WO2010041636A1 - 組織閉塞剤 - Google Patents

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tissue
aqueous solution
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bleeding
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健太郎 高村
理志 五條
小林　智
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株式会社スリー・ディー・マトリックス
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Definitions

  • the present invention relates to a tissue occluding agent characterized by containing a self-assembled peptide hydrogel.
  • Tissue occlusion that prevents leakage of bodily fluids (blood, tissue fluid, etc.) due to tissue damage in the living body has important clinical significance such as surgery. Effective suppression of fluid leakage from the injured part leads to improvement of the life of the patient during the operation and improvement of the quality of life after the operation (QOL).
  • Blood loss is one of the major causes of death, including severe trauma, aneurysms, ulcers in the esophagus and stomach, and rupture of esophageal varices. In particular, if urgent hemostasis treatment is not possible, the possibility of death increases. 2. Bleeding during surgery is one of the major concerns in surgery, and bleeding causes systemic infections and organ dysfunction. In addition, bleeding not only interferes with the surgical field, but removal of the blood that bleeds delays surgery. 3. Bleeding is a problem even when minimally invasive surgery (such as laparoscopic surgery) is being performed, and if bleeding cannot be sufficiently suppressed, it may be forced to change to open surgery.
  • the existing hemostasis methods include the following. 1. A method of directly compressing blood vessels in the bleeding area (compression hemostasis). Disadvantages of this hemostasis method are that it takes time and effort and it is necessary to maintain the pressure, and there is a risk that the patient may develop hematoma. 2. As other hemostatic methods, there are a method of clamping and clipping the vicinity of the bleeding part, and a method of putting something like a plug or sponge on the bleeding part. The disadvantage of these hemostasis methods is that they are difficult to handle when bleeding from many microvessels. 3. A method of coagulating blood by heat and cauterizing bleeding blood vessels (electric knife). Disadvantages of this method are that the surrounding tissue is thermally damaged and invasive to the patient, and a medical instrument is necessary and requires expertise (cannot be used outside of medical institutions).
  • the existing hemostatic materials include the following. 1. Alginic acid 2. Gelatin sponge Collagen fiber 4. Fibrin glue. Of these, collagen fibers and fibrin glue are often used in clinical practice as effective hemostatic agents, but these disadvantages are: (1) gelatin and collagen fibers are animal collagen, and fibrin glue is blood products and bovine origin Because it is an animal-derived product that uses thrombin, there is a risk of infection, and (2) it is not transparent, which hinders the surgical field.
  • the patient's blood coagulation ability may be artificially reduced to a heparinized state.
  • heparin is used to suppress blood clotting.
  • the artificial heart-lung machine is a foreign body for a living body, and if blood is allowed to flow as it is to the artificial heart-lung machine, the blood immediately coagulates and clogs the circuit, so heparin is administered to the blood before extracorporeal circulation.
  • Collagen fibers and fibrin glue use the body's blood coagulation system to stop hemostasis, so that the hemostatic effect decreases in the heparinized state. If the hemostatic effect decreases, the amount of bleeding increases, so blood transfusion is likely to be required, and complete hemostasis after completion of extracorporeal circulation also takes a long time. Accordingly, there is a need for a hemostatic material that does not utilize blood coagulation that does not deteriorate in performance even in a heparinized state.
  • Vascular suturing may be necessary not only for cardiac and vascular surgery but also for general intra-abdominal surgery. After surgery, there is a slight blood leak from the vascular suture part, and thus a hemostatic material that continuously suppresses the blood leakage is required.
  • Bile fistula / pancreatic fistula is a symptom in which bile and pancreatic juice leak due to biliary surgery, pancreatitis, pancreatic surgery, etc., and adversely affect other organs.
  • endoscopic techniques Due to the development of endoscopic techniques, techniques for endoscopically excising lesions have been developed. In particular, surgical procedures have been established to endoscopically remove lesions such as polyps of the gastrointestinal tract including the esophagus, stomach or intestine, and early cancer (surface cancer considered to have no lymph node metastasis). .
  • endoscopic mucosal resection in general, hypertonic saline is injected into the submucosal layer including the lesion to raise the lesion, and the tissue containing the lesion is removed with an electric knife while grasping the excision. I do.
  • an operation method for occluding a tumor, a myoma, etc. by occluding an artery flowing into a lesion affected by blood flow control such as a tumor, a myoma.
  • Specific examples include liver vein occlusion, uterine artery occlusion, and cerebral artery occlusion.
  • a liquid such as collagen or ethylene vinyl alcohol extracted from a different animal is injected, but there is a concern about the risk of infection and biotoxicity. Accordingly, it is desired to develop an infusion solution that has no risk of infection and has low biotoxicity.
  • the injection solution can be added with an anticancer agent or a contrast agent.
  • the self-assembling peptide has the property of forming a self-aggregate in which a large number of peptide molecules are regularly arranged depending on the amino acid sequence. In recent years, it has attracted attention as a new material because of its physical, chemical and biological properties. Self-assembling peptides have a structure in which charged hydrophilic amino acids and electrically neutral hydrophobic amino acids are alternately arranged, and positive and negative charges are alternately distributed, at physiological pH and salt concentration. Takes a ⁇ structure.
  • hydrophilic amino acid an acidic amino acid selected from aspartic acid and glutamic acid, and a basic amino acid selected from arginine, lysine, histidine and ornithine can be used.
  • hydrophobic amino acid alanine, valine, leucine, isoleucine, methionine, phenylalanine, tyrosine, tryptophan, serine, threonine, and glycine can be used.
  • Self-assembly of the peptide occurs under the following conditions. (1) When a peptide molecule takes a ⁇ structure in an aqueous solution, a hydrophilic amino acid having a charge and a hydrophobic amino acid that is electrically neutral are unevenly distributed on two sides of the peptide molecule. (2) When the ⁇ structure is taken, the charge distribution is complementary to the neighboring molecule. (3) When a ⁇ structure is taken, a sufficient hydrophobic bond is formed with an adjacent molecule. (4) The amino acid side chain charge is screened with a monovalent inorganic salt. (5) The molecule becomes electrostatically neutral near the isoelectric point of the peptide.
  • Nanofibers are ultrafine fibers with a thickness of about 10 nm to 20 nm, and are reported to aggregate on the network and macroscopically form a gel.
  • the gel network structure is very similar to natural extracellular matrix (ECM) in fiber size and pore size, and its use as a scaffold for cell culture has been studied.
  • ECM extracellular matrix
  • This peptide hydrogel is biodegradable, the degradation product does not adversely affect the tissue, and is highly bioabsorbable, so it is suitable for cell engraftment and proliferation.
  • An object of the present invention is to provide a self-assembling peptide tissue occluding agent capable of effectively occluding a damaged part of a tissue in a large mammal including a human and having no infectious concern such as a virus, and a method for using the same. is there.
  • the present inventors have found that by applying a self-assembling peptide hydrogel used as a scaffold for cell culture to tissue occlusion, it exhibits a tissue occlusion effect equivalent to or better than that of an existing tissue occlusion agent. completed.
  • tissue occlusion effect cannot be obtained by simply applying an aqueous peptide solution to a body fluid leakage part.
  • a sufficient tissue occlusion effect and biological safety can be obtained by removing excess body fluid from the body fluid leakage part, and the present invention has been completed.
  • the present invention is a tissue occlusive agent containing a peptide, wherein the peptide is an amphipathic peptide having hydrophilic amino acids and hydrophobic amino acids bonded alternately and having amino acid residues 8 to 200,
  • the present invention relates to a tissue occluding agent which is a self-assembling peptide exhibiting a ⁇ structure in an aqueous solution in the presence of physiological pH and / or cation.
  • the peptide is a sequence consisting of arginine, alanine, aspartic acid and alanine, a sequence consisting of isoleucine, glutamic acid, isoleucine and lysine, or a repeating sequence of a sequence consisting of lysine, leucine, aspartic acid and leucine.
  • tissue occluding agent further contains a low molecular weight drug in order to prevent hemolysis, inflammation and infection.
  • the low molecular weight drug is preferably glucose, sucrose, purified sucrose, lactose, maltose, trehalose, dextran, iodine, lysozyme chloride, dimethylisopropylazulene, tretinoin tocopheryl, popidone iodine, alprostadil alphadex, anis alcohol, isoamyl salicylate , ⁇ , ⁇ -dimethylphenylethyl alcohol, bagdanol, helional, silver sulfadine, bucladecin sodium, alprostadil alphadex, gentamicin sulfate, tetracycline hydrochloride, sodium fusidate, mupirocin calcium hydrate and isoamyl benzoate Selected from.
  • the present invention relates to a hemostatic agent for bleeding of blood whose anticoagulant has been added and reduced coagulation ability, a hemostatic agent for bleeding wounds of parenchymal organs, a hemostatic agent for arterial bleeding and venous hemorrhage.
  • An agent for preventing bile leakage from the gallbladder or bile duct, an agent for preventing bleeding or air leakage from the lung, a hemostatic agent capable of transcatheter application in endoscopic mucosal resection, and a mucosal tissue for raising the excision An agent for preventing bleeding and fluid leakage from the excised part in a method of excising a mucosal tissue part raised by injecting a liquid into the mucous membrane, or an arteriovenous occlusion agent or vein in an arteriovenous occlusion It also relates to varicose sclerosis agents in aneurysm sclerotherapy. An anticancer agent and / or contrast agent can be added to the arteriovenous occlusive agent or varicose vein sclerosing agent.
  • the tissue occlusive agent of the present invention is capable of becoming a scaffold for migrating cells in addition to the role of the self-assembling peptide, which is the main component, as a occlusive agent, and has a higher healing effect after surgery than simply occluding it. Can bring.
  • the tissue occlusive agent of the present invention improves the adhesion with the tissue when excess body fluid is removed from the body fluid leakage part (for example, when applied to the hemostatic part in a state where bleeding is stopped), and has a sufficient tissue occluding effect. And biological safety can be obtained.
  • the self-assembling peptide which is the main component of the tissue occlusive agent of the present invention, can be produced by synthesis, there is no risk of infection with viruses or the like as compared with conventional bio-derived materials, and itself is a living body. Since it is absorbable, there is no need to worry about inflammation.
  • Bile duct wall occlusion effect of 3% aqueous peptide solution in a bile duct wall perforation model (a) State before puncture of bile duct, (b) Confirmation of bile leakage after puncture of bile duct (arrow tip), (c) Application of peptide aqueous solution (arrow tip), (d) After washing with physiological saline ( Bile leakage around the bile duct as in b) is not observed (arrow tip). Mucosal bulge formation and hemostatic effect by 3% aqueous peptide solution in intravesical tumor.
  • tissue occlusive agent of the present invention will be described in detail.
  • the tissue occlusive agent of the present invention is an amphipathic peptide having amino acid residues 8 to 200 in which hydrophilic amino acids and hydrophobic amino acids are alternately bonded, and in the presence of physiological pH and / or cation,
  • the main component is a self-assembling peptide that exhibits a ⁇ structure in an aqueous solution.
  • the physiological pH is from pH 6 to pH 8, preferably from pH 6.5 to pH 7.5, and more preferably from pH 7.3 to pH 7.5.
  • the cation is, for example, 5 mM to 5 M sodium ion or potassium ion.
  • the self-assembling peptide used in the present invention can be represented by, for example, the following four general formulas.
  • X represents an acidic amino acid
  • Y represents a hydrophobic amino acid
  • Z represents a basic amino acid
  • l, m and n are all integers (n ⁇ (l + m) ⁇ 200)).
  • the N terminal may be acetylated and the C terminal may be amidated.
  • hydrophilic amino acid an acidic amino acid selected from aspartic acid and glutamic acid and a basic amino acid selected from arginine, lysine, histidine and ornithine can be used.
  • hydrophobic amino acid alanine, valine, leucine, isoleucine, methionine, phenylalanine, tyrosine, tryptophan, serine, threonine or glycine can be used.
  • a self-assembling peptide having a repetitive sequence of arginine, alanine, aspartic acid and alanine can be preferably used.
  • the sequence of such a peptide is Ac- (RADA).
  • p- CONH 2 (p 2 to 50).
  • a self-assembling peptide having repeating sequences of lysine, leucine, aspartic acid and leucine can also be preferably used.
  • These self-assembling peptides can be composed of 8 to 200 amino acid residues. Among them, 8-32 residue self-assembling peptides are preferable, and self-assembling peptides having 12 to 16 residues are more preferable. preferable.
  • the self-assembling peptide in the present invention include peptides RAD16-I having the (Ac- (RADA) 4 -CONH 2 ) sequence (SEQ ID NO: 1), (Ac- (IEIK) 3 I-CONH 2 ) Peptide IEIK13 having the sequence (SEQ ID NO: 2), peptide KLD having the (Ac- (KLDL) 3 -CONH 2 ) sequence (SEQ ID NO: 3), and RAD16-I is designated as PuraMatrix (registered trademark) The 1% aqueous solution is commercialized by 3D Matrix. PuraMatrix (registered trademark) includes hydrogen ions and chloride ions in addition to a peptide having 1% (Ac- (RADA) 4 -CONH 2 ) sequence (SEQ ID NO: 1).
  • PuraMatrix (registered trademark), IEIK13 and KLD are oligopeptides having 12 to 16 amino acids and a length of about 5 nm.
  • the solution is liquid when it is acidic pH, but it is changed to neutral pH.
  • self-assembly of the peptide occurs, and nanofibers having a diameter of about 10 nm are formed.
  • the peptide solution gels.
  • PuraMatrix (registered trademark) is an amphipathic peptide having an amino acid sequence in which residues of arginine positively charged and aspartic acid negatively charged as hydrophilic amino acids and alanine residues as hydrophobic amino acids are alternately repeated.
  • IEIK13 is A hydrophilic amino acid is an amphiphilic peptide having a positively charged lysine and a negatively charged glutamic acid, a hydrophobic amino acid having an amino acid sequence in which isoleucine residues are alternately repeated, and KLD has a positive charge as a hydrophilic amino acid.
  • amphiphilic peptide having an amino acid sequence in which lysine and negatively charged aspartic acid and leucine residues are alternately repeated as hydrophobic amino acids, and the self-assembly of peptides is between peptide molecules by the amino acids constituting the peptides. Hydrogen bonding and hydrophobicity Due to binding.
  • the nanofiber has a diameter of 10 to 20 nm and a pore size of 5 to 200 nm. This numerical range is approximately the same size as collagen, which is a natural extracellular matrix.
  • the self-assembling conditions of the self-assembling peptide used in the present invention include physiological conditions of pH and salt concentration.
  • the presence of monovalent alkali metal ions is important. That is, sodium ions and potassium ions present in large amounts in the living body contribute to the promotion of gelation. Once gelled, the gel does not degrade even when using denaturing agents such as normal protein denaturing conditions such as high temperature, acid, alkali, proteolytic enzyme, urea, guanidine hydrochloride.
  • these self-assembling peptides such as PuraMatrix (registered trademark) are peptide sequences that do not have an apparent bioactive motif, there is no concern that the original cell function is impaired.
