CN107338315A

CN107338315A - 用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒

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Publication number: CN107338315A
Application number: CN201710696855.6A
Authority: CN
Inventors: 陈良安; 马秀清; 王升启; 刘琪琦; 李春笋; 梁志欣
Original assignee: Chinese PLA General Hospital
Current assignee: Academy of military medicine, PLA Academy of Military Sciences; Chinese PLA General Hospital
Priority date: 2017-08-15
Filing date: 2017-08-15
Publication date: 2017-11-10
Anticipated expiration: 2037-08-15
Also published as: CN107338315B

Abstract

本发明公开了一种用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒。该试剂盒可以检测肺炎链球菌、金黄色葡萄球菌、流感嗜血杆菌、肺炎支原体、铜绿假单胞菌、鲍曼不动杆菌、粪肠球菌、屎肠球菌、肺炎克雷伯杆菌、大肠埃希菌、阴沟肠杆菌、嗜麦芽窄食单胞菌、洋葱伯克霍尔德菌、嗜肺军团菌、肺炎衣原体15种致病菌，其中包括了临床常见的和难培养的肺炎致病菌。通过基因芯片和多重不对称PCR反应相结合，对肺炎致病菌所对应的16S rDNA和特异基因序列进行检测，分别从“属”和“种”的级别同时对待检测样品中细菌的种类进行鉴定。本发明的试剂盒弥补了目前临床肺炎致病菌检测不及时不全面的缺陷，为肺炎患者早诊断、早治疗提供了一种新的检测手段。

Description

用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒

技术领域

本发明涉及基因技术，尤其涉及用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒。

背景技术

近年来，由于空气污染的加剧及公共卫生事件的发生，呼吸道疾病引起越来越多的关注。肺炎是指包括终末气道，肺泡和肺间质等在内的肺实质性炎症，是全球感染性疾病死亡的首要原因^[1]。据世界卫生组织(WHO)统计，每年约有350万人死于下呼吸道感染，居所有死亡原因的第三位^[2]。在美国,肺炎和流行性感冒位于所有死因的第九位，2010年和2011年均有5万多人死于肺炎 [3-^5]，而且该统计没有将肺炎导致的败血症以及死于肺炎并发症的癌症、帕金森等病例纳入肺炎组，所以实际因肺炎死亡的人数比这个数还要高^[2]。

肺炎的致病原有很多，包括细菌、病毒、真菌、寄生虫等，其中最重要最常见的是细菌。众所周知，肺炎按照发病环境可分为社区获得性肺炎(CAP) 和医院获得性肺炎(HAP)。大部分CAP患者只需要门诊就诊，但仍有大约20％的患者仍需住院治疗^[8]。CAP致病菌以革兰氏阳性菌为主，其中又以肺炎链球菌为第一位，占35-80％，其次为流感嗜血杆菌，嗜肺军团菌，肺炎支原体，肺炎衣原体，金黄色葡萄球菌等^[9]。HAP致病菌比较广泛，以革兰氏阴性菌为主，其中常见的是铜绿假单胞菌，大肠埃希菌，肺炎克雷伯菌，鲍曼不动杆菌，其它还有嗜麦芽窄食单胞菌，洋葱伯克霍尔德菌，粪肠球菌，屎肠球菌，阴沟肠杆菌等，此外革兰氏阳性菌金葡菌也见于HAP，尤其是耐甲氧西林金葡菌 (MRSA)^[10]。因此，肺炎致病菌种类繁多，准确、快速、特异和灵敏的检测手段是肺炎早诊断、早治疗的有力保障。

明确肺炎致病菌的种类是肺炎早诊断、及时采取有效治疗措施、减少肺炎病死率的重要环节。传统的细菌培养分离鉴定方法是目前常规的细菌分离鉴定的检测方法。传统细菌培养分离鉴定方法是基于细菌生长形态学以及细菌所特有的酶对营养基质分解能力的不同，利用其代谢产物产酸、产气等生化特性进行鉴定的一种方法，是细菌分类鉴定的金标准，但该方法需要培养分离，耗时长，一般需要24-48小时，鉴定生化试验繁杂，对于培养条件苛刻的细菌不但所需时间更长而且检出率低^[17]。细菌自动化鉴定系统如Vitek-AMS、MicroScan、 Biolog等，虽然简化了手工操作，但仪器中数据库还不完善，模式菌种数量有限，一些细菌只能鉴定到属，对于结果有疑问的仍然需要手工鉴定。细菌血清学抗体的检测是一种快速检测方法，但不同的抗体产生的时间是不同的，如肺炎支原体IgM抗体在起病后大约2周产生，不能满足临床快速诊断的需求，而且灵敏度和特异度均不理想。美国传染病学会(IDSA)指南曾建议要在8小时内给予肺部感染患者抗生素治疗，而这一时间在2003年缩短到4小时^[19,20]，可见，细菌的培养分离鉴定远远不能满足临床快速诊断的需求，肺炎早期的治疗只能依靠经验性治疗，这样又进一步加剧了耐药菌株的产生，因此，临床急需一种准确、快速检测肺炎致病菌的方法。

基因芯片技术是20世纪80年代末在人类基因组测序计划完成的背景下发展起来的一种微型化、高通量的新生物学技术，广泛的应用于疾病的诊断和治疗^[21]、新基因的发现^[22]、单核苷酸多态性分析^[23]、环境微生物监测^[24]、药物筛选^[25]、病原微生物检测^[26]等领域。在微生物学方面基因芯片技术有2个最普通的应用，一是全基因组的转录水平表达谱分析，二是监测不同条件下细胞基因表达的差异或不同环境中微生物DNA的突变情况和生物学特性的改变^[27,28]。基因芯片是通过碱基互补的原理，在引物或探针上标记可检测的物质，将探针固定于支持物上，与待检样品进行杂交，通过杂交的信号进行结果判读。常用的标记染料有Cy3和Cy5荧光染料及其生物素分子，其中生物素-链霉亲和素显色方法，可以通过辣根过氧化物酶进行显色和酪胺信号放大技术进行结果判读，该方法价格相对便宜，更容易被临床接受。

发明内容

鉴于上述问题，本发明旨在提出一种用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒，其能快速鉴定肺炎致病菌。

