DE69123145T2 - Enzymatische synthese löslicher phosphatide aus phospholipiden - Google Patents

Enzymatische synthese löslicher phosphatide aus phospholipiden

Info

Publication number
DE69123145T2
DE69123145T2 DE69123145T DE69123145T DE69123145T2 DE 69123145 T2 DE69123145 T2 DE 69123145T2 DE 69123145 T DE69123145 T DE 69123145T DE 69123145 T DE69123145 T DE 69123145T DE 69123145 T2 DE69123145 T2 DE 69123145T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
salt
mixed
monovalent
weight
calcium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
DE69123145T
Other languages
English (en)
Other versions
DE69123145D1 (en
Inventor
Frank Willow Grove Pa 19090 Marziani
Frank G. Cranbury Nj 08512 Pilkiewicz
John A. F. Cranbury Nj 08512 Tino
Paul A. Hamilton Nj 08619 Tremblay
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Elan Pharmaceuticals LLC
Original Assignee
Liposome Co Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Liposome Co Inc filed Critical Liposome Co Inc
Application granted granted Critical
Publication of DE69123145D1 publication Critical patent/DE69123145D1/de
Publication of DE69123145T2 publication Critical patent/DE69123145T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127Liposomes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127Liposomes
    • A61K9/1271Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes, liposomes coated with polymers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07FACYCLIC, CARBOCYCLIC OR HETEROCYCLIC COMPOUNDS CONTAINING ELEMENTS OTHER THAN CARBON, HYDROGEN, HALOGEN, OXYGEN, NITROGEN, SULFUR, SELENIUM OR TELLURIUM
    • C07F9/00Compounds containing elements of Groups 5 or 15 of the Periodic Table
    • C07F9/02Phosphorus compounds
    • C07F9/06Phosphorus compounds without P—C bonds
    • C07F9/08Esters of oxyacids of phosphorus
    • C07F9/09Esters of phosphoric acids
    • C07F9/10Phosphatides, e.g. lecithin
    • C07F9/106Adducts, complexes, salts of phosphatides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/64Fats; Fatty oils; Ester-type waxes; Higher fatty acids, i.e. having at least seven carbon atoms in an unbroken chain bound to a carboxyl group; Oxidised oils or fats
    • C12P7/6436Fatty acid esters
    • C12P7/6445Glycerides
    • C12P7/6481Phosphoglycerides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P9/00Preparation of organic compounds containing a metal or atom other than H, N, C, O, S or halogen

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Fodder In General (AREA)