  • Bioactive motifs are involved in the control of many intracellular phenomena such as transcription, and when a bioactive motif is present, proteins in the cytoplasm and cell surface are phosphorylated by enzymes that recognize the motif. When a bioactive motif is present in a peptide tissue occlusive agent, transcriptional activity of various functional proteins may be activated or inhibited. There is no such concern with self-assembling peptides such as PuraMatrix (registered trademark) that do not have a bioactive motif.
  • the self-assembling peptide used in the present invention is produced by chemical synthesis, it does not contain unknown components derived from animal-derived extracellular matrix. This property indicates that there is no risk of infection such as BSE, and that it has high safety for medical use.
  • the tissue occlusive agent of the present invention can be further mixed with a low molecular drug.
  • a low molecular drug are not particularly limited, but glucose, sucrose, purified sucrose, lactose, maltose, trehalose, dextran, iodine, lysozyme chloride, dimethylisopropylazulene, tretinointocopheryl, popidone iodine, alprosta Zir alfadex, anis alcohol, isoamyl salicylate, ⁇ , ⁇ -dimethylphenylethyl alcohol, bagdanol, helional, silver sulfadin, bucladecin sodium, alprostadil alphadex, gentamicin sulfate, tetracycline hydrochloride, sodium fusidate, mupirocin calcium water
  • Examples include Japanese and isoamyl benzoate.
  • the tissue occlusive agent of the present invention can improve the osmotic pressure of the solution from hypotonic to isotonic without reducing the tissue occlusive effect by adding sugar, and can further improve the biological safety.
  • tissue occlusive agent of the present invention examples include powder, solution, gel and the like. Since the self-assembling peptide gels due to changes in pH and salt concentration of the solution, it can be distributed as a liquid agent that gels by contacting with a living body at the time of application.
  • a liquid medicine containing a component such as a self-assembling peptide is pre-filled in a syringe or pipette with a cylinder (in the form of a prefilled syringe), or the component is replenished from the opening of a syringe or pipette tip.
  • a chemical solution is supplied to a syringe or pipette tip by means (aspirator or valve) and applied from the discharge part to the affected part.
  • the syringe and pipette may be composed of two or more.
  • the component can be used as a coating for devices such as stents and catheters to suppress fluid leakage.
  • the components can be fix the components on a support or backing such as gauze or bandage that is usually used in this field.
  • the component can be used by soaking it in a sponge.
  • a spray spray filled with component powders or solutions can be prepared.
  • the pH and salt concentration increase due to contact with the living body and gel, so that it can be applied to various parts and states rather than handling in the gel state.
  • tissue occlusive agent of the present invention will be described in more detail by way of examples, but the present invention is not limited to these unless departing from the spirit and scope of application.
  • Feeding pellets for breeding (JA Tohnichi Kumiai Feed Co., Ltd.) in a breeding room controlled at room temperature 25 ° C, humidity 65%, lighting time 12 hours (7: 00-19: 00) Reared in Fasting was limited to the morning of the test day, and water supply was free.
  • ⁇ Method> Rabbits were subcutaneously administered with 2% sectatal injection solution (2.0 g as xylazine in 100 mL, manufactured by Bayer) (3 mg / kg), then ketamine (containing 50 mg as ketamine in 1 mL, Fuji Chemical Industry Co., Ltd.) Anesthesia was performed by intravenous administration (10 mg / kg). • The rabbit was laparotomized through a midline incision. The abdominal aorta and portal trunk are exposed about 10 cm, each blood vessel is detached from the surrounding tissue, the abdominal aorta is punctured with a 23G injection needle (manufactured by Terumo), and the portal trunk is a 26G injection needle (Terumo). Vessel puncture was performed.
  • FIG. 1 the example of the hemostatic effect of the peptide aqueous solution with respect to the bleeding from the blood vessel of a present Example is shown.
  • Table 1 in the abdominal aorta perforation model, complete hemostasis was observed in 2 out of 2 cases with a 3% peptide aqueous solution. However, in the 1% peptide aqueous solution, eruption of bleeding was observed after the release of blood flow blocking in both cases, and hemostasis was not stopped. Similarly, in the portal vein trunk perforation model, a complete hemostatic effect was observed in 2 of the 2 cases with the 3% peptide aqueous solution, but persistent venous bleeding was observed with the 1% peptide aqueous solution.
  • Hemostatic effect of 1% peptide aqueous solution and 3% peptide aqueous solution in rabbit liver resection model A rabbit liver partial resection bleeding model was prepared and the hemostatic effect of 1% peptide aqueous solution and 3% peptide aqueous solution was evaluated.
  • ⁇ Method> Rabbits were subcutaneously administered with 2% sectatal injection solution (2.0 g as xylazine in 100 mL, manufactured by Bayer) (3 mg / kg), then ketamine (containing 50 mg as ketamine in 1 mL, Fuji Chemical Industry Co., Ltd.) Anesthesia was performed by intravenous administration (10 mg / kg). The rabbit was laparotomized through a midline incision, and the liver left or right lobe was sharply excised with a cutting blade in a size of about 5 cm ⁇ length: about 3 cm from the margin to create a liver transection plane.
  • FIG. 2 the example of the hemostatic effect of the peptide aqueous solution with respect to the bleeding from the hepatectomy surface of a present Example is shown.
  • Table 2 a complete hemostatic effect was observed in 2 of 2 cases with a 1% aqueous peptide solution, but only a complete hemostatic effect was observed in 1 of 4 cases with a 3% aqueous peptide solution. .
  • FIG. 3 vascular occlusion in the superficial portion of the blood vessel due to the gelled aqueous peptide solution adhered to the hepatic tissue was confirmed (FIG. 3).
  • Hemostatic effect of aqueous peptide solution in rabbit abdominal aorta injection needle perforation model with reduced blood coagulation ability The hemostatic effect of aqueous peptide solution was evaluated by an abdominal aorta injection needle puncture model in rabbits administered with an anticoagulant (heparin).
  • ⁇ Method> Rabbits were subcutaneously administered with 2% sectatal injection solution (2.0 g as xylazine in 100 mL, manufactured by Bayer) (3 mg / kg), then ketamine (containing 50 mg as ketamine in 1 mL, Fuji Chemical Industry Co., Ltd.) Anesthesia was performed by intravenous administration (10 mg / kg). -1,000 units of heparin (Novo heparin injection, 5,000 units of Mochida Pharmaceutical) were administered from the inferior vena cava to artificially reduce blood coagulation ability. • The rabbit was laparotomized through a midline incision.
  • the abdominal aorta was exposed about 10 cm, the blood vessel was detached from the surrounding tissue, and blood vessel puncture was performed with 26G, 25G, and 23G injection needles (manufactured by Terumo).
  • 26G, 25G, and 23G injection needles manufactured by Terumo.
  • blood flow was blocked at the peripheral side and the central side with blood vessel blocking forceps, and after bleeding blood was removed with physiological saline and gauze, it was immediately treated with an aqueous peptide solution.
  • -Blood flow was resumed 1-2 minutes after the treatment, and the presence or absence of bleeding was visually confirmed.
  • FIG. 4 the example of the hemostatic effect of the peptide aqueous solution with respect to the bleeding from the abdominal aorta in the rabbit with reduced blood coagulation ability of the present Example is shown.
  • Table 3 complete hemostasis was observed with a 3% aqueous peptide solution in 26G, 25G, and 23G injection needle perforation models.
  • Hemostasis effect of sugar-containing peptide aqueous solution in rabbit abdominal aorta / portal trunk main needle perforation model The hemostatic effect of sugar-containing peptide aqueous solution was evaluated by a needle perforation model of abdominal aorta and portal trunk.
  • Trehalose-containing 2% peptide aqueous solution (peptide sequence: Ac- (RADA) 4 -NH 2 , manufactured by CPC Scientific, Inc .; trehalose: Wako Pure Chemical Industries, concentration 5%) 4. 3 % aqueous peptide solution (peptide sequence: Ac- (RADA) 4 -NH 2 , manufactured by CPC Scientific, Inc) 5. 2% aqueous peptide solution (peptide sequence: Ac- (RADA) 4 -NH 2 , manufactured by CPC Scientific, Inc) ⁇ Animal Japanese white rabbit (3.0-4.0kg, Japan White, conventional, purchased from Funabashi Farm Co., Ltd.).
  • Feeding pellets for breeding (JA Tohnichi Kumiai Feed Co., Ltd.) in a breeding room controlled at room temperature 25 ° C, humidity 65%, lighting time 12 hours (7: 00-19: 00) Reared in Fasting was limited to the morning of the test day, and water supply was free.
  • ⁇ Method> Rabbits were subcutaneously administered with 2% sectatal injection solution (2.0 g as xylazine in 100 mL, manufactured by Bayer) (3 mg / kg), then ketamine (containing 50 mg as ketamine in 1 mL, Fuji Chemical Industry Co., Ltd.) Anesthesia was performed by intravenous administration (10 mg / kg). • The rabbit was laparotomized through a midline incision. The abdominal aorta and portal trunk are exposed about 10 cm, each blood vessel is detached from the surrounding tissue, the abdominal aorta is punctured with 26G, 25G and 23G injection needles (made by Terumo), and the portal trunk is 26G.
  • Blood vessel puncture was performed with an injection needle (manufactured by Terumo). -After confirming bleeding, blood flow was blocked on the peripheral side and the central side with vascular blocking forceps, and after bleeding blood was removed with physiological saline and gauze, treatment was performed immediately with an aqueous peptide solution. -Blood flow was resumed 1-2 minutes after the treatment, and the presence or absence of bleeding was visually confirmed.
  • FIG. 5 the example of the hemostatic effect of the sugar containing peptide aqueous solution in a present Example is shown.
  • Table 4 in the abdominal aorta 23G, 25G, and 26G injection needle perforation models, the hemostatic effect of the 3% aqueous peptide solution and the 3% aqueous peptide solution containing sucrose was equivalent.
  • Feeding pellets for breeding (JA Tohnichi Kumiai Feed Co., Ltd.) in a breeding room controlled at room temperature 25 ° C, humidity 65%, lighting time 12 hours (7: 00-19: 00) Reared in Fasting was limited to the morning of the test day, and water supply was free.
  • ⁇ Method> ⁇ Rabbits were subcutaneously administered with 2% sectatal injection solution (2.0 g as xylazine in 100 mL, manufactured by Bayer) (3 mg / kg), then ketamine (containing 50 mg as ketamine in 1 mL, Fuji Chemical Industry Co., Ltd.) Anesthesia was performed by intravenous administration (10 mg / kg). ⁇ Rabbits were opened with ventilator assistance. The lungs were exposed and the lungs were bluntly injured with a pendulum, creating a pulmonary leak with bleeding. After bleeding blood was removed with physiological saline and gauze, the bleeding surface was treated with a 3% aqueous solution of sucrose-containing peptide and physiological saline. -About 30 seconds after the treatment, the presence or absence of hemorrhage and air leak from pulmonary leakage was visually confirmed in physiological saline.
  • FIG. 6 shows the pulmonary leak closure effect of the aqueous solution of sucrose-containing peptide in this example. As shown in Table 6, complete hemostasis and pulmonary leak closure were confirmed in the 3% sucrose-containing peptide aqueous solution, but continuous hemorrhage and air leak were observed in the physiological saline.
  • Bile duct wall occlusion effect of peptide aqueous solution in rabbit bile duct injection needle perforation model A rabbit injection needle bile duct perforation model was prepared and the bile duct wall occlusion effect of peptide aqueous solution was evaluated.
  • ⁇ Method> Rabbits were subcutaneously administered with 2% sectatal injection solution (2.0 g as xylazine in 100 mL, manufactured by Bayer) (3 mg / kg), then ketamine (containing 50 mg as ketamine in 1 mL, Fuji Chemical Industry Co., Ltd.) Anesthesia was performed by intravenous administration (10 mg / kg). • The rabbit was laparotomized through a midline incision. The bile duct was exposed about 10 cm and peeled from the surrounding tissue, and then bile duct puncture was performed with a 26G injection needle.
  • Elevation maintenance effect and hemostatic effect of excised part with peptide aqueous solution in canine bladder tumor removal Intravesical tumor excision of canine intravesical tumor is injected into the bladder mucosa, and evaluation of the protuberance maintenance effect and hemostatic effect of excised part with peptide aqueous solution Went.
  • canine cystectomy was performed by the following procedure. ⁇ After incision of the lower abdomen using an electric knife (manufactured by Elbe), the bladder was opened using an electric knife to expose the tumor in the bladder (a pedunculated tumor with a base diameter of about 0.5 cm raised from the bladder mucosa) . -A 3% aqueous peptide solution was injected into the submucosa around the tumor base in four 0.5 mL portions, and it was confirmed that the tumor on the mucosa was raised. -After raising the tumor, the tumor was excised with an electric knife. -The time from the injection of the peptide aqueous solution to the completion of tumor resection was about 2 minutes.
  • the tumor was raised by submucosal injection of an aqueous peptide solution into the bladder, and the raised state could be maintained even during resection. There was no bleeding during and after tumor resection.
  • Hemostatic effect of 2% peptide aqueous solution in rabbit gastric mucosal incision model A rabbit gastric mucosal incision bleeding model was prepared and the hemostatic effect of 2% peptide aqueous solution was evaluated.
  • ⁇ Method> Rabbits were administered cekratal 2% injection solution (containing 2.0 g as xylazine in 100 mL, manufactured by Bayer) subcutaneously (3 mg / kg), then ketamine (containing 50 mg as ketamine in 1 mL, Fuji Chemical Industry Co., Ltd.) Anesthesia was performed by intravenous administration (10 mg / kg). The rabbit was laparotomized through a midline incision, the stomach was incised, the gastric mucosa was exposed, and a sharp wound was made about 1 cm sharply to create a bleeding wound.
  • Hemostatic effect of 1% peptide aqueous solution in rabbit liver transverse incision model A rabbit liver transverse incision bleeding model was prepared and the hemostatic effect of 1% peptide aqueous solution was evaluated.
  • ⁇ Material> -Peptide aqueous solution 1.1% peptide aqueous solution (peptide sequence: IEIK9 (SEQ ID NO: 4), manufactured by CPC Scientific, Inc) 2.1% aqueous peptide solution (peptide sequence: IEIK13, manufactured by CPC Scientific, Inc) 3.1% peptide aqueous solution (peptide sequence: KLD, manufactured by CPC Scientific, Inc)
  • ⁇ Method> Rabbits were subcutaneously administered with 2% sectatal injection solution (2.0 g as xylazine in 100 mL, manufactured by Bayer) (3 mg / kg), then ketamine (containing 50 mg as ketamine in 1 mL, Fuji Chemical Industry Co., Ltd.) Anesthesia was performed by intravenous administration (10 mg / kg). The rabbit was laparotomized by a midline incision, and the left lobe of the liver was sharply incised approximately 1 cm with a cutting blade to create a bleeding wound. -After confirming exudative bleeding from the incision, blood was removed with gauze as much as possible, and then the prepared liver incision was treated with an aqueous peptide solution. -One minute after the treatment, the aqueous peptide solution gelled with physiological saline was removed, and the presence or absence of bleeding from the liver incision was visually confirmed.