本申请的用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒，其中，所述15种肺炎致病菌为肺炎链球菌、金黄色葡萄球菌、流感嗜血杆菌、肺炎支原体、铜绿假单胞菌、鲍曼不动杆菌、粪肠球菌、屎肠球菌、肺炎克雷伯杆菌、大肠埃希菌、阴沟肠杆菌、嗜麦芽窄食单胞菌、洋葱伯克霍尔德菌、嗜肺军团菌、肺炎衣原体；所述试剂盒包括：制备的基因芯片、用于多重不对称PCR反应的引物混合液；

基因芯片上包括用于与待检样品进行杂交的探针；

探针包括第一探针；第一探针用于鉴定肺炎致病菌的特异基因，由此确定被测细菌的种；

用于鉴定肺炎链球菌的第一探针，其序列为：CAAAGTAGTACCAAGTGCCATTGATTTTCTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定金黄色葡萄球菌的第一探针，其序列为：CAAAGAACTGATAAATATGGACGTGGCTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定流感嗜血杆菌的第一探针，其序列为：GAACGTGGTACACCAGAATACAACATCGCTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定肺炎支原体的第一探针，其序列为：TGAGGTGAATGGGTTGTTGAATCCGTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定铜绿假单胞菌的第一探针，其序列为：TTGTGCCTGCTCGACCCGCTGGACGGGGTCTACAACTACCTCGCCCAG TTTTTTTTTTTT；

用于鉴定鲍曼不动杆菌的第一探针，其序列为：TCGATCCACGTGCTAAAGTGATTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定粪肠球菌的第一探针，其序列为：TTACATGGGCCAAATGGTGAAGATGGAACATTTTTTTTTTTT；

用于鉴定屎肠球菌的第一探针，其序列为：TCCTTTTTCCGTCATCAGTATAAAGTATAGTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定肺炎克雷伯杆菌的第一探针，其序列为：AAAGCCGGCGTGTACGATAATTTTTTTTTTTT；

用于鉴定大肠埃希菌的第一探针，其序列为：CGCCAAATCCGCAACGTAATGACAGTGTACCAACCCTTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定阴沟肠杆菌的第一探针，其序列为：GCAGGCGATCTGTACGTTCAGGTTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定嗜麦芽窄食单胞菌的第一探针，其序列为：TACCACCCGTACCTGGACTTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定洋葱伯克霍尔德菌的第一探针，其序列为：TGGTGCGCTCGGGCTCGATCGACATTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定嗜肺军团菌的第一探针的序列为：ATAGCATTGGTGCCGATTTGGGGAAGAATTTTTTTTTTTT；

用于鉴定肺炎衣原体中的第一探针，其序列为：ACTGCCGTAGATAGACCTAACCCGGCCTATTTTTTTTTTTT；

探针包还包括第二探针；第二探针用于鉴定肺炎致病菌的16S rDNA基因，由其确定被测细菌的属；

用于鉴定所述肺炎链球菌的第二探针，其序列为：TGTGAGAGTGGAAAGTTCACACTGTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述金黄色葡萄球菌的第二探针，其序列为：ACATATGTGTAAGTAACTGTGCACATCTTGACGGTATTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述流感嗜血杆菌的第二探针，其序列为：GAGGAAGGTTGATGTGTTATTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述肺炎支原体的第二探针，其序列为：GACCTGCAAGGGTTCGTTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述铜绿假单胞菌的第二探针，其序列为：TTGCTGTTTTGACGTTACTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述鲍曼不动杆菌的第二探针，其序列为：CCTAGAGATAGTGGACGTTACTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述粪肠球菌的第二探针，其序列为：AGTGCTTGCACTCAATTGGAAAGAGGAGTGGTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述屎肠球菌的第二探针，其序列为：CAAGGATGAGAGTAACTGTTCATCCCTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述嗜麦芽窄食单胞菌的第二探针，其序列为：CCAGCTGGTTAATACCCGGTTGGGATTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述洋葱伯克霍尔德菌的第二探针，其序列为：TTGGCTCTAATACAGTCGGTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述嗜肺军团菌的第二探针，其序列为：AGGGTTGATAGGTTAAGAGCTGATTAATTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述肺炎衣原体中的第二探针，其序列为：CCGAATGTAGTGTAATTAGGCTTTTTTTTTTTT；

用于鉴定所述肺炎克雷伯杆菌、大肠埃希菌、阴沟肠杆菌的第二探针，其序列为：GGTTAATAACCTCATCGATTGACGTTACCCTGCTTTTTTTTTTTT；

所述引物包括16对引物，每对引物下游5’端标记生物素，其中：

对应于肺炎链球菌的特异基因lytA的正向引物lytA-F的序列为：CCATCTGGCTCTACTGTGAA，反向引物lytA-R的序列为： GAGAACGGCTTGACGATT；

对应于金黄色葡萄球菌的特异基因nuc的正向引物nuc-F的序列为：AGCGATTGATGGTGATAC，反向引物nuc-R的序列为： AAGCCTTGACGAACTAAAG；

对应于流感嗜血杆菌的特异基因P6的正向引物P6-F的序列为：TCTAACAACGATGCTGCAGG，反向引物P6-R的序列为： CCAGCATCAACACCTTTACC；

对应于肺炎支原体的特异基因P1的正向引物P1-F的序列为：TGGTCCTACACCGACTTACA，反向引物P1-R的序列为： TTCCCAAAATAGGTTTCCAC；

对应于铜绿假单胞菌的特异基因toxA的正向引物toxA-F的序列为：TCATCCACGAACTGAACG，反向引物toxA-R的序列为： ATCTTGCCTTCCCAGGTAT；

对应于鲍曼不动杆菌的特异基因gltA的正向引物gltA-F的序列为：CTCTGCTGGTATCTCTGCTCT，反向引物gltA-R的序列为： TGCTTCAAGAACTTCGTCAC；

对应于粪肠球菌的特异基因ddl的正向引物ddlF-F的序列为：GAACGACCACAAAATAAAG，反向引物ddlF-R的序列为： GCCAACAGTTTGTAAAAGAT；

对应于屎肠球菌的特异基因ddl的正向引物ddlS-F的序列为：GCTAAAGCCACGCCTTCTA，反向引物ddlS-R的序列为： GGTGACGGATGGAAATGTT；