Description

  • Diese Erfindung betrifft eine verbesserte Synthese löslicher Phosphatide aus Phospholipiden unter Verwendung des Enzyms Phospholipase D als Katalysator, wodurch hohe Ausbeuten hochreiner löslicher Phosphatide erhalten werden.
  • Phosphatide wie Phosphatidylglyzerin sind wertvolle, nützliche Produkte, die für die Herstellung von Liposomen und Lipidkomplexen verwendet werden.
  • Phosphatidylglyzerine und andere Phosphatide werden bisher durch Mischen einer wäßrigen Pufferlösung, die Kalziumazetat, Essigsäure und ein Enzym (Phospholipase D) und Glyzerin oder einen anderen primären Alkohol enthält, mit einem Phosphatidyllipd, z.B. Phosphatidylcholin, das in einem nicht mit Wasser mischbaren organischen Lösungsmittel gelöst wurde, hergestellt. Zur Aktivierung des Enzyms wird entweder ein Lösungsmittel wie Äther verwendet, oder es wird zur Emulgierung des Gemischs aus wasserunlöslicher und wäßriger Lösung ein Tensid zugegeben.
  • Zur Aktivierung des Enzyms werden Dimethyläther, Diethyläther und andere Äther verwendet, wie von Redemann beschrieben (PCT-Anmeldung Nr. WO 89/01524, veröffentlicht am 23. 02. 1989), doch sind diese bekanntermaßen wegen ihrer leichten Brennbarkeit und ihrer Peroxidbildungseigenschaften gefährlich, die die Selbstoxidation der Phosphatide fördern. Aufgrund der sehr niedrigen Dichte von Äthern im Vergleich zu Wasser ist für eine gute Mischung des Gemischs von Phasen außerdem kräftiges Schütteln erforderlich, was sich manchmal schwer auf Produktionsmengen für kommerzielle Herstellung übertragen läßt.
  • Tenside sind ebenfalls nützlich zur Aktivierung des Enzyms, doch lassen sie sich schwer aus dem gewünschten Produkt entfernen. Um ein Phosphatidyl mit einem nützlichen Reinheitsgrad zu erhalten, müssen deshalb umständliche, kostenaufwendige säulenchromatografische Trennungen durchgeführt werden. Die Anwesenheit relativ großer Wassermengen bewirkt außerdem eine Hydrolyse und die Erzeugung von Phosphatidylsäure, die die Ausbeute des gewünschten Phosphatidprodukts reduziert und ebenfalls vom gewünschten Phosphatid getrennt werden muß.
  • Das Enzym erfordert außerdem einen optimalen pH-Bereich, was die Verwendung von Pufferlösungen nötig macht. Das Enzym erfordert auch ein bivalentes Kation wie z.B. ein Kalziumion im Reaktionsgemisch, das das Phosphatid in Form eines Salzes des Kalzium- oder anderen bivalenten Kations erzeugt, das sich aus der Lösung abscheidet und daher schwer löslich gemacht werden kann. Wenn die Kalziumsalze mit Hilfe von Ansäuerung oder Ionenaustauschharz und Neutralisation in ihre löslicheren monovalenten Salze umgewandelt werden, erfolgt eine sehr schnelle Hydrolyse zusammen mit einer Ausfällung von Zersetzungsprodukten wie Lysophosphatidylglyzerin oder Phosphatidylsäure, mit den oben genannten Problemen.
  • In einem Versuch, die Ausbeute von Phosphatiden wie Phosphatidylglyzerin zu verbessern, wurde ein Verfahren beschrieben, in dem ein Phosphatidyllipid in einem organischen Lösungsmittel mit Phospholipase D zur Reaktion gebracht wird, das auf einem Träger mit hydrophoben Gruppen fixiert wurde. Als Lösungsmittel kommen Diethyläther oder ein Alkan in Frage, das Phosphatidyllipide wie Phosphatidylcholin lösen kann. Die Reaktion erfolgt bei einer Temperatur unter dem Siedepunkt des organischen Lösungsmittels, z. B. 15 bis 35ºC. Die Ausbeute des gewünschten Phosphatids ist jedoch gering, in der Größenordnung von 45 %, und die Verwendung der Ätherlösungsmittel ist unpraktisch, da sie sehr leicht brennbar und gefährlich sind. Aus diesem Grund wird seit langem nach einem ungefährlichen, einfachen Verfahren mit höherer Ausbeute zur Herstellung von Phosphatiden gesucht, bei dem die Phosphatide in Form eines wasserlöslichen, monovalenten, stabilen Salzes erhalten werden.
  • Diese Umesterungsreaktion wurde in der Vergangenheit gewöhnlich in einem Zweiphasensystem mit Äther durchgeführt, um die Reaktion auf eine nützliche Geschwindigkeit zu aktivieren. Die Reaktion war jedoch selten quantitativ abschätzbar, da auch signifikante Mengen Phosphatidsäure erzeugt wurden. Aufgrund des großen Dichteunterschieds zwischen dem Äther und der wäßrigen Phase lieferten im großen Maßstab durchgeführte Reaktionen außerdem begrenzte Ausbeuten, weil das Mischen nicht ausreichend war. Der Einsatz von Detergenzien ist möglich, doch verursachten diese größere Schwierigkeiten bei der Reinigung des Produkts.
  • ZUSAMMENFASSUNG DER ERFINDUNG
  • Gemäß der vorliegenden Erfindung kann ein Phospholipid wie z.B. Phosphatidylcholin mit einem primären Alkohol zur Reaktion gebracht werden, und zwar in Anwesenheit von (i) einem Enzym-Katalysator wie z. B. Phospholipase D, (ii) einem anderen Lösungsmittel als Äther, das weder zerstörend noch denaturierend auf das Enzym wirkt und weniger leicht brennbar als Äther ist, und (iii) einer gepufferten, bivalenten Salzlösung, vorzugsweise Kalziumsalz, um den entsprechenden Phosphatidylester in Form eines bivalenten Salzes zu bilden. Das unlösliche bivalente Salz wird in ein organisches, lösliches, stabiles monovalentes Salz umgesetzt, indem das bivalente Salz in einem organischen Lösungsmittel suspendiert und eine stöchiometrische Menge eines festen, monovalenten Salzes zugegeben wird, das das Phosphatid löslich macht und gleichzeitig das Kalziumsalz des Anions des zugegebenen monovalenten Kationensalzes abscheidet. Mit diesem Verfahren wird das monovalente Salz des Phosphatids ohne wesentliche Bildung von Hydrolyseprodukten wie Phosphatidylsäure hergestellt.
  • Es wurde auch festgestellt, daß die Löslichkeit und Stabilität eines bestimmten Estersalzes, gemischten Ammonium-/Natriumsalzes von Dimyristoylphosphatidylglyzerin, maximiert wird, wenn das Verhältnis von Ammonium- zu Natriumionen ein bestimmtes Gewichtsverhältnis beträgt und die Menge der vorhandenen bivalenten Kationen begrenzt ist. Es wurde festgestellt, daß der prozentuale Gewichtsanteil der Ammoniumionen zwischen etwa 2,0 und etwa 2,6 Gewichtsprozent des gemischten Salzes und der prozentuale Gewichtsanteil der Natriumionen zwischen etwa 0,3 und etwa 0,8 Gewichtsprozent des gemischten Salzes betragen sollte, damit die Stabilität und Löslichkeit eines gemischten Ammonium-/Natriumsalzes von Dimyristoylphosphatidylglyzerin in einem organischen Lösungsmittel maximiert wird. Der maximale Kalziumgehalt sollte etwa 0,1 und vorzugsweise etwa 0,05 Gewichtsprozent des gemischten Salzes betragen.
  • Weiterhin wurde festgestellt, daß die enzymatische Reaktion von Phospholipase D mit Phosphatidylcholin und -glyzerin oder einem anderen Alkohol durch Anwendung von Zentrifugal-Verteilungschromatografie [Centrifugal Partition Chromatography - CPC] stark gefördert werden kann.
  • KURZBESCHREIBUNG DER ZEICHNUNG
  • Abbildung 1 ist ein Diagramm der Löslichkeit in Methylenchlorid von gemischtem Dimyristoylphosphatidylglyzerinsalz in Abhängigkeit vom Ammoniumionengehalt.
