ES2298538T3 - Gen del factor de crecimiento hepatocitario hibrido que tiene una eficacia de expresion elevada de dos heterotipos del factor de crecimiento hepatocitario. - Google Patents

Gen del factor de crecimiento hepatocitario hibrido que tiene una eficacia de expresion elevada de dos heterotipos del factor de crecimiento hepatocitario. Download PDF

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ES2298538T3 ES03744561T ES03744561T ES2298538T3 ES 2298538 T3 ES2298538 T3 ES 2298538T3 ES 03744561 T ES03744561 T ES 03744561T ES 03744561 T ES03744561 T ES 03744561T ES 2298538 T3 ES2298538 T3 ES 2298538T3
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Abstract

Gen del Factor de Crecimiento Hepatocitario (HGF) híbrido que comprende los exones 1-18 de HGF, o formas degeneradas de los mismos que no alteran la secuencia de aminoácidos codificada, y que comprende además un intrón inherente entre los exones 4 y 5, donde el gen de HGF híbrido comprende una secuencia de nucleótidos idéntica en no menos de un 80% con la SEC ID No: 2.

Description

Gen del factor de crecimiento hepatocitario híbrido que tiene una eficacia de expresión elevada de dos heterotipos del factor de crecimiento hepatocitario.
Campo de la invención
La presente invención se refiere a un gen del Factor de Crecimiento Hepatocitario (HGF) híbrido de alta eficacia que expresa simultáneamente dos heterotipos de HGF.
Antecedentes de la invención
La presente invención se refiere a un gen de HGF híbrido preparado mediante la inserción de un intrón inherente o foráneo entre los exones 4 y 5 en ADNc de HGF, que tiene una eficacia de expresión superior que el ADNc de HGF y expresa simultáneamente dos heterotipos de HGF y dHGF (variante eliminada de HGF).
HGF es una glicoproteína de unión a heparina denominado factor de dispersión. Un gen que codifica HGF se localiza en el cromosoma 721.1 y comprende 18 exones y 17 intrones, que tiene la secuencia de nucleótidos de SEC ID No: 1 (Seki T et al., Gene 102:213-219, 1991). Se transcribe un transcrito de aproximadamente 6 kb desde el gen de HGF y, a continuación, a partir del mismo se sintetiza un polipéptido precursor de HGF que consistía en 728 aminoácidos. Simultáneamente, también se sintetiza un polipéptido precursor de dHGF que consistía en 723 aminoácidos mediante "splicing" (corte y empalme) alternativo del gen de HGF. Los precursores biológicamente inactivos se pueden convertir en formas activas de heterodímero unidos por puentes disulfuro mediante proteasa en suero. En los heterodímeros, la cadena alfa que tiene un peso molecular elevado forma cuatro dominios kringle y un bucle de horquilla N-terminal como una región peptídica preactivada de plasminógeno. Los dominios kringle de una triple estructura en bucle unida por puentes disulfuro que consiste en aproximadamente 80 aminoácidos pueden jugar un papel importante en la interacción proteína-proteína. La cadena beta de peso molecular bajo forma un dominio de tipo serina proteasa. d-HGF que consiste en 723 aminoácidos es un polipéptido con una deleción de cinco aminoácidos en el primer dominio kringle de la cadena alfa, es decir, F, L, P, S y S.
Recientemente se ha descrito que tanto HGF como dHGF tienen varias funciones biológicas, por ejemplo, promover el crecimiento y la morfogénesis de células epiteliales, melanocitos y células endoteliales. Sin embargo, son diferentes en términos de propiedades inmunológicas o biológicas.
Por ejemplo, HGF muestra aproximadamente 20 veces, 10 veces y 2 veces de mayor actividad que dHGF en la promoción de la síntesis de ADN en células endoteliales venosas de cordón umbilical humano, células musculares lisas arteriales y NSF-60 (células de mieloblasto murino), respectivamente. dHGF muestra aproximadamente 3 veces y 2 veces de mayor actividad que HGF en la promoción de la síntesis de ADN de LLC-PK1 (células endoteliales de riñón de cerdo) y OK (células epiteliales de riñón de zarigüeya americana) y células intersticiales de ratón, respectivamente. HGF tiene 70 veces más solubilidad en PBS que dHGF. Varios anticuerpos monoclonales anti-dHGF reconocen sólo dHGF, pero no HGF o una forma reducida de dHGF, lo que implica que las estructuras de HGF y dHGF son diferentes. Por consiguiente, la síntesis simultánea de HGF y dHGF in vivo sugiere que interaccionan biológicamente entre sí (Shima, N. et al., Biochemical and Biophysical Research Communications 200:808-815, 1994).
El HGF secretado de células derivadas de mesodermo tiene varias funciones biológicas, por ejemplo, 1) inducir células epiteliales en una estructura tubular; 2) estimular la vascularización de células endoteliales in vitro e in vivo; 3) regeneración de hígado y riñón, debido a si actividad anti-apoptosis; 4) organogénesis de riñón, ovario y testículos; 5) controlar la osteogénesis; 6) estimular el crecimiento y la diferenciación de células precursoras hematopoyéticas eritroides; y 7) crecimiento de axones de neuronas (Stella, M. C. y Comoglio, P.M. The Internacional Journal of Biochemistry & Cell Biology 31: 1357-1362, 1999). Basado en estas diversas funciones, se puede desarrollar un HGF o un gen que codifica HGF como agente terapéutico para tratar enfermedades isquémicas o del hígado. En realidad, in vivo, el HGF puede existir como HGF o dHGF y, por lo tanto, la coexpresión de HGF y dHGF es importante para maximizar el efecto terapéutico. Por consiguiente, los presentes inventores han intentado desarrollar un gen de HGF híbrido que puede expresar simultáneamente HGF y dHGF con una eficacia elevada para terapia génica.
