WO2017006942A1 - 細胞保持容器及びそれを用いた細胞培養方法 - Google Patents

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WO2017006942A1
WO2017006942A1 PCT/JP2016/069940 JP2016069940W WO2017006942A1 WO 2017006942 A1 WO2017006942 A1 WO 2017006942A1 JP 2016069940 W JP2016069940 W JP 2016069940W WO 2017006942 A1 WO2017006942 A1 WO 2017006942A1
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cell
cells
elastic body
holding container
cell holding
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PCT/JP2016/069940
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French (fr)
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優也 生方
高野　努
加川　健一
成則 尾▲崎▼
祐介 依田
智瑛 倉員
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株式会社朝日ラバー
東京エレクトロン株式会社
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Publication date
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    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/26—Constructional details, e.g. recesses, hinges flexible
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/02—Form or structure of the vessel
    • C12M23/12—Well or multiwell plates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
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    • C12M23/22—Transparent or translucent parts
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
    • C12M41/30—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration
    • C12M41/36—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration of biomass, e.g. colony counters or by turbidity measurements

Definitions

  • the present invention relates to cell retention in which inducible pluripotent stem cells (iPS cells) and embryonic stem cells (ES cells) are aggregated on an elastic body formed of a rubber material to form a cell clump or culture.
  • iPS cells inducible pluripotent stem cells
  • ES cells embryonic stem cells
  • the present invention relates to a container and a cell culture method using the same.
  • an adherent cell is a new culture containing a fresh medium by peeling off a cell that has grown by adhering to a culture vessel by a physical method using a cell scraper or pipetting or a physiological method using an enzyme. It is cultivated by seeding in a container and subcultured.
  • pluripotent stem cells which are adherent cells, are prone to cell death when made into single cells, so it is necessary to pass them in the form of cell clusters.
  • pluripotent stem cells are detached as colonies and pipetting.
  • the cells are crushed to a suitable size and then seeded in a new culture vessel and subcultured.
  • Patent Document 1 discloses a maintenance amplification culture of pluripotent stem cells containing nanofibers made of biopolymers as a means of improving damage to cells by these peeling means and colony heterogeneity in subculture. And a culture method using the same are disclosed.
  • this base material By using this base material, it is possible to disperse to single cells with little pipetting operation without performing enzyme treatment at the time of passage, and to obtain uniform cells while suppressing the rate of cell death Is possible.
  • this pluripotent stem cell is easily differentiated and it is difficult to return to an undifferentiated state once differentiation is started, it is necessary to carry out maintenance culture without changing the cell to a state in which it is easily differentiated.
  • the cells that have started differentiation are removed from the culture vessel in order to adversely affect surrounding cells and reduce the yield and purity of undifferentiated cells. There is a need.
  • open-type culture and closed-type culture are used, and in normal open-type culture using a dish, work is performed by opening the lid of the dish during medium exchange or subculture.
  • a micropipette can be inserted into the dish and the cells that have started differentiation can be removed by suction.
  • Open culture is inexpensive and excellent in operability, and is useful for research.
  • closed culture since an aspirator cannot be inserted, it is difficult to selectively remove cells that have started differentiation during the culture.
  • closed culture is useful for medical use because it can reduce the incidence of contamination and the risk of infection compared to open culture, and selectively removes cells that have started differentiation by simple operations. A technology and structure that can be used are desired.
  • Patent Document 2 discloses a method of selectively detaching cells from an adhesive surface by high-frequency vibration as a method that enables selective cell removal and recovery even in closed culture. According to this method, cells can be selectively detached from the adhesive surface of a closed or open culture vessel by non-contact means.
  • the present invention has been made to solve the above-mentioned problems, and can form and culture cell clumps on an elastic body formed of a rubber material capable of holding cells without causing damage. While maintaining the undifferentiated state of the cells, efficient and uniform subculture is possible, selective cell removal and recovery are possible, high processability, excellent visibility, and observation of the cell state from the outside
  • Another object of the present invention is to provide a cell holding container that can be used for inspection and a cell culture method using the same.
  • the cell holding container includes at least an adherent cell selected from stem cells, progenitor cells, somatic cells and germ cells, and a floating cell selected from blood cells, T cells and B cells.
  • the stem cells held in the cell holding container are inducible pluripotent stem cells or embryonic stem cells.
  • the cell holding container may be for cell culture.
  • the cell holding container preferably contains a filler containing dry silica powder and / or wet silica powder in the addition-crosslinking silicone rubber.
  • the cell holding container preferably contains 5 to 40 parts by mass of filler containing dry silica powder and / or wet silica powder in the addition-crosslinking silicone rubber with respect to 100 parts by mass of all rubber components.
  • the elastic body of the cell holding container is transparent.
  • the elastic body has a thickness of 0.1 mm at the maximum, a hardness at the Shore A hardness of A40 / S at the maximum, and a tensile strength of 3.5 MPa at the maximum.
  • a part of the elastic body may be sandwiched between a support and a side wall, and may be fixed by combining them.
  • the cell holding container may be reversibly deformed into a concavo-convex shape having a dent and / or a undulation from the flat plate shape by the elastic body receiving an external force.
  • the elastic body may be composed of a deformable soft part and a non-deformable hard part.
  • the soft part has a maximum thickness of 0.1 mm.
  • the cell holding container is preferably opened on the cell contact surface side of the elastic body.
  • the rubber component may include at least one selected from ethylene propylene diene rubber, fluorine rubber, addition-crosslinking silicone rubber, and fluorine elastomer.
  • the cell culture method is a cell culture method using the cell holding container, and is an adherent cell selected from stem cells, progenitor cells, somatic cells and germ cells, and hematopoietic cells.
  • the elastic body of the cell holding container is recessed from the flat plate shape.
  • the method includes a step of deforming into a concavo-convex shape having a dent, and a step of transforming the concavo-convex shape into the flat plate shape after seeding the cells in the dent to form a cell clump.
  • the cell holding container of the present invention holds cells such as inducible pluripotent stem cells and embryonic stem cells on an elastic body formed of a rubber material containing at least an addition-crosslinking silicone rubber as a rubber component, and seeded
  • the aggregated cells can be aggregated to form a cell clump or cultured, and they can be observed or examined. Regardless of whether the elastic body of the cell holding container is in a flat plate shape or a concavo-convex shape, the cell holding container does not deteriorate the visibility. Therefore, even if it is an open cell holding container, a closed cell holding container Even so, the cells held on the elastic body can be observed using a microscope.
  • this cell holding container can form a cell aggregate of a uniform size on an elastic body molded or deformed into an uneven shape, and efficiently subcultures without damaging the cells. be able to.
  • the thickness of the elastic body can be set to 0.1 mm or less that enables reversible deformation into an arbitrary shape, and excellent workability is exhibited even at such a thin thickness. be able to. Thereby, it is excellent in stretchability, can be reversibly deformed, can be deformed into an arbitrary shape, and can be restored to its original shape without distortion.
  • the elastic body can be reversibly deformed at an arbitrary timing, so that visibility can be improved as needed, and cells can be held without mixing bubbles in the cell holding container. Or it can be cultured.
  • uniform subculture can be performed efficiently while maintaining the undifferentiated state of the cells without damaging the cells. Further, according to this cell culture method, it is possible to cultivate while stabilizing the fixing position of the cell without mixing bubbles in the well of the cell holding container, and moreover, selectively elastic body of the cell holding container Therefore, it is excellent in visibility, and the cell state can be observed and inspected before and after the culture and during the culture from the outside.
  • FIG. 2 is a schematic perspective view of a cell holding container to which the present invention is applied and a schematic cross-sectional view taken along the line AA. It is a model perspective view which shows before and after a deformation
  • FIG. 4 is a schematic plan view of another deformable elastic body of a cell holding container to which the present invention is applied and a schematic cross-sectional view taken along the line AA.
  • FIG. 4 is a schematic plan view of another deformable elastic body of a cell holding container to which the present invention is applied and a schematic cross-sectional view taken along the line AA.
  • FIG. 4 is a schematic plan view of another deformable elastic body of a cell holding container to which the present invention is applied and a schematic cross-sectional view taken along the line AA.
  • FIG. 4 is a schematic plan view of another deformable elastic body of a cell holding container to which the present invention is applied and a schematic cross-sectional view taken along the line AA. It is a model perspective view of another cell holding container to which this invention is applied. It is a schematic plan view of another cell holding container to which the present invention is applied.
  • FIG. 8 is a schematic cross-sectional view taken along arrow AA in FIG. 7. It is a schematic cross section which shows the process of deform
  • One form of the cell holding container of the present invention is an open cell holding container having an elastic body formed of a rubber material, which is an inducible pluripotent stem cell (iPS cell) or embryonic stem cell (ES cell).
  • iPS cell inducible pluripotent stem cell
  • ES cell embryonic stem cell
  • the open cell holding container will be described with reference to FIG.
  • the cell holding container 1 of the present invention has an elastic body 20 made of a rubber material, a side wall 2 surrounding the periphery, and a support 7 for fixing the elastic body 20. As shown in FIGS. 1A and 1B, the elastic body 20 of the cell holding container 1 is partially sandwiched between the support 7 and the side wall 2, and the side wall 2 is inserted into the groove 8 of the support 7. It is physically fixed by combining.
  • a sheet-like elastic body 20 is stacked on a frame-like support body 7 having a groove 8, and a part of the side wall 2 is fitted into the groove 8 of the support body 7 from above.
  • the elastic body 20 can be fixed.
  • the elastic body 20 has an appropriate tension without being distorted or bent due to its elasticity and stretchability, and the cell contact surface 21 that holds cells and the cell non-contact surface 22 that is outside on the opposite side are flat. Shape.
  • the cell holding container 1 can hold cells by adhering them on the elastic body 20, and can perform culture, observation, and inspection.
  • the cell holding container 1 may hold cells in a uniform or non-uniform dot shape on a part of the cell contact surface 21 surrounded by the side wall 2 with the elastic body 20 as a bottom, and is surrounded by the side wall 2.
  • the whole cell contact surface 21 may be immersed to hold the cells.
  • the inside surrounded by the side wall 2 becomes the culture chamber 4.
  • Such a cell culture container 1 is in a state in which the cell contact surface 21, that is, the culture chamber 4 is opened, and it is easy to selectively remove and collect cells without requiring a complicated process, and is easy to work with. It is expensive. Furthermore, according to this cell culture container 1, it can work efficiently, maintaining a cell state, without damaging a cell.
  • the elastic body 20 forming the cell holding container 1 is made of a rubber material containing at least an addition-crosslinking silicone rubber as a rubber component.
  • the rubber component may be an addition-crosslinking type silicone rubber or a condensation type silicone rubber, and is composed of at least one of those silicone rubbers, ethylene propylene diene rubber (EPDM), fluorine rubber, and fluorine elastomer. It may contain at least one selected. These fluororubbers and fluoroelastomers can be kneaded in a rubber material in a non-melting manner.
  • the elastic body 20 is preferably made of only an addition-crosslinking type silicone rubber as a rubber component from the viewpoint of processability.
  • addition-crosslinking silicone rubber examples include LSR7005, LSR7030, LSR7060, LSR7070, and LSR7080 manufactured by Momentive Performance Materials Japan GK.
  • the rubber material may contain a filler.
  • a filler it is preferably contained in the addition-crosslinking silicone rubber.
  • the rubber component contains ethylene propylene diene rubber (EPDM), fluorine rubber, or fluorine elastomer in addition to the addition-crosslinking type silicone rubber, it is preferably contained in a rubber component other than fluorine rubber and fluorine elastomer.
  • EPDM ethylene propylene diene rubber
  • fluorine rubber, or fluorine elastomer in addition to the addition-crosslinking type silicone rubber
  • a filler can be contained in other rubber components.
