）は、ポリオキシエチレンソルビタンエステル（例えば、Ｔｗｅｅｎ ８０）０．０１％から１％、特に約０．１％；オクチル−またはノニルフェノキシポリオキシエタノール（例えば、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、またはＴｒｉｔｏｎシリーズの他の洗剤）０．００１％から０．１％、特に０．００５％から０．０２％；ポリオキシエチレンエーテル（例えば、ラウレス９）０．１％から２０％、好ましくは０．１％から１０％および特に０．１％から１％または約０．５％である。

上記ワクチンがスプリットウイルスを含む場合、上記ワクチンは、水相中に遊離界面活性剤を含むことが好ましい。これは、上記遊離界面活性剤が、上記抗原に対して「スプリット効果」を発揮し得、それによって、他の状態で存在し得る任意の非スプリットビリオンおよび／もしくはビリオン凝集物を破壊するので、有利である。これは、スプリットウイルスワクチンの安全性を改善し得る［４１］。

好ましいエマルジョンは、＜１μｍの平均液滴サイズ（例えば、≦７５０ｎｍ、≦５００ｎｍ、≦４００ｎｍ、≦３００ｎｍ、≦２５０ｎｍ、≦２２０ｎｍ、≦２００ｎｍ、もしくはこれより小さい）を有し得る。これら液滴サイズは、便利なことには、微小流動化（ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｓａｔｉｏｎ）のような技術によって達成され得る。

本発明で有用な特定の水中油型エマルジョンアジュバントとしては、以下が挙げられるが、これらに限定されない。

・スクアレン、Ｔｗｅｅｎ ８０、およびＳｐａｎ８５のサブミクロンエマルジョン。上記エマルジョンの容積での組成は、約５％ スクアレン、約０．５％ ポリソルベート８０および約０．５％ Ｓｐａｎ ８５であり得る。重量では、これらの比は、４．３％ スクアレン、０．５％ ポリソルベート８０および０．４８％ Ｓｐａｎ ８５になる。このアジュバントは、引用文献４５の第１０章および引用文献４６の第１２章により詳細に記載されるように、「ＭＦ５９」として公知である［４２〜４４］。上記ＭＦ５９エマルジョンは、有利なことには、クエン酸イオン（例えば、１０ｍＭ クエン酸ナトリウム緩衝液）を含む。

・スクアレン、ＤＬ−α−トコフェロール、およびポリソルベート８０（Ｔｗｅｅｎ ８０）のエマルジョン。このエマルジョンは、リン酸緩衝生理食塩水を含み得る。これはまた、Ｓｐａｎ８５（たとえば、１％）および／またはレシチンを含み得る。これらエマルジョンは、２〜１０％ スクアレン、２〜１０％ トコフェロールおよび０．３〜３％ Ｔｗｅｅｎ ８０を有し得、スクアレン：トコフェロールの重量比は、好ましくは、≦１である。なぜなら、これは、より安定なエマルジョンを提供するからである。スクアレンおよびＴｗｅｅｎ ８０は、約５：２の容積比もしくは約１１：５の重量比で存在し得る。１種のこのようなエマルジョンは、Ｔｗｅｅｎ ８０をＰＢＳ中に溶解して、２％溶液を与え、次いで、この溶液９０ｍｌと、（５ｇのＤＬ−α−トコフェロールおよび５ｍｌ スクアレン）の混合物とを混合し、次いで、上記混合物を微小流動化する（ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｓｅ）ことによって、作製され得る。得られたエマルジョンは、例えば、１００〜２５０ｎｍの間、好ましくは、約１８０ｎｍの平均直径を有するサブミクロン油滴を有し得る。上記エマルジョンはまた、３−ｄｅ−Ｏ−アシル化モノホスホリルリピドＡ（３ｄ−ＭＰＬ）を含み得る。このタイプの別の有用なエマルジョンは、ヒトの用量あたり、０．５〜１０ｍｇ スクアレン、０．５〜１１ｍｇ トコフェロール、および０．１〜４ｍｇ ポリソルベート８０を含み得る［４７］。

・スクアレン、トコフェロール、およびＴｒｉｔｏｎ洗剤（例えば、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００）のエマルジョン。上記エマルジョンはまた、３ｄ−ＭＰＬ（下記を参照のこと）を含み得る。上記エマルジョンは、リン酸緩衝液を含み得る。