  • AUSFÜHRLICHE BESCHREIBUNG DER ERFINDUNG
  • Das vorliegende Verfahren ist ein Zweistufenprozeß zur Bildung eines monovalenten Salzes eines Phosphatidylesters, der folgendes umfaßt:
  • a) Reaktion eines Phospholipids mit einem primären Alkohol in Anwesenheit eines geeigneten enzymatischen Katalysators, z.B. Phospholipase D, und einer bivalenten kationischen Pufferlösung in einem nicht mit Wasser mischbaren Lösungsmittel niedriger Brennbarkeit, um das entsprechende unlösliche Phosphatid des bivalenten kationischen Salzes zu bilden, und
  • b) Umwandlung des bivalenten kationischen Salzes des Phosphatids in sein entsprechendes lösliches, monovalentes Salz durch Suspension mit einer stöchiometrischen Menge eines festen, monovalenten Salzes, dessen Anion einen unlöslichen Niederschlag mit dem bivalenten Kation bildet.
  • Aufgrund ihrer höheren Löslichkeit und Stabilität sind die erfindungsgemäßen Substanzen von besonderem Nutzen für Liposomen- und Lipidkomplexverbindungen.
  • Liposomen sind vollständig geschlossene Lipid-Doppelschichtmembranen, die im Inneren eine wäßrige Lösung enthalten. Liposomen können monolamellare Vesikel (einzelne Doppelschichtmembran) oder multilamellare Vesikel (zwiebelähnliche Gebilde mit mehreren Doppelschichtmembranen, die jeweils durch eine wäßrige Schicht voneinander getrennt sind) sein. Die Doppelschicht besteht aus zwei Lipid- Einzelschichten mit einem hydrophoben "Schwanzbereich" und einem hydrophilen "Kopfbereich". In der Membrandoppelschicht sind die hydrophoben (apolaren) "Schwänze" der Lipid-Einzelschichten zur Mitte der Doppelschicht gerichtet, während die hydrophilen (polaren) "Köpfe" zur wäßrigen Phase ausgerichtet sind.
  • Liposomen, die Dimyristoylphosphatidylcholin (DMPC), Dimyristoylphosphatidylglyzerin (DMPG) und Amphotericin B einschließendes Cholesterol enthalten, sind für die Behandlung von systemischen Pilzinfektionen nützlich. Juliano et al., Annals N.Y. Acad. Sci., 1985, 446:390-402; Lopez-Berenstein et al., J. Infect. Dis., 1986, 151:704-710.
  • In der PCT-Druckschrift Nr. WO 88/06443 mit dem Titel "Low Toxicity Drug-Lipid Systems", Janoff et al., veröffentlicht am 7.9.1988, werden Verfahren zur Herstellung von Komplexen mit hohem Arzneimittel-Lipid-Verhältnis aus Arzneimittel-assoziierten Lipiden in partikulärer, Nichtliposomen-Form ("high drug: lipid complexes", HDLC) beschrieben sowie von Liposomen, die ein bestimmtes Verhältnis von DMPC und DMPG enthalten. Die Phospholipide werden in Lösungsmitteln wie Chloroform und Methylenchlorid löslich gemacht.
  • Zur Herstellung von HDLC wird ein Arzneimittel, besonders wenn das Arzneimittel ein antifungales Polyäthylen-Antibiotikum wie z. B. Amphotericin B ist, zunächst in einem biokompatiblen organischen Lösungsmittel wie z. B. Dimethylsulfoxid (DMSO) oder Methanol löslich gemacht, und anschließend wird die erhaltene Lösung mit Lipiden wie z.B. DMPC:DMPG im Molverhältnis 7:3 gemischt, die in einem Lösungsmittel wie z. B. Methylenchlorid löslich gemacht wurden. Die Lösungsmittel werden unter reduziertem Druck verdampft, so daß eine dünne Lipid-Arzneimittel- Schicht erhalten wird. Diese Schicht wird in einer wäßrigen Lösung wie z. B. Kochsalzlösung, phosphatgepufferte Kochsalzlösung oder Glycinpuffer hydratisiert, so daß HDLC entstehen. Die wäßrige Lösung kann auch dem Lösungsmittel enthaltenden Arzneimittel und der Lipidphase vor der Verdampfung des Lösungsmittels zugegeben werden. Eine weitere Alternative besteht darin, die erhaltene trockene Lipid- Arzneimittel-Schicht nochmals in einem Lösungsmittel wie z. B. Methylenchlorid zu suspendieren und vor der Hydratisierung der Schicht nochmals unter reduziertem Druck zu verdampfen. Es kann auch ein Dehydrationsverfahren benutzt werden, bei dem eine trockene Lipid-Arzneimittel-Schicht zu einer Flocke dehydratisiert wird, die mit wäßriger Lösung hydratisiert wird. In einem alternativen Verfahren zur Herstellung von HDLCs werden Lipidpartikel gebildet, die eine mit dem MLV- Verfahren hergestellte bioaktive Substanz enthalten und die Partikel dann einem Reizzyklus bei etwa 25 bis etwa 60ºC unterworfen.
  • Die für die vorliegende Erfindung brauchbaren Phospholipide sind eine Klasse natürlicher und synthetischer Lipide, die eine oder mehrere Phosphatidylgruppen enthalten. Zu dieser Klasse gehören Phosphatidylcholin, Phosphatidylethanolamin, Phosphatidylserin, Phosphatidsäure, Dimyristoylphosphatidylcholin und Phosphatidylinositol. Phosphatidylcholin in hochreiner Form ist kommerziell leicht erhältlich und wird deshalb bevorzugt.
  • Der hier zur Veranschaulichung dienende primäre Alkohol ist Glyzerin, doch können auch andere primäre Alkohole wie Sulfocholin, Äthylenglykol, Glycidol, Ribose, Äthanolamin, Glyzerinformal u. ä. verwendet werden. Einfache primäre Alkohole wie Methanol, Äthanol, Propanol u. ä. müssen sorgfältig ausgeschlossen werden, da sie sehr schnell reagieren und die entsprechenden Alkylester gebildet werden.
  • Die geeigneten bivalenten kationischen Puffer haben einen pH-Wert von etwa 5,7 und enthalten ein bivalentes Kation wie z.B. Kalzium. Das Kation sollte in bezug auf das Enzym inaktiv sein. Der Puffer kann beispielsweise eine Lösung mit einer oder mehreren der folgenden Substanzen sein: Kalziumhydroxid, Kalziumchlorid oder Kalziumazetat mit Essigsäure oder Natriumazetat.
  • Das für die vorliegende Erfindung brauchbare nicht oder schwer brennbare, nicht mit Wasser mischbare Lösungsmittel ist eines, das schwerer brennbar als Diethyläther bzw. Dimethyläther ist, einen Flammpunkt über 0ºC und vorzugsweise über 20ºC aufweist und das Enzym nicht so degradiert oder denaturiert, daß dessen Aktivität auf einen Wert reduziert wird, der mehr als etwa 25 % unter dem von Diethyläther liegt. Zu den geeigneten Lösungsmitteln für das vorliegende Verfahren gehören halogenierte Lösungsmittel wie Methylenchlorid, Chloroform, Tetrachloräthylen, Trichlorfluormethan u. ä. Aliphatische oder aromatische Ester, Alkane, Ketone oder Ester mit einem Molekulargewicht unter etwa 5000 können ebenfalls verwendet werden, wie z. B. Äthylazetat, Äthylpropionat, Äthylbutyrat, Methylazetat, Methylpropionat, 3- Pentanon, 3-Heptanon, 2-Oktanon, 2-Butanon, 2-Pentanon, 2-Heptanon, 3-Oktanon, 4-Reptanon, u. ä.
  • Die obengenannten Reaktionspartner werden durch Rühren oder Schütteln zusammengemischt, um den ursprünglichen Phosphatidylester, z. B. Phosphatidylcholin, in das bivalente kationische Salz des gewünschten Produktes, z. B. das Kalziumsalz von Phosphatidylglyzerin, umzuwandeln.
  • Im allgemeinen ist energiearmes Mischen wie Rühren oder Verwirbeln ausreichend, um mindestens etwa 80% der geplanten Ausbeute des bivalenten kationischen Salzes zu erhalten.
