NO341747B1 - DNA sekvens, vertcelle, rekombinant vektor, α-galaktosidase, enzym, fremgangsmåte for fremstilling av et enzym og disakkarid samt anvendelse av enzym og vertcelle - Google Patents

DNA sekvens, vertcelle, rekombinant vektor, α-galaktosidase, enzym, fremgangsmåte for fremstilling av et enzym og disakkarid samt anvendelse av enzym og vertcelle Download PDF

Info

Publication number
NO341747B1
NO341747B1 NO20082802A NO20082802A NO341747B1 NO 341747 B1 NO341747 B1 NO 341747B1 NO 20082802 A NO20082802 A NO 20082802A NO 20082802 A NO20082802 A NO 20082802A NO 341747 B1 NO341747 B1 NO 341747B1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
enzyme
host cell
dna
dna sequence
cell
Prior art date
Application number
NO20082802A
Other languages
English (en)
Swedish (sv)
Other versions
NO20082802L (no
Inventor
Athanasios K Goulas
Georgios Tzortzis
Theodoros Goulas
Original Assignee
Clasado Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=35840743&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=NO341747(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Clasado Inc filed Critical Clasado Inc
Publication of NO20082802L publication Critical patent/NO20082802L/no
Publication of NO341747B1 publication Critical patent/NO341747B1/no

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L29/00Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof
    • A23L29/30Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof containing carbohydrate syrups; containing sugars; containing sugar alcohols, e.g. xylitol; containing starch hydrolysates, e.g. dextrin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2465Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1) acting on alpha-galactose-glycoside bonds, e.g. alpha-galactosidase (3.2.1.22)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/12Disaccharides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23CDAIRY PRODUCTS, e.g. MILK, BUTTER OR CHEESE; MILK OR CHEESE SUBSTITUTES; MAKING THEREOF
    • A23C9/00Milk preparations; Milk powder or milk powder preparations
    • A23C9/12Fermented milk preparations; Treatment using microorganisms or enzymes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23KFODDER
    • A23K20/00Accessory food factors for animal feeding-stuffs
    • A23K20/10Organic substances
    • A23K20/163Sugars; Polysaccharides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23KFODDER
    • A23K20/00Accessory food factors for animal feeding-stuffs
    • A23K20/10Organic substances
    • A23K20/189Enzymes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L27/00Spices; Flavouring agents or condiments; Artificial sweetening agents; Table salts; Dietetic salt substitutes; Preparation or treatment thereof
    • A23L27/30Artificial sweetening agents
    • A23L27/33Artificial sweetening agents containing sugars or derivatives
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L29/00Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof
    • A23L29/06Enzymes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/7016Disaccharides, e.g. lactose, lactulose
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/10Cells modified by introduction of foreign genetic material
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405Glucanases
    • C12N9/2408Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
    • C12N9/2411Amylases
    • C12N9/2414Alpha-amylase (3.2.1.1.)
    • C12N9/2417Alpha-amylase (3.2.1.1.) from microbiological source

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Animal Husbandry (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
  • Fodder In General (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Abstract

Foreliggende oppfinnelse angår en ny a-galaktosidase med transgalaktosylerende aktivitet, isolert fra Bifidobacterium bifidum. a-galaktosidasen har evne til å omdanne mellibiose til a-galaktobiosedisakkarider som kan innkorporeres i en rekke matvareprodukter eller dyrefôr for å forbedre tarmhelsen ved å fremme veksten av bifidobakterier i tarmen, og undertrykke veksten av den patogene mikrofloraen.