・ポリソルベート（例えば、ポリソルベート８０）、Ｔｒｉｔｏｎ洗剤（例えば、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００）およびトコフェロール（例えば、α−トコフェロールスクシネート）を含むエマルジョン。上記エマルジョンは、約７５：１１：１０（例えば、７５０μｇ／ｍｌ ポリソルベート８０、１１０μｇ／ｍｌ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００および１００μｇ／ｍｌ α−トコフェロールスクシネート）の質量比でこれら３種の成分を含み得、これら濃度は、抗原由来のこれら成分の何らかの寄与を含むはずである。上記エマルジョンはまた、スクアレンを含み得る。上記エマルジョンはまた、３ｄ−ＭＰＬ（下記を参照のこと）を含み得る。その水相は、リン酸緩衝液を含み得る。

・スクアラン、ポリソルベート８０およびポロキサマー４０１（「Ｐｌｕｒｏｎｉｃ^ＴＭ Ｌ１２１」）のエマルジョン。上記エマルジョンは、リン酸緩衝生理食塩水（ｐＨ７．４）中に処方され得る。このエマルジョンは、ムラミルジペプチドの有用な送達ビヒクルであり、「ＳＡＦ−１」アジュバント中でトレオニル−ＭＤＰとともに使用されてきた［４８］（０．０５〜１％ Ｔｈｒ−ＭＤＰ、５％ スクアラン、２．５％ Ｐｌｕｒｏｎｉｃ Ｌ１２１および０．２％ ポリソルベート８０）。このエマルジョンはまた、「ＡＦ」アジュバントでのように［４９］（５％ スクアラン、１．２５％ Ｐｌｕｒｏｎｉｃ Ｌ１２１および０．２％ ポリソルベート８０）、上記Ｔｈｒ−ＭＤＰなしでも使用され得る。微小流動化が好ましい。

・スクアレン、水性溶媒、ポリオキシエチレンアルキルエーテル親水性非イオン性界面活性剤（例えば、ポリオキシエチレン（１２）セトステアリルエーテル）および疎水性非イオン性界面活性剤（例えば、ソルビタンエステルもしくはマンニドエステル（ｍａｎｎｉｄｅ ｅｓｔｅｒ）（例えば、ソルビタンモノオレエート（ｍｏｎｏｌｅａｔｅ）もしくは「Ｓｐａｎ ８０」））を含むエマルジョン。上記エマルジョンは、好ましくは、熱可逆性であり、そして／または上記油滴のうちの少なくとも９０％（容積で）が、２００ｎｍ未満のサイズを有する［５０］。上記エマルジョンはまた、アルジトール；凍結保護剤（ｃｒｙｏｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ ａｇｅｎｔ）（例えば、糖（例えば、ドデシルマルトシドおよび／もしくはスクロース））；および／またはアルキルポリグリコシドのうちの１種以上を含み得る。上記エマルジョンは、ＴＬＲ４アゴニストを含み得る［５１］。このようなエマルジョンは、凍結乾燥され得る。

・スクアレン、ポロキサマー１０５およびＡｂｉｌ−Ｃａｒｅのエマルジョン［５２］。アジュバント添加ワクチン中のこれら成分の最終濃度（重量）は、５％ スクアレン、４％ ポロキサマー１０５（プルロニックポリオール）および２％ Ａｂｉｌ−Ｃａｒｅ ８５（ビス−ＰＥＧ／ＰＰＧ−１６／１６ ＰＥＧ／ＰＰＧ−１６／１６ジメチコン；カプリル／カプリントリグリセリド）である。

・０．５〜５０％の油、０．１〜１０％のリン脂質、および０．０５〜５％の非イオン性界面活性剤を有するエマルジョン。参考文献５３に記載されるように、好ましいリン脂質成分は、ホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジン酸、スフィンゴミエリンおよびカルジオリピンである。サブミクロン液滴サイズが有利である。

・非代謝性の油（例えば、軽油（ｌｉｇｈｔ ｍｉｎｅｒａｌ ｏｉｌ））および少なくとも１種の界面活性剤（例えば、レシチン、Ｔｗｅｅｎ ８０もしくはＳｐａｎ ８０）のサブミクロン水中油型エマルジョン。添加剤が含まれ得る（例えば、ＱｕｉｌＡサポニン、コレステロール、サポニン−親油性結合体（例えば、参考文献５４に記載され、グルクロン酸のカルボキシル基を介して、脂肪族アミンを、デスアシルサポニン（ｄｅｓａｃｙｌｓａｐｏｎｉｎ）に添加することにより生成されるＧＰＩ−０１００）、ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド（ｄｉｍｅｔｈｙｉｄｉｏｃｔａｄｅｃｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ）および／もしくはＮ，Ｎ−ジオクタデシル−Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）プロパンジアミン）。