  • FIG. 10 the example of the hemostatic effect of the peptide aqueous solution with respect to the bleeding from the liver incision wound of a present Example is shown.
  • the IEIK9 peptide aqueous solution was layered on the bleeding wound surface, it did not gel at all and no hemostatic effect was observed, but the IEIK13 peptide aqueous solution and the KLD peptide aqueous solution gelled after application, and bleeding was not confirmed.
  • ⁇ Method> Rabbits were subcutaneously administered with 2% sectatal injection solution (2.0 g as xylazine in 100 mL, manufactured by Bayer) (3 mg / kg), then ketamine (containing 50 mg as ketamine in 1 mL, Fuji Chemical Industry Co., Ltd.) Anesthesia was performed by intravenous administration (10 mg / kg). The rabbit was laparotomized through a midline incision, and bile was collected from the gallbladder with a 23G injection needle (Terumo).
  • ⁇ Method> Rats were anesthetized with diethyl ether (Kishida Chemical Co., Ltd.). -The rat was opened with a midline incision to expose the portal vein. -4 mL of the peptide aqueous solution was injected from the main portal vein with a 26G injection needle (manufactured by Terumo), and bleeding from the puncture site was immediately stopped with the peptide aqueous solution. -Five minutes after injection, the liver was removed and immediately fixed with 10% formalin (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.). -The tissue was fixed for 1 week and then stained with hematoxylin and eosin (HE).
  • HE hematoxylin and eosin
  • Peptide solution 3% aqueous peptide solution (peptide sequence: Ac- (RADA) 4-NH 2, CPC Scientific, manufactured by Inc Co.) ⁇ Cell culture medium (Dulbecco's Modified Eagle Medium, manufactured by GIBCO) ⁇ Iopamidoll (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.)
  • ⁇ Method> -306.2 mg of iopamidol was dissolved in 1 ml of 3% aqueous peptide solution. -A 3% aqueous peptide solution containing iopamidol was diluted with MilliQ water to prepare a 0.0468% aqueous peptide solution.
  • Peptide solution 3% aqueous peptide solution (peptide sequence: Ac- (RADA) 4-NH 2, CPC Scientific, manufactured by Inc Co.) ⁇ Cell culture medium (Dulbecco's Modified Eagle Medium, manufactured by GIBCO) ⁇ Iopamidoll (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) ⁇ Microcatheter (2.4Fr, 150/20, manufactured by Boston Scientific)
  • ⁇ Method> -306.2 mg of iopamidol was dissolved in 1 ml of 3% aqueous peptide solution. -A 3% peptide aqueous solution containing iopamidol was discharged into a cell culture medium via a microcatheter.

Abstract

　ヒトを含む大型哺乳動物に適用可能な生体吸収性のペプチド組織閉塞剤であって、ウイルスなどの感染性の懸念のない人工合成によるペプチド組織閉塞剤の提供。 　ペプチドを含有する組織閉塞剤であって、該ペプチドが、親水性アミノ酸と疎水性アミノ酸とが交互に結合し、アミノ酸残基８～２００を有する両親媒性のペプチドであり、生理的ｐＨおよび／または陽イオンの存在下、水溶液中でβ構造を示す自己組織化ペプチドである組織閉塞剤。

Description

組織閉塞剤
　本発明は、自己組織化ペプチドハイドロゲルを含有することを特徴とする組織閉塞剤に関する。
　生体の組織損傷による体液（血液、組織液など）漏出を防ぐ組織閉塞は、手術などの臨床上、重要な意味を持つ。損傷部からの体液漏出を効果的に抑えることは、患者の手術中の生命維持、術後の生活の質（ＱＯＬ）の向上につながる。
　臨床において止血が重要視される理由として、以下が挙げられる。
１．失血は死亡の大きな要因の１つであり、失血要因には、重篤な外傷、動脈瘤、食道や胃における潰瘍、および食道静脈瘤の破裂などがある。特に、緊急に止血治療を受けることができない場合には、死亡の可能性が高くなる。
２．手術時における出血は、手術における大きな懸念の一つで、出血により、全身感染症や臓器の機能不全が生じる。また、出血は術野を妨げるだけでなく、出血した血液の除去は手術の遅延につながる。
３．出血は、最小侵襲手術（腹腔鏡下手術など）を行っている場合でも問題となり、出血を十分に抑制できない場合、切開手術に変更せざるをえない場合もある。
　既存の止血方法としては、以下が挙げられる。
１．出血部の血管に直に圧迫する方法（圧迫止血）。この止血法の欠点は、時間と手間がかかり圧力を維持しておく必要がある点、また患者に血腫ができる恐れがある点である。
２．その他の物理的手段による止血方法として、出血部近傍をクランプ、クリップする方法、出血部にプラグやスポンジのようなものを乗せる方法がある。これらの止血法の欠点は、多数の微小血管から出血している場合に扱いが困難である点である。
３．熱によって血液を凝固させ、出血している血管を焼灼する方法（電気メス）。この方法の欠点は、周囲組織を熱損傷させ患者への侵襲が大きい点、医療用器具が必要で専門性を要する点である（医療機関以外では使用できない）。
　既存の止血材としては、以下が挙げられる。
１．アルギン酸
２．ゼラチンスポンジ
３．コラーゲン線維
４．フィブリン糊。
　上記のうちコラーゲン線維とフィブリン糊が効果的な止血材として、臨床でしばしば利用されているが、これらの欠点は、（１）ゼラチンとコラーゲン線維は動物性コラーゲン、フィブリン糊は血液製剤とウシ由来トロンビンを使用した動物由来製品であるため、感染症の危険性がある、（２）透明でないため術野の妨げとなる、点が挙げられる。
　手術において患者の血液凝固能を人為的に低下させた、ヘパリン血状態にすることがある。人工心肺を使用する手術においては、血液凝固を抑えるためにヘパリンを使用する。人工心肺装置は生体にとって異物であり、血液をそのまま人工心肺装置へ流すと、すぐに血液が凝固し回路が詰まってしまうため、体外循環を行う前にヘパリンを血液に投与する。
　コラーゲン線維、フィブリン糊は、生体の血液凝固系を利用して止血するため、ヘパリン血状態では、止血効果が低下する。止血効果が低下すると出血量が多くなるため輸血が必要になりやすく、また体外循環終了後の完全止血にも長時間を要する。したがって、ヘパリン血状態でも性能が低下しない血液凝固作用を利用しない止血材が求められている。
　血管縫合は心臓・血管系手術だけでなく、一般的な腹腔内手術時にも必要になることがある。術後、血管縫合部からわずかな血液漏出があるため、それを持続的に抑える止血材が求められている。
　胆汁婁・膵液婁は、胆道系手術、膵炎や膵臓手術などによって胆汁、膵液が漏れ出し、他の臓器に悪影響を及ぼす症状のことである。現在、胆汁や膵液の漏出を効果的に抑え、かつ臨床使用可能な物質は知られておらず、安全かつ効果的に胆汁婁・膵液婁を防ぐ方法が求められている。
　肺おいて、肺胞の嚢包が破れる自然気胸や、肋骨骨折やカテーテル穿刺等の外傷性気胸などにより、空気が漏出する病状が知られている。症状によっては自然治癒を待つしかなく、患部に上層するだけで肺組織と接着し、嚢包の穴を塞ぐことが可能な方法は、気胸を治療する手段として、簡便かつ安全性が高い方法の一つと考えらえる。
　内視鏡技術の発達により、病変部を内視鏡的に切除する技術が開発されてきている。特に食道、胃又は腸を含む消化管のポリープや早期がん（リンパ節転移がないと考えられている表層癌）等の病変部を内視鏡的に切除する手術法が確立されてきている。内視鏡的粘膜切除術では、一般的に病変部を含む粘膜下層に高張食塩水などを注入して病変部を隆起させ、切除部分を把持しながら電気メスなどにより病変部を含む組織の切除を行う。
　当該手技において、病変部と固有筋層を引き離すために粘膜下層へ高張食塩水等の溶液を注入するが、食塩水等の粘性の低い溶液では病変部の隆起を手術中維持できないという問題点があり、患部の隆起を手術中維持可能な注入液が望まれている。
　また病変部切除部からの出血をトロンビンなどの血管収縮剤をカテーテルを利用して投与することで出血を抑制する方法が用いられるが、完全に出血を止める効果的な処置法は確立されておらず、切除後の出血を速やかに止める方法も同時に求められている。
　カテーテル療法の発達により、腫瘍や筋腫等の血流支配をうける病変部へ流入する動脈を閉塞させることにより、腫瘍や筋腫等を死滅させる手術方法が確立されてきている。具体的には、肝臓脈閉塞術、子宮動脈閉塞術、脳動脈閉塞術等を挙げることができる。
　当該手技において、動脈を閉塞させるために、異種動物から抽出されたコラーゲンやエチレンビニルアルコールなどの液体を注入するが、感染の危険性や生体毒性が懸念されている。そこで、感染の危険性がなく、かつ、生体毒性の低い注入液の開発が望まれている。
　また、注入液は抗癌剤や造影剤の添加が可能であることも求められている。
　自己組織化ペプチドは、そのアミノ酸配列により、多数のペプチド分子が規則正しく並んだ自己会合体を形成する特性を有する。近年、その物理的、化学的、生物学的性質から、新規マテリアルとして注目を浴びている。
　自己組織化ペプチドは、電荷を帯びた親水性アミノ酸と電気的に中性な疎水性アミノ酸が交互に並び、正電荷と負電荷が交互に分布する構造をもち、生理的なｐＨと塩濃度においてβ構造をとる。
　親水性アミノ酸としては、アスパラギン酸、グルタミン酸から選択される酸性アミノ酸、およびアルギニン、リジン、ヒスチジン、オルニチンから選択される塩基性アミノ酸を使用することができる。疎水性アミノ酸としては、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、セリン、スレオニン、グリシンを使用することができる。
　当該ペプチドの自己組織化は、以下の条件下で生じる。
（１）水溶液中でペプチド分子がβ構造を取ることで、電荷をもつ親水性アミノ酸と電気的に中性な疎水性アミノ酸がペプチド分子の2面に偏在する。
（２）β構造をとったとき、隣分子と相補的な電化分布になる。
（３）β構造をとったとき、隣分子と十分な疎水結合を形成する。
（４）1価の無機塩によりアミノ酸側鎖の電荷がスクリーニングされる。
（５）ペプチドの等電点近くで、分子が静電的に中性になる。
　上述の条件が整ったとき、以下の機序で自己組織化が進むと考えられている。
（１）交互に分布するペプチド分子の正電荷と負電荷によって分子同士が引き合って近づく。
（２）隣分子の中性アミノ酸側鎖間で疎水結合が形成される。
（３）正負の電化分布により隣分子同士の相対的な配置が整えられ、分子間の会合力が強まる。
（４）分子の集合体が徐々に伸長し、ナノファイバーを形成する
　ナノファイバーは太さ１０nm～２０nm程の極細繊維で、網目上に集合し、巨視的にはゲル状を呈することが報告されている。
　ゲルの網目構造は、ファイバーサイズおよびポアサイズなどが天然の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）と非常に似ており、細胞培養の足場としての利用が研究されている。
　このペプチドハイドロゲルは、生分解性であり、分解産物が組織に悪影響を与えず、生体吸収性が高いことから、細胞の生着や増殖に適している。
　自己組織化ペプチドは固相合成法による化学合成品であり動物由来の感染症などの心配がないため、近年狂牛病など、動物からのウイルスやそのほか未知の感染症への懸念が高まったことから、コラーゲンなどの代替品として、さらに注目されている。
　自己組織化ペプチドの止血への応用は特許文献1に示されているが、実施例に引用された論文の肝臓切開部における止血ビデオ映像では、切開部末端から持続的な血液漏出が認められ、報告されている完全止血ができていない。止血が不完全な理由は、自己組織化ペプチドゲルと組織の接着が不十分なためと推測される。したがって、自己組織化ペプチドの止血効果を臨床応用可能なレベルにまで引き出すためには、さらなる改良が必要である。
国際公開第２００６－１１６５２４号パンフレット
　本発明の目的は、ヒトを含む大型哺乳動物において組織の損傷部を効果的に閉塞でき、かつウイルスなどの感染性の懸念がない自己組織化ペプチド組織閉塞剤とその使用方法を提供することである。
　本発明者らは、細胞培養の足場として利用されている自己組織化ペプチドハイドロゲルを組織閉塞に適用することにより、既存組織閉塞剤と同等以上の組織閉塞効果を示すことを見出し、本発明を完成した。また、ペプチド水溶液を体液漏出部に単純に適応するだけでは十分な組織閉塞効果を得ることができないという課題があった。そこで、鋭意研究の結果、体液漏出部から余剰体液を除去することで、十分な組織閉塞効果と生体安全性を得ることができることを見出し、本発明を完成させた。
　すなわち、本発明は、ペプチドを含有する組織閉塞剤であって、該ペプチドが、親水性アミノ酸と疎水性アミノ酸が交互に結合し、アミノ酸残基８～２００を有する両親媒性のペプチドであり、生理的ｐＨおよび／または陽イオンの存在下、水溶液中でβ構造を示す自己組織化ペプチドである組織閉塞剤に関する。
　前記組織閉塞剤において、前記ペプチドが、アルギニン、アラニン、アスパラギン酸およびアラニンからなる配列、イソロイシン、グルタミン酸、イソロイシン、およびリジンからなる配列、またはリジン、ロイシン、アスパラギン酸の及びロイシンからなる配列の繰り返し配列を有する自己組織化ペプチドであることが好ましく、配列番号１、配列番号２、または配列番号３記載のアミノ酸配列からなる自己組織化ペプチドであることがより好ましい。
　前記組織閉塞剤は、さらに、溶血、炎症、感染症を防ぐために低分子薬剤を含有することが好ましい。
　前記低分子薬剤は、好ましくは、ブドウ糖、白糖、精製白糖、乳糖、麦芽糖、トレハロース、デキストラン、ヨウ素、塩化リゾチーム、ジメチルイソプロピルアズレン、トレチノイントコフェリル、ポピドンヨード、アルプロスタジルアルファデクス、アニスアルコール、サリチル酸イソアミル、α，α－ジメチルフェニルエチルアルコール、バグダノール、ヘリオナール、スルファジン銀、ブクラデシンナトリウム、アルプロスタジルアルファデクス、硫酸ゲンタマイシン、塩酸テトラサイクリン、フシジン酸ナトリウム、ムピロシンカルシウム水和物および安息香酸イソアミルからなる群から選択される。
　本発明は、上記の組織閉塞剤を含む、抗凝固剤を添加されて凝固能力が低下した血液の出血の止血剤、実質臓器の出血創面の止血剤、動脈性出血および静脈性出血の止血剤、胆のうまたは胆管からの胆汁漏出の防止剤、肺からの出血または空気漏出の防止剤、内視鏡的粘膜切除術における経カテーテル的適用が可能な止血剤および切除部分を隆起させるための粘膜組織への注入剤、粘膜組織に液体を注入することによって隆起された粘膜組織部分を切除する方法における切除部分からの出血及び体液漏出の防止剤、または、動静脈閉塞術における動静脈閉塞剤または静脈瘤硬化療法における静脈瘤硬化剤にも関する。この動静脈閉塞剤または静脈瘤硬化剤には、抗癌剤および／または造影剤を添加することもできる。
　本発明の組織閉塞剤は、その主要成分である自己組織化ペプチドが閉塞剤としての役割以外にも、遊走細胞の足場になることができ、単に閉塞しただけよりも、術後により高い治癒効果をもたらすことができる。また、本発明の組織閉塞剤は、体液漏出部から余剰体液を除去した場合（たとえば出血を止めた状態で止血部に適用した場合）、組織との接着性が向上し、十分な組織閉塞効果と生体安全性を得ることができる。
