CN104774251A - 参与花青苷生物合成调控的myb转录因子 - Google Patents

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Abstract

本发明提供一个参与菊花花瓣花青苷生物合成调控的MYB转录因子CmMYB6,其编码区序列含765个核苷酸。CmMYB6氨基酸序列中含有保守的R2R3 MYB结构域,并在R3结构域内存在一个[D/E]Lx2[R/K]x3Lx6Lx3R基序和一个ANDV基序,前者可与bHLH相互作用,后者为参与花青苷生物合成调控的MYB转录因子的特征基序。CmMYB6的基因表达在花瓣发育过程中呈上调趋势,与花青苷合成呈显著正相关,可诱导花青苷合成关键基因CmDFR启动子的活性,与MrbHLH1协同表达时,诱导效能显著增强,可强烈诱导烟草叶片花青苷的积累。因此,可用于植物花青苷生物合成的转录调控,修饰植株色泽。

Description

参与花青苷生物合成调控的MYB转录因子
技术领域
本发明属于植物分子生物技术和基因工程领域,涉及一个参与菊花花瓣花青苷生物合成转录调控的MYB转录因子CmMYB6(SEQ:NO. 22)。
背景技术
菊花是我国传统名花,亦是世界重要花卉之一,为仅次于玫瑰的世界第二大切花。我国自主培育了近250个切花菊品种,其中单头切花大菊占切花产量总数的一半左右。花色是菊花重要的观赏性状之一,单头切花大菊的花色多以原始色系黄、白为主,除此黄、白之外,我国自主培育的菊花品种还有绿、青、粉红、红、紫和间色等其他色系,多色系的菊花存在有助于改善切花菊文化的发扬及其产业的多元化。
花青苷是众多红粉色系菊花品种的主要呈色色素,其积累量越高花色越偏红紫色。花青苷的生物合成起始于苯丙氨酸途径,由多个酶参与催化,编码这些酶的基因转录水平受到MYBbHLHWD40 转录因子形成的MBW转录复合体的协同调控。在这三类转录因子中,MYB转录因子对花青苷的生物合成调控具有最高的特异性。
MYB是高等植物中成员众多的一类转录因子,依据结构划分,多数MYB成员属于R2R3类,可参与植物表皮细胞分化、气孔细胞运动、黄酮类化合物(黄烷酮,花青苷和原花青苷)生物合成调控、抵御冷害和干旱、糖响应和抗真菌感染等生命进程。参与植物花青苷生物合成调控的MYB成员,已在众多植物体内得到鉴定,然而菊花中参与花青苷生物合成转录调控的MYB成员至今未见报道,极大地限制了菊花花色品质改良育种及其产业多元化的发展。
发明内容
本发明的目的是提供一个参与菊花花瓣花青苷生物合成转录调控的MYB转录因子CmMYB6,其核苷酸序列如SEQ:NO. 22所示,具体特征如下:
1. 序列特征
菊花CmMYB6(SEQ:NO. 22)的编码序列全长为765个核苷酸,可编码一个含255氨基酸的蛋白。CmMYB6蛋白序列中含有保守的R2R3 MYB结构域,在MYB转录因子大家族中属于R2R3亚组。在CmMYB6的R3 MYB结构域中,存在一个保守的[D/E]Lx2[R/K]x3Lx6Lx3R基序,可与bHLH转录因子相互作用,共同行使功能。此外,R3 MYB结构域中还含有一个ANDV基序,该基序存在于许多参与花青苷生物合成调控的MYB转录因子序列中。
2. 基因功能
在菊花花瓣的发育过程中,CmMYB6(SEQ:NO. 22)的基因表达呈显著上升趋势,与花青苷的积累呈良好正向相关性。CmMYB6可显著诱导菊花花青苷合成关键基因CmDFR启动子活性,进而增强花青苷的积累,且这一诱导效应受到bHLH转录因子的加强。
本发明的另一个目的是提供MYB转录因子CmMYB6(SEQ:NO. 22序列)在植物颜色修饰的基因工程中应用,尤其在植物花青苷生物合成的转录调控中的应用。
CmMYB6MrbHLH1协同在烟草叶片瞬时表达时,可强烈诱导花青苷的积累,使得叶片呈现红色表型。基于此,CmMYB6(SEQ:NO. 22)可用于植物花青苷生物合成的转录调控,进而改变植株颜色。
CmMYB6(SEQ:NO. 22)是菊花中首例报道的可调控花青苷生物合成,进而修饰植株色泽的MYB成员。
本发明以紫色切花菊‘阿美地’为试材,应用RACE、实时定量PCR和瞬时表达等生物学技术,分离鉴定出参与‘阿美地’花瓣花青苷生物合成调控的MYB成员CmMYB6 (SEQ:NO. 22)。研究发现,随着‘阿美地’花瓣中花青苷的积累,CmMYB6表达上调,与其呈良好正向相关;CmMYB6可增强菊花花青苷生物合成关键基因CmDFR启动子活性,且与MrbHLH1协同表达可显著诱导烟草叶片花青苷的积累。本发明利用RACE、实时定量PCR、双荧光素酶系统技术和烟草瞬时表达技术,分离并鉴定出菊花CmMYB6(SEQ:NO. 22)对花青苷生物合成具有转录调控效应,可应用到植物颜色修饰的基因工程中。
附图说明
图1:菊花4个MYB基因在花瓣发育过程及不同组织中表达模式分析。
图2:菊花4个MYB基因在不同组织中表达模式分析。
图3:菊花4个MYB基因对花青苷合成基因CmDFR启动子的调控效应分析。