Descripción resumida de la invención
Por consiguiente, la presente invención se refiere a un gen de HGF híbrido que expresa simultáneamente dos heterotipos de HGF tal y como se establece en las reivindicaciones, y más particularmente a un gen de HGF híbrido que tiene un intrón inherente o foráneo que se inserta entre los exones 4 y 5 de ADNc de HGF.
La presente invención también proporciona vectores que comprende el gen de HGF híbrido y células huésped transformadas con el vector anterior.
La presente invención también proporciona una composición farmacéutica para tratar o prevenir enfermedades isquémicas o de hígado, que comprende el gen de HGF híbrido.
Breve descripción de los dibujos
Los objetos anteriores y otros objetos y características de la presente invención serán evidentes a partir de la descripción de la presente invención, cuando se toma en conjunto con los dibujos que se acompañan que muestran respectivamente:
Figura 1: diagrama esquemático de prototipo de HGF-X que ilustra las posiciones de los fragmentos de gen,
Figura 2: proceso para clonar fragmentos de gen a partir de ADN genómico de HepG2,
Figura 3: proceso para clonar fragmentos de gen a partir de ADNc de placenta humana,
Figuras 4A y 4B: procesos para preparar vectores de expresión pCK-HGF-X,
Figura 5: proceso para preparar vectores de expresión pCK-cHGF y pCK-dHGF,
Figura 6: proceso para preparar vectores de expresión de pCP-familia HGF-X,
Figura 7: proceso para preparar vectores de expresión pCP-cHGF y pCP-dHGF,
Figura 8: niveles de expresión del gen de pCP-cHGF, pCP-dHGF y pCP-HGF-X.
Figura 9: patrones de expresión del gen de pCP-cHGF, pCP-dHGF y pCP-HGF-X observados mediante electroforesis en un gel de poliacrilamida al 12%,
Figura 10: niveles de expresión del gen de pCP-cHGF, pCP-dHGF y pCP-HGF-X7, in vivo,
Figura 11: angiogénesis cerebral de dos grupos de conejos que se sometieron a la administración de pCP y pCP-HGF-X7, respectivamente.
Descripción detallada de la invención
El gen del Factor de Crecimiento Hepatocitario (HGF) híbrido de la presente invención comprende ADNc correspondiente a los exones 1 a 18, y un intrón inherente o foráneo insertado entre los exones 4 y 5 del ADNc. El intrón comprende un fragmento del intrón inherente o una secuencia recombinante.
Una realización del gen del HGF híbrido de la presente invención que comprende el intrón inherente tiene 7112 pb de longitud y tiene la secuencia de nucleótidos de SEC ID No: 2. El gen de HGF híbrido expresa simultáneamente tanto HGF como dHGF, y tiene una eficacia de expresión más elevada que el ADNc de HGF.
La degeneración de codones permite que el gen de HGF híbrido de la presente invención se modifique o cambie en la región codificante y/o no codificante sin alterar la secuencia de aminoácidos de la proteína y la expresión del gen. Por consiguiente, los polinucleótidos que son sustancialmente idénticos al gen de HGF híbrido de SEC ID No: 2, y los fragmentos de los mismos caen dentro del alcance de la presente invención. "Sustancialmente idénticos" significa que la homología en la secuencia no es inferior al 80%, preferiblemente no es inferior al 90% y más preferiblemente no inferior al 95%.
Un gen de HGF híbrido puede comprende un fragmento de intrón inherente que tiene opcionalmente una pequeña secuencia recombinante insertada en el mismo entre los exones 4 y 5 de ADNc de HGF. En el presente documento, dicho gen de HGF híbrido que comprende un fragmento de intrón inherente se designa como "HGF-X". Se prefieren HGFX-6, HGF-X7 y HGF-X8 que tienen la secuencia de nucleótidos de las SEC ID Nos: 19 a 21,
respectivamente.
El gen de HGF híbrido de la presente invención se sintetiza e inserta en un vector de expresión, según los procedimientos de diseño genético conocidos. A continuación, el vector se puede introducir en células huésped adecuadas, tales como E. coli y levadura. Por ejemplo, Top 10F' de Escherichia coli se puede transfectar con el gen de HGF-X7 de la presente invención. El Top 10F'pCK-HGFX7 de Escherichia coli y Top 10F'pCP-HGFX7 de Escherichia coli obtenidos a continuación se depositaron con los números de acceso KCCM-10361 y KCCM-10362, respectivamente, el 12 de marzo del 2002.
Mediante la utilización de células transformadas, el gen de la presente invención y la proteína codificada se pueden producir de este modo a gran escala.
El vector de la presente invención puede comprender selectivamente una secuencia o secuencias para regular la expresión génica, tal como un promotor o un terminador, una secuencia de autorreplicación y una señal secretora, dependiendo de las células huésped.