对应于肺炎克雷伯杆菌的特异基因mdh的正向引物mdh-F的序列为：GCGTGGCGGTAGATCTAAGTCATA，反向引物mdh-R的序列为： TTCAGCTCCGCCACAAAGGTA；

对应于大肠埃希菌的特异基因phoA的正向引物phoA-F的序列为：CCAACGATTCTGGAAATGG，反向引物phoA-R的序列为： CAATGGCTTTGTCGGTCAT；

对应于阴沟肠杆菌的特异基因dnaJ的正向引物dnaJ-F的序列为：GTCACCAAAGAGATCCGTA，反向引物dnaJ-R的序列为： CGCATGCGGAACAGCTT；

对应于嗜麦芽窄食单胞菌的特异基因chitA的正向引物chitA-F的序列为：TCAAGCAGCTCAAGGCCAA，反向引物chitA-F的序列为： TGGAAGTCGTAGGTCATC；

对应于洋葱伯克霍尔德菌的特异基因recA的正向引物recA-F的序列为：ATATCCAGGTCGTCTCCA，反向引物recA-R的序列为： AGTTCGTGCGCTTGATCGT；

对应于嗜肺军团菌的特异基因mip的正向引物mip-F的序列为：CTACAGACAAGGATAAGT，反向引物mip-R的序列为 CTTGCATGCCTTTAGCCA；

对应于肺炎衣原体的特异基因MOMP的正向引物MOMP-F的序列为：GATCCGCTGCTGCAAACTATACT，反向引物MOMP-R的序列为： GTGAACCACTCTGCATCGTGTAA；

对应于所述15种肺炎致病菌16S rDNA基因的通用引物的正向引物16S rDNA-F的序列为：AGAGTTTGATCMTGGCTCAG，其中M为A或C，反向引物16S rDNA-R的序列为：CGTATTACCGCGGCTGCTG；

所述16对引物分为3管多重不对称PCR反应体系，其中：

第一管多重不对称PCR反应体系包括：Multiplex PCR Master MIX、gltA-F、gltA-R、nuc-F、nuc-R、ddlF-F、ddlF-R、P1-F、P1-R、ddH2O；

第二管多重不对称PCR反应体系包括：Multiplex PCR MasterMIX、dnaJ-F、 dnaJ-R、recA-F、recA-R、mdh-F、mdh-R、phoA-F、phoA-R、toxA-F、toxA-R、 chitA-F、chitA-R、ddH2O；

第三管多重不对称PCR反应体系包括：Multiplex PCR Master MIX、16S rDNA-F、16S rDNA-R、P6-F、P6-R、mip-F、mip-R、lytA-F、lytA-R、ddlS-F、dd1S-R、MOMP-F、MOMP-R、ddH2O。

优选地，所述基因芯片上进一步包括阳性探针和阴性探针；其中所述阳性探针为：ACTCCTACGGGAGGCAGCAGTTTTTTTTTTTT，用于监测杂交过程中假阴性的出现；所述阴性探针为 TCAGAGCCTGTGTTTCTACCAATTTTTTTTTTTT、 CATCAATAGGGTCCGATATTTTTTTTTTTT、CGAACGCAAATCAATCTTTTTCCAGGTTTTTTTTTTTTT中的至少一个，用于监测杂交过程中假阳性的出现。

优选地，还包括样品处理液，样品处理液包括：25mmol/LNaOH，0.1nmol/L EDTA，10mmol/L Tris-HCl，1％NP-40，2％Chelex-100,1％Triton X-100。

优选地，还包括杂交液，杂交液包括：0.6％SDS,8×SSC，10×Denhardt 溶液，10％甲酰胺。

优选地，还包括预洗液，预洗液为0.2％SDS。

优选地，还包括洗液A、洗液B和洗液C；洗液A包括：1×SSC、0.2％SDS；洗液B包括0.2％SDS；洗液C包括0.1％SSC。

优选地，还包括PBST溶液。

优选地，还包括标记液，标记液包括辣根过氧化物酶标记链霉亲和素。

本申请的用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒针对肺炎致病菌，可以做到灵敏度高、特异性好、重复性好，十分适合临床肺炎致病菌种类的鉴定。

附图说明

图1为PCR产物切胶纯化回收操作流程图；

图2为质粒提取操作流程图；

图3为基因芯片杂交步骤；

图4为临床标本DNA提取流程图；

图5为16S rDNA引物筛选琼脂糖凝胶电泳结果；

图6为致病菌特异基因引物筛选琼脂糖凝胶电泳结果；

图7为致病菌质粒构建的测序结果；

图8为大肠埃希菌/肺炎克雷伯菌/阴沟肠杆菌16S rDNA目的片段对比图；

图9为肺炎致病菌鉴定芯片灵敏度实验；

图10为肺炎致病菌鉴定芯片特异性实验；

图11为混合标准菌株验证芯片的特异性；

图12为部分临床菌株芯片结果；

图13为部分临床标本芯片结果；

图14为肺炎致病菌鉴定芯片重复性实验；

具体实施方式

下面，结合附图对本发明的肺炎致病菌快速识别基因芯片进行详细说明。

材料与方法

一、实验材料

1.标准菌株

本实验所使用的标准菌株：肺炎链球菌、嗜麦芽窄食单胞菌、洋葱伯克霍尔德菌、金黄色葡萄球菌、流感嗜血杆菌、鲍曼不动杆菌、铜绿假单胞菌、肺炎克雷伯菌、大肠埃希菌、肺炎支原体、粪肠球菌、屎肠球菌、阴沟肠杆菌等分别由中国人民解放军军事医学科学院放射与辐射医学研究所、中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC)和中国食品药品检定研究院提供或购买。菌种名称及标准菌株的编号见表1-1。嗜肺军团菌和肺炎衣原体所需的目的基因片段由北京博迈德基因技术有限公司合成。

表1-1 标准菌株名称、缩写和编号

2、主要仪器

表1-2 实验中使用仪器

3、实验试剂

LB培养基：液体培养基——10g蛋白胨(TRYPTONE)，10g NaCl，5g酵母提取物(YEAST EXTRACT)加蒸馏水至1L，高压后备用。固体培养基—— 10g蛋白胨(TRYPTONE)，10gNaCl，5g酵母提取物(YEAST EXTRACT)， 15g琼脂(AGAR)加蒸馏水至1L，高压后备用。