　また、本発明の組織閉塞剤の主要成分である自己組織化ペプチドは、合成により製造することができるため、従来の生体由来材料と比べてウイルス等の感染の危険もないうえ、それ自身は生体吸収性であるため、炎症等を懸念する必要もない。
腹部大動脈注射針穿孔モデルにおける１％ペプチド水溶液と３％ペプチド水溶液の止血効果の比較。(a) 大動脈穿刺後の出血の確認、血管周囲に出血が認められる（矢印先端部；１％ペプチド水溶液処理群）、(b) ペプチド水溶液の塗布（１％ペプチド水溶液処理群）、(c）遮断解除後、再出血による血液により血管が確認しにくい（矢印先端部；１％ペプチド水溶液処理群）、(d) 大動脈穿刺後の出血の確認、血管周囲に出血が認められる（矢印先端部；３％ペプチド水溶液処理群）、(e) ペプチド水溶液の塗布（３％ペプチド水溶液処理群）、(f) 生理食塩水での洗浄後、写真中央部に完全止血された血管が確認できる（矢印先端部；３％ペプチド水溶液処理群）。 肝臓部分切除モデルにおける１％ペプチド水溶液と３％ペプチド水溶液の止血効果の比較。(a) 肝臓切除後の出血の確認（１％ペプチド水溶液処理群）、(b) ペプチド水溶液の塗布（１％ペプチド水溶液処理群）、(c）生理食塩水での洗浄後、切断面から出血が認められない（矢印先端部；１％ペプチド水溶液処理群）、(d) 肝臓切除後の出血の確認（３％ペプチド水溶液処理群）、(e) ペプチド水溶液の塗布（３％ペプチド水溶液処理群）、(f) 生理食塩水での洗浄後切断面から出血が認められる（矢印先端部；３％ペプチド水溶液処理群）。 ペプチド水溶液によって止血した肝臓と対照群（生理食塩水）の肝臓の切断面の病理組織学的比較。(a) 血管内組織像（ペプチド水溶液処置群）、(b) 血管内組織像（生理食塩水処置群）、(c) 血管内組織像（ペプチド水溶液処置群）、(d) 血管内組織像（ペプチド水溶液処置群）、(e) 血管内組織像（ペプチド水溶液処置群）、(f) 血管内組織像（ペプチド水溶液処置群）。 血液凝固能低下ウサギの腹部大動脈注射針穿孔モデルにおける３％ペプチド水溶液の止血効果。(a)大動脈穿刺前の様子、(b) 大動脈穿刺後、血管周囲に出血が認められる（矢印先端部）、(c) ペプチド水溶液の塗布、(d）遮断解除後、(b)のような出血が血管周囲に認められない（矢印先端部）。 腹部大動脈注射針穿孔モデルにおける白糖含有３％ペプチド水溶液の止血効果。(a)大動脈穿刺前の様子、(b) 大動脈穿刺後、血管周囲に出血が認められる（矢印先端部）、(c) ペプチド水溶液の塗布、(d）遮断解除後、(b)のような出血が血管周囲に認められない（矢印先端部）。 肺漏モデルにおける白糖含有３％ペプチド水溶液と生理食塩水の止血効果および肺漏閉塞効果の比較。(a) 肺の出血確認（矢印先端部；白糖含有３％ペプチド水溶液処理群）、(b) ペプチド水溶液の塗布（矢印先端部；白糖含有３％ペプチド水溶液処理群）、(c）エアリーク確認のため生理食塩水に損傷部を沈めたところ、空気漏出、出血のどちらも認められなかった（矢印先端部；白糖含有３％ペプチド水溶液処理群）、(d) 肺の出血の確認（矢印先端部；生理食塩水処理群）、(e) 生理食塩水の塗布（矢印先端部；生理食塩水処理群）、(f)エアリーク確認のため生理食塩水中に沈めたため出血が判然としないが、持続した出血が認められる（矢印先端部；生理食塩水処理群）。 胆管壁穿孔モデルにおける３％ペプチド水溶液の胆管壁閉塞効果。(a)胆管穿刺前の様子、(b) 胆管穿刺後の胆汁漏出確認（矢印先端部）、(c) ペプチド水溶液の塗布（矢印先端部）、(d）生理食塩水での洗浄後、(b)のような胆管周囲への胆汁漏出が認められない（矢印先端部）。 膀胱内腫瘍における３％ペプチド水溶液による粘膜隆起形成と止血効果。(a) ペプチド水溶液注入前、(b) ペプチド水溶液の注入後の患部の隆起確認、(c）電気メスによる腫瘍切除中、切除部に出血は認められない、(d)電気メスによる腫瘍切除後、切除部に出血は認められない。 胃粘膜切開モデルにおける２％ペプチド水溶液の止血効果。（a）肝臓切開後の出血の確認（矢印先端部）、（b）２％ペプチド水溶液の塗布（矢印先端部）、（c）生理食塩水での洗浄後、切開部から出血が認められない（矢印先端部）。 肝臓横切開モデルにおける１％ペプチド水溶液の止血効果。（a）肝臓切開後の出血の確認（矢印先端部）、（b）１％IEIK9ペプチド水溶液の塗布（矢印先端部）、（c）生理食塩水での洗浄後、切開部から出血が認められる（矢印先端部）、（d）肝臓切開後の出血の確認（矢印先端部）、（e）１％IEIK13ペプチド水溶液の塗布（矢印先端部）、（f）生理食塩水での洗浄後、切開部から出血が認められない（矢印先端部）、（g）肝臓切開後の出血の確認（矢印先端部）、（h）１％KLDペプチド水溶液の塗布（矢印先端部）、（i）生理食塩水での洗浄後、切開部から出血が認められない（矢印先端部）。 胆汁による１．５％ペプチド水溶液の自己組織化の確認。（a）自己組織化前の１．５％PuraMatrixペプチド水溶液、（b）胆汁塗布後の１．５％PuraMatrixペプチド水溶液、（c）胆汁を除去し、自己組織化を確認、（d）物理的な衝撃を与えて自己組織化ゲルを破壊、（e）自己組織化前の１％ＩＥＩＫ９ペプチド水溶液、（f）胆汁塗布後の１％IEIK9ペプチド水溶液、（g）胆汁を除去後、ほとんど自己組織化を確認できず、（h）物理的な衝撃を与えて自己組織化ゲルを破壊、（i）自己組織化前の１％IEIK13ペプチド水溶液、（j）胆汁塗布後の１％IEIK13ペプチド水溶液、（k）胆汁を除去し、自己組織化を確認、（l）物理的な衝撃を与えて自己組織化ゲルを破壊、（m）自己組織化前の１％KLDペプチド水溶液、（n）胆汁塗布後の１％KLDペプチド水溶液、（o）胆汁を除去し、自己組織化を確認、（p）物理的な衝撃を与えて自己組織化ゲルを破壊。 ３％ペプチド水溶液による門脈塞栓効果の確認。（a）、（b）門脈の塞栓を確認（矢印先端部）。 イオパミドール含有ペプチド水溶液の自己組織化の確認。(a) 自己組織化前のイオパミドール含有３％ペプチド水溶液、(b) 細胞培養用培地塗布後のイオパミドール含有３％ペプチド水溶液、(c) 細胞培養用培地を除去し、自己組織化を確認、(d) 自己組織化前のイオパミドール含有０．０４６８％ペプチド水溶液、(e) 細胞培養用培地塗布後のイオパミドール含有０．０４６８％ペプチド水溶液、(f) 細胞培養用培地を除去し、自己組織化を確認。 イオパミドール含有３％ペプチド水溶液のカテーテル通過後の自己組織化の確認（矢印先端部）。
　以下、本発明の組織閉塞剤について詳細に説明する。
　本発明の組織閉塞剤は、親水性アミノ酸と疎水性アミノ酸とが交互に結合し、アミノ酸残基８～２００を有する両親媒性のペプチドであり、生理的ｐＨおよび／または陽イオンの存在下、水溶液中でβ構造を示す自己組織化ペプチドを主要成分とする。
　本発明において、生理的ｐHは、ｐH６からｐH８、好ましくは、ｐH６．５からｐH７．５、さらに好ましくは、ｐH７．３からｐH７．５である。また、本発明において陽イオンとは、たとえば、５ｍＭ～５Ｍのナトリウムイオンまたはカリウムイオンである。
　本発明において用いられる自己組織化ペプチドは、たとえば、以下の４つの一般式で表すことができる。
　（（ＸＹ）l－（ＺＹ）m）n　　　（Ｉ）
　（（ＹＸ）l－（ＹＺ）m）n　　　（II）
　（（ＺＹ）l－（ＸＹ）m）n　　　（III）
　（（ＹＺ）l－（ＹＸ）m）n　　　（IV）
（式（Ｉ）～（IV）中、Ｘは酸性アミノ酸、Ｙは疎水性アミノ酸、Ｚは塩基性アミノ酸を表し、ｌ、ｍおよびｎは共に整数（ｎ×（ｌ＋ｍ）＜２００）である。）
また、そのＮ末端はアセチル化されていてもよく、Ｃ末端はアミド化されていてもよい。
　ここで、親水性アミノ酸としては、アスパラギン酸、グルタミン酸から選択される酸性アミノ酸およびアルギニン、リジン、ヒスチジン、オルニチンから選択される塩基性アミノ酸を使用することができる。疎水性アミノ酸としては、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、セリン、スレオニンまたはグリシンを使用することができる。
　これらの自己組織化ペプチドの中でも、アルギニン、アラニン、アスパラギン酸およびアラニン（ＲＡＤＡ）の繰り返し配列を有する自己組織化ペプチドを好ましく使用することができ、そのようなペプチドの配列は、Ａｃ－（ＲＡＤＡ）p－ＣＯＮＨ2（ｐ＝２～５０）で表される。またイソロイシン、グルタミン酸、イソロイシンおよびリジン（ＩＥＩＫ）の繰り返し配列を有する自己組織化ペプチドも好ましく使用することができ、そのようなペプチドの配列は、Ａｃ－（ＩＥＩＫ）pＩ－ＣＯＮＨ2（ｐ＝２～５０）で表される。さらにリジン、ロイシン、アスパラギン酸およびロイシン（ＫＬＤＬ）の繰り返し配列を有する自己組織化ペプチドも好ましく使用することができ、そのようなペプチドの配列は、Ａｃ－（ＫＬＤＬ）p－ＣＯＮＨ2（ｐ＝２～５０）で表される。これらの自己組織化ペプチドは８～２００のアミノ酸残基数で構成しうるが、なかでも８～３２残基の自己組織化ペプチドが好ましく、さらに残基数１２～１６の自己組織化ペプチドがより好ましい。
　本発明における自己組織化ペプチドの好ましい具体例としては、（Ａｃ－（ＲＡＤＡ）4－ＣＯＮＨ2）配列（配列番号：１）を有するペプチドＲＡＤ１６－Ｉ、（Ａｃ－（ＩＥＩＫ）３Ｉ－ＣＯＮＨ2）配列（配列番号：２）を有するペプチドＩＥＩＫ１３、（Ａｃ－（ＫＬＤＬ）３－ＣＯＮＨ2）配列（配列番号：３）を有するペプチドＫＬＤが挙げられ、ＲＡＤ１６－Ｉは、PuraMatrix（登録商標）としてその１％水溶液が、株式会社スリー・ディー・マトリックスから製品化されている。PuraMatrix（登録商標）には、１％の（Ａｃ－（ＲＡＤＡ）4－ＣＯＮＨ2）配列（配列番号：１）を有するペプチドの他、水素イオン、塩化物イオンが含まれる。
　PuraMatrix（登録商標）、ＩＥＩＫ１３およびＫＬＤは、アミノ酸１２～１６残基で長さが約５nmのオリゴペプチドであって、その溶液は酸性ｐＨであると液状を示すが、中性ｐＨに変化させることでペプチドの自己組織化が生じ、直径１０nmほどのナノファイバーを形成し、結果としてペプチド溶液はゲル化する。
　PuraMatrix（登録商標）は親水性アミノ酸としてプラス電荷を帯びたアルギニンとマイナス電荷を帯びたアスパラギン酸、疎水性アミノ酸としてアラニンの残基が交互に繰り返すアミノ酸配列を有する両親媒性ペプチドであり、ＩＥＩＫ１３は親水性アミノ酸としてプラス電荷を帯びたリジンとマイナス電荷を帯びたグルタミン酸、疎水性アミノ酸としてイソロイシン残基が交互に繰り返すアミノ酸配列を有する両親媒性ペプチドであり、そしてＫＬＤは親水性アミノ酸としてプラス電荷を帯びたリジンとマイナス電荷を帯びたアスパラギン酸、疎水性アミノ酸としてロイシンの残基が交互に繰り返すアミノ酸配列を有する両親媒性ペプチドであり、ペプチドの自己組織化はペプチドを構成するアミノ酸によるペプチド分子間の水素結合と疎水結合に起因する。
　本発明に用いる自己組織化ペプチドにおいて、平均してナノファイバーは直径１０～２０nm、ポアサイズは５～２００nmである。この数値範囲は天然の細胞外マトリックスであるコラーゲンとほぼ同じ大きさである。
　本発明に用いる自己組織化ペプチドの自己組織化条件には、生理的条件のｐＨおよび塩濃度があげられる。特に１価のアルカリ金属イオンの存在が重要である。つまり、生体内に多量に存在するナトリウムイオンおよびカリウムイオンがゲル化の促進に寄与する。一度ゲル化すると通常のタンパク質の変性条件、例えば高温、酸、アルカリ、タンパク質分解酵素、尿素、グアニジン塩酸塩等の変性剤を用いても、ゲルは分解しない。
　PuraMatrix（登録商標）等のこれら自己組織化ペプチドは明らかな生理活性モチーフを持たないペプチド配列であるので、本来の細胞機能が損なわれる心配がない。生理活性モチーフは、転写など多くの細胞内現象の制御に関与しており、生理活性モチーフが存在すると、そのモチーフを認識する酵素により細胞質内や細胞表面の蛋白質はリン酸化される。ペプチド組織閉塞剤に生理活性モチーフが存在すると、各種機能蛋白質の転写活性が活性化もしくは抑制化される可能性がある。生理活性モチーフを持たないPuraMatrix（登録商標）等の自己組織化ペプチドではこうした心配がない。
　本発明に用いる自己組織化ペプチドは化学合成により製造されることから、動物由来細胞外マトリックスに起因する未知成分を含まない。この性質はＢＳＥを始めとする感染の恐れがなく、医療用としても高い安全性を有することを示す。
　天然アミノ酸からなる自己組織化ペプチドは生体適合性および生体内分解性も良好なことから、例えばマウスの心筋にPuraMatrix（登録商標）を注入すると、注入したPuraMatrix（登録商標）に細胞が浸潤し、正常組織が形成されることが報告されている。分解時間は注入場所等の条件によって異なるが、注入後およそ２～８週間でファイバーが分解され、排出される。
　本発明の組織閉塞剤には、さらに低分子薬剤を混合させることができる。そのような低分子薬剤としては、特に限定されるものではないが、ブドウ糖、白糖、精製白糖、乳糖、麦芽糖、トレハロース、デキストラン、ヨウ素、塩化リゾチーム、ジメチルイソプロピルアズレン、トレチノイントコフェリル、ポピドンヨード、アルプロスタジルアルファデクス、アニスアルコール、サリチル酸イソアミル、α，α－ジメチルフェニルエチルアルコール、バグダノール、ヘリオナール、スルファジン銀、ブクラデシンナトリウム、アルプロスタジルアルファデクス、硫酸ゲンタマイシン、塩酸テトラサイクリン、フシジン酸ナトリウム、ムピロシンカルシウム水和物および安息香酸イソアミルが挙げられる。
　本発明の組織閉塞剤は、糖を添加することによって組織閉塞効果を低下させずに溶液の浸透圧を低張から等張に改善可能で、より生体安全性を高めることができる。
　本発明の組織閉塞剤の形態としては、粉末、溶液、ゲルなどがあげられる。自己組織化ペプチドは、溶液のｐＨと塩濃度の変化によりゲル化するため、適用時に生体と接触させることによりゲル化する液剤として流通させることができる。
　臨床使用における態様としては、自己組織化ペプチドなどの成分を含む薬液がシリンダー付きのシリンジやピペットに前もって充填されている（プレフィルドシリンジ形態など）、もしくはシリンジやピペットチップの開口部から成分を補給する手段（吸引具やバルブ）によってシリンジやピペットチップに薬液を供給し、放出部から患部へ適用する方法がある。シリンジ、ピペットは２つ以上から構成される場合もある。
　成分は、ステントやカテーテルなど器具のコーティングとして用いることで、体液漏出を抑えることができる。
　また、この分野で通常用いられるガーゼ、包帯などの支持体や裏打ちの上に成分を固定することも可能である。また成分をスポンジに染み込ませて使用することもできる。
　その他、成分の粉末もしくは溶液を充填した噴霧式スプレーを作製することができる。このようなスプレーは、患部に噴霧すると、生体との接触によりｐＨと塩濃度が上昇し、ゲル化するため、ゲルの状態で取り扱うよりも様々な部位や状態に適用することができる。
　以下、実施例によって、本発明の組織閉塞剤をさらに詳細に説明するが、本発明はその趣旨と適用範囲に逸脱しない限りこれらに限定されるものではない。
ウサギ腹部大動脈・門脈本幹注射針穿孔モデルにおける１％ペプチド水溶液と３％ペプチド水溶液の止血効果
　血流遮断下でウサギ腹部大動脈、門脈本幹の注射針穿孔モデルを作製し、１％ペプチド水溶液と３％ペプチド水溶液の止血効果の評価を行った。
＜材料＞
・ペプチド水溶液
１．１％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製；濃度：重量／体積）
２．３％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製；濃度：重量／体積）
・動物
　日本白色種ウサギ（３．０－４．０kg、ジャパンホワイト、コンベンショナル、株式会社フナバシファーム社より購入）。室温２５℃、湿度６５％、照明時間１２時間（７：００－１９：００）で制御された飼育室内で飼育用ペレット（ＪＡ東日くみあい飼料株式会社）を給餌し、給水ボトルの自由摂水にて飼育した。絶食は試験当日の朝のみとし、給水は自由とした。
＜方法＞
・ウサギは、セクラタール２％注射液（１００mL中にキシラジンとして２．０ｇ含有、バイエル社製）を皮下内投与後（３mg／kg）、ケタミン（１mL中にケタミンとして５０mg含有、富士ケミカル工業株式会社製）を静脈内投与（１０mg／kg）することで麻酔した。
・ウサギは正中切開により開腹した。腹部大動脈、門脈本幹を約１０cm露出し、各血管を周囲組織より剥離し、腹部大動脈は２３Ｇ注射針（テルモ社製）にて血管穿刺を行い、門脈本幹は２６Ｇ注射針（テルモ社製）にて血管穿刺を行った。
・出血確認後、末梢側と中枢側を血管遮断鉗子により血流遮断し、出血した血液を生理食塩水、ガーゼによって除去した後、直ちにペプチド水溶液にて処置をした。
・処置後１～２分後に血流を再開し、穿刺部からの出血の有無を肉眼的に確認した。
＜結果＞
　図１において、本実施例の血管からの出血に対するペプチド水溶液の止血効果の例を示す。表１に示したように、腹部大動脈穿孔モデルでは３％ペプチド水溶液で２例中２例の完全止血が認められた。しかし、１％ペプチド水溶液では２例中ともに血流遮断解除後に噴出性の出血が認められ、止血されなかった。また、門脈本幹穿孔モデルでも同様に３％ペプチド水溶液では２例中２例で完全止血効果が認められたが、１％ペプチド水溶液では持続的な静脈性出血が認められた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
ウサギ肝臓切除モデルにおける１％ペプチド水溶液と３％ペプチド水溶液の止血効果
　ウサギ肝臓部分切除出血モデルを作製し、１％ペプチド水溶液と３％ペプチド水溶液の止血効果を評価した。
＜材料＞
・ペプチド水溶液
１．１％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
２．３％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
・動物
　日本白色種ウサギ（３．０－４．０kg、ジャパンホワイト、コンベンショナル、株式会社フナバシファーム社より購入）。室温２５℃、湿度６５％、照明時間１２時間（７：００－１９：００）で制御された飼育室内で飼育用ペレット（ＪＡ東日くみあい飼料株式会社）を給餌し、給水ボトルの自由摂水にて飼育した。絶食は試験当日の朝のみとし、給水は自由とした。