・サポニン（例えば、ＱｕｉｌＡもしくはＱＳ２１）およびステロール（例えば、コレステロール）が螺旋状ミセルとして会合されるエマルジョン［５５］。

・鉱油、非イオン性親油性エトキシ化脂肪アルコール、および非イオン性親水性界面活性剤（例えば、エトキシ化脂肪アルコールおよび／もしくはポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマー）を含むエマルジョン［５６］。

・鉱油、非イオン性親水性エトキシ化脂肪アルコール、および非イオン性親油性界面活性剤（例えば、エトキシ化脂肪アルコールおよび／もしくはポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンブロックコポリマー）を含むエマルジョン［５６］。

いくつかの実施形態において、エマルジョンは、送達時に抗原と即座に混合され得、従って、上記アジュバントおよび抗原は、パッケージされたもしくは配布されたワクチン（使用時に最終処方物の準備ができている）では別個に保持され得る。他の実施形態において、エマルジョンは、製造の間に抗原と混合され、従って、上記組成物は、液体アジュバント添加形態（ｌｉｑｕｉｄ ａｄｊｕｖａｎｔｅｄ ｆｏｒｍ）においてパッケージされる。上記抗原は、一般に、水性形態にあり、その結果、上記ワクチンは、２種の液体を混合することによって最終的に調製される。混合するための上記２種の液体の容積比は、変動し得る（例えば、５：１〜１：５の間）が、一般に、約１：１である。成分濃度が、上記の特定のエマルジョンの説明において与えられる場合、これら濃度は、代表的には、非希釈組成物に関するものであり、したがって抗原溶液と混合した後の濃度は低下する。

（ワクチン組成物のパッケージング）
本発明の組成物（もしくはキット成分）に適した容器としては、バイアル、シリンジ（例えば、使い捨てシリンジ）、鼻スプレーなどが挙げられる。これら容器は、滅菌であるべきである。

組成物／成分がバイアル中に配置される場合、上記バイアルは、好ましくは、ガラス材料もしくはプラスチック材料から作製され得る。上記バイアルは、好ましくは、上記組成物が上記バイアルに添加される前に、滅菌される。ラテックス感受性患者に伴う問題を回避するために、バイアルは、好ましくは、ラテックス非含有ストッパーでシールされ、全てのパッケージング材料中にラテックスが存在しないことが好ましい。上記バイアルは、ワクチンの単一用量を含んでいてもよいし、１用量より多い用量（「複数用量」バイアル）、例えば、１０用量を含んでいてもよい。好ましいバイアルは、無色ガラスから作製される。

バイアルは、あらかじめ充填されたシリンジがキャップに挿入され得るように適合されたキャップ（例えば、ルアーロック）を有し得、上記シリンジの内容物は、上記バイアルへと排出され得（例えば、その中の凍結乾燥物質を再構成するために）、上記バイアルの内容物は、取り出されて上記シリンジへと戻され得る。上記バイアルから上記シリンジを取り出した後、次いで、ニードルが取り付けられ得、上記組成物が、患者へと投与され得る。上記キャップは、好ましくは、シールもしくはカバーの内部に配置され得る。その結果、上記シールもしくはカバーは、上記キャップに到達し得る前に除去されなければならない。バイアルは、特に、複数用量バイアルについては、その内容物の無菌的取り出しを可能にするキャップを有し得る。

成分がシリンジにパッケージされる場合、上記シリンジは、これに取り付けられるニードルを有し得る。ニードルが取り付けられていない場合、別個のニードルが、組み立ておよび使用のために、上記シリンジと共に供給され得る。このようなニードルは、鞘に入れられ得る。安全ニードル（ｓａｆｅｔｙ ｎｅｅｄｌｅ）が好ましい。１インチ ２３ゲージ、１インチ ２５ゲージおよび５／８インチ ２５ゲージのニードルが代表的である。シリンジは、記録保持を容易にするために、ロット番号、インフルエンザ流行期、および内容物の使用期限がプリントされ得るピールオフラベルとともに提供され得る。上記シリンジにおけるプランジャーは、好ましくは、上記プランジャーが吸引の間に偶発的に除去されてしまわないように、ストッパーを有し得る。上記シリンジは、ラテックスゴムキャップおよび／もしくはプランジャーを有し得る。使い捨てシリンジは、単一用量のワクチンを含む。上記シリンジは、一般に、ニードルの取り付け前に、先端をシールするために先端キャップを有し、上記先端キャップは、好ましくは、ブチルゴムから作製され得る。上記シリンジおよびニードルが別個にパッケージされる場合、上記ニードルは、好ましくは、ブチルゴムシールドと適合させられる。好ましいシリンジは、商品名「Ｔｉｐ−Ｌｏｋ」^ＴＭの下で市販されるものである。