图4:CmMYB6(SEQ:NO. 22)诱导花青苷生物合成功能的鉴定。
具体实施例
下面结合附图和实施例,以不具有调控花青苷生物合成功能的基因CmMYB3(SEQ:NO. 19)、CmMYB4(SEQ:NO. 20)和CmMYB5(SEQ:NO. 21),以及CmMYB6(SEQ:NO. 22)为例,对本发明做进一步阐述,但实施例不限制本发明的保护范围。
在下述实施例中常规的基因操作方法参照《分子克隆实验指南》(第三版)。
实施例1:菊花CmMYB基因克隆
依据菊花RNA-Seq数据库信息,筛选出四个可能参与菊花花青苷生物合成调控的MYB转录因子CmMYB3CmMYB4CmMYB5CmMYB6,其中CmMYB6已含有部分开放型阅读框(ORF)序列及3’ 非编码区(3' UTR)序列(SEQ:NO. 1),CmMYB4 (SEQ:NO. 2)和CmMYB5(SEQ:NO. 3)已含有部分ORF序列及5’ UTR序列。应用基因特异引物2(GSP2)SEQ:NO. 4、SEQ:NO. 5和SEQ:NO. 6,以及巢式基因特异引物2(NGSP2)SEQ:NO. 7、SEQ:NO. 8和SEQ:NO. 9,利用3' cDNA末端快速扩增(3' RACE)技术分别获得 CmMYB3(SEQ:NO. 10)、CmMYB4(SEQ:NO. 11)和CmMYB5(SEQ:NO. 12)的(3' UTR)序列。进而应用基因特异引物1(GSP1)SEQ:NO. 13和SEQ:NO. 14,以及巢式基因特异引物1(NGSP1)SEQ:NO. 15和SEQ:NO. 16,利用5' cDNA末端快速扩增(5' RACE)技术分别获得CmMYB3(SEQ:NO. 17)和CmMYB6(SEQ:NO. 18)的5' 非编码区(5' UTR)序列。
RACE程序中第一轮PCR程序为94oC,5min,5个循环的94oC 10 s和72oC 2 min 30 s,5个循环的94oC 10 s,70oC 30s和72oC 2 min 30 s,30个循环的94oC 10 s,67oC 30s和72oC 2 min 30 s,72oC 10 min,4oC hold。第二轮PCR程序为94oC,5min,30个循环的94oC 10 s,65oC 30s和72oC 2 min 30 s,72oC 10 min,4oC hold。
RACE第一轮PCR体系为10×Ex-Buffer 2 μL,2.5 mmol/L dNTPs 1.6 μL,10 μmol/L GSP1或GSP2 0.5 μL,下游引物UPM 2 μL, Ex-Taq 0.1 μL,cDNA 0.5 μL,加灭菌双蒸水至20 μL。第二轮PCR体系为10×Ex-Buffer 2 μL,2.5 mmol/L dNTPs 1.6 μL,10 μmol/L NGSP1或NGSP2 0.5 μL,下游引物NUP 2 μL,Ex-Taq 0.1 μL,稀释10倍的第一轮PCR产物1 μL,加灭菌的双蒸水至20 μL。
根据3' 和5' UTR拼接得到自起始密码子(ATG)至终止密码子的CmMYB3(SEQ:NO. 19)、CmMYB4(SEQ:NO. 20)、CmMYB5(SEQ:NO. 21)和CmMYB6(SEQ:NO. 22)的全长序列。
实施例2:菊花CmMYB基因表达模式分析
(一)实验方法
利用Primer Premier 5,依据CmMYB3(SEQ:NO. 10)、CmMYB4(SEQ:NO. 11)、CmMYB5(SEQ:NO. 12)和CmMYB6(SEQ:NO. 1)的3' UTR序列分别设计实时定量PCR(QPCR)引物组合SEQ:NO. 23和SEQ:NO. 24、SEQ:NO. 25和SEQ:NO. 26、SEQ:NO. 27和SEQ:NO. 28及SEQ:NO. 29和SEQ:NO. 30,PCR产物包含终止密码子,长度分别为198 bp、222 bp、136 bp和154 bp。以菊花actin基因(SEQ:NO. 31)的表达为内参分析各个MYB转录因子的表达模式,其QPCR引物组合为SEQ:NO. 32和SEQ:NO. 33。所有QPCR引物特异性经熔点曲线分析、凝胶电泳分析和QPCR产物再测序验证。
分别提取四个‘阿美地’花瓣发育阶段以及嫩叶和嫩茎的RNA,参照cDNA合成kit(Bio-Rad,USA)说明书,合成cDNA。参照Ssofast EvaGreen Supermix kit(Bio-Rad,USA)说明书开展QPCR分析,采用20 μL体系:其中10 μL 2 ×Ssofast EvaGreen Supermix (Bio-Rad,USA),1.0 μL上游引物(10 μM),1.0 μL下游引物(10 μM),2.0 μL稀释的cDNA和6.0 μL H2O。QPCR程序为:94oC,10 min;45个循环的94oC 10 s和60oC 30 s。
(二)实验结果