＜方法＞
・ウサギは、セクラタール２％注射液（１００mL中にキシラジンとして２．０ｇ含有、バイエル社製）を皮下内投与後（３mg／kg）、ケタミン（１mL中にケタミンとして５０mg含有、富士ケミカル工業株式会社製）を静脈内投与（１０mg／kg）することで麻酔した。
・ウサギは正中切開で開腹し、肝臓左葉又は右葉を剪刃にて鋭的に辺縁より横：約５cm×縦：約３cmの大きさで切除し、肝切離面を作成した。
・切離面からの噴出性出血を確認後、動脈、門脈、静脈を含む肝実質の用手的な圧迫止血により、血流を直ちに遮断し、出血した血液を生理食塩水、ガーゼによって除去した後、作製した肝切離面をペプチド水溶液にて処置した。
・処置後１～２分後に血流を再開し、生理食塩水にてゲル化したペプチド水溶液を除去し、肝切離面からの出血の有無を肉眼的に確認した。
・止血効果を見た肝切離面を２０％ホルマリンにて固定し、ＨＥ染色による病理組織学的評価を行った。
＜結果＞
　図２において、本実施例の肝切離面からの出血に対するペプチド水溶液の止血効果の例を示す。表２に示したように、１％ペプチド水溶液では２例中２例で完全止血効果が認められたが、３％ペプチド水溶液では４例中１例で完全止血効果が認められただけであった。また病理組織切片観察において、ゲル化したペプチド水溶液が肝切離面組織に密着したことによる血管浅部内の血管閉塞が確認された（図３）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
血液凝固能低下ウサギ腹部大動脈注射針穿孔モデルにおけるペプチド水溶液の止血効果
　抗凝固剤（ヘパリン）を投与したウサギにおいて、ペプチド水溶液の止血効果を腹部大動脈注射針穿刺モデルにより評価した。
＜材料＞
・ペプチド水溶液
　３％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
・動物
　日本白色種ウサギ（３．０－４．０kg、ジャパンホワイト、コンベンショナル、株式会社フナバシファーム社より購入）。室温２５℃、湿度６５％、照明時間１２時間（７：００－１９：００）で制御された飼育室内で飼育用ペレット（ＪＡ東日くみあい飼料株式会社）を給餌し、給水ボトルの自由摂水にて飼育した。絶食は試験当日の朝のみとし、給水は自由とした。
＜方法＞
・ウサギは、セクラタール２％注射液（１００mL中にキシラジンとして２．０ｇ含有、バイエル社製）を皮下内投与後（３mg／kg）、ケタミン（１mL中にケタミンとして５０mg含有、富士ケミカル工業株式会社製）を静脈内投与（１０mg／kg）することで麻酔した。
・ヘパリン（ノボ・ヘパリン注、持田製薬５千単位）１，０００単位を下大静脈より投与し、血液凝固能を人為的に低下させた。
・ウサギは正中切開により開腹した。腹部大動脈を約１０cm露出し、血管を周囲組織より剥離し、２６Ｇ、２５Ｇ、２３Ｇ注射針（テルモ社製）にて血管穿刺を行った。
・出血確認後、末梢側と中枢側を血管遮断鉗子により血流遮断し、出血した血液を生理食塩水、ガーゼによって除去した後、直ちにペプチド水溶液にて処置した。
・処置後１～２分後に血流を再開し、出血の有無を肉眼的に確認した。
＜結果＞
　図４において、本実施例の血液凝固能が低下したウサギにおける腹部大動脈からの出血に対するペプチド水溶液の止血効果の例を示す。表３から明らかなとおり、２６Ｇ、２５Ｇ、２３Ｇの注射針穿孔モデルにおいて３％ペプチド水溶液で完全止血が認められた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
ウサギ腹部大動脈・門脈本幹注射針穿孔モデルにおける糖含有ペプチド水溶液の止血効果
　糖含有ペプチド水溶液の止血効果を、腹部大動脈、門脈本幹の注射針穿孔モデルにより評価した。
＜材料＞
・ペプチド水溶液
１．白糖含有ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製、濃度２％および３％；白糖：和光純薬社製、濃度１０％）
２．グルコース含有２％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製；グルコース：和光純薬社製、濃度５％）
３．トレハロース含有２％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製；トレハロース：和光純薬社製、濃度５％）
４．３％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
５．２％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
・動物
　日本白色種ウサギ（３．０－４．０kg、ジャパンホワイト、コンベンショナル、株式会社フナバシファーム社より購入）。室温２５℃、湿度６５％、照明時間１２時間（７：００－１９：００）で制御された飼育室内で飼育用ペレット（ＪＡ東日くみあい飼料株式会社）を給餌し、給水ボトルの自由摂水にて飼育した。絶食は試験当日の朝のみとし、給水は自由とした。
＜方法＞
・ウサギは、セクラタール２％注射液（１００mL中にキシラジンとして２．０ｇ含有、バイエル社製）を皮下内投与後（３mg／kg）、ケタミン（１mL中にケタミンとして５０mg含有、富士ケミカル工業株式会社製）を静脈内投与（１０mg／kg）することで麻酔した。
・ウサギは正中切開により開腹した。腹部大動脈、門脈本幹を約１０cm露出し、各血管を周囲組織より剥離し、腹部大動脈は２６Ｇ、２５Ｇ、２３Ｇ注射針（テルモ社製）にて血管穿刺を行い、門脈本幹は２６Ｇ注射針（テルモ社製）にて血管穿刺を行った。
・出血確認後、末梢側と中枢側を血管遮断鉗子により血流遮断し、出血した血液を生理食塩水、ガーゼによって除去した後、直ちにペプチド水溶液にて処置をした。
・処置後１～２分後に血流を再開し、出血の有無を肉眼的に確認した。
＜結果＞
　図５において、本実施例における糖含有ペプチド水溶液の止血効果の例を示す。表４に示したように、腹部大動脈２３Ｇ、２５Ｇ、２６Ｇ注射針穿孔モデルにおいて、３％ペプチド水溶液と白糖含有３％ペプチド水溶液の止血効果は同等であった。
　表５に示したように、門脈本幹２６Ｇ注射針穿孔モデルにおいて、２％ペプチド水溶液、白糖含有２％ペプチド水溶液、グルコース含有２％ペプチド水溶液、トレハロース含有２％ペプチド水溶液の止血効果は同等であった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
ウサギ肺漏モデルにおける白糖含有ペプチド水溶液の肺漏閉鎖効果
　ウサギ肺漏モデルを作製し、白糖含有３％ペプチド水溶液と生理食塩水の肺漏閉鎖効果を比較した。
＜材料＞
・ペプチド水溶液
１．白糖含有３％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製；白糖：和光純薬社製、濃度１０％）
２．生理食塩水（株式会社大塚製薬工場製）
・動物
　日本白色種ウサギ（３．０－４．０kg、ジャパンホワイト、コンベンショナル、株式会社フナバシファーム社より購入）。室温２５℃、湿度６５％、照明時間１２時間（７：００－１９：００）で制御された飼育室内で飼育用ペレット（ＪＡ東日くみあい飼料株式会社）を給餌し、給水ボトルの自由摂水にて飼育した。絶食は試験当日の朝のみとし、給水は自由とした。
＜方法＞
・ウサギは、セクラタール２％注射液（１００mL中にキシラジンとして２．０ｇ含有、バイエル社製）を皮下内投与後（３mg／kg）、ケタミン（１mL中にケタミンとして５０mg含有、富士ケミカル工業株式会社製）を静脈内投与（１０mg／kg）することで麻酔した。
・ウサギは人工呼吸器による呼吸補助下において開胸した。肺を露出し、肺を摂子にて鈍的に傷つけ、出血を伴う肺漏を作成した。
・出血した血液を生理食塩水、ガーゼによって除去した後、出血面を白糖含有３％ペプチド水溶液、生理食塩水にて処置した。
・処置後、約３０秒後、肺漏からの出血およびエアリークの有無を生理食塩水内で肉眼的に確認した。
＜結果＞
　図６により、本実施例における白糖含有ペプチド水溶液による肺漏閉鎖効果を示す。表６に示したように、白糖含有３％ペプチド水溶液では完全止血と肺漏閉鎖が確認されたが、生理食塩水では持続的な肺漏からの出血とエアリークが認められた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
ウサギ胆管注射針穿孔モデルにおけるペプチド水溶液の胆管壁閉塞効果
　ウサギ注射針胆管穿孔モデルを作製し、ペプチド水溶液の胆管壁閉塞効果を評価した。
＜材料＞
・ペプチド水溶液
　３％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
・動物
　日本白色種ウサギ（３．０－４．０kg、ジャパンホワイト、コンベンショナル、株式会社フナバシファーム社より購入）。室温２５℃、湿度６５％、照明時間１２時間（７：００－１９：００）で制御された飼育室内で飼育用ペレット（ＪＡ東日くみあい飼料株式会社）を給餌し、給水ボトルの自由摂水にて飼育した。絶食は試験当日の朝のみとし、給水は自由とした。
＜方法＞
・ウサギは、セクラタール２％注射液（１００mL中にキシラジンとして２．０ｇ含有、バイエル社製）を皮下内投与後（３mg／kg）、ケタミン（１mL中にケタミンとして５０mg含有、富士ケミカル工業株式会社製）を静脈内投与（１０mg／kg）することで麻酔した。
・ウサギは正中切開により開腹した。胆管を約１０cm露出し、周囲組織より剥離した後、２６Ｇ注射針にて胆管穿刺を行った。
・胆汁を流出させ、胆汁流出が止まらないことを確認後、血管遮断鉗子にて胆汁流を遮断した。
・漏出した胆汁を生理食塩水、ガーゼによって除去した後、３％ペプチド水溶液で処置した。
・処置後２分後に胆汁流遮断を解除し、穿孔部位からの胆汁流出の有無を肉眼的に確認した。
＜結果＞
　図７において、本実施例におけるペプチド水溶液による胆管壁閉塞効果を示す。表７に示したように、３％ペプチド水溶液で完全に胆管壁閉塞効果が認められた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
イヌ膀胱内腫瘍摘出術におけるペプチド水溶液による切除部の隆起維持効果及び止血効果
　イヌ膀胱内腫瘍摘出術においてペプチド水溶液を膀胱粘膜下に注入し、ペプチド水溶液による切除部の隆起維持効果および止血効果の評価を行った。
＜材料＞
・ペプチド水溶液
　３％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
・動物
　イヌ（オス）
＜方法＞
全身麻酔管理下において、イヌ膀胱内腫瘍摘出術を以下の手順で実施した。
・電気メス（エルベ社製）による下腹部切開後、電気メスを用いて膀胱を切開し膀胱内の腫瘍を露出させた（膀胱粘膜から隆起する基部直径が０．５cm程度の有茎性腫瘍）。
・３％ペプチド水溶液を０．５mLずつ４回にわけて腫瘍基部周囲の粘膜下に注入し、粘膜上の腫瘍が隆起することを確認した。
・腫瘍を隆起させた後、電気メスにて腫瘍を切除した。
・ペプチド水溶液注入から腫瘍切除完了までの時間は約２分であった。
＜結果＞
　図８に示したように、ペプチド水溶液の膀胱粘膜下注入により腫瘍を隆起させ、切除中も隆起状態を維持可能であった。また、腫瘍切除中および切除後に出血は認められなかった。
ウサギ胃粘膜切開モデルにおける２％ペプチド水溶液の止血効果
　ウサギ胃粘膜切開出血モデルを作製し、２％ペプチド水溶液の止血効果を評価した。
＜材料＞
・ペプチド水溶液
１．２％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
・動物
　日本白色種ウサギ（３．０－４．０kg、ジャパンホワイト、コンベンショナル、株式会社フナバシファーム社より購入）。室温２５℃、湿度６５％、照明時間１２時間（７：００－１９：００）で制御された飼育室内で飼育用ペレット（ＪＡ東日くみあい飼料株式会社）を給餌し、給水ボトルの自由摂水にて飼育した。絶食は試験当日の朝のみとし、給水は自由とした。
＜方法＞
・ウサギは、セクラタール2%注射液（１００mL中にキシラジンとして２．０ｇ含有、バイエル社製）を皮下内投与後（３mg／kg）、ケタミン（１mL中にケタミンとして５０mg含有、富士ケミカル工業株式会社製）を静脈内投与（１０mg／kg）することで麻酔した。
・ウサギは正中切開で開腹し、胃を切開した後、胃粘膜を露出し剪刃にて鋭的に約１cm切開し出血創を作成した。
・切開創からの滲出性の出血を確認後、可能な限り血液をガーゼにて除去した後、作製した胃粘膜切開創をペプチド水溶液にて処置した。
・処置後１分後に生理食塩水にてゲル化したペプチド水溶液を除去し、胃粘膜切開創からの出血の有無を肉眼的に確認した。
＜結果＞
　図９において、本実施例の胃粘膜切開創からの出血に対するペプチド水溶液の止血効果の例を示す。ペプチド水溶液塗布後に出血は確認されなかった。
ウサギ肝臓横切開モデルにおける１％ペプチド水溶液の止血効果
　ウサギ肝臓横切開出血モデルを作製し、１％ペプチド水溶液の止血効果を評価した。
＜材料＞
・ペプチド水溶液
１．１％ペプチド水溶液（ペプチド配列：IEIK9（配列番号４）、CPC Scientific, Inc社製）
２．１％ペプチド水溶液（ペプチド配列：IEIK13、CPC Scientific, Inc社製）
３．１％ペプチド水溶液（ペプチド配列：KLD、CPC Scientific, Inc社製）
・動物
　日本白色種ウサギ（３．０－４．０kg、ジャパンホワイト、コンベンショナル、株式会社フナバシファーム社より購入）。室温２５℃、湿度６５％、照明時間１２時間（７：００－１９：００）で制御された飼育室内で飼育用ペレット（ＪＡ東日くみあい飼料株式会社）を給餌し、給水ボトルの自由摂水にて飼育した。絶食は試験当日の朝のみとし、給水は自由とした。
＜方法＞
・ウサギは、セクラタール２％注射液（１００mL中にキシラジンとして２．０ｇ含有、バイエル社製）を皮下内投与後（３mg／kg）、ケタミン（１mL中にケタミンとして５０mg含有、富士ケミカル工業株式会社製）を静脈内投与（１０mg／kg）することで麻酔した。
・ウサギは正中切開で開腹し、肝臓左葉を剪刃にて鋭的に約１cm横切開し、出血創を作成した。
・切開創からの滲出性の出血を確認後、可能な限り血液をガーゼにて除去した後、作製した肝切開創をペプチド水溶液にて処置した。
・処置後１分後に生理食塩水にてゲル化したペプチド水溶液を除去し、肝切開創からの出血の有無を肉眼的に確認した。
＜結果＞
　図１０において、本実施例の肝切開創からの出血に対するペプチド水溶液の止血効果の例を示す。ＩＥＩＫ９ペプチド水溶液を出血創面に上層したところ全くゲル化せず止血効果が認められなかったが、ＩＥＩＫ１３ペプチド水溶液とＫＬＤペプチド水溶液は塗布後ゲル化し、出血は確認されなかった。
ウサギ胆汁によるペプチド水溶液の自己組織化の確認
　ウサギ胆汁によるペプチド水溶液の自己組織化を各種ペプチド水溶液で評価した。
＜材料＞
・ペプチド水溶液
１．１．５％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
２．１％ペプチド水溶液（ペプチド配列：IEIK9, CPC Scientific, Inc社製）
３．１％ペプチド水溶液（ペプチド配列：IEIK13, CPC Scientific, Inc社製）
４．１％ペプチド水溶液（ペプチド配列：KLD, CPC Scientific, Inc社製）
・動物
　日本白色種ウサギ（３．０－４．０kg、ジャパンホワイト、コンベンショナル、株式会社フナバシファーム社より購入）。室温２５℃、湿度６５％、照明時間１２時間（７：００－１９：００）で制御された飼育室内で飼育用ペレット（ＪＡ東日くみあい飼料株式会社）を給餌し、給水ボトルの自由摂水にて飼育した。絶食は試験当日の朝のみとし、給水は自由とした。
＜方法＞
・ウサギは、セクラタール２％注射液（１００mL中にキシラジンとして２．０ｇ含有、バイエル社製）を皮下内投与後（３mg／kg）、ケタミン（１mL中にケタミンとして５０mg含有、富士ケミカル工業株式会社製）を静脈内投与（１０mg／kg）することで麻酔した。
・ウサギは正中切開で開腹し、２３Ｇ注射針（テルモ社製）により胆嚢より胆汁を採取した。
・自己組織化前の各ペプチド水溶液の液滴を作成し（直径約５－８mm程度）、そのペプチド水溶液を覆うように静かに採取した胆汁を上から流しかけた。
・約３０秒後に胆汁を除去し、自己組織化を確認した後、２３Ｇ注射針により物理的に自己組織化ゲルを破砕した。
＜結果＞
　図１１において、本実施例の各ペプチド水溶液の胆汁による自己組織化の例を示す。ＩＥＩＫ９を除くすべてのペプチド水溶液において胆汁による自己組織化が確認された。
ラット門脈塞栓術における３％ペプチド水溶液の血管塞栓効果の確認
　ラット門脈より３％ペプチド水溶液を注入し、血管塞栓効果を評価した。
＜材料＞
・３％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
・動物
　ＳＤラット（２５０ｇ、雄、日本エスエルシー株式会社より購入）を温度・湿度：２２±３℃、５０±２０％、換気回数：１０～１５回／時間、照明時間：人工照明　１２時間（８：００～２０：００）で制御された飼育室内で飼育し、固型飼料、ＣＲＦ－１（オリエンタル酵母工業式会社）を金属製給餌器を用いて自由に摂取させ、水道水を自動給水装置を用いて自由に摂取させた。
＜方法＞
・ラットはジエチルエーテル（キシダ化学 株式会社製）にて吸入麻酔した。
・ラットは正中切開で開腹し、門脈を露出した。
・門脈本幹より２６Ｇ注射針（テルモ社製）にてペプチド水溶液を４ｍＬ注入し、直ちに穿刺部位からの出血をペプチド水溶液にて止血した。
・注入後、５分後に肝臓を摘出し、直ちに１０％ホルマリン（和光純薬工業株式会社製）にて固定した。
・組織は1週間固定した後、ヘマトキシリン・エオシン（ＨＥ）染色をした。
＜結果＞
　図１２に示したように、ペプチド水溶液による門脈塞栓が確認された。
イオパミドールを溶解したペプチド水溶液の自己組織化の確認
　イオパミドールを溶解したペプチド水溶液の自己組織化能を評価した。
　　＜材料＞
・ペプチド水溶液
　３％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
