ES2328014T3 - Procedimiento para la produccion de fosfolipidos. - Google Patents

Procedimiento para la produccion de fosfolipidos. Download PDF

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Hideyuki Yamatoya
Satoshi Kudo
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Abstract

Procedimiento para la producción de un fosfolípido por transfosfatidilación, que comprende las etapas que consisten en: - mezclar un fosfolípido de materia prima, un aceptor que contiene hidroxilo, fosfolipasa D y agua en ausencia de un disolvente orgánico, para obtener una mezcla, siendo dicho aceptor que contiene hidroxilo una molécula que acepta un grupo fosfatidilo de dicho fosfolípido de materia prima en presencia de fosfolipasa D; - homogeneizar dicha mezcla en ausencia de un disolvente orgánico mediante la aplicación de una fuerza física para presentar una estructura cristalina líquida liotrópica laminar; y - someter dicha mezcla homogeneizada a una reacción de transfosfatidilación a una temperatura comprendida dentro del intervalo de 15ºC a 65ºC.

Description

Procedimiento para la producción de fosfolípidos.
Campo técnico
La presente invención se refiere a un procedimiento para la producción de un fosfolípido utilizando la transfosfatidilación (reacciones de intercambio de bases de fosfolípidos).
Antecedentes de la técnica
Los fosfolípidos, tales como fosfatidilserinas (PS) y fosfatidilgliceroles (PG), tienen cada uno sus funciones fisiológicas o biológicas útiles y unas propiedades físicas específicas, y se utilizan, por ejemplo, en preparaciones farmacéuticas, materiales alimenticios y agentes emulsionantes. Por ejemplo, las fosfatidilserinas son prometedoras como fármacos para profilaxis y/o terapia de la demencia senil y la dismnesia (desorden de la memoria), los fosfatidilgliceroles son prometedores como agentes emulsionantes y los ácidos fosfatidilascórbicos son prometedores como agentes emulsionantes e inhibidores de lipoperóxidos.
Convencionalmente, estos fosfolípidos han sido preparados por síntesis química o por transfosfatidilación utilizando fosfolipasa D. Entre estos métodos de producción, los métodos enzimáticos pueden producir de forma relativamente sencilla fosfolípidos con un coste relativamente bajo, y son ampliamente utilizados.
Los métodos para la producción de los fosfolípidos objetivo por transfosfatidilación (reacciones de intercambio de bases de fosfolípidos) se conocen desde hace mucho tiempo (Yang, S.F. et al, J. Biol. Chem., 242, p. 477, 1967). Por ejemplo, Kokusho et al dan a conocer que se obtiene un producto de reacción que contiene fosfatidilserina mediante una reacción bifásica en la que la fosfolipasa D se deja actuar sobre una mezcla de una solución de fosfatidilcolina de yema de huevo en isopropiléter con una solución acuosa de L-serina que contiene cloruro de calcio (Agric. Biol. Chem., 51, p. 2515, 1987). Generalmente, se cree que un sistema de reacción en una reacción bifásica de este tipo comprende dos fases, una fase oleica que contiene un fosfolípido y una fase acuosa que contiene un aceptor, y que la transfosfatidilación tiene lugar en la interfase entre dichas dos fases.
La patente japonesa 2.942.302 describe una reacción homogénea en la que una preparación de fosfolípido que contiene aproximadamente un 85% de fosfatidilcolina preparada por fraccionamiento de lecitina de soja se disuelve en acetato de etilo, la solución resultante se mezcla con una solución acuosa de ácido ascórbico con el fin de obtener una mezcla, y dicha mezcla se hace reaccionar con fosfolipasa D con el fin de obtener un producto de reacción que contiene ascorbato de fosfatidilo.
Sin embargo, la reacción bifásica se debe llevar a cabo en presencia de disolventes (un disolvente orgánico y agua) en una proporción de cinco veces o más (volumen/peso) la cantidad de fosfolípido, por lo que la misma requiere un reactor con una capacidad volumétrica seis veces mayor que la cantidad de fosfolípido. Además, el calcio añadido con el fin de acelerar la reacción forma rápidamente una sal con el fosfolípido. La sal de calcio formada pertenece a la categoría de sustancias sintetizadas químicamente en Japón y Europa, resultando así la utilización en los alimentos de dicho producto difícil.
En la reacción homogénea (reacción monofásica), el sistema de reacción contiene grandes cantidades de agua y da lugar a un ácido fosfatídico como subproducto debido a la actividad hidrolítica de la fosfolipasa D durante una reacción continua, volviéndose difícil la separación y purificación del fosfolípido objetivo. Además, la proporción de aceptor con respecto a los fosfolípidos está limitada en la reacción homogénea, estando limitada por ello la cantidad de producción del producto de reacción objetivo (fosfolípido).
Una patente concedida a Fujita et al (JP-B-7-016426) describe la preparación de fosfatidilserina, fosfatidilglicerol et al mediante una reacción de micela inversa, en la que una fase acuosa que contiene cloruro de calcio, un aceptor que contiene hidroxilo y fosfolipasa D, y estando encapsulada en una micela inversa, se hace reaccionar con una solución de fosfolípido de materia prima en un disolvente orgánico (diisopropil éter, isooctano, ciclohexano, benceno, cloroformo-isooctano, n-hexano o diclorometano-isooctano).
En la publicación de patente japonesa, Fujita et al describen que la reacción de micela inversa requiere únicamente una pequeña cantidad de agua y, en consecuencia, eliminan la formación de ácidos fosfatídicos, el problema del método anterior. Sin embargo, el método en cuestión produce insuficientemente el fosfolípido objetivo, en un rendimiento máximo de aproximadamente el 20%, exige operaciones complicadas tales como tratamiento ultrasónico y, en consecuencia, presenta problemas de operabilidad y de coste. El método también requiere una cantidad de disolvente orgánico 10 veces (volumen/peso) mayor que el fosfolípido y exige la utilización de un reactor con una capacidad muchas veces mayor que la cantidad de fosfolípido.
En la patente WO 00/77183 se da asimismo a conocer un procedimiento para la preparación enzimática de fosfolípidos en ausencia de disolventes orgánicos.
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Estas reacciones convencionales de transfosfatidilación deben ser llevadas a cabo en un sistema de reacción que contiene un disolvente orgánico. Sin embargo, cuando los fosfolípidos resultantes se utilizan, por ejemplo, en preparaciones alimenticias y farmacéuticas, el disolvente orgánico no puede permanecer en dichos productos y debe ser eliminado completamente. En consecuencia, las etapas de su procedimiento de preparación exigen equipos para la eliminación del disolvente orgánico, lo que supone desventajas, por ejemplo, en operabilidad y coste. Particularmente, dichos disolventes orgánicos no pueden ser utilizados sustancialmente en las reacciones en base a la ley de saneamiento de alimentos cuando los productos se utilizan en la preparación de alimentos.
En consecuencia, se ha producido una demanda de procedimientos para la producción de fosfolípidos sin la utilización de disolventes orgánicos y/o sales de calcio. Sin embargo, el experto en la materia cree generalmente que una reacción no se desarrolla sin problemas sin la utilización de disolventes orgánicos y que, en consecuencia, el rendimiento del fosfolípido objetivo y la operabilidad decrecerán, dado que los fosfolípidos materiales, tales como las fosfatidilcolinas, son solubles en aceite.
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Exposición de la invención
En consecuencia, un objetivo de la presente invención consiste en dar a conocer un procedimiento para la producción de fosfolípidos por transfosfatidilación utilizando fosfolipasa D, que puede dar lugar fácilmente al fosfolípido objetivo con un rendimiento elevado sin utilizar disolventes orgánicos y/o calcio.
De este modo, según la presente invención, el objetivo anterior se puede alcanzar mediante un procedimiento para la producción de fosfolípidos mediante transfosfatidilación, que comprende las etapas siguientes:
-
mezclar un fosfolípido de materia prima, un aceptor que contiene hidroxilo, fosfolipasa D y agua en ausencia de disolvente orgánico con el fin de obtener una mezcla, siendo dicho aceptor que contiene hidroxilo una molécula que acepta un grupo fosfatidilo de dicho fosfolípido de materia prima en presencia de fosfolipasa D;
-
homogeneizar dicha mezcla en ausencia de un disolvente orgánico mediante la aplicación de una fuerza física con el fin de obtener una estructura de cristal líquido liotrópico laminar; y
-
someter la mezcla homogeneizada a una reacción de transfosfatidilación a una temperatura comprendida entre 15ºC y 65ºC.
