CN105420226A - 一种基于磁珠法的动物组织dna提取试剂盒及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种基于磁珠法的动物组织DNA提取试剂盒及其应用,该试剂盒包括裂解液、结合液、洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ、洗涤液Ⅲ和核酸洗脱液,所述裂解液中含有SDS,三种洗涤液中均含有异丙醇;本发明将磁珠法与传统的动物DNA提取中的裂解液相结合,利用蛋白酶K和SDS消化破碎细胞,再利用磁珠法的原理对裂解出的核酸进行纯化,该试剂盒适用于实验室各种规模的动物组织核酸提取,也适用于商业批量生产,具有操作简单快速、使用安全、提取效率高、制造成本低等特点;使用该试剂盒的提取过程既可手工完成,也可在全自动核酸提取仪中自动完成,自动提取时使用96孔反应板可一次性处理1-16个动物组织样本,提取过程中无需其它操作。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,涉及一种基于磁珠法的动物组织DNA提取试剂盒,可应用于多个物种动物组织DNA提取,也可应用于同个物种不同组织的DNA提取。本发明还涉及应用该试剂盒从动物组织样本中提取DNA的方法。
背景技术
真核生物基因组DNA广泛应用在动植物的遗传育种、基因图谱的构建、品种鉴定、物种形成和系统演化等方面的研究中。无论是基因工程还是蛋白质工程,核酸分子都是这些技术应用所涉及的主要对象,所以DNA的分离与提取是分子生物学研究中重要的基本技术。
目前对于动物全基因组DNA的提取已有很多的研究和报道,但是选取何种方法能够更有效地提取更高质量的基因组DNA,还是一个值得解决的问题。动物DNA的提取通常采用经典提取方法,即酚抽提法、异丙醇沉淀法以及甲酰胺裂解法,后来许多方法的改进都是在这三种方法的基础上进行的。这三种方法均利用蛋白酶K和十二烷基硫酸钠(SDS)消化破碎细胞。采用上述经典方法获得的DNA纯度很高,能够满足各种实验的要求,但操作繁琐且用时长,还需要用到多种仪器设备。
相比传统的DNA提取方法,以磁珠为载体的新型分离技术,无需大量检材,也无需接触酚/氯仿等有毒试剂,且操作简单方便,很容易实现自动化操作,基于磁珠法的核酸提取具备传统DNA提取无法比拟的优势,是未来核酸提取发展的重要方向。鉴于DNA提取的技术现状与发展前景,需要研发多种基于磁珠法的新型DNA提取试剂盒。
发明内容
本发明的目的在于克服现有DNA提取技术的不足,提供了一种基于磁珠法的动物组织DNA提取试剂盒及其应用,该技术方案将磁珠法与传统的动物DNA提取中的裂解液相结合,具有操作简单快速、使用安全、提取效率高、实现成本低的特点。为了实现上述技术目的,本发明试剂盒的技术方案为:
一种动物组织DNA提取的试剂盒,试剂包括裂解液、结合液、洗涤液和核酸洗脱液,所述洗涤液包括洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ和洗涤液Ⅲ;所述裂解液含有十二烷基硫酸钠、乙二胺四乙酸、三羟甲基氨基甲烷、氯化钠和曲拉通X-100;所述结合液含有异丙醇;所述洗涤液Ⅰ含有盐酸胍、乙二胺四乙酸、三羟甲基氨基甲烷、氯化钠和异丙醇;所述洗涤液Ⅱ含有乙酸钠和异丙醇;所述洗涤液Ⅲ含有异丙醇;所述核酸洗脱液含有三羟甲基氨基甲烷。
优选地,在所述裂解液中,十二烷基硫酸钠的浓度为0.5%-3%(m/v),乙二胺四乙酸的浓度为10-40mmol/L,三羟甲基氨基甲烷的浓度为10-40mmol/L,氯化钠的浓度为1-5mol/L,曲拉通X-100的浓度为0.5%-3%(v/v),余量皆为去离子水;使用氢氧化钠和盐酸调节所述裂解液的pH值为7.0-9.0。更为优选地,所述十二烷基硫酸钠的浓度为2%(m/v),所述乙二胺四乙酸的浓度为20mmol/L、所述三羟甲基氨基甲烷的浓度为20mmol/L,所述氯化钠的浓度为1.4mol/L,所述曲拉通X-100的浓度为1%(v/v),裂解液的pH值调节为8.0。