・細胞培養用培地（Dulbecco's Modified Eagle Medium, GIBCO社製）
・イオパミドール(和光純薬工業株式会社製）
＜方法＞
・３％ペプチド水溶液１ｍｌに対してイオパミドール３０６．２ｍｇを溶解した。
・イオパミドール含有３％ペプチド水溶液をＭｉｌｌｉＱ水で希釈し、０．０４６８％ペプチド水溶液を作成した。３％イオパミドール含有ペプチド水溶液及び０．０４６８％イオパミドール含有ペプチド水溶液１００μｌに３００μｌの細胞培養用培地を５０μｌずつ６回に分け、３％イオパミドール含有ペプチド水溶液及び０．０４６８％イオパミドール含有ペプチド水溶液のまわりに添えるようにして触れさせた。培地添加後１５分したら、周囲の培地を取り除き、ゲル化を目視で確認した。
＜結果＞
　図１３に示したように、イオパミドール含有ペプチド水溶液の自己組織化が確認された。
イオパミドール含有３％ペプチド水溶液のマイクロカテーテル通過後の自己組織化の確認
　イオパミドールを溶解した３％ペプチド水溶液の自己組織化能を評価した。
　　＜材料＞
・ペプチド水溶液
　３％ペプチド水溶液（ペプチド配列：Ac-(RADA)4-NH2、CPC Scientific, Inc社製）
・細胞培養用培地（Dulbecco's Modified Eagle Medium, GIBCO社製）
・イオパミドール(和光純薬工業株式会社製）
・マイクロカテーテル（2.4Fr,150/20, Boston Scientific社製）
＜方法＞
・３％ペプチド水溶液1ｍｌに対してイオパミドール３０６．２ｍｇを溶解した。
・イオパミドール含有３％ペプチド水溶液を経マイクロカテーテル的に細胞培養用培地中に吐出した。
＜結果＞
　図１４に示したように、イオパミドール含有３％ペプチド水溶液の自己組織化が確認された。

Claims (15)

  1. 　ペプチドを含有する組織閉塞剤であって、該ペプチドが、親水性アミノ酸と疎水性アミノ酸とが交互に結合し、アミノ酸残基８～２００を有する両親媒性のペプチドであり、生理的ｐＨおよび／または陽イオンの存在下、水溶液中でβ構造を示す自己組織化ペプチドである組織閉塞剤。
  2. 　前記ペプチドが、アルギニン、アラニン、アスパラギン酸およびアラニンからなる配列、イソロイシン、グルタミン酸、イソロイシン、およびリジンからなる配列、または、リジン、ロイシン、アスパラギン酸の及びロイシンからなる配列の繰り返し配列を有する、請求項１記載の組織閉塞剤。
  3. 　前記ペプチドが、配列番号１、配列番号２、または配列番号３記載のアミノ酸配列からなる、請求項１または２記載の組織閉塞剤。
  4. 　さらに、低分子薬剤を含有する、請求項１～３のいずれか１項に記載の組織閉塞剤。
  5. 　前記低分子薬剤が、ブドウ糖、白糖、精製白糖、乳糖、麦芽糖、トレハロース、デキストラン、ヨウ素、塩化リゾチーム、ジメチルイソプロピルアズレン、トレチノイントコフェリル、ポピドンヨード、アルプロスタジルアルファデクス、アニスアルコール、サリチル酸イソアミル、α，α－ジメチルフェニルエチルアルコール、バグダノール、ヘリオナール、スルファジン銀、ブクラデシンナトリウム、アルプロスタジルアルファデクス、硫酸ゲンタマイシン、塩酸テトラサイクリン、フシジン酸ナトリウム、ムピロシンカルシウム水和物および安息香酸イソアミルからなる群から選択される、請求項４記載の組織閉塞剤。
  6. 　請求項１から５のいずれか一項に記載の組織閉塞剤を含む、抗凝固剤を添加されて凝固能力が低下した血液の出血の止血剤。
  7. 　請求項１から５のいずれか一項に記載の組織閉塞剤を含む、実質臓器の出血創面の止血剤。
  8. 　請求項１から５のいずれか一項に記載の組織閉塞剤を含む、動脈性出血および静脈性出血の止血剤。
  9. 　請求項１から５のいずれか一項に記載の組織閉塞剤を含む、胆のうまたは胆管からの胆汁漏出の防止剤。
  10. 　請求項１から５のいずれか一項に記載の組織閉塞剤を含む、肺からの出血または空気漏出の防止剤。
  11. 　請求項１から５のいずれか一項に記載の組織閉塞剤を含む、内視鏡的粘膜切除術における切除部分を隆起させるための粘膜組織への注入剤。
  12. 　請求項１から５のいずれか一項に記載の組織閉塞剤を含む、粘膜組織に液体を注入することによって隆起された粘膜組織部分を切除する方法における切除部分からの出血及び体液漏出の防止剤。
  13. 　請求項１から５のいずれか一項に記載の組織閉塞剤を含む、内視鏡的粘膜切除術における切除部からの出血を止血する経カテーテル的に適用可能な止血剤。
  14. 　請求項１から５のいずれか一項に記載の組織閉塞剤を含む、動静脈閉塞術における動静脈閉塞剤または静脈瘤硬化療法における静脈瘤硬化剤。
  15. 　さらに、抗癌剤および／または造影剤を含む、請求項１４に記載の動静脈閉塞術における動静脈閉塞剤または静脈瘤硬化療法における静脈瘤硬化剤。
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Cited By (32)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013133413A1 (ja) 2012-03-09 2013-09-12 株式会社スリー・ディー・マトリックス 粘膜隆起剤
WO2013030673A3 (en) * 2011-09-02 2013-10-31 3-D Matrix Ltd. Amphiphilic peptides for thoracic air leakage occlusion
EP2698162A1 (en) 2012-08-15 2014-02-19 Credentis AG Method for producing a composition for treating a tooth lesion
WO2014103581A1 (ja) 2012-12-25 2014-07-03 扶桑薬品工業株式会社 止血剤アプリケータ
EP2853256A1 (en) 2013-09-25 2015-04-01 Credentis AG Dental care product for tooth whitening
WO2015098515A1 (ja) * 2013-12-27 2015-07-02 株式会社メニコン 止血材
WO2015145797A1 (ja) * 2014-03-28 2015-10-01 大塚化学株式会社 止血用医薬組成物
JP2016501066A (ja) * 2012-11-14 2016-01-18 株式会社スリー・ディー・マトリックス 血管塞栓システム
JP2016513523A (ja) * 2013-03-14 2016-05-16 株式会社スリー・ディー・マトリックス 胆汁漏の処置
JP2017510400A (ja) * 2014-03-10 2017-04-13 株式会社スリー・ディー・マトリックス 気管支閉鎖剤としての自己組織化ペプチド
WO2017104723A1 (ja) * 2015-12-18 2017-06-22 株式会社スリー・ディー・マトリックス 止血用組成物、および、止血用組成物を用いた止血方法
EP3248591A1 (en) 2016-05-24 2017-11-29 Credentis AG Method and product for caries treatment
EP3248590A1 (en) 2016-05-24 2017-11-29 Credentis AG Personal dental care product for caries treatment
JP2018079145A (ja) * 2016-11-17 2018-05-24 地方独立行政法人東京都立産業技術研究センター 生体組織孔閉鎖用、潰瘍保護用及び血管塞栓療術用ゾル
EP3238749B1 (en) 2008-10-06 2018-09-19 3-D Matrix Ltd. Tissue plug
JP2018184418A (ja) * 2013-03-06 2018-11-22 株式会社スリー・ディー・マトリックス 精製された両親媒性ペプチド組成物を用いた、外科的方法
JP2019508181A (ja) * 2016-03-18 2019-03-28 株式会社スリー・ディー・マトリックス 脳脊髄液の漏出の閉鎖
US10245299B2 (en) 2014-03-10 2019-04-02 3-D Matrix, Ltd. Autoassembling peptides for the treatment of pulmonary bulla
US10314776B2 (en) 2013-09-25 2019-06-11 Credentis Ag Dental care product for tooth whitening
JP2019517299A (ja) * 2016-06-01 2019-06-24 株式会社スリー・ディー・マトリックス 自己集合性ペプチドヒドロゲルを有する止血用包帯
JP2019517868A (ja) * 2016-06-01 2019-06-27 株式会社スリー・ディー・マトリックス 自己集合性ペプチドヒドロゲルを有する止血用パウダー
JP2020055836A (ja) * 2014-03-10 2020-04-09 株式会社スリー・ディー・マトリックス 自己組織化ペプチド組成物
JP2020089759A (ja) * 2014-06-20 2020-06-11 株式会社スリー・ディー・マトリックス 骨間隙を充填するための材料および方法
US10793307B2 (en) 2012-07-06 2020-10-06 3-D Matrix, Ltd. Fill-finish process for peptide solutions
US10814038B2 (en) 2016-01-06 2020-10-27 3-D Matrix, Ltd. Combination compositions
US10905708B2 (en) 2011-09-07 2021-02-02 3-D Matrix, Ltd. MicroRNA-based methods and assays for osteocarcinoma
EP3831360A1 (en) 2019-12-04 2021-06-09 Credentis AG Personal dental care product for preventing demineralisation
US11090398B2 (en) 2014-03-10 2021-08-17 3-D Matrix, Ltd. Sterilization and filtration of peptide compositions
WO2022023523A1 (en) 2020-07-31 2022-02-03 vVardis AG Anti-inflammatory and senolytic dental care product with tooth whitening characteristics
US11260072B2 (en) 2011-09-07 2022-03-01 3-D Matrix, Ltd. MicroRNA-based methods and assays for osteocarcinoma
US11324703B2 (en) 2017-12-15 2022-05-10 3-D Matrix, Ltd. Surfactant peptide nanostructures and uses thereof in drug delivery
US11951229B2 (en) 2020-08-20 2024-04-09 Aobakasei Kabushiki Kaisha Liquid hemostatic medical material

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9162005B2 (en) 2005-04-25 2015-10-20 Arch Biosurgery, Inc. Compositions for prevention of adhesions and other barrier applications
CN102408575B (zh) * 2011-09-09 2013-02-13 南京大学 一种可注射多肽水凝胶的制备方法
CA2905182A1 (en) * 2013-03-14 2014-09-18 3-D Matrix, Ltd. Materials for gastrointestinal obstruction prevention
CA2908136C (en) 2013-03-30 2021-06-29 Glytech, Inc. Sugar chain-polypeptide complex
JP6502352B2 (ja) 2013-08-22 2019-04-17 アーチ・バイオサージェリー・インコーポレイテッド 流体の移動を制御するための移植可能なメッシュ
WO2015138473A1 (en) * 2014-03-10 2015-09-17 3-D Matrix, Ltd. Autoassembling peptides for the treatment of pulmonary leakage
JP6389013B2 (ja) * 2015-04-23 2018-09-12 ザ・ティムケン・カンパニーＴｈｅ Ｔｉｍｋｅｎ Ｃｏｍｐａｎｙ 軸受の構成要素を形成する方法
MX2018011121A (es) * 2016-03-18 2019-01-31 3 D Matrix Ltd Prevención de la adherencia de tejido biológico.
US20200078489A1 (en) * 2016-03-18 2020-03-12 3-D Matrix, Ltd. Pancreatic fistula occlusion
US11174288B2 (en) 2016-12-06 2021-11-16 Northeastern University Heparin-binding cationic peptide self-assembling peptide amphiphiles useful against drug-resistant bacteria
WO2020008377A2 (en) 2018-07-03 2020-01-09 3-D Matrix, Ltd. Ionic self-assembling peptides
WO2021146291A1 (en) * 2020-01-13 2021-07-22 Arch Biosurgery, Inc. Self-assembling peptide gel formulation and methods of use
WO2021202577A1 (en) 2020-03-31 2021-10-07 3-D Matrix, Ltd. Sterilization of self-assembling peptides by irradiation
CN111848736B (zh) * 2020-08-05 2021-12-31 赛克赛斯生物科技股份有限公司 自组装多肽、制备方法、自组装多肽制剂及应用
CN111939323B (zh) * 2020-08-08 2022-06-10 武汉速普生物科技有限公司 含有透明质酸连接肽和连接蛋白末端肽的功能性多肽水凝胶及其应用

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006014570A2 (en) * 2004-07-06 2006-02-09 3D Matrix, Inc. Purified amphilic peptide compositions and uses thereof
WO2006116524A1 (en) 2005-04-25 2006-11-02 Massachusetts Institute Of Technology Compositions and methods for promoting hemostasis and other physiological activities
WO2008134544A1 (en) * 2007-04-25 2008-11-06 Arch Therapeutics, Inc. Compositions for prevention of adhesions and other barrier applications
CN101514225A (zh) * 2008-10-13 2009-08-26 西安蓝晶生物科技有限公司 自聚体多肽及其制备方法和应用

Family Cites Families (85)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4582640A (en) 1982-03-08 1986-04-15 Collagen Corporation Injectable cross-linked collagen implant material
US4642117A (en) 1985-03-22 1987-02-10 Collagen Corporation Mechanically sheared collagen implant material and method
US4947840A (en) 1987-08-21 1990-08-14 Massachusetts Institute Of Technology Biodegradable templates for the regeneration of tissues
US5236903A (en) 1988-06-24 1993-08-17 Ichiro Azuma Polypeptide comprising repeated cell-adhesive core sequences
US5110604A (en) 1988-06-30 1992-05-05 Collagen Corporation Processes for producing collagen matrixes and methods of using same