\newpage
Además, la presente invención comprende una composición farmacéutica para tratar o prevenir enfermedades isquémicas y del hígado, que comprende el gen de HGF híbrido o el vector que comprende el gen como principio activo. Preferiblemente, la composición se formula para inyección.
La composición de la presente invención puede comprender además portadores farmacéuticamente aceptables. Se pueden utilizar cualquiera de los procedimientos convencionales del sector farmacéutico para prepara formulaciones orales, tales como comprimidos, cápsulas, pastillas, gránulos, suspensiones y soluciones; formulaciones de inyección, tales como soluciones, suspensiones o polvos secos que se pueden mezclar con agua destilada antes de la inyección; formulaciones aplicables de manera local, tales como ungüentos, cremas y lociones; y otras formulaciones.
Los portadores utilizados generalmente en el sector farmacéutico se pueden utilizar en la composición de la presente invención. Por ejemplo, las formulaciones administradas oralmente pueden incluir aglutinantes, emulsionantes, agentes desintegrantes, excipientes, agentes solubilizantes, agentes de dispersión, agentes estabilizantes, agentes de suspensión, agentes de coloración o especias. Las formulaciones de inyección pueden comprender conservantes, agentes contra el dolor agudo ("unagonizing agents"), agentes solubilizantes o agentes estabilizantes. La preparación para la administración local puede contener bases, excipientes, lubricantes o conservantes. Cualquiera de las formulaciones adecuadas conocidas en la técnica (Remington's Pharmaceutical Science [la nueva edición], Mack Publishing Company, Eaton, PA) se pueden utilizar en la presente invención.
La composición de la invención se puede administrar clínicamente como varias formulaciones orales y parenterales. Se puede preparar una formulación adecuada utilizando excipientes tales como aditivos, potenciadotes, aglutinantes, agentes humectantes, agentes disgregantes o tensoactivos o diluyentes. Entre las formulaciones sólidas para la administración oral se incluyen pastillas, comprimidos, polvos sueltos, gránulos y cápsulas. Las formulaciones sólidas se pueden preparar mediante el mezclado de uno o más excipientes, por ejemplo, almidón, carbonato cálcico, sacarosa, lactosa, y gelatina con derivados de dibencilbutillactona lignano. Además, se pueden incluir en la presente formulación lubricantes, tales como estearato magnésico y talco. Las formulaciones líquidas para la administración oral incluyen suspensiones, soluciones, emulsiones y jarabes. Las formulaciones que contienen agentes humectantes, edulcorantes, aromatizantes y conservantes, además de diluyentes simples generales, tales como agua y parafina líquida. Las formulaciones para la administración parenteral incluyen una solución acuosa esterilizada, una suspensión, una emulsión, un tratamiento alternativo liofilizado y supositorios. Los excipientes insolubles en agua y los agentes en suspensión comprenden grasa vegetales, tales como propilenglicol, polietilenglicol y aceite de oliva y ésteres inyectables, tales como oleato de etilo. Como bases de supositorios se pueden utilizar Witepsol®, Macrogol®, Tween® 61, grasas de cacao, laurin grasas y glicerogelatinas.
La composición de la presente invención se puede administrar oralmente o a través de rutas parenterales, tales como intravenosa, intramuscular, subcutánea, intraabdominal, esternal e inyección arterial o infusión, o tópicamente a través de la administración rectal, intranasal, por inhalación o intraocular.
Debería entenderse que la dosis diaria habitual de la composición de la presente invención debe determinarse en función de diversos factores pertinentes incluyendo las condiciones a tratar, la ruta de administración escogida, la edad, el sexo, el peso corporal del paciente individual, y la gravedad de los síntomas del paciente, y se puede administrar en una dosis única o en dosis divididas. Por lo tanto, la dosis diaria no debería interpretarse en ningún caso como una limitación para el alcance de la presente invención.
Los siguientes Ejemplos se proporcionan únicamente a modo de ilustración y no pretenden limitar el alcance de la presente invención.
Ejemplo 1 Preparación de construcciones de genes híbridos que codifican HGF humano (1) Clonación de fragmentos de gen de HGF obtenidos a partir de ADN genómico
Se suspendieron células HepG2 humanas (ATCC No. de Acceso: HB-8065) en tampón TES (10 mM de Tris-HCl; 1 mM de EDTa, SDs al 0,7%) y se trataron con 400 \mug/ml de proteinasa K a 50ºC durante 1 hora. Posteriormente, el ADN genómico se extrajo de la suspensión celular mediante extracción fenol/cloroformo y precipitación con etanol según el procedimiento convencional en la técnica.
En la amplificación por PCR, el ADN genómico extraído se utilizó como ADN plantilla. Como parejas de cebadores, los nucleótidos sintéticos de SEC ID Nos. 3 y 4 se utilizaron para obtener fragmentos de ADN que contenían: fragmento del gen de HGF 2 (HGF-F2), SEC ID Nos: 3 y 5; HGF-F3, SEC ID Nos: 6 y 7; HGF-F5, SEC ID Nos. 8 y 7; HGF-F7, SEC ID Nos. 9 y 7; HGF-F8, SEC ID Nos. 10 y 7; HGF-F6, respectivamente (Figura 1). La mezcla de la amplificación por PCR se preparó mezclando 1 \mul de ADN plantilla, 1 \mul de cada cebador (10 pmol/\mul), 10 \mul de dNTP (10 mM), 3,5 unidades de enzima Expand High Fidelity (Gibco BRL, Estados Unidos) y 10 \mul de solución tampón enzimática y se ajustó hasta un volumen final de 100 \mul con agua destilada. Se llevaron a cabo 30 ciclos de la amplificación por PCR, cada ciclo consistía en 1 minuto a 94ºC, 1 minuto a 55ºC y 30 s a 72ºC. Los cebadores utilizados en la presente invención y los fragmentos de genes amplificados obtenidos a partir de los mismos se muestran en la Tabla 1.
