RU2235098C2 - Способ получения ингибиторов hmg-coa-редуктазы с высокой степенью чистоты - Google Patents
Способ получения ингибиторов hmg-coa-редуктазы с высокой степенью чистоты Download PDFInfo
- Publication number
- RU2235098C2 RU2235098C2 RU2001108381/04A RU2001108381A RU2235098C2 RU 2235098 C2 RU2235098 C2 RU 2235098C2 RU 2001108381/04 A RU2001108381/04 A RU 2001108381/04A RU 2001108381 A RU2001108381 A RU 2001108381A RU 2235098 C2 RU2235098 C2 RU 2235098C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- mobile phase
- hmg
- column
- coa reductase
- reductase inhibitor
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/33—Heterocyclic compounds
- A61K31/335—Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin
- A61K31/35—Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin having six-membered rings with one oxygen as the only ring hetero atom
- A61K31/351—Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin having six-membered rings with one oxygen as the only ring hetero atom not condensed with another ring
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
- B01D15/42—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the development mode, e.g. by displacement or by elution
- B01D15/422—Displacement mode
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P3/00—Drugs for disorders of the metabolism
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P3/00—Drugs for disorders of the metabolism
- A61P3/06—Antihyperlipidemics
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
- C07C67/00—Preparation of carboxylic acid esters
- C07C67/48—Separation; Purification; Stabilisation; Use of additives
- C07C67/52—Separation; Purification; Stabilisation; Use of additives by change in the physical state, e.g. crystallisation
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Obesity (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Diabetes (AREA)
- Hematology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Pyrane Compounds (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
- Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
- Pyrrole Compounds (AREA)
- Indole Compounds (AREA)
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
Abstract
Изобретение относится к способу получения ингибитора HMG-CoA- редуктазы вытеснительной хроматографией. Ингибитор выбирают из группы, состоящей из ловастатина, правастатина, симвастатина, мевастатина, флувастатина и аторвастатина, их производных и аналогов, которые используются в качестве антигиперхолестеринемических агентов. Степень чистоты активного ингредиента является важным фактором для изготовления безопасного и эффективного лекарственного средства, особенно если фармацевтический препарат нужно применять длительное время при лечении или предотвращении высокого уровня холестерина в плазме. Изобретение позволяет получать ингибитор HMG-CoA-редуктазы с высокой степенью чистоты по данным ЖХВР, превышающей 99,7%, с высоким выходом, меньшими расходами и подходящим химическим балансом. 2 с. и 25 з.п. ф-лы.
Description
Ловастатин, правастатин, симвастатин, мевастатин, аторвастатин, их производные и аналоги известны как ингибиторы HMG-CoA-редуктазы и используются в качестве антигиперхолестеринемических агентов. Большинство из них получают путем ферментации с использованием микроорганизмов различных видов, идентифицируемых как виды Aspergillus, Monascus, Nocardia, Amycolatopsis, Mucor или Penicillium genus, некоторые получают путем обработки продуктов ферментации с применением метода химического синтеза, или же они являются продуктами общего химического синтеза. Чистота активного ингредиента является важным фактором получения безопасного и эффективного лекарственного средства, особенно если лекарственное средство необходимо принимать длительно при лечении или профилактике заболеваний, связанных с высоким содержанием холестерина в плазме. Накапливание примесей из лекарственных средств с низкой степенью чистоты может вызывать различные побочные эффекты в процессе медицинского лечения.
Настоящее изобретение относится к новому промышленному способу выделения ингибиторов HMG-СоA-редуктазы с применением так называемой вытеснителыюй хроматографии.
Использование данного изобретения дает возможность получать ингибиторы HMG-CoA-редуктазы с высокой степенью чистоты, высокими выходами при низких расходах на их получение и приемлемых экологических показателях.
Уровень техники
Способы выделения и очистки антигиперхолестеринемических агентов, описанные в более ранних патентах, включают различные комбинации методов экстракции, хроматографии, лактонизации и кристаллизации. Чистота конечного продукта, получаемого этими способами, отвечает требованиям стандартов USP, но выход целевого продукта сравнительно невысок. Кроме того, способы требуют применения как больших количеств органических растворителей, так и громоздкого оборудования, подходящего для использования таких количеств.
Способ выделения, описанный в WO 92/16276, обеспечивает получение ингибиторов HMG-CoA-редуктазы со степенью чистоты, превышающей 99,5%, при использовании оборудования для промышленной ЖХВР (жидкостной хроматографии высокого разрешения). В соответствии с WO 92/16276 сырой ингибитор HMG-CoA-редуктазы со степенью чистоты ≥85% растворяют в органическом растворителе или растворе, содержащем органический растворитель и воду. Затем рН смеси при помощи буфера доводят до значения, находящегося между 2 и 9, и помещают смесь в колонку для ЖХВР. Затем собирают ингибитор HMG-CoA-редуктазы, удаляют часть растворителя и добавляют воду или же удаляют две трети смеси растворителей, при этом ингибитор HMG-CoA-редуктазы кристаллизуется. В конце чистота получаемого продукта составляет, по меньшей мере, 99,5% при выходе около 90%.
Способ, описанный в WO 92/16276, позволяет получать ингибиторы HMG-CoA-редуктазы с высокой степенью чистоты, со сравнительно высокими выходами, недостаток этого метода по сравнению со способом, использующим обычные хроматографические колонки, заключается в том, что на одну колонку для ЖХВР загружаются сравнительно небольшие количества вещества. Небольшие количества вещества, подаваемые в колонку, связаны также с возросшим числом повторяющихся операций выделения для получения достаточных количеств желаемого вещества и соответственно с большим количеством используемых растворителей, приводящим к большим расходам.
