CN105475137B - 一种兼顾荷花增殖与生根的组培方法 - Google Patents

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Abstract

一种兼顾荷花增殖与生根的组培方法,属于植物组织培养技术领域。其包括以下步骤:取完全成熟种子,取成熟胚为外植体,经清洗和消毒后取出胚,并接种到已经灭好菌的pH值为5.7的MS固体培养基上,在温度为25±2℃,光周期16/8h,光强2400lux的培养室中培养;初代培养4周后,选生长状况良好未褐化的无菌苗转入增殖培养基中进行培养,增殖培养基以MS培养基为基础培养基,添加浓度为0.3~3mg/L的6‑BA,浓度为0.3~1mg/L的NAA,浓度为30g/L的蔗糖和0.3%的琼脂,pH值5.7。本发明在增殖培养过程中能做到快速获得芽增殖的同时诱导生根获得大量荷花组培苗,缩短了扩繁时间,降低成本。

Description

一种兼顾荷花增殖与生根的组培方法
技术领域
本发明属于植物组织培养技术领域,具体涉及一种兼顾荷花增殖与生根的组培方法。
背景技术
荷花(Nelumbo nucifera)属睡莲科莲属多年水生草本花卉,又名莲花、水芙蓉等,其花大色艳,观赏价值极高,分布广泛,为人们所喜爱,是我国十大名花之一,在环境美化、药用、食用、以及外贸出口等方面都有很大的应用和开发潜力。目前,我国荷花仍采用分藕繁殖和大面积池栽或缸栽的传统繁殖方法。然而,用传统方法繁育,荷花的分藕繁殖系数较低(1:10),用种量大,生产成本高,而且长期用种藕进行无性繁殖,会造成种性的退化和病毒的积累,加上一些珍稀品种生长势弱,种质资源保存困难,这些问题都在一定程度上阻碍了荷花种植业的发展。采用荷花组织培养技术在无菌的条件下以荷花成熟胚、未成熟胚、地下茎的茎尖为外植体建立无菌体系,再对它进行增殖生根培养,进而得到大量荷花无菌苗,对无菌苗进行驯化移栽能很好的解决在分藕繁殖中存在的成本高、种性退化和病毒积累等问题。为了寻找方便、快捷和低成本的快速增殖方法,前人已经做了较多研究,但目前,荷花组织培养所用的培养基大多数是单一的增殖培养基或生根培养基,都是进行先增殖后生根,这种增殖方式所花费的时间较长,成本较高,不能很好的达到快速繁殖的目的。
发明内容
针对现有技术存在的问题,本发明的目的在于设计提供一种兼顾荷花增殖与生根的组培方法的技术方案。
所述的一种兼顾荷花增殖与生根的组培方法,其特征在于包括以下步骤:
1)成熟胚莲子芽的诱导培养
取完全成熟种子,取成熟胚为外植体,经清洗和消毒后取出胚,并接种到已经灭好菌的pH值为5.7的MS固体培养基上,在温度为25±2℃,光周期16/8h,光强2400lux的培养室中培养;
2)增殖培养
初代培养4周后,选生长状况良好未褐化的无菌苗转入增殖培养基中,增殖培养基以MS培养基为基础培养基,添加浓度为0.3~3mg/L的6-BA,浓度为0.3~1mg/L的NAA,浓度为30g/L的蔗糖和0.3%的琼脂,pH值5.7,在温度25±2℃,光周期16/8h,光强2400lux的培养室中培养。
所述的一种兼顾荷花增殖与生根的组培方法,其特征在于所述的步骤1)中清洗和消毒具体为:用自来水冲洗干净后用浓硫酸酸蚀4h,流水冲洗0.5h后剥去外壳,浸泡15~18.5h,将浸泡过的莲子用1%的次氯酸钠溶液消毒10min,对消毒完的莲子用无菌水冲洗5遍。
所述的一种兼顾荷花增殖与生根的组培方法,其特征在于所述的步骤2)中增殖培养基为MS培养基+0.3 mg/L 6-BA+0.3mg/L NAA。
采用本发明的有益效果是:本发明通过初代培养、增殖、生根,实现了荷花的高效再生。本发明通过特殊增殖培养基的使用,在增殖培养过程中能做到快速获得芽增殖的同时诱导生根获得大量荷花组培苗,缩短了扩繁时间,降低成本。这些组培苗可用于荷花的栽培繁殖,成本低,具有很高的经济价值。现有技术中荷花组培苗增殖的研究中都是先增殖后生根,而本发明一步完成增殖与生根,节省了培养基更换的步骤,实施步骤更简单易行,实施条件更宽松,节约了时间和成本,且效果非常显著。