  • Die Umesterungsreaktion des Enzyms mit dem Phospholipid und dem Alkohol kann durch Anwendung von Zentrifugal-Verteilungschromatografie [Centrifugal Partition Chromatography, CPC] gefördert werden (Cazes, J., "High Performance CPC for Downstream Processing of Biomaterials", American Biological Laboratories, Juni 1989, 17-23). Eine stationäre wäßrige Phase, die aus einem geeigneten Puffer von etwa 5,6 wie z. B. Natriumazetat besteht, wird mit Kalziumchlorid, einem geeigneten Alkohol und dem Enzym in die Zentrifuge gegeben. Die Zentrifuge wird in Bewegung gesetzt, und eine mobile Phase, die aus einem organischen, nichtalkoholischen Lösungsmittel wie z.B. Äthylazetat oder Äthylbutyrat besteht und das Phospholipid enthält, wird in das CPC-System gepumpt. Das Kalziumsalz des gesättigten Phosphatidylglyzerins, z. B. DMPG, scheidet sich vom Eluenten ab. Das nicht umgesetzte, lösliche Phosphatidylcholin wird zur Erhöhung der Ausbeute dann dem Kreislauf wieder zugeführt. Das Phosphatidylglyzerin (DMPG) kann dann weiter gereinigt werden. Die dafür nötigen Bedingungen sind Fachleuten bekannt.
  • Die Temperatur für die Reaktion beträgt gewöhnlich zwischen etwa 15 und 50ºC, vorzugsweise zwischen etwa 20 und 37ºC und am besten zwischen etwa 20 und 30ºC.
  • Das bivalente kationische Salz scheidet sich ab und läßt sich leicht durch Filtern und, zur weiteren Reinigung, Waschen mit einem mit Wasser nicht mischbaren organischen Lösungsmittel, z. B. Äthylazetat gefolgt von Methylenchlorid, vom Enzym und anderen Nebenprodukten der Reaktion trennen.
  • Das bivalente kationische Salz wird in Anwesenheit einer organischen Lösungsmittelphase, z. B. Methylalkohol und Chloroform, durch Reaktion in einer Suspension mit einer ungefähr stöchiometrischen Menge eines monovalenten Salzes, dessen Anion mit dem bivalenten Kation einen Niederschlag bildet, in ein lösliches, monovalentes Salz umgewandelt. Die bevorzugten monovalenten Kationen sind Ammonium, Natrium und Kalium in Form ihrer Karbonate, Zitrate, Fluoride, Sulfate, Phosphate, Nitrate, Laktate, Succinate, Formate, Oxalate, Chloride, Äthylendiamin-Tetraazetat, Äthylen-bis-(oxyäthylennitrilo-)Tetraazetat u. ä., die alle signifikante Wasserlöslichkeit aufweisen. Die monovalenten Phosphatidylsalze bleiben in Lösung, während sich das bivalente Salz abscheidet und leicht durch Filtern u. ä. entfernt werden kann. Eine Umwandlung von mindestens 25 %, gewöhnlich 35 % oder höher, ist leicht zu erzielen. Aufgrund der Flüchtigkeit von Ammonium in Ammoniumsalzen, die wegen ihrer hohen Löslichkeit erwünscht sind, wird vorzugsweise ein gemischtes Ammonium- /Natriumsalz hergestellt, um gute Löslichkeit und gute Stabilität zu erzielen. Das bevorzugte Ionen-Molverhältuis von Ammonium zu Natrium beträgt etwa 1:1 bis etwa 8:1. Besonders bevorzugt wird ein Ionen-Molverhältnis von Ammonium zu Natrium von 4:1.
  • Das Ammoniumsalz von Dimyristoylphosphatidylglyzerin ist in organischen Lösungsmitteln wie z. B. Methylenchlorid gut löslich. Die Löslichkeit des Ammoniumsalzes von Dimyristoylphosphatidylglyzerin in Methylenchlorid ist höher als etwa 26 mg/ml. Dieses Salz ist jedoch meist instabil. Das Natriumsalz ist stabiler, aber weit weniger löslich; die Löslichkeit des Natriumsalzes von Dimyristoylphosphatidylglyzerin in Methylenchlorid beispielsweise beträgt weniger als etwa 0,2 mg/ml. Ein bestimmtes Verhältnis von Natriumsalz zu Ammoniumsalz stabilisiert das gemischte Salz, ohne die Löslichkeit so weit zu beeinträchtigen, daß sie unter einen annehmbaren Wert sinkt, wenn die Menge des Natriumsalzes kontrolliert wird. Etwa 0,3 Gewichtsprozent des Natriumkations verleihen Stabilität; Mengen über dem Höchstwert von etwa 0,8 Gewichtsprozent Natrium reduzieren jedoch die Löslichkeit des gemischten Salzes in Methylenchlorid.
  • Die Menge des Restkalziumions sollte auf weniger als etwa 0,1 und vorzugsweise etwa 0,05 Gewichtsprozent des gemischten Salzes begrenzt werden. Das Kalziumsalz ist nicht löslich, und die Anwesenheit überschüssigen Kalziumions beeinträchtigt die Löslichkeit des gemischten Salzes in relativ unpolaren organischen Lösungsmitteln.
  • Es sei jedoch darauf hingewiesen, daß die Löslichkeit des Salzes selbst bei einem Kalziumionengehalt des gemischten Ammonium-/Natriumsalzes von Dimyristoylphosphatidylglyzerin von mehr als etwa 0,1 Prozent oder etwa 0,05 Gewichtsprozent und einem Natriumionengehalt von mehr als etwa 0,8 Gewichtsprozent stark ansteigt, wenn der Ammoniumionengehalt mehr als etwa 2,0 Gewichtsprozent beträgt, und die Löslichkeit ist sehr hoch, wenn der Ammoniumionengehalt etwa 2,25 bis etwa 2,35 Gewichtsprozent beträgt (Abbildung 1 und Tabelle II).
  • Allgemein gilt, daß der prozentuale Anteil unlöslicher Substanz des gemischten Ammonium-/Natriumsalzes von Dimyristoylphosphatidylglyzerin in Methylenchlorid höher ist, wenn der Kalziumionengehalt mehr als etwa 0,05 Gewichtsprozent oder der Ammoniumionengehalt weniger als etwa 2,0 Gewichtsprozent beträgt (siehe Tabelle III).
  • So wird, ebenfalls in Übereinstimmung mit dem erfindungsgemäßen Verfahren, nach dem Ausfällen des Kalziumsalzes von Dimyristoylphosphatidylglyzerin, dem Waschen und dem Filtern sowohl Ammoniumkarbonat als auch Natriumkarbonat in einer Menge zugegeben, die die Umwandlung des Kalziumanions in ein festes Kalziumsalz, das Karbonat, bewirkt. Vorzugsweise wird nicht mehr monovalentes Karbonat zugegeben, als die zur Ausfällung des Kalziumanions als Kalziumkarbonatsalz benötigte stöchiometrische Menge. Das gemischte Ammonium-/Natriumsalz von Dimyristoylphosphatidylglyzerin wird von dem unlöslichen Kalziumsalz getrennt und kann auf Wunsch zusätzlich gereinigt werden.
  • Wird eine zusätzliche Reinigung gewünscht, kann das Produkt chromatografisch unter Verwendung einer ammoniakhaltigen Kieselgelsäule mit gemischten Methanol-/Chloroform-Lösungsmitteln nach bekanntem Verfahren gereinigt werden.
  • Das erfindungsgemäße Verfahren wird in Abwesenheit von Detergenzien oder anderen Tensiden durchgeführt, die gewöhnlich später entfernt werden müssen; es wird ein hochreines Produkt mit hoher Ausbeute erzielt, ohne daß dabei Phosphatidylsäure oder andere Nebenprodukte erzeugt werden, die die Ausbeute der gewünschten Phosphatestersalze reduzieren und durch Reinigung entfernt werden müssen.
  • Das erfindungsgemäße Verfahren wird anhand der nachstehenden Beispiele näher beschrieben, doch soll die Erfindung nicht als auf die hierin beschriebenen Einzelheiten beschränkt gelten. Alle Reaktionen wurde bei etwa 23ºC durchgeführt.
  • BEISPIEL 1
  • In einer Lösung aus 1 ml Natriumazetatpuffer (pH 5,6), 1 ml Wasser, 0,2 ml 1M- Kalziumchlorid und 0,2 ml Glyzerin wurden 200 mg Phospatidylcholin emulgiert.
  • Der obengenannten Emulsion wurden 1 mg Phospholipase D in 1 ml Natriumazetat und 1 ml Wasser und anschließend 2 ml Methylenchlorid zugegeben und das Gemisch für 17 Stunden gerührt.