TABLA 1
1
El HGF-F2 amplificado comprendía la secuencia que variaba desde 392 hasta 2247 del prototipo de ADNc de HGF humano (HGF-X1; compuesto de exones 1 a 4-intrón 4-exones 5-18) de la SEC Id No: 2; HGF-F3, la secuencia que variaba desde 392 hasta 727; HGF-F5, la secuencia que variaba desde 2229 hasta 5471; HGF-F6, la secuencia que variaba desde 5117 hasta 5471; HGF-F7, la secuencia que variaba desde 3167 hasta 5471; y HGF-F8, la secuencia que variaba desde 4167 hasta 5471.
Los fragmentos del gen de HGF amplificados se insertaron cada uno en un sitio de clonación múltiple del vector pGEM-T Easy (Promega, WI, Estados Unidos) para obtener pGEM-T easy-HGF-F2, pGEM-T easy-HGF-F3, pGEM-T easy-HGF-F5, pGEM-T easy-HGF-F6, pGEM-T easy-HGF-F7 y pGEM-T easy-HGF-F8, respectivamente (figura 2). Las secuencias de nucleótidos de los fragmentos del gen de HGF amplificados se confirmaron mediante el análisis de secuencia.
(2) Clonación de fragmentos del gen de HGF obtenidos a partir de ADNc
En la amplificación por PCR, se utilizó el ADNc de placenta humana (Clontech, CA, Estados Unidos) como ADN plantilla en las mismas condiciones que las descritas para el ejemplo 1. Como parejas de cebadores, se utilizaron los oligonucleótidos sintéticos de SEC ID Nos. 11 y 12, y las SEC ID Nos. 13 y 14 para obtener fragmentos de ADN que contenían HGF-F1 y HGF-F4, respectivamente. Además, los fragmentos de ADN que contenían ADNcs del gen de HGF (cHGF) y el gen de HGF eliminado (dHGF) se amplificaron mediante PCR utilizando oligonucleótidos sintéticos de SEC ID Nos: 15 y 16 como pareja de cebadores, respectivamente. dHGF es un gen de HGF con una deleción de 5 secuencias de bases.
Los cebadores utilizados en la presente invención y los fragmentos de gen amplificados obtenidos de los mismos se muestran en la Tabla 2
TABLA 2
2
Los HGF-F1 y HGF-F4 amplificados comprendían las secuencias de nucleótidos que variaban desde 1 a 402 y desde 6533 hasta 7113 de la SEC ID No. 2 del prototipo de ADNc de HGF humano, respectivamente. El ADNc del gen de HGF comprendía la secuencia de nucleótidos que variaba desde 1 hasta 2184 de la SEC ID No. 1 del gen de HGF humano, y el ADNc del gen de dHGF tenía la misma secuencia que el ADNc del gen de HGF a excepción de la deleción de la secuencia que variaba desde 483 hasta 495.
Los fragmentos amplificados del gen de HGF se insertaron cada uno en el sitio de clonación múltiple del vector pGEM-T Easy (Promega, WI, Estados Unidos) para obtener pGEM-T easy-HGF-F1, pGEM-T easy-HGF-F4, pGEM-T easy-cHGF y pGEM-T easy-dHGF, respectivamente (figura 3). Las secuencias de nucleótidos de los fragmentos del gen de HGF, ADNc del gen HGF y ADNc del gen de dHGF se confirmaron mediante el análisis de secuencia.
(3) Preparación de construcciones de genes de HGF híbridos
Las construcciones de genes de HGF híbridos de ADN genómico y ADNc se prepararon mediante la combinación de los fragmentos del gen de HGF clonados en las etapas (1) y (2) tal como se indica a continuación (figuras 4A y 4B).
El plásmido pGEM-T-easy-HGF-F1 se trató con HindIII/BamHI para obtener HGF-F1. El plásmido pCK (ver la Publicación Internacional de PCT NO: WO/0040737) se trató con HindIII/BamHI, y HGF-F1 se insertó en el mismo para obtener pCK-F1. A continuación, los plásmidos pGEM-T-easy-HGF-F2 y pGEM-T-easy-HGF-F3 se trataron con MluI/BamHI para obtener HGF-F2 y HGF-F3, respectivamente. pCK-1 se trató con MluI/BamHI, y a continuación HGF-F2 y HGF-F3 se insertaron en el mismo para obtener pCK-F12M y pCKF13M. El sitio de restricción MluI de los vectores pCK-F12M y pCK-F13M se sustituyó por un sitio de restricción HgaI mediante la utilización de un kit de mutagénesis dirigida de sitio (Stratagene, CA, Estados Unidos) para obtener pCK-F12 y pCK-F13, respectivamente.
