ES2204502T3 - Receptor soluble br43x2 y metodos de utilizacion en terapia. - Google Patents
Receptor soluble br43x2 y metodos de utilizacion en terapia.Info
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Abstract
Uso de un compuesto seleccionado del grupo que consiste en: a) un polipéptido que comprende el dominio extracelular de BR43x2 (ID. SEC. nº 2); b) un polipéptido soluble que comprende el dominio extracelular de TACI; c) un polipéptido que comprende el dominio extracelular de BCMA; d) un polipéptido que comprende la secuencia de ID. SEC. nº 10; e) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 2; f) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 4; g) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 6; h) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 8; i) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 10; k) un polipéptido de ID. SEC. nº 4; l) los restos de aminoácido 1-166 de la ID. SEC. nº 6; m) los restos de aminoácido 8-37 de la ID.SEC. nº 8; y n) los restos de aminoácido 1-48 de la ID. SEC. nº 8, en la fabricación de un medicamento para inhibir la actividad de ztnf4 en un mamífero.
Description
Receptor soluble BR43X2 y métodos de utilización
en terapia.
Las interacciones celulares que tienen lugar
durante una respuesta inmune son reguladas por miembros de diversas
familias de receptores de la superficie celular, incluyendo la
familia de receptores del factor de necrosis tumoral (TNFR; del
inglés, tumor necrosis factor receptor).
La familia de TNFR consiste en un número de receptores
glicoproteínicos integrales de membrana, muchos de los cuales, junto
con sus respectivos ligandos, regulan interacciones entre
diferentes linajes celulares hematopoyéticos (Smith et al., The
TNF Receptor Superfamily of Cellular and Viral Proteins:
Activation, Costimulation and Death, 76:
959-62,1994,Cosman, Stem Cells 12
440-55,1994)
Uno de tales receptores es TACI (del inglés,
transmembrane activator and
CAML-interactor), activador de transmembrana e
interaccionador con CAML (von Bülow y Bram, Science
228:138-41,1997 y Publicación WIPO, WO
98/39361). TACI es un receptor unido a membrana que tiene un
dominio extracelular que contiene dos seudorrepeticiones ricas en
cisteína, un dominio transmembranal y un dominio citoplásmico que
interacciona con CAML (del inglés, calcium-modulator
and cyclophilin ligand), modulador de calcio y ligando
de ciclofilina, una proteína integral de membrana situada en
vesículas intracelulares que es un coinductor de la activación del
factor nuclear de células T activadas (NF-AT; del
inglés, nuclear factor of activated T
cells) cuando se sobreexpresa en células Jurkat. TACI se asocia con
células B y un subgrupo de células T. von Bülow y Bram (ibídem)
comunican que no se conoce el ligando de TACI.
Se halló que los polipéptidos del presente
invento, una isoforma de TACI que sólo tiene una seudorrepetición
rica en cisteína (BR43x2), TACI y una proteína de células B
relacionada, BCMA (Gras et al., Int. Immunol. 17:
1.093-106, 1.995), se unen al ligando de TNF, ztnf4,
ahora conocido como neutroquina \alpha (Publicación WIPO, WO
98/18921), BLyS (Moore et al., Science 285:
260-3, 1.999), BAFF (Schneider et al., J. Exp.
Med. 189: 1.747-56, 1.999),
TALL-1 (Shu et al., J. Leukoc. Biol.
65: 680-3, 1.999) o THANK (Mukhopadhyay et
al., J. Biol. Chem. 274: 15.978-81,
1.999). Como tales, BR43x2, TACI y BCMA serían útiles para regular
la actividad de ztnf4, en particular, la activación de células
B.
Con este fin, el presente invento proporciona
agentes proteicos terapéuticos para modular la actividad de ztnf4 u
otros ligandos de BR43x2, TACI o BCMA, composiciones y métodos
relacionados, así como otros usos que deberían ser evidentes para
los expertos en la técnica a partir de las presentes enseñanzas.
En consecuencia, en un primer aspecto, el invento
proporciona el uso de un compuesto en la fabricación de un
medicamento para inhibir la actividad de ztnf4 en un mamífero,
compuesto que es seleccionado del grupo que consiste en: a) un
polipéptido que comprende el dominio extracelular de BR43x2, b) un
polipéptido soluble que comprende el dominio extracelular de TACI,
c) un polipéptido que comprende el dominio extracelular de BCMA, d)
un polipéptido que comprende la secuencia de ID. SEC. nº 10, e) un
anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se une específicamente a
un polipéptido de ID. SEC. nº 2, f) un anticuerpo o fragmento de
anticuerpo que se une específicamente a un polipéptido de ID. SEC.
nº 4, g) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se une
específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 6, h) un anticuerpo
o fragmento de anticuerpo que se une específicamente a un
polipéptido de ID. SEC. nº 8, i) un anticuerpo o fragmento de
anticuerpo que se une específicamente a un polipéptido de ID. SEC.
nº 10, k) un polipéptido de ID. SEC. nº 4, l) los restos de
aminoácido 1-166 de la ID. SEC. nº 6, y m) los
restos de aminoácido 1-150 de la ID. SEC. nº 8.
En una realización, el compuesto es una proteína
de fusión que consiste en una primera porción y una segunda porción
unidas por un enlace peptídico, comprendiendo dicha primera porción
un polipéptido seleccionado del grupo que consiste en: a) un
polipéptido que comprende la secuencia de ID. SEC. nº 8, b) un
polipéptido que comprende los restos de aminoácido
25-58 de la ID. SEC. nº 2, c) un polipéptido que
comprende los restos de aminoácido 34-66 de la ID.
SEC. nº 6, d) un polipéptido que comprende los restos de aminoácido
71-104 de la ID. SEC. nº 6, e) un polipéptido que
comprende los restos de aminoácido 25-104 de la ID.
SEC. nº 6, f) un polipéptido que comprende los restos de aminoácido
8-37 de la ID. SEC. nº 8, g) un polipéptido que
comprende los restos de aminoácido 41-88 de la ID.
SEC. nº 8, y h) un polipéptido que comprende los restos de
aminoácido 8-88 de la ID. SEC. nº 8; y comprendiendo
dicha segunda porción otro polipéptido. En otra realización, la
primera porción comprende además un polipéptido seleccionado del
grupo que consiste en: a) los restos de aminoácido
59-120 de la ID. SEC. nº 2, b) los restos de
aminoácido 105-166 de la ID. SEC. nº 6, y c) los
restos de aminoácido 89-150 de la ID. SEC. nº 8. En
otra realización, la primera porción es seleccionada del grupo que
consiste en: a) un polipéptido que comprende el dominio extracelular
de BR43x2, b) un polipéptido que comprende el dominio extracelular
de TACI, y c) un polipéptido que comprende el dominio extracelular
de BCMA. En una realización relacionada, la primera porción es
seleccionada del grupo que consiste en: a) un polipéptido de ID.
SEC. nº 4, b) los restos de aminoácido 1-154 de la
ID. SEC. nº 6, y c) los restos de aminoácido 1-48 de
la ID. SEC. nº 8. En otra realización relacionada, la segunda
porción es una región constante de cadena pesada de
inmunoglobulina.
En otra realización, el anticuerpo o fragmento de
anticuerpo es seleccionado del grupo que consiste en: a) anticuerpo
policlonal, b) anticuerpo monoclonal murino, c) anticuerpo
humanizado procedente de b), y d) anticuerpo monoclonal humano. En
una realización relacionada, el fragmento de anticuerpo es
seleccionado del grupo que consiste en F(ab'), Fab', Fab, Fv
y scFv. En otra realización, el mamífero es un primate.
En otra realización, la actividad de ztnf4 está
asociada con linfocitos B. En otra realización relacionada, la
actividad de ztnf4 está asociada con linfocitos B activados. En aún
otra realización, la actividad de ztnf4 está asociada con linfocitos
B en reposo. En otra realización, la actividad de ztnf4 está
asociada con la producción de anticuerpos. En una realización
relacionada, la producción de anticuerpos está asociada con una
enfermedad autoinmune. En una realización relacionada, la citada
enfermedad autoinmune es lupus sistémico eritematoso, miastenia
gravis (MG), esclerosis múltiple o artritis reumatoide (RA; del
inglés, rheumatoid arthritis). En otra realización,
la actividad de ztnf4 está asociada con asma, bronquitis o enfisema.
En aún otra realización, la actividad de ztnf4 está asociada con
insuficiencia renal de fase terminal. En aún otra realización, la
actividad de ztnf4 está asociada con enfermedad renal. En una
realización relacionada, la enfermedad renal es glomerulonefritis,
vasculitis, nefritis o pielonefritis. En aún otra realización, la
enfermedad renal está asociada con neoplasias renales, mielomas
múltiples, linfomas, neuropatía de cadenas ligeras o amiloidosis. En
otra realización, la actividad de ztnf4 está asociada con células T
efectoras. En una realización relacionada, la actividad de ztnf4
está asociada con moderación de la respuesta inmune. En aún otra
realización, la actividad está asociada con inmunosupresión. En aún
otra realización, la inmunosupresión está asociada con rechazo de
injertos, enfermedad del injerto contra el huésped, o inflamación.
En otra realización, la actividad está asociada con enfermedad
autoinmune. En una realización relacionada, la enfermedad autoinmune
es diabetes mellitus dependiente de insulina o la enfermedad de
Crohn. En otra realización, la actividad de ztnf4 está asociada con
inflamación. En una realización relacionada, la inflamación está
asociada con dolor articular, hinchazón, anemia o shock séptico. En
otro aspecto, el invento proporciona un método para la fabricación
de un medicamento para inhibir el acoplamiento del receptor BR43x2,
TACI o BCMA-ztnf4, que incluye una cantidad de un
compuesto como el anteriormente descrito. En otra realización, el
acoplamiento del receptor BR43x2, TACI o
BCMA-ligando está asociado con linfocitos B. En
otra realización relacionada, el acoplamiento del receptor BR43x2,
TACI o BCMA-ligando está asociado con linfocitos B
activados. En aún otra realización, el acoplamiento del receptor
BR43x2, TACI o BCMA-ligando está asociado con
linfocitos B en reposo.
En otra realización, el acoplamiento del receptor
BR43x2, TACI o BCMA-ligando está asociado con la
producción de anticuerpos. En una realización relacionada, la
producción de anticuerpos está asociada con una enfermedad
autoinmune. En una realización relacionada, la citada enfermedad
autoinmune es lupus sistémico eritematoso, miastenia gravis,
esclerosis múltiple o artritis reumatoide. En otra realización, el
acoplamiento del receptor BR43x2, TACI o
BCMA-ligando está asociado con asma, bronquitis o
enfisema. En aún otra realización, el acoplamiento del receptor
BR43x2, TACI o BCMA-ligando está asociado con
insuficiencia renal de fase terminal. En aún otra realización, el
acoplamiento del receptor BR43x2, TACI o
BCMA-ligando está asociado con enfermedad renal. En
una realización relacionada, la enfermedad renal es
glomerulonefritis, vasculitis, nefritis o pielonefritis. En aún otra
realización, la enfermedad renal está asociada con neoplasias
renales, mielomas múltiples, linfomas, neuropatía de cadenas
ligeras o amiloidosis. En otra realización, el acoplamiento del
receptor BR43x2, TACI o BCMA-ligando está asociado
con células T efectoras. En una realización relacionada, el
acoplamiento del receptor BR43x2, TACI o
BCMA-ligando está asociado con moderación de la
respuesta inmune. En aún otra realización, la actividad está
asociada con inmunosupresión. En aún otra realización, la
inmunosupresión está asociada con rechazo de injertos, enfermedad
del injerto contra el huésped, o inflamación. En otra realización,
la actividad está asociada con enfermedad autoinmune. En una
realización relacionada, la enfermedad autoinmune es diabetes
mellitus dependiente de insulina o la enfermedad de Crohn. En otra
realización, el acoplamiento del receptor BR43x2, TACI o
BCMA-ligando está asociado con inflamación. En una
realización relacionada, la inflamación está asociada con dolor
articular, hinchazón, anemia o shock séptico.
En otro aspecto, el invento proporciona una
molécula polinucleotídica aislada que codifica un polipéptido de
ID. SEC. nº 2. Se proporciona también una molécula polinucleotídica
aislada de ID. SEC. nº 1. En una realización relacionada, se
proporciona un vector de expresión que comprende los siguientes
elementos operativamente enlazados: un promotor de transcripción,
una molécula polinucleotídica como la anteriormente descrita y un
terminador de transcripción. En otra realización, el vector de
expresión comprende además una secuencia secretora de acoplamiento
de receptor-ligando operativamente enlazada a dicha
molécula polinucleotídica. También se proporciona una célula en
cultivo en la que se ha introducido un vector de expresión como el
anteriormente descrito, célula en cultivo que expresa dicho
polipéptido codificado por dicho segmento polinucleotídico. El
invento proporciona además un método para producir un polipéptido,
que comprende: cultivar una célula en la que se ha introducido un
vector de expresión como el anteriormente descrito, mediante lo cual
dicha célula expresa dicho polipéptido codificado por dicho
molécula polinucleotídica; y recuperar dicho polipéptido expresado.
El invento también proporciona un polipéptido aislado que tiene la
secuencia de ID. SEC. nº 2. En una realización relacionada, el
polipéptido está en combinación con un vehículo farmacéuticamente
aceptable.
La Figura 1 muestra una alineación de múltiples
secuencia de aminoácidos entre BR43x2, TACI (von Bülow y Bram,
ibídem) (ID. SEC. nº 8), BCMA (Gras et al., ibídem)
(ID. SEC. nº 6) y BR43x1 (ID. SEC. nº 9). Se indican las
seudorrepeticiones ricas en cisteína y el dominio
transmembranal.
La Figura 2 muestra un análisis gráfico de
Scatchard de la unión de I^{125}-ztnf4 soluble
a TACI y BCMA expresados por transfectantes BHK estables.
La Figura 3A muestra la coactivación de
linfocitos B humanos por ztnf4 para que proliferen y secreten
inmunoglobulina.
La Figura 3B muestra niveles de IgM e IgG medidos
en sobrenadantes obtenidos de células B estimuladas con ztnf4
soluble en presencia de IL-4 o
IL-4+IL-5 después de 9 días en
cultivo.
La Figura 4 muestra células B humanas de sangre
periférica estimuladas con ztnf4 soluble o proteína testigo
(ubiquitina) en presencia de IL-4 durante 5 días
in vitro. TACI-Ig, BCMA-Ig y
Fc testigo purificados fueron ensayados en cuanto a la inhibición de
la proliferación específica por ztnf4.
La Figura 5A muestra resultados de animales
transgénicos en cuanto a ztnf4 que han desarrollado características
de lupus sistémico eritematoso (SLE; del inglés, systemic
lupus erythematosus).
La Figura 5B muestra células de ganglio
linfático, bazo y timo procedentes de animales transgénicos en
cuanto a ztnf4, teñidas con anticuerpos hacia CD5, CD4 y CD8.
La Figura 5C muestra niveles totales de IgM, IgG
e IgE en suero de animales transgénicos en cuanto a ztnf4 con una
edad que varía de 6 a 23 semanas.
La Figura 5D muestra el depósito de amiloide y el
mesangio engrosado de los glomérulos identificados en secciones
renales de animales transgénicos en cuanto a ztnf4.
La Figura 5E muestra células T efectoras en
ratones transgénicos en cuanto a ztnf4.
Las Figuras 6A y 6B muestran niveles elevados de
ztnf4 en suero obtenido de ratones ZNBWF1 y ratones MRL/lpr/lpr,
que se correlacionan con el desarrollo de SLE.
La Figura 7 muestra el porcentaje de ratones
NZBWF1 que desarrollan proteinuria a lo largo del curso del
estudio.
La Figura 8 muestra niveles
anti-DNA de cadena doble (dsDNA; del inglés,
double stranded DNA), por ensayo de inmunoabsorción
con enzimas ligadas (ELISA; del inglés, enzyme-linked
immunosorbent assay), de ratones transgénicos
en cuanto a ztnf4 y compañeros de camada testigo, comparados con los
de suero de ratones ZNBWF1 y MRL/lpr/lpr.
Estos y otros aspectos del invento se harán
evidentes por referencia a la descripción detallada siguiente.
Antes de exponer el invento, puede ser útil para
su comprensión la exposición de las definiciones de ciertas
expresiones que se usarán más adelante.
Se usa aquí para significar un segmento
polipeptídico que puede ser fijado a un segundo polipéptido para
proporcionar la purificación o detección del segundo polipéptido o
para proporcionar sitios para la fijación del segundo polipéptido a
un sustrato. En principio, como etiqueta de afinidad puede usarse
cualquier péptido o proteína para el que se disponga de un
anticuerpo u otro agente ligante específico. Las etiquetas de
afinidad incluyen una extensión de polihistidina, proteína A
(Nilsson et al., EMBO J. 4: 1.075, 1.985; Nilsson et
al., Methods Enzymol. 198: 3, 1.991), glutatión
S-transferasa (Smith y Johnson, Gene
67: 31, 1.988), etiqueta de afinidad Glu-Glu
(Grussenmeyer et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82:
7.952-4, 1.985), sustancia P, péptido Flag™ (Hopp et
al., Biotechnology 6: 1.204-10,
1.988), péptido ligante de estreptavidina, u otro epítopo
antigénico o dominio ligante. Véase, en general, Ford et al.,
Protein Expression and Purification 2:
95-107, 1.991. De proveedores comerciales (por
ejemplo, Pharmacia Biotech, Piscataway, New Jersey, EE.UU.) pueden
obtenerse DNAs que codifican etiquetas de afinidad.
Cualquiera de dos o más formas alternativas de un
gen que ocupan el mismo locus cromosómico. La variación alélica
surge naturalmente a través de la mutación y puede dar lugar a un
polimorfismo fenotípico en las poblaciones. Las mutaciones génicas
pueden ser silenciosas (es decir, sin cambio en el polipéptido
codificado) o pueden codificar polipéptidos que tienen una secuencia
de aminoácidos alterada. La expresión "variante alélica" se
usa también aquí para significar una proteína codificada por una
variante alélica de un gen. También se incluye la misma proteína de
la misma especie que difiere de una secuencia de aminoácidos de
referencia a causa de una variación alélica. La variación alélica
se refiere a diferencias presentes en la naturaleza entre
individuos, en genes que codifican una proteína dada.
Se usan aquí para significar posiciones en
polipéptidos y proteínas. Cuando el contexto lo permite, estas
expresiones se usan con referencia a una secuencia o porción
particular de un polipéptido o proteína para significar proximidad
o posición relativa. Por ejemplo, una cierta secuencia dispuesta
carboxilo-terminalmente con respecto a una secuencia
de referencia de una proteína está situada cerca del extremo
carboxílico de la secuencia de referencia pero no está
necesariamente en el extremo carboxílico de la proteína
completa.
Significa grupos no idénticos que forman un par
estable, no covalentemente asociado, bajo condiciones apropiadas.
Por ejemplo, la biotina y la avidina (o estreptavidina) son miembros
prototípicos de un par de complemento/anticomplemento. Otros pares
de complemento/anticomplemento ejemplares incluyen pares de
receptor/ligando, pares de anticuerpo/antígeno (o hapteno o
epítopo), pares de polinucleótidos sentido/antisentido, y similares.
Cuando es deseable la subsiguiente disociación del par de
complemento/anticomplemento, el par de
complemento/anticomple-
mento tiene preferiblemente una afinidad de unión < 10^{-9} M.
mento tiene preferiblemente una afinidad de unión < 10^{-9} M.
Significa un polinucleótido que tiene un tramo
contiguo de secuencia idéntica o complementaria con respecto a otro
polinucleótido. Se dice que las secuencias contiguas "se
solapan" en un tramo dado de secuencia polinucleotídica, sea en
su totalidad o sea a lo largo de un tramo parcial del
polinucleótido. Por ejemplo, son contigs representativos relativos
a la secuencia polinucleotídica 5'-ATGGCTTAG-
CTT-3':
5'-TAGCTTgagtct-3' y
3'-gtcgacTACCGA-5'.
Significa moléculas polinucleotídicas que tienen
una secuencia de bases complementaria y una orientación inversa con
respecto a una secuencia de referencia. Por ejemplo, la secuencia 5'
ATGCACGGG 3' es complementaria de 5' CCCGTGCAT 3'.
Significa una secuencia de nucleótidos que
incluye uno o más codones degenerados (en comparación con una
molécula polinucleotídica de referencia que codifica un
polipéptido). Los codones degenerados contienen diferentes tripletes
de nucleótidos pero codifican el mismo resto de aminoácido (es
decir, tanto el triplete GAU como el GAC codifican Asp).
Una molécula de DNA, lineal o circular, que
comprende un segmento que codifica un polipéptido de interés,
operativamente enlazado con segmentos adicionales que proporcionan
su transcripción. Tales segmentos adicionales pueden incluir
secuencias promotoras y terminadoras y, opcionalmente, uno o más
orígenes de replicación, uno o más marcadores seleccionables, un
potenciador, una señal de poliadenilación, y similares. Los vectores
de expresión proceden generalmente de DNA plasmídico o vírico, o
pueden contener elementos de ambos.
Se refiere a diferentes formas de una proteína
que pueden ser producidas a partir de diferentes genes o a partir
del mismo gen por remodelación alternativa. En algunos casos, las
isoformas difieren en su actividad de transporte, tiempo de
expresión en desarrollo, distribución tisular, situación en la
célula o una combinación de estas propiedades.
Significa que el polinucleótido ha sido extraído
de su entorno genético natural y, por ello, carece de otras
secuencias de codificación extrañas o indeseadas, y está en una
forma adecuada para uso en sistemas de producción de proteínas
genéticamente construidas. Dichas moléculas aisladas son aquéllas
que son separadas de su ambiente natural e incluyen clones de cDNA y
genómicos. Las moléculas de DNA aisladas del presente invento
carecen de otros genes con los que están normalmente asociadas,
pero pueden incluir regiones 5' y 3' no traducidas presentes en la
naturaleza, tales como promotores y terminadores. La identificación
de regiones asociadas será evidente para quien tiene una
experiencia normal en la técnica (véase, por ejemplo, Dynan y Tijan,
Nature 316: 774-78, 1.985).
Es un polipéptido o proteína que se halla en un
estado distinto de su ambiente nativo, tal como separado de la
sangre y el tejido animal. En una forma preferida, el polipéptido
aislado carece sustancialmente de otros polipéptidos,
particularmente de otros polipéptidos de origen animal. Se prefiere
obtener los polipéptidos en una forma muy purificada, es decir, con
una pureza superior a 95%, más preferiblemente una pureza superior
a 99%. Cuando se usa en este contexto, el término "aislado" no
excluye la presencia del mismo polipéptido en formas físicas
alternativas, tales como dímeros o formas alternativamente
glicosiladas o derivatizadas.
Cuando se aplica a segmentos de nucléotidos, la
expresión "operativamente enlazado" indica que los segmentos
están dispuestos para que actúen de acuerdo a sus fines previstos;
por ejemplo, la transcripción se inicia en el promotor y continúa a
través del segmento de codificación hasta el terminador.
Significa un polipéptido o una proteína obtenidos
de una especie, que es la réplica funcional de un polipéptido o
proteína de una especie diferente. Las diferencias de secuencia
entre ortólogos son el resultado de la especiación.
Significa un polímero, de cadena sencilla o
doble, de bases desoxirribonucleotídicas o ribonucleotídicas leídas
del extremo 5' al 3'. Los polinucleótidos incluyen RNA y DNA, y
pueden ser aislados de fuentes naturales, sintetizados in
vitro o preparados a partir de una combinación de moléculas
naturales y sintéticas. Los tamaños de los polinucleótidos se
expresan en pares de bases (abreviado "bp"; del inglés,
base pairs), nucleótidos ("nt") o kilobases
("kb"). Cuando lo permite el contexto, los dos últimos
términos pueden describir polinucleótidos que sean de cadena
sencilla o cadena doble. Cuando el término se aplica a moléculas de
cadena doble, se usa para significar la longitud global y se
entenderá que es equivalente a la expresión "pares de bases".
Los expertos en la técnica reconocerán que las dos cadenas de un
polinucleótido de cadena doble pueden diferir ligeramente en cuanto
a longitud y que los extremos de las mismas pueden estar
escalonados como resultado de escisión enzimática; por lo tanto,
puede que no todos los nucleótidos de una molécula polinucleotídica
de cadena doble estén emparejados. Dichos extremos desparejados
tendrán una longitud que no excederá en general de 20 nt.
Es un polímero de restos de aminoácido unidos por
enlaces peptídicos, producido natural o sintéticamente. A los
polipéptidos de menos de aproximadamente 10 restos de aminoácido se
hace comúnmente referencia como "péptidos".
Significa una porción de un gen que contiene
secuencias de DNA que proporcionan la unión de RNA polimerasa y la
iniciación de la transcripción. Las secuencias promotoras se hallan
comúnmente, aunque no siempre, en las regiones no codificadoras 5'
de los genes.
Es una macromolécula que comprende una o más
cadenas polipeptídicas. Una proteína puede también comprender
componentes no peptídicos, tales como grupos carbohidrato. Los
carbohidratos y otros sustituyentes no peptídicos pueden ser
añadidos a una proteína por la célula en que se produce la proteína,
y variarán con el tipo de célula. Las proteínas se definen aquí en
términos de sus estructuras de cadena principal aminoácida; no se
especifican generalmente sustituyentes tales como grupos
carbohidrato aunque, no obstante, puedan estar presentes.
Una proteína asociada a la célula, o una
subunidad polipeptídica de dicha proteína, que se une a una molécula
bioactiva (el "ligando") y media en el efecto del ligando
sobre la célula. La unión del ligando al receptor da lugar a un
cambio en el receptor (y, en ciertos casos, la multimerización del
receptor, es decir, la asociación de subunidades idénticas o
diferentes del receptor) que causa interacciones entre
el(los) dominio(s) efector(es) del receptor y
\hbox{otra(s)}molécula(s) en la célula. A su vez, estas interacciones conducen a alteraciones en el metabolismo de la célula. Los procesos metabólicos que están conectados con interacciones de receptor-ligando incluyen transcripción génica, fosforilación, desfosforilación, proliferación celular, aumentos de la producción de AMP cíclico, movilización de calcio celular, movilización de lípidos de membrana, adhesión celular, hidrólisis de inositol-lípidos e hidrólisis de fosfolípidos. BR43x2 tiene características de receptores de TNF, como aquí se discute con mayor detalle.
Una secuencia de dna que codifica un polipéptido
(un "péptido secretor") que, como un componente de un
polipéptido más grande, dirige al polipéptido más grande a través
de una ruta secretora de una célula en que es sintetizado. El
polipéptido más grande es comúnmente escindido para que se separe
el péptido secretor durante el tránsito a través de la ruta
secretora.
Un polipéptido receptor que no está unido a una
membrana celular. Los receptores solubles son muy comúnmente
polipéptidos receptores ligantes de ligandos, que carecen de
dominios transmembranales y citoplásmicos. Los receptores solubles
pueden comprender restos de aminoácido adicionales, tales como
etiquetas de afinidad que permiten la purificación del polipéptido o
proporcionan sitios para la fijación del polipéptido a un sustrato.
Muchos receptores de la superficie celular tienen remedos solubles,
presentes en la naturaleza, que son producidos por proteolisis o
son traducidos de mRNAs alternativamente remodelados. Se dice que
los polipéptidos receptores carecen sustancialmente de segmentos
polipeptídicos transmembranales e intracelulares cuando carecen de
suficientes porciones de esos segmentos que proporcionen el anclaje
a la membrana o la transducción de señales, respectivamente.
Se entenderá que los pesos y longitudes
moleculares de polímeros determinados mediante métodos analíticos
inexactos (por ejemplo, electroforesis en gel) son valores
aproximados. Cuando tal valor se expresa como "aproximadamente"
X, se entenderá que el valor expuesto de X es exacto hasta \pm
10%.
Todas las referencias aquí citadas se incorporan
por referencia en su totalidad.