Основой настоящего изобретения является метод вытеснительной хроматографии. Вытеснительная хроматография основана на конкуренции компонентов образца, помещаемого в колонку, по отношению к активным центрам стационарной фазы. Индивидуальные компоненты образца вытесняют один другой последовательно, при этом вытеснитель, обладающий высоким сродством к стационарной фазе и перемещающийся за подаваемым образцом вдоль колонки, вызывает разделение компонентов образца на однокомпартментные зоны, которые движутся с той же скоростью, что и вытеснитель. Концентрирование индивидуальных компонентов осуществляется одновременно с очисткой. Принцип метода вытеснительной хроматографии известен с 1943 года, но нашел практическое применение только в 1981 году вследствие отсутствия эффективных колонок (Cs. Horvath et al., J. Chromatogr., 215 (1981) 295; J. Chromatogr., 330 (1985) 1; J. Chromatogr., 440 (1987) 157). В этих работах, включенных в данное описание в качестве ссылок, описаны аналитическое и препаративное разделение биологически активных пептидов и полимиксиновых антибиотиков (полипептидов) с использованием колонок для жидкостной хроматографии высокого разрешения с обращенной фазой методом вытеснения. В случае полимиксинов были использованы колонки 250х4,6 мм с октадецилсиликагелем, размер частиц 5 мкм, мобильная фаза - 10% ацетонитрила в воде, и различные тетраалкиламмоний-галогениды в качестве вытеснителя.
В недавних исследованиях в области вытеснительной хроматографии (S.M. Cramer et al., Enzyme Microb. Technol., 11 (1989) 74; Prep. Chromatogr., 1 (1988) 29; J. Chromatogr., 394 (1987) 305; J. Chromatogr., 439 (1988) 341; J. Chromatogr., 454 (1988) 1 (теоретическая оптимизация); A. Felinger et al., J. Chromatogr., 609 (1992) 35 (теоретическая оптимизация), все указанные работы включены в качестве ссылок) описано использование похожих колонок; мобильной фазой служил метанол в фосфатном буфере, вытеснителем являлся 2-(2-трет.бутоксиэтокси)этанол (BEE) в ацетонитриле и ацетате натрия. Образцами служили различные пептиды, протеины и антибиотик цефалоспорин С.
В патенте США 5043423 и в ЕР 416416 описан способ очистки некоторых низкомолекулярных (ниже 1000 Да) пептидов (в частности, туфтсина и его синтетических производных) при помощи вытеснительной ионообменной хроматографии, причем стационарной фазой служила катионообменная смола, растворителем - вода или разбавленные растворы различных сильных кислот, а используемым вытеснителем являлась триэтилентетрааммониевая соль в различных концентрациях. В еще неопубликованной заявке на патент США 08/875422 описано применение вытеснителыюй хроматографии для выделения и очистки ванкомицина.
Сущность изобретения
Иногда бывает трудно получить активное вещество с высокой степенью чистоты в большом количестве, так как многие технологические процессы, осуществляемые в лабораторных условиях, становятся неэкономичными в промышленных условиях или же не удовлетворяют требованиям охраны окружающей среды. Эти факты побуждают промышленность искать новые технологии, которые обеспечивают получение высококачественного продукта и экономически и экологически приемлемое производство. Настоящее изобретение устраняет недостатки процессов, известных из более ранних патентов и другой литературы, так как оно позволяет получить чистые ингибиторы НМG-СоА-редуктазы и, помимо этого, процесс очистки per se не является длительным, приводит к получению продуктов с высоким выходом с использованием небольших количеств растворителей. Этот способ благоприятен для окружающей среды, кроме того, он не требует больших площадей и больших количеств энергии, тем самым являясь экономичным при осуществлении в промышленности.
Описание изобретения
Настоящее изобретение обеспечивает способ очистки ингибиторов НМG-СоА-редуктазы с применением вытеснительной хроматографии. Это означает, что, по меньшей мере, одна из стадий процесса очистки сырого ингибитора HMG-CoA-редуктазы включает вытеснительную хроматографию. Ингибитор HMG-CoA-редуктазы, подвергаемый очистке, выбирают, например, из группы, состоящей из мевастатина, правастатина, ловастатина, симвастатина, флувастатина и аторвастатина. Выбранный ингибитор может быть в виде лактона или в виде кислоты или ее соли для того, чтобы его можно было очистить при помощи вытеснительной хроматографии.
Вытеснительная хроматография, свойственная способу по данному изобретению, включает следующие стадии:
а) кондиционирование хроматограграфической колонки с помощью соответствующей мобильной фазы,
б) подача сырого ингибитора НМG-СоА-редуктазы, растворенного в мобильной фазе,
в) введение вытеснителя для вытеснения ингибитора НМG-СоА-редуктазы из колонки и
г) получение очищенного ингибитора НМG-СоА-редуктазы.
Очищенный ингибитор НМG-СоА-редуктазы предпочтительно получают путем г1) сбора фракций и
г2) анализа фракций при помощи аналитической ЖХВР и группировки фракций в зависимости от степени чистоты.
После завершения процесса получения очищенного ингибитора HMG-CoA-редуктазы хроматографическую колонку можно регенерировать путем промывки колонки смесью спирт/вода для элюирования вытеснителя.