En el procedimiento según la presente invención, los cuatro componentes, el fosfolípido de materia prima, el aceptor que contiene hidroxilo, la fosfolipasa D y el agua, se mezclan suficientemente, y la mezcla resultante se homogeneiza adicionalmente. Se supone que la mezcla homogeneizada presenta una estructura de cristal líquido liotrópico laminar. El término "cristal líquido liotrópico laminar" se refiere a un cristal líquido de una membrana bicapa de fosfolípido formada añadiendo agua a un fosfolípido. En la presente invención, se supone que la mezcla homogeneizada presenta una estructura ordenada que contiene la membrana bicapa (a veces una estructura de membrana de capa polimolecular) y una capa acuosa ordenadas alternadamente de forma continua. La estructura de cristal líquido liotrópico laminar se puede identificar, por ejemplo, por observación microscópica de la mezcla homogeneizada en nicoles cruzados.
Así, una "estructura de cristal líquido liotrópico laminar sustancialmente sin separación de fases", mencionada a continuación, y una "estructura de cristal líquido liotrópico laminar con separación de fases" se consideran como una estructura laminar continua y como una estructura de anillo cerrado suspendida en una fase acuosa, respectivamente.
La estructura de cristal líquido liotrópico laminar se genera del siguiente modo. Esto es, añadiendo agua al fosfolípido de materia prima en el procedimiento de homogeneización, la interacción entre los grupos hidrofílicos en el fosfolípido se debilita y su estructura cristalina se desintegra, formando un cristal líquido laminar. Debido a la formación de la estructura de cristal líquido liotrópico laminar, el agua se puede desplazar libremente entre las capas de la estructura laminar del fosfolípido, haciéndose eficiente el suministro del aceptor y/o la enzima y la eliminación de las cabezas polares liberadas del fosfolípido, permitiéndose de este modo una reacción de transfosfatidilación.
Con el fin de aumentar el rendimiento del producto de reacción, toda la mezcla homogeneizada debe presentar la estructura de cristal líquido liotrópico laminar. Con este propósito, los componentes individuales deben ser homogeneizados además de simplemente mezclados. En otras palabras, toda la mezcla homogeneizada presenta preferentemente la estructura de cristal líquido liotrópico laminar (es decir, la mezcla presenta sustancialmente la estructura de cristal líquido liotrópico laminar) como resultado de la homogeneización para un rendimiento más elevado del producto de reacción.
El contenido en agua en la mezcla homogeneizada afecta a la formación de la estructura de cristal líquido liotrópico laminar. Si el contenido en agua está comprendido dentro de un intervalo específico (por ejemplo, de aproximadamente 10% en peso a aproximadamente 100% en peso relativos a la cantidad de fosfolípido de soja), la mezcla homogeneizada presentará un cristal líquido (nítido) laminar sustancialmente sin separación de fases. Sin embargo, si el contenido en agua es excesivamente más elevado que dicho intervalo específico, la mezcla homogeneizada puede sufrir separación de fases, formando dos fases que contienen un líquido y un cristal líquido. En el procedimiento según la presente invención, la reacción se lleva a cabo preferentemente mientras la mezcla homogeneizada no presenta separación de fases o no presenta sustancialmente separación de fases (en adelante, se hace referencia a ambos casos como "estructura de cristal líquido liotrópico laminar sustancialmente sin separación de fases") para una actividad de transferencia mayor.
En cambio, en una mezcla homogeneizada que contiene una cantidad excesivamente elevada de agua, lo que provoca la separación de fases (una estructura de cristal líquido liotrópico laminar con separación de fases), el cristal líquido puede constituir gránulos pequeños discontinuos suspendidos en el disolvente. En consecuencia, la eficacia de contacto entre el agua y el fosfolípido disminuye, disminuyendo de este modo la actividad de transferencia en comparación con el caso sin separación de fases. Si el contenido en agua es excesivamente bajo, el fosfolípido puede mantener su estructura cristalina, inhibiendo la formación de una estructura de cristal líquido liotrópico laminar en todo el fosfolípido, perdiéndose de este modo el campo para una reacción enzimática. Alternativamente, la mezcla homogeneizada puede tener una fluidez disminuida y, en consecuencia, presentar una eficacia de contacto deteriorada entre el sustrato y la enzima, por lo que la enzima no puede actuar eficientemente sobre dicho sustrato.
En el procedimiento de homogeneización no se utilizan disolventes orgánicos. Si se añade un disolvente orgánico durante el procedimiento de homogeneización, se puede hacer aumentar la separación de fases como en las reacciones bifásicas convencionales (no una separación de fases en la estructura de cristal líquido liotrópico laminar, sino una separación entre una fase oleosa y una fase acuosa). Además, la adición de un disolvente orgánico introduce diversas desventajas, tal como se ha descrito anteriormente.
Los fosfolípidos de materia prima que se pueden utilizar en la presente invención incluyen cualquier producto natural con contenido en fosfolípidos, extractos o extractos purificados de dichos productos naturales, así como fosfolípidos sintéticos. Los ejemplos de fosfolípidos incluyen, sin limitarse a los mismos, lecitina de soja, lecitina de semillas de nabina, lecitina de yema de huevo, lecitina de maíz, lecitina de algodón, productos purificados de estas lecitinas, fosfatidilcolinas (en adelante, abreviadas como "PC"), fosfatidiletanolaminas (en adelante, abreviadas como "PE") y mezclas de dichas sustancias. De entre las mismas, resultan preferidas por su disponibilidad y coste la lecitina de soja, la lecitina de semillas de nabina, la lecitina de yema de huevo y productos purificados de dichas lecitinas.
Los aceptores que contienen hidroxilo para su utilización en la presente invención no están particularmente limitados, siempre y cuando puedan recibir o aceptar un grupo fosfatidilo del fosfolípido de materia prima en presencia de fosfolipasa D. Dichos aceptores que contienen hidroxilo incluyen, por ejemplo, serina, glicerol, ácido L-ascórbico, glucosa, colina, etanolamina, 1-amino-2-propanol y 1-o-metil-glicósido. De entre los mismos, resultan preferentes la serina, la colina, el ácido L-ascórbico, la glucosa y el glicerol para un mayor rendimiento del producto objetivo, siendo típicamente preferidos entre los mismos la serina y el glicerol.
Las fosfolipasas D (en adelante, abreviadas como "PLD") para su utilización en la presente invención no están particularmente limitadas, siempre y cuando presenten actividad de transfosfatidilación, y las mismas incluyen, por ejemplo, PLD libres o químicamente modificadas, y enzimas inmovilizadas sobre un portador, tal como resinas de intercambio iónico y gel de sílice. De entre las mismas, resultan preferidas las PLD libres para un mayor rendimiento del producto de reacción.
Más específicamente, se puede utilizar ventajosamente cualquiera de las PLD derivadas de plantas o vegetales, tales como col y zanahoria, PLD derivadas de microorganismos, tales como micobacterias, bacterias, levaduras y hongos (mohos), y PLD derivadas de animales. Las mismas pueden ser productos preparados de acuerdo con un procedimiento convencional o productos comercializados, tal como una PLD derivada de col (por ejemplo, Product Number P 7758, Sigma Chemical Company), una PLD derivada de cacahuete (por ejemplo, Product Number P 0515, Sigma Chemical Company), y una PLD derivada de Streptomyces chromofuscus.
Según la presente invención, el fosfolípido de materia prima, el aceptor que contiene hidroxilo, la PLD y el agua se mezclan inicialmente, y la mezcla resultante se somete posteriormente a un procedimiento de homogeneización. En el presente contexto, el procedimiento de homogeneización se refiere a una dispersión homogénea de los cuatro componentes en la mezcla mediante la aplicación de fuerza física, por ejemplo mediante agitación física, tratamiento ultrasónico, etc. Más específicamente, se pueden utilizar tratamientos de homogeneización que utilizan un Vibromixer, un mortero automático, Homo Mixer, Physcotron, procesador de alimentos o sonicador, individualmente o combinados. Si la cantidad de la mezcla es pequeña, la misma se puede amasar utilizando, por ejemplo, una microespátula. Los cuatro componentes se pueden mezclar y homogeneizar en instantes separados o simultáneamente. Por ejemplo, uno de los cuatro componentes se pueden mezclar y homogeneizar junto con otro, y repetirse dicho procedimiento. También resulta aceptable mezclar o disolver por adelantado dos, tres o cuatro de los componentes y, a continuación, homogeneizar definitivamente la mezcla o solución resultante.