  • the filler examples include dry silica powder, wet silica powder, and a mixture thereof. When only the addition-crosslinking silicone rubber is used as the rubber component, it is more preferable that dry silica powder is blended. When these fillers are cultured on the elastic body 20, cells can be stably cultured. Moreover, adhesiveness with other members like the side wall mentioned later can be improved because this rubber material contains a filler. In the case of using no filler, in the case of using dry silica up to 20 phr, or in the case of using wet silica up to 5 phr, the cell holding container is extremely excellent in culturing and visibility, but in the case of using a wet silica of 20 phr or more, Visibility is somewhat reduced.
  • the filler content varies depending on the type of filler and the type of rubber component, the maximum content is 40 parts by mass with respect to 100 parts by mass of all rubber components, and preferably 5 to 40 parts by mass. When the content of the filler exceeds 40 parts by mass, the culturing property tends to be lowered.
  • the content is preferably 0 to 20 parts by mass from the viewpoint of cultureability.
  • wet silica powder the amount is preferably 0 to 20 parts by mass from the viewpoint of cultureability, and preferably 0 to 5 parts by mass from the viewpoint of visibility.
  • EPDM in the rubber component
  • the amount is preferably 0 to 30 parts by mass from the viewpoint of cultureability.
  • wet silica powder is used, the amount is preferably 0 to 20 parts by mass from the viewpoint of cultureability, and preferably 0 to 5 parts by mass from the viewpoint of visibility.
  • the elastic body 20 formed of such a rubber material is preferably transparent and excellent in visibility from the viewpoint of facilitating microscopic observation using a phase contrast microscope or the like, and more preferably colorless and transparent. preferable. From the viewpoint of transparency, it is preferable that the amount of filler added to the rubber material is as small as possible.
  • the elastic body 20 has elasticity and deforms from a planar shape to an uneven shape as necessary when forming a cell agglomeration, culturing, observing, or inspecting by holding cells. Can be restored to the original shape, and can be reversibly deformed.
  • the uneven shape is a shape having a plurality of or a single dent or protrusion on a part of the elastic body 20. For example, when an external force is applied to the elastic body 20 from the cell contact surface 21 toward the cell non-contact surface 22, the elastic body 20 is deformed into a concavo-convex shape having a recessed dent, and conversely, from the cell non-contact surface 22 to the cell contact surface.
  • the surface When an external force is applied toward 21, the surface is deformed into an uneven shape having an uneven protrusion. It can be deformed to any shape as needed, and can easily be eliminated and returned to its original shape without distortion. For example, depending on the situation, cell clumps of seeded cells can be formed Therefore, it can be deformed into a concavo-convex shape, or the concavo-convex shape can be eliminated in order to improve visibility during observation and inspection of cultured cells.
  • the case of the elastic body 20 including a plurality of soft portions 24 and hard portions 23 is illustrated.
  • the cell contact surface 21 and the cell non-contact surface 22 of the elastic body 20 both have a planar shape.
  • the hard portion 23 is not deformed, and the plurality of soft portions 24 extend outwardly to form an open quadrangular pyramid recess 25 and deform.
  • the process returns to the strain without the original shape.
  • the dent 25 formed in this way can hold cells, and can form, culture, and observe cell clumps.
  • the recess 25 can be used as a well for forming a cell clump.
  • This well is referred to as a “microwell” in order to distinguish it from a well for partitioning a multiplate culture chamber used for normal cell culture.
  • a well having an opening of one side or a diameter of 1 mm or more is excluded. It is not an intended term and includes wells having openings with sides or diameters of 1 mm or more.
  • the microwell may be referred to as a “dent”.
  • the shape of the microwell is preferably a shape in which precipitated cells gather, and the inner periphery of the microwell has a shape that becomes concave as it approaches the bottom surface.
  • the microwell has a mirror-polished surface and has a rounded tip at the top of the depression.
  • the size of the microwell can be appropriately selected according to the cell aggregate desired to be prepared, and a larger one than the size of the cell aggregate desired to be prepared can be selected.
  • the shape of the opening of the microwell can be appropriately selected in consideration of the ease of processing and the shape in which a large number of wells can be arranged.
  • the shape of a polygon such as a triangle, a quadrangle, a hexagon, or a circle Can have a shape.
  • the size of the opening of the microwell can be selected depending on the size of the cell clump to be formed. For example, an opening having an area equivalent to a circle having a diameter of 100 ⁇ m to 3 mm, a diameter of 200 ⁇ m to 800 ⁇ m, or a diameter of 400 ⁇ m to 600 ⁇ m can be provided.
  • the cell clumps to be formed are preferably uniform in size, and from the viewpoint of aligning the size of the cell clumps to be formed, the plurality of microwells formed on the elastic body 20 of the cell holding container 1 are: It is preferable that the shape is uniform and the size is equal. It becomes easy to disperse the cells in the microwells relatively uniformly, and as a result, it becomes possible to form a cell clump having a uniform size.
  • a large number of microwells are arranged in the elastic body 20, and there is no gap between adjacent wells so that there is no flat portion between adjacent wells. It is preferable that the gaps are arranged in parallel with regularity so as to minimize the gap. In addition, from the viewpoint of uniformly seeding the cell aggregate formed in the cell culture method on the culture surface, it is preferable that the microwells are aligned on the plane at equal intervals.
  • Such a deformable elastic body 20 can be deformed into an arbitrary shape, and may be an elastic body 20a including a plurality of soft portions 24 and hard portions 23 as shown in FIG. As shown in FIG. 5, the elastic body 20 b may be partially different in thickness, or as shown in FIG. 5, the elastic body 20 c may be provided with a hard frame 26 that forms a plurality of openings 29.
  • FIG. 3A is a schematic plan view of a cell non-contact surface 22 of an elastic body 20a composed of a soft portion 24 that is a deformed portion and a hard portion 23 that is a non-deformed portion.
  • a cross-sectional view is shown in FIG.
  • the hard portion 23 does not deform as shown in FIG. 2, and for example, a plurality of soft portions 24a 1 , 24a existing in the respective cells or lattices thereof. 2 , 24 a 3 , 24 a 4 are attracted to form a recessed dent and extend outward and deform.
  • the hard portion 23 is not deformed, and the soft portions 24a 1 , 24a 2 , 24a 3 , 24a 4 are pressed to form an undulating protrusion. Deforms by extending in the direction.
  • the hard portion 23 that is an undeformed portion.
  • an elastic body 20a having a soft portion 24 that is a deformed portion and gradually changing the hardness thereof.
  • the hardness of the film gradually decreases from the soft part 24a 1 to the soft part 24b 1, and the hardness becomes the lowest in the soft part 24b 1 , which is the part forming the bottom end of the microwell, and from there to the soft part 24a 1 Processing can be performed so that the hardness is gradually increased and the hardness of the hard portion 23 which is a non-deformed portion is the highest.
  • the hard portion 23 having a plurality of grids or lattices and having a rectangular hole is not deformed, and the soft portions 24b 1 , 24b 2 , 24b 3 , 24b 4 are recessed.
  • the soft portions 24a 1 , 24a 2 , 24a 3 , 24a 4 and the soft portions 24b 1 , 24b 2 , 24b 3 , 24b 4 are deformed into, for example, a quadrangular pyramid shape.
  • the hard part 23 may be one in which circular holes arranged vertically and horizontally are opened and the hole is a soft part.
  • the elastic body 20 having these hard part 23 and soft part 24 is one in which the hardness of the elastic body 20 is adjusted.
  • the hard portion 23 may be formed of the same rubber material as that of the soft portion 24, but may be any member as long as it does not cause a change in shape due to an external force.
  • Such an elastic body 20 can be formed by a known method such as an insert molding method.
  • FIG. 4A is a schematic plan view of the cell non-contact surface 22 of the elastic body 20b in which the height is formed so that the deformed portion is thinner than, for example, a plurality of grid-shaped or lattice-shaped non-deformed portions, A schematic cross-sectional view taken along the line AA is shown in FIG.
  • the elastic body 20b has a thin cell portion 27 formed and processed so that the cell contact surface 21 is flat and the cell non-contact surface 22 has a different thickness between the deformed portion and the non-deformed portion. .
  • the thick portion 28 that is a non-deformation portion is not deformed, and a plurality of thin portions 27a 1 , 27a 2 , 27a 3 , 27a 4 are attracted and recessed. A dent is formed and deforms by extending outward.
  • the thick portion 28 that is also a non-deformed portion is not deformed, and the thin portions 27a 1 , 27a 2 , 27a 3 , 27a 4 are pressed and undulated convexity It forms a ridge and deforms by extending inward.
  • the thickness differs between the deformed portion and the non-deformed portion, and the deformed portion does not deform.
  • the elastic body 20b which changed thickness gradually to the location may be sufficient. Processing is performed so that the thickness gradually decreases from the thick portion 28, which is an undeformed portion, to the top of the recess, and the portion forming the bottom end of the microwell becomes the thinnest, and gradually increases from there to the thick portion 28. be able to.
  • FIG. 5A is a schematic plan view of the cell non-contact surface 22 of the elastic body 20c in which, for example, a substantially rectangular hard frame 26 forming a plurality of openings 29 is attached to the cell non-contact surface 22.
  • a schematic cross-sectional view taken in the direction of arrow A is shown in FIG.
  • the hard frame 26 corresponds to a non-deformed portion, and a region corresponding to the opening 29 of the hard frame 26 corresponds to a deformed portion.
  • the region corresponding to the opening 29 can be deformed, forming a dent recessed in the cell contact surface 21 and extending outward and deforming.
  • the elastic body 20 is an example of a deformable elastic body formed so as to be reversibly deformable by receiving an external force. It may be a non-deformable elastic body molded or formed to have such an arbitrary shape.
  • the hardness of the deformable or non-deformable elastic body 20 is preferably A5 / S to A90 / S in Shore A hardness.
  • the deformable elastic body 20 is preferably A40 / S or less, and if it exceeds A40 / S, the adhesion tends to be lowered.
  • the hardness of the elastic body 20 is partially adjusted as shown in FIGS. 3B and 3C, the hardness of the deformed portion is A5 / S to A30 / S, and the hardness of the non-deformed portion is A50 / S. ⁇ A90 / S is preferable.
  • the thickness of the deformable or non-deformable elastic body 20 is not particularly limited, but is preferably 0.05 mm to 2.00 mm.
  • the deformable elastic body 20 is preferably 0.1 mm or less, and when it exceeds 0.1 mm, it is difficult to deform.
  • the thickness of the elastic body 20 is partially adjusted as shown in FIGS. 4B and 4C, the thickness of the deformed portion is 0.05 mm to 0.30 mm, and the thickness of the non-deformed portion is 0.50 mm to 2 mm. 0.000 mm is preferable.
  • the tensile strength of the deformable elastic body 20 is preferably 3.5 MPa or less, and when it exceeds 3.5 MPa, it becomes difficult to suck when applying the external force as described above.
  • the cell holding container 1 may be an elastic body 20 in which at least the cell adhesion surface 21 at the bottom is made of a rubber material, and the bottom, the side wall 2 and the support 7 are the same or different, and are made of the same rubber material. It may be made of rubber or made of plastic material such as polystyrene, polypropylene, polycarbonate, and acrylic.
  • the cell holding container 1 includes a plurality of cell-shaped supports having grooves and a cell-shaped side wall that can be fitted into the grooves, thereby dividing the cell contact surface 21 into a plurality of cells. Also good. Further, the cell holding container 1 may be a flat dish such as a petri dish having an elastic body 20 formed of a rubber material and serving as a bottom and a side wall 2 surrounding the periphery. The cell holding container 1 can chemically fix and fix the flat elastic body 20 and the side wall 2 via an adhesive such as an acrylic-modified silicone resin. In the elastic body 20 of the cell holding container 1, both the cell contact surface 21 and the cell non-contact surface 22 are planar as described above. The shape of the container 1 is not particularly limited, and various shapes such as a circle, an ellipse, and a polygon can be used.
