DE2156339C3 - Verfahren zur Herstellung von L-Asparaginase - Google Patents

Verfahren zur Herstellung von L-Asparaginase

Info

Publication number
DE2156339C3
DE2156339C3 DE2156339A DE2156339A DE2156339C3 DE 2156339 C3 DE2156339 C3 DE 2156339C3 DE 2156339 A DE2156339 A DE 2156339A DE 2156339 A DE2156339 A DE 2156339A DE 2156339 C3 DE2156339 C3 DE 2156339C3
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
culture
carbon source
asparaginase
continuous
medium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
DE2156339A
Other languages
English (en)
Other versions
DE2156339B2 (de
DE2156339A1 (de
Inventor
Donald Sidney Winterslow Callow
Brian John Capel
Charles Gervase Thorngate Evans
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
UK Secretary of State for Social Services
Original Assignee
UK Secretary of State for Social Services
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from GB5427770A external-priority patent/GB1379728A/en
Application filed by UK Secretary of State for Social Services filed Critical UK Secretary of State for Social Services
Publication of DE2156339A1 publication Critical patent/DE2156339A1/de
Publication of DE2156339B2 publication Critical patent/DE2156339B2/de
Application granted granted Critical
Publication of DE2156339C3 publication Critical patent/DE2156339C3/de
Expired legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/78Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5)
    • C12N9/80Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5) acting on amide bonds in linear amides (3.5.1)
    • C12N9/82Asparaginase (3.5.1.1)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/813Continuous fermentation
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/847Erwinia