El presente invento se basa en parte en el
descubrimiento de una secuencia de DNA de 1.192 bp (ID. SEC. nº 1)
y la correspondiente secuencia polipeptídica (ID. SEC. nº 2) que es
una isoforma del receptor TACI. La isoforma ha sido denominada
BR43x2. Se describe una forma soluble de BR43x2 en la ID. SEC. nº 4,
el polinucleótido que codifica el receptor soluble en la ID. SEC.
nº 3. Como aquí se describe con mayor detalle, los polipéptidos y
polinucleótidos que codifican el receptor BR43x2 del presente
invento fueron inicialmente identificados por clonación con trampa
de señales usando una librería humana de RPMI 1788 y el ligando del
factor de necrosis tumoral, ztnf4, ahora conocido como neutroquina
\alpha (WIPO, WO98/18921), BLyS (Moore et al., ibídem), BAFF
(Schneider et al., ibídem), TALL-1 (Shu et al.,
ibídem) o THANK (Mukhopadhyay et al., ibídem), N- o
C-terminalmente etiquetado con FLAG y marcado con
biotina o isotiocianato de fluoresceína (FITC; del inglés,
fluorescein isothiocyanate). Las
colecciones positivas fueron identificadas por unión de ligandos y
fueron separadas en clones individuales, y el cDNA fue aislado y
secuenciado. Una comparación de la secuencia de aminoácidos
deducida de BR43x2 (como se representa en la ID. SEC. nº 2) con la
de receptores conocidos del factor de necrosis tumoral indicó que
BR43x2 es una isoforma de TACI, que tiene una única y mal conservada
seudorrepetición rica en cisteína.
Estructuralmente, la familia de receptores del
TNF se caracteriza por una porción extracelular compuesta de varios
módulos históricamente llamados "seudorrepeticiones ricas en
cisteína". Un miembro prototípico de la familia de
\hbox{TNFR}tiene cuatro de estas seudorrepeticiones, cada una de aproximadamente 29-43 restos de longitud, una justo detrás de la otra. Una seudorrepetición típica tiene 6 restos de cisteína. Son llamadas seudorrepeticiones porque, aunque parecen tener su origen en un módulo ancestral común, no se repiten exactamente: las seudorrepeticiones nº 1, nº 2, nº 3 y nº 4 tienen rasgos de secuencia característicos que las distinguen entre sí. La estructura cristalina del receptor p55 de TNF reveló que cada seudorrepetición corresponde a un dominio plegable y que las cuatro seudorrepeticiones se pliegan en la misma estructura terciaria, manteniéndose internamente unidas por enlaces disulfuro.
TACI contiene dos seudorrepeticiones ricas en
cisteína (von Bülow y Bram, ibídem): la primera está conservada en
cuanto a estructura con otros miembros de la familia de receptores
del TNF, y la segunda está menos conservada. La isoforma BR43x2 del
presente invento carece de la primera seudorrepetición rica en
cisteína de TACI, reteniendo sólo la segunda, la repetición menos
conservada.
El análisis de secuencia de una secuencia
deducida de aminoácidos de BR43x2, como se representa en la ID. SEC.
nº 2, indica la presencia de una proteína madura que tiene un
dominio extracelular (restos 1-120 de la ID. SEC. nº
2) que contiene una seudorrepetición rica en cisteína (restos
25-58 de la ID. SEC. nº 2), un dominio
transmembranal (restos 121-133 de la ID. SEC. nº 2)
y un dominio citoplásmico (restos 134-247 de la ID.
SEC. nº 2). La seudorrepetición rica en cisteína de BR43x2 tiene 6
restos de cisteína conservados (restos 25, 40, 43, 47, 54 y 58 de
la ID. SEC. nº 2), un resto de ácido aspártico conservado (resto 34
de la ID. SEC. nº 2) y dos restos de leucina conservados (restos 36
y 37 de la ID. SEC. nº 2), y comparte una identidad del 46% con la
primera seudorrepetición rica en cisteína de TACI (ID. SEC. nº 6) y
una identidad del 35% con la seudorrepetición rica en cisteína de
BCMA (ID. SEC. nº 8) (Figura 1). La seudorrepetición rica en
cisteína puede ser representada mediante el motivo siguiente:
CX [QEK] [QEKNRDHS] [QE] X {0-2}
[YFW] [YFW] DXLLX {2} C [IMLV] XCX {3} CX {6-8} CX
{2} [YF] C (ID. SEC. nº 10),
en el que C representa el resto de aminoácido
cisteína, Q glutamina, E ácido glutámico, K lisina, N asparagina, R
arginina, D ácido aspártico, H histidina, S serina, Y tirosina, F
fenilalanina, W triptófano, L leucina, I isoleucina y V valina, y X
representa cualquier resto de aminoácido presente en la naturaleza
salvo cisteína. Los restos de aminoácido entre corchetes "[ ]"
indican la variación de restos de aminoácido permitidos en esa
posición. El número entre llaves "{ }" indica el número de
restos de aminoácido permitidos en esa posición.
El presente invento también proporciona
polipéptidos solubles con una longitud de 32 a 40 restos de
aminoácido, como el proporcionado por la ID. SEC. nº 10.
El receptor soluble BR43x2, como es representado
por los restos 1-120 de la ID. SEC. nº 4, contiene
una seudorrepetición rica en cisteína (restos 25-58
de la ID. SEC. nº 4) y carece de los dominios transmembranal y
citoplásmico de BR43x2, como se describe en la ID. SEC. nº 2.
\newpage
Los expertos en la técnica reconocerán que estos
límites de dominio son aproximados y se basan en alineaciones con
proteínas conocidas y predicciones de plegadura de la proteína.
Estas características indican que el receptor codificado por las
secuencias de DNA de ID. SEC. n^{os} 1 y 3 es un miembro de la
familia de receptores del TNF.
El análisis, por transferencia Northern y
transferencia en forma de manchas, de la distribución tisular del
mRNA que corresponde a sondas nucleotídicas hacia BR43x1 que están
previstas para detectar la expresión de BR43x2 mostró expresión en
bazo, ganglio linfático, células CD19+, débilmente en células que
presentan reacción mixta de linfocitos (MLR; del inglés,
mixed lymphocyte reaction), células Daudi y
células Raji. Usando reacción en cadena de la polimerasa (PCR; del
inglés, polymerase chain
reaction)-transcriptasa inversa, se detectó
BR43x1 sólo en células B y no en células T activadas, como había
sido comunicado para TACI (von Bülow y Bram, ibídem). Usando una
sonda para BR43x2 que solapa al 100% con la correspondiente
secuencia de TACI, se detectaron TACI y BR43x2 en bazo, ganglio
linfático e intestino delgado, estómago, glándula salival,
apéndice, pulmón, médula ósea, bazo fetal, células CD19^{+} y
células Raji.
Usando análisis por transferencia Northern, se
detectó BCMA en intestino delgado, bazo, estómago, colon, apéndice,
ganglio linfático, tráquea y testículo. También se detectó BCMA en
adenolinfoma, linfoma no Hodgkin y tumor parotídeo, y se detectó
tenuemente en células CD8^{+}, CD19^{+}, MLR, Daudi, Raji y
Hut-78.
También se realizó un análisis por transferencia
Northern usando ztnf4 murino (ID. SEC. nº 19), y, como con TACI,
BCMA y BR43x2 humanos, la expresión de ztnf4 murino se detectó
predominantemente en bazo y timo. También se expresaba ztnf4 murino
en pulmón y se detectó una tenue expresión en piel y corazón.
El presente invento también proporciona moléculas
polinucleotídicas, incluyendo moléculas de DNA y RNA, que codifican
los polipéptidos BR43x2 aquí descritos. Los expertos en la técnica
reconocerán fácilmente que, a la vista de la degeneración del
código genético, es posible una considerable variación de
secuencias entre estas moléculas polinucleotídicas. La ID. SEC. nº
11 es una secuencia de DNA degenerada que abarca todos los DNAs que
codifican el polipéptido soluble BR43x2 de ID. SEC. nº 4.
Similarmente, la ID. SEC. nº 12 es una secuencia de DNA degenerada
que abarca todos los DNAs que codifican el polipéptido BR43x2 de ID.
SEC. nº 2. Los expertos en la técnica reconocerán que la secuencia
degenerada de ID. SEC. nº 12 también proporciona todas las
secuencias de RNA que codifican la ID. SEC. nº 4 sustituyendo T por
U. De este modo, los polinucleótidos que codifican el polipéptido
BR43x2 y comprenden del nucleótido 1 al nucleótido 360 de la ID.
SEC. nº 11, del nucleótido 1 al 741 de la ID. SEC. nº 12 y sus
equivalentes de RNA están contemplados por el presente invento. En
la Tabla 1 se exponen los códigos de una letra usados en las ID.
SEC. n^{os}11 y 12 para representar posiciones nucleotídicas
degeneradas. "Resoluciones" son los nucleótidos representados
por una letra del código. "Complemento" indica el código para
el(los) nucleótido(s) complementario(s). Por
ejemplo, el código Y representa C o T, y su complemento R representa
A o G, siendo A complementario de T y siendo G complementario de
C.
Nucleótido | Resolución | Complemento | Resolución |
A | A | T | T |
C | C | G | G |
G | G | C | C |
T | T | A | A |
R | A/G | Y | C/T |
Y | C/T | R | A/G |
M | A/C | K | G/T |
K | G/T | M | A/C |
S | C/G | S | C/G |
W | A/T | W | A/T |
H | A/C/T | D | A/G/T |
B | C/G/T | V | A/C/G |
V | A/C/G | B | C/G/T |
D | A/G/T | H | A/C/T |
N | A/C/G/T | N | A/C/G/T |
En la Tabla 2 se exponen los codones degenerados
utilizados en las ID. SEC. n^{os} 11 y 12, que abarcan todos los
posibles codones para un aminoácido dado.
Aminoácido | Código de una letra | Codones | Codón degenerado |
Cys | C | TGC TGT | TGY |
Ser | S | AGC AGT TCA TCC TCG TCT | WSN |
Thr | T | ACA ACC ACG ACT | ACN |
Pro | P | CCA CCC CCG CCT | CCN |
Ala | A | GCA GCC GCG GCT | GCN |
Gly | G | GGA GGC GGG GGT | GGN |
Asn | N | AAC AAT | AAY |
Asp | D | GAC GAT | GAY |
Glu | E | GAA GAG | GAR |
Gln | Q | CAA CAG | CAR |
His | H | CAC CAT | CAY |
Arg | R | AGA AGG CGA CGC CGG CGT | MGN |
Lys | K | AAA AAG | AAR |
Met | M | ATG | ATG |
Ile | I | ATA ATC ATT | ATH |
Leu | L | CTA CTC CTG CTT TTA TTG | YTN |
Val | V | GTA GTC GTG GTT | GTN |
Phe | F | TTC TTT | TTY |
Tyr | Y | TAC TAT | TAY |
Trp | W | TGG | TGG |
Ter | . | TAA TAG TGA | TRR |
Asn/Asp | B | RAY | |
Glu/Gln | Z | SAR | |
Cualquiera | X | NNN |
Quien tiene una experiencia normal en la técnica
apreciará que se introduce cierta ambigüedad a la hora de
determinar un codón degenerado, representativo de todos los
posibles codones que codifican cada aminoácido. Por ejemplo, el
codón degenerado para serina (WSN) puede, en algunas circunstancias,
codificar arginina (AGR), y el codón degenerado para arginina (MGN)
puede, en algunas circunstancias, codificar serina (AGY). Existe
una relación similar entre los codones que codifican fenilalanina y
leucina. De este modo, algunos polinucleótidos abarcados por la
secuencia degenerada pueden codificar secuencias de aminoácidos
variantes, aunque quien tiene una experiencia normal en la técnica
puede identificar fácilmente dichas secuencias variantes por
referencia a las secuencias de aminoácidos de las ID. SEC. n^{os}
2 y 4. Las secuencias variantes pueden ser fácilmente ensayadas en
cuanto a funcionalidad del modo aquí descrito.
Quien tiene una experiencia normal en la técnica
también apreciará que especies diferentes pueden presentar
"utilización de codones preferentes"; véanse, en general,
Grantham et al., Nuc. Acids Res. 8:
1.893-912, 1.980; Haas et al., Curr. Biol.
6: 315-24, 1.996; Wain-Hobson
et al., Gene 13: 355-64, 1.981;
Grosjean y Fiers, Gene 18: 199-209,
1.982; Holm, Nuc. Acids Res. 14:
3.075-87, 1.986; e Ikemura, J. Mol. Biol.
158: 573-97, 1.982. Como se usa aquí, la
expresión "utilización de codones preferentes" o "codones
preferentes" es una expresión de la técnica que se refiere a los
codones de traducción a proteínas que son más frecuentemente usados
en las células de ciertas especies, favoreciéndose por ello uno o
algunos codones representativos de los posibles codones que
codifican cada aminoácido (véase la Tabla 2). Por ejemplo, el
aminoácido treonina (Thr) puede ser codificado por ACA, ACC, ACG o
ACT pero, en células de mamífero, ACC es el codón más comúnmente
usado; en otras especies, tales como, por ejemplo, células de
insectos, levaduras, virus o bacterias, codones de Thr diferentes
pueden ser preferentes. Codones preferentes para una especie
particular pueden ser introducidos en los polinucleótidos del
presente invento mediante una diversidad de métodos conocidos en la
técnica. La introducción de secuencias de codones preferentes en
DNA recombinante puede, por ejemplo, potenciar la producción de la
proteína al hacer que la traducción a proteína sea más eficaz en un
tipo celular o una especie particulares. Por lo tanto, las
secuencias de codones degenerados descritas en las ID. SEC.
n^{os} 11 y 12 sirven como un molde para optimizar la expresión de
polinucleótidos en diversos tipos celulares y especies comúnmente
usados en la técnica y aquí descritos. Las secuencias que contienen
codones preferentes pueden ser ensayadas y optimizadas en cuanto a
expresión en diversas especies, y ensayadas en cuanto a
funcionalidad del modo aquí descrito.
Los aminoácidos muy conservados de la
seudorrepetición rica en cisteína de BR43x2 pueden ser usados como
una herramienta para identificar nuevos miembros de la familia. Por
ejemplo, puede usarse transcripción inversa-reacción
en cadena de la polimerasa (RT-PCR; del inglés,
reverse transcription-PCR) para multiplicar
secuencias que codifican el dominio extracelular ligante de
ligandos, anteriormente descrito, a partir de RNA obtenido de una
diversidad de fuentes tisulares o líneas celulares. En particular,
son útiles para este fin los cebadores muy degenerados diseñados a
partir de las secuencias de BR43x2.
En realizaciones preferidas del invento,
polinucleótidos aislados se hibridarán con regiones de tamaño
similar de la ID. SEC. nº 3 o con una secuencia complementaria de
las mismas, bajo condiciones rigurosas. En general, se seleccionan
condiciones rigurosas para que la temperatura sea aproximadamente
5ºC menor que el punto de fusión térmica (T_{m}) de la secuencia
específica a una fuerza iónica y un pH definidos. La T_{m} es la
temperatura (bajo una fuerza iónica y un pH definidos) a la que el
50% de la secuencia diana se hibrida con una sonda que presenta un
apareamiento perfecto. Son condiciones rigurosas típicas aquéllas en
que la concentración de sal es hasta aproximadamente 0,03 M a un pH
de 7 y la temperatura es al menos aproximadamente 60ºC.
Como se indicó previamente, los polinucleótidos
aislados del presente invento incluyen DNA y RNA. Los métodos para
aislar DNA y RNA son bien conocidos en la técnica. Se prefiere
generalmente aislar RNA de células RPMI 1788, células mononucleares
de sangre periférica (PBMNC; del inglés, peripheral
blood mononuclear cell), células B
transfectadas en reposo o activadas o tejido amigdalino, aunque el
DNA puede también ser preparado usando RNA de otros tejidos o ser
aislado como DNA genómico. Puede prepararse RNA total usando
extracción con guanidina HCl, seguida de aislamiento por
centrifugación en gradiente de CsCl (Chirgwin et al.,
Biochemistry 18: 52-94, 1.979). Se
prepara Poli(A) + RNA a partir de RNA total usando el método
de Aviv y Leder (Proc. Natl. Acad. Sci. USA 69:
1.408-12, 1.972). Se prepara DNA complementario
(cDNA) a partir de Poli(A) + RNA usando métodos conocidos.
Los polinucleótidos que codifican polipéptidos BR43x2 son luego
identificados y aislados mediante, por ejemplo, hibridación o
PCR.
Los expertos en la técnica reconocerán que las
secuencias descritas en las ID. SEC. n^{os} 1 y 3 representan un
único alelo del gen humano y que se espera que tenga lugar
variación alélica y remodelación alternativa. Las variantes alélicas
de las secuencias de DNA mostradas en las ID. SEC. n^{os} 1 y 3,
incluyendo aquéllas que contienen mutaciones silenciosas y aquéllas
en que las mutaciones dan lugar a cambios en la secuencia de
aminoácidos, están dentro del alcance del presente invento, como lo
están las proteínas que son variantes alélicas de las ID. SEC.
n^{os} 2 y 4. Las variantes alélicas y variantes de remodelación
de estas secuencias pueden ser clonadas al sondar librerías de cDNA
o genómicas procedentes de diferentes individuos o tejidos, de
acuerdo con procedimientos estándares conocidos en la técnica.
Los polipéptidos receptores del presente invento,
incluyendo polipéptidos receptores de longitud completa,
polipéptidos receptores solubles, fragmentos polipeptídicos y
polipéptidos de fusión, pueden ser producidos de acuerdo con
técnicas convencionales en células huésped genéticamente creadas.
Son células huésped adecuadas los tipos celulares que pueden ser
transformados o transfectados con DNA exógeno y ser desarrollados
en cultivo, e incluyen bacterias, células fúngicas, y células
eucarióticas superiores en cultivo. Se prefieren las células
eucarióticas, particularmente células cultivadas de organismos
multicelulares. Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory
Manual, segunda edición, Cold Spring Harbor, New York, EE.UU.,
1.989, y Ausubel et al., redactores, Current Protocols in
Molecular Biology, John Wiley and Sons, Inc., New York, EE.UU.,
1.987, describen técnicas para manipular moléculas de DNA clonadas
e introducir DNA exógeno en una diversidad de células huésped.
En general, una secuencia de DNA que codifica un
polipéptido BR43x2 está operativamente enlazada a otros elementos
genéticos requeridos para su expresión, que incluyen generalmente
un promotor y un terminador de transcripción, dentro de un vector
de expresión. El vector también contendrá comúnmente uno o más
marcadores seleccionables y uno o más orígenes de replicación,
aunque los expertos en la técnica reconocerán que, en ciertos
sistemas, los marcadores seleccionables pueden disponerse en
vectores separados y que la replicación del DNA exógeno puede
obtenerse por integración en el genoma de la célula huésped. La
selección de promotores, terminadores, marcadores seleccionables,
vectores y otros elementos es una cuestión de proyecto rutinario
dentro del nivel de experiencia normal en la técnica. Muchos de
tales elementos son descritos en la bibliografía y son asequibles de
proveedores comerciales.
Para dirigir un polipéptido BR43x2 a la ruta
secretora de una célula huésped, se proporciona una secuencia señal
secretora (también conocida como secuencias señal, secuencia líder,
preprosecuencia o presecuencia) en el vector de expresión. La
secuencia señal secretora puede ser la del polipéptido BR43x2 o
puede proceder de otra proteína secretada (por ejemplo,
t-PA) o ser sintetizada de novo. La
secuencia señal secretora es unida a la secuencia de DNA de BR43x2
en el marco de lectura correcto y es colocada para que dirija el
polipéptido recién sintetizado a la ruta secretora de la célula
huésped. Las secuencias señal secretoras se colocan comúnmente en
5' con respecto a la secuencia de DNA que codifica el polipéptido de
interés, aunque ciertas secuencias señal pueden ser colocadas en
otro sitio de la secuencia de DNA de interés (véanse, por ejemplo,
Welch et al., Patente de EE.UU. nº 5.037.743, y Holland et al.,
Patente de EE.UU. nº 5.143.830.
Las células de mamífero en cultivo son huéspedes
adecuados en el presente invento. Los métodos para introducir DNA
exógeno en células huésped de mamífero incluyen transfección mediada
por fosfato cálcico (Wigler et al.,
Cell 14: 725, 1.978; Corsaro y Pearson, Somatic Cell Genetics 7: 603, 1.981; y Graham y Van der Eb, Virology 52: 456, 1.973), electroporación (Neumann et al., EMBO J. 1: 841-45, 1.982), transfección mediada por dietilaminoetil (DEAE)-dextrano (Ausubel et al., ibídem), y transfección mediada por liposomas (Hawley-Nelson et al., Focus 15: 73, 1.993; y Ciccarone et al., Focus 15: 80, 1.993). La producción de polipéptidos recombinantes en células de mamífero en cultivo es descrita, por ejemplo, por Levinson et al., Patente de EE.UU. nº 4.713.339; Hagen et al., Patente de EE.UU. nº 4.784.950; Palmiter et al., Patente de EE.UU. nº 4.579.821; y Ringold, Patente de EE.UU. nº 4.656.134. Las células de mamífero en cultivo adecuadas incluyen las células COS-1 (ATCC nº CRL 1650), COS-7 (ATCC nº CRL 1651), BHK (ATCC nº CRL 1632), BHK 570 (ATCC nº CRL 10314), 293 (ATCC nº CRL 1573; Graham
et al., J. Gen. Virol. 36: 59-72, 1.977), Jurkat (ATCC nº CRL-8129), BaF3 (una línea celular prelinfoide dependiente de la interleuquina 3, procedente de médula ósea murina; véanse Palacios y Steinmetz, Cell 41: 727-34, 1.985, y Mathey-Prevot et al., Mol. Cell. Biol. 6: 4.133-5, 1.986) y líneas celulares de ovario de hámster chino (por ejemplo, CHO-K1, ATCC nº CCL 61). Líneas celulares adecuadas adicionales son conocidas en la técnica y son asequibles de depositarías públicas tales como la Colección Americana de Cultivos Tipo (ATCC; del inglés, American Type Culture Collection), Rockville, Maryland, EE.UU. En general, se prefieren promotores de transcripción potentes, tales como promotores del virus 40 de simios (SV-40; del inglés, simian virus 40) o citomegalovirus; véase, por ejemplo, la Patente de EE.UU. nº 4.956.288. Otros promotores adecuados incluyen los de genes de la metalotioneína (Patentes de EE.UU. n^{os} 4.579.821 y 4.601.978) y el promotor tardío principal de adenovirus.
Cell 14: 725, 1.978; Corsaro y Pearson, Somatic Cell Genetics 7: 603, 1.981; y Graham y Van der Eb, Virology 52: 456, 1.973), electroporación (Neumann et al., EMBO J. 1: 841-45, 1.982), transfección mediada por dietilaminoetil (DEAE)-dextrano (Ausubel et al., ibídem), y transfección mediada por liposomas (Hawley-Nelson et al., Focus 15: 73, 1.993; y Ciccarone et al., Focus 15: 80, 1.993). La producción de polipéptidos recombinantes en células de mamífero en cultivo es descrita, por ejemplo, por Levinson et al., Patente de EE.UU. nº 4.713.339; Hagen et al., Patente de EE.UU. nº 4.784.950; Palmiter et al., Patente de EE.UU. nº 4.579.821; y Ringold, Patente de EE.UU. nº 4.656.134. Las células de mamífero en cultivo adecuadas incluyen las células COS-1 (ATCC nº CRL 1650), COS-7 (ATCC nº CRL 1651), BHK (ATCC nº CRL 1632), BHK 570 (ATCC nº CRL 10314), 293 (ATCC nº CRL 1573; Graham
et al., J. Gen. Virol. 36: 59-72, 1.977), Jurkat (ATCC nº CRL-8129), BaF3 (una línea celular prelinfoide dependiente de la interleuquina 3, procedente de médula ósea murina; véanse Palacios y Steinmetz, Cell 41: 727-34, 1.985, y Mathey-Prevot et al., Mol. Cell. Biol. 6: 4.133-5, 1.986) y líneas celulares de ovario de hámster chino (por ejemplo, CHO-K1, ATCC nº CCL 61). Líneas celulares adecuadas adicionales son conocidas en la técnica y son asequibles de depositarías públicas tales como la Colección Americana de Cultivos Tipo (ATCC; del inglés, American Type Culture Collection), Rockville, Maryland, EE.UU. En general, se prefieren promotores de transcripción potentes, tales como promotores del virus 40 de simios (SV-40; del inglés, simian virus 40) o citomegalovirus; véase, por ejemplo, la Patente de EE.UU. nº 4.956.288. Otros promotores adecuados incluyen los de genes de la metalotioneína (Patentes de EE.UU. n^{os} 4.579.821 y 4.601.978) y el promotor tardío principal de adenovirus.
Se usa generalmente la selección por fármacos
para seleccionar las células de mamífero en cultivo en que se ha
insertado DNA extraño. A dichas células se hace comúnmente
referencia como "transfectantes". A las células que han sido
cultivadas en presencia del agente selectivo y son capaces de pasar
el gen de interés a su progenie se hace referencia como
"transfectantes estables". Un marcador seleccionable preferido
es un gen que codifica resistencia al antibiótico neomicina. La
selección es llevada a cabo en presencia de un fármaco de tipo
neomicina, tal como
G-418 o similar. Pueden usarse también sistemas de selección para aumentar el nivel de expresión del gen de interés, un procedimiento al que se hace referencia como "multiplicación". La multiplicación es llevada a cabo cultivando transfectantes en presencia de un bajo nivel del agente selectivo y aumentando luego la cantidad de agente selectivo para seleccionar las células que producen niveles elevados de los productos de los genes introducidos. Un marcador seleccionable y multiplicable preferido es la dihidrofolato reductasa (DHFR), que confiere resistencia al metotrexato. Pueden usarse también otros genes de resistencia a fármacos (por ejemplo, resistencia a higromicina, resistencia a múltiples fármacos, y puromicina acetiltransferasa). Pueden usarse marcadores alternativos que introducen un fenotipo alterado, tal como la proteína fluorescente verde, o proteínas de la superficie celular, tales como CD4, CD8, proteínas del complejo principal de histocompatibilidad (MHC; del inglés, major histocompatibility complex) de Clase I, y fosfatasa alcalina placentaria, para diferenciar células transfectadas de células no transfectadas por medios tales como la clasificación por fluorescencia de células activadas (FACS; del inglés, fluorescence activated cell sorting) o la tecnología de separación por glóbulos magnéticos.
G-418 o similar. Pueden usarse también sistemas de selección para aumentar el nivel de expresión del gen de interés, un procedimiento al que se hace referencia como "multiplicación". La multiplicación es llevada a cabo cultivando transfectantes en presencia de un bajo nivel del agente selectivo y aumentando luego la cantidad de agente selectivo para seleccionar las células que producen niveles elevados de los productos de los genes introducidos. Un marcador seleccionable y multiplicable preferido es la dihidrofolato reductasa (DHFR), que confiere resistencia al metotrexato. Pueden usarse también otros genes de resistencia a fármacos (por ejemplo, resistencia a higromicina, resistencia a múltiples fármacos, y puromicina acetiltransferasa). Pueden usarse marcadores alternativos que introducen un fenotipo alterado, tal como la proteína fluorescente verde, o proteínas de la superficie celular, tales como CD4, CD8, proteínas del complejo principal de histocompatibilidad (MHC; del inglés, major histocompatibility complex) de Clase I, y fosfatasa alcalina placentaria, para diferenciar células transfectadas de células no transfectadas por medios tales como la clasificación por fluorescencia de células activadas (FACS; del inglés, fluorescence activated cell sorting) o la tecnología de separación por glóbulos magnéticos.
Pueden usarse también otras células eucarióticas
superiores como huéspedes, incluyendo células vegetales, células de
insecto y células aviares. El uso de Agrobacterium
rhizogenes como un vector para expresar genes en células
vegetales ha sido revisado por Sinkar et al., J. Biosci.