容器は、例えば、小児への送達を容易にするために、半用量容積を示すために印が付けられ得る。例えば、０．５ｍｌ用量を含むシリンジは、０．２５ｍｌ容積を示す印を有し得る。

ガラス容器（例えば、シリンジもしくはバイアル）が使用される場合、ソーダ石灰ガラスよりむしろホウケイ酸ガラスから作製された容器を使用することが好ましい。

キットもしくは組成物は、（例えば、同じボックスの中に）上記ワクチンの詳細（例えば、投与の説明書、上記ワクチン内の抗原の詳細など）を含むリーフレットとともにパッケージされ得る。上記説明書はまた、警告（例えば、ワクチン接種後のアナフィラキシー反応の場合に容易に利用可能なアドレナリン溶液を保持することなど）を含み得る。

（処置方法、および上記ワクチンの投与）
本発明は、本発明に従って製造されるワクチンを提供する。これらワクチン組成物は、ヒト被験体もしくはヒト以外の動物被験体（例えば、ブタ）への投与に適しており、本発明は、上記被験体に本発明の組成物を投与する工程を包含する、被験体における免疫応答を惹起するための方法を提供する。本発明はまた、医薬として使用するための本発明の組成物を提供し、被験体における免疫応答を惹起するための医薬の製造のための、本発明の組成物の使用を提供する。

これら方法および使用によって惹起される免疫応答は、一般に、抗体応答（好ましくは、防御的抗体応答）を含む。インフルエンザウイルスワクチン接種後の抗体応答、中和能力および防御を評価するための方法は、当該分野で周知である。ヒトでの研究から、ヒトインフルエンザウイルスのヘマグルチニンに対する抗体力価が、防御と相関する（約３０〜４０の血清サンプル赤血球凝集阻害力価が、同種のウイルスによる感染から約５０％防御を与える）ことが示された［５７］。抗体応答は、代表的には、赤血球凝集阻害によって、マイクロ中和によって、単一放射免疫拡散（ｓｉｎｇｌｅ ｒａｄｉａｌ ｉｍｍｕｎｏｄｉｆｆｕｓｉｏｎ）（ＳＲＩＤ）によって、および／もしくは単一放射溶血（ＳＲＨ）によって、測定される。これらアッセイ技術は、当該分野で周知である。

本発明の組成物は、種々の方法において投与され得る。最も好ましい免疫化経路は、筋肉内注射（例えば、腕もしくは脚への）によるが、他の利用可能な経路としては、皮下注射、鼻内［５８〜６０］、経口［６１］、皮内［６２、６３］、経皮的（ｔｒａｎｓｃｕｔａｎｅｏｕｓ）、経皮的（ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ）［６４］などが挙げられる。

本発明に従って調製されるワクチンは、小児および成人の両方を処置するために使用され得る。インフルエンザワクチンは、６ヶ月齢からの小児および成人での免疫化における使用に関して現在推奨されている。従って、ヒト被験体は、１歳未満、１〜５歳、５〜１５歳、１５〜５５歳、もしくは少なくとも５５歳であってもよい。上記ワクチンを受けるのに好ましい被験体は、高齢（例えば、≧５０歳、≧６０歳、および好ましくは、≧６５歳）、若年齢（例えば、≦５歳）、入院している被験体、ヘルスケアワーカー、軍隊および軍職員、妊婦、慢性疾患の、免疫不全の被験体、上記ワクチンを受ける７日前までに抗ウイルス化合物（例えば、オセルタミビルおよびザナミビル化合物；以下を参照のこと）を摂取している被験体、卵アレルギーがある人々、および外国に旅行する人々である。上記ワクチンは、これらの群に適しているのみではないが、一般に、集団においてより多く使用され得る。汎流行性株については、すべての年齢群への投与が好ましい。