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Herstellung von L-Asparaginase.
In der Deutschen Patentanmeldung P 19 42 833.2 vom 22.8.1969 wird die Isolierung von therapeutisch ■>> wirksamer L-Asparaginase aus Bakterienkulturen der Genus Erwinia, einer bekannten gegenüber Pflanzen pathogenen Gattung, beschrieben. Danach können die Bakterien auf oder in unterschiedlichen festen oder flüssigen Kulturmedien gezüchtet werden, sie sowohl 6ö chemisch einfach definierte Medien als auch komplexe Medien sein können, und es werden Beispiele angegeben, bei denen durch chargenweise Produktion von Erwinia in komplexen Medien L-Asparaginase-Ausbeuten von 8,2 ΙΕ/ml Kultur erhalten werden und μ über kontinuierliche Kulturen in komplexen Medien berichtet, die zu Ausbeuten von 24 ΙΕ/ml Kultur führen.
In der Deutschen Patentanmeldung P 20 31 759.3 vom 26.6.1970 wird ein Verfahren zur Erzielung höherer L-Asparaginase-Ausbeuten pro ml Kultur beschrieben, wonach dem Kulturmedium entweder bei chargenweiser oder kontinuierlicher Kultur wirksame Mengen von zumindest einer der Aminosäuren, Glutaminsäure, Serin, Threonin oder Asparaginsäure zugesetzt werden. Dabei werden Beispiele angegeben, nach denen L-Asparaginase-Ausbeuten von 44,5 ΙΕ/ml Kultur bei chargenweiser Züchtung und bis zu 80 ΙΕ/ml Kultur bei kontinuierlicher Züchtung erhalten wurden.
Es wurde nun festgestellt, daß unter ausgewählten Bedingungen für kontinuierliche Züchtung sogar noch höhere L-Asparaginase-Ausbeuten pro ml Kultur erhalten werden können. Eine solche Ai^beutesteigerung ist gerade im vorliegenden Falle außerordentlich interessant, da die Nachl'rage nach dem Enzym bei weitem seine derzeitige Verfügbarkeit Versteigt. L-Asparaginase wird für chemische Versuche zur Behandlung gewisser Typen von Leukämie und disseminiertem Karzinom verwendet
Das erfindungsgemäße Verfahren ist in den Ansprüchen definiert
Zu geeigneten Kohlenstoffquellen gr-hören Glycerin, Glucose, Mannit, Lactai und Citrat und andere Präkursoren, die zu Kreb's-Zyklus-Zwischenprodukten führen können. Glycerin oder Glucose werden dabei normalerweise als billige Kohlenstoffquellen, die gute L-Asparaginase-Ausbeuten liefern, bevorzugt Die Wirksamkeit der gewählten Kohlenstoffquellen in kontinuierlicher Kultur ist überraschend, da von diesen Materialien festgestellt wurde, daß sie bei chargenweiser Kultur eine variierende Hemmung der Enzymproduktion induzieren.
Die L-Asparaginase wird dann aus der Kultur durch irgendein geeignetes zellzerstörendes Verfahren und vorzugsweise nach der in der Deutschen Patentanmeldung P 19 42 900.6 vom 22.8.1969 vollständig beschriebenen Verfahrensweise extrahiert bzw. isoliert (dieses Verfahren umfaßt eine Zell-Lysis mit starkem Alkali).
Beim erfindungsgemäßen Verfahren kann die nährende Kultur entweder auf einfachen Salzmedien basieren, bei denen die gewählte Kohlenstoffquelle praktisch allen für die Bakterien zur Verfügung stehenden Kohlenstoff bereitstellt oder durch ein komplexes Medium gebildet werden, bei dem die gewählte Kohlenstoffquelle andere bereits im Medium vorhandene Kohlenstoffquellen ergänzen kann.
Obgleich eine Mischung von zwei oder mehreren der gewählten Kohlenstoffqudlen enthaltene Nährmedium beim erfindungsgemäßen Verfahren verwendet werden können, wird bevorzugt, daß für die bakterielle Kultur in irgendeinem besonderen Stadium der kontinuierlichen Züchtung nur eine der gewählten Kohlenstoffquellen verfügbar ist.
Die erfindungsgemäße Verfahrensweise kann bei allen Bakterien der Genus Erwinia angewandt werden und insbesonere bei solchen Stämmen, wie sie in der bereits oben genannten Patentanmeldung P 19 42 833.2 vom 22,8.1969 angegeben werden. Besonders zweckmäßig ist die Anwendung eines Stammes von Erwinia carotovora, der beim National Collection of Plant Pathogenic Bacteria, England unter NCPPB 1066 niedergelegt ist und zu einer hohen spezifischen Aktivität führt, d. h. einem hohen Verhältnis von Enzymaktivität zu mg erzeugtem Protein.
Kontinuierliche Baktericnkulturverfahren gemäß der Erfindung werden normalerweise bei pH-Werten zwischen 5,5 und 8,0, vorzugsweise zwischen 6,5 und 7,5
und Temperaturen von 20 bis 400C, vorzugsweise 28 bis 38° C, durchgeführt Die Verdünnungsrate liegt üblicherweise bsi 0,05 bis 0,4, vorzugsweise bei 0,1 bis 0,3, wobei unter der Verdünnungsrpte das Verhältnis der durch das Kulturgefäß pro Stunde geleiteten Flüssigkeitsmenge zum Volumen der im Kulturgefäß enthaltenen Flüssigkeit zu verstehen ist Bei diesen Verdünnungsraten liegt die Konzentration der gewählten Kohlenstoffquelle im zugelieferten Kulturmedium bei 0,5 bis 5%, vorzugsweise 1 bis 3% (Gewicht/Volumen), so daß die begrenzte Stationärkonzentration im Kulturgefäß kleiner als etwa 0,1 mg/ml (vorzugsweise kleiner als 0,05 mg/ml) sein muß und unzureichend für die bei höheren Konzentrationen mögliche Unterdrückung der Bildung von L-Asparaginase.
Nachfolgend werden einige Beispiele für kontinuierliche Kulturverfahren gemäß der Erfindung beschrieben:
Beispiel 1