Si el procedimiento de homogeneización no se lleva a cabo en el método según la presente invención, el rendimiento del fosfolípido objetivo disminuye significativamente. Probablemente, esto se debe a las razones siguientes. El fosfolípido de materia prima es generalmente una pasta dura a temperatura ambiente, y la mezcla en su conjunto no puede tener una estructura de cristal líquido liotrópico laminar simplemente mezclando los otros componentes. En consecuencia, los componentes individuales entran en contacto unos con otros con una frecuencia más baja, disminuyendo de este modo el rendimiento del producto objetivo. En consecuencia, la mezcla de los componentes se debe someter a fuerza física hasta el punto de dispersar los componentes individuales y se debe someter a un "procedimiento de homogeneización".
El aceptor que contiene hidroxilo se puede utilizar como una solución acuosa o como un polvo en el procedimiento de homogeneización. La PLD se utiliza como solución en una pequeña cantidad de agua o como polvo. En este procedimiento, si los otros tres componentes (el fosfolípido de materia prima, la PLD y el agua) distintos del aceptor se han mezclado previamente, se produce ácido fosfatídico (en adelante, designado "PA") como subproducto. En consecuencia, resulta preferido mezclar previamente el fosfolípido de materia prima con el aceptor, mezclando a continuación la mezcla resultante con los otros componentes, o mezclar y homogeneizar los cuatro componentes simultáneamente.
Tal como se ha descrito anteriormente, el contenido de agua en el procedimiento de homogeneización afecta a la separación de fases de la estructura de cristal líquido liotrópico laminar y al rendimiento de fosfolípido como producto de reacción, de tal modo que el mismo se debe preferentemente controlar y ajustar con el fin de evitar la separación de fases. Aunque depende del tipo de fosfolípido de materia prima, el contenido en agua en la estructura de cristal líquido liotrópico laminar está comprendido preferentemente entre el 10% en peso y el 100% en peso, y más preferentemente entre el 20% en peso y el 60% en peso, relativos a la cantidad de fosfolípido de materia prima, con el fin de evitar sustancialmente la separación de fases. El término "contenido de agua" en la estructura de cristal líquido liotrópico laminar, tal como se utiliza en el presente documento, se refiere a la cantidad de agua en la mezcla homogeneizada tras eliminar el agua separada durante el procedimiento de homogeneización, y la misma se puede determinar, por ejemplo, mediante una técnica convencional de Karl Fischer. El agua separada puede ser eliminada por decantación o por separación centrífuga, por ejemplo, a 150 g durante aproximadamente 1 minuto.
No es necesariamente apropiado especificar una cantidad preferida del aceptor, dado que varía en función del tipo de aceptor. Para un mejor rendimiento del producto de reacción y una mayor operabilidad, la cantidad está comprendida preferentemente entre aproximadamente 0,3 moles y aproximadamente 10 moles, y más preferentemente de aproximadamente 4 moles a aproximadamente 8 moles por 1 mol del fosfolípido de materia prima. Si se añade una cantidad excesivamente grande (mayor de 10 moles) del aceptor, la recuperación del aceptor no reaccionado puede requerir mayores esfuerzos. En cambio, si la cantidad es excesivamente pequeña, el rendimiento del producto objetivo puede disminuir.
Más específicamente, la cantidad de serina como aceptor que contiene hidroxilo está comprendida preferentemente entre 5% en peso y 150% en peso, y más preferentemente entre 50% en peso y 100% en peso, relativos a la cantidad de fosfolípido de materia prima. La cantidad de glicerol como aceptor que contiene hidroxilo está preferentemente comprendida entre 10% en peso y 200% en peso, y más preferentemente entre 20% en peso y 100% en peso.
La cantidad de PLD no está específicamente limitada y puede ser determinada, por ejemplo, en función del tiempo de reacción en la siguiente etapa de reacción, y generalmente está comprendida entre aproximadamente 500 y 100.000 unidades por kg de fosfolípido.
La temperatura en el procedimiento de homogeneización no está específicamente limitada y está comprendida preferentemente entre aproximadamente 15ºC y 65ºC. Si la temperatura es inferior a 15ºC, enfriar el sistema de reacción puede requerir energía adicional y la mezcla puede no homogeneizarse suficientemente. Si la temperatura es mayor de 65ºC, el fosfolípido se puede volver inestable.
Además de los componentes mencionados anteriormente, se puede añadir un aceite y/o grasa comestible durante el procedimiento de homogeneización dentro de intervalos que no deterioren la estructura de cristal líquido liotrópico laminar. Aunque la adición de dicho aceite y/o grasa comestible aumenta la conversión de la estructura de cristal líquido liotrópico laminar en un sistema bifásico como disolventes orgánicos, una pequeña cantidad del aceite y/o grasa comestible hace aumentar la fluidez de la mezcla homogeneizada, aumentando así el rendimiento del fosfolípido objetivo. Dichos aceites y grasas comestibles incluyen, sin limitarse a los mismos, aceite de cártamo, aceite de soja, aceite de maíz, aceite de semillas de nabina, aceite de semillas de algodón, aceite de girasol, aceite de cártamo, aceite de sésamo, aceite de oliva, aceite de semilla de cáñamo, aceite de perilla, aceite de teobroma (mantequilla de coco), aceite de coco et al aceites vegetales; aceite de mantequilla, aceite de pescado, manteca, sebo de vacuno et al aceites animales; y triacilgliceroles de cadena mediana (MCT). Cada uno de estos aceites y grasas se añade individualmente o en combinación con el fosfolípido de materia prima con el fin de conferir fluidez al mismo. Entre ellos, los MCT, el aceite de teobroma y el aceite de soja resultan preferidos para mejorar adicionalmente el rendimiento del producto objetivo.
Aunque depende del tipo de fosfolípido de materia prima y el tipo de aceite y/o grasa comestible añadido, la cantidad de aceite y/o grasa comestible es preferentemente inferior o igual a una cantidad equivalente, y más preferentemente de 5% en peso a 15% en peso relativo a la cantidad de fosfolípido de materia prima.
Es posible añadir un disolvente orgánico tal como hexano o éter con el mismo propósito, dentro de intervalos que no deterioren la estructura de cristal líquido liotrópico laminar, pero no resulta preferido, tal como se ha descrito anteriormente.
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Algunas de las ventajas de la presente invención se describen a continuación. Se han llevado a cabo reacciones convencionales de transfosfatidilación según reacciones bifásicas, reacciones de micela inversa y reacciones de fase homogénea. Las reacciones bifásicas y las reacciones de micela inversa requieren una cantidad de disolvente cinco o más veces mayor (volumen/peso) que el fosfolípido con el fin de mantener sus sistemas de reacción. En cambio, el procedimiento según la presente invención requiere disolvente únicamente en una cantidad igual a la de fosfolípido y, en consecuencia, puede utilizar un reactor con una capacidad menor para la preparación del fosfolípido en la misma cantidad que en sus equivalentes convencionales.
Las reacciones de fase homogénea requieren una cantidad de disolvente dos o más veces mayor (volumen/peso) que la de fosfolípido, y en consecuencia requieren un reactor con una capacidad tres o más veces mayor (volumen/peso) que la cantidad de fosfolípido. Además, la cantidad de aceptor está limitada con el fin de mantener su fase homogénea, y resulta difícil obtener un producto de reacción que contenga el compuesto objetivo en un contenido elevado. Por ejemplo, con el fin de la producción de PS, la cantidad de serina que se puede añadir a 1 kg del fosfolípido es de 0,15 kg y el contenido en PS en los fosfolípidos productos de reacción es, como mucho, del 35%. En cambio, de acuerdo con el procedimiento según la presente invención, se puede añadir 1 kg de serina o más a 1 kg del fosfolípido, pudiéndose obtener de este modo productos de reacción que contienen 48% o más de PS en los fosfolípidos. Específicamente, el procedimiento según la presente invención puede reducir la capacidad del reactor para producir una cantidad equivalente del fosfolípido objetivo y puede dar lugar a productos de reacción que contienen compuesto objetivo en un contenido elevado en comparación con las reacciones homogéneas.