好ましい本発明の組成物は、効力についてＣＰＭＰ基準のうちの１つ、２つもしくは３つを満たす。成人（１８〜６０歳）において、これら基準は、以下である：（１）≧７０％血清保有率（ｓｅｒｏｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ）；（２）≧４０％セロコンバージョン；および／もしくは（３）ＧＭＴ増加≧２．５倍。高齢者（＞６０歳）において、これら基準は、以下である：（１）≧６０％血清保有率；（２）≧３０％セロコンバージョン；および／もしくは（３）ＧＭＴ増加≧２倍。これら基準は、少なくとも５０名の患者でのオープンラベル研究に基づく。

処置は、単一用量スケジュールもしくは複数用量スケジュールによってであり得る。複数用量は、初回免疫化スケジュールおよび／もしくは追加免疫化スケジュールにおいて使用され得る。複数用量スケジュールにおいて上記種々の用量は、同じ経路もしくは異なる経路によって与えられ得る（例えば、非経口の初回免疫（ｐｒｉｍｅ）および粘膜の追加免疫（ｂｏｏｓｔ）、粘膜の初回免疫および非経口の追加免疫など）。１より多くの用量の投与（代表的には、２用量）は、免疫学的に経験したことがない患者（例えば、これまでインフルエンザワクチンを受けたことのない人に関して）において、または新たなＨＡサブタイプ（汎流行性アウトブレイクにおけるような）に対するワクチン接種のために、特に有用である。複数用量は、代表的には、少なくとも１週間空けて（例えば、約２週間、約３週間、約４週間、約６週間、約８週間、約１０週間、約１２週間、約１６週間など）投与される。

本発明によって生成されるワクチンは、他のワクチン（例えば、麻疹ワクチン、ムンプス・ワクチン、風疹ワクチン、ＭＭＲワクチン、水痘ワクチン、ＭＭＲＶワクチン、ジフテリアワクチン、破傷風ワクチン、百日咳ワクチン、ＤＴＰワクチン、結合体化Ｈ．ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅタイプｂワクチン、不活性化ポリオウイルスワクチン、Ｂ型肝炎ウイルスワクチン、髄膜炎菌結合型ワクチン（例えば、四価Ａ−Ｃ−Ｗ１３５−Ｙワクチン）、ＲＳウイルスワクチン、肺炎球菌結合型ワクチンなど）と実質的に同時（例えば、同じ医療相談の間に、またはヘルスケア専門家およびワクチン接種施設への訪問の間に）に患者に投与され得る。肺炎球菌ワクチンおよび／もしくは髄膜炎菌ワクチンと実施的に同時の投与は、高齢の患者において特に有用である。

同様に、本発明のワクチンは、抗ウイルス化合物、および特に、インフルエンザウイルスに対して活性な抗ウイルス化合物（例えば、オセルタミビルおよび／もしくはザナミビル）と実質的に同時（例えば、同じ医療相談の間に、またはヘルスケア専門家への訪問の間に）に、患者に投与され得る。これら抗ウイルス剤としては、ノイラミニダーゼインヒビター（例えば、（３Ｒ，４Ｒ，５Ｓ）−４−アセチルアミノ−５−アミノ−３（１−エチルプロポキシ）−１−シクロヘキセン−１−カルボン酸もしくは５−（アセチルアミノ）−４−［（アミノイミノメチル）−アミノ］−２，６−アンヒドロ−３，４，５−トリデオキシ−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクトノン−２−エノン酸（そのエステル（例えば、そのエチルエステル）およびその塩（例えば、そのリン酸塩）を含む）が挙げられる。好ましい抗ウイルス剤は、（３Ｒ，４Ｒ，５Ｓ）−４−アセチルアミノ−５−アミノ−３（１−エチルプロポキシ）−１−シクロヘキセン−１−カルボン酸、エチルエステル、ホスフェート（１：１）（オセルタミビルホスフェート（ＴＡＭＩＦＬＵ^ＴＭ）としても公知）である。

（一般）
用語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」は、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」および「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ）」を含み、例えば、Ｘを「含む」組成物は、もっぱらＸからなってもよいし、さらなる何かを含んでいてもよい（例えば、Ｘ＋Ｙ）。

語句「実質的に」は、「完全に」を排除しない。例えば、Ｙを「実質的に含まない」組成物は、完全にＹを含まなくてもよい。必要であれば、語句「実質的に」は、本発明の定義から省略され得る。