基因表达分析结果说明,CmMYB3(SEQ:NO. 19)和CmMYB6(SEQ:NO. 22)的基因表达在‘阿美地’花瓣的发育过程中与花青苷积累呈良好正向相关(附图1),且具有显著的组织特异性(附图2),而CmMYB4(SEQ:NO. 20)和CmMYB5(SEQ:NO. 21)的基因表达则与花青苷合成无明显相关性(附图1和2)。
实施例3:调控靶基因活性分析
(一)实验方法
应用引物组合SEQ:NO. 34和SEQ:NO. 35、SEQ:NO. 36和SEQ:NO. 37、SEQ:NO. 38和SEQ:NO. 39及SEQ:NO. 40和SEQ:NO. 41,扩增CmMYB3(SEQ:NO. 19)、CmMYB4(SEQ:NO. 20)、CmMYB5(SEQ:NO. 21)和CmMYB6(SEQ:NO. 22)的全长序列,分别搭载到pGreenII 0029 62-SK表达载体上,构建重组表达载体CmMYB3-SKCmMYB4-SKCmMYB5-SKCmMYB6-SK。构建表达载体选用Fast stat high fidelity PCR system 酶,PCR体系为 Buffer(with Mgcl2)3 μL,dNTP(2.5 μM)2.4 μL,上下游引物(10 μM)各1 μL,cDNA 0.6 μL,酶0.3 μL,水21.3 μL。将最终确认正确构建的表达载体电转化入GV3101::pSoup农杆菌感受态细胞中,挑选3个阳性克隆,用25%灭菌甘油保存,放于-80oC。
将存放于-80oC的甘油菌划线接种于含25 μg/ml庆大霉素、5 μg/ml四环素和50 μg/ml卡那霉素的LB固体培养基上,28oC培养48h,选取少量菌落涂布到新的相同LB固体培养基上,28oC培养12h。刮取生长良好的菌落,用渗透液(10 mM MES,10 mM MgCl2,150 mM 乙酰丁香酮,pH 5.6)悬浮,调其OD600为0.75左右。
利用双荧光素酶系统,分析不同MYB转录因子与菊花花青苷合成基因CmDFR启动子间是否存在调控效应。将含有不同重组表达载体的农杆菌按照两种方案进行组合处理, 将含有CmMYB3-SKCmMYB4-SKCmMYB5-SKCmMYB6-SK的农杆菌菌株分别与含有CmDFR-LUC的农杆菌菌株按照10:1比例混合; 将含有CmMYB3-SKCmMYB4-SKCmMYB5-SKCmMYB6-SK的农杆菌菌株分别与含有MrbHLH1-SK的农杆菌菌株按照1:1比例混合,再按照10:1比例与含有CmDFR-LUC的农杆菌菌株混合。农杆菌菌株混合后,分别注射到本氏烟草叶片中,每株烟草注射3片叶片。每个基因的3个阳性克隆各重复一次上述操作,构成3个生物学重复。
注射后的烟草于16h:8h光暗周期、25oC、75%空气湿度的条件下培养3天,应用Dual-Luciferase Reporter Assay System(Promega,USA)和Modulus Luminometer(Promega,USA)检测叶片中两种荧光素酶(LUC和REN)的比值,据此分析转录因子与目标基因启动子之间的调控效应。
  (二)实验结果
双荧光素酶瞬时表达分析结果显示,4个MYB成员中,仅CmMYB6(SEQ:NO. 22)具有激活菊花花青苷合成基因CmDFR启动子的效应,且在MrbHLH1协同表达时,该效应得到显著增强(附图3)。
实施例4:诱导花青苷积累分析
(一)实验方法
将分别含CmMYB6-SKMrbHLH1-SK或pGreenII 0029 62-SK的GV3101::pSoup农杆菌菌株按照1:1比例组合成农杆菌混合液,包括:CmMYB6-SK + pGreenII 0029 62-SK,MrbHLH1-SK + pGreenII 0029 62-SK、CmMYB6-SK MrbHLH1-SK。选取一株长势优良普通烟草植株的3片嫩叶,以每片叶片中心叶脉为分界线,用无针头注射器在叶片左侧注射CmMYB6-SK + pGreenII 0029 62-SK混合液,右侧注射CmMYB6-SK MrbHLH1-SK混合液;另一株烟草3片嫩叶的左侧注射MrbHLH1-SK + pGreenII 0029 62-SK混合液,右侧注射CmMYB6-SK MrbHLH1-SK混合液。注射部位为远离叶片中心叶脉的表皮细胞内,烟草于16h:8h光暗周期、25oC、75%空气湿度的条件下培养8天,观察叶片的注射部位有无花青苷的积累。每个基因的3个阳性克隆各重复一次上述操作,构成3个生物学重复。
(二)实验结果
分析结果显示,注射CmMYB6-SK MrbHLH1-SK混合农杆菌的烟草叶片表皮细胞内可显著积累花青苷,使得注射部位呈现明显的红色(附图4)。
本发明利用RACE、实时定量PCR、双荧光素酶系统技术和烟草瞬时表达技术,分离并鉴定出菊花CmMYB6(SEQ:NO. 22)对花青苷生物合成具有转录调控效应,可应用到植物颜色修饰的基因工程中。
<110> 浙江大学
<120> 参与花青苷生物合成调控的MYB转录因子
<160> 41
 