Cada una de las reacciones convencionales de transfosfatidilación se puede llevar a cabo en presencia de un disolvente orgánico, tal como éter, tolueno, n-hexano o acetato de etilo en su sistema de reacción. Sin embargo, el procedimiento según la presente invención no requiere disolventes orgánicos y, en consecuencia, resulta ventajoso en la producción de fosfolípidos para alimentos y otras sustancias en las que está restringida la utilización de disolventes orgánicos. Además, según la presente invención, la reacción tiene lugar incluso sin la adición de iones calcio, a diferencia de los métodos convencionales. Aunque no se ha establecido de forma clara, esto se debe probablemente a que la reacción se lleva a cabo en un cristal líquido según la presente invención y, en consecuencia, el fosfolípido de materia prima resulta estructuralmente susceptible a reacciones de transfosfatidilación, independientemente de la presencia o ausencia de ion calcio. En cambio, la reacción bifásica convencional se lleva a cabo en un líquido.
Según la presente invención, la mezcla homogeneizada obtenida de este modo se somete a una reacción de transfosfatidilación en ausencia de un disolvente orgánico con el fin de obtener el fosfolípido objetivo. La reacción se lleva a cabo a una temperatura comprendida preferentemente dentro del intervalo de 15ºC a 65ºC, y más preferentemente de 45ºC a 55ºC. Si la temperatura de reacción es menor de 15ºC, puede no facilitarse el desarrollo de la reacción, disminuyendo de este modo el rendimiento de fosfolípido objetivo. Si la temperatura de reacción es mayor de 65ºC, pueden tener lugar reacciones secundarias del fosfolípido, tales como descomposición y/u oxidación de la fosfatidilserina producida.
El tiempo de reacción no está particularmente limitado y se puede seleccionar apropiadamente en función de la temperatura de reacción y los tipos y cantidades de los componentes, y está comprendido preferentemente entre aproximadamente entre 1 y 48 horas para un mejor rendimiento del fosfolípido objetivo y una menor aparición del subproducto de PA.
La reacción de transfosfatidilación se puede llevar a cabo dejándola en reposo o con agitación. Por ejemplo, la reacción se puede llevar a cabo con agitación utilizando un mezclador universal de sobremesa (por ejemplo, KINMIX MAJOR (marca registrada), modelo KM-230).
En la producción de fosfolípidos según el procedimiento de la presente invención, se forma una estructura de cristal líquido laminar sin separación de fases enteramente en la mezcla homogeneizada mezclando una cantidad apropiada de agua con el fosfolípido de materia prima, y el agua se puede desplazar libremente entre las capas de la estructura laminar del fosfolípido, suministrándose de este modo eficientemente el aceptor que contiene hidroxilo y/o la enzima, además de eliminar eficientemente las cabezas polares liberadas del fosfolípido. En consecuencia, es posible alcanzar la reacción de transfosfatidilación en una actividad elevada, y el fosfolípido objetivo se puede obtener fácilmente con un rendimiento elevado y un coste bajo.
Los fosfolípidos obtenidos según el procedimiento de la presente invención pueden contener impurezas derivadas del fosfolípido de materia prima y el aceptor, y otras sustancias además del subproducto PA. En consecuencia, el fosfolípido obtenido es a menudo una mezcla de fosfolípidos que contiene el fosfolípido objetivo, otros fosfolípidos e impurezas.
El fosfolípido obtenido mediante la transfosfatidilación se utiliza preferentemente tras la eliminación de dichas impurezas sometiéndolo a un procedimiento apropiado de purificación, aunque también puede ser utilizado mientras contiene impurezas derivadas de las materias primas o formadas en los procedimientos de producción, siempre y cuando dichas impurezas no supongan problemas para su administración ni mermen las ventajas del mismo. El producto se puede purificar mediante cualquier técnica, tal como fraccionamiento utilizando un disolvente y cromatografía en una combinación apropiada, de acuerdo con un procedimiento convencional.
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Los fosfolípidos obtenidos según el procedimiento de la presente invención pueden ser administrados, por ejemplo, en forma de preparaciones farmacéuticas, alimentos o cosméticos. Por ejemplo, para ser utilizados en forma de preparaciones farmacéuticas con el fin de utilizar las funciones biológicas de los fosfolípidos, se pueden administrar por vía oral en una forma de dosificación, por ejemplo cápsulas, gránulos, comprimidos, polvos y otras preparaciones sólidas; y jarabes u otras preparaciones líquidas. Alternativamente, se pueden administrar, por ejemplo, en forma de inyecciones, preparaciones dermatológicas externas, infusiones rectales y otras preparaciones no orales.
En la producción de dichas preparaciones, se pueden utilizar otros componentes farmacéuticamente aceptables, según se requiera. Dichos componentes incluyen, por ejemplo, lactosa, almidones, celulosa cristalina, lactato de calcio, aluminometasilicato de magnesio, anhídrido silícico et al excipientes; sucrosa, hidroxipropilcelulosa, polivinilpirrolidona et al aglutinantes; carboximetilcelulosa, carboximetilcelulosa de calcio et al desintegrantes; estearato de magnesio, talco et al lubricantes.
Cuando el fosfolípido obtenido según el procedimiento de la presente invención se utiliza en alimentos con la expectativa de obtener funciones biológicas similares, dicho alimento puede ser apropiadamente producido de acuerdo con un procedimiento convencional, añadiendo el fosfolípido intacto o tras su purificación a aceites y grasas, productos de confitería en forma de comprimidos o gránulos, leche fermentada, golosinas, especias, copos de pescado y verduras para espolvorear sobre arroz cocido, et al alimentos y bebidas.
Una cantidad apropiada de los fosfolípidos obtenidos mediante el procedimiento según la presente invención puede ser utilizada en forma de estas preparaciones farmacéuticas y alimentos. Con el fin de obtener las funciones biológicas de los fosfolípidos, la cantidad de los mismos puede ser tal que proporcione dichas funciones a la vez que no provoque problemas tales como una sobredosis. Por ejemplo, la cantidad en composición de fosfatidilserina producida como fosfolípido es una cantidad tal que se ingieran de aproximadamente 50 mg a 1.000 mg por día.
Los fosfolípidos obtenidos mediante el procedimiento según la presente invención también pueden ser utilizados como agentes emulsionantes. En este caso, el agente emulsionante se puede añadir, por ejemplo, a preparaciones farmacéuticas, alimentos y cosméticos en una cantidad comprendida preferentemente entre 0,01% y 10%.
Entre los fosfolípidos obtenidos mediante el procedimiento según la presente invención, una fosfatidilserina puede ser fácilmente purificada y concentrada a partir de la mezcla de fosfolípidos que contiene las fosfatidilserinas disolviendo la mezcla de fosfolípidos en un alcohol con el fin de obtener una solución, añadiendo una sal metálica a dicha solución con el fin de insolubilizar las fosfatidilserinas, y separando la materia insolubilizada.
Dichas sales metálicas para su utilización en el presente procedimiento incluyen, sin limitarse a las mismas, sales de litio, sales de sodio, sales de potasio, sales de calcio, sales de magnesio y otras sales metálicas, así como productos naturales que contienen cualquiera de estas sales metálicas en abundancia, tales como sal común, agua madre, salmuera, dolomita y nácar en polvo comestible. Entre estos, las sales de litio, las sales de sodio y las sales de potasio son preferentes para una concentración eficiente, siendo típicamente preferidas entre ellas el cloruro de litio, el cloruro de sodio y el cloruro de potasio. Cada una de estas sales metálicas puede ser utilizada individualmente o en combinación.
La cantidad de sal o sales metálicas no está particularmente limitada, siempre y cuando se pueda precipitar la fosfatidilserina, y está comprendida preferentemente entre 0,15 y 10 mmoles, y más preferentemente entre 0,5 y 5 mmoles por gramo de fosfolípido para una mayor relación de recuperación de las fosfatidilserinas y un mayor contenido de fosfatidilserinas en el precipitado.
En el presente procedimiento se puede utilizar cualquier alcohol, siempre y cuando pueda disolver la mezcla de fosfolípidos, siendo preferentes el alcohol metílico, el alcohol etílico, el alcohol butílico, el alcohol propílico et al alcoholes inferiores. También se pueden utilizar mezclas de dichos alcoholes. El alcohol etílico se puede aplicar fácilmente a los alimentos con menores problemas de seguridad, y es el que se utiliza típicamente de forma ventajosa.