Ингибиторы HMG-CoA-редуктазы, полученные описанным способом, затем выделяют из мобильной фазы в соответствии с методами, уже известными из уровня техники, например, путем лиофилизации или предпочтительно путем кристаллизации для получения лактонной формы, кислотной или солевой формы (предпочтительно щелочных или щелочноземельных солей).
Фракции, содержащие значительное количество ингибиторов HMG-CoA-редуктазы в добавление к примесям, могут быть снова возвращены в процесс, общий выход в результате превышает 95%.
В качестве неподвижной фазы используют обращенную фазу, где подходят природные (силикагель с алкильными цепями различной длины) или синтетические (С-18 или С-8 органическая) неподвижные фазы. Предпочтительно использовать синтетическую сшитую полимерную матрицу на основе стирола и дивинилбензола. Размер частиц неподвижной фазы составляет от 3 до 20 мкм, предпочтительно 7-15 мкм.
Используемая мобильная фаза выбирается из воды, водного раствора ацетонитрила и водных растворов низших (предпочтительно C1-C4) спиртов, буферных разбавленных растворов органических, галогенированных органических или неорганических кислот, например муравьиной, уксусной, пропионовой, соляной, борной, фосфорной, угольной или серной кислот, с катионами щелочных металлов, с аммиаком или с аминами. Особенно предпочтительны вода и водные растворы с ацетонитрилом и особенно с метанолом или этанолом, содержание органического растворителя в водных растворах предпочтительно составляет 80% или ниже, более предпочтительно 45% или ниже и особенно 30% или ниже. Поскольку токсичный метанол в мобильной фазе может быть заменен менее токсичным этанолом или может быть, по меньшей мере, частично заменен водой с хорошими результатами, а удаление сточных вод проще, данное изобретение имеет заметные преимущества по сравнению с известными решениями с экологической точки зрения.
Значение рН мобильной фазы предпочтительно равно 4,5-10,5, более предпочтительно 6,5-8 и особенно предпочтительно около 7. Скорость течения мобильной фазы через колонку регулируется до значений в интервале 1,5-30 мл/(мин·см2), предпочтительно 3-15 мл/(мин·см2), так как более высокие скорости вызывают разбавление образцов, которые нужно собрать, и разделение становиться хуже.
Вытеснителем служит соединение, имеющее амфифильную структуру, например поверхностно-активные вещества, детергенты и т.п. Примерами вытеснителей являются спирты с длинной цепью, карбоновые кислоты с длинной цепью, алкиламмониевые соли с длинной цепью, сложные эфиры ароматических дикарбоновых кислот, оксо- и диоксоспирты, полиалкиленполигликолевые эфиры, а также диэтиленгликольмоно(или ди-)-алкиловые эфиры, полиариловые или полиалкиленполиариловые эфиры, например Triton®X-100, и т.д. Вышеупомянутое выражение "с длинной цепью" означает алкиловую цепь, имеющую, по меньшей мере, С4-цепь, предпочтительно, по меньшей мере, С10-цепь, и более предпочтительно, по меньшей мере, С14-цепь или более.
Концентрацию вытеснителя в мобильной фазе регулируют до величины 1-35%, предпочтительно 2-20%, особенно предпочтительно 7-14%.
Согласно предпочтительному варианту регулирования степени чистоты индивидуальных фракций, элюированных из хроматографической колонки, можно применить аналитический метод ЖХВР для ингибиторов НMG-CoA-редуктазы, которые надо анализировать, осуществляя его следующим образом.
Образец, подвергаемый анализу, разбавляют в 100 раз мобильной фазой, содержащей 20 мМ водного раствора NH4НCO3 и ацетонитрил (количество ацетониртила регулируется таким образом, что фактор удержания аналита составлял 5-10). 10 мкл этого образца помещают в колонку Hypersil ODS (Hypеrsil, the United Kingdom, размер частиц 3 мкм, размер колонки 50х4,6 мм) для проведения жидкостной хроматографии высокого разрешения. Колонку промывают мобильной фазой со скоростью потока 2 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 235 нм. Чистота образца на основании ЖХВР рассчитывается исходя из отношения между площадями индивидуальных пиков на хроматограмме.
После окончания хроматографии предпочтительно регенерировать неподвижную фазу, например, с применением мобильной фазы с 20-100% водного раствора низшего спирта.
Настоящее изобретение иллюстрируется, но не ограничивается следующими примерами.
Примеры.
Во всех примерах под мобильной фазой А понимается сама мобильная фаза, а под мобильной фазой В – раствор вытеснителя в мобильной фазе.
Пример 1.
Сырую натриевую соль правастатина (1,0 г, степень чистоты по данным ЖХВР 88%, данные количественного анализа 85%) растворяют в 10 мл мобильной фазы А (дистиллированная вода), устанавливают рН, равный 7, при помощи 0,2 М водного раствора NaOH и отфильтровывают. В колонке устанавливают равновесие мобильной фазы А. Образец, полученный указанным способом, подают в колонку Grom-Sil 120-ODS HE (Grom Analytic + HPLC GmbH, Germany), размер частиц 11 мкм, размер колонки 250х10 мм. Колонку промывают мобильной фазой В, содержащей 7% монобутилового эфира диэтиленгликоля в мобильной фазе А, при скорости течения 4,5 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 260 нм, собирают 0,5 мл фракций с первоначальным увеличением оптической плотности. Когда сигнал уменьшился, колонку промыли 25 мл 70% метанола. Полученные фракции анализируют аналитическим методом ЖХВР, описанным выше. Собирали фракции со степенью чистоты ≥99,5%. В собранных фракциях (7 мл) степень чистоты по данным ЖХВР равна 99,8%.