样品处理液：25mmol/L NaOH，0.1nmol/L EDTA，10mmol/L Tris-HCl，1％NP-40，2％Chelex-100,1％Triton X-100；

电泳液：50×TAE储存液——冰乙酸28.5ml，Tris 121g，0.5ml/L Na2EDTA50ml混合，定容至500ml储存。1×TAE储存液——50×TAE储存液 10ml，加蒸馏水定容至500ml，备用。

2％琼脂糖凝胶：称取1g琼脂糖粉，溶解在50ml的1×TAE溶液中，微波炉加热至完全熔化，取出摇匀，冷却片刻，加入5μl的EB溶液，摇匀，缓慢的倒入电泳槽中，待琼脂糖胶凝固。

点样液：0.1％SDS，6×SSC，5％甘油，2％(质量/体积)Ficoll400；

杂交液：0.6％SDS,8×SSC，10×Denhardt溶液，10％甲酰胺；

预洗液：0.2％SDS(25ml 50×SDS溶液+2475ml蒸馏水)；

洗液A：1×SSC，0.2％SDS(125ml 20×SSC溶液+50ml 50×SDS溶液+2325ml 蒸馏水)；

洗液B：0.2％SDS(25ml 50×SDS溶液+2475ml蒸馏水)；

洗液C：0.1％SSC(12.5ml 20×SSC溶液+2487.5ml蒸馏水)；

PBST溶液：2500ml PBS溶液+5ml Tween-20，调节PH至7.0-7.2；

4％NaOH溶液：1mol/LNaOH，40gNaOH溶于1L蒸馏水中；

标记液：Streptavidin-horseradish peroxidase；

发光液A：MILLIPORE公司；

发光液B：MILLIPORE公司；

2×Gold Star Best Master Mix：北京康为世纪生物有限公司

Multiplex PCR 5×MasterMix：美国New England Biolabs(NEB)公司；

质粒小提试剂盒：北京天根生化科技有限公司；

琼脂糖凝胶回收试剂盒：北京天根生化科技有限公司；

DH5α感受态细胞：北京天根生化科技有限公司；

pMD^TM 18-T Vector克隆试剂盒：TaKaRa公司；

DL2000 DNA marker：TaKaRa公司；

芯片片基：上海百傲科技有限公司。

二、实验方法

1、引物和探针的设计与合成

1.1 引物探针的设计

本实验每种致病菌的鉴定涉及到两个基因，一个是16S rDNA，另一个是每种菌对应的特异基因。16S rDNA是管家基因，采用的是通用引物，先从NCBI 数据库中下载实验所需致病菌的该基因序列，为了避免个别碱基的差异，每种致病菌至少需要三种不同GenBank序列号的全基因序列。利用DNAMAN序列比对软件，对所有致病菌16S rDNA进行比对，在保守区域设计引物序列，在特异区域，即基因序列差异较大的区域设计每种菌的探针序列，此外本实验在其保守区域设计了一条探针，用于检测细菌存在情况。特异基因引物的设计需要针对每种致病菌的特异基因进行设计，同样首先需要从NCBI数据库中下载相关的基因的全序列，然后通过DNAMAN软件和Oligo7软件分别设计引物和探针，具体设计原则如下：

引物设计原则：(1)GC含量在40％到60％之间；(2)长度为18-30bp；(3) 3’末端不能出现3个或3个以上的连续碱基(如TTT或GGG)；(4)引物自身应避免发夹结构或二聚体；(5)产物应避免二级结构；(6)引物之间或自身不能有4个连续的碱基互补。PCR产物的长度最好在300bp以内，按照该原则设计好的引物还需在NCBI网站上通过BLAST分析，初步验证引物的特异性。

探针设计原则：(1)探针自身应避免产生二级结构；(2)探针长度一般在 17-50nt；(3)探针序列在上下游引物之间的保守区域内，不包括上下游引物序列；(4)探针序列避免连续4个以上相同碱基的出现；(5)探针序列要具有特异性，不可与其他致病菌PCR产物之间有较长的连续的配对序列。每个基因可设计2-3条探针进行筛选，同样，这些按照原则设计好的探针需要进行BLAST 分析，此外，还需利用DNAMAN软件比对探针与探针、探针与其他致病菌PCR 产物之间是否存在配对现象，初步检测探针的特异性。

1.2 引物探针的合成

引物的筛选时，普通PCR引物的合成由中国人民解放军军事医学科学院放射与辐射医学研究所合成。筛选成功的引物由上海生工工程技术服务有限公司合成，合成时，在引物下游5’端标记生物素(Biotin)。探针的合成主要是：(1) 在探针3’末端连接12个重复的T序列，目的是增加探针的空间柔性；(2)同时用氨基(-NH2)标记3’末端。

2、细菌DNA提取方法

采用直接煮沸法，即将菌液取适量放入EP管中，盖紧盖子，沸水中煮 10min，取出后迅速放置冰上，30min，然后12000转离心10min，取上清备用。

3、普通PCR及其产物纯化

3.1 普通PCR体系和条件，见表1-3与表1-4

表1-3 普通PCR反应体系

表1-4 普通PCR反应条件

3.2 将PCR产物加入到琼脂糖凝胶孔中，进行电泳，然后将含有单一的目的条带的琼脂糖凝胶切下，不要太大也不要太小，正好包含目的条带为宜，放入干净的EP离心管中，其回收采用普通琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒，根据说明书进行操作，主要步骤如图1。

4、质粒参考品的制备和提取

有标准菌株的致病菌通过普通PCR的方法对靶基因进行扩增，没有标准菌株的致病菌由北京博迈德公司直接合成靶基因序列。然后将目的基因序列通过 pMD^TM18-T Vector克隆试剂盒进行T载体克隆，具体实验步骤如下：

4.1 将T载体和Solution I放在冰上融化，按照表1-5的加入连接体系，T 载体和PCR切胶回收纯化产物DNA的摩尔比一般为：1:2-10，轻轻混匀，将 PCR管置于16℃的恒温金属浴中过夜进行连接。