优选地,在所述结合液中,所述异丙醇为分析纯,浓度大于99.9%。
优选地,在所述洗涤液Ⅰ中,盐酸胍的浓度为2-10mol/L,乙二胺四乙酸的浓度为10-40mmol/L,三羟甲基氨基甲烷的浓度为10-40mmol/L,氯化钠的浓度为1-5mol/L,异丙醇的浓度为50%-70%(v/v),余量皆为去离子水;使用氢氧化钠和盐酸调节所述所述洗涤液Ⅰ的pH值为7.0-9.0。更为优选地,所述盐酸胍的浓度为5mol/L,所述乙二胺四乙酸的浓度为20mmol/L,所述三羟甲基氨基甲烷的浓度为20mmol/L,所述氯化钠的浓度为1.4mol/L,所述异丙醇的浓度为50%(v/v),洗涤液Ⅰ的pH值调节为8.0。
优选地,在所述洗涤液Ⅱ中,乙酸钠的浓度为1-5mol/L,异丙醇的浓度为50%-80%(v/v)。更为优选地,所述乙酸钠的浓度为5mol/L,所述异丙醇的浓度为80%(v/v)。
优选地,在所述洗涤液Ⅲ中,异丙醇的浓度为50%-100%(v/v)。更为优选地,所述异丙醇的浓度为80%(v/v)。
优选地,在所述核酸洗脱液中,三羟甲基氨基甲烷的浓度为1-4mmol/L;使用氢氧化钠和盐酸调节所述核酸洗脱液的pH值为7.0-9.0。更为优选地,所述三羟甲基氨基甲烷的浓度为2mmol/L,所述核酸洗脱液的pH值调节为8.0。
本发明还提供两种上述试剂盒的应用方法,方法一的技术方案为,包括如下步骤:
①在EP管中加入动物组织、裂解液和蛋白酶K并匀浆,于56℃水浴孵育30分钟后离心;
②离心后的上清液转移至新的EP管中,加入磁珠和结合液,结合时间10分钟;
③使用磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去EP管内所有液体;
④在EP管中加入洗涤液Ⅰ,混匀后,使用磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去管内所有液体;
⑤在EP管中加入洗涤液Ⅱ,混匀后,使用磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去管内所有液体;
⑥在EP管中加入洗涤液Ⅲ,混匀后,磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去管内所有液体。
⑦在EP管中加入核酸洗脱液,于56℃水浴下洗脱5分钟,使用磁铁将磁珠吸附至管壁,将洗脱液转移至新的EP管内,在-20℃保存备用;
其中:步骤①中加入的裂解液与动物组织的体积质量比为30μL:1mg-6μL:1mg;步骤②中加入的磁珠与结合液的体积比为1:10-1:20;步骤④、⑤、⑥中加入的洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ、洗涤液Ⅲ分别与裂解液的体积比为1:1-3:1;步骤⑦中加入的核酸洗脱液与裂解液的体积比为1:1-1:5。作为更佳的组成,裂解液与动物组织的体积质量比为6μL:1mg,磁珠与结合液的体积比为1:15优选的,三种洗涤液与裂解液的体积比分别为2:1,核酸洗脱液与裂解液的体积比为1:3。
优选地,所述EP管容量为2mL,加入的试剂为:10μL浓度20mg/mL的蛋白酶K,动物组织50mg,裂解液300μL,磁珠20μL,结合液300μL,洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ和洗涤液Ⅲ各600μL,核酸洗脱液100μL。