数値ｘに関する用語「約」とは、任意であり、例えば、ｘ±１０％を意味する。

別段示されなければ、２種以上の成分を混合する工程を包含するプロセスは、いかなる特定の混合する順序も必要としない。従って、成分は、任意の順序で混合され得る。３つの成分が存在する場合、２つの成分が、互いに合わされ得、次いで、その組み合わせが、第３の成分と合わせられ得るなど。

動物（および特にウシ）の物質が、細胞培養において使用される場合、それら物質は、伝染性海綿状脳症（ＴＳＥ）を含まない、特に、ウシ海綿状脳症（ＢＳＥ）を含まない供給源から得られるべきである。全体として、動物由来物質が完全に存在しない状態で細胞を培養することが好ましい。

化合物が、組成物の一部として身体に投与される場合、その化合物は、代わりに、適切なプロドラッグによって置換され得る。

図１：本発明の実施形態の概略図；ＭＤＣＫ ３３０１６懸濁細胞（ＣＤＭ中で培養）を、６ウェルディッシュＡ（無血清培地中もしくはＤＭＥＭ＋５％ ＦＢＳ中）；Ｂ：同時トランスフェクションＭＤＣＫ ３３０１６；Ｃ：洗浄２×，無血清ＤＭＥＭに交換，＋ｔｒｙｐｚｅａｎ，＋／−新鮮な非感染ＭＤＣＫ細胞，Ｄ：ＲＧウイルス中に播種する。 図２：ＰＲ８−Ａ／ＣＡバックボーン（ｂａｃｋｂｏｎｅ）を使用するＭＤＣＫ ３３０１６細胞でのインフルエンザウイルスレスキューの効率；ｙ軸は、感染力価（ＦＦＵ／ｍＬ）を示す；白抜き四角は、ＰＲ８−Ａ／ＣＡおよび５％ 血清を使用した結果を示し、斜線を入れた四角は、ＰＲ８−Ａ／ＣＡありおよび血清なしでの結果を示す；Ａは、新鮮な非感染細胞を添加したことを示す；Ｂは、新鮮な非感染細胞を添加しなかったことを示す。 図３：Ａ／ＷＳＮ／３３バックボーンを使用するＭＤＣＫ ３３０１６細胞でのインフルエンザウイルスレスキューの効率；ｙ軸は、感染力価（ＦＦＵ／ｍＬ）を示す；白抜き四角は、ＷＳＮおよび５％ 血清を使用した結果を示し、斜線を入れた四角は、ＷＳＮありおよび血清なしでの結果を示す；Ａは、新鮮な非感染細胞を添加したことを示す；Ｂは、新鮮な非感染細胞を添加しなかったことを示す。 図４：ＰＲ８−ＷＳＮバックボーンを使用するＭＤＣＫ ３３０１６細胞でのインフルエンザウイルスレスキューの効率。ｙ軸は、ＦＦＵ／ｍＬを示す；白抜き四角は、ＰＲ８−ＷＳＮおよび５％血清を使用した結果を示し、斜線を入れた四角は、ＰＲ８−ＷＳＮありおよび血清なしでの結果を示す；Ａは、新鮮な非感染細胞を添加したことを示す；Ｂは、新鮮な非感染細胞を添加しなかったことを示す。

（本発明を実施するための態様）
（ウイルスレスキュー）
ＭＤＣＫ ３３０１６細胞を、ＣＤＭ培地中、温度３７℃において懸濁して培養した。トランスフェクションの前日に、６×１０^５細胞／ウェルを、２ｍＬ ＤＭＥＭ培地（５％ ＦＣＳを含む）中、ＣＥＬＬ−ＢＩＮＤ^ＴＭ ６ウェルディッシュの中に播種した。並行実験において、上記細胞を、ＦＣＳの非存在下で播種した。上記細胞を、３７℃において一晩インキュベートした。

翌日、上記播種した細胞を、製造業者のプロトコルを使用して、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ^ＴＭ ＬＴＸ Ｐｌｕｓトランスフェクション試薬でトランスフェクトした。簡潔には、１μｇの各プラスミド（ＰＡ、ＰＢ１、ＰＢ２、ＮＰ、ＮＳ、Ｍ、ＨＡ、ＮＡと、ＴＭＰＲＳＳ２）を、５００μｌの無血清ＤＭＥＭ培地中に希釈した。１０μｌのＰｌｕｓ試薬を、上記希釈したＤＮＡに直接添加した。上記混合物を、室温で５分間にわたってインキュベートし、その後、２５μｌのＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅをそれに添加した。次いで、上記混合物を、室温で３０分間にわたってインキュベートした。インキュベーション後、上記トランスフェクション試薬：ＤＮＡ複合体を、滴下様式において上記細胞に添加した。上記細胞を、その後、３７℃において２４時間にわたってインキュベートした。