表1-5 pMD18-T载体试剂盒克隆体系

4.2 将DH5α感受态细胞放在冰上溶解，溶解后，迅速将10μl连接产物加入其中，轻轻旋转离心管使混匀，冰上静置30min。

4.3 将离心管放进42℃水浴锅中，静置60-90s，然后将离心管移至冰浴中 (此步骤要快)，目的是使细胞迅速冷去，时间为2-3min，该过程不能晃动离心管。

4.4 将不含抗生素的LB液体培养基900μl加入到离心管中，混匀后放入 37℃摇床，150rpm培养45min。

4.5 将离心管内的液体混匀，吸取100μl已转化的感受态细胞到含氨苄青霉素(Amp，100μg/ml)的LB固体培养基上，用无菌的弯头玻棒轻轻的将细胞均匀涂开，盖上盖子，室温放置约1h，倒置平板，置于37℃培养箱内12-16h。

4.6 挑取培养基上单个的菌落，接种到5ml含有Amp(100μg/ml)的LB液体培养基中，置于37℃的摇床，200rpm振荡培养12-16h。

4.7 利用细菌靶基因的特异引物和pMD18-T载体的通用引物 M13F(-47)/M13R(-48)进行菌液PCR，经琼脂凝胶电泳，选取条带位置正确的菌液进行测序和保存。测序由北京博迈德生物技术有限公司进行；保存时，取待保存的菌液500μl与等体积的30％甘油混匀，置于-70℃冰箱保存。

4.8 测序结果经序列比对，对含有目的片段的菌液进行质粒提取，操作按照质粒提取试剂盒的说明书进行，具体步骤如图2。

在260nm波长处，测定提取质粒DNA的浓度，根据公式：质粒拷贝数 (Copies/μl)＝阿伏伽德罗常数×质粒浓度(ng/μl)×10^-9/(660×质粒长度 bp)g/mol，计算出质粒的拷贝数，然后进行10倍的梯度稀释，获得拷贝数分别为10¹,10²,10³,10⁴,10⁵,10⁶copies/μl的质粒参考品，分装后-20℃冰箱保存，备用(避免反复冻融，以免影响质粒浓度)。

5、芯片的制备

5.1 先将芯片贴膜牢固的贴在片基上，不能有气泡，一张片基被分成10个微阵列反应区域；

5.2 利用ddH₂O将合成的探针稀释成终浓度为100μM的溶液，振荡，混匀，在小型离心机上将挂壁的液体甩到底部，然后按1:1的比例，将5μl探针溶液和5μl芯片点样液加入到384孔板中，混匀，避免气泡的产生；

5.3 同时384孔板中还应加入标识列，即3’标记氨基的20个重复T序列，标识列的终浓度在1μM，不需要太明显，主要用于探针的定位和监测芯片杂交假阴性的出现。标识列与点样液的比例同样是1:1；

5.4 点样前，需将点样针超声10min左右，确保点样针的清洁；

5.5 点样时，点与点的距离≥7mm，然后根据微阵列的大小，探针的多少确定每条探针重复的次数，一般2-3次。另外还需要注意点样室的温度和湿度，温度室温即可，湿度在30％左右比较合适，湿度太大，点样探针不容易聚集，湿度太小，点样点小而不圆。

5.6 点样结束后，同样需要将点样针超声10min左右，保持点样针的清洁，防止点样孔阻塞和交叉污染。然后将芯片置于芯片盒内，连同芯片盒一起放进干燥器，24h后方可使用。

6、多重不对称PCR反应体系和条件的优化

本实验采用美国NEB公司生产的Multiplex PCR 5×Master Mix作为扩增反应试剂，上下游引物比例采用军事医学科学院推荐^[29]的1:5的比例。本实验共有16对引物，分3管多重PCR完成，第一管有4对引物，第二和三管各有6 对引物，根据实验的需求主要对引物的浓度和引物之间的搭配进行了优化，具体反应条件如下，见表1-6。

表1-6 多重不对称PCR反应条件

7、芯片杂交的步骤，见图3。

8、临床标本的收集

收集2013年7月4号到2014年9月10号在解放军总医院呼吸科监护室住院患者的痰标本和支气管灌洗液标本。

9、痰标本液化

痰标本中加入等体积的4％NaOH，室温30min，每隔5min震荡1次，如果液化不完全可延长液化时间。

10、标本和支气管灌洗液标本DNA提取方法

10.1 液化后痰标本或支气管灌洗液标本取适量于EP管中，密封好管口，沸水煮10min；

10.2 50μl液化后痰标本或支气管灌洗液标本+50μl样品处理液于EP管中，密封好管口，沸水煮10min；

10.3 取液化后痰标本或支气管灌洗液标本50μl，12000转离心1min，弃上清，加入50μl样品处理液于EP管中，密封好管口，沸水煮10min；后续操作见图4。

11、芯片灵敏度验证

11.1 芯片探针阵列设计

根据每条探针灵敏度和特异性实验的结果选择特异性好，灵敏度高的探针作为最终的探针，并且选择3条分别来自人类、病毒和真菌基因序列的探针(其序列与所有探针序列不互补)，作为阴性探针，以监测杂交过程中假阳性的出现。此外，还包括一条阳性探针，用于监测杂交过程中假阴性的出现。具体见表1-12。

11.2 芯片灵敏度的验证

芯片灵敏度的验证是以每条探针的灵敏度参考品，即浓度分别为10¹,10², 10³,10⁴,10⁵,10⁶copies/μl的质粒作为模板，进行多重不对称PCR反应，杂交，然后根据芯片的结果确定探针的灵敏度。

12、芯片特异性验证

12.1 临床菌株对芯片特异性的验证

以本实验室经鉴定的临床菌株的DNA作为模板，经过多重不对称PCR反应，芯片杂交，比较芯片结果与临床菌株的鉴定结果。

12.2 临床标本对芯片特异性的验证

以收集临床痰标本和支气管灌洗液标本的DNA作为模板，经过多重不对称PCR，芯片杂交，比较芯片结果与我院微生物科临床标本培养的结果，不符合的结果再经过PCR测序进行鉴定。

结果

1、临床标本收集

本实验自2013年7月4号到2014年9月10号，共收集149例标本，其中包括16例支气管灌洗液标本，133例痰标本。本实验所涉及的临床菌株有28 例肠球菌，21例肺炎克雷伯杆菌，21例铜绿假单胞菌，24例鲍曼不动杆菌，8 例大肠埃希菌，来自军事医院科学院放射与辐射医学研究所和中国人民解放军总医院呼吸科实验室。