<210> 1
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<211> 991
<212> DNA序列
<213>菊花(Chrysanthemum morifolium)
<400> 11
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<211> 855
<212> DNA序列
<213>菊花(Chrysanthemum morifolium)
<400> 12
CGACATGGGAAACAAGTATGTGGTCTAACTAACCTTTTGCATCGAATTTTAGTTACAGTGGATTTTATTAAAAAAAAAATCTACTAAATCACGAGCTAGCTGATTCAAGTAGCGTTAAACTAAGCTCTAGTTTGTTTTGCCACACACCCGTAGGATTAGCGAATTAGGGACAATCACATAAATATATTCTTGCCGTTTTGTTTTGCTTATTGCTGATTAGGTTGATCCAACTTATAGTCAGTAAATAAGAAATTGGAGAAAGTCACTGCTGTAAAGATTTTTGCCCGTTTTGCAGATGGTCAGCGATTGCTGCCCTGTTACCAGGAAGAAGTGACAACGAAATCAAGAACCATTGGCACACGCACTTGAAAAAACGCAGTACCAAACAAAATCACCACGTCGTTCACGAAGTAAAAGATGAACAAAAACTTAACGTTTCAAGGATTATAAACTTTTCTGTTTTACCTCCAAGCGTTGTGTCAACATCTAGTGACAATCGAGTTACAAATGAATATACAGCGTCTCACATGATATCCCATGAATCGGCAGTATCACAGAGAAATTCTGATGACTCAACATCACGTCCCTGTGTACAACACCGATTACTAATTGATTTGAACCAAGAATATGTAGAATCATGGGAGGAAGATAACAAGTTAAAGAAGGAGTTCGTGTGTTGATACAGTTTTAGGTAAAACAAAGATAGAAATTATTATTGTTATAAAGTTAGCTTATATCTTTCCTTCCCCAATTAGCGGATTGAAAACCATCCATAGTGTTGTTTTGTACATGAACATCAATTTGCTCAAGTTTTGATATAAATTTGCTAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAA
 