Description

Den foreliggende oppfinnelse angår DNA sekvens, vertscelle, rekombinant vektor, α-galaktosidase, enzym, fremgangsmåte for fremstilling av et enzym og disakkarid samt anvendelse av enzym og vertscelle. Den angår følgelig en ny α-galaktosidase med transgalaktosylerende aktivitet i stand til å omdanne mellibiose til αgalaktobiosedisakkarider. Spesielt angår den en α-galaktosidase isolert fra en nylig oppdaget stamme av Bifidobacterium bifidum.
Oppfinnelsen angår særlig DNA-sekvenser kodende for det isolerte αgalaktosidase-enzymet, enzymet kodet for av en slik DNA-sekvens og en vertscelle omfattende en DNA-sekvens eller inneholdende en rekombinant vektor med DNA-sekvensen.
Bifidobakterier koloniserer naturlig den nedre delen av tarmsystemet, et miljø som har lite mono- og disakkarider siden slike sukkere fortrinnsvis fordøyes av verten og mikrober som er tilstede i den øvre delen av tarmsystemet. For å overleve i den nedre delen av tarmsystemet produserer bifidobakterier ulike typer ekso- og endoglykosidaser i overflatebundet og/eller ekstracellulære former, som de kan nyttigjøre diverse karbohydrater med.
Ved siden av hydrolaseaktivitet, har noen enzymer fra bifidobakterien transferaseaktivitet. Denne transglykosyleringsaktiviteten til glykosidaser er i stor grad anvendt for den enzymatiske syntesen av ulike oligosakkarider, som har vist seg å fungere som vekstfremmende faktorer for bifidobakterien.
Det er kjent at medlemmer av bifidobakterien fremstiller ß-galaktosidase-enzymer som er involvert i bakteriell metabolisme av laktose. Moller, P.L. et al i Appl & Environ. Microbial., (2001), 62, 5), 2276-2283 beskriver isoleringen og karakteriseringen av tre ßgalaktosidasegener fra en stamme av Bifidobacterium bifidum. De fant at alle tre ßgalaktosidasene var i stand til å katalysere dannelsen av beta-bundet galaktooligosakkarider ved transgalaktosylering.
DATABASE Geneseq, 19.nov.2001, beskriver Bifidobacterium longum NCC2705 ORF aminosyresekvens SEQ ID NO:919.
VAN DEN BROAK L A M ET AL, 1999, beskriver syntese av alfa-galaktooligosakkarider av en klonet alfa-galaktosidase fra Bifidobacterium adolescentis.
SCALABRINI P ET AL, 1998, beskriver karakterisering av Bifidobacteriumstammer for anvendelse i soyamelkfermentering.
Det er kjent at noen arter av bifidobakterien, men ikke B. Bifidum fremstiller αgalaktosidaser så vel som ß-galaktosidaser. α-Galaktosidaser tilhører gruppen av glykosylhydrolaser og kan klassifiseres i to grupper basert på deres substratspesifisitet, dvs. en gruppe er spesifikk for små sakkarider som p-nitrofenyl-α-D-galaktopyranosid, mellibiose og raffinose, og den andre gruppen kan frigjøre galaktose fra galktomannaner som guar gummi, i tillegg til små substrater.
En stamme av Bifidobacterium bifidum er funnet som er i stand til å fremstille en galaktosidase-enzymaktivitet som omdanner laktose til en ny blanding av galaktooligosakkarider, som uventet inneholder opptil 35 % av disakkarider inkludert galbiose (Gal (α 1-6) – Gal). Dette disakkaridet er kjent (se Paton, J.C. & Paton, A.W. (1998), Clin. Microbiol. Revs., 11, 450-476; Carlson, K.A. (1989), Ann. Reviews Biochem., 58, 309-350) for å være et antiadhesiv i stand til å hindre adhesjonen av toksiner til tarmveggen, f.eks. Shigatoksin og patogener som E. coli.
Denne stammen av B. bifidum ble innlevert under aksesjoneringsnummer NCIMB 41171 ved National Collection of Industrial & Marine Bacteria, Aberdeen, UK den 31. mars 2003. Den er også beskrevet i UK Patent nr.2 412 380.
Det er funnet at denne stammen av B. bifidum fremstiller en α-galaktosidase som er i stand til å omdanne mellibiose til α-galaktobiosedisakkarider.
Foreliggende oppfinnelse omfatter følgelig DNA sekvens som koder for et protein med en aminosyresekvens som angitt SEKV. ID NR: 2.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre DNA sekvens ifølge krav 1, idet sekvensen er gitt i SEKV. ID NR: 1.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre enzym kodet i en DNA sekvens ifølge 1 eller krav 2.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre enzym omfattende en aminosyresekvens ifølge SEKV. ID NR: 2.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre α-galaktosidase med en sekvens som definert i SEKV. ID NR: 2.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre rekombinant vektor omfattende en DNA sekvens ifølge krav 1 eller krav 2.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre vektor ifølge krav 6, idet nevnte vektor er en ekspresjonsvektor.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre vertscelle omfattende en DNA sekvens ifølge krav 1 eller krav 2.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre vertscelle omfattende vektoren ifølge krav 6 eller 7.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre anvendelse av et enzym ifølge et hvilket som helst av kravene 3 til 5, eller en celle ifølge et hvilket som helst av kravene 8 til 12, for produsering av α-galaktobiose disakkarider.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre anvendelse av et enzym ifølge et hvilket som helst av kravene 3 til 5, eller en celle ifølge et hvilket som helst av kravene 8 til 12, for produsering av α-galaktobiose disakkarider for å være en del av et produkt valgt fra gruppen bestående av meieriprodukter, så som flytende melk, tørket melkepulver, barnemelk, barneformel, iskrem, yoghurt, ost, fermenterte meieriprodukter, drikker så som fruktjuice, barnemat, frokostblandinger, brød, kjeks, konditorvarer, kaker, matvaretilsetninger, kosttilskudd, probiotiske spiselige produkter, prebiotiske spiselige produkter, dyrefór, fjærfe fór og medikamenter.