SU831129A1 - Способ получени фосфатидилглицерина - Google Patents

Способ получени фосфатидилглицерина Download PDF

Info

Publication number
SU831129A1
SU831129A1 SU792789169A SU2789169A SU831129A1 SU 831129 A1 SU831129 A1 SU 831129A1 SU 792789169 A SU792789169 A SU 792789169A SU 2789169 A SU2789169 A SU 2789169A SU 831129 A1 SU831129 A1 SU 831129A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
phosphatidylglycerol
methanol
phosphatidic acid
lecithin
chloroform
Prior art date
Application number
SU792789169A
Other languages
English (en)
Inventor
Эдуард Яковлевич Костецкий
Татьяна Владимировна Власенко
Original Assignee
Дальневосточный Государственный Уни-Верситет
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Дальневосточный Государственный Уни-Верситет filed Critical Дальневосточный Государственный Уни-Верситет
Priority to SU792789169A priority Critical patent/SU831129A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU831129A1 publication Critical patent/SU831129A1/ru

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

(54) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФОСФАТИдаЛГЛИЦЕРША

Claims (2)

  1. Изобретение относитс  к химико-фар мацевтической промьшленности. Известен способ получени  фосфатидИлглицерина путем действи  фосфолип зы Д на лецитин в присутствии глицери на с последующей очисткой колоночной хроматографией 1. Однако при этом способе выход фосфатидилглицерина незначителен и соста л ет 25%, чиста  фосфатидна  кислота не выдел етс . Цель изобретени  - повышение выхода целевого продукта и одновременное получение фосфатидной кислоты. Поставленна  цель достигаетс  тем, Что лецитин раствор ют в диэтиловом эфире, полученную фракцию обрабатывают трилоном Б и злюирование провод т смесью хлороформ-метанол в соотношении 94:6 в присутствии аммиака дл  получени  фосфатидилглицерина и при элюировании смесью хлороформ-метанол в соотношении 6:4 вьздел ют фосфатнд кую кислоту. Пример 1. Препарат фосфолипазы Д готов т гомогенизацией капусты с 0,05 М натрий-ацетатным буфером рН 5,6. Соотношение ткань-буфер 1:3. Полученный зкстракт центрифугируют при 5000 об/мин 15 мин. Надосадочную жидкость используют в качестве препарата фосфолипазы Д. Ферментативную смесь готов т путем растворени  1,5 г чистого лецитина в 300 мл дизтилового эфира (5 мг/мл), смешивают с 300 ил 0,05 М натрий-ацетатного буфера рН 5,6, с 300 мл препарата фосфолипазы Д, 600 Ь4Л 0,02 М раствора хлористого кальци ,и 600 мл глицерина. Реакцию провод т П1 26 С 0,5 ч при посто нном перемешивании. Б ходе реакции расщепл етс  около 95% лецитина. Соотношение фосфатидилглицерина и фосфатидной кислоты около 3:1. Полученна  фракци  содержит фосфатидную кислоту, около 22%, лецитин около 5%, фосфатидил3 глицерин около 63%, фосфатидилметанол около 3%, и нефосфолипидные примеси около 7%, Фракцию фосфатидилглицерина и фосфатидной кислоты извлекают 4 раза сис темой хлороформ-метанол 2:1, одной третьей частью от реакционной смеси каждый раз. Хлороформ-метанольньй слой упаривают до 50 мл, прибавл ют 50 мл 2%-ного раствора трилона Б в системе вода-метанол 9:1, тщательно перемешивают, центрифугирзпот и верхний слой отбрасывают. Нижний слой отмывают 30 мл дистиллированной воды .