<210> 13
<211> 26
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 13
TTTGATTTCGTTGTCTGTTCGCCCGG
 
<210> 14
<211> 24
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 14
CGATGGGTGACGAGATATACCCTG
 
<210> 15
<211> 23
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 15
CAGTCTACAACTCTTCCCACACC
 
<210> 16
<211> 24
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 16
CTGTTGCCTAGAAGCTTGTGAAGC
 
<210> 17
<211> 202
<212> DNA序列
<213>菊花(Chrysanthemum morifolium)
<400> 17
ACATGGGGGTACATCTTCATACAGTTTTGTCTCAAATATGGGAAGAGCACCGTGTTGCCAAAAAATAGGGTTGAAGAGGGGAAGGTGGACCGCCGAAGAAGACAAGATACTTTCCGACTACATTCAAACTCATGGTGAAGGCTCATGGAGATCTTTACCCAAAAATGCCGGATTACTAAGGTGTGGGAAGAGTTGTAGACTG
 
<210> 18
<211> 280
<212> DNA序列
<213>菊花(Chrysanthemum morifolium)
<400> 18
ACATGGGGGAGTACAGAAAAATGAGACCGAGTAGTAGTACAGGTTTAAGGTTGAAGAAAGGTGCATGGACTCCCAAAGAAGACATGCTTCTCAGGAACTGTATTCAGAAACATGGCGAAGGCGAATGGCATCTAATTCCTCTTAAAGCCGGTTTAAGCCGATGTAGGAAGAGTTGTAGGTTGCGATGGTTAAATTATCTAAGGCCAAATATAAAGAAAGGAGATTTTGAAGAAGATGAGATTGATCTCATTCTAAGGCTTCACAAGCTTCTAGGCAACAG
 