Пример 2.
Сырую натриевую соль правастатина (0,4 г, степень чистоты по ЖХВР 88%, данные количественного анализа 85%) растворяют в 5 мл мобильной фазы А (дистиллированная вода), рН устанавливают равным 7 при помощи 0,2 М водного раствора NaOH и отфильтровывают раствор. В колонке устанавливают равновесие мобильной фазой А. Полученный вышеуказанным методом образец подают в колонку Kromasil 100 С-18 (ЕКА Chemicals AB, Sweden), размер частиц 10 мкм, размер колонки 200х10 мм. Колонку промывали мобильной фазой В, содержащей 7% Triton X-100 в мобильной фазе А, при скорости течения 1 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 260 нм и при первоначальном увеличении оптической плотности собирают 0,5 мл фракций. Полученные фракции анализировали вышеописанным аналитическим методом ЖХВР. Собирали фракции со степенью чистоты ≥99,5%. У собранных фракций (3 мл) степень чистоты равна 99,7%.
Пример 3.
0,6 г сырой натриевой соли правастатина растворяют в 5 мл дистиллированной воды. Используют процедуру, описанную в примере 1, за исключением вида мобильной фазы (30% водный раствор метанола), получают фракции со степенью чистоты по данным ЖХВР 99,8%.
Пример 4.
Повторяют способ, описанный в примере 3, но концентрация вытеснителя в мобильной фазе составляла 14%. В собранных фракциях степень чистоты по данным ЖХВР составляла 99,8% в соответствии с критерием, описанным в примере 1.
Пример 5.
Лактонную форму правастатина (0,4 г, степень чистоты по ЖХВР равна 85%) растворяют в 33 мл мобильной фазы А, содержащей 45% метанола. Устанавливают равновесное состояние в колонке при помощи мобильной фазы А. Образец, полученный таким образом, подают в колонку Grom-Sil 120-ODS HE (Grom Analytic + НPLC GmbH, Germany), размер частиц 11 мкм, размер колонки 250×10 мм. Колонку промывают мобильной фазой В, содержащей 2% дибутилового эфира днэтиленгликоля в мобильной фазе А, при скорости течения 4,5 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 260 нм и собирают 1 мл фракций при первоначальном увеличении оптической плотности. Когда сигнал уменьшается, промывают колонку 25 мл 70% метанолом.
Собирали фракции со степенью чистоты ≥99,5%. В собранных фракциях степень чистоты по данным ЖХВР составляет 99,7%.
Пример 6.
Лактонную форму правастатина (0,3 г, степень чистоты по ЖХВР равна 85%) растворяют в 80 мл мобильной фазы А, содержащей 30% метанола. Полученный образец подают в колонку Licrosphere RP 18, размер частиц 12 мкм, размер колонки 200×10 мм. Колонку промывали мобильной фазой В, содержащей 5% моно-н-гексилового эфира диэтиленгликоля в мобильной фазе А при скорости течения 4,5 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 235 нм и собирают 1 мл фракций при первоначальном увеличении оптической плотности. Когда сигнал уменьшается, колонку промывают 25 мл 90% метанола. Полученные фракции анализировали вышеописанным аналитическим методом ЖХВР.
Собирали фракции со степенью чистоты ≥99,5%. В собранных фракциях степень чистоты по данным ЖХВР равна 99,8%.
Пример 7.
Лактонную форму правастатина (0,3 г, степень чистоты по ЖХВР равна 85%) растворяют в 25 мл мобильной фазы А, содержащей 35% ацетонитрила. Устанавливают в колонке равновесие при помощи мобильной фазы А. Полученный вышеуказанным способом образец помещают в колонку Licrosphere RP 18, размер частиц 12 мкм, размер колонки 200х10 мм. Колонку промывают мобильной фазой В, содержащей 1% дибутилового эфира диэтиленгликоля в мобильной фазе А, при скорости течения 4,5 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 235 нм и при первоначальном увеличении оптической плотности собирают 1 мл фракций. Когда сигнал уменьшается, промывают колонку 25 мл 90% метанола. Полученные фракции анализируют вышеописанным аналитическим методом ЖХВР.
Собирают фракции со степенью чистоты ≥99,5%. У этих фракций степень чистоты по данным ЖХВР составляет 99,8%.
Пример 8.
Повторяют способ, описанный в примере 7, но мобильной фазой В служит диэтилфталат в мобильной фазе А.
Собирали фракции со степенью чистоты ≥99,5%. В этих фракциях степень чистоты по данным ЖХВР равна 99,8%.
Пример 9.
Лактонную форму симвастатина (0,42 г, степень чистоты по данным ЖХВР равна 87%) растворяют в 6 мл 66% ацетонитрила и гидролизуют 1,2 ммоль гидроокиси натрия. Ацетонитрил удаляют и разбавленный фосфорной кислотой регулируют значение рН до 7. Устанавливают равновесие в колонке при помощи мобильной фазы А, содержащей 14% метанола. Образец, полученный вышеописанным способом, подают в колонку Grom-Sil 120-ODS HE (Grom Analytic + HPLC GmbH, Germany), размер частиц 11 мкм, размер колонки 250×10 мм. Колонку промывают мобильной фазой В, содержащей 6,7% моно-н-гексилового эфира диэтиленгликоля в мобильной фазе А, при скорости течения 4,5 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 260 нм и при первоначальном увеличении оптической плотности собирают 0,5 мл фракций. Когда сигнал уменьшается, колонку промывают 25 мл метанола.