от избытка трилона Б. Водный слой отбрасывают , нижний упаривают досуха и раствор ют в 10 мл хлороформ-метанола 94:6 с добавкой 25% водного аммиака (3 мл/л системы). Фракци  готой к нанесению на колонку. Дл  разделени 1 г смеси веществ используют 50 г силикагел  Л 40/100А. Силикагель суспензируют в хлороформ-метаноле 94:6 с добавкой 25% водного аммиака. (3 мл системы) и загружают в колонку диаме ром 4,5 см с высотой адсорбционного столба 10 см. Отношение диаметра к высоте адсорбционного столба 1:2. Дн  элюировани  используют: 1.4л хлороформ-метанола 94:6 с добавкой 25% водного аммиака (З мл /л систеьвл). Вымывают нефосфолипидны примеси и фосфатидилметанол. В после нем литре системи заметно по вление фосфатидилглицерина; 2. л хлороформ-метанола 92:8 с добавкой 25% водного аммиака (4 мл /л системы). ВьцФюают хроматографиче ки чистый фосфатидилглицерин. В riepвом литре системы заметно небольшое количество фосфатидилметанола, в последних полутора литрах по вл ютс  следы лецитина. 3.3л хлороформ-метанола 7:3 с добавкой 25% водного аммиака (6 мл/л системы). Bы BlIвaют лецитин. В последних полутора литрах выходит лецитин с примесью фосфатидной кислоты 4. 1,5 л хлороформ-метанола 6:4. Вымывают хроматографически чистую фосфатидную кислоту. Из 1 г фракции фосфатидилглицери на и фосфатидной кислоты получают сразу 376 мг (около 60%) хроматогра фически чистого фосфатидилглицерина и 300 мг с примесью фосфатидилметан ла и лецитина, полученных в начале и конце второй системы. Их доочистк 94 на аналогичной колонке дает еще 150 мг хроматографически чистого фосфatидшIглицepинa . Конечный выход хроматографически чистрго фосфатидилглицерина составл ет около 84% от исходного фосфатидилглицерина после ферментолиза . Выход хроматографнчески чистой фосфатидной кислоты составл ет 130 мг (около 60%). Пример 2. Препарат фосполипазы Д готов т гомогенизацией сем н арахиса с дистиллированной водой. Соотношение ткань-вода 1:3. Полученный экстракт центрифугируют при 5000 об/ /мин 15 мин. Надосадочную жидкость используют в качестве препарата фосфолипазы Д. Ферментативную смесь готов т растворением 1,5 г лецитина Олайне ;(смесь лецитина, сфингомиэлина, лизолецитина , фосфатидилзтаноламинаи нейтральных липидов) в 300 мл диэтилового зфира 5 мг/мл, смешивают с 300 мл препарата фосфолипазы Д, |300 мл дистиллированной воды, 600 мл, 0,02 М раствора хлористого кальци  и 600 мл глицерина. Реакцию провод т при 37 в течение 1 ч при посто нном перемешивании. В ходе реакции расщепл етс  около 90 возможных предшественников фосфатидилглицерина и фосфатидной кислоты. Полученна  фракци  содержит фосфатидную кислоту 14,2%, сфингомизлин 2,6%, лецитин 10,7%, фосфатидилглицерин 50,1%, фосфатидилэтаноламин 3,0%, фосфатидилметанол 3,1%, лизолецитин 0,6%, фосфатидилинозит 2,6%, нефосфолипидные примеси 13,1% Обработку полученной фракции трило-, ном Б и подготовку колонки провод т по примеру 1.Дл  элюировани  используют: 1.5л хлороформ-метанола 94:6 с добавкой 25% водного аммиака (3 мл/л системы). Вымывают нефосфолипидные примеси и фосфатидил-метанол. В последнем литре системы заметно по вление фосфатидилглицерина. 2.9л хлорйформ-метанола 92:8 с добавкой 25% водного аммиака (4 мл/л системы). Вымывают хроматеграфически чистый фосфатидилглицерии. В первом литре систекы -заметно небольшое количество фocфaтидилмeтaнoлa в последнем литре по вл ютс  следы фосфатидилэтaнoлaминai 3.4л хлороформ-метанола 7:3 с д бавкой 25% водного аммиака (б мл/л системы). Вымывают фосфатидилэтанол амин, лецитин, сфингомиэлин, фосфати дилинозит со следами фосфатиДной кис лоты в конце систеьол. 4.1,5л хлоррформ-метаиола 6:4. Вымывают хроматографически чистую фосфатидную кислоту. . Из 1 г фракциифосфатидилглицерин и фосфатидной кислоты получают сразу 320 мг (около 64% ) хроматографически чистого фосфатидилглицерина и 280 мг с примесью фосфатидилметанола и фосфатидилэтанойамина , полученных в начале и конце второй системы. Доочистка последней на сходной колонке дает еще 140 мг хроматографически чистого фосфатиднлглицерина. Конечный выход хроматографически чистого фосфатидилглицерина составл ет около 92% от исходного фосфатндилглицерина после ферментолиза. Выход хроматографически чистой фосфатидиновой кислоты составл ет 92 мг (около 65%). Пример 3. Препарат фосфоли;пазы Д готов т по nproiepy