<210> 19
<211> 957
<212> DNA序列
<213>菊花(Chrysanthemum morifolium)
<400> 19
ATGGGAAGAGCACCGTGTTGCCAAAAAATAGGGTTGAAGAGGGGAAGGTGGACCGCCGAAGAAGACAAGATACTTTTCGACTACATTCAAACTCATGGTGAAGGCTCATGGAGATCGTTACCCAAAAATGCCGGATTACTAAGGTGTGGGAAGAGTTGTAGACTGAGATGGATAAACTACTTGAGATCGGATGTGAGAAGAGGTAACATATCCAAGGAGGAGGAACAAATAATTACCAGCCTGCATGCATCTTTAGGTAACAGGTGGTCTTTGATAGCAGCCCACTTGCCCGGGCGAACAGACAACGAAATCAAAAACTACTGGAACTCCCACCTCAGCCGAAAGATCCTCCCGTCACGAAGAATTATATCGAACCCTCCTACAATAACCATTCCACAAACGATCATTAAACGCAGAGGTAGAACTAGCCGGTCCAAAATGAAGATCAACAAAACATATAGATCCTCTTCCAATAATAACACTAGGGTTGTTCCAGTTGTCCCTTTATCAAAAGGACACTCGGAACAACCAATTAAACAGCAGACCAAGCCTGTCAAAGTTGGTCACGTTTGCATGGACCCTGGTGCCCCAAGCTATGCAAATGAATTAAATGATGCCCAATGCTGTGATGATGAAATTTTTCGATTTATTGAAATCATGGACCAGCAATTAATGTCGATGGATCCGAATGATGAATATTCGTTCACAGAAAGAGATGGAGTCGTTACTAGTGAAGAGGAAACACACAATGCAAGTGAGCCCAAGAGTGTAGAAGCTGGTGGTGCAAATTCATCTAGCACGGTTTCGTATGATGATTGGAATTGGGATTTTGATGTTGAAGATGGTATATTAGGTTTAGGAGGTCAAGAAGAAGATGACATTTTGTCATGGCCATGGGAGAGCACTACAACAGATTATGACAATATTTTAGGTTCAGATGCATGGCTTCTTTCTTAA
 
<210> 20
<211> 846
<212> DNA序列
<213>菊花(Chrysanthemum morifolium)
<400> 20
ATGGGAAGGTCACCTTGTTGTGAAAAAGCACACACAAACAAAGGTGCATGGACCAAAGAAGAAGATGATCGGTTGATAGCTTATATAAGAACTCATGGTGAAGGCTGCTGGAGGTCACTTCCTAAAGCTGCTGGCCTTTTAAGGTGTGGTAAAAGCTGTCGTCTCAGGTGGATCAATTATCTTCGCCCTGATCTTAAACGTGGCAATTTTACTGAAGATGAAGATGAACTTATTATCAAACTTCATAGCCTCCTTGGCAACAAGTGGTCTTTAATAGCTGGAAGATTGCCAGGAAGAACAGATAACGAGATAAAAAACTACTGGAACACACACATCAGAAGAAAGCTTCTAAACCGTGGAATTGATCCAGCAACTCACCGCCCAGTCACCGACCACCCCACCACCACCACGACCACCACAACCACAGCCGTCACCACCACCGTGAACAACAACCATAATGTCACCTCACCACCACCAGACATCATATCTTTTGCAACCACAAAAACAACAGCCCATGTAGTAAAAAGTGAAGACATGGAAGAAGACACTAAGCTCAATATCACCTCACCTGATCAAAAACAAGAAAGATGTCCAGATTTGAACTTGGAGTTGAGAATTGGCCCACCACAACATCATAGTAGTAATATGATACCATCAATATCATACATGCAACAACCTTTGATGACTGGTGGAACAATATGTTTTGCGTGCAGTTTAGGTGTGCAAGATAACAAGGAATGCAGGTGTAGTACTAATGGTACAAGTGGTAACAACAACAACGTTGGTTTTGATTTCTTTAAAATAAAAAATGGCGCTTTGGACTATAGAAGCTTGGAGATGAAATAA
 