(Bangalore) 11: 47-58, 1.987. La
transformación de células de insecto y la producción de polipéptidos
extraños en ellas son descritas por Guarino et al., Patente de
EE.UU.
nº 5.162.222 y la publicación WIPO WO 94/06463. Las células de insecto pueden ser infectadas con un baculovirus recombinante, comúnmente procedente del virus de la polihedrosis nuclear de Autographa californica (AcNPV; del inglés, Autographa californica nuclear polyhedrosis virus); véanse King y Possee, The Baculovirus Expression System: A Laboratory Guide, Londres, Chapman & Hall; O'Reilly et al., Baculovirus Expression Vectors: A Laboratory Manual, New York, Oxford University Press, 1.994; y Richardson, redactor, Baculovirus Expression Protocols. Methods in Molecular Biology, Totowa, New Jersey, EE.UU., Humana Press, 1.995. En un segundo método para preparar un baculovirus con BR43x2 recombinante se usa un sistema basado en transposones descrito por Luckow (Luckow et al., J. Virol. 67: 4.566-79, 1.993). Este sistema, en el que se utilizan vectores de transferencia, es vendido en el conjunto Bac-to-Bac™ (Life Technologies, Rockville, Maryland, EE.UU.). En este sistema se utiliza un vector de transferencia, pFastBac1™ (Life Technologies), que contiene un transposón Tn7 para introducir el DNA que codifica el polipéptido BR43x2 en un genoma de baculovirus mantenido en E. coli como un plásmido grande llamado "bácmido"; véanse, Hill-Perkins y Possee, J. Gen. Virol. 71: 971-6, 1.990; Bonning et al., J. Gen. Virol. 75: 1.551-6, 1.994; y Chazenbalk y Rapoport, J. Biol. Chem. 270: 1.543-9, 1.995. Además, los vectores de transferencia pueden incluir una fusión en marco con DNA que codifica una etiqueta epitópica en el extremo C o N del polipéptido BR43x2 expresado, por ejemplo, una etiqueta epitópica Glu-Glu (Grussenmeyer et al., Proc. Natl. Acad. Sci. 82: 7.952-4, 1.985). Usando una técnica conocida en este campo técnico, se transforma E. coli con un vector de transferencia que contiene BR43x2 y se explora el vector en cuanto a bácmidos que contienen un gen LacZ interrumpido, indicativo de baculovirus recombinante. El DNA bacmídico que contiene el genoma de baculovirus recombinante es aislado usando técnicas habituales y es usado para transfectar células de Spodoptera frugiperda, por ejemplo, células Sf9. Posteriormente se produce el virus recombinante que expresa BR43x2. Se preparan reservas víricas recombinantes mediante métodos comúnmente usados en la técnica.
nº 5.162.222 y la publicación WIPO WO 94/06463. Las células de insecto pueden ser infectadas con un baculovirus recombinante, comúnmente procedente del virus de la polihedrosis nuclear de Autographa californica (AcNPV; del inglés, Autographa californica nuclear polyhedrosis virus); véanse King y Possee, The Baculovirus Expression System: A Laboratory Guide, Londres, Chapman & Hall; O'Reilly et al., Baculovirus Expression Vectors: A Laboratory Manual, New York, Oxford University Press, 1.994; y Richardson, redactor, Baculovirus Expression Protocols. Methods in Molecular Biology, Totowa, New Jersey, EE.UU., Humana Press, 1.995. En un segundo método para preparar un baculovirus con BR43x2 recombinante se usa un sistema basado en transposones descrito por Luckow (Luckow et al., J. Virol. 67: 4.566-79, 1.993). Este sistema, en el que se utilizan vectores de transferencia, es vendido en el conjunto Bac-to-Bac™ (Life Technologies, Rockville, Maryland, EE.UU.). En este sistema se utiliza un vector de transferencia, pFastBac1™ (Life Technologies), que contiene un transposón Tn7 para introducir el DNA que codifica el polipéptido BR43x2 en un genoma de baculovirus mantenido en E. coli como un plásmido grande llamado "bácmido"; véanse, Hill-Perkins y Possee, J. Gen. Virol. 71: 971-6, 1.990; Bonning et al., J. Gen. Virol. 75: 1.551-6, 1.994; y Chazenbalk y Rapoport, J. Biol. Chem. 270: 1.543-9, 1.995. Además, los vectores de transferencia pueden incluir una fusión en marco con DNA que codifica una etiqueta epitópica en el extremo C o N del polipéptido BR43x2 expresado, por ejemplo, una etiqueta epitópica Glu-Glu (Grussenmeyer et al., Proc. Natl. Acad. Sci. 82: 7.952-4, 1.985). Usando una técnica conocida en este campo técnico, se transforma E. coli con un vector de transferencia que contiene BR43x2 y se explora el vector en cuanto a bácmidos que contienen un gen LacZ interrumpido, indicativo de baculovirus recombinante. El DNA bacmídico que contiene el genoma de baculovirus recombinante es aislado usando técnicas habituales y es usado para transfectar células de Spodoptera frugiperda, por ejemplo, células Sf9. Posteriormente se produce el virus recombinante que expresa BR43x2. Se preparan reservas víricas recombinantes mediante métodos comúnmente usados en la técnica.
El virus recombinante es usado para infectar
células huésped, típicamente una línea celular procedente del
gusano cogollero del maíz, Spodoptera frugiperda; véase, en
general, Glick y Pasternak, Molecular Biotechnology: Principles
and Applications of Recombinant DNA, ASM Press, Washington,
Distrito de Columbia, EE.UU., 1.994. Otra línea celular adecuada es
la línea celular High FiveO™ (Invitrogen) procedente de
Trichoplusia ni (Patente de EE.UU.
nº 5.300.435). Se usan medios exentos de suero comercialmente asequibles para desarrollar y mantener las células. Son medios adecuados: Sf900 II™ (Life Technologies) y ESF 921™ (Expression Systems) para las células Sf9, y
Ex-cellO405™ (JRH Biosciences, Lenexa, Kansas, EE.UU.) y Express FiveO™ (Life Technologies) para las células de T. ni. Las células son desarrolladas desde una densidad de inoculación de aproximadamente 2-5 x 10^{5} células hasta una densidad de 1-2 x 10^{6} células, momento en que una reserva vírica recombinante es añadida con una multiplicidad de infección (MOI; del inglés, multiplicity of infection) de 0,1 a 10, más típicamente próxima a 3. Los procedimientos usados son generalmente descritos en manuales de laboratorio asequibles (King y Possee, ibídem; O'Reilly et al., ibídem; Richardson, ibídem). La subsiguiente purificación del polipéptido BR43x2 a partir del sobrenadante puede realizarse usando métodos aquí descritos.
nº 5.300.435). Se usan medios exentos de suero comercialmente asequibles para desarrollar y mantener las células. Son medios adecuados: Sf900 II™ (Life Technologies) y ESF 921™ (Expression Systems) para las células Sf9, y
Ex-cellO405™ (JRH Biosciences, Lenexa, Kansas, EE.UU.) y Express FiveO™ (Life Technologies) para las células de T. ni. Las células son desarrolladas desde una densidad de inoculación de aproximadamente 2-5 x 10^{5} células hasta una densidad de 1-2 x 10^{6} células, momento en que una reserva vírica recombinante es añadida con una multiplicidad de infección (MOI; del inglés, multiplicity of infection) de 0,1 a 10, más típicamente próxima a 3. Los procedimientos usados son generalmente descritos en manuales de laboratorio asequibles (King y Possee, ibídem; O'Reilly et al., ibídem; Richardson, ibídem). La subsiguiente purificación del polipéptido BR43x2 a partir del sobrenadante puede realizarse usando métodos aquí descritos.
Pueden también usarse células fúngicas,
incluyendo células de levadura, en el presente invento. Las
especies de levadura de particular interés a este respecto incluyen
Saccharomyces cerevisiae, Pichia pastoris y Pichia
methanolica. Métodos para transformar células de S.
cerevisiae con DNA exógeno y producir polipéptidos recombinantes
a partir de las mismas son descritos, por ejemplo, por Kawasaki,
Patente de EE.UU. nº 4.599.311; Kawasaki et al., Patente de EE.UU.
nº 4.931.373; Brake, Patente de EE.UU. nº 4.870.008; Welch et al.,
Patente de EE.UU. nº 5.037.743; y Murray et al., Patente de EE.UU.
nº 4.845.075. Las células transformadas son seleccionadas mediante
el fenotipo determinado por el marcador seleccionable, comúnmente la
resistencia a fármacos o la capacidad para crecer en ausencia de un
nutriente concreto (por ejemplo, leucina). Un sistema vector
preferido para uso en Saccharomyces cerevisiae es el sistema
vector POT1 descrito por Kawasaki et al. (Patente de EE.UU.
nº 4.931.373), que permite que las células transformadas sean
seleccionadas mediante crecimiento en medios que contienen glucosa.
Los promotores y terminadores adecuados para uso en levadura
incluyen los de genes de enzimas glicolíticas (véanse, por ejemplo,
Kawasaki, Patente de EE.UU. nº 4.599.311; Kingsman et al., Patente
de EE.UU. nº 4.615.974; y Bitter, Patente de EE.UU. nº 4.977.092) y
genes de alcohol deshidrogenasa; véanse también las Patentes de
EE.UU. números 4.990.446, 5.063.154, 5.139.936 y 4.661.454. En la
técnica se conocen sistemas de transformación para otras levaduras,
incluyendo Hansenula polymorpha, Schizosaccharomyces pombe,
Kluyveromyces lactis, Kluyveromyces fragilis, Ustilago maydis,
Pichia pastoris, Pichia methanolica, Pichia guillermondii y
Candida maltosa; véanse, por ejemplo, Gleeson et al., J.
Gen. Microbiol. 132: 3.459-65, 1.986, y
Cregg, Patente de EE.UU. nº 4.882.279. Pueden utilizarse células de
Aspergillus de acuerdo con los métodos de McKnight et al.,
Patente de EE.UU. nº 4.935.349. Sumino et al., Patente de EE.UU. nº
5.162.228, describen métodos para transformar Acremonium
chrysogenum. Lambowitz, Patente de EE.UU. nº 4.486.533, describe
métodos para transformar Neurospora.
Por ejemplo, el uso de Pichia methanolica
como huésped para la producción de proteínas recombinantes es
descrito por Raymond, Patente de EE.UU. nº 5.716.808, Raymond,
Patente de EE.UU. nº 5.736.383, Raymond et al., Yeast
14: 11-23, 1.998, y en la publicaciones
internacionales n^{os} WO 97/17450, WO 97/17451, WO 98/02536 y WO
98/02565. Las moléculas de DNA para uso en la transformación de
P. methanolica serán comúnmente preparadas como plásmidos
circulares de doble cadena que son preferiblemente linealizados
antes de la transformación. Para la producción de polipéptidos en
P. methanolica, se prefiere que el promotor y el terminador
del plásmido sean los de un gen de P. methanolica, tal como
un gen de utilización de alcohol de P. methanolica
(AUG1 o AUG2). Otros promotores útiles incluyen los
de los genes de dihidroxiacetona sintetasa (DHAS), formiato
deshidrogenasa (FMD) y catalasa (CAT). Para facilitar la
integración del DNA en el cromosoma huésped, se prefiere tener el
segmento de expresión completo del plásmido flanqueado por
secuencias de DNA huésped en ambos extremos. Un marcador
seleccionable preferido para utilización en Pichia
methanolica es un gen ADE2 de P. methanolica, que
codifica
fosforribosil-5-aminoimidazol
carboxilasa (AIRC; EC 4.1.1.21), que permite que células huésped
ade2 se desarrollen en ausencia de adenina. Para procesos
industriales a gran escala en que es deseable minimizar el uso de
metanol, se prefiere usar células huésped en que estén suprimidos
ambos genes de utilización de metanol (AUG1 y AUG2).
Para la producción de proteínas secretadas, se prefieren células
huésped deficientes en cuanto a genes de proteasas vacuolares
(PEP4 y PRB1). Se usa electroporación para facilitar
la introducción de un plásmido que contiene DNA que codifica un
polipéptido de interés en células de P. methanolica. Se
prefiere transformar células de P. methanolica por
electroporación usando un campo eléctrico de impulsos, que decae
exponencialmente, que tiene una intensidad de campo de 2,5 a 4,5
kV/cm, preferiblemente de aproximadamente 3,75 kV/cm, y una
constante de tiempo (t) de 1 a 40 milisegundos, muy preferiblemente
de aproximadamente 20 milisegundos.
Las células huésped procarióticas, incluyendo
cepas de las bacterias Escherichia coli, Bacillus y otros
géneros, son también células huésped útiles en el presente invento.
Las técnicas para transformar estos huéspedes y hacer que se
expresen secuencias de DNA extrañas en ellos clonadas son bien
conocidas en este campo técnico (véase, por ejemplo, Sambrook et
al., ibídem). Cuando se expresa un polipéptido BR43x2 en bacterias
tales como E. coli, el polipéptido puede quedar retenido en
el citoplasma, típicamente como gránulos insolubles, o puede ser
dirigido al espacio periplásmico por una secuencia de secreción
bacteriana. En el primer caso, las células son lisadas y los
gránulos son recuperados y son desnaturalizados usando, por
ejemplo, urea o isotiocianato de guanidina. El polipéptido
desnaturalizado puede luego volverse a plegar y dimerizarse al
diluir el agente desnaturalizante, tal como mediante diálisis
frente a una disolución de urea y una combinación de glutatión
reducido y oxidado, seguida de diálisis frente a una disolución
salina tamponada. En el segundo caso, el polipéptido puede ser
recuperado del espacio periplásmico en una forma soluble y funcional
al romper las células (mediante, por ejemplo, sonicación o choque
osmótico) para que liberen los contenidos del espacio periplásmico y
recuperar la proteína, obviándose por ello la necesidad de
desnaturalización y replegadura.
Las células huésped transformadas o transfectadas
son cultivadas de acuerdo con procedimientos convencionales en un
medio de cultivo que contiene nutrientes y otros componentes
requeridos para el desarrollo de las células huésped escogidas. En
la técnica se conoce una diversidad de medios adecuados, incluyendo
medios definidos y medios complejos, medios que incluyen
generalmente una fuente de carbono, una fuente de nitrógeno,
aminoácidos esenciales, vitaminas y minerales. Los medios pueden
también contener componentes tales como factores de crecimiento o
suero, según se requiera. El medio de desarrollo seleccionará
generalmente las células que contengan el DNA exógenamente añadido,
mediante, por ejemplo, selección por fármacos o deficiencia en un
nutriente esencial que es complementado por el marcador
seleccionable llevado por el vector de expresión o introducido por
cotransfección en la célula huésped. Las células de P.
methanolica son cultivadas en un medio que comprende fuentes
adecuadas de carbono, nitrógeno y oligonutrientes a una temperatura
de aproximadamente 25ºC a 35ºC. Los cultivos líquidos son provistos
de una aireación suficiente por medios convencionales, tales como el
sacudimiento de pequeños matraces o el burbujeo en fermentadores.
Un medio de cultivo preferido para P. methanolica es YEPD
[D-glucosa al 2%, peptona Bacto™ (Difco
Laboratories, Detroit, Michigan, EE.UU.) al 2%, extracto de
levadura Bacto™ (Difco Laboratories) al 1%, adenina al 0,004% y
L-leucina al 0,006%].
Los polipéptidos BR43x2 recombinantes expresados
(o polipéptidos BR43x2 quiméricos o de fusión) pueden ser
purificados usando fraccionamiento y/o métodos y medios para
purificación convencionales. Se prefiere obtener las proteínas o
polipéptidos del presente invento en una forma muy purificada, es
decir, con una pureza superior a 95%, más preferiblemente superior
a 99%. Pueden usarse precipitación por sulfato amónico y extracción
por ácidos o agentes caotrópicos para el fraccionamiento de las
muestras. Las operaciones de purificación ejemplares pueden incluir
hidroxiapatito, exclusión por tamaños, cromatografía líquida de
resolución rápida para proteínas y cromatografía líquida de alta
eficacia en fase inversa. Los medios de intercambio aniónico
adecuados incluyen dextranos derivatizados, agarosa, celulosa,
poliacrilamida, sílices especiales. y similares. Se prefieren los
derivados de PEI, DEAE, QAE y Q, siendo particularmente preferido
el DEAE Fast-Flow Sepharose (Pharmacia, Piscataway,
New Jersey, EE.UU.). Los medios cromatográficos ejemplares incluyen
los medios derivatizados con grupos fenilo, butilo u octilo, tales
como Phenyl-Sepharose FF (Pharmacia), Toyopearl
Butyl 650 (Toso Haas, Montgomeryville, Pennsylvania, EE.UU.),
Octyl-Sepharose (Pharmacia) y similares; y resinas
poliacrílicas tales como Amberchrom CG 71 (Toso Haas) y similares.
Los soportes sólidos adecuados incluyen glóbulos de vidrio, resinas
basadas en sílice, resinas celulósicas, glóbulos de agarosa,
glóbulos de agarosa reticulada, glóbulos de poliestireno, resinas de
poliacrilamida reticulada y similares, que son insolubles bajo las
condiciones en que se van a usar. Estos soportes pueden ser
modificados con grupos reactivos que permiten la fijación de
proteínas por grupos amino, grupos carboxilo, grupos sulfhidrilo,
grupos hidroxilo y/o restos de carbohidrato. Los ejemplos de
químicas de copulación incluyen activación con bromuro de
cianógeno, activación con N-hidroxisuccinimida,
activación con epóxido, activación con sulfhidrilo, activación con
hidrazida, y derivados carboxílicos y amínicos para químicas de
copulación con carbodiimida. Estos y otros medios sólidos son bien
conocidos y ampliamente usados en la técnica, y son asequibles de
proveedores comerciales. Los métodos para unir polipéptidos
receptores a medios de soporte son bien conocidos en la técnica. La
selección de un método concreto es una cuestión de diseño rutinario
y viene determinada en parte por las propiedades del soporte
elegido; véase, por ejemplo, Affinity Chromatography:
PrinciplesMethods, Pharmacia LKB Biotechnology, Uppsala,
Suecia, 1.988.
Los polipéptidos del presente invento pueden ser
aislados por explotación de sus propiedades físicas. Por ejemplo,
puede usarse cromatografía de adsorción sobre iones metálicos
inmovilizados (IMAC; del immobilized metal ion
adsorption chromatography) para purificar proteínas
ricas en histidina, incluyendo las que comprenden etiquetas de
polihistidina. En resumen, se carga primero un gel con iones
metálicos divalentes para formar un quelato (Sulkowski, Trends in
Biochem. 3: 1-7, 1.985). Las proteínas
ricas en histidina quedarán adsorbidas en esta matriz con
diferentes afinidades, que dependerán del ion metálico usado, y
serán eluidas por elución competitiva, reducción del pH o uso de
agentes quelantes fuertes. Otros métodos de purificación incluyen
la purificación de proteínas glicosiladas por cromatografía de
afinidad sobre lectina y cromatografía de intercambio iónico
(Methods in Enzymol., volumen 182, "Guide to Protein
Purification", redactado por M. Deutscher, Acad. Press, San
Diego, 1.990, páginas 529-39). En realizaciones
adicionales del invento, puede construirse una fusión del
polipéptido de interés y una etiqueta de afinidad {por ejemplo,
proteína ligante de maltosa, etiqueta FLAG [Asp Tyr Lys Asp Asp Asp
Asp Lys (ID. SEC. nº 13)], etiqueta Glu-Glu [Glu
Glu Tyr Met Pro Met Glu (ID. SEC. nº 14)] o un dominio
inmunoglobulínico} para facilitar la purificación.
Pueden usarse ventajosamente procedimientos para
la replegadura (y, opcionalmente, reoxidación) de proteínas. Se
prefiere purificar la proteína hasta una pureza > 80%, más
preferiblemente hasta una pureza > 90% y, aún más
preferiblemente, > 95%, y se prefiere particularmente un estado
farmacéuticamente puro, es decir, más de 99,9% puro con respecto a
macromoléculas contaminantes, particularmente otras proteínas y
ácidos nucleicos, y exento de agentes infecciosos y pirógenos.
Preferiblemente, una proteína purificada está sustancialmente exenta
de otras proteínas, particularmente de otras proteínas de origen
animal.
Los polipéptidos BR43x2 pueden ser también
preparados mediante síntesis química. Los polipéptidos BR43x2
ejemplares incluyen polipéptidos con una longitud de
32-40 restos, que tienen una secuencia de
aminoácidos que se ajusta al motivo: XXCX [QEK] [QEKNRDHS] [QE] X
{0-2} [YFW] [YFW] DXLLX {2} C [IMLV] XCX {3} CX
{6-8} CX {2} [YF] CXX (ID. SEC. nº 10), y sujeta a
las limitaciones aquí descritas.
Los polipéptidos BR43x2 pueden ser sintetizados
mediante síntesis exclusivamente en fase sólida, métodos
parcialmente en fase sólida, condensación de fragmentos o síntesis
clásica en disolución. Los polipéptidos son preferiblemente
preparados mediante síntesis peptídica en fase sólida.
El presente invento proporciona además una
diversidad de otras fusiones polipeptídicas y proteínas multímeras
relacionadas que comprenden una o más fusiones polipeptídicas. Un
polipéptido BR43x2, TACI o BCMA soluble puede expresarse como una
fusión con una región constante de cadena pesada de inmunoglobulina,
típicamente un fragmento F_{c}, que contiene dos dominios de
región constante y carece de la región variable. En las Patentes de
EE.UU. n^{os} 5.155.027 y 5.567.584 se describen métodos para
preparar tales fusiones. Tales fusiones son típicamente secretadas
como moléculas multímeras en que las porciones Fc están unidas
entre sí por enlaces disulfuro y dos polipéptidos no
inmunoglobulínicos están dispuestos en estrecha proximidad entre
sí. Las fusiones de inmunoglobulina-polipéptido
BR43x2 (TACI o BCMA) pueden expresarse en células genéticamente
creadas, para producir una diversidad de compuestos análogos a
BR43x2 multímeros. Pueden fusionarse dominios auxiliares a
polipéptidos BR43x2 (TACI o BCMA) para dirigirlos a células, tejidos
o macromoléculas específicos. Pueden prepararse también fusiones
usando toxinas, como aquí se discute. De este modo, polipéptidos y
proteínas pueden ser dirigidos con fines terapéuticos o
diagnósticos. Un polipéptido BR43x2 puede ser fusionado con dos o
más grupos, tales como una etiqueta de afinidad para purificación y
un dominio de direccionamiento. Las fusiones polipeptídicas pueden
comprender también uno o más sitios de escisión, particularmente
entre dominios; véase Tuan et al., Connect. Tiss. Res.
34: 1-9, 1.996.
El invento también proporciona receptores BR43x2
solubles y fragmentos polipeptídicos usados para formar proteínas
de fusión con marcadores o etiquetas de afinidad. Las proteínas de
fusión de BR43x2 soluble-etiqueta de afinidad se
usan, por ejemplo, para identificar los ligandos de BR43x2 así como
los agonistas y antagonistas del ligando natural. Usando BR43x2
soluble marcado, las células que expresan el ligando, agonistas o
antagonistas son identificadas por inmunocitometría o
inmunohistoquímica de fluorescencia. Las proteínas de fusión
solubles son útiles para estudiar la distribución del ligando en
tejidos o linajes celulares específicos y para hacerse una idea de
la biología de receptores/ligandos.
Para purificar el ligando, agonistas o
antagonistas, se añade una proteína de fusión de
BR43x2-Ig a una muestra que contiene el ligando,
agonista o antagonista bajo unas condiciones que facilitan la unión
receptor-ligando (típicamente una temperatura, un pH
y una fuerza iónica casi fisiológicos). El complejo receptor-
ligando es luego separado de la mezcla usando proteína A que está
inmovilizada sobre un soporte sólido (por ejemplo, glóbulos de
resina insoluble). El ligando, agonista o antagonista es luego
eluido usando técnicas químicas convencionales, tal como con un
gradiente de sal o pH. Como alternativa, la propia proteína de
fusión puede ser unida a un soporte sólido, llevándose a cabo la
unión y la elución como antes. Los medios resultantes estarán
generalmente configurados en forma de una columna, y los fluidos que
contienen el ligando son hechos pasar a través de la columna una o
más veces para permitir que el ligando se una al polipéptido
receptor. El ligando es luego eluido usando cambios de
concentración salina, agentes caotrópicos (MnCl_{2}) o pH para
deshacer la unión ligando-receptor.
Para dirigir la exportación del receptor soluble
desde la célula huésped, el DNA del receptor soluble es unido a un
segundo segmento de DNA que codifica un péptido secretor, tal como
un péptido secretor t-PA. Para facilitar la
purificación del dominio receptor secretado, una extensión N- o
C-terminal, tal como una etiqueta de afinidad u
otro polipéptido o proteína para el que se dispone de un anticuerpo
u otro agente ligante específico, puede ser fusionada con el
polipéptido receptor.
En la Figura 2 se muestra un análisis gráfico de
Scatchard para la unión de I^{125}-ztnf4 soluble
a TACI y BCMA, y en la Tabla 7 se compara con las constantes de
unión de otros miembros de la familia de TNFR.
Ligando | Kd M | Fuente celular | Referencia |
TNFa alto | 7,14E-11 | HL-60 | a |
TNFa bajo | 3,26E-10 | HEP-2 | a |
TNFa alto | 2,00E-10 | HL-60 | b |
CD27L | 3,70E-10 | MP-1 | c |
CD27L | 8,30E-09 | MP-1 | c |
CD40L | 5,00E-10 | EL40.5 | d |
CD40L | 1,00E-09 | EBNA | d |
(125I-CD40) | |||
Ligando | Kd M | Fuente celular | Referencia |
4-1BBL | 1,16E-09 | Biacore | e |
Anti-41BBmab | 4,14E-10 | Biacore | e |
ztnf4 sol. | 1,11E-09 | TACI-BHK | |
ztnf4 sol. | 1,25E-09 | BCMA-BHK | |
a Hohmann et al., J. Biol. Chem. 264: 14.927-34, 1.989 | |||
b Manna y Aggarwal, J. Biol. Chem. 273: 33.333-41, 1.998 | |||
c Goodwin et al., Cell 73: 447-56, 1.993 | |||
d Armitage et al., Nature 357: 80-82, 1.992 | |||
e Shuford et al., J. Exp. Med. 186: 47-55, 1.997 |
Mediante análisis por FACS (Flow Cytometry and
Sorting, redactado por Melamed et al., Wiley-Liss,
1.990, e Immunofluorescence and Cell Sorting, Current Protocols in
Immunology, volumen 1, redactado por Coligan et al., John Wiley
& Son, 1.997), se halló que ztnf4 (5 ng/ml) se une a BR43x2 (ID.
SEC. nº 2), TACI (ID. SEC. nº 6), BCMA (ID. SEC. nº 8) y BR43x1
(ID. SEC. nº 9). Usando análisis por FACS, también se mostró que
ztnf4 soluble, marcado con FITC, se une específicamente a, entre
otros, linfocitos B de PBMNCs, células amigdalinas, líneas celulares
de linfomas de células B (Raji, linfoma humano de Burkitt, ATCC
CCL86), Ramos (línea celular de linfoma de Burkitt, ATCC
CRL-1596), Daudi (linfoma humano de Burkitt, ATCC
CCL213) y RPMI 1788 (una línea celular de linfocitos B, ATCC
CCL-156). No se vio unión con HL-60
(una línea celular promielocítica, ATCC CCL-240). La
especificidad de la unión a células B procedentes de PBMNC y
células amigdalinas fue confirmada por cotinción con anticuerpos
hacia moléculas específicas de células B, incluyendo CD19, IgD, IgM
y CD20. La similitud entre ztnf4 y CD40L sugería una distribución
tisular más amplia que la vista. Usando, por ejemplo, ensayos de
proliferación de citoquinas y proliferación de células T, se
analizó la afinidad de ztnf4 por monocitos, células dendríticas y
células T purificadas, y no pudo detectarse la unión de ztnf4 ni
ningún otro efecto biológico sobre ningún otro tipo de célula
analizada. Por lo tanto, la especificidad de las células B por el
ligando y el receptor sugiere que son útiles para el estudio y el
tratamiento de la autoinmunidad, cánceres de células B,
inmunomodulación, enfermedad intestinal inflamatoria y patologías
mediadas por anticuerpos, tales como, por ejemplo, púrpura
trombocitopénica idiopática, miastenia gravis y similares,
enfermedades renales, respuesta inmune de células T indirecta,
rechazo de injertos, y enfermedad del injerto contra el huésped.