Eine Einzelkoloo»« von Erwinia carotovora (NCPPB 1066 S 10) von einer Oxoid-Agarzähiplatte (plate of Oxoid plate count agar) wurde in 4 ml tryptische Fleischbrühe gebracht und 6 Stunden lang bei 37° C bebrütet 1 ml dieser Kultur wurde dann zu 100 ml »Medium A« in einer konischen 500 ml-Flasche hinzugefügt Dieses Medium A hatte 'olgende Zusammensetzung:
NaH2PO4 10OmM
NH4Cl 10OmM
KCl 5mM
Na2SO4 1OmM
Zitronensäure 2mM
Zn*+ WC5 mM
Fe3+ 0,1 mM
Mn 0,05 mM
Cu 0,005 mM
Co 0,01 mM
B 0,005 mM
Mg 1,25 mM
Ca 0,ImM
Mo 0,01 mM
Glycerin 1% (Gew/Vol.)
pH -7
Zitronensäure und 1,5% (Gew/Vol.) Glycerin. Luft wurde mit 0,5 Vol/VoI/min zugeführt und die Rührgeschwindigkeit auf 1 i00 Upm festgesetzt Die Kulturentwicklung erfolgte 8 Stunden lang im Chargenbetrieb, wonach ein DurchfluDbetrieb mit dem spezifizierten Medium für eine kontinuierliche Kultur bei einem pH-Wert von 7,0 und einer Temperatur von 37° C sowie einer Verdünnungsrate von 0,14 h-' aufgenommen wurde. Nach 7 Kulturtagen betrug die mittlere L-Asparaginase-Produktion in den nachfolgenden 8 Tagen 178 IE/ml Kultur (mit einem Maximum von 210 ΙΕ/ml und einem Minimum von 143 ΙΕ/ml). Das mittlere Trockengewicht der Zellen betrug 8,0 mg/ml.
30
Beispiel 2
Impfmasse wurde wie im vorstehenden Beispiel erzeugt und zu 900 ml Produktionsmedium in einem 1 I »Portion Fermenter« gegeben. (Das Produktionsmedium entsprach dem Medium A, jedoch mit Verminderung von NaH2PO4 auf 20 mH und Erhöhung des Giyceringehalts auf 2% (Gew/Vol.). Luft wurde mit 0,5 Vol/Vol/min zugeführt und die Rührgeschwindigkeit auf 750 Upm festgesetzt
Die Kultur wurde 9'/?. Stunden lang chargenweise entwickelt und dann unter Durchflußbetrieb für eine kontinuierliche Kultur bei einem pH-Wert von 7,0, einer Temperatur von 37° C und einer Verdünnungsrate von 0,10 h-' gebracht Nech 40 Tagen lag die mittlere Produktion von L-Asparaginase in den nachfolgenden 6 Tagen bei 113 ΙΕ/ml Kultur. (Das Maximum lag bei 119 ΙΕ/ml und das Minimum bei 105 ΙΕ/ml.) Das mittlere Trockengewicht der Zellen lag bei 8,2 mg/ml.
Diese Suspension wurde 18 Stunden lang bei 37°C auf einem Drehschüttler bebrütet und dann in einen 31 »Portion Fermenter« gegeben, wie er von Elsworth, Meakin, Pitt und Capel, J. Appl. Bact, 1956, 19, Seiten 262 — 278, beschrieben wird. Der »Portion Fermenter« enthielt 31 eines Mediums aus 50 g/l »Yeatex (light grade)« (Produkt der English Grains Co. Ltd.), 2 mM
Beispiel 3
Eine kontinuierliche Kultur von Erwinia carotovora (NCPPB 1066 S 10) wurde nach dem gleichen Verfahren wie in Beispiel 1 eingerichtet unter Verwendung eines einfachen Salzmediums (Medium A aber mit auf 20 mM vermindertem NaH2PO4 und 1% (Gew/Vol.) einer gewählten Kohlenstoffquelle, die durch Glycerin, Mannit oder Zitronensäure gebildet wurde). Kulturmedium mit der gleichen Zusammensetzung wurde kontinuierlich zur Kultur hinzugegeben bei einer Verdünnungsrate von 02 h-'. Die Temperatur lag bei 37°C und der pH-Wert wurde bei 7,0 gehalten.
Die Ergebnisse sind in der nachfolgenden Zusammenstellung wiedergegeben:
KohlenstolTquelle
L-Asparaginascgehall
(IE/ml Kultur)
Trockengewicht der der Zellen
(mg/ml)
Spezifische Aktivität
Glycerin
Zitronensäure
Mannit
84
38
10
4,0
2,1
4,2
30
26
3,4
Beispiel 4
Die Wirkung unterschiedlicher Verdünnungsraten und Konzentrationen der Kohlenstoffquelle wurde bei kontinuierlicher Kultur von Erwinia carotovora auf komplexen Medien wie in Beispiel 1 unter Anwendung von Glycerinkonzentrationen in zwei Bereichen und von zwei Verdünnungsraten nachgewiesen. Dabei wurden folgende Ergebnisse erzielt:
L-Asparaginasegehalt
Kulturdauer 1,5% 1,75% Verdünnungs-
Glycerin Glycerin rate
(Tage) (h-1)
1 - 4 2 IE/ml 2 IE/ml 0,28
5 197 IE/ml 161 IE/ml 0,15
6-10 128 IE/ml 99 IE/nl ' 0,15
11-15 104 IE/ml 80 IE/ml 0,15
16-20 100 IE/ml 78 IE/ml 0,15
Wie man sieht, führt die hohe Verdünnungsrate von 0,28 zu einem Glycerinpegel in der Kultur, der das übersteigt, was vollständig ausgenutzt werden kann, so daß die L-Asparaginase-Produktion auf einen Bereich von 2 IE/ml Kultur herabgedrückt wird. Obgleich dieser L-Asparaginasegehalt relativ gering ist, liegt er nichtsdestoweniger in der gleichen Größenordnung wie
bei einigen typischen bekannten Chargenkulturverfahren. So erhalten beispielsweise Peterson und Ciegler (App, Microbiol. VoI 18, 1969) eine Ausbeute von ί,35 IE/ml bei chargenweiser Kultur von Erwinia aroideae,
Beispiel 5
Das Verfahren gemäß Beispiel 1 wurde wiederholt •unter Anwendung einer Konzentration einer gewählten Kohlenstoffquelle (Glucose anstelle von Glycerin) in einem Bereich von 1,5% (Gew/VoL). Der L-Asparaginasegehalt und die spezifische Aktivität der Kultur waren praktisch mit den nach Beispiel 1 erhaltenen identisch.
Beispiel 6
Das Verfahren von Beispiel 1 wurde unter Anwendung einer hohen Verdünnungsrate von 0,254 und einem Glycerinpegel in der Kultur und im kontinuierlich zugeführien Medium von 1,5% (Gew/VoL) wiederholt, wobei die Stationärkonzentration >::, der Kultur bei 0,01 mg/mi iag. Der Enzymgehall lag bei 110 IE/ml.