方法二的技术方案为,包括如下步骤:
①96孔反应板1排加入结合液;
②所述96孔反应板2排加入磁珠和去离子水;
③所述96孔反应板3排加入洗涤液Ⅰ;
④所述96孔反应板4排加入洗涤液Ⅱ;
⑤所述96孔反应板5排加入洗涤液Ⅲ;
⑥所述96孔反应板6排加入核酸洗脱液;
⑦在EP管中加入动物组织、裂解液和蛋白酶K,匀浆后直接离心,将上清液转移至所述96孔反应板1排,所述96孔反应板放入核酸提取仪后开始运行,结束后将所述96孔反应板6排中的核酸洗脱液转移至新的EP管内,在-20℃保存备用;
其中:所述96孔反应板单孔内的液体总体积小于1.0mL,所述EP管容量为2mL;步骤①中加入的结合液为50-200μL;步骤②中加入的磁珠为20-100μL,且用300-600μL去离子水与其混匀;步骤③、④、⑤中加入的洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ和洗涤液Ⅲ分别为500μL-700μL;步骤⑥中加入的核酸洗脱液为50-300μL;步骤⑦中加入的裂解液为200μL-300μL,动物组织为10-50mg。作为更佳的组成,结合液与裂解液的体积比为2:3,三种洗涤液与裂解液的体积比分别为2:1,核酸洗脱液与裂解液的体积比为1:3,裂解液的与动物组织的体积质量比为6μL:1mg。
优选地,所述96孔反应板的7排至12排依次对应1排至6排,在所述7排至12排中进行与1排至6排相同的操作步骤。因96孔反应板为8×12孔,当所述96孔反应板仅使用1排至6排时,最多可一次性处理8个动物组织样本,而同时使用7排至12排时,使用核酸提取仪最多可一次性处理16个动物组织样本。
优选地,所述96孔反应板中加入的试剂为:10μL浓度20mg/mL的蛋白酶K,动物组织50mg,裂解液300μL,磁珠20μL和去离子水600μL,结合液200μL,洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ和洗涤液Ⅲ各600μL,核酸洗脱液100μL。
本发明技术方案将磁珠法与传统的动物DNA提取中的裂解液相结合,利用蛋白酶K和SDS消化破碎细胞,再利用磁珠法的原理对裂解出的核酸进行纯化。本发明试剂盒可应用于多个物种动物组织DNA提取,包括人类、啮齿类、鸟类等多种生物,也可应用于同个物种不同组织的DNA提取,如心脏、肝脏、脾脏、肌肉、大脑等;提取过程既可以手工完成,也可以应用于全自动核酸提取仪自动完成;使用本发明试剂盒提取出的动物组织DNA可应用于PCR扩增、基因突变筛查、基因分型、基因测序等科研或法医鉴定或临床诊断的分析。
与传统的动物DNA的提取技术相比,本发明技术方案的有益效果为:
1.结合液异丙醇使得磁珠在高盐的作用下发挥更大的核酸结合能力,尽可能多的吸附组织细胞释放出的核酸,从而获取高浓度的核酸溶液;
2.使用三种洗涤液可以洗去动物组织样本中绝大部分的蛋白、酚类、多糖等杂质,最大限度的减少杂质的污染,从而获得高纯度的核酸溶液;
3.使用本发明的技术方案提取动物组织DNA,可有效的减少提取过程中核酸的损失,大大增加提取效率,且提取过程中不使用有毒试剂和有机溶剂,可大幅降低对实验人员的身体伤害;
4.本发明试剂盒应用于核酸提取仪,可一步完成动物组织DNA的提取,并可同时进行1-16个动物组织样本的DNA提取,实现核酸提取的自动化;
5.使用本发明试剂盒的提取过程简单、快速,所用试剂均为常规试剂,成本低,适用于实验室中各种规模的动物组织核酸提取,也适用于商业公司的试剂盒生产。
附图说明
图1为本发明实施例2中使用方法一提取的小鼠肝脏组织DNA的琼脂糖凝胶电泳条带;
图2为本发明实施例3中使用方法二提取过程中使用的96孔反应板立体图;