2、靶致病菌及其特异基因的选择

根据相关文献和肺炎致病菌流行病调查的结果，最终确定了15种靶致病菌及其特异基因，见表1-7。

表1-7 15种致病菌及其特异基因

3、引物的筛选

3.1 16S rDNA基因的引物

15种致病16S rDNA产物长度为575bp，

正向引物16S rDNA-F的序列：AGAGTTTGATCMTGGCTCAG M＝A/C

反向引物16S rDNA-R的序列：CGTATTACCGCGGCTGCTG

其中M＝A/C表示M可以为A或者为C。

16S rDNA引物筛选琼脂糖凝胶电泳结果如图5所示。

图5中，1鲍曼不动杆菌；2大肠埃希菌；3肺炎链球菌；4金葡菌；5流感嗜血杆菌；6铜绿假单胞菌；7衣原体；8支原体；9军团菌；10肺炎克雷伯杆菌；11粪肠球菌；12屎肠球菌；13嗜麦芽窄食单胞菌；14洋葱伯克霍尔德菌；15阴沟肠杆菌；16阴性对照。

3.2 15种致病菌特异基因的引物

通过前期文献查阅及引物设计，每种特异基因预备了3对引物用于筛选，最终每种特异基因确定了一对条带最亮，电泳结果没有杂带的引物用于后续实验。15种致病菌特异基因引物筛选琼脂糖凝胶电泳结果见图6，具体的引物序列和产物片段大小见表1-8。

其中图6中，1 P6；2 MOMP；3 toxA；4 nuc；5 mip；6 gltA；7ddl-S；8 P1； 9 phoA；10recA；11 lytA；12 chitA；13mdh；14 dnaJ；15ddl-F；16 阴性对照。

表1-8致病菌特异基因引物序列

注：F：正向引物；R：反向引物

4、质粒构建结果

本实验15种致病菌均有16S rDNA及其特异基因的目的片段需要构建，因此，共完成了30种质粒的构建，测序结果正确，见图7。

5、多重PCR条件的优化

本实验有1对通用引物和15对特异基因引物，共16对引物，通过对引物间的组合和引物浓度的优化，确定了三组多重PCR，第一组4对引物，第二组和第三组均有6对引物，具体多重PCR体系见表1-9、表1-10和表1-11。

表1-9 第一组多重不对称PCR体系

表1-10 第二组多重不对称PCR反应体系

表1-11 第三组多重不对称PCR反应体系

6、探针的筛选

每次筛选针对致病菌特异基因的目的片段设计了至少3条探针，不合格的再重新设计和筛选。这些探针中，由于大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌和阴沟肠杆菌都属于肠杆菌科，其16S rDNA的序列的相似度为94.6％，很难同时两两区分开，见图8，因此这三种细菌在16S rDNA的片段上公用了1条探针，具体区分需要依靠特异基因。经过反复的筛选和优化最终确定了以下肺炎致病菌16s rDNA和特异基因探针、阴性探针和16s rDNA阳性探针共32条探针序列，见表1-12。

表1-12 肺炎致病菌鉴定芯片探针序列

7、芯片的探针阵列

待所有探针确定后，我们按照下列阵列图制备芯片，根据芯片的大小和探针的数量，每条探针重复了2个点，见表1-13。

表1-13 致病菌鉴定芯片探针阵列图

注：“标”代表“标志列”

8、芯片灵敏度验证

灵敏度参考品为前期制备的质粒，即按梯度10¹、10²、10³、10⁴、10⁵、 10⁶copies/μl稀释的质粒，以其为模板，采用优化后的多重不对称PCR反应体系，检测致病菌鉴定芯片的灵敏度，所有探针灵敏度可达10³copies/μl，部分探针可达10²copies/μl，见图9。

9、芯片特异度验证

9.1 单一标准菌株对芯片的验证

以13种标准菌株和2种片段的质粒菌作为模板，按照优化好条件进行多重不对称PCR，然后将产物变性，与芯片杂交，结果显示芯片能准确的检测出标准菌，见图10。

9.2 混合标准菌株验证芯片的特异性

将2种或3种标准菌株的混合菌液作为模板，验证芯片的特异性，结果芯片能正确检测出菌种，结果见图11。

10、芯片临床标本验证

10.1 临床菌株的验证

利用经培养鉴定的临床菌株，包括28例肠球菌，21例肺炎克雷伯杆菌， 21例铜绿假单胞菌，24例鲍曼不动杆菌，8例大肠埃希菌对芯片验证，结果显示芯片均能正确的检测出临床菌株，部分结果见图12。

10.2 临床痰标本或支气管灌洗液标本的验证

利用16例支气管灌洗液标本和133例痰标本对芯片进行验证，仅51号标本培养结果为金葡菌，芯片结果为阴性，经PCR验证，琼脂糖凝胶电泳无条带，结果见表1-14。部分检测结果图见图13。

表1-14 149例临床标本芯片结果和培养结果对比

11、芯片重复性实验

芯片的重复性实验包括片内重复性和片间重复性。片内重复性时，以质粒菌10⁴copies/μl为模板，重复3次多重不对称PCR，分别与芯片杂交，同时设立无菌蒸馏水为阴性对照；片间重复性时，同一PCR产物在不同批次芯片上的杂交效果是否一致，结果显示，无论片内还是片间重复，芯片结果均为阳性，说明芯片重复性好。以鲍曼不动杆菌为例，见图14。

用前述的制备好的基因芯片和用于多重不对称PCR反应的引物混合液就可以构成本申请的试剂盒。

工业可利用性

肺炎是门诊和病房一种常见的疾病，从新生儿到老年人群均可发病，其中细菌性肺炎临床表现一般为寒战、高热、咳嗽、咳痰、胸痛等，X线检查为大片模糊阴影、沿肺纹理分布的斑片状阴影或不规则的条索状阴影。肺炎致病菌种类很多，治疗需要针对具体的致病菌进行，但临床表现和X线检查缺乏特异性，很难区分致病菌的种类，而传统的培养分离鉴定方法虽是金标准，却需要时间长，容易错过最佳治疗期。本实验基于基因芯片高通量、快速的特点，利用16S rDNA和特异基因，研制了常见肺炎致病菌的快速检测基因芯片。本实验中涉及的15种致病菌来自肺炎致病菌流行病学调查结果，包括了CAP和 HAP常见的菌种，非常适合临床开展和应用。