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre anvendelse av en vertscelle ifølge et hvilket som helst av kravene 8 til 12, for produsering av et produkt valgt fra gruppen bestående av meieriprodukter, så som flytende melk, tørket melkepulver, barnemelk, barneformel, iskrem, yoghurt, ost, fermenterte meieriprodukter, drikker som fruktjuice, barnemat, frokostblandinger, brød, kjeks, konditorvarer, kaker, matvaretilsetninger, kosttilskudd, probiotiske spiselige produkter, prebiotiske spiselige produkter, dyrefór fjørfe fór og medikamenter.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre fremgangsmåte for fremstilling av et enzym ifølge et hvilket som helst av kravene 3 til 5 omfattende dyrking av en vertscelle ifølge et hvilket som helst av kravene 8 til 12 i et egnet dyrkingsmedium under betingelser som tillater ekspresjon av nevnte enzym og gjenvinning av det resulterte enzymet fra kulturen.
Foreliggende oppfinnelse omfatter videre fremgangsmåte for fremstilling av et disakkarid omfattende kontakt av et enzym ifølge et hvilket som helst av kravene 3 til 5 eller en vertscelle ifølge et hvilket som helst av kravene 8 til 12 med en løsning av melibiose.
Ifølge oppfinnelsen er det følgelig fremskaffet en DNA-sekvens som koder for et protein med en aminosyresekvens som gitt i SEKV. ID NR: 2 eller hybridiserer under stringente betingelser med DNA-sekvensen som koder for dette proteinet. DNA-sekvensen er gitt i SEKV. ID NR: 1 eller kan omfatte et fragment eller degenerasjonsprodukt derav.
Utrykket ”degenerasjonprodukt” er tolket til å bety en DNA-sekvens som minst er 50 % homolog til SEKV. ID NR: 1, fortrinnsvis fra 50 til 98 % homolog, mest foretrukket fra 75 til 95 % homolog.
En slik DNA-sekvens kan omfatte nukleotidsubstitusjoner, addisjoner eller delesjoner som resulterer i mindre enn 60 %, fortrinnsvis mindre enn 45 %, mer foretrukket mindre enn 25 % endring i aminosyresekvensen vist i SEKV. ID NR: 2.
Nukleotidsubstitusjoner kan resultere i konservative aminosyresubstitusjoner.
Ifølge et andre aspekt av oppfinnelsen er det fremskaffet et enzym kodet for av en DNA-sekvens som definert ovenfor. Et slikt enzym kan omfatte aminosyresekvensen gitt i SEKV. ID NR: 2 eller et fragment derav.
Ifølge et tredje aspekt er det fremskaffet en rekombinant vektor, fortrinnsvis en ekspresjonsvektor, omfattende en DNA-sekvens som definert ovenfor. En slik vektor kan inkorporeres i en vertscelle som en bakterie-, gjær- eller soppcelle. Alternativt kan DNA-sekvensen inkorporeres i en slik vertscelle. En egnet vertscelle kan selekteres fra Bifidobacterium, Lactococcus, Lactobacillus, Bacillus, for eksempel Bacillus subtilis eller Bacillus circulans, Escherichia og Aspergillus, for eksempel Aspergillus niger.
Ved anvendelse av mellibiose som et substrat, fremstiller enzymet kodet for av DNA-sekvensen som definert ovenfor, særlig α-galaktobiosedisakkarider.
Enzymet eller vertscellen som beskrevet ovenfor kan anvendes til å fremstille αgalaktobiosedisakkarider, som kan inngå i et produkt for å forbedre tarmhelsen. Et slikt produkt kan velges fra gruppen bestående av meieriprodukter (for eksempel flytende melk, tørket melkepulver som helmelkpulver, skummetmelkpulver, fettfylt melkepulver, mysepulver, barnemelk, barneformel, iskrem, yoghurt, ost, fermenterte meieriprodukter), drikker som fruktjuice, barnemat, frokostblandinger, brød, kjeks, konditorvarer, kaker, matvaretilsetninger, kosttilskudd, probiotiske spiselige produkter, prebiotiske spiselige produkter, dyrefôr, fjærfefôr eller faktisk enhver annen matvare eller drikke.
Alternativt, kan disakkaridene fremstilt slik anvendes for fremstillingen av et medikament, for eksempel i tablett- eller kapselform for å hindre adhesjon av patogener eller toksiner produsert av patogener i tarmveggen. Medikamentet kan administreres til en pasient, for eksempel etter en antibiotikakur, som ofte endrer eller til og med ødelegger den normale sunne tarmfloraen.
Ifølge ennå et ytterligere aspekt av oppfinnelsen er det fremskaffet en fremgangsmåte for å fremstille et enzym som definert ovenfor, som omfatter dyrking av en vertscelle som definert ovenfor i et egnet dyrkingsmedium under forhold som tillater ekspresjon av enzymet, og gjenvinne det resulterende enzym eller enzymproduktene fra kulturen.
Oppfinnelsen er også rettet mot en fremgangsmåte for fremstilling av galaktobiosedisakkaridene som omfatter kontakt med enzymet som definert ovenfor, eller en vertscelle som definert ovenfor med et mellibiose-inneholdende materiale under forhold som fører til dannelsen av disakkaridene.
Egnede mellibiose-inneholdende materialer kan velges fra kommersielt tilgjengelig mellibiose, raffinose, stachyose eller som et ekstrakt av soyabønner.
Kort beskrivelse av figurene
Figur 1 viser nukleotidsekvensen (SEKV. ID NR: 1) av Bifidobacterium bifidum αgalaktosidase med start- og stoppkodon angitt i fet skrift;
Figur 2 viser nukleotidsekvensen ifølge figur 1 med aminosyresekvensen (SEKV. ID NR: 2) til enzymet;
Figur 3 viser de første 540 aminosyrene av aminosyresekvensen (SEKV. ID NR: 2) ifølge figur 2;
Figur 4 er en graf som viser tidløpsreaksjonen under α-galaktooligosakkaridsyntesen med α-galaktosidasen og 40 % (v/v) mellibiose i 0,1 M fosfatbuffer ved pH 6,0 som substrat; og
Figur 5 viser et høykapasitet anionbytter kromatogram av αgalaktooligosakkaridblandingen fremstilt av α-galktosidasen fra B. bifidum NCIMB 41171 ved anvendelse av 40 % (v/v) mellibiose i 0,1 M fosfatbuffer ved pH 6,0 som substrat. (Glc = glukose, Gal = galaktose, Mel = mellibiose, DP = polymeriseringsgrad). De strekede pilene betegner galaktooligosakkaridproduktene.
