SU831129A1 - Способ получени фосфатидилглицерина - Google Patents
Способ получени фосфатидилглицерина Download PDFInfo
- Publication number
- SU831129A1 SU831129A1 SU792789169A SU2789169A SU831129A1 SU 831129 A1 SU831129 A1 SU 831129A1 SU 792789169 A SU792789169 A SU 792789169A SU 2789169 A SU2789169 A SU 2789169A SU 831129 A1 SU831129 A1 SU 831129A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- phosphatidylglycerol
- methanol
- phosphatidic acid
- lecithin
- chloroform
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
(54) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФОСФАТИдаЛГЛИЦЕРША
Claims (2)
- Изобретение относитс к химико-фар мацевтической промьшленности. Известен способ получени фосфатидИлглицерина путем действи фосфолип зы Д на лецитин в присутствии глицери на с последующей очисткой колоночной хроматографией 1. Однако при этом способе выход фосфатидилглицерина незначителен и соста л ет 25%, чиста фосфатидна кислота не выдел етс . Цель изобретени - повышение выхода целевого продукта и одновременное получение фосфатидной кислоты. Поставленна цель достигаетс тем, Что лецитин раствор ют в диэтиловом эфире, полученную фракцию обрабатывают трилоном Б и злюирование провод т смесью хлороформ-метанол в соотношении 94:6 в присутствии аммиака дл получени фосфатидилглицерина и при элюировании смесью хлороформ-метанол в соотношении 6:4 вьздел ют фосфатнд кую кислоту. Пример 1. Препарат фосфолипазы Д готов т гомогенизацией капусты с 0,05 М натрий-ацетатным буфером рН 5,6. Соотношение ткань-буфер 1:3. Полученный зкстракт центрифугируют при 5000 об/мин 15 мин. Надосадочную жидкость используют в качестве препарата фосфолипазы Д. Ферментативную смесь готов т путем растворени 1,5 г чистого лецитина в 300 мл дизтилового эфира (5 мг/мл), смешивают с 300 ил 0,05 М натрий-ацетатного буфера рН 5,6, с 300 мл препарата фосфолипазы Д, 600 Ь4Л 0,02 М раствора хлористого кальци ,и 600 мл глицерина. Реакцию провод т П1 26 С 0,5 ч при посто нном перемешивании. Б ходе реакции расщепл етс около 95% лецитина. Соотношение фосфатидилглицерина и фосфатидной кислоты около 3:1. Полученна фракци содержит фосфатидную кислоту, около 22%, лецитин около 5%, фосфатидил3 глицерин около 63%, фосфатидилметанол около 3%, и нефосфолипидные примеси около 7%, Фракцию фосфатидилглицерина и фосфатидной кислоты извлекают 4 раза сис темой хлороформ-метанол 2:1, одной третьей частью от реакционной смеси каждый раз. Хлороформ-метанольньй слой упаривают до 50 мл, прибавл ют 50 мл 2%-ного раствора трилона Б в системе вода-метанол 9:1, тщательно перемешивают, центрифугирзпот и верхний слой отбрасывают. Нижний слой отмывают 30 мл дистиллированной воды .от избытка трилона Б. Водный слой отбрасывают , нижний упаривают досуха и раствор ют в 10 мл хлороформ-метанола 94:6 с добавкой 25% водного аммиака (3 мл/л системы). Фракци готой к нанесению на колонку. Дл разделени 1 г смеси веществ используют 50 г силикагел Л 40/100А. Силикагель суспензируют в хлороформ-метаноле 94:6 с добавкой 25% водного аммиака. (3 мл системы) и загружают в колонку диаме ром 4,5 см с высотой адсорбционного столба 10 см. Отношение диаметра к высоте адсорбционного столба 1:2. Дн элюировани используют: 1.4л хлороформ-метанола 94:6 с добавкой 25% водного аммиака (З мл /л систеьвл). Вымывают нефосфолипидны примеси и фосфатидилметанол. В после нем литре системи заметно по вление фосфатидилглицерина; 2. л хлороформ-метанола 92:8 с добавкой 25% водного аммиака (4 мл /л системы). ВьцФюают хроматографиче ки чистый фосфатидилглицерин. В riepвом литре системы заметно небольшое количество фосфатидилметанола, в последних полутора литрах по вл ютс следы лецитина. 3.3л хлороформ-метанола 7:3 с добавкой 25% водного аммиака (6 мл/л системы). Bы BlIвaют лецитин. В последних полутора литрах выходит лецитин с примесью фосфатидной кислоты 4. 