  • Das Phosphatidylglyzerinpräzipitat wurde gefiltert, mit 10 ml Methylenchlorid gewaschen und mit einer Ausbeute von 74% als Kalziumsalz gewonnen.
  • 140 mg des wie oben gewonnenen Kalziumsalzes wurden in 6 ml Äthanol und 3 ml Hexan suspendiert und eine stöchiometrische Menge eines Gemischs aus Natriumkarbonat und Ammoniumkarbonat im Molverhältnis von 1:4 zugegeben und gerührt.
  • Das abgeschiedene Kalziumkarbonat wurde durch Filtration entfernt. Die Ausbeute betrug 120 mg bzw. 78% Natrium-/Ammonium-Phosphatidylglyzerin.
  • BEISPIEL 2
  • In einen 5-Liter-Behälter wurden 100 Gramm Dimyristoylphosphatidylcholin gefüllt, 500 ml Wasser und 500 ml 0,5N-Natriumazetatpuffer (pH 5,6) wurden zugegeben, und 100 ml einmolares Kalziumchlorid und 100 mg Phospholipase D wurden in 50 ml des Puffers und 50 ml Wasser gelöst. Nach Zugabe von 1 Liter Äthylbutyrat wurde der Behälter verschlossen und 17 Stunden geschüttelt.
  • Kalzium-Dimyristoylphosphatidylglyzerin wurde als Präzipitat erhalten. Das Produkt wurde mit einem Büchner-Trichter gefiltert, mit 5 Liter Äthylazetat gewaschen und abschließend einer Wäsche mit 1 Liter Methylenchlorid unterzogen.
  • Der Filterkuchen wurde in 1052 ml Methanol, 526 ml Chloroform und 420 ml Wasser suspendiert.
  • 526 ml 2N-Ammoniumkarbonat und 0,5N-Natriumkarbonat im Volumenverhältnis 1:1 wurden zugegeben. Das Gemisch wurde rasch gefiltert und dem Filtrat 526 ml Chloroform zugegeben. Das Chloroform wurde auf etwa 200 ml verdampft und 5 Liter kaltes Azeton zugegeben.
  • Das Gemisch wurde durch einen Büchner-Trichter gefiltert und das erhaltene DMPG mit kaltem Azeton gewaschen.
  • Die Ausbeute betrug 95 Gramm (95 %) Natrium-/Ammonium-Dimyristoylphosphatidylglyzerin.
  • Dieses Produkt wurde zusätzlich gereinigt, indem es in 20% Methanol in Chloroform gelöst, auf eine 1-Zoll-Kieselgelsäule aufgebracht und mit einer 1% Ammoniumhydroxid enthaltenden Lösungsmittelmischung aus 80% Chloroform und 20% Methanol eluiert wurde.
  • Die das Produkt Dimyristoylphosphatidylglyzerin enthaltende Fraktion wurde getrennt und bis zur Trockne verdampft. Es wurde ein gemischtes Ammonium-/Natriumsalz von Dimyristoylphosphatidylglyzerin mit einem Reinheitsgrad von 99% erhalten.
  • BEISPIEL 3
  • In einen 5-Liter-Dreihalskolben mit bananenförmigem Paddel wurden 200 Gramm (0,29 mol) Dimyristoylphosphatidylcholin gegeben, und 1 Liter 0,5N- Natriumazetatpuffer (pH 5,6), 1 Liter Wasser, 200 ml Glyzerin und 200 ml einmolares Kalziumchlorid wurden zugegeben. Der pH-Wert wurde auf 5,5 eingestellt.
  • In 5 ml Natriumazetatpuffer wurden 80 mg Phospholipase D gelöst und 5 ml Wasser dem Kolben zugegeben. Schließlich wurde 1 Liter Methylenchlorid dem Gemisch zugegeben und 17 Stunden gerührt.
  • Das Reaktionsgemisch wurde durch einen Büchner-Trichter gefiltert und der Filterkuchen mit 5 Liter Wasser und 5 Liter Methylenchlorid gewaschen.
  • Die Ausbeute betrug 166 Gramm (0,24 mol) Kalzium-Dimyristoylphosphatidylglyzerin bzw. 82%. Mittels Dünnschichtchromatografie wurde die Reinheit des Produkts mit 95% ermittelt.
  • BEISPIEL 4
  • In eine Reihe von Reagenzröhrchen wurde eine Suspension aus: 200 mg Dimyristoylphosphatidylcholin, 2 ml 0,25M-Natriumazetatpuffer (pH 5,6), 200 ml einmolares Kalziumchlorid, 200 ml Glyzerin und 5 mg Phospholipase D in 2 ml 0,25M-Natriumazetatpuffer mit einem pH-Wert von 5,6 gefüllt.
  • In jedes Röhrchen wurden jeweils 2,5 ml verschiedener Lösungsmittel (siehe Tabelle I) gegeben. Die Röhrchen wurden verschlossen und bei 25ºC in einen Schüttelapparat gesetzt, der auf 250 U/min und 17 Stunden eingestellt wurde. Der Schüttler wurde abgeschaltet und jedes Röhrchen untersucht und der Inhalt dreimal mit jeweils 5 ml Chloroform und dann mit 5 ml Azeton gewaschen; anschließend wurde der Inhalt in vacuo auf ein konstantes Gewicht getrocknet. Eine Probe jedes Röhrchens wurde mit Dünnschichtchromatografie (TLC) auf Kieselgel mit Chloroform:Methanol: Ammoniak im Volumenverhältnis 65:35:5 analysiert. Die Ergebnisse sind in der nachfolgenden Tabelle I dargestellt: TABELLE 1
  • *Hohe Werte vermutlich aufgrund nichthomogener Liposomensuspension
  • **Die TLC zeigte, daß das Phospatidylcholin in Kalziumsalz von Phosphatidylglyzerin umgewandelt und das nicht umgesetzte Phospatidylcholin weggewaschen wurde.
  • BEISPIEL 5-10
  • Die Löslichkeit verschiedener gemischter Ammonium-/Natriumsalze von Dimyristoylphosphatidylglyzerin in Methylenchlorid wurde bestimmt. Dazu wurden 1,6 mg jedes gemischten Salzes gemischt und unter Rühren auf 35ºC erhitzt, für eine und zwei Stunden. Das Gemisch wurde durch ein Spritzenfilter (Gelman Acrodisc CR, 0,2 Mikrometer, 25 mm) gefiltert und die prozentuale Löslichkeit bestimmt. Die Ergebnisse sind nachstehend in Tabelle II zusammengefaßt. TABELLE II
  • Abbildung 1 ist ein Diagramm der Löslichkeit in Abhängigkeit vom Ammoniumionengehalt in Methylenchlorid. Das Diagramm zeigt, daß die Löslichkeit selbst bei einem Kalziumgehalt von mehr als etwa 0,05 Gewichtsprozent und einem Natriumgehalt von mehr als etwa 0,8 Gewichtsprozent stark ansteigt, wenn der Ammoniumionengehalt mehr als etwa 2,0 Prozent beträgt, und die Löslichkeit ist sehr hoch, wenn der Ammoniumionengehalt etwa 2,25 bis etwa 2,35 Gewichtsprozent beträgt.
  • BEISPIEL 11
  • 0,2 M Natriumazetatpuffer (pH 5,6) wird mit 0,3 M Kalziumchlorid, 0,3 M Glyzerin und Phospholipase D in ein Zentrifugal-Verteilungschromatografie-System (CPC) gegeben. Die Zentrifuge wird in Gang gesetzt, und Äthylazetat oder Äthylbutyrat mit 0-20% Phospatidylcholin wird in das CPC-System gepumpt. Das Kalziumsalz von DMPG scheidet sich vom Eluenten ab und kann zusätzlich gereinigt werden. Das nicht umgesetzte lösliche Phospatidylcholin kann wieder in den Kreislauf eingebracht werden.
  • VERGLEICHENDE BEISPIELE 1-4
  • Es wurde die Löslichkeit verschiedener gemischter Ammonium-/Natriumsalze von Dimyristoylphosphatidylglyzerin in Methylenchlorid bestimmt. Dazu wurden jeweils 1,6 mg jedes gemischten Salzes zu 4,5 mg Dimyristoylphosphatidylcholin gegeben und gemischt und für eine Stunde auf 35ºC erhitzt. Anschließend wurde das Material durch ein Spritzenfilter (Gelman Acrodisc CR, 0,2 Mikrometer, 25 mm) gefiltert und der prozentuale Anteil unlöslicher Substanz bestimmt. Die Ergebnisse sind nachstehend in Tabelle III zusammengefaßt. TABELLE III
  • VERGLEICHENDES BEISPIEL 5
  • Eine Partie gemischten Ammonium-/Natrium-Dimyristoylphosphatidylglyzerins (1,6 mg/ml) mit einem Natriumgehalt von 1,20%, Ammoniumgehalt von 1,53% und Kalziumgehalt von 0,12% (nach Gewicht des Salzes) wurde mit 4,5 mg/ml Dimyristoylphosphatidylcholin in Methylenchlorid gemischt und unter Rühren auf 35 ºC erhitzt. Das Gemisch war nach einer Stunde immer noch trübe, was auf unvollständige Solubilisation des gemischten Salzes hinwies.