  • the elastic body 20 is an elastomer for adhesion culture of iPS cells or ES cells, and at least one of these cells is aggregated to form a cell clump, culture, or observe
  • adherent cells and floating cells can also be used for aggregation, cell clump formation, culture, observation, and inspection.
  • adherent cells include pluripotent stem cells, stem cells, progenitor cells, somatic cells, and germ cells
  • floating cells include blood cells, T cells, and B cells. As floating cells, T cells and B cells are preferred.
  • the cell holding container 1 of the present invention is a plate made of an elastic body 20 made of a rubber material, and has a plurality of recesses 25 in which the cell contact surface 21 on the upper side is recessed in a quadrangular pyramid.
  • the cell non-contact surface 22 which is an uneven
  • the cell holding container 1 is open on the cell contact surface 21 side, and holds cells in the recess 25 of the elastic body 20, and aggregates the cells seeded and seeded in the recess 25 to form a cell clump. They can be cultured and observed or inspected.
  • the cell non-contact surface 22 of the elastic body 20 is not limited to a planar shape, and may have a concavo-convex shape corresponding to the cell contact surface 21.
  • the cell non-contact surface 22 is preferably mirror-polished.
  • the elastic body 20 may be a deformable elastic body or a non-deformable elastic body.
  • FIG. 7 is a schematic plan view above the cell holding container
  • FIG. 8 is a schematic cross-sectional view taken along the line AA in FIG.
  • This cell holding container 1 has an injection port 5 and a discharge port 6, and a culture chamber 4 and a channel 3 are formed by the elastic body 20 and the side wall 2.
  • the cell holding container 1 can be formed by adhering the side wall 2 that forms the culture chamber 4 and the flow path 3 to a flat elastic body 20 via an adhesive such as an acrylic-modified silicone resin.
  • the culture chamber 4 of the cell culture container 1 has cell adhesion on part or all of the surface of the cell contact surface 21 that is the inner surface of the elastic body 20.
  • the culture chamber 4 is filled with a cell-containing solution such as a cell suspension or a cell culture solution serving as a medium.
  • a cell detachment solution or a cell recovery solution is also sent as necessary.
  • a plurality of culture chambers 4 are connected by a flow path 3, and an inlet 5 and an outlet 6 for liquid to be fed are formed.
  • the inlet 5 is an inlet for liquid to be fed
  • the outlet 6 is an outlet for liquid to be fed.
  • the liquid fed from the inlet 5 flows into the culture chamber 4 from any one of the flow channels 3 formed at both ends of the culture chamber 4 and then flows out from the other flow channel 3. . Thereafter, it flows into the next culture chamber 4 and flows out from the flow path 3 connected thereto, and is finally discharged from the discharge port 6 by a unidirectional flow.
  • This stable unidirectional flow is preferable because the cell suspension can be uniformly seeded when the cell suspension is injected into the cell holding container 1 and the cells are seeded in the culture chamber 4.
  • the unidirectional and stable flow can uniformly perfuse the cell culture solution to be sent when the seeded cells are cultured.
  • the cell holding container 1 is not limited to a shape in which a plurality of culture chambers 4 are connected by a flow path 3, and each culture chamber 4 includes an inlet 5 and an outlet 6 through the flow path 3, respectively. It may be formed. Moreover, it is not restricted to what the culture chamber 4 was formed in multiple numbers, and may be only one. Furthermore, the injection port 5 and the discharge port 6 do not necessarily have to be provided separately, and may be provided integrally.
  • the elastic body 20 forming the cell holding container 1 may be a deformable elastic body in which both the cell contact surface 21 and the cell non-contact surface 22 are formed in a flat plate shape having a planar shape, and is previously processed by a mold. It may be a non-deformable elastic body.
  • the region forming the culture chamber 4 is deformable.
  • deformable elastic bodies 20a, 20b, and 20c as shown in FIGS. 3 to 5 can be used as described above.
  • it can be reversibly deformed.
  • part or all of the region forming the culture chamber 4 of the elastic body 20 undulates toward the culture chamber 4.
  • the non-deformable elastic body 20 is one in which the cell contact surface 21 is previously formed into an uneven shape.
  • the cell non-contact surface 22 may have a planar shape, or may have a concavo-convex shape corresponding to the cell contact surface 21.
  • the concavo-convex shape of the cell contact surface 21 is such that a plurality of open quadrangular pyramid depressions 25 are formed in a region of the cell contact surface 21 where the culture chamber 4 is formed.
  • the slope of the recess 25 and the cell non-contact surface 22 are preferably mirror-polished.
  • the dent 25 of the deformable or non-deformable elastic body 20 in such a cell holding container is the same as the microwell of the cell holding container exemplified above, and holds cells and forms and cultures cell aggregates. Can observe and inspect.
  • the side wall 2 may be formed of the same or similar rubber material as the elastic body 20, or may be formed of another material.
  • the side wall 2 is preferably transparent with excellent visibility from the viewpoint of microscopic observation.
  • the visibility is improved from the relationship between the refractive index of the rubber material and the refractive index of the cell culture medium (medium) filling the culture chamber 4, Easy observation with a microscope.
  • Most of the cell culture medium (medium) filling the culture chamber 4 is water and has a refractive index of 1.33.
  • the refractive index of the addition-crosslinking silicone rubber is 1.40 to 1.43, which holds the cells.
  • the state of cell culture can be directly viewed from the outside of the container 1 and can be easily observed with a microscope or the like.
  • the side wall 2 is not limited to rubber made of a rubber material, and may be made of plastic made of polystyrene, polypropylene, polycarbonate, acrylic, or the like.
  • the surface to which the cells are adhered has cell adhesiveness and the other surface has cell non-adhesiveness.
  • the culture chamber 4 can have cell adhesiveness in all or part of the formed or molded recess 25 to be its well, and cell adhesiveness may be selectively given to the necessary portion. .
  • the culture chamber 4 has cell adhesiveness on the slope of the recess 25, the cells can be fixed on the slope.
  • the culture chamber 4 does not have cell adhesiveness on the slope of the recess 25, the culture chamber 4 can aggregate at the apex of the recess of the recess 25 without fixing cells on the slope.
  • cell non-adhesiveness may be selectively imparted on a surface other than the surface to which the cells are adhered. By preventing cell adhesion on a surface other than the surface to which the cells are adhered, the cell clump can be efficiently separated after the cell clump is formed.
  • the cell adhesion surface can be given cell adhesion by a cell adhesion coating.
  • a cell adhesion coating for example, when a cell adhesive basement membrane matrix such as Matrigel (trademark) (manufactured by Nippon Becton Dickinson Co., Ltd.) is used, the cell adhesive coating can be applied to the adhesive surface.
  • a well-known method can be used as a coating method using a commercially available coating agent.
  • cell adhesion may be imparted by irradiating with ultraviolet rays (UV) or plasma.
  • the cell non-adhesive surface can be provided with cell non-adhesiveness by a cell non-adhesive coating.
  • the cell non-adhesive coating is not particularly limited as long as it is a cell non-adhesive coating.
  • celluloses such as methyl cellulose, hydroxyethyl cellulose, hydroxypropyl cellulose, hydroxypropyl methyl cellulose, carboxymethyl cellulose sodium; polyethylene oxide Carboxyvinyl polymer; polyvinyl pyrrolidone; polyethylene glycol; polylactic acid; polyamides such as polyacrylamide and poly N-isopropylacrylamide; chitin, chitosan, hyaluronic acid, alkyd acid, starch, pectin, carrageenan, guar gum, gum arabic, dextran, etc.
  • Examples include coatings with polysaccharides and their non-cell-adhesive derivatives. From the viewpoint of high transparency and good visibility, polyethylene glycol is preferred.
  • the cell holding container 1 of the present invention has a covering member such as a lid, a sheet, a film, a plate, or a substrate that is detachable so as to temporarily cover the cell contact surface 21, the culture chamber 4, or the flow path 3 as necessary. It may be a thing. Further, a covering member such as a flat plate-shaped substrate is brought into contact with the cell contact surface 21 of the elastic body 20 so as to seal and seal the culture chamber 4 and the flow path 3 so as to be non-detachable and closed. It may be an adhered cell holding container.
  • a side wall 2 that forms a culture chamber 4 and a flow path 3 is interposed between a flat elastic body 20 and a substrate that is a flat plate-shaped covering member disposed opposite thereto. However, it is bonded.
  • the elastic body 20 and the substrate each form the culture chamber 4.
  • the culture chamber 4 which has a cell adhesion surface can be formed because the surface of either the inner surface of the elastic body 20 or the inner surface of the substrate has cell adhesion.
  • either one of the inner side surface of the elastic body 20 and the inner side surface of the substrate has cell adhesiveness and the other surface has cell non-adhesiveness, a cell adhesion surface and a cell non-adhesion surface can be obtained.
  • Culture chambers 4 arranged to face each other can be formed. This cell adhesiveness may be applied to all or some of the inner surface of the elastic body 20 and the inner surface of the substrate. Moreover, it may be attached to all or part of the region to be the culture chamber 4.
  • the covering member may be made of rubber formed of the same or similar rubber material as that of the elastic body 20, or may be made of plastic formed of polystyrene, polypropylene, polycarbonate, acrylic, or the like.
  • the covering member is preferably a gas permeable membrane from the viewpoint of maintaining the oxygen concentration and carbon dioxide concentration in the culture chamber 4, and is, for example, a commercially available product using a polystyrene gas permeable membrane for cell culture. it can.
  • the gas permeable membrane plays an important role in supplying oxygen or the like to the culture medium in the culture chamber 4.
  • the cell holding container 1 using a gas permeable membrane as a covering member when recovering the cells cultured in the cell culture method, the cells can be effectively detached from the membrane surface by ultrasonic vibration. This is advantageous in that the method has more options.
  • the volume of the culture chamber 4 varies with the deformation of the elastic body 20, and the discharge port It is necessary to discharge from 6 and adjust.
  • the covering member is formed of the same rubber material, the volume variation of the culture chamber 4 due to the elastic body 20 being deformed into an uneven shape can be absorbed by the expansion and contraction of the covering member. Thereby, even if the elastic body 20 is deformed into a concavo-convex shape after sealing the inlet 5 and the outlet 6 using a rubber plug or the like, the risk of liquid leakage from the inlet 5 and the outlet 6 can be suppressed.
  • the cell holding container 1 can be used as a cell holding system for aggregating cells on an elastic body 20 made of a rubber material to form a cell clump, culturing, observing or inspecting. .
  • the cell holding system only needs to include the cell holding container 1 and deformation means for deforming the elastic body 20. With this cell retention system, adherent cells and floating cells can be retained on the elastic body 20, and uniform and efficient maintenance culture and subculture can be performed.
  • a cell culture method using the cell holding container 1 will be described below.
  • the elastic body 20 of the cell holding container 1 is deformed from a flat plate shape to an uneven shape having a recess 25. And a step of deforming the elastic body 20 so as to return the concavo-convex shape to a flat plate shape after seeding cells in a recess formed by deformation of the elastic body 20 to form a cell clump. How to do it.
  • the cells 90 dispersed at the time of passage may contain cell clusters (hereinafter sometimes simply referred to as “cells”), and in adhesion culture, cells may be separated by a physiological or physical exfoliation method. Pluripotent stem cells detached from the adhesive surface can be used.
  • a known method can be used, and examples thereof include a method using an enzyme and a method using a chemical substance having a cell detaching action.
  • the enzyme an enzyme used in a conventional method can be used, and examples thereof include trypsin, dispase, actase, collagenase and the like.
  • the chemical substance having a cell detaching action include chelating agents of divalent ions (particularly Mg 2+ ) such as ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA). These enzymes and chemical substances having a cell detaching action may be used alone or in combination.
  • a well-known method can be used, for example, a method of applying vibration such as high-frequency vibration to the cell adhesion surface or a method of using a cell scraper. Can be mentioned. These physiological exfoliation methods and physical exfoliation methods are appropriately selected and can be used alone or in combination.