Genomisk DNA ble isolert fra Bifidobacterium bifidum-stammen (NCIMB 41171) ved anvendelse av fremgangsmåten til Lawson et al. (1989) Fems Microbiol Letters, 65, (1-2), 41-45. DNA ble kuttet med restriksjonsenzymer og fragmenter med maksimumsstørrelse på 15 kbp ble ligert i pBluescript KS(+) vektor. E. coli celler ble transformert med en vektor inneholdende innskudd bestående av PstI-kuttet kromosomalt DNA fra B. bifidum. Kloner med α-galaktosidaseaktivitet ble selektert på Luria Bertani agarplater inneholdende p-nitrofenyl-α-D-galaktopyranosid og isopropyl-ß-D-thiogalaktosid (IPTG). To α-galaktosidase-positive kloner (pMelA1 og pMelA2) ble identifisert.
De to positive klonene ble kuttet med EcroRI, PstI og BamHI og viste et lignende restriksjonsmønster, som indikerer at begge inneholdt det samme innsatte DNA-fragmentet. DNA-sekvensering av det innsatte DNA-fragmentet MelA1 ble utført ved anvendelse av dideoksy-kjedetermineringsmetoden av Sanger (Russel P., 2002 iGenetics, Pearson Education, Inc., San Francisco, 187-189) ved anvendelse av BigDye Terminator V.3.O cycle sequencing kit (Applied Biosystems, USA). DNA-sekvensen til MelA1 er vist i figur 1 (SEKV. ID NR: 1).
Den åpne leserammen (ORF) ble lokalisert ved anvendelse av ORF finder fra NCBI (National Center of Biotechnology Information). Den bakterielle genetiske koden ble anvendt og fragmentlengden ble bestemt til å være 300 bp. Nukleotidsekvensen i figur 1 ble translatert i alle seks mulige leserammer og en åpen leseramme på 759 aminosyrer kodende for en antatt α-galaktosidase ble identifisert. Translasjonen er vist i figur 2 (SEKV. ID NR: 2).
Den foreliggende oppfinnelsen vil bli nærmere beskrevet i form av referanse til følgende eksempler.
Eksempel 1
Materialer og metoder
Alle kjemikalier og mediapreparater anvendt gjennom denne studien ble skaffet fra Sigma (Dorset, UK), Invitrogen (Paisley, UK), Oxoid (Basingstoke, UK), Qiagen (West Sussex, UK) og Promega (Southampton, UK).
Bakteriestammer
Bifidobacterium bifidum-stammen (NCIMB 41171) ble oppbevart i flytendehelium-perler i Microbankrør ved -70 °C. For senere eksperimenter ble stammen gjenopplivet på Wilkinson Chalgren (WC) agar (Oxoid, UK) og TPY medium (trypticase phytone gjærekstrakt medium) og dyrket anarobt (CO2og N2-sammensetning henholdsvis 80 % og 20 %) ved 37 °C i 48t. Kolonimorfologien og fravær av forurensing ble testet ved gramfarging.
E.coli-stammer
Escherichia coli-stammer RA11r og DH5a anvendt i denne studien ble oftest inkubert under aerobe forhold ved 37 °C i Luria Bertani (LB) agar eller broth (Sambrook J. og Russel, W.D., (2001) Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Cold Spring Harbour Laboratory Press, New York) og ble når det var nødvendig supplert med antibiotika (100 µg/ml ampicillin og/eller 15 µg/ml kloramfenikol) og 40 µl av 25 % X-α-galaktopyranosid (X-α-Gal), 7 µl av 20 % (isopropyl-ß-D-thiogalaktosid) IPTG som ble tilsatt på overflaten til en prelaget 90 mm agarplate.
E. coli-stammen RA11r som mangler α-galaktosidase (Hanatani et al, 1983, J. Biol. Chem, 259, (3), 1807-1812) (genotype: melA-B<+>, recA-, lacZ-Y-) er et derivat av E. coli K12 og ble anvendt i ekspresjonsforsøk. E. coli DH5a-stammen (Invitrogen, Paisley, UK) (genotype: F<->φ80lacZΔM(lacZYA-argF)U169 recA1 endA1 hsdR17(rk-, mk-)phoA supE44 thi-1 gyrA96 relA1λ-) er en α-galaktosidase-positiv stamme og ble anvendt for alle andre genetiske manipulasjoner.
Valget av E. coli-stammen RA11r for ekspresjonsforsøk, ble utført ifølge dets genotype. Denne stammen koder ikke for en aktiv α-galaktosidase på grunn av melA-mutasjon i dets kromosomale DNA. Imidlertid har denne stammen en aktiv mellibiosetransportør som er nødvendig for transport av sukkere (mellibiose) i cytoplasma og derav metabolismen av dem ved aktive α-galaktosidaser. Det var ikke kjent om Bifidobacterium bifidum α-galaktosidase ble uttrykt intracellulært eller ekstracellulært. Så tilstedeværelsen av en aktiv mellibiose-transportør var essensiell for identifiseringen av α-gal-positive kloner og derav isoleringen av α-galaktosidase-kodende gener.
Dessuten er denne stammen en recA-mutant som minimaliserer rekombinasjon av det introduserte DNA med verts-DNA, dermed øker stabiliteten av innskuddene.
Genomisk DNA-ekstraksjon fra Bifidobacterium bifidum
Genomisk DNA ble isolert fra Bifidobacterium bifidum-stammen (NCIMB 41171) ved anvendelse av fremgangsmåten til Lawson et al. (1989).
Ifølge denne fremgangsmåten, ble cellene høstet fra plater i 0,5 ml TES-buffer i 1,5 ml eppendorfrør.10 µl lysozyme/mutanolysin-blanding (4:1, lysozym 10 mg/ml; mutanolysin 1 mg/ml) ble tilsatt og blandingen ble så blandet og inkubert i 30 minutter ved 37 °C. Cellene ble så behandlet med 10 µl proteinase K (ved 20 mg/ml) og 10 µl Rnase (10 mg/ml), blandet og inkubert i 1 time ved 65 °C. Etter inkubering, ble 100 µl 10 % SDS tilsatt og cellelysatene ble forsiktig blandet ved inversjon og inkubert videre i 15 minutter ved 65 °C, fulgt av tilsetting av 0,62 ml fenol/kloroform og blandet ved inversjon inntil en emulsjon ble dannet. Cellelysatet ble sentrifugert ved 6,500 rpm i 10 minutter og den øvre væskefasen ble overført til et rent eppendorfrør ved anvendelse av en flambert, bredhullet blå pipettespiss. Ekstraksjonen (deproteiniseringstrinnet) ble gjentatt inntil cellerester fullstendig var fjernet. DNA ble presipitert ved tilsetning av 1 ml iskald etanol fulgt av inkubering i minst 30 minutter på is eller lagret over natt i en -20 °C fryser. Genomisk DNA ble gjenvunnet ved sentrifugering ved 13,000 rpm i 5 minutter og etter tørking ble det resuspendert i 50 µl steril 10 mM Tris-Cl pH 8.