La concentración de la mezcla de fosfolípidos en el alcohol no está particularmente limitada y es preferentemente igual o mayor a la concentración a la cual dicha mezcla se puede disolver completamente en el alcohol, y está comprendida preferentemente entre 1 y 50%, y más preferentemente entre 2 y 20%, relativos al peso del alcohol, para un procedimiento de concentración eficiente de las fosfatidilserinas y para una mayor operabilidad.
Las fosfatidilserinas se pueden concentrar a partir de la mezcla de fosfolípidos, por ejemplo, del siguiente modo. Inicialmente, la mezcla de fosfolípidos preparada por transfosfatidilación y que contiene otros fosfolípidos además de las fosfatidilserinas, se disuelve en un alcohol, tal como alcohol etílico. En dicho procedimiento, las condiciones de disolución, tales como la temperatura de disolución, no están particularmente limitadas y se pueden seleccionar apropiadamente en función de los tipos y cantidades de los componentes de la mezcla y de otros parámetros.
En la solución resultante, las fosfatidilserinas, PC, PA et al fosfolípidos se extraen en una capa de disolvente, aunque pueden formarse algunas materias insolubles. En consecuencia, la sal metálica se añade después de eliminar dichos precipitados, agregados u otras materias insolubles del disolvente, por ejemplo, mediante separación centrífuga y/o filtración. Si las materias insolubles incluyen una pequeña cantidad de fosfatidilserina, la operación de extracción con el alcohol se puede repetir varias veces.
A continuación, la sal metálica se añade a la solución de alcohol con el fin de fraccionar las fosfatidilserinas extraídas en la capa de disolvente. Particularmente, la mayoría de los otros fosfolípidos distintos de las fosfatidilserinas presentes en la capa de disolvente no precipitan mediante la adición de la sal metálica, pero la mayoría de fosfatidilserinas precipitan, de tal modo que dichas fosfatidilserinas se pueden concentrar recuperando la fosfatidilserina precipitada. La sal metálica se puede añadir en forma de polvos o de solución en un disolvente, tal como agua o un alcohol. Las condiciones del procedimiento no están particularmente limitadas y se pueden seleccionar apropiadamente, por ejemplo, en función de los tipos y cantidades de los componentes de la mezcla. Más específicamente, la mezcla con la sal metálica se mantiene a una temperatura de 10ºC a 30ºC durante 30 minutos o más, con el fin de insolubilizar la PS.
Las fosfatidilserinas insolubilizadas como resultado de la adición de la sal metálica pueden ser recuperadas mediante un método tal como separación centrífuga, filtración o separación en reposo. Las fosfatidilserinas pueden ser purificadas adicionalmente mediante un medio convencional de purificación, tal como cromatografía en columna. El concentrado de fosfatidilserinas obtenido según la presente invención contiene cantidades significativamente reducidas de otros fosfolípidos et al componentes, y en consecuencia puede ser purificado de forma relativamente sencilla.
Breve descripción de los dibujos
La figura 1 es un diagrama de los resultados de ensayo sobre cantidades óptimas de MCT con la ordenada A representando la relación de producción de PS (%) y la abscisa B representando la relación de cantidad añadida (%) de MCT a los fosfolípidos,
la figura 2 es un diagrama de los resultados de ensayo sobre cantidades óptimas de MCT con la ordenada C representando la relación (%) de MCT con respecto a los fosfolípidos y la abscisa D representando la relación de producción de PS (%),
la figura 3 es un diagrama de resultados de ensayo sobre relaciones molares de serina con respecto a fosfolípidos en una mezcla homogeneizada con la ordenada E representando la relación de producción de PS (%) y la abscisa F representando la relación molar (mol/mol) de serina con respecto a fosfolípidos,
la figura 4 es un diagrama de resultados de ensayo sobre relaciones en peso de agua con respecto a fosfolípidos en una mezcla homogeneizada con la ordenada G representando la relación de producción de PS (%) y la abscisa H representando la relación (% en peso) de agua con respecto a los fosfolípidos,
la figura 5 es un diagrama de resultados de ensayo sobre relaciones en peso de agua con respecto a fosfolípidos en una mezcla homogeneizada con la ordenada I representando la relación de producción de PS (%) y la abscisa J representando la relación (% en peso) de agua con respecto a los fosfolípidos,
la figura 6 es un diagrama de resultados de ensayo sobre relaciones en peso de agua con respecto a fosfolípidos en una mezcla homogeneizada con la ordenada K representando la relación de producción de PS (%) y la abscisa L representando la relación (% en peso) de agua con respecto a los fosfolípidos,
la figura 7 es un diagrama que muestra las relaciones de producción de PS a diferentes temperaturas de reacción con la ordenada M representando la relación de producción de PS (%) y la abscisa N representando la temperatura (ºC).
Mejor modo de poner en práctica la invención
A continuación se describe con detalle la presente invención haciendo referencia a las formas de realización preferidas siguientes, que no pretenden limitar el alcance de la presente invención.
Ejemplo 1 Básico
Se amasó (homogeneizó) una cantidad total de 97 g de solución acuosa de L-serina 6,7 M (con o sin cloruro de calcio 0,18 M) con 100 g de una mezcla de lecitina de soja y mantequilla de coco (NATHIN 250, marca registrada, comercializada por Central Soya Company, Inc.) en un mortero automático (modelo ANM-150) y se mantuvo a 55ºC. Una cantidad total de 2,0 ml de una mezcla de enzimas que contiene 800 unidades de fosfolipasa D-Y1 derivada de un actinomiceto que pertenece al género Streptomyces (PLD-Y1, nombre de producto, comercializada por Yakult Honsha Co., Ltd.) se amasó (homogeneizó) con la mezcla amasada en un mortero automático, y se llevó a cabo una reacción en ausencia de disolventes orgánicos. La reacción de transfosfatidilación se llevó a cabo con agitación a 55ºC durante 17 horas, y resultó completa.
El análisis de los productos de reacción por cromatografía de capa fina en gel de sílice puso de manifiesto que el 47,9% en moles de fosfolípidos totales se convirtió en fosfatidilserinas cuando se añadió cloruro de calcio 0,18 M, y que el 44,5% en moles de fosfolípidos totales se convirtió en fosfatidilserinas incluso en ausencia de cloruro de calcio. Estos resultados muestran que la reacción de transfosfatidilación puede proceder en este sistema de reacción incluso sin la adición de calcio. La mezcla homogeneizada antes del inicio de la reacción fue observada con un microscopio en nicoles cruzados, observándose que presentaba una "estructura de cristal líquido liotrópico laminar sustancialmente sin separación de fases".
Tal como se ha descrito anteriormente, la presente invención da a conocer un procedimiento para llevar a cabo una reacción de transfosfatidilación sin la utilización de disolventes orgánicos. Específicamente, los productos transfosfatidilados pueden ser producidos eficientemente homogeneizando una solución acuosa que contiene el aceptor que contiene hidroxilo y la fosfolipasa D con el fosfolípido antes de la reacción.
Dicho procedimiento no requiere de ningún disolvente orgánico. Sin embargo, se puede añadir una sustancia soluble en aceite que no sea ningún disolvente orgánico al fosfolípido con el fin de mejorar adicionalmente la operabilidad. Dichas sustancias solubles en aceite incluyen, sin limitarse a las mismas, aceite de cártamo, aceite de soja, aceite de maíz, aceite de semillas de nabina, aceite de semillas de algodón, aceite de girasol, aceite de cártamo, aceite de sésamo, aceite de oliva, aceite de semillas de cáñamo, aceite de perilla, aceite de teobroma, (mantequilla de cacao), aceite de coco et al aceites vegetales; aceite de mantequilla, aceite de pescado, manteca, sebo de vacuno et al aceites animales; MCT, tal como derivados glicéridos preparados a partir de ácidos grasos de cadena mediana como materiales de partida; et al aceites y grasas comestibles.