  • the cell mass can be dissociated to the single cell level.
  • the dissociation of the cell mass may be performed simultaneously with the detachment of the cell from the culture surface, or may be performed after the cell mass is detached.
  • the detached cell mass is dissociated to a single cell level by, for example, pipetting water flow. Can be dispersed.
  • “Disperse to single cell level” means disperse after dissociating the cell mass so that the average number of cells contained per cell mass is 1 to 100, preferably 1 to 10 Means dissociating completely into single cells and then dispersing.
  • the cell mass may be dissociated after being completely dissociated into single cells and may be dispersed after being dissociated so as to be mostly single cells, and most of them are 1 to 100, preferably May be dissociated into a cell mass composed of 1 to 10 cells and then dispersed.
  • the cell mass after dispersion is large, when the cell mass is seeded in the microwell, the number of cells seeded in each microwell tends to vary, and thus the cell mass after dispersion is preferably small.
  • the cell mass separated from the culture surface may be dispersed to the single cell level by further processing using an enzyme.
  • an enzyme that can be used to dissociate a cell to a single cell level a well-known enzyme can be used, for example, an enzyme capable of cleaving a cell-cell bond or a cell-extracellular. Mention may be made of enzymes capable of cleaving the bond between the substrates (ECM). Dissociation of the cell mass using an enzyme or a water stream can be automated.
  • a compound that suppresses adverse effects on cells such as cell death caused by dispersing cells 90 in a suspension of dispersed cells 90 such as Y A ROCK inhibitor such as -27632 can be added.
  • the step of deforming the elastic body 20 is to deform the elastic body 20 outward as shown in FIG.
  • the deforming means 30 can be arranged to form a cell holding system, and the elastic body 20 can be deformed by reducing the pressure.
  • the step of deforming the elastic body 20 so as to return the concavo-convex shape to a flat plate shape is performed by eliminating the reduced pressure state to thereby release the elastic body 20.
  • the deformation of can be released.
  • the deformed elastic body 20 can return to the original flat plate shape without distortion while the cell clumps are held on the cell contact surface 21. By releasing the deformation, the visibility is greatly improved. Can be improved.
  • the deforming means 30 is inhaled or air-fed by an air-feeding means connected to an uneven surface 31 that is a surface facing the cell non-contact surface 22 of the elastic body 20 of the cell holding container 1. And a single or a plurality of recesses 35.
  • a part of the concavo-convex surface 31 comes into contact with the cell non-contact surface 22 of the elastic body 20 of the cell holding container 1, thereby forming a vacuum chamber composed of the respective recesses 35 with the elastic body 20.
  • This vacuum chamber can change the shape of the elastic body 20 by being depressurized or pressurized by the air suction means.
  • the vacuum chamber is depressurized by being sucked through the suction port 33 and is pressurized by being fed.
  • the air suction means may be any means that can suck air from the vacuum chamber and can feed air to the vacuum chamber.
  • the vacuum refers to a state where the pressure is reduced from atmospheric pressure.
  • Example 1 A 0.05 mm thick rubber plate made of a rubber material of addition-crosslinking silicone rubber (made by Momentive Performance Materials Japan GK) as an elastic material is placed in a polystyrene culture vessel with a silicone adhesive (cemedine). A cell holding container was prepared by bonding with Cemedine Super X), and the cells were seeded on the rubber plate. Further, wet silica powder (Nippal Seal VN3, manufactured by Tosoh Silica Co., Ltd.) and dry silica powder (Nippon Aerosil Co., Ltd., Aerosil 200) were used as fillers added to the rubber material. As UV sterilization treatment, a GL15 sterilization lamp (manufactured by Toshiba Corporation) was used.
  • a GL15 sterilization lamp manufactured by Toshiba Corporation
  • the irradiation conditions were a distance of 1 m and an irradiation time of 24 hours.
  • Table 1 shows the results of UV observation on each rubber plate, visibility with a microscope, workability with a rubber plate thickness of 0.1 mm or less, and observation of culture conditions with a microscope.
  • Example 1 A cell holding container was prepared by the same method and conditions as in Example 1 except that the rubber material was changed from addition-crosslinking silicone rubber to EPDM (manufactured by JSR Corporation) and fluororubber (manufactured by Daikin Industries, Ltd.). Sowing. Table 1 below shows the results of observing with a microscope the visibility, workability, and culture state of each rubber plate as a result of UV treatment.
  • Example 2 As in Example 1, cells were seeded on a rubber plate of organic peroxide type silicone rubber (Momentive Performance Materials Japan GK TSE221-5U) as an elastic body, but could not be cultured. .
  • organic peroxide type silicone rubber Momentive Performance Materials Japan GK TSE221-5U
  • the cell holding container of the present invention is useful as a container for cell clump formation, cell culture, observation, and inspection of various cells such as adherent cells and floating cells such as inducible pluripotent stem cells and embryonic stem cells It is.
  • the cell culture system and cell culture method using this cell holding container are useful for culturing floating cells or adherent cells, and can be used for maintenance culture and subculture of these cells.