Ekstrahert DNA ble analysert ved gelelektroforese og konsentrasjonen målt ved 260 nm. Det ble lagret ved -20 °C eller -70 °C for lengre perioder av gangen og flere tininger og frysinger ble ungått for å redusere muligheten for degradering.
Fremstilling av vektor DNA
Vektoren anvendt gjennom denne studien var pBluescript KS(+) (Stratagene, North Torrey Pines Road). Dette kloningsverktøyet ble valgt på grunn av lac-promoteren som pBluescript KS(+) koder for, som er nødvendig for transkripsjonsinitiering av gener som mangler sin egen promoter.
Vektoren ble kuttet med de følgende restriksjonsenzymene: PstI, BamHI og EcoRI ifølge produsentens instruksjoner ved anvendelse av et tifold overskudd av enzym i forhold til DNA (enzymenheter:µgr DNA lik ti enheter av enzym per ett µgr plasmid DNA eller ti enzymenheter per 0,5 pmol plasmid DNA). Etter varmeinaktivering av enzymet (20 min ved 65 °C) ble restriksjonsmønsteret analysert ved horisontal gelelektroforeseanalyse.
Vektorene ble videre defosforylert med kalvetarm alkalisk fosfatase, CIAP (Promega, Southampton, UK) ifølge produsentens instruksjoner. Effekten av behandlingen ble testet ved selvligering av vektoren (med Bakteriofag T4 DNA ligase ifølge produsentens instruksjoner) fulgt av transformering i DH5a celler.
Tilstedeværelsen av ett enkelt fragment i gelen indikerer fullstendig vektorkutting og den ene restriksjonskuttingen av det. Tilstrekkelig kutting av vektoren ble også testet ved å transformere uligerte molekyler i kompetente E. coli DH5a celler. Antall dannede kolonier på LB-agarplater tilsatt ampicillin (100 µgr/ml) var en indikator på ukuttede molekyler og forventet bakgrunn under de etterfølgende forsøk.
Fremstilling av genomisk DNA-bibliotek
Genomisk DNA ble partielt kuttet med tre restriksjonsenzymer som gjenkjenner hyppig forekommende heksanukleotidsekvenser i prokaryotisk DNA. EcoRI, BamHI og PstI er type II restriksjonsendonukleaser som spesifikt gjenkjenner henholdsvis sekvensene 5 ́G/AATTC ́3, 5 ́G/GATCC ́3 og 5 ́CTGCA/G ́3, og lager dobbelttrådkutt i disse sekvensene, og genererer 5 ́overheng på fire nukleotider, AATT, GATC for henholdsvis EcoRI og BamHI, og 3 ́overheng, ACGT for PstI.
Alle disse enzymene var aktive og i stand til å kutte DNA kun ved tilstedeværelse av divalente magnesiumioner. Disse ionene var den eneste nødvendige kofaktor.
Restriksjonskutting av DNA
Alle restriksjonskuttinger av genomiske DNA-prøver ble inkubert i 2 timer ved 37 °C og til slutt varmeinaktivert ved 65 °C i 20 minutter. Reaksjonene ble så avkjølt ved romtemperatur og egnet mengde av appliseringsbuffer ble tilsatt, fulgt av forsiktig blanding med et forseglet glasskapillær. Løsningen ble så applisert i brønner i en 0,8% agarosegel (strømforsyning 4-5 volt/cm i 14-16 timer) og størrelsen av kuttet DNA ble estimert sammenlignet med 1 kb DNA-standard (Promega, UK) (Sambrook, J. Molecular Cloning: A Laboratory Manual (2002)).
Rensing av fragmentene generert etter restriksjonskutting
Fragmentrensing fra reaksjonsblandingene og agarosegelene ble utført ved anvendelse av QIAEX gel extraction kit fra Qiagen (West Sussex, UK). Detaljerte protokoller er beskrevet i produsentens manual.
DNA ligering og transformasjon
Etter rensing av DNA-fragmentene med Qiaex gel extraction kit, ble de ligert med CIAP-behandlet pBluescript KS(+) vektor. For ligering, ble egnede mengder DNA overført til sterile 0,5 ml microfugerør som vist i tabell 1.
Rør DNA
A Vektor (15 fmol [~29,7 ng])
B Vektor (15 fmol ~29,7 ng DNA) pluss innskudd
(fremmed 15 fmol ~69,3 ng)
C pUC kontroll (0,056 fmol [~100 pg])
Molart forhold av plasmid DNA-vektor til insatt DNA-fragment bør være ~1:1 i
ligeringsreaksjonen. Den endelige DNA-konsentrasjonen bør være ~10ng/µl.
Tabell 1: Ligeringsblandinger. Rør A viser antall selvligert vektor-DNA som må trekkes fra det totale antall transformanter etter tranformasjonen. Rør B viser ligeringen av vektoren med DNA-fragmentene og rør C viser kontrollen for at transformasjonseffekten kan beregnes.
Før hver ligering ble DNA-fragmentene varmet ved 45 °C i 5 minutter for å smelte eventuelle kohesive termini som rebandt under fragmentfremstillingen. Et molart forhold vektor:innskudd-DNA på 1:1 ble benyttet for alle ligeringsreaksjoner og reaksjonssammensetningen ble gjort i henhold til Promega ́s instruksjoner.
Rørene A og B ble tilsatt 1,0 µl 10x ligeringsbuffer og 0,5 Weiss enheter av T4 DNA ligase (Promega, UK) og ligeringsvolumet ble justert til 10 µl med vann med molekylærbiologikvalitet. 10 µl 10x ligeringsbuffer ble tilsatt rør C og ligeringsvolumet ble justert til 10 µl med vann med molekylærbiologikvalitet.
DNA-fragmenter ble tilsatt rørene sammen med vannet og så varmet til 45 °C i 5 minutter for å smelte eventuelle kohesive termini som var rebundet under fremstillingen. DNA-et ble avkjølt til 0 °C før resten av ligeringsreagensene ble tilsatt og reaksjonsblandingen ble inkubert over natt ved 16 °C (Sambrook og Russel, 2001).
Etter etanolfelling og rensing av de ligerte fragmentene (for å fjerne ligeringsblandingen som gir redusert transformasjonseffektivitet) ble transformasjoner utført ifølge Hanahan instruksjoner. ~50 ng ligert DNA i 5 µl løsning ble tilsatt 100 µl kompetente E. coli RA11r celler. Etter varmebehandling og ekspresjon av det ampicillinresistente genet ble cellene spredt utover overflaten til LB-plater inneholdende ampicillin (100 µgr/ml), X-α-Gal (40 µl av 2 % X-α-Gal) og IPTG (7 µl av 20 % IPTG).
Antall transformanter fra hver ligeringsreaksjon ble telt. Vanlig antall transformanter oppnådd fra rør C var 2x10<5>-10<6>cfu/µg mens det fra rør A var 500-600 cfu/µg. Antall tranformanter i rør B var i området 2-4x10<4>cfu/µg.