图3为图2所示96孔反应板在方法二提取过程中各排注入试剂的示意图;
图4为本发明实施例3中使用方法二提取的大鼠肝脏组织DNA的琼脂糖凝胶电泳条带。
具体实施方式
以下结合附图通过实施例对本发明做进一步说明,以便更好地理解本发明。
实施例1:动物组织DNA提取试剂盒的试剂配制
(1)裂解液的配制:先在容量瓶中加入少量去离子水,加入浓度为2%(m/v)的十二烷基硫酸钠、加入浓度为20mmol/L的乙二胺四乙酸、加入浓度为20mmol/L的三羟甲基氨基甲烷、加入浓度为1.4mol/L的氯化钠、加入浓度为1%(v/v)的曲拉通X-100,加入去离子水至所需体积,使用氢氧化钠和盐酸调节pH值,使所述裂解液的pH值为8.0,高压蒸汽灭菌10分钟;
(2)结合液的配制:采用无水异丙醇;
(3)洗涤液Ⅰ的配制:加入浓度为10mol/L的盐酸胍、加入浓度为40mmol/L的乙二胺四乙酸、加入浓度为40mmol/L的三羟甲基氨基甲烷、加入浓度为2.8mol/L的氯化钠,以异丙醇体积比1:1进行稀释,使用氢氧化钠和盐酸调节pH值,使所述洗涤液Ⅰ的pH值为8.0,高压蒸汽灭菌10分钟;
(4)洗涤液Ⅱ的配制:配制80%异丙醇,以该溶液配制浓度为5mol/L的乙酸钠;
(5)洗涤液Ⅲ的配制:采用80%异丙醇;
(6)核酸洗脱液的配制:加入浓度为2mmol/L的三羟甲基氨基甲烷,使用氢氧化钠和盐酸调节pH至8.0,高压蒸汽灭菌10分钟;
除上述所配制试剂外,应用本试剂盒还需要蛋白酶K、纳米磁珠及无水异丙醇,试剂盒中配备蛋白酶K及磁珠,试剂盒蛋白酶K保存于-20℃,其余保存于室温,有效期为1年。
实施例2:使用方法一应用实施例1中的试剂盒提取小鼠肝脏DNA
取同一只小鼠的肝脏样本8份,每份50mg。应用的具体操作为:
(1)取2mLEP管8只,各管中加入小鼠肝脏,裂解液300μL,20mg/mL蛋白酶K10μL,匀浆后56℃水浴孵育30分钟后离心;
(2)取8只新的2mLEP管,离心后的上清液转移至该管,加入磁珠20μL,结合液300μL,结合时间10分钟;
(3)用磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去管内液体;
(4)加入洗涤液Ⅰ600μL混匀,用磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去管内液体;
(5)加入洗涤液Ⅱ600μL混匀,用磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去管内液体;
(6)加入洗涤液Ⅲ600μL混匀,用磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去管内液体;
(7)加入核酸洗脱液100μL,并于56℃的水浴锅中洗脱5分钟,磁铁将磁珠吸附至管壁,将洗脱液转移至新的EP管内,-20℃保存备用。
提取完成后进行琼脂糖凝胶电泳检测,步骤如下:
(1)准确称量琼脂糖干粉0.4g,加至三角烧瓶内,定量加入电泳缓冲液40mL;在短时间内,用微波炉加热琼脂糖全部熔化,使溶液冷却至60℃,加入一滴荧光染料溴化乙锭,轻轻旋转以充分混匀凝胶溶液,倒入电泳槽中,待其凝固;
(2)室温下30-45分钟后凝胶完全后,小心拔出梳子,将5μLMarker加入加样孔内,取洗脱液样品5μL,加入6x样品缓冲液1μL,混匀后,用枪将样品混合液缓慢加入被浸没的凝胶加样孔内;
(3)接通电源,90V电压,电泳40~60min即可,根据指示剂电泳带的位置,判断是否终止电泳,电泳完毕,关上电源。打开凝胶成像系统及电脑上的系统软件,在凝胶成像仪上观察电泳带及其位置,拍照并存储,并与核酸分子量标准Marker比较核酸的大小。