1,5 л хлороформ-метанола 6:4. Вымывают хроматографически чистую фосфатидную кислоту. Из 1 г фракции фосфатидилглицери на и фосфатидной кислоты получают сразу 376 мг (около 60%) хроматогра фически чистого фосфатидилглицерина и 300 мг с примесью фосфатидилметан ла и лецитина, полученных в начале и конце второй системы. Их доочистк 94 на аналогичной колонке дает еще 150 мг хроматографически чистого фосфatидшIглицepинa . Конечный выход хроматографически чистрго фосфатидилглицерина составл ет около 84% от исходного фосфатидилглицерина после ферментолиза . Выход хроматографнчески чистой фосфатидной кислоты составл ет 130 мг (около 60%). Пример 2. Препарат фосполипазы Д готов т гомогенизацией сем н арахиса с дистиллированной водой. Соотношение ткань-вода 1:3. Полученный экстракт центрифугируют при 5000 об/ /мин 15 мин. Надосадочную жидкость используют в качестве препарата фосфолипазы Д. Ферментативную смесь готов т растворением 1,5 г лецитина Олайне ;(смесь лецитина, сфингомиэлина, лизолецитина , фосфатидилзтаноламинаи нейтральных липидов) в 300 мл диэтилового зфира 5 мг/мл, смешивают с 300 мл препарата фосфолипазы Д, |300 мл дистиллированной воды, 600 мл, 0,02 М раствора хлористого кальци и 600 мл глицерина. Реакцию провод т при 37 в течение 1 ч при посто нном перемешивании. В ходе реакции расщепл етс около 90 возможных предшественников фосфатидилглицерина и фосфатидной кислоты. Полученна фракци содержит фосфатидную кислоту 14,2%, сфингомизлин 2,6%, лецитин 10,7%, фосфатидилглицерин 50,1%, фосфатидилэтаноламин 3,0%, фосфатидилметанол 3,1%, лизолецитин 0,6%, фосфатидилинозит 2,6%, нефосфолипидные примеси 13,1% Обработку полученной фракции трило-, ном Б и подготовку колонки провод т по примеру 1.Дл элюировани используют: 1.5л хлороформ-метанола 94:6 с добавкой 25% водного аммиака (3 мл/л системы). Вымывают нефосфолипидные примеси и фосфатидил-метанол. В последнем литре системы заметно по вление фосфатидилглицерина. 2.9л хлорйформ-метанола 92:8 с добавкой 25% водного аммиака (4 мл/л системы). Вымывают хроматеграфически чистый фосфатидилглицерии. В первом литре систекы -заметно небольшое количество фocфaтидилмeтaнoлa в последнем литре по вл ютс следы фосфатидилэтaнoлaминai 3.4л хлороформ-метанола 7:3 с д бавкой 25% водного аммиака (б мл/л системы). Вымывают фосфатидилэтанол амин, лецитин, сфингомиэлин, фосфати дилинозит со следами фосфатиДной кис лоты в конце систеьол. 4.1,5л хлоррформ-метаиола 6:4. Вымывают хроматографически чистую фосфатидную кислоту. . Из 1 г фракциифосфатидилглицерин и фосфатидной кислоты получают сразу 320 мг (около 64% ) хроматографически чистого фосфатидилглицерина и 280 мг с примесью фосфатидилметанола и фосфатидилэтанойамина , полученных в начале и конце второй системы. Доочистка последней на сходной колонке дает еще 140 мг хроматографически чистого фосфатиднлглицерина. Конечный выход хроматографически чистого фосфатидилглицерина составл ет около 92% от исходного фосфатндилглицерина после ферментолиза. Выход хроматографически чистой фосфатидиновой кислоты составл ет 92 мг (около 65%). Пример 3. Препарат фосфоли;пазы Д готов т по nproiepy
- 2. Ферментативную смесь готов т растворением 1,5 г лецитина Олайне jtсмесь лецитина, сфингомизлина, лизо/леЦитина , фосфатидилэтаноламина и (нейтральных липидов) в 300 мл диэтил| вого зфира 5 мг/мл, смешивают 300 мл препарата фосфолипазы Д, 300 мл дистиллированной воды, 600 Мл 0,02 М .