US5126141A (en) 1988-11-16 1992-06-30 Mediventures Incorporated Composition and method for post-surgical adhesion reduction with thermo-irreversible gels of polyoxyalkylene polymers and ionic polysaccharides
US5550187A (en) 1988-11-21 1996-08-27 Collagen Corporation Method of preparing crosslinked biomaterial compositions for use in tissue augmentation
US5629291A (en) 1992-01-31 1997-05-13 La Jolla Cancer Research Foundation Methods of modulating fibronectin extracellular matrix assembly
US5292514A (en) 1992-06-24 1994-03-08 Minnesota Mining And Manufacturing Company Azlactone-functional substrates, corneal prostheses, and manufacture and use thereof
US5955343A (en) 1992-12-28 1999-09-21 Massachusetts Institute Of Technology Stable macroscopic membranes formed by self-assembly of amphiphilic peptides and uses therefor
US5670483A (en) 1992-12-28 1997-09-23 Massachusetts Insititute Of Technology Stable macroscopic membranes formed by self-assembly of amphiphilic peptides and uses therefor
GB2274988A (en) * 1993-02-10 1994-08-17 Mcconn Stern Rita Iodine containing wound-healing preparations
US5709854A (en) 1993-04-30 1998-01-20 Massachusetts Institute Of Technology Tissue formation by injecting a cell-polymeric solution that gels in vivo
US5773577A (en) 1994-03-03 1998-06-30 Protein Polymer Technologies Products comprising substrates capable of enzymatic cross-linking
US5527610A (en) 1994-05-20 1996-06-18 The Uab Research Foundation Elastomeric polypeptide matrices for preventing adhesion of biological materials
US5510102A (en) 1995-01-23 1996-04-23 The Regents Of The University Of California Plasma and polymer containing surgical hemostatic adhesives
AU5638096A (en) 1995-06-07 1996-12-30 Clarion Pharmaceuticals, Inc. Non-biological patch for hemostasis
JP2000510357A (ja) 1996-04-04 2000-08-15 イムノ・アクチエンゲゼルシャフト コラーゲンを基にした止血スポンジ
US6489446B1 (en) 1996-08-07 2002-12-03 Hsc Research And Development Limited Partnership Self-aligning peptides modeled on human elastin and other fibrous proteins
WO1998030141A2 (en) 1997-01-09 1998-07-16 Cohesion Technologies, Inc. Devices for tissue repair and methods for preparation and use thereof
US6224893B1 (en) 1997-04-11 2001-05-01 Massachusetts Institute Of Technology Semi-interpenetrating or interpenetrating polymer networks for drug delivery and tissue engineering
US6228324B1 (en) 1997-11-28 2001-05-08 Seikagaku Corporation Sterilizing method for medical sterilization packaging and injection pack
US6187555B1 (en) 1998-04-16 2001-02-13 3M Innovative Properties Company Spores with increased sensitivity to sterilants using additives that bind to sterilant-sensitive sites
ATE282959T1 (de) 1998-07-06 2004-12-15 Nanobac Oy Verfahren zur beseitigung von nanobakterien
US6046160A (en) 1999-07-22 2000-04-04 Deroyal Industries, Inc. Composition and method for enhancing wound healing
EP1282437B1 (en) * 2000-05-16 2008-03-19 Genentech, Inc. Treatment of cartilage disorders
WO2002022072A2 (en) 2000-09-11 2002-03-21 Closure Medical Corporation Bronchial occlusion method and apparatus
MXPA03006689A (es) 2001-01-25 2004-03-12 Nycomed Pharma As Una suspension que comprende fibrinogeno, trombina y alcohol, un metodo para preparar dicha suspension, un metodo para recubrir un soporte con dicha suspension, un metodo de secado de un recubrimiento de un soporte, y una esponja de colageno recubier
US7449180B2 (en) 2001-02-06 2008-11-11 John Kisiday Macroscopic scaffold containing amphiphilic peptides encapsulating cells
WO2002062969A2 (en) 2001-02-06 2002-08-15 Massachusetts Institute Of Technology Cellular reprogramming in peptide hydrogel and uses thereof
WO2002090503A2 (en) 2001-05-04 2002-11-14 The Scripps Research Institute Anti-microbial peptides and compositions
AU2003222167A1 (en) 2002-04-02 2003-10-20 Northwestern University Peptide amphiphile solutions and self assembled peptide nanofiber networks
US20040242469A1 (en) 2002-05-13 2004-12-02 Lee Richard T. Angiogenesis and cardiac tissue engineering with peptide hydrogels and related compositions and methods of use thereof
GB0216286D0 (en) 2002-07-15 2002-08-21 Univ Leeds Network
WO2004013161A2 (en) 2002-08-06 2004-02-12 Epix Pharmaceuticals, Inc. Peptide aggregates
US7713923B2 (en) 2003-06-25 2010-05-11 Massachusetts Institute Of Technology Self-assembling peptides incorporating modifications and methods of use thereof
EP1636250B1 (en) 2003-06-25 2016-01-06 Massachusetts Institute Of Technology Self-assembling peptides incorporating modifications and uses thereof
EP2338980B1 (en) 2003-06-27 2015-04-22 DePuy Synthes Products, LLC Regeneration and repair of neural tissue using postpartum umbilical cord -derived cells
US7846891B2 (en) 2003-10-17 2010-12-07 Massachusetts Institute Of Technology Self-assembling peptides for regeneration and repair of neural tissue
GB0404374D0 (en) 2004-02-27 2004-03-31 Univ Manchester Treatment of bacterial infections
JP2005263631A (ja) 2004-03-16 2005-09-29 Sanyo Chem Ind Ltd 細胞接着性ポリペプチド
US20050266086A1 (en) 2004-06-01 2005-12-01 Sawhney Amarpreet S Intrauterine applications of materials formed in situ
WO2006016524A1 (ja) 2004-08-11 2006-02-16 Pioneer Corporation 外部制御記録再生システム
JP2008526749A (ja) 2005-01-04 2008-07-24 ザ ブライハム アンド ウイメンズ ホスピタル， インコーポレイテッド 自己アセンブリするペプチドナノファイバーを用いたｐｄｇｆの徐放性の送達
US20060293243A1 (en) 2005-06-17 2006-12-28 Navneet Puri Stable, buffered, pharmaceutical compositions including motilin-like peptides
CN101198350A (zh) 2005-06-17 2008-06-11 巴克斯特国际公司 含胃动素样肽的稳定的缓冲的药物组合物
JP2008546689A (ja) 2005-06-17 2008-12-25 バクスター・インターナショナル・インコーポレイテッド モチリン様ペプチドを含む、安定に緩衝化された薬学的組成物
JP4982841B2 (ja) 2005-10-12 2012-07-25 国立大学法人名古屋大学 再生医療骨組成物
CA2629897A1 (en) 2005-11-14 2007-05-24 Ud Technology Corporation Novel hydrogels and uses thereof
TW201008595A (en) 2005-12-20 2010-03-01 Bristol Myers Squibb Co Stable protein formulations
ES2439641T3 (es) 2005-12-20 2014-01-24 Bristol-Myers Squibb Company Composiciones y procedimientos de producción de una composición
US9095818B2 (en) 2009-06-15 2015-08-04 Biovec Transfusion, Llc Method of filtering platelets to remove antiplatelet and anticoagulant agents
CA2650230C (en) 2006-04-25 2017-01-10 Massachusetts Institute Of Technology Compositions and methods for affecting movement of contaminants, bodily fluids or other entities, and/or affecting other physiological conditions
JP5496671B2 (ja) * 2006-09-26 2014-05-21 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー 修飾自己組織化ペプチド
US9012404B2 (en) 2006-12-11 2015-04-21 3D Matrix, Inc. Compositions and methods for cardiac tissue protection and regeneration
CA2680824C (en) 2007-03-14 2018-06-26 Arch Therapeutics, Inc. Treatment of leaky or damaged tight junctions and enhancing extracellular matrix
EP2146667A2 (en) 2007-04-11 2010-01-27 Henry Ford Health System Cardiac repair, resizing and reshaping using the venous system of the heart
JP2009011341A (ja) 2007-06-29 2009-01-22 Yuka Denshi Co Ltd ペースト状材料充填容器
US20090053103A1 (en) 2007-08-20 2009-02-26 William Patrick Mortimer Non-linting sterilization packaging material
US20110002880A1 (en) 2007-12-05 2011-01-06 3-D Matrix, Ltd. Material For Wound Healing and Skin Reconstruction
US8834926B2 (en) 2008-08-08 2014-09-16 University Of Delaware Macromolecular diffusion and release from self-assembled β-hairpin peptide hydrogels
CN105435211A (zh) 2008-10-06 2016-03-30 三维肽胶株式会社 组织闭塞剂
EP2407479B2 (en) 2009-03-09 2017-08-23 Menicon Co., Ltd. Self-assembling peptide and peptide gel with high strength
US20120070427A1 (en) 2009-06-01 2012-03-22 Trustees Of Tufts College Vortex-induced silk fibroin gelation for encapsulation and delivery
WO2011072482A1 (en) 2009-12-14 2011-06-23 The University Of Hong Kong Nano cancer barrier device(ncbd) to immobilize and inhibit the division of metastic cancer stem cells
JP5855651B2 (ja) 2010-07-16 2016-02-09 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー 改変を組み込んだ自己組織化ペプチドおよびその使用方法
JP2012082180A (ja) 2010-10-14 2012-04-26 Nagoya Univ 骨再生用自己組織化ペプチドハイドロゲル
US20140329914A1 (en) 2011-09-02 2014-11-06 3-D Matrix Ltd. Amphiphilic Peptides for Thoracic Air Leakage Occlusion
US20150105336A1 (en) 2012-03-09 2015-04-16 3-D Matrix, Ltd. Mucosa-elevating agent