图1显示的是琼脂糖凝胶电泳检测方法一提取的小鼠肝脏DNA的电泳图。
实施例3:使用方法二应用实施例1中的试剂盒提取大鼠肝脏DNA
取同一只大鼠的肝脏样本8份,每份50mg。应用的具体操作为:
(1)96孔反应板1排加入结合液200μL;
(2)96孔反应板2排加入磁珠20μL和去离子水600μL;
(3)96孔反应板3排加入洗涤液Ⅰ600μL;
(4)96孔反应板4排加入洗涤液Ⅱ600μL;
(5)96孔反应板5排加入洗涤液Ⅲ600μL;
(6)96孔反应板6排加入核酸洗脱液100μL;
(7)取2mLEP管8只,管中加大鼠肝脏50mg、裂解液300μL和20mg/mL蛋白酶K10μL,匀浆后直接离心。上清液转移至96孔反应板1排,运行核酸提取仪,结束后将96孔反应板6排中的核酸洗脱液转移至新的EP管内,-20℃保存备用。
如图2为使用的96孔反应板的立体图,一个96孔反应板最多可一次性处理16个动物组织样本,另外8份样本在96孔反应板的7排至12排按照上述1排至6排的操作方法进行提取,图3为1排至12排均加入试剂后的96孔反应板侧视示意图。
提取完成后进行琼脂糖凝胶电泳检测,操作步骤同实施例2,图4为琼脂糖凝胶电泳检测方法二提取的大鼠肝脏DNA得到的电泳图。
以下对前述实施例2和实施例3中分别提取到的小鼠、大鼠肝脏DNA核酸进行定量及纯度检测。
取实施例2和实施例3中提取的动物组织DNA洗脱液各2μL作为样本,以实施例1中的洗脱液为空白,使用One-DropOD-1000仪测定样本A230、A260及A280的值,及波长为230nm、260nm及280nm的吸光光度值,利用比值A260/A280及A260/230评估所提取的核酸的纯度,利用A260×50ng/μL计算核酸的浓度,结果如下:
表一:使用方法一提取得到的小鼠肝脏核酸纯度和浓度
ID | Type | 260nm | 280nm | 230nm | 260/280 | 260/230 | C:ng/μL |
1 | DNA-50 | 2.201 | 1.201 | 1.104 | 1.83 | 1.99 | 110.053 |
2 | DNA-50 | 4.263 | 2.298 | 2.198 | 1.86 | 1.94 | 213.198 |
3 | DNA-50 | 4.724 | 2.563 | 2.512 | 1.84 | 1.88 | 236.239 |
4 | DNA-50 | 3.545 | 1.926 | 1.79 | 1.84 | 1.98 | 177.258 |
5 | DNA-50 | 5.199 | 2.8 | 2.751 | 1.86 | 1.89 | 259.954 |
6 | DNA-50 | 5.114 | 2.764 | 2.648 | 1.85 | 1.93 | 255.703 |
7 | DNA-50 | 5.221 | 2.802 | 2.631 | 1.86 | 1.98 | 261.089 |
8 | DNA-50 | 5.012 | 2.715 | 2.598 | 1.85 | 1.93 | 250.626 |
表二:使用方法二提取得到的大鼠肝脏核酸纯度和浓度
ID | Type | 260nm | 280nm | 230nm | 260/280 | 260/230 | C:ng/μL |
1 | DNA-50 | 6.623 | 3.549 | 3.487 | 1.87 | 1.9 | 331.164 |
2 | DNA-50 | 7.344 | 3.969 | 4.153 | 1.85 | 1.77 | 367.223 |
3 | DNA-50 | 7.562 | 4.076 | 4.289 | 1.86 | 1.76 | 378.102 |