Ejemplo 2 Adición de calcio
Los resultados del ejemplo 1 muestran que la reacción de transfosfatidilación procede incluso sin la adición de calcio. Sin embargo, se investigaron adicionalmente los efectos de la adición de calcio. Específicamente, se mezclaron los componentes individuales con o sin la adición de calcio, tal como se muestra en la tabla 1, mientras que la relación molar de serina con respecto a fosfolípido se ajustó a 1 ó 5. La mezcla resultante se amasó (homogeneizó) utilizando una microespátula, y se dejó reaccionar a 55ºC durante 18 horas. En dicho procedimiento, una muestra con una relación molar de 1 utilizaba solución acuosa de serina 2,5 M, y otra con una relación molar de 5 utilizaba solución acuosa de serina 4,5 M. Más específicamente, se mezclaron NATHIN 250 y la solución acuosa de serina que contiene, si lo contiene, el calcio, y la mezcla resultante se trató con la solución acuosa de PLD-Y1 con el fin de iniciar la reacción.
Las cantidades de productos de reacción se determinaron del mismo modo que en el ejemplo 1. La tabla 2 muestra que la relación de producción de PS sin la adición de calcio fue ligeramente menor aunque sustancialmente igual que con la adición de calcio. Las mezclas homogeneizadas antes de la reacción fueron sometidas a observación microscópica en nicoles cruzados, observándose que presentaban una estructura de cristal líquido liotrópico laminar sustancialmente sin separación de fases. En las tablas, las abreviaciones PA, PE, y PI representan ácido fosfatídico, fosfatidiletanolamina y fosfatidilinositol, respectivamente.
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TABLA 1
1
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TABLA 2
2
Estos resultados muestran que se pueden obtener buenos rendimientos de acuerdo con la presente invención, independientemente de la presencia o ausencia de calcio. En consecuencia, el procedimiento según la presente invención no requiere la adición de calcio a su sistema de reacción, a diferencia de la mayoría de reacciones convencionales de transfosfatidilación, que utilizan un disolvente orgánico.
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Ejemplo 3 Reacción con fosfolípido que no contiene ningún triglicérido como sustrato
Se disolvieron un total de 50 g de NATHIN 250 (comercializado por Central Soya Company, Inc.) en 500 ml de un reactivo químico de acetona calentando a 60ºC, y la solución se enfrió a 15ºC. El precipitado resultante se disolvió en 300 ml de un reactivo químico de acetona calentando a 60ºC, a continuación se enfrió la solución a 15ºC y de este modo se obtuvo un precipitado que comprendía solo fosfolípidos, sin triglicéridos. Se amasaron (homogeneizaron) 6 g de un producto seco del precipitado (en adelante, designado "precipitado de NATHIN 250/acetona") con 5,8 g de de solución acuosa 4,5 M de L-serina (con o sin la adición de cloruro de calcio 0,18 M), y el artículo amasado se mantuvo a 55ºC. El artículo amasado se amasó (homogeneizó) adicionalmente con 0,2 ml de una mezcla de enzimas que contenían 49,3 unidades de fosfolipasa DY-1 (comercializada por Yakult Honsha Co., Ltd.) utilizando una microespátula, y el artículo amasado se sometió inmediatamente a una reacción a 55ºC durante 17 horas con el fin de completar la reacción de transfosfatidilación.
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TABLA 3 Reacción de producción de PS utilizando precipitado de NATHIN 250/acetona como sustrato (composición de sustrato)
3
El análisis de los productos de reacción obtenidos por cromatografía de capa fina en gel de sílice puso de manifiesto que el 41,7% de fosfolípidos totales se convirtió en fosfatidilserinas cuando se añadió cloruro de calcio 0,18 M. Sin embargo, el 35,1% de fosfolípidos totales se convirtió en fosfatidilserinas incluso sin adición de cloruro de calcio. Las mezclas homogeneizadas antes del inicio de la reacción fueron sometidas a observación microscópica en nicoles cruzados, observándose que presentaban una "estructura de cristal líquido liotrópico laminar sustancialmente sin separación de fases". Las tablas 3 y 4 muestran composiciones de sustratos y los resultados de las reacciones de transfosfatidilación de PS utilizando el precipitado de acetona como sustrato, respectivamente.
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TABLA 4 Reacción de producción de PS utilizando precipitado de NATHIN 250/acetona como sustrato (composiciones de fosfolípidos de productos purificados)
4
Ejemplo 4
Se prepararon fosfolípidos de materia prima amasando de 1 a 9% en peso de MCT (Panasate 810, marca registrada, comercializada por Nippon Oil And Fats Co., Ltd.) en precipitado de NATHIN 250/acetona. Cada uno de los fosfolípidos de material se amasó adicionalmente con 200 mg de serina y 200 ml de agua (relación molar de fosfolípidos con respecto a agua: 0,4) relativos a 500 mg de precipitado de NATHIN 250/acetona. El artículo amasado se amasó adicionalmente (homogeneizó) con una solución acuosa de PLD-Y1 (4,1 unidades por 15 ml) utilizando una microespátula y se dejó reaccionar a 55ºC durante 17 horas. Tras la compleción de la reacción, las fosfatidilserinas se determinaron por cromatografía de capa fina en gel de sílice.
La figura 1 es un diagrama que muestra los resultados de ensayo en cantidades óptimas de MCT. Tal como se muestra en la figura 1, añadiendo 50 mg (9% relativo a los fosfolípidos) de MCT, la relación de producción de PS aumenta de 34,7% a 40,4% en comparación con el caso en el que no se añade MCT, verificándose los efectos de la adición de MCT. Las reacciones se llevaron a cabo del mismo modo con una relación variable de MCT del 10% al 40%. La figura 2 es un diagrama que representa los resultados de ensayo en cantidades óptimas de MCT. Tal como se muestra en la figura 2, la relación de producción de PS aumenta en todas las muestras con entre 10% y 40% de MCT. Aparentemente, las figuras 1 y 2 indican que la cantidad de MCT está comprendida preferentemente entre 9% y 40%. Las mezclas homogeneizadas antes del inicio de la reacción fueron observadas con un microscopio en nicoles cruzados, observándose que presentaban una "estructura de cristal líquido liotrópico laminar sustancialmente sin separación de fases".
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Ejemplo 5 Relación molar de serina con respecto a los fosfolípidos
A 500 mg de NATHIN 250 se le añadió una solución acuosa de serina 2,5 M que contenía cloruro de calcio 0,18 M en una relación molar variable de serina con respecto a fosfolípidos comprendida entre 0,1 y 15, y dicha mezcla se mezcló en un mezclador a la vez que se calentaba en un baño de agua a 60ºC. Tras enfriar el baño de agua a 55ºC, el sustrato de reacción se mezcló y homogeneizó adicionalmente con una solución acuosa de PLD-Y1 utilizando la microespátula o el Vibromixer. La mezcla homogeneizada se dejó reaccionar a 55ºC durante 17 horas, y la composición de fosfolípidos de los productos de reacción se analizó por cromatografía de capa fina de gel de sílice.
La figura 3 muestra que el contenido en PS en los productos de reacción es del 20% o mayor para relaciones molares de serina con respecto a fosfolípidos de 0,3 o mayores, lo que indica que estas son condiciones adecuadas para la producción de PS. En particular, relaciones molares de 4 o mayores pueden alcanzar contenidos en PS del 45% o mayores y típicamente resultan preferentes como composiciones de sustrato. Sin embargo, si la relación molar es de 10 o mayor, la producción de PS no aumenta con una cantidad creciente de serina, lo que indica que un límite superior de la relación molar para la producción eficiente de fosfatidilserinas es aproximadamente 10. Las mezclas homogeneizadas (para relaciones molares comprendidas entre 0,3 y 10) antes de la reacción fueron sometidas a observación microscópica en nicoles cruzados, observándose que presentaban una "estructura de cristal líquido liotrópico laminar sustancialmente sin separación de fases".
La cantidad de agua relativa a fosfolípidos fue de 100 partes en peso o mayor para relaciones molares de serina de 6 o mayores. Sin embargo, la cantidad de agua en las mezclas homogeneizadas determinada por la técnica de Karl Fischer fue de 100 partes en peso o menor tras la eliminación del agua separada por decantación.