раствора хлористого кальци и 600 мл глицерина. Реакцию провод т при 37 в течение 1 ч при посто нном перемешивании . В ходе реакции расщепл етс около 95% возможных предшественников фосфатидилглицерина и фосфатидной кислоты. Полученна фракци содержит, фосфатидную кислоту 12,2%, фосфатидил глицерин 43,4%, лецитин 4,4%, сфингомиэлин 2,6%, фосфатидилметанол 2,2% фосфатидилэтаноламин 3,4%, фосфатидил инозит 2,7%, лизолецитин 0,4% нефосфо липидные примеси 27,8%. Обработку полученной фракции трилоном В и подготовку колонки провод т по примеру 1. В отличие от последнего изменено соотношение диаметра 2,2 см к высоте адсорбционного столба 22 см до 1:10. Дл элюировани используют: 1 . 2,7л хлор.оформ-метанола 94:6 с добавкой 25% водного раствора аммиака (З мл/л системы). Вымывают нефосфолипидные примеси и фосфатидилметанол . В последнем литре системы заметно следовое количество фосфатидилглицерина . 2.6 л хлороформ-метанола 92:8 с добавкой 25% водного аммиака ( 4 мл/л системы). Вымывают хроматографически чистый фосфатидилглицерин. В последнем литре системы идет смесь фосфатидилглицерина и фосфатидилэтаноламина в незначительном количестве 3.3 л хлороформ-метанола 7:3 с добавкой , 25% водного раствора аммиака (6 мл/л системы). Вымывают фосфатидил з т ноламин, фосфатидилинозит, лецитин, сфингомизлин. В конце -системы по вл етс следовое количество фосфатидной кислоты. 4.1,5 л хлороформ-метанола 6:4. Вымывают кроматогра шчески чистую фосфатидную кислоту. Из 1 г фракции фосфатидилглицерина и фосфатидной кислоты получают сразу 350 мг (около 80%) хроматографически ;чистого фосфатидипглицерина и 100 мг с примесью фосфатидилметанола и фосфатидил этанол амина, полученных в на«чале и конце второй системы. Доочистка последней на сходной колонке дает еще 50 мг хроматографически чистого фосфатидилглицерина. Конечный выход хроматогра4«чески чистого фосфатидилглицерина составл ет около 92% от исходного фосфатидилглицерина после ферментолиза . Выход хроматографически чистой фосфатидной кислоты составл ет 77 мг (около 63%). Использование предлагаемого спосоаа по сравнению с известными способами, позвол ет быстро, просто, с экономной затратой растворителей одновременно получить хроматографически чистые фосфатидилглицерин и фосфатидную кислоту с высоким выходом 84-92% фосфатидипглицерина и 60-65% фосфатидной кисоты . Формула изобретени Способ получений фосфатидилглицериа путем действи фосфолипазы Д на ецитин в присутствии глицерина с оследующей очисткой колоночной хроатографией , отличающийс ем, что, с целью повышени выхода елевого продукта и одновременного поучени фосфатидной кислоты, лецитин1 8311298раствор ют в диэтиловом эфире; полу-нии 6:4 вьщел ют фосфатидную кислоту. ченную фракцию обрабатывают трилономБ и элюирование провод т смесью хло-Источники информации,роформ-метанол в соотношении 94:6 вприн тые во внимание при экспертизеприсутствии аммиака дл получени 5 1. М. НеПег. Phosphol Ipase Dinфосфатидилглицерина и при элюированииpeanut seeds Bull, Sol Chim Biol.смесью хлороформ-метанол в соотноше-.1968, 50, 9, 1395-1409.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU792789169A SU831129A1 (ru) | 1979-07-24 | 1979-07-24 | Способ получени фосфатидилглицерина |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU792789169A SU831129A1 (ru) | 1979-07-24 | 1979-07-24 | Способ получени фосфатидилглицерина |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU831129A1 true SU831129A1 (ru) | 1981-05-23 |
Family
ID=20837573
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU792789169A SU831129A1 (ru) | 1979-07-24 | 1979-07-24 | Способ получени фосфатидилглицерина |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU831129A1 (ru) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2518117A1 (fr) * | 1981-12-16 | 1983-06-17 | Toyo Jozo Kk | Procede de mesure quantitative du phosphatidylglycerol |
WO1991016444A1 (en) * | 1990-04-17 | 1991-10-31 | The Liposome Company, Inc. | Enzymatic synthesis of soluble phosphatides from phospholipids |