Собирали фракции со степенью чистоты ≥99,5%. В этих фракциях степень чистоты по данным ЖХВР равна 99,8%.
Пример 10.
Лактонную форму симвастатина (0,5 г, степень чистоты по данным ЖХВР равна 87%) растворяют в 20 мл мобильной фазы, содержащей 70% метанола. Устанавливают равновесие в колонке при помощи мобильной фазы А. Образец, полученный вышеописанным способом, помещают в колонку Grom-Sil 120-ODS HE (Grom Analytic + HPLC GmbH, Germany), размер частиц 11 мкм, размер колонки 250×10 мм. Колонку промывают мобильной фазой В, содержащей 3% декановой кислоты в мобильной фазе А, при скорости течения 4,5 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 260 нм, при первоначальном увеличении оптической плотности собирают 0,75 мл фракций. Когда сигнал уменьшается, колонку промывают 25 мл метанола. Полученные фракции анализируют вышеописанным методом.
Собирают фракции со степенью чистоты ≥99,5%. В этих фракциях степень чистоты по данным ЖХВР составляет 99,7%.
Пример 11.
Лактонную форму симвастатина (0,5 г, степень чистоты по данным ЖХВР равна 87%) растворяют в 20 мл мобильной фазы, содержащей 60% ацетонитрила. Устанавливают равновесие в колонке при помощи мобильной фазы А. Образец, полученный вышеописанным способом, помещают в колонку Grom-Sil 120-ODS НЕ (Grom Analytic + HPLC GmbH, Germany), размер частиц 11 мкм, размер колонки 250×10 мм. Колонку промывают мобильной фазой В, содержащей 2% тетракис(децил)аммонийбромида в мобильной фазе А, при скорости течения 4,5 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 260 нм и при первоначальном увеличении оптической плотности собирают 1 мл фракций. Когда сигнал уменьшается, колонку промывают 25 мл метанола.
Собирают фракции со степенью чистоты ≥99,5%. В этих фракциях степень чистоты по данным ЖХВР составляет 99,8%.
Пример 12.
Лактонную форму ловастатина (0,5 г, степень чистоты по данным ЖХВР 87%) растворяют в 60 мл 75% метанола. Устанавливают равновесие в колонке при помощи мобильной фазы А, содержащей 70% метанола. Полученный вышеописанным способом образец помещают в колонку Grom-Sil 120-ODS НЕ (Grom Analytic + HPLC GmbH, Germany), размер частиц 11 мкм, размер колонки 250×10 мм. Колонку промывают мобильной фазой В, содержащей 70% метанола и 4,5% декановой кислоты в мобильной фазе А, при скорости течения 6 мл/мин. Оптическую плотность измеряли при 260 нм и при первоначальном увеличении оптической плотности собирают 1 мл фракций. Когда сигнал уменьшается, колонку промывают 25 мл метанола. Полученные фракции анализируют вышеописанным аналитическим методом ЖХВР.
Собирают фракции со степенью чистоты ≥99,5%. В этих фракциях степень чистоты по данным ЖХВР составляет 99,9%.
Пример 13.
Лактонную форму ловастатина (0,42 г, степень чистоты по данным ЖХВР равна 87%) растворяют в 8 мл 50% ацетонитрила и гидролизуют 1,05 ммоль гидроокиси натрия. Ацетонитрил удаляют и доводят рН до 7 при помощи разбавленной фосфорной кислоты. Устанавливают равновесное состояние в колонке при помощи мобильной фазы А, содержащей 14% метанола. Образец, полученный вышеописанным способом, помещают в колонку Grom-Sil 120-ODS НЕ (Grom Analytic + HPLC GmbH, Germany), размер частиц 11 мкм, размер колонки 250×10 мм. Колонку промывают мобильной фазой В, содержащей 6,7% моно-н-гексилового эфира диэтиленгликоля в мобильной фазе А, при скорости течения 1 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 260 нм и при первоначальном увеличении оптической плотности собирают 0,25 мл фракций. Когда сигнал уменьшается, колонку промывают 25 мл метанола.
Полученные фракции анализируют методом, описанным в примере 9. Собирают фракции со степенью чистоты ≥9,5%. Степень чистоты полученных фракций по данным ЖХВР составляет 99,8%.
Пример 14.
Лактонную форму мевастатина (0,5 г, степень чистоты по данным ЖХВР равна 85%) растворяют в 150 мл мобильной фазы А, содержащей 70% метанола. В колонке устанавливают равновесие при помощи мобильной фазы А. Образец, полученный вышеописанным способом, помещают в колонку Grom-Sil 120-ODS НЕ (Grom Analytic + HPLC GmbH, Germany), размер частиц 11 мкм, размер колонки 250×10 мм. Колонку промывают мобильной фазой В, содержащей 4,5% декановой кислоты в мобильной фазе А, при скорости течения 6 мл/мин. Оптическую плотность измеряют при 260 нм и при первоначальном увеличении оптической плотности собирают 1 мл фракций. Когда сигнал уменьшается, колонку промывают 25 мл метанола.
Полученные фракции анализируют вышеописанным аналитическим методом ЖХВР.
Собирали фрукции со степенью чистоты ≥99,5%. В этих фракциях степень чистоты по данным ЖХВР составляет 99,8%.