16S是RNA上的一个小亚基，由于16S rRNA不稳定，不利于检测，所以我们采用其编码基因16S rDNA作为靶基因。该基因既有高度的保守区域，又有细菌特有的变异区域，片段大小适中，约1500bp，非常适合通用引物和特异探针的设计，因此常用于微生物的检测和鉴定^[30-32]。16S rDNA的特异序列，有些即使在种与种之间差别也很明显，如屎肠球菌和粪肠球菌，但有些却不是很明显，只有几个碱基的差别，如肠杆菌属中的肺炎克雷伯菌、阴沟肠杆菌和大肠埃希菌，很难利用探针同时将其区分，换而言之，16S rDNA只能检测到属，因此，本实验在设计探针时将屎肠球菌和粪肠球菌分别设计了探针，而对于难区分的肠杆菌则使用了1条通用探针，同时增加了每种致病菌的特异基因，这样16S rDNA用于属的检测，而特异基因可以检测具体的种类。

肺炎链球菌特异基因lytA基因编码肺炎链球菌自溶素，是一种内源性酶，也是一种毒力因子，全长约957bp，在不同血清型的肺炎链球菌中均稳定表达，鉴定肺炎链球菌特异性高^[33]。nuc基因编码金葡菌胞外的耐热酶，是金葡菌所特有的基因，具有高保真的特点，是分子生物学常用鉴定金葡菌的方法^[34]。P6 基因和bexA基因均为流感嗜血杆菌的特异基因，其中P6编码流感嗜血杆菌外膜蛋白，bexA基因编码荚膜相关的蛋白，在所有流感嗜血杆菌中均有表达，常被用于鉴定流感嗜血杆菌^[35]。2个基因均进行了引物设计，经过初步引物筛选， bexA基因引物效果不如P6基因，因此本实验选择了P6基因。gltA基因编码鲍曼不动杆菌的柠檬酸合成酶，是鲍曼不动杆菌7个管家基因之一，ompA基因编码外膜蛋白，两种基因均可用于鲍曼不动杆菌的鉴定^[36]，本实验在引物筛选时针对这两种基因均设计了引物，但在初步筛选时ompA的引物效果不如 gltA的引物，因此选用了gltA基因的引物，没再对ompA进行重新设计。phoA 基因是大肠埃希菌碱性磷酸酶的结构基因，可以用于大肠埃希菌的鉴定，而且结果稳定可靠^[36]。mdh基因编码肺炎克雷伯杆菌中苹果酸酶，是肺炎克雷伯杆菌的管家基因之一，Thong等^[36]成功利用该基因检测出肺炎克雷伯杆菌，本实验也选用了mdh基因。toxA基因编码铜绿假单胞菌外毒素A，位于染色体上， oprl基因编码外膜蛋白，其序列具有特异性，2种基因均可用于铜绿假单胞菌的鉴定^[37]，在引物初步筛选时选择了toxA基因。dnaJ基因编码一种分子伴侣，在阴沟肠杆菌中序列特异，可以用于其鉴定^[38]。P1基因编码粘附蛋白，用于肺炎支原体的鉴定^[39]。MOMP基因编码外膜蛋白，用于肺炎衣原体的鉴定^[40]。ddl 基因编码一种连接酶，在屎肠球菌和粪肠球菌中序列差异大，可以用作两种肠杆菌的鉴定^[41]。chitA基因编码几丁质水解酶，用于嗜麦芽窄食单胞菌的鉴定^[42]。 recA基因编码一种重组酶，可用于洋葱伯克霍尔德的鉴定^[43]。mip基因是一种巨噬细胞感染增强子，可用于军团菌的鉴定^[44]。16S rDNA与特异基因共同用于肺炎致病菌的鉴定，并能成功检测到种是本实验基因芯片重要的特点。

不对称PCR反应是指引物浓度的不对称，普通PCR反应中正反向引物的浓度是相等的，而不对称PCR两引物相差悬殊，这样在DNA聚合酶、脱氧单核苷酸、模板DNA等不变的情况下，较少的那条引物消耗后，便会由另外一条引物扩增出大量的单链DNA，所以不对称PCR又被称为单链扩增PCR。基因芯片杂交正是单链与探针的杂交，使用不对称PCR可以产生大量的单链，从而提高芯片的杂交效率^[45]，在肠道致病菌检测^[29]和耐药病毒筛选^[46]等方面均有应用。本实验参考文献报道采用正反向引物比例为1:5，芯片的检测灵敏度达10³copies/μl。

本实验利用标准菌株、临床菌株及临床标本对芯片进行了的验证。在临床标本提取过程中采用了3种方法，其中以第3种方法最佳。该提取方法需要 4％NaOH溶液对标本液化，而NaOH对PCR反应中DNA聚合酶有影响，所以液化后经过离心去掉上清，再通过吸附柱纯化，将NaOH的影响降到了最低。实验中不但使用了单一菌株进行验证，而且还使用了混合标本对芯片进行了验证，无论何种标本类型芯片均能准确检测出致病菌。在临床标本验证时，有1 例标本培养结果为金葡菌，但芯片结果为阴性，后经过PCR证实为阴性，因此考虑可能是标本在送检或培养过程中污染所致。整个实验过程从标本DNA提取到读取芯片结果，约4-6小时，而且一张芯片可同时检测10份标本，大大缩短了检测时间。综上所述，本实验研制的肺炎致病菌快速识别芯片是一种灵敏度高、特异性和重复性好的检测方法，十分适合临床肺炎致病菌种类的鉴定。

本申请中英文缩略语表：

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Claims

1.一种用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒，其中，所述15种肺炎致病菌为肺炎链球菌、金黄色葡萄球菌、流感嗜血杆菌、肺炎支原体、铜绿假单胞菌、鲍曼不动杆菌、粪肠球菌、屎肠球菌、肺炎克雷伯杆菌、大肠埃希菌、阴沟肠杆菌、嗜麦芽窄食单胞菌、洋葱伯克霍尔德菌、嗜肺军团菌、肺炎衣原体；所述试剂盒包括：制备的基因芯片、用于多重不对称PCR反应的引物混合液；