US5188951A (en) * | 1990-04-17 | 1993-02-23 | The Liposome Company, Inc. | Enzymatic synthesis of soluble phosphatides from phospholipids |
US5441876A (en) * | 1993-07-30 | 1995-08-15 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy | Process for the preparation of headgroup-modified phospholipids using phosphatidylhydroxyalkanols as intermediates |
-
1979
- 1979-07-24 SU SU792789169A patent/SU831129A1/ru active
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2518117A1 (fr) * | 1981-12-16 | 1983-06-17 | Toyo Jozo Kk | Procede de mesure quantitative du phosphatidylglycerol |
WO1991016444A1 (en) * | 1990-04-17 | 1991-10-31 | The Liposome Company, Inc. | Enzymatic synthesis of soluble phosphatides from phospholipids |
US5188951A (en) * | 1990-04-17 | 1993-02-23 | The Liposome Company, Inc. | Enzymatic synthesis of soluble phosphatides from phospholipids |
US5441876A (en) * | 1993-07-30 | 1995-08-15 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy | Process for the preparation of headgroup-modified phospholipids using phosphatidylhydroxyalkanols as intermediates |
US5516662A (en) * | 1993-07-30 | 1996-05-14 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy | Process for the preparation of headgroup-modified phospholipids using phosphatidylhydroxyalkanols as intermediates |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Abood et al. | Stereospecific morphine adsorption to phosphatidyl serine and other membranous components of brain | |
Williams et al. | The use of Sep‐Pak™ C18 cartridges during the isolation of gangliosides | |
Erdahl et al. | Analysis of soybean lecithin by thin layer and analytical liquid chromatography | |
Rouser et al. | Determination of polar lipids: Quantitative column and thin-layer chromatography | |
De Haas et al. | Studies on cardiolipin III. Structural identity of ox-heart cardiolipin and synthetic diphosphatidyl glycerol | |
Karlsson et al. | Lipid pattern and Na+− K+-dependent adenosine triphosphatase activity in the salt gland of duck before and after adaptation to hypertonic saline | |
OKUYAMA et al. | Studies on hydrolysis of cardiolipin by snake venom phospholipase A | |
JPWO2003053932A1 (ja) | アニオン性置換基を有する物質を捕捉可能な亜鉛錯体 | |
Lachmann et al. | Studies on the terminal stages of complement lysis | |
Ulsamer et al. | Lipids of Acanthamoeba castellanii: composition and effects of phagocytosis on incorporation of radioactive precursors | |
Masoro et al. | Skeletal muscle lipids: I. Analytical method and composition of monkey gastrocnemius and soleus muscles | |
Bruzik et al. | Phospholipids chiral at phosphorus. Synthesis of chiral phosphatidylcholine and stereochemistry of phospholipase D | |
SU831129A1 (ru) | Способ получени фосфатидилглицерина | |
DE60017563T2 (de) | Enzymatische herstellung von phospholipiden in wässrigen medien | |
Schneider et al. | Thyroidal iodide transport VI. On a possible role for iodide-binding phospholipids | |
Eveloff et al. | K-Cl transport systems in rabbit renal basolateral membrane vesicles | |
Pries et al. | Analysis of phospholipids | |
Colacicco et al. | A simplified preparation of phosphatidyl inositol | |
Fujiwara et al. | Isolation and assay of surface-active phospholipid components from lung extracts by thin-layer chromatography | |
Rathbone et al. | The preparation and properties of lysophosphatidylserine | |
Shimojo et al. | The elution behaviors of acidic phospholipids on column chromatography | |
Nakhel et al. | Phospho-and phosphonolipids of the aegean pelagic scyphomedusa Pelagia noctiluca | |
Riboni et al. | Phospholipid content and composition of human meningiomas | |
Robins | Phosphatidylethanolamine and lysophosphatidylethanolamine | |
Cann et al. | Rearrangements of a cation of the neopentyl-type containing a diphenyl-phosphinyl substituent |