Claims (10)

Patentansprüche:
1. Verfahren zur Herstellung von L-Asparaginase durch kontinuierliche Kultivierung von Bakterien der Gattung Erwinia, dadurch gekennzeichnet, daß der Kultur als Kohlenstoffquelle ein Zwischenprodukt des Krebs-Zyklus oder ein Vorläufer davon unter den Verfahrensbedingungen in einer begrenzten, quasistationären Konzentration von bis zu 0,1 mg/ml zugesetzt wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß als Kohlenstoffquelle Glycerin verwendet wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß als Kohlenstoffquelle Glucose verwendet wird.
4. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß als Kohlenstoffquelle Citronensäure, ein Citrat oder Mannit verwendet wird.
5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß die Kohlenstoffquelle in einer Konzentration von bis zu 0,05 mg/ml eingesetzt wird.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, daß die begrenzte quasistationäre Konzentralion der Kohlenstoffquelle in der Kultur durch kontinuierliche Zufuhr von Kulturmedium, das etwa 0,5 bis 5% (G/V) Kohlenstoffquelle enthält, bei einer Verdünnungsrate von etwa 0,05 bis 0,4 pro Stunde erhalten wird.
7. Verfahren nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß das zugeführte Kulturmedium 1 bis 3% (G/V) Kohlenstoffquelle enthält und die Verdünnungsrate 0,1 bis 03 pro Stunde beträgt κ
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch gekennzeichnet, daß der pH-Wert der kontinuierlichen Kultur etwa 5,5 bis 8,0 und vorzugsweise 6,5 bis 7,5 beträgt.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 8, -to dadurch gekennzeichnet, daß die Temperatur auf etwa 20 bis 400C und vorzugsweise 28 bis 38° C gehalten wird.
10. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 9, dadurch gekennzeichnet, daß als Bakterien die Species Erwinia carotovora verwendet wird.
DE2156339A 1970-11-13 1971-11-12 Verfahren zur Herstellung von L-Asparaginase Expired DE2156339C3 (de)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB5427770A GB1379728A (en) 1970-11-13 1970-11-13 Production of l-asparaginase

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DE2156339A1 DE2156339A1 (de) 1972-05-25
DE2156339B2 DE2156339B2 (de) 1980-04-17
DE2156339C3 true DE2156339C3 (de) 1980-12-11

Family

ID=10470481

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE2156339A Expired DE2156339C3 (de) 1970-11-13 1971-11-12 Verfahren zur Herstellung von L-Asparaginase

Country Status (13)