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Ejemplo 6 Relación de pesos de agua a fosfolípidos
Una cantidad total, respectivamente, de 200 mg de L-serina en polvo, se mezcló suficientemente con 500 mg de lecitina de soja (precipitado de NATHIN 250/acetona, o PC 80 disponible a través de Croklaan B.V.) o lecitina de yema de huevo (PL-100LE, disponible a través de Q. P. Corporation) en un mortero calentado a 60ºC. La mezcla se amasó adicionalmente con agua destilada con los contenidos de agua representados en las figuras 4 a 6 y se mantuvo a 55ºC. Un total de 0,015 ml de una mezcla de enzimas que contenía 4,1 unidades de PLD-Y1 (disponible a través de Yakult Honsha Co., Ltd.) se amasó (homogeneizó) con el artículo amasado utilizando una microespátula, y se llevó a cabo una reacción de transfosfatidilación a 55ºC durante 17 horas dejándola en reposo hasta compleción. Los contenidos de agua de las mezclas homogeneizadas se determinaron mediante la técnica de Karl Fischer.
Los productos de reacción obtenidos fueron analizados por cromatografía de capa fina en gel de sílice. Las figuras 4 a 6 son diagramas de resultados con la ordenada representando contenidos de PS (%) en los productos de reacción y la abscisa (representada logarítmicamente) representando la relación (% en peso) de agua con respecto a la lecitina de soja.
La figura 4 muestra que cuando se utilizó el precipitado de NATHIN 250/acetona como fosfolípido de materia prima, no se produjo PS en una relación de pesos de agua con respecto a fosfolípidos en la mezcla homogeneizada de 3%, sino que el 10% o más del fosfolípido se convirtió en PS en relaciones de pesos del 10% al 100%, lo que indica que dichas relaciones de pesos son adecuadas para la producción de PS. Un total del 30% o más del fosfolípido se convirtió en PS en relaciones de pesos con respecto a fosfolípidos comprendidas entre 20% y 70%, lo que indica que dichas relaciones de pesos son adecuadas para la producción de PS. Las mezclas homogeneizadas fueron sometidas a observación microscópica en nicoles cruzados, observándose que presentaban una "estructura de cristal líquido liotrópico laminar sustancialmente sin separación de fases" para relaciones de pesos de agua con respecto a fosfolípidos del 10% al 100%, adecuadas para la producción de PS.
La figura 5 muestra que cuando se utilizó PC 80 como fosfolípido de materia prima, no se produjo PS en una relación de pesos de agua con respecto a los fosfolípidos en la mezcla homogeneizada de 8%, sino que el 10% o más del fosfolípido se convirtió en PS en relaciones de pesos del 10% al 60%, lo que indica que dichas relaciones de pesos son adecuadas para la producción de PS. Un total del 20% o más del fosfolípido se convirtió en PS en relaciones de pesos con respecto a fosfolípidos comprendidas entre 20% y 40%, lo que indica que dichas relaciones de pesos son adecuadas para la producción de PS. Las mezclas homogeneizadas fueron sometidas a observación microscópica en nicoles cruzados, observándose que presentaban una "estructura de cristal líquido liotrópico laminar sustancialmente sin separación de fases" para relaciones de pesos de agua con respecto a fosfolípidos del 10% al 60%, adecuadas para la producción de PS.
La figura 6 muestra que cuando se utilizó lecitina de yema de huevo como fosfolípido de materia prima, no se produjo PS en una relación de pesos de agua con respecto a los fosfolípidos en la mezcla homogeneizada de 8%, sino que el 10% o más del fosfolípido se convirtió en PS en relaciones de pesos del 15% al 40%, lo que indica que dichas relaciones de pesos son adecuadas para la producción de PS. Un total del 20% o más del fosfolípido se convirtió en PS en relaciones de pesos con respecto a fosfolípidos comprendidas entre 20% y 35%, lo que indica que dichas relaciones de pesos son adecuadas para la producción de PS. Las mezclas homogeneizadas fueron sometidas a observación microscópica en nicoles cruzados, observándose que presentaban una "estructura de cristal líquido liotrópico laminar sustancialmente sin separación de fases" para relaciones de pesos de agua con respecto a los fosfolípidos del 15% al 40%, adecuadas para la producción de PS.
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Ejemplo 7 Productos distintos de PS
Se mezclaron 490 mg de cada una de las soluciones acuosas de receptores indicadas en la tabla 5 con 500 mg de PC 80 en un baño de agua de 60ºC, la mezcla se amasó (homogeneizó) con 50 ml de una solución acuosa que contenía 13,7 unidades de un PLD (PLD-Y1) utilizando una microespátula, y el artículo amasado se dejó reaccionar a 55ºC durante 18 horas. Los productos de reacción de transfosfatidilación fueron analizados por cromatografía de capa fina en gel de sílice.
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TABLA 5 Reacciones de transferencia utilizando aceptores distintos de serina
5
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La tabla 5 muestra las relaciones de producción de los productos transferidos tras las reacciones de transferencia utilizando cada uno de los aceptores. La tabla 5 demuestra que se produjeron los productos transfosfatidilados correspondientes (fosfatidilglicerol: 42,7%, ácido fosfatidilascórbico: 9,4%, fosfatidilglucosa: 13,3%) cuando se utilizaron glicerol, ácido L-ascórbico y glucosa como aceptores. En cambio, no se produjo ningún producto transfosfatidilado cuando se utilizaron inositol, fosfatos de ascorbato y trealosa.
Ejemplo 8 Temperaturas de reacción
Un total de 490 mg de solución acuosa de serina 4,5 M se añadieron a 500 mg de precipitado de NATHIN 250/acetona (PL) o de un sustrato de fosfolípido (PL+TG) que comprendía 450 mg de precipitado de NATHIN 250/acetona y 50 mg de MCT, la mezcla resultante se amasó a 60ºC, se amasó adicionalmente (homogeneizó) con 15 ml de una solución acuosa que contenía 4,1 unidades de PLD-Y1 utilizando una microespátula y se dejó reaccionar a temperaturas comprendidas entre 15ºC y 65ºC con incrementos de 10ºC durante 18 horas. Los productos transfosfatidilados fueron analizados por cromatografía de capa fina en gel de sílice.
La figura 7 es un diagrama que muestra las relaciones de producción de PS para diferentes temperaturas de reacción y muestra que la relación de producción de PS a 45ºC fue del 43% y no cambió con una temperatura creciente cuando se utilizó el sustrato que contenía precipitado de NATHIN 250/acetona y MCT.
Cuando se utilizó únicamente el sustrato que contenía precipitado de NATHIN 250/acetona, la relación de producción de PS fue del 30,1% a 45ºC y del 38,7% a 65ºC, lo que indicaba que se obtiene un resultado más satisfactorio con una mayor temperatura de reacción. Sin embargo, se especula que el límite superior para la temperatura de reacción es de 65ºC, ya que la producción de PS disminuye y los fosfolípidos pueden resultar dañados o descomponerse para temperaturas de reacción superiores a 65ºC.
Ejemplo 9 PLD de coles de Bruselas
Un total de 490 mg de solución acuosa de serina 4,5 M (que contenía, si contenía, 9,3 mg de calcio) se mezclaron con 500 mg de NATHIN 250 a 55ºC. Tras enfriar a 45ºC, la mezcla de reacción se trató con 200 ml de una mezcla líquida de enzimas (0,6 unidades por mililitro) de PLD de col de Bruselas a 45ºC durante 18 horas. La PLD de col de Bruselas se preparó separadamente según un procedimiento convencional.
Como resultado, la reacción apenas avanzaba sin la adición de calcio, pero con la adición del mismo avanzó y produjo productos de reacción que contenían 6,2% de PS.
Ejemplo 10 Concentración de fosfatidilserinas; nº 1
Con 200 g de lecitina de soja que contenían 40% de PC se amasaron 190 g de una solución acuosa de serina que contenía 70 g de serina en 120 g de agua y 10 ml de una solución acuosa (24 mg/ml) de fosfolipasa D (PLD-Y1, disponible a través de Yakult Honsha Co., Ltd.). El artículo amasado se dejó reaccionar a 55ºC durante 5 horas, obteniéndose un producto de reacción que contenía 46,7% de PS en fosfolípidos.
Un total de 5,0 g del producto de reacción se extrajeron con 20 ml de alcohol etílico a 45ºC, y el residuo (precipitado) se extrajo adicionalmente con dos partes de 5 ml de alcohol etílico. Se mezclaron tres extractos, 5 ml de los cuales se trataron con 0,20 ml de solución acuosa de sal común 25% (cloruro de sodio), se calentaron a 45ºC, se dejaron en reposo hasta temperatura ambiente y, de este modo, se obtuvo un precipitado. Como resultado, el precipitado contenía 62,1% de PS sobre base de materia sólida seca, mientras que el sobrenadante contenía 3,3% de PS, lo que indicaba que la PS se concentró eficientemente en el precipitado.