<210> 21
<211> 648
<212> DNA序列
<213>菊花(Chrysanthemum morifolium)
<400> 21
ATGGTGAGAGCACCTTGTATTGACAAAAATGGTATTAAAAAAGGAGCCTGGAGTGAAGAAGAAGATAATAAGCTACGTGATTATATTGAACGTTATGGTCACTGGAATTGGCGCGAACTTCCTAAATATGCTGGTTTGGCAAGGTGTGGCAAGAGTTGTAGATTGCGGTGGATGAATTATTTAAGACCGAGTGTCAAACGCGGGAATTTCACCAAGGAAGAAGAGGATATCATCATTAAACTTCATCTAGATATGGGAAACAAATGGTCAGCGATTGCTGCCCTGTTACCAGGAAGAAGTGACAACGAAATCAAGAACCATTGGCACACGCACTTGAAAAAACGCAGTACCAAACAAAATCACCACGTCGTTCACGAAGTAAAAGATGAACAAAAACTTAACGTTTCAAGGATTATAAACTTTTCTGTTTTACCTCCAAGCGTTGTGTCAACATCTAGTGACAATCGAGTTACAAATGAATATACAGCGTCTCACATGATATCCCATGAATCGGCAGTATCACAGAGAAATTCTGATGACTCAACATCACGTCCCTGTGTACAACACCGATTACTAATTGATTTGAACCAAGAATATGTAGAATCATGGGAGGAAGATAACAAGTTAAAGAAGGAGTTCGTGTGTTGA
 
<210> 22
<211> 765
<212> DNA序列
<213>菊花(Chrysanthemum morifolium)
<400> 22
ATGGGGGAGTACAGAAAAATGAGACCGAGTAGTAGTACAGGTTTAAGGTTGAAGAAAGGTGCATGGACTCCCAAAGAGGACATGCTTCTCAGGAACTGTATTCAGAAACATGGCGAAGGCAAATGGCATCTAATTCCTCTTAAAGCCGGTTTAAGCCGATGTAGGAAGAGTTGTAGGTTGCGATGGTTAAATTATCTAAGGCCAAATATAAAGAAAGGAGATTTTGAAGAAGATGAGATTGATCTCATTCTAAGGCTTCACAAGCTTCTAGGCAACAGATGGTCACTGATTGCTGGGAGAATACCAGGAAGAACTGCGAATGACGTGAAGAACTACTGGAACACACATATTCGCCCACGGTCCAACAAACAAGATAATGAAGCTAAAGACATTACCACGGCCGTCACAGTTATTAAGCCTCAACCACGGATCTTGTCTAAAACCGTAAATTCTAACCCACCCATTGCAGCTCCTCAAGACTATAACCTAGTAAGGTCAACACATGATGGTGTCGAAACTGCCTTTGATATATCCTCAGGGTATATCTCGTCACCCATCGTATCAGATGCCAAGATTGACAAGTATTTGGTTGAGTTATTTGACAATGAGGATAAGGAATTTGACGGCGAAATAGGGTGGTCATTAGATGGTTGTCCATTCCAAGGGGAGGCTTTAGATGCGGAGCAAGAAGATGGTGAAAGCAGTGTGTTTGATTTGCCCATAGACGAGTTCATGTGGGACTTTTTAAATTCGGACCAACTATGA
 
<210> 23
<211> 22
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 23
TCATCTAGCACGGTTTCGTATG
 
<210> 24
<211> 24
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 24
TGGCACACTTGTATTTGTACACGT
<210> 25
<211> 24
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 25
TGGACTATAGAAGCTTGGAGATGA
 
<210> 26
<211> 24
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 26
GCTTGCATACGACTATACGAGTGA
 
<210> 27
<211> 20
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 27
AATCGGCAGCATCACAGAGA
 