  • 1 is a cell holding container
  • 2 is a side wall
  • 3 is a flow path
  • 4 is a culture chamber
  • 5 is an injection port
  • 6 is a discharge port
  • 7 is a support
  • 8 is a groove
  • 20, 20a, 20b, and 20c are elastic bodies
  • 21 is a cell contact surface
  • 22 is a cell non-contact surface
  • 23 is a hard portion
  • 24, 24a 1 , 24a 2 , 24a 3 and 24a 4 are soft portions
  • 25 is a recess
  • 26 is a hard frame, 27, 27a 1 and 27a.

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Abstract

細胞の保持が可能なゴム材料で形成された弾性体上で細胞集塊の形成や培養をすることができ、ダメージを与えることなく細胞の未分化状態を維持しつつ、効率良く均一な継代培養をすることができ、選択的な細胞の除去や回収が可能で、加工性が高く視認性に優れ外方向から細胞状態の観察や検査が可能な細胞保持容器を提供する。　細胞保持容器(１)は、幹細胞、前駆細胞、体細胞及び生殖細胞から選ばれる接着細胞と、血球系細胞、Ｔ細胞及びＢ細胞から選ばれる浮遊細胞との少なくとも何れかを含む細胞を保持する弾性体(２０)を有し、弾性体(２０)が、付加架橋型シリコーンゴムを含有するゴム成分を含み前記細胞を保持できるゴム材料で、形成されているものである。

Description

細胞保持容器及びそれを用いた細胞培養方法
　本発明は、ゴム材料で形成された弾性体上に誘導性多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）や胚性幹細胞（ＥＳ細胞）を、凝集させて細胞集塊を形成したり培養したりする細胞保持容器、及びそれを用いた細胞培養方法に関するものである。
　従来から接着細胞や浮遊細胞など様々な細胞の継代培養が行われている。例えば、接着細胞は、培養容器に接着して増殖した細胞を、セルスクレーパーやピペッティングなどを用いた物理的方法や酵素を用いた生理学的方法により剥離して、新鮮な培地を含む新たな培養容器に播種し、継代することで培養される。なかでも接着細胞である多能性幹細胞は、単一細胞化すると細胞死を起こし易いため、細胞塊の状態で継代する必要があり、例えば、多能性幹細胞をコロニーとして剥離し、ピペッティングなどで適当な大きさの細胞塊に砕き、その後新しい培養容器に播種されて継代培養される。
　この様な継代培養において、物理的方法である剥離手段を用いた場合では、非常に大きなダメージを細胞へ与えてしまう問題が生じる。一方、生理学的方法である剥離手段を用いた場合では、物理的方法ほどでは無いが細胞にダメージを与え、さらに細胞に対する酵素反応が不均一であったり単一細胞まで分化させると細胞が死滅したりする問題が生じる。また、ピペッティング作業を行う場合、細胞塊の大きさが変化したり、均等な細胞塊が得難かったりすることで、継代後の培養において生じるコロニーの大きさがばらつく問題が生じる。この様な各コロニーの大きさのばらつきは、一部が一定の大きさに達したとしても他のコロニーが十分に培養されていない状態を引き起こし、細胞の品質管理に悪影響を与え、生産効率の低下を招く原因となる。
　これらの剥離手段による細胞へのダメージや継代培養におけるコロニーの不均一を改善するものとして、例えば、特許文献１に生体高分子からなるナノファイバーを含有してなる多能性幹細胞の維持増幅培養用基材及びそれを用いた培養方法が開示されている。この基材を用いることで、継代時に酵素処理を行うことなくわずかなピペッティング操作のみで単一細胞まで分散させることができ、細胞死の割合を抑制しつつ均一化された細胞を得ることが可能となる。
　また、この多能性幹細胞は、分化し易く、一度分化を開始すると未分化状態に戻すことが困難なため、細胞を分化し易い状態に変化させずに維持培養することを必要とする。さらに、培養中に細胞が分化を開始した場合には、周囲の細胞に悪影響を及ぼしたり、未分化細胞の収率や純度を低下させたりするため、分化を開始した細胞を培養容器から除去する必要がある。
　細胞培養には、開放系培養と閉鎖系培養とが用いられ、ディッシュを用いた通常の開放系培養では、培地の交換や継代培養において、ディッシュの蓋を開けて作業が行われるため、アスピレータやマイクロピペットをディッシュに挿入し、分化を開始した細胞を吸引除去することができる。開放系培養は、安価で操作性に優れ、研究用として有用である。一方、閉鎖系培養では、アスピレータを挿入することができないため、培養途中で分化を開始した細胞を選択的に除去することは困難である。その反面、閉鎖系培養は、開放系培養に比べてコンタミネーションの発生率や感染リスクを軽減させることが可能であるため医療用として有用であり、簡便な操作により分化を開始した細胞を選択除去することが可能な技術や構造が望まれている。
　閉鎖系培養においても選択的な細胞の除去や回収を可能とする方法として、例えば特許文献２に、高周波振動により接着面から領域選択的に細胞を剥離させる方法が開示されている。この方法によれば、閉鎖系又は開放系の培養容器の接着面から非接触的な手段で選択的に細胞を剥離させることが可能となる。
　また、閉鎖系培養及び開放系培養を問わずマルチプレートのように細胞集塊を形成させるための窪んだ凹みであるウェルが成型されている容器を用いた細胞培養方法及び継代培養では、そのウェル内の細胞を観察するため、視認性に優れたものを用いる必要がある。この細胞培養方法は、培養する細胞を分散させた細胞懸濁液を容器内に導入し、ウェル内に細胞を沈降させて播種し、細胞集塊を形成して、それを培養し、必要に応じてピペッティング操作や高周波振動や細胞剥離液の送液により培養した細胞を回収する方法である。さらに、これらの工程を繰返すことで継代培養することができる。
　しかし、この様な予めウェルが成型された形状固定容器では、容器の凹凸形状により視認性が優れず、加えて細胞懸濁液を容器内に導入した際に気泡が噛み易い所為で、ウェル内に気泡と細胞とが存在することで細胞の定着位置が不安定な状態になったり、気泡により光の透過性や屈折率が変化したりして、さらに視認性を低下させるため、観察が困難となる問題を有している。
　この様に従来種々の継代培養が行われているが、前記の問題を解消しつつ、さらに大量の多能性幹細胞の未分化状態を維持しつつ培養する維持培養や、容器の外方向からの細胞状態の観察や検査などを可能とし、より効率が良く、均一な継代培養に資するような容器及びその細胞培養方法が望まれている。
特開２０１３－２４７９４３号公報 特開２０１４－０１８１８５号公報
　本発明は前記の課題を解決するためになされたもので、細胞の保持が可能なゴム材料で形成された弾性体上で細胞集塊の形成や培養をすることができ、ダメージを与えることなく細胞の未分化状態を維持しつつ、効率良く均一な継代培養をすることができ、選択的な細胞の除去や回収が可能で、加工性が高く視認性に優れ外方向から細胞状態の観察や検査が可能な細胞保持容器及びそれを用いた細胞培養方法を提供することを目的とする。
　前記の目的を達成するためになされた、細胞保持容器は、幹細胞、前駆細胞、体細胞及び生殖細胞から選ばれる接着細胞と、血球系細胞、Ｔ細胞及びＢ細胞から選ばれる浮遊細胞との少なくとも何れかを含む細胞を保持する弾性体を有する細胞保持容器であって、前記弾性体が、付加架橋型シリコーンゴムを含有するゴム成分を含み前記細胞を保持できるゴム材料で、形成されていることを特徴とする。
　前記細胞保持容器で保持される前記幹細胞が誘導性多能性幹細胞又は胚性幹細胞であると好ましい。
　前記細胞保持容器は、細胞培養用であってもよい。
　前記細胞保持容器は、前記付加架橋型シリコーンゴムに、乾式シリカ粉末及び／又は湿式シリカ粉末を含むフィラーが含有されていることが好ましい。
　前記細胞保持容器は、前記付加架橋型シリコーンゴムに、乾式シリカ粉末及び／又は湿式シリカ粉末を含むフィラーが、全ゴム成分１００質量部に対し５～４０質量部含有されていることが好ましい。
　前記細胞保持容器は、前記弾性体が透明であることが好ましい。
　前記細胞保持容器は、前記弾性体が、厚さを最大で０．１ｍｍ、硬さをショアＡ硬度で最大でＡ４０／Ｓ、引張強さを最大で３．５ＭＰａとすることが好ましい。
　前記細胞保持容器は、前記弾性体の一部が、支持体と側壁とに挟まれ、それらを篏合して固定されていてもよい。
　前記細胞保持容器は、前記弾性体が、外力を受けることによって、平板形状から窪んだ凹み及び／又は起伏した凸みを有する凹凸形状へ可逆的に変形してもよい。
　前記細胞保持容器は、前記弾性体が、変形可能な軟質部と、非変形性の硬質部とからなるものであってもよい。
　前記細胞保持容器は、前記軟質部が、厚みを最大で０．１ｍｍとすることが好ましい。
　前記細胞保持容器は、前記弾性体の細胞接触面側が開放されていることが好ましい。
　前記細胞保持容器は、前記ゴム成分が、エチレンプロピレンジエンゴム、フッ素ゴム、付加架橋型シリコーンゴム、及びフッ素エラストマーから選ばれる少なくとも何れかを含むものであってもよい。
　前記の目的を達成するためになされた、細胞培養方法は、前記細胞保持容器を用いた細胞培養方法であって、幹細胞、前駆細胞、体細胞及び生殖細胞から選ばれる接着細胞と、血球系細胞、Ｔ細胞及びＢ細胞から選ばれる浮遊細胞との少なくとも何れかを含む細胞を分散させた細胞懸濁液を前記細胞保持容器に導入した後、前記細胞保持容器の弾性体を平板形状から窪んだ凹みを有する凹凸形状に変形する工程と、その凹みに前記細胞を播種して細胞集塊を形成した後、前記凹凸形状を前記平板形状に変形する工程とを有することを特徴とする。
　本発明の細胞保持容器は、ゴム成分として少なくとも付加架橋型シリコーンゴムを含むゴム材料で形成された弾性体の上で、誘導性多能性幹細胞や胚性幹細胞のような細胞を保持し、播種された細胞を凝集して細胞集塊を形成したり培養したりすることができ、またそれらを観察したり検査したりすることができる。この細胞保持容器の弾性体が平板形状及び凹凸形状の何れの状態であっても、細胞保持容器は視認性を低下させることがないため、開放系細胞保持容器であっても閉鎖系細胞保持容器であっても弾性体上に保持された細胞を、顕微鏡を用いて観察することができる。また、この細胞保持容器は、凹凸形状に成型又は変形された弾性体上で均一な大きさの細胞集塊を形成することができ、また細胞にダメージを与えることなく効率良く継代培養をすることができる。
　この細胞保持容器は、弾性体の厚さを任意の形状への可逆的な変形が可能となる０．１ｍｍ以下とすることができ、その様な薄さであっても優れた加工性を示すことができる。それにより伸縮性に優れ、可逆的な変形が可能であり、任意の形状に変形することができるとともに、歪みなく元の形状に戻すことができる。また、その弾性体を任意のタイミングで可逆的に変形させることができるので、必要に応じて視認性の向上を図ることができ、さらに細胞保持容器内に気泡を混在させることなく、細胞を保持又は培養することができる。
　本発明の細胞培養方法によれば、細胞にダメージを与えることなく細胞の未分化状態を維持しつつ、効率良く均一な継代培養をすることができる。また、この細胞培養方法によれば、細胞保持容器のウェル内に気泡を混入させることがなく、細胞の定着位置を安定化させて培養することができ、さらに選択的に細胞保持容器の弾性体の形状を変化させることができるため、視認性に優れ、外方向から培養前後や培養中における細胞状態の観察や検査をすることができる。
本発明を適用する細胞保持容器の模式斜視図及びそのＡ－Ａ矢視模式断面図である。 本発明を適用する細胞保持容器の変形性弾性体における変形前後を示す模式斜視図である。 本発明を適用する細胞保持容器の別な変形性弾性体の模式平面図及びそのＡ－Ａ矢視模式断面図である。 本発明を適用する細胞保持容器の別な変形性弾性体の模式平面図及びそのＡ－Ａ矢視模式断面図である。 本発明を適用する細胞保持容器の別な変形性弾性体の模式平面図及びそのＡ－Ａ矢視模式断面図である。 本発明を適用する別な細胞保持容器の模式斜視図である。 本発明を適用する別な細胞保持容器の模式平面図である。 図７におけるＡ－Ａ矢視模式断面図である。 本発明を適用する細胞培養方法における細胞保持容器の弾性体を変形する工程を示す模式断面図である。
　以下、本発明を実施するための形態について詳細に説明するが、本発明の範囲はこれらの形態に限定されるものではない。