具体实施方式
为了使本发明更加容易理解,下面结合具体实施案例,进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。
实施例1:一种兼顾荷花增殖与生根的组培方法
1)成熟胚莲子芽的诱导培养
取完全成熟种子,取成熟胚为外植体,用自来水冲洗干净后用浓硫酸酸蚀4h,流水冲洗0.5h后剥去外壳,浸泡15~18.5h,将浸泡过的莲子用1%的次氯酸钠溶液消毒10min,对消毒完的莲子用无菌水冲洗5遍从中取出胚,并接种到已经灭好菌的pH值为5.7的MS(Murashige and Skoog)固体培养基上,在温度为25±2℃,光周期16/8h,光强2400lux的培养室中培养;
2)增殖培养
初代培养4周后,选生长状况良好未褐化的无菌苗转入增殖培养基中,增殖培养基以MS培养基为基础培养基,添加浓度为0.3~3mg/L的6-BA即6-苄基腺嘌呤,浓度为0.3~1mg/L的NAA即萘乙酸,浓度为30g/L的蔗糖和0.3%的琼脂(gelrite),pH值5.7,在温度25±2℃,光周期16/8h,光强2400lux的培养室中培养。
试验例1
在MS基础培养基中加入不同浓度的BA、NAA配成6种不同培养基。通过实施例1的方法进行培养,增殖培养4周后统计芽增殖系数、根数、生根率和平均根长,统计结果如表1所示。由表1可知,芽增殖系数最高的培养基为培养基4(MS+3mg/LBA+0.3mg/LNAA),增殖系数为3.15,与其他培养基差异显著;从生根情况来看,培养基1(MS+3mg/LBA+0.3mg/LNAA)生根率最高为95%;根数最多的培养基为培养基2(MS+0.3mg/LBA+1mg/LNAA)为5.15条,与培养基1(MS+3mg/LBA+0.3mg/LNAA)差异不显著,与其他培养基差异显著;平均根长最长的培养基为培养基1(MS+0.3mg/LBA+0.3mg/LNAA)为0.395cm,与培养基2(MS+0.3mg/LBA+1mg/LNAA)差异不显著但与其他培养基差异显著。
如果只考虑芽增殖,培养基4:MS+3mg/LBA+0.3mg/LNAA为最适培养基,如果只考虑生根,培养基1、2都适合荷花组培苗的根的诱导。综合考虑芽快速增殖与生根,我们可以得出,培养基1:MS+0.3mg/LBA+0.3mg/LNAA最为适合。
表1 不同激素水平的培养基对根、芽产生的影响
注:表中芽增殖系数表示芽数平均值±标准误;多重比较采用Duncan法,同一栏中不同字母表示存在显著性差异(P<0.05)。

Claims (1)

1.一种兼顾荷花增殖与生根的组培方法,其特征在于包括以下步骤:
1)成熟胚莲子芽的诱导培养
取完全成熟种子,取成熟胚为外植体,用自来水冲洗干净后用浓硫酸酸蚀4h,流水冲洗0.5h后剥去外壳,浸泡15~18.5h,将浸泡过的莲子用1%的次氯酸钠溶液消毒10min,对消毒完的莲子用无菌水冲洗5遍,经清洗和消毒后取出胚,并接种到已经灭好菌的pH值为5.7的MS固体培养基上,在温度为25±2℃,光周期16/8h,光强2400lux的培养室中培养;
2)增殖培养
初代培养4周后,选生长状况良好未褐化的无菌苗转入增殖培养基中,增殖培养基以MS培养基为基础培养基,添加浓度为0.3mg/L的6-BA,浓度为0.3mg/L的NAA,浓度为30g/L的蔗糖和0.3%的琼脂,pH值5.7,在温度25±2℃,光周期16/8h,光强2400lux的培养室中培养。
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