Claims (27)
1. Способ получения ингибитора HMG-CoA-редуктазы, вытеснительной хроматографией, включающий а) растворение сырого ингибитора HMG-CoA-редуктазы в мобильной фазе; б) установление равновесия хроматографической колонки при помощи мобильной фазы; в) подачу на колонку сырого ингибитора HMG-CoA-редуктазы, растворенного в мобильной фазе, г) введение в колонку раствора вытеснителя в мобильной фазе для вытеснения ингибитора HMG-CoA-редуктазы из колонки; и д) получение очищенного ингибитора HMG-CoA-редуктазы.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что ингибитор HMG-CoA-редуктазы выбирают из группы, состоящей из мевастатина, правастатина, ловастатина, симвастатина, флувастатина и аторвастатина.
3. Способ по п.1 или 2, отличающийся тем, что ингибитор HMG-CoA-редуктазы находится в форме лактона или в форме кислоты или ее соли.
4. Способ по п.1, отличающийся тем, что очищенный ингибитор HMG-CoA-редуктазы получают путем сбора фракций и анализа фракций аналитическим методом ЖХВР и группирования фракций в зависимости от степени чистоты.
5. Способ по п.1, отличающийся тем, что дополнительно проводят регенерацию хроматографической колонки путем промывки смесью спирт/вода для элюирования вытеснителя.
6. Способ по п.1, отличающийся тем, что мобильную фазу выбирают из группы растворителей, состоящей из воды, растворов ацетонитрила в воде или водных растворов низших спиртов, а также буферных разбавленных растворов органических, галоидированных органических или неорганических кислот с катионами щелочных металлов, аммиаком или с амином.
7. Способ по п.6, отличающийся тем, что рН используемой мобильной фазы равен 4,5-10,5.
8. Способ по п.7, отличающийся тем, что рН используемой мобильной фазы равен 6,5-8.
9. Способ по п.7, отличающийся тем, что рН используемой мобильной фазы равен 7.
10. Способ по п.1, отличающийся тем, что скорость течения мобильной фазы через хроматографическую колонку составляет 1,5-30 мл/(мин·см2).
11. Способ по п.1, отличающийся тем, что скорость течения раствора вытеснителя в мобильной фазе через хроматографическую колонку составляет 3-15 мл/(мин·см2).
12. Способ по п.1, отличающийся тем, что неподвижная фаза представляет собой обращенную фазу.
13. Способ по п.12, отличающийся тем, что неподвижная фаза представляет собой природную обращенную фазу, такую как силикагель с алкильными цепями различной длины.
14. Способ по п.12, отличающийся тем, что неподвижная фаза представляет собой С-18 или С-8.
15. Способ по п.12, отличающийся тем, что неподвижная фаза представляет собой матрицу синтетического сшитого полимера.
16. Способ по п.15, отличающийся тем, что матрица сшитого полимера представляет собой сополимер стирола и дивинилбензола.
17. Способ по п.12, отличающийся тем, что размер частиц неподвижной фазы равен 3-20 мкм.
18. Способ по п.17, отличающийся тем, что размер частиц неподвижной фазы равен 7-15 мкм.
19. Способ по п.12, отличающийся тем, что неподвижную фазу регенерируют при помощи 20-100% водного раствора низших спиртов после завершения процесса хроматографии.
20. Способ по п.1, отличающийся тем, что вытеснитель выбирают из группы, состоящей из спиртов с длинной цепью, карбоновых кислот с длинной цепью, алкиламмониевых солей с длинной цепью, эфиров ароматических дикарбоновых кислот, оксо-и диоксоспиртов, полиалкиленполигликолевых эфиров и полиарил- или полиалкиленполиариловых эфиров.
21. Способ по п.4, отличающийся тем, что концентрация вытеснителя в мобильной фазе составляет 1-35%.
22. Способ по п.21, отличающийся тем, что концентрация вытеснителя в мобильной фазе равна 2-20%.
23. Способ по любому из пп.1-22, отличающийся тем, что получают ингибитор HMG-СоА-редуктазы со степенью чистоты по данным ЖХВР, превышающей 99,7%.
24. Ингибитор HMG-СоА-редуктазы, полученный способом по любому из пп.1-22 со степенью чистоты, превышающей 99,7%.
25. Ингибитор по п.24, отличающийся тем, что он выбран из группы, состоящей из мевастатина, правастатина, ловастатина, симвастатина, флувастатина и аторвастатина.
26. Ингибитор по п.25, отличающийся тем, что он представляет собой ловастатин, или симвастатин, или правастатин.