Además, el plásmido pGEM-T-easy-HGF-F4 se trató con BamHI/XbaI para obtener HGF-F4. pCK-F12 y pCK-F13 se trataron con BamHI/XbaI, y la HGF-F4 se insertó en los mismos para obtener pCK-F124 y pCK-F134, respectivamente. A continuación, los plásmidos pGEM-T-easy-HGF-F5, pGEM-T-easy-HGF-F6, pGEM-T-easy-HGF-F7 y pGEM-T-easy-HGFF8 se trataron con BamHI/XhoI para obtener HGF-F5, HGF-F6, HGF-F7 y HGF-F8, respectivamente. pCK-F124 y pCKF-134 se trataron con BamHI/XhoI, y a continuación HGF-F5, HGF-F6, HGF-F7 y HGF-F8 se insertaron en los mismos para obtener pCK-F1254 y pCK-F1264, pCK-F1274, pCK-F1284, pCK-F1354, pCK-F1364, pCK-F1374 y pCK-F1384, respectivamente.
A continuación, pGEM-T easy-cHGF se trató con XhoI para obtener un fragmento de ADNc de gen de HGF (HGF-XhoI) de aproximadamente 1100 pb. A continuación, HGF XhoI se insertó en pCK-F1254, pCK-F1264, pCK-F1274, pCK-F1284, pCK-F1354, pCK-F1364, pCK-F1374 y pCK-F1384 para obtener pCK-HGF-X1, pCK-HGF-X2, pCK-HGF-X3, pCK-HGF-X4, pCK-HGF-X5, pCK-HGF-X6, pCK-HGF-X7 y pCK-HGF-X8, respectivamente. Por otro lado, pGEM-T easy-cHGF y pGEM-T easy-dHGF se trataron con BamHI para obtener ADNc del gen de HGF y el ADNc del gen de dHGF. A continuación, se insertaron el ADNc del gen HGF y el ADNc del gen de dHGF en el sitio de restricción BamHI de pCK para obtener pCK-cHGF y pCK-dHGF, respectivamente (Figura 5).
(4) Preparación de un vector de expresión que contiene una construcción de genes de HGF híbridos
El plásmido pCDNA3.1 (Invitrogen, Estados Unidos) se digirió con NdeI, se trató con el fragmento Klenow fragmento para construir extremos romos, y a continuación se digirió con NheI para obtener un fragmento de ADN que contenía el promotor de citomegalovirus humano. Los plásmidos pCK-HGF-X1, pCK-HGF-X2, pCK-HGF-X3, pCK-HGF-X4, pCK-HGF-X5, pCK-HGF-X6, pCK-HGF-X7 y pCK-HGF-X8 se digirieron con SnaBI, se trataron con el fragmento Klenow para fabricar extremos romos y se digirieron con NheI, y a continuación el fragmento de ADN anterior que contenía el promotor de citomegalovirus humano se insertó en los mismos para obtener pCP-HGF-X1, pCP-HGF-X2, pCP-HGF-X3, pCP-HGF-X4, pCP-HGF-X5, pCP-HGF-X6, pCP-HGF-X7 y pCP-HGF-X8, respectivamente (Figura 6).
El plásmido pCDNA3.1 (Invitrogen, Estados Unidos) se digirió con NheI, se trató con el fragmento Klenow fragmento para construir extremos romos y se digirió con NdeI para obtener el fragmento de ADN que contenía el promotor de citomegalovirus humano. PCK-cHGF y pCK-dHGF se digirieron con MluI, se trataron con el fragmento Klenow fragmento para construir extremos romos y se digirieron con NdeI y a continuación, el fragmento de ADN anterior que contenía el promotor de citomegalovirus humano se insertó en los mismos para obtener pCP-cHGF y pCP-dHGF, respectivamente.
Ejemplo 2 Examen de la eficacia de la expresión de la construcción del gen de HGF híbrido y la coexpresión de HGF/dHGF
Se realizaron estudios para examinar si las construcciones de genes de HGF híbridos (HGF-X1 a HGF-X8) obtenidas en el Ejemplo 1 pueden expresar simultáneamente HGF y dHGF y si existe alguna diferencia en el nivel de expresión génica entre las construcciones de genes de HGF híbridos y el ADNc de HGF.
(1) Eficacia de la expresión génica
En primer lugar, se transfectaron 5 \mug de pCP-HGF-X2, pCP-HGF-X3, pCP-HGF-X6, pCP-HGF-X7 y pCP-HGF-X8 en 5 x 10^{6} células de células 293 (ATCC CRL 1573) junto con 0,5 \mug de ADN de DONAI-LacZ (TAKARA SHUZO, Japón) utilizando FuGENE6 (Gibco BRL, MD, Estados Unidos), según las instrucciones del fabricante. En este momento, se utilizaron controles 5 \mug de pCP-cHGF y pCP-dHGF, y se utilizó ADN de DONAI-LacZ para calibrar la eficacia de la infección. 3 horas después de la transfección, las células se realimentaron con medio nuevo y se cultivaron adicionalmente durante 48 horas. La solución de cultivo obtenida de esta manera se dividió en dos partes. Una parte de la solución de cultivo de células 293 se sometió a una extracción de ARN y la otra, a la medición de la actividad de LacZ. La actividad de LacZ se midió utilizando un kit de medición de la actividad (Stratagene, Ca, Estados Unidos) según las instrucciones del fabricante.