WO2014008400A2 (en) 2012-07-06 2014-01-09 3-D Matrix, Inc. Fill-finish process for peptide solutions
US9862916B2 (en) 2012-07-27 2018-01-09 Koninklijke Coöperatie Cosun U.A. Structuring agent for liquid detergent and personal care products
JP2016501066A (ja) 2012-11-14 2016-01-18 株式会社スリー・ディー・マトリックス 血管塞栓システム
CN103251690B (zh) 2013-02-26 2015-10-28 中国人民解放军新疆军区联勤部药品仪器检验所 维药瘤果黑种草子挥发油在制备治疗慢性阻塞性肺病药物的应用
WO2014136081A1 (en) 2013-03-06 2014-09-12 3D-Matrix Ltd. Surgical methods employing purified amphiphilic peptide compositions
CA2905182A1 (en) 2013-03-14 2014-09-18 3-D Matrix, Ltd. Materials for gastrointestinal obstruction prevention
JP2016513523A (ja) 2013-03-14 2016-05-16 株式会社スリー・ディー・マトリックス 胆汁漏の処置
JP6502352B2 (ja) 2013-08-22 2019-04-17 アーチ・バイオサージェリー・インコーポレイテッド 流体の移動を制御するための移植可能なメッシュ
ES2842101T3 (es) 2013-09-02 2021-07-12 Taisei Kako Co Jeringa y conjunto de jeringa
US10245299B2 (en) 2014-03-10 2019-04-02 3-D Matrix, Ltd. Autoassembling peptides for the treatment of pulmonary bulla
ES2706492T3 (es) 2014-03-10 2019-03-29 3 D Matrix Ltd Péptidos de autoensamblaje como agentes para la obstrucción bronquial
US10654893B2 (en) 2014-03-10 2020-05-19 3-D Matrix, Ltd. Self-assembling peptide compositions
WO2015138473A1 (en) 2014-03-10 2015-09-17 3-D Matrix, Ltd. Autoassembling peptides for the treatment of pulmonary leakage
WO2015136370A2 (en) 2014-03-10 2015-09-17 3-D Matrix, Ltd. Sterilization and filtration of peptide compositions
BR112016029518A2 (pt) 2014-06-20 2018-06-19 3-D Matrix, Ltd. materiais e métodos para o enchimento de cavidades ósseas
WO2017120092A1 (en) 2016-01-06 2017-07-13 3-D Matrix, Ltd. Combination compositions

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006014570A2 (en) * 2004-07-06 2006-02-09 3D Matrix, Inc. Purified amphilic peptide compositions and uses thereof
WO2006116524A1 (en) 2005-04-25 2006-11-02 Massachusetts Institute Of Technology Compositions and methods for promoting hemostasis and other physiological activities
WO2008134544A1 (en) * 2007-04-25 2008-11-06 Arch Therapeutics, Inc. Compositions for prevention of adhesions and other barrier applications
CN101514225A (zh) * 2008-10-13 2009-08-26 西安蓝晶生物科技有限公司 自聚体多肽及其制备方法和应用

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ZHAOYANG YE ET AL.: "Temperature and pH effects on biophysical and morphological properties of self-assembling peptide RADA16-I", JOURNAL OF PEPTIDE SCIENCE, vol. 14, no. 2, 14 January 2008 (2008-01-14), pages 152 - 162, XP008146649 *

Cited By (58)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US10596225B2 (en) 2008-10-06 2020-03-24 3-D Matrix, Ltd. Tissue occluding agent comprising an IEIKIEIKIEIKI peptide
EP3238749B1 (en) 2008-10-06 2018-09-19 3-D Matrix Ltd. Tissue plug
US11801281B2 (en) 2008-10-06 2023-10-31 3-D Matrix, Ltd. Tissue occluding agent comprising an ieikieikieiki peptide
US10576123B2 (en) 2008-10-06 2020-03-03 3-D Matrix, Ltd. Tissue occluding agent comprising an IEIKIEIKIEIKI peptide
JP2014527543A (ja) * 2011-09-02 2014-10-16 株式会社スリー・ディー・マトリックス 胸部の空気漏れ閉塞のための両親媒性ペプチド
JP2017043604A (ja) * 2011-09-02 2017-03-02 株式会社スリー・ディー・マトリックス 胸部の空気漏れ閉塞のための両親媒性ペプチド
WO2013030673A3 (en) * 2011-09-02 2013-10-31 3-D Matrix Ltd. Amphiphilic peptides for thoracic air leakage occlusion
US10905708B2 (en) 2011-09-07 2021-02-02 3-D Matrix, Ltd. MicroRNA-based methods and assays for osteocarcinoma
US11260072B2 (en) 2011-09-07 2022-03-01 3-D Matrix, Ltd. MicroRNA-based methods and assays for osteocarcinoma
WO2013133413A1 (ja) 2012-03-09 2013-09-12 株式会社スリー・ディー・マトリックス 粘膜隆起剤
US10793307B2 (en) 2012-07-06 2020-10-06 3-D Matrix, Ltd. Fill-finish process for peptide solutions
WO2014027012A1 (en) 2012-08-15 2014-02-20 Credentis Ag Method for producing a composition for treating a tooth lesion
US10464968B2 (en) 2012-08-15 2019-11-05 Credentis Ag Method for producing a composition for treating a tooth lesion
US10047120B2 (en) 2012-08-15 2018-08-14 Credentis Ag Method for producing a composition for treating a tooth lesion
EP2698162A1 (en) 2012-08-15 2014-02-19 Credentis AG Method for producing a composition for treating a tooth lesion
JP2016501066A (ja) * 2012-11-14 2016-01-18 株式会社スリー・ディー・マトリックス 血管塞栓システム
JP2019122875A (ja) * 2012-11-14 2019-07-25 株式会社スリー・ディー・マトリックス 血管塞栓システム
JP2021164739A (ja) * 2012-11-14 2021-10-14 株式会社スリー・ディー・マトリックス 血管塞栓システム
WO2014103581A1 (ja) 2012-12-25 2014-07-03 扶桑薬品工業株式会社 止血剤アプリケータ
US10245011B2 (en) 2012-12-25 2019-04-02 Osaka University Hemostatic agent applicator
JP7012779B2 (ja) 2013-03-06 2022-02-14 株式会社スリー・ディー・マトリックス 精製された両親媒性ペプチド組成物を用いた、外科的方法
JP2018184418A (ja) * 2013-03-06 2018-11-22 株式会社スリー・ディー・マトリックス 精製された両親媒性ペプチド組成物を用いた、外科的方法
JP2020158511A (ja) * 2013-03-06 2020-10-01 株式会社スリー・ディー・マトリックス 精製された両親媒性ペプチド組成物を用いた、外科的方法
JP7333425B2 (ja) 2013-03-06 2023-08-24 株式会社スリー・ディー・マトリックス 精製された両親媒性ペプチド組成物を用いた、外科的方法
JP2016513523A (ja) * 2013-03-14 2016-05-16 株式会社スリー・ディー・マトリックス 胆汁漏の処置
US10314776B2 (en) 2013-09-25 2019-06-11 Credentis Ag Dental care product for tooth whitening
EP2853256A1 (en) 2013-09-25 2015-04-01 Credentis AG Dental care product for tooth whitening
WO2015098515A1 (ja) * 2013-12-27 2015-07-02 株式会社メニコン 止血材
JP7397042B2 (ja) 2014-03-10 2023-12-12 株式会社スリー・ディー・マトリックス 自己組織化ペプチド組成物
US11090398B2 (en) 2014-03-10 2021-08-17 3-D Matrix, Ltd. Sterilization and filtration of peptide compositions
JP2022036947A (ja) * 2014-03-10 2022-03-08 株式会社スリー・ディー・マトリックス 自己組織化ペプチド組成物
JP2017510400A (ja) * 2014-03-10 2017-04-13 株式会社スリー・ディー・マトリックス 気管支閉鎖剤としての自己組織化ペプチド
US10245299B2 (en) 2014-03-10 2019-04-02 3-D Matrix, Ltd. Autoassembling peptides for the treatment of pulmonary bulla
JP2020055836A (ja) * 2014-03-10 2020-04-09 株式会社スリー・ディー・マトリックス 自己組織化ペプチド組成物
US10654893B2 (en) 2014-03-10 2020-05-19 3-D Matrix, Ltd. Self-assembling peptide compositions
WO2015145797A1 (ja) * 2014-03-28 2015-10-01 大塚化学株式会社 止血用医薬組成物
JP2020089759A (ja) * 2014-06-20 2020-06-11 株式会社スリー・ディー・マトリックス 骨間隙を充填するための材料および方法
WO2017104723A1 (ja) * 2015-12-18 2017-06-22 株式会社スリー・ディー・マトリックス 止血用組成物、および、止血用組成物を用いた止血方法
US11298397B2 (en) 2015-12-18 2022-04-12 3-D Matrix, Ltd. Hemostatic composition and hemostatic method using hemostatic composition
US20180360904A1 (en) * 2015-12-18 2018-12-20 3-D Matrix, Ltd. Hemostatic composition and hemostatic method using hemostatic composition
JPWO2017104723A1 (ja) * 2015-12-18 2018-10-04 株式会社スリー・ディー・マトリックス 止血用組成物、および、止血用組成物を用いた止血方法
US10814038B2 (en) 2016-01-06 2020-10-27 3-D Matrix, Ltd. Combination compositions
JP2019508181A (ja) * 2016-03-18 2019-03-28 株式会社スリー・ディー・マトリックス 脳脊髄液の漏出の閉鎖
EP3248591A1 (en) 2016-05-24 2017-11-29 Credentis AG Method and product for caries treatment
EP3248590A1 (en) 2016-05-24 2017-11-29 Credentis AG Personal dental care product for caries treatment
WO2017202943A1 (en) 2016-05-24 2017-11-30 Credentis Ag Method and product for caries treatment
WO2017202940A1 (en) 2016-05-24 2017-11-30 Credentis Ag Personal dental care product for caries treatment
JP2019517299A (ja) * 2016-06-01 2019-06-24 株式会社スリー・ディー・マトリックス 自己集合性ペプチドヒドロゲルを有する止血用包帯
JP2019517868A (ja) * 2016-06-01 2019-06-27 株式会社スリー・ディー・マトリックス 自己集合性ペプチドヒドロゲルを有する止血用パウダー
US11559602B2 (en) 2016-11-17 2023-01-24 Tokyo Metropolitan Industrial Technology Research Institute Sol for tissue perforation closure, ulcer protection, and vascular embolization
WO2018092836A1 (ja) * 2016-11-17 2018-05-24 地方独立行政法人東京都立産業技術研究センター 生体組織孔閉鎖用、潰瘍保護用及び血管塞栓療術用ゾル
JP2018079145A (ja) * 2016-11-17 2018-05-24 地方独立行政法人東京都立産業技術研究センター 生体組織孔閉鎖用、潰瘍保護用及び血管塞栓療術用ゾル
JP7012950B2 (ja) 2016-11-17 2022-01-31 地方独立行政法人東京都立産業技術研究センター 生体組織孔閉鎖用、潰瘍保護用及び血管塞栓療術用ゾル
US11324703B2 (en) 2017-12-15 2022-05-10 3-D Matrix, Ltd. Surfactant peptide nanostructures and uses thereof in drug delivery
WO2021110923A1 (en) 2019-12-04 2021-06-10 Credentis Ag Personal dental care product for preventing demineralisation
EP3831360A1 (en) 2019-12-04 2021-06-09 Credentis AG Personal dental care product for preventing demineralisation
WO2022023523A1 (en) 2020-07-31 2022-02-03 vVardis AG Anti-inflammatory and senolytic dental care product with tooth whitening characteristics
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