  2. 2. Ферментативную смесь готов т растворением 1,5 г лецитина Олайне jtсмесь лецитина, сфингомизлина, лизо/леЦитина , фосфатидилэтаноламина и (нейтральных липидов) в 300 мл диэтил| вого зфира 5 мг/мл, смешивают 300 мл препарата фосфолипазы Д, 300 мл дистиллированной воды, 600 Мл 0,02 М .раствора хлористого кальци  и 600 мл глицерина. Реакцию провод т при 37 в течение 1 ч при посто нном перемешивании . В ходе реакции расщепл етс  около 95% возможных предшественников фосфатидилглицерина и фосфатидной кислоты. Полученна  фракци  содержит, фосфатидную кислоту 12,2%, фосфатидил глицерин 43,4%, лецитин 4,4%, сфингомиэлин 2,6%, фосфатидилметанол 2,2% фосфатидилэтаноламин 3,4%, фосфатидил инозит 2,7%, лизолецитин 0,4% нефосфо липидные примеси 27,8%. Обработку полученной фракции трилоном В и подготовку колонки провод т по примеру 1. В отличие от последнего изменено соотношение диаметра 2,2 см к высоте адсорбционного столба 22 см до 1:10. Дл  элюировани  используют: 1 . 2,7л хлор.оформ-метанола 94:6 с добавкой 25% водного раствора аммиака (З мл/л системы). Вымывают нефосфолипидные примеси и фосфатидилметанол . В последнем литре системы заметно следовое количество фосфатидилглицерина . 2.6 л хлороформ-метанола 92:8 с добавкой 25% водного аммиака ( 4 мл/л системы). Вымывают хроматографически чистый фосфатидилглицерин. В последнем литре системы идет смесь фосфатидилглицерина и фосфатидилэтаноламина в незначительном количестве 3.3 л хлороформ-метанола 7:3 с добавкой , 25% водного раствора аммиака (6 мл/л системы). Вымывают фосфатидил з т ноламин, фосфатидилинозит, лецитин, сфингомизлин. В конце -системы по вл етс  следовое количество фосфатидной кислоты. 4.1,5 л хлороформ-метанола 6:4. Вымывают кроматогра шчески чистую фосфатидную кислоту. Из 1 г фракции фосфатидилглицерина и фосфатидной кислоты получают сразу 350 мг (около 80%) хроматографически ;чистого фосфатидипглицерина и 100 мг с примесью фосфатидилметанола и фосфатидил этанол амина, полученных в на«чале и конце второй системы. Доочистка последней на сходной колонке дает еще 50 мг хроматографически чистого фосфатидилглицерина. Конечный выход хроматогра4«чески чистого фосфатидилглицерина составл ет около 92% от исходного фосфатидилглицерина после ферментолиза . Выход хроматографически чистой фосфатидной кислоты составл ет 77 мг (около 63%). Использование предлагаемого спосоаа по сравнению с известными способами, позвол ет быстро, просто, с экономной затратой растворителей одновременно получить хроматографически чистые фосфатидилглицерин и фосфатидную кислоту с высоким выходом 84-92% фосфатидипглицерина и 60-65% фосфатидной кисоты . Формула изобретени  Способ получений фосфатидилглицериа путем действи  фосфолипазы Д на ецитин в присутствии глицерина с оследующей очисткой колоночной хроатографией , отличающийс  ем, что, с целью повышени  выхода елевого продукта и одновременного поучени  фосфатидной кислоты, лецитин
    1 8311298
    раствор ют в диэтиловом эфире; полу-нии 6:4 вьщел ют фосфатидную кислоту. ченную фракцию обрабатывают трилоном
    Б и элюирование провод т смесью хло-Источники информации,
    роформ-метанол в соотношении 94:6 вприн тые во внимание при экспертизе
    присутствии аммиака дл  получени 5 1. М. НеПег. Phosphol Ipase Din
    фосфатидилглицерина и при элюированииpeanut seeds Bull, Sol Chim Biol.
    смесью хлороформ-метанол в соотноше-.1968, 50, 9, 1395-1409.
SU792789169A 1979-07-24 1979-07-24 Способ получени фосфатидилглицерина SU831129A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU792789169A SU831129A1 (ru) 1979-07-24 1979-07-24 Способ получени фосфатидилглицерина