　本発明の細胞保持容器の一形態は、ゴム材料で形成された弾性体を有する開放系の細胞保持容器であって、誘導性多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）や胚性幹細胞（ＥＳ細胞）のような万能細胞を弾性体上で保持し、細胞集塊の形成や培養や観察に用いるものである。
　開放系細胞保持容器として、その一形態を示す図１を参照して説明する。
　本発明の細胞保持容器１は、ゴム材料で形成された弾性体２０と、その周囲を囲む側壁２と、弾性体２０を固定する支持体７とを有するものである。この細胞保持容器１の弾性体２０は、図１（ａ）及び（ｂ）に示すように、その一部が支持体７と側壁２とに挟まれ、支持体７の溝８に側壁２が篏合することにより物理的に固定されているものである。
　具体的には、細胞保持容器１は、溝８を有する枠状の支持体７の上にシート状の弾性体２０を重ね、その上から支持体７の溝８に側壁２の一部を嵌め合せることで弾性体２０を固定することができるというものである。弾性体２０は、その弾性及び伸縮性により、歪んだり撓んだりすることなく適度な張りを有し、細胞を保持する細胞接触面２１及びその反対側で外側となる細胞非接触面２２を平面形状とする。細胞保持容器１は、その弾性体２０の上で細胞を接着させて保持し、培養や観察や検査をすることができる。また、細胞保持容器１は、弾性体２０を底部として、側壁２で囲われた細胞接触面２１の一部に均一又は不均一な点状に細胞を保持させてもよく、側壁２で囲われた細胞接触面２１の全面を浸漬して細胞を保持させたものであってもよい。保持した細胞を培養する際には、側壁２で囲われた内側が培養室４となる。このような細胞培養容器１は、細胞接触面２１すなわち培養室４が開放された状態であり、煩雑な工程を必要とすることなく選択的な細胞の除去や回収が簡便であり、作業性が高いものである。さらにこの細胞培養容器１によれば、細胞にダメージを与えることなく、細胞状態を維持しつつ効率よく作業することができる。
　細胞保持容器１を形成する弾性体２０は、ゴム成分として少なくとも付加架橋型シリコーンゴムを含むゴム材料で形成されているものである。ゴム成分は、付加架橋型シリコーンゴムであってもよく、縮合型シリコーンゴムであってもよく、それらの少なくとも何れかのシリコーンゴムと、エチレンプロピレンジエンゴム（ＥＰＤＭ）、フッ素ゴム、及びフッ素エラストマーから選ばれる少なくとも一種とを含有していてもよい。これらのフッ素ゴムやフッ素エラストマーはゴム材料中に非溶融的に混練することができる。弾性体２０は、加工性の観点から、ゴム成分として付加架橋型シリコーンゴムのみからなるものが好ましい。
　付加架橋型シリコーンゴムとしては、具体的に、モメンティブ・パフォーマンス・マテリアルズ・ジャパン合同会社製のＬＳＲ７００５、ＬＳＲ７０３０、ＬＳＲ７０６０、ＬＳＲ７０７０、ＬＳＲ７０８０が挙げられる。
　ゴム材料は、フィラーを含有していてもよい。フィラーを含有する場合は、付加架橋型シリコーンゴム中に含有されていることが好ましい。また、ゴム成分中に付加架橋型シリコーンゴム以外にエチレンプロピレンジエンゴム（ＥＰＤＭ）、フッ素ゴム、又はフッ素エラストマーを含有する際には、フッ素ゴム及びフッ素エラストマー以外のゴム成分に含有されることが好ましい。例えば、ゴム材料中、フッ素ゴムやフッ素エラストマーを非溶融的に混練する際に、それ以外のゴム成分にフィラーを含有することができる。
　フィラーとしては、例えば、乾式シリカ粉末、湿式シリカ粉末、これらの混合物などが挙げられる。ゴム成分として付加架橋型シリコーンゴムのみを用いる場合、乾式シリカ粉末が配合されているとより好ましい。これらのフィラーは、弾性体２０上で培養する際に、安定して細胞を培養することができる。また、このゴム材料がフィラーを含有することで、後述する側壁のような他の部材との接着性を向上させることができる。なお、フィラーを用いない場合や乾式シリカを２０ｐｈｒまで用いる場合や湿式シリカを５ｐｈｒまで用いる場合の細胞保持容器では培養性や視認性が極めて優れるが、湿式シリカを２０ｐｈｒ以上用いる場合の細胞保持容器では視認性が幾分低下する。
　フィラーの含有量は、フィラーの種類やゴム成分の種類により異なるが、全ゴム成分１００質量部に対し、最大で４０質量部であり、５～４０質量部であると好ましい。フィラーの含有量が４０質量部を超えると培養性が低下し易い。乾式シリカ粉末を用いる場合は、培養性の観点から０～２０質量部であると好ましい。また、湿式シリカ粉末を用いる場合は、培養性の観点から０～２０質量部が好ましく、視認性の観点から０～５質量部であると好ましい。ゴム成分中にＥＰＤＭを含む態様の場合には、乾式シリカ粉末を用いる場合、培養性の観点から０～３０質量部であると好ましい。また、湿式シリカ粉末を用いる場合、培養性の観点から０～２０質量部が好ましく、視認性の観点から０～５質量部であると好ましい。
　このようなゴム材料で形成された弾性体２０は、位相差顕微鏡などを用いた顕微鏡観察を容易にする観点から透明で視認性に優れたものであることが好ましく、無色透明であることがより好ましい。透明性の観点からは、ゴム材料に添加されるフィラーは極力少ないことが好ましい。
　弾性体２０は、伸縮性を有し、細胞を保持することで細胞集塊の形成や培養や観察や検査をする際に、必要に応じて平面形状から凹凸形状に変形し、またそれらの変形を解消して元の形状に戻すことが可能で、可逆的に変形することができる。凹凸形状とは、弾性体２０の一部に複数又は単数の凹みや凸みを有する形状である。例えば、弾性体２０に対して、細胞接触面２１から細胞非接触面２２に向かい外力が加えられると、窪んだ凹みを有する凹凸形状に変形し、逆に、細胞非接触面２２から細胞接触面２１に向かい外力が加えられると、起伏した凸みを有する凹凸形状に変形する。必要に応じて任意の形状に変形可能であり、またその変形を容易に解消させ、歪みなく元の形状に戻ることができるため、状況に応じて、例えば、播種した細胞の細胞集塊を形成するため凹凸形状に変形させたり、培養細胞の観察や検査時に視認性を向上させるため凹凸形状を解消させたりすることができる。
　具体的な変形の一例として、複数の軟質部２４と硬質部２３とからなる弾性体２０の場合を例示する。例えば、図２に示すように、通常状態において、弾性体２０の細胞接触面２１及び細胞非接触面２２はともに平面形状を示す。一方、その細胞接触面２１に外力Ｐ１が与えられると、その硬質部２３は変形せず、複数の軟質部２４が外方向へと伸び、開口した四角錐の凹み２５を形成して変形する。さらに、外力Ｐ１が解消されると、この変形は解消され、歪みなく元の形状に戻る。この様に形成された凹み２５は、細胞を保持することができ、細胞集塊の形成や培養や観察をすることができる。
　凹み２５は、細胞集塊を形成させるためのウェルとして用いることができる。このウェルは、通常の細胞培養に用いるマルチプレートの培養室を区画するためのウェルと区別するために「マイクロウェル」と称すが、一辺又は直径１ｍｍ以上の開口部を有するウェルを除外することを意図する用語ではなく、一辺又は直径１ｍｍ以上の開口部を有するウェルが含まれる。また、以下、マイクロウェルを「凹み」と呼ぶことがある。
　マイクロウェルは、細胞保持容器１に注入された細胞懸濁液の細胞が重力などにより沈降し、その沈降した細胞がウェルの底面に集まることで細胞集塊を形成することができる。マイクロウェルの形状は、沈降した細胞が集まる形状であり、その内周が底面に近づくほどすぼんだ形状を有していることが好ましい。例えば、錐形状、丸底、Ｖ底、及びＵ底を有していることが好ましく、四角錐であるとより好ましい。また、市販されているＡｇｇｒｅｗｅｌｌ（商標）（ＳＴＥＭ　ＣＥＬＬ　ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ社製）のプレート底面に刻まれたマイクロウェルの形状であると好ましい。
　マイクロウェルは、その斜面に鏡面磨きが施され、窪みの頂点である先端部が丸み形状であると好ましい。マイクロウェルの大きさは、作製したい細胞集塊に合わせて適宜選択することができ、作製したい細胞集塊の大きさより大きいものを選択することができる。
　マイクロウェルの開口部の形状は、加工の容易性やウェルを大量に配置できる形状を考慮して適宜選択することができるが、例えば、三角形、四角形若しくは六角形などの多角形の形状又は円の形状を有することができる。
　マイクロウェルの開口部の大きさは、形成させる細胞集塊の大きさにより選択することができる。例えば、直径１００μｍ～３ｍｍ、直径２００μｍ～８００μｍ、又は直径４００μｍ～６００μｍの円と同等の面積を有する開口部を備えることができる。
　形成させる細胞集塊は、一定の大きさに揃っていることが好ましく、形成させる細胞集塊の大きさを揃える観点からは、細胞保持容器１の弾性体２０に形成させる複数のマイクロウェルは、その形状が均一であり、大きさが等しいことが好ましい。細胞を比較的均一にマイクロウェル中に分散させることが容易となり、結果として均一な大きさの細胞集塊を形成させることが可能となる。
　細胞集塊を大量に取得可能とする観点では、マイクロウェルは、弾性体２０に多数配置されていることが好ましく、隣り合うウェルの間に平坦な部分が存在しないように隙間無く又はウェルの間の隙間を最小限とするように並列し規則性を有し密に配置されていることが好ましい。また、細胞培養方法において形成した細胞集塊を培養面に均一に播種する観点から、マイクロウェルは平面上に等間隔で整列されていることが好ましい。
　この様な変形性の弾性体２０は、任意の形状に変形させることができ、図３に示すように複数の軟質部２４と硬質部２３とからなる弾性体２０ａであってもよく、図４に示すように一部の厚さが異なる弾性体２０ｂであってもよく、図５に示すように複数の開口部２９を形成する硬質フレーム２６が付された弾性体２０ｃであってもよい。
　図３（ａ）は、変形箇所である軟質部２４と非変形箇所である硬質部２３とからなる弾性体２０ａの細胞非接触面２２における模式平面図であり、そのＡ－Ａ矢視における模式断面図を図３（ｂ）に示す。例えば、細胞非接触面２２を吸引する外力が加えられると、前記図２に示すように硬質部２３は変形せず、例えばそれの各升目内又は格子内に存する複数の軟質部２４ａ１，２４ａ２，２４ａ３，２４ａ４が引付けられ窪んだ凹みを形成し外方向へと伸びて変形する。逆に細胞非接触面２２を押圧する外力が加えられると、同じく硬質部２３は変形せずに、軟質部２４ａ１，２４ａ２，２４ａ３，２４ａ４が押付けられ起伏した凸みを形成し内方向へと伸びて変形する。
　同様に、図３（ｃ）の模式断面図に示すように、変形により形成されるマイクロウェルの窪みの頂点である先端部（底端）を鋭くする観点から、非変形箇所である硬質部２３と変形箇所である軟質部２４とからなり、それらの硬度を徐々に変化させた弾性体２０ａであってもよい。軟質部２４ａ１から軟質部２４ｂ１にかけて膜の硬度が徐々に低くなり、マイクロウェルの底端を形成する部分である軟質部２４ｂ１で最も硬度が低くなり、そこから軟質部２４ａ１にかけて膜の硬度が徐々に高くなり、非変形箇所である硬質部２３の硬度が最も高くなるよう加工することができる。前記と同様に、外力を受けると、例えば複数の升目状又は格子状であって矩形穴が開いた硬質部２３は変形せず、軟質部２４ｂ１，２４ｂ２，２４ｂ３，２４ｂ４を凹みの頂点とし、軟質部２４ａ１，２４ａ２，２４ａ３，２４ａ４及び軟質部２４ｂ１，２４ｂ２，２４ｂ３，２４ｂ４が例えば四角錐状に変形する。硬質部２３は縦横に並んだ円形穴が開きその穴が軟質部となったものであってもよい。
　これらの硬質部２３及び軟質部２４を有する弾性体２０は、弾性体２０の硬度が調整されているものである。硬質部２３は、軟質部２４と同一のゴム材料で形成されていてもよいが、外力により形状変化を起こさないものであればよく、異なる部材であってもよい。また、このような弾性体２０は、インサート成形手法などの公知の方法で形成することができる。
　図４（ａ）は、変形箇所が例えば複数の升目状又は格子状の非変形箇所よりも薄くなるよう厚みに高低が形成された弾性体２０ｂの細胞非接触面２２における模式平面図であり、そのＡ－Ａ矢視における模式断面図を図４（ｂ）に示す。弾性体２０ｂは、細胞接触面２１が平らであり、細胞非接触面２２が変形箇所と非変形箇所とで厚みが異なるように、変形箇所に薄手部２７が形成され加工されているものである。例えば、細胞非接触面２２を吸引する外力が加えられると、非変形箇所である厚手部２８は変形せず、複数の薄手部２７ａ１，２７ａ２，２７ａ３，２７ａ４が引付けられ窪んだ凹みを形成し外方向へと伸びて変形する。逆に細胞非接触面２２を押圧する外力が加えられると、同じく非変形箇所である厚手部２８は変形せずに、薄手部２７ａ１，２７ａ２，２７ａ３，２７ａ４が押付けられ起伏した凸みを形成し内方向へと伸びて変形する。
　同様に、図４（ｃ）の模式断面図に示すように、変形により形成されるマイクロウェルの底端を鋭くする観点から、変形箇所と非変形箇所とで厚みが異なり、変形箇所から非変形箇所へと厚みを徐々に変化させた弾性体２０ｂであってもよい。非変形箇所である厚手部２８から凹みの頂点にかけて厚みが徐々に薄くなり、マイクロウェルの底端を形成する部分が最も薄くなるようにし、またそこから厚手部２８にかけて徐々に厚くなるよう加工することができる。