Se ha mostrado que ztnf4 activa células B dando
lugar a proliferación de células B, producción de anticuerpos y
suprarregulación de marcadores de activación in vitro
(véanse los ejemplos posteriores). Puede que estos efectos requieran
una coestimulación por medio de IL-4 u otras
citoquinas, o una estimulación a través del receptor antigénico de
la célula B u otros receptores de la superficie celular que activan
las células B, es decir, CD40. Otros ligandos del factor de necrosis
tumoral, tales como gp39 y TNF\beta, también estimulan la
proliferación de células B. De este modo, los polipéptidos del
invento actual pueden ser dirigidos para que regulen
específicamente las respuestas de las células B, inhibiendo las
células B activadas, durante la respuesta inmune sin que afecten a
otras poblaciones celulares, lo que es ventajoso en el tratamiento
de la enfermedad. Además, los polipéptidos del presente invento
podrían ser usados para modular el desarrollo de células B, el
desarrollo de otras células, la producción de anticuerpos y la
producción de citoquinas. Los polipéptidos BR43x2 pueden hallar
también uso en la inducción de apoptosis y/o anergia en células.
Los polipéptidos del presente invento podrían también modular la
comunicación entre células T y B al neutralizar los efectos
proliferativos de ztnf4. Se dispone de bioensayos y ELISAs para
medir la respuesta celular a ztnf4 en presencia de BR43x2, TACI y/o
BCMA solubles. Otros ensayos incluyen aquellos en que se miden
cambios en la producción de citoquinas como una medida de la
respuesta celular (véase, por ejemplo, Current Protocols in
Immunology, redactado por John E. Coligan et al., NIH, 1.996).
Los ensayos para medir otras respuestas celulares incluyen isotipo
de anticuerpo, activación de monocitos, formación de células
asesinas naturales (NK; del inglés, natural killer),
función de célula presentadora de antígeno (APC; del inglés,
antigen presenting cell), y apoptosis.
Los polipéptidos BR43x2 del presente invento
serían útiles en la preparación de un medicamento para neutralizar
los efectos de ztnf4 con objeto de tratar leucemias de células B o
pre-B, tales como leucemia de células plasmáticas,
leucemia linfocítica crónica o aguda, mielomas tales como mieloma
múltiple, mieloma de células plasmáticas, mieloma endotelial y
mieloma de células gigantes; y linfomas tales como linfoma no
Hodgkin, con las que se asocia un aumento de polipéptidos ztnf4. El
BR43x2 soluble sería un componente útil de un medicamento para
inhibir el progreso y la supervivencia de tumores.
\newpage
Un análisis por transferencia Northern mostró que
ztnf4 se expresa en células CD8^{+}, monocitos, dendrocitos, y
monocitos activados. Esto sugiere que, en algunos trastornos
autoinmunes, células T citotóxicas podrían estimular la producción
de células B a través de una producción de ztnf4 en exceso. Las
proteínas inmunosupresoras que bloquean selectivamente la acción de
los linfocitos B servirían para tratar la enfermedad. La producción
de autoanticuerpos es común a diversas enfermedades autoinmunes y
contribuye a la destrucción tisular y la exacerbación de la
enfermedad. Los autoanticuerpos pueden conducir también a la
existencia de complicaciones por depósitos de complejos inmunes y
conducir a muchos síntomas del lupus sistémico eritematoso,
incluyendo insuficiencia renal, síntomas neurálgicos y muerte. La
modulación de una producción de anticuerpos independiente de
respuesta celular sería también beneficiosa en muchos estados
morbosos. Se ha mostrado también que las células B desempeñan una
función en la secreción de inmunoglobulinas artritogénicas en la
artritis reumatoide (Korganow et al., Immunity 10:
451-61, 1.999). Como tal, la inhibición de la
producción de anticuerpos hacia ztnf4 sería beneficiosa en el
tratamiento de enfermedades autoinmunes tales como la miastenia
gravis y la artritis reumatoide. Los agentes terapéuticos
inmunosupresores, tales como BR43x2 soluble, que bloquean o
neutralizan selectivamente la acción de linfocitos B serían útiles
para tales fines. Para verificar estas capacidades en polipéptidos
receptores solubles BR43x2 del presente invento, dichos
polipéptidos BR43x2 son evaluados usando ensayos conocidos en la
técnica y aquí descritos.
El invento proporciona métodos en que se emplean
polipéptidos, fusiones, anticuerpos, agonistas o antagonistas de
BR43x2, TACI o BCMA para bloquear o neutralizar selectivamente las
acciones de células B en asociación con enfermedades renales de
fase terminal, las cuales pueden estar asociadas o no con
enfermedades autoinmunes. Tales métodos serían también útiles para
tratar enfermedades renales inmunológicas. Tales métodos serían
útiles para tratar la glomerulonefritis asociada con enfermedades
tales como nefropatía membranosa, nefropatía por IgA o enfermedad
de Berger, nefropatía por IgM, enfermedad de Goodpasture,
glomerulonefritis posinfecciosa, enfermedad mesangioproliferativa y
síndrome nefrótico de cambio mínimo. Tales métodos servirían también
como aplicaciones terapéuticas para tratar la glomerulonefritis o
vasculitis secundarias asociadas con enfermedades tales como lupus,
poliarteritis, púrpura de Henoch-Schonlein,
esclerodermia, enfermedades relacionadas con el virus de la
inmunodeficiencia humana, amiloidosis y síndrome urémico hemolítico.
Los métodos del presente invento también serían útiles como parte
de una aplicación terapéutica para tratar la nefritis o
pielonefritis intersticiales asociadas con pielonefritis crónica,
abuso de analgésicos, nefrocalcinosis, nefropatía causada por otros
agentes, nefrolitiasis, o nefritis intersticial crónica o
aguda.
Los métodos del presente invento también incluyen
el uso de polipéptidos, fusiones, anticuerpos, agonistas o
antagonistas de BR43x2, TACI o BCMA en el tratamiento de
enfermedades hipertensivas o de grandes vasos, incluyendo estenosis
u oclusión de arterias renales y émbolos de colesterol o émbolos
renales.
El presente invento también proporciona métodos
para el diagnóstico y tratamiento de neoplasias renales o
urológicas, mielomas múltiples, linfomas, neuropatía de cadenas
ligeras o amiloidosis.
El invento también proporciona métodos para
bloquear o inhibir células B activadas, usando polipéptidos,
fusiones, anticuerpos, agonistas o antagonistas de BR43x2, TACI o
BCMA para el tratamiento del asma y otras enfermedades crónicas de
las vías aéreas, tales como bronquitis y enfisema.
También se proporcionan métodos para inhibir o
neutralizar una respuesta de células T efectoras usando
polipéptidos, fusiones, anticuerpos, agonistas o antagonistas de
BR43x2, TACI o BCMA para uso en inmunosupresión, en particular para
un uso terapéutico tal como para la enfermedad del injerto contra el
huésped y el rechazo de injertos. Se hallaría un uso adicional en
la regulación de la respuesta inmune, en particular la activación y
regulación de linfocitos. Los polipéptidos, fusiones, anticuerpos,
agonistas o antagonistas de BR43x2, TACI o BCMA serían útiles en
terapias para tratar inmunodeficiencias. Los polipéptidos,
fusiones, anticuerpos, agonistas o antagonistas de BR43x2, TACI o
BCMA serían útiles en protocolos terapéuticos para el tratamiento
de enfermedades autoinmunes tales como la diabetes mellitus
dependiente de insulina (IDDM; del inglés, insulin
dependent diabetes mellitus) y la enfermedad
de Crohn. Los métodos del presente invento tendrían un valor
terapéutico adicional para tratar enfermedades inflamatorias
crónicas, en particular para reducir el dolor articular, la
hinchazón, la anemia y otros síntomas asociados, así como para
tratar el shock séptico.
El efecto de los polipéptidos y proteínas de
fusión solubles de BR43x2, TACI o BCMA sobre la respuesta inmune
puede ser medido por administración de los polipéptidos del presente
invento a animales inmunizados con antígeno, seguida de inyección
de ztnf4 y medición de la producción de isotipos de anticuerpos y
las respuestas de células B y T, incluyendo hipersensibilidad de
tipo retardado y producción de citoquinas y proliferación in
vitro de acuerdo con los métodos conocidos en la técnica.
Por lo tanto, el presente invento proporciona el
uso de un compuesto en la fabricación de un medicamente para
inhibir la actividad de ztnf4 en un mamífero, compuesto que es
seleccionado del grupo que consiste en: a) un polipéptido de ID.
SEC. nº 4, b) un polipéptido de ID. SEC. nº 8, c) una proteína de
fusión, d) un polipéptido del resto 1 al resto 166 de aminoácido de
la ID. SEC. nº 6, e) un polipéptido del resto 1 al resto 150 de
aminoácido de la ID. SEC. nº 8, f) un anticuerpo o fragmento de
anticuerpo que se une específicamente a un polipéptido de ID. SEC.
nº 4, y g) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se une
específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 10. Los ejemplos de
proteínas de fusión incluyen fusiones de BR43x2 (ID. SEC. nº 4),
TACI (del resto 1 al resto 166 de aminoácido de la ID. SEC. nº 6) o
BCMA (del resto 1 al resto 150 de aminoácido de la ID. SEC. nº 8)
solubles con otro polipéptido, preferiblemente un fragmento F_{c}
de regiones constantes de cadenas pesadas inmunoglobulínicas. El
invento proporciona similarmente un método para preparar un
medicamento para inhibir el acoplamiento receptor BR43x2, TACI o
BCMA-ligando.
Dichos métodos serían particularmente útiles
donde la actividad de ztnf4 está asociada con linfocitos B
activados y para tratar cánceres de células pre-B o
células B. Dichos métodos también serían útiles donde la actividad
de ztnf4 está asociada con la producción de anticuerpos, en
particular, la producción de anticuerpos asociada con enfermedades
autoinmunes tales como lupus sistémico eritematoso, miastenia
gravis y artritis reumatoide.
El sistema de adenovirus puede ser también usado
para la producción de proteínas in vitro. Al cultivar
células no 293, infectadas con adenovirus, en condiciones bajo las
cuales las células no se dividen rápidamente, las células pueden
producir proteínas durante periodos de tiempo prolongados. Por
ejemplo, células BHK son dejadas crecer hasta confluencia en
fábricas de células y son luego expuestas al vector adenovírico que
codifica la proteína secretada de interés. Las células son luego
dejadas crecer bajo condiciones exentas de suero, lo que permite que
las células infectadas sobrevivan durante varias semanas sin una
división celular significativa. Alternativamente, células 293S
infectadas con vector adenovírico pueden ser dejadas crecer en un
cultivo en suspensión con una densidad celular relativamente
elevada, para producir cantidades significativas de proteína (véase
Garnier et al., Cytotechnol. 15: 145- 55, 1.994). Con
cualquier protocolo, una proteína heteróloga expresada y secretada
puede ser repetidamente aislada del sobrenadante del cultivo
celular. En el protocolo de producción de células 293S infectadas,
también pueden obtenerse eficazmente proteínas no secretadas.
Se dispone de modelos animales bien establecidos
para ensayar la eficacia in vivo de los polipéptidos BR43x2,
TACI o BCMA solubles del presente invento en ciertos estados
morbosos.
Para medir el efecto sobre la respuesta de
células B, puede obtenerse la respuesta inmune en animales
sometidos a una estimulación antigénica regular (por ejemplo,
ovoalbúmina o colágeno) seguida de la administración de polipéptidos
BR43x2, TACI o BCMA o fusiones-Ig solubles.
Pueden usarse estudios farmacocinéticos en
asociación con polipéptidos o fusiones de BR43x2, TACI o BCMA
solubles y radiomarcados, para determinar la distribución y la
semivida de dichos polipéptidos in vivo. Además, pueden
usarse modelos animales para determinar los efectos de BR43x2, TACI
o BCMA solubles sobre tumores y desarrollo de tumores in
vivo.
También se proporciona el uso de polipéptidos
BR43x2, TACI o BCMA como marcadores sustitutivos para enfermedades
autoinmunes, enfermedades renales y enfermedades de células B y T.
Puede extraerse sangre de dichos pacientes y pueden detectarse los
receptores solubles BR43x2, TACI o BCMA y sus ligandos en la
sangre.
El invento también proporciona usos de
anticuerpos en la preparación de medicamentos. Pueden obtenerse
anticuerpos hacia BR43x2 o péptidos que tienen una secuencia de
aminoácidos de ID. SEC. nº 8 usando, por ejemplo, como un antígeno,
el producto de un vector de expresión que contiene el polipéptido de
interés, o un polipéptido aislado de una fuente natural. Son
particularmente útiles los anticuerpos que se "unen
específicamente" con BR43x2 o péptidos que tienen una secuencia
de aminoácidos de ID. SEC. nº 10. Se considera que los anticuerpos
se unen específicamente si los anticuerpos se unen a un polipéptido
BR43x2 o a un polipéptido de ID. SEC. nº 8, péptido o epítopo con
una afinidad de unión (K_{a}) de 10^{6} M^{-1} o mayor,
preferiblemente de 10^{7} M^{-1} o mayor, más preferiblemente de
10^{8} M^{-1} o mayor, y muy preferiblemente de 10^{9}
M^{-1} o mayor. La afinidad de unión de un anticuerpo puede ser
fácilmente determinada por quien tiene una experiencia normal en la
técnica mediante, por ejemplo, un análisis de Scatchard (Scatchard,
Ann. NY Acad. Sci. 51: 660, 1.949). Los anticuerpos
adecuados incluyen anticuerpos que se unen a BR43x2, en particular
al dominio extracelular de BR43x2 (restos de aminoácido
1-120 de la ID. SEC. nº 2), y aquellos que se unen
a polipéptidos que tienen una secuencia de aminoácidos de ID. SEC.
nº 10.
Pueden producirse anticuerpos
anti-BR43x2 usando péptidos y polipéptidos
antigénicos que llevan epítopos de BR43x2. Los péptidos y
polipéptidos antigénicos del presente invento que llevan epítopos
contienen una secuencia de al menos nueve, preferiblemente de entre
15 y aproximadamente 30, aminoácidos contenida en la ID.
SEC.
nº 2. Sin embargo, los péptidos o polipéptidos que comprenden una porción mayor de una secuencia de aminoácidos del invento, que contienen de 30 a 50 aminoácidos, o cualquier longitud de hasta, e inclusive, la secuencia entera de aminoácidos de un polipéptido del invento, son también útiles para inducir anticuerpos que se unen a BR43x2. Es deseable que la secuencia de aminoácidos del péptido que lleva epítopos sea seleccionada para que proporcione una solubilidad sustancial en disolventes acuosos (es decir, la secuencia incluye restos relativamente hidrófilos, mientras que los restos hidrófobos son preferiblemente evitados). A partir de un gráfico de hidrofobia, véanse, por ejemplo, Hopp y Woods (Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78: 3.824-8, 1.981), y Kyte y Doolittle (J. Mol. Biol. 157: 105-142, 1.982), un experto en la técnica puede prever péptidos hidrófilos. Además, las secuencias de aminoácidos que contienen restos de prolina pueden ser también deseables para la producción de anticuerpos.
nº 2. Sin embargo, los péptidos o polipéptidos que comprenden una porción mayor de una secuencia de aminoácidos del invento, que contienen de 30 a 50 aminoácidos, o cualquier longitud de hasta, e inclusive, la secuencia entera de aminoácidos de un polipéptido del invento, son también útiles para inducir anticuerpos que se unen a BR43x2. Es deseable que la secuencia de aminoácidos del péptido que lleva epítopos sea seleccionada para que proporcione una solubilidad sustancial en disolventes acuosos (es decir, la secuencia incluye restos relativamente hidrófilos, mientras que los restos hidrófobos son preferiblemente evitados). A partir de un gráfico de hidrofobia, véanse, por ejemplo, Hopp y Woods (Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78: 3.824-8, 1.981), y Kyte y Doolittle (J. Mol. Biol. 157: 105-142, 1.982), un experto en la técnica puede prever péptidos hidrófilos. Además, las secuencias de aminoácidos que contienen restos de prolina pueden ser también deseables para la producción de anticuerpos.
Pueden prepararse anticuerpos policlonales hacia
proteína BR43x2 recombinante o hacia BR43x2 aislado de fuentes
naturales, usando métodos bien conocidos por quienes tienen
experiencia en la técnica; véanse, por ejemplo, Green et al.,
"Production of Polyclonal Antisera" en Immunochemical
Protocols (redactado por Manson), páginas 1-5
(Humana Press, 1.992), y Williams et al., "Expression of foreign
proteins in E. coli using plasmid vectors and purification of
specific polyclonal antibodies" en DNA Cloning 2: Expressión
Systems, 2ª edición, Glover et al. (redactores), página 15
(Oxford University Press, 1.995). La inmunogenicidad de un
polipéptido BR43x2 puede ser aumentada mediante el uso de un
adyuvante, tal como alúmina (hidróxido de aluminio) o adyuvante
completo o incompleto de Freund. Los polipéptidos útiles para
inmunización también incluyen polipéptidos de fusión, tales como las
fusiones de BR43x2 o una porción del mismo con un polipéptido
inmunoglobulínico o con la proteína ligante de maltosa (MBP; del
inglés, maltose binding protein). El inmunógeno
polipeptídico puede ser una molécula de longitud completa o una
porción de la misma. Si la porción polipeptídica es de "tipo
hapteno", dicha porción puede ser ventajosamente unida o
enlazada a un vehículo macromolecular [tal como hemocianina de
Fissurella (KLH; del inglés, keyhole limpet
hemocyanin), albúmina sérica bovina (BSA; del inglés,
bovine serum albumin) o toxoide tetánico] para
inmunización.
Aunque los anticuerpos policlonales son
típicamente generados en animales tales como caballos, vacas,
perros, gallinas, ratas, ratones, conejos, hámsters, cobayas,
cabras u ovejas, un anticuerpo anti-BR43x2 del
presente invento puede también proceder de un anticuerpo de primate
subhumano. En, por ejemplo, Goldenberg et al., publicación de
patente internacional nº WO 91/11465, y en Losman et al., Int.
J. Cancer 46: 310, 1.990, pueden hallarse técnicas
generales para generar anticuerpos diagnóstica y terapéuticamente
útiles en babuinos. Pueden también generarse anticuerpos en animales
transgénicos tales como ovejas, vacas, cabras y cerdos transgénicos,
y puede hacerse que aquellos se expresen en levaduras y hongos en
formas modificadas así como en células de mamíferos e insectos.
Alternativamente, pueden generarse anticuerpos
anti-BR43x2 monoclonales. Pueden obtenerse
anticuerpos monoclonales de roedor hacia antígenos específicos
mediante métodos conocidos por los expertos en la técnica [véanse,
por ejemplo, Kohler et al., Nature 256: 495, 1.975,
Coligan et al. (redactores), Current Protocols in
Immunology, volumen 1, páginas 2.5.1-2.6.7 (John
Wiley & Sons, 1.991), Picksley et al., "Production of
monoclonal antibodies against proteins expressed in E.
coli" en DNA Cloning 2: Expressión Systems, 2ª
edición, Glover et al. (redactores), página 93 (Oxford University
Press, 1.995)].
En resumen, pueden obtenerse anticuerpos
monoclonales al inyectar una composición que comprende un producto
del gen de BR43x2 a ratones, verificar la presencia de producción de
anticuerpos tras extraer una muestra de suero, extraer el bazo para
obtener linfocitos B, fusionar los linfocitos B con células de
mieloma para producir hibridomas, clonar los hibridomas,
seleccionar los clones positivos que producen anticuerpos hacia el
antígeno, cultivar los clones que producen anticuerpos hacia el
antígeno, y aislar los anticuerpos de los cultivos de
hibridomas.
Además, un anticuerpo anti-BR43x2
del presente invento puede proceder de un anticuerpo monoclonal
humano. Los anticuerpos monoclonales humanos se obtienen de ratones
transgénicos que han sido creados para que produzcan anticuerpos
humanos específicos en respuesta a una estimulación antigénica. En
esta técnica, se introducen elementos del locus humano de las
cadenas pesada y ligera en cepas de ratones procedentes de líneas
celulares pluripotenciales embrionarias que contienen alteraciones
específicas de los loci de la cadena pesada y la cadena ligera
endógenas. Los ratones transgénicos pueden sintetizar anticuerpos
humanos específicos para antígenos humanos, y los ratones pueden ser
usados para producir hibridomas que secreten anticuerpos humanos.
Por ejemplo, Green et al., Nat. Genet. 7: 13, 1.994,
Lonberg et al., Nature 368: 856, 1.994, y Taylor et
al., Int. Immun. 6: 579, 1.994, describen métodos
para obtener anticuerpos humanos a partir de ratones
transgénicos.
Los anticuerpos monoclonales pueden ser aislados
y purificados de cultivos de hibridomas mediante una diversidad de
técnicas bien establecidas. Dichas técnicas de aislamiento incluyen
cromatografía de afinidad con proteína
A-Sepharose, cromatografía de exclusión por tamaños y cromatografía de intercambio iónico [véanse, por ejemplo, Coligan en las páginas 2.7.1-2.7.12 y las páginas 2.9.1-2.9.3; y Baines et al., "Purification of Immunoglobulin G (IgG)" en Methods in Molecular Biology, volumen 10, páginas 79-104 (The Humana Press, Inc., 1.992)].
A-Sepharose, cromatografía de exclusión por tamaños y cromatografía de intercambio iónico [véanse, por ejemplo, Coligan en las páginas 2.7.1-2.7.12 y las páginas 2.9.1-2.9.3; y Baines et al., "Purification of Immunoglobulin G (IgG)" en Methods in Molecular Biology, volumen 10, páginas 79-104 (The Humana Press, Inc., 1.992)].
Para usos particulares, puede ser deseable
preparar fragmentos de anticuerpos anti-BR43x2.
Tales fragmentos de anticuerpos pueden ser obtenidos, por ejemplo,
por hidrólisis proteolítica del anticuerpo. Los fragmentos de
anticuerpos pueden ser obtenidos por digestión de anticuerpos
completos con pepsina o papaína, mediante métodos convencionales.
Como una ilustración, pueden producirse fragmentos de anticuerpos
por escisión enzimática de los anticuerpos con pepsina para obtener
un fragmento de 5 S denominado F(ab')_{2}. Este fragmento
puede ser adicionalmente escindido usando un agente reductor
tiólico para producir fragmentos monovalentes Fab' de 3,5 S.
Opcionalmente, la reacción de escisión puede ser llevada a cabo
usando un grupo bloqueador para los grupos sulfhidrilo que resultan
de la escisión de los enlaces disulfuro. Como una alternativa, una
escisión enzimática usando papaína produce directamente dos
fragmentos Fab monovalentes y un fragmento Fc. Estos métodos son
descritos, por ejemplo, por Goldenberg, Patente de EE.UU. nº
4.331.647, Nisonoff et al., Arch. Biochem. Biophys.
89: 230, 1.960, Porter, Biochem. J. 73: 119,
1.959, Edelman et al. en Methods in Enzymology, volumen 1,
página 422 (Academic Press 1.967), y Coligan, ibídem.
Pueden usarse también otros métodos para escindir
anticuerpos, tales como la separación de cadenas pesadas para formar
fragmentos monovalentes de cadenas ligera-pesada,
escisión adicional de fragmentos y otras técnicas enzimáticas,
químicas o genéticas, con tal que los fragmentos se unan al antígeno
que es reconocido por el anticuerpo intacto.
Por ejemplo, los fragmentos Fv comprenden una
asociación de cadenas V_{H} y V_{L}. Esta asociación puede ser
no covalente, como describen Inbar et al., Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 69: 2.659, 1.972. Alternativamente, las cadenas
variables pueden ser unidas por un enlace disulfuro intermolecular
o ser reticuladas por agentes químicos tales como el glutaraldehído
(véase, por ejemplo, Sandhu, Crit. Rev. Biotech. 12:
437, 1.992).
\newpage
Los fragmentos Fv pueden comprender cadenas
V_{H} y V_{L} que estén conectadas por un conector peptídico.
Estas proteínas ligantes de antígeno de una sola cadena (scFv; del
inglés, single-chain Fv) son preparadas construyendo
un gen estructural que comprende secuencias de DNA que codifican los
dominios V_{H} y V_{L}, que están conectados por un
oligonucleótido. El gen estructural es insertado en un vector de
expresión que es posteriormente introducido en una célula huésped,
tal como E. coli. Las células huésped recombinantes
sintetizan una sola cadena polipeptídica con un péptido conector
que conecta los dos dominios V. Por ejemplo, Whitlow et al.,
Methods: A Companion to Methods in Enzymology 2: 97,
1.991, describen métodos para producir scFvs; véanse también Bird
et al., Science 242: 423, 1.988, Ladner et al.,
Patente de EE.UU. nº 4.946.778, Pack et al., Bio/Technology
11: 1.271, 1.993, y Sandhu, ibídem.
Como una ilustración, puede obtenerse un scFv al
exponer linfocitos a un polipéptido BR43x2 in vitro y
seleccionar librerías de despliegue de anticuerpos en fagos o
vectores similares (por ejemplo, a través del uso de una proteína o
péptido BR43x2 inmovilizado o marcado). Pueden obtenerse genes que
codifican polipéptidos que tienen posibles dominios ligantes del
polipéptido BR43x2, al explorar librerías peptídicas aleatorias
desplegadas en fagos (despliegue en fagos) o en bacterias tales como
E. coli. Pueden obtenerse secuencias de nucleótidos que
codifican los polipéptidos de diversas maneras, tales como a través
de mutagénesis aleatoria y síntesis aleatoria de polinucleótidos.
Estas librerías de despliegue peptídico aleatorias pueden ser
usadas para explorar péptidos que interaccionen con una diana
conocida que puede ser una proteína o un polipéptido, tal como un
ligando o receptor, una macromolécula biológica o sintética, o
sustancias orgánicas o inorgánicas. En este campo técnico se conocen
técnicas para crear y explorar tales librerías de despliegue
peptídico aleatorias (Ladner et al., Patente de EE.UU. nº
5.223.409, Ladner et al., Patente de EE.UU. nº 4.946.778, Ladner et
al., Patente de EE.UU. nº 5.403.484, Ladner et al., Patente de
EE.UU. nº 5.571.698, y Kay
et al., Phage Display of Peptides and Proteins (Academic Press, Inc., 1.996), y se dispone comercialmente de librerías de despliegue peptídico aleatorias y de sistemas para explorar dichas librerías, en, por ejemplo, Clontech (Palo Alto, California, EE.UU.), Invitrogen Inc. (San Diego, California, EE.UU.), New England Biolabs Inc. (Beverly, Massachusetts, EE.UU.), y Pharmacia LKB Biotechnology Inc. (Piscataway, New Jersey, EE.UU.). Las librerías de despliegue peptídico aleatorias pueden ser exploradas usando las aquí descritas secuencias de BR43x2 para identificar proteínas que se unen a BR43x2.
et al., Phage Display of Peptides and Proteins (Academic Press, Inc., 1.996), y se dispone comercialmente de librerías de despliegue peptídico aleatorias y de sistemas para explorar dichas librerías, en, por ejemplo, Clontech (Palo Alto, California, EE.UU.), Invitrogen Inc. (San Diego, California, EE.UU.), New England Biolabs Inc. (Beverly, Massachusetts, EE.UU.), y Pharmacia LKB Biotechnology Inc. (Piscataway, New Jersey, EE.UU.). Las librerías de despliegue peptídico aleatorias pueden ser exploradas usando las aquí descritas secuencias de BR43x2 para identificar proteínas que se unen a BR43x2.