Con el fin de comparar los niveles de expresión de los genes, se midió la cantidad de HGF en el cultivo celular mediante un kit de ensayo inmunoabsorbente unido a enzima (ELISA, R&D System, MN, Estados Unidos). Después de calibrar la eficacia de la infección mediante la actividad de LacZ medida, el nivel de expresión del gen de HGF-X se halló que era de 20 a 150 veces más elevada que el ADNc de HGF y el ADNc de dHGF (figura 8). HGF-X7, en particular, mostró el nivel de expresión de genes más elevado.
(2) Coexpresión de HGF y dHGF
Con el fin de examinar la coexpresión de HGF y dHGF a partir de construcciones de genes de HGF híbridos, se extrajo el ARN celular total de las células 293 transfectadas utilizando el método de Trizol (Trizol; Gibco BRL, Estados Unidos) y se sometió a RT-PCR para obtener ADNc. A continuación, utilizando el ADNc como ADN plantilla, se llevó a cabo la amplificación por PCR utilizando oligonucleótidos sintéticos de SEC ID NOs: 17 y 18 como pareja de cebadores. La mezcla de la amplificación por PCR se preparó mezclando 1 \mul de ADN plantilla, 1 \mul de cada cebador (10 pmol/\mul), 10 \mul de dNTP (10 mM), 3,5 unidades de Taq polimerasa (TAKARA SHUZO, Japón) y 10 \mul solución de tampón enzimático y se ajustó hasta un volumen final de 100 \mul con agua destilada. Se realizaron 30 ciclos de amplificación por PCR, cada ciclo consistía en 1 min a 94ºC, 1 min a 55ºC, y 90 s a 72ºC.
Los productos de PCR amplificados correspondieron a las regiones limítrofes entre los exones 4 y 5 del gen de HGF; el ADNc del gen de HFG de 142 pb y el ADNc del gen de dHGF de 127 pb, respectivamente. Sin "splicing", se amplificó el producto de PCR de al menos 1 kb de longitud; y si tenía lugar "splicing" alternativo, el ADNc del gen de HGF de 142 pb y el ADNc del gen de dHGF de 127 pb se sintetizaron simultáneamente y se amplificaron. Los productos de PCR amplificados se diferenciaron mediante electroforesis en un gel de poliacrilamida al 12%.
Tal como se muestra en la figura 9, mientras que las bandas de 142 pb y 127 pb se detectaron en los carriles que cargaban ADNc del gen de HGF y ADNc del gen de dHGF, respectivamente, ambas bandas de 142 pb y 127 pb se detectaron en los carriles que cargaban HGF-X. Los resultados anteriores sugieren que HGF y dHGF se expresan simultáneamente a partir de las construcciones de genes de HGF-X híbridos de la presente invención.
Ejemplo 3 Comparación de los niveles de expresión de HGF-X7, ADNc del gen de HGF y el ADNc del gen de dHGF (in vivo)
Se inyectaron 100 \mug de cada uno de pCP-HGF-X7, pCP-cHGF y pCP-dHGF en el músculo tibial anterior de la pata trasera de ratones con una jeringa de insulina. Después de 5 días, los ratones se sacrificaron y los músculos alrededor del punto de inyección se extrajeron y se despedazaron en un tampón de extracción de proteínas (25 mM Tris-HCl (pH 7,4), 50 mM NaCl, desoxicolato de Na al 0,5%, NP-40 al 2%, SDS al 0,2%) para separara las proteínas totales. La cantidad de proteínas totales se midió con un kit de análisis de proteínas DC (Bio-Rad Laboratories, CA, Estados Unidos) y la cantidad de HGF expresado se determinó con un kit de ELISA (R&D System) según las instrucciones del fabricante.
Tal y como se puede observar a partir del resultado mostrado en la figura 10, la cantidad de HGF expresado a partir de HGF-X7 es 250 veces superior a la cantidad a partir de ADNc del gen de HGF o ADNc del gen de dHGF.
Junto con el resultado del experimento del Ejemplo 2 (in vivo), este resultado demuestra que la eficacia de la expresión del gen de HGF-X es muy superior a la del ADNc del gen de HGF o ADNc del gen de dHGF.
Ejemplo 4 Terapia génica que utiliza HGF-X7 en un modelo de pata trasera isquémica conejo
Con el fin de examinar si el gen de HGF-X7 es eficaz en el tratamiento de la enfermedad isquémica de patas traseras, se llevó a cabo terapia génica en un modelo de pata trasera isquémica de conejo tal y como se indica a continuación.