4 | DNA-50 | 7.294 | 3.936 | 3.954 | 1.85 | 1.84 | 364.725 |
5 | DNA-50 | 7.523 | 4.082 | 4.462 | 1.84 | 1.69 | 376.182 |
6 | DNA-50 | 7.362 | 4 | 4.157 | 1.84 | 1.77 | 368.136 |
7 | DNA-50 | 7.525 | 4.073 | 4.33 | 1.85 | 1.74 | 376.299 |
8 | DNA-50 | 6.957 | 3.759 | 3.701 | 1.85 | 1.88 | 347.861 |
表一和表二的结果显示,采用发明中的试剂盒提取动物组织DNA的浓度和纯度均较高,其中:使用方法一提取的动物组织DNA,其A260/A280的值约为1.85,说明几乎没有蛋白和酚类物质的污染;其260/230的值大于1.94,说明没有盐类、多糖及有机溶剂的污染,50mg动物组织提取的核酸的浓度约为220.5ng/μL。使用方法二提取的动物组织DNA,其A260/A280的值为1.85,说明没有蛋白和酚类物质的污染;其A260/230的值约为1.79,说明没有盐类、多糖及有机溶剂的污染,50mg动物组织提取的核酸的浓度约为363.7ng/μL。上述结果说明本发明提供的试剂盒能有效的提取动物组织中的DNA,满足科研、法医鉴定及临床检测样本的需求。
应理解,上述实施例只为说明本发明的技术构思及特点,其目的在于供本领域技术人员了解本发明的内容并据以实施,并非具体实施方式的穷举,并不能以此限制本发明的保护范围。凡根据本发明的技术方案进行修改或者等同替换,而不脱离本发明技术方案的宗旨和范围,其均应涵盖在本发明的权利要求范围当中。
Claims (10)
1.一种基于磁珠法的动物组织DNA提取试剂盒,所述试剂盒中的试剂包括裂解液、结合液、洗涤液和核酸洗脱液,其特征在于:
所述裂解液含有十二烷基硫酸钠、乙二胺四乙酸、三羟甲基氨基甲烷、氯化钠和曲拉通X-100;
所述结合液含有异丙醇;
所述洗涤液包括洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ和洗涤液Ⅲ,其中:所述洗涤液Ⅰ含有盐酸胍、乙二胺四乙酸、三羟甲基氨基甲烷、氯化钠和异丙醇;所述洗涤液Ⅱ含有乙酸钠和异丙醇;所述洗涤液Ⅲ含有异丙醇;
所述核酸洗脱液含有三羟甲基氨基甲烷。
2.根据权利要求1所述的基于磁珠法的动物组织DNA提取试剂盒,其特征在于:在所述裂解液中,十二烷基硫酸钠的质量体积比浓度为0.5%-3%,乙二胺四乙酸的浓度为10-40mmol/L,三羟甲基氨基甲烷的浓度为10-40mmol/L,氯化钠的浓度为1-5mol/L,曲拉通X-100的体积比浓度为0.5%-3%,余量皆为去离子水;使用氢氧化钠和盐酸调节所述裂解液的pH值为7.0-9.0;
在所述结合液中,异丙醇浓度大于99.9%。
3.根据权利要求1所述的基于磁珠法的动物组织DNA提取试剂盒,其特征在于:在所述洗涤液Ⅰ中,盐酸胍的浓度为2-10mol/L,乙二胺四乙酸的浓度为10-40mmol/L,三羟甲基氨基甲烷的浓度为10-40mmol/L,氯化钠的浓度为1-5mol/L,异丙醇的体积比浓度为50%-70%,余量皆为去离子水;使用氢氧化钠和盐酸调节所述洗涤液Ⅰ的pH值为7.0-9.0。
4.根据权利要求1所述的基于磁珠法的动物组织DNA提取试剂盒,其特征在于:在所述洗涤液Ⅱ中,乙酸钠的浓度为1-5mol/L,异丙醇的体积比浓度为50%-80%;在所述洗涤液Ⅲ中,异丙醇的体积比浓度为50%-100%。