Otra forma de un fragmento de anticuerpo es un
péptido que codifica una sola región determinante de la
complementariedad (CDR; del inglés,
complementary-determining region). Pueden
obtenerse péptidos CDR ("unidades mínimas de reconocimiento")
construyendo genes que codifiquen la CDR de un anticuerpo de
interés. Dichos genes son preparados, por ejemplo, usando la
reacción en cadena de la polimerasa para sintetizar la región
variable a partir de RNA de células productoras de anticuerpos
(véanse, por ejemplo, Larrick et al., Methods: A Companion to
Methods in Enzymology 2: 106, 1.991,
Courtenay-Luck, "Genetic Manipulation of
Monoclonal Antibodies" en Monoclonal Antibodies: Production,
Engineering and Clinical Application, redactado por Ritter et
al., página 166 (Cambridge University Press, 1.995), y Ward et al.,
"Genetic Manipulation and Expression of Antibodies" en
Monoclonal Antibodies: Principles and Applications,
redactado por Birch et al., página 137 (Wiley-Liss,
Inc., 1.995).
Alternativamente, un anticuerpo
anti-BR43x2 puede proceder de un anticuerpo
monoclonal "humanizado". Se producen anticuerpos monoclonales
"humanizados" al transferir regiones determinantes de la
complementariedad de ratón procedentes de cadenas variables pesadas
y ligeras de la inmunoglobulina de ratón a un dominio variable
humano. Restos típicos de anticuerpos humanos son luego sustituidos
en las regiones estructurales de los remedos murinos. El uso de
componentes de anticuerpo procedentes de anticuerpos monoclonales
humanizados obvia los posibles problemas asociados con la
inmunogenicidad de las regiones constantes murinas. Por ejemplo,
Orlandi et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86: 3.833,
1.989, describen técnicas generales para clonar dominios variables
de inmunoglobulinas murinas. Por ejemplo, Jones et al., Nature 321:
522, 1.986, Carter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA
89: 4.285, 1.992, Sandhu, Crit. Rev. Biotech.
12: 437, 1.992, Singer et al., J. Immun. 150:
2.844, 1.993, Sudhir (redactor), Antibody Engineering
Protocols (Humana Press, Inc., 1.995), Kelley, "Engineering
Therapeutic Antibodies" en Protein Engineering: Principles
and Practice, Cleland et al. (redactores), páginas
399-434 (John Wiley & Sons, Inc. 1.996), y
Queen et al., Patente de EE.UU. nº 5.693.762 (1.997), describen
técnicas para producir anticuerpos monoclonales humanizados.
Pueden prepararse anticuerpos policlonales
antiidiotipo al inmunizar animales con anticuerpos o fragmentos de
anticuerpos anti-BR43x2, usando técnicas
estándares; véase, por ejemplo, Green et al., "Production of
Polyclonal Antisera" en Methods in Molecular Biology:
Immunochemical Protocols, Manson (redactor), páginas
1-12 (Humana Press, 1.992); véanse también las
páginas 2.4.1-2.4.7 de Coligan, ibídem.
Alternativamente, pueden prepararse anticuerpos monoclonales
antiidiotipo usando anticuerpos o fragmentos de anticuerpos
anti-BR43x2 como inmunógenos con las técnicas
anteriormente descritas. Como otra alternativa, pueden prepararse
anticuerpos antiidiotipo humanizados o anticuerpos antiidiotipo de
primate subhumano usando las técnicas anteriormente descritas. Por
ejemplo, Irie, Patente de EE.UU. nº 5.208.146, Greene et al.,
Patente de EE.UU. nº 5.637.677, y Varthakavi y Minocha, J. Gen.
Virol. 77: 1.875, 1.996, describen métodos para producir
anticuerpos antiidiotipo.
Los presentes anticuerpos o polipéptidos pueden
ser también directa o indirectamente conjugados con fármacos,
toxinas, radionucleidos y similares, y estos productos de
conjugación ser usados para aplicaciones diagnósticas o
terapéuticas in vivo. Por ejemplo, los polipéptidos o
anticuerpos del presente invento pueden ser usados para identificar
o tratar tejidos u órganos que expresan una correspondiente
molécula anticomplementaria (un receptor o un antígeno,
respectivamente, por ejemplo). Más específicamente, polipéptidos
BR43x2 o anticuerpos anti-BR43x2, o fragmentos o
porciones bioactivos de los mismos, pueden ser copulados con
moléculas detectables o citotóxicas y suministrados a un mamífero
que tenga células, tejidos u órganos que expresen la molécula
anticomplementaria.
Las moléculas detectables adecuadas pueden ser
directa o indirectamente fijadas al polipéptido o anticuerpo, e
incluyen radionucleidos, enzimas, sustratos, cofactores,
inhibidores, marcadores fluorescentes, marcadores
quimioluminiscentes, partículas magnéticas y similares. Las
moléculas citotóxicas adecuadas pueden ser directa o indirectamente
fijadas al polipéptido o anticuerpo, e incluyen toxinas bacterianas
o vegetales (por ejemplo, toxina diftérica, exotoxina de
Pseudomonas, ricina, abrina y otras), así como
radionucleidos terapéuticos tales como
yodo-131,
renio-188 e itrio-90 (directamente fijados al polipéptido o anticuerpo, o indirectamente fijados por medio de, por ejemplo, un grupo quelante). Los polipéptidos o los anticuerpos pueden ser también conjugados con fármacos citotóxicos, tales como la adriamicina. Para la fijación indirecta de una molécula detectable o citotóxica, la molécula detectable o citotóxica puede ser conjugada con un miembro de una pareja complementaria/anticomplementaria cuyo otro miembro está unido a la porción de polipéptido o anticuerpo. Para estos fines, la pareja biotina/estreptavidina es una pareja complementaria/anticomplementaria ejemplar.
renio-188 e itrio-90 (directamente fijados al polipéptido o anticuerpo, o indirectamente fijados por medio de, por ejemplo, un grupo quelante). Los polipéptidos o los anticuerpos pueden ser también conjugados con fármacos citotóxicos, tales como la adriamicina. Para la fijación indirecta de una molécula detectable o citotóxica, la molécula detectable o citotóxica puede ser conjugada con un miembro de una pareja complementaria/anticomplementaria cuyo otro miembro está unido a la porción de polipéptido o anticuerpo. Para estos fines, la pareja biotina/estreptavidina es una pareja complementaria/anticomplementaria ejemplar.
Los polipéptidos BR43x2 solubles o anticuerpos
hacia BR43x2 pueden ser directa o indirectamente conjugados con
fármacos, toxinas, radionucleidos y similares, y estos productos de
conjugación ser usados para la preparación de composiciones
terapéuticas para uso in vivo. Por ejemplo, los polipéptidos
o anticuerpos del presente invento pueden ser usados para tratar
tejidos u órganos que expresan una correspondiente molécula
anticomplementaria (un receptor o un antígeno, respectivamente, por
ejemplo). Más específicamente, polipéptidos BR43x2 o anticuerpos
anti-BR43x2, o fragmentos o porciones bioactivos de
los mismos, pueden ser copulados con moléculas citotóxicas y
suministrados a un mamífero que tenga células, tejidos u órganos
que expresen la molécula anticomplementaria.
Las moléculas citotóxicas adecuadas pueden ser
directa o indirectamente fijadas al polipéptido o anticuerpo, e
incluyen toxinas bacterianas o vegetales (por ejemplo, toxina
diftérica, exotoxina de Pseudomonas, ricina, abrina y
similares), así como radionucleidos terapéuticos tales como
yodo-131, renio-188 e
itrio-90 (directamente fijados al polipéptido o
anticuerpo, o indirectamente fijados por medio de, por ejemplo, un
grupo quelante). Los polipéptidos o los anticuerpos pueden ser
también conjugados con fármacos citotóxicos, tales como la
adriamicina. Para la fijación indirecta de una molécula citotóxica,
la molécula citotóxica puede ser conjugada con un miembro de una
pareja complementaria/anticomplementaria cuyo otro miembro está
unido a la porción de polipéptido o anticuerpo. Para estos fines, la
pareja biotina/estreptavidina es una pareja
complementaria/anticomplementaria ejemplar.
Dichas proteínas de fusión de
polipéptido-toxina o proteínas de fusión de
anticuerpo/fragmento-toxina pueden ser usadas para
la inhibición o ablación de células o tejidos específicos (por
ejemplo, para tratar células o tejidos cancerosos).
Alternativamente, si el polipéptido tiene múltiples dominios
funcionales (es decir, un dominio de activación o un dominio
ligante de ligandos, más un dominio de direccionamiento), una
proteína de fusión que sólo incluya el dominio de direccionamiento
puede ser adecuada para dirigir una molécula detectable, una
molécula citotóxica o una molécula complementaria a un tipo celular
o tisular de interés. En los casos en que la proteína de fusión de
dominio único incluye una molécula complementaria, la molécula
anticomplementaria puede ser conjugada con una molécula detectable o
citotóxica. De este modo, dichas proteínas de fusión de
dominio-molécula complementaria representan un
vehículo de direccionamiento genérico para una distribución
celular/tisularmente específica de productos de conjugación
genéricos de moléculas
anticomplementaria-citotóxica. Los productos de
conjugación de polipéptidos o anticuerpos bioactivos aquí descritos
pueden ser distribuidos intravenosa, intraarterial o
intraductalmente o pueden ser localmente introducidos en el
pretendido sitio de acción.
Pueden prepararse anticuerpos hacia polipéptidos
BR43x2 solubles que estén etiquetados con His o FLAG™. Pueden
también prepararse anticuerpos hacia proteínas de
fusión-MBP producidas en E. coli.
Alternativamente, dichos polipéptidos podrían incluir una proteína
de fusión con Ig humana. En particular, un antisuero que contenga
anticuerpos polipeptídicos hacia BR43x2 soluble etiquetado con His o
etiquetado con FLAG™ puede ser usado en el análisis de la
distribución tisular de BR43x2 por inmunohistoquímica sobre tejido
de ser humano o primate. Estos polipéptidos BR43x2 solubles pueden
ser también usados para inmunizar ratones con objeto de producir
anticuerpos monoclonales hacia un polipéptido BR43x2 humano soluble.
Los anticuerpos monoclonales hacia un polipéptido BR43x2 humano
soluble pueden ser también usados para remedar una copulación de
ligando/receptor, dando lugar a la activación o inactivación del par
ligando/receptor. Por ejemplo, se ha demostrado que la reticulación
de anticuerpos monoclonales anti-CD40 soluble
proporciona una señal estimulante a células B que han sido
subóptimamente activadas con anti-IgM o
lipopolisacárido (LPS), y da lugar a proliferación y producción de
inmunoglobulinas. Estos mismos anticuerpos monoclonales actúan como
antagonistas cuando se usan en disolución al bloquear la activación
del receptor. Los anticuerpos monoclonales hacia BR43x2 pueden ser
usados para determinar la distribución, regulación e interacción
biológica del par BR43x2/ligando de BR43x2 sobre linajes celulares
específicos identificados mediante estudios de distribución
tisular.
Pueden formularse cantidades farmacéuticamente
eficaces de polipéptidos BR43x2, TACI o BCMA del presente invento
con vehículos farmacéuticamente aceptables para administración
parenteral, oral, nasal, rectal, tópica, transdérmica o similar, de
acuerdo con métodos convencionales. Las formulaciones pueden incluir
además uno o más diluyentes, cargas, agentes emulsivos,
conservantes, tampones, excipientes y similares, y pueden ser
dispuestas en formas tales como, por ejemplo, líquidos, polvos,
emulsiones, supositorios, liposomas, parches transdérmicos y
tabletas. Pueden también utilizarse sistemas de distribución por
liberación lenta o prolongada, incluyendo cualesquiera de diversos
biopolímeros (sistemas de base biológica), sistemas en que se
emplean liposomas y sistemas de distribución polímeros, con las aquí
descritas composiciones para proporcionar una fuente continua o de
larga duración del polipéptido o antagonista de BR43x2. Dichos
sistemas de liberación lenta son aplicables a las formulaciones
para, por ejemplo, uso oral, tópico o parenteral. La expresión
"vehículo farmacéuticamente aceptable" se refiere a un medio
vehículo que no interfiere en la eficacia de la actividad biológica
de los ingredientes activos y que no es tóxico para el huésped o
paciente. Un experto en la técnica puede formular los compuestos del
presente invento de una manera apropiada y de acuerdo con prácticas
admitidas, tales como las descritas en Remington: The Science
and Practice of Pharmacy, redactado por Genaro, Mack Publishing
Co., Easton, Pennsylvania, EE.UU., 19ª edición, 1.995.
Como se usa aquí, una "cantidad
farmacéuticamente eficaz" de un polipéptido, agonista o
antagonista de BR43x2, TACI o BCMA es una cantidad suficiente para
provocar un resultado biológico deseado. El resultado puede ser el
alivio de los signos, síntomas o causas de una enfermedad, o
cualquier otra alteración deseada de un sistema biológico. Por
ejemplo, una cantidad eficaz de un polipéptido BR43x2, TACI o
BCMA es aquélla que proporciona bien un alivio subjetivo de síntomas
o bien una mejora objetivamente identificable según advierte el
clínico u otro observador cualificado. Por ejemplo, dicha cantidad
eficaz de un polipéptido o una fusión soluble de BR43x2, TACI o
BCMA proporcionaría una disminución de la respuesta de células B
durante la respuesta inmune, una inhibición o disminución de la
producción de autoanticuerpos, y una inhibición o disminución de
los síntomas asociados con SLE, MG o RA. Cantidades eficaces de
BR43x2, TACI o BCMA disminuirán el porcentaje de células B en sangre
periférica. Las cantidades eficaces de los polipéptidos BR43x2, TACI
o BCMA pueden variar mucho dependiendo de la enfermedad o síntoma
que se trata. La cantidad del polipéptido que se va a administrar y
su concentración en las formulaciones dependen del vehículo
seleccionado, la vía de administración, la potencia del polipéptido
concreto, el estado clínico del paciente, los efectos secundarios y
la estabilidad del compuesto en la formulación. De este modo, el
clínico empleará la preparación apropiada que contenga la
concentración apropiada en la formulación, así como la cantidad de
formulación administrada, dependiendo de la experiencia clínica con
el paciente en cuestión o con pacientes similares. Dichas
cantidades dependerán, en parte, del estado concreto que se trata,
la edad, el peso y la salud general del paciente, y otros factores
evidentes para los expertos en la técnica. Típicamente, la dosis
estará en el intervalo de 0,1-100 mg/kg del sujeto.
Las dosis para compuestos específicos pueden ser determinadas a
partir de estudios in vitro o ex vivo en combinación
con estudios en animales experimentales. Las concentraciones de
compuestos que se han hallado eficaces in vitro o ex
vivo proporcionan una orientación para estudios en animales, en
los que se calculan las dosis que proporcionan concentraciones
similares en el sitio de acción.
El invento es adicionalmente ilustrado mediante
los ejemplos siguientes.
La isoforma de TACI fue clonada a partir de una
librería de despliegue de RPMI usando el procedimiento de trampa de
secreción. Se desplegó una librería de RPMI 1788 (línea de células
B activadas) usando veinte placas de 96 pocillos. Cada pocillo
contenía aproximadamente 100 colonias de E. coli, conteniendo
cada colonia un clon de cDNA. Se prepararon minipreparaciones de
DNA en formato de 96 pocillos usando el sistema Tomtech Quadra 9600.
El DNA aislado fue luego reunido en 120 colecciones, cada una de
las cuales representa 1.600 clones. Células Cos-7
fueron transfectadas con estas colecciones y fueron sembradas en
placas de 12 pocillos. Se mezclaron tres microlitros de DNA de
colección y 5 \mul de LipofectAMINE en 92 \mul de medio DMEM
desprovisto de suero (55 mg de piruvato sódico, 146 mg de
L-glutamina, 5 mg de transferrina, 2,5 mg de
insulina, 1 \mug de selenio y 5 mg de fetuína en 500 ml de DMEM)
y se incubó la mezcla a temperatura ambiental durante 30 minutos, lo
que fue seguido de la adición de 400 \mul de medio DMEM
desprovisto de suero. Se añadió la mezcla de
DNA-LipofectAMINE a 220.000 células
Cos-7/pocillo sembradas en placas para cultivo
tisular de 12 pocillos, y se incubó durante 5 horas a 37ºC. Después
de la incubación, se añadieron 500 \mul de medio
DMEM-suero bovino fetal (FBS; del inglés,
fetal bovine serum) al 20% (100 ml de FBS, 55
mg de piruvato sódico y 146 mg de L-glutamina en 500
ml de DMEM) a cada pocillo y se incubaron las células durante la
noche.
La exploración con trampa de secreción fue
llevada a cabo usando ztnf4 biotinilado y etiquetado con FLAG. Las
células fueron enjuagadas con disolución salina tamponada con
fosfato (PBS; del inglés, phosphate buffered
saline) y fueron fijadas durante 15 minutos con formaldehído
al 1,8% en PBS. Las células fueron luego lavadas con TNT
(Tris-HCl 0,1 M, NaCl 0,15 M y
Tween-20 al 0,05% en H_{2}O). Se dejó durante 15
minutos que Triton-X al 0,1% en PBS penetrara en las
células, lo que fue seguido de un lavado en TNT. Las células fueron
bloqueadas durante 1 hora con TNB (Tris-HCl 0,1 M,
NaCl 0,15 M y Reactivo bloqueador al 0,5%) utilizando el sistema
Renaissance® TSA-Direct de NEN (NEN, Boston,
Massachusetts, EE.UU.) de acuerdo con las instrucciones del
fabricante. Las células fueron lavadas con TNT y fueron bloqueadas
durante 15 minutos con avidina y luego con biotina (nº
SP-2001 del catálogo de Vector Labs), realizándose
un lavado intermedio con TNT. Las células fueron incubadas durante
1 hora con 1 \mug/ml de ztnf4/Flag/biotina en TNB, lo que fue
seguido de un lavado con TNT. Las células fueron luego incubadas
durante una hora con una dilución 1:300 de
estreptavidina-peroxidasa de rábano picante (HRP;
del inglés, horseradish peroxidase) (NEN) en
TNB y fueron lavadas con TNT. Las hibridaciones fueron detectadas
con el reactivo fluoresceína-tiramida diluido 1:50
en tampón de dilución (NEN) e incubado durante 4,4 minutos y fueron
lavadas con TNT. Las células fueron conservadas con Vectashield
Mounting Media (Vector Labs, Burlingame, California, EE.UU.) diluido
1:5 en TNT.
Las células fueron visualizadas por microscopía
fluorescente usando un filtro de FITC. Doce colecciones eran
positivas en cuanto a unión a ztnf4. Se descompuso la colección D8
(que representaba 1.600 clones) y se aisló un único clon
(D8-1), positivo en cuanto a unión a ztnf4. Un
análisis por secuenciación reveló que el clon D8-1
contenía una secuencia polipéptidica que codificaba una isoforma de
TACI, en la que la primera seudorrepetición rica en cisteína
Phe21-Arg67 de TACI estaba sustituida por un solo
resto de aminoácido, triptófano. Esta isoforma fue denominada
BR43x2, cuya secuencia polinucleotídica se presenta en la ID. SEC.
nº 1.
Se usó transcriptasa inversa-PCR
para localizar la expresión de BR43x1 en células T y B y monocitos.
Se usaron los cebadores oligonucleotídicos ZC19980 (ID. SEC. nº 15)
y ZC19981 (ID. SEC. nº 16) para explorar cDNA de CD19^{+},
CD3^{+} y monocitos para BR43. La reacción de la transcriptasa
inversa fue llevada a cabo a 94ºC durante 3 minutos, lo que fue
seguido de 30 ciclos a 94ºC durante 30 segundos, 68ºC durante 2
minutos y 72ºC durante 1 minuto, seguidos de una extensión de 7
minutos a 72ºC. Una banda del tamaño esperado, 720 bp, fue detectada
sólo en células B y no en células T activadas, como había sido
comunicado para TACI usando anticuerpos (von Bülow y Bram,
ibídem).
1 x 10^{8} células mononucleares de sangre
periférica (PBMC; del inglés, peripheral blood
mononuclear cell) congeladas, obtenidas por aféresis
y contenidas en un vial, fueron rápidamente descongeladas en un baño
de agua a 37ºC y fueron resuspendidas en 25 ml de medio para células
B (Medio de Dulbecco modificado de Iscove, suero bovino fetal al 10%
térmicamente inactivado, L-glutamina al 5%, y
Pen/Strep al 5%) en un tubo de 50 ml de capacidad. Las células
fueron analizadas en cuanto a viabilidad usando azul de tripano
(GIBCO BRL, Gaithersburg, Maryland, EE.UU.). Se dispuso una capa de
diez mililitros de Ficoll/Hypaque Plus (Pharmacia LKB Biotechnology
Inc., Piscataway, New Jersey, EE.UU.) bajo la suspensión celular, y
el conjunto fue centrifugado durante 30 minutos a 1.800 rpm y dejado
detener con el freno quitado. La capa de interfase fue luego
separada y transferida a un nuevo tubo de 50 ml de capacidad,
llevada hasta un volumen final de 40 ml con PBS y centrifugada
durante 10 minutos a 1.200 rpm con el freno puesto. La viabilidad de
las células B aisladas fue analizada usando azul de tripano. Las
células B fueron resuspendidas hasta una concentración final de 1 x
10^{6} células/ml en medio para células B y fueron sembradas en
una placa de 96 pocillos con fondo en U (Falcon, VWR, Seattle,
Washington, EE.UU.) en una cantidad de 180 \mul/pocillo.
A las células se añadió uno de los estimuladores
siguientes hasta llevar el volumen final a 200 ml/pocillo:
ztnf-4sCF o
ztnf-4-sNF soluble etiquetado con
FLAG, en diluciones a la décima parte de 1 mg-1
ng/ml ya sea solo, con 10 \mug/ml de anti-IgM
(anti-IgM humana, de cabra) diluido en
NaH_{2}CO_{3}, pH de 9,5 (Southern Biotechnology Associates,
Inc., Birmingham, Alabama, EE.UU.), o con 10 \mug/ml de
anti-IgM y 10 ng/ml de IL-4 humana
recombinante (diluida en PBS y BSA al 0,1%). Además, también se
ensayaron otras citoquinas tales como IL-3 e
IL-6, así como un anticuerpo hacia CD40 soluble
(sCD40; Pharmingen, San Diego, California, EE.UU.). Como un testigo,
las células fueron incubadas con albúmina sérica bovina (BSA) al
0,1% y PBS, 10 \mug/ml de anti-IgM, o 10
\mug/ml de anti-IgM y 10 ng/ml de
IL-4 (u otras citoquinas). Las células fueron luego
incubadas a 37ºC en una incubadora humidificada durante 72 horas.
Dieciseis horas antes de la recolección, se añadieron 3,7 x
10^{4} Bq de ^{3}H-timidina a todos los
pocillos. Las células fueron recolectadas en una placa filtrante de
96 pocillos (Unifilter GF/C, Pachard, Meriden, Connecticut,
EE.UU.), donde fueron recolectadas usando una cosechadora celular
(Packard) y recogidas de acuerdo con las instrucciones del
fabricante. Las placas fueron secadas a 55ºC durante
20-30 minutos, y el fondo de los pocillos fue
sellado con un sellador de placas opaco. Se añadieron 0,25 ml de
líquido de centelleo (Microscint-O, Packard) a cada
pocillo y se leyó la placa usando un contador de centelleo TopCount
(Packard) para microplacas.
Para medir la inducción de la producción de IgG
en respuesta a diversos mitógenos de células B después de la
estimulación de células B purificadas, las células fueron
preparadas del modo descrito y fueron incubadas durante 9 días. El
sobrenadante celular fue recogido para determinar la producción de
IgG.
Para medir la activación de marcadores de la
superficie celular en respuesta a diversos mitógenos de células B
después de la estimulación de células B purificadas, las células
fueron preparadas del modo anteriormente descrito pero sólo fueron
incubadas 48 horas. Los marcadores de la superficie celular fueron
medidos mediante análisis por FACS.
En la Tabla 5 se resume la proliferación de
células B purificadas humanas, estimuladas con los diversos
mitógenos de células B.
Estímulo | Índice proliferativo |
ztnf4 | 1,5 |
ztnf4 + IL-4 | 9,9 |
ztnf4 + anti-IgM + IL-4 | 15,8 |
Se vio un efecto sinérgico de ztnf4 con
IL-4, IL-3 (10 \mug/ml) e
IL-6 (10 \mug/ml) sobre la proliferación de
células B. Se vio un aumento del doble en la generación de señales
en células B cuando se usó sCD40.
En la Tabla 6 se resume la inducción de la
producción de IgG (ng/ml) en respuesta a diversos mitógenos de
células B después de la estimulación de células B purificadas.
Estímulo | Testigo | Ztnf4 |
anti-IgM | 3 | 7,5 |
anti-IgM + IL-4 | 13 | 32 |
anti-IgM + IL-4 + IL-5 | 10 | 45 |
Se vio un aumento de los marcadores de activación
de la superficie celular después de la estimulación de células B
purificadas con ztnf4 solo, con anti-IgM, o con
anti-IgM + IL-4. No hubo efecto
alguno sobre la proliferación de PBMNCs en presencia de mitógenos
de células T óptimos o subóptimos. Tampoco se vio efecto alguno
sobre la producción de TNF-\alpha en monocitos
purificados en respuesta a una estimulación con LPS.
La Figura 3 muestra la coactivación de linfocitos
B humanos con ztnf4 soluble para que proliferen y secreten
inmunoglobulina. La Figura 3A muestra la proliferación de células B
purificadas de sangre periférica humana en respuesta a una
estimulación con ztnf4 soluble (25 ng/ml) en presencia de
IL-4 solo, e IL-4 con
anti-IgM, anti-CD40 o
anti-CD19, después de cinco días en cultivo. La
Figura 3B muestra los niveles de IgM e IgG medidos en los
sobrenadantes obtenidos de células B humanas estimuladas con ztnf4
soluble en presencia de IL-4 o
IL-4+IL-5, después de nueve días en
cultivo.
Estos resultados sugieren que el ztnf4 soluble es
una molécula de activación de células B que actúa de concierto con
otros estímulos de células B y débilmente por sí mismo. El ztnf4
soluble activa la proliferación de células B y la producción de Ig.
La suprarregulación de moléculas de adhesión, moléculas
coestimuladoras y receptores de activación sugiere un papel para
activar la función APC de las células B.
La Figura 4 muestra la estimulación de células B
de sangre periférica humana con ztnf4 soluble (25 ng/ml) o una
proteína testigo (ubiquitina) en presencia de 10 ng/ml de
IL-4 durante 5 días in vitro.
TACI-Ig, BCMA-Ig y Fc testigo
purificados fueron ensayados en cuanto a la inhibición de la
proliferación específica por ztnf4 soluble.
Células BHK que expresan un nivel elevado de
proteína TACI fueron seleccionadas mediante clonación por dilución
de una colección de transfectantes. Se incubaron células
transfectantes (2 x 10^{5}) sobre hielo durante 30 minutos con
ztnf4 biotinilado en una concentración de 1 \mug/ml en tampón de
unión (PBS, BSA al 2% y NaN_{3} al 0,02%). Las células fueron
lavadas 2 veces con tampón de unión y fueron luego incubadas con
estreptavidina-ficoeritrina (SA-PE;
del inglés, streptavidin-phycoerythrin)
(Caltag; dilución 1:1.000 en tampón de unión) sobre hielo durante 30
minutos. Las células fueron luego lavadas 2 veces en tampón de
unión, resuspendidas en tampón de unión y leídas por FACS (FACS
Vantage, Becton Dickinson). Se seleccionan los clones con la mayor
unión de TNF4.
Células BHK que expresan un nivel elevado de
proteína BCMA fueron seleccionadas al marcar superficialmente con
ztnf4 biotinilado la colección de transfectantes que expresan BCMA.