Ejemplo 11 Concentración de fosfatidilserinas; nº 2
Un total de 50 mg de acetato de sodio en polvo se añadieron a 5 ml de la mezcla de los extractos obtenidos en el ejemplo 10, la mezcla se calentó a 45ºC, se dejó reposar hasta temperatura ambiente y de este modo se obtuvo un precipitado. Como resultado, el precipitado contenía 61,8% de PS sobre base de materia sólida seca, mientras que el sobrenadante contenía 3,5% de PS, lo que indicaba que la PS se concentró eficientemente en el precipitado como en la utilización de la solución acuosa de sal común.
Ejemplo 12 Concentración de fosfatidilserinas; nº 3
Se añadió solución acuosa de sal común al 25% a la mezcla de los extractos obtenidos en el ejemplo 10, y de este modo se obtuvieron PS insolubilizadas. Se determinaron las cantidades de PS en los fosfolípidos precipitados y el precipitado recuperado. La tabla 6 muestra la relación entre la cantidad de sal común, la relación de recuperación de PS en el precipitado y el contenido de PS en los fosfolípidos.
Tal como se muestra en la tabla 6, la PS se concentró en una fracción precipitada en cualquier condición y, entre los distintos casos, el contenido de PS en los fosfolípidos precipitados fue de 55% o mayor para cantidades de sal común de 10 mmol o menos por gramo de fosfolípidos en la mezcla de extractos, lo que indicaba que la PS se concentró eficientemente en el precipitado. La relación de recuperación de PS en el precipitado fue del 60% o menor, y el 40% o más del mismo permanece en el sobrenadante para cantidades de sal común de 0,05 mmoles o menores. Estos resultados muestran que la PS se puede concentrar en un precipitado para cualquier cantidad de sal común, pero se concentra suficientemente de forma práctica para cantidades de sal común comprendidas entre 0,15 y 10 mmoles por gramo de fosfolípidos disueltos en un alcohol.
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TABLA 6 Relación entre cantidad de sal común y relación de recuperación de PS/contenidos de PS en fosfolípidos
6

Claims (11)

1. Procedimiento para la producción de un fosfolípido por transfosfatidilación, que comprende las etapas que consisten en:
-
mezclar un fosfolípido de materia prima, un aceptor que contiene hidroxilo, fosfolipasa D y agua en ausencia de un disolvente orgánico, para obtener una mezcla, siendo dicho aceptor que contiene hidroxilo una molécula que acepta un grupo fosfatidilo de dicho fosfolípido de materia prima en presencia de fosfolipasa D;
-
homogeneizar dicha mezcla en ausencia de un disolvente orgánico mediante la aplicación de una fuerza física para presentar una estructura cristalina líquida liotrópica laminar; y
-
someter dicha mezcla homogeneizada a una reacción de transfosfatidilación a una temperatura comprendida dentro del intervalo de 15ºC a 65ºC.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, en el que dicha mezcla homogeneizada presenta sustancialmente una estructura cristalina líquida laminar sin separación de fases.
3. Procedimiento según la reivindicación 1 ó 2, en el que la relación de agua a fosfolípido de materia prima en dicha mezcla homogeneizada está comprendida en el intervalo de 10% en peso a 100% en peso.
4. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en el que el contenido de dicho aceptor que contiene hidroxilo se ajusta dentro de un intervalo de 0,3 moles a 10 moles por 1 mol de fosfolípido de materia prima en dicha homogeneización.
5. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, en el que dicho aceptor que contiene hidroxilo es por lo menos uno seleccionado de entre el grupo constituido por serina, glicerol, ácido L-ascórbico, glucosa, y colina.
6. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, en el que la serina se utiliza como dicho aceptor que contiene hidroxilo con el fin de obtener fosfatidilserina.
7. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en el que durante dicha homogeneización se añade un aceite y/o grasa comestibles.
8. Procedimiento según la reivindicación 6, que comprende además las etapas que consisten en:
-
disolver el fosfolípido resultante que contiene fosfatidilserina en un alcohol con el fin de obtener una solución; e
-
insolubilizar la fosfatidilserina añadiendo una sal metálica a dicha solución y separando la fosfatidilserina insolubilizada.
9. Procedimiento según la reivindicación 8, en el que dicha sal metálica es por lo menos una seleccionada de entre el grupo constituido por sales de litio, sales de potasio, y sales de sodio.
10. Procedimiento según la reivindicación 8 ó 9, en el que la sal metálica es cloruro de litio, cloruro de potasio o cloruro de sodio.
11. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 8 a 10, en el que se utiliza alcohol etílico como alcohol.
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Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2004107875A1 (ja) * 2003-06-06 2004-12-16 Nagase Chemtex Corporation リン脂質含有乳化性組成物
DE102004002053A1 (de) * 2004-01-15 2005-08-04 Bioghurt Biogarde Gmbh & Co. Kg Verfahren zur Herstellung von Phosphatidylserin und dessen Reinigung durch Extraktion
US20050158835A1 (en) * 2004-01-21 2005-07-21 Su Chen Preparation of highly polyunsaturated fatty acid-containing phosphatidylserine and phosphatidic acid
ITPD20050164A1 (it) 2005-05-30 2006-11-30 Fidia Farmaceutici Processo per la preparazione e l'isolamento di fosfatidi
KR101122388B1 (ko) * 2009-05-23 2012-03-23 주식회사 고센바이오텍 배추 포스포리파아제 d에 의한 난황 인지질로부터 포스파티딜세린의 생합성 방법
KR101055094B1 (ko) * 2009-05-23 2011-08-08 주식회사 고센바이오텍 양배추 포스포리파아제 d에 의한 난황 인지질로부터 포스파티딜세린의 생합성 방법
CN103555783B (zh) * 2013-10-24 2015-08-12 陕西源邦生物技术有限公司 一种制备磷脂酰丝氨酸的方法
CN104327114A (zh) * 2014-11-06 2015-02-04 江南大学 一种磷脂酰丝氨酸的制备方法
CN109628517A (zh) * 2018-12-27 2019-04-16 南通励成生物工程有限公司 一种超声波辅助酶解制备磷脂酰丝氨酸的方法
CN111534375B (zh) * 2020-05-26 2022-02-08 内蒙古铂贝曼科技有限公司 一种含水磷脂弹性体的制备方法
WO2022227248A1 (zh) * 2021-04-27 2022-11-03 内蒙古铂贝曼科技有限公司 一种活性磷脂层状液晶及其制备工艺与应用

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0716426B2 (ja) * 1986-08-01 1995-03-01 日本油脂株式会社 酵素によるリン脂質の製造方法
JP2657274B2 (ja) 1987-04-21 1997-09-24 株式会社ヤクルト本社 リン脂質の製造法
JP2942302B2 (ja) * 1990-04-10 1999-08-30 株式会社ヤクルト本社 ホスファチジルアスコルベート、その製造方法、乳化剤、過酸化脂質抑制剤及び化粧料
US5733892A (en) * 1990-07-24 1998-03-31 Seikagaku Corporation Metastasis inhibitor composition comprising a phospholipid-linked glycosaminoglycan and method for inhibiting metastasis employing the same
JP2981294B2 (ja) * 1991-02-22 1999-11-22 花王株式会社 ホスファチジン酸の製造方法
JP3053537B2 (ja) * 1994-11-08 2000-06-19 株式会社ヤクルト本社 脳機能改善剤
JP3791951B2 (ja) * 1995-11-08 2006-06-28 株式会社ヤクルト本社 多価不飽和脂肪酸含有ホスファチジルセリンを含む油脂組成物の製造方法
IT1311929B1 (it) 1999-04-28 2002-03-20 Chemi Spa Procedimento per la preparazione di fosfatidilserine.
JP3291289B2 (ja) * 2000-01-19 2002-06-10 サンユレック株式会社 電子部品の製造方法
DE60017563T2 (de) * 1999-06-15 2005-12-29 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Enzymatische herstellung von phospholipiden in wässrigen medien

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Publication number Publication date
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JP2002051794A (ja) 2002-02-19
CA2417597A1 (en) 2003-01-28
IL154218A (en) 2008-07-08
DE60139129D1 (de) 2009-08-13
BR0113132A (pt) 2003-07-15

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