　図５（ａ）は、複数の開口部２９を形成する例えば略矩形の硬質フレーム２６が細胞非接触面２２に付された弾性体２０ｃの細胞非接触面２２における模式平面図であり、そのＡ－Ａ矢視における模式断面図を図５（ｂ）に示す。硬質フレーム２６が非変形箇所に該当し、その硬質フレーム２６の開口部２９に対応する領域が変形箇所に該当する。例えば、細胞非接触面２２を吸引する外力が加えられると、開口部２９に対応する領域が変形することができ細胞接触面２１に窪んだ凹みを形成し外方向へと伸びて変形する。
　弾性体２０は、図３～５に示すように、外力を受けることで可逆的に変形可能に形成された変形性弾性体を例示したが、予め金型による成形加工により凹凸形状や平面形状のような任意の形状となるように成型又は形成された非変形性弾性体であってもよい。
　変形性又は非変形性の弾性体２０の硬度は、ショアＡ硬度でＡ５／Ｓ～Ａ９０／Ｓであることが好ましい。なかでも変形性弾性体２０は、Ａ４０／Ｓ以下であると好ましく、Ａ４０／Ｓを超えると密着性が低下し易い。また、図３（ｂ）及び（ｃ）のように弾性体２０の硬度を部分的に調整する場合、変形箇所の硬度はＡ５／Ｓ～Ａ３０／Ｓで、非変形箇所の硬度はＡ５０／Ｓ～Ａ９０／Ｓであると好ましい。
　変形性又は非変形性の弾性体２０の厚みは、特に限定されないが、０．０５ｍｍ～２．００ｍｍであることが好ましい。なかでも変形性弾性体２０は、０．１ｍｍ以下であると好ましく、０．１ｍｍを超える場合には変形し難くなる。図４（ｂ）及び（ｃ）のように弾性体２０の厚みを部分的に調整する場合、変形箇所の厚みは０．０５ｍｍ～０．３０ｍｍで、非変形箇所の厚みは０．５０ｍｍ～２．００ｍｍであると好ましい。
　変形性の弾性体２０の引張強さは、３．５ＭＰａ以下であると好ましく、３．５ＭＰａを超えると前記のような外力を加える際に吸引し難くなる。
　細胞保持容器１は、少なくとも底部の細胞接着面２１がゴム材料で形成された弾性体２０であればよく、底部、側壁２、及び支持体７がそれぞれ同一又は異なり、同様のゴム材料で形成されたゴム製であってもよく、ポリスチレン、ポリプロピレン、ポリカーボネート、及びアクリルのようなプラスチック材料で形成されたプラスチック製であってもよい。
　細胞保持容器１は、溝を有する複数の升目状の支持体と、その溝に嵌め合せることができる升目状の側壁とを用いることで、細胞接触面２１が複数に仕切られたものであってもよい。さらに、細胞保持容器１は、ゴム材料で形成され底部となる弾性体２０と、その周囲を囲む側壁２とを有するシャーレのような平皿であってもよい。この細胞保持容器１は、平板形状の弾性体２０と側壁２とをアクリル変性シリコーン樹脂のような接着剤を介して化学的に接着し固定することができる。細胞保持容器１の弾性体２０は、前記と同様に細胞接触面２１及び細胞非接触面２２をともに平面形状とする。容器１の形状は特に限定されず、円形、楕円形、多角形など種々の形状が挙げられる。
　細胞保持容器１は、弾性体２０がｉＰＳ細胞やＥＳ細胞の接着培養用エラストマーであり、それらの少なくとも何れかの細胞を、凝集して細胞集塊を形成したり、培養したり、観察したり、検査したりする際に好適に用いられるが、その他の接着細胞や浮遊細胞であっても凝集・細胞集塊形成・培養・観察・検査に用いることができる。接着細胞としては、多能性幹細胞（Ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌｌ）、幹細胞、前駆細胞、体細胞、生殖細胞が挙げられ、浮遊細胞としては、血球系細胞、Ｔ細胞、Ｂ細胞が挙げられる。浮遊細胞としては、Ｔ細胞、Ｂ細胞が好ましい。
　本発明の細胞保持容器１は、図６で示されるように、ゴム材料で形成された弾性体２０からなるプレートであり、上側である細胞接触面２１が四角錐に窪んだ凹み２５を複数有する凹凸形状で、下側である細胞非接触面２２が平面形状のものであってもよい。この細胞保持容器１は、細胞接触面２１側が開放されおり、弾性体２０の凹み２５に細胞を保持するもので、凹み２５内に沈降させて播種した細胞を凝集し細胞集塊を形成したり培養したり、またそれらを観察したり検査したりすることができる。
　弾性体２０の細胞非接触面２２は、平面形状に限られず、細胞接触面２１に対応するような凹凸形状を有していてもよい。また、細胞非接触面２２は、鏡面磨きが施されていると好ましい。この弾性体２０は、変形性弾性体であってもよく非変形性弾性体であってもよい。
　さらに別の細胞保持容器として、その一形態を示す図７及び図８を参照して説明する。図７は、細胞保持容器の上方における模式平面図であり、図８は、図７のＡ－Ａ矢視における模式断面図を示すものである。
　この細胞保持容器１は、注入口５及び排出口６を有し、弾性体２０と側壁２とにより培養室４及び流路３が形成されているものである。細胞保持容器１は、平板形状の弾性体２０上に、アクリル変性シリコーン樹脂のような接着剤を介して培養室４と流路３とを形成する側壁２を接着することで形成することができる。細胞培養容器１の培養室４は、弾性体２０の内側面である細胞接触面２１の表面のうち一部又は全部に細胞接着性を有することが好ましい。
　培養室４には、細胞懸濁液のような細胞含有液や、培地となる細胞培養液が送液され充填される。また必要に応じて細胞剥離液や細胞回収液なども送液される。
　細胞保持容器１は、複数の培養室４が流路３で連結されており、送液される液体の注入口５及び排出口６が形成されている。注入口５とは、送液される液体の入口であり、排出口６とは送液される液体の出口である。注入口５より送液された液体は、培養室４の両端に形成される流路３のうち何れか一方の流路３から培養室４に流入した後、他方の流路３から流出される。その後、次の培養室４へ流入し、それに繋がる流路３より流出され、一方向性の流れにより最終的に排出口６から排出される。この安定した一方向性の流れは、細胞保持容器１に細胞懸濁液を注入して培養室４に細胞を播種する際に、均一に播種することができるため好ましい。また、一方向性の安定した流れにより、播種した細胞を培養する際に送液する細胞培養液を均一に灌流することができる。
　細胞保持容器１は、複数の培養室４が流路３で連結された形状に限られず、個々の培養室４が流路３を介してそれぞれ注入口５及び排出口６を備え、独立して形成されていてもよい。また培養室４が複数形成されたものに限られず、１つのみであってもよい。さらに注入口５と排出口６とは、必ずしも別々に設けられている必要はなく、一体として設けられていてもよい。
　細胞保持容器１を形成する弾性体２０は、細胞接触面２１及び細胞非接触面２２がともに平面形状を有する平板形状に形成された変形性弾性体であってもよく、予め金型により成形加工された非変形性弾性体であってもよい。
　変形性の弾性体２０の場合、少なくとも培養室４を形成する領域が変形可能なものである。この弾性体２０は、前記と同様で図３～図５に示されるような変形性弾性体２０ａ，２０ｂ，２０ｃを用いることができ、培養室４を形成する領域で、細胞を播種し細胞集塊を形成したり、培養したり、観察したり、検査したりする際に、必要に応じて平面形状から凹凸形状に変形し、またそれらの変形を解消して元の形状に戻すことが可能で、可逆的に変形することができる。例えば、弾性体２０の細胞非接触面２２から培養室４に向かう外力が加えられると、弾性体２０のうち培養室４を形成する領域の一部又は全部が、培養室４に向けて起伏した凸みを有する凹凸形状に変形する。逆に、弾性体２０の細胞接触面２１から弾性体２０の外方向へ向かう外力が加えられると、弾性体２０のうち培養室４を形成する領域の一部又は全部が、培養室４に向けて窪んだ凹みを有する凹凸形状に変形する。必要に応じて任意の形状に変形可能であり、またその変形を容易に解消させ、歪みなく元の形状に戻るため、例えば、培養細胞の観察や検査時に凹凸形状を解消させることで視認性を向上させたり、状況に応じて凹凸形状を解消することで、培地、試薬、及び試料を節約したりすることができる。
　一方、非変形性の弾性体２０は、予め細胞接触面２１が凹凸形状に成型されたものである。細胞非接触面２２は、平面形状であってもよく、細胞接触面２１に対応するような凹凸形状を有していてもよい。細胞接触面２１の凹凸形状は、開口した四角錐の凹み２５が細胞接触面２１の培養室４を形成する領域に複数形成されているものである。この凹み２５の斜面及び細胞非接触面２２はそれぞれ鏡面磨きが施されていると好ましい。
　このような細胞保持容器における変形性又は非変形性の弾性体２０の凹み２５は、前記に例示した細胞保持容器のマイクロウェルと同様であり、細胞を保持し、細胞集塊の形成や培養や観察や検査をすることができる。
　側壁２は、弾性体２０と同一又は同様のゴム材料で形成されていてもよく、別の材料で形成されていてもよい。また、側壁２は、顕微鏡観察の観点から、視認性に優れた透明であると好ましい。
　弾性体２０及び側壁２が、同様のゴム材料で形成される場合、そのゴム材料の屈折率と培養室４を満たす細胞培養液（培地）の屈折率との関係から、視認性が向上し、顕微鏡での観察がし易くなる。培養室４を満たす細胞培養液（培地）の殆どは水であり、その屈折率が１．３３であるが、付加架橋型シリコーンゴムの屈折率は１．４０～１．４３であり、細胞保持容器１の外方向から細胞培養の様子を直接視認することができ、顕微鏡などで観察し易くなる。
　側壁２としては、ゴム材料で形成されたゴム製に限られず、ポリスチレン、ポリプロピレン、ポリカーボネート、アクリルなどで形成されたプラスチック製であってもよい。
　細胞保持容器１の培養室４は、細胞を接着させる面が細胞接着性を有し、それ以外の面が細胞非接着性を有することが好ましい。培養室４は、そのウェルとなる形成され又は成型された凹み２５の全部又は一部に細胞接着性を有することができ、その必要箇所に、選択的に細胞接着性が付与されていてもよい。培養室４は、凹み２５の斜面に細胞接着性を有する場合、その斜面に細胞を定着させることができる。一方、培養室４は、凹み２５の斜面に細胞接着性を有さない場合、斜面に細胞を定着させることなく凹み２５の窪みの頂点に凝集させることができる。また、細胞を接着させる面以外の面において、選択的に細胞非接着性が付与されていてもよい。細胞を接着させる面以外の面において細胞の接着を防ぐことにより、細胞集塊を形成した後に、細胞集塊を効率良く剥離することができる。
　細胞接着面は、細胞接着性コーティングにより細胞接着性を付与することができる。細胞接着性コーティングとしては、例えば、マトリゲル（商標）（日本ベクトン・ディッキンソン株式会社製）などの細胞接着性の基底膜マトリックスを用いると接着面に細胞接着性コーティングを施すことができる。市販のコーティング剤を用いるコーティング方法としては、周知の方法を用いることができる。また、紫外線（ＵＶ）、プラズマを照射することで細胞接着性を付与してもよい。
　細胞非接着面は、細胞非接着コーティングにより細胞非接着性を付与することができる。細胞非接着コーティングとしては、細胞非接着性を有するコーティングであれば特に限定されず、例えば、メチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒロドキシプリピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウムなどのセルロース類；ポリエチレンオキサイド；カルボキシビニルポリマー；ポリビニルピロリドン；ポリエチレングリコール；ポリ乳酸；ポリアクリルアミド、ポリＮ－イソプロピルアクリルアミドなどのポリアミド；キチン、キトサン、ヒアルロン酸、アルキド酸、デンプン、ペクチン、カラギーナン、グアーガム、アラビアゴム、デキストランなどの多糖類、及びこれらの細胞非接着性の誘導体によるコーティングが挙げられる。透明性が高く視認性がよいという観点では、ポリエチレングリコールが好ましい。
　本発明の細胞保持容器１は、必要に応じて一時的に細胞接触面２１や培養室４や流路３を覆うように着脱可能な蓋、シート、フィルム、プレート、基板などの被覆部材を有するものであってもよい。また、弾性体２０の細胞接触面２１に対向して培養室４及び流路３を封止して密閉するように平板形状の基板のような被覆部材が当接され着脱不可能に閉鎖的に接着された細胞保持容器であってもよい。この細胞保持容器１は、例えば平板形状の弾性体２０とそれに対向して配置される平板形状の被覆部材である基板との間に、培養室４と流路３とを形成する側壁２が介在しつつ接着されているものである。弾性体２０及び基板は、それぞれ培養室４を形成するものである。弾性体２０の内側面及び基板の内側面の何れかの表面が細胞接着性を有することで、細胞接着面を有する培養室４を形成することができる。また、弾性体２０の内側面及び基板の内側面の何れか一方の表面が細胞接着性を有し、他方の表面が細胞非接着性を有することで、細胞接着面と細胞非接着面とが対向して配置された培養室４を形成することができる。この細胞接着性は、弾性体２０の内側面及び基板の内側面の何れかの表面のうち全部に付されていてもよく、一部に付されていてもよい。また、培養室４となる領域のうち全部に付されていてもよく、一部に付されていてもよい。