Claims (19)

1. Verfahren zur Bildung eines löslichen, gemischten Ammonium-/Natriumsalzes von Dimyristoylphosphatidylglyzerin, bestehend aus:
a) Reaktion eines Dimyristoylphospholipids mit einem primären Alkohol in Anwesenheit von
(I) einem Enzym-Katalysator,
(ii) einer bivalenten kationischen Pufferlösung und
(iii) einem nicht mit Wasser mischbaren Nicht-Äther-Lösungsmittel, um das entsprechende Phosphatid des bivalenten kationischen Salzes zu bilden, und
b) Umwandlung des bivalenten kationischen Salzes in ein organisches, lösliches, monovalentes Salz durch Suspension mit einer stöchiometrischen Menge eines monovalentes Salzes, dessen Anion ein Präzipitat mit dem bivalenten Kation bildet und dessen Kation ein Gemisch aus Ammonium und Natrium in einem solchen Gewichtsverhältnis ist, daß ein gemischtes monovalentes Dimyristoylphosphatidylglyzerin entsteht, das zwischen 2,0 und 2,6 Gewichtsprozent Ammonium und zwischen 0,3 und 0,8 Gewichtsprozent Natrium enthält.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das bivalente Kation Kalzium ist.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß das gemischte monovalente Dimyristoylphosphatidylglyzerin nicht mehr als 0,1 Gewichtsprozent des gemischten Salzes des Kalziums enthält.
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß das gemischte monovalente Dimyristoylphosphatidylglyzerin nicht mehr als 0,05 Gewichtsprozent des gemischten Salzes des Kalziums enthält.
5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß Schritt a) unter Einsatz von Zentrifugal-Verteilungschromatografie (CPC) durchgeführt wird.
6. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das Enzym Phospholipase D ist.
7. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß das mit Wasser nicht mischbare Lösungsmittel ein halogeniertes Alkan oder Alken aus der Gruppe bestehend aus Methylenchlorid, Chloroform, Tetrachloräthylen und Trichlorfluormethan ist.
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch gekennzeichnet, daß das mit Wasser nicht mischbare Lösungsmittel ein aliphatischer oder aromatischer Ester bzw. ein aliphatisches oder aromatisches Alkan oder Keton ist.
9. Verfahren nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet, daß das mit Wasser nicht mischbare Lösungsmittel zur Gruppe Äthylazetat, Äthylpropionat, Äthylbutyrat, Methylazetat, Methylpropionat, 2-Butanon, 2-Pentanon, 2-Heptanon, 2-Oktanon, 3- Pentanon, 3-Heptanon, 3-Oktanon und 4-Heptanon gehört.
10. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 9, dadurch gekennzeichnet, daß das Anion des Salzes ein Karbonat, Zitrat, Sulfat, Phosphat, Nitrat, Laktat, Succinat, Format, Oxalat, Äthylendiamin-Tetraazetat, Ethylen-bis(oxyäthylennitrilo)-Tetraazetat oder Chlorid ist.
11. Liposom, das ein gemäß einem der Ansprüche 1 bis 10 gebildetes, lösliches monovalentes Dimyristoylphosphatidylglyzerinsalz enthält, dadurch gekennzeichnet, daß es keine Selbstoxidation-Phosphatidprodukte enthält.
12. Lipidkomplex, der ein gemäß einem der Ansprüche 1 bis 10 gebildetes, lösliches monovalentes Dimyristoylphosphatidylglyzerinsalz enthält, dadurch gekennzeichnet, daß er keine Selbstoxidation-Phosphatidprodukte enthält.
13. Wäßrige Lösung aus gemischtem Dimyristoylphosphatidylglyzerinsalz mit 2,0 bis 2,6 Gewichtsprozent Ammonium und 0,3 bis 0,8 Gewichtsprozent Natrium.
14. Lösung nach Anspruch 13, dadurch gekennzeichnet, daß das gemischte monovalente Dimyristoylphosphatidylglycerin nicht mehr als 0,1 Gewichtsprozent des gemischten Salzes des Kalziums enthält.
15. Lösung nach Anspruch 14, dadurch gekennzeichnet, daß das gemischte monovalente Dimyristoylphosphatidylglycerin nicht mehr als 0,05 Gewichtsprozent des gemischten Salzes des Kalziums enthält.
16. Lösung nach Anspruch 13, die zusätzlich Dimyristoylphosphatidylcholin enthält.
17. Liposom, das eine Lösung gemäß einem der Ansprüche 13 bis 16 enthält.
18. Lipidkomplex, der eine Lösung gemäß einem der Ansprüche 13 bis 16 enthält.
19. Lösung eines gemischten Dimyristoylphosphatidylglyzerinsalzes mit 2,0 bis 2,32 Gewichtsprozent Ammonium.
DE69123145T 1990-04-17 1991-04-16 Enzymatische synthese löslicher phosphatide aus phospholipiden Expired - Lifetime DE69123145T2 (de)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US51328590A 1990-04-17 1990-04-17
PCT/US1991/002608 WO1991016444A1 (en) 1990-04-17 1991-04-16 Enzymatic synthesis of soluble phosphatides from phospholipids