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU792789169A SU831129A1 (ru) 1979-07-24 1979-07-24 Способ получени фосфатидилглицерина

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU831129A1 true SU831129A1 (ru) 1981-05-23

Family

ID=20837573

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU792789169A SU831129A1 (ru) 1979-07-24 1979-07-24 Способ получени фосфатидилглицерина

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU831129A1 (ru)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2518117A1 (fr) * 1981-12-16 1983-06-17 Toyo Jozo Kk Procede de mesure quantitative du phosphatidylglycerol
WO1991016444A1 (en) * 1990-04-17 1991-10-31 The Liposome Company, Inc. Enzymatic synthesis of soluble phosphatides from phospholipids
US5188951A (en) * 1990-04-17 1993-02-23 The Liposome Company, Inc. Enzymatic synthesis of soluble phosphatides from phospholipids
US5441876A (en) * 1993-07-30 1995-08-15 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Process for the preparation of headgroup-modified phospholipids using phosphatidylhydroxyalkanols as intermediates

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2518117A1 (fr) * 1981-12-16 1983-06-17 Toyo Jozo Kk Procede de mesure quantitative du phosphatidylglycerol
WO1991016444A1 (en) * 1990-04-17 1991-10-31 The Liposome Company, Inc. Enzymatic synthesis of soluble phosphatides from phospholipids
US5188951A (en) * 1990-04-17 1993-02-23 The Liposome Company, Inc. Enzymatic synthesis of soluble phosphatides from phospholipids
US5441876A (en) * 1993-07-30 1995-08-15 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Process for the preparation of headgroup-modified phospholipids using phosphatidylhydroxyalkanols as intermediates
US5516662A (en) * 1993-07-30 1996-05-14 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Process for the preparation of headgroup-modified phospholipids using phosphatidylhydroxyalkanols as intermediates

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Abood et al. Stereospecific morphine adsorption to phosphatidyl serine and other membranous components of brain
Williams et al. The use of Sep‐Pak™ C18 cartridges during the isolation of gangliosides
Erdahl et al. Analysis of soybean lecithin by thin layer and analytical liquid chromatography
Rouser et al. Determination of polar lipids: Quantitative column and thin-layer chromatography
De Haas et al. Studies on cardiolipin III. Structural identity of ox-heart cardiolipin and synthetic diphosphatidyl glycerol
Karlsson et al. Lipid pattern and Na+− K+-dependent adenosine triphosphatase activity in the salt gland of duck before and after adaptation to hypertonic saline
OKUYAMA et al. Studies on hydrolysis of cardiolipin by snake venom phospholipase A
JPWO2003053932A1 (ja) アニオン性置換基を有する物質を捕捉可能な亜鉛錯体
Lachmann et al. Studies on the terminal stages of complement lysis
Ulsamer et al. Lipids of Acanthamoeba castellanii: composition and effects of phagocytosis on incorporation of radioactive precursors
Masoro et al. Skeletal muscle lipids: I. Analytical method and composition of monkey gastrocnemius and soleus muscles
Bruzik et al. Phospholipids chiral at phosphorus. Synthesis of chiral phosphatidylcholine and stereochemistry of phospholipase D
SU831129A1 (ru) Способ получени фосфатидилглицерина
DE60017563T2 (de) Enzymatische herstellung von phospholipiden in wässrigen medien
Schneider et al. Thyroidal iodide transport VI. On a possible role for iodide-binding phospholipids
Eveloff et al. K-Cl transport systems in rabbit renal basolateral membrane vesicles
Pries et al. Analysis of phospholipids
Colacicco et al. A simplified preparation of phosphatidyl inositol
Fujiwara et al. Isolation and assay of surface-active phospholipid components from lung extracts by thin-layer chromatography
Rathbone et al. The preparation and properties of lysophosphatidylserine
Shimojo et al. The elution behaviors of acidic phospholipids on column chromatography
Nakhel et al. Phospho-and phosphonolipids of the aegean pelagic scyphomedusa Pelagia noctiluca
Riboni et al. Phospholipid content and composition of human meningiomas
Robins Phosphatidylethanolamine and lysophosphatidylethanolamine
Cann et al. Rearrangements of a cation of the neopentyl-type containing a diphenyl-phosphinyl substituent