インキュベーション後、培地を細胞から吸引し、１：２０００希釈のＴｒｙｐｚｅａｎ^ＴＭ（１ｍｇ／ｍＬ ストック溶液）を含む無血清ＤＭＥＭ培地中の４×１０^５ ＭＤＣＫ ３３０１６細胞の懸濁物を、各ウェルに添加した。並行した実験において、１：２０００希釈のＴｒｙｐｚｅａｎ^ＴＭ（１ｍｇ／ｍＬ ストック溶液）単独（すなわち、細胞の添加なし）を、上記トランスフェクトされた細胞に添加した。次いで、上記細胞を、３７℃においてさらに４８時間にわたって、または上記細胞が溶解するまでインキュベートし、その後、ウイルス力価を、病巣形成アッセイを使用して決定した。

（病巣形成アッセイ（Ｆｏｃｕｓ−Ｆｏｒｍｉｎｇ Ａｓｓａｙ））
非感染ＭＤＣＫ細胞を、密度６．２５×１０^４細胞／ウェルにおいて、４８ウェルプレートの中に、５００μｌの１０％ ＦＣＳ含有ＤＭＥＭ中にプレートした。翌日、細胞に、容積１００〜１５０μｌにおいてウイルスを２時間にわたって３７℃において感染させた。上記細胞に、上記ウイルスの種々の希釈物を感染させた。感染の２時間後、培地を吸引し、５００μｌの１０％ ＦＣＳ含有ＤＭＥＭを各ウェルに添加した。上記細胞を、翌日まで３７℃においてインキュベートした。

感染の２４時間後、培地を吸引し、細胞をＰＢＳで１回洗浄した。５００μｌの氷冷したＰＢＳ中８０％ アセトンを、各ウェルに添加し、続いて、４℃において３０分間にわたってインキュベートした。アセトン混合物を吸引し、上記細胞を、ＰＢＳＴ（ＰＢＳ＋０．１％ Ｔｗｅｅｎ）で１回洗浄した。５００μｌのＰＢＳ中２％ ＢＳＡを、各ウェルに添加し、続いて、室温（ＲＴ）において３０分間にわたってインキュベートした。５００μｌの１：６０００希釈の抗ＮＰを、ブロッキング緩衝液中に添加し、続いて、室温において２時間にわたってインキュベートした。上記抗体溶液を吸引し、上記細胞をＰＢＳＴで２回洗浄した。２次抗体（ヤギ抗マウス）を、１：２０００希釈において５００μｌ ブロッキング緩衝液中で添加し、上記プレートを、室温において２時間にわたってインキュベートした。抗体溶液を吸引し、細胞をＰＢＳＴで３回洗浄した。５００μｌのＫＰＬ Ｔｒｕｅ Ｂｌｕｅを各ウェルに添加し、１０分間にわたってインキュベートした。Ｔｒｕｅ−Ｂｌｕｅを吸引し、ｄＨ_２Ｏで１回洗浄することによって、上記反応を停止した。上記水を吸引し、上記細胞を乾燥させた。

（結果）
３種の異なるウイルスバックボーンでの上記病巣形成アッセイの結果を、図２〜４に示す。上記結果は、感染の２４時間後に細胞の添加ありおよびなしでのウイルスレスキューの効率を示す。認められ得るように、すべての場合において、上記ウイルスレスキューの効率は、細胞を添加しなかった実験と比較して、トランスフェクションの２４時間後に細胞を添加した実験において最大３倍まで増大した。この効率の増大は、試験したすべてのウイルスバックボーンで、ならびに血清含有条件下および無血清条件下の両方認められ得る。