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE69123145D1 DE69123145D1 (en) 1996-12-19
DE69123145T2 true DE69123145T2 (de) 1997-06-12

Family

ID=24042616

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE69123145T Expired - Lifetime DE69123145T2 (de) 1990-04-17 1991-04-16 Enzymatische synthese löslicher phosphatide aus phospholipiden
DE69131404T Expired - Lifetime DE69131404T2 (de) 1990-04-17 1991-04-16 Enzymatische Synthese löslicher Phosphatide aus Phospholipiden

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE69131404T Expired - Lifetime DE69131404T2 (de) 1990-04-17 1991-04-16 Enzymatische Synthese löslicher Phosphatide aus Phospholipiden

Country Status (15)

Country Link
EP (2) EP0528834B1 (de)
JP (1) JP3169132B2 (de)
AT (2) ATE181747T1 (de)
AU (1) AU646458B2 (de)
CA (1) CA2080907C (de)
DE (2) DE69123145T2 (de)
DK (2) DK0727491T3 (de)
ES (2) ES2132780T3 (de)
GR (2) GR3022375T3 (de)
HU (1) HU212928B (de)
IE (1) IE911264A1 (de)
NZ (1) NZ237845A (de)
PT (1) PT97391B (de)
WO (1) WO1991016444A1 (de)
ZA (1) ZA912877B (de)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20060165606A1 (en) 1997-09-29 2006-07-27 Nektar Therapeutics Pulmonary delivery particles comprising water insoluble or crystalline active agents
US7871598B1 (en) 2000-05-10 2011-01-18 Novartis Ag Stable metal ion-lipid powdered pharmaceutical compositions for drug delivery and methods of use
DE10142014B4 (de) * 2001-08-28 2004-11-11 Degussa Bioactives Deutschland Gmbh & Co. Kg Verfahren zur Herstellung von Phosphatidylserin
US7368102B2 (en) 2001-12-19 2008-05-06 Nektar Therapeutics Pulmonary delivery of aminoglycosides
US6878532B1 (en) 2003-04-28 2005-04-12 Sioux Biochemical, Inc. Method of producing phosphatidylserine