　被覆部材は、弾性体２０と同一又は同様のゴム材料で形成されたゴム製であってもよく、ポリスチレン、ポリプロピレン、ポリカーボネート、アクリルなどで形成されたプラスチック製であってもよい。被覆部材は、培養室４内の酸素濃度及び二酸化炭素濃度を保つ観点から、ガス透過膜であることが好ましく、例えば、市販品であって、細胞培養用のポリスチレン製ガス透過膜を用いることができる。ガス透過膜は、培養室４内の培地に酸素などを供給する上で重要な役割を果たす。また、被覆部材としてガス透過膜を用いた細胞保持容器１によると、細胞培養方法において培養した細胞を回収する際に、超音波振動により効果的に細胞を膜表面から剥離できるため、細胞の剥離方法に選択肢が増える点で有利である。
　この細胞保持容器１の使用時には、培養室４及び流路３が細胞懸濁液や細胞培養液で満たされているため、弾性体２０の変形にともない培養室４の容積が変動し、排出口６から排出し調節する必要がある。被覆部材が同様のゴム材料で形成される場合、弾性体２０が凹凸形状に変形することによる培養室４の容積変動を、被覆部材が伸縮することにより吸収することができる。これにより、ゴム栓などを用いて注入口５及び排出口６を封止してから弾性体２０を凹凸形状に変形させても、注入口５及び排出口６からの液漏れリスクを抑制できる。
　本発明における細胞保持容器１は、ゴム材料で形成された弾性体２０上で細胞を凝集し細胞集塊を形成したり、培養したり、観察や検査したりする細胞保持システムとして用いることができる。細胞保持システムとしては、細胞保持容器１とその弾性体２０を変形させる変形手段とを備えていればよい。この細胞保持システムにより、接着細胞や浮遊細胞の細胞を弾性体２０上に保持することができ、均一で効率の良い維持培養や継代培養をすることができる。
　この細胞保持容器１を用いた細胞培養方法を以下に説明する。
　本発明の細胞培養方法は、細胞を分散させた細胞懸濁液を細胞保持容器１に導入した後、その細胞保持容器１の弾性体２０を平板形状から窪んだ凹み２５を有する凹凸形状に変形する工程と、その弾性体２０の変形により形成された凹みに細胞を播種して細胞集塊を形成した後、その凹凸形状を平板形状に戻すように弾性体２０を変形する工程とを、順次行う方法である。
　継代時に分散させた細胞９０は、細胞塊（以下単に「細胞」ということがある）を含むものであってもよく、接着培養において、生理学的な剥離法や物理的な剥離法により、細胞接着面から剥離させた多能性幹細胞を用いることができる。
　生理学的に多能性幹細胞を細胞接着面から剥離させる方法としては、周知の方法を用いることができ、例えば、酵素を用いる方法や、細胞剥離作用を有する化学物質を用いる方法が挙げられる。酵素は、常法で用いられる酵素を用いることができ、例えば、トリプシン、ディスパーゼ、アキュターゼ、コラゲナーゼなどが挙げられる。細胞剥離作用を有する化学物質としては、例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）などの二価イオン（特にＭｇ２＋）のキレート剤などが挙げられる。これらの酵素や細胞剥離作用を有する化学物質は、単独で用いてもよく、併用して用いてもよい。
　物理的に多能性幹細胞を細胞接着面から剥離させる方法としては、周知の方法を用いることができ、例えば、細胞の接着表面に高周波振動などの振動を与える方法や、セルスクレーパーを用いる方法が挙げられる。これらの生理学的剥離法や物理的剥離法は、適宜選択され、単独で又は組合せて用いることができる。
　細胞塊は、単一細胞レベルにまで解離させることができる。細胞塊の解離は、細胞の培養面からの剥離と同時に行ってもよく、細胞塊として剥離させた後に行ってもよい。
　細胞９０の分散としては、接着面から剥離させた細胞が細胞塊の形状を保っている場合には、剥離させた細胞塊を、例えば、ピペッティングの水流により単一細胞レベルまでに解離させてから分散させることができる。「単一細胞レベルまで分散させる」とは、細胞塊１つ当たりに含まれる細胞数の平均が、１～１００個、好ましくは、１～１０個となるように細胞塊を解離させてから分散させることを意味し、完全に単一細胞にまで解離させてから分散させることを含むものとする。細胞塊は、完全に単一細胞にまで解離させてから分散させてもよく、大部分が単一細胞となるように解離させてから分散させてもよく、大部分が１～１００個、好ましくは、１～１０個の細胞からなる細胞塊となるように解離させてから分散させてもよい。分散後の細胞塊が大きい場合は、細胞塊をマイクロウェルに播種する際に、それぞれのマイクロウェルに播種される細胞数にばらつきが生じやすくなるため、分散後の細胞塊は小さい方が好ましい。
　また、培養面から剥離させた細胞塊は、酵素を用いてさらに処理することにより単一細胞レベルにまで分散させてもよい。細胞を単一細胞レベルにまで解離させるために用いることができる酵素としては、周知のものを使用することができ、例えば、細胞－細胞間の結合を切断することのできる酵素や細胞－細胞外基質（ＥＣＭ）間の結合を切断することのできる酵素を挙げることができる。酵素や水流を用いた細胞塊の解離は、自動化が可能である。
　細胞を単一細胞レベルにまで解離させ分散させた後は、分散させた細胞９０の懸濁液に、細胞９０を分散させたことによる細胞死など細胞への悪影響を抑制する化合物、例えば、Ｙ－２７６３２などのＲＯＣＫ阻害剤を添加することができる。
　分散させた細胞９０の懸濁液を細胞保持容器１に導入した後、その弾性体２０を変形させる工程としては、図９に示すように、弾性体２０の外方にそれを変形させるための変形手段３０を配置して細胞保持システムとし、減圧して弾性体２０を吸引することで変形させることができる。同様に、形成された凹みに細胞を播種して細胞集塊を形成した後、凹凸形状を平板形状に戻すように弾性体２０を変形する工程としては、減圧状態を解消することで弾性体２０の変形を解除することができる。変形が解除された弾性体２０は、細胞集塊を細胞接触面２１に保持させたまま歪みなく元の平板形状に戻ることができ、変形を解除することで観察の際に視認性を大幅に向上させることができる。
　変形手段３０は、図９に示されるように、細胞保持容器１の弾性体２０の細胞非接触面２２に対向する面である凹凸面３１に、接続される吸送気手段で吸気又は送気する吸送気口３３を有し、かつ単数又は複数の凹み３５を有するものである。細胞保持容器１の弾性体２０の細胞非接触面２２に対向する面である凹凸面３１は、細胞非接触面２２に向かい開口し、四角錐に窪んだ複数の凹み３５が規則的に形成された凹凸形状であり、それら各凹み３５の頂点（四角錐の頂点）に吸送気口３３を有するものである。この凹凸面３１は、その一部が細胞保持容器１の弾性体２０の細胞非接触面２２に接触することで、弾性体２０との間に各凹み３５からなる真空室を形成する。この真空室は、吸送気手段により減圧又は加圧されることで弾性体２０の形状を変化させることができる。この真空室は、吸送気口３３により吸気されることで減圧状態となり、また送気されることで加圧状態となる。吸送気手段は、真空室から空気を吸気することができ、また真空室へ空気を送気できるものであればよい。ここで、真空とは大気圧から減圧された状態を指す。
　以下、本発明の実施例を詳細に説明するが、本発明の範囲はこれらの実施例に限定されるものではない。
（実施例１）
　ポリスチレン製の培養容器に、弾性体として付加架橋型シリコーンゴム（モメンティブ・パフォーマンス・マテリアルズ・ジャパン合同会社製）のゴム材料で形成された厚さ０．０５ｍｍのゴム板をシリコーン系接着剤（セメダイン株式会社製、セメダインスーパーＸ）で接着して細胞保持容器とし、そのゴム板上に細胞を播種した。また、ゴム材料に添加するフィラーとして、湿式シリカ粉末（東ソー・シリカ株式会社製、ニップシールＶＮ３）及び乾式シリカ粉末（日本アエロジル株式会社製、アエロジル２００）を用いた。ＵＶ滅菌処理として、ＧＬ１５滅菌ランプ（株式会社東芝製）を使用した。照射条件は、距離１ｍとし、照射時間を２４時間とした。各ゴム板におけるＵＶ処理の結果、顕微鏡による視認性、ゴム板の厚さが０．１ｍｍ以下における加工性、及び培養状況を顕微鏡で観察した結果を下記表１に示す。
（比較例１）
　ゴム材料を付加架橋型シリコーンゴムからＥＰＤＭ（ＪＳＲ株式会社製）、フッ素ゴム（ダイキン工業株式会社製）に替えたこと以外は実施例１と同様の方法及び条件により細胞保持容器を作製し、細胞を播種した。各ゴム板におけるＵＶ処理の結果、顕微鏡による視認性、加工性、及び培養状況を顕微鏡で観察した結果を下記表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　表１から明らかであるように、ＥＰＤＭ、フッ素ゴム、又は付加架橋型シリコーンゴムで形成された弾性体は視認性に優れ、その弾性体上で細胞の培養が可能であることが確認された。
（比較例２）
　実施例１と同様に弾性体として有機過酸化物型シリコーンゴム（モメンティブ・パフォーマンス・マテリアルズ・ジャパン合同会社製ＴＳＥ２２１－５Ｕ）のゴム板上に細胞を播種したが、培養することができなかった。
　本発明の細胞保持容器は、誘導性多能性幹細胞や胚性幹細胞のような接着細胞や浮遊細胞などの各種細胞の細胞集塊形成用、細胞培養用、観察用、検査用の容器として有用である。この細胞保持容器を用いた細胞培養システム及び細胞培養方法は、浮遊細胞又は接着細胞の培養に有用であり、これらの細胞の維持培養及び継代培養に用いることができる。
　１は細胞保持容器、２は側壁、３は流路、４は培養室、５は注入口、６は排出口、７は支持体、８は溝、２０，２０ａ，２０ｂ，２０ｃは弾性体、２１は細胞接触面、２２は細胞非接触面、２３は硬質部、２４，２４ａ１，２４ａ２，２４ａ３，２４ａ４は軟質部、２５は凹み、２６は硬質フレーム、２７，２７ａ１，２７ａ２，２７ａ３，２７ａ４は薄手部、２８は厚手部、２９は開口部、３０は変形手段、３１は凹凸面、３３は吸送気口、３５は凹み、９０は細胞、Ｐ１は外力である。

Claims (14)

  1. 　幹細胞、前駆細胞、体細胞及び生殖細胞から選ばれる接着細胞と、血球系細胞、Ｔ細胞及びＢ細胞から選ばれる浮遊細胞との少なくとも何れかを含む細胞を保持する弾性体を有する細胞保持容器であって、
    　前記弾性体が、付加架橋型シリコーンゴムを含有するゴム成分を含み前記細胞を保持できるゴム材料で、形成されていることを特徴とする細胞保持容器。
  2. 　前記幹細胞が誘導性多能性幹細胞又は胚性幹細胞であることを特徴とする請求項１に記載の細胞保持容器。
  3. 　細胞培養用であることを特徴とする請求項１に記載の細胞保持容器。
  4. 　前記ゴム材料中、前記付加架橋型シリコーンゴムに、乾式シリカ粉末及び／又は湿式シリカ粉末を含むフィラーが含有されていることを特徴とする請求項１に記載の細胞保持容器。
  5. 　前記ゴム材料中、前記付加架橋型シリコーンゴムに、乾式シリカ粉末及び／又は湿式シリカ粉末を含むフィラーが、全ゴム成分１００質量部に対し５～４０質量部含有されていることを特徴とする請求項１に記載の細胞保持容器。
  6. 　前記弾性体が透明であることを特徴とする請求項１に記載の細胞保持容器。
  7. 　前記弾性体が、厚さを最大で０．１ｍｍ、硬さをショアＡ硬度で最大Ａ４０／Ｓ、引張強さを最大で３．５ＭＰａとすることを特徴とする請求項１に記載の細胞保持容器。
  8. 　前記弾性体の一部が、支持体と側壁とに挟まれ、それらを篏合して固定されていることを特徴とする請求項１の細胞保持容器。
  9. 　前記弾性体が、外力を受けることによって、平板形状から窪んだ凹み及び／又は起伏した凸みを有する凹凸形状へ可逆的に変形することを特徴とする請求項１に記載の細胞保持容器。
  10. 　前記弾性体が、変形可能な軟質部と、非変形性の硬質部とからなることを特徴とする請求項１に記載の細胞保持容器。
  11. 　前記軟質部が、厚みを最大で０．１ｍｍとすることを特徴とする請求項１０に記載の細胞保持容器。
  12. 　前記弾性体の細胞接触面側が開放されていることを特徴とする請求項１に記載の細胞保持容器。
  13. 　前記ゴム成分が、エチレンプロピレンジエンゴム、フッ素ゴム、付加架橋型シリコーンゴム、及びフッ素エラストマーから選ばれる少なくとも何れかを含むことを特徴とする請求項１に記載の細胞保持容器。
  14. 　請求項１～１３の何れかに記載の細胞保持容器を用いた細胞培養方法であって、幹細胞、前駆細胞、体細胞及び生殖細胞から選ばれる接着細胞と、血球系細胞、Ｔ細胞及びＢ細胞から選ばれる浮遊細胞との少なくとも何れかを含む細胞を分散させた細胞懸濁液を前記細胞保持容器に導入した後、前記細胞保持容器の弾性体を平板形状から窪んだ凹みを有する凹凸形状に変形する工程と、その凹みに前記細胞を播種して細胞集塊を形成した後、前記凹凸形状を前記平板形状に変形する工程とを有することを特徴とする細胞培養方法。
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