27. Ингибитор по п.25, отличающийся тем, что он находится в форме лактона или в форме кислоты или ее соли.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SI9800241A SI20072A (sl) | 1998-09-18 | 1998-09-18 | Postopek za pridobivanje inhibitorjev HMG-CoA reduktaze |
SIP-9800241 | 1998-09-18 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2001108381A RU2001108381A (ru) | 2003-02-27 |
RU2235098C2 true RU2235098C2 (ru) | 2004-08-27 |
Family
ID=20432332
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2001108381/04A RU2235098C2 (ru) | 1998-09-18 | 1999-09-17 | Способ получения ингибиторов hmg-coa-редуктазы с высокой степенью чистоты |
Country Status (22)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US6695969B1 (ru) |
EP (1) | EP1114040B1 (ru) |
JP (1) | JP3795755B2 (ru) |
KR (1) | KR100607608B1 (ru) |
CN (1) | CN1186335C (ru) |
AT (1) | ATE284396T1 (ru) |
AU (1) | AU766630B2 (ru) |
BG (1) | BG64676B1 (ru) |
CA (1) | CA2343645A1 (ru) |
DE (1) | DE69922519T2 (ru) |
HR (1) | HRP20010045B1 (ru) |
HU (1) | HUP0102997A2 (ru) |
IL (2) | IL142056A0 (ru) |
IS (1) | IS2149B (ru) |
NZ (1) | NZ509582A (ru) |
PL (1) | PL200336B1 (ru) |
RO (1) | RO121116B1 (ru) |
RS (1) | RS49996B (ru) |
RU (1) | RU2235098C2 (ru) |
SI (1) | SI20072A (ru) |
SK (1) | SK285868B6 (ru) |
WO (1) | WO2000017182A1 (ru) |
Families Citing this family (20)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7141602B2 (en) * | 1998-09-18 | 2006-11-28 | Lek Pharmaceuticals D.D. | Process for obtaining HMG-CoA reductase inhibitors of high purity |
SI20305A (sl) * | 1999-08-06 | 2001-02-28 | LEK, tovarna farmacevtskih in kemi�nih izdelkov, d.d. | Kristali natrijeve soli pravastatina |
HUP9902352A1 (hu) * | 1999-07-12 | 2000-09-28 | Gyógyszerkutató Intézet Kft. | Eljárás pravasztatin mikrobiológiai előállítására |
RU2002114072A (ru) * | 1999-11-30 | 2004-07-20 | Биогал Джиоджисзерджиар РТ (HU) | Способ выделения соединений статина из ферментационного бульона |
CA2394200C (en) * | 1999-12-14 | 2006-10-03 | Biogal Gyogyszergyar Rt. | Novel forms of pravastatin sodium |
JP2003525935A (ja) | 2000-03-03 | 2003-09-02 | ビオガル ジョジセルジャール アール テー. | 低下したレベルの二量体不純物を伴うロバスタチン及びシンバスタチンの精製方法 |
US6936731B2 (en) | 2000-10-05 | 2005-08-30 | TEVA Gyógyszergyár Részvénytársaság | Pravastatin sodium substantially free of pravastatin lactone and epi-pravastatin, and compositions containing same |
CZ20031166A3 (cs) * | 2000-10-05 | 2004-04-14 | Biogal Gyogyszergyar Rt | Sodná sůl pravastatinu, která v podstatě neobsahuje pravastatin lakton a epi-pravastatin a kompozice na její bázi |
US20050215636A1 (en) * | 2000-10-05 | 2005-09-29 | Vilmos Keri | Pravastatin sodium substantially free of pravastatin lactone and EPI-pravastatin, and compositions containing same |
KR100407758B1 (ko) * | 2001-08-27 | 2003-12-01 | 씨제이 주식회사 | 스타틴의 제조에 있어서 락톤화 방법 |
JP2003093045A (ja) * | 2001-09-26 | 2003-04-02 | Godo Shusei Co Ltd | 有用変換微生物 |
KR100435078B1 (ko) * | 2002-02-08 | 2004-06-09 | 종근당바이오 주식회사 | 심바스타틴의 정제방법 |
CA2521276A1 (en) * | 2003-04-01 | 2004-10-14 | Ranbaxy Laboratories Limited | Fermentation process for the preparation of pravastatin |
US6978908B2 (en) * | 2003-09-15 | 2005-12-27 | Gerber Products Company | Drinking vessel with adjustable handles |
PT1641447E (pt) * | 2003-11-24 | 2008-12-10 | Teva Gyogyszergyar Zartkoeruee | Método de purificação da pravastatina |
ES2239533B1 (es) * | 2004-03-01 | 2006-12-16 | Ercros Industrial, S.A. | Procedimiento para la obtencion de compactina. |
MX2007003652A (es) * | 2004-09-28 | 2009-02-16 | Teva Pharma | Proceso para preparar formas de calcio de atorvastatina sustancialmente libre de impurezas. |
CN102043030A (zh) * | 2009-10-22 | 2011-05-04 | 北京万全阳光医学技术有限公司 | 一种用高效液相色谱法测定烟酸辛伐他汀缓释片有关物质的方法 |
CN102621238A (zh) * | 2011-02-01 | 2012-08-01 | 北京北大维信生物科技有限公司 | 一种测定HMG-CoA还原酶抑制剂浓度的方法 |
CN105985244A (zh) * | 2015-02-04 | 2016-10-05 | 北京北大维信生物科技有限公司 | 化合物、其分离方法、合成方法及用途 |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4231938A (en) * | 1979-06-15 | 1980-11-04 | Merck & Co., Inc. | Hypocholesteremic fermentation products and process of preparation |
IT1232311B (it) | 1989-09-04 | 1992-01-28 | Sclavo Spa | Metodo di purificazione di composti a struttura peptidica o pseudo peptidica a basso peso molecolare. |
US5202029A (en) * | 1991-03-13 | 1993-04-13 | Caron Kabushiki Kaisha | Process for purification of hmg-coa reductase inhibitors |
AU661996B2 (en) * | 1991-03-14 | 1995-08-17 | Kabushiki Kaisha Ace Denken | Stock control system |