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE1900959A1 (de) * 1969-01-09 1970-08-27 Unilever Nv Verfahren zur Herstellung von Pflanzenphosphatiden mit universeller Emulgierkraft
US4235792A (en) * 1977-04-14 1980-11-25 The Governing Council Of The University Of Toronto Immunological materials
SU831129A1 (ru) * 1979-07-24 1981-05-23 Дальневосточный Государственный Уни-Верситет Способ получени фосфатидилглицерина
US4485045A (en) * 1981-07-06 1984-11-27 Research Corporation Synthetic phosphatidyl cholines useful in forming liposomes
US4587055A (en) * 1982-05-26 1986-05-06 Research Corporation Polymerized vesicles and compounds for their preparation
US4783402A (en) * 1983-04-11 1988-11-08 Meito Sangyo Kabushiki Kaisha Production of primary or secondary alcohol derivatives of phospholipids by the enzymatic technique
JPS62205788A (ja) * 1986-03-05 1987-09-10 Shoichi Shimizu ホスフアチジルグリセロ−ル又はその誘導体の製造法
WO1989001524A1 (en) * 1987-08-14 1989-02-23 Liposome Technology, Inc. Method of preparing phosphatidylglycerol
US4997761A (en) * 1987-10-06 1991-03-05 Houston Biotechnology Incorporated Phosphatidyl treatment of viral disease
DE69011739T2 (de) * 1989-05-26 1995-01-19 Kao Corp Verfahren zur Herstellung von Phosphatidsäure.

Also Published As

Publication number Publication date
EP0727491B1 (de) 1999-06-30
IE911264A1 (en) 1991-10-23
DK0528834T3 (da) 1997-04-07
CA2080907A1 (en) 1991-10-18
AU646458B2 (en) 1994-02-24
PT97391B (pt) 1999-04-30
ES2094811T3 (es) 1997-02-01
DE69131404T2 (de) 1999-11-25
WO1991016444A1 (en) 1991-10-31
EP0528834A1 (de) 1993-03-03
EP0528834B1 (de) 1996-11-13
AU7699591A (en) 1991-11-11
DE69123145D1 (en) 1996-12-19
EP0727491A1 (de) 1996-08-21
ATE181747T1 (de) 1999-07-15
JP3169132B2 (ja) 2001-05-21
ES2132780T3 (es) 1999-08-16
HU212928B (en) 1996-12-30
CA2080907C (en) 2001-08-14
HU9203258D0 (en) 1993-01-28
GR3031059T3 (en) 1999-12-31
EP0528834A4 (en) 1993-06-02
JPH05509222A (ja) 1993-12-22
HUT63198A (en) 1993-07-28
GR3022375T3 (en) 1997-04-30
PT97391A (pt) 1991-12-31
DE69131404D1 (de) 1999-08-05
NZ237845A (en) 1993-06-25
ATE145244T1 (de) 1996-11-15
ZA912877B (en) 1992-12-30
DK0727491T3 (da) 1999-11-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE68922278T2 (de) Liposom mit einem neuen Phosphat als Membranbestandteil, Liposomzubereitungen, sowie Kosmetika, welche dieses Phosphat beinhalten.
DE3751871T2 (de) Guanidinaminoglycosid enthaltende Liposome
DE69002905T2 (de) Verfahren zur Herstellung von lipidischen Mikropartikeln.
DE68905113T2 (de) Verfahren zur herstellung von lipidpulver zur verwendung in der herstellung von liposomen und ein verfahren zur herstellung von liposomen.
DE60012693T2 (de) Verfahren zur kontrolle der liposomengrösse
DE3874352T2 (de) Lipophile salze von s-adenosyl-l-methionin (sam) mit acyltaurinderivaten.
DE60208454T2 (de) Polyalkylenoxid-modifizierte Phospholipide und Verfahren zu ihrer Herstellung
DE69026820T2 (de) Zubereitung von liposomen- und lipid-komplexzusammensetzungen
DE2905295C2 (de)
DE69123145T2 (de) Enzymatische synthese löslicher phosphatide aus phospholipiden
DE60006814T2 (de) Dinucleotid-kristalle
DE3141761A1 (de) Nichtionische, oberflaechenaktive glucosederivate, verfahren zu deren herstellung, mittel, welche die neuen verbindungen enthalten sowie ein verfahren zu deren anwendung
DE3609492A1 (de) Verfahren zur herstellung von phosphorsaeureestern
DE69122810T2 (de) Liposomen
US5188951A (en) Enzymatic synthesis of soluble phosphatides from phospholipids
DE3506973A1 (de) Phosphorsaeureester und verfahren zu ihrer herstellung
WO2002090369A2 (de) Verfahren zur herstellung von tensidgemischen
DE3624971C2 (de) Phosphorsäureester und Verfahren zu ihrer Herstellung
DE60211158T2 (de) Neue verwendung von cyclodextrineinschlusskomplexen
DE69916460T2 (de) Carboxylierte phosphatidicsäuresterne
DE2745810A1 (de) Synthetische phosphatide, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung
EP1066305A2 (de) Sucrose-n-alkylasparaginate, ihre herstellung und verwendung
JP2000154117A (ja) 毛髪処理剤
JPH0747597B2 (ja) リン酸モノエステルのアルギニン塩の製造方法
DE1011117B (de) Verfahren zur Herstellung von reinen stabilen Erythromycin-Saeure-Additionssalzen

Legal Events

Date Code Title Description
8364 No opposition during term of opposition
8327 Change in the person/name/address of the patent owner

Owner name: ELAN PHARMACEUTICALS,INC.(N.D.GES.D.STAATES DE, US