Se preparó un modelo de pata trasera isquémica de conejo, que es un modelo de animal estándar para la enfermedad isquémica de patas, mediante el método descrito por Takeshita et al., Journal of Clinical Investigation, 93: 662 (1994). El día antes de la operación (día 0), cada uno de los 30 conejos blancos de Nueva Zelanda (machos, de 3,8 a 4,2 kg) se les inyectó intramuscularmente 5 mg/kg de xilacina y, a continuación, se anestesiaron mediante una inyección intramuscular de 50 mg/kg de quetamina. Posteriormente, se hizo una incisión en la región femoral izquierda del conejo y todas las ramificaciones de la arteria femoral se separaron y se unieron. Se hizo una incisión en la región de la parte proximal al punto de ramificación de las arterias safena y poplítea para preparar el modelo. Después de la operación, se inyectaron intramuscularmente 15 mg/kg/día de cefazolina durante 5 días y 0,3 mg/día de morfina, durante 10 días. 10 días después de la operación (día 10), se llevó a cabo una angiografía para la pata trasera izquierda donde se indujo la isquemia, y el grado de arteriogénesis se registró como nivel basal. Los conejos se dividieron al azar en dos grupos y se inyectaron en cuatro sitios en el músculo femoral con 500 \mug de plásmido pCP-HGF-X7 (grupo experimental) o 500 \mug de plásmido pCP (control), respectivamente. 40 días después de la operación (día 40), se llevó a cabo otra angiografía para la pata trasera izquierda y se determinó y se comparó el grado de arteriogénesis a nivel de arteriola con el del día 10.
Tal y como se puede observar del resultado en la figura 11, el grado de angiogénesis fue significativamente superior en el grupo experimental administrado con pCP-HGF-X7 en comparación con el grupo de control administrado con pCP.
Este resultado demuestra que el gen de HGF-X7 se puede utilizar de manera eficaz en la terapia génica de una enfermedad isquémica.
Aunque la invención se ha descrito con respecto a las realizaciones específicas anteriores, debería entenderse que los expertos en la materia pueden realizar varias modificaciones y cambios en la invención que también están dentro del alcance de la presente invención tal y como se define en las reivindicaciones adjuntas.
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Referencias citadas en la descripción
Esta lista de referencias citadas por el solicitante se muestra únicamente para conveniencia del lector. No forma parte del documento de Patente Europea. Aunque se ha tenido una gran precaución a la hora de recopilar las referencias, no se pueden excluir errores u omisiones y la Oficina Europea de Patentes declina cualquier responsabilidad al respecto.
Documentos de patente citados en la descripción
\bullet WO 0040737 A [0034]
\bullet EP 03744561 A [0054]
\bullet KR 0300548 W [0054]
\bullet KR 1020020015074 [0054]
Documentos que no son patentes citados en la descripción
\bulletSHIMA, N. et al. Biochemical and Biophysical Research Communications, 1994, vol. 200, 808-815 [0005]
\bulletSTELLA, M. C.; COMOGLIO, P. M. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, 1999, vol. 31, 1357-1362 [0006]
\bulletRemington's Pharmaceutical Science [the new edition. Mack Publishing Company [0020]
\bulletTAKESHITA et al. Journal of Clinical Investigation, 1994, vol. 93, 662 [0049]
<110> VIROMED LIMITED
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<120> GEN DEL FACTOR DE CRECIMIENTO HEPATOCITARIO HÍBRIDO QUE TIENE UNA EFICACIA DE EXPRESIÓN ELEVADA Y EXPRESA DOS HETEROTIPOS DEL FACTOR DE CRECIMIENTO HEPATOCITARIO
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<130> PCA30320/VML
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<160> 21
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<170> KopatentIn 1.71
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<210> 1
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<211> 2187
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<212> ADN
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<213> Factor de crecimiento hepatocitario
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<400> 1
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3
4
5
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<210> 2
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<211> 7112
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<212> ADN
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<213> Factor de crecimiento hepatocitario híbrido
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<400> 2
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6
7
8
9
10
11
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gtaaaggacg cgtctacaag ggaacagtat ctat
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34
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actggatcct ctcggccata aacatct
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gaagcttagc accatgtggg tgaccaaact cctg
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34
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tggccgagag gatccagtat attaata
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cccctcgagg atttcgacag tagtttt
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27
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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gggatccctt cctttctacc tgtatttg
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<213> Secuencia artificial
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gggatcctgg gtaaacacat ttgaa
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25
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<212> ADN
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<220>
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gggatcctta tgtttcagac aacttcga
\hfill
28
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gaagcttgcc accatgtggg tgaccaaact cctg v
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gggatccaga acgcgtcctt taccgatgat gcag
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35
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<211> 36
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> cebador cHGF3
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ggatcctcta gattacttca gctatgactg tggtac
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36
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> cebador GHGF5'
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caaatgtcag ccctggagtt ccatga
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26
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<210> 18
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<211> 23
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> cebador GHGF3'
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<400> 18
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ctggattgct tgtgaaacag ggt
\hfill
23
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<210> 19
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<211> 4679
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> gen de HGF-X6
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<400> 19
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12
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14
15
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<210> 20
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<211> 3679
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> gen de HGF-X7
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<400> 20
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16
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18
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<210> 21
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<211> 2729
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> gen de HGF-X8
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20
21
22
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LISTADO DE SECUENCIAS
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<110> VIROMED CO., Ltd
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\vskip0.400000\baselineskip
<120> GEN DEL FACTOR DE CRECIMIENTO HEPATOCITARIO HÍBRIDO QUE TIENE UNA EFICACIA DE EXPRESIÓN ELEVADA DE DOS HETEROTIPOS DEL FACTOR DE CRECIMIENTO HEPATOCITARIO
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<130> SJFC/FP6253967
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<140> EP 03744561.6
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<141> 2003-03-20
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<150> PCT/KR03/00548
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<151> 2003-03-20
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<150> KR 10-2002-0015074