本発明は、例示によって記載されてきたに過ぎず、改変が行われ得る一方で、本発明の範囲および趣旨内にとどまっていることが理解される。

化合物が、組成物の一部として身体に投与される場合、その化合物は、代わりに、適切なプロドラッグによって置換され得る。
したがって、本発明は、以下の項目を提供する：
（項目１）
ウイルスを調製するための方法であって、該方法は、（ｉ）宿主細胞の培養物をウイルスＲＮＡ分子をコードする少なくとも１個の発現構築物でトランスフェクトする工程；（ｉｉ）細胞を、（ｉ）のトランスフェクトされた該宿主細胞に添加して、細胞の混合物を提供する工程；および（ｉｉｉ）ウイルスを生成するために、該細胞の混合物を培養する工程を包含する、方法。
（項目２）
ワクチン製造のためのウイルスを調製する方法であって、該方法は、（ｉ）宿主細胞の培養物をウイルスＲＮＡ分子をコードする少なくとも１個の発現構築物でトランスフェクトする工程；（ｉｉ）細胞を、（ｉ）のトランスフェクトされた該宿主細胞に添加して、細胞の混合物を提供する工程；（ｉｉｉ）ウイルスを生成するために、該細胞の混合物を培養する工程；および（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において得られた該ウイルスを精製する工程を包含する、方法。
（項目３）
工程（ｉｉｉ）において精製された上記ウイルスをワクチンへと処方する工程をさらに包含する、項目２に記載の方法。
（項目４）
上記宿主細胞は、ＶＥＲＯ細胞、ＰＥＲ．Ｃ６細胞もしくはＭＤＣＫ細胞である、前述の項目のいずれか１項に記載の方法。
（項目５）
上記ＭＤＣＫ細胞は、細胞株ＭＤＣＫ ３３０１６（ＤＳＭ ＡＣＣ２２１９）である、項目４に記載の方法。
（項目６）
上記細胞は、懸濁物中で培養される、項目１〜５のいずれか１項に記載の方法。
（項目７）
上記細胞は、接着させて培養される、項目１〜５のいずれか１項に記載の方法。
（項目８）
上記ウイルスは、セグメント化ウイルスである、前述の項目のいずれか１項に記載の方法。
（項目９）
上記ウイルスは、マイナス鎖ＲＮＡウイルスである、項目１〜８のいずれか１項に記載の方法。
（項目１０）
上記ウイルスは、インフルエンザウイルスである、項目９に記載の方法。
（項目１１）
上記ウイルスは、二本鎖ＲＮＡウイルスである、項目１〜８のいずれか１項に記載の方法。
（項目１２）
上記ウイルスは、ロタウイルスである、項目１１に記載の方法。
（項目１３）
上記ウイルスは、非セグメント化ウイルスである、項目１〜９または項目１１のいずれか１項に記載の方法。

Claims (13)

1. ウイルスを調製するための方法であって、該方法は、（ｉ）宿主細胞の培養物をウイルスＲＮＡ分子をコードする少なくとも１個の発現構築物でトランスフェクトする工程；（ｉｉ）細胞を、（ｉ）のトランスフェクトされた該宿主細胞に添加して、細胞の混合物を提供する工程；および（ｉｉｉ）ウイルスを生成するために、該細胞の混合物を培養する工程を包含する、方法。
2. ワクチン製造のためのウイルスを調製する方法であって、該方法は、（ｉ）宿主細胞の培養物をウイルスＲＮＡ分子をコードする少なくとも１個の発現構築物でトランスフェクトする工程；（ｉｉ）細胞を、（ｉ）のトランスフェクトされた該宿主細胞に添加して、細胞の混合物を提供する工程；（ｉｉｉ）ウイルスを生成するために、該細胞の混合物を培養する工程；および（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において得られた該ウイルスを精製する工程を包含する、方法。
3. 工程（ｉｉｉ）において精製された前記ウイルスをワクチンへと処方する工程をさらに包含する、請求項２に記載の方法。
4. 前記宿主細胞は、ＶＥＲＯ細胞、ＰＥＲ．Ｃ６細胞もしくはＭＤＣＫ細胞である、前述の請求項のいずれか１項に記載の方法。
5. 前記ＭＤＣＫ細胞は、細胞株ＭＤＣＫ ３３０１６（ＤＳＭ ＡＣＣ２２１９）である、請求項４に記載の方法。
6. 前記細胞は、懸濁物中で培養される、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
7. 前記細胞は、接着させて培養される、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
8. 前記ウイルスは、セグメント化ウイルスである、前述の請求項のいずれか１項に記載の方法。
9. 前記ウイルスは、マイナス鎖ＲＮＡウイルスである、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
10. 前記ウイルスは、インフルエンザウイルスである、請求項９に記載の方法。
11. 前記ウイルスは、二本鎖ＲＮＡウイルスである、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
12. 前記ウイルスは、ロタウイルスである、請求項１１に記載の方法。
13. 前記ウイルスは、非セグメント化ウイルスである、請求項１〜９または請求項１１のいずれか１項に記載の方法。

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