Antall transformanter
Ligeringsblandinger med PstI-kromosomalt DNA gav opphav til to αgalaktosidase-postive kloner (pMelA1 og pMelA2) av omtrent 2500 screenete transformanter, mens EcoRI- og BamHI-behandlet kromosomalt DNA gav ingen positive kloner ut av omtrent 4000 totalt screenete transformanter.
Positiv klonekutting
De to PstI-positive klonene ble kuttet med EcroRI, PstI, BamHI, HindIII, SmaI og KpnI restriksjonsenzymer. Restriksjonsenzymene EcroRI, PstI og BamHI gav lignende restriksjonsmønster, ett fragment på ~5 kbp (genet av interesse) og ett ~3 kbp (plasmid DNA) som indikerte at disse enzymene ble kuttet i de samme posisjonene. HindIII gav et fragment på 6,5 kbp og ett fragment på 1,5 kbp, mens enzymene SmaI og KpnI gav ett fragment med størrelse ~8 kbp, som indikerer at de kun ble kuttet i en posisjon. Lignende restriksjonsmønster for begge plasmidene var en indikasjon om at begge inneholdt det samme DNA-fragmentinnskuddet.
DNA-sekvensering
DNA-sekvensering ble utført med dideoksy-kjedetermineringsmetoden til Sanger med anvendelse av BigDye Terminator v.3.0 cycle sequencing kit (Applied Biosystems, USA) og analysert med ABI Prism 3100, et fluorescensebasert DNA-analysesystem som inkorporerer kapillær-elektroforese.
5 ́- og 3 ́-endene av de innsatte DNA-fragmentene ble sekvensert med vektorspesifikke primere. Innskuddene ble videre sekvensert ved anvendelse av Genome Priming System (GPS-1) (New England Biolabs, UK). GPS-1 er et TN7 transposonbasert in vitro system som anvender TnsABC transposase for å sette inn transposon tilfeldig i mål-DNA. Donor : mål-DNA masseforholdet 1:4 ble anvendt ifølge produsentens instruksjoner. Antall isolerte plasmider til sekvensering etter innsetting av transprimeren i mål-plasmidet var 25. Dette antallet ble beregnet ifølge produsentens instruksjoner og det antyder en 5-fold dybdedekning.
Unike primerseter i begge ender av transprimerelementet tillot sekvensering av begge tråder av mål-DNA i området for innsettingen.
Sekvenseringsreaksjonsblandingen inneholdt omtrent 400-600 ng plasmid DNA, 3,2 pmol primer-løsning og 4 µl BigDye Terminator-løsning.
Identifisering av åpen leseramme
Den åpne leserammen (ORF) ble lokalisert ved anvendelse av ORF finder fra NCBI. Den bakterielle genetiske koden ble anvendt og rammelengden ble bestemt til å være 300 bp. Nukleotidsekvensen ble translatert i alle seks mulige leserammer og en åpen leseramme på 759 aminosyrer kodende for en antatt α-galaktosidase ble identifisert (translasjonen er vist i figur 2). Start- og stoppkodon ble bekreftet.
Bifidobacterium α-galaktosidase genet i plasmid pMelA1 ble uttrykt i E. coli under vekstbetingelser som normalt ville undertrykke ekspresjonen fra den induserbare E. coli lacZ-promotoren lokalisert i det flankerende området av kloningsvektoren. Denne observasjonen indikerer at endogene, interne bifidobakteriesekvenser oppstrøms for αgalaktosidase-genet kan fungere som et transkripsjonsintieringssignal i E. coli.
Transkripsjonsstarten er indikert med fet kursiv skrift. Resultatene ovenfor indikerer at genet kontrolleres av sin egen transkripsjonspromoter.
Eksempel 2
Syntese med det α-galaktosidase klonede enzymet isolert fra Bifidobacterium bifidum NCIMB 41171 i E. coli vert (stamme RA11)
Den følgende beskrevne syntesen, med mindre annet er oppgitt, ble utført med alle E. coli RA11 vertscellene etter behandling av E. coli-biomassen (samlet ved sentrifugering ved 10,000 g) med toulen ved en konsentrasjon på 2000 ppm for å øke cellepermeabiliteten og også gjøre cellene ikke-levedyktige ved å ødelegge deres cytoplasmamembran. E. colibiomassen ble fremstilt som beskrevet i eksempel 1 under ”E. coli stammer”.
Syntese med klonet enzym
Syntese med α-galaktosidase ble utført ved en substratkonsentrasjon på 40 % (v/v) initiell mellibiosekonsentrasjon. Synteseløsningen ble preparert i 0,1 M fosfatbuffer ved pH 6,0. Syntese ble utført ved 40 °C i ristende vannbad ved 150 rpm. pH-optimumet for det spesifikke enzymet ble valgt basert på aktivitetsmålinger (ved anvendelse av pnitrofenyl-α-D-galaktopyranosid som substrat) av en spesifikk enzymforbindelse ved ulike pH-verdier.
For α-galaktosidasesyntese ble 2 ml av en E. coli RA11 cellesuspensjon (med en aktivitet på 0,3 U/ml) sentrifugert (ved 10,000 g) for å samle biomassen og supernatanten ble kastet. Biomassen ble resuspendert med 1 g av 40% (v/v) mellibiose-substratløsning for å utføre syntesen.
Konsentrasjonen av de ulike sukkere presentert i blandingen under syntese er vist i figur 4. Høykapasitet anionbytter kromatografi koblet med pulsert amperometerdeteksjons-(HPAEC-PAD) kromatogrammer av galaktooligosakkarid-blandinger syntetisert av αgalaktosidasen klonet fra B. bifidum NCIMB 41171 er vist i figur 5.
Sukkerkonsentrasjonene i galaktooligosakkaridblandingene ved optimal syntesetid er vist i tabell 1.
Tabell 1. Karbohydratsammensetning av α-galaktooligosakkaridsyntese ved 40 % (v/v) initiell mellibiose-konsentrasjon på tidspunktet da maksimal oligosakkaridkonsentrasjon ble observert.
Mel: Mellibiose, Glc: glukose, Gal: galaktose, DP: grad av polymerisering.
NO20082802A 2005-12-20 2008-06-20 DNA sekvens, vertcelle, rekombinant vektor, α-galaktosidase, enzym, fremgangsmåte for fremstilling av et enzym og disakkarid samt anvendelse av enzym og vertcelle NO341747B1 (no)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB0525857.9A GB0525857D0 (en) 2005-12-20 2005-12-20 Product and process
PCT/GB2006/004796 WO2007071987A2 (en) 2005-12-20 2006-12-19 Alpha-galactosidase from bifidobacterium bifidum and its use