Esto fue seguido de SA-PE (Caltag, Burlingame,
California, EE.UU.) y clasificación en medio estéril en cuanto a
células brillantes en el canal 2 de fluorescencia (FL2) del sistema
FACS Vantage (Becton Dickinson). Las colonias individuales fueron
luego exploradas en cuanto a la unión de ztnf4.
Se sondaron transferencias Northern de múltiples
tejidos humanos (MTN I, MTN II y MTN III; Clontech) para determinar
la distribución tisular de la expresión humana de BR43x2 y TACI.
Una sonda de aproximadamente 500 bp procedente de PCR (ID. SEC. nº
21) fue multiplicada usando BR43x2 (ID. SEC. nº 1) como molde y los
oligonucleótidos ZC20061 (ID. SEC. nº 22) y ZC20062 (ID. SEC. nº 23)
como cebadores. Esta secuencia es idéntica a la región homóloga de
TACI. La multiplicación fue llevada a cabo del modo siguiente: 1
ciclo a 94ºC durante 1,0 minutos, 30 ciclos de 94ºC durante 30
segundos, 60ºC durante 30 segundos y 72ºC durante 30 segundos,
seguidos de 1 ciclo a 72ºC durante 10 minutos. Los productos de PCR
fueron visualizados mediante electroforesis en gel de agarosa, y el
producto de PCR de 500 bp fue purificado usando un sistema de
extracción en gel (Qiagen, Chatsworth, California, EE.UU.) de
acuerdo con las instrucciones del fabricante. La sonda fue marcada
radiactivamente usando el sistema MULTIPRIME para marcación de DNA
(Amersham, Arlington Heights, Illinois, EE.UU.) de acuerdo con las
instrucciones del fabricante. La sonda fue purificada usando una
columna NUCTRAP de empuje (Stratagene). Se utilizó la disolución
EXPRESSHYB (Clontech) para la prehibridación y como una disolución
de hibridación para las transferencias Northern. La hibridación
tuvo lugar durante la noche a 65ºC usando 10^{6} cpm/ml de sonda
marcada. Las transferencias se lavaron luego en tampón de disolución
salina-citrato sódico (SSC; del inglés,
saline-sodium citrate) 2x y dodecilsulfato
sódico (SDS; del inglés, sodium
dodecylsulfate) al 0,1% a temperatura ambiental, lo
que fue seguido de 2 lavados en SSC 0,1x y SDS al 0,1% a 50ºC. Se
detectó un transcrito de aproximadamente 1,5 kb en bazo, ganglio
linfático e intestino delgado.
Se sondaron transferencias Northern de múltiples
tejidos humanos (MTN I, MTN II y MTN III; Clontech) para determinar
la distribución tisular de la expresión de BCMA humana. Una sonda
de aproximadamente 257 bp procedente de PCR (ID. SEC. nº 24) fue
multiplicada usando cDNA de células Daudi como molde y los
oligonucleótidos ZC21065 (ID. SEC. nº 25) y ZC21067 (ID. SEC. nº 26)
como cebadores. La multiplicación fue llevada a cabo del modo
siguiente: 1 ciclo a 94ºC durante 1,0 minutos, 35 ciclos de 94ºC
durante 30 segundos, 60ºC durante 30 segundos y 72ºC durante 30
segundos, seguidos de 1 ciclo a 72ºC durante 10 minutos. Los
productos de PCR fueron visualizados mediante electroforesis en gel
de agarosa, y el producto de PCR de 257 bp fue purificado usando un
sistema de extracción en gel (Qiagen, Chatsworth, California,
EE.UU.) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. La sonda
fue marcada radiactivamente usando el sistema MULTIPRIME para
marcación de DNA (Amersham, Arlington Heights, Illinois, EE.UU.) de
acuerdo con las instrucciones del fabricante. La sonda fue
purificada usando una columna
NUCTRAP de empuje (Stratagene). Se utilizó la disolución EXPRESSHYB (Clontech) para la prehibridación y como una disolución de hibridación para las transferencias Northern. La hibridación tuvo lugar durante la noche a 65ºC usando 10^{6} cpm/ml de sonda marcada. Las transferencias se lavaron luego en SSC 2x y SDS al 0,1% a temperatura ambiental, lo que fue seguido de 2 lavados en SSC 0,1x y SDS al 0,1% a 50ºC. Se detectó un transcrito de aproximadamente 1,2 kb en estómago, intestino delgado, ganglio linfático, tráquea, bazo y testículo.
NUCTRAP de empuje (Stratagene). Se utilizó la disolución EXPRESSHYB (Clontech) para la prehibridación y como una disolución de hibridación para las transferencias Northern. La hibridación tuvo lugar durante la noche a 65ºC usando 10^{6} cpm/ml de sonda marcada. Las transferencias se lavaron luego en SSC 2x y SDS al 0,1% a temperatura ambiental, lo que fue seguido de 2 lavados en SSC 0,1x y SDS al 0,1% a 50ºC. Se detectó un transcrito de aproximadamente 1,2 kb en estómago, intestino delgado, ganglio linfático, tráquea, bazo y testículo.
Transferencias RNA Master en forma de manchas
(Clontech) que contenían RNAs de diversos tejidos que estaban
normalizados a 8 genes domésticos fueron también sondadas con la
sonda de TACI (ID. SEC. nº 21) o la sonda de BCMA (ID. SEC. nº 24) e
hibridadas de la manera anteriormente descrita. Se vio expresión de
BR43x2/TACI en bazo, ganglio linfático, intestino delgado, estómago,
glándula salival, apéndice, pulmón, médula ósea y bazo fetal. Se
detectó expresión de BCMA en intestino delgado, bazo, estómago,
colon, ganglio linfático y apéndice.
Se sondaron un Blot V de un conjunto de tumores
humanos (Invitrogen Inc., San Diego, California, EE.UU.) y una
transferencia de linfoma humano (Invitrogen) de la forma
anteriormente descrita con una sonda de BR43x2/TACI (ID. SEC. nº 21)
o una sonda de BCMA (ID. SEC. nº 24). Se halló un transcrito de 1,5
kb que correspondía a TACI en linfoma no Hodgkin y tumor parotídeo.
Se halló un transcrito de 1,2 kb que correspondía a BCMA en
adenolinfoma, linfoma no Hodgkin y tumor parotídeo.
Se preparó RNA total de células CD4+, CD8+, CD19+
y células que presentan reacción mixta de linfocitos
(CellPro, Bothell, Washington, EE.UU.) usando isotiocianato de guanidina (Chirgwin et al., Biochemistry 18: 52-94, 1.979), seguido de una operación de centrifugación en CsCl. Se aisló poli(A) + RNA usando una cromatografía en oligo(dT)-celulosa (Aviv y Leder, Proc. Natl. Acad.Sci. USA 69: 1.408-12, 1.972). Luego se llevó a cabo un análisis por transferencia Northern del modo siguiente.
(CellPro, Bothell, Washington, EE.UU.) usando isotiocianato de guanidina (Chirgwin et al., Biochemistry 18: 52-94, 1.979), seguido de una operación de centrifugación en CsCl. Se aisló poli(A) + RNA usando una cromatografía en oligo(dT)-celulosa (Aviv y Leder, Proc. Natl. Acad.Sci. USA 69: 1.408-12, 1.972). Luego se llevó a cabo un análisis por transferencia Northern del modo siguiente.
Aproximadamente 2 mg de cada uno de los
poli(A) + RNAs fueron desnaturalizados en formaldehído 2,2
M/tampón de fosfato (Na_{2}HPO_{4} 50 mM, NaH_{2}PO_{4} 50
mM, NaOAc 50 mM, EDTA 1 mM y formaldehído 2,2 M) y sometidos a
separación mediante electroforesis en un minigel de agarosa al 1,5%
(Stratagene Cloning Systems, La Jolla, California, EE.UU.) en
formaldehído/tampón de fosfato. El RNA fue transferido durante la
noche a un filtro Nytran (Schleicher & Schuell, Keene, New
Hampshire, EE.UU.), y el filtro fue reticulado por luz UV (1.200 mJ)
en un reticulador UV STRATALINKER® (Stratagene Cloning Systems) y
luego secado a 80ºC durante 1 hora.
Las transferencias fueron sondadas con una sonda
de TACI (ID. SEC. nº 21) o de BCMA (ID. SEC. nº 24). Sólo se detectó
una banda de 1,5 kb que representaba a TACI en células CD19^{+}.
Se detectó tenuemente un transcrito de 1,2 kb que representaba a
BCMA en células CD8^{+}, CD19^{+} y MLR.
\newpage
Se llevó a cabo un análisis adicional por
transferencia Northern sobre transferencias realizadas con
poli(A)-RNA de células K-562
(línea eritroide, ATCC CCL 243), células HUT78 (célula T, ATCC
TIB-161), células Jurkat (célula T), DAUDI (linfoma
humano de Burkitt, Clontech, Palo Alto, California, EE.UU.), RAJI
(linfoma humano de Burkitt, Clontech) y HL60 (monocito) del modo
anteriormente descrito. Las transferencias fueron sondadas con una
sonda de TACI (ID. SEC. nº 21) o de BCMA (ID. SEC. nº 24). Se
detectó un transcrito de 1,5 kb que correspondía a TACI en células
Raji. Se detectó un transcrito de 1,2 kb que correspondía a BCMA en
células Daudi, Raji y Hut 78.
Se usó una exploración basada en PCR para
identificar tejidos que expresasen TACI humano o murino y BCMA
humano. Se exploraron los conjuntos de expresión génica
Rapid-Scan™ (OriGene Technologies, Inc., Rockville,
Maryland, EE.UU.) humanos y murinos de acuerdo con las instrucciones
del fabricante. Se crearon los cebadores oligonucleotídicos ZC24200
(ID. SEC. nº 27) y ZC24201 (ID. SEC. nº 28) para abarcar una juntura
exónica y producir un fragmento de 272 bp correspondiente a TACI
murino. Se detectó expresión en bazo, timo, pulmón, mama, corazón,
músculo, piel, glándula suprarrenal, estómago, intestino delgado,
cerebro, ovario, próstata y embrión. Se detectaron bandas
adicionales de \sim500 y 800 bp en muchos tejidos.
Se crearon los cebadores oligonucleotídicos
ZC24198 (ID. SEC. nº 29) y ZC24199 (ID. SEC. nº 30) para abarcar una
juntura exónica y producir un fragmento de 204 bp correspondiente a
TACI humano. Se detectó expresión en bazo, cerebro, corazón, hígado,
colon, pulmón, intestino delgado, músculo, estómago, testículo,
placenta, glándula salival, glándula suprarrenal, páncreas,
próstata, linfocitos de sangre periférica y médula ósea.
Se crearon los cebadores oligonucleotídicos
ZC24271 (ID. SEC. nº 31) y ZC24272 (ID. SEC. nº 32) para abarcar una
juntura exónica y producir un fragmento de 329 bp correspondiente a
BCMA humano. Se detectó expresión en cerebro, bazo, colon, pulmón,
intestino delgado, estómago, ovario, testículo, glándula salival,
glándula suprarrenal, próstata, linfocitos de sangre periférica,
médula ósea e hígado fetal.
Se crearon los cebadores oligonucleotídicos
ZC24495 (ID. SEC. nº 33) y ZC24496 (ID. SEC. nº 34) para abarcar una
juntura exónica y producir un fragmento de 436 bp correspondiente a
BCMA murino. Se detectó expresión en hígado.
Para preparar la proteína de fusión
TACI-Ig, la región Fc de IgG1 humana (la región
bisagra y los dominios CH2 y CH3) fue modificada para eliminar las
funciones receptor de Fc (FcgRI) y unión a complemento (C1q). Esta
versión modificada de Fc de IgG1 humana fue llamada Fc4.
La región Fc fue aislada de una librería de
hígado fetal humano (Clontech) por PCR usando los cebadores
oligonucleotídicos ZC10.134 (ID. SEC. nº 43) y ZC10.135 (ID. SEC. nº
44). Se usó PCR para introducir mutaciones en la región Fc para
reducir la unión a FcgRI. El sitio de unión a FcgRI
(Leu-Leu-gly-Gly)
fue mutado a
Ala-Glu-gly-Ala
(restos de aminoácido 38-41 de la ID. SEC. nº 45) de
acuerdo con Baum et al. (EMBO J. 13:
3.992-4.001, 1.994), para reducir la unión a FcR1
(Duncan et al., Nature 332: 563-4,
1.988). Se usaron los cebadores oligonucleotídicos ZC15.345 (ID.
SEC. nº 46) y ZC15.347 (ID. SEC. nº 47) para introducir la mutación.
Para un volumen final de 50 \mul se añadieron 570 ng de molde de
IgFc, 5 \mul de tampón de reacción de Pfu 10x (Stratagene), 8
\mul de desoxinucleótido trifosfatos (dNTPs) 1,25 nM, 31 \mul
de H_{2}O destilada, y 2 \mul de ZC15.345 (ID. SEC. nº 46) y
ZC15.347 (ID. SEC. nº 47) 20 mM. Se añadió un volumen igual de
aceite mineral y se calentó la mezcla de reacción a 94ºC durante 1
minuto. Se añadió polimerasa Pfu (2,5 unidades, Stratagene), lo que
fue seguido de 25 ciclos a 94ºC durante 30 segundos, 55ºC durante 30
segundos, y 72ºC durante 1 minuto, seguidos de una extensión de 7
minutos a 72ºC. Se sometieron los productos de reacción a
electroforesis y se detectó la banda correspondiente al tamaño
previsto de \sim676 bp. La banda fue escindida del gel y fue
recuperada usando el sistema de extracción en gel QIAGEN QIAquick™
(Qiagen) de acuerdo con las instrucciones del fabricante.
También se usó PCR para introducir una mutación
de Ala a Ser (resto de aminoácido 134 de la ID. SEC. nº 45) y Pro a
Ser (resto de aminoácido135 de la ID. SEC. nº 45) para reducir la
unión del complemento C1q y/o la fijación del complemento (Duncan y
Winter, Nature 332: 788, 1.988), y el codón de parada
TAA. Se realizaron dos reacciones de primer ciclo usando como un
molde la secuencia de IgFc mutada en el lado de unión a
Fc\gammaRI. Para un volumen final de 50 \mul se añadieron 1
\mul de molde de IgFc mutada en el sitio de unión a Fc\gammaRI,
5 \mul de tampón de reacción de Pfu 10x (Stratagene), 8 \mul de
dNTPs 1,25 mM, 31 \mul de H_{2}O destilada, 2 \mul de
ZC15.517 (ID. SEC. nº 48) 20 mM, un cebador 5' que empieza en el
nucleótido 26 de la ID. SEC. nº 45, y 2 \mul de ZC15.530 (ID.
SEC. nº 49) 20 mM, un cebador 3' que empieza en el complemento del
nucleótido 405 de la ID. SEC. nº 45. La segunda mezcla de reacción
contenía 2 \mul de cada una de las disoluciones originales 20 mM
de los cebadores oligonucleotídicos ZC15.518 (ID. SEC. nº 50), un
cebador 5' que empieza en el nucleótido 388 de la ID. SEC. nº 45, y
ZC15.347 (ID. SEC. nº 47), un cebador 3', para introducir la
mutación Ala a Ser, un sitio de restricción Xba I y un codón de
parada. Se añadió un volumen igual de aceite mineral y se calentaron
las mezclas de reacción a 94ºC durante 1 minuto. Se añadió
polimerasa Pfu (2,5 unidades, Stratagene), lo que fue seguido de 25
ciclos a 94ºC durante 30 segundos, 55ºC durante 30 segundos, y 72ºC
durante 2 minutos, seguidos de una extensión de 7 minutos a 72ºC. Se
sometieron los productos de reacción a electroforesis y se
detectaron las bandas correspondientes a los tamaños previstos,
\sim370 y \sim 395 bp, respectivamente. Las bandas fueron
escindidas del gel y fueron extraídas usando el sistema de
extracción en gel QIAGEN QIAquick™ (Qiagen) de acuerdo con las
instrucciones del fabricante. Se realizó una reacción de segundo
ciclo para unir los fragmentos anteriores y añadir el sitio de
restricción BamH I 5'. Para un volumen final de 50 \mul se
añadieron 30 \mul de H_{2}O destilada, 8 \mul de dNTPs 1,25
mM, 5 \mul de tampón de reacción de polimerasa Pfu 10x
(Stratagene), y 1 \mul de cada uno de los dos primeros productos
de las dos PCR. Se añadió un volumen igual de aceite mineral y se
calentó la mezcla de reacción a 94ºC durante 1 minuto. Se añadió
polimerasa Pfu (2,5 unidades, Stratagene), lo que fue seguido de 5
ciclos a 94ºC durante 30 segundos, 55ºC durante 30 segundos, y 72ºC
durante 2 minutos. Se llevó de nuevo la temperatura a 94ºC y se
añadieron 2 \mul de cada una de las disoluciones originales 20 mM
de ZC15.516 (ID. SEC. nº 51), un cebador 5' que empieza en el
nucleótido 1 de la ID. SEC. nº 45, y ZC15.347 (ID. SEC. nº 47), lo
que fue seguido de 25 ciclos a 94ºC durante 30 segundos, 55ºC
durante 30 segundos y 72ºC durante 2 minutos, y una extensión final
de 7 minutos a 72ºC. Una porción de la mezcla de reacción fue
visualizada usando electroforesis en gel. Se detectó una banda de
789 bp que correspondía al tamaño previsto.
Plásmidos de expresión que contenían las
proteínas de fusión TACI-Fc4 y
BCMA-Fc4 fueron construidos en levadura por medio de
recombinación homóloga. Se aisló un fragmento de cDNA de TACI
usando PCR, que incluía la secuencia polinucleotídica del nucleótido
15 al nucleótido 475 de la ID. SEC. nº 5. Los dos cebadores usados
en la producción del fragmento de TACI eran: (1) un cebador que
contenía 40 bp de la secuencia flanqueadora 5' del vector y 17 bp
que correspondían al extremo amínico del fragmento de TACI (ID.
SEC. nº 52); y (2) 40 bp del extremo 3' correspondiente a la
secuencia de Fc4 flanqueadora y 17 bp que correspondían al extremo
carboxílico del fragmento de TACI (ID. SEC. nº 53). Para un volumen
final de 100 \mul se añadieron 10 ng de molde de TACI, 10 \mul
de tampón de reacción de polimerasa Taq 10x (Perkin Elmer), 8
\mul de dNTPs 2,5 nM, 78 \mul de H_{2}O destilada, 2 \mul
de cada una de las disoluciones originales 20 mM de los cebadores
oligonucleotídicos de ID. SEC. nº 52 e ID. SEC. nº 53, y polimerasa
Taq (2,5 unidades, Life Technology). Se añadió un volumen igual de
aceite mineral y se calentó la mezcla de reacción a 94ºC durante 2
minutos, lo que fue seguido de 25 ciclos a 94ºC durante 30
segundos, 65ºC durante 30 segundos y 72ºC durante 1 minuto, seguidos
de una extensión de 5 minutos a 72ºC.
Se aisló un fragmento de cDNA de BCMA usando PCR,
que incluye la secuencia polinucleotídica del nucleótido 219 al
nucleótido 362 de la ID. SEC. nº 7. Los dos cebadores usados en la
producción del fragmento de BCMA eran un cebador oligonucleotídico
que contenía 40 bp de la secuencia flanqueadora 5' del vector y 17
bp que correspondían al extremo amínico del fragmento de BCMA (ID.
SEC. nº 54); y un cebador oligonucleotídico que contenía 40 bp del
extremo 3' correspondiente a la secuencia de Fc4 flanqueadora y 17
bp que correspondían al extremo carboxílico del fragmento de BCMA
(ID. SEC. nº 55). Para un volumen final de 100 \mul se añadieron
10 ng de molde de BCMA, 10 \mul de tampón de reacción de
polimerasa Taq 10x (Perkin Elmer), 8 \mul de dNTPs 2,5 mM, 78
\mul de H_{2}O, y 2 \mul de cada una de las disoluciones
originales 20 mM de los cebadores oligonucleotídicos de ID. SEC. nº
54 e ID. SEC. nº 55. Se añadió un volumen igual de aceite mineral y
se calentó la mezcla de reacción a 94ºC durante 2 minutos, lo que
fue seguido de 25 ciclos a 94ºC durante 30 segundos, 65ºC durante 30
segundos y 72ºC durante 1 minuto, seguidos de una extensión de 5
minutos a 72ºC.
El fragmento que contiene el cDNA que codifica el
fragmento Fc4 fue construido de una manera similar, uno para cada
una de las construcciones de fusión de TACI y BCMA. Para TACI, los
dos cebadores usados en la producción del fragmento Fc4 eran (aguas
arriba y aguas abajo) un cebador oligonucleotídico que contenía 40
bp de la secuencia flanqueadora 5' de TACI y 17 bp que correspondían
al extremo amínico del fragmento Fc4 (ID. SEC. nº 56); y un cebador
oligonucleotídico que contenía 40 bp del extremo 3' correspondiente
a la secuencia vector flanqueadora y 17 bp que correspondían al
extremo carboxílico del fragmento Fc4 (ID. SEC. nº 57). Para BCMA,
el cebador aguas arriba usado en la producción del fragmento Fc4 era
un cebador oligonucleotídico que contenía 40 bp de la secuencia
flanqueadora 5' de BCMA y 17 bp que correspondían al extremo
amínico del fragmento Fc4 (ID. SEC. nº 58). Para la construcción de
BCMA, el cebador aguas abajo para el Fc4 era el mismo que el
anteriormente descrito para TACI-Fc4 (ID. SEC. nº
57).
Para un volumen final de 100 \mul se añadieron
10 ng del molde de Fc4 anteriormente descrito, 10 \mul de tampón
de reacción de polimerasa Taq 10x (Perkin Elmer), 8 \mul de dNTPs
2,5 nM, 78 \mul de H_{2}O destilada, 2 \mul de cada una de
las disoluciones originales 20 mM de los oligonucleótidos de ID.
SEC. nº 56 e ID. SEC. nº 57 para TACI y los oligonucleótidos de ID.
SEC. nº 58 e ID. SEC. nº 57 para BCMA, y polimerasa Taq (2,5
unidades, Life Technology). Se añadió un volumen igual de aceite
mineral y se calentó la mezcla de reacción a 94ºC durante 2 minutos,
lo que fue seguido de 25 ciclos a 94ºC durante 30 segundos, 65ºC
durante 30 segundos y 72ºC durante 1 minuto, seguidos de una
extensión de 5 minutos a 72ºC.
Se desarrollaron diez microlitros de cada una de
las mezclas de reacción PCR de 100 \mul anteriormente descritas,
en un gel de agarosa de bajo punto de fusión al 0,8% (Seaplaque
GTG) con tampón TBE 1x para análisis. Los 90 \mul restantes de
cada reacción PCR fueron sometidos a precipitación mediante la
adición de 5 \mul de NaCl 1 M y 250 \mul de etanol absoluto. El
plásmido pZMP6 fue cortado con SmaI para linealizarlo en el
policonector. El plásmido pZMP6 procedía del plásmido pCZR199
(American Type Culture Collection, Manassas, Virginia, EE.UU.; ATCC
nº 98668) y es un vector de expresión de mamífero que contiene una
casete de expresión que tiene el promotor precoz inmediato de CMV,
un intrón de consenso procedente de la región variable del locus de
cadenas pesadas inmunoglobulínicas de ratón, múltiples sitios de
restricción para la inserción de secuencias de codificación, un
codón de parada y un terminador de la hormona de crecimiento humana
(hGH; del inglés, human growth hormone). El
plásmido tiene también un origen de replicación de E. coli,
una unidad de expresión de marcadores seleccionables de mamífero que
tiene un promotor, potenciador y origen de replicación del virus 40
de simios (SV40; del inglés, simian virus 40), un gen
de DHFR y el terminador de SV40. El vector pZMP6 fue construido a
partir de pCZR199 por sustitución del promotor de metalotioneína
por el promotor precoz inmediato de CMV, y las secuencias de Kozac
en el extremo 5' del marco de lectura abierto.
Se combinaron cien microlitros de células de
levadura competentes (S. cerevisiae) con 10 \mul que
contenían aproximadamente 1 \mug tanto del dominio extracelular
de TACI o BCMA como de los fragmentos de PCR de Fc4 apropiados para
recombinación con cada uno de ellos, y 100 ng del vector pZMP6
sometido a digestión con SmaI, y se transfirió la mezcla a una
cubeta de electroporación de 0,2 cm. Las mezclas de levadura/DNA
fueron sometidas a impulsos eléctricos de 0,75 kV (5 kV/cm),
\infty ohmios, 25 \muF. Se añadieron 600 \mul de sorbitol 1,2
M a cada cubeta, y las levaduras fueron sembradas en dos partes
alícuotas de 300 \mul en placas URA-D y fueron
incubadas a 30ºC.
Después de aproximadamente 48 horas, los
transformantes de levadura Ura+ de una sola placa fueron
resuspendidos en 1 ml de H_{2}O y fueron centrifugados brevemente
para recoger las células de levadura como sedimento. El sedimento
celular fue resuspendido en 1 ml de tampón de lisis (Triton
X-100 al 2%, SDS al 1%, NaCl 100 mM, Tris 10 mM, pH
de 8,0, EDTA 1 mM). Se añadieron quinientos microlitros de la mezcla
de lisis a un tubo Eppendorf que contenía 300 \mul de glóbulos de
vidrio lavados con ácido y 200 \mul de
fenol-cloroformo y se revolvió la mezcla dos o tres
veces durante intervalos de 1 minuto con formación de remolinos, lo
que fue seguido de una centrifugación de 5 minutos en una
centrifugadora Eppendorf a la máxima velocidad. Se transfirieron
trescientos microlitros de la fase acuosa a un tubo nuevo y se hizo
precipitar el DNA con 600 \mul de etanol (EtOH), lo que fue
seguido de centrifugación durante 10 minutos a 4ºC. El sedimento de
DNA fue resuspendido en 100 \mul de H_{2}O.
La transformación de células de E. coli
electrocompetentes (DH10B, GibcoBRL) fue realizada con
0,5-2 ml de preparación de DNA de levadura y 40
\mul de células DH10B. Las células fueron sometidas a impulsos
eléctricos de 2,0 kV, 25 mF y 400 ohmios. Después de la
electroporación, se sembró 1 ml de SOC [triptona Bacto (Difco,
Detroit, Michigan, EE.UU.) al 2%, extracto de levadura (Difco) al
0,5%, NaCl 10 mM, KCl 2,5 mM, MgCl_{2} 10 mM, MgSO_{4} 10 mM,
glucosa 20 mM] en partes alícuotas de 250 \mul en cuatro placas
LB AMP [caldo LB (Lennox), agar Bacto (Difco) al 1,8%, 100 mg/l de
ampicilina].
Los clones individuales que contenían la correcta
construcción de expresión para TACI-Fc4 o
BCMA-Fc4 fueron identificados por digestión de
restricción para verificar la presencia del inserto y confirmar que
las diversas secuencias de DNA habían sido correctamente unidas
entre sí. El inserto de los clones positivos fue sometido a un
análisis de secuencia. Se aisla DNA plasmídico a mayor escala usando
el sistema Qiagen Maxi (Qiagen) de acuerdo con las instrucciones
del fabricante.
Células BHK 570 (ATCC nº
CRL-10314) fueron sembradas en placas de 10 cm para
cultivo tisular y fueron dejadas crecer hasta una confluencia de
aproximadamente 50 a 70% durante la noche a 37ºC, CO_{2} al 5%, en
medio DMEM/FBS [DMEM, Gibco/BRL High Glucose (Gibco BRL,
Gaithersburg, Maryland, EE.UU.), suero bovino fetal (Hyclone, Logan,
Utah, EE.UU.) al 5%, L-glutamina (JRH Biosciences,
Lenexa, Kansas, EE.UU.) 1 mM, piruvato sódico (Gibco BRL) 1 mM].