Country Link
US (1) US3783102A (de)
JP (1) JPS5543758B1 (de)
AT (1) AT311286B (de)
AU (1) AU460436B2 (de)
BE (1) BE775286A (de)
CA (1) CA995610A (de)
CH (1) CH569087A5 (de)
DE (1) DE2156339C3 (de)
DK (1) DK128942B (de)
FR (1) FR2117099A5 (de)
IE (1) IE35805B1 (de)
NL (1) NL177502C (de)
SE (1) SE393815B (de)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4729957A (en) * 1984-12-13 1988-03-08 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Process for manufacture of L-asparaginase from erwinia chrysanthemi
JPS63502718A (ja) * 1985-12-13 1988-10-13 アメリカ合衆国 エルウィニア カロトヴォラからのl−アスパラギナ−ゼの製造方法

Also Published As

Publication number Publication date
NL7115609A (de) 1972-05-16
CH569087A5 (de) 1975-11-14
BE775286A (fr) 1972-03-01
AU460436B2 (en) 1975-04-24
AU3569971A (en) 1973-05-24
DK128942B (da) 1974-07-29
US3783102A (en) 1974-01-01
AT311286B (de) 1973-11-12
FR2117099A5 (de) 1972-07-21
NL177502C (nl) 1985-10-01
DE2156339B2 (de) 1980-04-17
SE393815B (sv) 1977-05-23
IE35805L (en) 1972-05-13
DE2156339A1 (de) 1972-05-25
IE35805B1 (en) 1976-05-26
NL177502B (nl) 1985-05-01
JPS5543758B1 (de) 1980-11-07
CA995610A (en) 1976-08-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE3309271C2 (de) Verfahren zur Herstellung von immobilisierten Mikroorganismen
DE2167078C2 (en) Amylase prepn - for prodn of maltose from starch
DE2156339C3 (de) Verfahren zur Herstellung von L-Asparaginase
EP0233570A2 (de) Verfahren zur Herstellung von Coniferylaldehyd und Mikroorganismus dafür
DE3014001A1 (de) Verfahren zur herstellung von peroxidase und ihre verwendung
DE3527649A1 (de) Mikroorganismus einer neuen art der gattung streptomyces
DE2058371A1 (de) Verfahren zur Herstellung von 6-Aminopenicillansaeure
DE228592C (de)
DE1949719A1 (de) Verfahren zur Herstellung von Dextranase
DE2631047C3 (de) Verfahren zum Herstellen von biologischen Proteinen Mikroorganismen der Art Prototheca
EP0427150B1 (de) Verfahren zur Gewinnung von Sorbit und Gluconsäure bzw. Gluconat und dafür geeignete Zellmassen
DE1009583B (de) Verfahren zur biochemischen Herstellung von 2-Keto-1-gulonsaeure
DE2319242B2 (de) Verfahren zur herstellung von dextranase
AT309661B (de) Verfahren zum enzymatischen Enthaaren von geweichten Häuten mit proteolytischen Enzymen in alkalischer Flotte
DE1493442A1 (de) Verfahren zur Herstellung von Alanin auf enzymatischem Wege
DE1277856B (de) Verfahren zur Herstellung von Uridylsaeure
DE2345271C2 (de) Verfahren zur Herstellung von L-Asparaginsäure aus Fumarsäure
DE102021108535A1 (de) Bakterielles Biopräparat, Verfahren zu seiner Herstellung und Verwendung
DE1642615C3 (de) Verfahren zur Anreicherung von L-Asparaginase
DE2849393A1 (de) Verfahren zur herstellung von 2,5-diketogluconsaeure
DE3617368A1 (de) Verfahren zur herstellung eines stickstoffhaltigen polysaccharids
AT269363B (de) Verfahren zur Herstellung eines Produktionsstammes einer Claviceps purpurea (Fr.) Tul.-Kultur zur Erzeugung von Mutterkornalkaloiden
DE2051945C3 (de) Verfahren zur Herstellung eines Enzyms mit etwa gleich großer Glutaminase- und Asparaginase-Aktivität
DE2042571C3 (de) Verfahren zur Gewinnung von Proteinen aus einer bakteriellen Biomasse
DE455283C (de) Verfahren zur Herstellung von auch in fluessiger Form jahrelang keimfaehig bleibenden Sporenpraeparaten zu therapeutischen und technischen Zwecken

Legal Events

Date Code Title Description
OD Request for examination
OGA New person/name/address of the applicant
C3 Grant after two publication steps (3rd publication)