Publications (2)

Publication Number Publication Date
NO20082802L NO20082802L (no) 2008-07-03
NO341747B1 true NO341747B1 (no) 2018-01-15

Family

ID=35840743

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO20082802A NO341747B1 (no) 2005-12-20 2008-06-20 DNA sekvens, vertcelle, rekombinant vektor, α-galaktosidase, enzym, fremgangsmåte for fremstilling av et enzym og disakkarid samt anvendelse av enzym og vertcelle

Country Status (23)

Country Link
US (1) US8058047B2 (no)
EP (1) EP1974028B1 (no)
JP (1) JP5248324B2 (no)
KR (1) KR101335396B1 (no)
CN (1) CN101370935B (no)
AU (1) AU2006328108B2 (no)
BR (1) BRPI0620199A2 (no)
CA (1) CA2634273C (no)
CY (1) CY1114173T1 (no)
DK (1) DK1974028T3 (no)
ES (1) ES2420522T3 (no)
GB (2) GB0525857D0 (no)
HK (1) HK1121780A1 (no)
IL (1) IL192342A (no)
MY (1) MY144029A (no)
NO (1) NO341747B1 (no)
NZ (1) NZ568827A (no)
PL (1) PL1974028T3 (no)
PT (1) PT1974028E (no)
RU (1) RU2385931C1 (no)
UA (1) UA97353C2 (no)
WO (1) WO2007071987A2 (no)
ZA (1) ZA200805361B (no)

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MX2011012603A (es) 2009-05-27 2012-06-01 Clasado Inc Metodo para prevenir la diarrea.
CN101993864B (zh) * 2009-08-13 2012-12-26 中国农业大学 一种耐高温β-半乳糖苷酶及其编码基因与应用
JP2015507012A (ja) 2012-02-14 2015-03-05 ザ プロクター アンド ギャンブルカンパニー 皮膚共生プレバイオティック剤及びそれを含有する組成物の局所使用
CN114145418A (zh) * 2020-09-07 2022-03-08 陈杰 一种氨基酸营养米粉及其制备方法

Family Cites Families (30)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4435389A (en) * 1980-07-07 1984-03-06 Kabushiki Kaisha Yakult Honsha Composition for promoting growth of bifidobacteria
JPS6259290A (ja) 1985-09-09 1987-03-14 Riyoushiyoku Kenkyukai イソラフイノ−ス及びその製造方法
JP2711095B2 (ja) * 1986-09-27 1998-02-10 ユニチカ株式会社 ビフイドバクテリウム菌の増殖促進剤の製造法
DK199887D0 (da) 1987-04-15 1987-04-15 Danisco Bioteknologi As Gaerstamme
JP2518663B2 (ja) * 1987-12-24 1996-07-24 株式会社ヤクルト本社 ガラクトオリゴ糖含有加工乳の製造法
US5149640A (en) * 1988-12-22 1992-09-22 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing galactose transfer products
JP2819313B2 (ja) 1989-07-18 1998-10-30 焼津水産化学工業株式会社 N―アセチルラクトサミンの製造方法
JP2819312B2 (ja) 1989-07-18 1998-10-30 焼津水産化学工業株式会社 N―アセチルラクトサミンの製造法
CA2027835A1 (en) 1990-01-19 1991-07-20 William D. Prevatt Strains of phaffia rhodozyma containing high levels of astaxanthin
JP2750767B2 (ja) 1990-02-21 1998-05-13 雪印乳業株式会社 新規糖アルコール
JP2952439B2 (ja) 1991-11-26 1999-09-27 株式会社ホーネンコーポレーション 新規飲食品素材
JPH05146296A (ja) 1991-11-27 1993-06-15 Yakult Honsha Co Ltd β−ガラクトシダーゼ遺伝子を含むDNA断片及び該DNA断片を組み込んだプラスミド
JP2904687B2 (ja) 1993-09-17 1999-06-14 雪印乳業株式会社 新規オリゴ糖
FR2723963B1 (fr) 1994-08-31 1997-01-17 Gervais Danone Co Preparation de produits fermentes par streptococcus thermophilus, enrichis en galacto-oligosaccharides et en beta-galactosidase
JP3246296B2 (ja) 1995-11-09 2002-01-15 宇部興産株式会社 半溶融金属の成形方法
JPH1023898A (ja) 1996-07-10 1998-01-27 Meiji Milk Prod Co Ltd N−アセチルラクトサミン誘導体の新規な製造法
KR100245383B1 (ko) 1996-09-13 2000-03-02 정훈보 교차홈 형성 전열관 및 그 제조 방법
JP2894293B2 (ja) 1996-09-17 1999-05-24 不二製油株式会社 ガラクタナーゼs−39及びこれを産生するバチルスエスピーs−39
NL1010770C2 (nl) 1998-12-09 2000-06-13 Nutricia Nv Preparaat dat oligosacchariden en probiotica bevat.
JP3049693B1 (ja) 1998-12-10 2000-06-05 ソフィアインターナショナル株式会社 端末ターミナル
FR2789086B1 (fr) 1999-02-03 2003-01-31 Alain Rambach Procede de detection de bacteries cultivees en condition anaerobie
DE60126269T2 (de) * 2000-05-26 2007-06-21 Arla Foods Amba Isolierte beta-galactosidase von bifidobacterium
EP1227152A1 (en) * 2001-01-30 2002-07-31 Société des Produits Nestlé S.A. Bacterial strain and genome of bifidobacterium
GB0229015D0 (en) * 2002-12-12 2003-01-15 Novartis Nutrition Ag New Compound
GB0303716D0 (en) * 2003-02-18 2003-03-19 Mars Uk Ltd Food product and process
GB2412380B (en) * 2003-06-30 2005-11-09 Clasado Inc Novel galactooligosaccharide composition and the preparation thereof
GB0522740D0 (en) * 2005-11-08 2005-12-14 Clasado Inc Process for the production of oligosaccharides
GB0601901D0 (en) * 2006-01-31 2006-03-08 Product and Process
GB0606112D0 (en) * 2006-03-28 2006-05-03 Product and process
GB0809921D0 (en) * 2008-05-30 2008-07-09 Clasado Inc Product and process therefor