Las células fueron luego transfectadas con el plásmido
TACI-Fc4/pZMP6 o BCMA- Fc4/pZMP6, usando
Lipofectamine™ (Gibco BRL), en una formulación de medio exenta de
suero (SF; del inglés, serum free) (DMEM, 10 mg/ml de transferrina,
5 mg/ml de insulina, 2 mg/ml de fetuína,
L-glutamina al 1% y piruvato sódico al 1%). Se
diluyó TACI-Fc4/pZMP6 o
BCMA-Fc4/pZMP6 hasta un volumen final total de 640
\mul con medio SF en tubos de 15 ml de capacidad. Se mezclaron 35
\mul de Lipofectamine™ (Gibco BRL) con 605 \mul de medio SF. Se
añadió la mezcla de Lipofectamine™ a la mezcla de DNA y se dejó
todo en incubación a temperatura ambiental durante aproximadamente
30 minutos. Se añadieron cinco militros de medio SF a la mezcla de
DNA:Lipofectamine™. Se enjuagaron las células una vez con 5 ml de
medio SF y se succionaron, y se añadió la mezcla de
DNA:Lipofectamine™. Se incubaron las células a 37ºC durante cinco
horas y luego se añadieron 6,4 ml de medio DMEM/FBS al 10%,
penicilina- estreptomicina-neomicina al 1% a cada
placa. Las placas fueron incubadas a 37ºC durante la noche, y la
mezcla de DNA:Lipofectamine™ fue sustituida por medio FBS al
5%/DMEM fresco el día siguiente. El día 5 después de la
transfección, las células fueron repartidas en matraces
T-162, en medio de selección (DMEM/FBS al 5%,
L-Glu al 1%, piruvato sódico al 1%).
Aproximadamente 10 días después de la transfección, dos placas de
cultivo de 150 mm de colonias resistentes al metotrexato procedentes
de cada transfección fueron tratadas con tripsina, y las células
fueron reunidas, sembradas en un matraz T-162 y
transferidas a un cultivo a gran escala.
Se crearon animales transgénicos que expresaban
genes de ztnf4 usando machos fértiles adultos (B6C3f1), hembras
fértiles prepubescentes (B6C3f1), machos sometidos a vasectomía
(B6D2f1) y hembras fértiles adultas (B6D2f1) (todos de Taconic
Farms, Germantown, New York, EE.UU.). Se hizo que las hembras
fértiles prepubescentes superovularan usando gonadotropina de suero
de yegua preñada (Sigma, St. Louis, Missouri, EE.UU.) y
gonadotropina coriónica humana [hCG; del inglés, human
chorionic gonadotropin (Sigma)]. Las hembras con
superovulación fueron posteriormente apareadas con machos fértiles
adultos, y la copulación fue confirmada por la presencia de tapones
vaginales.
Los óvulos fertilizados fueron recogidos bajo un
ámbito quirúrgico (Estereomicroscopio Leica MZ12, Leica, Wetzlar,
Alemania). Los óvulos fueron luego lavados en hialuronidasa y medio
W640 de Whitten (Tabla 8; todos los reactivos asequibles de Sigma
Chemical Co.) que había sido incubado con CO_{2} al 5%, O_{2}
al 5% y N_{2} al 90% a 37ºC. Los óvulos fueron guardados en una
incubadora a 37ºC/CO_{2} al 5% hasta la microinyección.
mg/200 ml | mg/500 ml | |
NaCl | 1.280 | 3.200 |
KCI | 72 | 180 |
KH_{2}PO_{4} | 32 | 80 |
MgSO_{4}-7H_{2}O | 60 | 150 |
Glucosa | 200 | 500 |
Lactato Ca^{2+} | 106 | 265 |
Bencilpenicilina | 15 | 37,5 |
Estreptomicina-SO_{4} | 10 | 25 |
NaHCO_{3} | 380 | 950 |
Piruvato Na | 5 | 12,5 |
H_{2}O | 200 ml | 500 ml |
EDTA 500 mM | 100 \mul | 250 \mul |
Rojo fenol al 5 % | 200 \mul | 500 \mul |
BSA | 600 | 1.500 |
El marco de lectura abierto de 858 bp que
codifica el ligando Blys de TACI humano de longitud completa (ID.
SEC. nº 35) fue multiplicado por PCR con objeto de introducir un
codón de iniciación optimizado y sitios 5' PmeI y 3'
AscI flanqueadores usando los cebadores oligonucleotídicos
de ID. SEC. nº 36 e ID. SEC. nº 37. Este fragmento
PmeI/AscI fue subclonado en pKFO24, un vector
transgénico restringido a células B y/o T que contiene el
potenciador E_{m} de Ig (fragmento NotI/XbaI de 690
bp de pE_{m}SR; Bodrug et al., EMBO J. 13:
2.124-30, 1.994), el promotor V_{h} de Ig
(fragmento HincII/HxoI de 536 bp de pJH1X(-); Hu et
al., J. Exp. Med. 177: 1.681-90,
1.993), el intrón 16S de SV40 (fragmento XhoI/HindIII
de 171 bp de pE_{m}SR), un policonector PmeI/AscI,
y la señal de poliadenilación del gen de la hormona de crecimiento
humana (fragmento SmaI/EcoRI de 627 bp; Seeburg,
DNA 1: 239-49, 1.982). El inserto
transgénico fue separado de la estructura plasmídica por digestión
con NotI y purificación en gel de agarosa, y los óvulos
fertilizados de los apareamientos de ratones B6C3F1Tac anteriormente
descritos fueron microinyectados e implantados en hembras
seudopreñadas esencialmente del modo previamente descrito (Malik et
al., Molec. Cell. Biol. 15: 2.349-58,
1.995).
Los receptores fueron devueltos a las jaulas por
parejas y fueron dejados en una gestación de 19-21
días. Después del parto, se dejaron 19-21 días de
posparto antes de la determinación del sexo y el destete, y se
cortaron 0,5 cm de la cola con unas tijeras limpias para biopsia
(usados para determinación del genotipo).
Se preparó DNA genómico a partir de los recortes
de la cola usando un sistema comercialmente asequible (Dneasy 96
Tissue Kit; Qiagen, Valencia, California, EE.UU.), siguiendo las
instrucciones del fabricante. El DNA genómico fue analizado por PCR
usando cebadores diseñados para la porción 3' UTR (región no
traducida; del inglés, untranslated region) de
la hormona de crecimiento humana (hGH) del vector transgénico. Los
cebadores ZC17251 (ID. SEC. nº 38) y ZC17252 (ID. SEC. nº 39)
multiplican un fragmento de 368 pares de bases de hGH. El uso de una
región única con respecto a la secuencia humana (identificada a
partir de una alineación de las secuencias de DNA 3' UTR de las
hormonas de crecimiento humana y de ratón) aseguraba que la
reacción PCR no multiplicaba la secuencia de ratón. Además, pueden
usarse los cebadores ZC17156 (ID. SEC. nº 40) y ZC17157 (ID. SEC. nº
41), que se hibridan con secuencias del vector y multiplican el
inserto de cDNA, junto con los cebadores de hGH. En estos
experimentos, el DNA de animales positivos para el transgén generaba
dos bandas, una banda de 368 pares de bases correspondiente al
fragmento 3' UTR de hGH, y una banda de tamaño variable que
correspondía al inserto de cDNA.
Una vez que se confirmó que los animales eran
transgénicos (TG), fueron retrocruzados en una cepa consanguínea al
colocar una hembra TG con un macho de tipo silvestre, o un macho TG
con una o dos hembras de tipo silvestre. Una vez nacidas y
destetadas las crías, se separaron por sexo y se cortaron muestras
de la cola con unas tijeras para determinación del genotipo.
Para comprobar la expresión de un transgén en un
animal vivo, se lleva a cabo una biopsia de supervivencia. El
análisis del nivel de expresión de mRNA de cada transgén fue
realizado usando un ensayo de hibridación en disolución de RNA o
una PCR en tiempo real en un dispositivo ABI Prism 7700 (PE Applied
Biosystems, Inc., Foster City, California, EE.UU.) siguiendo las
instrucciones del fabricante.
Se analizaron los ratones fundadores a distintas
edades. Para el análisis citométrico de flujo (FACS) de tejidos
linfoides, se aislaron células de médula ósea (BM; del inglés,
bone marrow) de fémures y tibias por deshacimiento
cuidadoso en disolución salina tamponada con fosfato (PBS) usando
un mortero y su maja. Las células fueron resuspendidas,
desprovistas de fragmentos óseos por sedimentación pasiva y
recogidas como sedimento de una centrifugación a 1.000 x g. Se
obtuvieron esplenocitos, timocitos o células de ganglio linfático
aplastando tejidos intactos entre portaobjetos de vidrio, y luego
resuspendiendo y recogiendo las células como sedimento de
centrifugación de igual modo que para BM. Antes de su tinción, las
células fueron resuspendidas en tampón de lavado (WB; del inglés,
wash buffer) de FACS (disolución salina equilibrada
de Hank, BSA al 1%, Hepes 10 mM, pH de 7,4) en una concentración de
20 x 10^{6} células/ml. Para la tinción, 1 x 10^{6} células
fueron transferidas a tubos de 5 ml de capacidad, lavadas con 1 ml
de WB de FACS y luego recogidas como sedimento de una
centrifugación a 1.000 x g. Las células fueron luego incubadas sobre
hielo durante 20 minutos en presencia de cantidades saturantes de
los apropiados anticuerpos monoclonales (mAbs; del inglés,
monoclonal Antibodies) conjugados con
FITC, PE y/o TriColor(TC), en un volumen total de 100 ml en
WB de FACS. Las células fueron lavadas con 1,5 ml de WB y recogidas
como sedimento de centrifugación, y fueron luego resuspendidas en
400 ml de WB y analizadas en un citómetro de flujo FACSCalibur
usando el programa informático CellQuest (Becton Dickinson, Mountain
View, California, EE.UU.). Se ajustaron detectores a escala lineal
para las dispersiones lumínicas directa (FSC; del inglés,
forward scatter) y lateral (SSC; del inglés,
side scatter), mientras que se usaron detectores
logarítmicos para los tres canales de fluorescencia
(FL-1, FL-2 y
FL-3).
En cada experimento, se llevó a cabo una
compensación para el solapamiento espectral entre canales FL usando
poblaciones celulares teñidas con un solo color. Todas las células
fueron recogidas sin selección en un disco, y los datos fueron
analizados usando el programa informático CellQuest. Los glóbulos
rojos y las células muertas fueron excluídas al seleccionar
electrónicamente los datos sobre la base de los perfiles FSC frente
a SSC.
Los mAbs anti-CD8 conjugado con
isotiocianato de fluoresceína (FITC) (clon 53-6.7) y
anti-CD4 conjugado con ficoeritrina (PE) (clon
RM4-5), anti-CD5 (clon
53-7.3), anti-CD19 (clon 1D3) y
antisindecán (clon 281-2) fueron adquiridos a
PharMingen (San Diego, California, EE.UU.). El mAb
anti-CD45R/B220 conjugado con Tricolor(TC)
(clon RA3-6B2) fue adquirido a Caltag.
Ratones transgénicos que sobreexpresan ztnf4 en
el compartimiento linfoide desarrollan números aumentados de células
B periféricas, células plasmáticas aumentadas y niveles elevados de
inmunoglobulina sérica. Estos animales transgénicos tienen un
número aumentado de células B200+ en el bazo, los ganglios
linfáticos y el timo. El número aumentado de células B esplénicas
incluye tanto células B-2 convencionales como la
población de células B-1 normalmente rara. En
general, las células B-1 están en gran parte
confinadas en la cavidad peritoneal y otras cavidades corporales,
producen anticuerpos autorreactivos de baja afinidad y se han
asociado a menudo con el desarrollo de enfermedades autoinmunes
tales como el lupus sistémico eritematoso (SLE).
Los animales transgénicos más viejos producen
autoanticuerpos y desarrollan proteinuria y glomérulos escleróticos,
características del lupus sistémico eritematoso.
La Figura 5A muestra suspensiones celulares
independientes de bazo (gráfico superior), ganglio linfático
mesentérico (gráfico central) y médula ósea (gráfico inferior)
preparadas del modo descrito más adelante, teñidas con
anti-B220-TC y analizadas por
citometría de flujo. El número de células B220+ en cada tejido fue
calculado multiplicando el porcentaje de células B220+ por el número
total de células vivas (exclusión de azul de tripano) contadas con
un hemocitómetro. Cada barra representa datos de ratones
individuales transgénicos en cuanto a ztnf4 (TG, barras sombreadas)
o compañeros de camada testigo no-TG (barras
claras).
La Figura 5B muestra células aisladas de ganglio
linfático (fila superior), bazo (filas centrales) y timo (fila
inferior) de ratones TG en cuanto a ztnf4 (gráficos a mano derecha)
y de compañeros de camada no-TG (gráficos a mano
izquierda), teñidas con mAbs hacia las moléculas indicadas (CD5,
CD4 y CD8) y luego analizadas por citometría de flujo. Los datos
mostrados fueron seleccionados para excluir las células muertas y
los glóbulos rojos.
La Figura 5C muestra niveles totales de IgG, IgM
e IgE en suero de ratones transgénicos en cuanto a ztnf4 con una
edad que variaba de 6 a 23 semanas.
La Figura 5D muestra el depósito de amiloide y el
mesangio engrosado de los glomérulos identificados en secciones
renales, teñidas con H&E, de ratones transgénicos en cuanto a
ztnf4 en comparación con glomérulos normales de compañeros de
camada testigo.
\newpage
La Figura 5E muestra un aumento de células T
efectoras en ratones transgénicos en cuanto a ztnf4, similar al
comunicado por Mackay et al. (J. Exp. Med. 190:
1.697-1.710, 1.999).
Se inyectan (ip, im o iv) fusiones solubles de
TACI (BR43x2) o BCMA- Ig a animales transgénicos que sobreexpresan
ztnf4. Se usará un análisis citométrico de flujo (FACS) de tejidos
linfoides para identificar cualquier cambio en el número de células
B B220+ en el bazo, los ganglios linfáticos y el timo.
Se desarrolló un ELISA de unión directo para
caracterizar la capacidad de TACI-Ig soluble o
BCMA-Ig soluble para unirse a, e inhibir, la
actividad biológica de ztnfr4 in vitro.
Una placa de 96 pocillos fue revestida con 1
\mug/ml de anti-Ig humana de cabra (Jackson Labs,
Bar Harbor, Massachusetts, EE.UU.) en tampón ELISA A
(Na_{2}HCO_{3} 0,1 M, pH de 9,6, NaN_{3} al 0,02%) y fue
incubada durante la noche a 4ºC. TACI, BCMA, y un receptor de TNF
no relacionado tal como ztnfr10 (ID. SEC. nº 42), como un testigo,
fueron titulados mediante diluciones a la quinta parte desde 10
\mug/ml hasta 320 ng/ml más un cero y coincubados con 2,5, 0,5 ó
0,1 \mug/ml de ztnf4 biotinilado u ovoalbúmina como un testigo
negativo, y fueron incubados durante 1 hora a temperatura
ambiental.
La mezcla de receptor-ligando
biotinilado coincubados fue luego añadida a las placas de 96
pocillos revestidos con anti-Ig humana de cabra. Las
placas fueron luego lavadas [ELISA C, 500 \mul de Tween 20 (Sigma
Chemical Co., St. Louis, Missouri, EE.UU.), 200 mg de NaN_{3},
PBS hasta un volumen final de 1 litro] y bloquedas con Superblock
(Pierce, Rockford, Illinois, EE.UU.). Las placas fueron luego
incubadas a 37ºC durante 2 horas.
Las placas son lavadas una vez más con ELISA C,
lo que va seguido de la adición de 100 \mul/pocillo de
NeutrAvidin™-HRP a 1:10.000 en ELISA B [5 ó 10 \mug de BSA (Sigma) para BSA al 1% o 2%, respectivamente, 250 \mul de Tween 20 (Sigma), 100 mg de NaN_{3}, disolución salina tamponada con fosfato, pH de 7,2 (PBS, Sigma), hasta un volumen final de 500 ml; alternativamente, el tampón puede ser preparado como BSA al 1% o 2% en tampón ELISA C]. Las placas son luego desarrolladas con o-fenilendiamina (OPD; del inglés, ortho-phenylendiamine) durante 10 minutos a temperatura ambiental y son leídas a 492 nm.
NeutrAvidin™-HRP a 1:10.000 en ELISA B [5 ó 10 \mug de BSA (Sigma) para BSA al 1% o 2%, respectivamente, 250 \mul de Tween 20 (Sigma), 100 mg de NaN_{3}, disolución salina tamponada con fosfato, pH de 7,2 (PBS, Sigma), hasta un volumen final de 500 ml; alternativamente, el tampón puede ser preparado como BSA al 1% o 2% en tampón ELISA C]. Las placas son luego desarrolladas con o-fenilendiamina (OPD; del inglés, ortho-phenylendiamine) durante 10 minutos a temperatura ambiental y son leídas a 492 nm.
Se desarrolló un ensayo de actividad biológica
para medir la inhibición, por TACI-FC soluble, de
la estimulación de células B humanas por ztnf4 soluble. Se aislaron
células B de células mononucleares de sangre periférica (PBMNC)
usando glóbulos magnéticos-CD19 y el sistema de
separación magnetico VarioMacs (Miltenyi Biotec, Auburn, California,
EE.UU.) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Las
células B purificadas fueron mezcladas con ztnf4 soluble (25 ng/ml)
e IL-4 humana recombinante (10 ng/ml, Pharmigen) y
fueron sembradas (por triplicado) en placas de 96 pocillos de fondo
redondo en una cantidad de 1 x 10^{5} células por pocillo.
TACI-FC soluble fue diluido de 5
\mug/ml a 6 ng/ml y fue incubado con las células B durante 5
días, estimulando durante la noche del día 4 con 3,7 x 10^{4} Bq
de ^{3}H-timidina (Amersham) por pocillo. Como un
testigo, también se incubó TACI-FC soluble con
células B e IL-4 sin ztnf4 presente.
Las placas fueron recolectadas usando la
cosechadora Packard de placas y fueron contadas usando el lector
Packard. El receptor soluble TACI-Ig inhibía la
capacidad de ztnf4 soluble para estimular la proliferación de
células B in vitro de un modo dependiente de la dosis. Un
exceso molar de TACI-Ig de 10 veces inhibe
completamente la proliferación de células B humanas en respuesta a
ztnf4 soluble en presencia de IL-4.
Se determinaron los niveles de ztnf4 en
individuos con un estado morboso (tal como SLE o artritis
reumatoide, por ejemplo) con respecto a los de individuos normales
usando un ensayo de electroquimioluminiscencia (ECL; del inglés,
electrochemiluminescence). Se preparó una curva
patrón a partir de ztnf4 humano soluble en unas concentraciones de
10 ng/ml, 1 ng/ml, 0,1 ng/ml, 0,01 ng/ml y 0 ng/ml en tampón ORIGIN
(Igen, Gaithersburg, Maryland, EE.UU.). Se diluyeron muestras de
suero en tampón ORIGIN. Los patrones y las muestras se incubaron a
temperatura ambiental durante 2 horas con anticuerpo
anti-ztnf4-NF BV humano biotinilado
de conejo, diluido hasta 1 \mug/ml en tampón de ensayo Origin
(Igen), y anticuerpo policlonal
anti-ztnf4-NF BV humano rutenilado
de conejo, diluido hasta 1 \mug/ml en tampón de ensayo Origin
(IGEN). Después de la incubación, se removieron las muestras con
formación de remolinos y se añadieron 50 \mul/tubo de
Dynabeads-estreptavidina a 0,4 mg/ml (Dynal, Oslo,
Noruega) a cada uno de los patrones y muestras, realizándose una
incubación a temperatura ambiental durante 30 minutos. Las muestras
fueron luego removidas con formación de remolinos y fueron leídas
en un analizador Origin (Igen) de acuerdo con las instrucciones del
fabricante. El ensayo Origin se basa en la
electroquimioluminiscencia y produce una lectura en ECL: ¿qué es
esto, cómo actúa y qué te dice?
Se detectó un nivel elevado de ztnf4 en las
muestras de suero de ratones tanto NZBWF1/J como
MRL-Mpj-Fas^{lpr} que han
progresado hasta fases avanzadas de glomerulonefritis y enfermedad
autoinmune.
Los ratones NZBW se vuelven sintomáticos en
cuanto a SLE espontáneo a aproximadamente los 7-9
meses de edad. Se administró TACI-Fc a ratones NZBW
para determinar su efecto supresor sobre células B a lo largo del
periodo de 5 semanas en que, por término medio, se piensa que la
producción de autoanticuerpos por células B está en niveles
elevados en los ratones NZBW.
Se dividieron cien hembras de ratón (NZB x
NZW)F_{1} de 8 semanas de edad (Jackson Labs) en 6 grupos
de 15 ratones. Antes del tratamiento, se determinó una vez al mes
la proteína úrica de los ratones y se extrajo sangre para cuenta
sanguínea completa (CBC; del inglés, complete blood
count) y depósito de suero. El suero será explorado en
cuanto a la presencia de autoanticuerpos. Puesto que la proteinuria
es la marca de contraste de la glomerulonefritis, los niveles de
proteína úrica se determinaron mediante tira reactiva a intervalos
regulares a lo largo del curso del estudio. Antes del tratamiento,
los animales fueron pesados. La dosificación empezó cuando los
ratones tenían aproximadamente 5 meses de edad. Los ratones
recibieron inyecciones intraperitoneales de vehículo solo (PBS) o
IgG-FC humano (proteína testigo) o
TACI-FC4 (proteína de ensayo) tres veces a la semana
durante 5 semanas.
Grupo (5 ratones cada uno) | Tratamiento | Dosis |
1 | Testigo no tratado | |
2 | Vehículo solo | |
3 | IgG-FC humano | 20 \mug |
4 | IgG-FC humano | 100 \mug |
5 | TACI-FC4 humano | 20 \mug |
6 | TACI-FC4 humano | 100 \mug |
Se recogió sangre dos veces durante la
dosificación y se recogerá al menos dos veces tras la dosificación.
Se determinaron los valores de proteinuria mediante tira reactiva y
los pesos corporales cada dos semanas una vez que hubo comenzado la
dosificación. Se recogieron sangre, el valor úrico mediante tira
reactiva y el peso corporal en el momento de la eutanasia. Se
obtuvieron los pesos del bazo, timo, hígado con vesícula biliar,
riñón izquierdo y cerebro. Se dividieron el bazo y el timo para
análisis por FACS e histología. También se recogerán glándulas
salivales submandibulares, cadena de ganglios linfáticos
mesentéricos, lóbulo hepático con vesícula biliar, ciego e intestino
grueso, estómago, intestino delgado, páncreas, riñón derecho,
glándula suprarrenal, lengua con tráquea y esófago, corazón y
pulmones para histología.
La Figura 6 muestra un nivel elevado de ztnf4 en
suero de ratones NZBWF1 y MRL/lpr/lpr que se
correlaciona con el desarrollo de SLE. El gráfico superior de la
Figura 6A muestra la correlación de los niveles séricos de ztnf4 con
la edad, 68 ratones NZBWF1 con una edad que variaba de 10 a 40
semanas y ratones testigo NZB/B de 10 semanas y 30 semanas de edad.
El gráfico central muestra la correlación con proteinuria en tres
intervalos, indicios a 20 mg/dl (I-30),
100-300 mg/dl y 2.000 mg/dl en ratones NZBWF1,
comparada con la de ratones NZB/B testigo. El gráfico inferior
muestra niveles de ztnf4 con diversos títulos de anticuerpo
anti-dsDNA en ratones NZBWF1, comparados con los de
ratones NZB/B testigo.
La Figura 6B muestra las mismas correlaciones
realizadas en 23 ratones MRL/lpr/lpr con una edad que variaba de 18
a 24 semanas y 10 ratones MRL/MpJ testigo de 11 semanas de
edad.
La Figura 7 muestra resultados de urianálisis. Se
consideró que los ratones tenían proteinuria si la lectura de la
tira reactiva era \geq 100 mg/dl. (A) PBS; (B) FC de IgG humano,
100 mg; (C) FC de IgG humano, 20 mg; (D) TACI-IgG
humano, 100 mg; y (E) TACI-IgG humano, 20 mg. Los
ratones tratados con la fusión TACI-IgG soluble
mostraron un reducción de proteinuria.
El análisis de la sangre periférica de los
animales tratados reveló que las cuentas de glóbulos blancos y
linfocitos estaban reducidas en los ratones tratados con
TACI-FC (20 y 100 mg) en comparación con las de los
ratones tratados con FC (20 y 100 mg) y con PBS, 2 semanas después
del inicio del tratamiento. El análisis por FACS (selección de
linfocitos) de sangre periférica extraída seis semanas después de
que empezara el tratamiento (dos semanas después de que se
administrara el último tratamiento) mostró una drástica reducción
del porcentaje de células B presentes en las muestras. Los niveles
de células B continuaron menguando a las cinco semanas después de
que se administrara el último tratamiento, aunque no tan
drásticamente. La Tabla 9 proporciona la media (y la desviación
estándar) para los ratones de cada grupo de tratamiento. La
reducción del porcentaje de células B en sangre periférica también
se observó a las dos semanas de tratamiento.
Tratamiento | Semana 2 | Semana 5 | |
% de células B | % de células T | % de células B | |
PBS | 26,05 (6,52) | 67,05 (6,80) | 20,83 (3,14) |
100 mg de FC | 23,34 (5,77) | 68,23 (7,30) | 25,04 (8,07) |
20 mg de FC | 24,09 (6,26) | 65,27 (7,18) | 18,96 (6,42) |
100 mg de TACI-FC | 11,07 (5,03) | 79,06 (6,71) | 14,79 (4,76) |
20 mg de TACI-FC | 16,37 (7,27) | 69,72 (8,90) | 19,14 (5,27) |
Se administró TACI-FC a ratones
Balb/C para determinar su efecto sobre ratones normales. Sesenta
hembras de ratón Balb/C (HSD) de 8 semanas de edad fueron divididas
en 12 grupos de 5 ratones. Antes del tratamiento, se pesaron los
ratones y se les extrajo sangre para CBC y depósito de suero. Los
grupos 1-9 recibieron inyecciones intraperitoneales
(ip) de vehículo solo (PBS) o IgG-FC humano
(proteína testigo) o TACI-FC4 (proteína de ensayo)
diariamente durante 12 días y fueron sacrificados el día 14. Los
grupos 10 y 11 recibieron inyecciones ip tres veces por semana
durante dos semanas y fueron sacrificados el día 14.
Grupo (5 ratones cada uno) | Tratamiento | Dosis |
1 | TACI-FC4 humano | 200 mg |
2 | TACI-FC4 humano | 100 mg |
3 | TACI-FC4 humano | 20 \mug |
4 | TACI-FC4 humano | 5 \mug |
5 | FC4 humano | 200 \mug |
6 | FC4 humano | 100 mg |
7 | FC4 humano | 20 mg |
8 | FC4 humano | 5 mg |
9 | vehículo solo | tal cual |
10 | TACI-FC4 humano | 100 mg |
11 | FC4 humano | 100 mg |
12 | testigo no tratado |
Se recogió sangre los días 7 y 12. Se recogió
sangre y se determinó el peso corporal en el momento de la
eutanasia. Se obtuvieron los pesos del bazo, timo y cerebro. Se
dividieron el bazo y el timo para análisis por FACS e histología.
También se recogieron piel, bazo, cadena de ganglios linfáticos
mesentéricos, glándulas salivales submandibulares, ovario, útero,
cérvix, vejiga, lóbulo hepático con vesícula biliar, ciego e
intestino grueso, estómago, intestino delgado, páncreas, riñón
derecho, glándula suprarrenal, lengua con tráquea y esófago,
corazón, timo, músculo del muslo, fémures izquierdo y derecho y
cerebro para histología.