<210> 28
<211> 24
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 28
CACACGAACTCCTTCTTTAACTTG
 
<210> 29
<211> 24
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 29
ACGGCGAAATAGGGTGGTCATTAG
 
<210> 30
<211> 25
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 30
GGATTGCAATATCATAGTTGGTCCG
 
<210> 31
<211> 532
<212> DNA序列
<213>菊花(Chrysanthemum morifolium)
<400> 31
GTTCCCTGGCATTGCTGACAGGATGAGCAAGGAAATCACCGCTCTTGCTCCCAGCAGCATGAAGATCAAGGTCGTTGCACCCCCAGAGAGAAAATACAGTGTCTGGATCGGAGGATCTATCCTTGCATCACTCAGCACCTTCCAACAGATGTGGATCTCCAAGGGTGAATACGACGAGTCTGGCCCATCCATTGTTCACAGGAAGTGCTTCTAAGTATGGATTTTGTTGCTTTTGAAGATTGAATTTCTTTTGGTTTTTGGTTTTTTTTATTGCCTTTCTTTTTCGTGTTATGTTTCATGTGAACTAAGTAAGGCTGGCAGACGTTGGGCCATGGGGAAAGTGAAGGGGATTAACACCACGTTCATCTCTTAATCCATCACTCTGCTCTACCCCATTTGTCGATTGTTGCCAGAGATGTTTGTAGTTGGAGAGTGGTTGTGATGTCTTATTATGAATTCAAACTGTCGGTCTTTTTTTAATCCGTTTGTTGGCAATAATTATGTCAATGTCTACTGTATCAGAAATTATCTT
 
<210> 32
<211> 20
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 32
CACCCCCAGAGAGAAAATAC
 
<210> 33
<211> 20
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 33
ATCTGTTGGAAGGTGCTGAG
 
<210> 34
<211> 21
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 34
ATGGGAAGAGCACCGTGTTGC
 
<210> 35
<211> 21
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 35
TTAAGAAAGAAGCCATGCATC
 
<210> 36
<211> 20
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 36
ATGGGAAGGTCACCTTGTTG
 
<210> 37
<211> 20
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 37
TTATTTCATCTCCAAGCTTC
 
<210> 38
<211> 24
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 38
ATGGTGAGAGCACCTTGTATTGAC
 
<210> 39
<211> 25
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 39
TCAACACACGAACTCCTTCTTTAAC
 
<210> 40
<211> 21
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 40
ATGGGGGAGTACAGAAAAATG
 
<210> 41
<211> 20
<212> 碱基序列
<213>人工合成
<400> 41
TCATAGTTGGTCCGAATTTA

Claims (5)

1. 一个参与花青苷生物合成调控的MYB转录因子,其特征在于,是参与菊花花瓣花青苷生物合成转录调控的MYB转录因子CmMYB6,其核苷酸序列如SEQ:NO. 22所示。
2.根据权利要求1所述的一个参与花青苷生物合成调控的MYB转录因子,其特征在于,所述MYB转录因子的编码序列全长为765个核苷酸,可编码一个含255氨基酸的蛋白,CmMYB6蛋白序列中含有保守的R2R3 MYB结构域,在MYB转录因子大家族中属于R2R3亚组,在CmMYB6的R3 MYB结构域中,存在一个保守的[D/E]Lx2[R/K]x3Lx6Lx3R基序,可与bHLH转录因子相互作用,共同行使功能。
3.根据权利要求2所述的一个参与花青苷生物合成调控的MYB转录因子,其特征在于,所述R3 MYB结构域中还含有一个ANDV基序,该基序存在于许多参与花青苷生物合成调控的MYB转录因子序列中。
4.权利要求1所述一个参与花青苷生物合成调控的MYB转录因子CmMYB6在植物颜色修饰的基因工程中应用。
5.根据权利要求4所述的应用,其特征在于,所述转录因子CmMYB6在植物花青苷生物合成的转录调控中应用,进而改变植株颜色。
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Granted publication date: 20171114