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DATABASE Geneseq [Online](2002.11.19), "Bifidobacterium longum NCC2705 ORF aminoacid sequence SEQ ID NO:919."XP002431983 retrieved from EBI accession no. GSP:ABP66175.Database accession no. ABP66175 , Dated: 01.01.0001 *
SCALABRINI P ET AL, "CHARACTERIZATION OF BIFIDOBACTERIUM STRAINS FOR USE IN SOYMILK FERMENTATION", INTERNATIONAL JOURNAL OF FOOD MICROBIOLOGY, ELSEVIER SCIENCE PUBLISHERS, AMSTERDAM, NL, (1998), vol. 39, no. 3, ISSN 0168-1605, s 213 - 219, XP000952364 , Dated: 01.01.0001 *
VAN DEN BROEK L A M ET AL, "Synthesis of alpha-galacto-oligosaccharides by a cloned alpha-galactosidase from Bifidobacterium adolescentis", BIOTECHNOLOGY LETTERS, (199905), vol. 21, no. 5, ISSN 0141-5492, pages 441 - 445, XP009083120 [X] 1-6,8-15,18,19 * the whole document, in particular p.443, left-handed column, last paragraph *, Dated: 01.01.0001 *
VAN DEN BROEK L A M ET AL, "Synthesis of alpha-galacto-oligosaccharides by a cloned alpha-galactosidase from Bifidobacterium adolescentis", BIOTECHNOLOGY LETTERS, (199905), vol. 21, no. 5, ISSN 0141-5492, s. 441 - 445, XP009083120 , Dated: 01.01.0001 *

Also Published As

Publication number Publication date
AU2006328108A1 (en) 2007-06-28
IL192342A0 (en) 2008-12-29
CA2634273C (en) 2014-07-08
AU2006328108B2 (en) 2011-10-13
HK1121780A1 (en) 2009-04-30
DK1974028T3 (da) 2013-07-08
KR20080093102A (ko) 2008-10-20
RU2385931C1 (ru) 2010-04-10
GB0525857D0 (en) 2006-02-01
CY1114173T1 (el) 2016-08-31
US20090285933A1 (en) 2009-11-19
MY144029A (en) 2011-07-29
WO2007071987A3 (en) 2007-08-09
CN101370935A (zh) 2009-02-18
NO20082802L (no) 2008-07-03
GB2447003B (en) 2010-02-24
JP2009519725A (ja) 2009-05-21
ZA200805361B (en) 2009-06-24
US8058047B2 (en) 2011-11-15
UA97353C2 (en) 2012-02-10
CA2634273A1 (en) 2007-06-28
GB0812296D0 (en) 2008-08-13
PT1974028E (pt) 2013-07-09
GB2447003A (en) 2008-08-27
PL1974028T3 (pl) 2014-01-31
KR101335396B1 (ko) 2013-12-05
BRPI0620199A2 (pt) 2011-11-01
JP5248324B2 (ja) 2013-07-31
EP1974028A2 (en) 2008-10-01
WO2007071987A2 (en) 2007-06-28
NZ568827A (en) 2011-01-28
EP1974028B1 (en) 2013-06-19
ES2420522T3 (es) 2013-08-23
IL192342A (en) 2013-08-29
RU2008129712A (ru) 2010-01-27
CN101370935B (zh) 2013-06-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US8168414B2 (en) Beta-galactosidase with transgalactosylating activity
US8030049B2 (en) Galactosidase with α-galactosyltransferase activity
NO341747B1 (no) DNA sekvens, vertcelle, rekombinant vektor, α-galaktosidase, enzym, fremgangsmåte for fremstilling av et enzym og disakkarid samt anvendelse av enzym og vertcelle
MX2008008117A (en) Alpha-galactosidase from bifidobacterium bifidum and its use
MX2008009709A (es) Galactosidasa con actividad alfa-galactosil-transferasa

Legal Events

Date Code Title Description
MM1K Lapsed by not paying the annual fees