\newpage
Como antes se describió en el Ejemplo 13, se vio
una reducción significativa del porcentaje de células B los días 7
(por CBC) y 12 (usando FACS) en las células de sangre periférica
obtenidas de todas las muestras tratadas con TACI- FC4, en
comparación con las tratadas con FC4 o PBS solos y analizadas por
CBC o FACS. Además, el día 14 hubo una disminución de células B de
casi el 50% en los bazos obtenidos de animales tratados con
TACI-FC4, en comparación con los de ratones tratados
con FC4.
La autoinmunidad se caracteriza por niveles
elevados de anticuerpos anti-DNA de doble cadena.
Para medir los niveles de anticuerpos anti-dsDNA
tanto en los ratones transgénicos que sobreexpresan ztnf4 como en
los ratones NZBW, se desarrolló un ensayo ELISA. Una placa de
microtitulación de 96 pocillos fue revestida con
poli-L-lisina (Sigma; 20\mul/ml en
tampón de Tris 0,1 M, pH de 7,3) en una cantidad de 75
\mul/pocillo y fue incubada durante la noche a temperatura
ambiental. Las placas fueron luego lavadas en H_{2}O destilada y
fueron revestidas con poli-dAdT (Sigma; 20\mul/ml
en tampón de Tris 0,1 M, pH de 7,3) en una cantidad de 75
\mul/pocillo y fueron incubadas a temperatura ambiental durante
60 minutos. Las placas fueron luego lavadas con H_{2}O destilada
y fueron bloqueadas con BSA (Sigma) al 2% en tampón de Tris durante
30 minutos a temperatura ambiental, lo que fue seguido de un lavado
final en H_{2}O destilada.
Se obtuvieron muestras de suero de los ratones
transgénicos en cuanto a ztnf4 descritos en el Ejemplo 10 y de los
ratones NZBW descritos en el Ejemplo 11. Las muestras de suero
fueron diluidas a 1:50 en BSA al 1%/gammaglobulina bovina (BGG; del
inglés, bovine gamma globulin) al 2% (Calbiochem) en tampón de Tris.
Las muestras diluidas fueron luego tituladas en la placa revestida
a 1:50, 1:100, 1:200, 1:400, 1:800, 1:1.600, 1:3.200 y 1:6.400 (50
\mul/pocillo) y fueron incubadas durante 90 minutos a temperatura
ambiental.
Luego se lavaron las placas en H_{2}O destilada
y se añadió anti- IgG-Fc de
ratón-HRP, generado en cabra (Cappel), diluido a
1:1.000 en BSA al 1%/BGG al 2%, en una cantidad de 50
\mul/pocillo. Las placas fueron incubadas durante 60 minutos a
temperatura ambiental. Las placas fueron lavadas 5 veces en H_{2}O
destilada y fueron desarrolladas con OPD, 1 tableta/10 ml de Novo
D, añadida en una cantidad de 100 \mul/pocillo. El revelador fue
detenido con H_{2}SO_{4}
1 N, 100 \mul/pocillo, y la densidad óptica (OD; del inglés, optical density) fue leída a 492 nm.
1 N, 100 \mul/pocillo, y la densidad óptica (OD; del inglés, optical density) fue leída a 492 nm.
La Figura 8 muestra los niveles de
anti-dsDNA en dos ratones transgénicos en cuanto a
ztnf4 (23 semanas de edad) y dos compañeros de camada no
transgénicos, en comparación con los niveles detectados en el suero
de ratones NZBWF1 (32 semanas de edad) y MRL/lpr/lpr
(19 semanas de edad).
Veinticinco hembras de ratón PLxSJL F1 (12
semanas de edad, Jackson Labs) recibieron una inyección subcutánea
de 125 \mug/ratón de antígeno [proteína proteolipídica (PLP; del
inglés, proteolipid protein) de la mielina, restos
139-151], formulada en adyuvante completo de Freund.
Los ratones son divididos en 5 grupos de 5 ratones. Los días 0 y 2
se administran inyecciones intraperitoneales de toxina pertussis
(400 ng). Los grupos recibirán una dosis 1x, 10x o 100x de TACI,
BCMA o BR43x2, un grupo sólo recibirá vehículo y un grupo no
recibirá tratamiento alguno. La terapia de prevención comenzará el
día 0; la terapia de intervención comenzará el día 7 o al inicio de
los síntomas clínicos. Los síntomas de enfermedad, pérdida de peso y
parálisis se manifiestan en aproximadamente 10-14
días y duran aproximadamente 1 semana. Los animales son evaluados
diariamente obteniendo sus pesos corporales y asignándoles una
calificación clínica que corresponda al grado de sus síntomas. Los
síntomas clínicos de la EAE aparecen a los 10-14
días de la inoculación y persisten durante aproximadamente 1 semana.
Al final del estudio, todos los animales son sometidos a eutanasia
por sobredosis de gas y a necropsia. El cerebro y la columna
vertebral son recogidos para histología o son congelados para
análisis de mRNA. Los datos de peso corporal y calificación clínica
son representados gráficamente por individuo y por grupo.
0 | normal |
0,5 | débil, el tono de la cola puede estar reducido pero no ausente |
1 | cola flácida (el ratón no puede elevar la cola cuando es cogido por la base de la cola) |
2 | cola flácida, patas débiles (no puede elevar la cola, puede permanecer derecho sobre las patas traseras pe- |
ro las patas están temblorosas). | |
3 | paresia (no puede sentarse con las patas bajo el cuerpo, anda echando las patas hacia los lados y hacia |
atrás) | |
4 | parálisis (no puede mover las patas traseras, arrastra las patas cuando intenta andar) |
5 | cuadriplejia (parálisis en las patas delanteras o andadura siguiendo un patrón circular; puede tener la ca- |
beza ladeada) | |
6 | moribundo (completamente paralizado, no puede alcanzar la comida ni el agua; animal para sacrificar) |
Se dividen machos de ratón DBA/1J (Jackson Labs)
de ocho semanas de edad en grupos de 5 ratones/grupo y se les
administran dos inyecciones subcutáneas de 50-100
\mul de colágeno (procedente de pollo o bovino) en concentración
de 1 mg/ml, en intervalos de 3 semanas. Un testigo no recibirá
inyecciones de colágeno. La primera inyección es formulada en
adyuvante completo de Freund y la segunda inyección es formulada en
adyuvante incompleto de Freund. Se administrará profilácticamente
TACI-FC en el momento, o antes, de la segunda
inyección, o una vez que el animal ha desarrollado una calificación
clínica de 2 o más que persiste al menos 24 horas. Los animales
comienzan a mostrar síntomas de artritis después de la segunda
inyección de colágeno, normalmente en 2-3 semanas.
El grado de enfermedad es evaluado en cada pata utilizando un
calibre para medir el grosor de las patas y asignar una
calificación clínica (0-4) a cada pata; calificación
clínica: 0 normal, 1 punta(s) de la(s) pata(s)
inflamada(s), 2 ligera inflamación de las patas, 3 moderada
inflamación de las patas, y 4 grave inflamación de las patas. Los
animales fueron sometidos a eutanasia una vez que se hubo
establecido la enfermedad durante un determinado periodo de tiempo,
normalmente 7 días. Se recogen las patas para histología o análisis
de mRNA y se recoge suero para ensayos de inmunoglobulinas y
citoquinas.
Se prepararon anticuerpos policlonales
antipeptídicos al inmunizar 2 hembras de conejo blanco de Nueva
Zelanda con el péptido, huztnf4-1 SAGIAKLEE-
GPELQLAIPRE (ID. SEC. nº 59) o huztnf4-2
SFKRGSALEEKENKELVKET (ID. SEC. nº 60). Los péptidos fueron
sintetizados usando un sintetizador peptídico Applied Biosystems
Model 431A (Applied Biosystems, Inc., Foster City, California,
EE.UU.) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Los
péptidos fueron luego conjugados con el vehículo proteico,
hemocianina de Fissurella (KLH), mediante activación con
maleimida. Cada conejo recibió una inyección intraperitoneal (ip)
inicial de 200 \mug de péptido en adyuvante completo de Freund,
seguida de inyecciones ip de refuerzo de 100 \mug de péptido en
adyuvante incompleto de Freund cada tres semanas. Siete a diez días
después de la administración de la segunda inyección de refuerzo (3
inyecciones en total), se realizó una sangría a los animales y se
recogió el suero. Los animales fueron luego reforzados y sangrados
cada tres semanas.
Los sueros de conejo específicos del péptido
ztnf4 fueron caracterizados mediante una determinación del título
por ELISA usando 1 \mug/ml de los péptidos usados para preparar
el anticuerpo (ID. SEC. n^{os} 59 y 60) como una diana del
anticuerpo. Los sueros de 2 conejos hacia el péptido
huztnf4-1 (ID. SEC. nº 59) tenían título hacia su
péptido específico en una dilución de 1:1E5 (1:100.000). Los sueros
de 2 conejos hacia el péptido huztnf4-2 (ID. SEC.
nº 60) tenían título hacia su péptido específico en una dilución de
1:5E6 y hacia proteínas recombinantes de longitud completa [ztnf4
N-terminalmente etiquetado con FLAG, preparado en
baculovirus (huztnf4s- NF-Bv), y ztnf4
C-terminalmente etiquetado con FLAG, preparado en
células BHK] en una dilución de 1:5E6.
Los anticuerpos policlonales específicos del
péptido ztnf4 fueron purificados del suero de conejo por afinidad
usando columnas de proteína-CNBr- SEPHAROSE 4B
(Pharmacia LKB) que fueron preparadas usando 10 mg de los péptidos
específicos (ID. SEC. n^{os} 59 y 60) por gramo de
CNBr-SEPHAROSE, seguido de diálisis 20x en PBS
durante la noche. Los anticuerpos específicos de ztnf4 fueron
caracterizados mediante una determinación del título por ELISA
usando 1 \mug/ml del apropiado antígeno peptídico o proteína
recombinante de longitud completa
(huztnf4s-NF-Bv) como dianas del
anticuerpo. El límite inferior de detección (LLD; del inglés,
lower limit of detection) del anticuerpo de
conejo anti-huztnf4-1, purificado
por afinidad, con respecto a su antígeno específico (péptido
huztnf4-1, ID. SEC. nº 59) es una dilución de 5
ng/ml. El LLD del anticuerpo de conejo
anti-huztnf4-2, purificado por
afinidad, con respecto a su antígeno específico (péptido
huztnf4-2, ID. SEC. nº 60) es una dilución de 0,5
ng/ml. El LLD del anticuerpo de conejo
anti-huztnf4-2 purificado por
afinidad con respecto a la proteína recombinante
huztnf4s-NF-Bv es una dilución de 5
ng/ml.
También se generaron anticuerpos monoclonales de
ratón, y se seleccionaron en cuanto a la inhibición de la inhibición
de ztnf4 soluble marcado con biotina. Ninguno de los anticuerpos
monoclonales hacia TACI (248.14, 248.23, 248.24 y 246.3) bloquea la
unión de ztnf4 a BCMA. El anticuerpo monoclonal 248.23 reduce la
unión de 10 ng/ml de ztnf4-biotina a aproximadamente
50% cuando medio acondicionado es diluido hasta 1:243 y reduce la
unión hasta aproximadamente 2x en medio no diluido. El anticuerpo
monoclonal 246.3 reduce la unión de 10 ng/ml de
ztnf4-biotina a aproximadamente 50% entre unas
diluciones de 1:243 y 1:181 de medio acondicionado y reduce la
unión 5x en medio no diluido.
El invento no está limitado salvo por las
reivindicaciones adjuntas.
\vskip0.333000\baselineskip
<110> ZymoGenetics, Inc.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<120> RECEPTOR SOLUBLE BR43X2 Y MÉTODOS DE
USO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<130> 98-75
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<150> 09/226.533
\vskip0.333000\baselineskip
<151>
1.999-01-07
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<160> 60
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<170> FastSEQ para Windows, versión 3.0
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.333000\baselineskip
<211>1.192
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (6)...(746)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 1
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 247
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 2
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 360
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (1)...(360)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 3
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 120
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 4
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 1.377
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (14)...(895)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 5
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 293
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 6
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 995
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (219)...(773)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 7
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 184
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 8
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 245
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 9
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Motivo que describe el dominio de
seudorrepeticiones ricas en cisteína
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (1)...(2)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cada Xaa es independientemente
cualquier resto de aminoácido salvo cisteína, o está ausente.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (4)...(4)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Xaa es cualquier resto de aminoácido
salvo cisteína.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (5)...(5)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Xaa es glutamina, ácido glutámico o
lisina.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (6)...(6)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Xaa es glutamina, ácido glutámico,
lisina, asparagina, arginina, ácido aspártico, histidina o
serina.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (7)...(7)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Xaa es glutamina o ácido
glutámico.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (8)...(9)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cada Xaa es independientemente
cualquier resto de aminoácido salvo cisteína, o está ausente.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (10)...(11)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Xaa es tirosina, fenilalanina o
triptófano.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (13)...(13)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Xaa es cualquier resto de aminoácido
salvo cisteína.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (16)...(17)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cada Xaa es independientemente
cualquier resto de aminoácido salvo cisteína.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (19)...(19)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Xaa es isoleucina, metionina, leucina
o valina.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (20)...(20)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Xaa es cualquier resto de aminoácido
salvo cisteína.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (22)...(24)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cada Xaa es independientemente
cualquier resto de aminoácido salvo cisteína.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (26)...(31)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cada Xaa es independientemente
cualquier resto de aminoácido salvo cisteína.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (32)...(33)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cada Xaa es independientemente
cualquier resto de aminoácido salvo cisteína, o está ausente.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (35)...(36)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cada Xaa es independientemente
cualquier resto de aminoácido salvo cisteína.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (37)...(37)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Xaa es tirosina o fenilalanina.
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
\vskip0.333000\baselineskip
<221> VARIANTE
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (39)...(40)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cada Xaa es independientemente
cualquier resto de aminoácido salvo cisteína, o está ausente.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 10
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 360
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Secuencia oligonucleotídica
degenerada que codifica el polipéptido de ID. SEC. nº 4.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> Variación
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (1)...(360)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cada N es independientemente A, T, G
o C.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 11
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 741
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Secuencia oligonucleotídica
degenerada que codifica un polipéptido de ID. SEC. nº 2.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<221> Variación
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (1)...(741)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cada N es independientemente A, T, G
o C.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 12
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 8
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Etiqueta FLAG.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Lys}
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Etiqueta Glu-Glu.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Glu Glu Tyr Met Pro Met Glu}
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC19980.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipcgaagagcag tactgggatc ctct
\hfill24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC19981.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipgccaaggcca ctgtctggga tgt
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 1.149
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (236)...(1.027)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 17
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 264
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 18
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 1.430
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (102)...(848)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 19
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 249
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 20
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 473
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Sonda para transferencia Northern
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 21
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> ZC20061
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipctgtggacag gggtggctat gagat
\hfill25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC20062
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipaccgccacca ggaagcacag aggac
\hfill25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 256
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Sonda para transferencia Northern
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 24
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC21065
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskiptgcgattctc tggacctgtt tg
\hfill22
\newpage
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 26
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC21067
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 26
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipgaccttcggt ttgctcttga tg
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC24200
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipacactggggg tctgcctctg
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC24201
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 28
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipgcgaagccgt gtatccc
\hfill17
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 29
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC24198
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 29
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskiptctacagcac gctgggg
\hfill17
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 30
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 16
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC24199
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 30
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipgcacaagtgg ggtcgg
\hfill16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC24271
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 31
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipttattgtaat gcaagtgtg
\hfill19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 32
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC24272
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 32
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskiptagctgggag tggaaag
\hfill17
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 33
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC24495
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 33
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskiptccaagcgtg accagttcag
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC24496
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 34
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipagttggcttc tccatccc
\hfill18
\newpage
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 35
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 1.090
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 35
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 36
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 35
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 36
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipcgcgcggttt aaacgccacc atggatgact ccaca
\hfill35
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 37
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 32
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 37
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipgtatacggcg cgcctcacag cagtttcaat gc
\hfill32
\newpage
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 38
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC17251
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 38
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskiptctggacgtc ctcctgctgg tatag
\hfill25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 39
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC17252
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipggtatggagc aaggggcaag ttggg
\hfill25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 40
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 27
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC17156
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipgagtggcaac ttccagggcc aggagag
\hfill27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 41
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 27
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC17157
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipcttttgctag cctcaaccct gactatc
\hfill27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 42
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 813
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 42
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 44
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC10134
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 43
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipatcagcggaa ttcagatctt cagacaaaac tacacaatgc ccac
\hfill44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 44
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 35
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC10135
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipggcagtctct agatcattta cccggagaca gggag
\hfill35
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 45
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 768
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.333000\baselineskip
<222> (7)...(759)
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Secuencia de Fc de Ig
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 45
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 46
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 52
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC15345
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 46
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipccgtgcccag cacctgaagc cgagggggca ccgtcagtct tcctcttccc cc
\hfill52
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 47
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 31
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC15347
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 47
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipggattctaga ttttataccc ggagacaggg a
\hfill31
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 48
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 55
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC15517
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 48
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipggtggcggct cccagatggg tcctgtccga gcccagatct tcagacaaaa ctcac
\hfill55
\newpage
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 49
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC15530
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 49
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskiptgggagggct ttgttgga
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 50
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC15518
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 50
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskiptccaacaaag ccctcccatc ctccatcgag aaaaccatct cc
\hfill42
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 51
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 57
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Oligonucleótido ZC15516
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 51
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipggatggatcc atgaagcacc tgtggttctt cctcctgctg gtggcggctc ccagatg
\hfill57
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 52
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 59
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cebador oligonucleotídico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 52
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipctcagccagg aaatccatgc cgagttgaga cgcttccgta gaatgagtgg cctgggccg
\hfill59
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 53
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 48
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cebador oligonucleotídico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 53
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipgcatgtgtga gttttgtctg aagatctggg ctccttcagc cccgggag
\hfill48
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 54
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 59
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cebador oligonucleotídico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 54
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipctcagccagg aaatccatgc cgagttgaga cgcttccgta gaatgagtgg cctgggccg
\hfill59
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 55
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 59
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cebador oligonucleotídico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 55
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipgcacggtggg catgtgtgag ttttgtctga agatctgggc tccttcagcc ccgggagag
\hfill59
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 56
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 60
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cebador oligonucleotídico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 56
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipgcacagaggc tcagaagcaa gtccagctct cccggggctg aaggagccca gatcttcaga
\hfill60
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 57
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 56
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cebador oligonucleotídico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 57
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipggggtgggta caaccccaga gctgttttaa tctagattat ttacccggag acaggg
\hfill56
\newpage
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 58
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 59
\vskip0.333000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Cebador oligonucleotídico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 58
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
\dddseqskipctaacatgtc agcgttattg taatgcaagt gtgaccaatt cagagcccag atcttcaga
\hfill59
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 59
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Anticuerpo peptídico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 59
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Ser Ala Gly Ile Ala Lys Leu Glu Glu Gly Pro
Glu Leu Gln Leu Ala}
\sac{Ile Pro Arg Glu}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<210> 60
\vskip0.333000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.333000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.333000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<220>
\vskip0.333000\baselineskip
<223> Anticuerpo peptídico
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.333000\baselineskip
<400> 60
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Ser Phe Lys Arg Gly Ser Ala Leu Glu Glu Lys
Glu Asn Lys Glu Leu}
\sac{Val Lys Glu Thr}
Claims (38)
1. Uso de un compuesto seleccionado del grupo que
consiste en:
a) un polipéptido que comprende el dominio
extracelular de BR43x2 (ID. SEC. nº 2);
b) un polipéptido soluble que comprende el
dominio extracelular de TACI;
c) un polipéptido que comprende el dominio
extracelular de BCMA;
d) un polipéptido que comprende la secuencia de
ID. SEC. nº 10;
e) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 2;
f) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 4;
g) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 6;
h) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 8;
i) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 10;
k) un polipéptido de ID. SEC. nº 4;
l) los restos de aminoácido 1-166
de la ID. SEC. nº 6;
m) los restos de aminoácido 8-37
de la ID. SEC. nº 8; y
n) los restos de aminoácido 1-48
de la ID. SEC. nº 8,
en la fabricación de un medicamento para inhibir
la actividad de ztnf4 en un mamífero.
2. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 1, en
el que dicho mamífero es un primate.
3. Uso de un compuesto seleccionado del grupo que
consiste en:
a) un polipéptido que comprende el dominio
extracelular de BR43x2 (ID. SEC. nº 2);
b) un polipéptido soluble que comprende el
dominio extracelular de TACI;
c) un polipéptido que comprende el dominio
extracelular de BCMA;
d) un polipéptido que comprende la secuencia de
ID. SEC. nº 10;
e) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 2;
f) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 4;
g) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 6;
h) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 8;
i) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 10;
j) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 18;
k) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. nº 20;
l) un polipéptido de ID. SEC. nº 4;
m) los restos de aminoácido 1-166
de la ID. SEC. nº 6;
n) los restos de aminoácido 8-37
de la ID. SEC. nº 8; y
o) los restos de aminoácido 1-48
de la ID. SEC. nº 8,
en la fabricación de un medicamento para inhibir
el acoplamiento del receptor BR43x2, TACI o
BCMA-ztnf4.
4. Un uso de acuerdo con las Reivindicaciones
1-3, en el que dicho compuesto es una proteína de
fusión que consiste en una primera porción y una segunda porción
unidas por un enlace peptídico, primera porción que comprende un
polipéptido seleccionado del grupo que consiste en:
a) un polipéptido que comprende la secuencia de
ID. SEC. nº 8;
b) un polipéptido que comprende los restos de
aminoácido 25-58 de la ID. SEC. nº 2;
c) un polipéptido que comprende los restos de
aminoácido 34-66 de la ID. SEC. nº 6;
d) un polipéptido que comprende los restos de
aminoácido 71-104 de la ID. SEC. nº 6;
e) un polipéptido que comprende los restos de
aminoácido 25-104 de la ID. SEC. nº 6;
f) un polipéptido que comprende los restos de
aminoácido 8-37 de la ID. SEC. nº 8;
g) un polipéptido que comprende los restos de
aminoácido 41-88 de la ID. SEC. nº 8; y
h) un polipéptido que comprende los restos de
aminoácido 8-58 de la ID. SEC. nº 8;
y segunda porción que comprende otro
polipéptido.
5. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 4, en
el que dicha primera porción comprende además un polipéptido
seleccionado del grupo que consiste en:
a) los restos de aminoácido
59-120 de la ID. SEC. nº 2;
b) los restos de aminoácido
105-166 de la ID. SEC. nº 6; y
c) los restos de aminoácido
89-150 de la ID. SEC. nº 8.
6. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 4, en
el que dicha primera porción es seleccionada del grupo que consiste
en:
a) un polipéptido que comprende el dominio
extracelular de BR43x2 (ID. SEC. nº 2);
b) un polipéptido soluble que comprende el
dominio extracelular de TACI; y
c) un polipéptido que comprende el dominio
extracelular de BCMA;
7. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 4, en
el que dicha primera porción es seleccionada del grupo que consiste
en:
a) un polipéptido de ID. SEC. nº 4;
b) los restos de aminoácido 1-154
de la ID. SEC. nº 6; y
c) los restos de aminoácido 1-48
de la ID. SEC. nº 8.
8. Un uso de acuerdo con las Reivindicaciones
4-7, en el que dicha segunda porción es una región
constante de cadena pesada inmunoglobulínica.
9. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 8, en
el que dicha región constante de cadena pesada inmunoglobulínica es
una región constante de cadena pesada inmunoglobulínica humana.
10. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 9, en
el que dicha región constante de cadena pesada inmunoglobulínica
humana es una región constante de cadena pesada inmunoglobulínica
humana de IgG1.
11. Un uso de acuerdo con las Reivindicaciones 8
a 10, en el que dicho medicamento comprende un multímero de dichas
proteínas de fusión.
12. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 11,
en el que dicho medicamento comprende una región constante de cadena
pesada inmunoglobulínica que contiene dos dominios de región
constante y carece de la región variable.
13. Un uso de acuerdo con las Reivindicaciones
1-12, en el que el medicamento es para el
tratamiento de linfocitos B.
14. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 13,
en el que los linfocitos B son linfocitos B activados.
15. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 13,
en el que los citados linfocitos B son linfocitos B en reposo.
16. Un uso de acuerdo con las Reivindicaciones
1-15, en el que el medicamento es para inhibir la
producción de anticuerpos.
17. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 16,
en el que dicha producción de anticuerpos está asociada con una
enfermedad autoinmune.
18. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 17,
en el que dicha enfermedad autoinmune es lupus sistémico
eritematoso, miastenia gravis, esclerosis múltiple o artritis
reumatoide.
19. Un uso de acuerdo con las Reivindicaciones
1-18, para el tratamiento del asma, bronquitis,
enfisema e insuficiencia renal de fase terminal.
20. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 19,
en el que dicha enfermedad renal es glomerulonefritis, vasculitis,
nefritis o pielonefritis.
21. Un uso de acuerdo con las Reivindicaciones
1-20, para el tratamiento de neoplasias renales,
mielomas múltiples, linfomas, neuropatía de cadenas ligeras o
amiloidosis.
22. Un uso de acuerdo con las Reivindicaciones
1-21, para inhibir células T efectoras.
23. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 22,
para moderar la respuesta inmune.
24. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 22,
en el que dicha inhibición comprende además inmunosupresión.
25. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 24,
en el que dicha inmunosupresión está asociada con rechazo de
injertos, enfermedad del injerto contra el huésped, enfermedad
autoinmune o inflamación.
26. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 17,
en el que dicha enfermedad autoinmune es diabetes mellitus
dependiente de insulina o la enfermedad de Crohn.
27. Un uso de acuerdo con las Reivindicaciones
1-26, para el tratamiento de la inflamación.
28. Un uso de acuerdo con la Reivindicación 27,
en el que dicha inflamación está asociada con dolor articular,
hinchazón, anemia o shock séptico.
29. Una molécula polinucleotídica aislada que
codifica un polipéptido de ID. SEC. n° 2.
30. Una molécula polinucleotídica aislada de ID.
SEC. n° 1.
31. Un vector de expresión que comprende los
siguientes elementos operativamente enlazados:
un promotor de transcripción;
una molécula polinucleotídica de acuerdo con la
Reivindicación 29; y
un terminador de transcripción.
32. Una célula en cultivo en la que se ha
introducido un vector de expresión de acuerdo con la Reivindicación
31, célula en cultivo que expresa dicho polipéptido codificado por
dicha molécula polinucleotídica.
33. Un método para producir un polipéptido, que
comprende:
cultivar una célula en la que se ha introducido
un vector de expresión de acuerdo con la Reivindicación 31,
mediante lo cual dicha célula expresa dicho polipéptido codificado
por dicha molécula polinucleotídica; y
recuperar dicho polipéptido expresado.
34. Un polipéptido aislado que tiene la secuencia
de ID. SEC. n° 2.
35. Un polipéptido de acuerdo con la
Reivindicación 34, en combinación con un vehículo farmacéuticamente
aceptable.
36. Una composición farmacéutica que
comprende:
a) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. n° 2;
b) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. n° 4;
c) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. n° 6;
d) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. n° 8; o
e) un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se
une específicamente a un polipéptido de ID. SEC. n° 10;
y un vehículo farmacéuticamente
aceptable.
37. Una composición de acuerdo con la
Reivindicación 36, en la que dicho anticuerpo o fragmento de
anticuerpo es seleccionado del grupo que consiste en:
- a)
- anticuerpo policlonal;
- b)
- anticuerpo monoclonal murino;
- c)
- anticuerpo humanizado procedente de b); y
- d)
- anticuerpo monoclonal humano.
38. Una composición de acuerdo con las
Reivindicaciones 36 y 37, en la que dicho fragmento de anticuerpo
es seleccionado del grupo que consiste en F(ab'), Fab, Fv y
scFv.
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US22653399A | 1999-01-07 | 1999-01-07 | |
US226533 | 1999-01-07 | ||
PCT/US2000/000396 WO2000040716A2 (en) | 1999-01-07 | 2000-01-07 | Soluble receptor br43x2 and methods of using them for therapy |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
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