US5420024A (en) * | 1993-05-11 | 1995-05-30 | Merck & Co., Inc. | Process for synthesis of acylated HMG-CoA reductase inhibitors from a lactone diol precursor using Candida cylindracea |
US5427686A (en) * | 1994-04-05 | 1995-06-27 | Sri International | Process for separating material from mixture using displacement chromatography |
EP0877089A1 (en) * | 1997-05-07 | 1998-11-11 | Gist-Brocades B.V. | HMG-CoA reductase inhibitor preparation process |
-
1998
- 1998-09-18 SI SI9800241A patent/SI20072A/sl not_active IP Right Cessation
-
1999
- 1999-09-17 NZ NZ509582A patent/NZ509582A/en not_active IP Right Cessation
- 1999-09-17 CN CNB998110760A patent/CN1186335C/zh not_active Expired - Fee Related
- 1999-09-17 CA CA002343645A patent/CA2343645A1/en not_active Abandoned
- 1999-09-17 DE DE69922519T patent/DE69922519T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1999-09-17 EP EP99941797A patent/EP1114040B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1999-09-17 PL PL345883A patent/PL200336B1/pl not_active IP Right Cessation
- 1999-09-17 RS YUP-818/00A patent/RS49996B/sr unknown
- 1999-09-17 RU RU2001108381/04A patent/RU2235098C2/ru not_active IP Right Cessation
- 1999-09-17 AT AT99941797T patent/ATE284396T1/de active
- 1999-09-17 WO PCT/IB1999/001553 patent/WO2000017182A1/en active IP Right Grant
- 1999-09-17 KR KR1020017000044A patent/KR100607608B1/ko not_active IP Right Cessation
- 1999-09-17 IL IL14205699A patent/IL142056A0/xx active IP Right Grant
- 1999-09-17 US US09/720,952 patent/US6695969B1/en not_active Expired - Fee Related
- 1999-09-17 RO ROA200100289A patent/RO121116B1/ro unknown
- 1999-09-17 JP JP2000574092A patent/JP3795755B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1999-09-17 SK SK2002-2000A patent/SK285868B6/sk not_active IP Right Cessation
- 1999-09-17 AU AU55284/99A patent/AU766630B2/en not_active Ceased
- 1999-09-17 HU HU0102997A patent/HUP0102997A2/hu unknown
-
2001
- 2001-01-16 HR HR20010045A patent/HRP20010045B1/xx not_active IP Right Cessation
- 2001-03-12 IS IS5886A patent/IS2149B/is unknown
- 2001-03-16 BG BG105348A patent/BG64676B1/bg unknown
- 2001-03-18 IL IL142056A patent/IL142056A/en not_active IP Right Cessation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RO121116B1 (ro) | 2006-12-29 |
KR20010099584A (ko) | 2001-11-09 |
IS2149B (is) | 2006-10-13 |
SI20072A (sl) | 2000-04-30 |
JP2002526486A (ja) | 2002-08-20 |
SK285868B6 (sk) | 2007-10-04 |
HUP0102997A2 (hu) | 2001-12-28 |
HRP20010045A2 (en) | 2001-12-31 |
EP1114040B1 (en) | 2004-12-08 |
KR100607608B1 (ko) | 2006-08-02 |
NZ509582A (en) | 2003-10-31 |
AU766630B2 (en) | 2003-10-23 |
SK20022000A3 (sk) | 2001-08-06 |
HRP20010045B1 (en) | 2005-08-31 |
DE69922519T2 (de) | 2005-12-08 |
ATE284396T1 (de) | 2004-12-15 |
IL142056A0 (en) | 2002-03-10 |
AU5528499A (en) | 2000-04-10 |
RS49996B (sr) | 2008-09-29 |
IS5886A (is) | 2001-03-12 |
YU81800A (sh) | 2003-02-28 |
US6695969B1 (en) | 2004-02-24 |
JP3795755B2 (ja) | 2006-07-12 |
IL142056A (en) | 2006-08-01 |
CA2343645A1 (en) | 2000-03-30 |
CN1186335C (zh) | 2005-01-26 |
DE69922519D1 (de) | 2005-01-13 |
WO2000017182A1 (en) | 2000-03-30 |
EP1114040A1 (en) | 2001-07-11 |
BG105348A (en) | 2001-11-30 |
PL345883A1 (en) | 2002-01-14 |
CN1318063A (zh) | 2001-10-17 |
BG64676B1 (bg) | 2005-11-30 |
PL200336B1 (pl) | 2008-12-31 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2235098C2 (ru) | Способ получения ингибиторов hmg-coa-редуктазы с высокой степенью чистоты | |
US5202029A (en) | Process for purification of hmg-coa reductase inhibitors | |
US20070032549A1 (en) | Process for obtaining HMG-CoA reductase inhibitors of high purity | |
EP1065196B1 (en) | Process of selectively separating and purifying eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids or their esters | |
KR100582620B1 (ko) | 고순도의 HMG-CoA 환원효소 억제제 획득방법 | |
KR20030036793A (ko) | 광학활성인(3알,5에스,6이)-7-[2-시클로프로필-4-(4-플루오르페닐)퀴놀린-3-일]-3,5-디히드록시-6-헵텐산 에틸의제조방법 | |
CZ2001137A3 (cs) | Způsob získání inhibitorů HMG-CoA reduktázy vysoké čistoty | |
CN112279895A (zh) | 一种化学合成酸性多肽的制备方法 | |
GB2153823A (en) | Purification of cephalosporins | |
JPH05215736A (ja) | クロマト分離法 | |
US20050003499A1 (en) | Ion-exchange filtration of fermentation broth | |
Otake et al. | The structures of minor congeners of detoxin complex, the selective antagonist of blasticidin S1 | |
KR20040028303A (ko) | 의사(擬似)이동마루식 크로마토그래피에 의한 광학 분할에있어서의 광학 이성체와 용매와의 회수 방법 및 용매의순환 사용 방법 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20130918 |