基因芯片上包括用于与待检样品进行杂交的探针；

用于鉴定铜绿假单胞菌的第一探针，其序列为：TTGTGCCTGCTCGACCCGCTGGACGGGGTCTACAACTACCTCGCCCAGTTTTTTTTTTTT；

对应于肺炎链球菌的特异基因lytA的正向引物lytA-F的序列为：CCATCTGGCTCTACTGTGAA，反向引物lytA-R的序列为：GAGAACGGCTTGACGATT；

对应于金黄色葡萄球菌的特异基因nuc的正向引物nuc-F的序列为：AGCGATTGATGGTGATAC，反向引物nuc-R的序列为：AAGCCTTGACGAACTAAAG；

对应于流感嗜血杆菌的特异基因P6的正向引物P6-F的序列为：TCTAACAACGATGCTGCAGG，反向引物P6-R的序列为：CCAGCATCAACACCTTTACC；

对应于肺炎支原体的特异基因P1的正向引物P1-F的序列为：TGGTCCTACACCGACTTACA，反向引物P1-R的序列为：TTCCCAAAATAGGTTTCCAC；

对应于铜绿假单胞菌的特异基因toxA的正向引物toxA-F的序列为：TCATCCACGAACTGAACG，反向引物toxA-R的序列为：ATCTTGCCTTCCCAGGTAT；

对应于鲍曼不动杆菌的特异基因gltA的正向引物gltA-F的序列为：CTCTGCTGGTATCTCTGCTCT，反向引物gltA-R的序列为：TGCTTCAAGAACTTCGTCAC；

对应于粪肠球菌的特异基因ddl的正向引物ddlF-F的序列为：GAACGACCACAAAATAAAG，反向引物ddlF-R的序列为：GCCAACAGTTTGTAAAAGAT；

对应于屎肠球菌的特异基因ddl的正向引物ddlS-F的序列为：GCTAAAGCCACGCCTTCTA，反向引物ddlS-R的序列为：GGTGACGGATGGAAATGTT；

对应于肺炎克雷伯杆菌的特异基因mdh的正向引物mdh-F的序列为：GCGTGGCGGTAGATCTAAGTCATA，反向引物mdh-R的序列为：TTCAGCTCCGCCACAAAGGTA；

对应于大肠埃希菌的特异基因phoA的正向引物phoA-F的序列为：CCAACGATTCTGGAAATGG，反向引物phoA-R的序列为：CAATGGCTTTGTCGGTCAT；

对应于阴沟肠杆菌的特异基因dnaJ的正向引物dnaJ-F的序列为：GTCACCAAAGAGATCCGTA，反向引物dnaJ-R的序列为：CGCATGCGGAACAGCTT；

对应于嗜麦芽窄食单胞菌的特异基因chitA的正向引物chitA-F的序列为：TCAAGCAGCTCAAGGCCAA，反向引物chitA-F的序列为：TGGAAGTCGTAGGTCATC；

对应于洋葱伯克霍尔德菌的特异基因recA的正向引物recA-F的序列为：ATATCCAGGTCGTCTCCA，反向引物recA-R的序列为：AGTTCGTGCGCTTGATCGT；

对应于嗜肺军团菌的特异基因mip的正向引物mip-F的序列为：CTACAGACAAGGATAAGT，反向引物mip-R的序列为CTTGCATGCCTTTAGCCA；

对应于肺炎衣原体的特异基因MOMP的正向引物MOMP-F的序列为：GATCCGCTGCTGCAAACTATACT，反向引物MOMP-R的序列为：GTGAACCACTCTGCATCGTGTAA；

所述16对引物分为3管多重不对称PCR反应体系，其中：

第一管多重不对称PCR反应体系包括：Multiplex PCR Master MIX、gltA-F、gltA-R、nuc-F、nuc-R、ddlF-F、ddlF-R、P1-F、P1-R、ddH₂O；

第二管多重不对称PCR反应体系包括：Multiplex PCR Master MIX、dnaJ-F、dnaJ-R、recA-F、recA-R、mdh-F、mdh-R、phoA-F、phoA-R、toxA-F、toxA-R、chitA-F、chitA-R、ddH₂O；

第三管多重不对称PCR反应体系包括：Multiplex PCR Master MIX、16S rDNA-F、16SrDNA-R、P6-F、P6-R、mip-F、mip-R、lytA-F、lytA-R、ddlS-F、dd1S-R、MOMP-F、MOMP-R、ddH₂O。

2.如权利要求1所述的用于15种肺炎致病菌快速识别的试剂盒，其特征在于：所述基因芯片上进一步包括阳性探针和阴性探针；其中所述阳性探针为：ACTCCTACGGGAGGCAGCAGTTTTTTTTTTTT，用于监测杂交过程中假阴性的出现；所述阴性探针为TCAGAGCCTGTGTTTCTACCAATTTTTTTTTTTT、CATCAATAGGGTCCGATATTTTTTTTTTTT、CGAACGCAAATCAATCTTTTTCCAGGTTTTTTTTTTTTT中的至少一个，用于监测杂交过程中假阳性的出现。

3.如权利要求1或2所述的用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒，其特征在于还包括：样品处理液，样品处理液包括：25mmol/L NaOH，0.1nmol/L EDTA，10mmol/L Tris-HCl，1％NP-40，2％Chelex-100,1％Triton X-100。

4.如权利要求3所述的用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒，其特征在于还包括：杂交液，杂交液包括：0.6％SDS,8×SSC，10×Denhardt溶液，10％甲酰胺。

5.如权利要求4所述的用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒，其特征在于还包括：预洗液，预洗液为0.2％SDS。

6.如权利要求5所述的用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒，其特征在于还包括：洗液A、洗液B和洗液C；洗液A包括：1×SSC、0.2％SDS；洗液B包括0.2％SDS；洗液C包括0.1％SSC。

7.如权利要求6所述的用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒，其特征在于还包括：PBST溶液。

8.如权利要求7所述的用于15种肺炎致病菌快速检测的试剂盒，其特征在于还包括：标记液，标记液包括辣根过氧化物酶标记链霉亲和素。