5.根据权利要求1所述的基于磁珠法的动物组织DNA提取试剂盒,其特征在于:在所述核酸洗脱液中,三羟甲基氨基甲烷的浓度为1-4mmol/L;使用氢氧化钠和盐酸调节所述核酸洗脱液的pH值为7.0-9.0。
6.权利要求1-5任一项所述基于磁珠法的动物组织DNA提取试剂盒的应用,其特征在于包括以下步骤:
①在EP管中加入动物组织、裂解液和蛋白酶K并匀浆,于56℃水浴孵育30分钟后离心;
②离心后的上清液转移至新的EP管中,加入磁珠和结合液,结合时间10分钟;
③使用磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去EP管内所有液体;
④在EP管中加入洗涤液Ⅰ,混匀后,使用磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去管内所有液体;
⑤在EP管中加入洗涤液Ⅱ,混匀后,使用磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去管内所有液体;
⑥在EP管中加入洗涤液Ⅲ,混匀后,磁铁将磁珠吸附至管壁,弃去管内所有液体;
⑦在EP管中加入核酸洗脱液,于56℃水浴下洗脱5分钟,使用磁铁将磁珠吸附至管壁,将洗脱液转移至新的EP管内,在-20℃保存备用;
其中:加入的裂解液与动物组织的体积质量比为30μL:1mg-6μL:1mg;加入的磁珠与结合液的体积比为1:10-1:20,洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ、洗涤液Ⅲ分别与裂解液的体积比为1:1-3:1,核酸洗脱液与裂解液的体积比为1:1-1:5。
7.根据权利要求6所述的试剂盒的应用,其特征在于:所述EP管容量为2mL,加入的试剂为:10μL浓度20mg/mL的蛋白酶K,动物组织50mg,裂解液300μL,磁珠20μL,结合液300μL,洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ和洗涤液Ⅲ各600μL,核酸洗脱液100μL。
8.权利要求1-5任一项所述基于磁珠法的动物组织DNA提取试剂盒的应用,其特征在于包括以下步骤:
①96孔反应板1排加入结合液;
②所述96孔反应板2排加入磁珠和去离子水;
③所述96孔反应板3排加入洗涤液Ⅰ;
④所述96孔反应板4排加入洗涤液Ⅱ;
⑤所述96孔反应板5排加入洗涤液Ⅲ;
⑥所述96孔反应板6排加入核酸洗脱液;
⑦在EP管中加入动物组织、裂解液和蛋白酶K,匀浆后直接离心,将上清液转移至所述96孔反应板1排,所述96孔反应板放入核酸提取仪后开始运行,结束后将所述96孔反应板6排中的核酸洗脱液转移至新的EP管内,在-20℃保存备用;
其中:所述96孔反应板单孔内的液体总体积小于1.0mL,所述EP管容量为2mL;加入的裂解液为200μL-300μL,动物组织为10-50mg;加入的磁珠为20-100μL,且用300-600μL去离子水与其混匀;加入的结合液为50-200μL,洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ和洗涤液Ⅲ分别为500μL-700μL,核酸洗脱液为50-300μL。
9.根据权利要求8所述的试剂盒的应用,其特征在于:所述96孔反应板的7排至12排依次对应1排至6排,在所述7排至12排中进行与1排至6排相同的操作步骤。
10.根据权利要求8或9所述的试剂盒的应用,其特征在于:加入的试剂为:10μL浓度20mg/mL的蛋白酶K,动物组织50mg,裂解液300μL,磁珠20μL和去离子水600μL,结合液200μL,洗涤液Ⅰ、洗涤液Ⅱ和洗涤液Ⅲ各600μL,核酸洗脱液100μL。
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