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<151> 2002-03-20
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<160> 21
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<170> KopatentIn 1.71
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<210> 1
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<211> 2187
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<223> Factor de Crecimiento Hepatocitario
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<400> 1
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23
24
25
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7112
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<221> fuente
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<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: factor de crecimiento hepatocitario híbrido"
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<400> 2
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26
27
28
29
30
31
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<221> fuente
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<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador gHGF3"
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<400> 3
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gtaaaggacg cgtctacaag ggaacagtat ctat
\hfill
34
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
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<211> 27
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<221> fuente
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<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador gHGF4"
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
actggatcct ctcggccata aacatct
\hfill
27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 34
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<221> fuente
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<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador gHGF10"
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<400> 5
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gaagcttagc accatgtggg tgaccaaact cctg
\hfill
34
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
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<211> 27
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador gHGF5"
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tggccgagag gatccagtat attaata
\hfill
27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 27
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<221> fuente
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<400> 7
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cccctcgagg atttcgacag tagtttt
\hfill
27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
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<211> 28
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<221> fuente
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<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador gHGF12"
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggatccctt cctttctacc tgtatttg
\hfill
28
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
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<211> 25
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<221> fuente
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<400> 9
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggatcctgg gtaaacacat ttgaa
\hfill
25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 28
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador gHGF6"
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<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggatcctta tgtttcagac aacttcga
\hfill
28
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador gHGF1"
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gaagcttgcc accatgtggg tgaccaaact cctg
\hfill
34
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador gHGF2"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggatccaga acgcgtcctt taccgatgat gcag
\hfill
34
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador gHGF8"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggatccctt ctcgagactt gaaagattat gaagc
\hfill
35
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador gHGF9"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gtctagagcg gccgctatga ctgtggtacc tt
\hfill
32
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador cHGF5"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ggatccacgc gtagcagcac catgtgggtg accaaa
\hfill
36
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador cHGF3"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ggatcctcta gattacttca gctatgactg tggtac
\hfill
36
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador GHGF5'"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
caaatgtcag ccctggagtt ccatga
\hfill
26
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: cebador GHGF3'"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ctggattgct tgtgaaacag ggt
\hfill
23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4679
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: gen de HGF-X6"
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
32
33
34
35
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 3679
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: gen de HGF-X7"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
36
37
38
39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 2729
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> fuente
\vskip0.400000\baselineskip
<223> /nota = "Descripción de la secuencia artificial: gen de HGF-X8"
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\vskip1.000000\baselineskip
40
41
42

Claims (17)

1. Gen del Factor de Crecimiento Hepatocitario (HGF) híbrido que comprende los exones 1-18 de HGF, o formas degeneradas de los mismos que no alteran la secuencia de aminoácidos codificada, y que comprende además un intrón inherente entre los exones 4 y 5, donde el gen de HGF híbrido comprende una secuencia de nucleótidos idéntica en no menos de un 80% con la SEC ID No: 2.
2. Gen del HGF híbrido según la reivindicación 1, en el que dicho intrón es un fragmento de un intrón inherente.
3. Gen del HGF híbrido según la reivindicación 1, en el que dicha secuencia de nucleótidos es idéntica en no menos de un 90% con la SEC ID No: 2.
4. Gen del HGF híbrido según la reivindicación 1, en el que dicha secuencia de nucleótidos es idéntica en no menos de un 95% con la SEC ID No: 2.
5. Gen del HGF híbrido según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el que dicho gen del HGF híbrido comprende la SEC ID No: 2.
6. Gen del HGF híbrido según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el que dicho gen del HGF híbrido comprende la SEC ID No: 19, o la SEC ID No: 20 o la SEC ID No: 21.
7. Vector que comprende el gen del HGF híbrido según cualquiera de las reivindicaciones anteriores.
8. Vector según la reivindicación 7, en el que dicho vector comprende además una o más secuencias para regular la expresión génica, una secuencia de autorreplicación o una señal secretora.
9. Célula huésped que contiene el vector según la reivindicación 7 o la reivindicación 8.
10. Célula huésped según la reivindicación 9, en la que dicha célula es una célula de levadura o una célula de E. coli.
11. Célula huésped según la reivindicación 10, en la que dicha célula es una célula Top 10F' pCK-HGF-X7 de E. coli (Depósito No. KCCM-10361) o Top 10F' pGP-HGF-X7 de E. coli (Depósito No. KCCM-10362).
12. Composición farmacéutica que comprende el gen del HGF híbrido según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, y un portador.
13. Gen del HGF híbrido según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 para su uso en terapia.
14. Utilización de un gen del HGF híbrido según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 para la preparación de un medicamento para prevenir o tratar enfermedades isquémicas o del hígado.
15. Utilización según la reivindicación 14, en la que dicho gen del HGF híbrido está en un vector.
16. Utilización según la reivindicación 14, en la que el gen del HGF híbrido se formula en una composición farmacéutica adecuada para la inyección directa.
17. Procedimiento para producir una proteína de HGF híbrido que comprende el cultivo de la célula huésped según cualquiera de las reivindicaciones 9 a 11 en un medio adecuado y la recogida de la proteína de HGF híbrido.
ES03744561T 2002-03-20 2003-03-20 Gen del factor de crecimiento hepatocitario hibrido que tiene una eficacia de expresion elevada de dos heterotipos del factor de crecimiento hepatocitario. Expired - Lifetime ES2298538T3 (es)

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